JP2004010569A - コレシシトキニン分泌促進活性を有するアルギニン含有ペプチドおよびこれを含有する食品。 - Google Patents
コレシシトキニン分泌促進活性を有するアルギニン含有ペプチドおよびこれを含有する食品。 Download PDFInfo
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Abstract
【課題】食品および食素材にアミノ酸配列を由来する特定のペプチドを用いて、コレシストキニンの分泌促進を図り、摂食抑制効果を持つ食品を作る。
【解決手段】特定のアミノ酸配列を有するアルギニン含有ペプチドにコレシストキニン分泌促進活性があることを発見し、これらを含有した食品を作ることで摂食抑制食品を作る道を開いた。また、特定のアルギニン含有ペプチドは、大豆βコングリシニンに該当するアミノ酸配列が存在し、βコングリシニンをペプシンで分解したペプチドで、本発明の課題を達成できることも発見した。
【選択図】 なし
【解決手段】特定のアミノ酸配列を有するアルギニン含有ペプチドにコレシストキニン分泌促進活性があることを発見し、これらを含有した食品を作ることで摂食抑制食品を作る道を開いた。また、特定のアルギニン含有ペプチドは、大豆βコングリシニンに該当するアミノ酸配列が存在し、βコングリシニンをペプシンで分解したペプチドで、本発明の課題を達成できることも発見した。
【選択図】 なし
Description
【０００１】
【発明が属する技術分野】
本発明は、消化管ホルモンであるコレシストキニンの分泌を促進することによって食欲抑制作用を発揮する食品素材に関するものである。
【０００２】
【従来の技術】
コレシストキニン（以降ＣＣＫと称す）は、十二指腸粘膜細胞から分泌される消化管ホルモンであり、脂肪の摂取に伴って分泌され、胆嚢の収縮および膵酵素の分泌を促進する。直鎖のポリペプチドで３３個のアミノ酸残基からなるホルモンであり、特にＣ末端のオクタペプチドが活性をもっている。
【０００３】
ＣＣＫの生理作用として注目されるのは、摂食した食品の胃排出を抑制する作用、あるいは膵酵素分泌促進能を有すること、さらに、満腹感を与えて摂食行動を抑制することが知られている（Ｗｅｌｌｅｒ，Ａ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２４７巻、１５８９−１５９１頁、１９９０年、およびＷｏｌｔｍａｎ、ＴとＲｅｉｄｅｌｂｅｒｇｅｒ，Ｒ． Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ ２７６巻、Ｒ１７０１−Ｒ１７０９頁、１９９９年）。また、血糖値を調節するホルモンであるインスリンの分泌を促すことも知られている（Ｒｏｓｓｅｔｔｉ，Ｌ．ら、Ｄｉａｂｅｔｅｓ、３６巻、１２１２−１２１５頁、１９８７年、および、Ｒｕｃｈａｋｏｆｆ、Ｒ．Ｊ．ら、Ｊｏｕｒｎａｌｏｆ Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ、６５巻、３９５−４０１頁、１９８７年）。これらの作用を利用し、肥満や糖尿病あるいは、膵炎等の生活習慣病の予防および治療を行おうとする例がある。従来は、体外から血管中にＣＣＫを投与する方法しかなかった。そのためには、ＣＣＫを注射等で投与する場合は、生理レベルを超えた多量のＣＣＫが、必要であった。また、病気治療のため毎日の投与を要する場合には、毎日の投与の煩雑さに加えて、費用が多額となってしまう欠点があった。
【０００４】
体外からＣＣＫを投与する方法に対し、食事成分のタンパク質（ペプチド）、アミノ酸あるいは脂肪酸によって、小腸粘膜にあるＣＣＫ産生細胞から分泌される内因性のＣＣＫを利用する手段もある。食品を用いる方法ならば、薬と比べて安価である。ただし、脂肪酸すなわち脂質の摂取は、それ自体が生活習慣病のリスクファクターとなることから、内因性ＣＣＫ分泌の刺激因子として用いることは不適当であった。食欲抑制食品を作るために、ＣＣＫ分泌促進作用を持った適切な食素材の開発が、求められていた。
【０００５】
タンパク質やその分解ペプチドによる内因性ＣＣＫ分泌作用について、最近になってタンパク質やペプチド自身が直接小腸細胞に働き掛けてＣＣＫ分泌を促す機構の存在が提唱されている（Ｒｉｔｔｅｒ，Ｒ．Ｃ．ら、Ｎｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅｓ ３３巻、３８７−３９９頁、１９９９年）。現在、培養細胞を用いた研究等によって食品系タンパク質の直接作用によるＣＣＫ分泌での細胞内情報伝達機構は徐々に明らかになりつつある。しかし、細胞に作用する経口摂取されたタンパク質側、特にタンパク質を構成するアミノ酸の配列からのアプローチはほとんど行われておらず、小腸細胞刺激を介したＣＣＫ分泌活性を有する食品由来の機能性ペプチドの開発は遅れていた。
【０００６】
【発明が解決しようとする課題】
解決しようとする問題点は、小腸粘膜から分泌される内因性のＣＣＫの分泌促進を行い、食欲抑制効果を有する食素材を開発することであり、しかも安全で安価な食素材でなくてはならない。
【０００７】
【課題を解決するための手段】
本発明は、ＣＣＫ分泌促進し、そのことによって食欲抑制機能を発揮させるために、特定のアミノ酸配列、すなわち特定の位置にアルギニンが結合したアルギニン含有ペプチドを用いることを最も主要な特徴としている。さらに、特定のアミノ酸配列のアルギニン含有ペプチドが、従来の食素材の中にも存在することを発見し、特定の加工法によって食欲抑制作用のある食素材にすることを特徴としている。
【０００８】
【発明の実施の形態】
小腸粘膜細胞からのＣＣＫの分泌を促進する因子の研究を鋭意行い、特定のアミノ酸配列を持ったアルギニン含有ペプチドが、腸管細胞に特異的に結合することをきっかけに、ＣＣＫ分泌を促進することを発見した。ＣＣＫ分泌促進によって、これらのアルギニン含有ペプチドが、食欲抑制作用を持つことを明らかにした。さらに、これらの特定のアミノ酸配列を持ったアルギニン含有ペプチドが、従来の食品素材中に存在していることも明らかにした。これらの発見を利用して、食欲抑制作用のある食素材を従来の食品素材を加工することによって実現した。
発明者の一連の研究結果から、摂取したタンパク質やペプチド自身が、直接消化管に結合してＣＣＫ分泌促進の機構の存在を見出した。このようにタンパク質やペプチドを消化管が直接認識して何らかの生理現象を発現させるといった報告は、過去にはない。食品の第３次機構である生体調節機能の面から見たタンパク質やペプチドの新たなる可能性である。
【０００９】
【実施例１】
種々のペプチドのＣＣＫ分泌促進活性を調べるために、請求項１から７のペプチドのアミノ酸配列に相当する７種のペプチドを単離ラット小腸粘膜細胞と反応させて小腸細胞から分泌したＣＣＫ量を測定した。
【００１０】
実験に使用したアルギニン含有ペプチドは、以下の７種類のペプチドである。いずれもそれぞれの配列に合成したものであり、それぞれの実験区には、この配列以外のペプチドはなかった。
ペプチド１、Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ、（ＧＧＧＲＧＧＧ）
ペプチド２、Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ、（ＧＧＧＧＧＧＲ）
ペプチド３、Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ、（ＧＧＧＲＲＧＧ）
ペプチド４、Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ、（ＧＧＲＧＲＧＧ）
ペプチド５、Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ、（ＧＲＧＧＲＧＧ）
ペプチド６、Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ、（ＧＲＧＧＧＲＧ）
ペプチド７、Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ、（ＧＲＧＲＧＲＧ）
【００１１】
小腸粘膜細胞の単離と調製方法： 全ての実験にはＳｐｒａｇｕｅ−Ｄａｗｌｅｙ系の雄ラット、初体重約２５０ｇのものを使用した。飼料として２５％カゼイン食を与え、１２時間の明暗周期で飼育した。一夜絶食したラットを屠殺後、十二指腸の総胆管開口部を起点に２０ ｃｍの小腸を摘出し、管腔内に生理食塩水を通して洗浄した。小腸を反転し、１０ｍＭＥＤＴＡを含んだ１０ ｍｌのＫｒｅｂｓ−Ｈｅｎｓｅｌｅｉｔ ｂｉｃａｒｂｏｎａｔｅ（ＫＨＢ）溶液（３７度、ｐＨ ７．４、酸素通気済み）中に入れて３７度で５分間振とうしながらインキュベートした。インキュベート終了後、プラスチック製スティックを用いて小腸粘膜を剥ぎ取り、ＫＨＢ溶液に混合してよく撹拌した後、５００ｒｐｍで３分間遠心分離した。上清を除去し、沈殿を５ｍｌのＫＨＢ溶液（ＥＤＴＡ含有、３７度、ｐＨ ７．４、酸素通気済み）中に入れ、ピペットマンのチップを用いて細胞を分散させてから３７度で５分間振とうしながらインキュベートし、反応終了後、５００ｒｐｍで３分間遠心分離した。この作業を２度行い、単離小腸粘膜細胞を調製した。ラット３匹分の小腸粘膜細胞を一つに合わせ、２００倍量のＨＥＰＥＳ緩衝液（３７度、ｐＨ７．４、酸素通気済み）中に分散させた。そのまま１時間３７度で振とうしながらインキュベートして細胞を平衡化した後、緩衝液を新鮮なものと交換した。
【００１２】
試験試料と小腸粘膜細胞との反応方法： あらかじめ２００ ｎｍｏｌ／ｍｌの濃度で各合成ペプチドをミリＱ水に溶解した物を１ｍｌずつプラスチックのバイアルに入れ、凍結乾燥して水分を飛ばした。そこに小腸粘膜細胞懸濁液１ｍｌを添加し、３７度で３０分間振とうしながらインキュベートした。インキュベート終了後、内容物を小型遠心管に移して１０，０００ｒｐｍで７秒間遠心分離し、上清０．７ｍｌを回収した。その内の０．５ ｍｌをＳｅｐ−ｐａｋ Ｃ１８カートリッジに通し、５０ ％アセトニトリルでＣＣＫを抽出した。回収したＣＣＫは凍結乾燥後、膵腺房細胞を用いたバイオアッセイ法で定量した。
【００１３】
オリゴペプチドによるＣＣＫ分泌促進試験の結果、対照区（ペプチドを加えなかった実験区）と比較して、いずれのペプチド添加区においてもＣＣＫ分泌が促進されていた（図１）。なかでもペプチド４，５，６，および７においては、ＣＣＫ分泌が強く促進された。
【００１４】
発明者の研究での重要な発見の１つは、ＣＣＫ分泌促進をおこなう物質が、小腸刷子縁膜可溶化成分と特異的な結合を行うことを発見したことである。
各種ペプチドと小腸刷子縁膜可溶化成分との結合を分子間相互作用解析装置（ＢＩＡＣＯＲＥ３０００）を用いて測定した（Ｈｉｒａ， Ｔ．ら、Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ、６５巻、１００７−１０１５頁、２００１年）。ラット小腸粘膜細胞より回収した細胞膜可溶化成分を分子間相互作用解析装置のセンサーチップに固定化させ、そこに種々のペプチドを流して細胞膜成分との結合量を測定した。全ての実験にはＳｐｒａｇｕｅ−Ｄａｗｌｅｙ系の雄ラット、初体重約２５０ｇのものを使用した。飼料として２５％カゼイン食を与え、１２時間の明暗周期で飼育した。ラット空腸部位の粘膜に塩化カルシウムおよびＫＳＣＮ処理と超遠心分離を施して得た刷子縁膜小胞を０．１％濃度となるようにＴｒｉｔｏｎ Ｘ−１００に加えてよく撹拌し、４度で１時間振とう後、超遠心分離して得た上清を小腸刷子縁膜可溶化成分とした。ＥｘｒａｔｃｔｉＧｅｌ Ｄ ａｆｆｉｎｉｔｙ Ｐａｋ ｃｏｌｕｍｎを用いて可溶化成分中からＴｒｉｔｏｎ Ｘ−１００を除去した後、１０ ｍＭ酢酸緩衝液 （ｐＨ ４．０）で希釈したものをセンサーチップＣＭ５に固定化した。結合試験は、各種ペプチドをＨＥＰＥＳ緩衝液（１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ， ０．１５Ｍ ＮａＣｌ， ３ ｍＭ ＥＤＴＡ， ｐＨ７．４）に、種々の濃度（０， ５０， １００， ２００， ５００ ｍｉｃｒｏ ｇ／ｍｌ）で溶解し、分子間相互作用解析装置（ＢＩＡＣＯＲＥ３０００）にインジェクトした。
【００１５】
各種アルギニン含有ペプチドと小腸刷子縁膜可溶化成分との結合試験の結果を図２に示した。図中、実線で示した４種類のアルギニン含有ペプチド（ペプチド４：ＧＧＲＧＲＧＧ、ペプチド５：ＧＲＧＧＲＧＧ、ペプチド６：ＧＲＧＧＧＲＧ、および、ペプチド７：ＧＲＧＲＧＲＧ）で容量依存的な小腸膜成分との結合が観察された。これに対し、ペプチド７のグリシン部分をプロリンに置き換えたペプチド８では、結合量が低くなったものの結合活性が存在することが示された。
【００１６】
これらの結果より、アルギニンを複数有し且つその間に別のアミノ酸を挟む構造を持つペプチドに小腸細胞膜に直接結合する能力が存在することが示され、その直接作用に伴ってＣＣＫ分泌が刺激されることが示唆された。
また、これらの結果から、ＣＣＫの分泌促進活性の強さは、ペプチドが、ラット小腸粘膜細胞の表面に存在する特異的受容体に結合する活性と相関があることがわかった。この結合活性は、分子間相互作用解析装置を用いて厳密に測定することができることもわかった。
【００１７】
【実施例２】
天然に存在する食品ペプチドの中で請求項１から７のアルギニン含有ペプチドに類似した構造を分子中に多数含む大豆β−コングリシニンについて、（１）小腸刷子縁膜可溶化成分との結合活性、（２）ＣＣＫ分泌促進活性、および、（３）摂食抑制効果について調べた。
全ての実験にはＳｐｒａｇｕｅ−Ｄａｗｌｅｙ系の雄ラット、初体重約２５０ ｇのものを使用した。飼料として２５％カゼイン食を与え、１２時間の明暗周期で飼育した。
【００１８】
β−コングリシニンの単離とペプシン分解物の調製方法： 脱脂大豆粉末を１５倍容量のＴｒｉｓ−ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ８．０）と混合し、室温で１時間撹拌した。ガーゼ濾過を施した後、遠心分離（８，０００ｒｐｍ、２０分、４度）して上清を回収した。上清をｐＨ６．０に調整後、低温室で一夜放置し、再度遠心分離（８，０００ｒｐｍ、２０分、４度）して上清を回収した。続けて上清をｐＨ ４．８に調整して遠心分離（８，０００ｒｐｍ、３０分、４度）し、沈殿を回収した。得られた沈殿を３％濃度になるように標準緩衝液（３５ｍＭ Ｐｏｔａｓｓｉｕｍ ｐｈｏｓｐｈａｔｅ， ０．４ Ｍ ＮａＣｌ， １０ ｍＭ ２−メルカプトエタノール、ｐＨ７．６）に溶解し、低温室で一夜放置した。これに７５％濃度になるように硫安を添加し、この可溶化成分にさらに９０％濃度になるように硫安を添加した。得られた沈殿をミリＱ水に溶解して流水透析した後、凍結乾燥してβ−コングリシニンを得た。このβ−コングリシニン２ｇを１００倍量のリン酸溶液と混合し、ｐＨ１．８５に調整後、３７度に保温した。ここにペプシン溶液（２０ ｍｇ／ｍｌ）を１ ｍｌ添加し、３７度で１０分間振とうしながらインキュベートした。反応終了後、溶液を煮沸してペプシンを失活させた。溶液を冷却した後、遠心分離（３，０００ｒｐｍ、２０分、４度）して上清を回収した。水酸化カルシウムを用いて上清を中和した後、遠心分離（３，０００ｒｐｍ、２０分、４度）して塩を除去し、凍結乾燥によりβ−コングリシニン・ペプシン分解物を回収した。
【００１９】
β−コングリシニンのペプシン分解物と小腸刷子縁膜可溶化成分との結合試験方法： β−コングリシニン・ペプシン分解物と小腸刷子縁膜可溶化成分との結合は分子間相互作用解析装置 （ＢＩＡＣＯＲＥ ３０００）を用いて測定した。ラット空腸部位の粘膜に塩化カルシウムおよびＫＳＣＮ処理と超遠心分離を施して得た刷子縁膜小胞を０．１％濃度となるようにＴｒｉｔｏｎ Ｘ−１００に加えてよく撹拌し、４度で１時間振とう後、超遠心分離して得た上清を小腸刷子縁膜可溶化成分とした。ＥｘｒａｔｃｔｉＧｅｌ Ｄ ａｆｆｉｎｉｔｙ Ｐａｋ ｃｏｌｕｍｎを用いて可溶化成分中からＴｒｉｔｏｎ Ｘ−１００を除去した後、１０ ｍＭ酢酸緩衝液（ｐＨ ４．０）で希釈したものをセンサーチップＣＭ５に固定化した。β−コングリシニンのペプシン分解物は、ＨＥＰＥＳ緩衝液（１０ ｍＭ ＨＥＰＥＳ， ０．１５Ｍ ＮａＣｌ， ３ ｍＭ ＥＤＴＡ， ｐＨ７．４）にそれぞれ（０， ５０， １００，２５０， ５００ｍｉｃｒｏ ｇ／ｍｌ）濃度で溶解し、アナライトとして分子間相互作用解析装置（ＢＩＡＣＯＲＥ３０００）にインジェクトした。ペプシン分解処理を行わなかったβ−コングリシニンも同様にアナライトとして用いた。
【００２０】
β−コングリシニンのペプシン分解物と小腸刷子縁膜可溶化成分との結合試験の結果を図３に示した。未分解のβ−コングリシニン、β−コングリシニンのペプシン分解物共に容量依存的な小腸膜成分との結合を示した。しかし、結合能はβ−コングリシニンのペプシン分解物の方が未分解のβ−コングリシニンと比べて３〜４倍高く、ペプシン分解によってβ−コングリシニンの小腸細胞膜への結合能が増加することが示された。
【００２１】
β−コングリシニンのペプシン分解物によるｉｎ ｖｉｔｒｏでのＣＣＫ分泌促進試験方法： （１）小腸粘膜細胞の単離と調製： 一夜絶食したラットを屠殺後、十二指腸の総胆管開口部を起点に２０ｃｍの小腸を摘出し、管腔内に生理食塩水を通して洗浄した。小腸を反転し、１０ｍＭ ＥＤＴＡを含んだ１０ ｍｌのＫｒｅｂｓ−Ｈｅｎｓｅｌｅｉｔ ｂｉｃａｒｂｏｎａｔｅ（ＫＨＢ）溶液（３７度、ｐＨ ７．４、酸素通気済み）中に入れて３７度で５分間振とうしながらインキュベートした。反応終了後、プラスチックスティックを用いて小腸粘膜を剥ぎ取り、ＫＨＢ溶液に混合してよく撹拌した後５００ｒｐｍで３分間遠心分離した。上清を除去し、沈殿を５ｍｌのＫＨＢ溶液（ＥＤＴＡ含有、３７度、ｐＨ ７．４、酸素通気済み）中に入れ、ピペットマンのチップを用いて細胞を分散させてから３度で５分間振とうしながらインキュベートし、終了後５００ｒｐｍで３分間遠心分離した。この作業を２度行い、単離小腸粘膜細胞を調製した。ラット３匹分の小腸粘膜細胞を一つに合わせ、２００倍量のＨＥＰＥＳ緩衝液（３７度、ｐＨ７．４、酸素通気済み）中に分散させた。そのまま１時間３７度で振とうしながらインキュベートして細胞を平衡化した後、緩衝液を新鮮なものと交換した。
【００２２】
（２）試験試料と小腸粘膜細胞との反応方法： 未分解のβ−コングリシニン及びβ−コングリシニンのペプシン分解物をそれぞれミリＱ水に溶解 （２００もしくは、５００ ｍｉｃｒｏ ｇ／ｍｌ）したものを１ｍｌずつプラスチックのバイアルに入れ、凍結乾燥して水分を飛ばした。そこに小腸粘膜細胞懸濁液１ｍｌを添加し、３７度で３０分間振とうしながらインキュベートした。終了後、内容物を小型遠心管に移して１０，０００ｒｐｍで７秒間遠心分離し、上清０．７ｍｌを回収した。その内の０．５ ｍｌをＳｅｐ−ｐａｋ Ｃ１８カートリッジに通し、５０ ％アセトニトリルでＣＣＫを抽出した。回収したＣＣＫは凍結乾燥後膵腺房細胞を用いたバイオアッセイ法により定量した。
【００２３】
β−コングリシニンのペプシン分解物によるｉｎ ｖｉｔｒｏでのＣＣＫ分泌促進試験の結果を図４に示した。未分解のβ−コングリシニンは小腸細胞との反応で多少のＣＣＫ分泌を示すものの、対照区でのＣＣＫ分泌量と比較して有意な差は観察されなかった。これに対してβ−コングリシニンのペプシン分解物ではコントロールでのＣＣＫ分泌量と比較して有意に大きいＣＣＫ分泌量が観察された。大豆β−コングリシニンのペプシン分解物が、ＣＣＫ分泌促進活性を持つことが証明された。さらに、合成トリプシンインヒビターのｃａｍｏｓｔａｔ（０．２５ ｍｉｃｒｏｇ／ｍｌ）を投与したラットの餌の摂取量を測定したところ、未分解のβ−コングリシニンでのＣＣＫ分泌量は、さらに減少し、摂食抑制効果は、全く認められなかった。一方、大豆β−コングリシニンのペプシン分解物でのＣＣＫ分泌活性は、ｃａｍｏｓｔａｔが共存していても、非存在時と変わらず、強い分泌促進活性を示した。
【００２４】
ｉｎ ｖｉｔｒｏ実験において強いＣＣＫ分泌促進活性を示したβ−コングリシニンのペプシン分解物が、実験動物を用いたｉｎ ｖｉｖｏモデルにおいても血中ＣＣＫ濃度上昇作用を示し、ＣＣＫの生理作用の一つである摂食抑制効果を発揮することを次に示す。
【００２５】
β−コングリシニンペプシン分解物による摂食抑制試験方法： （１）ラットの外科的準備： 実験動物にはＳＤ系雄ラットを選び、実験前にあらかじめ十二指腸部位にカテーテル留置を施した。一夜絶食したラットに麻酔をかけ、幽門より１ｃｍ下部の十二指腸部位にカテーテルを挿入した。挿入したカテーテルは腹壁に固定した後、皮下を通して後、背部の首の付け根より外部に出し、塩化ビニル製のプロテクターにて保護した。ラットは一週間の回復期間をおいた後、実験に使用した。
（２）摂食抑制試験方法： 一夜絶食したラットに２ ｍｇ／ｍｌ濃度のβ−コングリシニンのペプシン分解物水溶液２．５ ｍｌをシリンジポンプを用いて、流速０．５ ｍｌ／ｍｉｎで十二指腸に投与した。投与１５分後から１時間、２５ ％カゼイン食をラットに自由摂取させ、摂食した餌の重量を測定した。実験最終日にβ−コングリシニンのペプシン分解物水溶液を投与した４５分後にエーテル麻酔下で門脈血を採取した。血漿中のＣＣＫ濃度を膵腺房細胞を用いたバイオアッセイ法にて定量した。
【００２６】
β−コングリシニン・ペプシン分解物水溶液を投与し、４５分後にラットを開腹し、門脈血を採取後直ちに遠心分離して血漿を回収した。その結果、β−コングリシニンのペプシン分解物投与群で対照区と比較して有意な血中ＣＣＫ濃度の上昇が観察された（図５）。
【００２７】
摂食量の変化も顕著であった。β−コングリシニン・ペプシン分解物水溶液を流速０．５ｍｌで十二指腸に投与１５分後に餌を与え、１時間摂食させた後餌を回収して摂食量を測定した。その結果、β−コングリシニンペプシン分解物投与群で溶媒投与群と比較して有意な摂食量の低下が観察された（図６）。また、β−コングリシニンペプシン分解物の十二指腸投与は、３０分程度の早い時点からでも摂食抑制を引き起こすことも判明した。
【００２８】
【実施例３】
大豆β−コングリシニンのアミノ酸配列中のアルギニン局在部位が、ラット小腸細胞膜に対して極めて高い結合活性を示し、かつ摂食抑制効果も強いことを以下の実験より証明した。なお、実験方法は、実施例２と同様である。
【００２９】
β−コングリシニンのアミノ酸配列の中からアルギニンが局在する部分のペプチドを合成し、それらについてラット小腸細胞膜可溶化成分との結合と摂食抑制作用を評価した。実験に供したペプチドは、次のごとくである。ペプチド１は、大豆ペプトン、ペプチド２は、大豆β−コングリシニンのペプシン分解物。ペプチド３は、アミノ酸配列：Ｖａｌ−Ａｒｇ−Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ｓｅｒであり、請求項８にあたるβ−コングリシニンのβサブユニットの５１−６３番目の配列である。ペプチド４は、アミノ酸配列：Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ｓｅｒであり、請求項９にあたるβ−コングリシニンのβサブユニットの５３−６３番目の配列である。
ペプチド５は、アミノ酸配列：Ｖａｌ−Ａｒｇ−Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅであり、請求項１０にあたるβ−コングリシニンのβサブユニットの５１−６９番目の配列である。ペプチド６は、アミノ酸配列：Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅであり、請求項６の条件を満たす最小単位の配列である。ペプチド７は、アミノ酸配列：Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｖａｌ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｎ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｓｅｒであり、請求項１１にあたるβ−コングリシニンのαサブユニットの配列である。ペプチド８は、アミノ酸配列：Ｖａｌ−Ａｒｇ−Ｖａｌ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ｓｅｒであり、請求項１２にあたるβ−コングリシニンのαプライム・サブユニットの配列である。各ペプチド溶液は １００ ｍｉｃｒｏ ｇ／ｍｌの濃度で使用した。
【００３０】
小腸粘膜可溶化成分との結合は分子間相互作用解析装置（ＢＩＡＣＯＲＥ ３０００）を用いて測定した結果、請求項８にあたるβ−コングリシニンのβサブユニットの５１−６３番目の配列を持つペプチド（Ｖａｒ−Ａｒｇ−Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ｓｅｒ）が、β−コングリシニンペプシン分解物の約３．５倍、大豆タンパク質ペプシン分解物の約１５倍という大きな結合活性を示した（図７）。結合活性は、請求項６の条件を満たす最小単位のＩｌｅ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅでもβ−コングリシニンペプシン分解物と同程度であり、請求項４から６の条件を満たす部分の数が多くなるほど細胞膜成分との結合量は、増加することを発見した。
【００３１】
請求項８のペプチドと類似したアミノ酸配列が、β−コングリシニンのαサブユニット（Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｖａｌ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｎ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｓｅｒ）並びに、αプライム・サブユニット（Ｖａｌ−Ａｒｇ−Ｖａｌ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ｓｅｒ）にも存在する。これらの細胞膜成分との結合能についても調べた。その結果、β−コングリシニンペプシン分解物と比べてより多い結合量を示し、ＣＣＫ分泌促進効果を期待できることがわかった。しかし、単位重量あたりの結合活性は、請求項８のペプチドと比較すると半分程度であった（図７）。
【００３２】
これらのペプチドについて摂食抑制効果を調べた。ペプチド溶液の十二指腸投与によって摂食量は有意に抑えられた。
【００３３】
【発明の効果】
本発明のオリゴペプチドは、摂食されて小腸内に達すると、コレシストキニン（ＣＣＫ）の分泌を著しく促進し、その結果、ＣＣＫは脳中枢に作用して、摂食抑制作用を引き起こす。同時に胃に作用して、胃排泄抑制をおこない満腹感を与える。本発明のこの性質を利用することによって過食予防食品など、食べることによって食欲を押さえる食品及び食素材を作ることができ、肥満や過食症の予防食品となりうる。
【図面の簡単な説明】
【図１】アルギニン含有ペプチドのコレシストキニン分泌促進活性
請求項１から７のペプチドを含む７種のアルギニン含有合成ペプチドを単離ラット小腸粘膜細胞と反応させた際のＣＣＫ分泌活性を表した図である。対照区（ペプチドを加えなかった実験区）でのＣＣＫ分泌量を１００％として表示した。（実施例１）
【符号の説明】
ペプチド１：Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ
ペプチド２：Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ
ペプチド３：Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ
ペプチド４：Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ
ペプチド５：Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ
ペプチド６：Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ
ペプチド７：Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ
【図２】アルギニン含有ペプチドの小腸粘膜への特異的結合能
請求項１から７のペプチドを含む８種のアルギニン含有合成ペプチドとラット小腸粘膜細胞膜可溶化成分との結合量を表した図である。小腸粘膜可溶化成分との結合は分子間相互作用解析装置
（ＢＩＡＣＯＲＥ ３０００）を用いて測定した。（実施例１）
【符号の説明】
− −▲− −（破線）：Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ
− −■− −（破線）：Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ
− −●− −（破線）：Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ
−◇−（実線）：Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ
−△−（実線）：Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ
−□−（実線）：Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ
−○−（実線）：Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ
− −×− −（破線）：Ｐｒｏ−Ａｒｇ−Ｐｒｏ−Ａｒｇ−Ｐｒｏ−Ａｒｇ−Ｐｒｏ
【図３】大豆β−コングリシニンおよびそのペプシン分解物の小腸粘膜への特異的結合
β−コングリシニン及びそのペプシン分解物とラット小腸粘膜細胞膜可溶化成分との結合量を表した図である。小腸粘膜可溶化成分との結合は分子間相互作用解析装置
（ＢＩＡＣＯＲＥ ３０００）を用いて測定した。（実施例２）
【符号の説明】
−○−：大豆β−コングリシニン
−●−：大豆β−コングリシニンのペプシン分解物
【図４】大豆β−コングリシニンおよびそのペプシン分解物のコレシストキニン分泌促進活性
β−コングリシニン及びそのペプシン分解物を単離ラット小腸粘膜細胞と反応させた際のＣＣＫ分泌率を表した図である。（実施例２）
【符号の説明】
＊：コントロール群に対し危険率５％で有意差有り
【図５】ラット血中におけるコレシストキニン濃度
ラット小腸にβ−コングリシニンペプシン分解物溶液を投与して４５分後の門脈血中ＣＣＫ濃度を表した図である。（実施例２）
【符号の説明】
＊ ：コントロール群に対し危険率５％で有意差有り
【図６】摂食量抑制効果
β−コングリシニンペプシン分解物溶液を小腸に投与したラットの一時間の摂食量を表した図である。（実施例２）
【符号の説明】
＊：コントロール群に対し危険率５％で有意差有り
【図７】大豆βコングリシニンのアルギニン含有ペプチド部分の小腸粘膜との特異的結合活性
大豆タンパク質ペプシン分解物、大豆β−コングリシニンのペプシン分解物、および請求項８から１２のペプチドを含む６種のアルギニン含有ペプチドとラット小腸細胞膜可溶化成分との結合を表した図である。小腸粘膜可溶化成分との結合は分子間相互作用解析装置
（ＢＩＡＣＯＲＥ ３０００）を用いて測定した。なお、各ペプチド溶液は１００ ｍｉｃｒｏ ｇ／ｍｌの濃度で使用した。（実施例３）
【符号の説明】
ペプチド１：大豆タンパク質ペプシン分解物
ペプチド２：大豆β−コングリシニンのペプシン分解物
ペプチド３：Ｖａｌ−Ａｒｇ−Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ｓｅｒ
ペプチド４：Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ｓｅｒ
ペプチド５：Ｖａｌ−Ａｒｇ−Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ
ペプチド６：Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ
ペプチド７：Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｖａｌ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｎ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｓｅｒ
ペプチド８：Ｖａｌ−Ａｒｇ−Ｖａｌ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ｓｅｒ
【発明が属する技術分野】
本発明は、消化管ホルモンであるコレシストキニンの分泌を促進することによって食欲抑制作用を発揮する食品素材に関するものである。
【０００２】
【従来の技術】
コレシストキニン（以降ＣＣＫと称す）は、十二指腸粘膜細胞から分泌される消化管ホルモンであり、脂肪の摂取に伴って分泌され、胆嚢の収縮および膵酵素の分泌を促進する。直鎖のポリペプチドで３３個のアミノ酸残基からなるホルモンであり、特にＣ末端のオクタペプチドが活性をもっている。
【０００３】
ＣＣＫの生理作用として注目されるのは、摂食した食品の胃排出を抑制する作用、あるいは膵酵素分泌促進能を有すること、さらに、満腹感を与えて摂食行動を抑制することが知られている（Ｗｅｌｌｅｒ，Ａ．ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２４７巻、１５８９−１５９１頁、１９９０年、およびＷｏｌｔｍａｎ、ＴとＲｅｉｄｅｌｂｅｒｇｅｒ，Ｒ． Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ ２７６巻、Ｒ１７０１−Ｒ１７０９頁、１９９９年）。また、血糖値を調節するホルモンであるインスリンの分泌を促すことも知られている（Ｒｏｓｓｅｔｔｉ，Ｌ．ら、Ｄｉａｂｅｔｅｓ、３６巻、１２１２−１２１５頁、１９８７年、および、Ｒｕｃｈａｋｏｆｆ、Ｒ．Ｊ．ら、Ｊｏｕｒｎａｌｏｆ Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ、６５巻、３９５−４０１頁、１９８７年）。これらの作用を利用し、肥満や糖尿病あるいは、膵炎等の生活習慣病の予防および治療を行おうとする例がある。従来は、体外から血管中にＣＣＫを投与する方法しかなかった。そのためには、ＣＣＫを注射等で投与する場合は、生理レベルを超えた多量のＣＣＫが、必要であった。また、病気治療のため毎日の投与を要する場合には、毎日の投与の煩雑さに加えて、費用が多額となってしまう欠点があった。
【０００４】
体外からＣＣＫを投与する方法に対し、食事成分のタンパク質（ペプチド）、アミノ酸あるいは脂肪酸によって、小腸粘膜にあるＣＣＫ産生細胞から分泌される内因性のＣＣＫを利用する手段もある。食品を用いる方法ならば、薬と比べて安価である。ただし、脂肪酸すなわち脂質の摂取は、それ自体が生活習慣病のリスクファクターとなることから、内因性ＣＣＫ分泌の刺激因子として用いることは不適当であった。食欲抑制食品を作るために、ＣＣＫ分泌促進作用を持った適切な食素材の開発が、求められていた。
【０００５】
タンパク質やその分解ペプチドによる内因性ＣＣＫ分泌作用について、最近になってタンパク質やペプチド自身が直接小腸細胞に働き掛けてＣＣＫ分泌を促す機構の存在が提唱されている（Ｒｉｔｔｅｒ，Ｒ．Ｃ．ら、Ｎｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅｓ ３３巻、３８７−３９９頁、１９９９年）。現在、培養細胞を用いた研究等によって食品系タンパク質の直接作用によるＣＣＫ分泌での細胞内情報伝達機構は徐々に明らかになりつつある。しかし、細胞に作用する経口摂取されたタンパク質側、特にタンパク質を構成するアミノ酸の配列からのアプローチはほとんど行われておらず、小腸細胞刺激を介したＣＣＫ分泌活性を有する食品由来の機能性ペプチドの開発は遅れていた。
【０００６】
【発明が解決しようとする課題】
解決しようとする問題点は、小腸粘膜から分泌される内因性のＣＣＫの分泌促進を行い、食欲抑制効果を有する食素材を開発することであり、しかも安全で安価な食素材でなくてはならない。
【０００７】
【課題を解決するための手段】
本発明は、ＣＣＫ分泌促進し、そのことによって食欲抑制機能を発揮させるために、特定のアミノ酸配列、すなわち特定の位置にアルギニンが結合したアルギニン含有ペプチドを用いることを最も主要な特徴としている。さらに、特定のアミノ酸配列のアルギニン含有ペプチドが、従来の食素材の中にも存在することを発見し、特定の加工法によって食欲抑制作用のある食素材にすることを特徴としている。
【０００８】
【発明の実施の形態】
小腸粘膜細胞からのＣＣＫの分泌を促進する因子の研究を鋭意行い、特定のアミノ酸配列を持ったアルギニン含有ペプチドが、腸管細胞に特異的に結合することをきっかけに、ＣＣＫ分泌を促進することを発見した。ＣＣＫ分泌促進によって、これらのアルギニン含有ペプチドが、食欲抑制作用を持つことを明らかにした。さらに、これらの特定のアミノ酸配列を持ったアルギニン含有ペプチドが、従来の食品素材中に存在していることも明らかにした。これらの発見を利用して、食欲抑制作用のある食素材を従来の食品素材を加工することによって実現した。
発明者の一連の研究結果から、摂取したタンパク質やペプチド自身が、直接消化管に結合してＣＣＫ分泌促進の機構の存在を見出した。このようにタンパク質やペプチドを消化管が直接認識して何らかの生理現象を発現させるといった報告は、過去にはない。食品の第３次機構である生体調節機能の面から見たタンパク質やペプチドの新たなる可能性である。
【０００９】
【実施例１】
種々のペプチドのＣＣＫ分泌促進活性を調べるために、請求項１から７のペプチドのアミノ酸配列に相当する７種のペプチドを単離ラット小腸粘膜細胞と反応させて小腸細胞から分泌したＣＣＫ量を測定した。
【００１０】
実験に使用したアルギニン含有ペプチドは、以下の７種類のペプチドである。いずれもそれぞれの配列に合成したものであり、それぞれの実験区には、この配列以外のペプチドはなかった。
ペプチド１、Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ、（ＧＧＧＲＧＧＧ）
ペプチド２、Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ、（ＧＧＧＧＧＧＲ）
ペプチド３、Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ、（ＧＧＧＲＲＧＧ）
ペプチド４、Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ、（ＧＧＲＧＲＧＧ）
ペプチド５、Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ、（ＧＲＧＧＲＧＧ）
ペプチド６、Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ、（ＧＲＧＧＧＲＧ）
ペプチド７、Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ、（ＧＲＧＲＧＲＧ）
【００１１】
小腸粘膜細胞の単離と調製方法： 全ての実験にはＳｐｒａｇｕｅ−Ｄａｗｌｅｙ系の雄ラット、初体重約２５０ｇのものを使用した。飼料として２５％カゼイン食を与え、１２時間の明暗周期で飼育した。一夜絶食したラットを屠殺後、十二指腸の総胆管開口部を起点に２０ ｃｍの小腸を摘出し、管腔内に生理食塩水を通して洗浄した。小腸を反転し、１０ｍＭＥＤＴＡを含んだ１０ ｍｌのＫｒｅｂｓ−Ｈｅｎｓｅｌｅｉｔ ｂｉｃａｒｂｏｎａｔｅ（ＫＨＢ）溶液（３７度、ｐＨ ７．４、酸素通気済み）中に入れて３７度で５分間振とうしながらインキュベートした。インキュベート終了後、プラスチック製スティックを用いて小腸粘膜を剥ぎ取り、ＫＨＢ溶液に混合してよく撹拌した後、５００ｒｐｍで３分間遠心分離した。上清を除去し、沈殿を５ｍｌのＫＨＢ溶液（ＥＤＴＡ含有、３７度、ｐＨ ７．４、酸素通気済み）中に入れ、ピペットマンのチップを用いて細胞を分散させてから３７度で５分間振とうしながらインキュベートし、反応終了後、５００ｒｐｍで３分間遠心分離した。この作業を２度行い、単離小腸粘膜細胞を調製した。ラット３匹分の小腸粘膜細胞を一つに合わせ、２００倍量のＨＥＰＥＳ緩衝液（３７度、ｐＨ７．４、酸素通気済み）中に分散させた。そのまま１時間３７度で振とうしながらインキュベートして細胞を平衡化した後、緩衝液を新鮮なものと交換した。
【００１２】
試験試料と小腸粘膜細胞との反応方法： あらかじめ２００ ｎｍｏｌ／ｍｌの濃度で各合成ペプチドをミリＱ水に溶解した物を１ｍｌずつプラスチックのバイアルに入れ、凍結乾燥して水分を飛ばした。そこに小腸粘膜細胞懸濁液１ｍｌを添加し、３７度で３０分間振とうしながらインキュベートした。インキュベート終了後、内容物を小型遠心管に移して１０，０００ｒｐｍで７秒間遠心分離し、上清０．７ｍｌを回収した。その内の０．５ ｍｌをＳｅｐ−ｐａｋ Ｃ１８カートリッジに通し、５０ ％アセトニトリルでＣＣＫを抽出した。回収したＣＣＫは凍結乾燥後、膵腺房細胞を用いたバイオアッセイ法で定量した。
【００１３】
オリゴペプチドによるＣＣＫ分泌促進試験の結果、対照区（ペプチドを加えなかった実験区）と比較して、いずれのペプチド添加区においてもＣＣＫ分泌が促進されていた（図１）。なかでもペプチド４，５，６，および７においては、ＣＣＫ分泌が強く促進された。
【００１４】
発明者の研究での重要な発見の１つは、ＣＣＫ分泌促進をおこなう物質が、小腸刷子縁膜可溶化成分と特異的な結合を行うことを発見したことである。
各種ペプチドと小腸刷子縁膜可溶化成分との結合を分子間相互作用解析装置（ＢＩＡＣＯＲＥ３０００）を用いて測定した（Ｈｉｒａ， Ｔ．ら、Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ、６５巻、１００７−１０１５頁、２００１年）。ラット小腸粘膜細胞より回収した細胞膜可溶化成分を分子間相互作用解析装置のセンサーチップに固定化させ、そこに種々のペプチドを流して細胞膜成分との結合量を測定した。全ての実験にはＳｐｒａｇｕｅ−Ｄａｗｌｅｙ系の雄ラット、初体重約２５０ｇのものを使用した。飼料として２５％カゼイン食を与え、１２時間の明暗周期で飼育した。ラット空腸部位の粘膜に塩化カルシウムおよびＫＳＣＮ処理と超遠心分離を施して得た刷子縁膜小胞を０．１％濃度となるようにＴｒｉｔｏｎ Ｘ−１００に加えてよく撹拌し、４度で１時間振とう後、超遠心分離して得た上清を小腸刷子縁膜可溶化成分とした。ＥｘｒａｔｃｔｉＧｅｌ Ｄ ａｆｆｉｎｉｔｙ Ｐａｋ ｃｏｌｕｍｎを用いて可溶化成分中からＴｒｉｔｏｎ Ｘ−１００を除去した後、１０ ｍＭ酢酸緩衝液 （ｐＨ ４．０）で希釈したものをセンサーチップＣＭ５に固定化した。結合試験は、各種ペプチドをＨＥＰＥＳ緩衝液（１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ， ０．１５Ｍ ＮａＣｌ， ３ ｍＭ ＥＤＴＡ， ｐＨ７．４）に、種々の濃度（０， ５０， １００， ２００， ５００ ｍｉｃｒｏ ｇ／ｍｌ）で溶解し、分子間相互作用解析装置（ＢＩＡＣＯＲＥ３０００）にインジェクトした。
【００１５】
各種アルギニン含有ペプチドと小腸刷子縁膜可溶化成分との結合試験の結果を図２に示した。図中、実線で示した４種類のアルギニン含有ペプチド（ペプチド４：ＧＧＲＧＲＧＧ、ペプチド５：ＧＲＧＧＲＧＧ、ペプチド６：ＧＲＧＧＧＲＧ、および、ペプチド７：ＧＲＧＲＧＲＧ）で容量依存的な小腸膜成分との結合が観察された。これに対し、ペプチド７のグリシン部分をプロリンに置き換えたペプチド８では、結合量が低くなったものの結合活性が存在することが示された。
【００１６】
これらの結果より、アルギニンを複数有し且つその間に別のアミノ酸を挟む構造を持つペプチドに小腸細胞膜に直接結合する能力が存在することが示され、その直接作用に伴ってＣＣＫ分泌が刺激されることが示唆された。
また、これらの結果から、ＣＣＫの分泌促進活性の強さは、ペプチドが、ラット小腸粘膜細胞の表面に存在する特異的受容体に結合する活性と相関があることがわかった。この結合活性は、分子間相互作用解析装置を用いて厳密に測定することができることもわかった。
【００１７】
【実施例２】
天然に存在する食品ペプチドの中で請求項１から７のアルギニン含有ペプチドに類似した構造を分子中に多数含む大豆β−コングリシニンについて、（１）小腸刷子縁膜可溶化成分との結合活性、（２）ＣＣＫ分泌促進活性、および、（３）摂食抑制効果について調べた。
全ての実験にはＳｐｒａｇｕｅ−Ｄａｗｌｅｙ系の雄ラット、初体重約２５０ ｇのものを使用した。飼料として２５％カゼイン食を与え、１２時間の明暗周期で飼育した。
【００１８】
β−コングリシニンの単離とペプシン分解物の調製方法： 脱脂大豆粉末を１５倍容量のＴｒｉｓ−ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ８．０）と混合し、室温で１時間撹拌した。ガーゼ濾過を施した後、遠心分離（８，０００ｒｐｍ、２０分、４度）して上清を回収した。上清をｐＨ６．０に調整後、低温室で一夜放置し、再度遠心分離（８，０００ｒｐｍ、２０分、４度）して上清を回収した。続けて上清をｐＨ ４．８に調整して遠心分離（８，０００ｒｐｍ、３０分、４度）し、沈殿を回収した。得られた沈殿を３％濃度になるように標準緩衝液（３５ｍＭ Ｐｏｔａｓｓｉｕｍ ｐｈｏｓｐｈａｔｅ， ０．４ Ｍ ＮａＣｌ， １０ ｍＭ ２−メルカプトエタノール、ｐＨ７．６）に溶解し、低温室で一夜放置した。これに７５％濃度になるように硫安を添加し、この可溶化成分にさらに９０％濃度になるように硫安を添加した。得られた沈殿をミリＱ水に溶解して流水透析した後、凍結乾燥してβ−コングリシニンを得た。このβ−コングリシニン２ｇを１００倍量のリン酸溶液と混合し、ｐＨ１．８５に調整後、３７度に保温した。ここにペプシン溶液（２０ ｍｇ／ｍｌ）を１ ｍｌ添加し、３７度で１０分間振とうしながらインキュベートした。反応終了後、溶液を煮沸してペプシンを失活させた。溶液を冷却した後、遠心分離（３，０００ｒｐｍ、２０分、４度）して上清を回収した。水酸化カルシウムを用いて上清を中和した後、遠心分離（３，０００ｒｐｍ、２０分、４度）して塩を除去し、凍結乾燥によりβ−コングリシニン・ペプシン分解物を回収した。
【００１９】
β−コングリシニンのペプシン分解物と小腸刷子縁膜可溶化成分との結合試験方法： β−コングリシニン・ペプシン分解物と小腸刷子縁膜可溶化成分との結合は分子間相互作用解析装置 （ＢＩＡＣＯＲＥ ３０００）を用いて測定した。ラット空腸部位の粘膜に塩化カルシウムおよびＫＳＣＮ処理と超遠心分離を施して得た刷子縁膜小胞を０．１％濃度となるようにＴｒｉｔｏｎ Ｘ−１００に加えてよく撹拌し、４度で１時間振とう後、超遠心分離して得た上清を小腸刷子縁膜可溶化成分とした。ＥｘｒａｔｃｔｉＧｅｌ Ｄ ａｆｆｉｎｉｔｙ Ｐａｋ ｃｏｌｕｍｎを用いて可溶化成分中からＴｒｉｔｏｎ Ｘ−１００を除去した後、１０ ｍＭ酢酸緩衝液（ｐＨ ４．０）で希釈したものをセンサーチップＣＭ５に固定化した。β−コングリシニンのペプシン分解物は、ＨＥＰＥＳ緩衝液（１０ ｍＭ ＨＥＰＥＳ， ０．１５Ｍ ＮａＣｌ， ３ ｍＭ ＥＤＴＡ， ｐＨ７．４）にそれぞれ（０， ５０， １００，２５０， ５００ｍｉｃｒｏ ｇ／ｍｌ）濃度で溶解し、アナライトとして分子間相互作用解析装置（ＢＩＡＣＯＲＥ３０００）にインジェクトした。ペプシン分解処理を行わなかったβ−コングリシニンも同様にアナライトとして用いた。
【００２０】
β−コングリシニンのペプシン分解物と小腸刷子縁膜可溶化成分との結合試験の結果を図３に示した。未分解のβ−コングリシニン、β−コングリシニンのペプシン分解物共に容量依存的な小腸膜成分との結合を示した。しかし、結合能はβ−コングリシニンのペプシン分解物の方が未分解のβ−コングリシニンと比べて３〜４倍高く、ペプシン分解によってβ−コングリシニンの小腸細胞膜への結合能が増加することが示された。
【００２１】
β−コングリシニンのペプシン分解物によるｉｎ ｖｉｔｒｏでのＣＣＫ分泌促進試験方法： （１）小腸粘膜細胞の単離と調製： 一夜絶食したラットを屠殺後、十二指腸の総胆管開口部を起点に２０ｃｍの小腸を摘出し、管腔内に生理食塩水を通して洗浄した。小腸を反転し、１０ｍＭ ＥＤＴＡを含んだ１０ ｍｌのＫｒｅｂｓ−Ｈｅｎｓｅｌｅｉｔ ｂｉｃａｒｂｏｎａｔｅ（ＫＨＢ）溶液（３７度、ｐＨ ７．４、酸素通気済み）中に入れて３７度で５分間振とうしながらインキュベートした。反応終了後、プラスチックスティックを用いて小腸粘膜を剥ぎ取り、ＫＨＢ溶液に混合してよく撹拌した後５００ｒｐｍで３分間遠心分離した。上清を除去し、沈殿を５ｍｌのＫＨＢ溶液（ＥＤＴＡ含有、３７度、ｐＨ ７．４、酸素通気済み）中に入れ、ピペットマンのチップを用いて細胞を分散させてから３度で５分間振とうしながらインキュベートし、終了後５００ｒｐｍで３分間遠心分離した。この作業を２度行い、単離小腸粘膜細胞を調製した。ラット３匹分の小腸粘膜細胞を一つに合わせ、２００倍量のＨＥＰＥＳ緩衝液（３７度、ｐＨ７．４、酸素通気済み）中に分散させた。そのまま１時間３７度で振とうしながらインキュベートして細胞を平衡化した後、緩衝液を新鮮なものと交換した。
【００２２】
（２）試験試料と小腸粘膜細胞との反応方法： 未分解のβ−コングリシニン及びβ−コングリシニンのペプシン分解物をそれぞれミリＱ水に溶解 （２００もしくは、５００ ｍｉｃｒｏ ｇ／ｍｌ）したものを１ｍｌずつプラスチックのバイアルに入れ、凍結乾燥して水分を飛ばした。そこに小腸粘膜細胞懸濁液１ｍｌを添加し、３７度で３０分間振とうしながらインキュベートした。終了後、内容物を小型遠心管に移して１０，０００ｒｐｍで７秒間遠心分離し、上清０．７ｍｌを回収した。その内の０．５ ｍｌをＳｅｐ−ｐａｋ Ｃ１８カートリッジに通し、５０ ％アセトニトリルでＣＣＫを抽出した。回収したＣＣＫは凍結乾燥後膵腺房細胞を用いたバイオアッセイ法により定量した。
【００２３】
β−コングリシニンのペプシン分解物によるｉｎ ｖｉｔｒｏでのＣＣＫ分泌促進試験の結果を図４に示した。未分解のβ−コングリシニンは小腸細胞との反応で多少のＣＣＫ分泌を示すものの、対照区でのＣＣＫ分泌量と比較して有意な差は観察されなかった。これに対してβ−コングリシニンのペプシン分解物ではコントロールでのＣＣＫ分泌量と比較して有意に大きいＣＣＫ分泌量が観察された。大豆β−コングリシニンのペプシン分解物が、ＣＣＫ分泌促進活性を持つことが証明された。さらに、合成トリプシンインヒビターのｃａｍｏｓｔａｔ（０．２５ ｍｉｃｒｏｇ／ｍｌ）を投与したラットの餌の摂取量を測定したところ、未分解のβ−コングリシニンでのＣＣＫ分泌量は、さらに減少し、摂食抑制効果は、全く認められなかった。一方、大豆β−コングリシニンのペプシン分解物でのＣＣＫ分泌活性は、ｃａｍｏｓｔａｔが共存していても、非存在時と変わらず、強い分泌促進活性を示した。
【００２４】
ｉｎ ｖｉｔｒｏ実験において強いＣＣＫ分泌促進活性を示したβ−コングリシニンのペプシン分解物が、実験動物を用いたｉｎ ｖｉｖｏモデルにおいても血中ＣＣＫ濃度上昇作用を示し、ＣＣＫの生理作用の一つである摂食抑制効果を発揮することを次に示す。
【００２５】
β−コングリシニンペプシン分解物による摂食抑制試験方法： （１）ラットの外科的準備： 実験動物にはＳＤ系雄ラットを選び、実験前にあらかじめ十二指腸部位にカテーテル留置を施した。一夜絶食したラットに麻酔をかけ、幽門より１ｃｍ下部の十二指腸部位にカテーテルを挿入した。挿入したカテーテルは腹壁に固定した後、皮下を通して後、背部の首の付け根より外部に出し、塩化ビニル製のプロテクターにて保護した。ラットは一週間の回復期間をおいた後、実験に使用した。
（２）摂食抑制試験方法： 一夜絶食したラットに２ ｍｇ／ｍｌ濃度のβ−コングリシニンのペプシン分解物水溶液２．５ ｍｌをシリンジポンプを用いて、流速０．５ ｍｌ／ｍｉｎで十二指腸に投与した。投与１５分後から１時間、２５ ％カゼイン食をラットに自由摂取させ、摂食した餌の重量を測定した。実験最終日にβ−コングリシニンのペプシン分解物水溶液を投与した４５分後にエーテル麻酔下で門脈血を採取した。血漿中のＣＣＫ濃度を膵腺房細胞を用いたバイオアッセイ法にて定量した。
【００２６】
β−コングリシニン・ペプシン分解物水溶液を投与し、４５分後にラットを開腹し、門脈血を採取後直ちに遠心分離して血漿を回収した。その結果、β−コングリシニンのペプシン分解物投与群で対照区と比較して有意な血中ＣＣＫ濃度の上昇が観察された（図５）。
【００２７】
摂食量の変化も顕著であった。β−コングリシニン・ペプシン分解物水溶液を流速０．５ｍｌで十二指腸に投与１５分後に餌を与え、１時間摂食させた後餌を回収して摂食量を測定した。その結果、β−コングリシニンペプシン分解物投与群で溶媒投与群と比較して有意な摂食量の低下が観察された（図６）。また、β−コングリシニンペプシン分解物の十二指腸投与は、３０分程度の早い時点からでも摂食抑制を引き起こすことも判明した。
【００２８】
【実施例３】
大豆β−コングリシニンのアミノ酸配列中のアルギニン局在部位が、ラット小腸細胞膜に対して極めて高い結合活性を示し、かつ摂食抑制効果も強いことを以下の実験より証明した。なお、実験方法は、実施例２と同様である。
【００２９】
β−コングリシニンのアミノ酸配列の中からアルギニンが局在する部分のペプチドを合成し、それらについてラット小腸細胞膜可溶化成分との結合と摂食抑制作用を評価した。実験に供したペプチドは、次のごとくである。ペプチド１は、大豆ペプトン、ペプチド２は、大豆β−コングリシニンのペプシン分解物。ペプチド３は、アミノ酸配列：Ｖａｌ−Ａｒｇ−Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ｓｅｒであり、請求項８にあたるβ−コングリシニンのβサブユニットの５１−６３番目の配列である。ペプチド４は、アミノ酸配列：Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ｓｅｒであり、請求項９にあたるβ−コングリシニンのβサブユニットの５３−６３番目の配列である。
ペプチド５は、アミノ酸配列：Ｖａｌ−Ａｒｇ−Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅであり、請求項１０にあたるβ−コングリシニンのβサブユニットの５１−６９番目の配列である。ペプチド６は、アミノ酸配列：Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅであり、請求項６の条件を満たす最小単位の配列である。ペプチド７は、アミノ酸配列：Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｖａｌ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｎ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｓｅｒであり、請求項１１にあたるβ−コングリシニンのαサブユニットの配列である。ペプチド８は、アミノ酸配列：Ｖａｌ−Ａｒｇ−Ｖａｌ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ｓｅｒであり、請求項１２にあたるβ−コングリシニンのαプライム・サブユニットの配列である。各ペプチド溶液は １００ ｍｉｃｒｏ ｇ／ｍｌの濃度で使用した。
【００３０】
小腸粘膜可溶化成分との結合は分子間相互作用解析装置（ＢＩＡＣＯＲＥ ３０００）を用いて測定した結果、請求項８にあたるβ−コングリシニンのβサブユニットの５１−６３番目の配列を持つペプチド（Ｖａｒ−Ａｒｇ−Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ｓｅｒ）が、β−コングリシニンペプシン分解物の約３．５倍、大豆タンパク質ペプシン分解物の約１５倍という大きな結合活性を示した（図７）。結合活性は、請求項６の条件を満たす最小単位のＩｌｅ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅでもβ−コングリシニンペプシン分解物と同程度であり、請求項４から６の条件を満たす部分の数が多くなるほど細胞膜成分との結合量は、増加することを発見した。
【００３１】
請求項８のペプチドと類似したアミノ酸配列が、β−コングリシニンのαサブユニット（Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｖａｌ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｎ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｓｅｒ）並びに、αプライム・サブユニット（Ｖａｌ−Ａｒｇ−Ｖａｌ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ｓｅｒ）にも存在する。これらの細胞膜成分との結合能についても調べた。その結果、β−コングリシニンペプシン分解物と比べてより多い結合量を示し、ＣＣＫ分泌促進効果を期待できることがわかった。しかし、単位重量あたりの結合活性は、請求項８のペプチドと比較すると半分程度であった（図７）。
【００３２】
これらのペプチドについて摂食抑制効果を調べた。ペプチド溶液の十二指腸投与によって摂食量は有意に抑えられた。
【００３３】
【発明の効果】
本発明のオリゴペプチドは、摂食されて小腸内に達すると、コレシストキニン（ＣＣＫ）の分泌を著しく促進し、その結果、ＣＣＫは脳中枢に作用して、摂食抑制作用を引き起こす。同時に胃に作用して、胃排泄抑制をおこない満腹感を与える。本発明のこの性質を利用することによって過食予防食品など、食べることによって食欲を押さえる食品及び食素材を作ることができ、肥満や過食症の予防食品となりうる。
【図面の簡単な説明】
【図１】アルギニン含有ペプチドのコレシストキニン分泌促進活性
請求項１から７のペプチドを含む７種のアルギニン含有合成ペプチドを単離ラット小腸粘膜細胞と反応させた際のＣＣＫ分泌活性を表した図である。対照区（ペプチドを加えなかった実験区）でのＣＣＫ分泌量を１００％として表示した。（実施例１）
【符号の説明】
ペプチド１：Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ
ペプチド２：Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ
ペプチド３：Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ
ペプチド４：Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ
ペプチド５：Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ
ペプチド６：Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ
ペプチド７：Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ
【図２】アルギニン含有ペプチドの小腸粘膜への特異的結合能
請求項１から７のペプチドを含む８種のアルギニン含有合成ペプチドとラット小腸粘膜細胞膜可溶化成分との結合量を表した図である。小腸粘膜可溶化成分との結合は分子間相互作用解析装置
（ＢＩＡＣＯＲＥ ３０００）を用いて測定した。（実施例１）
【符号の説明】
− −▲− −（破線）：Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ
− −■− −（破線）：Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ
− −●− −（破線）：Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ
−◇−（実線）：Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ
−△−（実線）：Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ
−□−（実線）：Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ
−○−（実線）：Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ
− −×− −（破線）：Ｐｒｏ−Ａｒｇ−Ｐｒｏ−Ａｒｇ−Ｐｒｏ−Ａｒｇ−Ｐｒｏ
【図３】大豆β−コングリシニンおよびそのペプシン分解物の小腸粘膜への特異的結合
β−コングリシニン及びそのペプシン分解物とラット小腸粘膜細胞膜可溶化成分との結合量を表した図である。小腸粘膜可溶化成分との結合は分子間相互作用解析装置
（ＢＩＡＣＯＲＥ ３０００）を用いて測定した。（実施例２）
【符号の説明】
−○−：大豆β−コングリシニン
−●−：大豆β−コングリシニンのペプシン分解物
【図４】大豆β−コングリシニンおよびそのペプシン分解物のコレシストキニン分泌促進活性
β−コングリシニン及びそのペプシン分解物を単離ラット小腸粘膜細胞と反応させた際のＣＣＫ分泌率を表した図である。（実施例２）
【符号の説明】
＊：コントロール群に対し危険率５％で有意差有り
【図５】ラット血中におけるコレシストキニン濃度
ラット小腸にβ−コングリシニンペプシン分解物溶液を投与して４５分後の門脈血中ＣＣＫ濃度を表した図である。（実施例２）
【符号の説明】
＊ ：コントロール群に対し危険率５％で有意差有り
【図６】摂食量抑制効果
β−コングリシニンペプシン分解物溶液を小腸に投与したラットの一時間の摂食量を表した図である。（実施例２）
【符号の説明】
＊：コントロール群に対し危険率５％で有意差有り
【図７】大豆βコングリシニンのアルギニン含有ペプチド部分の小腸粘膜との特異的結合活性
大豆タンパク質ペプシン分解物、大豆β−コングリシニンのペプシン分解物、および請求項８から１２のペプチドを含む６種のアルギニン含有ペプチドとラット小腸細胞膜可溶化成分との結合を表した図である。小腸粘膜可溶化成分との結合は分子間相互作用解析装置
（ＢＩＡＣＯＲＥ ３０００）を用いて測定した。なお、各ペプチド溶液は１００ ｍｉｃｒｏ ｇ／ｍｌの濃度で使用した。（実施例３）
【符号の説明】
ペプチド１：大豆タンパク質ペプシン分解物
ペプチド２：大豆β−コングリシニンのペプシン分解物
ペプチド３：Ｖａｌ−Ａｒｇ−Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ｓｅｒ
ペプチド４：Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ｓｅｒ
ペプチド５：Ｖａｌ−Ａｒｇ−Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ
ペプチド６：Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ
ペプチド７：Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｖａｌ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｎ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｓｅｒ
ペプチド８：Ｖａｌ−Ａｒｇ−Ｖａｌ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ｓｅｒ
Claims (14)
- オリゴペプチドにおいて、連続した７個のアミノ酸の配列の中央（Ｎ端から４番目）にアルギニンが位置するアルギニン含有ペプチド。
- オリゴペプチドにおいて、連続した７個のアミノ酸の配列のＣ端にアルギニンが位置するアルギニン含有ペプチド。
- オリゴペプチドにおいて、連続した７個のアミノ酸の配列の中央（Ｎ端から４番目）およびＮ端から５番目にアルギニンが位置するアルギニン含有ペプチド。
- オリゴペプチドにおいて、連続した７個のアミノ酸の配列のＮ端から３番目および５番目にアルギニンが位置するアルギニン含有ペプチド。
- オリゴペプチドにおいて、連続した７個のアミノ酸の配列のＮ端から２番目および５番目にアルギニンが位置するアルギニン含有ペプチド。
- オリゴペプチドにおいて、連続した７個のアミノ酸の配列のＮ端から２番目および６番目にアルギニンが位置するアルギニン含有ペプチド。
- オリゴペプチドにおいて、連続した７個のアミノ酸の配列のＮ端から２番目、４番目および６番目にアルギニンが位置するアルギニン含有ペプチド。
- オリゴペプチドにおいて、Ｖａｌ−Ａｒｇ−Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ｓｅｒのアミノ酸配列を含んだアルギニン含有ペプチド。
- オリゴペプチドにおいて、Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ｓｅｒのアミノ酸配列を含んだアルギニン含有ペプチド。
- オリゴペプチドにおいて、Ｖａｌ−Ａｒｇ−Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅのアミノ酸配列を含んだアルギニン含有ペプチド。
- オリゴペプチドにおいて、Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｉｌｅ−Ａｒｇ−Ｖａｌ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｎ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｓｅｒのアミノ酸配列を含んだアルギニン含有ペプチド。
- オリゴペプチドにおいて、Ｖａｌ−Ａｒｇ−Ｖａｌ−Ｌｅｕ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ｓｅｒのアミノ酸配列を含んだアルギニン含有ペプチド。
- 請求項１から１２のアルギニン含有ペプチドの一種および複数種を含有した食品及び食品素材。
- 大豆β−コングリシニンのペプシン分解物を含有した食品及び食品素材。
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