JP2003517451A - リン酸化部位に特異的な免疫学的反応体を生じさせる方法 - Google Patents
リン酸化部位に特異的な免疫学的反応体を生じさせる方法Info
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Abstract
Description
程(cellular processes)の調節にとって重要である。セリ
ン、トレオニンおよびチロシン残基のリン酸化による蛋白質活性の調節が高度に
利用されている。また、蛋白質のヒスチジン、アルギニンおよびリジン残基も細
胞過程でリン酸化を受けるが、そのような非常に不安定な修飾を研究するのは困
難なことからその重要性は未知である。蛋白質のリン酸化状態の変化を検出して
量化することはそれの機能的重要性の研究において大きな有用性を有する。
フェート部分に燐の放射性同位体(ホスフェートとして)を組み込んでおくこと
でその部分に前以て標識を付けておくことを伴う。そのようなリン酸化アッセイ
はいくつかの方法論的落とし穴に苦しんでおり、そのような落とし穴には、予め
標識を付けておく実験で[32P]Piを多い量で用いる必要があることに関連し
た健康の危険および処分問題、規定(regulated)物質を用いた作業の
煩わしさ、そしてリン酸化を受けた部位が1つの蛋白質またはペプチド部分に数
箇所存在する場合の部位特異性が不足していることが含まれる。このような欠点
が存在する結果として、蛋白質のリン酸化状態を検出しようとする場合に免疫化
学を基にした方法が普及してきている。免疫化学方法を用いた時に達成され得る
感度および選択率が理由で、このような方法は魅力的な代替法である(Mats
ui 他.,J.Cell.Bio.140:647−657(1998);C
onrad 他.,Hybridoma 16:167−173(1997))
。
出されて特徴づけされた。このような抗体の単離は、リン酸化エピトープの特異
的標的が主な目的ではない免疫プロトコルを用いて行われた。より最近になって
、リン酸化部位上のエピトープを標的にする抗体が産出される機会を向上させる
目的で小型の合成ホスホポリペプチドが用いられた(Sakaguchi 他.
,Genes および Dev.12:2831−2841(1998);Ma
tsui 他.,J.Cell Bio.140:647−657(1998)
;Chen 他.,FASEB J.2:A550(1988);Czerni
k 他.,Methods in Enzymology 201:264−2
83(1991))。このような方法は、より直接的ではあるが、それでもまだ
、免疫時にポリペプチド抗原が急速に脱リン酸化を起こすことでホスホ特異的抗
体の滴定量が少なくなると言った制限に苦しんでいる。このことは、特に、ホス
ホセリンおよびホスホトレオニン(これらは両方とも一般にホスホチロシンより
もかなり不安定である)を含有する抗原を用いた時に問題になる。
に反応する抗体を生じさせる方法を提供する。モノクローナルおよびポリクロー
ナル両方の抗体を生じさせる方法を提供する。本方法は、リン酸化アミノ酸残基
の擬態(mimetic)を組み込んでおいたポリペプチドを提供することを伴
う。この擬態に天然にリン酸化を受けたアミノ酸にも存在する抗原決定基を持た
せる。このポリペプチド抗原を標準的な方法で用いて天然のリン酸化ポリペプチ
ドと交差反応して前記ポリペプチドの特異的リン酸化状態を特異的に認識するモ
ノクローナルもしくはポリクローナルいずれかの抗体を生じさせる。
原子と燐原子(ホスフェート基が有する)の間に存在させる。好適な態様におけ
る前記結合はCF2基である。このような結合基をホスホセリンに組み込むこと
で擬態F2Pabを生じさせる。p53から誘導されるポリペプチド配列に存在
するホスホセリンの代わりにF2Pabを用いることで、p53の特異的リン酸
化状態を認識する抗体を生じさせる。別の態様では、CF2結合基をホスホトレ
オニンに組み込むことで擬態F2Pmbを生じさせる。別の態様では、CF2結合
をホスホチロシンに組み込むことで擬態F2Pmpを生じさせる。
スホペプチド擬態(Burke 他.,Biochem.Biophys.Re
s.Commun.204:129−134(1994);Chen 他.,B
iochem.Biophys.Res.Commun.216:976−98
4)が抗原性を示すことを見いだしたことを基にしている。より具体的には、あ
る擬態をポリペプチドに組み込んだ後、それを用いて、ある動物が免疫応答を示
すようにする目的でそれを接種し、少なくともある程度ではあるが、前記擬態に
存在する抗原決定基に対する抗体を引き出させる。本発明は、また、前記擬態に
対して生じさせた抗体が天然のホスホペプチドと交差反応することを見いだした
ことも基にしている。このような交差反応性は、擬態が天然のホスホペプチドの
抗原決定基に非常に類似した抗原決定基を有することを示している[それが同じ
隣接する(flanking)アミノ酸の前後関係(context)で存在す
る場合]。そのような擬態ペプチド(mimetic−peptide)に対し
て生じさせた抗体は、天然のリン酸化ポリペプチドに対して、抗原性アミノ酸配
列の元の燐蛋白質を免疫診断で同定する時の道具として働くに充分な結合活性お
よび特異性を示す。このような見いだした事が基になって、前以て決めておいた
蛋白質の特別なリン酸化状態を識別する免疫学的反応体を生じさせて単離する方
法を提供する本発明がもたらされた。
然のリン酸化残基に非常に類似していなければならずかつまた化学的に安定でな
ければならない(例えばホスファターゼによる脱リン酸化に対して耐性を示す必
要がある)。これを、天然に存在する酸素橋渡しの代わりに非加水分解性結合が
ホスフェート部分に結合しているアミノ酸原子構造を含んで成る合成分子を用い
て達成する。好適な態様では、CF2基でアミノ酸とホスフェートを連結させる
。自然にリン酸化を受ける数種のアミノ酸の擬態をそのようなアプローチで生じ
させることができる。適切な炭素からホスフェート部分に至る所にCF2結合を
位置させることでホスホセリン、ホスホトレオニンおよびホスホチロシンの擬態
を生じさせる。好適な態様では、抗原性ポリペプチドに存在するホスホセリンの
代わりに擬態分子であるL−2−アミノ−4−(ジエチルホスホノ)−4,4−
ジフルオロブタン酸(F2Pab)[Otaka他、Tetrahedron
Letters 36:927−930(1995)]を用い、ホスホトレオニ
ンの代わりにL−2−アミノ−4−ホスホノ−4,4−ジフルオロ−3−メチル
ブタン酸(F2Pmb)を用い、そしてホスホチロシンの代わりにL−2−アミ
ノ−4−ホスホノ(ジフルオロメチル)フェニルアラニン(F2Pmp)[Ak
amatsu他、Bioorg & Med Chem.5:157−163(
1997)]を用いる(図1および図2)。代替態様では、天然のアミノ酸が有
する酸素橋渡しをメチレン基に置き換える(図1および図2)。
6:927−930(1995)に記述されている。F2Pmpの合成はSmy
th他、Tetrahedron Lett. 35:551(1994)およ
びAkamatsu他、Bioorg & Med Chem.5:157−1
63(1997)に記述されている。F2Pmbの合成を、追加的メチル基を1
つ持たせたバックボーン前駆体を用いてF2Pab合成に類似した方法で達成す
る。
な擬態をリン酸化残基を取り巻いている配列に相当する合成ペプチドに組み込む
。この組み込み方法は公知であるか或は他の様式で本分野の技術者に利用可能で
ある。ホスホ特異的抗体を生じさせる時に必要な配列の長さは、この試験で用い
る個々の燐蛋白質に依存し得る。必要な特異性を生じさせるには一般にホスホ残
基に隣接する3または4個の残基に相当する配列を存在させることで充分である
。1つの態様におけるポリペプチド抗原は、そのような配列に適切な擬態が組み
込まれている縦列繰り返し(tandem repeat)を含んで成る。抗原
のプロセシング(processing)および掲示(presentatio
n)が容易に起こるようにする目的で繰り返し配列の間にスペーサーであるアミ
ノ酸を組み込むことも可能である。本分野の技術者は化学合成を用いた常規実験
を適用することを通してそのようなポリペプチドを生じさせることができるであ
ろう。以下に示す例示セクションに詳述するように、以下に挙げるSEQ ID
NO:1で示すアミノ酸配列を伴うポリペプチド抗原を用いて、セリン15の
所がリン酸化を受けているp53を認識するポリクローナル抗体を生じさせるこ
とができる。p53が有する他の天然セリンのリン酸化部位に相当する数種のホ
スホペプチドを用いて成功裏にホスホ特異的抗体を生じさせた[Sakaguc
hi他、Genes and Dev.12:2831−2841(1998)
]。例示セクションに示す実験は、またF2Pabが天然ホスホセリンの代わり
に組み込まれているポリペプチド抗原を本発明の方法で用いることでもホスホ特
異的抗原を生じさせることができることを示している。そのようなポリペプチド
抗原を以下に挙げ、これらをSEQ ID NO:2−10で示す。
物により類似させるか或は別法として抗原性を助長することも可能である。その
ような修飾には、これらに限定するものでないが、酵素による修飾、化学的保護
または脱保護、変性および化学結合(coupling)が含まれる。好適な態
様では、前記ポリペプチドを担体蛋白質であるキーホールリンペット(keyh
ole limpet)ヘモシアニンに結合させる。他の担体蛋白質を置換で用
いることも可能であり、そのような担体蛋白質には、例えばウシの血清アルブミ
ン、オボアルブミンおよびツベルクリンの精製蛋白誘導体が含まれる。化学結合
は例えば二官能反応体などを用いて達成可能である。
を用いて、これをある動物に免疫応答を引き出すような条件下で接種する。この
免疫応答の産物を単離して、燐蛋白質にしかないもの以外の抗原決定基に交差反
応を示す成分に関して選別する。このような成分を単離して、これを前記ポリペ
プチド抗原配列の元の蛋白質の特別なリン酸化状態を識別する反応体として用い
る。
一連の好機接種(fimed series of inoculations
)として実施する。好適な態様では、天然のホスホペプチド複合体を1回以上の
最終的接種(増強)で用いる。この段階は、リン酸化されていないペプチドに反
応性を示す抗体の合成を過度に刺激(脱リン酸化を受けたペプチドが抗体合成を
刺激する結果としてもたらされる)することなく最も有用な抗体を産出するB細
胞の数を多くすることを意図した段階である。このような増強を通常技術に従っ
て実施し、そして実験でそれを更に最適にすることができる。
態を抗原として用いて前以て決めておいたアミノ酸残基の所がリン酸化を受けて
いる蛋白質もしくはポリペプチドに特異的に結合するポリクローナル抗体を生じ
させて単離する方法である。通常の技術(例えば、Harlow および La
ne(Eds.),Antibodies,A Laboratory Man
ual(Cold Spring Harbor Laboratory,Co
ld Spring Harbor,New York(1988)参照))を
用い、この上に記述した如く調製した免疫原を用いてある動物に免疫性を与える
ことを通して、ポリクローナル抗体を調製する。簡単に述べると、そのようにし
て免疫性を与えた動物を前記免疫原に反応性を示す抗体が産出される条件下に維
持する。所望の抗体滴定量に到達した時点で前記動物から血液を集める。当該抗
体を含有する血清を他の血液成分から分離する。別法として、前記免疫性を与え
た動物から抗体含有腹水液を誘発させて単離する。場合により、そのようなポリ
クローナル抗体を含有する血清または腹水液を個々の種類の抗体(例えばIgG
またはIgM)が入っている画分に更に分離することも可能である。
蛋白質の両方に共通した抗原決定基を含有することから、本方法で生じさせた血
清は、通常は、燐蛋白質に特異的に結合する抗体の集合を含有することに加えて
またリン酸化状態に依存しないで結合する抗体の集合も含有する。通常技術(C
zernik 他.,Methods in Enzymology 201:
264−283(1991))を用いて、そのような望まれない結合活性を抗血
清から排出させるか或は除去してもよい。必要ならば、抗原決定基を用いたアフ
ィニティー(affinity)精製(例えばアフィニティークロマトグラフィ
ーによる)で前記血清から単一特異的(monospecific)抗体を精製
してもよいか、或は逆に、他の抗体活性の全部を前記血清から除去してもよい。
を抗原として用いて前以て決めておいた燐蛋白質エピトープに特異的に結合する
モノクローナル抗体を生じさせて単離する方法である。この上に記述した抗原を
通常技術[例えばHarlowおよびLane(編集)、Antibodies
,A Laboratory Manual(Cold Spring Har
bor Laboratory,Cold Spring Harbor,Ne
w York(1988))を参照]で用いて、モノクローナル抗体を分泌する
ハイブリドーマを生じさせる。好適な態様では、a)抗体を分泌しないマウスミ
エローマまたはハイブリドーマとb)抗体を分泌するマウス脾臓細胞を融合させ
ることで生じさせたマウスハイブリドーマ(擬態含有ポリペプチド抗原を用いて
免疫性を与えたマウスから得た)を用いてホスホ特異的モノクローナル抗体を生
じさせる。
免疫注射を受けさせることを通してそれらに免疫性を与えた。この免疫手順中ま
たは手順後に、前記マウスから採取した血清にスクリーニングを受けさせること
で実質的な免疫応答を開始したマウスを識別した。選択したマウスの脾臓細胞を
得て融合(fusions)を実施する。適切な融合技術には、例えばSend
aiのウイルス技術(Kohler および Milstein,Nature
256:495(1975)またはポリエチレングリコール方法(Kenne
t,“Monoclonal Antibodies,Hybridomas−
A New Dimension in Biological Analys
is”Kennet,Mckern および Bechtol編集,Plenu
m Press,NY(1980))が含まれる。
して選別する。数種のアッセイを用いて選別を行うことができ、ホスホ擬態ポリ
ペプチド抗原または天然にリン酸化を受けたポリペプチド抗原を用いて前記アッ
セイを行うことができる。適切な選別技術は固相ラジオイムノアッセイである。
適切な抗原を不溶なマトリックスに結合させることを通して固相を調製する。免
疫吸着剤をハイブリドーマの培養上澄み液に接触させる。インキュベーションを
ある期間行った後、固相を上澄み液から分離し、次に、それを、マウス免疫グロ
ブリンに対する標識を付けておいた抗体に接触させる。標識が前記免疫吸着剤と
結合することは抗原に反応し得るハイブリドーマ産物が存在することを示してい
る。
した後に前記マウスから腹水液を収穫することを通して、モノクローナル抗体を
多量に生産することができる。次に、このモノクローナル抗体を前記液から単離
する。別法として、前記ハイブリドーマをインビトロで培養しそして分泌された
モノクローナル抗体を培地から直接単離することで抗体を生産することも可能で
ある。
ン酸化状態に特異的な免疫学的反応体を生じさせることができる。当該抗体が既
知リン酸化状態に特異的な時には、この抗体をいろいろな条件下で用いて蛋白質
のリン酸化を緊密に監視することができる(例えば細胞サイクル、ホルモン刺激
またはストレス)。別法として、天然に存在する疑わしいリン酸化状態に対する
ホスホ特異的抗体を生じさせる。このような免疫学的反応体を用いて疑わしいリ
ン酸化状態が生理学的に存在することを立証または排除することができる。
いると結果として、また、隣接するアミノ酸配列から独立して特別なホスホ残基
(phosphoresidue)に結合する抗体の単離を行うことも可能であ
ることを示している。そのような抗体が産生される時、モノクローナルまたはポ
リクローナルいずれかの抗体として生じる。このような抗体は、隣接するアミノ
酸配列から大きく独立して、特別なホスホ残基に対して結合を示す。このような
抗体を識別することは可能であり、そして必要ならば、それらが初期の抗原に関
係のないポリペプチド配列のホスホ残基に結合する能力を用いて、それらの精製
を行うことができる。このような抗体は価値ある研究道具を提供するものである
。このような抗体の1つの使用は免疫を基にしたキナーゼアッセイにおける使用
であり、これは幅広い範囲の蛋白質に適用可能である。
の系が産生するホスホ特異的抗体の単離に適用することも可能であることを本分
野の技術者は認識するであろう。そのような1つの例は、擬態含有抗原を用いて
結合活性を示す抗体の組み合わせライブラリーを選別する例である。本開示にそ
のような用途および関連した用途を包含させることを意図する。
ン15の所がリン酸化を受けているp53に特異的な抗体をアフィニティー精製
した。前記血清を最初にp53の残基11−22のポリペプチド(セリン15の
所がリン酸化を受けている)を入れておいたカラムに通すことでp53に特異的
な抗体を豊富にした。結合した抗体を溶離させた後、リン酸化を受けていないp
53ポリペプチドを入れておいたカラムに通すことで、ホスホセリンに特異的で
ない抗体を取り除いた。このフロースルー(flow−through)を保持
して特徴付けた。
3(1−39)15Pおよびp53(25−63)37Pを用いた酵素結合イム
ノソルベント検定法(ELISA)で測定した。両方のリン酸化ポリペプチドに
対する特異的な結合を1:320未満の抗体希釈度で検出し(図3)たが、全て
の濃度でp53(1−39)15Pに対する結合の方が多かった。リン酸化を受
けていないポリペプチドに対する結合は全ての濃度で有意でなかった。前記抗血
清がp53(25−63)37Pポリペプチドに交差反応性を示すことで非特異
的ホスホセリン抗体が存在することが示された。
抗血清をp53(Ac−32−43(37P)Cys)のカラムに通した。結果
として結合しなかったフロースルーにこの上に示した試験と同様な試験を受けさ
せることで、これはセリン15の所がリン酸化を受けているp53に非常に特異
的であることを確認した(図4)。蛋白質キナーゼDNA−PKを用いてセリン
15の所に酵素によるリン酸化を受けさせておいたp53およびリン酸化を受け
ていないp53を用いたイムノブロット(immunoblot)分析を用いて
、p53のセリン15に関する反応性および特異性を立証した。
の代替であるF2Pabを伴うペプチド抗原から生じることは、F2Pabがこれ
を抗原として用いた時に有効なホスホセリン擬態として機能することを立証して
いる。重要なことは、そのような結果は、また、特異的抗体の産生において、前
記F2Pabを組み込んでおいたペプチドを抗原として用いた時にこれがBリン
パ球の誘発のために要求される必要な抗原プロセシングおよび掲示を行うことも
示している。この上に示した結果は、抗原に組み込んでおいたF2Pabを用い
てあるペプチド内の特別なリン酸化部位を特異的に認識する抗体およびまた一般
的にホスホセリンをより幅広く認識する抗体を生じさせることができることを示
している。
ル抗体を成功裏に生じさせることができたことは、他の様式の標準的な方法を用
いることでもまたF2Pabを含有させたポリペプチドを用いてマウスまたは他
の動物に免疫性を与えることができ、その結果としてBリンパ球の刺激およびク
ローン増殖(clonal expansion)を生じさせることができるこ
とで、天然にリン酸化を受けた残基、ポリペプチドまたは蛋白質に特異的な抗体
を生じさせることができるであろうことを示している。そのようなBリンパ球を
単離してハイブリドーマの生成で用いることで燐蛋白質に特異的なモノクローナ
ル抗体を生じさせることができる。
プチドは15個の残基で構成されていて、その配列はp53のアミノ酸残基13
−19の7アミノ酸配列に相当し、この配列が2回繰り返して存在し、セリン1
5の代わりにホスホセリン擬態であるF2Pabを含有しており、このポリペプ
チドは、前記p53のアミノ酸配列に加えて追加的にカルボキシ末端のシステイ
ン残基を有する。このポリペプチドの化学的合成を、t−Boc化学を用い、B
oc−F2Pab(Et2)−OHをt−Boc化学を用いた手操作で結合させ
る以外はApplied Biosystems 430Aペプチド合成装置を
製造業者の推奨に従って用いて行った。このペプチド鎖の組み立てを標準的方法
(Synthetic Peptides,G.Grant(編集),W.H.
Freeman & Co.,New York(1992))で行った。2段
階脱保護方法(Otaka 他.,Tetrahedron Lett.36:
927−930(1995))を用いて、前記ペプチドを樹脂から開裂させた後
に側鎖保護基の除去を実施した。Vydac C−8カラムを用いた高圧液体ク
ロマトグラフィー(HPLC)で0.05%TFA/水−アセトニトリルを用い
ることで前記ペプチドを精製した。
シ末端のシステイン残基を通して結合させた。結果として得たKLH−F2Pa
b−ペプチド接合体を用いて標準的な手順でラビットに免疫性を与えた。簡単に
述べると、アジュバントと混合しておいた前記ペプチド接合体をラビットに0日
目、7日目および14日目に500μgづつ皮下注射した。1回目の注射で完全
フロイントアジュバントを用いそして追加的注射では不完全フロイント(Fre
und's)アジュバントを用いた。21日目に血液を集めた。21日後では免
疫化と血液採取を5週間に渡って週毎に繰り返した。
追加的にカルボキシ末端のシステイン残基を有するポリペプチドを、リン酸化を
受けていないポリペプチド:(p53(Ac−11−22Cys))としてか或
はセリン15の所がリン酸化を受けているポリペプチド:(p53(Ac−11
−22(15P)Cys))として、標準的な方法で化学的に合成した。ヒトp
53配列の残基32から43に相当していてカルボキシ末端のセリン残基が付加
しているポリペプチドをセリン37の所がリン酸化を受けているポリペプチド:
(p53(Ac−32−43(37P)Cys))として合成した。
合成装置(Foster City、CA)を用いたFmoc化学(Synth etic Peptides ,G.Grant(編集),W.H.Freema
n &Co.,New York(1992))による固相方法で行った。ホス
ホセリン残基をFmoc−Ser(PO(OBzI)OH)−OH(Novab
iochem,San Diego,CA)(Wakamiya 他.,Che
m.Lett.6:1099−1102(1994))として組み込んだ。試薬
K(TFA:フェノール:チオアニソール:H2O:EDT=82.5:5:5
:5:2.5)を室温で3時間用いることで、前記ペプチドを前記樹脂から開裂
させた後に側鎖保護基の除去を実施した(King 他.,Int.J.Pep
t.Protein Res.36:255−266(1990))このペプチ
ドの精製をVydac C−8カラム(Hesperia、CA)を用いたHP
LC(0.05%TFA/水−アセトニトリルを使用)またはpHに安定なVy
dac C−8カラム(Hesperia、CA)を用いたHPLC(0.2%
ヘキサフルオロアセトン−NH4OH、pH7.0/アセトニトリルを使用)(
1−39ペプチドの場合)を用いて行った。Finnigan MAT SSQ
7000(Finnigan MAT,San Jose,CA)を用いたエ
レクトロスプレー(electrospray)イオン化質量分光測定で前記ペ
プチドの質量を実証した。
22(15P)Cys)),および(p53(Ac−32−43(37P)Cy
s))をSulfolink(Pierce Chemical Co.)に製
造業者が提供した指示に従って結合させた。結果として得たSulfolink
複合体を用いて3本のカラムを生じさせたが、それらの各々にポリペプチド−S
ulfolink複合体の中の1つを充填した。
ロマトグラフィーにかけることで、セリン15の所がリン酸化を受けているp5
3に特異的な抗体を精製した。前記血清を最初に(p53(Ac−11−22(
15P)Cys))カラムに通した。洗浄後、吸着された抗体をImmunoP
ure IgG Elution Buffer(Pierce Chemic
al Co.)で溶離させた後、直ちに1MのTris緩衝液(pH9.5)を
添加することで中和した。溶離液を(p53(Ac−11−22Cys))カラ
ムに通すことで、リン酸化を受けていないp53に結合した抗体を除去した。結
合しなかったフロースルーを集めた後、(p53 Ac−32−43)(37P
)Cys)カラムに通すことで、ポリペプチド内に位置する場所に関係なくホス
ホセリンに結合する抗体をそれから除去した。
hemical Technical Library そして Engval
l 他.,Immunochemistry 8:871−875(1971)
に記述されている如きELISAアッセイにより、ポリペプチドp53(1−3
9),p53(1−39)15P,またはp53(1−39)37Pに対する結
合に関して行った。この示したポリペプチドを炭酸−重炭酸ナトリウム緩衝液、
pH9.6(1リットル当たりNa2CO3が1.59gでNaHCO3が2.9
3gで、pHをHClで調整しておいた)で1μg/mlになるように希釈する
ことで、プレートを前記ポリペプチドで覆った後、50または100ng(50
または100μl)を4℃で一晩または室温で約3時間インキュベートした。次
に、前記ペプチド溶液を除去した後、プレートをPBS中1%のBSAと一緒に
して室温で1時間インキュベートすることで、阻止を行った(blocked)
。ポリペプチドで覆ったウエルを1/10から1/1000の範囲の抗体希釈度
でインキュベートした。西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP)結合抗ラビット
IgG抗体と一緒にインキュベートした後にHRP基質ABTS[2,2’−ア
ジノビス(3−エチルベンズチアゾリン−6−スルホン酸)]を添加することで
、結合した抗体を検出した。前記ABTSがHRPで酸化されると緑色の産物が
生じ、これを用いて抗体の存在を識別した。前記ポリペプチドで覆ったプレート
に結合したラビットIgGの量を、この混合物の光学密度を405nmの所で測
定(OD405)することで決定した。結果を個別のELISAアッセイおよびス
ポットブロット(「ウエスタン」ブロット)で立証した。
学で合成したポリペプチドであった。フラグメント縮合方法(Sakamoto
他.,Int.J.Peptide Protein Res.48:429
−442(1996))を用いて、より長いペプチドを合成した。
で(p53(Ac−11−22)Cys)カラムに通した後にアフィニティー精
製を受けさせたpAbF15抗体を用いたELISAで得たデータの図式図であ
る。
除去する目的で(p53(Ac−32−43)(37P)Cys)カラムに通し
た後にアフィニティー精製を受けさせたpAbF15抗体を用いたELISAで
得たデータの図式図である。
Claims (32)
- 【請求項1】 特定のアミノ酸の所がリン酸化を受けているポリペプチドに
特異的に結合するポリクローナル抗体を単離する方法であって、 a)生理学的に受け入れられる担体に入っているリン酸化アミノ酸残基の擬態を
含有するポリペプチドを準備し、 b)段階a)の組成物を用いて動物に免疫性を与え、 c)段階b)で免疫性を与えた動物から血清または腹水液を集めて調製し、 d)前記リン酸化ポリペプチドに特異的な抗体の存在に関して選別を行い、そし
て e)必要ならば、前記リン酸化ポリペプチドに特異的な抗体を通常方法で更に豊
富にする、 ことを含んで成る方法。 - 【請求項2】 前記ポリクローナル抗体と前記リン酸化ポリペプチドの結合
がリン酸化アミノ酸に隣接するアミノ酸配列に依存する請求項1記載の方法。 - 【請求項3】 前記ポリクローナル抗体と前記リン酸化ポリペプチドの結合
がリン酸化アミノ酸に隣接する配列に依存しない請求項1記載の方法。 - 【請求項4】 前記リン酸化ポリペプチドに特異的な抗体をアフィニティー
精製で更に豊富にする請求項1記載の方法。 - 【請求項5】 前記リン酸化ポリペプチドに特異的な抗体をこれと一緒に混
ざり合っている望まれない結合活性を示す抗体を減少させることで更に豊富にす
る請求項1記載の方法。 - 【請求項6】 適切なアミノ酸配列で構成されている天然のホスホペプチド
複合体を追加免疫剤として用いて前記動物にさらなる免疫性を与える請求項1記
載の方法。 - 【請求項7】 段階a)のポリペプチドに場合により修飾を段階b)の免疫
化に先立って受けさせる請求項1記載の方法。 - 【請求項8】 前記修飾を前記ポリペプチドをキーホールリンペットヘモシ
アニン(KLH)、ウシの血清アルブミン(BSA)、オボアルブミンおよびツ
ベルクリンの精製蛋白誘導体(PPD)から成る群から選択される担体蛋白質に
任意の二官能反応体を用いて結合させることを通して行う請求項7記載の方法。 - 【請求項9】 前記特定のアミノ酸をセリン、トレオニンおよびチロシンか
ら成る群から選択する請求項1記載の方法。 - 【請求項10】 前記擬態が炭素原子からホスフェート基に至る所に非加水
分解性結合を含有する請求項1記載の方法。 - 【請求項11】 前記非加水分解性結合がCF2基を含んで成る請求項10
記載の方法。 - 【請求項12】 F2Pabがホスホセリンの擬態である請求項11記載の
方法。 - 【請求項13】 F2Pmpがホスホチロシンの擬態である請求項11記載
の方法。 - 【請求項14】 F2Pmbがホスホトレオニンの擬態である請求項11記
載の方法。 - 【請求項15】 段階a)のポリペプチドがp53に由来するものである請
求項1記載の方法。 - 【請求項16】 前記ポリペプチドがSEQ ID NO:1に明記した通
りである請求項15記載の方法。 - 【請求項17】 前記ポリペプチドがSEQ ID NO:2、3、4、5
、6、7、8、9および10から成る群から選択される請求項15記載の方法。 - 【請求項18】 特定のアミノ酸残基の所がリン酸化を受けているポリペプ
チドに特異的に結合するモノクローナル抗体を単離する方法であって、 a)生理学的に受け入れられる担体に入っている特定のリン酸化アミノ酸の擬態
を含有するポリペプチドを準備し、 b)段階a)の組成物を用いて動物に免疫性を与え、 c)段階b)の動物からB細胞を集め、 d)段階c)で集めたB細胞をメラノーマ細胞に融合させることでハイブリドー
マを生じさせ、 e)段階d)のハイブリドーマをリン酸化ポリペプチドに特異的な抗体の産生に
関して選別し、そして f)段階e)で識別したハイブリドーマを単離して増殖させる、 ことを含んで成る方法。 - 【請求項19】 前記モノクローナル抗体と前記リン酸化ポリペプチドの結
合がリン酸化アミノ酸に隣接するアミノ酸配列に依存する請求項18記載の方法
。 - 【請求項20】 前記モノクローナル抗体と前記リン酸化ポリペプチドの結
合がリン酸化アミノ酸に隣接する配列に依存しない請求項18記載の方法。 - 【請求項21】 適切なアミノ酸配列で構成されている天然のホスホペプチ
ド複合体を追加免疫剤として用いて前記動物にさらなる免疫性を与える請求項1
8記載の方法。 - 【請求項22】 段階a)のポリペプチドに修飾を段階b)の免疫化に先立
って受けさせる請求項18記載の方法。 - 【請求項23】 前記修飾を前記ポリペプチドをキーホールリンペットヘモ
シアニン(KLH)、ウシの血清アルブミン(BSA)、オボアルブミンおよび
ツベルクリンの精製蛋白誘導体(PPD)から成る群から選択される担体蛋白質
に任意の二官能反応体を用いて結合させることを通して行う請求項22記載の方
法。 - 【請求項24】 前記特定のアミノ酸残基をセリン、トレオニンおよびチロ
シンから成る群から選択する請求項18記載の方法。 - 【請求項25】 前記擬態が炭素原子からホスフェート基に至る所に非加水
分解性結合を含有する請求項18記載の方法。 - 【請求項26】 前記非加水分解性結合がCF2基を含んで成る請求項25
記載の方法。 - 【請求項27】 F2Pabがホスホセリンの擬態である請求項26記載の
方法。 - 【請求項28】 F2Pmpがホスホチロシンの擬態である請求項26記載
の方法。 - 【請求項29】 F2Pmbがホスホトレオニンの擬態である請求項26記
載の方法。 - 【請求項30】 段階a)のポリペプチドがp53に由来するものである請
求項18記載の方法。 - 【請求項31】 前記ポリペプチドがSEQ ID NO:1に明記した通
りである請求項30記載の方法。 - 【請求項32】 前記ポリペプチドがSEQ ID NO:2、3、4、5
、6、7、8、9および10から成る群から選択される請求項30記載の方法。
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