JP2003525028A - 遺伝子発現および細胞移動または走化を調節するためのＦＶｌｌａまたは組織因子アンタゴニストの使用 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 本発明は、細胞移動への関連性または細胞の移動または走化を特異的に調節で処理できる病態症状の治療処置でFVllおよび／またはFVllaおよび／または他のTFアゴニストおよび／またはFVllaiおよび／または他のアンタゴニストの使用に関する。本発明は、また細胞中の少なくとも１つの遺伝子、たとえばCyr61の発現を調節に関する病態症状の治療処置でFVllおよび／またはFVllaおよび／または他のTFアゴニストおよび／またはFVllaiおよび／または他のアンタゴニストの使用にも関する。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】 発明の分野 細胞発現組織因子（TF）の血液凝固因子Vll（FVll）の活性を調節する新規な
細胞、またはたとえば組織因子（TF）を発現する細胞の不活性な凝固因子Vlla（
Fvllai）など組織因子アンタゴニストが述べられてきた。本発明は、細胞にFVll
aや他のTFアゴニストあるいはFVllaiや他のTFアンタゴニストを接触させること
により細胞移動または走化の調節するための方法、および前記細胞移動を決定す
るための方法に関する。本発明は、患者の細胞移動を調節する投薬品を調製に、
FVllaや他のTFアゴニストあるいはFVllaiや他のTFアンタゴニストの使用にも関
する。さらに本発明は、活性な化合物、特に細胞移動と相互に作用する候補とな
る薬品の処置方法および検出方法に関する。

【０００２】 発明の背景 細胞質内を循環するFVllaが膜内在性タンパク質、組織因子（TF）に結合する
時、血液凝固の外的経路が開始される。血液凝固のTFの役割についてはかなり研
究されてきた。血液凝固カスケードにおけるタンパク質分解酵素としてFVllaの
関与については、TF発現細胞の細胞外葉状部に閉じ込められると考えられる。TF
の配列がサイトカイン／インターフェロンまたは造血細胞受容体スーパーファミ
リに相同性を示した時、FVllaの細胞内の活性を最初に察することができた。造
血細胞受容体スーパーファミリの亜種Ｉには、成長ホルモンの受容体、プロラク
チン、インターロイキン１から７、顆粒―マクロファージ・コロニー刺激因子、
エリスロポエチンおよびトロンボポエチンがあげられる。亜種IIには、TFおよび
インターフェロンａおよびｂの受容体があげられる。

【０００３】 このクラスの受容体に対するＴＦの類似性は、結晶構造が明らかになったこと
でさらに実証された。インターフェロンａおよびｇならびにIL−10の受容体を含
むこのクラスのサイトカイン受容体の特徴は、これらの活性化によって受容体自
体および細胞内のタンパク質のサブセットが急速なチロシンのリン酸化を起こす
ことである。チロシンのリン酸化は開始後数分以内で、一連の分裂活性（Ser/Th
r）キナーゼ（MAPK）が活性化される。これらのキナーゼは幾つかの並列なシグ
ナリング経路に構成される。

【０００４】 種々の研究から、想定されるFVllaの細胞内のシグナリング容量は、TFを構成
的発現するヒト膀胱癌性細胞株J82、およびTFの発現のためにインターロイキン
−１に前処理された臍帯血内皮細胞において細胞内遊離カルシウム（Ca²⁺）の連
動を誘導することを示したが、細胞内チロシンキナーゼのいかなるサイトカイン
様活性も示さなかった。FVllaを決定する際、TF依存方法で、ホスポリパーゼCの
活性化を介して細胞内Ca²⁺の連動を誘発すると考えられる。FVllaがホスポリパ
ーゼCを活性にする機構は知られていないが、特にチロシンキナーゼの活性化は
範疇外である。

【０００５】 多数の研究機関による最近公開されたものでは、TFは血管新成、胚血管形成お
よび腫瘍転移などの血液凝固以外の一連の重要な生物学的機能に影響を与えるこ
とができることを示している。しかしながら、現時点でTFがこれらの生物学的機
構どのように関与しているかは明らかではない。TFの細胞外領域は、通常のクラ
スIIのサイトカイン受容体細胞外領域内と同様、２つのフイブロネクチンのタイ
プIII 様モジュールから構成されており、TFがシグナル伝達でサイトカイン受容
体の主要機能としての役割を果す可能性が高くなっている。TFは非常に短い細胞
質領域（アミノ酸残基の長さがわずか２１）を有し、サイトカイン受容体のシグ
ナリングに重要な非受容体Janusキナーゼ（Jaks）の結合に媒介する膜近接モチ
ーフを欠失している。にもかかわらず、幾つかの生物化学的な知見により、TFの
シグナル伝達機能を示唆している。

【０００６】 ヒトTFタンパク質配列の解析は、マウス、ラット、ラビットのTFに保守されて
いる細胞質領域のリン酸化部位と想定される配列を示している。TFの細胞質尾部
における特異的セリン残基は、プロテインキナーゼ活性化因子の刺激により細胞
内でリン酸化される。ヒト細胞質尾部は、U87-MG細胞の溶解質を培養する場合複
数の部位で，in vitroにおいてリン酸化される。シグナル伝達のTFの細胞質領
域に対する重要な役割は、TFの示す前転移機能がＴＦ細胞質領域への依存が必須
であることを、種々の研究でも示されている。さらに、TF細胞質領域では、アク
チン結合タンパク質２８０（ABP-280）と相互作用すること、およびTF媒介接着
接触因子にABP-280の補充を介して細胞の接着および移動を支持するが示されて
いる。

【０００７】 しかしながら、TFは、タンパク質分解機構によって、細胞外シグナリングに生
理学的なリガンドFVllaに対する共役因子として働くことによりある種のタイプ
の細胞シグナリングに関与していることも示されてきた。たとえばFVllaの細胞
表面ＴＦに結合することにより、多数のＴＦ発現細胞の細胞内Ca²⁺振動、単球内
のチロシンの一過性なリン酸化、MAPキナーゼの活性化、線維芽細胞の遺伝子発
現の変化、および腫瘍細胞のウロキナーゼ受容体の発現の増強を誘発することが
示されている。触媒的に不活性なFVlla（FVllai）は、Ca²⁺振動からＭＡＰキナ
ーゼ活性および遺伝子の減少まで多くの上記シグナリング応答を誘発することが
できず、FVllaの触媒活性では少なくとも幾つかのTF-FVlla-媒介シグナル伝達が
必要とする事を表している。

【０００８】 現在の段階では、タンパク質分解活性化FVllaによって誘発される単一、また
は複数のシグナリング経路について、およびFVllaによって生成されるシグナル
が血管新生および腫瘍転移にどのように関与していかについてあまり知られてい
ない。FVllaで誘発される応答で重要な転写の一時的プログラムを研究するため
に、本研究において、ｃＤＮＡマイクロアレイを用いてヒト線維芽細胞のFVlla
への応答を観察した。そのデータにより、いくつかの遺伝子の細胞内の発現がFV
llaへの露出下において線維芽細胞に検出可能な変化されることを示した。こう
した遺伝子の１つが、増殖因子誘発最初期遺伝子、Cyr61であり、その生成物が
、細胞接着を促進し、増殖因子で誘発されるＤＮＡ合成を増強し、線維芽細胞お
よび内皮細胞の細胞移動を刺激することを示している。

【０００９】 発明の要約 本発明は、細胞移動に関連し、細胞移動または走化を特異的に調節することに
よって処理できる病態的症状の治療処置におけるFVllおよび／またはFVllaおよ
び／または他のTFアゴニストおよび／またはFVllaiおよび／または他のＴＦアン
タゴニストの使用に関する。

【００１０】 本発明による他の側面においては、細胞内の少なくとも１つの遺伝子、たとえ
ば、Cyr61遺伝子の発現を調節に関する病態的な症状の治療処置におけるFVllお
よび／またはFVllaおよび／または他のTFアゴニストおよび／またはFVllaiおよ
び／または他のTFアンタゴニストの使用に関する。 本発明による他の側面においては、前記細胞に組織因子アゴニストを接触させ
るステップを含む細胞移動の誘発または増強するための方法に関する。

【００１１】 １つの実施の形態において、組織因子アゴニストはFVllまたはFVllaである。 本発明による他の側面において、前記細胞に組織因子アンタゴニストを接触さ
せるステップを含む細胞移動の減少または抑制するための方法に関する。 １つの実施の形態における、組織因子アンタゴニストは修飾されたFVllである
。 １つの実施の形態における、前記細胞は、線維芽細胞、平滑筋細胞、腫瘍細胞
、造血細胞および上皮細胞を含むヒト細胞発現組織因子である。

【００１２】 １つの実施の形態における、修飾因子Ｖｌｌは、Dansyl-Phe-Pro-Arg chlorom
ethl ketone、Dansyl-Glu-Gly-Arg chloromethl ketone、Dansyl-Phe-Phe-Arg c
hloromethl ketone、Phe-Phe-Arg chloromethlketone Dansyl-D-Phe-Pro-Arg ch
loromethlketone、Dansyl-D-Glu-Gly-Arg chloromethl ketone、Dansyl-D-Phe-P
he-Arg chloromethl ketone、およびD-Phe-Phe-Arg chloromethl ketoneで修飾
因子Ｖｌｌから選択される。

【００１３】 本発明の他の側面において、因子Vllaまたは因子Vllまたは他の組織因子アゴ
ニストまたはその組み合わせを含む薬理的組成物の有効量を患者に投与すること
を含め前記患者に傷創治癒の誘発または増強するための方法に関する。 本発明の他の側面において、組織因子アンタゴニストを含む薬理的組成物の有
効量を前記患者に投与することを含め、望ましくない細胞移動、浸入、移動を誘
発する細胞の増殖または血管新成に関係する疾患または症状を有する前期患者の
細胞移動、浸入、移動を誘発する細胞の増殖または血管新成の阻害または減少さ
せるための方法に関する。

【００１４】 １つの実施の形態における、疾患または症状は、主な腫瘍増殖、腫瘍浸入また
は腫瘍転移である。 本発明の他の側面において、細胞移動を誘発または増強するために投薬品を製
造するための組織因子アゴニストの使用に関する。 本発明の他の側面において、細胞移動を減少または阻害するために投薬品を製
造するための組織因子アンタゴニストの使用に関する。 本発明の他の側面において、細胞に組織因子アゴニストを接触させるか、前記
細胞に組織因子アンタゴニストを接触させるかのいずれかのステップを含む前記
細胞の少なくとも１つの遺伝子の発現を調節する方法に関する。

【００１５】 １つの実施の形態における、遺伝子は、CCN遺伝子ファミリーに属する遺伝子
である。 他の実施の形態における、遺伝子は、Cyr61、CTFG、ドーパミンD2受容体、EST
incyte PD395116またはP2Uヌクレオチド受容体から成る群から選択される。 １つの実施の形態における遺伝子はCyr61遺伝子である。

【００１６】 １つの実施の形態における調節することは、発現を誘発または増強することで
ある。他の形態における調節することは、発現を減少または阻害することである
。 １つの実施の形態におけるFVllやFVllaあるいは他の組織因子アゴニストは、
遺伝子発現を誘発または増強し、修飾されたFVllまたは他の組織因子アンタゴニ
ストは遺伝子発現、たとえば前記遺伝子はCCN遺伝子ファミリーに属する遺伝子
であるか、あるいは前記遺伝子がCyr61、CTFG、ドーパミンD2受容体、EST incyt
e PD395116またはP2Uヌクレオチド受容体から成る群から選択される場合、遺伝
子発現を減少するかまたは阻害する。

【００１７】 他の実施の形態におけるFVllまたはFVllaまたは他の組織因子アゴニストは、
遺伝子発現を減少または阻害すること、および修飾されたFVllまたは他の組織因
子アンタゴニストは、たとえば前記遺伝子がEST PD674714である場合、遺伝子発
現を誘発または増強する。 処置可能な疾患状態は、たとえばアテローム性動脈硬化症、腫瘍の沈着、腫瘍
増殖、腫瘍浸入、転移または血管新成など病態的な症状である。 処置可能な他の状態は、たとえば血管壁の再生および火傷の処置、炎症、また
はたとえば組織の増殖などin vitroで細胞移動の調節を含む創傷を治癒するこ
とである。

【００１８】 発明の具体的な説明 本発明は細胞移動を誘発または増強するための薬理的組成物を製造するための
FVllまたはFVllaまたは他のTFアゴニストの使用に関する。 本発明のさらなる側面における、創傷治癒または血管新成を誘発、増強するた
めに薬理的組成物を製造するためのFVllまたはFVllaまたは他のTFアゴニストの
使用に関する。

【００１９】 本発明のさらなる側面において、細胞移動を抑制または防止するために薬理的
組成物を製造するためのFVllaiまたは他のTFアンタゴニストの使用に関する。 １つの実施の形態において、細胞移動は中心的課題である。 本発明のさらなる側面において、血管新成、転移、腫瘍増殖または腫瘍浸入を
抑制または防止するための薬理的組成物を製造するためのFVllaiまたは他のTFア
ンタゴニストの使用に関する。 本発明のさらなる側面において、FVllまたはFVllaまたは他のTFアゴニストの
有効量を前記患者に投与することを含め、患者の細胞移動を誘発または増強する
ための方法に関する。

【００２０】 本発明のさらなる側面において、FVllaiまたは他のTFアンタゴニストの有効量
を前記患者に投与することを含め、患者の細胞移動を抑制または防止するための
方法に関する。 具体的な実施の形態において、有効量は、１日当りの用量が約5μｇ/ｋｇ/日
から約５００μg/kg／日である。 さらなる実施の形態において、TFアンタゴニストは、修飾されたFVlla、たと
えばFFR-FVllaを含む。

【００２１】 本発明は、細胞移動の刺激に関するFVllおよび／またはFVllaの活性化機構を
提供する。こうした機構は、内皮細胞、上皮細胞、線維芽細胞、平滑筋細胞、お
よび単球／マクロファージなどのＴＦ発現細胞が関与する、病態的な症状におけ
るFVllおよび／またはFVllaの関与することを確立するための基盤を提供する。 さらに本発明は、治療としての介在に有益な特異的な薬理的標的を同定する基
盤を提供する。

【００２２】 従って、本発明は、細胞移動に関係し、細胞移動を特異的に調節することによ
って処置される病態的な症状の治療処置にFVllおよび／またはFVllaおよび／ま
たはFVllaiの使用に関する。 他の側面における、本発明は、細胞移動を調節することに関与する薬品を検出
する方法に関し、その方法は、 ａ）TF発現細胞の培養するステップと ｂ）前期細胞移動を測定するステップと ｃ）関与する薬品で前期細胞を培養するステップと ｄ）培養された細胞移動を測定し、ステップｂで測定された移動度と比較し移
動レベルの変化を判定するステップでこうした変化は、前記細胞に生物学的に活
性な薬品候補を指示できるステップを構成する。

【００２３】 一般的に、血液凝固「カスケード」として言及されてきた因子に関与する血液
成分は、それ自体活性な凝結因子である活性因子で作用するたんぱく質分解酵素
に転換される酵素前躯体または酵素原で酵素的に不活性なタンパク質である。こ
うした転換を受けた凝固因子は、一般的に「活性因子」と言われ、凝血因子の名
前に「ａ」と言う文字を加えることで指定される（たとえば因子Vlla）。「亜鉛
キレータ」と言う用語は、因子Vllaに結合し因子FVlla内のカルシウム・イオン
を亜鉛イオンでの置換を誘発し、それによって、因子Vllaまたは組織因子と因子
Vllaの複合体（TF-FVlla）の活性を抑制する化合物を含む事を意図する。

【００２４】 本発明による適切なTFアンタゴニストは、亜鉛キレート化合物でも可能であり
、たとえば、亜鉛イオンをキレートできる位置にたがいに相対し配置されるハイ
ドロキシメイト基またはハイドライズ基を有するジハイドロキシメイトまたはジ
ハイドライズで可能である。亜鉛キレート化合物は、FVllaと結合した状態で作
用する。Zn²⁺イオンは、Ca²⁺イオンの刺激効果と競合的に抑制作用を行う。Zn²⁺ イオンは、FVlla内にある１つまたは複数のカルシウム結合部位から、Ca²⁺イオ
ンを置換することが想定される。

【００２５】 亜鉛キレート化合物、たとえばハイドロキシメイトまたはハイドライズは、カ
ルシウム・イオンと競合的に亜鉛イオンを結合するための強力な支持物質として
作用することができる。特定の化合物は、これによって、因子Vlla／組織因子複
合体の亜鉛の抑制作用の機能をたかめる。亜鉛キレート化合物が因子Vllaに結合
し、Zn²⁺でCa²⁺の置換を容易にする機構によって、組織因子と複合化した因子Vl
laの活性は、抑制することができる。この活性によって、キレート化合物は、血
中の遊離Ca²⁺およびZn²⁺イオンの正常な濃度で、TFに及ぼす調節的な効果を発揮
する。

【００２６】 「FVll」または「因子Vll」の用語は、「１本鎖」（酵素原の）凝固因子Vllの
意味である。「因子Vlla」または「FVlla」の用語は、Arg152-lle153ペプチド結
合に特異的に切断することによって、切断された「２本鎖」活性凝固因子Vllの
意味である。FVllおよびFVllaは、血液より精製され、組み換え手段によって製
造することができる。本願に述べられている方法の実施には、精製因子Vllaがど
のように導入されるかは無関係であることは明らかであり、したがって、本発明
は、本発明における使用に適切な因子VllかFVllaのあらゆる調製物の使用を適応
すると考えられる。好ましくはヒトFVllaである。FVllまたはFVllaは、１つまた
は複数のアミノ酸残基が置き換えられたFVll変異体も含むと考えられる。

【００２７】 「修飾因子Vll」、「不活性FVll」または「FVllai」の用語の意図する意味は
、触媒中心において少なくとも１つの修飾を有するFVllaで、その修飾とは、FX
およびFIXを活性にするため修飾されたFVllaの能力を基本的抑制することである
。この用語は、交換して使用することができる。こうした修飾には、１つまたは
複数の触媒的３組残基Ser344、Asp142およびHis193のアミノ酸置換（または交換
）を含み、さらに有機リン酸化合物、スルファニルフルオライド、ペプチド・ハ
ロメチルケトン、またはアザペプチドなどセリンプロテアーゼ抑制物質で触媒的
３組残基の修飾も含む。

【００２８】 FFR-FVllaは、不可逆抑制物質、Ｄ−フェニールアラニン−Ｌ−フェニールア
ラニン−Ｌ−アルギニン クロロメチルケトン（FFR cmk）でFVllaの活性中心を
ブロッキングすることによって得られたＦＶｌｌａｉ誘導体の１試料である。他
の適切な誘導体は、Ｌ−フェニールアラニン−Ｌ−フェニールアラニン−Ｌ−ア
ルギニン クロロメチルケトン、ダンシル−Ｌ−フェニールアラニン−Ｌ−フェ
ニールアラニン−Ｌ−アルギニン クロロメチルケトン、またはダンシル−Ｄ−
フェニールアラニン−Ｌ−フェニールアラニン−Ｌ−アルギニン クロロメチル
ケトンで活性化中心をブロッキングすることによって得られるか、得ることので
きる不活性FVllaである。好ましくはFFR-FVllaである（FFR cmkにより不活性化
されたFVlla）。

【００２９】 用語「プロテインキナーゼ」は、ペプチドおよび／またはタンパク質のセリン
および／またはトレオニンおよび／またはチロシンをリン酸化することのできる
酵素を意味することが意図される。 用語「対象薬品」とは、生物学的な機能を有し、細胞系における生物学的効力
を発揮する試料を示すために意図される。その試料は、微生物または植物抽出物
など生物学的な物質の試料でも良く、あるいは有機合成または遺伝子操作によっ
て調製された化合物またはその混合物を含む試料であっても良い。

【００３０】 「TFアゴニスト」という用語は、 ａ）TF（たとえばFVlla）に直接結合することによるシグナルの伝達と ｂ）MAPKカスケードの刺激と ｃ）MAPKの阻害化の抑制（たとえばPTPアーゼ阻害物質）を誘発する化合物を
含み、アゴニストとは、上記定義した対象薬品である。

【００３１】 「TFアンタゴニスト」という用語は、 ａ）伝達することなくTFに、たとえばFVllaに結合するためにFVllaと競合する
試薬類と ｂ）FVllaに結合し、TFに、たとえばＺｎヒドロオキサメートへの結合を防止
する試薬類と ｃ）MAPKカスケードのメンバーを抑制することによってシグナル伝達を抑制す
る試薬類と ｄ）FVlla/TFに結合し、伝達を防止する試薬類と ｅ）FVlla/TF/FXに結合し、伝達を防止する試薬類と ｆ）ヒト組織因子／因子Vllaの複合体で触媒とされたスケードされたヒト因子
Ｘの活性化をブロックする試薬類を含み、アンタゴニストは上記定義した対象薬
品である。

【００３２】 用語「薬理学的な標的」とは、TFを発現する細胞移動を変更可能なタンパク質
を示すものと意図される。 用語「レポータ遺伝子」とは、転写される場合、検出可能なタンパク質を生成
するＤＮＡを示すものと意図される。 用語「SRCプロモータ要素」とは、血清中に存在する成分によって誘発される
転写因子を結合するＤＮＡ配列を示すものと意図される。 用語「TF発現細胞」とは、TFを発現する任意の動物細胞を意味するものと意図
される。

【００３３】 用語「タンパク質リン酸化」とは、ペプチドおよび／またはタンパク質のセリ
ンおよび／またはトレオニンおよび／またはチロシンのリン酸化を意味するもの
と意図される。 細胞移動の調節または調整とは、FVllaまたは他のTFアゴニスト、またはFVlla
iまたは他のTFアンタゴニストの１）進行中の正常または異常な細胞移動の増大
または減少のいずれか、２）正常な細胞移動の開始、および３）異常な細胞移動
の開始する能力として指定する。

【００３４】 遺伝子の発現の調節または調整とは、FVllaまたは他のTFアゴニスト、またはF
Vllaiまたは他のTFアンタゴニストの１）進行中の正常または異常な細胞移動の
増大または減少のいずれか、２）正常な細胞移動の開始、および３）異常な細胞
移動の開始する能力として定義される。 本文脈における用語としての「処置」とは、悪い症状を防止すること、および
すでに現れている症状を抑制するかまたは最小限にするための調整を含めた意味
である。したがってFVllaまたは他のTFアゴニスト、またはFVllaiまたは他のTF
アンタゴニストの予防的に投与することが、処置という用語に含められる。

【００３５】 本文脈における用語としての「１ユニット」とは、約０．５μｇのタンパク質
に相当する、１ｍｌの正常な血漿中に存在する因子Vllの量として指定する。活
性化後の５０ユニットは、約１μｇのタンパク質に相当する。 本文脈における用語としての「患者」とは、任意の動物、特にヒトなどの哺乳
動物を指定する。 本文脈における用語としての「対象物」とは、「患者」と相互に取り替えて使
用される。

【００３６】略語 TF 組織因子 FVll １本鎖の不活性化形状の因子Vll FVlla 活性化形状の因子Vll RFVlla 活性化形状の組み換え型因子Vll FVllai 修飾された（不活性な）因子Vll FFR-FVlla D-Phe-L-Phe-Arg クロロメチルケトンで反応によって不活
性化した因子Vll

【００３７】 組織因子(TF)は、因子FVlla(FVlla)に対する細胞受容体であり、その複合体は
血液凝固の主要な開始因子である。高容量なTFの発現をするヒト線維芽細胞の細
胞移動およびシグナル伝達に及ぼすTFに結合するFVllaの影響を研究した。FVlla
で培養された線維芽細胞は、FVllaと結合していない線維芽細胞移動より約百分
の１も低い濃度でPDGF-BBの濃度勾配に向けて移動した。抗TF抗体は、FVlla/TF
によって誘発される走化の増大を抑制した。さらにPDGF-BBによって誘発された
走化性の著しい抑制が、活性部位抑制FVlla(FFR-FVlla)で観察された。想定され
るFXaの生成およびスロンビンの活性の生成によって超走化性を誘発した可能性
が除外された。

【００３８】 FVllaは、PDGF-BBと同じ程度にイノシトール−１，４，５−３リン酸の生成を
誘発した、つまり、FVllaおよびＰDGF-BBの効果が加えられた。FFR-FVllaは、イ
ノシトール−１，４，５−トリホスフェートのどのような放出も誘発しなかった
。PDGF-BBおよびFVllaに応答する細胞移動は、PLC抑制因子によって全体的にブ
ロックされ、PLCの活性化は、その応答に対しては重要であることを示唆してい
る。従って、FVllaのTFに結合することは、血液凝固に関係なく走化性など細胞
応答を調節することができ、FVllaの触媒的な活性が必要である。

【００３９】 TFは、腫瘍細胞の転移する機能を発揮すると考えられるが、まだその機構が知
られていない。しかしながら、最近になって、Ottらは、TF細胞質領域に対する
リガンドとしてアクチン結合タンパク質２８０（ABP-280）を同定し、TFが腫瘍
細胞の転移を支持する可能性のある分子経路を提供した。FVlla/TFにより形質導
入される分子シグナルおよび生物学的機能はまだあまり知られていない。

【００４０】 ヒト線維芽細胞は、TFの構成的な発現を有する。これらの細胞は、血小板由来
増殖因子（PDGF）に対する受容体も発現する。PDGFは、その標的細胞分裂におい
て、アクチンの再構成を誘発し、細胞移動（走化）を誘導する。PDGF-BBがヒト
線維芽細胞に対して有効な走化因子であり、その走化応答がβ−受容体クラスに
よって媒介されることを前に示した。したがって、これらの細胞は、FVllaのTF
への結合で誘発されるシグナル伝達および細胞移動であると推定されることを研
究するために選択された。

【００４１】 下記に本発明者はFVllaがTFに結合することによって誘発されるシグナリング
と増殖因子への細胞応答間の関連性をはじめて明らかにした。ヒト線維芽細胞に
おいて、FVlla/TF複合体はPDGF-BBに超走化性応答を発生させるというデータを
提示する。さらに、用量依存方法で活性部位を阻害されたFVlla(FFR-FVlla)は、
PDGF-BBの方に指向する移動を抑制した。PCLおよびホスホジルイノシトール３’
−キナーゼ（PI3’−キナーゼ）に特異的な阻害物質を使用によって、FVlla/TF
のシグナルで誘発されるPDGF-BBへの超走化性応答は、ホスポリパーゼ C(PLC)
の活性によるが、PI3’-キナーゼに依存しないことも実証した。FVllaおよびPDG
F-BBは、付加方法で、PLCを活性化した後、放出される第二のメッセンジャーの
１つであるイノシトール−１，４，５−３リン酸（IP₃）の生成を誘発した。

【００４２】 TFは、肝臓、脾臓および腎臓の血管外膜および繊維カプセルにおける間質線維
芽細胞など、多くの血管外細胞の血漿膜に構成的発現がされた。従って、TFの発
現は、循環する血管から物理的に分離された部位に見出され、止血外皮タンパク
質を提供する。外傷上部にあるこうしたバリアーは、出血に対して器官を保護す
るためと考えられる。しかしながら、単球／マクロファージ、血管平滑筋細胞、
内皮細胞および多くの腫瘍細胞の内で、サイトカインおよび増殖因子を含む種々
の物質によって誘発することができる。転写レベルでの誘発は、刺激後すぐに出
現し、増殖に関係する前初期遺伝子としてTFを同定する。

【００４３】 この研究において、シグナリング受容体としてTFの役割を研究した。FVllaの
結合するリガンド上のTFの構成的に発現したのヒト線維芽細胞は、PDGF-BBの濃
度の極めて低い方へ移動することを示した。TF/FVllaだけでは、自発的な移動、
つまり任意な移動の増強を誘発しない。従って、TF/FVllaとPDGF-BBによる細胞
内シグナル伝達と増殖因子の組合せは、移動応答を達成するために必要であった
。活性部位を抑制されたFVllaは、移動応答の増強を誘発することはないから、T
Fに結合するばかりかTF/FVllaの触媒活性は必須である。TAPおよびヒルジンは、
TF/FVllaで誘発された走化性に影響を及ぼさないからFxaまたはスロンビンによ
り間接的にシグナリングが発生することも除外した。

【００４４】 FFR-FVllaの濃度が高くなるにつれその活性は、PDGF-BBで誘発される走化性を
抑制することがわかった。FFR-FVllaで培養された線維芽細胞は、、全く無作為
で正常な移動を示した。PDGF-BBで誘発された走化性に及ぼすFFR-FVllaの抑制効
果は、抗-TF抗体との結合体の存在が観察されなかった、これによりFFR-FVllaに
毒性があるという可能性が排除された。この結果は、PDGFβ-受容体およびTFを
発現する細胞において、TF/FVlla複合体がPDGF-BBの走化性応答には重要である
ことをむしろ示唆している。本願の知見によれば、FVllaはIP₃の産生を増大させ
、前に開示されたTF/FVllaに関するデータでは、特にMDCK細胞においてCa²⁺の振
動を誘発させ、PLCが多くの細胞のFVlla/TFシグナリングによって活性化される
という知見を強く裏付けている。

【００４５】 さらに、FVlla/TFによって誘発されるPDGF-BBに対するヒト線維芽細胞の超走
化性応答は、用量依存方法で、PLC-阻害物質によってブロックされる。本願では
、PDGFβ受容体Y934F変異体の細胞にPDGF-BBに同様の超走化性応答を前に見出し
ており、それはPLC-γ1のリン酸化および活性の増大を示した。これらの細胞に
おいて、PLC-γ1のリン酸化が増大することと、野生型PDGFβ−発現細胞と比較
して、IP-₃の生成が３倍も多いことと相互に関連している。FVlla/TFとPDGF-BB
を組み合わせることによって、ヒト線維芽細胞のIP-₃の産生が約２倍の増大を誘
発した。しかしながら、FVlla/TFで誘発されるIP₃産生物は、PLC-γ1のリン酸化
と関連性がない。

【００４６】 FVlla/TFで誘発されたPLC-γ2のチロシンリン酸化は、PLC-γ2の発現がヒト線
維芽細胞において極めて低いことから、同様には考えられないが除外することが
出来ない。さらに、TFの細胞外領域では、真のタンパク質チロシンキナーゼ活性
を与えられない。これらの結果は、FVlla/TFがβおよび／またはδPLCアイソザ
イムの活性を誘発することを示唆している。IP₃の放出に関するアッセイにおい
て、細胞培養培地は、約０．１ｎＭのFXaしか含まない０．１％のFSBで補充され
た。本願では、２０ｎＭ以上のFXaの濃度が、IP₃の産生の誘発に必要であること
が分った。βまたはδPLCアイソザイムが活性化される機構は、解明できるよう
に維持する。活性化は、TFと膜結合タンパク質間の共働作用に関与していると考
えられる。

【００４７】 最近TFの細胞骨格との関係が同定された。TFの細胞質領域とアクチン・フィラ
メント結合タンパク質ABP280間の分子相互関係が示された。さらに、ＴＦは、内
皮細胞の分散状態で、被膜突起部でα−アクチンおよびABP280などアクチンおよ
びアクチン・フィラメント結合タンパク質と緊密に接触しており、内皮細胞の広
がる際膜領域で膜上仮足運動することが分った。フィラメンサブファミリーとし
てABP280には、被覆突起の正常な機能が必要であり、従って細胞移動には非常に
重要である。PI3’キナーゼおよびPLCアイソザイムは、アクチン結合タンパク質
の授動など走化応答に密接に関連している。

【００４８】 前の研究において、走化性を誘発するPDGF-β受容体におけるPI3’キナーゼ経
路は、誘発されたPLC-γ1活性の過剰発現および増強が細胞内であまり重要でな
いと考えられる。これはFVIIaかTFに結合した細胞の症例でもあった。これは、P
I３’-キナーゼおよびPLCアイソザイムの活性規模が、これらの経路のうちどれ
が支配的になるかの決定を支持する。ともに取り出され、本データは細胞移動が
FVlla/TFシグナリングによって誘発される重要な形態形成機能であることを示し
ている。

【００４９】 走化性は、創傷治癒、血管新成、および転移において中核的な役割をはたして
いる。走化性は、またアテローム硬化症プラーク形成の重要な成分でもある。こ
れらのプロセスにおいて、種々の細胞は、TFおよびPDGFおよびPDGF受容体ばかり
かTFも発現する。 再狭窄は、以下の閉塞動脈の介在順序による合併症である。PDGFは、平滑筋細
胞および線維芽細胞移動および増殖を媒介することによって、血管壁の機構的な
外傷に対する応答（新内膜形成）に密接に関連してきた。ＴＦ発現細胞に結合す
るFVllaは、PDGFに対し走化性応答の増大があるが、血液凝固に依存していない
ことを初めて示した。

【００５０】 現段階で、タンパク質分解に活性なVllaによって誘発される一本かあるいは複
数のシグナリング経路およびVllaによって生成されるシグナルがどのように細胞
機構に関与できるかについてあまり知られていない。ひとつの可能性としては、
FVllaが、細胞機構を誘発するために下流に作用する増殖調節因子発現の誘発が
可能なことである。この可能性を研究するために、現段階の研究において、８０
００以上の個体のヒト遺伝子を含むｃＤＮＡマイクロアレイを使用してVllaへの
露出に対する応答で、ヒト線維芽細胞の転写プログラム変化を試験した。

【００５１】 これらの細胞は通常は血清と出会い、この血清は増殖因子を含み、物理学的（
たとえば外科的）および病理生理学的症状が要因で血管障害の状況に従って凝固
因子を活性にすることから、本願では線維芽細胞を選択した。血清への応答で観
察された遺伝子発現の一時的プログラムでは、線維芽細胞は、一般的に分裂促進
の刺激ではなく、特定の生理学的シグナルとして血清に急な露出を翻訳するよう
にプログラムされることを示唆している。血清および増殖因子に応答する転写活
性の特徴付けは、線維芽細胞が、炎症、血管新成、および創傷治癒を集約的に制
御する多様な細胞間の対話で活性な関与物質あることも示唆している。

【００５２】 Vllaに90分間曝された線維芽細胞から単離されたｍＲＮＡをｃＤＮＡマイクロ
アレイ解析すると、Cyr61のアップレギュレーションを示している。ノーザンブ
ロット解析では、Vllaで誘発される線維芽細胞のCyr61の発現を確認した。線維
芽細胞内ほど強くはないが、Vllaは、血管平滑筋細胞のCyr61の発現も増大させ
た。FVllaiがCyr61の発現を誘発することができないことから、Cyr61の発現の誘
発はFVlla’の触媒活性に依存している。因子Xaおよびスロンビンは、Cyr61の発
現の誘発も可能であるが（データを示していない）、これらの化合物は、FVlla
で誘発されるCyr61の発現に関与しない。本願の実験システムにおける因子Xaお
よびスロンビンのわずかな生成に対しては実証されなかった。さらに因子Xaおよ
びスロンビンの特異的阻害因子は、FVllaで誘発されるCyr61の発現にあまり大き
な影響を及ぼさなかった。

【００５３】 Cyr61は、線維芽細胞中の血清増殖因子によって転写活性化される前初期遺伝
子である。それは細胞外マトリックスおよび細胞表面と結合する、分泌された４
０ｋＤａで、システインのリッチおよびヘパリン結合タンパク質でコードする。
Cyr61は、保守されるイマージング遺伝子ファミリーのメンバーであり、Ｎ末端
分泌シグナルの存在を特徴とするモジュラータンパク質で、次いでファミリーの
メンバーの中に大部分保守されている４つのモジュラー構造ドメインおよび３８
のシステイン残基を有す。

【００５４】 現在このタンパク質ファミリーは、Cyr61、結合組織増殖因子（CTGF）および
トリ原がんタンパク質、Nov（従ってCCNファミリーと名付け）（CCNファミリー
は、さらに、Exp.Cell Res248:44-57,1999でLauらが述べている）を含む明らか
な６つのメンバーから構成されている。Cyr61タンパク質には、（ｉ）線維芽細
胞と同様な方法で内皮細胞の結合および広がりを促進すること（ii）線維芽細胞
および血管内皮細胞のＤＮＡ合成速度に及ぼすbFGFおよびPDGFの効果を増強する
こと（iii ）線維芽細胞と内皮細胞の両方に細胞移動を促進させることを示して
いる。

【００５５】 最近の研究では、Cyr61は、血管新成および腫瘍転移を含む細胞プロセスのメ
ンバーを調節するシグナリングに関与できるよう、周知の接着受容体であるイン
テグリンα_γβ₃にリガンドとして作用する。精製されたCyr61タンパク質では、
α_γβ₃−依存経路を通って培養においてヒト微小血管内皮細胞の直接移動を刺
激し、ラットの角膜で血管新成を誘発することを示した。さらに、腫瘍細胞のCy
r61の発現は、腫瘍増殖および血管形成を促進する。

【００５６】 線維芽細胞のCyr61の発現を誘発するFVllaを示す本データに基づいて、FVlla
で誘発されるCyr61が、インテグリンα_γβ₃を介して作用して、FVllaで媒介さ
れる細胞移動および腫瘍転移の要因となると考えられる。従って、Cyr61は、イ
ンテグリンシグナリング経路にFVlla-TFタンパク質分解シグナルを連結する。本
研究によれば、FVllaの触媒活性は、平滑筋細胞および腫瘍細胞移動が必要であ
り、FVllaの触媒活性には、Cyr61の誘発が必要であるという別の研究と腫瘍の転
移は矛盾しない。

【００５７】 Cyr61に加えて、Vllaは、FVllaで誘発される生物学的応答に媒介可能な他の調
節因子の誘発の可能である。すい臓がん細胞の細胞表面TFに結合するFVllaは、
μPAR遺伝子を選択的に過剰発現することを示した。本願では早急に、FVllaに曝
される線維芽細胞のポリ（Ａ）ポリメラーゼ遺伝子の転写のアップレグレーショ
ンを、異なる表示技術を用いて示した。ｃＤＮＡマイクロアレイは、PAPの異な
る発現を示すかどうかを知ることに関心がもたれているが、そのフィルターは、
PAP ｃＤＮＡを含んではいない。Cyr61に加えて、本願のｃＤＮＡマイクロアレ
イは、他の４つの遺伝子の異なる発現も示しているが、相違する発現の割合は有
意差の境界線上で極めて近似していた。

【００５８】 予備実験において、ノーザンブロット解析にかけることによって発現の違いを
確認することができず、FVllaで誘発される生物学的応答を媒介するためのこれ
ら遺伝子産生物の能力に関する、示唆できる関連データも存在しないから、これ
らの発現に関しさらに解析することはできない。しかしながら、CTGFがCyr61に
構造的に関連性のある分子であり、Cyr61と同じ生物学的応答を示すことから、
ｃＤＮＡマイクロアレイによってFVllaで処理された試料対比較対象試料のCTGF
の相対比は、１．８（２は.本評価において実際の大きさになるように、安全性
を加味した推定値として）であったとしても、CTGFの発現の実験をした。そのデ
ータは、FVllaでも誘発されるCTGFの発現およびVllaのキナーゼで誘発されるCTG
Fの発現は、Cyr61の発現とよく似ていた。

【００５９】 CTGFの挙動はCyr61と非常に良く似ていたが、それらの間には微妙な違いが存
在する。たとえば、（ａ）CTGFは、それ自体分裂促進することを示し、Cyr61が
真正な分裂促進活性を有しないが、増殖因子誘発ＤＮＡ合成を促進する（ｂ）Cy
r61は走化性を刺激し、CTGFは、走化性とケモキナーゼを共に刺激し、（ｃ）Cyr
61およびCTGFは共にECM結合シグナリング分子であるが、CTGFを培養培地に分泌
することを示した。従って、FVllaは、Cyr61を介して細胞機能を部分てきに調節
し、CTGFの分泌を介してその部位から離れて作用することが可能である。

【００６０】 患者がFVllaや他のTFアゴニストまたはFVllaiや他のアンタゴニストを本願記
載のように処置可能な方法は当業者によって決定されるべきである。 治療に投与される日々の用量は、医師によって決定され、用いられる特定化合
物、投与経路、患者の体重や症状に依存することになる。有効量は日々の適切な
当量として、約５μg/kg/dayから約５００μg/kg/day、好ましくは約１０μg/kg
/dayから３００μg/kg/day、より好ましくは約１５μg/kg/dayから２００μg/kg
/day、最も好ましくは約２０μg/kg/dayから１００μg/kg/dayである。

【００６１】 FVllaや他のTFアゴニストまたはFVllaiや他のアンタゴニストは、１つだけの
用量として投与されるべきであるが、複数回の投与で所定の用量および患者の症
状により４−６−１２時間の間隔で投与できることが好ましい。 FVllaや他のTFアゴニストまたはFVllaiや他のアンタゴニストは、清脈内への
注入による投与が可能であり、または連続かあるいは脈動状で注入が可能であり
あるいはたとえば腫瘍に直接注入するなどの関係部位に直接投与することが出来
る。

【００６２】 FVllaや他のTFアゴニストまたはFVllaiや他のアンタゴニストは、体重ｋｇ当
たり約１００−１００，０００単位量で，好ましくは２４時間当たり２−４回の
反復が必要な用量として約５−５００μg/kgに相当する体重ｋｇ当たり約２５０
−２５，０００単位量で、静脈注射により投与することが好ましい。 本発明により使用可能な、薬理的組成物を調製するための従来の技術は、Remi
ngton’s Pharmaceutical Sciences,1985に記載されている。

【００６３】 本発明により使用される組成物を、当業者が基本的に周知な方法で調製する。 簡単には、本発明に従って使用に適した薬理的調製には、FVllaや他のTFアゴ
ニストまたはFVllaiや他のアンタゴニストを混合することによって、好ましくは
、適切なアジュバント類、適切な担体または希釈剤で精製した状態で行われる。 適切な生理学的に受け入れできる担体または希釈剤として、滅菌水および生理
食塩水があげられる。

【００６４】 これに関する適切なアジュバント類には、精製因子Vllaを安定にするために、
カルシウム、タンパク質（たとえばアルブミン）、または他の不活性ペプチド（
グリシルグリシン）またはアミノ酸（たとえばグリシンまたはヒスチジン）があ
げられる。他の生理学的に受け入れできるアジュバント類には、非還元糖類、多
価アルコール類、（たとえばソルビトール、マニトールまたはグリセロール）、
低分子量のデキストリンなどの多糖類、浄化剤（たとえばポリソルベート）およ
び抗酸化剤（たとえば硫酸水素塩およびアスコロビン）がある。アジュバント類
は、通常０．００１から４％w/ｖの濃度で存在する。薬理的調製は、たとえばア
プロニチンなどのプロテアーゼ阻害物質、および保存剤を含めても良い。

【００６５】 調製には、たとえばバクテリア保持フィルターを通してろ過することにより、
滅菌剤を組成物に組み込むことによって、組成物を照射することによって、ある
いは組成物を加熱することによって滅菌しても良い。これらは、使用する前か、
または直前に注入に適切な滅菌水またはある種の他の滅菌培養液に溶解すること
のできる滅菌した状態の固形組成物も製造することができる。

【００６６】 違う側面における本発明は、ａ）前記細胞に因子Vll（ａ）または組織因子ア
ンタゴニストを接触させるステップ、ｂ）前記細胞の前記遺伝子の発現を決定す
るステップを含む細胞内の少なくとも１つの遺伝子の発現を調節する方法に関す
る。 上記方法において、前記細胞は、線維芽細胞および平滑筋細胞を含む組織因子
を発現するヒト血管細胞である。 上記方法において、前記遺伝子は、Cyr61、CTGF,ドーパミンD２受容体、EST
incyte PD395116またはP2Uヌクレオチド受容体から成る群から選択される。 上記方法において、前記組織因子アンタゴニストは、因子FVllaiとして周知な
修飾因子Vll（ａ）である。

【００６７】 上記方法において、前記遺伝子の発現は、増強される。 上記方法において、前記遺伝子の発現は、阻止または最小限にされる。 前記細胞に因子Vllaを接触させることを含む前記遺伝子の発現を増強する方法
。 前記細胞にFVllaiとして周知な修飾因子Vllを接触させることを含む前記遺伝
子の発現を阻止する方法。 前記方法において、前記遺伝子はEST PD674714である。 細胞移動を調節するための方法において、ａ）前記細胞に因子Vllaまたは組織
因子アンタゴニストを接触させるステップ、ｂ）前記細胞移動を決定するステッ
プを含む方法。

【００６８】 前記方法において、前記細胞は、線維芽細胞、平滑筋細胞、腫瘍細胞、造血細
胞、および上皮細胞を含む組織因子を発現するヒト細胞である。 前記方法において、組織因子アンタゴニストは、因子Vllaiとして周知な修飾
因子Vllaである。 前記方法において、前記修飾因子Vllは、Dansyl-Phe-Pro-Arg chloromethl ke
tone、Dansyl-Glu-Gly-Arg chloromethl ketone、Dansyl-Phe-Phe-Arg chlorome
thl ketone、およびPhe-Phe-Arg chloromethl ketone、から選択される。 細胞移動を増強する方法において、前記細胞にFVllaまたは組織因子アゴニス
トを接触させることを含む方法。

【００６９】 細胞移動を減少または阻害するための方法において、前記細胞に組織因子アン
タゴニストを接触させることを含む方法。 患者の創傷治癒を促進し、増強する方法であって、因子Vllaまたは組織因子ア
ゴニストを含む薬理的組成物の有効量を前記患者に投与することを含む方法。 腫瘍細胞の細菌侵入力を阻止するための方法であって、前記細胞に組織因子ア
ンタゴニストの有効量を接触させることを含む方法。 組織因子アンタゴニストを含む薬理的組成物の有効量を前記患者に投与するこ
とを含め、望ましくない細胞移動、浸入、移動を誘発される細胞増殖または血管
新成に関係する疾患または症状を有する患者の細胞移動、浸入、移動を誘発され
る細胞増殖または血管新成を阻害するための方法。

【００７０】 前記方法において、前記疾患または症状は、一次腫瘍増殖、腫瘍浸入、または
腫瘍転移することである。 前記方法において、前記組織因子アンタゴニストは、FVllaiとして周知な修飾
因子Vllである。 細胞移動を調節する薬品の製造に因子Vllaまたは組織因子アンタゴニストの使
用。 前記使用において、因子Vllaは、細胞移動を増強する薬品の製造に使用される
。 前記使用において、組織因子アンタゴニストは、細胞移動の減少または阻止す
る薬品の製造に使用される。

【００７１】 前記方法において、組織因子アンタゴニストは、因子Vllaiとして周知の修飾
因子Vllaである。 使用において、前記修飾因子Vllは、Dansyl-Phe-Pro-Arg chloromethl ketone
、Dansyl-Glu-Gly-Arg chloromethl ketone、Dansyl-Phe-Phe-Arg chloromethl
ketone、およびPhe-Phe-Arg chloromethl ketone、から選択される。 本発明は、さらに以下の実施例に示されるが、しかしながら、保護の範囲を限
定するものとして意図したものではない。以下の記載および以下の実施例に開示
されている特長は、別々にか、そのどのような組み合わせにおいて、本発明を実
現するため、その多様な形態の材料となり得ることである。

【００７２】 実施例実施例１ ．FVllの調製 本発明の使用に適したヒト精製因子Vllaは、たとえばProc.Natl.Acad.Sci.USA
83:-2412-2416,1986、Hagenらが述べているように、または欧州特許第２００,４
２１号（ZymoGenetics）に述べられているＤＮＡ組み換え技術で作成されること
が好ましい。組み換え技術で作成されるた因子Vllaは、こうした因子Vllaが真正
な因子Vllaとして血液凝固には同じ生物学的活性を基本的に有する場合、真正な
因子Vllaであっても良いし、多少とも修飾された因子Ｖllaであっても良い。こ
うした修飾因子Vllaは、周知手段たとえば部位特異的突然変異生成によって天然
のFVllをコードする核酸において、幾つかのアミノ酸コドンを変更するかあるい
はそれを取り除くことで、核酸配列をコードする因子Vllを修飾することによっ
て作成することができる。

【００７３】 因子Vllは、BrozeおよびMajerusが述べた方法によっても生成される。J.Biol.
Chem.255(4):1242-1247,1980 and Hedner and Kisie,J.Clin.Invest.71:1836-18
41,1983。これらの方法は、因子Vllを生成したが、他の血液凝固因子の検出可能
な量ではない。さらに精製因子Vllの調製でさえも、最終精製ステップとして、
追加的なゲルろ過を含むことで得ることができる。次いで、因子Vllは、周知の
手段たとえば因子XIIa，IXaまたはXaなど幾つかの異なる血漿タンパク質によっ
て、活性化FVllaに変換される。さらにBjoemらが述べているように(Reserarch D
isclosure,269 September 1986,pp.564-565)、因子Vllを、Mono Qマル・アール （Phamacia fine Chemicals）などイオン交換クロマトグラフ・カラムにそれを
通すことによって活性化することができる。

【００７４】実施例２ ．FVllaiの調製 本発明の使用に適した修飾因子Vllを、たとえば国際出版番号92/15686,94/276
31,96/12800および97/47651 ZymoGenetics/Novo Nordisk)で述べられたように
生成する。

【００７５】実施例３ ． 線維芽細胞のPDGF-BBへの走化性応答に及ぼすFVllaおよびFFR-FVllaの影響。 線維芽細胞発現活性TF（図１Ａおよび図１Ｂ）を、１００ｎＭのFVllaで培養
して、変更されたボイデンチェンバーの上部に植えつけたが、１０％のFBSおよ
び異なる濃度のPDGF-BBを含む培地を、１５０μｍの微小孔フィルタの下に加え
た。PDGF-BBを用いない１０％FBSを含む培地をフィルターの下に加えた状態下で
細胞移動を、無作為な移動の尺度として使用し、１００％移動として計算した。
有意差のある移動応答は、FVllaと結合していない細胞１ng/mlのPDGF-BBと比較
してFVllaで刺激された細胞の場合０．０１ng/mlのPDGF-BBの濃度、つまり１０
０倍の濃度差で記録された（図２Ａ）。

【００７６】 0.01-0.1ng/mlのPDGF-BBで、FVllaへの移動応答は、用量に依存して増大して
、FVllaを２５ｎＭから始まり、５０−１００ｎＭで効果が最大となった（図３
Ａ−Ｄ）。任意な移動の増強は、FVllaで活性化した後で全く観察されなかった
。タンパク質分解活性なFVllaは、PDGF-BBに超走化性応答に対し必須であるかど
うか試験するために、線維芽細胞を１００ｎＭのFFR-FVllaでも培養して、ボイ
デンチェンバー内で、同じ方法で評価した（図２Ａ）。走化性の増大について、
低濃度のPDGF-BB、0.01-1ng/mlの濃度で、FVllaで全く観察されなかった。対照
的に、10-50ng/ml のPDGF-BBで誘発された走化性の顕著な抑制は、１００ｎＭの
FFR-FVllaで達成される（図２Ａおよび３Ａ−Ｄ）。

【００７７】 線維芽細胞を３種の異なるTF抗体で予備培養し、次いでFVllaまたはFFR-FVlla
で培養して、PDGF-BBへの移動応答は、TFに結合するリガンドが存在することな
く線維芽細胞の応答に対して同定された（図４Ａ）。関連性のないモノクロナー
ルIgG抗体は、FVllaによって誘発される超走化性の防止もFFR-FVllaによって誘
発される移動応答の抑制もしない（データは示さない）。IgG抗体または3種のTF
抗体の存在は、線維芽細胞の任意な移動に変化しない（データは示されない）。

【００７８】実施例４ ． 超走化性応答は、FXaまたはスロンビンによって媒介されない。 FVllaで誘発されたシグナル伝達によって、PDGF-BBに超走化性応答が起こるこ
とは、FVllaの触媒活性に依存したことから、直接にグナリングが生成されるか
あるいはFVlla/TF複合体によって生成されるFXaまたはスロンビンを介してグナ
リングが生成されるかどうかを決定することは重要である。

【００７９】 されたFVlla/TFで伝達される増強した移動応答は、FXaの活性部位を特異的に
ブロックし、さらにスロンビンを形成に誘導する血液凝固のカスケードの活性化
を防止する（図５Ａ，５Ｂ）０．２−１０μＭのダニ抗血液凝固ペプチド（TAP
）でブロックされなかった。特異的なスロンビン阻害物質である、5U/mlのヒル
ジンを加えても、FVlla/TFで誘発される超走化性に影響をおよぼさなかった（図
６Ａ）。TAPおよびヒルジンは、リガンドFVllaが存在することなく、PDGFに応答
する線維芽細胞移動に影響を及ぼさなかった（図５Ａ、５Ｂ、６Ａ）。従って、
走化性に及ぼすFVllaの影響は、FXまたはスロンビンの活性を経由し媒介される
ことはないと考えられる。

【００８０】実施例５ ． PDGF-BBに対して超走化性応答は、PLC依存経路によって影響されるが、PI3’
−キナーゼには無関係である。 最近PI3’−キナーゼの活性化は、PDGFβ−受容体で誘発される走化性の重要
性が示されている。そのため、特定PI3’−キナーゼ阻害因子、LY294002がFVlla
/TFシグナルで誘発される走化性応答をブロックできるかどうかを調査した。線
維芽細胞は、LY294002を用いて、支持濃度で３７℃、３０分間予備処理し、その
後１００ｎＭのFVllaを加えて、上記のように部ボイデンチェンバーで評価した
。PDGF-BBの濃度は、実施方法全体にわたって０．１ng/mlで一定に維持し、つま
りFVlla/TFが大きな走化性応答を誘発する極めて低い濃度である。

【００８１】 LY294002は全実験中存在する。図７Ａは、FVlla/TFのシグナリングによって媒
介されるPDGF-BBに対する移動応答は、PI3’-キナーゼの阻害化によって影響を
されない。FVlla/TFで誘発される走化性応答性が，ホスファチジルイノシトール
特異的ホスホリパーゼC(PLC)に関与しているかどうか試験するために、線維芽細
胞を特異的なＰＬＣ−阻害物質であるU73122の異なる濃度で、３７℃、３０分間
、予備培養し、その後１００ｎＭのFVllaを加え、次いでその細胞を阻害物質の
存在下で走化アッセイにかけた。

【００８２】 極めて類似し、PLCにおよぼす影響のない、U73343は、負の比較対象物として
使用される。PDGF-BBの濃度は、これらの実験においても０．１ng/mlで一定を維
持する。上記細胞を活性化PLC阻害物質U73122で予備処理し、用量依存方法で、
全阻害化を１μＭで、０．１ng/mlのPDGF-BBに超走化性応答を抑制した（図８Ａ
および８Ｂ）。走化性におよぼす効果は、不活性な類似のU73343が使用される場
合全く観察されない。

【００８３】実施例６ ． FVlla/TFによるPLCの活性の誘導 超走化応答にPLC活性の重要性をさらに検査するために、線維芽細胞のPLC活性
に及ぼすFVlla/TFの直接的な影響も解析した。PLCの活性化によって、２つの第
二のメッセンジャー、イノシトール−１，４，５−３リン酸（IP₃）およびヂア
シルグリセロールの産生が引き起こされる。線維芽細胞をmyo［³Ｈ］イノシトー
ルで1晩培養し、さらに１００ｎＭのFVllaまたはFFR-FVllaで６０分間培養し、
次いで、PDGF-BBを用いる場合と用いない場合、指定濃度で培養した。

【００８４】 FVllaだけ１００ｎＭで６０分間処理すると、PDGF-BBだけ１０ng/mlおよび１
００ng/mlで処理するのと同一レベルで線維芽細胞にＩＰ₃の放出を誘発した（図
９）。さらに、１００ｎＭのFVllaおよび１０ng/mlまたは１００ng/mlの PDGF-B
Bとの組み合わせは、IP₃の放出を二倍にした。活性部位を阻害されたFVllaは、I
P₃の放出を誘発しなかった。こうした結果からPLCは、FVllaからTFに結合するこ
とにより活性化されることを明らかに示している。

【００８５】実施例７ ． PLC-γ1のリン酸化は、線維芽細胞のTF/FVllaシグナリングによって増強され
ない。 ある種のチロシンキナーゼ受容体で活性化されるPLC-γ1のアイソフォームが
、FVlla/TFで誘発されるPLC活性を増大させる要因であるかどうか決定するため
に、PLC-γ1のチロシンリン酸化について研究した。線維芽細胞を１００ｎＭの
ＦVllaまたはFFR-FVllaが無い場合、とある場合で、１時間培養し、次に０，２
，１０または１００ng/mlのPDGF-BBで刺激した。

【００８６】 培養５分後、その細胞を溶離し、PLC-γ1を免疫沈降させ、SDS-PAGEで分離し
て、抗リン酸化チロシン抗体で免疫ブロットした。PDGF-BBの濃度が増大するに
したがってPLC-γ1のチロシンリン酸化が著しい増大を記録したが、FVllaだけに
線維芽細胞を加えて、PLC-γ1のいずれのチロシンリン酸化も誘発しなかった（
図１０）。さらに、FVllaとPDGF-BBを違った濃度で組み合わせることは、PDGF-B
Bだけの刺激と比較してさらにリン酸化を誘発することがない（図１０）。FFR-F
VllaはPLC-γ1のチロシンリン酸化に及ぼす影響がない（図１０）。従って、PLC
-γ1以外のPLCアイソフォームは,FVllaの刺激後、PLC活性が増大に関与すること
ができる。

【００８７】実施例８ ． 方法 細胞培養． ヒト包皮線維芽細胞、AG1518およびAG1523を、１０％の牛胎児血清（FSB）を
補充したイーグルMEMで密集的になるまで増殖させた。使用する前に、細胞をト
リプシン処理によって剥離させ(2.5mg/mlで37℃10分間)、Ｈａｎｋのバランス塩
溶液で洗浄し、１０％のFBSを用いたイーグルMEMで、あるいは１０％のFBSを用
いたHam’s培地で再懸濁した。

【００８８】 タンパク質． ヒトFVlla(Novo Nordisk A/S,Gentofte,Denmark)を、上記のように発現および
精製した。FFR-FVlla（Novo Nordisk）は、D-Phe-L-Phe-L-Arg chloromethl ket
oneを有する活性化部位にFVllaのブロッキングで得られた。組み替え型ダニ抗凝
固ペプチド(TAP)は、親切にも.P.Vlasuk,Corvas(San Diego,CA)博士が提供した
ものである。ヒルジンをSigmaから購入した。LY294002,U73122およびU73343をBi
omol(Plymouth Meeting,PA)から得た。抗TFモノクリナール抗体、TF8-5G9,TF9-5
B7およびMTFH-1（Morrissey,、J.H.,Fair,D.S.,Edgington,T.S.Monoclonal anti
body analysis of purified and cell associated tissue factor. Thromb.Res.
52,247-261(1988)）は、親切にもJames H.Morrissey博士,Oklahoma Medical Res
erarch Foundationから提供されたものであった。リン酸化抗体、PY99は、Santa
Cruz,Californiaからのものであった。

【００８９】 フローサイトメトリ． TFの発現する表面を、フローサイトメータを用い、免疫蛍光によって解析した
（Coulter Epics XL-MCL,Beckman Coulter,Fullerton,CA,Coulter Electronics,
USA）。器具を免疫チェック^TMまたはフローチェック^TM調整ビーズ(Coulter)で日
々調製した。間接的な免疫蛍光実験として、AG1518またはAG1523線維芽細胞を、
０．１％の牛胎児血清アルブミン（BSA）を含むPBSで２回洗浄し,蛍光イソチオ
シアネート(FITC)でラベル化された抗ヒトTFモノクロナール抗体（4508CJ,Ameri
can Diagnostica,Greenwich,Ct.USA）を用い氷上で３０分間培養した。抗アスパ
ラギナス・ニガー・グルコース・オキシダーゼ・モノクロナールＩｇＧ１(Dakop
atts)を負のコントロールとして使用した。各試料に対して、チャンネル蛍光強
度（MFI）の平均および正の割合を決定した。

【００９０】 TF活性の決定． TFの凝血促進の薬活性をLindmarkらが述べたように決定した（Lindmark,E.,Te
nno,T.,Chen,J.,Siegbahn,A.IL-10 inhibits LPS-induced human monocyte tiss
ue factor expression in whole blood.Br.J.Hsematol.102,597-604(1998)）。
簡単にいうと、０．２ｘ１０⁵AG1518またはAG1523線維芽細胞を含む滴量を、PBS
で2回洗浄し、９６ウエルのマイクロタイタープレート(Nunc,Roskilde,Denmark)
に入れた。

【００９１】 凝血促進薬の活性を、色素産生基質、S-2222(Chromogenix,Molndal,Sweden)は
、FXaによって切断され、さらにTF/FVlla複合体によってFXから活性化される、
２段階アミドリテック・アッセイで測定した。最終濃度の０．６ｍMのS-2222、
２mMのCaCl₂および最終濃度が1U/mlのFVllaおよび1.2U/mlのFXで、因子濃度Prot
hromplex-T^TMTIM4(Baxter,Vienna,Austria)からの凝固因子を含む反応混合物を
、ウエルに添加し、３７℃で３０分間培養の後４０５nmで吸収変化を判定した。
計量は３重にして行った。

【００９２】 走化アッセイ． 線維芽細胞の移動応答を、上記記載のように（Siegbahn,A.,Hanimacher,A.,We
stermark,B.,Heldin,C-H. Differential ehhects of the various isoforms of
platelet-derived growth factor on chemotaxis of fibroblasts,monocytes,an
d granulocyte.J.Clin.Invest.85,916-920(1990)andNester,M.,Haammacher,A.,M
ellstrom,k.,Siegbahn,A.,Ronnstrand,L.,Westemark,B.,Heldin,C-H. A glioma-
derived PDGF Achain homodimer has different functional activities from a
PDGF AB heterodimer purified from human platelete. Cell 52,791-799(1988
)）修飾されたボイデンチェンバーのリーデング・フロント技術によって評価し
た。

【００９３】 微小孔フィルター（孔サイズ８μm）を、タイプ１型コラーゲン溶液で一晩に
わたり室温で被覆した。そのフィルターを使用直前に３０分間空気乾燥した。ヒ
ト包皮線維芽細胞AG1523を１０％のFBSで補給されるイーグルズMEMに集密的にな
るまで増殖させた。その細胞をトリプシン処理で剥離させ、（2.5mg/ml で３７
℃１０分間）およびイーグルズMEMにおける１０％FBSで懸濁した。線維芽細胞を
アッセイ前にFVllaまたはFFR-FVllaのある場合とない場合で、１０分間培養した
。100μlの細胞懸濁液を（2x10⁵細胞/ml）をボイデンチェンバーのフィルター上
に添加した。PDGF-BBをアッセイ培養液（１０％のFBSを有するイーグルMEM）で
希釈し、チェンバーのフィルター下に加えられた。

【００９４】 その細胞を９５％空気／５％ＣＯ₂を含む加湿チェンバーで３７℃、６時間培
養した。FVllaまたはFFR-FVllaは、実験全体を通して存在した。次にフイルター
を取り出して、エタノールで固定し、Mayer’s Hemalunで染色し、マウントした
。移動は、フォーカスの１つのハイパワー領域（１２．５ｘ２４）の最も離れて
移動した二つの線維芽細胞の核の距離として測定した。核フイルターの移動距離
を、フイルターの少なくとも３つの異なる部分のリーデングの平均値として計算
した。

【００９５】 実験は、誘引物質の各濃度に２個から４個のフィルターで実施した。各組の実
験に対して、アッセイ培養液の方への線維芽細胞の移動は、コントロールとして
用いた。 凝固因子に対する抗TFモノクロナール抗体または阻害因子である、TAPおよび
ヒルジンを使用する場合に、細胞をこれらの因子で１０分間予備培養し、次いで
FVllaまたはFFR-FVllaのある場合とない場合で培養し、その後走化アッセイを行
った。抗体、TAPまたはヒルジンは、全走化実験期間でも存在した。異なる阻害
因子LY294002,U73122またはU73343の走化応答に及ぼす影響を試験した実験にお
いて、細胞を阻害因子で３０分間指示濃度で予備培養し、そしてそれぞれの実験
を通しても阻害因子が存在した。

【００９６】 イノシトール３燐酸（IP₃）の放出用アッセイ． ヒト線維芽細胞AG1518の培養状態が半密集度である６ウエルのプレートを、０
．１％のFBSと共に、2mlのHam’sF12における2μCiのmyo(³H)イノシトール（Ame
rsham）で一昼夜（約２０時間）培養した。 培養液を０．１％のFBS(2mMのCaCl₂を含む)および２０mMのLiClでHam’sF12に
変えて、その細胞を３７℃で１５分間培養した。次に細胞を１００nMのFVllaま
たは１００nMのFFR-FVllaの存在しない場合とする場合で１時間培養した。PDGF-
BB(0,10または100ng/ml)を加え、その培養を３７℃で１０分間継続した。Erikss
onらが前に述べたようにIP₃アッセイを実行した（Eriksson,A.,Nanberg,E.,Ronn
strand,L.,Engstrom,U.,Hellman,U.,Rupp,E.,Carpenter,G.,Heldin,C-H.,Claess
on-Welsh,L.Demonstration of functionally different interactions between
phospholipase C-γand the two types of platelet-derived growth factor re
ceptors. J.Biol.Chem.270,7773-7781(1995)）。

【００９７】 アゴニストで誘発されたPLC-γ1のリン酸化アッセイ。AG1518の半密集度培養
は、０．１％のFSBを含む培地に一昼夜（２０時間）血清飢餓状態にし、さらに
１００nMのFVllaまたはFFR-FVllaのある場合とない場合で、１時間培養し、次に
０，２，１０、または１００ng/mlのPDGF-BBで、３７℃５分間培養した。細胞を
溶離し、PLC-γ1を特に前に述べたよう牛胎児PLC-γ1のカルボキシ末端に相当す
るペプチドでラビットを免疫することで生成された抗PLC-γ1 抗血清で沈積した
。

【００９８】 (Hansen,K.,Johnell,M.,Siegbahn,A.,Rorsman,C.,Engstrom,U.,Wernstedt,C.,
Heldin,C-H.,Ronnstrand,L.Mutation of a Src phosphorylation site in the P
DGF β-receptor leads to increased PDGF-stimulated chemotaxis but decrea
sed mitogenesis。EMBO J.15,5299-5313(1996))そして（Artega,C.L.,Johnson,M
.D.,Todderud,G.,Coffey,R.J.,Carpenter,G.,Page,D.lL.Elevated content of t
he tyrosine kinase substrate phospholipase C-γ1 in primary human breast
carcinomas. Proc. Natl. Acad Sci. USA 88,10435-10439(1991)）。 試料はSDS-PAGEによって分けられ、リン酸化チロシン抗体PY99で免疫ブロット
処理した。

【００９９】 統計分析． データをウインドウ・パッケージ（StatSoft,Tulsa,Okla.USA）用統計TMを用
いて分析した。試料依存型学生のｔ試験を、異なるデータの集合体間の統計的有
意差を決定するために使用した。P値が＜０．０５であることが統計的有意差で
あると考えられる。

【０１００】 タンパク質． Novo Nordisk(Gentofte,Denmark)から得た組み換え型ヒトFVllaは、１から１
．３mg/mlの濃度の滅菌水中で再構成される。ストックFVlla溶液を、リムルス遊
走細胞溶離産物（Bio Whittaker）を用いて微量な細胞毒素の汚染を検査したが
全く検出されなかった（検出レベル３０ｐｇ）。組み換え型ダニ抗血液凝固タン
パク質(TAP)は、George Vlasuk(Corrvas,San Diego,CA)によって提供され、組み
換え型ヒルジンは、Sigma(St.Louis,MO)かCalbiochem(San Diego,CA)のいずれか
ら得られた。精製されたヒト因子Xaおよびスロンビンは、Enzyme Research Labo
ratories(Southbend,IN)から得られ。

【０１０１】 ｃＤＮＡマイクロアレイ。W-38を８０％の集密度になるまで培養し、血清を２
４時間奪って上記のように静止状態に入れた。培養培地を新鮮な無血清DMEM(5ｍ
MのCaCl₂を補充)で置き換え、培養器で２時間培養する際、安定にすることがで
きた。次にその細胞を精製した組み換え型FVlla (5μg/ml)で90分間処理した。
９０分間の処理の終了時、全ＲＮＡを未処理（コントロール）およびFVllaで処
理された細胞からTrizol(GIBCO BRL)を用いて単離した。ポリ（Ａ）を、製造技
術マニアル(Qiagen)で述べたようにOligo Tex mRNA isolation columns上を２重
パスで精製した。未処理（コントロール）およびFVllaで処理した細胞から高純
度に精製したのポリ（Ａ）ＲＮＡの８００ｎｇを、ｃＤＮＡマイクロアレイ解析
サービス（Human UniGEM V microarray,Genome Systems Inc,St.Louis,MO）に送
った。

【０１０２】 ノーザンブロット解析． 結果で述べたようにFVllaおよび他の因子にさらされたWI-38細胞の静止状態の
単一層からTRIZOL試薬を用いて、全ＲＮＡを調製した。標準的な方法を用いてノ
ーザンブロット解析を実施した。簡単に言うと、全ＲＮＡの１０μｇは、１％の
アガロース／６％のホルムアルデヒド・ゲルでゲルエレクトロホレシスによって
画分化されたサイズであり、毛管ブロット法によってニトロセルローズ膜に移し
変えられた。

【０１０３】 ノーザンブロットは、５０％のホルムアミド、５ｘSSC，５０ｍＭのトリス塩
酸、ｐＨ７．５、０．１％のピロリン酸ナトリウム、１％のSDS、１％のポリビ
ニールピロリドン、１％のFicoll，２５mMのEDTA,１００μg/mlのdenatured sal
mon sperm ＤＮＡ,および１％のBSAを含む溶液を用いて４２℃で、前ハイブリダ
イズし、さらに³²ＰでラベルしたCyr61ｃＤＮＡプローブ（１０６cpm/ml）でハ
イブリダイズした。ハイブリダイズされた膜をDupont NEFかFuji RXの X線フイ
ルムのいずれかに曝した。定量化するために、膜をリン酸スクリーンに１−４時
間さらし、露出されたスクリーンを「Image-quant」ソフトウエアを用いてホス
ホロイメジャー（Phosphrlmger）で解析した。

【０１０４】 平均値を得るために、異なる実験から得られたユニット（カウント数）は、内
部コントロールに正規化された（カウント数はコントロール処理試料にあるもの
）。

【０１０５】 色素生成アッセイ． WI-38細胞を９６ウエル培養プレートで培養し、その細胞を上記のように静止
状態にした。その細胞を洗浄後、緩衝液を含む１，００μg のカルシウムに入れ
たFVlla(5μｇ/ml)を、細胞を含む培養ウエルまたは緩衝液で被覆された（細胞
のない）ウエルに添加した。３０分間培養した後、因子Ｘａおよびスロンビンに
２５μgの色素生成基質、つまり色素生成酵素Xおよび色素生成酵素THをウエルに
加えた。

【０１０６】 カラーが発生して３時間後、そのプレートをマイクロプレート・リーダで読み
出した。コントロールとして、細胞を因子Ｘａ（５０から０．１nｇ/ml）または
スロンビン（０．１から０．００２U/ml）のわずかな濃度で培養した。細胞に加
えられたFVllaと細胞を含まないウエルに加えられたFVllaの間に４５０ｎｍの吸
収では、違いが全く見受けられなかった。この読み出しは、因子Ｘａまたはスロ
ンビンの最も低い濃度で得られた読み出しより低く、FVlla色素生成活性を表し
ている。

【０１０７】実施例９ ． ｃＤＮＡマイクロアレイ． コントロールとしての無血清培地またはVlla(5μg/ml)で補充された無血清培
地に、静止状態の線維芽細胞を９０分間さらした（各実験には３つのT-75フラス
コ）。処理後全ＲＮＡを収集し、ポリ（Ａ）ＲＮＡを単離した。600ｎｇのｍＲ
ＮＡをCy3かCy5蛍光物質のどちらかで標識化し、さらに最大５０００までの周知
なヒト遺伝子を表している（有料で Genome System Inc.が実施しているサービ
ス）ESTの検証による８０００の配列を含む UniGem Human V chipにハイブリダ
イズされた。基準ｃＤＮＡの周知なコントロール・プレートが、プローブ生成反
応にスパイクされ、感受性の測定および逆転写反応をモノターして、精製化でハ
イブリダイゼーション効率を決定し、アッセイの全体に見た品質や性能によって
、ハイブリダイゼーションの工程がうまくいっていることを明示した。

【０１０８】 実験データの全体的な解析では、コントロールとVllで処理された試料間のハ
イブリダイゼーション・シグナルの違いがわずかであった。わずかな数しかない
遺伝子では、発現の相違が中程度を示した。５遺伝子の上限調節(FVllaの処理で
３．５−2倍高い)であるが1方の遺伝子は、FVlla処理により下限に調節される（
２．４倍低い），（＋／−２は実際の比率限度の最小限を判定するために控えめ
な見積である）。３．５倍上限調節された遺伝子の同定は、所有権の性格から示
していない。

【０１０９】 他のFVllaで上限調節された遺伝子は、Cyr61（２．５倍）、ドーパミンD2受容
体（２．２倍）、EST incyte PD 395116（２倍）、およびP2Uヌクレオチド受容
体（２倍）である。なおCyr61ファミリーに属する遺伝子CTGFは、VIIaで処理し
た細胞ではコントロール細胞と比較して１．８倍高いことが関心を持たれる。VI
Iaで処理された細胞の下限に調節された転写は、EST PD674714であった。さらな
る解析のためCyr61を選択した。

【０１１０】実施例１０ ． Cyr61の違う発現の確認 マイクロアレイで得られたデータを実証するために、コントロールおよびFVll
aで処理された細胞からのＲＮＡ試料を（マイクロアレイにおけるプローブの生
成のためポリ（Ａ）ＲＮＡ調製に用いられてきた試料と同じＲＡＮ試料）ノーザ
ンブロット解析にかけて、放射性物質でラベル化したCyr61のｃＤＮＡで標識化
した。そのデータから、Cyr61のｃＤＮＡプローブは、コントロールおよびFVlla
で処理された細胞から単離されたＲＮＡの一本鎖の転写体（約２．０ｋｂ）にハ
イブリダイズした。しかしながら、FVllaで処理された細胞から単離されたＲＮ
Ａにおいて、ハイブリダイゼーショントの強度は非常に高い（図１）。ハイブリ
ット信号の計量化を使用して、Cyr61の発現は、VIIaにさらされた細胞がコント
ロール処理細胞より２．８倍も高かった。

【０１１１】実施例１１ ． FVllaで誘発されるCyr61の発現の反応動態学 Cyr61の発現の応答速度を決定するために、静止状態の線維芽細胞を、時間間
隔を変えて、５μg/mlのVllaで処理した。全ＲＮＡを抽出し、ノーザンブロット
解析にかけた。図２に示すように、時間依存方式により、Vllaで処理した細胞で
は、Cyr61の発現が増大した。その発現は、約４５分で最大になり、以後２−３
時間かけてベースレベルまで低下した。

【０１１２】 血清および増殖因子で刺激した後のマウス線維芽細胞のCyr61の発現は、発現
が現れる前に数時間（最大８−１０時間）保持されたことが報告されていること
から、静止状態のヒト線維芽細胞,WI-38のCyr61の発現の応答速度に及ぼす血清
およびPDGFの影響に関して検査した。図２Ｂで示すように,Cyr61は、PDGFの刺激
による一過性だけの発現であるが、刺激を加えて２時間後に本格的な発現となる
。同様な結果が血清で誘発される Cyr61の発現によって得られた（データは示さ
れていない）。

【０１１３】実施例１２ ． Cyr61の発現の誘発における因子Vllaの用量依存性 Vllaの用量依存性を決定するために、静止状態の線維芽細胞を、FVllaの用量
を変えて（０．１−５μg/ml）４５分間処理し、次にこの細胞からの全ＲＮＡの
試料をノーザンブロット解析にかけた。図3位示す様に、０．１μg/mlほどの量
のFVllaで線維芽細胞を処理することは、Cyr61の発現を誘発するには十分であり
、FVll（ａ）の細胞質濃度（０．５μg/ml、１０nM）で、応答が顕著になり最大
値に非常に近い状態になった。

【０１１４】実施例１３ ． 因子Vllaによる触媒活性には、Cyr61の誘発が必要である 前記Vllaの触媒活性には、Cyr61の誘発が必要であるかどうかを試験するため
に、WI-38細胞を、Vllaおよび活性部位を不活性にしたFVlla（FVllai）で４５分
間処理し、Cyr61の発現をノーザンブロット解析で評価した。図４に示すように
、FVllaiがCyr61の発現を誘発することができず、それがFVllaタンパク質分解活
性が必要であることを示唆している。この背景において、FVllaiは、FVllaと同
じか、それより高い親和性で細胞表面TFに結合されることを示したことは、指摘
すべき重要な点である。

【０１１５】 本願の実験におけるVllaで誘発されたCyr61の発現は、下流の血液凝固因子Ｆ
Ｘａおよびスロンビンの結果と同様ではない。感受性色素法（sensitive chrom
ogenic assay）を使用することで、本実験構成（検知感度１０ｐｇ）では、子
Ｘａおよびロンビンの生成が実証されないことが分った。さらに、因子Ｘａおよ
びロンビンの特異的な阻害物質、つまり各ダニ抗血液凝固タンパク質やヒルジン
のそれぞれが、Vllaの誘発によるCyr61の発現の廃止ができないかった(図５)。

【０１１６】実施例１４ ． VllaによるCyr61ｍＲＮＡの定常状態レベルの誘発と転写機構との連係 Vllaを媒介によるCyr61ｍＭＲＮＡの定常状態レベルの増大に、転写が関与し
ているかどうか調査するために、静止状態のWl-38細胞をアクチノマイシン-D（
１０μg/ml）で３０分間培養し、次いでVllaを加えて４５分間培養した。図６に
示すように、アクチノマイシン-DはVllaの刺激因子の影響を抑制した。こうした
知見は、Cyr61誘発の転写機構を示している。

【０１１７】 新たなタンパク質の合成には、VllaによってCyr61ｍＭＲＮＡの誘導には必要
であるかどうか調査するために、Wl-38細胞は、タンパク質合成阻害物質シクロ
ヘキシミドで前処理され、次いで、細胞をVllaに４５分間露出した。図６に示す
ように、Vllaの刺激効果は、シクロヘキシミドによってブロックされなかった。
実際にシクロヘキシミドは、Vllaで誘発されたCyr61のｍＭＲＮＡの定常状態レ
ベルが極めて増大した。

【図面の簡単な説明】

【図１Ａおよび１Ｂ】 図１Ａおよび１Ｂは、線維芽細胞（１Ａ）のＴＦ発現のフロー・サイトメトリ
ック解析を示す。その細胞は、負の制御として用いられたマウスのモノクロナー
ル・フルオレセインイソチオシアネート（FITC）結合マウス抗Ｉｇ抗体（中が空
白な領域）、かあるいはモノクロナールFITC結合抗組織因子（TF）抗体（中が埋
まった領域）のいずれかで染色された。図１Ｂは、線維芽細胞の凝血促進物質の
活性を示している。TF発現を有する線維芽細胞は、TFの発現を有しない単球と比
較して形質細胞抗原PCAを１０倍多く生成した。

【図２Ａ】 図２Ａは、ヒト線維芽細胞のPDGF-BBで誘発される走化性の及ぼすFVllaおよび
FFR-FVllaの影響を示す。黒四角は、PDGF-BBの濃度差に対する線維芽細胞の走化
性応答を示す。１００ｎＭのＦVlla（●）または１００ｎＭのFFR-FVlla（○）
で培養された線維芽細胞は、PDGF-BBの濃度差の方に移動した。その結果は、３
つの別々の実験の平均値および平均値の標準誤差である。０．０５に未たないＰ
値を、統計的な有意差であると考えられた（学生のｔ試験）。

【図３Ａ−Ｄ】 図３Ａ〜Ｄは、線維芽細胞のPDGF=BBで誘発される走化性に及ぼすFVllaまたは
FFR-FVlla濃度差の影響を示す。黒四角は、PDGF-BBの濃度差に対する線維芽細胞
移動を示す。細胞を、１２．５（Ａ）、２５（Ｂ）、５０（Ｃ）、および１００
（Ｄ）ｎＭの FVlla（●）またはFFR-FVIIa（○）で培養し、ボイデンチェンバ
ーでPDGF-BBの濃度差の方に評価した。その結果は、違う３つの実験の平均値と
その標準誤差である。^*＝ｐ＜０．０５、^**＝ｐ＜０．０１および^***＝＜０．０
０１学生のｔ試験。

【図４Ａ】 図４Ａにおいて、TFに対する３のモノクローナル抗体の混合物は、線維芽細胞
のPDGF-BBで誘発される走化性に及ぼすFVllaおよびFFR-FVIIaの影響をブロック
した。黒四角は、ＴＦ抗体を有しない線維芽細胞のPDGF-BBの方への移動を示す
。●はＴＦ抗体および１００ｎＭのFVllで前もって培養した線維芽細胞を示し、
○はTF抗体および１００ｎＭのFFR-FVllaで前もって培養した線維芽細胞を示す
。結果は、３つの別々の実験の平均値およびその標準誤差である。

【図５Ａおよび５Ｂ】 図５Ａおよび５Ｂは、FVllaで誘発されるPDGF-BBに対する走化性応答に及ぼす
FXaの影響を示す。線維芽細胞を、２００ｎＭのTAP（図５Ａ）（黒四角）または
０．２−２μＭのTAP（図５Ｂ）（黒四角）で予備培養し、さらに１００ｎＭのF
Vlla（●）で培養した。TAPが全実験中に存在する。走化性はPDGF-BB（５Ａ）の
濃度差によって、または０．１ｎｇ／ｍｌのPDGF-BB（５Ｂ）で誘発された。結
果は２つの別々の実験による平均値および標準偏差（SD）である。

【図６Ａ】 図６Ａは、FVllaで誘発されたPDGF-BBに対する走化性応答に及ぼすスロンビン
の影響を示す。線維芽細胞を５U/mL（最終濃度）のヒルジンで予備培養し、さら
に１００ｎＭのFVllaで培養した。ヒルジンは全実験中存在した。走化性は、PDG
F-BBの濃度差よって誘発された。黒四角は、ヒルジンだけで培養された細胞であ
り、●はヒルジンとFVllaで培養された細胞を示す。結果は、２つの別々の実験
の平均値および標準偏差（SD）値である。

【図７Ａ】 図７Ａは、FVllaで培養された線維芽細胞の走化性に及ぼすＰ１３’−キナー
ゼの阻害の効果を示す。細胞をLY294002の濃度を種々変えて、３７℃で３０分間
予備培養し、さらに１００ｎＭのFVlla（●）を用いるか、またはFVlla（黒四角
）を用いないで培養した。阻害物質は走化アッセイを通して存在した。走化性は
０．１ng/mLのPDGF-BBで誘発された。 結果は、２つの別々の実験の平均値および標準偏差（SD）値である。

【図８Ａおよび８Ｂ】 図８Ａおよび８Ｂは、FVllaで培養された線維芽細胞の走化性に及ぼすPLCの阻
害効果を示す。細胞を、U73122（活性なPLC抑制因子）（８Ａ）またはU73343（
不活性コントロール）（８Ｂ）の濃度を種々変えて、３７℃、３０分間培養し、
その後１００ｎＭのFVllaを用いる場合、あるいはFVllaを用いない場合で培養し
、さらに、０．１ｎｇ／ｍＬのPDGF-BBの濃度勾配にボイデンチェンバーで評価
した。阻害物質は全実験中存在した。黒四角は、U73122またはU73343だけを有す
る細胞を示す。●はU73122またはU73343およびFVllaを有する細胞を示す。結果
は、２つの別々の実験の平均値および標準偏差（SD）値である。

【図９】 図９は、FVlla、FFR-FVllaだけ、あるいはPDGF-BBとの組み合わせで刺激され
た線維芽細胞からイノシトール・トリホスフェート（IP₃）の放出を示している
。細胞をmyo［³Ｈ］イノシトールで一晩標識化して、１０ng/mLまたは１００ng/
mLのPDGF-BBがある場合、またはない場合の状態で、１００ｎＭのFVllaまたはFF
R-FVlla用いる場合、あるいは用いない場合で培養した。次いで、細胞のIP₃の放
出に対して分析された。オープンバーはFVllaまたはFFR-FVllaの有しない細胞（
コントロール）を示し、陰影バーはFFR-FVllaを有する細胞を示し、黒色バーはF
Vllaで培養された細胞を示している。

【図１０】 図１０は、PDGF-BB（コントロール）だけ、PDGF-BBと組み合わせたFVllaまた
はFFR-FVllaに応答するPLC-γ1のチロシンのリン酸化を示している。細胞を１０
０ｎＭのFVllaまたはFFR-FVllaで１時間培養し、次いで指定濃度でPDGF-BBのあ
る場合とない場合で培養した。細胞を抽出され、上記の方法で検出されたPLC-γ
1のチロシンのリン酸化された。

【図１】 第１図は、ｃＤＮＡマイクロアレイ・アッセイにより得られたデータを確認す
るためのノーザンブロット解析を示す。全ＲＮＡ１０ｇ（ｃＤＮＡマイクロアレ
イのハイブリダイゼーション用のプローブを生成するためにポリ（Ａ）ＲＮＡを
単離するために用いられる試料と同じＲＮＡ試料から）をノーザンブロット解析
にかけて、³²Ｐでラベル化したＣｙｒ６１（ゲノミック・システムから得られた
長さが１部のｃＤＮＡ）で標識化した。Panerl B： ハイブリダイゼーション
・シグナルはホスホリルマジャーで定量した（分子ダイナミックス）。

【図２Ａおよび２Ｂ】 第２Ａ図および第２Ｂ図は、因子FVllaで誘発されるCyr61の発現の時間的依存
を示す。WI-38細胞の静止状態にある単一層は、因子Vlla（５ｇ／ｍｌ）（２Ａ
）またはPDGF-BB（１０ｎｇ／ｍｌ）（２Ｂ）で時間を変えて処理した。全ＲＮ
Ａ（１０ｇ）を、ノーザンブロット解析にかけて、放射性物質でラベル化したCy
r61を用いて標識化した。該当するブロットの２８ＳリポゾームＲＮＡを臭化エ
チジュウムで染色した状態を、ＲＮＡを負荷するコントロールとしてパネルの下
側に示す。

【図３】 第３図は、因子Vllaで誘発されたCyr61の発現の用量依存性を示している。WI-
38細胞の静止状態にある単一層は、因子Vllaの用量を０，０．１、０．５、２．
０および５．０ｇ／ｍｌと変えて、４５分間ｓ処理した。全ＲＮＡ（１０ｇ）を
ノーザンブロット解析にかけて、放射性物質でラベル化したCyr61を用いて標識
化した。臭化エチジュウムで、該当ブロットの２８ＳリポゾームＲＮＡを染色し
た状態を、ＲＮＡを負荷するコントロールとしてパネルの下側に示す。

【図４】 第４図において、誘発されたCyr61の発現が、因子Vllaの触媒活性には必要で
ある。WI-38細胞の静止状態にある単一層を、コントロールとして無血清培地ま
たは因子Vlla（５ｇ／ｍｌ）または活性化部位を非活性にした因子Vlla（Vllai
、５ｇ／ｍｌ）を含む血清のない培地で４５分間処理した。全ＲＮＡ（１０ｇ）
をノーザンブロット解析にかけて、放射性物質でラベル化したCyr61を用いて標
識化した。該当ブロットの２８ＳリポゾームＲＮＡを染色した状態を、ＲＮＡを
負荷するコントロールとしてパネルの下側に示す。

【図５】 第５図において、因子Ｖｌｌａで誘発されたCyr61の発現は、因子Ｘａおよび
スロンビンの特異的な阻害因子によって抑制されない。WI-38細胞の静止状態に
ある単一層を、コントロール培地または因子Vlla（５ｇ／ｍｌ；１００ｎＭ）を
含む培地で４５分間処理した。細胞を２００ｎＭの組み替え型TAP（レーン３）
またはヒルジン（レーン４）で３０分間予備培養し、その後因子Vllaに４５分間
曝した。全ＲＮＡ（１０ｇ）をノーザンブロット解析にかけて、放射性物質でラ
ベル化したＣｙｒ６１を用いて標識化した。臭化エチジュウムで、該当ブロット
の２８ＳリポゾームＲＮＡを染色した状態を、ＲＮＡを負荷するコントロールと
してパネルの下側に示す。

【図６】 第６図は、ｍＲＮＡの静止状態のレベルで因子Vllaで誘発されるＣｙｒ６１の
及ぼすアクチノマイシン−Ｄおよびシクロヘキシミドの効果を示す。WI-38細胞
の静止状態にある単一層を、コントロール培地、アクチノマイシン−Ｄ（１０ｇ
／ｍｌ）またはシクロヘキシミド（１０ｇ／ｍｌ）で３０分間予備培養され、そ
の後その細胞を因子Vlla（５ｇ／ｍｌ）で４５分間曝した。全ＲＮＡ（１０ｇ）
をノーザンブロット解析にかけて、放射性物質でラベル化したCyr61を用いて標
識化した。臭化エチジュウムで、該当ブロットの２８ＳリポゾームＲＮＡを染色
した状態を、ＲＮＡを負荷するコントロールとしてパネルの下側に示す。

【図７】 第７図は、因子VllaがCTGFの発現を誘発を示す。WI-38細胞の静止状態にある
単一層を、因子Vlla（５g/ml）で、時間間隔を変えて処理した。全ＲＮＡ（１０
ｇ）をノーザンブロット解析にかけて、放射性物質でラベル化したCyr61を用い
て標識化した。臭化エチジュウムで、該当ブロットの２８ＳリポゾームＲＮＡを
染色した状態を、ＲＮＡを負荷するコントロールとしてパネルの下側に示す。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号 ＦＩ テーマコート゛(参考） Ａ６１Ｐ 35/04 Ｃ０７Ｋ 14/47 43/00 １０５ Ｃ１２Ｎ 5/00 Ｅ １１１ Ａ６１Ｋ 37/54 // Ｃ０７Ｋ 14/47 37/465 Ｃ１２Ｎ 15/09 Ｃ１２Ｎ 15/00 Ａ (31)優先権主張番号 ＰＡ １９９９ ０１１１７ (32)優先日 平成11年８月12日(1999．8．12) (33)優先権主張国 デンマーク（ＤＫ） (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＣＹ， ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，Ｉ Ｔ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＧＷ，ＭＬ， ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＧＭ，Ｋ Ｅ，ＬＳ，ＭＷ，ＭＺ，ＳＤ，ＳＬ，ＳＺ，ＴＺ，ＵＧ ，ＺＷ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ， ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＥ，ＡＧ，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ， ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＢＺ，Ｃ Ａ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＲ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＤＭ ，ＤＺ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＤ，ＧＥ，ＧＨ， ＧＭ，ＨＲ，ＨＵ，ＩＤ，ＩＬ，ＩＮ，ＩＳ，ＪＰ，Ｋ Ｅ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＡ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ， ＭＷ，ＭＸ，ＭＺ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，Ｒ Ｕ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ，ＴＪ，ＴＭ ，ＴＲ，ＴＴ，ＴＺ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ， ＹＵ，ＺＡ，ＺＷ (72)発明者 ジークバーン，アグネタ スウェーデン国，エス−752 37 ウップ サーラ，アルティレリガタン 25 Ｆターム(参考） 4B024 AA01 HA20 4B065 AA93X AC20 BA30 BC50 CA44 CA46 4C084 AA02 BA44 DC14 NA14 ZA362 ZB212 ZB262 4H045 AA30 BA10 BA50 CA40 DA56 EA28 FA50

Claims (22)

【特許請求の範囲】
1. 【請求項１】 細胞に組織因子アゴニストを接触させる工程を含んで成る前
   記細胞移動を誘発または増強するための方法。
2. 【請求項２】 組織因子アゴニストがFVllまたはFVllaである請求項１記載
   の方法。
3. 【請求項３】 細胞に組織因子アンタゴニストを接触させる工程を含んで成
   る細胞移動の減少または阻害するための方法。
4. 【請求項４】 組織因子アンタゴニストが修飾されたFVllである請求項３記
   載の方法。
5. 【請求項５】 前記細胞が、線維芽細胞、平滑筋細胞、腫瘍細胞、造血細胞
   、単球、マクロファージおよび上皮細胞を含む、ヒト細胞発現組織因子である請
   求項１または請求項３のいずれか記載の方法。
6. 【請求項６】 前記細胞がさらにPDGFおよびPDGF受容体、特にPDGFベータ受
   容体を発現する請求項５記載の方法。
7. 【請求項７】 前記修飾因子Vllが、Dansyl-Phe-Phe-Arg chloromethl keto
   ne、Phe-Phe-Arg chloromethyl ketone、Dansyl-D-Phe-Phe-Arg chloromethl ke
   toneおよびD-Phe-Phe-Arg chloromethl ketoneで修飾因子Vllから選択されるこ
   とを特徴とする請求項４記載の方法。
8. 【請求項８】 因子Vllaまたは因子Vllあるいは他の組織因子アゴニストを
   含む薬理的組成物の有効量を患者に投与することを含んで成る前記患者に創傷治
   癒の促進または増強するための方法。
9. 【請求項９】 望ましくない細胞移動、侵入、移動を誘発する細胞増殖また
   は血管新成に関連した疾患または症状を有する患者の細胞移動、侵入、移動を誘
   発する細胞増殖または血管新成を阻害または減少させるための方法であって、組
   織因子アンタゴニストを含む薬理的組成物の有効量を前記患者に投与を含んで成
   る方法。
10. 【請求項１０】 前記疾患または症状が、原発性腫瘍増殖、腫瘍の侵入また
    は転移である請求項９記載の方法。
11. 【請求項１１】 前記組織因子アンタゴニストが修飾因子Vllであることを
    特徴とする請求項９記載の方法。
12. 【請求項１２】 細胞移動を誘発または増強するための投与薬を製造するた
    めの組織因子アゴニストの使用。
13. 【請求項１３】 前記組織因子アゴニストがFVllまたはFVllaあるいはその
    組み合わせである請求項１２記載の使用。
14. 【請求項１４】 細胞移動を減少または阻害する投与薬を製造するための組
    織因子アンタゴニストの使用。
15. 【請求項１５】 前記組織因子アンタゴニストが修飾因子Vllである請求項
    １４記載の使用。
16. 【請求項１６】 修飾因子VllがDANSYL-Phe-Phe-Arg chloromethl ketone、
    Phe-Phe-Arg chloromethl ketone、Dansyl-D-Phe-Phe-Arg chloromethl ketone
    およびD-Phe-Phe-Arg chloromethl ketoneで修飾因子Vllから選択される請求項
    １５記載による使用。
17. 【請求項１７】 細胞内の少なくとも１つの遺伝子の発現を調節する方法で
    あって、前記細胞に組織因子アゴニストを接触させるか、前記細胞に組織因子ア
    ンタゴニストに接触させるいずれかの工程を含んで成る方法。
18. 【請求項１８】 組織因子アゴニストがFVllまたはFVllaである請求項１７
    記載の方法。
19. 【請求項１９】 組織因子アンタゴニストが修飾されたFVllである請求項１
    ７記載の方法。
20. 【請求項２０】 前記遺伝子がCyr61、CCN遺伝子ファミリーに属する遺伝子
    である請求項１７記載の方法。
21. 【請求項２１】 前記遺伝子が、CTFG、ドーパミンD2受容体、EST incyte P
    D 395116またはP2Uヌクレオチド受容体からなる群より選択される請求項１７記
    載の方法。
22. 【請求項２２】 遺伝子がCyr61遺伝子である請求項２１記載の方法。