JP2002517253A - セリンプロテアーゼであるコリン - Google Patents
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Abstract
Description
029号の一部継続出願であり、ここで参照することによりその全文を組み込ん
だものとする。
(Stroud R. Sci. Am. 231:74〜88, 1974:Neurath H. Science 224:350〜357
, 1984)。例えば、セリンプロテアーゼは細胞シグナル、細胞分化およびプロホ
ルモンの生物学的活性体への変換に必須である。HongおよびHashimoto, Cell, 8
2:785〜794, 1995:Inagami, J. Biol. Chem. 264:3043〜3046, 1989参照。
frizzled)LDLR、スカベンジャー受容体のシステインーリッチな反復および
セリンプロテアーゼ触媒ドメインを有する、ヒトおよびマウスコリンのような、
ほ乳類のセリンプロテアーゼの核酸、ポリペプチドおよびその断片に関する。本
発明は、さらに、このような核酸およびポリペプチドを、治療薬、診断薬および
検査薬に使用する方法にも関する。例えば、コリンの核酸およびポリペプチドは
、その活性のモジュレーターを同定する方法に、またヒトの疾患に類似した動物
モデルに、さらに病状の診断に使用することができる。
(LDLR)、スカベンジャー受容体のシステインリッチな反復(SRCR)お
よびセリンプロテアーゼ触媒ドメインを有する新規の遺伝子であり、コリンをコ
ードしている核酸およびポリヌクレオチド配列が同定された。図1参照。
か、または天然起源のものから獲得できるアミノ酸配列を有しており、以下の活
性またはドメインを1個以上有する:セリンプロテアーゼ触媒活性;セリンプロ
テアーゼ触媒活性ドメイン;セリンプロテアーゼ結合基質活性;プロ−心房性ナ
トリウム利尿因子(ANF)変換酵素触媒活性;縮れドメイン;LDLR受容体
ドメイン;およびスカベンジャー受容体のシステイン−リッチな反復(SRCR
)。
下の核酸断片でコードされたポリペプチド断片を除外する:Hs.62794(
AA126468[1786098]、AA126648[1686206]、AA
625395[2537780]、AA046682[1524579]、AA24
9850[1881137]、およびAA046793[1524691])、およ
びHs.71798(AA147031[1716421])(括弧内の番号はPub
ESTデータベースに合致する)。場合により、以下の断片をも除外してよい:H
s.121626(AA771958)、Hs.1657(M69297)、およ
びHs.47712(AA203291)、g1231787;g131272
6;g1337948;およびg942724。前記核酸のヌクレオチド配列を
、公的に入手可能なデータベースを検索することによって割り出すことができる
。しかし、例えば全長コリン、前記断片を2個以上有するポリペプチド、または
前記断片の1個に加えコリンまたはその他を起源とするアミノ酸配列を有するポ
リペプチドの配列を含有するポリペプチド、またはこのような配列から成るポリ
ペプチドは除外しない。
択的な免疫応答を誘起することを意味している。このような応答は、細胞性また
は体液性であり得る。従って、配列番号2および4記載のヒトまたはマウスコリ
ンのような、ほ乳類コリンペプチドから選択されたコリンアミノ酸配列による、
抗体、T−細胞、マクロファージ、B−細胞、樹状細胞などの刺激作用が、特異
的な免疫原性である。このような応答を一般的な方法で測定できる。コリンに特
異的な抗体に関して、以下の議論も参照されたい。
ド切断活性を有することを意味し、有利には、例えばペプチド結合の切断活性、
例えばコリンのセリン残基がペプチド結合の切断に関与する場合を意味する。St
roud, Sci. Am., 231:74〜88 1974:Kraut, Ann. Rev. Biochem., 46:331〜3
58 1977を参照のこと。配列番号2または4に記載される全コリンポリペプチド
配列またはその一部は、セリンプロテアーゼ触媒活性を有する。配列番号2の8
01番目のアミノ酸の後ろでの切断(アルギニンとイソロイシンの間のペプチド
結合を切断)は、このような触媒活性を増大または強化し、その結果、実質的に
802〜1042番目のアミノ酸を含有する触媒断片または該アミノ酸から成る
触媒断片が放出される。
ーゼ触媒活性能力を有するポリペプチド領域を意味するが、必ずしも完全体は必
要でなく、場合によってはバックグラウンド中に活性が存在することもある。例
えば、トリプシンファミリーのものは、多くの場合、ポリペプチドの特異的部位
で切断されることで初めて完全な活性を示すプロ酵素として、最初に発現される
。切断により、タンパク分解された断片が放出される。一般的に、“放出された
断片”は、タンパク質の残り部分でジスルフィド結合によって好適な位置に保持
される。ジスルフィド結合を形成できるシステインに関しては、配列番号2を参
照されたい。セリンプロテアーゼ触媒ドメインとは、完全なコリン配列から放出
される前のタンパク分解性の断片を意味する。
ばプロ−ANFがタンパク質分解により1個以上のより小さなペプチドに変換さ
れるような触媒活性を意味する。Inagami. J. Biol. Chem., 264:3043〜3046
1989:RosenzweigおよびSeidman, Ann. Rev. Biochem., 60:229〜255 1991;S
ilkins等,Lancet, 349:1307〜1310 1997を参照のこと。ANF(ANPとも呼
ばれる)は、例えば体液のホメオスタシス、血圧、血漿体積、ならびに心臓およ
び腎臓の機能に関連する生理学的プロセスを制御する、心臓のホルモンである。
変換活性のための別の基質には、ANFと同種の同族体またはタンパク質、例え
ばBNPおよびCNPが含まれる。Wilkins等, Lancet. 349:1307〜1310 1997
;Levin等, New Eng. J. Med.,339:321〜328 1998を参照のこと。変換活性は
、慣用の方法、例えば実施例に記載されるように、コリンまたはコリンの生物学
的に活性な断片を処理する前後における、プロ−ANFの分子量の違いを検出し
てアッセイすることにより、測定できる。コリンが細胞表面に発現することから
、インタクトな細胞、例えばプロ−ANFをプロセス基質として使用することが
できる。
起するので、基質の結合は一般的に、酵素触媒作用の第一段階と見なされる。酵
素表面は、酵素の活性部位と考えられる。基質の酵素表面への結合には、酵素に
よる様々な相互作用、例えば酵素を構成する1個以上のアミノ酸および/または
官能基の化学結合が含まれる。ここに記載されるセリンプロテアーゼ基質結合活
性とは、例えば(H−D−Pro−Phe−Arg−pNA.2HCl)、S2
444(pyroGlu−Gly−Arg−pNA.HCl)およびS2288
(H−D−Ile−Pro−Arg−pNA.2HCl)のような各基質または
プロ−ANFが、特にコリンポリペプチドの表面に結合することを意味する。酵
素への結合は、それが保持する基質との、自然発生的な1個以上の相互作用によ
って達成される;しかし、ポリペプチドは自然発生的な相互作用の数および量を
下回る基質を保持する場合にも、基質結合活性を有することができる。場合によ
りセリンプロテアーゼ基質結合活性は、基質の触媒作用の獲得に、活性部位への
競合的または非競合的な結合に、酵素への不可逆的な結合に、結果的な触媒活性
の消失(例えば自己不活化性の基質である場合)等に有効である。
合アッセイを使用して、例えば有効条件下に、検出可能なマーカーを有する基質
、ヒトコリンポリペプチドまたはその断片、および基質結合活性を試験する化合
物を結合させることにより、ポリペプチドに結合する基質またはその誘導体を同
定できる。アッセイは、結合体と遊離基質とを膜によって分離できる液相中で、
あるいは所望の固相中で実施してよい。固相アッセイを、例えばチップ、小板等
の上で、高−処理能法により実施してよい。基質結合および触媒活性は別個のも
のである。従って、コリンポリペプチドは基質結合活性を有するが、触媒活性は
有さない。
ッチドメイン”(ここでは“縮れドメイン”の表現も使用する)も包括する。縮
れドメインは、例えばZorn, Current Biology 7:R501〜R504, 1997に定義お
よび記載される、リガンド結合活性または領域を有する。例えば、縮れたドメイ
ンは、Wntに相同なリガンドの受容体および細胞増殖や細胞シグナルに関する
他の分泌型糖タンパク質の受容体として機能できる。これは膜結合しても溶解性
でもよい。溶解性の形であれば、例えばコリンの遊離縮れドメインが遊離リガン
ドと結合することによって、細胞表面上にある同種受容体との相互作用が回避さ
れる場合に、拮抗薬としても機能する。
ガンド結合活性を有する。
(“SRCR”)を含む。Matsumoto等, Proc. Natl. Acad. Sci., 87:9133〜9
137 1990参照のこと。
乳類ポリペプチドである。これは全長(すなわち、配列番号2)であるか、全長
よりも短くてもよく、前記の活性を1個以上有する。従って、天然に産出する正
常体、突然変異体、多形体等の配列が含まれる。天然源には、例えば組織または
有機体全体から獲得される生細胞、本来のおよび不死化した細胞系を含む培養細
胞系、生検組織等が含まれる。
する。断片は有利に“生物学的に活性”である。“生物学的に活性”とは、ポリ
ペプチド断片が、生物系または生物系の成分中で活性であることを意味する。生
物学的な活性には、前記の例えば触媒活性、基質結合活性および/または免疫原
性が含まれる。断片は、化学合成、遺伝子操作、切断生成物等、所望の任意の方
法により製造できる。以下を参照のこと。
を有するヒトコリンに関する。1042個のアミノ酸ポリペプチドは、分子量が
約116キロダルトンであると予測された。これは以下のようなドメインを有す
る:ほぼ46〜66番目のアミノ酸にあたる疎水性領域;ほぼ134〜259番
目および450〜573番目のアミノ酸にあたる縮れシステインリッチドメイン
;ほぼ268〜415番目および579〜690番目のアミノ酸にあたる7個の
LDLR受容体;ほぼ713〜801番目のアミノ酸にあたるマクロファージス
カベンジャー受容体の形態に類似したシステインリッチな領域;およびほぼ80
2〜1042番目のアミノ酸にあたるセリンプロテアーゼ触媒ドメイン。ほぼ7
〜1042番目のアミノ酸にあたる細胞外ドメイン中に、N−グリコシル化部位
と思われる部位が19個存在する。
リンポリペプチドを適当な方法で分析することにより、ポリペプチド中の別の構
造および/または機能ドメインを同定できる。例えばコリンポリペプチドを、Ky
teおよびDoolittle, J. Mol. Bio., 157:105,1982:EMBL Protein Predict; Ro
stおよびSander. Peoteins, 19:55〜72,1994に記載される方法で分析できる。
定配列として機能できる。ヘプシン、アミノ末端近くに膜貫通ドメインを有する
トリプシンファミリーのほ乳類セリンプロテアーゼも同様である(kurachi等, M
ethod in Enzymology 244:100〜114, 1994);キイロショウジョウバエ(Droso
phila melanogaster)のセリンプロテアーゼである、スタブルスタブロイド(st
ubble- stubbloid)も、膜貫通ドメインを有している(Appel等, Proc. Natl. A
cad. Sci. USA 90:4937〜4941 1993)。疎水性および前記膜貫通ドメインの直
前にプラスに荷電したアミノ酸残基が存在することは、コリンが、細胞質中にア
ミノ末端を有するII型膜貫通タンパク質であってよいことを示している。
たる少なくとも2個のシステイン−リッチな縮れドメインを有する。図2は、ヒ
トコリン縮れドメインと、FZ−1、lin−17およびFrizzledとの
比較を示している。縮れドメインには、例えばリガンド結合部位が含まれる。Zo
rn, Current Biology, 7:R501〜R504, 1997;Leyns等, Cell. 88:747〜756,
1997を参照のこと。以下に示すように、本発明の対象は、コリン縮れドメイン
に結合し、場合によりコリンポリペプチドを発現する細胞またはリガンドの発現
する細胞の活性を制御するリガンドを同定することである。
ン−リッチドメイン、7個のLDL受容体、1個のマクロファージスカベンジャ
ー受容体−様ドメイン、および1個のトリプシン−様セリンプロテアーゼドメイ
ン(2A)が存在することが判明した。2個の縮れ−様システイン−リッチドメ
インはそれぞれ、134〜259番目および450〜573番目のアミノ酸に位
置する。これらの2個のドメインのアミノ酸配列は、ショウジョウバエの分化に
おいて、極性の決定に不可欠な7回膜貫通型受容体である、ショウジョウバエの
Frizzledタンパク質の細胞外システイン−リッチドメインと酷似してい
る(19)。縮れ−様システイン−リッチドメインはまた、他のタンパク質、例
えばショウジョウバエのDfz2(20)、線虫のLin−17(21)および
ヒトのFZ−1(22)中にも見出される。コリンの2個の縮れ−様システイン
−リッチドメイン配列は、lin−17およびFZ−1と最も近似している。保
存された10個全てのシステイン残基が、コリンの縮れ−様システイン−リッチ
ドメインに存在する。
容体クラスA反復と相同な、7個のシステイン−リッチ反復が存在する(23)
。それぞれの反復は約36アミノ酸長さであり、6個のシステイン残基ならびに
マイナスに帯電したアミノ酸を多く保存した部分を有する。LDL受容体におい
て、これらのシステイン−リッチ反復は、カルシウムイオンと結合し、細胞外リ
ガンドのエンドサイトーシスに非常に重要な役割を果たす。同様の形態は、LD
L受容体−関連タンパク質(LRP1)(24)、メガリン(LRP2またはg
p330としても公知)(25)、補体タンパク質(26)、エンテロキナーゼ
(27)、およびショウジョウバエタンパク質のヨークレス(yolkless)および
ヌーデル(nudel)(28、29)のような他の膜受容体の細胞外ドメインにも
認められる。
リンの713〜801番目のアミノ酸中に別のシステイン−リッチな領域が存在
する。この領域はアミノ酸を88個有しており、マクロファージスカベンジャー
受容体で見出されたシステイン−リッチな形態と相同である(30)。この形態
はまた、ウニの精子スペラクト(spematozoa speract)受容体(31、32)お
よび脊椎動物のセリンプロテアーゼであるエンテロキナーゼ(27)中にも存在
する。
ノ酸残基の間に、トリプシン−様セリンプロテアーゼドメインが存在する。この
プロテアーゼドメインはトリプシンスーパーファミリーの有する触媒ドメインと
高い相同性を示す。例えば、コリンとプレカリクレイン(33)、因子XI(3
4)およびヘプシン(35)とのアミノ酸配列の相同性は、それぞれ40%、4
0%、および38%である。セリンプロテアーゼ配列に必要な全ての特徴がコリ
ンには良好に保存されている。触媒トライアドの活性部位残基は、His843
,Asp892およびSer985に位置する。基質特異的なポケットを形成す
るアミノ酸残基は、Asp979、Gly1007およびGly1018に位置
する。これらの残基は基質P1残基へ結合すると考えられ、このことはコリンが
塩基性残基、例えばリシンまたはアルギニン、の後ろでその基質を切断すること
を示唆している。さらに、推定される活性化のための切断部位がArg801に
見出されることから、コリンが不活性酵素原として合成され、その活性には別の
トリプシン−様酵素を要することが示唆される。
ステイン残基の可能な対合を、別の公知のセリンプロテアーゼ、例えばトリプシ
ンおよびキモトリプシンとの比較から予測してよい。トリプシンスーパーファミ
リーのいずれにも不可欠に存在するシステイン残基の最初の3個の対合は、Cy
s828−Cys844、Cys955−Cys970およびCys981−C
ys1010に位置する。さらに2個のシステイン残基対が、Cys790−C
ys912およびCys926−Cys991の位置に存在する。システイン残
基のこれら2個の対合は、二本鎖セリンプロテアーゼのサブファミリー、例えば
キモトリプシンおよびプレカリクレイン(33)中で通常見出されるものである
。Cys790およびCys912の存在により、Argで切断されて活性化し
た後に、コリンの触媒ドメインが、ジスルフィド結合により分子の残り部分に結
合したままであることが判明した。興味深いことに、1個の付加的なシステイン
残基対、すなわちCys817およびCys830がコリンに存在する。2つの
位置に存在するこれらのシステイン残基は、脊椎動物の他の任意のセリンプロテ
アーゼ中には見当たらない。データベースを検索すると、ゴカイ(Arenicola ma
rina)由来のキモトリプシノーゲン−様セリンプロテアーゼが相当の位置に2個
のシステイン残基を有することが判明した(36)。コリンプロテアーゼドメイ
ンのモデルは、牛のキモトリプシノーゲンAに基づいて設計されている。2個の
システイン残基のCα原子が、エネルギー最小化の間固定されているこのコリン
モデルでは、回転異性体を調査しても、側鎖の硫黄原子間の距離は約2.5Åで
ある。このモデルは、この2個のシステインが、プロテアーゼドメインの中心部
で、2つのb−シートを連結させるジスルフィド結合を形成するであろうことを
示している。
化し、同定した。マウスコリンの全長ヌクレオチドおよびアミノ酸配列を、配列
番号3および4に示す。マウスコリンには1113個のアミノ酸が存在し、ヒト
コリンと同じドメインを含有する。マウスとヒトのコリンでは、アミノ酸配列の
89%が一致している。
できる。例えば、ほ乳類コリンに選択的なオリゴヌクレオチドとのハイブリダイ
ゼーションを実施して、そのようなホモログを選択でき、このことは例えばSamb
rook等, Molecular Cloning, 1989, 11章に記載されている。このようなホモロ
グは、様々なヌクレオチド量およびアミノ酸配列を有するが、コリンに類似して
いる。非ほ乳類生物には、例えば脊椎動物、無脊椎動物、ゼブラダニオ(zebra f
ish)、鶏、ショウジョウバエ、線虫、ツメガエル、サッカロマイセス ポンベ
(pombe)、サッカロマイセス セレビシエ、回虫、原核生物、植物、ナズナ(a
rabidopsis)、ウイルス等が含まれる。
載されるような、特にヒトまたはマウス配列中に見出されるが、非コリンペプチ
ドに由来する別のアミノ酸配列中には見出されない、限定されたアミノ酸配列に
関する。特異的なアミノ酸配列は、通常、例えばコンピュータープログラムのB
LASTセットを使用して遺伝子/タンパク質データベースを検索することによ
って見出すことができる。コリンに特異的なアミノ酸配列は、特異的に免疫応答
を確立する抗原ペプチドの産生に有効である。このような免疫化により得られた
抗体は、診断または検査の目的で、ほ乳類コリンタンパク質の特異的なプローブ
として使用できる。
の断片を含有してよい。有益な断片には、例えば、縮れドメイン、1個以上のL
DLRドメイン、SRCR反復、膜貫通ドメイン、セリン触媒ドメインまたは断
片を有する断片あるいは実質的にこれらから成る断片が含まれる。ヒトコリンの
有利な断片は、配列番号2のポリペプチド配列を含み、ただしこの断片は、Hs
.62794(AA126468[1686098]、AA126648[1686
206]、AA625395[2537780]、AA046682[152457
9]、AA249850[1881137]、およびAA046793[15246
91])、およびHs.71798(AA147031[1716421])でコー
ドされたポリペプチドではない。前記参照のこと。
異的な生物学的活性とは例えば、セリンプロテアーゼ活性、プロ−ANF変換酵
素活性、基質結合活性、免疫原性等である。一般的に、このような断片を所望の
活性に関して試験することにより、有効な断片を同定できる。これらの活性の測
定については、以下に、および実施例に記載する。これらのペプチドを、EP4
96162の記載に従って、同定および製造することもできる。
またはそれを下回るアミノ酸の同一性を有する。以下の議論において、配列の同
一性とは、配列番号1〜4に記載の配列に見出されるのと同一のヌクレオチドま
たはアミノ酸が、比較配列の相当の位置にも存在することである。配列番号2ま
たは配列番号4記載のアミノ酸配列に100%を下回る配列の同一性を有するポ
リペプチドは、天然に産出する配列に由来した様々な置換基を含んでいてよく、
これには相同のおよび非相同のアミノ酸置換基が含まれる。相同のアミノ酸置換
基の例については以下を参照のこと。同一および相同の残基の合計を、配列中の
残基の総数で割り算してコリンペプチドに関して比較したものが、配列の類似率
に等しい。配列の同一性および相同性を計算する目的は、比較配列を、所望の方
法、アルゴリズム、FASTA、BLASTAのようなコンピュータープログラ
ムに応じて整理し算定することである。配列番号2または配列番号4のアミノ酸
配列と100%を下回るアミノ酸配列の同一性を有するポリペプチドは、約99
%、98%、97%、95%、90%、70%等で含有される。アミノ酸配列の
同一性の有利な値は約85%を上回り、例えば約86%である。
な修飾を含んでおり、ここで修飾とは、脂質の修飾、メチル化、リン酸化、グリ
コシル化、共有結合修飾(例えば、アミノ酸のR基の共有結合修飾)、アミノ酸
置換、アミノ酸欠失またはアミノ酸添加である。ポリペプチドの修飾は、組み換
え、合成、化学的方法等、様々な方法で達成できる。
その突然変異体)は、様々な方法、例えばアッセイ中で、以下に記載されるよう
な抗体の免疫原として、生物学的に活性な薬剤として(例えばコリンに関連した
1つ以上の活性を有する)使用できる。
の構造ドメイン、機能ドメイン、検出可能ドメイン、抗原性ドメイン、および/
または関連する所望のポリペプチドと、天然に存在しないすなわち天然非産出の
配置で結合させることができ、例えばヒトまたはネズミのコリン遺伝子の場合、
生物、例えば動物、有利にはヒト、マウスまたはその細胞系のようなほ乳類のゲ
ノムから製造した遺伝子断片と結合させることもできる。このような特徴を有す
るポリペプチドは、キメラまたは融合ポリペプチドである。このようなキメラポ
リペプチドを、化学的、合成的、偽合成的、および/または組み換え法を含む様
々な方法で製造できる。キメラポリペプチドをコードするキメラ核酸は、種々の
ドメインまたは所望のポリペプチドを連続的に含有するか(例えば活性を安定ま
たは強化する多数のN−末端ドメイン)または例えばイントロン、スプライス部
位、エンハンサー等を有する中断された読み取り枠を含有してよい。キメラ核酸
を、種々の方法で製造できる。アメリカ特許明細書第5439819号参照。ド
メインまたは所望のポリペプチドは、触媒、シグナリング、増殖促進、細胞ター
ゲティング(例えばエンドソーム、リソソーム、小胞体、核に対するシグナル配
列、標的配列)等の生物学的機能、疎水性、親水性、膜スパニング等の構造機能
、受容体−リガンド機能および/または例えば酵素、蛍光ポリペプチド、緑色蛍
光タンパク質との結合のような検出可能機能を有していてよい(Chalfie等, 199
4, Science, 263:802;Cheng等, 1996, Nature Biotechnology, 14:606;Levy
等, 1996, Nature Biotechnology, 14:610等)。さらに、ポリペプチド、また
はその一部を、宿主への導入時の選択マーカーとして使用できる。例えば本発明
のアミノ酸配列をコードする核酸を、読み取り枠中で所望のコード配列と融合さ
せ、精製、選択または標識のためのタッグとして機能させてもよい。融合領域は
、発現、単離、精製等を促進するための切断部位をコードしていてよい。
、組み換え、細胞融合等、本発明の発現系で製造できる。ポリペプチドの修飾に
は、グリコシル化、アミノ酸置換(例えば、異なるコドンの利用による)、分解
、切断、エンドペプチダーゼまたはエキソペプチダーゼ活性のようなポリペプチ
ドのプロセシング、脂質およびリンを含む化学成分の添加等の系が含まれる。
チルグリコシド)、硫酸アンモニウムまたはエタノールによる沈殿、酸による抽
出、陰イオンまたは陽イオン交換クロマトグラフィー、ホスホセルロースクロマ
トグラフィー、疎水性相互作用クロマトグラフィー、ヒドロキシアパタイトクロ
マトグラフィーおよびレクチンクロマトグラフィーを含む通常の方法により、天
然物、形質転換宿主細胞(培地または細胞)から再生できる。成熟タンパク質の
立体構造を完全にするために、場合により、タンパク質の再生工程を利用できる
。最後に、高速液体クロマトグラフィー(HPLC)を精製過程で使用できる。
コリンポリペプチドを他のセリンプロテアーゼに関する記載と同様にして単離し
てもよい(例えばWu等, J. Biol. Chem., 267:24408〜24412, 1992;Wu等, Pro
c. Natl. Acad. Sci., 88:6775〜6779, 1991)。
列を有する核酸である。前記参照。それ故、天然産出物、正常体、突然変異体、
多形対立遺伝子、縮重配列などが含まれる。天然源には、組織および全有機体か
ら獲得した生細胞、本来のおよび不死化した細胞系を含む培養細胞系が含まれる
。有利には、ユニジーンデータベース[PubEST]由来の以下の核酸断片を除外する
:Hs.62794(AA126468[1686098]、AA126648[1
686206]、AA625395[2537780]、AA046682[152
4579]、AA249850[1881137]、およびAA046793[15
24691])およびHs.71798(AA147031[1716421])(
括弧内の番号はPubESTデータベースの番号である)。場合により、以下の断片を
除外してもよい:Hs.121626(AA771958)、Hs.1657(M
69297)、およびHs.47712(AA203291)、g123178
7;g1312726;g1337948;およびg942724。前記の核酸
のヌクレオチド配列を公的に入手可能なデータベースを検索して確認することが
できる。しかし、例えば全長コリン、または前記断片の2個以上を有する核酸の
配列を含有する核酸またはこれらの配列から成る核酸は除外しない。クローニン
グベクター、例えばプラスミドまたはファージ中に存在する前記断片を除外する
のも有利である。
る。脳、胎盤、肺、肝臓、骨格筋、腎臓、膵臓、脾臓、胸腺、前立腺、精巣、卵
巣、小腸、結腸、膀胱、子宮および胃には存在しないかまたは非常に低いレベル
で発現している。それ故コリンを、例えば組織切片(コリン−特異的な抗体また
はコリン−特異的な核酸プローブを使用する)や生検サンプル等に心組織が存在
するかを調べるマーカーとして使用できる。コリンはまた、子宮癌、骨肉腫、子
宮内膜癌系HEC−1−A、AN3CA、およびRL95−2、平滑筋肉腫SK
−LM−1、および骨肉腫US−OSのような様々なヒト細胞系で検出される。
更なる詳細を以下の実施例に記載する。
。DNAの大きさは、ノーザン分析によって検出されたコリンmRNA(−5k
b)長さに等しい。翻訳開始部位を表すと考えられるATGコドンは、95番目
に位置する。読み取り枠(ORF)は3126bpであり、開始コドンの前に9
4ヌクレオチドから成る5′非翻訳領域(UTR)を有する。3′末端には、3
221番目に位置する停止コドンの後ろに1.7−kbの3′UTRが存在する
。ポリ(A)テールの12ヌクレオチド前に、AATAAAのポリアデニル化シ
グナルが存在する。本発明の核酸配列は、アミノ酸1〜1042に由来する完全
なコード配列、その縮重配列、およびその断片を有する。本発明の核酸はまた、
前記および下記の任意のヌクレオチド配列に100%相補的なヌクレオチド配列
、例えばアンチ−センスを包括する。
ドしたマウスヌクレオチド配列に関する。ヒト対立遺伝子の場合に、本発明は、
その縮重配列およびそのアンチセンス断片に関する。ノーザン分析では、心臓由
来のサンプル中に約5kbの顕著な転写物を認める。ヒトのサンプルを用いたノ
ーザン分析と対称的に、マウスの精巣および腎臓由来のサンプル中ではmRNA
は低レベルで検出される。マウスコリンmRNAのin situハイブリダイ
ゼーションもまた、胎児の心組織、心房、心室筋細胞、発達中の腎臓、および軟
骨由来の構造中で検出される。
から単離されたDNAまたはRNA、例えばポリアデニル化されたmRNAから
獲得できる。核酸を直接DNAまたはRNAあるいはcDNAライブラリーから
獲得できる。核酸は特に、所望の遺伝子型、表現型等を有する発生段階の細胞(
例えば胎児または成人の心臓の細胞あるいは組織)から獲得できる。
したヌクレオチド配列を有する核酸には、コード配列のみ;コード配列および付
加的なコード配列(リーダー、分泌、標的、酵素、蛍光をコードする配列または
その他の診断用ペプチド);コード配列および非コード配列(例えば5′および
3′末端のいずれかまたはコード配列中に分散して存在する非翻訳配列、例えば
イントロン)が包括される。ポリペプチドを中断することなくコードするヌクレ
オチド配列を有する核酸とは、コリンをコードするアミノ酸配列を有し、コード
配列を中断またはコード配列に介在する非−コードヌクレオチドを有さない核酸
、例えばイントロンの欠失を意味する。このようなヌクレオチド配列も、連続し
ているように記載される。ほ乳類ヒトまたはマウスコリン等をコードするゲノム
DNAは、通常の方法で獲得できる。
を含有する。“発現制御配列”という表現は、それが操作可能に結合した核酸に
よってコードされたポリペプチドの発現を調節する核酸配列を意味する。発現は
、mRNAまたはポリペプチドのレベルで制御される。従って、発現制御配列は
、mRNA−関連要素およびタンパク質−関連要素を有する。このような要素に
は、プロモーター、エンハンサー(ウイルスまたは細胞の)、リボゾーム結合配
列、転写ターミネーター等が含まれる。発現制御配列がコード配列の発現を誘起
または達成させるように位置する場合、発現制御配列はヌクレオチドコード配列
へ操作可能に結合している。例えば、プロモーターがコード配列の5′側に操作
可能に結合される場合、コード配列の発現はプロモーターによって誘導される。
発現制御配列は、正常遺伝子に非相同であっても内在性であってもよい。
一本鎖核酸試料が一緒にハイブリダイズする能力は、その核酸配列の相補性、例
えばA−T、C−G等のようなヌクレオチド間の塩基対の尺度である。従って、
本発明はまた、配列番号1および配列番号3に記載されるヌクレオチド配列を有
する核酸とハイブリダイズする核酸に関する。後者の配列にハイブリダイズする
ヌクレオチド配列は相補的な核酸鎖を有するか、またはポリメラーゼ(すなわち
適当な核酸合成酵素)の存在下に鋳型として働く。本発明は、両方の核酸鎖、例
えばセンス鎖およびアンチ−センス鎖を包括する。
ド配列に対するヌクレオチドの相補性が所望量である核酸が得られるように、選
択される。このような配列へハイブリダイズできる核酸は、有利に、配列間で約
85%の、さらに有利には90%、92%の、特に有利には95%,97%また
は100%の相補性を示す。本発明は特に、僅かにまたは非常にストリンジェン
トな条件で、配列番号1および配列番号3のヌクレオチド配列とハイブリダイズ
する核酸配列に関する。
ロット(すなわち核酸を含むマトリクス)を、公知の方法に従い、プレハイブリ
ダイゼーション溶液(6X SSC、0.5%SDS、変性させた鮭の精子DN
A100μg/ml、5X デンハーズ溶液(Denhardt′s solution)、および
50%ホルムアミド)中で30ECで一晩インキュベートし、ハイブリダイゼー
ション溶液(6X SSC、0.5%SDS、変性させた鮭の精子DNA100
μg/ml、50%ホルムアミド)中の放射線ラベルしたプローブ(コリン)と
、42ECで一晩ハイブリダイズさせた。ブロットを非常にストリンジェントな
条件で洗浄し、それにより、例えばミスマッチが5%以下となり(例えば0.1
%SSCおよび0.1%SDS中で30分間65ECで2回洗浄する)、すなわ
ち95%以上の配列の一致を示す。非常にストリンジェントな条件で洗浄するこ
とによりミスマッチは5%以下となるが、あまりストリンジェントでない洗浄条
件(0.2%SSCおよび0.5%SDSで30分間37ECで2回洗浄する)で
は、ミスマッチは20%を越える。この例に限らず、別のストリンジェントでな
い条件では、最終洗浄を30mM NaClおよび0.5%SDSを含むバッフ
ァー中で42ECで実施する。この例に限らず、別の非常にストリンジェントな
条件では、最終洗浄を30mM NaClおよび0.5%SDSを含む水性バッ
ファー中で65ECで実施する。洗浄およびハイブリダイゼーションはSambrook
等、Molecular Cloning, 1989,第9章に記載されるようにして実施できる。ハイ
ブリダイゼーションは、Sambrook等の記載のように、プローブとその標的間で形
成されるハイブリッドの融点(Tm)の算出に基づいていてよい。このようなス
トリンジェントな条件により、核酸間で例えば少なくとも約95%、有利には9
7%のヌクレオチド相補性を有する配列を選択することができ、ただし、このよ
うな核酸はHs.62794(AA126468[1686098]、AA126
648[1686206]、AA625395[2537780]、AA04668
2[1524579]、AA249850[1881137]、およびAA0467
93[1524691])、およびHs.71798(AA147031[1716
421])ではない。前記および下記参照のこと。例えば全長コリン、またはこ
れらの前記断片を2個以上有する核酸の配列を含有するかまたはこのような核酸
の配列から成る核酸は除外しない。
ミノ酸配列中に1個以上の相違点を有していてよい。ヌクレオチドおよび/また
はアミノ酸配列の変換または修飾は、定方向突然変異またはランダム突然変異を
含む可能な任意の方法で達成できる。
遺伝子、例えば天然に産出される多形、正常体または突然変異体の対立遺伝子(
ヌクレオチドまたはアミノ酸)、ヒト、サル、ブタ、マウス、ラットまたはウサ
ギのようなほ乳類の自然集団の中で見出される変異中に見られるヌクレオチドを
含んでいてよい。天然に産出するという表現は、核酸が天然源、例えば動物組織
および細胞、体液、組織培養細胞、法医学的サンプルから得られること意味する
。天然に産出する突然変異体には、ヌクレオチド配列の欠失(切形アミノ末端ま
たはカルボキシ末端)、置換または付加が含まれる。これらの遺伝子を当業者に
公知の方法である核酸ハイブリダイゼーションにより検出し単離する。本発明の
ヒトまたはマウスコリンポリペプチドをコードするヌクレオチド配列は天然に産
出する遺伝子、転写体、またはcDNA、例えば配列番号1または配列番号3中
に見出されるコドンを有するか、あるいは同一のアミノ酸配列をコードする縮重
コドンを有する。例えば、有利には、所望の宿主中で発現できるよう配列を最適
化するために、配列中のコドンを変化させる。
ら得られるアミノ酸配列とは異なるアミノ酸配列を有するポリペプチド(ほ乳類
コリンの断片は天然に産出するコリンに由来するアミノ酸配列と異ならない)に
も関する。従って、コリンの突然変異タンパク質は、アミノ酸置換、挿入および
欠失を含み、天然に産出しないアミノ酸から成る。Wu等, Proc. Natl. Acad. Sc
i., 88:7775〜6779, 1991、特に塩基性アミノ酸がグルタミン酸に置換されるア
ミノ酸置換により突然変異が誘起されることを記載した部分を参照のこと。
Genbank, EMBLから相同性を検索することにより製造できる。配列の相同性の検
索は、コンピュータープログラムのBLASTファミリーに記載されるアルゴリズム
、Smith- Watermanアルゴリズム等を含む種々の方法によって達成される。
および配置調節し、次いでその配置調節に基づいてアミノ酸を修飾することによ
り、突然変異タンパク質を配列に導入する。例えば、ヒトコリンとFrizzl
ed、LDLRおよび他のタンパク質のセリンプロテアーゼドメインとの配列の
比較を図2〜4に図解する。これらの位置表示により、一致するアミノ酸位置お
よび残基が互いに異なるが相同であるアミノ酸位置が明確になる。相同なアミノ
酸は側鎖の大きさおよび極性化の度合いに基づいて定義され、この際、小さく非
極性:システイン、プロリン、アラニン、スレオニン、小さく極性:セリン、グ
リシン、アスパラギン酸、アスパラギン、大きく極性:グルタミン酸、グルタミ
ン、リシン、アルギニン、中間的で極性:チロシン、ヒスチジン、トリプトファ
ン、大きく非極性:フェニルアラニン、メチオニン、ロイシン、イソロイシン、
バリンである。
ン、スレオニン、システイン、チロシン、アスパラギン、グルタミン;酸性アミ
ノ酸(負に荷電)、アスパラギン酸およびグルタミン酸;塩基性アミノ酸(正に
荷電)、リシン、アルギニン、ヒスチジン。相同なアミノ酸はまた、Dayhoff, A
tlas of Protein Sequence and Structure 5 (1978)およびArgos, EMBO J. 8, 7
79〜785(1989)に記載されるものを含有する。
相当のドメインに由来する相同な残基で置換されたアミノ酸配列を含む。
こで、ポリペプチドをコードする該核酸およびアミノ酸位置の1つ以上は置換ま
たは欠失されているか、置換および欠失されており、該核酸でコードされたポリ
ペプチドはセリンプロテアーゼ触媒ドメイン活性またはコリンに特異的な免疫原
活性を有する。このような核酸は相同のアミノ酸で置換された1つ以上の置換ア
ミノ酸位置を有していてよい。
または消滅させるようなアミノ酸置換に関する情報を提供する。例えば、位置表
示により2つ以上のドメイン間で保存された同一アミノ酸が明確となった場合(
例えば図4記載の保存H、D、またはS残基の置換)、アミノ酸の欠損または置換
がその生物学的活性に影響を及ぼす。触媒トライアド中の突然変異、すなわちH
is910、Asp959およびSer1052(マウスコリン)は、セリンプ
ロテアーゼの触媒活性を完全に破壊する。
ド配列は、配列番号2または配列番号4記載のアミノ酸配列を有するが、ただし
、1つ以上の位置が相同アミノ酸によって置換されているもの、例えば1、5、
10、15または20置換が存在するものを除く。本発明はまた、突然変異タン
パク質ポリペプチドおよびそのようなペプチドをコードする突然変異タンパク質
の核酸に関する。
レオチド、またはその混合物を含む。DNAは二本鎖または一本鎖であってよい
。例えばRNaseHのようなヌクレアーゼ耐性、in vivoでの安定性の
向上等の所望の目的に応じて、核酸から成るヌクレオチドを、例えばエステル、
スルファミン酸、スルファミド、ホスホロチオネート、ホスホルアミデート、ホ
スホネート、カルバメート等の公知の様々な結合により連結させることができる
。アメリカ特許第5378825号参照。
、ビオチン、放射性要素)の付加、ハイブリダイゼーション、検出、または安定
性を向上させる成分の付加が挙げられる。核酸はまた、所望の方法により固体支
持体、例えばニトロセルロース、磁性または常磁性微小球(例えばアメリカ特許
第5411863号;アメリカ特許第5543289に記載されるように、例え
ば強磁性、超磁性、常磁性、超常磁性の酸化鉄およびポリサッカライドが含まれ
る)、ナイロン、アガロース、ジアゾ化セルロース、ラテックス固体微小球、ポ
リアクリルアミドに固着させることができる。アメリカ特許第5470967;
5476925;5478893参照。
試験サンプルにおいてほ乳類コリン核酸を検出、定量、単離する場合に、このよ
うなオリゴヌクレオチドまたは核酸プローブを使用できる。有利な実施態様では
、例えばPCR、RACE、ディファレンシャルディスプレーにおいて、cDN
Aライブラリー、発現ライブラリー等との組合せにおいて、核酸をオリゴヌクレ
オチドプローブとして使用できる。好適なオリゴヌクレオチドを以下の実施例に
記載する。検査、診断および法律的な種々の目的に応じた検出であることが望ま
しい。診断が目的の場合には、サンプル中のそのような核酸配列の存在および量
を確認するのが有利であり、この際、サンプルは組織、細胞、体液等から得る。
有利な方法において、本発明は、標的とオリゴヌクレオチドとの間でのハイブリ
ダイゼーションが効果的に達成される条件下に、試験サンプル中の標的核酸とオ
リゴヌクレオチドとを接触させ、ハイブリダイゼーションを検出することから成
る、核酸の検出方法に関する。本発明のオリゴヌクレオチドを、PCR(例えば
Saiki等, 1988. Science, 241:53;アメリカ特許第4683202号;PCR Pro
tocols: A Guide to Methods and Applications, Innis等, eds., Academic Pre
ss, New York, 1990)またはディファレンシャルディスプレー(例えばLinag等,
Nucl. Acid. Res., 21:3269〜3275,1993:アメリカ特許第5599672:W
O97/18454参照)またはRACEのような合成的な核酸の増幅に使用し
てもよい。このような検出は他の遺伝子、例えば心組織または骨の分化や機能に
関与する遺伝子のオリゴヌクレオチドとの組合せにより達成される。
配列である。コリンに特徴的な配列とは、有利にヒト、ラット、マウス等のほ乳
類のコリン中に見出されるヌクレオチドの規定配列を意味し、例えば配列番号1
または3中には存在するが、特に動物の別の核酸には殆どまたは滅多に見られな
い配列を意味する。センスおよびアンチセンスヌクレオチド配列の両方を含有す
る。本発明に特徴的な配列を、慣用の方法で決定できる。このような特徴的な配
列から成る核酸を、例えば核酸混合物を含むサンプル中のヒトまたはマウスコリ
ンの存在を確認するためのハイブリダイゼーションプローブとして、ノーザンブ
ロットで使用できる。プローブと少なくとも95%の一致(すなわち相補性)を
示す核酸を選択するために、ハイブリダイゼーションをストリンジェントな条件
下に実施するが(前記参照)、よりストリンジェントでない条件を適用してもよ
い。特徴的なコリンヌクレオチド配列を、コリン、触媒、GFP等の別の部分、
発現制御配列等をコードする配列を含む特許に記載されるような様々なヌクレオ
チド配列と、5′または3′末端のいずれかにおいて、読み取り枠中に融合させ
てもよい。
oning, 1989に応じて種々の条件下に実施する。例えば、ヒトまたはマウスコリ
ンを特異的に検出するために、オリゴヌクレオチドが標的核酸とだけハイブリダ
イズする、すなわちオリゴヌクレオチドが標的核酸と100%の相補性を有する
ような条件下にオリゴヌクレオチドを標的核酸へハイブリダイズさせる。100
%を下回り、少なくとも約99%、97%、95%、90%、70%、67%の
ヌクレオチド相補性を有する標的核酸を選択するのが有利である場合には、異な
る条件を適用してもよい。
たヌクレオチド配列を有する。本発明のオリゴヌクレオチド(核酸)は、所望さ
れる任意の大きさ、例えば約10〜200ヌクレオチド、12〜100、有利に
は12〜50、12〜25、14〜16、少なくとも約15、少なくとも約20
等であってよい。オリゴヌクレオチドは配列番号1または配列番号3と100%
一致するか相補的であり、ミスマッチまたはヌクレオチド置換、例えば1、2、
3、4または5置換を有していてよい。本発明によれば、オリゴヌクレオチドは
所望のバッファー(例えばリン酸バッファー、トリスバッファー等)、検出組成
物等を有するキットを含有してよい。オリゴヌクレオチドは、従来技術に公知な
ようにして、放射性または非放射性ラベルで標識してもよく、または標識しなく
てもよい。
列のアンチセンスから製造できる。アンチセンス核酸を、阻害、発現の検出、i
n situハイブリダイゼーションのようなコリンの発現を制御または調節す
る様々な方法に使用してよい。これらのオリゴヌクレオチドを、アメリカ特許第
5576208号に記載されるのと同様に使用してよい。コリンの発現を制御ま
たは調節するために、アンチセンスオリゴヌクレオチドを発現制御配列に操作可
能に結合させてよい。
されるトレーサーである、32P、35S、125I、3Hまたは14Cのよう
な放射性トレーサーを用いて標識できる。放射性標識は、任意の方法、例えば放
射性標識ヌクレオチド、ポリヌクレオチドキナーゼ(ホスファターゼによる脱リ
ン酸化を実施するかまたは実施しない)またはライゲース(末端を標識するかに
依存する)を使用して3′または5′末端で末端標識してよい。非放射性標識も
実施でき、この際、本発明の核酸を、免疫特性残基(抗原、ハプテン)、ある試
薬への特異的な親和性を有する残基(リガンド)、検出可能な酵素反応を完全に
する特性を有する残基(酵素または補酵素、酵素基質または酵素反応に関する他
の基質)、または蛍光あるいは所望の波長の光の放出または吸収といった固有の
物理特性を有する残基と組み合わせて使用する。
、組織、細胞等におけるコリンの発現を検出するために、ノーザンブロット、P
CR、RACE、in situハイブリダイゼーション等を含む様々な方法に
使用してもよい。このような核酸は特に、例えばコリンの細胞特異的および/ま
たは遺伝子変化に起因する発現の阻害を検出するのに好適である。コリンのレベ
ルを単独で、または他の遺伝子産物、特に心特異的な遺伝子産物と組み合わせて
測定できる。
vivoで発現させることができる。例えば、核酸を発現ベクター中に挿入し
、所望の宿主に導入し、核酸がコードするポリペプチドを効果的に発現できるよ
うな条件下に培養することができる。効果的な条件には、宿主細胞でポリペプチ
ドを製造するのに好適な任意の培養条件、すなわち効果的な温度、pH、培地、
宿主細胞を培養する培地への添加物(例えば核酸がdhfr遺伝子と隣接する場
合、ブチレートまたはメトトレキサート等の発現を増幅または誘導できる添加物
)、シクロヘキシミド、細胞密度、培養皿等が含まれる。未変性DNA、リン酸
カルシウム沈殿、エレクトロポレーション、インジョクション、DEAE−デキ
ストラン仲介形質移入、リポソームによる融合、細胞への取り込みを強化する薬
物との会合、ウイルス性形質移入等を含む任意の効果的な方法により、核酸を細
胞へ導入する。本発明の核酸が導入された細胞は形質転換された宿主細胞である
。核酸は染色体外に存在していても宿主細胞の染色体へ組み込まれていてもよい
。これは安定性または一過性である。発現ベクターをその宿主細胞との適合によ
り選択する。宿主細胞は、ほ乳類細胞、例えばCOS−7、CV1、BHK、C
HO、HeLa、LTK、NIH3T3、酵母、昆虫の細胞、例えばSf9(S.
frugipeda)およびショウジョウバエ、バクテリア、例えばエシェリキア コリ
、ストレプトコッカス、桿菌、酵母、真菌細胞、植物細胞、胎児の幹細胞、(例
えばマウスまたはヒトのようなほ乳類)、骨細胞(例えば破骨細胞または軟骨細
胞)、心細胞(例えば一次培養由来)、筋細胞、神経細胞等を含む。発現制御配
列は、宿主適合性の選択と同様に、所望の目的、例えば多くのコピー数、高い生
産数、誘導、増幅、発現の制御に応じて選択される。使用できるその他の配列に
は、SV40、CMV、RSVに由来するエンハンサー、誘導性プロモーター、
細胞型特異的要素、または選択的または特異的な細胞発現を誘起する配列が含ま
れる。発現を誘導するために使用できるプロモーターには、例えば内因性プロモ
ーター、MMTV、SV40;バクテリアを宿主とするtrp、lac、tac
、またはT7プロモーター:酵母のα因子、アルコールオキシダーゼ、またはP
GHプロモーターが含まれる。
導入してよい。このような遺伝子は正常遺伝子であるか、または突然変異体、キ
メラ、多形体等のような変異体であってよい。
マトグラフィー等のサイズマーカーとして使用できる。制限部位のために配列を
スキャンし、サイズを算出し、相当の制限切断を実施することにより、特徴的な
制限断片を決定する。配列番号1記載のコリンcDNAを、核酸の電気泳動時の
4.8kbの分子量マーカとして使用できる。
付けられる。従って、系統図のマーカーとして使用できる。例えば、この染色体
領域は全肺静脈還流異常(TAPVR)の分離系を示し、それ故、他の遺伝子マ
ーカーと共に疾患の位置づけに使用できる。Bley等, Am. J. Hum. Genet., 56:
408〜415, 1995参照。
産物を含む生物学的経路調節、およびコリンポリペプチドまたは核酸の検出によ
る、そのような状態の診断に関する。例えばANFは、例えば体液のホメオスタ
シス、血圧、血管拡張、ナトリウム排泄増加、糸球体管におけるナトリウム吸収
の阻害、糸球体濾過の向上、アルドステロン産生および分泌の阻害、有糸分裂誘
発等を含む冠血管および腎臓系に関連する種々の生理学的プロセスに関する。コ
リンのpro−ANF変換活性の調節は、生体生理学に絶大な影響を及ぼしてい
る。例えば、心室のANFレベルは、通常、心室の筋細胞よりも少ないが、冠血
管系の疾患により著しく増加する。鬱血性の心疾患患者は、ANFの血漿レベル
が高い。高濃度は心室機能不全の重度に相関する。同様に、ANF濃度の高さは
、心不整脈および血流易感染(hemodynamic compromise)に関連する。Levin等,
New Engl. J. Med., 339:321〜328:1998参照。例えば遺伝子発現を阻害した
り、触媒活性に直接作用する酵素阻害剤を投与することによりコリンの活性を阻
害して、異常に高いレベルを低下させることができる。
に関する疾患、例えば家族性肥大型心筋症、大理石骨病、および大理石骨−偽膠
腫症候群、骨粗鬆症、ページェット病、奇形性骨炎、および全肺静脈還流異常に
関連する。前記のように、コリンオリゴヌクレオチドは、TAPVRと同様に、
これらの疾患の家族性遺伝を調べるための系統図に使用でき、コリンがこのよう
な疾患に関与している場合には(遺伝子的連鎖または病原)診断の目的(例えば
胎児期)に使用できる。コリンはまた、心臓の発育、Wntタンパク質および別
の増殖因子によるシグナリングを含む発育経路、細胞分化(例えば軟骨細胞の分
化)および関連プロセスに関する。さらに、コリンは細胞−細胞シグナリング、
分化(骨および/または心臓)およびその他の発育経路に関する。このような役
割は、セリンプロテアーゼ触媒活性、縮れドメインおよび/またはLDRLドメ
インによって仲介される。コリンは増殖因子、例えばBMPまたはTGF−βの
プロセシング(例えばプロ増殖因子の触媒的な切断による)に関する。
血圧、うっ血性心疾患、または腎不全(コリンの関与する他の任意の経路に関連
する疾患も同様)を、ほ乳類コリンの活性を調節する薬剤を有効量で、必要とす
るホストへ投与して治療することである。調節という表現は:上昇、作用、促進
、安定、低下、減少、拮抗、遮断、阻害等を意味する。所望の調節効果の性質を
慣用の方法で測定でき、例えばANFの量を増加または減少させることにより病
理学的効果が得られるかを測定する。活性は、コリンの触媒活性を直接遮断する
薬剤(例えば、ロイペプチンまたはジイソプロピルフルオロホスフェートのよう
な酵素インヒビター)の投与または相当の遺伝子の転写または翻訳を遮断するア
ンチセンスのような試薬により阻害される。コリン活性は、例えばコリンペプチ
ドを効果的に産生するコリン遺伝子の接種により増加する。コリン遺伝子はその
他の遺伝子治療と同様の方法で接種できる。Magovern等, Hum. Gen. Ther., 8:
215〜227:1997;Spring等, Mol. Cell., 2:549〜558:1998参照。
て、コリン自体の活性を直接調節するかまたはコリンをコードする遺伝子の発現
を調節することにより、コリンの活性を調節する方法に関する。酵素活性を、例
えばWu等, J. Biol. Chem., 267:24408〜24412,1992;Wu等, Proc. Natl. Aca
d. Sci., 88:6775〜6779,1991に記載されるような慣用の方法で測定する。変
換活性を、実施例に記載されるようにして、あるいは例えばInagami, J. Biol.
Chem., 264:3043〜3046,1989に記載されるようにして測定する。従って、本発
明は試験化合物、コリンペプチド、その断片およびセリンプロテアーゼまたは変
換酵素のための基質の存在下に、該ポリペプチドまたはその断片が該基質を効果
的に切断できる条件で反応させ;該切断を検出し;試験化合物が該セリンプロテ
アーゼ活性を調節しているかどうかを、試験化合物の存在および不在における切
断量を比較することで確認する;ことから成る、コリンペプチド、断片またはそ
の突然変異タンパク質の、前記活性モジュレーターを同定する方法に関する。
を使用できる。例えば、切断の生成は、標識した基質とゲル電気泳動とを組み合
わせて使用することにより検出できる。有利な実施態様において、基質は色素原
基質、すなわちセリンプロテアーゼと反応し、本来の酵素基質の有する選択性と
同等の選択性を有するように設計されたペプチドである。色素原基質のペプチド
部分に結合しているのは、酵素切断後に放出されて検出可能な色を生じる化学基
である。色の変化は分光光度計により測定でき、これはセリンプロテアーゼ触媒
ドメインのタンパク分解活性と比例する。これらの基質は慣用の方法で合成でき
る。基質の加水分解(例えば4−ニトロアニリン、pNAをクロモフォアとして
含有する)を室温で405nmでの吸光を調べることにより測定する。セリンプ
プロテアーゼのアミド分解活性を測定するのに使用できる基質は、S2302、
(H−D−Pro−Phe−Arg−pNA.2HCl)、S2444(pyr
oGlu−Gly−Arg−pNA.HCl)、およびS2288(H−D−I
le−Pro−Arg−pNA.2HCl)をそれぞれ含有する。基質に結合で
きるその他のクロモフォアには、例えばANBA、ADMP、チオエステル誘導
体等が含まれる。更なる情報を得るには、例えばクロモジェニクスカタログ(Ch
romogenix catalog)およびそのウェブサイトを参照するとよい。KmおよびKca
tの値は、ミカエリス−メンテンの式によって算出できる。
件で、コリンペプチドと試験化合物とを接触させ;該コリンポリペプチドへの結
合を検出する;ことから成る、コリンポリペプチドと特異的に結合する化合物の
同定法に関する。結合アッセイを慣用の方法で実施する。コリンポリペプチドは
、完全なコード配列またはその断片、特に1つ以上のLDLRドメイン、縮れド
メイン、SRCRまたはその組合せを有していてよい。このようなドメインのア
ミノ酸位置については前記を参照のこと。ドメインを例えばイムノグロブリンド
メインと組み合わせて融合タンパク質として使用できる。アメリカ特許台563
9597号参照のこと。
して、可溶性の抽出物として、または溶解液として添加できる。この際、コリン
ポリペプチドを、天然源、組み換え源(すなわち、例えばプロスミド、ベクター
、未変性DNA等上にのせて細胞系に導入し、細胞中で発現させることにより、
“組み換え”ポリペプチドを遺伝子操作により製造する)から獲得してよく、ま
たは合成してもよい(例えば全長コリンをアミノ酸残基の801番目で切断して
化学的にまたは酵素的に製造し、例えば802〜1042断片を使用する)。コ
リンポリペプチドをほ乳類細胞、昆虫の細胞系、またはバクテリア中で、例えば
融合タンパク質または非融合タンパク質として発現できる。
形質転換された細胞系中でコリンを発現させる。後者の場合、コリンは細胞の異
形成分として存在する:ここで異形とは、コリンが、人工的(例えば、移入、形
質転換等)に細胞中に導入されたコード配列によってコードされていることを意
味する。有利には、コリンを細胞(バクテリア、酵母、昆虫、ほ乳類等)中で高
レベルに発現させる。ヒトコリンは有利なコード配列である。配列番号1および
配列番号2参照。
ヒトコリンで形質転換した細胞を溶解し、得られた溶解液、すなわち粗溶解液を
直接アッセイに使用する。組み換えヒトコリンを含有する粗溶解液を、場合によ
り、ヒトコリンとして精製または濃縮してよい。例えば、膜分画を慣用の方法で
単離できる。
Aの安定性、翻訳、翻訳後修飾、プロセシング(内部切断部位での切断)等を調
節できる。発現は、異なる薬剤、例えばアンチセンス核酸、リボザイム、アプタ
マー(aptamer)、合成化合物または天然化合物を使用しても調節できる。
situ、in vitro(試験管、固体支持体等)、in vivo、また
は所望の環境中でコリン活性を調節するのに好適である。一般的に、このような
in vitro活性を有する化合物はin vivoにおいて、コリンに関す
る生物学的経路を調節するのに有利であり、例えば、骨および心臓に関する疾患
およびその発育障害を含む前記の生物学的活性および細胞活性、増殖因子、セリ
ンプロテアーゼ活性を介するタンパク質の突然変異等に関連する病状の治療に有
利である。
当業者に公知の他の賦形剤から成る薬剤組成物中に配合できる。Remington′s P
harmaceutical Sciences, Eighteenth Edition, Mack Publishing Company, 199
0参照。このような組成物は付加的に有効量の別の化合物を含有する。
する細胞を、該遺伝子を配列特異的に阻害するヒトまたはマウスコリン遺伝子の
アンチセンスオリゴヌクレオチドまたはアンチセンスRNAのような適量の薬剤
と接触させる;ことから成る、ほ乳類コリンをコードする遺伝子の発現を調節、
有利には阻害する方法に関する。コリン遺伝子の発現を阻害することによりAN
Fの成熟が阻害され、その結果、前記のようなANFに関連する経路に影響が及
ぶ。
クレオチドまたはRNAを使用することにより、慣用の方法で達成できる。例え
ばホスホジエステルまたはホスホロチオエートデオキシオリゴヌクレオチドのよ
うなアンチセンスオリゴヌクレオチドは、コリンRNAの特異領域、例えば翻訳
開始部位へ設計され、次いでそのような遺伝子を発現する細胞に、その発現を制
御するのに効果的な量で接種する。一般的に、アンチセンス核酸とは、与えられ
た遺伝子のセンス鎖またはコード鎖に相補的な核酸であり、結果として相補的で
あり、遺伝子のmRNA転写物と特異的にハイブリダイズする。
元、ヌクレアーゼ等に抵抗性にしたり、または細胞への取り込みを強化したりす
る。任意の好適な修飾が利用でき、例えばホスホロチオエート、メチルホスホネ
ート、アクリジンインターカレート剤および/または疎水性テールと結合したホ
スホジエステルオリゴヌクレオチド、ソラレン誘導体、2′−リボース修飾、ペ
ントース糖誘導体、窒素ベースの誘導体等が可能である。アメリカ特許第557
6208号およびアメリカ特許第5744362号参照。本発明に好適なその他
の誘導体、修飾等に関しては、前記を参照のこと。一般的に、本発明のアンチセ
ンス核酸は、天然に産出するヌクレオチドのモノマー、天然には産出しないヌク
レオチドのモノマーおよびその組合せを含有することができ、それによって細胞
の取り込みおよび/または安定性が強化される。
る他の薬剤と複合化またはカプセル化して細胞中へ注入してもよく、ウイルスま
たはアデノウイルスのようなベクターを用いた好適な運搬方法を利用してもよい
。
体とは、コリン内のまたはコリンが有する定義されたアミノ酸配列、例えば配列
番号2および配列番号3のヒトおよびマウスの配列を認識する抗体を意味する。
従って、特異的な抗体は、通常、アミノ酸配列と高親和性で結合し、すなわち例
えばイムノグロブリンアッセイまたは他の慣用のイムノアッセイによって検出さ
れかつ/または測定される他の異なるエピトープよりも、配列番号2に見出され
るエピトープとより良好に結合する。従って、ヒトコリンのエピトープに特異的
な抗体はサンプル中、例えばヒトコリン遺伝子産物を含有するサンプル中のエピ
トープの存在を検出し、エピトープの存在しないサンプルと区別するのに好適で
ある。Santa Cruz Biotechnology, Inc., Research Product Catalogに記載され
るように、このような抗体は好適であり、従って例えば100μg/mlで配合
できる。
意の方法で製造できる。screening recombinant immunoglobulin libraries(Or
landi等, Proc. Natl. Acad. Sci., 86:3833〜3837, 1989;Huse等, Science,
256:1275〜1281, 1989);in vivo stimulation of lymphocyte populations;
WinterおよびMilstein, Nature, 349:293〜299, 1991参照。例えばモノクロー
ナル抗体を製造するために、図2または図3のポリペプチドを、アジュバントの
存在または不在下に、免疫応答を効果的に誘導できる量で、マウス、ヤギ、また
はウサギに皮下投与または/および腹腔内投与する。抗体は、一本鎖またはFa
bフラグメントであってよい。抗体はIgG、サブタイプ、IgG2a、IgG
1等であってよい。抗体および免疫応答を、未変性DNAの投与により誘起でき
る。アメリカ特許第5703055号;第5589466号;第5580859
号参照。
ないが、免疫原活性は有する必要がある。コリン−特異的抗体を誘導するのに使
用されるペプチドは、少なくとも5個のアミノ酸、有利には少なくとも10個の
アミノ酸から成るアミノ配列を有する。コリンアミノ酸の短鎖(short stretch
)、例えば5個のアミノ酸は、キーホールリンペットヘモシアニンのような別の
タンパク質あるいは別の好適な担体および抗体産生に使用されるキメラ分子の短
鎖と融合できる。
できる。例えば、1つの方法において、精製コリン由来の変性コリン(例えば逆
相HPLCによる分離で精製する)を、75mgまでの量で獲得する。この変性
タンパク質は標準的なプロトコールを使用してマウスまたはウサギを免疫化する
のに使用できる:マウスの免疫化には約100μgが適当であり、これに対し、
ウサギの免疫化には1mgまでを使用してよい。マウスのハイブリドーマを同定
するために、変性タンパク質を放射性ヨウ素化標識し、抗体を産生する潜在的な
マウスのB−細胞ハイブリドーマをスクリーニングするために使用する。この方
法には僅かな量のタンパク質しか必要でなく、従って、数千クローンの標識とス
クリーニングには20mgで十分である。
い領域を決定するために分析する。これらの領域を有するポリペプチドを合成し
、抗体産生のための好適な免疫化プロトコール中で使用する。好適なエピトープ
を選択するための分析についてはAusubel FM等が記載している(1989, Current
Protocols in Molecular Biology, vol2. John Wiley & Sons)。免疫化に最適
なアミノ酸配列は、通常、C−末端、N−末端およびタンパク質が本来の立体配
座をとる場合に、外的環境に曝露されるポリペプチドの介在疎水性領域に存在す
る。一般的に、長さが約15残基の選択されたペプチドは、アプライド バイオ
システム ペプチド シンセサイザー モデル431A(Applied Biosystems P
eptide Synthesizer Model 431A)を使用し、fmoc−chemistryを用いて、M−マ
レイミドベンゾイル−N−ヒドロキシサクシンイミドエステル(MBS:Ausube
l FM等, supra参照)で反応することにより、キーホールリンペットヘモシアニ
ン(KLH、Sigma)と結合させる。場合により、ペプチドのN−末端へシステ
インを導入することにより、KLHと結合させる。ウサギは、フロインド完全ア
ジュバントと結合したペプチドKLHにより免疫化する。得られた抗血清をアン
チペプチド活性について試験するが、この際、ペプチドをプラスチックに結合さ
せ、1%BSAでブロッキングし、抗血清と反応させ、洗浄し、さらに標識し(
放射線または蛍光)かつ親和性により精製した特異的なヤギ抗−ウサギIgGと
反応させる。
79〜690;713〜801;802〜1402番目のアミノ酸から成る所望
の領域または亜領域に対する抗体を製造することもできる。
ができる。目的のハイブリドーマを、標識したコリンを用いてスクリーニングす
ることにより検出し、所望の特異性を有するモノクローナル抗体を製造できるこ
れらの融合体を同定する。典型的なプロトコールにおいて、プレートのウェル(
FAST, Becton- Dickinson, Palo Alto, Calif)を、親和性により精製した特異
的ウサギ−抗−マウス(または好適な抗Ig)抗体10mg/mlで被覆する。
被覆したウェルを1%BSAでブロックし、洗浄し、ハイブリドーマの上清を添
加する。インキュベーションした後、ウェルを標識コリン1mg/mlに曝露す
る。抗体産生クローンは、前記背景によって検出可能となった標識コリンと定量
的に結合する。このようなクローンを増加させ、限界希釈(1細胞/3ウェル)
して2回のクローニングを実施する。クローン化したハイブリドーマを正常なマ
ウスへ接種して腹水を製造し、タンパクA上のアフィニティークロマトグラフィ
ーによりマウス腹水からモノクローナル抗体を精製する。少なくとも108M、
有利には109〜1010またはそれ以上の親和性を有するモノクローナル抗体
が、一般的に、通常の方法(例えばHarlowおよびLane(1988)Antibodies: A La
boratory Manual. Cold Spring Harbor LaboratoryまたはGoding (1986)Monocl
onal Antibodies: Principles and Practice第2版、編集Academic Press N. Y.
)により製造される。
的症状および慢性または急性疾患の診断に好適である。コリンの診断試験には、
抗体を使用してヒト(またはマウス等を使用する場合はマウス等)の体液、組織
(例えば心臓および軟骨組織)、そのような組織の抽出物中のコリンを検出でき
るように標識する方法をも含む。
しばしば、ポリペプチドおよび抗体を、検出可能なシグナルを提供する基質へ共
役的または非共役的に結合させることによって標識する。様々な標識および抱合
技術が公知であり、化学文献および特許明細書の両方に広く記載されている。好
適な標識には、放射性核種、酵素、基質、補因子、インヒビター、蛍光剤、化学
ルミネセンス剤、磁粒およびその類似物が含まれる。このような標識の使用につ
いて記載した明細書には、アメリカ特許明細書第3817837号;第3850
752号;3939350号;3996345号;4277437号;4275
149号;および4366241号がある。また、組み換えイムノグロブリンを
、ここで参考文献として引用しているアメリカ特許明細書第4816567号の
ようにして製造することもできる。
溶性または膜結合性コリンを測定する様々なプロトコールが、従来技術において
公知である。例えば、酵素結合免疫吸着検定法(ELISA)、ラジオイムノア
ッセイ(RIA)および蛍光活性化セルソーティング(FACS)が挙げられる
。EC上の障害のない2個のエピトープと反応するモノクローナル抗体を使用し
た2部位−モノクローナル抗体を基礎とするイムノアッセイ(two-site monoclo
nal- based immunoassay)が有利であるが、競合的結合アッセイも利用してよい
。このようなアッセイは別のところにも記載されている(Maddox, Del等(1983
)J Exp Med 158:1211)。
コリンポリペプチドレベルの定量、コリンポリペプチドの細胞局在および/また
は分布の同定、コリンポリペプチドまたはその一部から成るポリペプチドの精製
、コリンポリペプチドの機能調節のために、ウェスタンブロット、ELISA、
免疫沈降、RIA等に、治療用、診断用および市販の研究用ツールとして様々な
方法で使用できる。本発明はそのようなアッセイ、組成物およびそれらを実施す
るためのキット等に関する。記載のおよびその他の方法を利用する際、本発明の
抗体を使用して、組織、細胞、体液、血液、尿、髄液を含む様々な試料中のコリ
ンポリペプチドまたはその断片を検出する。本発明の方法は、a)従来技術にお
いて結合に有効であると考えられている条件下に、配列番号2または配列番号3
のペプチドに結合するリガンドと接触させ、b)リガンドとペプチド間の特異的
な結合を検出することから成る。特異的な結合とは、リガンドが特定のアミノ酸
配列、例えば配列番号2または配列番号3のアミノ酸配列内またはそれを含有す
るあるいはその誘導体である配列と結合することを意味する。
フィニティークロマトグラフィーにより精製できる。一般的に、イムノアフィニ
ティーカラムは、抗コリン抗体を活性化したクロマトグラフィーのレジンと共有
結合させることによって製造される。
Biotechnology, Piscataway, N. J.)上で精製することによって、免疫血清から
ポリクローナルイムノグロブリンを製造する。同様に、硫酸アンモニウム沈降ま
たは固定化タンパク質A上での精製により、マウス腹水からモノクローナル抗体
を製造する。部分的に精製したIgはクロマトグラフィーのレジン、例えばCn
Br活性化セファロース(Pharmacia LKB Biotechnology, Piscataway, N. J.)
と共有結合する。製造者の説明書に従って、抗体をレジンと結合させ、レジンを
ブロックし、誘導体化レジンを洗浄する。
ノアフィニティーカラムを使用する。該製造物は、全細胞または界面活性剤を添
加する識別遠心法によって得られた細胞画分の可溶化により、あるいは従来技術
に公知の別の方法によって得られる。また、シグナル配列を有する可溶性コリン
を、細胞が増殖している培地中に適当量分泌させてよい。
ば界面活性剤の存在する強イオン性バッファーのような条件下に洗浄し、コリン
の優先的な吸着を誘起する。次いで、抗体/コリン結合を崩壊させるような条件
(pH2〜3のバッファーまたは高濃度の変性剤、例えば尿素またはチオシアネ
ートイオン)下にカラムを溶出し、コリンを回収する。
例えば合成ペプチドライブラリーまたはアプタマー(例えばPetrung等,アメリカ
特許明細書第5143854号;Geysen等, 1987, J. Immunol. Methods, 102:
259〜274;Scott等, 1990, Science, 249:386;Blackwell等, 1990, Science,
250:1104;Tuerk等, 1990, Science, 249:505)を使用して製造することもで
きる。
る。コリンポリペプチドのレベルを単独で、またはその他の遺伝子産物と組み合
わせて測定できる。特に、コリンポリペプチドの量(例えばその発現レベル)を
同一または異種サンプル中のアクチンのような他のポルペプチド量と比較(例え
ば比として)することもできる。一般的に、コリンに特異的な試薬を所望の方法
における診断および/または法医学的研究に使用できる(例えばアメリカ特許第
5397712号;第5434050号;第5429947号)。
望の方法で製造されたコリンポリペプチドにも関する。標識されたポリペプチド
を、例えば結合アッセイに使用でき、これにより、コリンと結合または接着する
基質を同定するか、細胞、in vitro、in vivoまたはin si
tu系等中のコリンの移動を追跡する。
きる。“単離”とは、物質が元来の環境では見出すことのできない形をしている
ことを意味し、例えば更なる濃縮、更なる精製、成分からの分離等である。単離
された核酸には、例えば生物中に見出される染色体DNAから分離されたコリン
配列を有する核酸が含まれる。核酸はベクターの一部であるか、または染色体へ
挿入でき(特異的なジーンターゲティングまたは正常な位置とは異なる位置への
ランダム組込による)、その場合も元来の環境では見出すことのできない形で単
離できる:本発明の核酸またはポリペプチドを実質的に精製できる。実質的な精
製とは、核酸またはポリペプチドを分離して基本的に他の核酸またはポリペプチ
ド不含にすることを意味し、すなわち核酸またはポリペプチドは主成分でありか
つ活性成分である。
ジェニック動物、例えばヒトを除くほ乳類、例えばマウスに関する。トランスジ
ェニック動物は、例えば組み換え遺伝子のI細胞胚前核への前核インジョクショ
ン、人工酵母染色体の胚幹細胞への組込、ジーンターゲティング法、胚幹細胞法
のような公知の方法によって製造できる。アメリカ特許第4736866号;第
4873191号;第4873316号;第5082779号;第530448
9号;第5174986号;第5175384号:第5175385号;第52
21778号;Gordon等, Proc. Natl. Acad. Sci., 77:7380〜7384(1980);
Palmiter等, Cell, 41:343〜345(1985);Palmiter等, Ann. Rev. Genet., 20
:465〜499(1986);Askew等, Mol. cell. Bio., 13:4115〜4124, 1993;Game
s等, Nature, 373:523〜527, 1995;ValanciusおよびSmithies, Mol. Cell. Bi
o., 11:1402〜1408, 1991;Stacey等, Mol. Cell. Bio., 14:1009〜1016,199
4;Hasty等, Nature, 350:243〜246, 1995;Rubinstein等, Nucl. Acid Res.,
21:2613〜2617, 1993を参照。本発明の核酸をヒトでないほ乳類、例えばマウス
(Hogan等, 1986, in Manipulating the Mouse Embryo:A laboratory Manual.
Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, New York)、ブタ(Ham
mer等, Nature, 315:343〜345, 1985)、ヒツジ(Hammer等, Nature, 315:343
〜345, 1985)、牛、ラットまたは霊長類に導入できる。Church, 1987, Trends
in Biotech, 5:13〜19;Clark等, 1987, Trends in Biotech, 5:20〜24:およ
びDepamphillis等,1988, Bio Techniques, 6:662〜680も参照のこと。さらに、
慣用のトランスジェニックラットおよびマウスは市販されている。これらのトラ
ンスジェニック動物は、コリンのヘビ用の飼料としての機能、起源株を検出する
マーカーとしての機能等を試験する際の有用な動物である。このようなトランス
ジェニック動物はさらに別の導入遺伝子を含有していてよいし、またはそれをノ
ックアウトされていてよい(例えば他のセリンプロテアーゼ、ナトリウム排泄増
加性ペプチド等)。
ン遺伝子を有するか、またはコリンをノックアウトしたトランスジェニック動物
は、高血圧、腎疾患および心疾患のモデルとして有利に使用できる。Steinhelpe
r等, Hypertension, 16:301〜307,1990;John等, Am. J. Physiol., 271:R10
9〜R114,1996参照。
トに関し、これらは、細胞の染色体中の未変性のコリン遺伝子座に組み込まれた
組み換えコリン遺伝子を有する細胞を含有し、組み換えコリンポリペプチドをコ
ードするヌクレオチドコード配列を有する該組み換えコリン遺伝子は少なくとも
ひとつのアミノ酸から成り、そのアミノ酸の同一性および/または位置は、未変
性のコリン遺伝子中で自然に見られるものとは異なっている。このような組み換
え遺伝子を、例えば未変性遺伝子座におけるヒトコリンおよび宿主コリン遺伝子
間の相同的な組み換えによって製造できる。
遺伝子を少なくとも1つ有する細胞を含む、トランスジェニック動物、例えばマ
ウスまたはラットに関し、この際、該破壊により、コリン遺伝子でコードされた
コリンポリペプチドの機能発現が抑制される。機能の不活性化または破壊は、例
えば、単細胞、選択された細胞、またはあらゆるほ乳類の細胞の内因性セリンプ
ロテアーゼ遺伝子でコードされたポリペプチドの少なくとも一部の発現が部分的
にまたは完全に抑制されていることを意味する。このような抑制は、プロ−AN
F変換酵素活性の減少も同時に引き起こし、これにより生理化学的に活性なAN
Fが低下する。“ノックアウト”とは、遺伝子の機能的不活性化と同義である。
促進するジーンターゲティング法が利用される。ジーンターゲティング法は有利
には、二重相互組み換えおよび標的核酸へのヌクレオチド配列の挿入を助成する
ポジティブな選択マーカーを使用する。標的核酸は有利に遺伝子、より有利には
特定の染色体遺伝子座に位置する遺伝子である。所望のヌクレオチド配列を、遺
伝子が機能的に抑制される、すなわち発現が部分的にまたは完全に抑制される方
法で、遺伝子に挿入する。
み換えによって実施してよい。後者をコリン遺伝子の抑制、コリン遺伝子への遺
伝子突然変異の導入、DNAの挿入または欠失等のために使用する。相同組み換
えに効果的な配列の選択および使用について、例えばDengおよびCapecchi, Mol.
Cell. Bio.,12:3365〜3371, 1992:Bollag等, Annu. Rev. Genet., 23:199〜
225, 1989;WaldmanおよびLiskay, Mol. Cell. Bio., 8:5350〜5357,1988:Rub
instein等,Nucl. acid. Res.,21:2613〜2617, 1993; WO94/23049:
WO95/14377に記載されている。
全に抑制できる。また、コリンの特異的領域を修飾してもよい。例えば、ヒトコ
リン遺伝子の約802〜1042番目のアミノ酸の触媒ドメイン、またはマウス
遺伝子の相当の位置を、組み換えにより遺伝子的に変化させて、無活性、強活性
、弱活性を含む活性の修飾されたコリンを製造してよい。
969号、第5506133号、第5441870号;WO90/00607;
WO91/15582号に記載されるようにして製造および使用する。
学または免疫学に関する標準的な教科書を参考文献に挙げることができる。Davi
s等(1986), Basic Methods in Molecular Biology, Elsevir Sciences Publishi
ng, Inc., New York;Hames等(1985),Nucleic Acid Hybridization, IL Press
, Molecular Cloning, Sambrook等;Current Protocols in Molecular Biology,
F. M. Ausubel等による編集, John Wiley & Sons, Inc.;Current Protocols i
n Human Genetics, Nicholas C. Dracopoli等による編集, John Wiley & Sons,
Inc.; Current Protocols in Protein Science:Jhon E. Coligan等による編集.
,John Wiley & Sons, Inc.;Current Protocols in Immunology;Jhon E. Colig
an等による編集.,John Wiley & Sons, Inc.参照。
て分析したところ、部分的なEST配列が一致した。クローン(307474)
をIncyte社に注文した。クローンからの2.1kbのEcoRI−Xho
I断片をヒトの心臓cDNAライブラリー(Clontech)をスクリーニングするた
めに使用した。in vivoにおいて、ポジティブなファージクローンの1つ
から、3.8kbの挿入部位を有するファージミド14b2を得た。ファージミ
ド14b2に由来するオリゴプライマーを使用し、マラソンレディー(marathon
- ready)なヒト心臓cDNA(Clontehch)を鋳型として用い、さらにクローン
5=末端cDNA配列を回収する。PCR産物をpCRIIベクター(Invitrog
en)へクローン化し、配列を決定する。全長(すなわち開始コドンと終止コドン
とを有する)ヒトコリンcDNA配列を、GCGDNA配列分析パッケージを使
用し、5′−RACEとファージミドに由来する配列を組み合わせることで獲得
する。
断片を、ランダムプライマーラベリングキット(Boehringer)を使用し、32P
−dCTPで標識した。ヒト多組織ノーザンブロットI、ヒト多組織ノーザンブ
ロットII、ヒト筋肉ノーザンブロットフィルター(Clontech)を、標識したヒ
トコリンcDNAプローブとハイブリダイズさせた。ノーザンハイブリダイゼー
ションを42ECで40%ホルムアルデヒド、5Xデンハルツ溶液(Denhardts
solution)、6×SSC、鮭の精子DNA100μg/ml、0.1%SDSを
用いて一晩実施した。フィルターを、0.2×SSC、0.1%SDSを用いて6
0ECで洗浄し、フジイメージングプレート(Fuji imaging plates)へ曝露し
た。
スの心臓のcDNAライブラリーをClontechより購入し、PCR増幅のテンプレ
ートとして使用した(1.5分−55ECでのアニーリング、1.5分−72EC
での伸長、1分−94ECでの変性を30サイクル)。PCRプライマーの配列
は、ヒトコリンcDNA配列を基礎とする。マウスcDNAの増幅に使用したプ
ライマーには以下が含まれる:
CR反応由来のプラスミドクローンを次ぎのシークエンスに使用した。マウスお
よびヒトコリンcDNAは、配列の85%が一致している。
ion kit (Oligotex Direct mRNA Mini Kits, QIAGEN))を使用して、 Hec−
1−A、U2−OS、SK−LMS−1およびAN3−CA細胞から単離した。
最初に鎖状cDNAを、SuperScriptII RNase逆転写酵素(Life Technologies
)を使用して合成した。ヒトコリン特異的オリゴヌクレオチドプライマー(セン
スプライマー:
pの断片を増幅した。ヒトグリセルアルデヒド−3−ホスフェートデヒドロゲナ
ーゼ(GAPDH)遺伝子に由来するオリゴヌクレオチドプライマーTFR1:
mer, model 480)で実施した。PCR産物を1%アガロースゲル上で分離し、エ
チジウムブロマイド染色により視覚化した。
分をキシレン中で脱パラフィン処理し、再度水和物とし、4%パラホルムアルデ
ヒド中に固定した。組織をプロテイナーゼK(20mg/ml)で分解し、トリ
エタノールアミン/無水酢酸で処理し、脱水した。コード領域に由来する800
bpのマウスコリンcDNA断片を、プラスミドpM11およびpM41を得る
ために、2方向でpCRII(Invitrogen)中にクローン化した。プラスミドを
、HindIII切断により直線化した。センスおよびアンチセンスプローブを
、T7RNAポリメラーゼ(T7/SP6転写キット、Boehirnger Mannharim)
を使用して製造し、[33P]UTP(Amersham)で標識した。ハイブリダイゼー
ションを(14)に記載されるようにして実施した。スライドを脱水し、Kodak
社製NTB−2エマルジョンに浸し、遮光性の箱の中に4℃で4週間放置した。
現像をKodak社製D−19現像装置中で実施した。スライドをヘモトキシンとエ
オシンとで染色し、ツァイスの顕微鏡の光学レンズおよび暗視野レンズの両方を
使用して分析した。
遺伝子を含むP1ファージクローンを、ヒトコリンcDNAをプローブとして使
用したフィルターハイブリダイゼーションにより単離した。ヒトコリンcDNA
由来のプライマーを使用したDNAシークエンスにより、1つのクローンを確認
した。このP1ファージに由来するDNA断片をジゴキシゲニン−dUTPで標
識した。標識したプローブを切断したヒトDNAと結合させ、50%ホルムアル
デヒド、10%硫酸デキストランおよび2×SSCを含む溶液中のPHA−刺激
抹消血液リンパ球に由来する中期染色体とハイブリダイズさせた。ハイブリダイ
ゼーションシグナルを、蛍光標識抗ジゴキシゲニン抗体により検出し、DAPI
(4,6−ジアミノイジノ−2−フェニルインドール)で対比染色した。合計8
0個の中期細胞のうち74細胞は特異的に標識されたという結果が分析された。
(アミノ酸802〜1042)のモデルを、ホモロジープログラム(Insight II
, 1995, MSI, San Diego, CA)を使用し、18Åの解像度(15,16)で、牛
キモトリプシノーゲンA構造を基礎として設計した。非同一側鎖置換に回転異性
体を使用した(16)。ループ挿入のための座標をブルックハーベンのタンパク
質データバンクから獲得した(17)。距離依存的な誘電率を有するAMBER
力場(Discover 95.0)を使用したエネルギーの最小化によりモデルを精製した
。最小化には、最急降下法および共役勾配法(conjugate gradient method)を
利用する:まず、挿入と欠失が見られる場所に限ったループに関して、次いで側
鎖に関して、最小化の最後にはCa原子を固定した状態にする。テンプレート構
造の酵素トライアドに相当するコリン残基(His843、Asp892および
Ser985)も固定されたままである。
セイした。293細胞は、pro−ANFおよびコリン発現プラスミドを同時に
形質移入されている。pro−ANF発現プラスミドおよびヘプシンまたはプロ
トロンビン発現プラスミドを同時に293細胞に形質移入し、2個の別の細胞系
を構築した。ANFに対する抗体を使用したウェスタンブロットで立証されたよ
うに、コリンを発現した細胞のみがpro−ANFをANFに変換した。
リンポリペプチドを発現する細胞と接触させた。この場合も、pro−ANFは
ANFへと変換された。ヘプシンまたはプロトロンビンを発現するコントロール
の細胞は、pro−ANFに対する効果を有さない。
。前記の有利でありかつ特異的な実施態様は、従って、詳細な記載でしかなく、
他の記載を限定するものではない。
用した全記載は、記載したことにより、参考文献として全てを組み込んだものと
し、これにはユニジーンPubESTおよびGenbBankデータベース由来
の核酸断片を含む: Hs.62794(AA126468[1686098]、
AA126648[1686206]、AA625395[2537780]、AA
046682[1524579]、AA249850[1881137]、およびH
s.71798(AA147031[1716421]);Hs.121626(A
A771958)、Hs.1657(M69297)、およびHs.47712(
AA203291)、g1231787;g1312726;g1337948
;およびg942724。
よび目的を離れることなく、用途および条件に適するように本発明を様々に変化
修飾することができる。 配列表
。
コリンCrd2)とFrizzled、Fz−1およびlin−17のアミノ酸
配置を示す図である。
配置とヒトLDLRの共通配列を示す図である。
パク質に存在するセリンプロテアーゼのアミノ酸配列の配置を示す図である。K
ALはカリクレイン、ENTKはエンテロキナーゼ、TRP1はトリプシンであ
る。
Claims (44)
- 【請求項1】 Hs.62794(AA126468[1686098]、A
A126648[1686206]、AA625395[2537780]、AA0
46682[1524579]、AA249850[1881137]、またはAA
046793[1524691])、またはHs.71798(AA147031[
1716421])のポリペプチドを含まない、単離されたほ乳類コリンポリペ
プチドの全長、またはその生物学的に活性なポリペプチド断片。 - 【請求項2】 ポリペプチドが、セリンプロテアーゼ触媒活性ドメインまた
はコリンに特異的な免疫原活性を有する、請求項1記載の単離されたほ乳類コリ
ンポリペプチドの全長、またはその生物学的に活性な断片。 - 【請求項3】 ヒトに由来する、請求項1記載の単離されたほ乳類コリンの
全長、またはその生物学的に活性な断片。 - 【請求項4】 マウスに由来する、請求項1記載の単離されたほ乳類コリン
の全長、またはその生物学的に活性な断片。 - 【請求項5】 ヒトに由来し、配列番号2に記載されるアミノ酸1〜アミノ
酸1042を含有する、請求項1記載の単離されたほ乳類コリンの全長。 - 【請求項6】 マウスに由来し、配列番号4に記載されるアミノ酸1〜アミ
ノ酸1113を含有する、請求項1記載の単離されたほ乳類コリン。 - 【請求項7】 ヒトに由来し、配列番号1に記載されるDNA配列によって
コードされる、請求項1記載の単離されたほ乳類コリンの全長。 - 【請求項8】 マウスに由来し、配列番号3に記載されるDNA配列によっ
てコードされる、請求項1記載の単離されたほ乳類コリンの全長。 - 【請求項9】 非常にストリンジェントな条件下に配列番号1記載のDNA
配列とハイブリダイズする天然産出の核酸配列によってコードされ、ヒトに由来
する、請求項1記載の単離されたほ乳類コリンの全長。 - 【請求項10】 非常にストリンジェントな条件下に配列番号3記載のDN
A配列とハイブリダイズする天然産出の核酸配列によってコードされ、マウスに
由来する、請求項1記載の単離されたほ乳類コリン。 - 【請求項11】 Hs.62794(AA126468[1686098]、
AA126648[1686206]、AA625395[2537780]、AA
046682[1524579]、AA249850[1881137]、またはA
A046793[1524691])、またはHs.71798(AA14703
1[1716421])の核酸を含まない、単離されたほ乳類コリンポリペプチド
の全長、またはその生物学的に活性なポリペプチド断片をコードするヌクレオチ
ド配列を有する、単離された核酸またはクローニングベクター中に存在する任意
の該核酸。 - 【請求項12】 ポリペプチドをコードする核酸が、セリンプロテアーゼ触
媒活性またはコリンに特異的な免疫原活性を有する、請求項11記載の単離され
た核酸。 - 【請求項13】 ヒトに由来する、請求項11記載の単離された核酸。
- 【請求項14】 ヌクレオチド配列が、配列番号2記載のアミノ酸1〜アミ
ノ酸1042をコードする、請求項11記載の単離された核酸。 - 【請求項15】 ヌクレオチド配列が、配列番号4記載のアミノ酸1〜アミ
ノ酸1113をコードする、請求項11記載の単離された核酸。 - 【請求項16】 配列番号1記載のヌクレオチド配列を有する、請求項11
記載の単離された核酸。 - 【請求項17】 配列番号3記載のヌクレオチド配列を有する、請求項11
記載の単離された核酸。 - 【請求項18】 配列番号1記載のヌクレオチド配列から選択され、本質的
に連続した任意の12〜100塩基対配列を有する、単離された核酸またはそれ
に相補的な核酸。 - 【請求項19】 配列番号3記載のヌクレオチド配列から選択され、本質的
に連続した任意の12〜100塩基対配列を有する、単離された核酸またはそれ
に相補的な核酸。 - 【請求項20】 さらに検出可能な標識を有する、請求項18記載の単離さ
れた核酸配列。 - 【請求項21】 配列中で少なくとも1個より多くの、かつ5個を越えない
ヌクレオチドが置換されており、非常にストリンジェントな条件下に配列番号1
記載のヌクレオチド配列とハイブリダイズする、請求項18記載の単離された核
酸またはそれに相補的な核酸。 - 【請求項22】 Hs.62794(AA126468[1686098]、
AA126648[1686206]、AA625395[2537780]、AA
046682[1524579]、AA249850[1881137]、またはA
A046793[1524691])、またはHs.71798(AA14703
1[1716421])の核酸を含まず、非常にストリンジェントな条件下に配列
番号1記載のヌクレオチド配列とハイブリダイズする、天然に産出するヌクレオ
チド配列を有する、請求項11記載の単離された核酸。 - 【請求項23】 Hs.62794(AA126468[1686098]、
AA126648[1686206]、AA625395[2537780]、AA
046682[1524579]、AA249850[1881137]、またはA
A046793[1524691])、またはHs.71798(AA14703
1[1716421])の核酸を含まず、非常にストリンジェントな条件下に配列
番号3記載のDNA配列とハイブリダイズする、天然に産出するヌクレオチド配
列を有する、請求項11記載の単離された核酸。 - 【請求項24】 ヌクレオチド配列が発現制御配列と操作可能に結合してい
る、請求項11記載の単離された核酸。 - 【請求項25】 核酸が、中断されることなく該ポリペプチドをコードして
いる、請求項11記載の単離された核酸。 - 【請求項26】 さらに検出可能な標識を有する、請求項11記載の単離さ
れた核酸。 - 【請求項27】 Hs.62794(AA126468[1686098]、
AA126648[1686206]、AA625395[2537780]、AA
046682[1524579]、AA249850[1881137]、またはA
A046793[1524691])、またはHs.71798(AA14703
1[1716421])の核酸を含まず、配列番号1記載のヌクレオチド配列と少
なくとも95%のヌクレオチド配列同一性を有する、請求項22記載の単離され
た核酸。 - 【請求項28】 ポリペプチドを効果的に発現できる条件下に、請求項9記
載の核酸を有する形質転換した宿主細胞を培養することから成る、核酸でコード
されたヒトコリンを形質転換させた宿主細胞中で発現させる方法。 - 【請求項29】 宿主細胞がほ乳類由来である、請求項28記載の方法。
- 【請求項30】 さらに、該ポリペプチドを有する該宿主細胞の膜分画の単
離を含む、請求項28記載の方法。 - 【請求項31】 請求項28記載の方法で製造される、単離したポリペプチ
ド。 - 【請求項32】 請求項7記載の核酸を有する、形質転換された宿主細胞。
- 【請求項33】 請求項7記載の核酸を有する、ベクター。
- 【請求項34】 試験化合物の存在下に、ポリペプチドが基質を効果的に切
断できる条件で、ほ乳類コリンポリペプチドとセリンプロテアーゼの基質とを反
応させ; 切断を検出し; 試験化合物の存在および不在下での切断量を比較することにより、試験化合物が
セリンプロテアーゼ活性を調節するかどうかを確認する; ことから成る、ほ乳類コリンポリペプチド活性のセリンプロテアーゼ触媒活性モ
ジュレーターの同定法。 - 【請求項35】 基質が色素原であり、該基質の切断により検出可能な色が
出現する、請求項34記載の方法。 - 【請求項36】 ほ乳類コリンポリペプチドが組み換え体である、請求項3
4記載の方法。 - 【請求項37】 ほ乳類コリンポリペプチドが、配列番号2記載のアミノ酸
1〜アミノ酸1042を有する、請求項34記載の方法。 - 【請求項38】 ほ乳類コリンポリペプチドが、配列番号1記載の核酸配列
の配列を有する、請求項34記載の方法。 - 【請求項39】 ほ乳類コリンポリペプチドが、配列番号4記載のアミノ酸
1〜アミノ酸1113を有する、請求項34記載の方法。 - 【請求項40】 ほ乳類コリンポリペプチドが、配列番号3記載の核酸配列
の配列を有する、請求項34記載の方法。 - 【請求項41】 基質がpro−ANFである、請求項34記載の方法。
- 【請求項42】 ヒトまたはマウスのコリンに特異的である、単離された抗
体。 - 【請求項43】 配列番号2から選択されるアミノ酸配列に結合する、請求
項42記載の単離された抗体。 - 【請求項44】 配列番号4から選択されるアミノ酸配列に結合する、請求
項42記載の単離された抗体。
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