JP2003517566A - 成長因子模倣物質、成長因子および阻害因子の同定に用いられる方法および組成物 - Google Patents

成長因子模倣物質、成長因子および阻害因子の同定に用いられる方法および組成物

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Abstract

(57)【要約】 細胞の増殖、分化、生存または活性化に関与する受容体に対するアゴニストまたは阻害性抗体の同定方法であって、受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の細胞を生産し、抗体をコードする核酸配列を含む、複数の細胞からのライブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列を表面ディスプレーベクターへクローン化することにより、抗体が表面ディスプレーされ、そして標的細胞を用いて表面ディスプレーされた抗体をスクリーニングすることにより、受容体に対するアゴニストまたは阻害性抗体を同定する段階を含む方法。

Description

【発明の詳細な説明】
【０００１】 発明の分野 本発明は、成長因子、阻害因子およびそれらの受容体の分野に関するものであ
る。
【０００２】 発明の背景 以下、関連性のある技術について検討しているが、いずれも後記請求の範囲に
先行する技術であるとは認められていない。
【０００３】 慣用的手段、すなわちタンパク質精製および発現スクリーニングでは、同定さ
れる成長因子およびサイトカインの数は限られている。
【０００４】 造血において、例えば、サイトカイン類は、全ての成熟した高度分化血液細胞
の発達に必要とされる。血液細胞はすべて、自己再生が行われ得るかまたは始原
細胞を生じさせ得る多能性幹細胞の共通プールに由来すると考えられている。サ
イトカイン類は、幹および始原細胞の連続した同調的分化および増殖を含む複雑
なプロセスを制御する。多くのサイトカインは、骨髄支質細胞により局所産生さ
れる。他は体の他の領域で生成される。中には広い特異性を有するサイトカイン
もあり、複能性幹細胞に作用して、それらを分化、自己再生および増殖に誘導す
る。他は、造血後期で特定細胞系に作用する。多くのサイトカインはまた、成熟
細胞の活性に影響を及ぼし、外因抗原に対する免疫応答において一定の役割を演
じる。既知サイトカインの多くおよび造血におけるそれらの主要役割については
、表１に記載されている（メトカーフ,D.およびニコラ,N.A.１９９５。The Hemo
poietic colony-Stimulating Factors中。ケンブリッジ・ユニバーシティー・プ
レス、ニューヨーク、 カラード,R.E.およびギアリング,A.J.H.１９９４．The C
ytokine Facts Book中。アカデミック・プレス・インコーポレイテッド、サンデ
ィエゴ、カリフォルニア、ハンブリン,A.S.１９９３。Cytokines and Cytokine
Receptors中。オックスフォード・ユニバーシティー・プレス・インコーポレイ
テッド、ニューヨーク）。
【０００５】
【表１】
【表２】
【０００６】 リガンド 天然成長因子およびサイトカイン以外にも、アゴニスト抗体が発見された。ア
ゴニスト抗体は、受容体の天然リガンドによく似た抗体である。アゴニスト抗体
は、慣用的モノクローナル抗体技術を用いることにより、造血および関連のある
成長および分化経路において同定された。アゴニスト抗体は、肝癌貫膜キナーゼ
（Htk）、ＣＤ３４+ヒト骨髄細胞におけるチロシンキナーゼおよびヒト肝細胞癌
腫セルラインに対して同定された（ベネット,B.D.、ワング,Z.、クァング,W.J.
、ワング,A.、グループマン,J.E.、ゴエデル,D.V.、スカッデン,D.T.、J.Biol.C
hem.２６９：１４２１１−１４２１８、１９９４）。アゴニスト抗体はまた、fl
t３／flk２に対しても産生された（ベネットら、アメリカ合衆国特許第５６３５
３８８号）。
【０００７】 エリトロポイエチンによく似た抗体は、エリトロポイエチン受容体に対して生
成されたモノクローナル抗体のスクリーニングを通じて同定された。この抗体は
、２量体形成を介して受容体応答を促進する（シュナイダーら、Blood８９：４
７３、１９９７）。リガンドによく似た他の抗体もまた同定された（カハンら、
Proc.Natl.Acad.Sci.,USA ７５：４２０９、１９７８）。
【０００８】 病状によっては、受容体に結合する抗体が天然リガンドの作用を模倣し得る場
合もある。甲状腺機能亢進症（グレーブス病）の場合、ＴＳＨ受容体に結合し、
これらの受容体を活性化する抗体の異常産生が起きる（コスギ,S.、バン,T.、コ
ーン,L.D.、Mol.Endocrinol.７：１１４−１３０、１９９３、ルンドゲート,M.E
.、ヴァサート,G.、Baillieres Clin.Endocrinol.Metab.９：９５−１１３、１
９９５）。
【０００９】 増殖または分化を促進する抗体とは対照的に、細胞表面受容体に結合し、リガ
ンド結合を効果的に妨害する阻害性抗体が同定された。これらの抗体は、同じ結
合部位に関して天然分子と競合するか、または極めて接近した部位に結合するこ
とによって天然結合部位を遮断することにより作用する。ｃ−ｆｍｓ受容体に対
する抗体（スドウ,T.、ニシカワ,S.、オガワ,M.、カタオカ,H.、オオノ,N.、イ
ザワ,A.、ハヤシ,S.、ニシカワ,S.、Oncogene １１：２４６９−２４７６、１９
９５）およびｃ−ｋｉｔ受容体に対する抗体（コダマ,H.、ノセ,M.、ニイダ,S.
、ニシカワ,S.、ニシカワ,S.、Exp.Hematol. ２２：９７９−９８４、１９９４
）を含め、これらのタイプの阻害性抗体について文献に多くの例が記載されてい
る。
【００１０】 別法として、阻害性抗体の中には、天然阻害性分子を模倣することにより作用
し得るものもある。造血に対する抑制効果をもつサイトカイン類が同定された（
ケセンベリー,P.J.、１９９５. Hemopoietic stem cells, progenitor cells, a
nd cytokines. Williams Hematology中、第５版、ビュトラー,E.、リヒトマン,M
.A.、コラー,B.S.、キップス,T.J.編、マクグロウ‐ヒル・ユナイテッド・ステ
ーツ）。これらの阻害性分子は、Ｓ相中に細胞分裂を抑制するか、表面サイトカ
イン受容体発現を調節するか、または細胞からのサイトカインの放出を抑制する
ことにより作用する。トランスフォーミング増殖因子−Ｂ（ＴＧＦ−Ｂ）は、初
期幹細胞を抑制し、さらなる成熟細胞を刺激する。阻害作用をもつ他のサイトカ
インには、Ｈ−サブユニットフェリチン、プロスタグランジンＥ１およびＥ２、
インヒビンおよびラクトフェリンがある（ケセンベリー １９９５）。ケモカイ
ンファミリーにおける造血阻害因子には、マクロファージ−炎症タンパク−１ａ
、マクロファージ‐炎症タンパク−２ａ、血小板因子−４、インターロイキン−
８、インターフェロン誘導性タンパク−１０および数種の小ペプチドがある（ケ
センベリー、１９９５）。阻害因子の作用は、受容体の２量体化、または結合が
引き金となる受容体の配座変化を必要とし得る。阻害性抗体は、２量体化または
受容体配座の変化を促進することによって同様に阻害性リガンドを模倣し得る。
【００１１】 発明の要旨 本発明は、分化経路、発達経路、細胞生残および細胞の機能活性化または阻害
に関与する新規の成長因子模倣物質、成長因子受容体、天然成長因子、成長因子
受容体拮抗物質（アンタゴニスト）および阻害因子を同定するために免疫系方法
を利用する。上記経路には、造血、神経系発達および再生および器官／組織発達
および再生があるが、これらに限定はされない。好ましい態様において、本発明
は、顆粒球、単核球、マクロファージ、好酸球、巨核球、マスト細胞、赤血球、
Ｔ−リンパ球、Ｂ−リンパ球および樹状細胞を含む各造血系統内における様々な
段階での複能性幹細胞、多能性始原細胞および単能性細胞を含む造血細胞の増殖
および分化に影響を及ぼす成長因子、模倣物質および阻害因子の同定に関するも
のである。
【００１２】 本発明の広範囲スクリーニングおよび同定方法により、細胞表面分子に結合す
る分子の多大なレパートリーを通じた選択およびスクリーニングが可能となり、
増殖、分化、発達、細胞生存、機能活性化または機能抑制作用を有するものが見
出される。好ましい態様において、本方法では、組み合わせライブラリーおよび
ファージミドを使用することにより、様々な細胞系統の増殖、分化、生存または
活性化においてアゴニストまたは阻害因子として行動する第１世代模倣分子（ア
ゴニスト抗体）または阻害性分子（阻害性抗体）（例、天然阻害因子またはアン
タゴニスト抗体によく似た抗体）が同定される。第１世代アゴニストおよび阻害
因子は、治療剤として（例、アゴニストの場合：臨床的に関連性のある細胞型の
増幅、遺伝子治療を目的としてエクスビボで増殖および分化させる、例、阻害因
子の場合：癌細胞が分裂し続け、化学療法剤に対する感受性を強めるためにのみ
正常細胞の増殖を抑制、または病気または障害に関与する細胞、例えばアレルギ
ー反応に関与する細胞集団の増殖または分化を抑制）、診断試薬として、および
基礎および臨床研究（例、細胞、例えば造血細胞の細胞選別用および細胞、例え
ば造血細胞の同定用抗体）において直接使用され得る。第１世代アゴニストおよ
び阻害因子はまた、受容体、および究極的にはそれらが模倣する天然因子のクロ
ーン化に使用され得る。これらの研究から得られる天然因子は、多くの病状で臨
床的に使用され得る。例えば、新規造血増殖因子および模倣物質から恩恵を被る
者には、化学療法、骨髄移植および骨髄増殖性疾患を含む、病気または処置に関
連した免疫抑制に苦しむＨＩＶ感染患者を含めあらゆる患者が含まれるが、これ
らに限定はされないものとし、この種類の治療剤の医療設備は増大されることに
なる。
【００１３】 本発明の一態様では、ヒトまたはネズミ幹／始原細胞で動物を免疫化すること
により、これらの細胞表面に表出されたエピトープに対して産生した抗体の免疫
レパートリーライブラリーを生成する。一次細胞の混合物が使用されるため、免
疫原は、様々な細胞型に関する発達、分化、生存、活性化および不活化の多様な
相異なる段階に関与する細胞表面受容体の一部を示す何千の潜在的エピトープを
発現することになる。興味の対象であるエピトープは、増殖、分化、発達、生存
または活性化の増強または阻害に導くシグナル伝達カスケードに連係する細胞表
面受容体である。例えば、造血起源の細胞に作用する抗体を産生させるためには
、骨髄細胞は注入される細胞の一選択肢となる。
【００１４】 新規成長因子、阻害因子および関連分子の本発見方法は、造血に加えて他の分
化／発達経路にも適用され得る。例えば、動物（ウサギ、ニワトリまたは他の動
物）は、ネズミまたはヒト胎生期癌細胞、例えばネズミＰ１９細胞（マクバーニ
ー,M.W.、ロジャーズ,B.J.、Developmental Biology ８９：５０３−５０８、１
９８２）またはヒトＮＴera‐２cl.Ｄ１細胞（アンドリューズ,P.W.、ダムジャ
ノフ,I.、サイモン,D.、バンティング,G.S.、カーリン,C.、ドラコポリ,N.C.、
フォフ,J.、Laboratory Investigation ５０：１４７−１６２、１９８４）によ
り免疫化され得る。これらの細胞は複能性であるが、通常の培養条件下において
十分には分化しない。それらは、神経および膠細胞（一般的には誘発剤、例えば
レチノイン酸の存在下）または心筋および骨格筋（例えば、ＤＭＳＯの存在下）
に分化誘導され得る。これらの細胞で免疫化することにより、これらおよび他の
経路への分化に関与するアゴニスト抗体、阻害性抗体および成長因子の同定が可
能となる。
【００１５】 別法として、動物は、ヒトまたはマウス複能性奇形癌細胞により免疫化され得
る。この場合、内胚葉由来の組織および器官、例えば肺、肝臓、膵臓、胃、食道
、咽頭、腸または唾液腺の発達を促進または抑制するアゴニストまたは阻害性抗
体が同定され得る。
【００１６】 また、ネズミ複能性胚性幹細胞による免疫化も可能である。胚性幹細胞（ＥＳ
細胞）は、全能であり、インビトロ増殖し得る初期哺乳類細胞から誘導される。
それらは全胚性３胚葉およびそれらの誘導体に分化し得る（エヴァンズ,M.、カ
ウフマン,M.、Nature ２９２：１５４、１９８１、マーチン,G.、Proc.Natl.Aca
d.Sci. USA、７８：７６３４、１９８１）。さらに、ヒトＥＳセルラインは、免
疫原として使用され得る（トムソン,J.A.、イツコヴィッツ‐エルドー,J.、シャ
ピロ,S.S.、ワクニッツ,M.A.、スウィエルギエル,J.J.、マーシャル,V.S.、ジョ
ーンズ,J.M.、Science ２８２：１１４５−１１４７、１９９８、ボングソ,A.、
C.Y.フォング、S.C.ＮｇおよびS.ラトナム、Hum. Reprod. ９：２１１０、１９
９４）。この場合、様々な胚構造への分化を促進または抑制するアゴニストまた
は阻害性抗体が同定され得る。
【００１７】 免疫化後、組み合わせ抗体フラグメントライブラリーを免疫化動物から構築す
る。本発明はまた、免疫化に使用される様々な細胞の表面成分へ指向したこれら
の組み合わせライブラリーについても包含する。これらのライブラリーからは、
天然ライブラリーまたは合成ライブラリーの場合と比べて興味の対象である抗原
に対する特異抗体が高頻度で得られる。また、１−３回のブースター免疫化が行
われた動物から生成されたライブラリーによって、親和力の成熟故に、親和力が
高い抗体フラグメントが得られる。
【００１８】 別法として、好ましさでは劣る態様において、既成抗体ライブラリー、例えば
合成抗体ファージディスプレーライブラリーがスクリーニングされ得る。しかし
ながら、これらは標的とされるライブラリーではないため、興味の対象であるア
ゴニストまたは阻害性抗体は存在し得ない。若干の合成抗体ファージディスプレ
ーライブラリーは、広い類別の結合特異性を含む。ライブラリーは、ランダムオ
リゴヌクレオチド合成を用いて作成された（バルバス,C.F.III、バイン,J.D.、
ホエクストラ,D.M.、ラーナー,R.A.、Proc.Natl.Acad.Sci USA ８９：４４５７
−４４６１、１９９２、ソデルリンド,E.、ヴェルゲレス,M.、ボレベック,C.A.
、Gene １６０：２６９−２７２、１９９５）。さらに、ヒト１本鎖Ｆｖ（scFv
）抗体フラグメントの大型ファージディスプレーライブラリーは、生殖系列ＶＨ
遺伝子を合成重鎖ＣＤＲ３領域および様々な軽鎖配列と合わせることにより構築
された（ド・クルイフ,J.、ボエル,E.、ログテンバーグ,T.、J.Mol.Biol.２４８
：９７−１０５、１９９５、アカマツ,Y.、コール,M.S.、ツソ,J.Y.、ツルシタ,
N.、 J.Immunol.１５１：４６５１−４６５９、１９９３）。他の合成ライブラ
リーについても報告されている（フーシュ,P.、デュベル,S.、ブレイトリング,F
.、ブラウナゲル,M.、クレウィングハウス,I.、リトル,M.、Cell Biophys.、２
１：８１−９１、１９９２、フーゲンブーム,H.R.およびウィンター,G.、J. Mol
.Biol. ２２７：３８１−３８８、１９９２）。
【００１９】 本発明において、免疫化動物からの発現ライブラリーは、好ましくはＦａｂフ
ラグメントライブラリーまたは１本鎖可変領域ライブラリー（scFv）として構築
される。Fabフラグメントライブラリーは、天然抗原認識部位を維持しており、
親和力の維持を確保するのに有用である。全結合性ドメインが一ポリペプチドに
含まれるため１本鎖ライブラリーが有用である。
【００２０】 抗体または抗体フラグメントは、様々な方法でのスクリーニング目的のため標
的細胞に供与され得る。まず、それらは、バクテリオファージ、ファージミド、
原核生物細胞、例えばエシェリキア・コリ（E.coli）、真核生物細胞、例えば哺
乳類細胞または酵母で表面ディスプレー（露呈）されるかまたはリボソームでデ
ィスプレーされ得る。表面ディスプレーされた抗体は、表面ディスプレー抗体を
担う独立体（バクテリオファージ、ファージミド、細菌細胞または哺乳類細胞）
を標的細胞と接触させることにより、標的細胞への結合を行わせ、非結合独立体
を除去し、結合したままの独立体があればそれらを増幅することによりスクリー
ニングされ、バイオアッセイでさらに試験される。別法として、共培養はスクリ
ーニング目的に使用され得る。抗体産生細胞、バクテリオファージまたはファー
ジミドを生産する細菌細胞、抗体産生細菌細胞、抗体産生真核生物細胞を、標的
細胞の存在下で増殖させる（共培養）。抗体は、細胞、バクテリオファージまた
はファージミドの表面に供与されるか、培地中に分泌される。第３に、標的細胞
への提供手段は、分泌された抗体を利用することによるものである。
【００２１】 抗体ディスプレーは、バクテリオファージ（フーズ、W.D.、サストリー、L.、
アイヴァーソン、S.A.、カング、A.S.、アルティング‐ミーズ、M.、バートン、
D.R.、ベンコヴィック、S.J.およびラーナー、R.A.、Science、２４６：１２７
５−１２８１、１９８９、マカファーティー,J.、フリフィスス,A.D.、ウィンタ
ー,G.、チスウェル,D.J.、Nature３４８：５５２−５５４、１９９０、チャング
,C.N.、ランドルフィ,N.F.およびクイーン,C.、J.Immunol.１４７：３６１０−
３６１４、１９９１）、ファージミド（バルバスIII,C.F.、カング,C.F.、ラー
ナー,R.A.およびベンコヴィック,S.J.、Proc.Natl.Acad.Sci.,USA、８８：７９
７８−７９８２、１９９１）の表面および原核生物細胞、例えばエシェリキア・
コリ（E.coli）（フーシュ,P.、ブレイドリング,F.、ベルシェアウス,T.、リト
ル,M.、Biotechnology ９：１３６９−１３７２、１９９１、フランシスコ,J.A.
ら、Proc.Natl.Acad.Sci.,USA、９０：１０４４４−１０４４８、１９９３、チ
ェン,G.、クラウド,J.、ゲオルギオウ,G、アイヴァーソン,B.L.、Biotechnol.Pr
og.１２：５７２−５７４、１９９６）の表面で行われた。抗体は、真核生物細
胞において細胞内発現され、分泌された。抗体はまた、真核生物細胞（酵母）の
表面でも発現された。哺乳類ＣＨＯ細胞およびＣＯＳ細胞は、抗体分泌によく利
用されている（トリル,J.J.、シャツマン,A.R.、ガングリー,S.、Curr.Opin.Bio
technol. ６：５５３−５６０、１９９５、フォウザー,L.A.、スヴァンベルグ,S
.L.、リン,B.Y.、ベネディクト,M.、ケレハー,K.、クミング,D.A.、リーデル,G.
E.、Biotechnology(NY) １０：１１２１−１１２７、１９９２）。ＧＰＩアンカ
ーは、様々なタンパク質を細胞表面に固定するのによく利用される。真核生物細
胞において、抗体フラグメントは、ＧＰＩアンカーを用いて原形質膜の表面にデ
ィスプレーされ得る。ＧＰＩアンカーに連係された融合タンパク質は、細胞表面
での異種タンパク質発現に広く使用されている（スカロン,B.J.、カド‐フォン
グ,H.、ネットレトン,M.Y.、コチャン,J.P.、Biotechnology １０：５５０−５
５６、１９９２）。酵母では、抗体発現は細胞内（カールソン,J.R.およびヴァ
イスマン,I.L.、Mol.Cell.Biol.、８：２６４７−２６５０、１９８８、ボウデ
ィッシュ,K.S.、タング,Y.、ヒックス,J.B.およびヒルヴァート,D.、J. Biol. C
hem. ２６６：１１９０１−１１９０８、１９９１ ）および表面（ボダー,E.T.
およびウィットラップ,K.D.、Nat. Biotechnol.、１５：５５３−５５７、１９
９７）で行われている。様々な安定したベクターおよび有効なプロモーターおよ
び分泌シグナルは、興味の対象であるタンパク質の分泌を遺伝子工学的に操作す
る場合に酵母において利用可能である。これらは、モア、D.T.、ダヴィドウ、L.
S.、Methods Enzymol.１９４：４９１−５０７（１９９１）で概説されている。
酵母表面における異種タンパク質の細胞表面発現については、最近になって概説
された（ゲオルギオウ, G.、スタソポウロス,C.、ダウファーティ,P.S.、ナヤッ
ク,A.R.、アイヴァーソン,B.L.、カーティス,R.III、Nat. Biotechnol. １５：
２９−３４、１９９７）。先導配列から下流のクローニングフラグメント、メイ
ティング・ファクターアルファは、異種タンパク質の分泌に有効に使用されてい
る（スワート,A.C.、スワート,P.、ロウクス,S.P.、ファン・デル・メルヴェ,K.
J.、プレトリウス,I.S.、ステイン,A.J.、Endocr. Res. ２１：２８９−２９５
、１９９５）。さらに、多数の異種タンパク質が、メタノールオキシダーゼプロ
モーターを用いることによりメチロトロピック（methylotropic）酵母ピチア・
パストリス（Pichia pastoris）においてリットル当たりグラムよりも大きいレ
ベルで生産されている（スリークリシュナ,K.、ブランカンプ,R.G.、クロップ,K
.E.、ブランケンシップ,D.T.、ツァイ,J.T.、スミス,P.L.、ヴィエルシュケ,J.D
.、スブラマニアム,A.、ビルケンバーガー,L.A.、Gene１９０：５５−６２、１
９９７）。当業界における平均的技術者であれば、これらおよび他の公知技術に
基いて抗体分子およびフラグメントの表面ディスプレーおよび分泌を容易に達成
することができる。
【００２２】 当技術分野の実践者であれば、表面ディスプレーまたは分泌されていない標的
細胞に抗体または抗体フラグメントを提供する他の手段も可能であり、本発明で
の使用に適していることを認めるはずである。これらの方法には、原核生物リボ
ソームディスプレー（ヘインズ,J.およびプラックサン,A.、Proc.Natl.Acad.Sci
. U.S.A.、９４：４９３７−４９４２、１９９７）および真核生物リボソームデ
ィスプレー（トランスローカス・セラピューティックス、ケンブリッジ、イギリ
ス国）があるが、これらに限定されるわけではない。
【００２３】 好ましくは、ライブラリーは、迅速なスクリーニングを可能にするファージミ
ドベクターにおいて構築される。ファージミドは、ヘルパーファージによる重感
染を必要とする。重感染により、プラスミドをファージミド粒子にパッケージす
るのに要求される残りのファージ成分が提供される。各ファージミドは、１個の
ファージミド粒子につき、コートタンパク質融合体として表面にディスプレーさ
れた、ほぼ１つまたはそれ以上の抗体結合部位を含む。残りのコートタンパク質
については、ヘルパーファージが寄与するため野生型であり、増幅を目的とする
エシェリキア・コリ（E.coli）へのファージミドの有効な再感染が可能となる。
遺伝子IIIコートタンパク質の機能的ドメインは、抗体フラグメントのディスプ
レー用の融合相手として好ましい。しかしながら、ファージ表面ディスプレーを
可能にする、ファージの完全長または機能的ドメインコートタンパク質、例えば
遺伝子VIIIを利用することも可能である（カング,A.S.、バルバスIII,C.F.、ジ
ャンダ,K.D.、ベンコヴィック,S.J.およびラーナー,R.A.、Proc. Natl. Acad. S
ci.USA、８８：４３６３−４３６６、１９９１）。
【００２４】 表面ディスプレー抗体分子またはフラグメントの初回スクリーニングは、好ま
しくはふるい分けにより行われる（デクルイフ,J.、タースタッペン,L.、ボエル
,E.、ログテンバーグ,T.、Proc. Natl. Acad. Sci. USA ９２：３９３８−３９
４２、１９９５）。モノマー性抗原結合部位のふるい分けには、親和力および特
異性に基いてクローンを選別するという利点があるため、高親和力結合剤を分離
すべく集団をスキュー（歪曲）させる。典型的には、数ラウンドの選択および増
幅を行うことにより、結合分子が濃縮される。ふるい分けは、抗体が指向する細
胞表面受容体または密接に関連した受容体を発現する標的細胞を用いて行われる
。別法として、細胞は、蛍光活性化細胞選択装置（ＦＡＣＳ）選別法または磁気
選別法により分離され得る。細胞の特異集団に接着するファージは、細菌細胞の
溶離および感染により増殖され得る。
【００２５】 初回スクリーニングの別法では、抗体が指向される細胞表面受容体または密接
に関連した受容体を発現する標的細胞とファージで表面ディスプレーされた抗体
分子またはフラグメントとの結合を検出するが、この結果、結合したファージは
受容体のエンドサイトーシスによりインターナリゼーションされる。これらのフ
ァージは、例えば表面結合ファージを溶離し、細胞を溶解した後、電気泳動にか
け、インターナリゼーションされたファージＤＮＡを回収することにより同定さ
れ得る。
【００２６】 特異結合抗体の別の可能な同定方法では、放射性標識細胞ライゼートまたは膜
製品を使用し、これらを１または２次元ゲルでの電気泳動にかけ、固定化固体支
持膜に移動させる。ファージをハイブリダイズし、興味の対象である特異スポッ
トから溶離する。スポットは、興味の対象である細胞表面分子を有する標的細胞
および当然それらを有しない非関連細胞が呈する膜タンパク質のパターン比較に
基いて選択され得る。
【００２７】 次いで、標的細胞に特異結合する表面ディスプレー抗体（標的細胞の表面に残
っているものまたはインターナリゼーションされたもの）を、様々なバイオアッ
セイまたは受容体検定法を用いることにより、増殖、分化、細胞生存または活性
化の促進または抑制能力について様々な標的細胞およびセルラインに対しスクリ
ーニングする。２量体化は、造血系受容体を含む多くの受容体の活性化に関する
先行必要条件であることが多い（The Hematopoietic Colony-Stimulating Facto
rs、D.M.メトカーフ、N.A.ニコラ（１９９５）ケンブリッジ・ユニバーシティー
・プレス、ニューヨーク）。すなわち、ふるい分けに続いて、標的細胞における
結合性細胞表面分子として確認された抗体フラグメントを、２量体としてバイオ
アッセイまたは受容体検定法で試験する。拮抗物質として作用する阻害性抗体は
、特にそれらがアゴニストの結合から受容体を遮断するだけの場合、必ずしも２
量体である必要がないこともあり得るが、阻害性抗体が天然阻害性分子を模倣す
る場合、機能的であるためには２量体であることが要求され得る。
【００２８】 本発明は、成長関連分子の他の同定方法を凌ぐ幾つかの利点を提供する。成長
因子を分離する先行方法では、分離的生化学的特徴による条件培地からの活性因
子の精製を利用した。これらの方法は、かなりの量で因子が存在することを必要
とした。他の方法は、バイオアッセイと同様セルラインを用い、ｃＤＮＡプール
の直接発現スクリーニングを使用する。この場合、発現スクリーンにおけるポリ
ペプチド鎖の適切な折り畳みの場合と同様、転写レベルは、有効な因子同定にお
ける一要因である。また、調節因子の多くが共同で作用するときに最も効果的に
機能するように設計されたことはますます明白になっており、単に増殖および／
または分化に影響すべく作用するだけの因子が同定され得るに過ぎないという点
でこれらの方法は制限される。
【００２９】 対照的に、本発明では、結合分子について直接選択し、次いで結合分子の全レ
パートリーにわたってスクリーニングすることにより、増殖的または分化的作用
を有するものが見出される。組み合わせライブラリーとして大きな免疫レパート
リーであると、重および軽鎖結合領域のランダムな会合が可能となり、候補のア
ゴニストおよび阻害因子がさらに増大される。また、請求の範囲に記載された方
法は、伝統的なモノクローナル抗体技術の制限（１免疫化動物当たりの骨髄腫細
胞へのＢ細胞融合の数により制限されている）を受けることはなく、大きな免疫
レパートリー全体におよぶスクリーニングを可能にする。さらに、細胞‐細胞接
触を通じた局所制御および体液調節分子の両方が増殖、発達、分化、細胞生存、
機能活性化および機能抑制に関与していることが知られているため、これらのス
クリーニング方法は、調節因子のタイプまたはその生成起点もしくは部位に限定
されない。さらに、本スクリーニング方法は、生化学的機能、既知遺伝子との十
分な配列類似性または起点部位を全く前提とはしていない。請求項に記載された
同定およびスクリーニング方法は、迅速性、費用効果および単純さを含め、慣用
的スクリーニング方法を凌ぐ幾つかの実践的な利点を呈する。現行方法はまた、
同時多試料分析法を提供するもので、さらに多くのＡｂフラグメントがスクリー
ニングに利用可能となる。
【００３０】 本発明はまた、抗体が結合する受容体を発現する細胞（標的細胞）の存在下で
抗体を発現する細胞を共培養することによる抗体（アゴニストまたは阻害性）ス
クリーニング方法を包含する。
【００３１】 一旦アゴニストまたは阻害性抗体が同定されると、それらは当業界技術者に公
知の標準組換え技術を用いて合成され得る。これらの抗体およびそれらの製造方
法もまた、請求項に記載された発明に包含される。さらに本発明は、上記抗体を
用いることにより抗体と結合する受容体を同定および抗体が模倣し得る天然成長
因子または阻害因子を同定する方法を包含する。
【００３２】 さらに、本発明は、特定細胞型またはその前駆体の増殖または分化を刺激する
ことによりその細胞型が欠乏した患者を処置するためのアゴニスト抗体の用途お
よび特定細胞型を阻害するための阻害抗体の用途、および特定細胞型を同定する
ための抗体の用途を包含する。
【００３３】 また、細胞の特異集団を同定および分離するためのアゴニストおよび阻害抗体
の用途も本発明に包含される。
【００３４】 第１の態様において、本発明は、細胞の増殖、分化、生存または活性化に関与
する受容体に対するアゴニストまたは阻害性抗体の同定方法であって、受容体を
含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、表面分子に
対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を生産し、抗体をコ
ードする核酸配列を含む複数の免疫細胞からのライブラリーを作成し、抗体が表
面ディスプレーされるようにライブラリーからの核酸配列を表面ディスプレーベ
クターへクローン化し、そして標的細胞を用いて表面ディスプレー抗体をスクリ
ーニングすることにより受容体に対するアゴニストまたは阻害性抗体を同定する
段階を含む方法を特徴とする。
【００３５】 「細胞の増殖、分化、生存または活性化に関与する受容体」とは、受容体をデ
ィスプレーする細胞の増殖、分化、発達、生存または活性化の増強または抑制に
導くシグナル伝達カスケードに連係された受容体を包含する。増殖は、タンパク
質合成速度、染色体複製、細胞サイズまたは細胞数の変化により検出される細胞
周期の様々な段階を通じた能動的な分裂および進行である。分化は、外因性因子
への暴露の結果として生じる、特殊機能をもつ異なるタイプの細胞の生産が導か
れる細胞形態、行動または機能の変化、または細胞が成熟し、複能性が低下する
遺伝子発現の変化を含む。活性化は、細胞がＧ0を脱して、Ｇ1へ入るが、第２シ
グナルを受けるまではＤＮＡ合成も分裂もしないプロセスである。活性化は、活
性化遺伝子および活性化抗原の特異的なセットの発現を伴う。例えば、Ｂ細胞に
関する活性化抗原には、ＣＤ２３、表面ＩｇＭおよびＣＤ４０がある。生存は、
細胞にアポトーシスまたはプログラム（予定）細胞死または壊死が起こっていな
いことを意味する。本発明はまだ未発見の受容体に指向された抗体を包含するが
、当業界における一平均的技術者であれば結果的に細胞が呈する行動、例えば増
殖、分化、活性化または生存により抗体と受容体の結合を検出することはできる
ため、受容体の同定は必ずしも必要ではない。
【００３６】 好ましい態様において、幹／始原細胞は、未選別ヒト骨髄細胞、ヒト骨髄を起
点とするヒト末梢血細胞、選別ヒト骨髄細胞、未選別ネズミ骨髄細胞、選別ネズ
ミ骨髄細胞、胎児肝細胞、卵黄嚢細胞、ネズミＡＧＭ領域から誘導された細胞、
ヒトまたはネズミ胎生期癌細胞または系統、ヒトまたはマウス複能性奇形癌細胞
または系統、ネズミ複能性胚性細胞、ヒト胚性幹（ＥＳ）セルライン、神経起源
の細胞、器官または組織再生に関与する細胞、ＲＢＣ溶解を被ったヒト骨髄細胞
、ヒト骨髄単核細胞、ヒト骨髄ＣＤ３４+細胞、ＦＤＣＰ−混合ネズミ造血幹セ
ルライン、Ｂ６ＳＵＴＡネズミ造血幹セルライン、Ｐ１９奇形腫細胞、およびＮ
Ｔｅｒａ−２複能性胎生期癌細胞から成る群から選択され、抗体はｓｃＦｖまた
はＦａｂフラグメントであり、表面ディスプレーベクターはファージミドであり
、ライブラリーは組み合わせライブラリーである。
【００３７】 別の態様において、本発明は、成長因子受容体に対するアゴニスト抗体の同定
方法であって、成長因子受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免
疫化することにより、表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複
数の免疫細胞を生成させ、抗体をコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞か
らのライブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列を表面ディスプレーベ
クターにクローン化することにより抗体を表面ディスプレーさせ、標的細胞を用
いて表面ディスプレー抗体をスクリーニングすることにより成長因子受容体に対
するアゴニスト抗体を同定する段階を含む方法を特徴とする。
【００３８】 「アゴニスト抗体」とは、細胞表面受容体をディスプレーする細胞の増殖、分
化、活性化、生存または生存能力保存に導くシグナル伝達カスケードに連係され
た細胞表面受容体に結合する抗体全体またはそのフラグメント、例えばＦａｂフ
ラグメントおよびｓｃＦｖフラグメントを包含する。
【００３９】 「成長因子受容体」とは、成長因子または別のリガンドへ結合し、原形質膜（
すなわち細胞表面）上に呈された成長因子受容体を有する細胞の増殖、分化、生
存または活性化に導くシグナル伝達カスケードに参与する分子を包含する。
【００４０】 「動物を免疫化する」とは、細胞、例えば幹／始原細胞を、例えば腹腔内、静
脈内、皮下または筋肉内といったいずれかの投与経路により１またはそれ以上の
動物に注入することによって、細胞表面上の分子に対して動物により免疫応答が
発せられることを意味する。初回免疫化は、アジュバントの存在下で行われ得る
。同じ抗原による増強（ブースト）後に初回免疫化を行うことが多く、その結果
より大きな応答が発せられ、産生された抗体の親和力が増強される。典型的には
、１〜３回のブースター免疫化が、２−８週間の間隔、通常３−４週間隔で行わ
れる。典型的には、単一より多数の動物が免疫化される。
【００４１】 「幹／始原細胞」とは、複能性である細胞および多能性である細胞およびまた
細胞の増殖、分化、活性化または生存に関与する細胞表面受容体を有する複能性
または多能性細胞から誘導される最終段階または終末分化細胞を包含する。複能
性細胞（幹細胞）は、全細胞系統に分化することができる。例えば、ヒト胚性幹
（ＥＳ）細胞は、胚の全３胚葉およびそれらの誘導体に分化し得る。最も未成熟
な造血幹細胞は、全系統の成熟造血細胞を形成し、動物の造血組織を再構成する
ことができる。多能性細胞（始原細胞）は、限られた数の系統（典型的には２ま
たは３）への分化に制限されている。造血幹／始原細胞は骨髄および循環血液中
に存在する。幹／始原細胞には、未選別ヒト骨髄細胞、ヒト骨髄を起点とするヒ
ト末梢血細胞、選別ヒト骨髄細胞、未選別ネズミ骨髄細胞、選別ネズミ骨髄細胞
、胎児肝細胞、卵黄嚢細胞、ネズミＡＧＭ領域から誘導された細胞、ヒトまたは
ネズミ胎生期癌細胞または系統、ヒトまたはマウス複能性奇形癌細胞または系統
、ネズミ複能性胚性細胞、ヒト胚性幹（ＥＳ）セルライン、神経起源の細胞、器
官または組織再生に関与する細胞、ＲＢＣ溶解を被ったヒト骨髄細胞、ヒト骨髄
単核細胞、ヒト骨髄ＣＤ３４+細胞、ＦＤＣＰ−混合ネズミ造血幹セルライン、
Ｂ６ＳＵＴＡネズミ造血幹セルライン、Ｐ１９奇形癌細胞およびＮＴｅｒａ−２
複能性胎生期癌細胞があるが、これらに限定はされない。免疫化用の細胞は、こ
れらの供給源のいずれからでも入手され得る。
【００４２】 「表面分子」とは、分子の少なくとも一部が原形質膜（細胞膜）の細胞外面に
ある原形質膜（細胞膜）タンパク質分子を包含する。
【００４３】 「１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞」とは、免疫化動物か
らの血液またはリンパ様器官、例えば骨髄、脾臓およびリンパ節からの抗体産生
細胞の集合を意味する。
【００４４】 「ライブラリー」とは、生物の免疫レパートリーを代表する核酸分子の集合を
意味し、本発明では関連のある幹／始原細胞の成長因子受容体に指向された抗体
およびフラグメントをコードする分子が含まれる。ライブラリーは、典型的には
ベクター、例えば表面ディスプレーベクターでクローン化された核酸分子として
提供される。
【００４５】 「表面ディスプレーベクター」とは、表面ディスプレータンパク質の少なくと
も機能的ドメイン、すなわち細胞からの輸送を指令する先導配列、および抗体配
列を挿入するためのクローニング部位を担う核酸ベクターを意味し、結果的に抗
体融合遺伝子が得られる。表面ディスプレーベクターは、宿主細胞において、抗
体またはフラグメントが表面ディスプレーされるように表面ディスプレータンパ
ク質またはその機能的ドメインおよび抗体またはそのフラグメントから成る融合
タンパク質の生産を可能にする。すなわち、抗体またはフラグメントは、表面デ
ィスプレータンパク質のドメインに連係された、機能的結合性ポリペプチドとし
て表面に提供されている。表面ディスプレーは、バクテリオファージ、ファージ
ミド、細菌細胞または哺乳類細胞の表面で行われ得る。表面ディスプレーベクタ
ーの例には、ｐＣＯＭＢ３、SurfＺＡＰ、ｐＣＡＮＴＡＢ５ＥおよびｐＥＸmide
３があるが、これらに限定はされない。当業界の実践者であれば、これらおよび
他の表面ディスプレーベクターについては熟知しているはずで、容易に他の類似
ベクターを構築し得る。表面ディスプレーされた抗体は、それらが位置する原形
質（細胞）膜の細胞外側から提供された抗原に結合することができる。
【００４６】 「スクリーニング」とは、アゴニスト抗体または阻害性抗体である抗体の同定
方法を用いることを意味する。アゴニスト抗体の場合、スクリーニングでは、標
的細胞の受容体に結合する抗体を同定し、その結果、その細胞の増殖、分化、生
存または活性化に導くシグナル伝達カスケードに参与する受容体を誘発または活
性化する。スクリーニングには、標的細胞上の受容体に対する抗体の結合能力の
測定（結合後に細胞表面に残存する抗体および結合後にインターナリゼーション
される抗体の両方を含む）および／または受容体への抗体の結合に随伴する細胞
応答を測定する検定のみが含まれ得る。これらには、分化、増殖、細胞生存また
は活性化（例えば下流エフェクター遺伝子の転写の変化）を検出するバイオアッ
セイおよび化学プロセス、例えば燐酸化を検出する生化学検定が含まれる。阻害
性抗体の場合、スクリーニングには、細胞の受容体に結合する抗体の同定が含ま
れ、その場合、受容体へ抗体が結合すると、その細胞の成長、増殖、分化、活性
化または生存が抑制される。スクリーニングには、細胞上の受容体に対する抗体
の結合能力の測定（結合後に細胞表面に残存する抗体および結合後にインターナ
リゼーションされる抗体の両方を含む）および／または受容体への抗体の結合に
随伴する細胞応答を測定する検定のみが含まれ得る。これらには、分化、増殖、
細胞生存または活性化（例えば下流エフェクター遺伝子の転写の変化）を検出す
るバイオアッセイおよび化学的プロセス、例えば燐酸化を検出する生化学検定が
含まれる。
【００４７】 「標的細胞」とは、アゴニストまたは阻害性抗体が結合する受容体をディスプ
レーする細胞を包含する。標的細胞における成長因子受容体は、幹／始原細胞に
存在する受容体と同じであるか高い関連性を示すものである。造血細胞の場合、
これらは一次造血細胞、幾つかの因子依存性ネズミセルラインおよびヒト白血病
セルラインを包含し得るが、これらに限定はされない。標的細胞は、免疫原とし
て使用されるのと同じ一次細胞型、細胞型の集団、またはセルラインまたは別の
細胞型またはセルラインであり得る。標的細胞は、使用される免疫原に基いて選
択される。例えば、赤血球溶解試薬および遠心分離で処理することにより赤血球
および血小板が除去されたヒト一次骨髄吸引液で広範に免疫化することにより、
多様な細胞表面受容体に対する特異性を有する抗体が当然得られる。この場合の
標的細胞は、同じ免疫原を含み得、そこで多様な抗体が分離されるか、または標
的細胞は細胞、例えばＣＤ３４+細胞の選別集団を含み得ることにより、特異的
細胞系に対する抗体が同定される。広範な免疫原による別の標的選択肢は、ネズ
ミ造血セルラインＦＤＣＰ−混合を用いることである。この場合、インビトロ成
長することができる、細胞のより均一な集団がその利点を有するが、ネズミ標的
を用いて同定されたアゴニスト抗体は、ヒト細胞に対する効果を促進するその能
力についてさらに特性確認されなければならない。別法として、細胞、例えばＣ
Ｄ３４+細胞の選別集団から成る免疫原を用いると、標的としてＣＤ３４+細胞、
またはＦＤＣＰ−混合セルラインが使用され得る。すなわち、免疫原および標的
細胞の適切な選択が、関連性のある抗体を同定するための鍵である。当業界にお
ける平均的技術者であれば、求められる抗体の性質に基いて適当な標的細胞を容
易に決定できるはずであり、すなわち、前駆体細胞の成長に関係するだけの受容
体に指向された抗体は、標的細胞が初期系統細胞であることを必要とする。
【００４８】 好ましい態様において、本発明は、成長因子受容体に対するアゴニスト抗体の
同定方法であって、成長因子受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物
を免疫化することにより、表面分子に対して１つまたはそれ以上の抗体を発現す
る複数の免疫細胞を生成させ、抗体をコードする核酸配列を含む、複数の細胞か
らのライブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列をウイルス性ディスプ
レーベクターへクローン化することにより、抗体をウイルス表面にディスプレー
させ、標的細胞を用いてウイルス表面にディスプレーされた抗体をスクリーニン
グすることにより、成長因子受容体に対するアゴニスト抗体を同定する段階を含
む方法を特徴としている。
【００４９】 「ウイルス性ディスプレーベクター」とは、ウイルス表面に抗体またはそのフ
ラグメントをディスプレーさせ得るベクターを包含する。好ましくは、ウイルス
性ベクターはバクテリオファージ（例、ｆ１、Ｍ１３、ｆｄ、λ、Ｔ３、Ｔ４、
Ｔ７）またはファージミドベクターである。バクテリオファージは、細菌細胞に
感染し、複製し、それらのゲノムをパッケージするこができ、細胞からの放出時
他の細胞に感染することによりこのサイクルを続行し得るウイルスである。ファ
ージミドは、上記生活サイクルに要求される必須遺伝子を欠くウイルスであり、
それらは別のヘルパーファージにより提供される。当業界の平均的技術者であれ
ば、本発明の請求項に記載された用途に適したウイルス、バクテリオファージお
よびファージミドベクターについては熟知しているはずである。ウイルス性ディ
スプレーベクターの例には、ｐＲＬ４（プロリファロン、ＬＬＣ、サンディエゴ
、カリフォルニア）、ｐＣＯＭＢ３（バートン,D.R.およびバルバス,C.F.III、A
dvances in Immunology ５７：１９１−２８０、１９９４）、ＳｕｒｆＺＡＰベ
クター（ストラタジーン、ラジョラ、カリフォルニア）、ｐＣＡＮＴＡＢ５Ｅ（
ファーマシア、ピスキャタウェイ、ニュージャージー）、ｐＥＸｍｉｄｅ３（ソ
ダーリンド,E.、ラガークヴィスト,A.C.、デュエナス,M.、マルムボーグ,A.C.、
アヤラ,M.、ダニエルソン,L.、ボレベック,C.A.、Biotechnology １１：５０３
−５０７、１９９３）がある。
【００５０】 さらに好ましい態様において、ウイルス性ベクターは、バクテリオファージお
よびファージミドベクターから成る群から選ばれる。
【００５１】 別の好ましい態様において、本発明は、成長因子受容体に対するアゴニスト抗
体の同定方法であって、成長因子受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で
動物を免疫化することにより表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現
する複数の免疫細胞を生成させ、抗体のｓｃＦｖフラグメントをコードする核酸
配列を含む、複数の免疫細胞からのライブラリーを作成し、ライブラリーからの
核酸配列をファージミドベクターへクローン化することによりｓｃＦｖフラグメ
ントをファージミド表面にディスプレーさせ、標的細胞を用いてファージミド表
面にディスプレーされたｓｃＦｖフラグメントをスクリーニングすることにより
、成長因子受容体に対するアゴニスト抗体を同定する段階を含む方法を特徴とす
る。
【００５２】 「ｓｃＦｖフラグメント」とは、完全な抗原結合ドメインが単一ポリペプチド
内に含まれる１本鎖抗体フラグメントを包含する。
【００５３】 別の好ましい態様において、本発明は、成長因子受容体に対するアゴニスト抗
体の同定方法であって、成長因子受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で
動物を免疫化することにより、表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発
現する複数の免疫細胞を生成し、抗体のｓｃＦｖフラグメントをコードする核酸
配列を含む、複数の免疫細胞からのライブラリーを作成し、ライブラリーからの
核酸配列を表面ディスプレーベクターへクローン化することによりｓｃＦｖフラ
グメントを表面ディスプレーさせ、標的細胞を用いて表面ディスプレーされたｓ
ｃＦｖフラグメントをスクリーニングすることにより成長因子受容体に対するア
ゴニスト抗体を同定する段階を含む方法を特徴とする。
【００５４】 さらに好ましい態様では、表面ディスプレーベクターは、バクテリオファージ
表面で抗体を発現させ得るバクテリオファージベクターである。
【００５５】 別の好ましい態様において、本発明は、成長因子受容体に対するアゴニスト抗
体の同定方法であって、成長因子受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で
動物を免疫化することにより、表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発
現する複数の免疫細胞を生成し、抗体のｓｃＦｖフラグメントをコードする核酸
配列を含む、複数の免疫細胞からのライブラリーを作成し、ライブラリーからの
核酸配列をファージミドベクターへクローン化することにより、ｓｃＦｖフラグ
メントをファージミド表面にディスプレーさせ、標的細胞の細胞表面分子への結
合に関してファージミドにディスプレーされたｓｃＦｖフラグメントをふるい分
けし、細胞表面分子に結合するｓｃＦｖフラグメントを機能検定でスクリーニン
グすることにより成長因子受容体に関するアゴニスト抗体を同定する段階を含む
方法を特徴とする。
【００５６】 「ふるい分け」とは、標的細胞に特異結合する抗体を濃厚にすべく標的細胞に
ディスプレーされた、興味の対象である抗原、すなわち抗体または抗体フラグメ
ントが指向される受容体を含む細胞表面分子に表面ディスプレーライブラリー（
バクテリオファージ、ファージミドまたは細胞）を暴露することを意味する。例
えば、標的細胞は、例えばプラスチック表面に固定化されるか、または遠心分離
により固定または捕獲され得る。バクテリオファージ、ファージミドまたは細胞
総体にディスプレーされた特異抗体またはフラグメントが標的細胞に結合した後
、表面ディスプレーライブラリーの残りは洗浄により除去される。結合および洗
浄後、特異抗体結合を示すバクテリオファージ、ファージミド、細胞を（例、低
ｐＨにより）溶離する。ふるい分けプロセスは、一般的には数ラウンド反復され
る。バクテリオファージまたはファージミドを使用する場合、各ラウンド後溶離
されたファージミドまたはバクテリオファージは、宿主細胞で増幅され得る。別
法として、蛍光活性化細胞選択法（ＦＡＣＳ）または磁気細胞選別法を、ハイス
ループットスクリーニングに使用することにより、関連のある結合抗体が同定さ
れ得る。表面ディスプレー分子のＦＡＣＳ選択方法は、ゲオルギオウ,G.、スタ
ソポウロス,C.、ダウファーティー,P.S.、ナヤック,A.R.、アイヴァーソン,B.L.
およびカーティス,R.III、Nature Biotechnology １５：２９−３４（１９９６
）に記載されている。これらの方法は、当業界の平均的技術者により表面ディス
プレー抗体フラグメントのスクリーニングに容易に適用され得る。ｓｃＳｖフラ
グメントに関するふるい分けは、一クローニング戦略が使用される故に、２量体
として実施され得るが、単量体として実施され得る場合もある。別法として、受
容体を認識するバクテリオファージまたはファージミドはまた、細胞表面に結合
されたままのバクテリオファージまたはファージミドを除去し、次いで細胞を溶
解することによりインターナリゼーションされたバクテリオファージまたはファ
ージミドを回収する、インターナリゼーション方法を用いて同定され得る。別の
方法では、膜タンパク質を標的細胞から分離し、これらの膜タンパク質の特異フ
ラクションに抗体を結合させる。
【００５７】 「細胞表面分子に結合（する）」とは、抗体産生を誘う受容体の抗原決定基ま
たは密接な関連のある抗原決定基、例えば同じか関連した種類に属する受容体ま
たは別の種類で関連のある受容体における抗原決定基に対する抗体フラグメント
の抗原結合ドメインの結合を意味する。
【００５８】 「機能検定でスクリーニング（する）」とは、標的細胞に対する抗体の作用（
すなわち、増殖、分化、発達、生存または活性化に影響する、標的細胞でディス
プレーされた成長因子受容体への抗体の結合）を測定するための個々またはプー
ルでの表面発現された抗体（アゴニストまたは阻害性）の試験を意味する。ふる
い分けにより標的細胞に結合することが測定された抗体フラグメントのみを、そ
れに続いて機能検定でスクリーニングにかける。アゴニスト抗体フラグメントに
関する機能検定において、スクリーニングされるのはｓｃＦｖ２量体である。ｓ
ｃＦｖ２量体分子のスクリーニングは、表面ディスプレー分子、可溶性ｓｃＦｖ
分子または分泌分子として行われ得る。阻害性抗体フラグメントに関する機能検
定において、抗体フラグメントは、独立して単量体および２量体および表面ディ
スプレー分子または可溶性分子としてスクリーニングされる。ｓｃＦｖフラグメ
ントが成長因子受容体へ結合し、その活性化を遮断する拮抗物質として作用する
場合、それは単量体として作用し得る。しかしながら、ｓｃＦｖフラグメントが
天然阻害性分子の模倣物質として作用する場合、アゴニスト抗体の場合と同様２
量体であることが必要である。機能検定におけるスクリーニングは、バイオアッ
セイ（例えばコロニー形成の試験、3Ｈチミジン取り込みまたはＢｒｄＵ取り込
みによるＤＮＡ合成の測定、遺伝子転写の変化に関する検定、または増殖に対す
る効果についてスクリーニングするのに使用され得る細胞酵素の測定）または生
化学検定（例えば受容体リン酸化）のいずれかを含む。当業界の平均的技術者で
あれば、細胞増殖、分化、生存および活性化の検出に適したバイオアッセイおよ
び生化学検定については熟知しているはずである。
【００５９】 別の好ましい態様において、本発明は、成長因子受容体に対するアゴニスト抗
体の同定方法であって、成長因子受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で
動物を免疫化することにより、表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発
現する複数の免疫細胞を生成し、抗体のＦａｂフラグメントをコードする核酸配
列を含む、複数の免疫細胞からのライブラリーを作成し、ライブラリーからの核
酸配列をファージミドベクターへクローン化することにより、Ｆａｂフラグメン
トをファージミド表面にディスプレーさせ、ファージミドにディスプレーされた
Ｆａｂフラグメントを標的細胞の細胞表面分子への結合についてふるい分けし、
細胞表面分子と結合するＦａｂフラグメントを２量体化し、そして２量体化Ｆａ
ｂフラグメントをスクリーニングすることにより、成長因子受容体に関するアゴ
ニスト抗体であるものを同定する段階を含む方法を特徴とする。
【００６０】 「Ｆａｂフラグメント」とは、重鎖可変領域および軽鎖可変領域が別々のポリ
ペプチドに含まれている抗体のフラグメントを意味する。ポリペプチドは、少な
くとも１つのジスルフィド結合により互いに共有結合されている。存在する不変
領域は、天然または異なる種類に由来し得、ハイブリッドまたはキメラＦａｂと
しても知られている。
【００６１】 Ｆａｂフラグメントは一般に単量体であるが、ふるい分けは先に記載したよう
に標的細胞を用いて行われる。
【００６２】 「２量体化（する）」とは、複数の成長因子受容体への結合が行われ得るよう
に抗体フラグメントに含まれる２つの抗体結合ドメインの会合を誘起することを
意味する。２量体化が達成され得る一法は、個々の抗体フラグメントを２量体化
ドメイン、例えばｊｕｎ（コステルニー,S.A.、コール,M.S.およびツソ,J.Y.、J
.Immunol.１４８：１５４７−１５５３、１９９２、デクルイフ,J.およびログテ
ンバーグ,T.、J. Biol. Chem. ２７１：７６３０−７６３４、１９９６）に連係
させることによるものであり、２つのタンパク質フラグメントはこれらのドメイ
ンの相互作用を通じて安定して会合し得る。
【００６３】 「機能検定におけるスクリーニング」は、ｓｃＦｖフラグメントについて先に
記載した通り、標的細胞を用いて行われる。標的細胞に結合する単量体Ｆａｂ分
子は、２量体化され、２量体としてスクリーニングされる。これらは、表面ディ
スプレーされ得るが、好ましくは可溶性分子としてスクリーニングされる。
【００６４】 別の好ましい態様において、本発明は、成長因子受容体に対するアゴニスト抗
体の同定方法であって、成長因子受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で
動物を免疫化することにより、表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発
現する複数の免疫細胞を生成し、抗体のＦａｂフラグメントをコードする核酸配
列を含む、複数の免疫細胞からのライブラリーを作成し、ライブラリーからの核
酸配列を表面ディスプレーベクターへクローン化することにより、Ｆａｂフラグ
メントを表面ディスプレーし、表面ディスプレーＦａｂフラグメントを標的細胞
の細胞表面分子への結合についてふるい分けし、細胞表面分子に結合するＦａｂ
フラグメントを２量体化し、２量体化Ｆａｂフラグメントを機能検定でスクリー
ニングすることにより、成長因子受容体に関するアゴニスト抗体であるものを同
定する段階を含む方法を特徴とする。
【００６５】 さらに好ましい態様において、表面ディスプレーベクターはバクテリオファー
ジベクターであり、バクテリオファージの表面で抗体を発現させ得る。
【００６６】 アゴニスト抗体同定方法の他の好ましい態様において、動物はウサギまたはニ
ワトリである。幹／始原細胞は、未選別ヒト骨髄細胞、ヒト骨髄を起点とするヒ
ト末梢血細胞、選別ヒト骨髄細胞、未選別ネズミ骨髄細胞、選別ネズミ骨髄細胞
、胎児肝細胞、卵黄嚢細胞、ネズミＡＧＭ領域から誘導された細胞、ヒトまたは
ネズミ胎生期癌細胞または系統、ヒトまたはマウス複能性奇形癌細胞または系統
、ネズミ複能性胚性細胞、ヒト胚性幹（ＥＳ）セルライン、神経起源の細胞、器
官または組織再生に関与する細胞、ＲＢＣ溶解を被ったヒト骨髄細胞、ヒト骨髄
単核細胞、ヒト骨髄ＣＤ３４+細胞、ＦＤＣＰ−混合ネズミ造血幹セルライン、
Ｂ６ＳＵＴＡネズミ造血幹セルライン、Ｐ１９奇形癌細胞、およびＮＴｅｒａ−
２複能性胎生期癌細胞から成る群から選択される。
【００６７】 好ましい動物の選択は２つの面を有する。免疫原に関する種の差異により免疫
応答が発生され得る場合には、ウサギは抗体生産に関して有効に常用され、一般
には第一の選択肢である。しかしながら、ニワトリは、抗体が誘導されるさらに
進化した明確な環境を提供する。ウサギおよびマウスはヒト抗原によっては免疫
応答を発しない場合もあるため、これは重要な考察である。しかしながら、当業
界の技術者であれば、使用に適した他の動物についても熟知しているはずである
。
【００６８】 本発明における有用な細胞には、動物から単離された一次細胞、一次細胞か系
ビトロ培養された細胞および培養で連続的に増殖され得る確立されたセルライン
がある。
【００６９】 「未選別ヒト骨髄細胞」とは、全ての他の細胞系が存在するように、最小限の
操作が加えられたヒト骨髄吸引液、例えば赤血球を溶解し、遠心分離により血小
板を除去すべく処理された吸引液の標本を意味する。
【００７０】 「ヒト骨髄を起点とするヒト末梢血細胞」とは、末梢血中で循環している細胞
、例えば血流中へ放出され、骨髄に起点を有した単核細胞またはＣＤ３４+細胞
を包含する。
【００７１】 「選別ヒト骨髄細胞」とは、細胞表面マーカーまたは細胞決定因子を使用する
ことにより、細胞の混合物を種々の集団に分離する分離プロセスが行われたヒト
骨髄細胞を包含する。選別は、ＦＡＣＳ（蛍光活性化細胞選択装置）または抗体
【００７２】 カクテル、マイクロビーズおよび磁石を用いる磁気分離法によるものであり得る
。選別は、興味の対象である細胞に関する正の選択（例、ＣＤ３４+細胞、α−
ＣＤ３４抗体で選択することにより、ＣＤ３４抗原を発現する細胞が分離される
）または望ましくない細胞が集団から除去される負の選択（例、ＣＤ３８抗体の
使用により所定の集団からＣＤ３８+細胞が除去される）であり得る。
【００７３】 未選別および選別ネズミ骨髄細胞については、ヒト細胞に関する記載と同じで
あるが、ただし、関連のあるネズミ表面抗原が適用される。
【００７４】 「胎児肝細胞」とは、卵黄嚢の血島から胎児肝臓へ移動した細胞を包含し、そ
れらは胎児性赤血球、マクロファージおよび幹／始原細胞を含む造血細胞へ成長
する。それらは、ジョーダン,C.T.、マッカーン,J.P.、レミシュカ,I.R.、Cell
６１：９５３−９６３（１９９０）に記載された要領で得られる。さらに、特異
抗体ＡＡ４.１を用いることにより、多能性幹／始原細胞を含む胎児肝組織の分
集団が濃化され得る（ジョーダン,C.T.、マッカーン,J.P.、レミシュカ,I.R.、C
ell ６１：９５３−９６３、１９９０）。上記細胞は、表面マーカーとしてＣＤ
３４およびＡＣ１３３を有する。
【００７５】 「卵黄嚢細胞」とは、発達中の生物における最初の造血細胞の起源である細胞
を意味する。卵黄嚢の胚体外組織内細胞は、卵黄嚢の血島から胎児肝臓へ移動し
、そこで胎児性赤血球、マクロファージ、幹細胞および始原細胞を含む造血細胞
の大集団を形成する。
【００７６】 「ヒトまたはネズミ胎生期癌細胞または系統」とは、奇形癌から誘導され得る
かまたはインビトロ培養され得る正常胚の直接培養による複能性細胞であって、
複能性であり、様々な誘導剤の存在下で分化誘導され得る細胞を包含する。
【００７７】 「ヒトまたはマウス複能性奇形癌細胞または系統」とは、奇形癌から誘導され
る移植可能な癌細胞を包含し、分裂し続け、さらに多くの分化組織を生成してい
る未分化幹細胞と混合された、多様な分化組織を含む細胞の無秩序な集塊である
。奇形癌細胞は、永久セルラインとして培養中で増殖され得、適当な培地におい
てそれらは分化せず無期限に増殖し続ける。しかしながら、これらの細胞は多能
性であり、そこでは多系統分化が誘導され得る。分化誘導剤、例えばレチノイン
酸を加えることにより培地が変えられる場合、または細胞を凝集させ得る場合、
様々な見かけ上正常な特化細胞型への分化が誘発され得る。
【００７８】 「ネズミ複能性胚性細胞」とは、ネズミ未分化胚芽細胞から誘導された細胞で
あり、未分化胚芽細胞へ注入されると、細胞は生殖系列をコロニー化し、マウス
を再構成し得る。
【００７９】 「ヒト胚性幹（ＥＳ）セルライン」とは、全能性であり、インビトロ増殖し得
る初期哺乳類胚から誘導されるセルラインを意味する（トムソン,J.A.、イツコ
ヴィッツ−エルドー,J.、シャピロ,S.S.、ワクニッツ,M.A.、スウィエルギエル,
J.J.、マーシャル,V.S.、ジョーンズ,J.M.、Science ２８２：１１４５−１１４
７、１９９８、ボングソ,A.、C.Y.フォング、S.C.NgおよびS.ラトナム、Hum. Re
prod. ９：２１１０、１９９４）。
【００８０】 「ネズミＡＧＭから誘導された細胞」とは、ネズミ胚形成中に高レベルの造血
幹／始原細胞を含む哺乳類胚において背側大動脈、性腺および中腎を含む領域か
ら誘導された細胞を意味する（メドヴィンスキー,A.L.、サモイリナ,N.L.、ムラ
ー,A.M.、ズィエルザック,E.A.、Nature ３６４：６４−６７、１９９３、メド
ヴィンスキー,A.L.、ガン,O.I.、セメノヴァ,M.L.、サモイリナ,N.L. Blood ８
７：５５７−５６６、１９９６）。
【００８１】 「器官または組織再生に関与する細胞」とは、二重分裂する細胞、例えば腎臓
細胞、血管の内層を形成する内皮細胞、および肝細胞（ミチャロポウロス,G.K.
およびデフランセス,M.C.、Science ２７６：６０−６６、１９９７）、および
幹細胞手段により再生される他の細胞集団、例えば表皮、骨、骨格筋および神経
組織（マッケイ,R.、Science ２７６：６６−７１、１９９７）を包含する。
【００８２】 「造血細胞」とは、血液形成細胞を意味する。 「神経起源の細胞」とは、外胚葉から生じ、神経管または神経堤へ発育し、究
極的には中枢神経系および末梢神経系を形成する細胞を意味する。 「ＲＢＣ溶解を被ったヒト骨髄細胞」とは、ＲＢＣ溶解および洗浄を通じて赤
血球（ＲＢＣ）および血小板の大多数が除去された全骨髄吸引液を意味する。こ
の集団は、全ての他の造血系統を含むと予測される。
【００８３】 「ヒト骨（髄）単核細胞」とは、単一核を含む循環血液および骨髄中の細胞、
例えば単核球、リンパ球およびＮＫ細胞を包含する。これらの細胞は、１.０７
７ｇ／ｍの密度に調節されたポリスクロースおよびナトリウムジアトリゾエート
から成るヒストパーク１０７７溶液（シグマ・ディアグノスティックス、セント
ルイス、ミズーリ）または類似製品に残存する赤血球、血小板および顆粒球から
分離され得る。
【００８４】 「ヒト骨髄ＣＤ３４+細胞」とは、細胞表面でＣＤ３４表面マーカーを発現す
るヒト骨髄から誘導された幹／始原細胞の集合体を意味する。典型的には、これ
らの細胞は、ＣＤ３４分子に特異的な抗体を用いる磁気またはＦＡＣ選別法を用
いて分離される。
【００８５】 「ＦＤＣＰ−混合ネズミ造血幹セルライン」とは、モロニーネズミ白血病ウイ
ルスおよびラウス肉腫ウイルスのｓｒｃ癌遺伝子の組換え体に感染させた長期ネ
ズミ骨髄培養物からクローン化され、分離されたネズミセルラインを意味する（
スプーンサー, E.、ヘイワース, C.M.、ダン,A.、デキスター, T.M.、Different
iation ３１：１１１−１１８、１９８６）。これらのセルラインは、造血幹細
胞の特徴の多くを有する。
【００８６】 「Ｂ６ＳＵＴＡネズミ造血幹セルライン」とは、連続マウス骨髄培養物から除
去された非接着性細胞集団から確立された因子依存的造血セルラインを意味する
（グリーンバーガー,J.S.、サカキーニー,M.A.、ハンフリーズ,R.K.、イーブズ,
C.J.およびエクナー,R.J.、Proc. Natl. Acad. Sci. USA ８０：２９３１−２９
３５、１９８３）。
【００８７】 「Ｐ１９奇形癌細胞」とは、マクバーニーらにより開始されたセルライン（マ
クバーニー,M.W.およびロジャーズ,B.J.、Developmental Biology ８９：５０３
−５０８、１９８２）、すなわちＣ３Ｈ／Ｈｅ系統マウスで誘導された胎生期癌
に由来する奇形癌セルラインを意味する。
【００８８】 「ＮＴｅｒａ−２複能性胎生期癌細胞」とは、Ｔｅｒａ−２細胞のヌードマウ
ス異種移植腫瘍から確立されたＮＴｅｒａ−２細胞の単一細胞クローンから誘導
された複能性ヒト胎生期癌セルラインを意味する（アンドリューズ,P.W.、ダム
ジャノフ,I.、サイモン,D.、バンティング,G.S.、カーリン,C.、ドラコポリ,N.C
.、フォフ,J.、Laboratory Investigation ５０：１４７−１６２、１９８４）
。Ｔｅｒａ−２細胞は、精巣の一次胎生期癌を患う男性からの肺転移から分離さ
れた。
【００８９】 別の好ましい態様において、本発明は、成長因子受容体に対するアゴニスト抗
体の同定方法であって、成長因子受容体を含む表面分子を有するヒト骨髄細胞に
より動物を免疫化し、動物から一次および／または二次リンパ様器官を採取し、
器官からＲＮＡを分離し、抗体のｓｃＦｖフラグメントをコードする核酸配列を
含む、ＲＮＡからのライブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列をファ
ージミドベクターへクローン化することにより、ｓｃＦｖフラグメントをファー
ジミド表面にディスプレーさせ、標的細胞における細胞表面分子への結合につい
てファージミドにディスプレーされたｓｃＦｖフラグメントをふるい分けし、機
能検定で細胞表面分子と結合するｓｃＦｖフラグメントをスクリーニングするこ
とにより、成長因子受容体に関するアゴニスト抗体であるものを同定する段階を
含む方法を特徴とする。
【００９０】 「採取する（こと）」とは、動物を殺し、一次および／または二次リンパ様器
官、例えば血液、脾臓および骨髄を集めることを意味する。 「一次および二次リンパ様器官」とは、血液、骨髄、脾臓およびリンパ節とい
った器官を包含するが、これらに限定されるわけではない。
【００９１】 「ＲＮＡを分離する（こと）」とは、リボヌクレアーゼ活性を阻害する薬剤、
例えばフェノールおよびグアニジンチオシアネート（モレキュラー・リサーチ・
センター、インコーポレイテッド、シンシナティ、オハイオ）の存在下で細胞を
溶解し、遠心分離または当業界の実践者によく知られている他の方法によりＤＮ
Ａおよびタンパク質からＲＮＡを分離することを意味する。
【００９２】 さらに好ましい態様において、幹／始原細胞は、未選別ヒト骨髄細胞、ヒト骨
髄を起点とするヒト末梢血細胞、選別ヒト骨髄細胞、未選別ネズミ骨髄細胞、選
別ネズミ骨髄細胞、胎児肝細胞、卵黄嚢細胞、ネズミＡＧＭ領域から誘導された
細胞、ヒトまたはネズミ胎生期癌細胞または系統、ヒトまたはマウス複能性奇形
癌細胞または系統、ネズミ複能性胚性細胞、ヒト胚性幹（ＥＳ）セルライン、神
経起源の細胞、器官または組織再生に関与する細胞、ＲＢＣ溶解を被ったヒト骨
髄細胞、ヒト骨髄単核細胞、ヒト骨髄ＣＤ３４+細胞、ＦＤＣＰ−混合ネズミ造
血幹セルライン、Ｂ６ＳＵＴＡネズミ造血幹セルライン、Ｐ１９奇形癌細胞およ
びＮＴｅｒａ−２複能性胎生期癌細胞から成る群から選択される。
【００９３】 別の好ましい態様において、本発明は、成長因子受容体に対するアゴニスト抗
体の同定方法であって、成長因子受容体を含む表面分子を有するヒト骨髄細胞に
より動物を免疫化し、動物から一次または二次リンパ様器官を採取し、器官から
ＲＮＡを分離し、抗体のＦａｂフラグメントをコードする核酸配列を含む、ＲＮ
Ａからのライブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列をファージミドベ
クターへクローン化することによりＦａｂフラグメントをファージミド表面にデ
ィスプレーさせ、ファージミドにディスプレーされたＦａｂフラグメントを標的
細胞の細胞表面分子への結合についてふるい分けし、細胞表面分子と結合するＦ
ａｂフラグメントを２量体化し、機能検定で２量体化Ｆａｂフラグメントをスク
リーニングすることにより、成長因子受容体に関するアゴニスト抗体であるもの
を同定する段階を含む方法を特徴とする。
【００９４】 さらに好ましい態様において、幹／始原細胞は、未選別ヒト骨髄細胞、ヒト骨
髄を起点とするヒト末梢血細胞、選別ヒト骨髄細胞、未選別ネズミ骨髄細胞、選
別ネズミ骨髄細胞、胎児肝細胞、卵黄嚢細胞、ネズミＡＧＭ領域から誘導された
細胞、ヒトまたはネズミ胎生期癌細胞または系統、ヒトまたはマウス複能性奇形
癌細胞または系統、ネズミ複能性胚性細胞、ヒト胚性幹（ＥＳ）セルライン、神
経起源の細胞、器官または組織再生に関与する細胞、ＲＢＣ溶解を被ったヒト骨
髄細胞、ヒト骨髄単核細胞、ヒト骨髄ＣＤ３４+細胞、ＦＤＣＰ混合ネズミ造血
幹セルライン、Ｂ６ＳＵＴＡネズミ造血幹セルライン、Ｐ１９奇形癌細胞および
ＮＴｅｒａ−２複能性胎生期癌細胞から成る群から選択される。
【００９５】 本発明はまた、成長因子受容体に対するアゴニスト抗体の製造方法であって、
成長因子受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することに
より、表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を
生成し、抗体をコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞からのライブラリー
を作成し、ライブラリーからの核酸配列を表面ディスプレーベクターへクローン
化することにより、抗体を表面ディスプレーし、標的細胞を用いて表面ディスプ
レーされている抗体をスクリーニングすることにより、成長因子受容体細胞に関
するアゴニスト抗体を同定し、アゴニスト抗体を合成する段階を含む方法を特徴
とする。
【００９６】 「アゴニスト抗体を合成する（こと）」とは、アゴニスト抗体をコードする核
酸を抗体細胞へ導入することにより、抗体を合成し、それが分離され得るように
好ましくは細胞外培地中へそれを分泌させることを意味する。異種タンパク質の
高レベル発現は、エシェリキア・コリ（E.coli）、サッカロマイシス・セレヴィ
シアエ（Saccharomyces cerevisiae）、ピチア・パストリス（Pichia pastoris
）、哺乳類細胞、植物、および昆虫細胞を含む多くの異なる系で達成されている
。遺伝子操作が行われた抗体フラグメントは、細菌（プラックサン,A.、Nature
３４７：４９７−４９８、１９９０）、酵母（カールソン,J.R.およびヴァイス
マン,I.L.、Mol. Cell. Biol. ８：２６４７−２６５０、１９８８）、植物（ヒ
アット,A.、カファーキー,R.、ボウディッシュ,K.、Nature ３４２：７６−７８
、１９８９）および哺乳類細胞を含むこれらの生物の多くで発現されている。分
子標識、例えばＨＩＳ６の組込みにより、培地または細胞ライゼートからのニッ
ケル−キレートクロマトグラフィーによる迅速かつ効果的な精製が行われる（ク
ロイハー,M.、ラフィオーニ,S.、スティーレ,R.E.、Biochim. Biophys. Acta.
１２５０：２９−３４、１９９５、バークス,E.A.およびアイヴァーソン,B.L.、
Biotechnol. Prog. １１：１１２−１１４、１９９５）。当業界の実践者であれ
ば、異種タンパク質を合成するためのこれらおよび他の方法については熟知して
おり、抗体合成にそれらの方法を容易に適用でき得る。
【００９７】 別の好ましい態様において、本発明は、成長因子受容体に対するアゴニスト抗
体の製造方法であって、成長因子受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で
動物を免疫化することにより、表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発
現する複数の免疫細胞を生成し、抗体をコードする核酸配列を含む、複数の免疫
細胞からのライブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列をウイルス性デ
ィスプレーベクターへクローン化することにより、抗体をウイルス表面にディス
プレーさせ、標的細胞を用いて成長因子受容体に対するアゴニスト抗体である抗
体についてウイルス表面にディスプレーされた抗体をスクリーニングし、アゴニ
スト抗体を合成する段階を含む方法を特徴とする。
【００９８】 さらに好ましい態様において、ウイルス性ディスプレーベクターは、バクテリ
オファージベクターまたはファージミドベクターである。
【００９９】 別の好ましい態様において、本発明は、成長因子受容体に対するアゴニスト抗
体の製造方法であって、成長因子受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で
動物を免疫化することにより、表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発
現する複数の免疫細胞を生成し、抗体のｓｃＦｖフラグメントをコードする核酸
配列を含む、複数の免疫細胞からのライブラリーを作成し、ライブラリーからの
核酸配列をファージミドへクローン化することにより、ｓｃＦｖフラグメントは
ファージミド表面にディスプレーされ、標的細胞の細胞表面分子への結合につい
てファージミドにディスプレーされたｓｃＦｖフラグメントをふるい分けし、機
能検定で細胞表面分子に結合するｓｃＦｖフラグメントをスクリーニングするこ
とにより、成長因子受容体に関するアゴニスト抗体であるものを同定し、アゴニ
スト抗体を合成する段階を含む方法を特徴とする。
【０１００】 別の好ましい態様において、本発明は、成長因子受容体に対するアゴニスト抗
体の製造方法であって、成長因子受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で
動物を免疫化することにより、表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発
現する複数の免疫細胞を生成し、抗体のＦａｂフラグメントをコードする核酸配
列を含む、複数の免疫細胞からのライブラリーを作成し、ライブラリーからの核
酸配列をファージミドベクターへクローン化することにより、Ｆａｂフラグメン
トをファージミド表面にディスプレーさせ、標的細胞の細胞表面分子への結合に
ついてファージミドにディスプレーされたＦａｂフラグメントをふるい分けし、
細胞表面分子と結合するＦａｂフラグメントを２量体化し、２量体化Ｆａｂフラ
グメントを機能検定でスクリーニングすることにより、成長因子受容体に関する
アゴニスト抗体であるものを同定し、アゴニスト抗体を合成する段階を含む方法
を特徴とする。
【０１０１】 さらに好ましい態様において、成長因子受容体に対するアゴニスト抗体の同定
および製造方法では、ライブラリーは組み合わせライブラリーである。標的細胞
は、未選別ヒト骨髄細胞、ヒト骨髄を起点とするヒト末梢血細胞、選別ヒト骨髄
細胞、未選別ネズミ骨髄細胞、選別ネズミ骨髄細胞、胎児肝細胞、卵黄嚢細胞、
ネズミＡＧＭ領域から誘導された細胞、ヒトまたはネズミ胎生期癌細胞または系
統、ヒトまたはマウス複能性奇形癌細胞または系統、ネズミ複能性胚性細胞、ヒ
ト胚性幹（ＥＳ）セルライン、神経起源の細胞、器官または組織再生に関与する
細胞、ＲＢＣ溶解を被ったヒト骨髄細胞、ヒト骨髄単核細胞、ヒト骨髄ＣＤ３４
+細胞、ＦＤＣＰ混合ネズミ造血幹セルライン、Ｂ６ＳＵＴＡネズミ造血幹セル
ライン、Ｐ１９奇形癌細胞およびＮＴｅｒａ−２複能性胎生期癌細胞から成る群
から選択される。ｓｃＦｖフラグメントのスクリーニングは、標的細胞の増殖、
分化または活性化に関するバイオアッセイにより行われる。ｓｃＦｖフラグメン
トのスクリーニングは、下流遺伝子の転写における変化または受容体の燐酸化に
関する検定により行われる。２量体化Ｆａｂフラグメントのスクリーニングは、
標的細胞の増殖、分化または活性化に関するバイオアッセイにより行われる。２
量体化Ｆａｂフラグメントのスクリーニングは、下流遺伝子の転写における変化
または受容体のリン酸化に関する検定により行われる。
【０１０２】 「組み合わせライブラリー」とは、生物の免疫レパートリーを代表する核酸分
子の集合体を意味するもので、転位した重および軽鎖Ｖ遺伝子がランダムに合わ
されて、多くの人工的Ｖ遺伝子の組み合わせが作成されている。これにより、ス
クリーニングされ得る抗体分子の数は顕著に増大する。組み合わせライブラリー
は、“Phage Display of Peptides and Proteins”編集：ブライアンＫ.ケイ、
ジル・ウィンターおよびジョン・マカファーティー、６章：“Construction and
Screening of Antibody Display Libraries”、ジョン・マカファーティーおよ
びケビンＳ．ジョンソン、アカデミック・プレス、サンディエゴ、カリフォルニ
ア（１９９６）に記載された要領で構築され得る。本発明の組み合わせライブラ
リーは、免疫化に使用される特定細胞型の表面分子に指向された抗体またはその
フラグメントをコードする核酸配列を含む生物の免疫レパートリーをコードする
核酸配列の集合体を表わす。細胞表面分子に指向したものを含め、人工的Ｖ遺伝
子組み合わせが製造されるので、重および軽鎖Ｖ遺伝子の転位は、これらの表面
分子に指向された抗体分子の数を単に増大させるのに役立つ。核酸のこの組織的
集合体により、免疫化に使用される細胞型の細胞表面にディスプレーされた、細
胞の増殖、分化、活性化または生存の促進または抑制に導くシグナル伝達カスケ
ードに連係された受容体、例えば成長因子受容体に特異結合する抗体分子または
そのフラグメントの分離を目的とする用途が増加している。
【０１０３】 また、「増殖または分化に関するバイオアッセイ」は、細胞の生存および活性
化も包含するものとする。例えば、上記検定には、Ｂｒｄｕ取り込み、トリチウ
ム化チミジン取り込み、細胞酵素レベル、例えばミトコンドリアデヒドロゲナー
ゼの変化、可視的コロニー形成、ｐＨ変化、Ｃａ++濃度変化および遺伝子転写の
変化の測定があるが、これらに限定はされない。
【０１０４】 「下流遺伝子の転写における変化について検定する（こと）」とは、シグナル
伝達カスケードの一部として調節されるいずれかの遺伝子、例えば核転写因子、
例えばｃ−ｍｙｃ、ｃ−ｊｕｎ、ＮＦ−κβおよびｃ−ｆｏｓの転写の変化につ
いて検定することを意味する。例えば、短期間（例、２時間）候補抗体に飢餓（
血清および成長因子欠乏）標的細胞を暴露し、細胞からＲＮＡを分離する。転写
における変化は、１つまたはそれ以上の下流遺伝子に特異的なプライマーを用い
てＲＴ−ＰＣＲを含む方法により検出（定量）され得、次いでアガロースゲル電
気泳動または特異遺伝子用のプローブを結合させた珪素ウェーハーへのＲＮＡの
ハイブリダイゼーションが行われる。上記チップを用いることにより、多くの遺
伝子が同時に検定され得る。
【０１０５】 「受容体のリン酸化について検定する（こと）」とは、抗体による受容体の免
疫沈降が行われ、次いでγ−ＡＴＰを提供し、受容体のリン酸化についてＳＤＳ
−ＰＡＧＥまたはハイスループットスクリーンによりリン酸化産物を調べること
である。
【０１０６】 本発明はまた、成長因子受容体の同定方法であって、受容体に対するアゴニス
ト抗体を生成し、アゴニスト抗体を用いて受容体を同定する段階を含む方法を特
徴とする。
【０１０７】 一旦アゴニスト抗体が同定されると、それを用いることにより、それが結合し
ている受容体が同定され得る。当業界の平均的技術者であれば、受容体の同定に
有用である、例えば免疫沈降および／または免疫アフィニティー精製（スプリン
ガー,T.A.（１９９７）、“Isolation of Proteins Using Antibodies”、Curre
nt Protocols in Immunology 中、（J.E.コリガン、A.M.クルイスビーク、D.H.
マルグリーズ、E.M.シェヴァッチ、W.ストローバー編）８２１−８２９頁、ジョ
ン・ウィリー・アンド・サンズ、ニューヨーク）といった技術については熟知し
ているはずである。
【０１０８】 別の好ましい態様において、本発明は、成長因子受容体の同定方法であって、
成長因子受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することに
より、表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を
生成し、抗体のｓｃＦｖフラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免疫
細胞からのライブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列を表面ディスプ
レーベクターへクローン化することにより、ｓｃＦｖフラグメントは表面ディス
プレーされ、標的細胞を用いて表面ディスプレーｓｃＦｖフラグメントをスクリ
ーニングすることにより、成長因子受容体に関するアゴニスト抗体であるものを
同定し、アゴニスト抗体を用いることにより、受容体を同定する段階を含む方法
を特徴とする。
【０１０９】 さらに好ましい態様において、表面ディスプレーベクターは、バクテリオファ
ージベクターであり、表面ディスプレーはバクテリオファージの表面におけるも
のである。
【０１１０】 別の好ましい態様において、本発明は、成長因子受容体の同定方法であって、
成長因子受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することに
より、表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を
生成し、抗体のｓｃＦｖフラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免疫
細胞からのライブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列をファージミド
ベクターへクローン化することにより、ｓｃＦｖフラグメントがファージミドの
表面にディスプレーされ、ファージミドにディスプレーされたｓｃＦｖフラグメ
ントを標的細胞の細胞表面分子への結合についてふるい分けし、機能検定で細胞
表面分子と結合する上記ｓｃＦｖフラグメントをスクリーニングすることにより
、成長因子受容体に関するアゴニスト抗体であるものを同定し、アゴニスト抗体
を用いて受容体を同定する段階を含む方法を特徴とする。
【０１１１】 別の好ましい態様において、本発明は、成長因子受容体の同定方法であって、
成長因子受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することに
より、表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を
生成し、抗体のｓｃＦｖフラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免疫
細胞からのライブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列を表面ディスプ
レーベクターへクローン化することにより、ｓｃＦｖフラグメントを表面ディス
プレーし、表面ディスプレーされたｓｃＦｖフラグメントを標的細胞の細胞表面
分子への結合についてふるい分けし、機能検定で細胞表面分子と結合する上記ｓ
ｃＦｖフラグメントをスクリーニングすることにより、成長因子受容体に関する
アゴニスト抗体であるものを同定し、アゴニスト抗体を用いて受容体を同定する
段階を含む方法を特徴とする。
【０１１２】 別の好ましい態様において、本発明は、成長因子受容体の同定方法であって、
成長因子受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することに
より、表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を
生成し、抗体のＦａｂフラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免疫細
胞からのライブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列を細胞表面ディス
プレーベクターへクローン化することにより、Ｆａｂフラグメントが表面ディス
プレーされ、表面ディスプレーされたＦａｂフラグメントを標的細胞の細胞表面
分子への結合についてふるい分けし、細胞表面分子と結合するＦａｂフラグメン
トを２量体化し、機能検定で２量体化Ｆａｂフラグメントをスクリーニングする
ことにより、成長因子受容体に対するアゴニスト抗体であるものを同定し、アゴ
ニスト抗体を用いて受容体を同定する段階を含む方法を特徴とする。
【０１１３】 さらに好ましい態様において、表面ディスプレーベクターは、バクテリオファ
ージベクターであり、表面ディスプレーはバクテリオファージ表面におけるもの
である。
【０１１４】 別の好ましい態様において、本発明は、成長因子受容体の同定方法であって、
成長因子受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することに
より、表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を
生成し、抗体のＦａｂフラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免疫細
胞からのライブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列をファージミドベ
クターへクローン化することにより、Ｆａｂフラグメントがファージミドの表面
にディスプレーされ、標的細胞の細胞表面分子への結合についてファージミドに
ディスプレーされたＦａｂフラグメントをふるい分けし、細胞表面分子に結合す
るＦａｂフラグメントを２量体化し、２量体化Ｆａｂフラグメントを機能検定で
スクリーニングすることにより、成長因子受容体に対するアゴニスト抗体である
ものを同定し、アゴニスト抗体を用いて受容体を同定する段階を含む方法を特徴
とする。
【０１１５】 さらに好ましい態様では、成長因子受容体は、造血成長因子受容体である。 「造血成長因子受容体」とは、幹／始原または成熟血液細胞の増殖、分化、細
胞生存または機能活性化に関与する造血起源の細胞で発現された受容体を包含す
る。
【０１１６】 さらに本発明は、成長因子の同定方法であって、成長因子受容体に対してアゴ
ニスト抗体を産生させ、このアゴニスト抗体を用いて受容体を同定し、この受容
体を用いて成長因子を同定する段階を含む方法を特徴とする。
【０１１７】 天然成長因子が成長因子受容体を用いることにより同定され得る方法が若干存
在する。例えば、発現用の誘導性プロモーター下でクローン化受容体により細胞
を形質転換することは可能であり、その後バイオアッセイにおける効果について
ｃＤＮＡプールのスクリーニングが行われる。例えば、サイトセンサー・マイク
ロフィジオメーター・システム（モレキュラー・デヴァイシーズ、サニーヴェイ
ル、カリフォルニア）、すなわちシグナル伝達経路に関する予備知識が無い場合
に受容体伝達応答を監視するバイオセンサーの使用がある。別法として、キメラ
受容体を製造することにより、十分に特定されたバイオアッセイを設定すること
が可能であり、例えば特異的リポーター遺伝子発現の増加がある。例えば、新規
受容体の細胞外ドメインは、十分に特性確認された受容体、特に下流シグナル発
生事象が特定されたものの細胞内ドメインに融合され得る。次いで、ｃＤＮＡプ
ールは、リポーター遺伝子発現に関するバイオアッセイでスクリーニングされ得
る。当業界の平均的技術者であれば、これらおよび他の有用な技術については熟
知しているはずである。
【０１１８】 別の好ましい態様において、本発明は、成長因子の同定方法であって、成長因
子受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、
表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を生成し
、抗体のｓｃＦｖフラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞か
らのライブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列を表面ディスプレーベ
クターへクローン化することによりｓｃＦｖフラグメントが表面ディスプレーさ
れ、表面ディスプレーされたｓｃＦｖフラグメントをスクリーニングすることに
より、成長因子受容体に関するアゴニスト抗体であるものを同定し、このアゴニ
スト抗体を用いて受容体を同定し、この受容体を用いて成長因子を同定する段階
を含む方法を特徴とする。
【０１１９】 さらに好ましい態様において、表面ディスプレーベクターは、バクテリオファ
ージベクターであり、表面ディスプレーはバクテリオファージ表面上である。
【０１２０】 別の好ましい態様において、本発明は、成長因子の同定方法であって、成長因
子受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、
表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を生成し
、抗体のｓｃＦｖフラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞か
らのライブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列をファージミドベクタ
ーへクローン化することにより、ｓｃＦｖフラグメントがファージミド表面にデ
ィスプレーされ、ファージミドにディスプレーされたｓｃＦｖフラグメントを標
的細胞の細胞表面分子への結合についてふるい分けし、細胞表面分子に結合する
ｓｃＦｖフラグメントを機能検定でスクリーニングすることにより、成長因子受
容体に関するアゴニスト抗体であるものを同定し、アゴニスト抗体を用いて受容
体を同定し、受容体を用いて成長因子を同定する段階を含む方法を特徴とする。
【０１２１】 別の好ましい態様において、本発明は、成長因子の同定方法であって、成長因
子受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、
表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を生成し
、抗体のＦａｂフラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞から
のライブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列を表面ディスプレーベク
ターへクローン化することにより、Ｆａｂフラグメントが表面ディスプレーされ
、表面ディスプレーされたＦａｂフラグメントを標的細胞の細胞表面分子への結
合についてふるい分けし、細胞表面分子と結合するＦａｂフラグメントを２量体
化し、２量体化Ｆａｂフラグメントを機能検定でスクリーニングすることにより
、成長因子受容体に対するアゴニスト抗体であるものを同定し、アゴニスト抗体
を用いて受容体を同定し、受容体を用いて成長因子を同定する段階を含む方法を
特徴とする。
【０１２２】 さらに好ましい態様において、表面ディスプレーベクターは、バクテリオファ
ージベクターであり、表面ディスプレーはバクテリオファージ表面上である。
【０１２３】 別の好ましい態様において、本発明は、成長因子の同定方法であって、成長因
子受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、
表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を生成し
、抗体のＦａｂフラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞から
のライブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列をファージミドベクター
へクローン化することにより、Ｆａｂフラグメントがファージミド表面にディス
プレーされ、ファージミドにディスプレーされたＦａｂフラグメントを標的細胞
の細胞表面分子への結合についてふるい分けし、細胞表面分子に結合するＦａｂ
フラグメントを２量体化し、２量体化Ｆａｂフラグメントを機能検定でスクリー
ニングすることにより、成長因子受容体に関するアゴニスト抗体であるものを同
定し、アゴニスト抗体を用いて受容体を同定し、受容体を用いて成長因子を同定
する段階を含む方法を特徴とする。
【０１２４】 さらに好ましい態様において、成長因子は造血成長因子であり、成長因子は、
次の細胞型、すなわち未選別ヒト骨髄細胞、ヒト骨髄から生じるヒト末梢血細胞
、選別ヒト骨髄細胞、未選別ネズミ骨髄細胞、選別ネズミ骨髄細胞、胎児肝細胞
、卵黄嚢細胞、ネズミＡＧＭ領域から誘導された細胞、ヒトまたはネズミ胎生期
癌細胞または系統、ヒトまたはマウス複能性奇形癌細胞または系統、ネズミ複能
性胚性細胞、ヒト胚性幹（ＥＳ）セルライン、神経起源の細胞、器官または組織
再生に関与する細胞、ＲＢＣ溶解を被ったヒト骨髄細胞、ヒト骨髄単核細胞、ヒ
ト骨髄ＣＤ３４+細胞、ＦＤＣＰ混合ネズミ造血幹セルライン、Ｂ６ＳＵＴＡネ
ズミ造血幹セルライン、Ｐ１９奇形癌細胞、およびＮＴｅｒａ−２複能性胎生期
癌細胞の増殖、分化、活性化または生存に影響を及ぼす。
【０１２５】 本発明はまた、アゴニスト抗体のスクリーニング方法であって、抗体が指向さ
れる受容体を発現する標的細胞の存在下で抗体フラグメントを発現する細胞を成
長させ、抗体フラグメントをスクリーニングすることにより、アゴニスト抗体で
あるものを同定する段階を含む方法を特徴とする。
【０１２６】 「抗体フラグメントを発現する細胞」とは、宿主細胞に特異的なプロモーター
およびシグナル配列に連係された抗体フラグメントのクローン化コピーを担う原
核生物または真核生物細胞を包含し、貫膜２量体化ドメインを含み得る、細胞表
面抗体をディスプレーさせ得るか（レモン,M.A.、トルートライン,H.R.、アダム
ズ,P.D.、ブルンガー,A.T.、エンゲルマン,D.M.、Nat. Struct. Biol. １：１５
７−１６３、１９９４）、または抗体フラグメントの単量体および２量体を分泌
させ得る。
【０１２７】 「標的細胞の存在下で」とは、抗体またはフラグメントを発現する細胞および
抗体が結合する受容体を発現する細胞を共培養することを意味する。 スクリーニングには、抗体フラグメントが標的細胞の増殖、分化、活性化また
は生存を刺激するか否かを決定する他のバイオアッセイまたは生化学検定が含ま
れる。
【０１２８】 好ましい態様において、抗体フラグメントを発現する細胞は、細菌細胞、哺乳
類細胞または酵母である。 「細菌細胞」とは、全ての原核生物細胞、通常全ての遺伝子型のエシェリキア
・コリ（E.coli）または細胞表面ディスプレー分子を生産する細菌細胞を意味す
る。 「哺乳類細胞」とは、哺乳類由来の全ての細胞で、通常インビトロ成長能力を
もつクローン性である。
【０１２９】 「酵母」とは、表面ディスプレーまたは分泌される抗体分子を製造すべく遺伝
子操作が加えられたプラスミドまたは組込まれたＤＮＡの発現を可能にする酵母
細胞、典型的にはサッカロマイシス・セレヴィシアエ（Saccharomyces cerevisi
ae）、シゾサッカマイシス・ポンベ（Schitzosacchamyces pombe）、またはピチ
ア・パストリス（Pichia pastoris）を包含する。
【０１３０】 別の態様において、本発明は、幹／始原細胞で動物を免疫化することにより製
造された成長因子受容体に対するアゴニスト抗体を特徴とする。
【０１３１】 好ましい態様において、幹／始原細胞は、未選別ヒト骨髄細胞、ヒト骨髄を起
点とするヒト末梢血細胞、選別ヒト骨髄細胞、未選別ネズミ骨髄細胞、選別ネズ
ミ骨髄細胞、胎児肝細胞、卵黄嚢細胞、ネズミＡＧＭ領域から誘導された細胞、
ヒトまたはネズミ胎生期癌細胞または系統、ヒトまたはマウス複能性奇形癌細胞
または系統、ネズミ複能性胚性細胞、ヒト胚性幹（ＥＳ）セルライン、神経起源
の細胞、器官または組織再生に関与する細胞、ＲＢＣ溶解を被ったヒト骨髄細胞
、ヒト骨髄単核細胞、ヒト骨髄ＣＤ３４+細胞、ＦＤＣＰ混合ネズミ造血幹セル
ライン、Ｂ６ＳＵＴＡネズミ造血幹セルライン、Ｐ１９奇形癌細胞およびＮＴｅ
ｒａ−２複能性胎生期癌細胞から成る群から選択される。
【０１３２】 別の好ましい態様において、本発明は、本発明方法により製造された成長因子
受容体に対するアゴニスト抗体を特徴とする。
【０１３３】 本発明はまた、幹／始原細胞で動物を免疫化することにより生成された免疫細
胞から作成された組み合わせライブラリーを特徴とする。別の態様において、本
発明は、幹／始原細胞により免疫化された動物の免疫細胞からの核酸配列を含む
抗体分子またはそのフラグメントをコードする組み合わせライブラリーを特徴と
する。さらに別の態様において、本発明は、幹／始原細胞上の表面分子に指向し
た組み合わせ抗体フラグメントライブラリーを特徴とする。さらに別の態様にお
いて、本発明は、細胞増殖、分化、生存または活性化に関与する受容体を含む表
面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、表面分子の１つま
たはそれ以上の抗体またはその抗体フラグメントを発現する複数の免疫細胞を生
成し、抗体またはその抗体フラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免
疫細胞からのライブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列を表面ディス
プレーベクターへクローン化することにより、抗体を表面ディスプレーさせるこ
とにより作成された組み合わせライブラリーを特徴とする。好ましい態様におい
て、受容体は成長因子受容体である。
【０１３４】 さらに別の態様において、本発明は、細胞の増殖、分化、生存または活性化に
関与する受容体に対する抗体またはそのフラグメントをコードする組み合わせ抗
体ライブラリーの製造方法であって、受容体を含む表面分子を有する幹／始原細
胞で動物を免疫化することにより、表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体
または抗体フラグメントを発現する複数の免疫細胞を生成し、複数の免疫細胞か
ら、抗体フラグメントの可変および不変領域をコードする核酸配列を得、抗体フ
ラグメントの可変領域をコードする核酸配列をランダムに合わせることにより、
抗体フラグメントをコードする核酸配列の組み合わせライブラリーを製造し、ラ
イブラリーの核酸配列を表面ディスプレーベクターへクローン化することにより
、抗体フラグメントをディスプレーさせる段階を含む方法を特徴とする。好まし
い態様において、受容体は成長因子受容体である。
【０１３５】 「ランダムに組み合わせる」とは、転位した重および軽鎖可変遺伝子をコード
する核酸配列を合わせ、例えばＰＣＲオーバーラップ反応を用いることにより、
多くの人工的な可変遺伝子の組み合わせを作成することを意味する。
【０１３６】 好ましい態様において、幹／始原細胞は、未選別ヒト骨髄細胞、ヒト骨髄を起
点とするヒト末梢血細胞、選別ヒト骨髄細胞、未選別ネズミ骨髄細胞、選別ネズ
ミ骨髄細胞、胎児肝細胞、卵黄嚢細胞、ネズミＡＧＭ領域から誘導された細胞、
ヒトまたはネズミ胎生期癌細胞または系統、ヒトまたはマウス複能性奇形癌細胞
または系統、ネズミ胚性胎児性細胞、ヒト胚性幹（ＥＳ）セルライン、神経起源
の細胞、器官または組織再生に関与する細胞、ＲＢＣ溶解を被ったヒト骨髄細胞
、ヒト骨髄単核細胞、ヒト骨髄ＣＤ３４+細胞、ＦＤＣＰ混合ネズミ造血幹セル
ライン、Ｂ６ＳＵＴＡネズミ造血幹セルライン、Ｐ１９奇形癌細胞およびＮＴｅ
ｒａ−２複能性胎生期癌細胞から成る群から選択される。動物は、ウサギまたは
ニワトリである。抗体またはそのフラグメントは、ｓｃＦｖフラグメントである
。抗体またはそのフラグメントは、Ｆａｂフラグメントである。組み合わせライ
ブラリーによりコードされる抗体またはそのフラグメントは、ファージミドに表
面ディスプレーされている。さらに、この製造方法は、抗体フラグメントをコー
ドする核酸配列を得る前に、幹／始原細胞への結合について免疫化動物から採取
した血清をスクリーニングする段階を含む。
【０１３７】 本発明はまた、細胞の増殖、分化、活性化または生存に対して抑制的な抗体の
同定、合成および使用に向けられた様々な均等内容の態様を特徴としている。こ
れらの態様は、アゴニスト抗体に関するものと類似しており、当業界の一平均的
技術者であれば、阻害性抗体へ適用するべくこれらを適応させることができるは
ずである。
【０１３８】 さらに、本発明は、細胞の増殖、分化または活性化に関与する阻害性抗体の同
定方法であって、細胞の増殖、分化または活性化に関与する受容体を有する幹／
始原細胞で動物を免疫化することにより、表面分子に対する１つまたはそれ以上
の抗体を発現する複数の免疫細胞を生成し、抗体をコードする核酸配列を含む、
複数の免疫細胞からのライブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列を表
面ディスプレーベクターへクローン化することにより、抗体を表面ディスプレー
し、標的細胞の増殖、分化または活性化を阻害するものについて表面ディスプレ
ーされた抗体をスクリーニングすることにより、阻害性抗体を同定する段階を含
む方法を特徴とする。
【０１３９】 「阻害性抗体」とは、細胞の増殖、分化、活性化、阻害または生存に関与する
シグナル伝達カスケードに連係され、一細胞の増殖、分化、活性化または生存を
阻害する細胞表面受容体へ結合する、ＦａｂフラグメントおよびｓｃＦｖフラグ
メントなどを含む、抗体全体またはそのフラグメントを包含する。阻害性抗体は
、細胞の増殖、分化、活性化または生存を促進する受容体の作用を遮断するかま
たは負の成長シグナルを送る受容体に結合する阻害性分子を模倣することにより
阻害し得る。
【０１４０】 「増殖」とは、タンパク質合成速度の変化、染色体複製、細胞サイズまたは細
胞数により検出される細胞周期の様々な段階を通しての活発な分裂および進行を
意味する。
【０１４１】 「分化」とは、外因性因子への暴露の結果として、特殊機能をもつ異なる型の
細胞の生成を誘導する細胞の形態、行動または機能の変化、または遺伝子発現に
おける変化を意味する。分化は、当業界でその語を使用する場合と同様、細胞が
成熟し、多能性が低下するプロセスを指す。
【０１４２】 「活性化」とは、細胞がＧ0を脱し、Ｇ1に入るプロセスを意味するが、ただし
ＤＮＡを合成せず、第２シグナルを受けるまで分裂もしない。活性化は、活性化
遺伝子および活性化抗原の特異なセットの発現に伴う。 「生存」とは、細胞がアポトーシスまたは予定細胞死または壊死を被っていな
いことを意味する。
【０１４３】 増殖、分化、活性化または生存に関与する受容体は、阻害性抗体が拮抗物質ま
たは遮断抗体として作用している場合アゴニスト抗体と結合するのと同じ受容体
を代表し得る。受容体は、阻害性抗体が阻害性因子を模倣している場合アゴニス
ト抗体が結合する成長因子受容体とは異なり得る。
【０１４４】 別の好ましい態様において、本発明は、細胞の増殖、分化または活性化に関す
る阻害性抗体の同定方法であって、細胞の増殖、分化または活性化に関与する受
容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、表面
分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を生成し、抗
体をコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞からのライブラリーを作成し、
ライブラリーからの核酸配列をウイルスディスプレーベクターへクローン化する
ことにより、抗体をウイルス表面にディスプレーさせ、標的細胞の増殖、分化ま
たは活性化を阻害するものについてウイルス表面にディスプレーされた抗体をス
クリーニングすることにより、阻害性抗体を同定する段階を含む方法を特徴とす
る。
【０１４５】 さらに好ましい態様において、ウイルス性ベクターは、バクテリオファージお
よびファージミドベクターから成る群から選択される。
【０１４６】 別の好ましい態様において、本発明は、細胞の増殖、分化または活性化に関す
る阻害性抗体の同定方法であって、細胞の増殖、分化または活性化に関与する受
容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、表面
分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を生成し、抗
体のｓｃＦｖフラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞からの
ライブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列をファージミドベクターへ
クローン化することにより、ｓｃＦｖフラグメントがファージミド表面にディス
プレーされ、ファージミド表面にディスプレーされたｓｃＦｖフラグメントを標
的細胞の増殖、分化または活性化を阻害するものについてスクリーニングするこ
とにより、阻害性抗体を同定する段階を含む方法を特徴とする。
【０１４７】 別の好ましい態様において、本発明は、細胞の増殖、分化または活性化に関す
る阻害性抗体の同定方法であって、細胞の増殖、分化または活性化に関与する受
容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、表面
分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を生成し、抗
体のｓｃＦｖフラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞からの
ライブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列を表面ディスプレーベクタ
ーへクローン化することにより、ｓｃＦｖフラグメントが表面ディスプレーされ
、表面ディスプレーされたｓｃＦｖフラグメントを標的細胞の増殖、分化または
活性化を阻害するものについてスクリーニングすることにより、阻害性抗体を同
定する段階を含む方法を特徴とする。
【０１４８】 さらに好ましい態様において、表面ディスプレーベクターは、バクテリオファ
ージベクターであり、表面ディスプレーはバクテリオファージの表面上である。
【０１４９】 別の好ましい態様において、本発明は、細胞の増殖、分化または活性化に関す
る阻害性抗体の同定方法であって、細胞の増殖、分化または活性化に関与する受
容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、表面
分子に対して１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を生成し、抗
体のｓｃＦｖフラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞からの
ライブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列をファージミドベクターへ
クローン化することにより、ｓｃＦｖフラグメントはファージミド表面にディス
プレーされ、ファージミドにディスプレーされたｓｃＦｖフラグメントを標的細
胞の細胞表面分子への結合についてふるい分けし、機能検定で細胞表面分子と結
合するｓｃＦｖフラグメントを標的細胞の増殖、分化または活性化を阻害するも
のについてスクリーニングすることにより、阻害性抗体を同定する段階を含む方
法を特徴とする。 ふるい分けおよびスクリーニングは、以前に記載された要領で行われる。
【０１５０】 別の好ましい態様において、本発明は、細胞の増殖、分化または活性化に関す
る阻害性抗体の同定方法であって、細胞の増殖、分化または活性化に関与する受
容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、表面
分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を生成し、抗
体のｓｃＦｖフラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞からの
ライブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列を表面ディスプレーベクタ
ーへクローン化することにより、ｓｃＦｖフラグメントが表面ディスプレーされ
、表面ディスプレーされたｓｃＦｖフラグメントを標的細胞の細胞表面分子への
結合についてふるい分けし、細胞表面分子に結合するｓｃＦｖフラグメントを標
的細胞の増殖、分化または活性化を阻害するものについて機能検定でスクリーニ
ングすることにより、阻害性抗体を同定する段階を含む方法を特徴とする。
【０１５１】 さらに好ましい態様において、表面ディスプレーベクターは、バクテリオファ
ージベクターであり、表面ディスプレーはバクテリオファージの表面上である。
【０１５２】 別の好ましい態様において、本発明は、細胞の増殖、分化または活性化に関す
る阻害性抗体の同定方法であって、細胞の増殖、分化または活性化に関与する受
容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、表面
分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を生成し、抗
体のＦａｂフラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞からのラ
イブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列をファージミドベクターへク
ローン化することにより、Ｆａｂフラグメントをファージミドの表面にディスプ
レーさせ、ファージミドにディスプレーされたＦａｂフラグメントを標的細胞の
細胞表面分子への結合についてふるい分けし、細胞表面分子に結合するＦａｂフ
ラグメントを２量体化し、細胞表面分子に結合する単量体および２量体化Ｆａｂ
フラグメントの両方を標的細胞の増殖、分化または活性化を阻害するものについ
て機能検定でスクリーニングすることにより、阻害性抗体を同定する段階を含む
方法を特徴とする。
【０１５３】 ふるい分けおよびスクリーニングは、ｓｃＦｖフラグメントの場合と同様に行
われる。 「Ｆａｂフラグメントを２量体化する（こと）」とは、細胞表面分子に結合す
るＦａｂフラグメントの代表的部分が２量体化されていることを意味する。Ｆａ
ｂフラグメントの残りは、単量体として残される。単量体および２量体は両方と
も機能検定で試験される。
【０１５４】 「単量体および２量体化Ｆａｂフラグメントの両方を機能検定でスクリーニン
グする」とは、単量体および２量体が独立してスクリーニングされることを意味
する（ｓｃＦｖフラグメントに関する検討を参照）。さらに、Ｆａｂフラグメン
ト（単量体および２量体）は、表面ディスプレーされているかまたは可溶性分子
であり得る。
【０１５５】 別の好ましい態様において、本発明は、細胞の増殖、分化または活性化に関す
る阻害性抗体の同定方法であって、細胞の増殖、分化または活性化に関与する受
容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、表面
分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を生成し、抗
体のＦａｂフラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞からのラ
イブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列を表面ディスプレーベクター
へクローン化することにより、Ｆａｂフラグメントを表面ディスプレーさせ、表
面ディスプレーされたＦａｂフラグメントを標的細胞の細胞表面分子への結合に
ついてふるい分けし、上記細胞表面分子と結合するＦａｂフラグメントを２量体
化し、標的分子の細胞表面分子に結合する単量体および２量体化Ｆａｂフラグメ
ントの両方を標的細胞の増殖、分化または活性化を阻害するものについて機能検
定でスクリーニングすることにより、阻害性抗体を同定する段階を含む方法を特
徴とする。
【０１５６】 さらに好ましい態様において、表面ディスプレーベクターはバクテリオファー
ジベクターであり、表面ディスプレーはバクテリオファージの表面上である。
【０１５７】 阻害性抗体の同定方法のさらに好ましい態様において、動物はウサギまたはニ
ワトリである。幹／始原細胞は、未選別ヒト骨髄細胞、ヒト骨髄を起点とするヒ
ト末梢血細胞、選別ヒト骨髄細胞、未選別ネズミ骨髄細胞、選別ネズミ骨髄細胞
、胎児肝細胞、卵黄嚢細胞、ネズミＡＧＭ領域から誘導された細胞、ヒトまたは
ネズミ胎生期癌細胞または系統、ヒトまたはマウス複能性奇形癌細胞または系統
、ネズミ複能性胚性細胞、ヒト胚性幹（ＥＳ）セルライン、神経起源の細胞、器
官または組織再生に関与する細胞、ＲＢＣ溶解を被ったヒト骨髄細胞、ヒト骨髄
単核細胞、ヒト骨髄ＣＤ３４+細胞、ＦＤＣＰ混合ネズミ造血幹セルライン、Ｂ
６ＳＵＴＡネズミ造血幹セルライン、Ｐ１９奇形癌細胞およびＮＴｅｒａ−２複
能性胎生期癌細胞から成る群から選択される。
【０１５８】 別の好ましい態様において、本発明は、細胞の増殖、分化または活性化に関す
る阻害性抗体の同定方法であって、細胞の増殖、分化または活性化に関与する受
容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞により動物を免疫化し、動物から一次
または二次リンパ様器官を採取し、器官からＲＮＡを分離し、抗体のｓｃＦｖフ
ラグメントをコードする核酸配列を含む、ＲＮＡからのライブラリーを作成し、
ライブラリーからの核酸配列をファージミドベクターへクローン化することによ
りｓｃＦｖフラグメントをファージミド表面にディスプレーさせ、ファージミド
にディスプレーされたＦａｂフラグメントを標的細胞の細胞表面分子への結合に
ついてふるい分けし、細胞表面分子と結合するｓｃＦｖフラグメントを標的細胞
の増殖、分化または活性化を阻害するものについて機能検定でスクリーニングす
ることにより、阻害性抗体を同定する段階を含む方法を特徴とする。
【０１５９】 さらに好ましい態様において、幹／始原細胞は、未選別ヒト骨髄細胞、ヒト骨
髄を起点とするヒト末梢血細胞、選別ヒト骨髄細胞、未選別ネズミ骨髄細胞、選
別ネズミ骨髄細胞、胎児肝細胞、卵黄嚢細胞、ネズミＡＧＭ領域から誘導された
細胞、ヒトまたはネズミ胎生期癌細胞または系統、ヒトまたはマウス複能性奇形
癌細胞または系統、ネズミ複能性胚性細胞、ヒト胚性幹（ＥＳ）セルライン、神
経起源の細胞、器官または組織再生に関与する細胞、ＲＢＣ溶解を被ったヒト骨
髄細胞、ヒト骨髄単核細胞、ヒト骨髄ＣＤ３４+細胞、ＦＤＣＰ混合ネズミ造血
幹セルライン、Ｂ６ＳＵＴＡネズミ造血幹セルライン、Ｐ１９奇形癌細胞および
ＮＴｅｒａ−２複能性胎生期癌細胞から成る群から選択される。
【０１６０】 別の好ましい態様において、本発明は、細胞の増殖、分化または活性化に関す
る阻害性抗体の同定方法であって、細胞の増殖、分化または活性化に関与する受
容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化し、一次または二次リ
ンパ様器官を動物から採取し、器官からＲＮＡを分離し、抗体のＦａｂフラグメ
ントをコードする核酸配列を含む、ＲＮＡからのライブラリーを作成し、ライブ
ラリーからの核酸配列をファージミドベクターへクローン化することにより、Ｇ
ａｂフラグメントをファージミドの表面にディスプレーさせ、ファージミドにデ
ィスプレーされたＦａｂフラグメントを標的細胞の細胞表面分子への結合につい
てふるい分けし、上記細胞表面分子を結合するＦａｂフラグメントを２量体化し
、上記細胞表面分子と結合する単量体および２量体化Ｆａｂフラグメントの両方
を標的細胞の増殖、分化または活性化を阻害するものについて機能検定でスクリ
ーニングすることにより、阻害性抗体を同定する段階を含む方法を特徴とする。
【０１６１】 さらに好ましい態様において、幹／始原細胞は、未選別ヒト骨髄細胞、ヒト骨
髄を起点とするヒト末梢血細胞、選別ヒト骨髄細胞、未選別ネズミ骨髄細胞、選
別ネズミ骨髄細胞、胎児肝細胞、卵黄嚢細胞、ネズミＡＧＭ領域から誘導された
細胞、ヒトまたはネズミ胎生期癌細胞または系統、ヒトまたはマウス複能性奇形
癌細胞または系統、ネズミ複能性胚性細胞、ヒト胚性幹（ＥＳ）セルライン、神
経起源の細胞、器官または組織再生に関与する細胞、ＲＢＣ溶解を被ったヒト骨
髄細胞、ヒト骨髄単核細胞、ヒト骨髄ＣＤ３４+細胞、ＦＤＣＰ混合ネズミ造血
幹セルライン、Ｂ６ＳＵＴＡネズミ造血幹セルライン、Ｐ１９奇形癌細胞および
ＮＴｅｒａ−２複能性胎生期癌細胞から成る群から選択される。
【０１６２】 本発明はまた、細胞の増殖、分化または活性化に関する阻害性抗体の製造方法
であって、細胞の増殖、分化または活性化に関与する受容体を含む表面分子を有
する幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、表面分子に対する１つまたは
それ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を生成し、抗体をコードする核酸配列
を含む、複数の免疫細胞からのライブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸
配列を表面ディスプレーベクターへクローン化することにより、抗体は表面ディ
スプレーされ、標的細胞の増殖、分化または活性化を阻害するものについて表面
ディスプレーされた抗体をスクリーニングすることにより、阻害性抗体を同定し
、阻害性抗体を合成する段階を含む方法を特徴とする。 阻害性抗体の合成は、アゴニスト抗体に関して前述した要領で行われる。
【０１６３】 別の好ましい態様において、本発明は、細胞の増殖、分化または活性化に関す
る阻害性抗体の製造方法であって、細胞の増殖、分化または活性化に関与する受
容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、表面
分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を生成し、抗
体をコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞からのライブラリーを作成し、
ライブラリーからの核酸配列をウイルスディスプレーベクターへクローン化する
ことにより、抗体がウイルスの表面にディスプレーされ、ウイルス表面にディス
プレーされた抗体を標的細胞の増殖、分化または活性化を阻害するものについて
スクリーニングすることにより、阻害性抗体を同定し、阻害性抗体を合成する段
階を含む方法を特徴とする。
【０１６４】 さらに好ましい態様において、ウイルスベクターは、バクテリオファージベク
ターまたはファージミドベクターである。
【０１６５】 別の好ましい態様において、本発明は、細胞の増殖、分化または活性化に関す
る阻害性抗体の製造方法であって、細胞の増殖、分化または活性化に関与する受
容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、表面
分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を生成し、抗
体のｓｃＦｖフラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞からの
ライブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列をファージミドへクローン
化することにより、ｓｃＦｖフラグメントをファージミド表面にディスプレーさ
せ、ファージミドにディスプレーされたｓｃＦｖフラグメントを標的細胞の細胞
表面分子への結合についてふるい分けし、標的細胞の増殖、分化または活性化を
阻害するものについて機能検定により細胞表面分子と結合するｓｃＦｖフラグメ
ントをスクリーニングすることにより、阻害性抗体を同定し、阻害性抗体を合成
する段階を含む方法を特徴とする。
【０１６６】 別の好ましい態様において、本発明は、細胞の増殖、分化または活性化に関す
る阻害性抗体の製造方法であって、細胞の増殖、分化または活性化に関与する受
容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、表面
分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を生成し、抗
体のＦａｂフラグメントをコードする核酸配列を含む、上記複数の免疫細胞から
のライブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列をファージミドベクター
へクローン化することにより、Ｆａｂフラグメントがファージミドの表面にディ
スプレーされ、ファージミドにディスプレーされたＦａｂフラグメントを標的細
胞の細胞表面分子への結合についてふるい分けし、細胞表面分子と結合するＦａ
ｂフラグメントを２量体化し、標的細胞の増殖、分化または活性化を阻害するも
のについて細胞表面分子に結合する単量体および２量体化Ｆａｂフラグメントの
両方を機能検定でスクリーニングすることにより、阻害性抗体を同定し、阻害性
抗体を合成する段階を含む方法を特徴とする。
【０１６７】 請求項に記載された阻害性抗体同定方法におけるさらに好ましい態様において
、ライブラリーは組み合わせライブラリーである。標的細胞は、未選別ヒト骨髄
細胞、ヒト骨髄を起点とするヒト末梢血細胞、選別ヒト骨髄細胞、未選別ネズミ
骨髄細胞、選別ネズミ骨髄細胞、胎児肝細胞、卵黄嚢細胞、ネズミＡＧＭ領域か
ら誘導された細胞、ヒトまたはネズミ胎生期癌細胞または系統、ヒトまたはマウ
ス複能性奇形癌細胞または系統、ネズミ複能性胚性細胞、ヒト胚性幹（ＥＳ）セ
ルライン、神経起源の細胞、器官または組織再生に関与する細胞、ＲＢＣ溶解を
被ったヒト骨髄細胞、ヒト骨髄単核細胞、ヒト骨髄ＣＤ３４+細胞、ＦＤＣＰ混
合ネズミ造血幹セルライン、Ｂ６ＳＵＴＡネズミ造血幹セルライン、Ｐ１９奇形
癌細胞、およびＮＴｅｒａ−２複能性胎生期癌細胞から成る群から選択される。
ｓｃＦｖフラグメントの機能検定によるスクリーニングは、標的細胞の増殖、分
化または活性化の阻害に関するバイオアッセイによるものである。２量体化Ｆａ
ｂフラグメントの機能検定によるスクリーニングは、標的細胞の増殖、分化また
は活性化の阻害に関するバイオアッセイによるものである。
【０１６８】 別の態様において、本発明は、細胞の増殖、分化または活性化に関与する受容
体の同定方法であって、受容体に対して阻害性抗体を産生させ、阻害性抗体を用
いて受容体を同定する段階を含む方法を特徴とする。 受容体に対する阻害性抗体を用いた受容体の同定は、アゴニスト抗体に関して
前述した要領に従い行われる。
【０１６９】 別の好ましい態様において、本発明は、細胞の増殖、分化、生存または活性化
に関与する受容体の同定方法であって、細胞の増殖、分化または活性化に関与す
る受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、
表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を生成し
、抗体のｓｃＦｖフラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞か
らのライブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列を表面ディスプレーベ
クターへクローン化することにより、ｓｃＦｖフラグメントを表面ディスプレー
させ、標的細胞の増殖、分化または活性化を阻害するものについて表面ディスプ
レーされたｓｃＦｖフラグメントをスクリーニングすることにより、阻害性抗体
を同定し、阻害性抗体を用いて受容体を同定する段階を含む方法を特徴とする。
【０１７０】 さらに好ましい態様において、表面ディスプレーベクターはバクテリオファー
ジベクターであり、表面ディスプレーはバクテリオファージの表面上である。
【０１７１】 別の好ましい態様において、本発明は、細胞の増殖、分化または活性化に関与
する受容体の同定方法であって、細胞の増殖、分化または活性化に関与する受容
体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、表面分
子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を生成し、抗体
のｓｃＦｖフラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞からのラ
イブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列をファージミドベクターへク
ローン化することにより、ｓｃＦｖフラグメントをファージミド表面にディスプ
レーさせ、ファージミドにディスプレーされたｓｃＦｖフラグメントを標的細胞
の細胞表面分子への結合についてふるい分けし、上記細胞表面分子に結合するｓ
ｃＦｖフラグメントを標的細胞の増殖、分化または活性化を阻害するものについ
て機能検定でスクリーニングすることにより、阻害性抗体を同定し、その阻害性
抗体を用いて受容体を同定する段階を含む方法を特徴とする。
【０１７２】 別の好ましい態様において、本発明は、細胞の増殖、分化または活性化に関与
する受容体の同定方法であって、細胞の増殖、分化または活性化に関与する受容
体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、表面分
子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を生成し、抗体
のＦａｂフラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞からのライ
ブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列を表面ディスプレーベクターへ
クローン化することにより、Ｆａｂフラグメントを細胞の表面にディスプレーし
、標的細胞の細胞表面分子への結合について細胞表面にディスプレーされたＦａ
ｂフラグメントをふるい分けし、細胞表面分子と結合するＦａｂフラグメントを
２量体化し、標的細胞の増殖、分化または活性化を阻害するものについて単量体
および２量体化Ｆａｂフラグメントの両方を機能検定でスクリーニングすること
により、阻害性抗体を同定し、阻害性抗体を用いて上記受容体を同定する段階を
含む方法を特徴とする。
【０１７３】 さらに好ましい態様において、表面ディスプレーベクターはバクテリオファー
ジベクターであり、表面ディスプレーはバクテリオファージの表面上である。
【０１７４】 別の好ましい態様において、本発明は、細胞の増殖、分化または活性化に関す
る受容体の同定方法であって、細胞の増殖、分化または活性化に関与する受容体
を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、表面分子
に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を生成し、抗体の
Ｆａｂフラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞からのライブ
ラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列をファージミドベクターへクロー
ン化することにより、Ｆａｂフラグメントをファージミドの表面にディスプレー
させ、ファージミドにディスプレーされたＦａｂフラグメントを標的細胞におけ
る細胞表面分子への結合性についてふるい分けし、上記細胞表面分子と結合する
Ｆａｂフラグメントを２量体化し、機能検定で標的細胞の増殖、分化または活性
化を阻害するものについて単量体および２量体化Ｆａｂフラグメントの両方をス
クリーニングすることにより、阻害性抗体を同定し、阻害性抗体を用いて受容体
を同定する段階を含む方法を特徴とする。
【０１７５】 細胞の増殖、分化または活性化に関与する受容体の同定方法のさらに好ましい
態様において、受容体は造血受容体である。 さらに本発明は、細胞の増殖、分化または活性化に対する阻害性因子の同定方
法であって、細胞の増殖、分化または活性化に関与する受容体に対する阻害性抗
体を産生させ、その阻害性抗体を用いて受容体を同定し、その受容体を用いて阻
害性因子を同定する段階を含む方法を特徴とする。 成長因子の同定に関して前述したように、この受容体は抑制性因子の同定に使
用される。
【０１７６】 別の好ましい態様において、本発明は、細胞の増殖、分化または活性化に対す
る阻害性因子の同定方法であって、細胞の増殖、分化または活性化に関与する受
容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、表面
分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を生成し、抗
体のｓｃＦｖフラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞からの
ライブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列を表面ディスプレーベクタ
ーへクローン化することにより、ｓｃＦｖフラグメントが細胞表面に表面ディス
プレーされ、表面ディスプレーされたｓｃＦｖフラグメントを標的細胞の増殖、
分化または活性化を阻害するものについてスクリーニングすることにより、阻害
性抗体を同定し、阻害性抗体を用いて受容体を同定し、受容体を用いて阻害性因
子を同定する段階を含む方法を特徴とする。
【０１７７】 さらに好ましい態様において、表面ディスプレーベクターはバクテリオファー
ジベクターであり、表面ディスプレーはバクテリオファージの表面上である。
【０１７８】 別の好ましい態様において、本発明は、細胞の増殖、分化または活性化に対す
る阻害性因子の同定方法であって、細胞の増殖、分化または活性化に関与する受
容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、表面
分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を生成し、抗
体のｓｃＦｖフラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞からの
ライブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列をファージミドベクターへ
クローン化することにより、ｓｃＦｖフラグメントがファージミドの表面にディ
スプレーされ、ファージミドにディスプレーされたｓｃＦｖフラグメントを標的
細胞における細胞表面分子への結合についてふるい分けし、機能検定で細胞表面
分子と結合するｓｃＦｖフラグメントを標的細胞の増殖、分化または活性化を阻
害するものについてスクリーニングすることにより、阻害性抗体を同定し、その
阻害性抗体を用いて受容体を同定し、その受容体を用いて阻害性因子を同定する
段階を含む方法を特徴とする。
【０１７９】 別の好ましい態様において、本発明は、阻害性因子の同定方法であって、細胞
の増殖、分化または活性化に関与する受容体を含む表面分子を有する幹／始原細
胞で動物を免疫化することにより、表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体
を発現する複数の免疫細胞を生成し、抗体のＦａｂフラグメントをコードする核
酸配列を含む、複数の免疫細胞からのライブラリーを作成し、ライブラリーから
の核酸配列を表面ディスプレーベクターへクローン化することにより、Ｆａｂフ
ラグメントを表面ディスプレーし、表面ディスプレーされたＦａｂフラグメント
を標的細胞における細胞表面分子への結合についてふるい分けし、細胞表面分子
と結合するＦａｂフラグメントを２量体化し、機能検定で単量体および２量体化
Ｆａｂフラグメントの両方を標的細胞の増殖、分化または活性化を阻害するもの
についてスクリーニングすることにより、阻害性抗体を同定し、その阻害性抗体
を用いて受容体を同定し、その受容体を用いて阻害性因子を同定する段階を含む
方法を特徴とする。
【０１８０】 さらに好ましい態様において、表面ディスプレーベクターは、バクテリオファ
ージベクターであり、表面ディスプレーはバクテリオファージの表面上である。
【０１８１】 別の好ましい態様において、本発明は、細胞の増殖、分化または活性化に対す
る阻害性因子の同定方法であって、細胞の増殖、分化または活性化に関与する受
容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、表面
分子に対して１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を生成し、抗
体のＦａｂフラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞からのラ
イブラリーを作成し、ライブラリーからの核酸配列をファージミドベクターへク
ローン化することにより、Ｆａｂフラグメントはファージミド表面にディスプレ
ーされ、ファージミドにディスプレーされたＦａｂフラグメントを標的細胞の細
胞表面分子への結合についてふるい分けし、細胞表面分子と結合するＦａｂフラ
グメントを２量体化し、機能検定で単量体および２量体化Ｆａｂフラグメントの
両方を標的細胞の増殖、分化または活性化を阻害するものについてスクリーニン
グすることにより、阻害性抗体を同定し、その阻害性抗体を用いて受容体を同定
し、その受容体を用いて阻害性因子を同定する段階を含む方法を特徴とする。
【０１８２】 阻害性因子同定方法のさらに好ましい態様において、阻害性因子は造血因子で
ある。 別の態様において、本発明は、細胞の増殖、分化、活性化または生存に関する
阻害性抗体のスクリーニング方法であって、抗体に指向される受容体を発現する
標的細胞の存在下で抗体フラグメントを発現する細胞を成長させ、抗体フラグメ
ントを標的細胞の増殖、分化、活性化または生存を阻害するものについてスクリ
ーニングすることにより、阻害性抗体を同定する段階を含む方法を特徴とする。
【０１８３】 さらに好ましい態様において、抗体フラグメントを発現する細胞は、細菌細胞
、哺乳類細胞および酵母から成る群から選択される。 また、本発明は、幹／始原細胞で動物を免疫化することにより製造される増殖
、分化、活性化または生存に関与する受容体に対する阻害性抗体を特徴とする。
【０１８４】 好ましい態様において、幹／始原細胞は、未選別ヒト骨髄細胞、ヒト骨髄を起
点とするヒト末梢血細胞、選別ヒト骨髄細胞、未選別ネズミ骨髄細胞、選別ネズ
ミ骨髄細胞、胎児肝細胞、卵黄嚢細胞、ネズミＡＧＭ領域から誘導された細胞、
ヒトまたはネズミ胎生期癌細胞または系統、ヒトまたはマウス複能性奇形癌細胞
または系統、ネズミ複能性胚性細胞、ヒト胚性幹（ＥＳ）セルライン、神経起源
の細胞、器官または組織再生に関与する細胞、ＲＢＣ溶解を被ったヒト骨髄細胞
、ヒト骨髄単核細胞、ヒト骨髄ＣＤ３４+細胞、ＦＤＣＰ混合ネズミ造血幹セル
ライン、Ｂ６ＳＵＴＡネズミ造血幹セルライン、Ｐ１９奇形癌細胞、およびＮＴ
ｅｒａ−２複能性胎生期癌細胞から成る群から選択される。
【０１８５】 さらに好ましい態様において、本発明は、阻害性抗体の製造方法のいずれかに
より製造された増殖、分化、活性化または生存に関与する受容体に対する阻害性
抗体を特徴とする。 さらに、本発明は、ある細胞集団の欠損を特徴とする病気または障害がある患
者の処置方法であって、集団中の細胞の増殖または分化を刺激する幹／始原細胞
で動物を免疫化することにより製造されたアゴニスト抗体の治療有効量を患者に
投与する段階を含む方法を特徴とする。
【０１８６】 「ある細胞集団の欠損を特徴とする病気または障害」は、例えば、患者に存在
する所定の系統（複数も可）の細胞数が正常値より少ない病気、障害または造血
抑制に関連した処置に関して使用される。例えば、化学療法を受けている患者が
示す好中球および血小板のレベルは正常値より低い。貧血は赤血球レベルが正常
値より低い場合の例である。
【０１８７】 「投与する（こと）」とは、抗体の供給を意味する。
【０１８８】 「治療有効量」とは、病気または病状に伴う症状の幾つかを少なくとも部分的
に軽減または排除する量を意味する。 好ましい態様において、細胞集団は造血細胞集団である。
【０１８９】 別の好ましい態様において、本発明は、細胞集団の欠損を特徴とする病気また
は障害をもつ患者の処置方法であって、集団中の細胞の増殖または分化を刺激す
る幹／始原細胞で動物を免疫化することにより製造されたアゴニスト抗体と患者
の細胞をエクスビボで接触させる段階を含む方法を特徴とする。
【０１９０】 「エクスビボ」とは、生体外を意味する。当業界の平均的技術者であれば、患
者からの細胞摘出、患者の体外にある細胞の維持および患者への細胞の再導入に
関する技術については熟知しているはずである。 好ましい態様において、細胞集団は造血細胞集団である。
【０１９１】 別の態様において、本発明は、ある細胞集団の増加を特徴とする病気または障
害をもつ患者の処置方法であって、細胞集団の増殖または分化を阻害する幹／始
原細胞で動物を免疫化することにより製造される阻害性抗体の治療有効量を患者
に投与する段階を含む方法を特徴とする。
【０１９２】 「ある細胞集団の増加を特徴とする病気または障害」とは、所定の系統、統（
複数も可）の細胞数が正常値より多く患者に存在する病気または障害を意味する
。例えば、慢性骨髄性白血病は、造血幹細胞における染色体転座の存在に起因す
る骨髄増殖を特徴とする。血小板減少症は、巨核球数の増加を特徴とする病気で
ある。 好ましい態様において、細胞集団は、造血細胞集団である。
【０１９３】 別の態様において、本発明は、異常増殖を呈する細胞を特徴とする病気または
障害をもつ患者の処置方法であって、正常細胞の増殖または分化を阻害し、幹／
始原細胞で動物を免疫化することにより製造された阻害性抗体の一定量を患者に
投与し、異常増殖を呈する細胞を殺す段階を含む方法を特徴とする。 「異常増殖を呈する細胞」とは、増殖制御を呈しない細胞、例えば癌細胞を意
味する。
【０１９４】 「殺す（こと）」とは、細胞死を誘発する因子、例えば放射線または化学療法
剤に異常増殖を呈する細胞を曝すことを意味する。当業界の平均的技術者であれ
ば、患者への上記因子の投与については熟知しているはずである。殺すのはイン
ビボまたはエクスビボで行われ得る。 好ましい態様において、細胞は造血細胞である。
【０１９５】 別の態様において、本発明は、異常増殖を呈する細胞を特徴とする病気または
障害をもつ患者の処置方法であって、抗体が異常増殖を呈する細胞に結合し、そ
れらを死に至らしめるように、細胞に特異結合し、毒素または放射性標識に連係
されており、幹／始原細胞で動物を免疫化することにより製造された抗体の一定
量を患者に投与する段階を含む方法を特徴とする。
【０１９６】 本発明の抗体は、毒素タンパク質に結合されることにより、悪性腫瘍または他
の病状の処置に使用され得る融合免疫毒素を形成し得る。抗体結合ドメインに連
係され得る毒性タンパク質には、特に、ジフテリア毒素、シュードモナス（Pseu
domonas）・エキソトキシンＡがある（ハートラー,A.A.、フランケル,A.E.、J.
Clin. Oncol. ７：１９３２−４２、１９８９参照）。当業界の平均的技術者で
あれば、上記の融合免疫毒素の構築については熟知しているはずである。
【０１９７】 本発明はまた、細胞の同定方法であって、抗体が細胞と特異結合する条件下、
幹／始原細胞で動物を免疫化することにより製造される細胞型に特異的な抗体を
細胞と接触させ、抗体の結合を検出する段階を含む方法を特徴とする。
【０１９８】 「特異的に結合する」とは、抗原決定基への結合が特定細胞型に特異的である
ことを意味する。 好ましい態様において、細胞は造血細胞であり、抗体は放射性標識に連係され
ている。
【０１９９】 当業界の技術者であれば、造影剤としての抗体の用途については熟知している
はずである（ブライツ,H.B.、タイラー,A.、ビョルン,M.J.、レズリー,T.、ワイ
デン.P.L.、Clin. Nucl. Med. ２２：６１５−６２０、１９９７およびリ・デス
トリ,G.、グレコ,S.、リンツィヴィロ,C.、ラカルブト,A.、クレリ,R.、ディ・
カタルド,A.、Surg. Today ２８：１２３３−１２３６、１９９８参照）。
【０２００】 別の態様において、本発明は、特異細胞の集団を分離する方法であって、潜在
的に特異細胞を含む試料を、抗体が細胞の集団に特異結合する条件下幹／始原細
胞で動物を免疫化することにより製造された細胞の集団に特異結合する抗体と接
触させ、結合抗体を用いて細胞の集団を分離する段階を含む方法を特徴とする。
【０２０１】 「結合抗体を用いて分離する（こと）」とは、同定された抗体を、細胞分離方
法、例えば蛍光活性化細胞選択法（ＦＡＣＳ）または磁気選択方法で用いること
を意味する。ＦＡＣＳ選択法では、抗体は蛍光分子にコンジュゲートされている
ことが多い。磁気選択方法では、抗体は直接的または間接的に磁気マイクロビー
ズに連係されている。
【０２０２】 好ましい態様において、細胞は造血細胞である。
【０２０３】 別の態様において、本発明は、細胞集団の増幅方法であって、細胞の増殖また
は分化を刺激し、幹／始原細胞で動物を免疫化することにより製造されたアゴニ
スト抗体と細胞集団を接触させる段階を含む方法を特徴とする。
【０２０４】 「増幅する（こと）」とは、一細胞または複数の細胞の増殖を誘発することで
ある。 好ましい態様において、細胞は造血細胞である。
【０２０５】 別の態様において、本発明は、幹／始原細胞で動物を免疫化することにより製
造される抗体またはそのフラグメントを受容体へ結合させることにより幹／始原
細胞の表面に存在する、細胞の増殖、分化、生存または活性化に関与する受容体
の活性を調節する方法を提供する。
【０２０６】 「調節する（こと）」とは、受容体の活性化を刺激、抑制または遮断すること
を意味する。 さらに好ましい態様において、受容体は成長因子受容体である。
【０２０７】 本発明の他の特徴および利点は、以下のその好ましい態様に関する記載および
請求の範囲から明白である。 この明細書で引用された文献、出版物および特許は全て、そのまま引用して説
明の一部とする。
【０２０８】 図面の説明 図１は、ファージディスプレーに使用されるベクターの概略図を示す。 図２ＡおよびＢは、ｓｃＦｖクローニング計画で使用されるプライマーの概略
図を示す。 図３Ａ、３Ｂ、３Ｃおよび３Ｄは、Ｆａｂクローニング計画で使用されるプラ
イマーの概略図を示す。 図４は、ＳｃＦｖクローニング計画の概略図を示す。 図５Ａおよび５Ｂは、Ｆａｂクローニング計画で使用されるベクターの概略図
を示す。
【０２０９】 好ましい態様の記載 以下、実施例により、本発明の様々な態様および具体例についてさらに詳述す
るが、一切範囲の限定を意図したものではない。当業界の者であれば、造血細胞
に関する実施例が、他の細胞系統、の増殖、分化、活性化および生存に関与する
他の因子のスクリーニングにも適用可能であることは認めるところである。さら
に、当業界の平均的技術者であれば、こららの阻害性抗体、受容体および阻害因
子の同定方法を理解し、容易に適応させることができるはずである。
【０２１０】 実施例１： 造血成長因子受容体に対するアゴニスト抗体に関するスクリーニ
ング 免疫化 ニワトリおよびウサギを、ヒト骨髄細胞（選別および未選別）（ポイエティッ
ク・テクノロジーズ、ジャーマンタウン、メリーランド）、ネズミ骨髄細胞（選
別および未選別）（ラビット・アンド・ローデント・ダイアグノスティック・ア
ソーシエイツ、サンディエゴ、カリフォルニア）、胎児肝細胞（ジョーダン,C.T
.、マッカーン,J.P.、レミシュカ,I.R.、Cell ６１：９５３−９６３（１９９０
）に記載された要領で入手）の各々により別々に免疫化する。さらに、特異抗体
ＡＡ４.１を用いることにより、幹細胞、卵黄嚢細胞（ラビット・アンド・ロー
デント・ダイアグノスティック・アソーシエイツ、サンディエゴ、カリフォルニ
ア）、単核細胞製品（ポイエティック・テクノロジーズ、ジャーマンタウン、メ
リーランド）について強化することができる。免疫化は、ネズミ造血セルライン
、例えばＦＤＣＰ−混合（スプーンサー,E.、ヘイワース,C.M.、ダン,A.、デキ
スター,T.M.、Differentiation ３１：１１１−１１８、１９８６）およびＢ６
ＳＵＴＡ（グリーンバーガー,J.S.、サカキーニィ,M.A.、ハンフリーズ,R.K.、
イーブズ,C.J.、エクナー,R.J.、Proc. Natl. Acad. Sci, USA ８０：２９３１
−２９３５、１９８３）により行われ得る。また、先に記載したように、循環血
から分離された造血幹／始原細胞も使用され得る。さらに、免疫化は、他の細胞
、例えばＰ１９細胞、ＮＴｅｒａ−２細胞およびヒトＥＳセルラインにより実施
され得る。骨髄細胞の選別は、磁気ビーズに結合された抗体（例、α−ＣＤ３４
）を用いる磁気選別法により行われる。細胞は、細胞表面分子を認識するモノク
ローナル抗体により予めコーティングされる。モノクローナル抗体は、ビーズに
コンジュゲートされた２次抗体により磁気ビーズに結合される。次いで、細胞を
磁石により取り除く。磁気選別法は、興味の対象である細胞が抗体により結合さ
れる正の選択（例、抗体に結合された幹細胞集団）（ミルテニ・バイオテク、ア
ウバーン、カリフォルニア）または望ましくない細胞を磁石により捉える負の選
択（ステム・セル・テクノロジーズ、バンクーバーＢＣ、カナダ国）であり得る
。
【０２１１】 蛍光活性化選別法では、蛍光性分子にコンジュゲートされた抗体で標識した細
胞を、フロー・サイトメーター、例えばベクトン‐ディッキンソンＦＡＣＳ IV
またはＦＡＣＳヴァンテージサイトメーターまたは均等内容の選別機で電子工学
的に選別する。蛍光性分子コンジュゲート抗体は、特異的な細胞表面抗原を認識
する。これらの抗体は、蛍光マーカー、例えばフルオレセイン・イソチオシアネ
ート（ＦＩＴＣ）またはフィコエリスリン（ＰＥ）（ベクトン‐ディッキンソン
、サンホセ、カリフォルニア、バイオソース・インターナショナル、カマリーロ
、カリフォルニア）にコンジュゲートされる。
【０２１２】 免疫化は、腹腔内、皮下、筋肉内、静脈内を含むいずれかの常用経路で行われ
得るが、これらに限定はされない。免疫は、アジュバントの存在下または非存在
下であり得る。一般に、１００−１０００万個の細胞を一次免疫で注射する。例
えばＲＢＣが溶解され、血小板が除去された骨髄製品により広範に免疫化された
動物は、幹／始原細胞を含め、残存する系統の全てを有する。これらのタイプの
骨髄製品を用いることにより、抗原に対する応答は、広範な種類の表面受容体に
対して産生された抗体により当然非常に広範なものとなる。選別された集団、例
えばＣＤ３４+細胞により免疫化された動物の場合、免疫応答における多様性は
低くなるが、幹細胞または一系統に特異的な効果をもつ抗体の同定が容易になり
得る。
【０２１３】 一次免疫後、動物に対し、同じ免疫原により１回またはそれ以上ブースターを
与えると、二次免疫応答が生じる。２次免疫応答から作成されたライブラリーか
らは、親和力の成熟によりさらに高い親和力をもつ抗体フラグメントが当然得ら
れる。
【０２１４】 前免疫後ブースター免疫化を行い、血液を集め、血清を血清抗体評価用に製造
する。標的細胞に対する免疫前および免疫血清による間接的細胞ＥＬＩＳＡを用
いることにより、特性未確認の細胞抗原に対する抗体についてスクリーニングす
る。これらの全細胞ＥＬＩＳＡにおいて、標的細胞（１×１０7細胞／ml）をマ
イクロタイタープレート（１×１０6細胞／ウェル）へ分配し、徐々に沈降させ
る（１５００rpm／４℃／５'）。培養上清を吸引により除去する。細胞を洗浄緩
衝液（ＰＢＳ／１％ＢＳＡ／０.１％ＮａＮ3）で簡単に洗浄し、沈降させる。細
胞を、１/５０、１/１００、１/５００、１/１０００、１/５０００の血清希釈
液を含む１００μｌ溶液に再懸濁する。細胞および抗体を４℃で１時間インキュ
ベーションする。試料が再び徐々に沈降する。上清を吸引により除去し、細胞を
洗浄緩衝液で２回洗浄する。ペレットを１００μｌの２0抗体‐酵素コンジュゲ
ート（アルカリ性ホスファターゼまたは西洋ワサビペルオキシダーゼにコンジュ
ゲートした２次ヤギ抗ウサギまたはヤギ抗ニワトリ抗体）に再懸濁する。プレー
トを４℃／１時間でインキュベーションし、次いで細胞を洗浄緩衝液により２回
洗浄する。ペレットを現像剤試薬、１００μｌ／ウェルに再懸濁する。現像剤は
、アルカリ性ホスファターゼ２次抗体の場合ＰＮＰＰ(シグマ、セントルイス、
ミズーリ)または西洋ワサビペルオキシダーゼ抗体の場合ＡＢＴＳ（シグマ、セ
ントルイス、ミズーリ）である。酵素反応を続行させ、適当な波長で視覚的にま
たはマイクロタイタープレートリーダーで読み取る。陽性血清ＥＬＩＳＡ試験結
果を生じる免疫化のもののみ、この方法の次の段階にもって行く（ライブラリー
構築）。
【０２１５】 ライブラリー構築 最終ブースト後１週間以内に、陽性血清ＥＬＩＳＡ試験後、動物を捕獲し、１
次および２次リンパ様器官（脾臓、骨髄および血液）を採取する。末梢血リンパ
球を、フィコルまたはパーコルクッション（シグマ、セントルイス、ミズーリ）
において血液から分離する。フェノール／グアニジンチオシアネート方法（トラ
イ・リエイジェント、モレキュラー・リサーチ・センター、シンシナチ、オハイ
オ）により脾臓、骨髄および末梢血リンパ球からＲＮＡを分離する。第一鎖ｃＤ
ＮＡ合成キット（ベーリンガー・マンハイム、インディアナポリス、インディア
ナ）を使用し、オリゴ（ｄＴ）15プライマー、デオキシヌクレオチドおよびＡＭ
Ｖ逆転写酵素を用いてＲＮＡをｃＤＮＡに逆転写する。
【０２１６】 Ｆａｂフラグメントおよび／または１本鎖可変領域（ｓｃＦｖ）発現ライブラ
リーを、各免疫化動物から構築する。各ライブラリーのための表面ディスプレー
ベクターはｐＲＬ４であり（図１参照）、パッケージされたファージミド粒子の
表面でキメラ発現産物をディスプレーさせ得る。ｐＲＬ４は、ｐＣｏｍｂ３Ｈの
修飾バージョンである（バルバス,C.F.IIIおよびバートン,D.R.、１９９４。Mon
oclonal Antibodies from Combinatorial Libraries。コールドスプリングハー
バー・ラボラトリー・コース・マニュアル、コールドスプリングハーバー、ニュ
ーヨーク、バートン,D.R.、バルバス,C.F.III、Advances in Immunology ５７：
１９１−２８０、１９９４、ラング,I.M.、チュアング,T.L.、バルバス,C.F.III
、シュリーフ,R.R.、J. Biol. Chem. ２７１：３０１２６−３０１３５、１９９
６）。それは、プライマーＮＰＣＡＭＢ−Ｆ１（ＣＡＣＣＡＴＧＧＣＧＣＡＴＡ
ＣＣＣＧＴＡＣＧＡＣＧＴＴＣＣＧＧＡＣＴＡＣＧＣＴＴＣＴＴＡＧＧＡＧＧＧ
ＴＧＧＴＧＧＣＴＣＴ，配列番号１）およびＮＰＣ３ＡＭＢ−Ｂ（ＧＣＴＴＡＣ
ＡＡＴＴＴＣＣＣＡＧＡＴＣＴＧＣＧ、配列番号２）および鋳型プラスミドｐＣ
ｏｍｂ３Ｈ（バルバス,C.F.IIIおよびバートン,D.R.、コールドスプリング・ラ
ボラトリー・コース・マニュアル、Monoclonal Antibodies from Combinatorial
Libraries、１９９４）を用いるＰＣＲ増幅により構築された。これは、血球凝
集素デカペプチド（ＨＡ−ｄｐ）（フィールド,J.、ニカワ,J.I.、ブロエク,D.
、マクドナルド,B.、ロジャーズ,L.、ウィルソン,I.A.、ラーナー,R.A.、ウィグ
ラー,M.、Mol. Cell. Biol. ８：２１５９−２１６５、１９８８）、アンバー停
止コドン（ＴＡＧ）および遺伝子IIIを含むフラグメントを増幅する。生成した
ＰＣＲ産物は、ＨＩＳ６配列およびＳｆｉＩおよびＳｐｅＩ制限部位が５'末端
に加えられた、プライマーＮＰＣ３ＡＭＢ−Ｆ２（ＧＡＧＧＡＧＧＡＧＧＡＧＧ
ＡＧＧＡＧＡＣＴＡＧＴＧＧＣＣＡＧＧＣＣＧＧＣＣＡＧＣＡＣＣＡＴＣＡＣＣ
ＡＴＣＡＣＣＡＴＧＧＣＧＣＡＴＡＣＣＣＧＴ、配列番号３）およびＮＰＣ３Ａ
ＭＢ−Ｂ（配列番号２）による２次ＰＣＲ反応における鋳型として使用された。
最終ＰＣＲ産物をベクターｐＣｏｍｂ３Ｈへクローン化し、配列分析および機能
発現により確認した。ｐＲＬ４において、抗体フラグメントをＳｆｉＩ制限部位
へクローン化する。
【０２１７】 ｐＲＬ４において、１本鎖抗体フラグメントをエシェリキア・コリ（E.coli）
ｌａｃＺプロモーター、リボソーム結合部位およびｏｍｐＡ先導配列の下流にク
ローン化する。これらのエレメントにより、ＩＰＴＧによる発現が誘導され、Ｏ
ｍｐＡ先導配列を介したペリプラズムへの分泌が行われ得る。
【０２１８】 ｐＲＬ４における最終ハイブリッドＦａｂ発現構築物では、軽および重鎖は単
一ＳｆｉＩフラグメントとしてクローン化される。この方法の場合、軽鎖フラグ
メントをエシェリキア・コリ（E.coli）ｌａｃＺプロモーター、リボソーム結合
部位およびｏｍｐＡ先導配列の下流にクローン化する。これらのエレメントによ
りＩＰＴＧによる発現が誘導され、ｏｍｐＡ先導配列を介した細胞からの分泌が
行われ得る。軽鎖フラグメントの後には、ＰＣＲプライマーにより提供された配
列が続き、停止コドン、第２リボソーム結合部位およびエシェリキア・コリ（E.
coli）pelＢ先導配列が含まれる。ハイブリッド重鎖遺伝子を、繊維状ファージ
遺伝子III（ｇIII）配列（アミノ酸２３０−４０６）との枠で融合させる。アン
バー停止コドンは融合接合点に存在する。ｓｕｐＥ細菌宿主、例えばＥＲ２３５
７（ニューイングランド・バイオラブズ、ベヴァリー、マサチューセッツ）では
、アンバー突然変異誘発は抑制されている。プロモーター誘導時、単一ポリシス
トロン性メッセージは転写され、２つのポリペプチド、軽鎖および重鎖遺伝子II
I融合タンパク質として翻訳される。合成後、これらのポリペプチドは、先導配
列により指令される通り細菌ペリプラズム空間へ輸送される。ペリプラズム空間
において、重鎖ｐIII融合タンパク質は膜へ挿入され、軽および重鎖はジスルフ
ィド結合により共有結合され、抗原結合部位を形成する。ヒト不変域ＣＨ１およ
びＣL配列は、重および軽鎖間にジスルフィド結合を形成するシステインを含む
。ヘルパーファージによる重感染時、これらのフラグメントはＦａｂ−ｐIII融
合体としてファージ表面の細胞から輸送される。非ｓｕｐＥ宿主、例えばＴＯＰ
１０Ｆ'（インヴィトロゲン、カールスバッド、カリフォルニア）において、ア
ンバー停止コドンが認識され、可溶性Ｆａｂフラグメントが生成される。ｐＲＬ
４の他の特徴には、２種の分子標識、ＨＡおよびＨｉｓ６がある。ＨＡ標識は、
ＨＡ.１１抗体（バブコ、バーケリー、カリフォルニア）により認識される。Ｈ
ｉｓ６標識により、ニッケル‐キレートクロマトグラフィー（キアゲン、サンタ
カリタ、カリフォルニア）による抗体フラグメントのアフィニティー精製が行わ
れ得る。
【０２１９】 ＳｃＦｖフラグメント １本鎖可変域ライブラリー（ｓｃＦｖ）を、各免疫化動物から構築する。全結
合ドメインが一つのポリペプチドに含まれるため、１本鎖ライブラリーは有用で
ある。軽鎖可変域は、リンカー領域により重鎖可変域から分離される。短いリン
カー（＜１１アミノ酸）の使用は、一ＳｃＦｖのＶHが別のＳｃＦｖ分子のＶLと
会合している場合およびその逆の場合の２量体複合体に適しており、これらの分
子はジアボディ（diabody）と称す（コート,A.A.、マーキィ,R.L.、カードウェ
ル,J.B.、グルエン,L.C.、イヴァンチ,N、ローレンス,M.G.ら、Eur. J. Biochem
. ２２１：１５１−１５７、１９９４）。これは、単量体ＳｃＦｖの折り畳みが
＜１１アミノ酸のリンカーにより損なわれるためである（アルフザン,K.、タッ
キネン,K.、シズマン,D.、ソダールンド,H.およびティーリ,T.T.、Protein-Eng.
８：７２５−７３１、１９９５）。長いリンカー（＞１１アミノ酸）は単量体
ＳｃＦｖから単一抗原結合ドメインへの折り畳みに好都合であるため、２量体形
成は除外される。この実施例において、ｓｃＦｖフラグメントは、７アミノ酸長
の短いリンカーまたは１８アミノ酸長の長いリンカーにより構築される。
【０２２０】 ｐＲＬ４の設計は、下記で詳述されているようにファージ表面における可溶性
形態でのｓｃＦｖ抗原結合ドメインの２量体化を可能にする。プラスミドがｓｕ
ｐＥ細菌宿主、例えばＥＲ２５３７（Ｆ' Ｓｕｐ Ｅ、ニューイングランド・バ
イオラブズ、ベヴァリー、マサチューセッツ）へ形質転換されるとき、アンバー
突然変異誘発は時間のほぼ５０パーセント抑制される。こうして、発現されたｓ
ｃＦｖの半分は繊維状ファージ遺伝子IIIタンパク質（アミノ酸２３０−４０６
）と融合され、他の半分は遺伝子IIIの直前に終結され、可溶性ｓｃＦｖが生成
される。ｓｃＦｖ−ｐIII融合体および可溶性ｓｃＦｖ生成物は両方とも、Ｏｍ
ｐ Ａシグナル配列を有し、ペリプラズムへ輸送され、そこでそれらはジアボデ
ィと称される２量体ｓｃＦｖ複合体を形成し得る（コート,A.A.、マルビィ,R.L.
、カードウェル,J.B.、グルエン,L.C.、イヴァンチ,N.、ローレンス,M.C.ら、Eu
r. J. Biochem.２２１：１５１−１５７、１９９４）。ジアボディは、１つのｓ
ｃＦｖのＶHが第２のｓｃＦｖ−ｐIIIのＶLと一対になり、２価抗体フラグメン
トが形成されるように折り重なることが予測される。ヘルパーファージによる重
感染時、これらのジアボディはｐIII‐抗体フラグメントとしてファージ表面で
細胞から輸送される。非ｓｕｐＥ宿主、例えばＴＯＰ１０Ｆ'（インヴィトロゲ
ン、カールスバッド、カリフォルニア）では、アンバー停止コドンが認識され、
可溶性ｓｃＦｖジアボディが生成される。
【０２２１】 図２ＡおよびＢは、ｓｃＦｖクローニング計画で使用されるプライマーの概略
図である。免疫グロブリン可変域は全て、抗原結合部位を形成すべく企図された
相補性決定領域（ＣＤＲ）としても知られている、高頻度可変領域、およびフレ
ームワーク領域（ＦＲ）として知られている、頻度の劣る可変領域により構成さ
れる。オリゴは、所定の生物体の公表された抗体の全フレームワーク領域にアニ
ーリングし、それらを増幅するように設計されている。多くの生物体からの抗体
配列は、単一出典：カバット,E.A.、ウー,T.T.、ペリー,H.M.、ゴッテスマン,K.
S.およびフォエラー,C.１９９１.Sequences of Proteins of Immunological Int
erest.１−３巻、保健福祉省、公衆衛生総局、国立衛生研究所、ＮＩＨ公開第９
１−３２４２号に編集されている。様々な動物の全免疫グロブリンレパートリー
の増幅用プライマーから成るセットが開発され、記載されたように有効に使用さ
れている（バルバス,C.F.IIIおよびバートン,D.R.、１９９４、Monoclonal Anti
bodies from Combinatorial Libraries、コールドスプリングハーバー・ラボラ
トリー・コース・マニュアル）。これらのプライマーは、クローニング用制限部
位、およびＰＣＲオーバーラップ伸長に使用される、軽および重鎖可変域を単一
ポリペプチドへ連係するアミノ酸を提供するための軽および重鎖可変域間のリン
カー配列を含む。リンカー配列は短い（例えば７アミノ酸をコードする）または
長い（例えば１８アミノ酸をコードする）ものであり得る。ウサギ可変軽鎖「フ
ォワード」プライマーは、特異的軽鎖群（複数も可）のフレームワーク１（ＦＲ
１）内の配列に結合する。縮重は、単一プライマーが他の密接に関連したＦＲ１
可変領域配列を増幅するようにプライマーへ組込まれる。制限部位は各プライマ
ーの５'末端に組込まれ、クローニングを容易にする。同様に、各々特異的な群
（複数も可）のウサギ軽鎖ＦＲ４領域とアニーリングするウサギ可変軽鎖配列用
「リバース」プライマーが存在する。制限部位およびリンカー配列は、「リバー
ス」プライマーの各々の３'末端に組込まれる。１本鎖短ライブラリーの場合、
配列は５'−ＧＧＡＡＧＡＡＧＡＧＧＡＡＣＣ−３'（配列番号３４）である。ウ
サギ重鎖可変域フラグメントの場合、ＦＲ領域に結合する配列も同様に設計され
るが、ただしプライマーは公開されたウサギ重鎖配列（カバット,E.A.ら、１９
９１）にアニーリングするよう設計されている。制限部位およびリンカー配列は
、これらのプライマーの各々の５'末端に組込まれ、ＰＣＲ増幅の第２ラウンド
中に使用される。重鎖可変領域プライマーに組込まれたリンカー配列は、軽鎖リ
ンカー配列５'−ＧＧＴＧＧＴＴＣＧＴＣＴＡＧＡＴＣＴＴＣＣ−３'（配列番号
３５）の逆補体である。簡単に述べると、可変重（ＶH）および軽（ＶL）鎖は別
々に増幅され、次いでリンカー領域を通じたオーバーラップ伸長によりＰＣＲ増
幅の追加ラウンド用に合わされ、ｓｃＦｖフラグメント産物を生成する。このク
ローニング段階はまた、重および軽鎖をランダムに会合させ得る。生成したアニ
ーリング産物の最終５'および３'末端に結合するオリゴを用いて全生成物が増幅
される。最終ＰＣＲ産物は、各々短いリンカー（７アミノ酸）により分離された
ＶH領域およびＶL領域を含み、ｐＲＬ４へクローン化される（図１）。ｓｃＦｖ
長ライブラリー構築するためには、方法は同じであるが、ただし軽鎖リバースプ
ライマーへ組込まれたリンカーの配列は３３ヌクレオチド伸長され、追加の１１
アミノ酸をコードする。この場合、配列ＣＣＣＡＣＣＡＣＣＧＣＣＣＧＡＧＣＣ
ＡＣＣＧＣＣＡＣＣＡＧＡＧＧＡ（配列番号３６）は、７アミノ酸短リンカーを
コードするヌクレオチドのちょうど３'に含まれる。ｓｃＦｖ長ライブラリー用
の重鎖プライマーは、ｓｃＦｖ短ライブラリー に使用されるものと同一である
。当業界の一平均的技術者であれば、多くの異なる種からの大きな免疫グロブリ
ンレパートリーライブラリーを増幅する他のプライマーをこれらの設計から推定
し、設計することができるはずである。
【０２２２】 重および軽鎖可変域遺伝子は、鋳型としてｃＤＮＡを用いるＰＣＲにより別々
に増幅される。使用されるプライマーは、免疫化された動物により異なる。ウサ
ギからのｓｃＦｖライブラリーの構築は、次の要領で行われる（図２参照）。軽
鎖可変領域遺伝子を、フォワードカッパプライマーＲＳＣＶＫ−１（ＧＧＧＣＣ
ＣＡＧＧＣＧＧＣＣＧＡＧＣＴＣＧＴＧＭＴＧＡＣＣＣＡＧＡＣＴＣＣＡ、配列
番号４）、ＲＳＣＶＫ−２（ＧＧＧＣＣＣＡＧＧＣＧＧＣＣＧＡＧＣＴＣＧＡＴ
ＭＴＧＡＣＣＣＡＧＡＣＴＣＣＡ、配列番号５）、ＲＳＣＶＫ−３（ＧＧＧＣＣ
ＣＡＧＧＣＧＧＣＣＧＡＧＣＴＣＧＴＧＡＴＧＡＣＣＣＡＧＡＣＴＧＡＡ、配列
番号６）およびフォワードラムダプライマーＲＳＣｌａｍｂｄａ１ ＲＳＣＬ−
１（ＧＧＧＣＣＣＡＧＧＣＧＧＣＣＧＡＧＣＴＣＧＴＧＣＴＧＡＣＴＣＡＧＴＣ
ＧＣＣＣＴＣ、配列番号７）（ギブコ／ＢＲＬ、ガイザーズバーグ、メリーラン
ド）を用いて第１鎖ｃＤＮＡから増幅する（図２Ａ参照）。これらのプライマー
は、異なる軽鎖群（カバット,E.A.ら、１９９１）のフレームワーク１（ＦＲ１
）配列に結合し、クローニング目的用に可変配列の制限酵素部位５'を加える。
カッパ軽鎖増幅用のリバースプライマーは、ＲＫＢ９Ｊ０−Ｂ（ＧＧＡＡＧＡＴ
ＣＴＡＧＡＧＧＡＡＣＣＡＣＣＴＡＧＧＡＴＣＴＣＣＡＧＣＴＣＧＧＴＣＣＣ、
配列番号８）、ＲＫＢ９Ｊ１０−Ｂ（ＧＧＡＡＧＡＴＣＴＡＧＡＧＧＡＡＣＣＡ
ＣＣＴＴＴＧＡＴＴＴＣＣＡＣＡＴＴＧＧＴＧＣＣ、配列番号９）、ＲＫＢ４２
Ｊ０−Ｂ（ＧＧＡＡＧＡＴＣＴＡＧＡＧＧＡＡＣＣＡＣＣＴＴＴＧＡＣＳＡＣＣ
ＡＣＣＴＣＧＧＴＣＣＣ、配列番号１０）であり、およびラムダ軽鎖増幅用のリ
バースプライマーはＲｊｌａｍｂｄａ０−Ｂ（ＧＧＡＡＧＡＴＣＴＡＧＡＧＧＡ
ＡＣＣＡＣＣＧＣＣＴＧＴＧＡＣＧＧＴＣＡＧＣＴＧＧＧＴＣＣＣ、配列番号１
１）（ギブコ／ＢＲＬ、ガイザーズバーグ、メリーランド）である（図２Ａ参照
）。これらのプライマーはカッパおよびラムダ軽鎖群のＦＲ４配列に結合し、Ｐ
ＣＲオーバーラップ伸長によりリンカー配列を生成するのに使用される外延配列
を含む。軽鎖反応において、各カッパフォワードプライマーは、９種の別々の反
応において各カッパリバースプライマーと対を成す。１０番目の軽鎖反応は２つ
のラムダプライマーを用いる。重鎖可変領域遺伝子を、フォワードプライマーＲ
ＳＣＶＨ０１（ＧＧＴＧＧＴＴＣＣＴＣＴＡＧＡＴＣＴＴＣＣＣＡＧＴＣＧＧＴ
ＧＧＡＧＧＡＧＴＣＣＲＧＧ、配列番号１２）、ＲＳＣＶＨ０２（ＧＧＴＧＧＴ
ＴＣＣＴＣＴＡＧＡＴＣＴＴＣＣＣＡＧＴＣＧＧＴＧＡＡＧＧＡＧＴＣＣＧＡＧ
、配列番号１３）、ＲＳＣＶＨ０３（ＧＧＴＧＧＴＴＣＣＴＣＴＡＧＡＴＣＴＴ
ＣＣＣＡＧＴＣＧＹＴＧＧＡＧＧＡＧＴＣＣＧＧＧ、配列番号１４）およびＲＳ
ＣＶＨ０４（ＧＧＴＧＧＴＴＣＣＴＣＴＡＧＡＴＣＴＴＣＣＣＡＧＳＡＧＣＡＧ
ＣＴＧＲＴＧＧＡＧＴＣＣＧＧ、配列番号１５）（ギブコ／ＢＲＬ、ガイザーズ
バーグ、メリーランド）を用いて増幅する（図２Ｂ参照）。これらのオリゴヌク
レオチドは可変領域フレームワーク１配列に結合し、オーバーラップＰＣＲ伸長
によりリンカー配列を生成するのに使用される５'伸長部を含む。重鎖増幅用リ
バースプライマーは、ＲＳＣＧ−Ｂ（ＣＣＴＧＧＣＣＧＧＣＣＴＧＧＣＣＡＣＴ
ＡＧＴＧＡＣＴＧＡＹＧＧＡＧＣＣＴＴＡＧＧＴＴＧＣＣＣ、配列番号１６）（
ギブコ／ＢＲＬ、ガイザーズバーグ、メリーランド）である（図２Ｂ参照）。Ｒ
ＳＣＧ−Ｂは、ウサギ定常ＦＲ４／ＣＨ１配列に結合し、制限部位の伸長部を担
うため、クローニングが容易になる。重鎖ＰＣＲ反応において、各フォワードプ
ライマーは、４種の独立した重鎖反応用のリバースプライマーと一対になる。
【０２２３】 重および軽鎖増幅およびフラグメントのゲル精製後、軽鎖および重鎖フラグメ
ントを全て合わせると、追加ラウンドのＰＣＲ増幅により、オーバーラップ伸長
が行われる。この最終オーバーラップＰＣＲ反応において、軽鎖可変領域フラグ
メントおよび重鎖可変領域フラグメントをアニーリングし、増幅する。このＰＣ
Ｒ反応は、プライマーＲＳＣ−Ｆ（ＧＡＧＧＡＧＧＡＧＧＡＧＧＡＧＧＡＧＧＣ
ＧＧＧＧＣＣＣＡＧＧＣＧＧＣＣＧＡＧＣＴＣ、配列番号１７）（ギブコ／ＢＲ
Ｌ、ガイザーズバーグ、メリーランド）（図２Ａ参照）およびＲＳＣ−Ｂ（ＧＡ
ＧＧＡＧＧＡＧＧＡＧＧＡＧＧＡＧＣＣＴＧＧＣＣＧＧＣＣＴＧＧＣＣＡＣＴＡ
ＧＴＧ、配列番号１８）（ギブコ／ＢＲＬ、ガイザーズバーグ、メリーランド）
（図２Ｂ参照）を用いており、これらは軽および重鎖可変領域配列に遺伝子工学
的操作が加えられた制限部位に結合する。このクローニング段階により、重およ
び軽鎖のランダムな会合が行われる。ＰＣＲ産物は、ＳfｉＩにより制限される
。最終ＳfiＩ制限フラグメントは、各々リンカーにより分離された１つの重鎖可
変領域および１つの軽鎖可変領域を含んでおり、ｐＲＬ４のＳｆｉＩ部位へクロ
ーン化される（図４参照）。連結反応は、エシェリキア・コリ（E.coli）ＥＲ２
５３７遺伝子型：Ｆ'ｐｒｏＡ+Ｂ+ｌａｃＩq／Δ（ｌａｃＺ）Ｍ１５／ｆｈｕＡ
２（ｔｏｎＡ）Δ（ｌａｃ-proＡＢ）ｓｕｐＥthi−１Δ（hsdＭＳ−mcrＢ）５
へ形質転換され、アンピシリン耐性（ＡｍｐR）コロニーは全形質転換体のフラ
クションで選択される。形質転換体の残りを液体培養で増幅する。コロニー数を
用いて、コロニーの大きさを測定する。抗体フラグメントがプラスミドで有効に
クローン化されたことを確認するため、制限消化による個々のクローンのランダ
ムな分析により、適当な大きさの挿入体に関するチェックを行う。ｓｃＦｖフラ
グメントの単一ライブラリーは、１０7を越える個々の成分を含む。
【０２２４】 ｐＲＬ４における最終１本鎖発現構築物では、１本鎖抗体フラグメントを、エ
シェリキア・コリ（E.coli）ｌａｃＺプロモーター、リボソーム結合部位および
omp Ａ先導配列の下流にクローン化する。これらのエレメントにより、ＩＰＴＧ
による発現が誘導され、サプレッサー株ＥＲ２５３７での発現時omp Ａ先導配列
を介して細胞から分泌が行われる。１本鎖フラグメントを繊維状ファージ遺伝子
III（ｇIII）配列（アミノ酸２３０−４０６）との枠で融合する。ｇIIIタンパ
ク質生成物、ｐIIIは、感染性に必要な小コートタンパク質である。ＩＰＴＧに
よるプロモーター誘導時、１本鎖抗体−ｐIII融合体が合成され、細菌ペリプラ
ズム空間へ輸送される。ペリプラズム空間では、ｓｃＦｖ−遺伝子III融合タン
パク質は膜中へ挿入される。ヘルパーファージによる重感染時、これらのフラグ
メントは、ｐIII−抗体フラグメントとしてファージ表面にある細胞から輸送さ
れる。ファージミド表面において融合に使用される他の可能なタンパク質には、
繊維状コートタンパク質ｐVIIIおよび他のコートタンパク質がある。
【０２２５】 ニワトリｓｃＦｖライブラリーの場合、方法は本質的には同じであるが、ただ
し、使用されるプライマーはニワトリ軽および重鎖配列に特異的である（カバッ
ト,E.A.ら、１９９１）。プライマー伸長配列およびリンカー配列は、ウサギプ
ライマーと同じであり、ｐＲＬ４へのクローニングが簡易化される。例に示され
たプライマーおよびカバット,E.A.らにより開示された配列に基くと、当業界の
平均的技術者であれば、いかなる種類に関するプライマーでも容易に設計し、ｓ
ｃＦｖライブラリーを構築することができる。
【０２２６】 Ｆａｂフラグメント Ｆａｂフラグメントライブラリーは、天然抗原認識部位を維持しており、親和
力の維持を確保するのに有用である。
【０２２７】 プライマーは、公開されたＥＲおよび定常領域配列に基いて設計される（カバ
ット,E.A.ら、１９９１）。現行の計画では、プライマーは、ハイブリッド抗体
フラグメント構築（ウサギ可変／ヒト定常）に使用されるが、プライマーはいか
なる種類からの定常領域の場合でも同様に設計され得る。例えば、ウサギから誘
導されたＦａｂフラグメントライブラリーは、ウサギからの可変および定常の両
領域を有し得る。この場合、可変領域フォワードプライマーは同じ状態のままで
あるが、リバースプライマーは、ウサギカッパ軽鎖、ウサギラムダ軽鎖またはウ
サギ重鎖配列からの定常領域配列を含む。ハイブリッドＦａｂライブラリーもま
た構築され得る。これらのライブラリーは、免疫化動物からの可変領域およびヒ
トＩｇＧ１からの定常領域（ＣLおよびＣH１）により構成される。ハイブリッド
Ｆａｂの場合、各Ｆａｂフラグメントは、免疫化動物からの可変領域およびヒト
ＩｇＧ１からの定常領域（ＣLおよびＣＨ１）により構成される。ウサギおよび
ニワトリの免疫グロブリンレパートリーの増幅用およびキメラＦａｂ生成用プラ
イマーから成るセットが開発されている（バルバス，Ｃ.Ｆ.IIIおよびバートン
，Ｄ.Ｒ.、１９９４. Monoclonal Antibodies from Combinatorial Libraries.
コールドスプリングハーバー・ラボラトリー・コース・マニュアル、および組み
合わせライブラリーからのモノクローナル抗体に関する１９９７年１１月コース
、コールドスプリングハーバー・ラボラトリー）。「フォワード」プライマーは
「リバース」プライマーと一対になって、ウサギ可変カッパ配列をＰＣＲ増幅し
、一フォワードプライマーは一リバースプライマーと一対になって、ラムダ軽鎖
可変領域配列が増幅される。ヒト定常カッパ配列は、ファージディスプレープラ
スミドにおいて公開されたヒトカッパ定常領域配列（カバット,E.A.ら、１９９
１）にアニーリングする「フォワード」プライマー、およびｐｅｌＢ先導配列に
アニーリングするリバースプライマーを用いてヒト抗体Ｆａｂ（パーソン,M.A.
、カオチエン,R.H.およびバートン,D.A.、Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. ８８
：２４３２−２４３６、１９９１）を担うファージディスプレープラスミドから
増幅される。全軽鎖フラグメントがヒト定常カッパフラグメントとプールされる
オーバーラップＰＣＲ反応により、ハイブリッド軽鎖フラグメントが生成される
。重鎖についても同様の方法を用いることにより、ハイブリッド重鎖フラグメン
トが生成される。最終および第３ラウンドのＰＣＲ反応において、ハイブリッド
軽鎖をハイブリッド重鎖とプールし、オーバーラップＰＣＲ増幅を外部プライマ
ーで遂行すると、各々ハイブリッド軽鎖およびハイブリッド重鎖の両配列をもつ
フラグメントが生成される。
【０２２８】 重および軽鎖可変領域遺伝子を、鋳型としてｃＤＮＡを用いるＰＣＲにより増
幅する。ウサギＦａｂフラグメントライブラリーの場合、構築は次の要領で行わ
れる。フォワードプライマーＲＳＣＶＫ１（配列番号４）、ＲＳＣＶＫ２（配列
番号５）、ＲＳＣＶＫ３（配列番号６）（オペロン・テクノロジーズ、アラメダ
、カリフォルニア）を用いて、軽鎖可変領域遺伝子を増幅する（図３Ａ参照）。
これらのプライマーは、異なるカッパ軽鎖群（カバット,E.A.ら、１９９１）の
フレームワーク１（ＦＲ１）配列に結合し、クローニング目的のため可変配列の
制限酵素部位５'を組込む。この種類から抗体ライブラリーを構築するためのウ
サギカッパ軽鎖およびガンマ重鎖をコードするｍＲＮＡ増幅用ウサギプライマー
の設計および利用については、ラング,I.M.、バルバス,C.F.III、シュリーフ,R.
R.、Gene １７２：２９５−２９８（１９９６）に記載されている。ラムダ軽鎖
をフォワードプライマーＲＳＣＬ−１（配列番号７）により増幅する。カッパ軽
鎖増幅用リバースプライマーは、ＲＨＨｙｂＫ１−Ｂ（ＡＧＡＴＧＧＴＧＣＡＧ
ＣＣＡＣＡＧＴＴＣＧＴＴＴＧＡＴＴＴＣＣＡＣＡＴＴＧＧＴＧＣＣ、配列番号
１９）、ＲＨＨｙｂＫ２−Ｂ（ＡＧＡＴＧＧＴＧＣＡＧＣＣＡＣＡＧＴＴＣＧＴ
ＡＧＧＡＴＣＴＣＣＡＧＣＴＣＧＧＴＣＣＣ、配列番号２０）、ＲＨＨｙｂＫ３
−Ｂ（ＡＧＡＴＧＧＴＧＣＡＧＣＣＡＣＡＧＴＴＧＣＴＴＴＧＡＣＳＡＣＣＡＣ
ＣＴＣＧＧＴＣＣＣ、配列番号２１）（オペロン・テクノロジーズ、アラメダ、
カリフォルニア）である（図３Ａ参照）。ラムダ軽鎖用リバースプライマーは、
ＲＨＨｙｂＬ−Ｂ（ＡＧＡＴＧＧＴＧＣＡＧＣＣＡＣＡＧＴＴＣＧＧＣＣＴＧＴ
ＧＡＣＧＧＴＣＡＧＣＴＧＧＧＴＣＣＣ、配列番号２２）である。これらのプラ
イマーは、軽鎖群（カバット,E.A.ら、１９９１）のＦＲ４配列に結合し、ヒト
定常領域配列の伸長部を含む。この伸長部によって、ヒトカッパ鎖定常領域配列
がＰＣＲ反応の第２ラウンドにおいて付加され得る。軽鎖反応では、各カッパフ
ォワードプライマーは、９種の独立したＰＣＲ反応において各カッパリバースプ
ライマーと一対になる。第１０軽鎖ＰＣＲ反応は、ラムダフォワードおよびリバ
ースプライマーを用いる。ヒト定常カッパ配列は、いずれのヒトカッパ鎖クロー
ンからでも増幅され得る。この場合、フォワードプライマー、ＨＫＣ−Ｆ（ＣＧ
ＡＡＣＴＧＴ ＧＧＣＴＧＣＡＣＣＡＴＣＴＧＴＣ、配列番号２３）（図３Ｂ参
照）は、カバット,E.A.ら（１９９１）が発表したようにヒト定常カッパ配列に
結合する。リバースプライマー、リードＢ（ＧＧＣＣＡＴＧＧＣＴＧＧＴＴＧＧ
ＧＣＡＧＣ、配列番号２４）は、ｐＣｏｍｂ３Ｈにクローン化されたヒトカッパ
鎖のプラスミド配列に結合する。別法として、プライマーは、エシェリキア・コ
リ（E.coli）での発現に必要な配列（例、停止コドン、リボソーム結合部位、お
よびｐｅｌＢ先導配列）を組込むように設計され得る。フラグメントのゲル精製
後、第２ＰＣＲ反応が遂行され、そこで可変領域ＰＣＲフラグメント全てがヒト
定常カッパＰＣＲフラグメントおよびプライマーＲＳＣ−Ｆ（配列番号１７）（
図３Ａ参照）およびリードＢ（配列番号２４）と組み合わされる。この反応によ
り、ヒト定常カッパ配列への軽鎖可変領域の融合が行われる。
【０２２９】 重鎖可変領域遺伝子は、ラング,I.M.、バルバス,C.F.III、シュリーフ,R.R.、
Gene １７２：２９５−８（１９９６）に記載されたように、フォワードプライ
マーＲｈｙＶＨ１（ＧＣＴＧＣＣＣＡＡＣＣＡＧＣＣＡＴＧＧＣＣＣＡＧＴＣＧ
ＧＴＧＧＡＧＧＡＧＴＣＣＲＧＧ、配列番号２５）、ＲｈｙＶＨ２（ＧＣＴＧＣ
ＣＣＡＡＣＣＡＧＣＣＡＴＧＧＣＣＣＡＧＴＣＧ ＧＴＧＡＡＧＧＡＧＴＣＣＧ
ＡＧ、配列番号２６）、ＲｈｙＶＨ３（ＧＣＴＧＣＣＣＡＡＣＣＡＧＣ ＣＡＴ
ＧＧＣＣＣＡＧＴＣＧＹＴＧＧＡＧＧＡＧＴＣＣＧＧＧ、配列番号２７）および
ＲｈｙＶＨ４（ＧＣＴＧＣＣＣＡＡＣＣＡＧＣＣＡＴＧＧＣＣＣＡＧＳＡＧＣＡ
ＧＣＴＧＲＴＧＧＡＧＴＣＣＧＧ、配列番号２８）を用いて増幅される（図３Ｃ
参照）。これらのプライマーは、ｐｅｌＢ先導配列をコードする５'配列を含む
。ウサギ重鎖リバースプライマー、ＲＨＨｙＩｇＧＣＨ１−Ｂ（ＣＧＡＴＧＧＧ
ＣＣＣＴＴＧＧＴＧＧＡＧＧＣＴＧＡＲＧＡＧＡＹＧＧＴＧＡＣＣＡＧＧＧＴＧ
ＣＣ、配列番号２９）は、ウサギ定常ＦＲ４配列に結合し、ヒト定常ＣH１配列
の伸長部を有する。従って、４種の独立したＰＣＲ反応は、各フォワードプライ
マーおよびリバースプライマーにより遂行される。ヒト定常ＩｇＧ配列は、鋳型
としてｐＣＯＭＢ３Ｈにおけるヒト抗体クローンおよびヒト定常ＩｇＧ配列、Ｈ
ＩｇＧＣＨ１−Ｆ（ＧＣＣＴＣＣＡＣＣＡＡＧＧＧＣＣＣＡＴＣＧＧＴＣ、配列
番号３０）にアニーリングするフォワードプライマーおよびプラスミド配列にに
アニーリングするリバースプライマー、ｄｐ−ｓｅｑ（ＡＧＡＡＧＣＧＴＡＧＴ
ＣＣＧＧＡＡＣＧＴＣ、配列番号３１）を用いたＰＣＲにより増幅され得る（図
３）。別法として、ヒト配列は、カバット,E.A.ら（１９９１）により発表され
たように定常領域配列にアニーリングし、クローニング目的でリバースプライマ
ーの制限部位が組込まれるプライマーを用いることにより、いずれのヒト抗体ｃ
ＤＮＡライブラリーからでも増幅され得る。フラグメントのゲル精製後、第２セ
ットの重鎖ＰＣＲ反応が遂行され、重鎖可変領域増幅フラグメントは全てヒト重
鎖定常領域フラグメントと組み合わされる。プライマーリードＶＨ（ＧＣＴＧＣ
ＣＣＡＡＣＣＡＧＣＣＡＴＧＧＣＣ、配列番号３２）およびｄｐ−ｅｘ（ＧＡＧ
ＧＡＧ ＧＡＧＧＡＧＧＡＧＧＡＧＡＧＡＡＧＣＧＴＡＧＴＣＣＧＧＡＡＣＧＴ
Ｃ、配列番号３３）を用いるオーバーラップＰＣＲ伸長反応により（図３Ｄ参照
）、ヒト定常領域配列へ重鎖可変領域が融合され得る。最終オーバーラップＰＣ
Ｒ反応において、ハイブリッド軽鎖およびハイブリッド重鎖はアニーリングされ
、プライマーＲＳＣ−Ｆ（配列番号１７）およびｄｐ−ｅｘ（配列番号３３）を
用いて増幅される。生成したフラグメントは、適当な酵素で制限され、ゲル精製
され、ＳｆｉＩ消化ｐＲＬ４へハイブリッド軽および重鎖の両方を含む単一Ｓｆ
ｉＩフラグメントとしてクローン化される。図５は、ｐＲＬ４へクローン化され
た最終ハイブリッドＦａｂフラグメントを説明するＦａｂクローニング計画の概
略図を示す。連結反応は、エシェリキア・コリ（E.coli）ＥＲ２５３７へ形質転
換され、アンピシリン耐性（ＡｍｐR）コロニーは形質転換全てのフラクション
で選択される。残りは液体培養で増幅される。コロニー数を用いて、ライブラリ
ーの大きさを測定する。
【０２３０】 ニワトリＦａｂフラグメントライブラリーの場合、方法は本質的には同じであ
るが、ただし使用されるプライマーはニワトリ軽および重鎖配列に特異的である
（カバット,E.A.ら、１９９１）。プライマー伸長配列はウサギプライマーと同
じであり、ｐＲＬ４へのクローニングが簡易化され、ハイブリッドＦａｂ融合体
が生成される。
【０２３１】 ライブラリーが構築された後、標的細胞を用いてそれらをスクリーニングする
。
【０２３２】 標的細胞 標的細胞は、使用された免疫原、所望の生成物およびスクリーンの目標に基い
て選択される。非常に広範なスクリーンの場合、造血細胞系統の大多数が細胞の
免疫化集団に存在することが重要である。例えば、幹細胞、始原細胞、リンパ球
、単球およびＮＫ細胞を含むことが予測される、単核細胞から成る集団による免
疫化はかなり広範囲であり、幹細胞、異なる系統の始原細胞、リンパ球、単球ま
たはＮＫ細胞に対するアゴニスト抗体または阻害性抗体を産生させる潜在性を有
する。さらに広範なスクリーンでは、ＲＢＣ（赤血球）溶解および洗浄により赤
血球および血小板の大部分を失った全骨髄吸引液を使用する。この集団は、他の
全ての造血系統を包含するものと予測される。これらのライブラリーが一旦構築
されると、スクリーニング用標的細胞はスクリーンの目標により変化する。一度
に多重系統について関連のある抗体を同定するために、標的細胞集団は免疫原と
同じであり得、細胞の多様な集団であり同様に非常に広範であり得る。これらの
試験により、一度に広範で多様な細胞に対する興味深いアゴニストおよび阻害因
子が見出される。多様な細胞集団に関するハイスループットスクリーニングの場
合、抗体ライブラリーの各成分が様々な成熟段階で各細胞系統に暴露されている
のを確認することが必要である。これに代わる方法では、標的集団を単一系統に
限定することにより、単一系統に関連のある抗体を同定する。例えば、好中球は
、タースタッペン,L.W.、サフォード,M.、ローケン,M.R.、Leukemia ４：６５７
−６６３（１９９０）に記載されているようにフロー・サイトメトリーにおける
光散乱シグナルおよびモノクローナル抗体、ＣＤ１１ｂ、ＣＤ１５およびＣＤ１
６の組み合わせを用いて他の系統の細胞から分離され得る。多くの他の造血系統
を標的細胞として使用するため分離することにより、特異系統に対して関連のあ
る抗体が同定され得る。
【０２３３】 別法として、ヒト造血幹細胞再生または分化に関してある一定の役割を演じる
関連抗体が同定され得る。試験によると、ヒト骨髄細胞のＣＤ３４+ＣＤ３８フ
ラクションは、長期移植および多系統分化を可能にする幹細胞を含むことが示さ
れている（Williams Hematologyで再検討、第５版編者：エルネスト・ビュート
ラー、マーシャル Ａ.リヒトマン、バリー Ｓ．コラー、トーマスＪ．キップス
マクグロウ−ヒル、アメリカ合衆国、ピーターＪ．ケセンベリーによる「造血幹
細胞、始原細胞およびサイトカイン類」の章中）。幹細胞はヒト骨髄細胞の非常
に小さいフラクションを占めるため（１×１０5骨髄細胞中１未満）、始原ヒト
幹細胞の表面に特異的なリガンドは、ヒトＣＤ３４+選別１次ヒト細胞を免疫原
として使用した抗体ライブラリーから同定され得る。この場合、標的細胞はＣＤ
３４+集団であり得、ＣＤ３４+ＣＤ３８―細胞を認識する抗体はＦＡＣＳ選別法
、磁気選別法により、または上記標的細胞でのふるい分けにより同定され得る。
この場合における別の標的は、ネズミ造血幹セルライン、例えばＦＤＣＰ−ミッ
クスまたはネズミ多能性造血幹セルラインであり得る（スプーンサー,E.、ヘイ
ワース,C.M.、ダン．Ａ.、デキスター,T.M. １９８６．Differentiation ３１：
１１１−１１８）。標的としてセルラインを用いる利点は、その利用能、クロー
ン特性および操作し易さである。
【０２３４】 従って、標的細胞は、使用された免疫原、所望の最終生成物、所望のスクリー
ンの範囲、利用能、扱い易さを含む基準に基づいて選択される。 最初の標的細胞がネズミ細胞である場合、結局試験は適当なヒトセルラインで
行われる。
【０２３５】 造血にとって好ましい１次細胞およびセルラインは、溶解された全血、ヒト骨
髄単核細胞、ＦＤＣＰ−ミックス、およびＣＤ３４+選別骨髄細胞である。Ｐ１
９細胞の場合、好ましい標的はｐ１９細胞であり、ＮＴＥＲＡ細胞の場合好まし
い標的細胞はＮＴＥＲＡ細胞である。
【０２３６】 ふるい分け ファージ（バクテリオファージまたはファージミド）ディスプレー抗体ライブ
ラリーは、ふるい分けと呼ばれる方法およびＦＡＣＳ選別法および磁気細胞選別
法を用いることにより、マウスセルライン、ヒトセルラインおよび選別および未
選別１次骨髄試料を含め、様々な標的細胞に結合し、細胞表面に残存しているか
またはインターナリゼーションされる抗体フラグメントを担うファージについて
選択される。全細胞ふるい分け方法については以前に報告されている（シーゲル
,D.L.、チャング,T.Y.、ラッセル,S.L.およびブニャ,V.Y.、J. Immunol. Method
s １９９７、２０６：７３−８５）。
【０２３７】 選択方法の実施前に、初回ライブラリーを宿主細胞（ＥＲ２５３７）へ電気穿
孔する。ライブラリー培養物を対数相まで増殖し、ヘルパーファージ、例えばＶ
ＣＳＭ１３など、市販のヘルパーファージ（ストラタジーン、ラジョラ、カリフ
ォルニア）により重感染させる。重感染により、プラスミドをファージミド粒子
にパッケージするのに必要とされる残存ファージ成分が提供される。一夜増殖後
、培養上清中のファージミドはポリエチレングリコール（ＰＥＧ）により沈降す
る。ＰＥＧ上清を、ふるい分け（細胞表面、インターナリゼーションおよび膜）
、ＦＡＣＳ選別および磁気選別に使用することにより、非結合剤から結合抗体が
精製される。
【０２３８】 ふるい分けにおいて、抗体‐ファージライブラリーを、標的細胞とインキュベ
ーションし、非接着ファージを多数回洗浄により除去する。典型的なふるい分け
プロトコールは次の通りである：
【０２３９】 １．ＰＢＳ＋１％ＢＳＡまたは１０％ＦＢＳ＋４％粉乳＋ＮａＮ3によりファー
ジ粒子を遮断する（インターナリゼーションされた抗体を検定する場合を除く）
。 ２．標的細胞を遮断されたファージ（約５×１０6細胞）に加える ３．４℃または３７℃で混合し、ゆっくりと回転させる。 ４．１mlの氷冷ＰＢＳ／１％ＢＳＡ／ＮａＮ3または室温ＰＢＳ／１％ＢＳＡ／
ＮａＮ3により細胞を２回洗浄する。 ５．細胞に結合した特異抗体−ファージを、室温で５〜１０分間、低ｐＨ、例え
ばＰＢＳ中７６ミリモルのクエン酸、ｐＨ２.５により溶離させ得る。 ６．溶離されたファージを１モルのトリス−ＨＣｌ、ｐＨ７.４により中和する
。 ７．中和後、抗体−ファージを用いて、ＥＲ２５３７菌に感染し、次ラウンドの
ふるい分けを行うため一夜増殖中に増幅させる。
【０２４０】 一般に、３−４ラウンドのふるい分けを各ライブラリーに対して行う。市販の
２次抗体（ヒツジ抗Ｍ１３抗体−ＨＲＰ）を用いるファージＥＬＩＳＡまたはＰ
ＲＬ４配列からの各抗体に組込まれたＨＡ標識を認識する市販のＨＡ..１１抗体
（バブコ、バーケリー、カリフォルニア）を用いる可溶性抗体ＥＬＩＳＡを、各
ふるい分けラウンド後に全細胞において遂行することにより、非結合剤全体に対
する結合抗体の濃厚化が評価され得る。最終ラウンドのふるい分け後、抗体−フ
ァージを寒天平板から単一コロニーとして選び取り、モノクローナル抗体−ファ
ージとして増殖させ、特異的結合剤を同定するため全細胞でのＥＬＩＳＡにより
スクリーニングする。具体的には、抗体−ファージをＴｏｐ１０Ｆ'菌へ感染さ
せ、単一コロニー用に平板培養する。単一コロニーを寒天平板から選び取り、成
長させ、ＩＰＴＧにより誘導する。特異的結合剤を同定するため、可溶性抗体を
全細胞でのＥＬＩＳＡによりスクリーニングする。生存細胞に加えて、スクリー
ニングは、無傷で軽く固定された標的細胞に対して行われ得る。
【０２４１】 標的細胞が細胞表面マーカーにより特定され得る場合、関連のある抗体−ファ
ージは、ＦＡＣＳまたは磁気選別法により同定され得る。例えばＣＤ３４+細胞
が免疫原として使用され、所望の抗体フラグメントがＣＤ３４+ＣＤ３８―細胞
またはＣＤ３４+ＣＤ３８+細胞に結合する場合、ファージ−抗体ライブラリーを
細胞のＣＤ３４+集団に加え、インキュベーションすることにより、細胞表面へ
の抗体−ファージ結合が行われる。結合後、細胞を洗浄し、沈殿させ、フルオレ
セインイソチオシアネート（ＦＩＴＣ）−コンジュゲートＣＤ３８抗体溶液に再
懸濁する。インキュベーションおよび洗浄後、細胞選別を遂行する。ＦＡＣＳ選
別法を有効に用いることにより、白血球のサブセットに特異的なファージ抗体が
同定された（デクルイフ,J.、タースタッペン,L.、ボエル,E.、ログテンバーグ,
T.、Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. ９２：３９３８−３９４２、１９９５）。
ファージを低ｐＨで２集団ＣＤ３４+ＣＤ３８―細胞またはＣＤ３４+ＣＤ３８+
細胞から溶離し、中和し、細菌細胞の感染に使用する。次いで、ファージまたは
可溶性抗体は、さらなる分析用に個々のコロニーから製造され得る。ＣＤ３４+
ＣＤ３４―細胞に指向された抗体の場合、異種集団における細胞の全部または大
部分に存在する構造と相互作用するファージは、ＣＤ３８+細胞によって吸収さ
れることにより、ＣＤ３８―細胞に特異的なファージの濃厚化が有効に行われる
。蛍光活性化細胞選別中に細胞および結合されたファージで発揮されるかなりの
せん断力により、比較的高い親和力の抗体について選択される。
【０２４２】 別法として、吸着性細胞を用いることにより、細胞表面に非特異的に結合する
かまたは幹／始原細胞に特異的ではない共通抗原、例えば細胞のハウスキーピン
グ機能に関与する受容体に結合するファージが排除され得る。ＣＤ３４+幹／始
原細胞に関する吸着性細胞は、さらに分化されたＣＤ３４―細胞であり、ＣＤ３
４+細胞と共にドーピング処理され得る。
【０２４３】 ファージ抗体ライブラリーを、ＣＤ３４+：ＣＤ３４―細胞集団の１：５混合
物に加え（例えば、単核細胞は主としてＣＤ３４―であり、予め選別されたＣＤ
３４+細胞に加えられ得る）、インキュベーションすると、細胞表面への抗体−
ファージ結合が行われ得る。結合後、細胞を洗浄し、沈殿させ、フルオレセイン
イソチオシアネート（ＦＩＴＣ）コンジュゲートＣＤ３４抗体溶液およびフィコ
エリスリン（ＰＥ）コンジュゲートＣＤ３８抗体溶液に再懸濁する。インキュベ
ーションおよび洗浄後、細胞選別を行うことにより、２種の別々の細胞集団；Ｃ
Ｄ３４+ＣＤ３８+およびＣＤ３４+ＣＤ３８―を集める。ファージを、低ｐＨで
２つの集団から溶離し、中和し、細菌細胞感染に使用する。次いで、ファージま
たは可溶性抗体は、さらなる分析用に個々のコロニーから製造され得る。こうし
て、異種集団における細胞の全部または大部分に存在する構造と相互作用するフ
ァージは、ＣＤ３４―単核細胞の存在により吸着され、ＣＤ３４+細胞に特異的
なファージの濃厚化が有効に行われる。
【０２４４】 ＦＡＣＳ選別法に代わる方法として、ＣＤ３４+ＣＤ３８―細胞およびＣＤ３
４+ＣＤ３８―細胞に特異的な抗体／ファージ−抗体の同定に磁気選別法も使用
され得る。磁気選別法の場合、非特異抗体の高いバックグラウンドを生じ得るが
、ＦＡＣＳ選別法よりも精密さは劣り得る。
【０２４５】 標的細胞が細胞表面マーカー、例えばＮＴｅｒａ−２細胞により容易には同定
され得ない場合、関連のある抗体−ファージは、過剰の吸着性細胞の存在または
非存在下でＦＡＣＳ選別法または磁気選別法と同じ技術を用いて同定され得る。
過剰の吸着性細胞の存在下で選別する場合、興味の対象である細胞集団はビオチ
ニル化され得、過剰の無関連吸着性細胞、例えば線維芽セルラインが加えられ、
混合物に対するファージ−抗体が結合され、ファージ‐抗体が結合した興味の対
象である細胞は、ストレプタバジン−ＰＥコンジュゲートを用いて取り出される
。
【０２４６】 いずれの特定種類の標的細胞型であっても、吸着性細胞は、標的細胞よりもさ
らに分化されているか、異種または非関連細胞型のものが選択される。典型的に
は、吸着性細胞は標的細胞に存在する特異的表面分子を欠いているが、多くの細
胞に共通する表面分子を有する。好ましい吸着性細胞は線維芽細胞である。
【０２４７】 また、受容体を認識する抗体をディスプレーするファージは、インターナリゼ
ーションプロトコールを用いて同定され得る。例えば、哺乳類細胞を氷冷緩衝液
（例えば、５％ＦＢＳ含有ＰＢＳ）で洗浄し、次いで単量体または２量体抗体を
ディスプレーするファージミドに氷上における１５分〜１時間のインキュベーシ
ョンの間暴露する。次いで、細胞を氷冷緩衝液で洗浄し、新鮮な培養培地へ投じ
、３７℃でインキュベーションすることにより、インターナリゼーションさせる
。次いで細胞を溶解して、インターナリゼーションされたファージミドを回収す
る。ファージミドは、細菌細胞へのファージミド粒子の直接感染により回収され
得るか、または別法として、ファージミドは細菌細胞の電気穿孔により回収され
得、ファージミドによりコードされる抗生物質耐性で選択される。
【０２４８】 別法として、受容体を認識する抗体をディスプレーするファージは、膜ふるい
分けによりスクリーニングされ得る。興味の対象である細胞、例えば幹セルライ
ンまたはＮＴｅｒａ−２セルラインおよび非関連細胞型、例えば線維芽セルライ
ンからタンパク質を単離する。１または２次元ポリアクリルアミドゲルでの電気
泳動によりタンパク質を分離する。電気泳動後、タンパク質を膜支持体、例えば
ニトロセルロースまたはナイロンへ移動させる。タンパク質は移動前に染色され
得、別法として、同一ゲルを電気泳動に用いることにより、一方は銀またはクー
マシーブルーで染色されてタンパク質バンドまたはスポットが検出され得、他方
は膜ふるい分けに使用される。膜の特異領域は、非関連細胞型と興味の対象であ
るセルラインとの比較に基いたふるい分け用に選択され得、別法として多くのス
ポットを含む膜の大きい方の領域が選択され得る。パターンが比較され、２種の
セルライン間で異なる領域が選択され得る。これらの領域をふるい分け用固体支
持体として膜から切り取る。ファージをこれらの領域に適用すると、結合が行わ
れる。膜を洗浄し、ファージを膜から溶離し、細菌細胞へ感染させ、増幅させる
。
【０２４９】 上記スクリーニング方法から、造血細胞または他の細胞におけるランダムな細
胞表面標的に非共有結合的に結合するファージ表面にディスプレーされた抗体結
合部位の多様なコレクションが構築され得る。ＦＡＣＳ選別法、磁気選別法また
はふるい分け後、クローンは個々に分析され得る。
【０２５０】 ２量体化 ふるい分けにより高親和力抗体結合剤を分離後、アゴニスト抗体の機能的スク
リーンに関するバイオアッセイを実施する。２量体化は、多くの受容体の活性化
に関する先行条件であることが多いため、バイオアッセイは、２量体化の促進を
介して受容体を刺激するアゴニスト抗体に焦点をあわせる。先に報告されたよう
に、１本鎖の多価性はリンカー設計で取り組まれている。Ｆａｂフラグメントの
多価性は、若干の方法で取り組まれ得る。文献における若干の最近の報告は、フ
ァージディスプレーに適用可能な２量体抗体フラグメント形成における成果を示
している（デクルイフ,J.およびログテンバーグ,T. １９９６．J. Biol. Chem.
２７１：７６３０−７６３４、パック,P.およびプラックサン,A.１９９２． Bio
chemistry ３１：１５７９−１５８４、およびホリガー,P.およびウィンター,G.
１９９３．Current Opin. Biotech.４：４４６−４４９）。２価Ｆａｂは少なく
とも２方法で作成され得る。一法では、２量体化は、ｐＲＬ４へ２量体化ドメイ
ンを付加することにより達成され、ｐＲＬ８が形成される（図５Ｂ参照）。これ
らのベクターで利用されることにより、Ｆａｂフラグメントの多価性が得られる
若干の２量体化ドメイン（ｌｅｘＡ、Ｚｎフィンガー、ｆｏｓ、ｊｕｎなど）が
存在する。２量体化ドメインは、次のｊｕｎ（デクルイフ,J.およびログテンバ
ーグ,T.、J. Biol. Chem. ２７１：７６３０−７６３４、１９９６、コステルニ
ー,S.A.、コール,M.S.およびツォ,J.Y.、J. Immunol. １４８：１５４７−１５
５３、１９９２）、ＬｅｘＡ２量体化領域（キム,B.およびリトル,J.W.、Scienc
e ２５５：２０３−２０６、１９９２）、酵母ＧＣＮ４ ２量体化ドメイン（バ
ン・ヘーケレン,W.J.、セラーズ,J.W.、ストルール,K.、Nucleic Acids Res. ２
０：３７２１−３７２４、１９９２）、バクテリオファージＭｕからのＧｉｎイ
ンベルターゼ（スパエニー‐デッキング,L.、シュライヒェル,E.、フランケン,K
.、バン・デ・プッテ,P.、ゴーゼン,N.、J. Bacteriol. ３４：１７７９−１７
８６、１９９５）、エシェリキア・コリ（E. coli）ＮＴＲＣタンパク質２量体
化ドメイン（クローゼ,K.E.、ノース,A.K.、ステッドマン,K.M.、クスツ,S、J.
Mol. Biol. ２４１：２３３−２４５、１９９４）およびＨＳＶ−１ ＩＣＰ４
２量体化ドメイン（ガリナリ,P.、ヴィーバウエル,K.、ナルディ,M.C.、ジリク
ニィ,J.、J. Virol. ６８：３８０９−３８２０、１９９４）から選択されるが
、これらに限定はされない。また、好熱性（thermus）生物からの高温２量体ド
メインも利用され得る（マクベアス,G.、カスト,P.、ヒルヴァート,D.、Biochem
istry ３７：１０００６２−７３、１９９８およびマクベアス,G.、カスト,P.、
ヒルヴァート,D.、Science ２７９：１９５８−６１、１９９８）。これらは、
分子へ組込まれると、２量体化を行わせ得る機能的ドメインである。当業界の平
均的技術者であれば、これらおよび他の２量体化ドメイン並びにタンパク質を２
量体化するためのそれらの用途については熟知しているはずである。Ｆａｂライ
ブラリーのふるい分けまたは選別段階後、ふるい分けされた分子のライブラリー
をＳａｃＩおよびＳｐｅＩで制限し、ｐＲＬ８へクローン化する。ＦＡＣＳ選別
またはふるい分け後、個々にまたは全部一緒にｐＲＬ８ベクターへサブクローニ
ングすると、バイオアッセイで分析するための２量体可溶性結合性Ｆａｂが発現
され得る。ｐＲＬ８では、抗体フラグメントはペリプラズム空間へ輸送され、そ
こで２量体を形成する。この方法の利点は、それによって単量体Ｆａｂフラグメ
ントのふるい分けが可能となり、高親和力Ｆａｂに適していることである。
【０２５１】 別の方法では２次抗体を使用する。ｐＲＬ４は、市販されているＨＡ.１１抗
体（バブコ、バーケリー、カリフォルニア）により認識される血球凝集素デカペ
プチド標識を有する。バイオアッセイで試験されるためＦＡＣＳ選別法またはふ
るい分けで同定されたＦａｂを、バイオアッセイへ加える前に、２量体化を促進
するＨＡ.１１と前インキュベーションする。
【０２５２】 バイオアッセイ 一旦結合性ｓｃＦｖがふるい分けにより同定されると、各々ファージ表面で特
有の２量体化ｓｃＦｖを発現する、個々のクローンを標的細胞に対する増殖、分
化、活性化または生存作用について試験する。さらに、可溶性２量体化ｓｃＦｖ
をバイオアッセイで試験する。選択されたファージをＴｏｐ１０Ｆ'へ単純形質
転換すると、細菌製造可溶性ｓｃＦｖがペリプラズムへ分泌され得る。個々のエ
シェリキア・コリ（E.coli）形質転換体のライゼートは、アゴニスト作用につい
て試験され得る。Ｆａｂ抗体は２量体化のためｐＲＬ８へ移され（図５Ｂ参照）
、細菌性宿主Ｔｏｐ１０Ｆ'において可溶性２量体化Ｆａｂフラグメントとして
発現される。
【０２５３】 若干のバイオアッセイが、ハイスループットスクリーニングで使用され得る。
当業界の平均的技術者であれば、これらおよび他の適当なバイオアッセイについ
ては熟知しているはずである。ＤＮＡ合成または酵素活性が分析され得る幾つか
の非放射性検定法が開発された。例えば、モスマンにより報告された検定法（モ
スマン,Ｔ.、１９８３．J. Immunol. Methods ６５：５５−５７）に基いたＭＴ
Ｔ細胞増殖検定法（カタログ番号Ｇ４０００）（プロメガ・コーポレーション、
マディソン、ウィスコンシン）が使用され得る。このプロトコールは迅速かつ容
易であり、１日以内に結果が出る。この検定法の場合、ＭＴＴ（３−［４,５―
ジメチルチアゾール―２−イル］−２,５−ジフェニルテトラゾリウムブロミド
）、テトラゾリウム塩は、生きている細胞におけるミトコンドリアデヒドロゲナ
ーゼ活性により青色ホルマザン生成物に変換される。デヒドロゲナーゼ含有量、
従って製造された着色生成物の量は細胞数に比例する。着色生成物は、５７０ｎ
ｍでのＥＬＩＳＡプレートリーダーで検出可能である。検定はトリプリケイトで
全部一緒に９６ウェルマイクロタイタープレートで遂行される。簡単に述べると
、一次造血細胞または成長因子依存性セルラインを、９６ウェルプレートに入れ
た培養培地中１００μｌアリコートで平板培養する。様々な濃度の抗体または対
照成長因子を加えた後、細胞を十分な加湿雰囲気中３７℃および５％ＣＯ2で４
８−７２時間インキュベーションする。ＭＴＴを各ウェルに加え、ＥＬＩＳＡプ
レートリーダーにより増殖を監視する。
【０２５４】 例えば、ＴＦ−１細胞を用いる増殖検定法において、抗体を発現するファージ
ミドを含む細菌細胞を、哺乳類細胞培地および細菌培地の混合物である培地（Ｔ
Ｆ−１細胞の場合：ＲＰＭＩ２.７／ＳＤ ０.３／Ｃａｒｂ １００μｇ／ｍｌ）
１ｍｌ中９６ウェルの深いウェルプレートにおいて３７℃で一夜培養する。ＴＦ
−１細胞は、多様なサイトカインに応答するヒト骨髄赤白血病セルラインである
（キタムラ,T.、タンゲ,T.、テラサワ,T.、チバ,S.、クワキ,T.、ミヤガワ,K.、
ピアオ,Y.F.、ミヤゾノ,K.、ウラベ,A.、タカク,F.、Cell Physiol. １４０：３
２３−３３４、１９８９、キタムラ,T.、トージョー,A.、クワキ,T.、チバ.S.、
ミヤゾノ,K.、ウラベ,A.、タカク,F.、Blood ７３：３７５−３８０、１９８９
、キタムラ,T.、タカク,F.、ミヤジマ,A.、Int. Immunol. ３：５７１−５７７
、１９９１）。翌日、一夜培養物を新しいトレーへ１／１０継代培養し、３７℃
で２時間放置する。３７℃で４時間ＩＰＴＧによる誘導後、プレートを室温で２
０００rpm／１５'の遠心分離にかける。５０μｌの各培養上清を９６ウェルフィ
ルタートレー（ミリポア）で濾過し、９６ウェル検定プレートを滅菌する。哺乳
類細胞を前洗浄することにより、成長因子を除去し、１×１０5細胞／ｍｌの濃
度で再懸濁する。５０μ細胞を各ウェルに加える。検定プレートを３７℃／５％
ＣＯ2インキュベーター中で７２時間インキュベーションする。７２時間後、１
ウェル当たり４０μｌの培地／ＭＴＳ／ＰＭＳを加えることにより、トレーを展
開する。ＭＴＳはＭＴＴの改良が加えられた可溶性の高いバージョンである。両
検定とも、テトラゾリウム塩の細胞変換に基いている。ＡＴＭ増殖検定キット（
カタログ番号Ｇ５４２１）は、プロメガ、インコーポレイテッド（マディソン、
ウィスコンシン）から購入され得る。プレートを３７℃／ＣＯ2インキュベータ
ーで保持し、マイクロプレート読み取り装置により１時間、４時間、８時間目に
ＯＤ490で読み取る。
【０２５５】 サイトカインの活性は相乗的であることが多い。相乗作用は、２種の異なる受
容体へリガンドが結合し、次いで正確なシグナルを送ること、またはリガンド／
受容体の相互作用が細胞を促して第２サイトカインへ応答させるプライミング作
用により証明され得る。さらに、リネッジ発達の初期に作用するサイトカインは
、発達経路の後期段階で作用するサイトカインよりも相乗的であることが多い。
従って、成長因子の最適下限濃度をこれらのバイオアッセイで使用することによ
り、相乗作用が調べられ得る。最適下限濃度に関する条件は各検定法に関して決
定される。これは、成長因子の系列希釈液を個々におよび混合物として検定法に
加え、それ未満では混合物と比較して単一因子が応答を促進しないレベル、およ
びそれ未満では混合物がバイオアッセイで応答を促進しないレベルを測定するこ
とにより行われる。また骨髄間質細胞をバイオアッセイで加えることにより、相
乗的応答においてある一定の役割を演じ得る他の必要因子が提供され得る。
【０２５６】 さらに、細胞増殖は、ＤＮＡ合成をモニターすることにより調べられ得る。５
−ブロモ−２'−デオキシ−ウリジン（ＢｒｄＵ）取り込み（ベーリンガー・マ
ンハイム、インディアナポリス、インディアナ）を調べる非放射性の比色分析検
定法は、マイクロタイタープレート形式で遂行され得る。ここで、細胞を９６ウ
ェルプレートで培養し、ＢｒｄＵおよび最適下限濃度のサイトカインとインキュ
ベーションする。ペルオキシダーゼ標識抗ＢｒｄＵ抗体による標識後にＢｒｄＵ
の量が測定される。最終結果を４０５ｎｍのＥＬＩＳＡプレート読取装置により
分析する。
【０２５７】 増殖の指標としてＤＮＡの合成速度を測定する放射性有糸分裂誘発検定法（ラ
イネスおよびロス、Methods of Enzymol. １０９：７４９−７７３、１９８５）
もまた使用され得る。これらの検定法では、標的細胞における［3Ｈ］−チミジ
ンの取り込み速度の変化が検査される。また、これらの検定法により、多くの抗
体フラグメントの同時かつ迅速なスクリーニングが可能となる。それらは、多く
の異なる細胞の成長に対する刺激および抑制作用を評価する好都合な方法として
汎用されている。細胞を、指数的成長速度に達するまで懸濁液中で培養する。次
いで、細胞を、培養されていた培地から洗浄除去し、新しい培地で再培養する。
細胞を、約１−２×１０5細胞／ｍｌの濃度で総容量１００μｌ中９６ウェルプ
レートに等分する。ファージ上清の希釈液、可溶性２量体化ＦａｂまたはｓｃＦ
ｖ抗体を加え、細胞を３７℃の温度でガス供給ＣＯ2インキュベーター中１８−
４８時間インキュベーションする。インキュベーション後、［3Ｈ］チミジン（
９３７ｋＢｑ）を各ウェルに加え、さらに４時間インキュベーションする。次い
で、細胞をインキュベーターから取り出し、ベンチトップ式マイクロプレートシ
ンチレーション計数管、例えばパッカード・トップ・カウントＮＸＴインスツル
メント（パッカード、メリデン、コネティカット）で直接計数する。別法として
、細胞は、ミリポア細胞採取装置（ミリポア、ベッドフォード、マサチューセッ
ツ）または類似装置においてＧＦ／Ｃフィルターへ連続転移され得る。次いで、
フィルターに保持された酸不溶性物質に伴う放射能を測定する。市販されている
成長因子の希釈物を陽性対照ウェルに適用する。陰性対照には、同様に試験され
たプラスミドまたは非関連抗体を含む非挿入体を担う細胞からの上清が含まれる
。標準物質および試験下にあるファージ上清の希釈物の相対成長促進活性を比較
して、試料における成長促進活性を定量する。
【０２５８】 第２メッセンジャーを検定するかまたは転写リードアウト検定により、活性化
は試験され得る。 生存は、例えば、検定法、例えばトンネル（tunel）検定法を用いてアポトー
シスを監視することにより、または当業界の実践者に公知の他の方法により検定
され得る。
【０２５９】 細胞シグナル伝達、キナーゼおよびホスファターゼの活性および最後にアゴニ
スト活性の結果としての細胞活性を分析する他の有用な検定法には、第２メッセ
ンジャー、例えばｃＡＭＰ、Ｃａ++、ジアシルグリセリン（ＤＡＧ）およびイソ
シトール１,４,５−トリホスフェート（ＩＰ３）生成の測定が含まれる。ハイス
ループットスクリーニング検定法での細胞内カルシウム濃度、細胞内ｐＨおよび
膜電位におけるスパイクの測定は、器具、例えばＦＬＩＰＲフルオロメトリック
・イメージング・プレート・リーダー・システム（モレキュラー・デバイシーズ
、サニーヴィル、カリフォルニア）を用いて遂行され得る。若干の蛍光プローブ
が、第２メッセンジャー濃度検査に利用可能である（モレキュラー・プローブズ
、ユージーンＯＲ）。また、第２メッセンジャー濃度の測定は、単一細胞レベル
でも行われ得る（デベルナルディ,M.A.およびブルーカー,G.、Proc. Natl. Acad
. Sci. USA ９３：４５７７−４５８２、１９９６）。さらに、他のシグナル送
信事象、例えばリン酸化、アポトーシスまたは特異遺伝子のＲＮＡまたはタンパ
ク質レベルを調べる検定法も有用である。例えば、大部分のサイトカインは、酵
素ＰＩ３−Ｋを活性化することが示された（シルヴェノイネン,Ｏ.、イーレ,Ｊ.
Ｎ.、Signaling by the Hematopoietic Cytokine Receptorsで概説、Ｒ．Ｇ．ラ
ンデス・カンパニー、オースティン、テキサス、１９９６）。さらに、チロシン
キナーゼのＪａｋ群は、サイトカイン受容体シグナル送信の中心伝達物質である
ことが示された（イーレ,J.N.、ヴィッツン,B.A.、ケレ, F.W. Annu. Rev. Immu
nol.１３：３６９−３９８、１９９５）。さらに、幾つかの他のチロシンキナー
ゼ、例えばＳｒｃ群の構成員は、ある種のサイトカイン刺激に応答して活性化さ
れる。ＲＮＡまたはタンパク質の場合、ｃ−Ｊｕｎ、ｃ−ＦｏｓおよびＮｆκβ
は、サイトカイン刺激時に急速かつ一時的にアップレギュレーションされ、ｃ−
Ｍｙｃ誘導は緩慢である。これらのタンパク質は、Ｇ１トランジションおよび増
殖に要求される（シルヴェノイネン,O.、イーレ,J.N. Signaling by Hematopoie
tic Cytokine Receptorsにおいて概説、Ｒ．Ｇ．ランデス・カンパニー、オース
ティン、テキサス１９９６）。これらの転写物の増加を検出するハイスループッ
トスクリーンも利用され得る。
【０２６０】 転写リードアウト検定法において、特異遺伝子の転写における変化は、成長因
子または成長因子模倣物質（アゴニストまたは阻害性抗体）へ細胞を暴露した後
に観察される。例えば、ｍｙｃリードアウト検定において、細胞、例えばＩＬ−
３依存性ＦＤＣＰ−混合セルラインから８時間ＩＬ−３成長因子を奪った後、こ
れを成長因子模倣物質または天然成長因子に３７℃で２時間暴露する。この時点
で、細胞を採取し、ＲＮＡを分離し、ｍｙｃ遺伝子に特異的なプライマーを用い
て逆転写酵素ポリメラーゼ連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ）を遂行する。ＲＴ−ＰＣＲ
反応を水平アガロースゲル電気泳動にかけることにより、ＰＣＲ産物を定量する
。この場合、単一遺伝子の発現がモニターされている。
【０２６１】 別法として、遺伝子発現の変化に関する検定法はＣＨＩＰ技術を用いて監視さ
れ得、アゴニスト抗体は、高プローブ感受性条件およびダイナミックレンジ下で
同定され得る。こうして、１００００以下であれば発現の変化について分析され
得る。モニターされ得る所望の遺伝子としては、特にｃ−ｍｙｃ、ｃ−ｊｕｎ、
ＮＦ−κβが挙げられる。これらの遺伝子は様々なシグナル変換経路の下流であ
り、それらの発現は当然分裂促進因子応答時に変化する。市販されているＣＨＩ
Ｐ（アフィメトリックス、サンタクララ、カリフォルニア）の一タイプでは、所
望の試験遺伝子からのオリゴヌクレオチドがガラス表面にプリントアウトされ得
る。標的細胞を試験アゴニスト抗体に暴露する。試験アゴニスト抗体に暴露され
た細胞からＲＮＡを分離し、ｃＤＮＡにコピーし、そしてビオチンの存在下イン
ビトロで転写する。インビトロ転写され、ビオチニル化されたｍＲＮＡのハイブ
リダイゼーションを、これらの配列におけるプローブとして使用する。次いで、
チップを走査することにより、試験アゴニスト抗体への暴露時に転写の増加を示
す遺伝子を測定する。ＣＨＩＰ技術の別のバージョン（インサイト、パロアルト
、カリフォルニア）の場合、ＤＮＡの量はガラス上では正規化されないため、競
合的ハイブリダイゼーションが設定される。アゴニストへの暴露の前後にＲＮＡ
を細胞から分離する。各試料からｃＤＮＡを作成し、その場合一ｃＤＮＡ反応に
は一標識、例えばＣｙ−３が組込まれており、他のｃＤＮＡ集団には異なる標識
、例えばＣｙ−５が組み込まれている。シグナルを検出し、二重レーザースキャ
ンで比較することにより、イメージを集める。
【０２６２】 視覚的検定法 また、上記検定法で増殖応答を示す全てのｓｃＦｖまたはＦａｂについて、伝
統的なメチルセルロースコロニー形成検定法（ステム・セル・テクノロジーズ、
バンクーバーＢＣ、カナダ国）により試験を行う。これらの検定法において、コ
ロニー成長、および形態学的変化を光学顕微鏡により評価する。
【０２６３】 半固体寒天培養物またはメチルセルロースにおける増殖または分化作用に関す
る視覚的検査は、未選別または選別一次造血細胞および幹セルライン（ステム・
セル・テクノロジーズ、バンクーバーＢＣ、カナダ国）を用いて遂行され得る（
イーヴズ, C.J. Assays of Hemopoietic Progenitor cells. Williams Hematolo
gy ５（Ｅ.ビュートラー、Ｍ.Ａ.リヒトマン、Ｂ.Ｓ.コラーおよびＴ.Ｊ.キップ
ス編）、マクグロウ−ヒル、インコーポレイテッド、Ｌ２２−Ｌ２６頁、１９９
５）。
【０２６４】 造血コロニー検定法では、造血細胞の成長および分化を最大限にする培養培地
が使用される。メチルセルロースを加えることにより、単一始原細胞のクローン
子孫が一箇所に留まるため、異なるコロニーの認識および列挙が容易になる。必
要な成分は全て塩基性メチルセルロース培地（例えばイスコヴェＭＤＭ、ＢＳＡ
、β−メルカプトエタノール、Ｌ−グルタミン）に加えられるが、ただしコロニ
ー刺激因子を補う。試験抗体（ファージ上清、可溶性抗体）を加えることにより
、それらが成長因子と置き換えられ得るか否かを見る。空気中５％ＣＯ2の３７
℃加湿雰囲気中で抗体追加後、メチルセルロース培養中の造血細胞を１０−１２
日間インキュベーションする。インキュベーションの１０−１２日後、反転顕微
鏡を用いてコロニーを計数する。さらに８−１０日後、コロニーを再び計数する
。成長因子が存在する場合および存在しない場合の抗体および対照含有培地間の
比較を行う。さらに、コロニーをメチルセルロースから選び取り、ライト染料で
染色することにより個々の細胞が細胞学的に検査され得る（Atlas of Hematolog
ical Cytology 参照、F.G.J.ヘイホーおよび R.J.フレマンズ、ウィリー‐イン
ターサイエンス１９７０）。
【０２６５】 視覚的検定法の別の例は、骨髄細胞とのピチア共培養である。例えば、１回ま
たはそれ以上のＦＡＣＳまたは磁気選別法によるＣＤ３４＋またはヒト胎児肝臓
ライブラリーのふるい分け後、抗体遺伝子を、ふるい分けされたライブラリーか
らピチア発現ベクターへクローン化することにより、抗体遺伝子はｐＧＡＰプロ
モーターの制御下におかれ、α−因子先導配列を用いて細胞から分泌される（イ
ンビトロゲン、カールスバッド、カリフォルニア）（ダス,R.C.、シュルツ,J.L.
、レーマン,D.J.、Mol. Gen. Genet. ２１８：２４０−８、１９８９）。ピチア
形質転換体（Pichi atransformants）をＹＰＤ＋ゼオシンで選択する。コロニー
を「イスコヴェスプレート」（イスコヴェス培地＋寒天）にレプリカ平板培養す
る。細胞を５mlイスコヴェス培地中プレートからこすり落とし、遠心分離し、０
６mlのイスコヴェス培地に再懸濁し、計数する。加えられた成長因子（カタログ
＃４２３０ステム・セル・テクノロジーズ、バンクーバーＢＣ、カナダ国）を含
まないメチルセルロース培地を解凍する。５０００のピチア細胞および５０００
０のヒト骨髄ＣＤ３４＋細胞を、３cm皿１枚につき培地中で培養する。３７℃５
％ＣＯ２の加湿雰囲気中でプレートをインキュベーションする。５−１２日目に
評価を行う。骨髄コロニーが示されると、近くの酵母をメチルセルロースから摘
み取り、同様の方法で再試験する。抗体遺伝子は、全細胞ＰＣＲおよびＥＣＯＲ
IIによる制限消化によりピチアからフィンガープリンティングされ得る。培地へ
放出される抗体を精製し、ＦＡＣＳ選別法で使用することにより、他の既知フル
オレセインコンジュゲート抗体の存在下、抗体が結合する細胞の集団が検査され
得る。ここで、１次抗体は酵母から分泌される。２次抗体は、ＨＡ.１１−ＦＩ
ＴＣコンジュゲート（バブコ、バーケリー、カリフォルニア）である。
【０２６６】 幹細胞検定法 幹細胞特異的検定法で同定された候補を、血清不含有培地でのそれらの再生刺
激能力（ステム・セル・テクノロジーズ、バンクーバーＢＣ、カナダ国）、およ
びアゴニスト存在下で培養された細胞が長期培養開始細胞（ＬＴＣ−ＩＣ）を生
じる能力についてさらに分析する（ステム・セル・テクノロジーズ、バンクーバ
ーＢＣ、カナダ国）。ＬＴＣ−ＩＣをインビトロ拡張させると思われるアゴニス
トを、制限酵素フットプリント法およびＤＮＡ配列決定を含むＤＮＡ分析にかけ
ることにより、特有のクローンが同定される。特有のアゴニストをさらに検定す
ることにより、アゴニストの存在下で培養された細胞が、放射線照射マウス（ホ
ジソン,G.S.およびブラドレイ,T.R.、Nature ２８１：３８１−３８２、１９７
９、ハリソン,D.E.、Blood ５５：７７−８１、１９８０）またはＮＯＤ／ＳＣ
ＩＤマウス（コネアリー,E.、カシュマン,J.、ペッツァー,A.、イアーズ,C.、Pr
oc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. ９４：９８３６−９８４１、１９９７）において
長期移植を支持するか否かを測定する。これらの基準により興味深いものである
ことが判明したアゴニストを配列分析、結合性試験にかけ、使用することにより
、免疫沈降、タンパク質配列分析およびデータベース検索を通して受容体が同定
される。
【０２６７】 受容体の作用 受容体が未知の場合でも、受容体がキナーゼをコードするかまたは受容体がキ
ナーゼ活性を誘発する場合、試験化合物（抗体）の存在下で受容体含有膜抽出物
を［γ−３２Ｐ］ＡＴＰとインキュベーションすることにより、受容体リン酸化
が検査され得る。次いで、ゲル電気泳動およびオートラジオグラフィーにより、
抽出物を受容体リン酸化について検査する。受容体リン酸化を調べるこれらおよ
び他の技術は、当業界実践者には熟知されている。
【０２６８】 抗体の合成 一旦抗体フラグメントがバイオアッセイで同定されると、それらは可溶性抗体
フラグメントとして高レベル発現に関して選択される。可溶性ＳｃＦｖフラグメ
ントまたはＦａｂフラグメントは、細菌性宿主、例えばＴｏｐ１０Ｆ'（インビ
トロゲン、カールスバッド、カリフォルニア）で分離され得る。
【０２６９】 細胞の単一コロニーを成長させ、ベクターで遺伝子操作されたＨｉｓ６配列を
用いて、例えばニッケル‐キレートクロマトグラフィー方法により可溶性抗体フ
ラグメントを精製する。
【０２７０】 当業界の平均的技術者が公知技術を用いれば、他の生物体、例えば酵母、哺乳
類、昆虫および植物でも抗体を合成することができるはずである（カールソン,J
.R.およびワイスマン,I.L.、Mol. Cell. Biol.、８：２６４７−２６５０、１９
８８、トリル,J.J.、シャツマン,A.R.、ガングリー,S.、Curr. Opin. Biotechno
l. ６：５５３−５６０、１９９５、ハイアット,A.、カファーキー,R.、バウデ
ィッシュ,K.、Nature ３４２：７６−７８、１９８９）。
【０２７１】 実施例２：成長因子受容体の同定 増殖および／または分化していると思われる細胞型によって、第１世代アゴニ
スト分子を範ちゅうに分類した。受容体は、免疫沈降およびアフィニティークロ
マトグラフィーおよび化学的架橋、次いでタンパク質配列決定およびデータベー
ス検索を含む若干の方法を用いて同定され得る。
【０２７２】 免疫沈降では、細胞を放射性標識し、デタージェント、例えばトリトンＸ−１
００の存在下で溶解し、そして結合タンパク質を抗体により沈降させ、ＳＤＳ−
ＰＡＧＥ、次いでオートラジオグラフィーにより分析し得る。従って、これによ
り受容体の検出、その分子サイズの特性検定、および他のサブユニットまたは会
合タンパク質の同定が行われる。さらに、タンパク質を電気泳動的にポリビニリ
デンジフルオリド（ＰＶＤＦ）のシートへ移動させ、クーマシーブルーで染色し
得る。分離されたバンドを取り出し、自動タンパク質配列決定装置で分析した後
、データベース検索することにより、その受容体が新規であるか、以前に同定さ
れたものであるかを測定することができる。さらに、タンパク質をタンパク質分
解酵素で開裂することにより、内部アミノ酸配列が測定され得る。
【０２７３】 慣用的免疫アフィニティー精製では、抗体を固体相マトリックスに共有結合的
に結合させる。典型的には、抗体をセファロースに結合させる。細胞ライゼート
をデタージェント、例えばトリトンＸ−１００の存在下で製造して内在性膜タン
パク質を溶解および可溶化したものを製造する。ライゼートをカラムに適用し、
カラムを洗浄し、高ｐＨまたは低ｐＨ緩衝液への短時間暴露により結合タンパク
質を溶離する。各々に続いて、部分アミノ酸配列決定およびデータベース検索を
行う。別法として、特異的溶離は、可溶性ｓｃＦｖにより行われ得る。プレカラ
ムを用いて非特異的結合を低減化することが多い。多数の種類が存在する場合、
無傷細胞への放射性標識ｓｃＦｖの細胞表面放射性受容体架橋によりどれがアゴ
ニストに関するリガンド結合性サブユニットであるかが決定され得る。
【０２７４】 また、発現クローニング方法も使用され得る。ｃＤＮＡライブラリーは、抗体
に応答する細胞から構築される。ライブラリーは哺乳類発現ベクターへクローン
化され、哺乳類細胞へトランスフェクションされる。受容体を発現する細胞は、
アフィニティークロマトグラフィーまたは「常用のふるい分け」により同定され
、その場合単一種の抗体ファージが、各々異なるｃＤＮＡクローンを発現してい
る細胞のプールと接触した状態に置かれている。
【０２７５】 一旦受容体が同定されると、それは標準分子生物学的技術を用いてクローン化
され得る。哺乳類細胞において受容体をコードするｃＤＮＡによる一時的トラン
スフェクション検定法を実施することにより、それが抗体の認識する受容体であ
ることが立証され得る。例えば、ＣＯＳ細胞は、受容体発現に利用され得る（ネ
イル,J.D.、セラーズ,J.C.、マスグローブ,L.C.、ダック,L.W.、Mol. Cell. End
rocrinol.、１２７：１４３−１５４、１９９７）。
【０２７６】 天然リガンドの同定 新たに同定された受容体の天然リガンドは、哺乳類細胞または酵母、好ましく
は通常では受容体を発現しない細胞において、受容体を異種発現することにより
同定され得る。発現されたｃＤＮＡライブラリーから分泌された因子のプールは
、受容体発現細胞に加えられ、アゴニストの同定に使用されたのと同じバイオア
ッセイで分析され得る（リー,F.ら、Proc. Natl. Acad. Sci. ８２：４３６０、
１９８５、参照）。一時的発現系に加えて、レトロウイルスベクターにおける永
久発現系もまたこれらの検定法で使用され得る（レイナー,J.R.およびゴンダ,T.
J.、Mol. Cell. Biol.、１４：８８０、１９９４）。陽性応答は、特異的リガン
ドｃＤＮＡを発現する個々のクローンへリンクされる。さらに、リガンドおよび
アゴニスト抗体（ただし、125Ｉまたは蛍光化合物により標識されている）によ
り競合実験が遂行され得る。
【０２７７】 当業界の平均的技術者であれば、受容体が判明した場合に天然リガンドを同定
するこれらおよび他の技術については熟知しているはずである。
【０２７８】 阻害性抗体に関するスクリーニング 阻害性抗体は、アゴニスト抗体に関するスクリーニングに使用されたのと同じ
検定法、ふるい分けおよびバイオアッセイを用いてスクリーニングされる。しか
しながら、バイオアッセイでは、追加の成長因子、例えばＩＬ−３を培養に含ま
せることにより、細胞を成長させ得、増殖、分化、生存または活性化の阻害が観
察される。
【０２７９】 実施例３： 造血細胞および他の細胞型に対するファージディスプレーライブ
ラリー 次の細胞またはセルライン：ヒト骨髄単核細胞、ヒト骨髄ＣＤ３４+細胞、Ｒ
ＢＣ溶解を被ったヒト骨髄細胞、ヒト胎児肝細胞、ヒトＮＴｅｒａ−２セルライ
ン、ネズミＰ１９セルラインおよびマウスＦＤＣＰ−混合セルラインにより、動
物（ウサギ）を個々に免疫化した。実施例１のプロトコールに従い、３週間の間
隔で３−５回強い陽性応答が検出されるまでウサギを全細胞により免疫化した。
【０２８０】 免疫化の前、約５mlの血液を各動物から採血した。直ちに血液を凝固させ、遠
心分離にかけ、細胞を沈殿させ、血清を新しい管に移すことにより血液を血清に
加工処理した。各動物からの血清を−２０℃で貯蔵した。初回免疫化および２回
のブースト後、血液を再び各動物から集め、血清に加工処理した。免疫前血清を
免疫後血清と比較しながら全細胞ＥＬＩＳＡを遂行した。血清の希釈物、例えば
ＰＢＳ中５％牛乳中で１／５０、１／１００、１／５００、１／１０００、１／
５０００を製造した。免疫化に使用したのと同タイプの細胞（１×１０6）をプ
レートに適用し、血清希釈物を加え、細胞をインキュベーションした。２次抗体
は、試験されている宿主動物ＩｇＧに対する酵素コンジュゲート抗体、例えばヤ
ギ抗ウサギＩｇＧアルカリ性ホスファターゼコンジュゲートまたはペルオキシダ
ーゼコンジュゲートであった。結果を視覚的に読み取るか、またはプレートを遠
心分離し、上清を除去し、ＥＬＩＳＡプレート読み取りのため新しいウェルに入
れた。読取り値をグラフ化することにより、半最大血清応答、または最大応答と
同等またはその半分の応答を与える希釈物を測定した。
【０２８１】 陽性応答が検出されると、動物を殺し、脾臓、骨髄および末梢血リンパ球を集
めた。ＲＮＡをこれらの器官から分離し、実施例１と同様にライブラリーを構築
することにより、ファージミド表面にディスプレーされた抗体フラグメントライ
ブラリーが作成された。連結反応をＥＲ２５３７へ電気穿孔した。小アリコート
を培養して、実施例１と同様にライブラリーのクローニング効率および潜在的多
様性を測定した。結果を表２に示す。
【０２８２】
【表３】
【０２８３】 当業界の平均的技術者であれば、上記プロトコールを用いて他の動物、例えば
ニワトリを、他の細胞型および系統、例えば卵黄嚢細胞、ネズミＡＧＭ領域から
誘導された細胞、ネズミ複能性胚性細胞、ヒト胚性幹（ＥＳ）セルライン、神経
起源の細胞、器官または組織再生に関与する細胞で免疫化することにより、若干
の細胞型で様々な受容体に対してファージディスプレー抗体フラグメントの追加
ライブラリーが作成され得ることは認めるところである。
【０２８４】 医薬製剤および投与経路 ここに記載された薬剤は、ヒト患者自体に対し、またはそれを適当な担体また
は賦形剤（複数も可）と混合した医薬組成物で投与され得る。本発明化合物の製
剤および投与技術については、“Remington's Pharmaceutical Sciences”マッ
ク・パブリッシング・カンパニー、イーストン、ペンシルベニア、最新版に記載
されている。
【０２８５】 投与経路 適当な投与経路としては、例えば経口、直腸、経粘膜または腸管投与、非経口
デリバリー、例えば筋肉内、皮下、骨髄内注射、並びに鞘内、直接心室内、静脈
内、腹腔内、鼻腔内または眼内注射が挙げられる。 別法として、薬剤は、全身的ではなく局所的に投与され得る。
【０２８６】 さらに、薬剤は、標的とされる薬剤送達系、例えば腫瘍特異抗体で被覆された
リポソームで投与され得る。リポソームは、標的とされ、腫瘍により選択的に取
り込まれる。
【０２８７】 組成物／製剤 本発明の医薬組成物は、自体公知の方法で、例えば慣用的な混合、溶解、造粒
、糖衣錠形成、糊状化、乳化、カプセル封入、包括（固定）化または凍結乾燥方
法を使って製造され得る。
【０２８８】 すなわち本発明に従い使用される医薬組成物は、医薬的に使用され得る製剤へ
活性分子を加工処理し易くする賦形剤および補助剤を含む１種またはそれ以上の
生理学的に許容し得る担体を用いて常法により製剤化され得る。適切な製剤は、
選択された投与経路により異なる。
【０２８９】 注射の場合、本発明薬剤は、水溶液、好ましくは生理学的に適合し得る緩衝液
、例えばハンクス溶液、リンゲル液または生理食塩緩衝液で製剤化され得る。経
粘膜投与の場合、浸透される障壁に適した浸透剤が製剤において使用される。上
記浸透剤は当業界では公知である。
【０２９０】 経口投与の場合、薬剤は、当業界で公知の医薬的に許容し得る担体と活性分子
を合わせることにより、容易に製剤化され得る。上記担体により、本発明化合物
は、処置される患者による経口摂取用の錠剤、丸薬、糖衣錠、カプセル、液体、
ゲル、シロップ、スラリー、懸濁液などとして製剤化され得る。経口投与用医薬
製剤は、固体賦形剤を用い、所望により生成した混合物を粉砕し、適当な補助剤
を添加後に顆粒混合物を加工処理すると、所望ならば、錠剤または糖衣錠コアが
得られる。適当な賦形剤は、特に充填剤、例えば糖類、例えば乳糖、しょ糖、マ
ンニトールまたはソルビトール、セルロース製剤、例えば、とうもろこし澱粉、
小麦澱粉、米澱粉、ジャガイモ澱粉、ゼラチン、トラガカントゴム、メチルセル
ロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、カルボキシメチルセルロースナ
トリウムおよび／またはポリビニルピロリドン（ＰＶＰ）である。所望ならば、
崩壊剤、例えば架橋ポリビニルピロリドン、寒天またはアルギン酸またはその塩
、例えばアルギン酸ナトリウムが添加され得る。
【０２９１】 糖衣錠コアには、適当なコーティングが施される。この目的の場合、濃縮糖溶
液が使用され得、所望によりアラビアゴム、タルク、ポリビニルピロリドン、カ
ルボポールゲル、ポリエチレングリコールおよび／または二酸化チタン、ラッカ
ー溶液、および適当な有機溶媒または溶媒混合物が含まれ得る。染料または顔料
を錠剤または糖衣錠コーティングに加えることにより、活性化合物用量の異なる
組み合わせが同定または特性検定され得る。
【０２９２】 経口使用され得る医薬製剤は、ゼラチンでできたプッシュフィット（押ばめ）
式カプセル、およびゼラチンでできた軟性封入カプセルおよび可塑剤、例えばグ
リセリンまたはソルビトールを含む。プッシュフィット式カプセルは、充填剤、
例えば乳糖、結合剤、例えば澱粉、および／または滑沢剤、例えばタルクまたは
ステアリン酸マグネシウムおよび、所望により安定剤と混合した形で有効成分を
含み得る。軟カプセルでは、活性化合物は、適当な液体、例えば脂肪油、液体パ
ラフィンまたは液体ポリエチレングリコールに溶解または懸濁され得る。さらに
、安定剤も添加され得る。経口投与用製剤は全て、上記投与に適した用量とすべ
きである。
【０２９３】 頬投与の場合、薬剤は、慣用的方法で製剤化された錠剤またはトローチ剤形態
を取り得る。
【０２９４】 吸入投与の場合、本発明に従い使用される薬剤は、好都合には加圧パックまた
は噴霧器からのエーロゾル噴霧状形態で送達され、その場合適当な噴射剤、例え
ばジクロロジフルオロメタン、トリクロロフルオロメタン、ジクロロテトラフル
オロエタン、二酸化炭素または他の適当なガスが使用される。加圧エーロゾルの
場合、取りつけられた弁で計量された量を送達することにより用量単位が決定さ
れ得る。例えば吸入器または吹送器で使用されるゼラチンのカプセルおよびカー
トリッジは、化合物および適当な粉末基剤、例えば乳糖または澱粉の粉末混合物
を含む形で製剤化され得る。
【０２９５】 薬剤は、注射、例えばボーラス注射または連続注入による非経口投与用に製剤
化され得る。注射用製剤は、保存剤が添加された、単位用量形態、例えばアンプ
ルまたは多用量容器で提供され得る。組成物は、油状または水性賦形剤中懸濁液
、溶液または乳液といった形態をとり得、製剤用薬剤、例えば懸濁剤、安定剤お
よび／または分散剤を含み得る。
【０２９６】 非経口投与用医薬製剤は、水溶性形態の活性分子水溶液を含む。さらに、活性
分子の懸濁液は、油状注射懸濁液として製造され得る。適当な親油性溶媒または
賦形剤には、脂肪油、例えばごま油または合成脂肪酸エステル、例えばエチルオ
レエートまたはトリグリセリド、またはリポソームが含まれる。水性注射懸濁液
は、懸濁液の粘稠性を高める物質、例えばカルボキシメチルセルロースナトリウ
ム、ソルビトールまたはデキストランを含み得る。所望により、懸濁液はまた、
適当な安定剤または化合物の溶解度を高める薬剤を含有することにより、高濃縮
液の製造が可能となり得る。
【０２９７】 別法として、有効成分は、使用前に適当な賦形剤、例えば滅菌発熱物質不含有
水により構成される粉末形態であり得る。 薬剤はまた、直腸用組成物で、例えば慣用的坐剤基剤、例えばココアバターま
たは他のグリセリドを含有する、例えば坐剤または停留浣腸として製剤化され得
る。
【０２９８】 先に記載された製剤に加えて、薬剤はまた、デポー製品として製剤化され得る
。上記長期作用製剤は、内植（例えば皮下または筋肉内）または筋肉内注射によ
り投与され得る。すなわち、例えば、薬剤は、適当なポリマー性または疎水性材
料（例えば許容し得る油中エマルジョンとして）またはイオン交換樹脂により、
または低可溶性誘導体として、例えば低可溶性塩として製剤化され得る。
【０２９９】 本発明の疎水性薬剤用医薬用担体は、ベンジルアルコール、非極性界面活性剤
、水混和性有機ポリマー、および水相を含む共溶媒系である。共溶媒系は、ＶＰ
Ｄ溶媒系であり得る。ＶＰＤは、３％ｗ／ｖベンジルアルコール、８％ｗ／ｖの
非極性界面活性剤ポリソルベート８０および６５％ｗ／ｖポリエチレングリコー
ル３００に無水エタノールを適量加えて容量を満たした溶液である。ＶＰＤ共溶
媒系（ＶＰＤ：５Ｗ）は、水溶液中５％デキストロースで１：１希釈したＶＰＤ
により構成される。この共溶媒系は疎水性化合物でも十分溶解し、それ自体全身
投与しても毒性は低い。当然、共溶媒系の比率はその溶解度および毒性特性を破
壊することなくかなり変動され得る。さらに、上記共溶媒成分も他の成分に変え
られ得る。例えば他の低毒性非極性界面活性剤がポリソルベート８０の代わりに
使用され得る。ポリエチレングリコールのフラクションサイズも変動され得る。
他の生物適合性ポリマーでも、ポリエチレングリコールの代わりに使用され得、
例えばポリビニルピロリドンがある。他の糖類または多糖類もデキストロースの
代わりに使用され得る。
【０３００】 別法として、疎水性医薬化合物用の他の送達系が使用され得る。リポソームお
よびエマルジョンは、疎水性薬剤用のデリバリー賦形剤または担体のよく知られ
た例である。ある種の有機溶媒、例えばジメチルスルホキシドもまた使用され得
るが、通常は毒性が大きくなるという犠牲を払うことになる。さらに、化合物は
、持続放出系、例えば治療剤を含有する固体疎水性ポリマーの半透過性マトリッ
クスを用いて送達され得る。様々な持続放出マトリックスは既に確立されており
、当業界の技術者により熟知されている。持続放出性カプセルは、それらの化学
的性質によって、数週間以下から１００日を越える期間にわたって化合物を放出
し得る。治療用試薬の化学的性質および生物学的安定性により、タンパク質安定
化のための追加的方法が用いられ得る。
【０３０１】 医薬組成物はまた、適当な固体またはゲル相担体または賦形剤を含み得る。上
記担体または賦形剤の例としては、炭酸カルシウム、リン酸カルシウム、様々な
糖類、澱粉、セルロース誘導体、ゼラチンおよびポリマー類、例えばポリエチレ
ングリコールがあるが、これらに限定はされない。
【０３０２】 本発明薬剤の多くは、医薬的に和合し得る対イオンを伴う塩類として提供され
得る。医薬的に和合し得る塩類は多くの酸により形成され得、例えば塩酸、硫酸
、酢酸、乳酸、酒石酸、リンゴ酸、コハク酸等があるが限定的ではない。塩類は
、対応する遊離塩基形態である水性または他のプロトン性溶媒に溶け易くなる傾
向がある。
【０３０３】 有効用量 本発明での使用に適した医薬組成物は、有効成分がその意図された目的を達成
するのに有効な量で含まれている組成物を包含する。さらに具体的には、治療有
効量とは、処置されている対象の病気の症状を予防、軽減または改善するかまた
は生存期間を延長するのに有効な薬剤量を意味する。治療有効量の決定は、当業
界の技術者が特に本明細書における詳細な開示を考慮すれば十分にできる範囲内
のことである。
【０３０４】 本発明方法で使用されているいずれかの薬剤の場合、治療有効用量は、細胞培
養検定から最初に評価され得る。例えば、動物モデルにおいて、細胞培養で測定
されたＩＣ50（例、細胞増殖または分化を促進または阻害する試験分子濃度）を
含む循環濃度範囲を達成するような用量が製剤化され得る。上記情報を用いるこ
とにより、ヒトにおいて有用な用量がより正確に決定され得る。
【０３０５】 本明細書に記載されている薬剤の毒性および治療効力は、例えば、ＬＤ50（集
団の５０％にとって致死的な用量）およびＥＤ50（集団の５０％において治療上
有効な用量）を測定するための細胞培養物または実験動物における標準製薬的方
法により測定され得る。毒性および治療効果間の用量比は治療指数であり、それ
はＬＤ50およびＥＤ50間の比として表わされ得る。高い治療指数を呈する分子が
好ましい。これらの細胞培養検定および動物試験から得られたデータは、ヒトに
使用される用量範囲の製剤化で使用され得る。上記分子の用量は、好ましくは殆
どまたは全く毒性を伴わないＥＤ50を含む循環濃度の範囲内に含まれる。用量は
、使用される用量形態および利用される投与経路によりこの範囲内で変動し得る
。正確な製剤、投与経路および用量は、患者の病状を考慮しながら個々の医師に
より選択され得る。（例、フィングルら、１９７５、“The Pharmacological Ba
sis of Therapeutics”中、第１章、１頁参照）。
【０３０６】 服用量および間隔を個々に調節することにより、細胞の増殖または分化を促
進または阻害するのに十分な活性部分の血漿レベルまたは最少有効濃度（ＭＥＣ
）が提供され得る。ＭＥＣは各薬剤によって変化するが、記載された検定法を用
いてインビトロデータから評価され得る。ＭＥＣの達成に必要な用量は、個々の
特性および投与経路により異なる。しかしながら、ＨＰＬＣ検定法またはバイオ
アッセイを用いることにより、血漿濃度が測定され得る。
【０３０７】 服用間隔はまた、ＭＥＣ値を用いて決定され得る。時間の１０−９０％、好ま
しくは３０−９０％および最も好ましくは５０−９０％の間ＭＥＣを越える血漿
レベルを維持する摂取法を用いて化合物を投与するべきである。
【０３０８】 局所投与または選択的摂取の場合、薬剤の有効局所濃度は、血漿濃度とは関連
し得ない。 勿論、投与される薬剤の量は、処置されている対象、対象の体重、苦痛の重症
度、投与方法および担当医の判断によって異なる。
【０３０９】 治療 本発明の請求の範囲に包含される抗体および因子は、様々な臨床的に関連のあ
る細胞型の増幅に有用である。処置は、インビボまたはエクスビボであり得る。
例えば、アゴニスト抗体は、例えば患者に存在する所定の系統（複数も可）の細
胞数が正常値より少ない場合である造血抑制に関連した病気、障害または処置に
より誘発される造血細胞集団の欠乏に苦しむ患者の処置に有用である。以下、本
発明の請求の範囲に記載された抗体および因子で処置され得る状態の僅か一部で
はあるが例が示されており、当業界の実践者であれば上記処置から利益を被る他
の疾患および状態を同定できるはずである。例えば、ＨＩＶ感染患者、化学療法
を受けている患者、骨髄移植患者および骨髄増殖性疾患に苦しむ患者が示す特異
的造血系統のレベルは正常より低い。好中球減少症は、循環している末期分化好
中球の数の減少である。好中球減少症は、ウイルスおよび重度細菌感染症、薬剤
、例えばある種の抗生物質および抗痙攣薬への暴露、自己免疫プロセス、例えば
全身性エリテマトーデスに見られる病状、骨髄浸潤性プロセス、例えば白血病、
転移性腫瘍および骨髄線維症、および先天性代謝異常、例えばプロピオン酸血症
およびイソ吉草酸血症を含む、若干の病態生理学的状態に二次的またはそれに随
伴して現れる。慢性原発性好中球減少疾患の中には、例えば周期性好中球減少症
のように遺伝的に伝わるものもあるが、他は免疫機能障害に随伴して発生し、例
えばエプスタイン‐バールウイルスまたはヒト免疫不全ウイルス感染により発症
する。他の病状は、シュバッハマン症候群を含む慢性特発性好中球減少症、Ｘ連
鎖無ガンマグロブリン血症、低ガンマグロブリン血症および機能低下細胞性免疫
に随伴し得る。後天性顆粒球減少症は、骨髄での顆粒球産生が損なわれたことに
よる循環血中における顆粒球数の低減化を特徴とする血液疾患である。腎臓透析
を受けている患者は、赤血球レベルが正常値より低い処置関連の貧血を患うこと
が多い。再生不良性貧血では、骨髄抑制が汎血球減少を誘発し得るかまたは赤血
球、白血球または血小板にのみ影響を及ぼし得る。アゴニスト抗体および因子に
より、特異細胞集団、例えば造血細胞の欠乏を特徴とするこれらおよび他の病気
および障害に対する治療剤の医療設備は増大される。
【０３１０】 本発明の請求の範囲に包含される抗体および因子はまた、臨床的に関連のある
細胞型の抑制に有用である。例えば、造血細胞集団の異常増殖には、患者に存在
する所定の系統（複数も可）の細胞の数が正常より多い疾患がある。慢性骨髄性
白血病は、造血幹細胞における染色体転座の存在に起因する骨髄増殖を特徴とす
る病気である。血小板減少症は、巨核球数の増加を特徴とする病気である。真性
赤血球増加症は、顆粒球、単球、および血小板数並びに赤血球数が通常高い骨髄
増殖性症候群の一形態である。この病気は、過剰増殖する幹細胞の腫瘍性クロー
ンにより誘発される。アレルギー疾患、例えば鼻炎、喘息および湿疹では、好塩
基性細胞、マスト細胞および好酸球の過剰生産が存する。本発明の請求の範囲に
より示された好酸球、マスト細胞および好塩基性細胞生産の阻害物質は、重症ア
レルギー患者に対する治療薬として役立ち得る。さらに、阻害物質を化学療法で
臨床的に使用することにより、正常細胞の増殖が抑制され得、癌細胞は細胞周期
を通して増殖を続行するため化学療法剤に対する感受性が高められる。
【０３１１】 また本発明の請求の範囲に包含される分子は、細胞のエクスビボ増殖および分
化に使用され得る。これは遺伝子治療目的、例えば伝統的なウイルスベクター方
法、および自己骨髄移植に有用である。造血始原細胞への遺伝子の転移は、悪性
および非悪性疾患に対する遺伝子治療の主要目標である。使用されている大部分
の遺伝子治療ベクターは、細胞ＤＮＡへのウイルスゲノムの組込みに関する有糸
分裂を必要とする。単一幹細胞が分裂して多くの子孫細胞を形成するため、組込
みは好ましい。ベクター露出前または間に投与されたアゴニスト抗体、因子また
は上記の組み合わせは、幹細胞のエクスビボ増殖を促進し得る。
【０３１２】 さらに、本発明の抗体は、放射線免疫治療用に放射性標識され得るかまたは毒
素にコンジュゲートされて上記毒素を特異細胞型に送達することにより、それら
の細胞を殺し得る。
【０３１３】 診断および精製 請求の範囲に含まれる分子は、細胞系統に特異的な抗体フラグメントが、蛍光
マーカーにコンジュゲートされているかまたは１次抗体として使用され、それに
伴う２次抗体が蛍光マーカーにコンジュゲートされる診断で使用され得、またフ
ロー・サイトメトリー分析で使用されることにより、例えば患者の血液または骨
髄において、臨床的に関連のある細胞型を同定し得る。さらに、これらの分子は
、細胞分離方法、例えば蛍光活性化細胞選別法（ＦＡＣＳ）または磁気選別法で
使用され得る。蛍光活性化細胞選別法では、蛍光分子で標識した細胞をフロー・
サイトメーター、例えばベクトン‐ディッキンソン（サンホセ、カリフォルニア
）ＦＡＣＳIVサイトメーターまたは均等内容の器具で電子的に選別する。蛍光分
子は、特異的細胞表面抗原を認識する抗体である。抗体を、蛍光マーカー、例え
ばフルオレセインイソチオシアネート（ＦＩＴＣ）またはフィコエリスリン（Ｐ
Ｅ）にコンジュゲートする。磁気選別方法では、抗体を磁気マイクロビーズに直
接的または間接的にコンジュゲートする。細胞は、細胞表面分子、例えば増殖、
分化、活性化または生存に関与する受容体を認識するアゴニストまたは阻害性抗
体でプレコーティングされる。抗体は、アゴニストまたは阻害性抗体、例えば各
抗体へ遺伝子操作されたＨＡ分子標識に結合する２次免疫グロブリンとコンジュ
ゲートした磁気ビーズに結合される。次いで、細胞を磁石で取り除く。磁気選別
法は、興味の対象である細胞が抗体すなわち磁石により結合されている正の選択
、または望ましくない細胞を磁石上へ分離する負の選択であり得る。
【０３１４】 別法として、放射性標識抗体は、診断目的に使用され得る。 他の態様も請求の範囲内に含まれる。
【０３１５】
【配列表】
【図面の簡単な説明】
【図１】 ファージディスプレーに使用されるベクターの概略図を示す。
【図２Ａ】 ｓｃＦｖクローニング計画で使用されるプライマーの概略図を
示す。
【図２Ｂ】 ｓｃＦｖクローニング計画で使用されるプライマーの概略図を
示す。
【図３Ａ】 Ｆａｂクローニング計画で使用されるプライマーの概略図を示
す。
【図３Ｂ】 Ｆａｂクローニング計画で使用されるプライマーの概略図を示
す。
【図３Ｃ】 Ｆａｂクローニング計画で使用されるプライマーの概略図を示
す。
【図３Ｄ】 Ｆａｂクローニング計画で使用されるプライマーの概略図を示
す。
【図４】 ＳｃＦｖクローニング計画の概略図を示す。
【図５Ａ】 Ｆａｂクローニング計画で使用されるベクターの概略図を示す
。
【図５Ｂ】 Ｆａｂクローニング計画で使用されるベクターの概略図を示す
。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 ＦＩ テーマコート゛(参考） Ｃ１２Ｑ 1/68 Ｇ０１Ｎ 33/566 Ｇ０１Ｎ 33/566 Ｃ１２Ｎ 15/00 ＺＮＡＡ (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＣＹ， ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，Ｉ Ｔ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＧＷ，ＭＬ， ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＧＭ，Ｋ Ｅ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ，ＺＷ)，ＥＡ(ＡＭ ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ) ，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ， ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，Ｄ Ｋ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＧＨ，ＧＭ，ＨＲ ，ＨＵ，ＩＤ，ＩＬ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ， ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，Ｌ Ｖ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ， ＳＫ，ＳＬ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，Ｕ Ｚ，ＶＮ，ＹＵ，ＺＷ Ｆターム(参考） 4B024 AA11 BA44 BA63 CA04 DA03 EA02 EA04 GA11 HA01 HA15 4B063 QA01 QQ43 QR32 QR55 QR62 QS25 QS33 QS34 4B064 AG27 CA10 CA19 CC24 DA13 4C057 MM04 MM09 4H045 AA11 BA10 CA40 DA76 EA54 FA74

Claims (41)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項１】 細胞の増殖、分化、生存または活性化に関与する受容体に対
    するアゴニストまたは阻害性抗体の同定方法であって、 上記受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することによ
    り、表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞を生
    産し、 上記抗体をコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞からのライブラリーを
    作成し、 ライブラリーからの核酸配列を表面ディスプレーベクターへクローン化するこ
    とにより、抗体が表面ディスプレーされ、そして 標的細胞を用いて表面ディスプレーされた抗体をスクリーニングすることによ
    り、受容体に対するアゴニストまたは阻害性抗体を同定する 段階を含む方法。
  2. 【請求項２】 成長因子受容体に対するアゴニスト抗体の同定方法であって
    、 成長因子受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化すること
    により、表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞
    を生産し、 抗体をコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞からのライブラリーを作成
    し、 ライブラリーからの核酸配列を表面ディスプレーベクターへクローン化するこ
    とにより、抗体が表面ディスプレーされ、そして 標的細胞を用いて表面ディスプレーされた抗体をスクリーニングすることによ
    り、成長因子受容体に対するアゴニスト抗体を同定する 段階を含む方法。
  3. 【請求項３】 抗体がｓｃＦｖフラグメントである、請求項２記載の方法。
  4. 【請求項４】 抗体がＦａｂフラグメントである、請求項２記載の方法。
  5. 【請求項５】 表面ディスプレーベクターがファージミドベクターである、
    請求項３記載の方法。
  6. 【請求項６】 成長因子受容体に対するアゴニスト抗体の同定方法であって
    、 成長因子受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化すること
    により、表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞
    を生産し、 抗体のｓｃＦｖフラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞か
    らのライブラリーを作成し、 ライブラリーからの核酸配列をファージミドベクターへクローン化することに
    より、ｓｃＦｖフラグメントがファージミド表面にディスプレーされ、 標的細胞の細胞表面分子への結合についてファージミドにディスプレーされた
    ｓｃＦｖフラグメントをふるい分けし、そして 機能検定において細胞表面分子と結合するｓｃＦｖフラグメントをスクリーニ
    ングすることにより、成長因子受容体に関するアゴニスト抗体であるものを同定
    する 段階を含む方法。
  7. 【請求項７】 成長因子受容体に対するアゴニスト抗体の同定方法であって
    、 成長因子受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化すること
    により、表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞
    を生産し、 抗体のＦａｂフラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞から
    のライブラリーを作成し、 ライブラリーからの核酸配列を表面ディスプレーベクターへクローン化するこ
    とにより、Ｆａｂフラグメントを表面ディスプレーさせ、 標的細胞の細胞表面分子への結合について表面ディスプレーされたＦａｂフラ
    グメントをふるい分けし、 細胞表面分子と結合するＦａｂフラグメントを２量体化し、そして 機能検定において、２量体化Ｆａｂフラグメントをスクリーニングすることに
    より、成長因子受容体に関するアゴニスト抗体であるものを同定する 段階を含む方法。
  8. 【請求項８】 表面ディスプレーベクターがファージミドベクターである、
    請求項７記載の方法。
  9. 【請求項９】 幹／始原細胞が、未選別ヒト骨髄細胞、ヒト骨髄を起点とす
    るヒト末梢血細胞、選別ヒト骨髄細胞、未選別ネズミ骨髄細胞、選別ネズミ骨髄
    細胞、胎児肝細胞、卵黄嚢細胞、ネズミＡＧＭ領域から誘導された細胞、ヒトま
    たはネズミ胎生期癌細胞または系統、ヒトまたはマウス複能性奇形癌細胞または
    系統、ネズミ複能性胚性細胞、ヒト胚性幹（ＥＳ）セルライン、神経起源の細胞
    、器官または組織再生に関与する細胞、ＲＢＣ溶解を被ったヒト骨髄細胞、ヒト
    骨髄単核細胞、ヒト骨髄ＣＤ３４+細胞、ＦＤＣＰ−混合ネズミ造血幹セルライ
    ン、Ｂ６ＳＵＴＡネズミ造血幹セルライン、Ｐ１９奇形癌細胞およびＮＴｅｒａ
    −２複能性胎生期癌細胞から成る群から選択される、請求項１または２記載の方
    法。
  10. 【請求項１０】 成長因子受容体に対するアゴニスト抗体の製造方法であっ
    て、 成長因子受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化すること
    により、表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞
    を生産し、 抗体をコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞からのライブラリーを作成
    し、 ライブラリーからの核酸配列を表面ディスプレーベクターへクローン化するこ
    とにより、抗体を表面ディスプレーさせ、 標的細胞を用いて表面ディスプレーされた抗体をスクリーニングすることによ
    り、成長因子受容体に関するアゴニスト抗体である抗体を同定する 段階を含む方法。
  11. 【請求項１１】 ライブラリーが組み合わせライブラリーである、請求項１
    または２記載の方法。
  12. 【請求項１２】 アゴニスト抗体に関するスクリーニング方法であって、 抗体が指向される受容体を発現する標的細胞の存在下で抗体フラグメントを発
    現する細胞を成長させ、そして 抗体フラグメントをスクリーニングすることにより、アゴニスト抗体であるも
    のを同定する 段階を含む方法。
  13. 【請求項１３】 幹／始原細胞で動物を免疫化することにより生産された成
    長因子受容体に対するアゴニスト抗体。
  14. 【請求項１４】 幹／始原細胞が、未選別ヒト骨髄細胞、ヒト骨髄を起点と
    するヒト末梢血細胞、選別ヒト骨髄細胞、未選別ネズミ骨髄細胞、選別ネズミ骨
    髄細胞、胎児肝細胞、卵黄嚢細胞、ネズミＡＧＭ領域から誘導された細胞、ヒト
    またはネズミ胎生期癌細胞または系統、ヒトまたはマウス複能性奇形癌細胞また
    は系統、ネズミ複能性胚性細胞、ヒト胚性幹（ＥＳ）セルライン、神経起源の細
    胞、器官または組織再生に関与する細胞、ＲＢＣ溶解を被ったヒト骨髄細胞、ヒ
    ト骨髄単核細胞、ヒト骨髄ＣＤ３４+細胞、ＦＤＣＰ−混合ネズミ造血幹セルラ
    イン、Ｂ６ＳＵＴＡネズミ造血幹セルライン、Ｐ１９奇形癌細胞、およびＮＴｅ
    ｒａ−２複能性胎生期癌細胞から成る群から選択される、請求項１３記載の抗体
    。
  15. 【請求項１５】 請求項１０記載の方法により生産された成長因子受容体に
    対するアゴニスト抗体。
  16. 【請求項１６】 幹／始原細胞で免疫化された動物の免疫細胞からの核酸配
    列を含む抗体分子またはそのフラグメントをコードする組み合わせライブラリー
    。
  17. 【請求項１７】 幹／始原細胞で免疫化された動物の免疫細胞からの核酸配
    列を含む抗体分子またはそのフラグメントをコードする組み合わせライブラリー
    。
  18. 【請求項１８】 幹／始原細胞の表面分子に指向された組み合わせ抗体フラ
    グメントライブラリー。
  19. 【請求項１９】 細胞の増殖、分化、生存または活性化に関与する受容体を
    含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、表面分子に
    対する１つまたはそれ以上の抗体またはその抗体フラグメントを発現する複数の
    免疫細胞を生産し、 抗体をコードする核酸配列を含む複数の免疫細胞からライブラリーを作成し、 ライブラリーからの核酸配列を表面ディスプレーベクターへクローン化するこ
    とにより抗体を表面ディスプレーさせることにより作成された組み合わせライブ
    ラリー。
  20. 【請求項２０】 幹／始原細胞が、未選別ヒト骨髄細胞、ヒト骨髄を起点と
    するヒト末梢血細胞、選別ヒト骨髄細胞、未選別ネズミ骨髄細胞、選別ネズミ骨
    髄細胞、胎児肝細胞、卵黄嚢細胞、ネズミＡＧＭ領域から誘導された細胞、ヒト
    またはネズミ胎生期癌細胞または系統、ヒトまたはマウス複能性奇形癌細胞また
    は系統、ネズミ複能性胚性細胞、ヒト胚性幹（ＥＳ）セルライン、神経起源の細
    胞、器官または組織再生に関与する細胞、ＲＢＣ溶解を被ったヒト骨髄細胞、ヒ
    ト骨髄単核細胞、ヒト骨髄ＣＤ３４+細胞、ＦＤＣＰ−混合ネズミ造血幹セルラ
    イン、Ｂ６ＳＵＴＡネズミ造血幹セルライン、Ｐ１９奇形癌細胞およびＮＴｅｒ
    ａ−２複能性胎生期癌細胞から成る群から選択される、請求項１６、１７、１８
    または１９のいずれか１項記載のライブラリー。
  21. 【請求項２１】 抗体がｓｃＦｖフラグメントである、請求項１６、１７、
    １８または１９のいずれか１項記載のライブラリー。
  22. 【請求項２２】 抗体がＦａｂフラグメントである、請求項１６、１７、１
    ８または１９記載のライブラリー。
  23. 【請求項２３】 組み合わせライブラリーによりコードされる抗体またはそ
    のフラグメントがファージミドにおいて表面ディスプレーされている、請求項１
    ６、１７、１８または１９のいずれか１項記載のライブラリー。
  24. 【請求項２４】 細胞の増殖、分化、生存または活性化に関与する受容体に
    対する抗体またはそのフラグメントをコードする組み合わせ抗体ライブラリーの
    製造方法であって、 受容体を含む表面分子を有する幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、
    表面分子に対する１つまたはそれ以上の抗体または抗体フラグメントを発現する
    複数の免疫細胞を生産し、 複数の免疫細胞から、抗体フラグメントの可変および定常領域をコードする核
    酸配列を得、 抗体フラグメントの可変領域をコードする核酸配列をランダムに組み合わせる
    ことにより、抗体フラグメントをコードする核酸配列の組み合わせライブラリー
    を製造し、 ライブラリーの核酸配列を表面ディスプレーベクターへクローン化することに
    より、抗体フラグメントが表面ディスプレーされる 段階を含む方法。
  25. 【請求項２５】 さらに、抗体フラグメントをコードする核酸配列を得る前
    に、幹／始原細胞への結合について免疫化動物から得られた血清をスクリーニン
    グする段階を含む、請求項２４記載の方法。
  26. 【請求項２６】 幹／始原細胞が、未選別ヒト骨髄細胞、ヒト骨髄を起点と
    するヒト末梢血細胞、選別ヒト骨髄細胞、未選別ネズミ骨髄細胞、選別ネズミ骨
    髄細胞、胎児肝細胞、卵黄嚢細胞、ネズミＡＧＭ領域から誘導された細胞、ヒト
    またはネズミ胎生期癌細胞または系統、ヒトまたはマウス複能性奇形癌細胞また
    は系統、ネズミ複能性胚性細胞、ヒト胚性幹（ＥＳ）セルライン、神経起源の細
    胞、器官または組織再生に関与する細胞、ＲＢＣ溶解を被ったヒト骨髄細胞、ヒ
    ト骨髄単核細胞、ヒト骨髄ＣＤ３４+細胞、ＦＤＣＰ−混合ネズミ造血幹セルラ
    イン、Ｂ６ＳＵＴＡネズミ造血幹セルライン、Ｐ１９奇形癌細胞およびＮＴｅｒ
    ａ−２複能性胎生期癌細胞から成る群から選択される、請求項２４記載の方法。
  27. 【請求項２７】 細胞の増殖、分化または活性化に関する阻害性抗体の同定
    方法であって、 細胞の増殖、分化または活性化に関与する受容体を含む表面分子を有する幹／
    始原細胞で動物を免疫化することにより、表面分子に対する１つまたはそれ以上
    の抗体を発現する複数の免疫細胞を生産し、 抗体をコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞からのライブラリーを作成
    し、 ライブラリーからの核酸配列を表面ディスプレーベクターへクローン化するこ
    とにより、抗体を表面ディスプレーさせ、そして 標的細胞の増殖、分化または活性化を阻害するものについて表面ディスプレー
    された抗体をスクリーニングすることにより、阻害性抗体を同定する 段階を含む方法。
  28. 【請求項２８】 抗体がｓｃＦｖフラグメントである、請求項２７記載の方
    法。
  29. 【請求項２９】 抗体がＦａｂフラグメントである、請求項２７記載の方法
    。
  30. 【請求項３０】 表面ディスプレーベクターがファージミドベクターである
    、請求項２８記載の方法。
  31. 【請求項３１】 細胞の増殖、分化または活性化に関する阻害性抗体の同定
    方法であって、 細胞の増殖、分化または活性化に関与する受容体を含む表面分子を有する幹／
    始原細胞で動物を免疫化することにより、表面分子に対する１つまたはそれ以上
    の抗体を発現する複数の免疫細胞を生産し、 抗体のｓｃＦｖフラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞か
    らのライブラリーを作成し、 ライブラリーからの核酸配列を表面ディスプレーベクターへクローン化するこ
    とにより、ｓｃＦｖフラグメントは表面ディスプレーされ、 表面ディスプレーされたｓｃＦｖフラグメントを標的細胞の細胞表面分子への
    結合についてふるい分けし、そして 機能検定において、標的細胞の増殖、分化または活性化を阻害するものについ
    て細胞表面分子に結合するｓｃＦｖフラグメントをスクリーニングすることによ
    り、阻害性抗体を同定する 段階を含む方法。
  32. 【請求項３２】 細胞の増殖、分化または活性化に関する阻害性抗体の同定
    方法であって、 細胞の増殖、分化または活性化に関与する受容体を含む表面分子を有する幹／
    始原細胞で動物を免疫化することにより、表面分子に対する１つまたはそれ以上
    の抗体を発現する複数の免疫細胞を生産し、 抗体のＦａｂフラグメントをコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞から
    のライブラリーを作成し、 ライブラリーからの核酸配列を表面ディスプレーベクターへクローン化するこ
    とにより、Ｆａｂフラグメントを表面ディスプレーさせ、 標的細胞の細胞表面分子への結合について表面ディスプレーされたＦａｂフラ
    グメントをふるい分けし、 細胞表面分子と結合するＦａｂフラグメントを２量体化し、そして 機能検定において、標的細胞の増殖、分化または活性化を阻害するものについ
    て単量体および２量体化Ｆａｂフラグメントの両方をスクリーニングすることに
    より、阻害性抗体を同定する 段階を含む方法。
  33. 【請求項３３】 表面ディスプレーベクターがファージミドベクターである
    、請求項３１または３２記載の方法。
  34. 【請求項３４】 幹／始原細胞が、未選別ヒト骨髄細胞、ヒト骨髄を起点と
    するヒト末梢血細胞、選別ヒト骨髄細胞、未選別ネズミ骨髄細胞、選別ネズミ骨
    髄細胞、胎児肝細胞、卵黄嚢細胞、ネズミＡＧＭ領域から誘導された細胞、ヒト
    またはネズミ胎生期癌細胞または系統、ヒトまたはマウス複能性奇形癌細胞また
    は系統、ネズミ複能性胚性細胞、ヒト胚性幹（ＥＳ）セルライン、神経起源の細
    胞、器官または組織再生に関与する細胞、ＲＢＣ溶解を被ったヒト骨髄細胞、ヒ
    ト骨髄単核細胞、ヒト骨髄ＣＤ３４+細胞、ＦＤＣＰ−混合ネズミ造血幹セルラ
    イン、Ｂ６ＳＵＴＡネズミ造血幹セルライン、Ｐ１９奇形癌細胞およびＮＴｅｒ
    ａ−２複能性胎生期癌細胞から成る群から選択される、請求項２７記載の方法。
  35. 【請求項３５】 細胞の増殖、分化または活性化に関する阻害性抗体の製造
    方法であって、 細胞の増殖、分化または活性化に関与する受容体を含む表面分子を有する幹／
    始原細胞で動物を免疫化することにより、表面分子に対する１つまたはそれ以上
    の抗体を発現する複数の免疫細胞を生産し、 抗体をコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞からのライブラリーを作成
    し、 ライブラリーからの核酸配列を表面ディスプレーベクターへクローン化するこ
    とにより、抗体が表面ディスプレーされ 標的細胞の増殖、分化または活性化を阻害するものについて表面ディスプレー
    された抗体をスクリーニングすることにより、阻害性抗体を同定し、そして 阻害性抗体を合成する 段階を含む方法。
  36. 【請求項３６】 ライブラリーが組み合わせライブラリーである、請求項２
    ７記載の方法。
  37. 【請求項３７】 細胞の増殖、分化または活性化に関する阻害性抗体につい
    てスクリーニングする方法であって、 抗体が指向されている受容体を発現する標的細胞の存在下で抗体フラグメント
    を発現する細胞を成長させ、そして 標的細胞の増殖、分化または活性化を阻害するものについて抗体フラグメント
    をスクリーニングすることにより、阻害性抗体を同定する 段階を含む方法。
  38. 【請求項３８】 幹／始原細胞で動物を免疫化することにより製造された、
    細胞の増殖、分化または活性化に関与する受容体に対する阻害性抗体。
  39. 【請求項３９】 幹／始原細胞が、未選別ヒト骨髄細胞、ヒト骨髄を起点と
    するヒト末梢血細胞、選別ヒト骨髄細胞、未選別ネズミ骨髄細胞、選別ネズミ骨
    髄細胞、胎児肝細胞、卵黄嚢細胞、ネズミＡＧＭ領域から誘導された細胞、ヒト
    またはネズミ胎生期癌細胞または系統、ヒトまたはマウス複能性奇形癌細胞また
    は系統、ネズミ複能性胚性細胞、ヒト胚性幹（ＥＳ）セルライン、神経起源の細
    胞、器官または組織再生に関与する細胞、ＲＢＣ溶解を被ったヒト骨髄細胞、ヒ
    ト骨髄単核細胞、ヒト骨髄ＣＤ３４+細胞、ＦＤＣＰ−混合ネズミ造血幹セルラ
    イン、Ｂ６ＳＵＴＡネズミ造血幹セルライン、Ｐ１９奇形癌細胞およびＮＴｅｒ
    ａ−２複能性胎生期癌細胞から成る群から選択される、請求項３８記載の阻害性
    抗体。
  40. 【請求項４０】 請求項３５記載の方法により製造される、細胞の増殖、分
    化または活性化に関与する受容体に対する阻害性抗体。
  41. 【請求項４１】 細胞の増殖、分化、活性化または生存に関する阻害性抗体
    の同定方法であって、 細胞の増殖、分化、活性化または生存に関与する受容体を含む表面分子を有す
    る幹／始原細胞で動物を免疫化することにより、表面分子に対する１つまたはそ
    れ以上の抗体を発現する複数の免疫細胞が生産され、 抗体をコードする核酸配列を含む、複数の免疫細胞からのライブラリーを作成
    し、 ライブラリーからの核酸配列を表面ディスプレーベクターへクローン化するこ
    とにより抗体が表面ディスプレーされ、そして 標的細胞の増殖、分化、活性化または生存を阻害するものについて表面ディス
    プレーされた抗体をスクリーニングすることにより、阻害性抗体を同定する 段階を含む方法。
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