JP2001054389A - 新規なｇ蛋白質共役型レセプター - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 【課題】創薬標的分子としての可能性が非常に高い、新
規Ｇ蛋白質共役型レセプターファミリーをコードする遺
伝子を単離・同定し、それらの活性を修飾する物質を探
索するために必要となる組換え蛋白の提供。 【解決手段】中枢神経系に発現している新規なＧ蛋白質
共役型レセプターをコードする遺伝子を単離し、全長OR
F配列を決定して、該Ｇ蛋白質共役型レセプターファミ
リーを発現させた。該レセプターの遺伝子を含むベクタ
ー、該ベクターを含む宿主細胞、該宿主細胞を用いた同
Ｇ蛋白質共役型レセプターファミリーの製造法、及び、
該Ｇ蛋白質共役型レセプターファミリー及び該Ｇ蛋白質
共役型レセプターファミリーを修飾する化合物、ペプチ
ド及び抗体のスクリーニング法を提供する。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】

【発明が属する技術分野】本発明は、遺伝子工学の分野
に属し、新規Ｇ蛋白質共役型レセプター、該Ｇ蛋白質共
役型レセプターをコードする遺伝子、該Ｇ蛋白質共役型
レセプターの製造方法、該Ｇ蛋白質共役型レセプターに
対する抗体、該Ｇ蛋白質共役型レセプターを用いたスク
リーニング法に関するものである。

【０００２】

【従来の技術】医学的に重要な生物学的プロセスの多く
が、Ｇ蛋白質を含めたシグナル伝達経路に関与している
蛋白質及び／またはセカンドメッセンジャーにより媒介
されることはよく知られている (Lefkowitz, Nature, 1
991, 351:353-354) 。その中でも三量体型GTP結合蛋白
質の活性化を介して細胞内にシグナルを伝達する細胞膜
レセプター群は「Ｇ蛋白質共役型レセプター」と総称さ
れている。こうした蛋白質の例として、アドレナリンや
ドーパミンの受容体(Kobilka, B.K.ら, Proc. Natl. Ac
ad. Sci. USA, 1987, 84:46-50; Kobilka, B.K.ら, Sci
ence, 1987, 238:650-656; Bunzow, J.R.ら, Nature, 1
988, 336:783-787)などがある。現在まで知られている
全てのＧ蛋白質共役型レセプターはアミノ末端を細胞
外、カルボキシル末端を細胞内とし、細胞膜を7回貫通
する構造を共有するスーパーファミリーを形成している
ことから「7回膜貫通型レセプター」と総称される場合
もある。Ｇ蛋白質共役型レセプターは様々な生理活性物
質の情報を、三量体型GTP結合蛋白質の活性化、それに
より引き起こされる細胞内セカンドメッセンジャーの変
動を介して細胞膜から細胞内へと伝達する。三量体型GT
P結合蛋白質により制御される細胞内セカンドメッセン
ジャーは、アデニレートシクラーゼを介するcAMP、フォ
スフォリパーゼCを介するCa⁺⁺などがよく知られている
が、三量体型GTP結合蛋白質を介したチャネルの制御、
リン酸化酵素の活性化など多くの細胞蛋白がその標的と
なっていることが最近明らかとなってきた（Gudermann,
T. et al. (1997) Annu. Rev. Neurosci., 20, 399-42
7）。Ｇ蛋白質共役型レセプターを介して情報を伝達す
る生理活性物質の中には、神経伝達物質、ホルモン、ケ
モカイン、脂質由来の情報伝達物質、2価イオン、プロ
テアーゼなど既存の生理活性物質の多くが含まれる。こ
れら生理活性物質にはそれぞれ特異的なＧ蛋白質共役型
レセプターが存在し、その情報を細胞内に伝達する。

【０００３】Ｇ蛋白質共役型レセプターはそのスーパー
ファミリー内での構造類似性から遺伝子のクローニング
が先行する場合も多く、内在性リガンドとの対応がとれ
ていないレセプターはオーファンＧ蛋白質共役型レセプ
ターと呼ばれている。一般的にオーファンＧ蛋白質共役
型レセプターは特異的なリガンドが発見されていないた
め、そのアゴニスト、アンタゴニストを開発することは
困難であった。しかし、近年、充実された化合物ライブ
ラリーと高性能ハイスループットスクリーニングを組み
合わせることで、オーファンＧ蛋白質共役型レセプター
をターゲットとした薬剤の創製が提唱されている（Stad
el, J. et al. (1997) Trends Pharmacol. Sci., 18, 4
30-437）。すなわち、多くのＧ蛋白質共役型レセプター
のセカンドメッセンジャーとなっているcAMP、Ca⁺⁺の測
定、或いは、三量体型GTP結合蛋白質の活性化の指標と
なるGTPase活性、GTPγSのＧ蛋白質結合測定などをハイ
スループット化することで化合物ライブラリーからオー
ファンＧ蛋白質共役型レセプターに対するアゴニストを
スクリーニングすることが可能であり、その化合物を利
用した特異的なアゴニスト及びアンタゴニストの発見、
ひいては特定の疾患治療薬の開発が可能であるというこ
とである。このような状況下では、新しい疾患の治療タ
ーゲットとなり得る新規Ｇ蛋白質共役型レセプターの発
見が、Ｇ蛋白質共役型レセプターに作用する薬剤創製の
最も重要なステップと見なすことができる。

【０００４】現在までに数百種類のＧ蛋白質共役型レセ
プターが真核生物からクローニングされている。ヒトに
関しては百種類以上の内在性リガンドとの対応がとれた
Ｇ蛋白質共役型レセプターがクローニングされている。
これまでにそれらの受容体をターゲットとする数百種類
もの疾患治療薬が利用されている（Wilson, J. et al.
(1998) British J. of Pharmacol. 125, 1387-1392）。
Ｇ蛋白質共役型レセプターが標的となっている疾患は多
岐にわたり、中枢神経系、循環器系、炎症免疫系、消化
器系、運動器系、泌尿器生殖器系それぞれの分野でＧ蛋
白質共役型レセプターに作用する有効な薬剤が存在する
（Stadel, J. et al. (1997) Trends Pharmacol. Sci.,
18, 430-437）。このことはＧ蛋白質共役型レセプター
のアゴニスト或いはアンタゴニストが疾患の治療剤とな
る可能性が高いことを示唆し、各種疾患を予防、改善、
治療する上で重要な役割を果たすと考えられる新たな受
容体を同定し、疾患との関わりを解明する必要がある。

【０００５】この中で、特に中枢神経系は、神経伝達物
質に代表される生理活性物質を用いて様々な情報を伝達
・制御しており、その情報の伝達・制御にＧ蛋白質共役
型レセプターが重要な役割を果たしている。多くの種類
のＧ蛋白質共役型レセプターが中枢神経系に存在してい
るため、それらは中枢神経系の疾患の重要な治療ターゲ
ットとなっている。例えば、神経伝達物質ドーパミンの
Ｇ蛋白質共役型レセプターは精神分裂病（Seeman, P. e
t al. (1997) Neuropsychopharmacology, 16,93-11
0）、セロトニンのＧ蛋白質共役型レセプターは鬱病（C
owen, P. J. (1991) Br. J. Psychiatry, 159 (Suppl.
12), 7-14）、ニューロペプチドYのＧ蛋白質共役型レセ
プターは摂食障害（Blomqvist, A. G. and Herzog, H.
(1997) Trends Neurosci., 20, 294-298）の治療ターゲ
ットであると考えられている。また、Ｇ蛋白質共役型レ
セプターは炎症免疫系においても重要な役割を果たして
いる。炎症、免疫反応は生体への異物の進入や組織障害
から自身を防御する為の有益な働きをしているが、一方
で、その過剰な反応や異常な反応が炎症性疾患や自己免
疫疾患などの原因ともなる（Gallin, J. I. et al. (19
92) Inflammation Basic Principles and Clinical Cor
relates Raven Press(New York), Roitt, I.M. et al.
(1993) IMMUNOLOGY Mosby-Year Book Europe Limited.
(London)）。これらの炎症免疫反応を惹起する物質の
多くはメディエーターと呼ばれている。メディエーター
のなかでもプロスタグランジン、ロイコトリエン、血小
板活性化因子、ケモカイン、ブラジキニン、アナフィラ
トキシンなどのＧ蛋白質共役型レセプターを介して働く
ものの多くが炎症、免疫の異常に起因する疾患（例え
ば、喘息、アレルギー、リウマチ性関節炎、炎症性腸疾
患、感染症など）の治療ターゲットとして考えられてい
る（Halushka, P. V. et al. (1989) Annu. Rev. Pharm
acol. Toxicol. 29, 213-239, Hosford, D. et al. (19
90) Prog. Med. Chem.27, 325-380, Oppenheim, J. J.
et al. (1991) Annu. Rev. Immunol. 9, 617-648）。免
疫、炎症反応を司る白血球の機能は、ケモカイン、アナ
フィラトキシン、PAFやエイコサノイドなどの脂質代謝
物、などの受容体であるＧ蛋白質共役型レセプターによ
って制御されている。また、白血球の産生するPAFやエ
イコサノイドなどの脂質代謝物は白血球周囲の組織の受
容体を介して修飾を受ける（麻生芳郎 訳、一目でわか
る免疫学(1993)、メディカル・サイエンス・インターナ
ショナル発行、62-73、Proost, P. et al. (1996) Int.
J. Clin. Lab. Res. 26, 211-23, Scott, D. T. et a
l. (1994) Gen. Pharmacol. 25, 1285-96）。このよう
なことから、ケモカイン、アナフィラトキシン、PAFや
エイコサノイドのＧ蛋白質共役型レセプターは免疫、炎
症の異常に起因する疾患の治療ターゲットであると考え
られている。しかしながら、中枢神経系の疾患及び／ま
たは免疫炎症の異常に起因する疾患（これらに限らな
い）に関与するＧ蛋白質共役型レセプターとそれに作用
する分子について全てが理解されたわけではない。

【０００６】

【発明が解決しようとする課題】Ｇ蛋白質共役型レセプ
ターが標的となっている疾患、特に中枢神経系の疾患
（精神分裂病、パーキンソン病、疼痛）の予防・治療剤
の開発に必要な、新規なＧ蛋白質共役型レセプターファ
ミリーをコードする遺伝子を単離・同定し、該レセプタ
ーの発現生産系の構築、該レセプター活性を修飾する物
質を探索する為の組み換え蛋白を提供することを目的と
する。

【０００７】

【課題を解決するための手段】このような状況下、本発
明者らは鋭意研究を重ねた結果、中枢神経系に関与する
部位に発現している新規Ｇ蛋白質共役型レセプターをコ
ードする遺伝子を単離することに成功し、その全長ORF
(open reading frame)を決定した。さらに、新規Ｇ蛋白
質共役型レセプターを発現させ、組み換え蛋白の生産を
可能にし、該遺伝子を含むベクター、該ベクターを含む
宿主細胞、該宿主細胞を用いた同Ｇ蛋白質共役型レセプ
ター、該Ｇ蛋白質共役型レセプターに対する抗体の製造
法を確立した。これにより、該Ｇ蛋白質共役型レセプタ
ー及び該Ｇ蛋白質共役型レセプター活性を修飾する物質
のスクリーニングを可能にし、本発明を完成した。

【０００８】即ち本発明は、（１）配列番号２記載のア
ミノ酸配列を有するＧ蛋白質共役型レセプター、あるい
は、該レセプターの同効物であるＧ蛋白質共役型レセプ
ター、（２）（１）記載のＧ蛋白質共役型レセプターの
アミノ酸配列をコードする遺伝子、（３）（２）記載の
遺伝子を含むベクター、（４）（３）記載のベクターを
含む宿主細胞、（５） （４）記載の宿主細胞を用いる
（１）に記載のＧ蛋白質共役型レセプターの製造方法、
（６）（１）記載のＧ蛋白質共役型レセプターに対する
抗体、（７）（１）に記載のＧ蛋白質共役型レセプター
と被験化合物とを接触させ、当該Ｇ蛋白質共役型レセプ
ターの活性を修飾する物質をスクリーニングする方法、
に関する。

【０００９】

【発明の実施の形態】以下、本発明で使用される用語に
つき説明する。本明細書中で使用される「Ｇ蛋白質共役
型レセプター」は「Ｇ蛋白質共役型レセプター蛋白」を
表す。本発明のＧ蛋白質共役型レセプターの「同効物」
とは、配列番号２記載のアミノ酸配列中のいずれかの１
乃至複数個の部位において、１乃至数個のアミノ酸残基
が置換、欠失、及び／または挿入されていてもよく、か
つ該Ｇ蛋白質共役型レセプターと同一の活性を示すＧ蛋
白質共役型レセプターをいう。好ましくは配列番号２記
載のアミノ酸配列において１乃至１０個、更に好ましく
は１乃至７個、特に好ましくは１乃至５個のアミノ酸で
アミノ酸の置換、欠失または挿入があるアミノ酸配列を
有し、かつ、配列番号２記載のアミノ酸配列で示される
蛋白質と同一の活性を有するＧ蛋白質共役型レセプター
蛋白質であり、配列番号２記載のアミノ酸配列を有する
ポリペプチドが最適である。

【００１０】また、本発明の新規Ｇ蛋白質共役型レセプ
ター蛋白質をコードする塩基配列を有する遺伝子は、配
列番号２記載のアミノ酸配列で示されるＧ蛋白質共役型
レセプター蛋白質、あるいは、それらの同効物をコード
する塩基配列を有する遺伝子なら何れでもよい。好まし
くは、配列番号２記載のアミノ酸配列をコードする塩基
配列を有する遺伝子である。さらに好ましくは、配列番
号１記載の塩基配列の１番目から1002番目を有する遺伝
子である。

【００１１】（製造法）本発明のＧ蛋白質共役型レセプ
ターをコードする遺伝子、本発明のベクター、本発明の
宿主細胞、本発明のＧ蛋白質共役型レセプター、本発明
のＧ蛋白質共役型レセプターの活性を修飾する物質のス
クリーニング方法、Ｇ蛋白質共役型レセプターに反応す
る抗体の製造方法は、以下１）〜４）に記載する。

【００１２】１）新規Ｇ蛋白質共役型レセプター遺伝子
の製造方法 a）第１製造法 本発明のＧ蛋白質共役型レセプターを産生する能力を有
するヒト細胞あるいは組織からmRNAを抽出する。次いで
このmRNAを鋳型として該Ｇ蛋白質共役型レセプターmRNA
または一部のmRNA領域をはさんだ２種類のプライマーを
作製する。denature温度、変性剤添加条件などを改良
し、本発明の配列番号２で表されるアミノ酸配列の一部
を含む蛋白質に適した逆転写酵素−ポリメラーゼ連鎖反
応（以下RT-PCRという）を行うことにより、該Ｇ蛋白質
共役型レセプターcDNAまたはその一部を得ることができ
る。さらに、得られたＧ蛋白質共役型レセプターcDNAま
たはその一部を適当な発現ベクターに組み込むことによ
り、宿主細胞で発現させ、該レセプターを製造すること
ができる。まず、本発明のＧ蛋白質共役型レセプターの
産生能力を有する細胞あるいは組織、例えばヒト脾臓か
ら該レセプターをコードするものを包含するmRNAを既知
の方法により抽出する。抽出法としては、グアニジン・
チオシアネート・ホット・フェノール法、グアニジン・
チオシアネート−グアニジン・塩酸法等が挙げられる
が、好ましくはグアニジン・チオシアネート塩化セシウ
ム法が挙げられる。該レセプターの産生能力を有する細
胞あるいは組織は、該レセプターをコードする塩基配列
を有する遺伝子あるいはその一部を用いたノーザン ブ
ロッティング法、該レセプターに特異的な抗体を用いた
ウエスタン ブロッティング法などにより特定すること
ができる。

【００１３】mRNAの精製は常法に従えばよく、例えばmR
NAをオリゴ（ｄＴ）セルロースカラムに吸着・溶出さ
せ、精製することができる。さらに、ショ糖密度勾配遠
心法等によりmRNAをさらに分画することもできる。ま
た、mRNAを抽出せずとも、市販されている抽出済mRNAを
用いても良い。次に、精製されたmRNAをランダムプライ
マー又はオリゴｄＴプライマーの存在下で、逆転写酵素
反応を行い第１鎖cDNAを合成する。この合成は常法によ
って行うことができる。得られた第１鎖cDNAを用い、目
的遺伝子の一部の領域をはさんだ２種類のプライマーを
用いてPCRに供し、目的とする新規Ｇ蛋白質共役型レセ
プターDNAを増幅する。得られたDNAをアガロースゲル電
気泳動等により分画する。所望により、上記DNAを制限
酸素等で切断し、接続することによって目的とするDNA
断片を得ることもできる。

【００１４】b）第２製造法 本発明の遺伝子は上述の製造法の他、常法の遺伝子工学
的手法を用いて製造することもできる。まず、前述の方
法で得たmRNAを鋳型として逆転写酵素を用いて１本鎖cD
NAを合成した後、この１本鎖cDNAから２本鎖cDNAを合成
する。その方法としてはＳ１ヌクレアーゼ法（Efstrati
adis, A. et al. (1976) Cell, 7, 279-288)、Land法(L
and, H. et al. (1981) Nucleic Acids Res., 9, 2251-
2266)、O. Joon Yoo法(Yoo, O. J. et al. (1983) Pro
c. Natl. Acad. Sci. USA, 79, 1049-1053)、Okayama-B
erg法(Okayama, H. and Berg, P. (1982) Mol. Cell. B
iol., 2, 161-170)などが挙げられる。次に、上述の方
法で得られる組換えプラスミドを大腸菌、例えばDH5α
株に導入して形質転換させて、テトラサイクリン耐性あ
るいはアンピシリン耐性を指標として組換体を選択する
ことができる。宿主細胞の形質転換は、例えば、宿主細
胞が大腸菌の場合にはHanahanの方法(Hanahan, D. (198
3) J. Mol. Biol., 166,557-580)、すなわちCaCl₂やMgC
l₂またはRbClを共存させて調製したコンピテント細胞に
該組換えDNA体を加える方法により実施することができ
る。なお、ベクターとしてはプラスミド以外にもラムダ
系などのファージベクターも用いることができる。

【００１５】上記により得られる形質転換株から、目的
の新規Ｇ蛋白質共役型レセプターのDNAを有する株を選
択する方法としては、例えば以下に示す各種方法を採用
できる。 合成オリゴヌクレオチドプローブを用いるスクリー
ニング法 本発明のＧ蛋白質共役型レセプターの全部または一部に
対応するオリゴヌクレオチドを合成し（この場合コドン
使用頻度を用いて導いたヌクレオチド配列または考えら
れるヌクレオチド配列を組合せた複数個のヌクレオチド
配列のどちらでもよく、また後者の場合、イノシンを含
ませてその種類を減らすこともできる）、これをプロー
ブ（³²P又は³³Pで標識する）として、形質転換株のDNA
を変性固定したニトロセルロースフィルターとハイブリ
ダイズさせ、得られたポジティブ株を検索して、これを
選択する。 ポリメラーゼ連鎖反応により作製したプローブを用
いるスクリーニング法 本発明のＧ蛋白質共役型レセプター蛋白質の一部に対応
するセンスプライマーとアンチセンスプライマーのオリ
ゴヌクレオチドを合成し、これらを組合せてポリメラー
ゼ連鎖反応(Saiki, R. K. et al. (1988) Science 239,
487-491)を行い、目的のＧ蛋白質共役型レセプター蛋
白質の全部又は一部をコードするDNA断片を増幅する。
ここで用いる鋳型DNAとしては、該Ｇ蛋白質共役型レセ
プター蛋白質を産生する細胞のmRNAより逆転写反応にて
合成したcDNA、またはゲノムDNAを用いることができ
る。このようにして調製したDNAを断片を³²P又は³³Pで
標識し、これをプローブとして用いてコロニーハイブリ
ダイゼーションまたはプラークハイブリダイゼーション
を行うことにより目的のクローンを選択する。

【００１６】 他の動物細胞で新規Ｇ蛋白質共役型レ
セプター蛋白質を産生させてスクリーニングする方法 形質転換株を培養し、遺伝子を増幅させ、その遺伝子を
動物細胞にトランスフェクトし（この場合、自己複製可
能で転写プロモーター領域を含むプラスミドもしくは動
物細胞の染色体に組み込まれ得るようなプラスミドのい
ずれでもよい）、遺伝子にコードされた蛋白を細胞表面
に産生させる。本発明のＧ蛋白質共役型レセプター蛋白
質に対する抗体を用いて該蛋白質を検出することによ
り、元の形質転換株より目的のＧ蛋白質共役型レセプタ
ー蛋白質をコードするcDNAを有する株を選択する。 本発明のＧ蛋白質共役型レセプター蛋白質に対する
抗体を用いて選択する方法 あらかじめ、cDNAを発現ベクターに組込み、形質転換株
表面で蛋白を産生させ、本発明のＧ蛋白質共役型レセプ
ター蛋白質に対する抗体および該抗体に対する２次抗体
を用いて、所望のＧ蛋白質共役型レセプター蛋白質産生
株を検出し、目的の株を選択する。 セレクティブ・ハイブリダイゼーション・トランス
レーションの系を用いる方法 形質転換株から得られるcDNAを、ニトロセルロースフィ
ルター等にブロットし本発明のＧ蛋白質共役型レセプタ
ー蛋白質産生細胞からのmRNAをハイブリダイズさせた
後、cDNAに結合したmRNAを解離させ、回収する。回収さ
れたmRNAを蛋白翻訳系、例えばアフリカツメガエルの卵
母細胞への注入や、ウサギ網状赤血球ライゼートや小麦
胚芽等の無細胞系で蛋白に翻訳させる。本発明のＧ蛋白
質共役型レセプター蛋白質に対する抗体を用いて検出し
て、目的の株を選択する。得られた目的の形質転換株よ
り本発明のＧ蛋白質共役型レセプターをコードするDNA
を採取する方法は、公知の方法(Maniatis, T. et al.(1
982):“ MolecularCloning-A Laboratory Manual "Cold
Spring Harbor Laboratory, NY)に従い実施できる。例
えば細胞よりプラスミドDNAに相当する画分を分離し、
該プラスミドDNAよりcDNA領域を切り出すことにより行
なうことができる。

【００１７】ｃ）第３製造法 本発明のＧ蛋白質共役型レセプター遺伝子は、化学合成
法によって製造したDNA断片を結合することによっても
製造できる。各DNAは、DNA合成機（例えば、Oligo 1000
M DNA Synthesizer(Beckman社)、あるいは、394 DNA/
RNA Synthesizer(Applied Biosystems社)など）を用い
て合成することができる。

【００１８】ｄ）第４製造法 本発明のＧ蛋白質共役型レセプター遺伝子は、Ｇ蛋白質
共役型レセプターの情報に基づいて、例えばホスファイ
ト・トリエステル法(Hunkapiller, M. et al.(1984) Na
ture, 10, 105-111)等の常法に従い、核酸の化学合成に
より製造することもできる。なお、所望アミノ酸に対す
るコドンはそれ自体公知であり、その選択も任意でよ
く、例えば利用する宿主のコドン使用頻度を考慮して常
法に従い決定できる(Crantham, R. et al.(1981) Nucle
ic Acids Res.,9 r43-r74)。さらに、これら塩基配列の
コドンの一部改変は、常法に従い、所望の改変をコード
する合成オリゴヌクレオチドからなるプライマーを利用
したサイトスペシフィック・ミュータジェネシス(site
specific mutagenesis)(Mark, D. F. et al. (1984)Pro
c. Natl. Acad. Sci. USA, 81, 5662-5666)等に従うこ
とができる。以上、ａ）乃至ｄ）により得られるDNAの
配列決定は、例えばマキサム−ギルバートの化学修飾法
(Maxam, A. M. and Gilbert, W. (1980):“ Methods in
Enzymology "65, 499-559)やＭ１３を用いるジデオキ
シヌクレオチド鎖終結法(Messing, J. and Vieira, J
(1982) Gene, 19, 269-276)等により行うことができ
る。

【００１９】２）本発明のＧ蛋白質共役型レセプターの
組み換え蛋白質の製造方法 単離された本発明のＧ蛋白質共役型レセプターをコード
する遺伝子を含む断片は、適当なベクターDNAに再び組
込むことにより、真核生物及び原核生物の宿主細胞を形
質転換させることができる。さらに、これらのベクター
に適当なプロモーターおよび形質発現にかかわる配列を
導入することにより、それぞれの宿主細胞において遺伝
子を発現させることが可能である。例えば、真核生物の
宿主細胞には、脊椎動物、昆虫、酵母等の細胞が含ま
れ、脊椎動物細胞としては、例えばサルの細胞であるCO
S細胞(Gluzman, Y. (1981) Cell, 23, 175-182)やチャ
イニーズ・ハムスター卵巣細胞(CHO)のジヒドロ葉酸レ
ダクターゼ欠損株（Urlaub, G. and Chasin, L. A.(198
0) Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 77, 4216-4220)、ヒ
ト胎児腎臓由来HEK293細胞および同細胞にEpsteinBarr
VirusのEBNA-1遺伝子を導入した293-EBNA細胞（Invitro
gen社）等がよく用いられているが、これらに限定され
るわけではない。脊椎動物細胞の発現ベクターとして
は、通常発現しようとする遺伝子の上流に位置するプロ
モーター、ＲＮＡのスプライス部位、ポリアデニル化部
位および転写終結配列等を有するものを使用でき、これ
はさらに必要により複製起点を有してもよい。該発現ベ
クターの例としては、ＳＶ４０の初期プロモーターを有
するpSV2dhfr (Subramani, S. et al. (1981) Mol. Cel
l. Biol., 1, 854-864)、ヒトのelongation factorプロ
モーターを有するpEF-BOS (Mizushima, S. and Nagata,
S. (1990) Nucleic Acids Res., 18, 5322)、cytomega
lovirusプロモーターを有するpCEP4(Invitrogen社）等
を例示できるが、これに限定されない。

【００２０】宿主細胞として、COS細胞を用いる場合を
例に挙げると、発現ベクターとしては、SV40複製起点を
有し、COS細胞において自律増殖が可能であり、さらに
転写プロモーター、転写終結シグナルおよびRNAスプラ
イス部位を備えたものを用いることができ、例えば、 p
ME18S、 (Maruyama, K. and Takebe,Y. (1990) Med.Imm
unol., 20, 27-32)、pEF-BOS (Mizushima, S. and Naga
ta, S. (1990) Nucleic Acids Res., 18, 5322)、 pCDM
8(Seed, B. (1987) Nature, 329, 840-842)等が挙げら
れる。該発現ベクターはDEAE−デキストラン法(Luthma
n, H. and Magnusson, G. (1983) Nucleic Acids Res.,
11, 1295-1308)、リン酸カルシウム−DNA共沈殿法(Gra
ham, F. L. and van der Ed, A. J. (1973) Virology,
52, 456-457)、 FuGENE6(Boeringer Mannheim社）を用
いた方法、および電気パスル穿孔法(Neumann, E. et a
l.(1982) EMBO J., 1, 841-845)等によりCOS細胞に取り
込ませることができ、かくして所望の形質転換細胞を得
ることができる。また、宿主細胞としてCHO細胞を用い
る場合には、発現ベクターと共に、G418耐性マーカーと
して機能するneo遺伝子を発現し得るベクター、例えばp
RSVneo(Sambrook, J. et al. (1989): “ Molecular Cl
oning-A Laboratory Manual "Cold Spring Harbor Labo
ratory, NY)やpSV2-neo(Southern, P. J. and Berg,P.
(1982) J. Mol. Appl. Genet., 1, 327-341)等をコ・ト
ランスフェクトし、G418耐性のコロニーを選択すること
により新規Ｇ蛋白質共役型レセプターを安定に産生する
形質転換細胞を得ることができる。また、宿主細胞とし
て293-EBNA細胞を用いる場合には、Epstein Barr Virus
の複製起点を有し、293-EBNA細胞で自己増殖が可能なpC
EP4(Invitrogen社）などの発現ベクターを用いて所望の
形質転換細胞を得ることができる。

【００２１】上記で得られる所望の形質転換体は、常法
に従い培養することができ、該培養により細胞内または
細胞表面に本発明のＧ蛋白質共役型レセプターが生産さ
れる。該培養に用いられる培地としては、採用した宿主
細胞に応じて慣用される各種のものを適宜選択でき、例
えば上記COS細胞であればRPMI-1640培地やダルベッコ修
正イーグル最小必須培地(DMEM)等の培地に必要に応じ牛
胎児血清(FBS)等の血清成分を添加したものを使用でき
る。また、上記293-EBNA細胞であれば牛胎児血清(FBS)
等の血清成分を添加したダルベッコ修正イーグル最小必
須培地(DMEM)等の培地にG418を加えたものを使用でき
る。上記により、形質転換体の細胞内または細胞表面に
生産される本発明のＧ蛋白質共役型レセプターは、該レ
セプターの物理的性質や化学的性質等を利用した各種の
公知の分離操作法により、それらより分離・精製するこ
とができる。該方法としては、具体的には例えば該レセ
プターを含む膜分画を可溶化した後、通常の蛋白沈殿剤
による処理、限外濾過、分子ふるいクロマトグラフィー
（ゲル濾過）、吸着クロマトグラフィー、イオン交換体
クロマトグラフィー、アフィニティクロマトグラフィ
ー、高速液体クロマトグラフィー(HPLC)等の各種液体ク
ロマトグラフィー、透析法、これらの組合せ等を例示で
きる。なお、膜分画は常法に従って得ることができる。
例えば本発明のＧ蛋白質共役型レセプターを表面に発現
した細胞を培養し、これらをバッファーに懸濁後、ホモ
ジナイズし遠心分離することにより得られる。また、で
きるだけ緩和な可溶化剤（CHAPS、 Triton X-100、ジキ
トニン等）でＧ蛋白質共役型レセプター蛋白質を可溶化
することにより、可溶化後もレセプターの特性を保持す
ることができる。

【００２２】本発明のＧ蛋白質共役型レセプターはマー
カー配列とインフレームで融合して発現させることで、
該Ｇ蛋白質共役型レセプター蛋白質の発現の確認、細胞
内局在の確認、精製等が可能になる。マーカー配列とし
ては、例えば、FLAG epitope、Hexa-Histidine tag、He
magglutinin tag、myc epitopeなどがある。また、マー
カー配列と該Ｇ蛋白質共役型レセプター蛋白質の間にエ
ンテロキナーゼ、ファクターXa、トロンビンなどのプロ
テアーゼが認識する特異的な配列を挿入することによ
り、マーカー配列部分をこれらのプロテアーゼにより切
断除去する事が可能である。例えば、ムスカリンアセチ
ルコリン受容体とHexa-Histidine tagとをトロンビン認
識配列で連結した報告がある（Hayashi, M.K. and Hag
a, T. (1996) J. Biochem., 120, 1232-1238）

【００２３】３）本発明のＧ蛋白質共役型レセプターの
活性を修飾する物質（化合物、ペプチド及び抗体）のス
クリーニング方法 本発明のスクリーニング法は、前記により構築されたＧ
蛋白質共役型レセプターを用いて、該Ｇ蛋白質共役型レ
セプターの生理学的な特性に応じたＧ蛋白質共役型レセ
プターの修飾の指標を測定する系に被験物質を添加し、
該指標を測定する手段を含む。該測定系は、具体的に
は、以下のスクリーニング方法a)〜d)が挙げられる。ま
た、被験物質は従来Ｇ蛋白質共役型レセプターリガンド
活性を有することは知られているが該新規Ｇ蛋白質共役
型レセプターの活性に対して選択的に修飾するか不明な
化合物またはペプチド、あるいはケミカルファイルに登
録されている種々のＧ蛋白質共役型レセプターリガンド
活性については不明の公知化合物やペプチド、コンビナ
トリアル・ケミストリー技術（Terrett, N.K., et al.
(1995) Tetrahedron, 51, 8135-8137）によって得られ
た化合物群やファージ・ディスプレイ法（Felici, F.,
et al. (1991) J. Mol. Biol., 222, 301-310）などを
応用して作成されたランダム・ペプチド群を用いること
ができる。また、微生物の培養上清や、植物、海洋生物
由来の天然成分、動物組織抽出物などもスクリーニング
の対象となる。あるいは本発明のスクリーニング法によ
り選択された化合物またはペプチドを化学的または生物
学的に修飾した化合物またはペプチドを用いうる。

【００２４】ａ）リガンド結合アッセイ法を利用したス
クリーニング方法 本発明のＧ蛋白質共役型レセプターに結合する化合物、
ペプチド及び抗体（総称してリガンド）はリガンド結合
アッセイ法によりスクリーニングする事ができる。該レ
セプターを発現させた細胞膜、あるいは該レセプター精
製標品を調製し、リガンド結合アッセイ用に精製された
リガンドを放射性標識（50-2000 Ci/mmol）する。緩衝
液、イオン、pHのようなアッセイ条件を最適化し、最適
化したバッファー中で同レセプターを発現させた細胞
膜、あるいは該レセプター精製標品を放射性標識したリ
ガンドと共に一定時間インキュベーションする。反応
後、ガラスフィルター等で濾過し適量のバッファーで洗
浄した後、フィルターに残存する放射活性を液体シンチ
レーションカウンター等で測定する（全結合量）。放射
性標識していないリガンドを上記反応液中に大過剰加え
ることにより非特異的結合量を測定し、全結合量から非
特異的結合量を差し引くことにより特異的結合量がえら
れる。該レセプター蛋白質を発現させた細胞膜、あるい
は該レセプター蛋白質精製標品に対して特異的結合を示
したリガンドを本発明のＧ蛋白質共役型レセプターに対
するリガンドとして選択することができる。また、得ら
れた放射活性リガンドの結合阻害を指標に該Ｇ蛋白質共
役型レセプターのアゴニスト活性を有する化合物、ペプ
チド及び抗体、アンタゴニスト活性を有する化合物、ペ
プチド及び抗体をスクリーニングすることができる。

【００２５】ｂ） GTPγS結合法を利用したスクリーニ
ング方法 本発明のＧ蛋白質共役型レセプターの活性を修飾する化
合物，ペプチド及び抗体はGTPγS結合法によりスクリー
ニングすることが可能である（Lazareno, S. and Birds
all, N.J.M. (1993) Br. J. Pharmacol. 109, 1120-112
7）。該レセプターを発現させた細胞膜を20 mM HEPES
(pH 7.4), 100 mM NaCl, 10 mM MgCl₂,50 mM GDP溶液中
で、³⁵Sで標識されたGTPγS 400 pMと混合する。被検薬
存在下と非存在下でインキュベーション後、ガラスフィ
ルター等で濾過し、結合したGTPγSの放射活性を液体シ
ンチレーションカウンター等で測定する。被検薬存在下
における特異的なGTPγS結合の上昇を指標に、該Ｇ蛋白
質共役型レセプターのアゴニスト活性を有する化合物、
ペプチド及び抗体をスクリーニングすることができる。
また、得られたアゴニスト活性を有する化合物、ペプチ
ド及び抗体によるGTPγS結合上昇の抑制を指標に該Ｇ蛋
白質共役型レセプターのアンタゴニスト活性を有する化
合物、ペプチド及び抗体をスクリーニングすることがで
きる。

【００２６】ｃ）細胞内Ca⁺⁺およびcAMP濃度の変動を利
用したスクリーニング方法 多くのＧ蛋白質共役型レセプターはアゴニスト刺激で細
胞内のCa⁺⁺の上昇および／またはcAMP濃度の上昇または
低下を引き起こす。ゆえに本発明のＧ蛋白質共役型レセ
プターの活性を修飾する化合物、ペプチド及び抗体は細
胞内Ca⁺⁺またはcAMP濃度の変動を利用してスクリーニン
グすることが可能である。Ca⁺⁺濃度の測定はfura2等を
用い、cAMP濃度の測定は市販のcAMP測定キット(Amersha
m社等)を用いて測定する。また、Ca⁺⁺およびcAMP濃度に
依存して転写量が調節される遺伝子の転写活性を検出す
ることにより間接的にCa⁺⁺およびcAMP濃度を測定するこ
とが可能である。該レセプターを発現させた細胞とレセ
プターを発現させていない宿主細胞（コントロール細
胞）に化合物、ペプチド、組織抽出物等を一定時間作用
させ、Ca⁺⁺およびcAMP濃度を直接あるいは間接的に測定
する。コントロール細胞と比較して、該レセプターを発
現させた細胞特異的なCa⁺⁺の上昇および／またはcAMP濃
度の上昇または低下を指標にアゴニスト活性を有する化
合物，ペプチド及び抗体をスクリーニングすることがで
きる。また、得られたアゴニスト活性を有する化合物、
ペプチド及び抗体によるCa⁺⁺の上昇および／またはcAMP
濃度の上昇または低下を指標に該Ｇ蛋白質共役型レセプ
ターのアンタゴニスト活性を有する化合物、ペプチド及
び抗体をスクリーニングすることができる。

【００２７】ｄ）マイクロフィジオメーターを用いたス
クリーニング方法 細胞が様々なシグナル応答を行う場合、細胞外への微少
な水素イオンの流出が検出される。この水素イオンの流
出は、その大部分が、細胞が応答するためのエネルギー
を得るための燃料消費で生ずる代謝産物の増加、または
細胞のシグナルが直接水素イオンポンプに伝達する場合
に生ずる。本発明のＧ蛋白質共役型レセプターは、その
シグナル伝達にエネルギーを必要とするため、レセプタ
ーの活性化の際には水素イオンの流出が起こる。CYTOSE
NSORマイクロフィジオメーター（Molecular Devices
社）により、このような細胞近傍の培地中の微少な水素
イオンの流出によるpH変化が検出可能であることから、
このようなエネルギーを消費する受容体の活性化の検出
に利用できる。該レセプターを発現させた細胞とレセプ
ターを発現させていない宿主細胞（コントロール細胞）
に化合物、ペプチド、組織抽出物等を一定時間作用さ
せ、水素イオンの流出によるpH変化を測定する。コント
ロール細胞と比較して、該レセプターを発現させた細胞
特異的な水素イオンの流出によるpH変化を指標にアゴニ
スト活性を有する化合物、ペプチド及び抗体をスクリー
ニングすることができる。また、得られたアゴニスト活
性を有する化合物、ペプチド及び抗体による水素イオン
の流出によるpH変化を指標に該Ｇ蛋白質共役型レセプタ
ーのアンタゴニスト活性を有する化合物、ペプチド及び
抗体をスクリーニングすることができる。

【００２８】４）本発明のG蛋白質共役型レセプターに
反応する抗体の作成方法 本発明のG蛋白質共役型レセプターに反応する抗体、例
えばポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、は各種
動物に該新規G蛋白質共役型レセプターや該G蛋白質共役
型レセプターの断片を直接投与することで得ることがで
きる。また、本発明G蛋白質共役型レセプターをコード
する遺伝子を導入したプラスミドを用いてDNAワクチン
法（Raz, E. et al. (1994) Proc. Natl. Acad. Sci. U
SA, 91, 9519-9523; Donnelly, J. J. et al. (1996)
J. Infect. Dis., 173, 314-320）によっても得ること
ができる。ポリクローナル抗体は該G蛋白質共役型レセ
プターまたはその断片をフロイント完全アジュバントな
どの適当なアジュバントに乳濁し、腹腔、皮下また静脈
等に免疫して感作した動物、例えばウサギ、ラット、ヤ
ギ、またはニワトリ等の血清または卵から製造される。
このように製造された血清または卵からポリクローナル
抗体は常法の蛋白質単離精製法により分離精製すること
ができ、常法の蛋白質単離精製法としては例えば、遠心
分離、透析、硫酸アンモニウムによる塩析、DEAE-セル
ロース、ハイドロキシアパタイト、プロテインAアガロ
ース等によるクロマトグラフィー法が挙げられる。

【００２９】モノクローナル抗体は、ケーラーとミルス
タインの細胞融合法（Kohler, G. and Milstein, C. (1
975) Nature, 256, 495-497）により当業者が容易に製
造することが可能である。すなわち、本発明G蛋白質共
役型レセプターまたはその断片をフロイント完全アジュ
バントなどの適当なアジュバントに乳濁した乳濁液を数
週間おきにマウスの腹腔、皮下または静脈に数回繰り返
し接種することにより免疫する。最終免疫後、脾臓細胞
を取り出し、ミエローマ細胞とと融合してハイブリドー
マを作製する。ハイブリドーマを得るためのミエローマ
細胞としては、ヒポキサンチンーグアニンーホスホリボ
シルトランスフェラーゼ欠損やチミジンキナーゼ欠損の
ようなマーカーを持つミエローマ細胞、例えば、マウス
ミエローマ細胞株P3X63Ag8.U1、を利用する。また、融
合剤としてはポリエチレングリーコールを利用する。さ
らにはハイブリドーマ作製における培地として、イーグ
ル氏最小必須培地、ダルベッコ氏変法最小必須培地、RP
MI-1640などの通常よく用いられているものに適宜10〜3
0%の牛胎児血清を加えて用いる。融合株はHAT選択法に
より選択する。ハイブリドーマのスクリーニングは培養
上清を用い、ELISA法、免疫組織染色法などの周知の方
法または前記のスクリーニング法により行い、目的の抗
体を分泌しているハイブリドーマのクローンを選択す
る。また、限界希釈法によって、サブクローニングを繰
り返すことによりハイブリドーマの単クローン性を保証
する。このようにして得られるハイブリドーマは培地中
で2〜４日間、あるいはプリスタンで前処理したBALB/c
系マウスの腹腔内で10〜20日培養することで精製可能な
量の抗体が産生される。このように製造されたモノクロ
ーナル抗体は培養上清あるいは腹水から常法の蛋白質単
離精製法により分離精製することができる。また、モノ
クローナル抗体またはその一部分を含む抗体断片は該抗
体をコードする遺伝子の全部または一部を発現ベクター
に組み込み、大腸菌、酵母、または動物細胞に導入して
生産させることもできる。

【００３０】以上のように分離精製された抗体につき、
常法により、ペプシン、パパイン等の蛋白質分解酵素に
よって消化を行い、引き続き常法の蛋白質単離精製法に
より分離精製することで、活性のある抗体の一部分を含
む抗体断片、例えば、F(ab') ₂、Fab、Fab'、Fvを得るこ
とができる。さらには、本発明G蛋白質共役型レセプタ
ーに反応する抗体を、クラクソンらやゼベデらの方法
（Clackson, T. et al. (1991) Nature, 352, 624-628;
Zebedee, S. et al. (1992) Proc. Natl. Acad. Sci.
USA, 89, 3175-3179）によりsingle chain FvやFabとし
て得ることも可能である。また、マウスの抗体遺伝子を
ヒト抗体遺伝子に置き換えたトランスジェニックマウス
（Lonberg, N. et al. (1994) Nature, 368, 856-859）
に免疫することでヒト抗体を得ることも可能である。

【００３１】本発明には、Ｇ蛋白質共役型レセプター蛋
白質または前記スクリーニング法により選択されたＧ蛋
白質共役型レセプター蛋白質の活性を有意に修飾する物
質を有効成分とする医薬が包含される。本発明のＧ蛋白
質共役型レセプター活性修飾化合物、ペプチド、抗体ま
たは抗体断片を有効成分とする製剤は、該有効成分のタ
イプに応じて、それらの製剤化に通常用いられる担体や
賦形剤、その他の添加剤を用いて調製されうる。投与は
錠剤、丸剤、カプセル剤、顆粒剤、細粒剤、散剤、経口
用液剤などによる経口投与、あるいは静注、筋注などの
注射剤、坐剤、経皮投与剤、経粘膜投与剤などによる非
経口投与が挙げられる。特に胃で消化されるペプチドに
あっては静注等の非経口投与が望まれる。

【００３２】本発明による経口投与のための固体組成物
は、一つ又はそれ以上の活性物質が少なくとも一つの不
活性な希釈剤、例えば乳糖、マンニトール、ブドウ糖、
微結晶セルロース、ヒドロキシプロピルセルロース、デ
ンプン、ポリビニルピロリドン、メタケイ酸アルミン酸
マグネシウムなどと混合される。組成物は常法に従っ
て、不活性な希釈剤以外の添加剤、例えば滑沢剤、崩壊
剤、安定化剤、溶解乃至溶解補助剤などを含有していて
もよい。錠剤や丸剤は必要により糖衣又は胃溶性若しく
は腸溶性物質などのフィルムで被覆していてもよい。経
口のための液体組成物は、乳濁剤、溶液剤、懸濁剤、シ
ロップ剤、エリキシル剤を含み、一般的に用いられる不
活性な希釈剤、例えば精製水、エタノールを含む。該組
成物は不活性な希釈剤以外の添加剤、例えば湿潤剤、懸
濁剤、甘味剤、芳香剤、防腐剤を含有していてもよい。
非経口のための注射剤としては、無菌の水性または非水
性の溶液剤、懸濁剤、乳濁剤を含む。水溶性の溶液剤や
懸濁剤には、希釈剤として例えば注射用蒸留水、生理用
食塩水などが含まれる。非水溶性の溶液剤、懸濁剤の希
釈剤としてはプロピレングリコール、ポリエチレングリ
コール、オリーブ油のような植物油、エタノールのよう
なアルコール類、ポリソルベート８０等を含む。該組成
物はさらに湿潤剤、乳化剤、分散剤、安定化剤、溶解乃
至溶解補助剤、防腐剤などを含んでいてもよい。組成物
は例えばバクテリア保留フィルターを通す濾過、殺菌剤
の配合、または照射によって無菌化される。また、無菌
の固体組成物を製造し、使用に際し無菌水その他の無菌
用注射用媒体に溶解し使用することもできる。投与量は
前記スクリーニング法により選択された有効成分の活性
の強さ、症状、投与対象の年齢、性別等を考慮して適宜
決定される。

【００３３】

【実施例】以下、本発明を更に具体的に開示するため
に、実施例を記載するが、本発明は実施例に限定される
ものではない。なお、特に断りがない場合は、公知の方
法（Maniatis, T. at al. (1982) : "Molecular Clonin
g - A Laboratory Manual" Cold Spring Harbor Labora
tory, NY）に従って実施可能である。 （実施例１）新規Ｇ蛋白質共役型レセプターをコードす
る遺伝子の単離 本発明のＧ蛋白質共役型レセプター蛋白質HORK1をコー
ドする全長cDNAは、ヒト脾臓由来のpoly A+ RNA（Clont
ech社製）をtemplateとしてRT-PCRにより取得した。配
列番号３で示されるオリゴヌクレオチドをforward prim
erとして、配列番号４で示されるオリゴヌクレオチドを
reverse primerとして用いた（それぞれの5'末端にはXb
aI siteが付加してある）。RT-PCRはPyrobest DNA poly
merase（宝酒造社製）を用い5% DMS0存在下で98 ℃（10
秒）／58 ℃（30秒）／72 ℃（2分）のサイクルを34回
繰り返した。その結果、約1.0 kbpのDNA断片が増幅され
た。この断片をXbaIで消化した後、pEF-BOS plasmid（M
izushima, S. and Nagata,S. (1990) Nucleic Acids Re
s., 18, 5322）を用いてクローニングした。得られたク
ローンの塩基配列はジデオキシターミネーター法により
ABI377 DNA Sequencer（Applied Biosystems社製）を用
いて解析した。明らかになった配列を配列番号１に示
す。配列番号１で示される塩基配列は1002 baseのORFを
持っている。ORFから予測されるアミノ酸配列（333アミ
ノ酸）を配列番号２に示す。予想アミノ酸配列は、Ｇ蛋
白質共役型レセプターの特徴である7個の膜貫通ドメイ
ンと思われる疎水性領域を有していることから、本遺伝
子がＧ蛋白質共役型レセプターをコードすることが解っ
た。本遺伝子がコードするＧ蛋白質共役型レセプターを
ＨＯＲＫ１と名づけた。新規Ｇ蛋白質共役型レセプター
HORK1はリガンドと対応のとれている公知のＧ蛋白質共
役型レセプターファミリーとのホモロジーはそれぞれア
ミノ酸配列で30%以下であった。

【００３４】（実施例２）組織におけるヒト新規Ｇ蛋白
質共役型レセプターファミリー遺伝子の発現分布 RT-PCR法により本発明のＧ蛋白質共役型レセプター遺伝
子の発現分布を解析した。ヒトの各臓器（脳（扁桃体、
尾状核、海馬、脳梁、黒質、小脳）、脊髄、下垂体、心
臓、胎盤、肺、気管、肝臓、腎臓、膵臓、小腸、胃、脾
臓、骨髄、胸腺、甲状腺、唾液腺、副腎、乳腺、前立
腺、精巣、卵巣）由来のpoly A+ RNA（5μg）（Clontec
h社製）をDNase（Nippon Gene社製）を用い37 ℃で１５
分反応させた。DNase処理したpoly A+ RNAのうち4μgか
らMMLV Reverse Transcriptase（Clontech社製）で42
℃で60分、94 ℃で5分順次反応させ、cDNAを合成した。
合成されたcDNAは800μlの滅菌水に溶解した。HORK1の
発現分布は上記のヒトの各臓器のcDNAを鋳型として、pr
imerセットは配列番号５で示されるオリゴヌクレオチド
と配列番号６で示されるオリゴヌクレオチドを用いた。
PCRはPyrobest DNA polymerase（宝酒造社製）を用い5%
DMS0存在下で98 ℃（10秒）／56 ℃（30秒）／72 ℃
（1分）のサイクルを30回繰り返した。また、内部標準
としては上記のヒトの各臓器のcDNAを鋳型として、Huma
nG3PDH Control Amplimer Set（Clontech社製）を用い
て、同条件のPCRにてGlyceraldehyde-3-Phosphate Dehy
drogenase(G3PDH)の遺伝子を増幅させた。反応産物は1%
アガロースゲルにて電気泳動して解析した（図１）。HO
RK1の約400bpの増幅産物は脳（扁桃体、尾状核、海馬、
脳梁、黒質）、脊髄、胎盤、脾臓、骨髄で検出された。
その中でも、黒質、脊髄、脾臓が比較的強いシグナルで
あった。以上の結果より、HORK1は中枢神経系に関与す
る部位に発現していることが分かった。つまり、本Ｇ蛋
白質共役型レセプターは黒質-線条体系に発現してお
り、その部位にはドパミナージックニューロンが存在す
ることから、情動行動を制御する精神分裂病に係る疾患
に有用であることを示し、また、ドパミナージックニュ
ーロンの変性はパーキンソン病に係る疾患に有用である
ことを示している。また、脊髄には痛覚の伝達に関わる
部位があり、疼痛に係る疾患に有用であることを示して
いる。

【００３５】（実施例３）新規Ｇ蛋白質共役型レセプタ
ーファミリー蛋白質の発現の確認 ヒトHORK1を発現させるための発現ベクターとしてpEF-B
OSを用いた。そのとき、ヒトHORK1のN末端にマーカー配
列としてFLAG epitopeを融合するために、HORK1の蛋白
質コーディング配列の5'末端に配列番号７で示されるオ
リゴヌクレオチドを挿入した。このように構築したプラ
スミドはそれぞれ、pEFBOS-FL-HORK1とした。このプラ
スミドを用いることで、ヒトHORK1のポリペプチドのN末
端に配列番号８で示されるポリペプチドが融合したポリ
ペプチドとして発現する。10cmシャーレに293-EBNA（In
vitrogen社製）を1x10⁶細胞で播種して１日培養後、8
μgのpEF-BOS-FL-HORK1およびpEF-BOS-FL（空ベクタ
ー）をFuGENE6（Boeringer Mannheim社製）を用いて遺
伝子導入した。遺伝子導入後、一日培養した細胞を回
収、洗浄後、1% BSA/PBSに懸濁した。これを氷温遮光下
におき、5x10⁵細胞毎に1次抗体として最終濃度2μg/ml
となるようにマウス抗FLAGモノクローナル抗体 (M2；Si
gma社)または通常マウスIgG (Zymed社製)を添加、1時間
インキュベートした。PBS洗浄後、さらに2次抗体として
FITC標識ヤギ抗マウスIg (Biosource社製)を200倍希釈
になるように加え、氷温遮光下で1時間インキュベート
した。蛍光強度の測定はEPICS^〓XL-MCL (COULTER社製)
で行った（図２）。図２は10,000個の細胞を測定した結
果を示しており、縦軸が細胞数、横軸が蛍光強度を表
す。HORK1導入細胞に対して1次抗体にM2を用いた場合の
み、FITC蛍光強度上昇方向にシフトしていることから、
FLAGエピトープを含むHORK1が細胞膜表面上に発現して
いることが確認できた。

【００３６】

【発明の効果】本発明のＧ蛋白質共役型レセプターは中
枢神経系疾患(特に、精神分裂病、パーキンソン病、疼
痛)の予防・治療剤のスクリーニングツールとして有用
である。具体的には、本発明のＧ蛋白質共役型レセプタ
ーと被験物質を接触させることにより、該Ｇ蛋白質共役
型レセプターの活性を修飾する物質(化合物、ペプチド
及び抗体)をスクリーニングし、新たな医薬、特に、い
まだ完全にコントロールすることができない中枢神経系
疾患の予防・治療剤をスクリーニングすることを意味す
る。また、本発明のＧ蛋白質共役型レセプターをコード
する遺伝子またはレセプターに対する抗体は、該遺伝子
の変異、または、発現異常により生じうる疾患の罹患性
の診断のためのツールとしての有用である。

【００３７】

【図面の簡単な説明】

【図１】図１は、HORK1のヒト臓器についての発現分布
の解析の結果を示す。

【図２】図２は、HORK1の発現を確認した結果を示す。

【配列表】 SEQUENCE LISTING <110> Yamanouchi Pharmaceutical Co., Ltd. <120> 新規なＧ蛋白質共役型レセプター <130> 0000002898 <160> 8 <170> PatentIn Ver. 2.0 <210> 1 <211> 1002 <212> DNA <213> Homo sapiens <400> 1 atgaacacca cagtgatgca aggcttcaac agatctgagc ggtgccccag agacactcgg 60 atagtacagc tggtattccc agccctctac acagtggttt tcttgaccgg catcctgctg 120 aatactttgg ctctgtgggt gtttgttcac atccccagct cctccacctt catcatctac 180 ctcaaaaaca ctttggtggc cgacttgata atgacactca tgcttccttt caaaatcctc 240 tctgactcac acctggcacc ctggcagctc agagcttttg tgtgtcgttt ttcttcggtg 300 atattttatg agaccatgta tgtgggcatc gtgctgttag ggctcatagc ctttgacaga 360 ttcctcaaga tcatcagacc tttgagaaat atttttctaa aaaaacctgt ttttgcaaaa 420 acggtctcaa tcttcatctg gttctttttg ttcttcatct ccctgccaaa tatgatcttg 480 agcaacaagg aagcaacacc atcgtctgtg aaaaagtgtg cttccttaaa ggggcctctg 540 gggctgaaat ggcatcaaat ggtaaataac atatgccagt ttattttctg gactgttttt 600 atcctaatgc ttgtgtttta tgtggttatt gcaaaaaaag tatatgattc ttatagaaag 660 tccaaaagta aggacagaaa aaacaacaaa aagctggaag gcaaagtatt tgttgtcgtg 720 gctgtcttct ttgtgtgttt tgctccattt cattttgcca gagttccata tactcacagt 780 caaaccaaca ataagactga ctgtagactg caaaatcaac tgtttattgc taaagaaaca 840 actctctttt tggcagcaac taacatttgt atggatccct taatatacat attcttatgt 900 aaaaaattca cagaaaagct accatgtatg caagggagaa agaccacagc atcaagccaa 960 gaaaatcata gcagtcagac agacaacata accttaggct ga 1002 <210> 2 <211> 333 <212> PRT <213> Homo sapiens <400> 2 Met Asn Thr Thr Val Met Gln Gly Phe Asn Arg Ser Glu Arg Cys Pro 1 5 10 15 Arg Asp Thr Arg Ile Val Gln Leu Val Phe Pro Ala Leu Tyr Thr Val 20 25 30 Val Phe Leu Thr Gly Ile Leu Leu Asn Thr Leu Ala Leu Trp Val Phe 35 40 45 Val His Ile Pro Ser Ser Ser Thr Phe Ile Ile Tyr Leu Lys Asn Thr 50 55 60 Leu Val Ala Asp Leu Ile Met Thr Leu Met Leu Pro Phe Lys Ile Leu 65 70 75 80 Ser Asp Ser His Leu Ala Pro Trp Gln Leu Arg Ala Phe Val Cys Arg 85 90 95 Phe Ser Ser Val Ile Phe Tyr Glu Thr Met Tyr Val Gly Ile Val Leu 100 105 110 Leu Gly Leu Ile Ala Phe Asp Arg Phe Leu Lys Ile Ile Arg Pro Leu 115 120 125 Arg Asn Ile Phe Leu Lys Lys Pro Val Phe Ala Lys Thr Val Ser Ile 130 135 140 Phe Ile Trp Phe Phe Leu Phe Phe Ile Ser Leu Pro Asn Met Ile Leu 145 150 155 160 Ser Asn Lys Glu Ala Thr Pro Ser Ser Val Lys Lys Cys Ala Ser Leu 165 170 175 Lys Gly Pro Leu Gly Leu Lys Trp His Gln Met Val Asn Asn Ile Cys 180 185 190 Gln Phe Ile Phe Trp Thr Val Phe Ile Leu Met Leu Val Phe Tyr Val 195 200 205 Val Ile Ala Lys Lys Val Tyr Asp Ser Tyr Arg Lys Ser Lys Ser Lys 210 215 220 Asp Arg Lys Asn Asn Lys Lys Leu Glu Gly Lys Val Phe Val Val Val 225 230 235 240 Ala Val Phe Phe Val Cys Phe Ala Pro Phe His Phe Ala Arg Val Pro 245 250 255 Tyr Thr His Ser Gln Thr Asn Asn Lys Thr Asp Cys Arg Leu Gln Asn 260 265 270 Gln Leu Phe Ile Ala Lys Glu Thr Thr Leu Phe Leu Ala Ala Thr Asn 275 280 285 Ile Cys Met Asp Pro Leu Ile Tyr Ile Phe Leu Cys Lys Lys Phe Thr 290 295 300 Glu Lys Leu Pro Cys Met Gln Gly Arg Lys Thr Thr Ala Ser Ser Gln 305 310 315 320 Glu Asn His Ser Ser Gln Thr Asp Asn Ile Thr Leu Gly 325 330 <210> 3 <211> 39 <212> DNA <213> Homo sapiens <400> 3 gggtctagaa tgaacaccac agtgatgcaa ggcttcaac 39 <210> 4 <211> 37 <212> DNA <213> Homo sapiens <400> 4 ccctctagat cagcctaagg ttatgttgtc tgtctga 37 <210> 5 <211> 40 <212> DNA <213> Homo sapiens <400> 5 ctgtccttac ttttggactt tctataagaa tcatatactt 40 <210> 6 <211> 40 <212> DNA <213> Homo sapiens <400> 6 ctggcaccct ggcagctcag agcttttgcg tgtcgttttt 40 <210> 7 <211> 36 <212> DNA <213> Homo sapiens <400> 7 atggactaca aggacgacga tgacaagggg atcctg 36 <210> 8 <211> 12 <212> PRT <213> Homo sapiens <400> 8 Met Asp Tyr Lys Asp Asp Asp Asp Lys Gly Ile Leu 1 5 10

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号 ＦＩ テーマコート゛(参考） Ｃ１２Ｎ 1/21 Ｃ１２Ｎ 1/21 5/10 Ｃ１２Ｐ 21/02 Ｃ Ｃ１２Ｐ 21/02 Ｇ０１Ｎ 33/15 Ｚ Ｇ０１Ｎ 33/15 33/50 Ｚ 33/50 Ｃ１２Ｐ 21/08 // Ｃ１２Ｐ 21/08 Ｃ１２Ｎ 5/00 Ａ (Ｃ１２Ｐ 21/02 Ｃ１２Ｒ 1:91） (72)発明者 杉本 貫 茨城県つくば市御幸が丘21 山之内製薬株 式会社内 (72)発明者 蒲原 正純 茨城県つくば市御幸が丘21 山之内製薬株 式会社内 (72)発明者 斎藤 哲 茨城県つくば市御幸が丘21 山之内製薬株 式会社内 Ｆターム(参考） 2G045 AA34 AA40 CB01 CB21 DA13 DA36 FB03 4B024 AA01 BA63 CA04 DA02 EA04 GA14 HA01 HA15 4B064 AG20 AG27 CA10 CA19 CA20 CC24 CE02 CE04 CE06 CE07 CE09 CE11 CE12 DA01 DA08 DA13 4B065 AA90X AA93Y AB01 AC14 BA03 BA25 BB01 BD25 CA24 CA44 4H045 AA11 AA20 AA30 CA40 DA50 DA76 DA86 EA21 EA22 EA50 FA72 FA74 GA06 GA10 GA21

Claims (7)

【特許請求の範囲】
1. 【請求項１】配列番号２記載のアミノ酸配列を有するＧ
   蛋白質共役型レセプター、あるいは、該レセプターの同
   効物であるＧ蛋白質共役型レセプター。
2. 【請求項２】請求項１記載のＧ蛋白質共役型レセプター
   のアミノ酸配列をコードする遺伝子。
3. 【請求項３】請求項２記載の遺伝子を含むベクター。
4. 【請求項４】請求項３記載のベクターを含む宿主細胞。
5. 【請求項５】請求項４記載の宿主細胞を用いる請求の範
   囲１記載のＧ蛋白質共役型レセプターの製造方法。
6. 【請求項６】請求項１記載のＧ蛋白質共役型レセプター
   に対する抗体。
7. 【請求項７】請求項１記載のＧ蛋白質共役型レセプター
   と被験化合物とを接触させ、当該Ｇ蛋白質共役型レセプ
   ターの活性を修飾する物質をスクリーニングする方法。