JP2003510599A - 支持体上に固定された核酸を分析するための方法及び装置 - Google Patents
支持体上に固定された核酸を分析するための方法及び装置Info
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Abstract
Description
の特徴付け、定量化、及びマッピングのための方法に関する。これはまた、特に
少なくとも一の核酸がその表面に固定された支持体上に、核酸を有するバイオチ
ップを製造する方法、及び本発明による方法を実施するための装置に関する。
学的または生物学的分析システムの分野における応用のために使用される。
支持体の小型化表面またはミクロ表面上に固定された核酸から構成されてもよい
。これらは通常バイオチップ、あるいは核酸がデオキシリボ核酸である場合には
DNAチップ、核酸がリボ核酸である場合にはRNAチップと呼称されるものを
形成する。支持体ミクロ表面上に固定された全ての核酸は、プローブ基質を形成
する。
、プローブ基質上に付着する。ハイブリダイゼーション、換言すれば相補的核酸
の分子同士の相同性、プローブと標識された標的との間の相同性を使用し、分析
される試料中に存在する核酸の配列を標識し、同定する。
チップ上の分析部位は、さらに小型化され、性能もしくは密度を改善されている
。
のがある。前記合成方法は、二つの異なるアドレッシング・モード;手動アドレ
ッシング・モードもしくは機械的アドレッシング・モード、または光化学アドレ
ッシング・モードまたはリソグラフィ技術を使用する方式のいずれかを使用して
基質を構成する。
造に連結させた自動合成装置を使用する、手動アドレッシング・モードである。
例えば、このアドレッシング・モードは、文献Southern EM, Nucleic Acid rese
arch, April 25 1994, 22(8):1368-1373に開示されている。
、付着技術の著しい改善により、化学合成法を使用するプローブの工業的製造方
法を提供することが可能となっている。文献WO-A-9427719(by PROTOG
ENE LAB INC. and A.P. Blanchard, R. J Kaiser, L.E. Hood, Biosensors and
Bioelectronics, vol 11, No. 6/7, pages 687 to 690, 1996)には、ジェット
プリント技術の使用して、DNAの四つの塩基性活性化ヌクレオチド及びカップ
リング試薬を、DNAバイオチップの異なる部位上に分配することが開示されて
いる。
・モードは、例えば、Affymetrix, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1996, Nov. 2
6; 93(24), 13555-60に開示されている。
されたヌクレオシドの連続縮合のためにホスホアミダイトまたはホスファイトを
利用し、従来のカップリング反応を使用する。Caruthersの文献(Science, Oct.
85, page 281)には、脱保護、カップリング、キャッピング、及び酸化の工程
を含む合成サイクルが開示されている。このサイクルは、微量のヌクレオチドを
支持体表面から成長させてバイオチップを形成する手段である。
結合される前に精製され、適性化されているような幾つかのアドレッシング・モ
ードとは異なり、上述のアドレッシング・モードは、各ヌクレオチドカップリン
グ工程の後に、合成された核酸の特徴付けを必要とするが、これは精製が、合成
後には不可能なためである。
ために合成方法の最適化が必要である。ハイブリダイゼーションの質は、合成さ
れたプローブの純度に依存するであろう。したがって、各合成工程を適性化する
こと及び合成された配列を検査できることが必要である。
面におけるこの密度の均一性の検査を行わねばならない。
シドの脱保護の後に、500nmにてジメトキシトリチルカチオンの吸収を測定す
ることである。例えば、この方法は、Tetrahedron Letters, vol. 25, No. 4, p
ages 375 to 378, 1984に記載されている。
って、複光束分光計によって測定される。原位置合成のために必要な特徴付け用
機器には感度の問題がある。吸収測定が充分に正確(<10-3)であれば、有効
性は、各工程について算出可能である。この測定が塩基に対して特異的でなく、
したがって合成された遺伝子配列について、いかなる情報も提供できない。トリ
チルカチオンの割合は、基質全体について包括的であり、各基質について平均プ
ローブ密度を算出するために使用することができるが、その均一性については何
らの情報も提供していない。
to 5026には、配列決定に使用される合成プローブと等量の、標識したプローブ
を用いたハイブリダイゼーションの後の蛍光を測定することが開示されている。
しかしながら、この測定は、プローブが完全に合成された後に行われており、工
程毎の有効性について何の情報も与えることができない。
c Gall, J. Org. Chem., 1998, 63, pages 241 to 246)。この技術は、合成に
おける各工程について、有効性を示すことができる。核酸の長さが変異する領域
をリトグラフィによって定義し、合成終了時には、異なる長さの全プローブ上に
おいて、蛍光を含むホスホアミダイトとカップリングを行う。
な微量ヌクレオチドの合成が完了する前には、微量ヌクレオチドのグラフト化に
おける連続工程を特徴付けすることは不可能である。
Flight)技術(Little P. D., Anal. Chem. 1997, 69, pages 4540 to 4546に開
示)は、DNAプローブを含むバイオチップの分析に使用されている。これが、
現在のところ、上限2.5フェントモルの量を分析するためには、最良の解決を
提供する技術である。残念ながら、これは破壊的であり、特別な実施を必要とす
る。プローブは合成の終点において化学的に裂開可能でなければならず、使用し
たレーザーを吸収することのできる物質と共結晶化しなければならない。
、HPLC(高圧液体クロマトグラフィー)により分析することができる。この
方法は固体支持体上における合成方法の発展を助けはするが、構造化基質上にお
ける原位置合成の特徴付けのためには、決して使用できない。
上に合成される核酸の配列、及びこれらの密度及び均一性を確認するために使用
される方法を提供することであり、前記方法は、従来の技術が遭遇した上述の問
題を解消し、特に核酸を備えたバイオチップの造成を検査するためのものである
。
素塩基の特徴付け、定量化、及びマッピングのために使用可能である。これは、
ミラージュ効果法による、前記核酸または前記窒素塩基の特徴付け、定量化、及
びマッピングからなることを特徴とする。
素塩基、核酸、または核酸の窒素塩基を示すために使用する。 例えば、「Biochimie Generale」(General Biochemistry)と題される本(J. H
. WELL. 6th edition, MASSON, pages 279-288)には、核酸及び窒素塩基が開示
されている。
ステル結合によって互いに結合したヌクレオチドの鎖を示す。ヌクレオチドは、
ヌクレオシドのリン酸エステルであり、ヌクレオシドは、プリンまたはピリミジ
ンの窒素塩基の、リボースまたはデオキシリボースとの間の結合から誘導される
。核酸は、ヌクレオチドがリボースを含む核酸を形成している場合にはリボ核酸
(RNA)であり、ヌクレオチドがデオキシリボース含む核酸を形成している場
合にはデオキシリボ核酸(DNA)である。窒素塩基は、核酸がRNAである場
合、通常はアデニン(A)、グアニン(G)、ウラシル(U)、及びシトシン(
C)であり、核酸がDNAである場合には、アデニン、グアニン、及びチミン(
T)及びシトシンである。
これらの誘導体の、特徴付け、定量化、及びマッピングのために使用することが
できる。
えばシトシンから誘導される5-ヒドロキシメチルシトシンを含む核酸を示す。
た、固体支持体から特に形成される核酸バイオチップの製造方法を記載しており
、前記方法は、少なくとも一の合成及び分析のサイクルを含み、とりわけ、第一
に、支持体上に固定された前記核酸の原位置合成のための窒素塩基のカップリン
グ、及び第二に、前記窒素塩基のカップリングを制御するための分析を含み、前
記分析は、本発明による特徴付け、定量化、及びマッピングの方法を使用して行
われるものである。
の本、例えば、Cauthers, Science, October 1985, 281頁以降に記載されている
。明らかに、窒素塩基のカップリングは、合成された核酸とカップリングしよう
とする窒素塩基を含むヌクレオチドとの間に、上述の3’−5’ホスホジエステ
ル結合を形成することに相当する。
ある。このことは、特に"Ellispsometric and interferometric characterizati
on of DNA probes immobilized on a combination assay", Gray et al., Lngmu
ir 1997, 13, 2833-2842に開示されている。
法に興味をもってきた。
と呼称される放射源を、その吸収を測定しようとする試料の励起のために使用す
る。入射光エネルギーの一部は、試料によって吸収される。吸収されたエネルギ
ーの割合は、当該試料についての吸収スペクトル及び励起源の発光スペクトルに
よって固定されている。吸収されたエネルギーの一部は、指数勾配を発生させる
、局所温度勾配を発生させる。
法の一つであり、これが本発明に使用可能であることを示した。
される光線の偏位を測定することからなる。換言すれば、これは、ポンプビーム
により吸収体試料において温度が上昇することに起因する、プローブビームの偏
位を測定することからなる。この輻射熱偏位技術は、吸収マッピング、熱パラメ
ータ映像などの表面分析に応用されたが、支持体上に固定された核酸または核酸
の窒素塩基の特徴付け、定量化、及びマッピングのためには使用されていない。
troscopy Methods for Chemical Analysis, S. E. Bialkowski, vol. 134 in Ch
emical Analysis: a Series of Monographs on Analytical Chemistry and its
Applications, Wiley"と題される本に見いだされる。
から発せられる光によって照明され、前記励起源から発せられる光の、核酸によ
る、または窒素塩基による吸収、偏位、または反射を検出または測定するために
プローブビームが使用される。
の関数としてのA、T、C、G、及びU塩基の吸収係数の変化を示すグラフが含
まれる。この図においては、横座標軸は波長λ(nm)を表し、縦座標軸はモル吸
収係数(M.A.C.)(×10-3)を表す。参照番号60は、アデニン(A)の吸収
スペクトルを示し、参照番号62、64、66、及び68はチミン(T)、シト
シン(C)、グアニン(G)、及びウラシル(U)の吸収スペクトルをそれぞれ
示す。これらのスペクトルはまた、DNAまたはRNAの最適な感度長を選択す
るために使用することができる。
あってよい。
ら発せられても、またはその放出波長が核酸の吸収バンド内にある、連続的に強
度変調されたレーザーから発せられてもよい。核酸の場合には、層厚さの大小の
オーダーは、通常数ナノメーターである。
えば波長270nmのアルゴンレーザー、または固体レーザー、例えば波長266
nmの四重YAGから選択されるレーザー光線であってよい。本発明によれば、吸
収は、200乃至300nmのスペクトル範囲内で検出又は測定することができる
。
提供できるならば、ポンプビームは、非干渉性の光、例えば多色光であってもよ
い。例えば、非干渉性の光は、水銀灯から発生しうる。
の近傍に向けられる。さらにまた、プローブビームは、ポンプビームと同一であ
っても、または相違してもよい。
核酸によっても、吸収されない波長を有する。プローブビームは、好ましくはレ
ーザー光線である。例えば、これは400乃至700nmの波長を有してよい。こ
れは、波長が可視領域に入るため、試料についてアラインメントを促進する。例
えば、これは、633nmにてヘリウム−ネオンレーザーから誘導されてもよい。
えば、プローブビームは以下の媒体の一以上を通過してよい−核酸、固体支持体
、または環境媒体、例えば液体または空気。ポンプビームに対するプローブビー
ムの配向は、所望により、例えば機械的サイズの関数として、及び/または、吸
収を最大にする試みにおいて感度を最適化するために、入射角の関数として、選
択してよい。
の位置は、もしあるならば、所望によって、特に感度を最適化する試みの関数と
して、固定されてもよい。一般的に、交差点は、熱勾配の最大値に位置する。
、またはおよそ直線状に配置されてもよい。直交配置においては、プローブビー
ム及びポンプビームは、交差し、互いに垂直となる。この配置は、添付の図2に
図式的に示される。およそ直線状の配置においては、プローブビームとポンプビ
ームとが交差はするがほとんど直線状にある。添付の図3は、直線状配置の図式
的表示である。
位置にあるプローブビームであり、参照番号3はおよそ直線状に配置されたプロ
ーブビームを示し、参照番号7はレーザーを示し、参照番号9は検出器、例えば
四の象限を有する検出器であり、さらに参照番号11はその表面に核酸が固定さ
れた固体支持体からなる試料を示す。
の象限、ストリップまたはマトリックスを備えた検出器を使用して、あるいは、
カッシェもしくはブレードによって部分的に、もしくはプローブビームを受容可
能な部分のみを覆った、単純な光ダイオードを使用して、検出してよい。
ける変化から、核酸の吸収における変化を、もしあればだが分離させる必要があ
るかもしれない。
のである;この図においては、-A-は図式的に二象限検出器13及び該検出器上
にプローブビームによって形成される点15を示し、-B-は四象限検出器を表し
、-C-はマトリックス検出器を表し、-D-は部分的にカッシェによって覆われた
単純な光ダイオードを表し、また-E-は偏心光検出器(off-centered photo det
ector)を表す。
ーブビームの偏位は、好ましくは媒体に起因する寄生的変化(parasite variati
on)、例えば実験室の温度変化から区別される。これを達成するために、ポンプ
ビームは、連続的であれば変調によって、あるいはそのパルス操作によって、い
ずれ標識されてもよい。変調周波数または参照シグナルを得る可能性の制御は、
ポンプビームの部分的吸収によって引き起こされる温度上昇に起因する反射を、
好ましく検出する手段である。
窒素塩基表面におけるポンプビームの衝突点の周辺領域に適用される。
ンプビームのサイズまたはその変調周波数などによって、並びに支持体、試料、
及び周辺媒体の熱反応によって、固定されても良い。これは特に、様々な媒体中
における熱の分布による。
て、該システムの表面にポンプビームに対して拡散が固定されていてもよい。こ
の装置は、プローブビームの偏位値を異なる位置間で比較するために使用するこ
とができ、特にシグナルをマップの形態で表してよい。
偏位シグナルは吸収値に換算してよい。このコントロール試料は、その吸収が既
知で安定であり、核酸または窒素塩基について同様の実験条件下における輻射熱
偏位測定の対象としてもよい。例えば、得られる値は、吸収レベルにて測定され
る電気シグナルについての変換係数の算出のために使用することができる。
損失を測定可能であることを示す。既に見てきたように、該機器には、事前にそ
の吸収が既知である参照試料の偏位シグナルを測定することによって、目盛り定
めをすることができる。吸収が低ければ、これは、輻射熱偏位シグナルが試料の
吸収に比例しうることを示している。したがって、参照資料について、相関させ
て作業することが可能である。
「損失」なる語は、物質において吸収されるパワーと入射光のパワーとの間の比
率を意味する。本発明の一つの有利な実施態様は、検出感度を最適化するために
、P偏光における、換言すれば、微量核酸の入射の平面と平行の、ポンプビーム
の吸収を使用することである。場合により、P偏光中における吸収は基質のブリ
ュースター角での極大、例えばガラスについては56.6°を通過する。
本発明に従い、塩基の数の関数としての光偏位シグナルの変化を追うこととする
。
、kは薄層吸光係数を示し、λはポンプビームの波長である]
れぞれ各塩基について示す。
は数百ppmのオーダーである。したがって、これらは弱い光学シグナルである。
シグナルは容易に分析され、微量ヌクレオチドの原位置合成のための工程に伴う
塩基の成長の変化を観察するために使用することができる。
はゲル製であってよい。例えば、この支持体は平面支持体であってよく、あるい
は微小空洞、例えば微小な窪みを含むものであって良い。
に依存して、第二には好ましい支持体上にヌクレオチドが共有結合によって固定
されるように選択される従来の化学反応によって、支持体上に固定される。これ
らの化学反応は、例えば、Chemical Letterts, 1998, p. 257−258及びAn
alytical Biochemistry 247, p. 96-101, 1997に開示されている。
、該方法の実施のための装置を提供する。
は反射を、検出及び/または測定する手段、 ・前記照明手段及び前記検出及び/または測定手段を配置する手段、 を含む。
ートに正確に取って代わる、いかなる既知の手段であってもよく、例えばMicroC
ontroleまたはSpinder Hoyer製のものがある。これらの手段は、自動化を可能に
するために、特にマッピングのために、モーター駆動であってよい。
検出しようとする核酸の関数として選択してよい。試料を照明するための手段は
、例えば上述のとおりポンプビームからなっていても良い。吸収を検出するため
の手段は、プローブビーム及びプローブビームの屈折及び反射を検出するための
手段を含んでよい。これらの手段は、以下に、また下記の実施例に説明される。
ことについて上述したような手段であってよい。
窒素塩基の特徴づけ、定量化、及びマッピングのために、輻射熱技術が使用され
たことはないという事実によって、特に革新的である。さらに一般的には、支持
体上でのこのタイプの分析のために、吸収変化の測定に基づいて使用された方法
はこれまでなかった。
利点を有する。例えば、これは核酸バイオチップの製造のために有利に使用して
もよい。各窒素塩基の、例えばDNAバイオチップまたはRNAバイオチップの
各原位置合成工程における特徴づけ、定量化、及びマッピングは、前記合成の各
工程を正確に観察し、ひいては製造されるバイオチップの密度、密度の均一性、
及び品質を制御し、おそらくは前記合成中に起こるいかなる過失をも補正するた
めに使用することができる。
得られるバイオチップは、正確で均一であり、容易に再生産可能である。
を最適化するために、また100%と同等または近傍のカップリング有効性を得る
ために、使用することができる。この使用は、以下の実施例中に詳説される。
読むにつれ、明らかになるであろう。これらは明らかに、詳説を目的としており
、制限的なものでは全くない。
、明らかになるであろう。
射熱偏位に基づく。
核酸または核酸の窒素塩基を含む試料の吸収の測定の原理を示す図式的説明であ
る。
光線(COHERENT INOVA 40)(商品名)(図示なし)から誘導され、球状鏡(図示
なし)を用いて試料11上に集中させられ、点(図示なし)の直径は、試料11
の表面にて約70ミクロンであったことが示される。ポンプビームの波長は、核
酸の検出が可能になるように選択される。ポンプビームのパワーはレーザー出口
において300mWであった。
ローブビームである。このプローブビームの波長は、問題ではない。本発明によ
れば、ポンプビームの波長と非常に異なる波長が、より良いシグナルをノイズ比
に与えることができる。
増幅及び減算電子機器(図示なし)を用いて検出した。参照番号21aは、輻射
熱偏位によって偏光したプローブビームを示す。角度θは、法線20から試料(
点鎖線で図示)までのポンプビーム19の入射の角度を示し、参照番号19aは
、試料上に反射したポンプビーム19を示す。
の正面に設置し、変調したポンプビームから生じる寄生的光の影響を避けても良
い。
電子機器は、市販の測定セル、例えばALIS社製のものなどの、必須の部分を形成
しうる。このセルからの出力シグナルは、同時検出のために送出される。
えたディスクを使用して変調されてもよく、その周波数は調製可能である。チョ
ッパ制御シグナルは、同時検出のための基準として用いられる。該周波数は15
7Hzである。測定したシグナルは、同時検出(ポンプビーム変調周波数における
偏位シグナルの増幅)からのアウトプットにて得られる。
ole社製)によって互いに関連して設置されるが、前記プレートには、例えばバ
イオチップのマッピングを、調整の段階において自動化することができるように
モーター駆動である。調整は、プローブビームを含む試料に直交する平面中の偏
位シグナルを最大化するように自動的に行われる。マッピングの間、必要であれ
ば、マッピング走査軸に対して直交方向に調整的な転置を行い、マッピングの間
相対的な位置が正確に維持されることを確実にする。この調整的転置は、予備的
測定工程において自動的に決定される。法線から試料に対するポンプビームの入
射角及び試料に対するセルの方向は、調整可能である。プローブビーム及びポン
プビームの相対位置及び方向もまた、個別に調整可能である。
ター(図中に図示無し)は、転置段階の間にポンプビームを遮断し、転置後に設
定が定常状態に達するように選択される待ち時間の後の、明確に規定される時間
の間、これをもとに戻す。参照番号23は、275nmのアルゴンレーザー光線を
示し、参照番号25はレーザー光線を配置する鏡を示し、参照番号27は機械的
チョッパを示し、参照番号29はチョッパを通過した後のレーザー光線を示し、
参照番号31は集束鏡を示し、参照番号35は測定試料を示し、参照番号36は
プローブヘリウム−ネオンビームを示し、参照番号37は四象限光ダイオードを
示す。
lf collimating sight)によって反復的に行ってもよい。全測定装置は、二つの
直交方向において転置を制御し、偏位シグナルを捕捉するワークステーションに
よって制御してもよい。
れに直交する方向に沿って、測定される。この第二の方向が有用なシグナルを形
成する。同時検出によって提供される電気シグナルは、それ自体、試料上の様々
な位置間の比較によって使用してよい。
いて参照測定を行うことによって、吸収値に変換することも可能であり、その吸
収は、分光計を用いて測定可能であって、輻射熱偏位測定ベンチの直線性範囲中
に配置される。
0mmの直径及び3mmの厚さを有していた。
液を調製し、基質をその中で2時間インキュベートした。その後試料を脱塩水で
濯ぎ、窒素ブロワを用いて乾燥させた。この工程により、シリカの表面にヒドロ
キシル基の造成が行われた(下式(I)参照)。
ルエン及び0.6mlのトリエチルアミン中の溶液とした。該試料をこの溶液中に
入れて80℃にて一晩おいた。これらを、ブロワを用いてアセトン及び窒素で乾
燥させ、110℃にて3時間焼鈍した。化学シラン化反応は、下記のように図式
的に示してもよい。
た。エポキシド官能基の開裂は、下記のように図式的に示してもよい。
ence, Oct. 85, page 281に開示されており、これは以下の工程:脱トリチル化
、カップリング、キャッピング、及び酸化を含む。
DMT removal batch 2257-1 Roth)中に入れて2分間撹拌した。これをジクロロ
メタン中で、その後アセトニトリル中で濯ぎ、加圧窒素ジェット下で乾燥させた
。
チル-N,N-ジイソプロピルアミノ)ホスホアミダイトを含有する、2mlの溶液
を、150μlのテトラゾールと混合した。試料をこの溶液中に入れ、アルゴン
下で10分間撹拌した。これをアセトニトリル中で濯ぎ、加圧窒素ジェット下で
乾燥させた。
AP1=無水酢酸/ルチジン/THF、CAP2=1-メチルイミダゾール/T
HF)。試料をこの溶液中に2分間入れた。その後これはアセトニトリル中で濯
ぎ、加圧窒素ジェット下で乾燥させた。
tch 2254.2 Roth)中に入れて撹拌しつつ1分間おいた。これをジクロロメタン
中のアセトニトリル中で濯ぎ、その後アセトニトリル中で濯ぎ、加圧窒素ジェッ
ト下で乾燥させた。
チドの量体数である。カップリング工程は、各ヌクレオチドの塩基(A、C、G
、T、及びU)の性質を決定する。
、2量体、及び8量体を含む厚さを備え、またT塩基のみを含む配列を有するも
のとした。
毎に識別するために使用可能であることを示すことである。
る試料を調製した。これらの試料は下記の通り: 試料1:シリカ/NaOH処理/シラン化/HEG、 試料2:シリカ/NaOH処理/シラン化/HEG/T塩基を含むモノマーの合
成、 試料3:シリカ/NaOH処理/シラン化/HEG/各ヌクレオチド上にT塩基
を含むダイマーの合成、 試料4:シリカ/NaOH処理/シラン化/HEG/各ヌクレオチド上にT塩基
を含むオクトマーの合成。
45°;二象限における検出。
、0≦t≦4秒である。捕捉は以下のとおり行った: 0≦t≦1秒については、ミラージュ効果によって:シャッターは閉じておいた
。 t=1秒において、シャッターを開き、 1≦t≦4秒については、吸収を測定した。 結果を以下の表1にまとめた。
量体(HEG+T)、T塩基二つを有する2量体(HEG+2T)、及びT塩基
八つを有する8量体(HEG+8T)を含むシリカ基質上に得られる、輻射熱シ
グナルの変化を、時間の関数として示す。
についての、及びT塩基八つについてのシグナルをそれぞれ示す。
8は、試験構造物を図式的に示す。これらの図において、試験構造物は、例えば
100×100μm2の領域に相当する四角またはパッドによって図式的に示され
、ここでは光学反応を、基質(基準)、基質にグラフト化した四つの塩基(A、
C、G、及びT)を別個に、最終的なオリゴヌクレオチド(AT、AC、...
、TT)における様々に可能な配列に相当するグラフト化2量体について測定し
た。
収の兆候を測定した。これらの吸収測定と共に、オリゴヌクレオチドプローブ中
に存在するG、C、T、A塩基の数を、図7に示される単純な減算によって測定
した。
、その環境によらず算出された。こうして、参照番号80の最初の列において、
Aのシグナルは、それぞれA、C、G、及びTに対して決定され、参照番号82
の第二列においては、CのシグナルがそれぞれA、C、G、及びTに対して決定
され、参照番号84の第三列においては、GのシグナルがそれぞれA、C、G、
及びTに対して決定され、参照番号86の第四列においては、Tのシグナルがそ
れぞれA、C、G、及びTに対して決定された。
るオリゴヌクレオチドの原位置合成における、各カップリング工程の分析のため
の方法を提供することを企図する。
所定のパワー密度を越えると、試料が破壊されうることを観察している。
関数として示すグラフである。
のための直交配置における輻射熱偏位を示す図である。
のための一直線状配置における輻射熱偏位を示す図である。
す図である。
て試料の吸収の測定を示す図である。
。
各工程の後、「映像」を決定する方法を図式的に示す。
各工程の後、「映像」を決定する方法を図式的に示す。
ルの経時的変化を示す。
Claims (14)
- 【請求項1】 支持体上に固定された窒素塩基、核酸、または核酸の窒素塩
基のための特徴付けの方法であって、ミラージュ効果法により前記核酸または前
記窒素塩基を特徴付けすることからなる方法。 - 【請求項2】 支持体上に固定された窒素塩基、核酸、または核酸の窒素塩
基のための定量化方法であって、ミラージュ効果法により前記核酸または前記窒
素塩基を定量化することからなる方法。 - 【請求項3】 支持体上に固定された窒素塩基、核酸、または核酸の窒素塩
基のためのマッピング方法であって、ミラージュ効果法により前記核酸または前
記窒素塩基をマッピングすることからなる方法。 - 【請求項4】 原位置にて合成された少なくとも一の核酸がその表面に固定
された支持体から、特に形成される核酸バイオチップの製造方法であって、少な
くとも一の合成及び分析のサイクルを含み、特に、第一に支持体表面に固定され
た前記核酸の原位置合成のための窒素塩基のカップリング及び、第二に前記窒素
塩基のカップリングを検査するための分析を含み、前記分析が、請求項1に記載
の特徴付け方法、請求項2に記載の定量化方法、または請求項3に記載のマッピ
ング方法を利用して行われる方法。 - 【請求項5】 ミラージュ効果法が、輻射熱偏位法である、請求項1乃至4
のいずれか一項に記載の方法。 - 【請求項6】 窒素塩基、核酸、または核酸の窒素塩基が、励起源より発せ
られるポンプビームによって照明され、前記励起源から発せられる光の、核酸に
よる、または窒素塩基による吸収、偏位、または反射を、プローブビームを使用
して検出または測定する、請求項5に記載の方法。 - 【請求項7】 前記ポンプビームが、干渉性の光である、請求項6に記載の
方法。 - 【請求項8】 前記プローブビーム及びポンプビームが、交差する、請求項
7に記載の方法。 - 【請求項9】 前記プローブビーム及びポンプビームが、直交配置または一
直線状配置である、請求項6または7に記載の方法。 - 【請求項10】 吸収が、200乃至300nmのスペクトル範囲内で検出ま
たは測定される、請求項6に記載の方法。 - 【請求項11】 前記ポンプビームとして、波長275nmのアルゴンレーザ
ー、または波長266nmの固体レーザーのいずれかが選択される、請求項7に記
載の方法。 - 【請求項12】 前記励起源が、干渉性でない放射源である、請求項6に記
載の方法。 - 【請求項13】 前記特徴付け、定量化、マッピング、または分析が、前記
支持体表面に存在する核酸の極性化において行われる、請求項1乃至4のいずれ
か一項に記載の方法。 - 【請求項14】 請求項5に記載の方法を実施するための装置であって、以
下の部品: ・その表面に核酸が固定された支持体を含む試料を配置する手段、 ・前記試料を照明する手段、 ・前記照明手段によって照明される場合、前記試料による光の吸収、偏位、また
は反射を、検出及び/または測定する手段、 ・前記照明手段及び前記検出及び/または測定手段を配置する手段、 を含む装置。
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