GR1010565B - Ανιχνευση και αναλυση μεταλλαξεων rna ιων σε περιβαλλοντικα δειγματα - Google Patents

Ανιχνευση και αναλυση μεταλλαξεων rna ιων σε περιβαλλοντικα δειγματα Download PDF

Info

Publication number
GR1010565B
GR1010565B GR20210100091A GR20210100091A GR1010565B GR 1010565 B GR1010565 B GR 1010565B GR 20210100091 A GR20210100091 A GR 20210100091A GR 20210100091 A GR20210100091 A GR 20210100091A GR 1010565 B GR1010565 B GR 1010565B
Authority
GR
Greece
Prior art keywords
seq
rna
viral rna
environmental samples
nested pcr
Prior art date
Application number
GR20210100091A
Other languages
English (en)
Other versions
GR20210100091A (el
Inventor
Ανδρεας Σκοριλας
Μαργαριτης Αυγερης
Νικολαος Θωμαϊδης
Νικολαος Βουλγαρης
Παναγιωτης Αδαμοπουλος
Original Assignee
Εθνικο Και Καποδιστριακο Πανεπιστημιο Αθηνων,
Ανδρεας Σκοριλας
Μαργαριτης Αυγερης
Νικολαος Θωμαϊδης
Νικολαος Βουλγαρης
Παναγιωτης Αδαμοπουλος
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Εθνικο Και Καποδιστριακο Πανεπιστημιο Αθηνων,, Ανδρεας Σκοριλας, Μαργαριτης Αυγερης, Νικολαος Θωμαϊδης, Νικολαος Βουλγαρης, Παναγιωτης Αδαμοπουλος filed Critical Εθνικο Και Καποδιστριακο Πανεπιστημιο Αθηνων,
Priority to GR20210100091A priority Critical patent/GR1010565B/el
Priority to PCT/EP2021/057316 priority patent/WO2022171313A1/en
Priority to EP21716968.9A priority patent/EP4291684A1/en
Publication of GR20210100091A publication Critical patent/GR20210100091A/el
Publication of GR1010565B publication Critical patent/GR1010565B/el

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/70Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving virus or bacteriophage
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/70Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving virus or bacteriophage
    • C12Q1/701Specific hybridization probes

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Μέθοδος ανίχνευσης και ανάλυσης μεταλλάξεων RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα, η οποία περιλαμβάνει απομόνωση του RNA από το δείγμα, αντίστροφη μεταγραφή του απομονωθέντος RNA με τυχαία ολιγονουκλεοτίδια και nested PCR.

Description

ΑΝΙΧΝΕΥΣΗ ΚΑΙ ΑΝΑΛΥΣΗ ΜΕΤΑΛΛΑΞΕΩΝ RNA ΙΩΝ ΣΕ
ΠΕΡΙΒΑΛΛΟΝΤΙΚΑ ΔΕΙΓΜΑΤΑ
ΠΕΡΙΓΡΑΦΗ
ΤΕΧΝΙΚΟ ΠΕΔΙΟ ΤΗΣ ΕΦΕΥΡΕΣΗΣ
Η παρούσα εφεύρεση σχετίζεται με την ανίχνευση και την ανάλυση μεταλλάξεων ενός ιού και πιο συγκεκριμένα ενός RNA ιού, σε περιβαλλοντικά δείγματα.
ΥΠΟΒΑΘΡΟ ΤΗΣ ΕΦΕΥΡΕΣΗΣ
Οι ιοί RNA έχουν εμφανιστεί ως μια από τις πιο κοινές κατηγορίες παθογόνων που προκαλούν σοβαρές ασθένειες. Αυτό μπορεί να αποδοθεί στο γεγονός ότι επιδεικνύουν εντυπωσιακές δυνατότητες προσαρμογής σε διάφορα περιβάλλοντα και αντιμετωπίζουν τις προκλήσεις που συναντούν [Moratorio, G., et al., Attenuation of RNA viruses by redirecting their evolution in sequence space. Nat Microbiol, 2017. 2: p. 17088]. Αυτή η εξαιρετική ικανότητα αντιμετώπισης του ανοσοποιητικού συστήματος και των αμυντικών μηχανισμών του κυττάρου ξενιστή, καθώς επίσης και η αντοχή τους στα αντιικά φάρμακα, οφείλεται κυρίως στους εξαιρετικά υψηλούς ρυθμούς μετάλλαξής τους, οι οποίοι προκαλούνται από την απουσία μηχανισμών διόρθωσης της RNA-εξαρτώμενης πολυμεράσης, γεγονός που οδηγεί σε παράλειψη διόρθωσης των σφαλμάτων και σε αυξημένο αριθμό γενωμικών μεταλλάξεων [Simon-Loriere, Ε. and E.C. Holmes, Why do RNA viruses recombine? Nat Rev Microbiol, 2011 . 9(8): p. 617-26]. Κατά συνέπεια, ο έλεγχος των ασθενειών που προκαλούνται από ιούς RNA υπήρξε πάντα μια σημαντική πρόκληση στον τομέα της ιατρικής, επειδή τα υψηλά ποσοστά μετάλλαξης και προσαρμογής των RNA ιών μπορούν να τους κάνουν ανθεκτικούς σε νέα εμβόλια και αντιιικά φάρμακα. Παραδείγματα ιών RNA περιλαμβάνουν τους ιούς που προκαλούν το κοινό κρυολόγημα, γρίπη, SARS, MERS, ο ιος του δάγκειου πυρετού, ηπατίτιδα C, ηπατίτιδα Ε, πυρετός του Δυτικού Νείλου, Έμπολα, λύσσα, πολιομυελίτιδα, καθώς και τον πρόσφατα αναδυόμενο SARS-CoV-2.
Οι κορονοϊοί αποτελούν μια οικογένεια ιών RNA θετικού κλώνου, οι οποίοι χαρακτηρίζονται από ένα μονόκλωνο γονιδίωμα RNA μεγέθους 26-32 χιλιάδων βάσεων (kb) [Su, S., et al., Epidemiology, Genetic Recombination, and Pathogenesis of Coronaviruses. Trends Microbiol, 2016. 24(6): p. 490-502], Ένας κορονοϊός που εμφανίστηκε πρόσφατα είναι ο SARS-CoV-2, ο οποίος ήταν η αιτία μιας σειράς σοβαρών περιπτώσεων πνευμονίας άγνωστης προέλευσης, όπως ανέφεραν οι κινεζικές αρχές υγείας στα τέλη του 2019. Αναλύσεις δειγμάτων κατώτερης αναπνευστικής οδού με τεχνικές αλληλούχησης, οδήγησαν στην ταυτοποίηση ενός νέου κορονοϊού, ο οποίος εμφανίζει ομολογία αλληλουχίας σε ποσοστό > 85% με έναν ιό που προκαλεί έντονο οξύ αναπνευστικό σύνδρομο (SARS) στις νυχτερίδες και μοιάζει με κορονοϊό (CoV), ο οποίος ονομάστηκε 2019-nCoV και ορίστηκε ως το αιτιολογικό παθογόνο της νόσου COVID-19 [Zhu, Ν., et al., A Novel Coronavirus from Patients with Pneumonia in China, 2019. N Engl J Med, 2020. 382(8): p. 727-733]. Αυτό το έβδομο μέλος της οικογένειας CoV που προκαλεί ασθένεια στους ανθρώπους, χαρακτηρίστηκε περαιτέρω δείχνοντας ομολογία αλληλουχίας περίπου 79% και 50% με τον SARS-CoV στο ξέσπασμα του 2002 στην Κίνα και το αναπνευστικό σύνδρομο της Μέσης Ανατολής (MERS)-CoV του 2012 στη Μέση Ανατολή, αντίστοιχα [Lu, R., et al., Genomic characterisation and epidemiology of 2019 novel coronavirus: implications for virus origins and receptor binding. Lancet, 2020. 395(10224): p. 565-574], Ο νέος αυτός κορονοϊός ονομάστηκε SARS-CoV-2 [Coronaviridae Study Group of the International Committee on Taxonomy of, V., The species Severe acute respiratory syndrome-related coronavirus: classifying 2019-nCoV and naming it SARS-CoV-2. Nat Microbiol, 2020. 5(4): p. 536-544], εξαπλώθηκε γρήγορα στις περισσότερες χώρες παγκοσμίως, οδηγώντας στην ανακοίνωση της πανδημίας COVID-19 από τον Παγκόσμιο Οργανισμό Υγείας (ΠΟΥ) στις 12 Μαρτίου 2020.
Ο ιός SARS-CoV-2 ανήκει στο γένος beta-coronavirus, με γονιδίωμα 29,903 νουκλεοτιδίων. Η εξάπλωση του SARS-CoV-2 από άνθρωπο σε άνθρωπο συμβαίνει κυρίως μέσω είτε των αναπνευστικών σταγονιδίων που δημιουργούνται από ένα μολυσμένο άτομο που φτερνίζεται, βήχει και μιλάει, είτε με άμεση επαφή [Li, Q., et al., Early Transmission Dynamics in Wuhan, China, of Novel Coronavirus-lnfected Pneumonia. N Engl J Med, 2020. 382(13): p. 1199-1207], Ωστόσο, η ανίχνευση του SARS-CoV-2 στα κόπρανα των ασθενών [Wang, W., et al., Detection of SARS-CoV-2 in Different Types of Clinical Specimens. JAMA, 2020. 323(18): p. 1843-1844] καθώς και σε μη επεξεργασμένα λύματα [Ahmed, W., et al., First confirmed detection of SARS-CoV-2 in untreated wastewater in Australia: A proof of concept for the wastewater surveillance of COVID-19 in the community. Sci Total Environ, 2020. 728: p. 138764] έχει εγείρει ερωτήματα σχετικά με τους τρόπους μετάδοσης [Heller, L., C.R. Mota, and D.B. Greco, COVID-19 faecal-oral transmission: Are we asking the right questions? Sci Total Environ, 2020. 729: p. 138919].
Λόγω της έλλειψης ανοσίας, εμβολίων και αποτελεσματικής θεραπείας, η ταυτοποίηση και απομόνωση των ασθενών με COVID-19 υιοθετήθηκε άμεσα σε παγκόσμιο επίπεδο και εξακολουθεί να παραμένει η κύρια προσέγγιση για τη διαχείριση της ασθένειας. Παρόλο που οι συνολικοί πόροι των συστημάτων υγειονομικής περίθαλψης χρησιμοποιούνται σχεδόν αποκλειστικά για την αντιμετώπιση των διαγνωστικών αναγκών, μόνο συμπτωματικές και ύποπτες περιπτώσεις υφίστανται έλεγχο μέχρι στιγμής στις περισσότερες χώρες. Συνεπώς, η ανικανότητα για διαγνωστικό έλεγχο σε ολόκληρο τον πληθυσμό, καθώς και ο υψηλός ρυθμός μετάδοσης του SARS-CoV-2, έχουν οδηγήσει σε εκθετική αύξηση των μολυσμένων ατόμων, συσσώρευση ασθενών στα νοσοκομεία και υψηλό ποσοστό θνησιμότητας από COVID-19 [Sharfstein, J.M., S.J. Becker, and Μ. Μ. Mello, Diagnostic Testing for the Novel Coronavirus. JAMA, 2020. 323(15): p. 1437-1438].
Εκτός από την ανίχνευση μιας ενεργού λοίμωξης, η διαθεσιμότητα γονιδιωματικών ιικών αλληλουχιών θα μπορούσε να βελτιώσει σημαντικά την κατανόησή μας σχετικά με την εξέλιξη και την εξάπλωση των ιών RNA, όπως ο SARS-CoV-2, να διευκολύνει την αναγνώριση στελεχών με επιλεκτικό πλεονέκτημα και να παρέχει ένα εργαλείο διαστρωμάτωσης κινδύνου για την μολυσματικότητα αυτών των ιών τόσο σε επίπεδο μεμονωμένων ασθενών, όσο και σε επίπεδο κοινότητας / έθνους. Γονιδιώματα SARS-CoV-2 που προέρχονατι από άτομα θετικά για COVID-19, κατατίθενται στη βάση δεδομένων GISAID (https:bwww.gisaid.org/) και αναλύονται από το Nextstrain (https://nextstrain.org/sars-cov-2).
Μεταλλάξεις στην πρωτεΐνη της ακίδας (S), μια τριμερή γλυκοπρωτεΐνη της επιφάνειας των ιοσωματίων, η οποία χρησιμοποιείται από το SARS-CoV-2 για να αλληλεπιδράσει με τον υποδοχέα ACE2 των κυττάρων στόχων [Hoffmann, Μ., et al., SARS-CoV-2 Cell Entry Depends on ACE2 and TMPRSS2 and Is Blocked by a Clinically Proven Protease Inhibitor. Cell, 2020. 181 (2): p. 271-280 e8], έχει ήδη επιβεβαιωθεί πως επηρεάζουν την μολυσματικότητα, την μετάδοση, καθώς και την ικανότητα του SARS-CoV-2 να διαφεύγει της ανοσοεπιτήρησης [Korber, Β., et al., Tracking Changes in SARS-CoV-2 Spike: Evidence that D614G Increases Infectivity of the COVID-19 Virus. Cell, 2020. 182(4): p. 812-827 e19. and Li, Q., et al., The Impact of Mutations in SARS-CoV-2 Spike on Viral Infectivity and Antigenicity. Cell, 2020. 182(5): p. 1284-1294 e9].
Η επιδημιολογία με βάση την ανάλυση περιβαλλοντικών δειγμάτων, όπως η επιδημιολογία με βάση τα λύματα (WBE), έχει εφαρμοστεί με επιτυχία σε πολλές μελέτες παγκοσμίως, με την πιο σημαντική εφαρμογή μέχρι στιγμής να είναι η εκτίμηση της κατανάλωσης ναρκωτικών ουσιών. [Gonzalez-Marino, I., et al., Spatiotemporal assessment of illicit drug use at large scale: evidence from 7 years of international wastewater monitoring. Addiction, 2020. 115(1): p. 109-120]. Αν και o έλεγχος WBE δεν μπορεί να αντικαταστήσει τον κλινικό έλεγχο και τη διάγνωση, εξακολουθεί να αντιπροσωπεύει έναν πολύ φθηνότερο και γρηγορότερο τρόπο επιτήρησης της νόσου σε επίπεδο πληθυσμού, χωρίς σφάλματα από θα μπορούσαν να προέρχονται από την επιλογή ατόμων. Κατά τον τρόπο αυτό, ο έλεγχος WBE θα μπορούσε για παράδειγμα να ανιχνεύσει ασυμπτωματικούς φορείς του ιού που είναι λιγότερο πιθανό να υποβληθούν σε διαγνωστικά τεστ και συμπτωματικούς ασθενείς που αποφεύγουν τα τεστ λόγω στιγματισμού και κοινωνικής απομόνωσης, καθώς επίσης να παρέχει επιτήρηση των σημαντικών γενωμικών παραλλαγών / στελέχων του ιού σε επίπεδο πληθυσμού και σε πραγματικό χρόνο.
Παρά το όφελος της ανάλυσης περιβαλλοντικών δειγμάτων, όπως τα λύματα, για την αποτελεσματική παρακολούθηση του ιού στον πληθυσμό, έχουν προκύψει αρκετές προκλήσεις, που οδηγούν σε σοβαρούς περιορισμούς στην ακρίβεια ανίχνευσης ιών RNA, όπως το SARS-CoV-2 [Alygizakis, Ν., et al., Analytical methodologies for the detection of SARS-CoV-2 in wastewater: Protocols and future perspectives. Trends Analyt Chem, 2020: p. 116125]. Πρώτα απ 'όλα, τα χαρακτηριστικά του σημείου δειγματοληψίας μπορεί να έχουν άμεση επίδραση στην ανίχνευση του ιού. Πιο συγκεκριμένα, οι βιομηχανικές επιρροές, οι μεταβολές του pH στο σημείο της δειγματοληψίας, καθώς και οι απορροές βροχής μπορούν να επηρεάσουν την ποιότητα του δείγματος και επομένως να έχουν τεράστια επίδραση στην αποτελεσματικότητα ανίχνευσης του ιού. Επιπλέον, ο όγκος του δείγματος και η μέθοδος δειγματοληψίας είναι δύο σημαντικοί παράγοντες για την ανίχνευση ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα. Αν και έχουν αναπτυχθεί αρκετά πρωτόκολλα για την αύξηση του όγκου του δείγματος (για παράδειγμα, διήθηση ασκού και σύνθετη δειγματοληψία) προκειμένου να αυξηθεί η πιθανότητα ανίχνευσης του ιού, αυτά τα δείγματα είναι συχνά δύσκολά στο χειρισμό τους στο εργαστήριο [Larsen, D.A. and K.R. Wigginton, Tracking COVID-19 with wastewater. Nat Biotechnol, 2020. 38(10): p. 1151-1153],
Μια άλλη σημαντική πρόκληση σχετικά με την ανίχνευση ιών RNA σε περιβαλλοντικά δείγματα, όπως τα λύματα, είναι η μειωμένη σταθερότητα του RNA του ιού, η οποία δεν παρατηρείται σε ανθρώπινα δείγματα. Γ ια παράδειγμα, η επί του παρόντος καθιερωμένη μέθοδος ανίχνευσης και ελέγχου SARS-CoV-2 σε ανθρώπινα δείγματα περιλαμβάνει ένα στάδιο απομόνωσης του RNA από ένα ρινοφαρυγγικό στυλεό, το οποίο ακολουθείται από μια αντίδραση αντίστροφης μεταγραφήςποσοτικής αλυσιδωτής αντίδρασης πολυμεράσης (RT-qPCR) που πραγματοποιείται σε ένα στάδιο για την ανίχνευση του ιικού RNA. Αυτή η προσέγγιση περιλαμβάνει τη χρήση ειδικών για τον ιό εκκινητών RT, με αποτέλεσμα μόνο τη σύνθεση μορίων cDNA του ιικού mRNA, τα οποία στη συνέχεια αξιοποιούνται ως εκμαγεία για την αντίδραση qPCR. Ωστόσο, λόγω της φύσης των περιβαλλοντικών δειγμάτων, η υπάρχουσα θερμοκρασία και το pH στην περιοχή της δειγματοληψίας μπορούν να προκαλέσουν τυχαία αποικοδόμηση του ιικού RNA, οδηγώντας έτσι σε σοβαρούς περιορισμούς όσον αφορά την ανίχνευση με συγκεκριμένη μεθοδολογία RT-qPCR ενός σταδίου.
Επομένως, υπάρχει ακόμη η ανάγκη για την ανάπτυξη βελτιωμένης μεθόδου για την ανίχνευση RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα, η οποία θα ξεπερνά τα μειονεκτήματα των προηγούμενων μεθόδων.
ΠΕΡΙΛΗΨΗ ΤΗΣ ΕΦΕΥΡΕΣΗΣ
Η παρούσα εφεύρεση παρέχει μια μέθοδο για την ανίχνευση RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα, η οποία περιλαμβάνει απομόνωση του RNA από το δείγμα, αντίστροφη μεταγραφή του απομονωμένου RNA με τυχαία ολιγονουκλεοτίδια για να δημιουργηθεί το συμπληρωματικό DNA (cDNA) και πραγματοποίηση nested PCR.
Η παρούσα εφεύρεση παρέχει περαιτέρω μια μέθοδο για την ανάλυση μεταλλάξεων RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα, και περιλαμβάνει απομόνωση του RNA από το δείγμα, αντίστροφη μεταγραφή του εκχυλισμένου RNA με τυχαία ολιγονουκλεοτίδια για να δημιουργηθεί το συμπληρωματικό DNA (cDNA), πραγματοποίηση nested PCR και προσδιορισμός της αλληλουχίας των προϊόντων PCR χρησιμοποιώντας μαζικά παράλληλη αλληλούχηση.
Η παρούσα εφεύρεση παρέχει περαιτέρω μια μέθοδο για την ανίχνευση του ιού SARS-CoV-2 σε περιβαλλοντικά δείγματα, η οποία περιλαμβάνει απομόνωση του RNA από το δείγμα, αντίστροφη μεταγραφή του απομονωμένου RNA με τυχαία ολιγονουκλεοτίδια για να δημιουργηθεί το συμπληρωματικό DNA (cDNA) και πραγματοποίηση nested PCR.
Η παρούσα εφεύρεση παρέχει περαιτέρω μια μέθοδο για την ανάλυση μεταλλάξεων του ιού SARS-CoV-2 σε περιβαλλοντικά δείγματα, και περιλαμβάνει απομόνωση του RNA από το δείγμα, αντίστροφη μεταγραφή του εκχυλισμένου RNA με τυχαία ολιγονουκλεοτίδια για να δημιουργηθεί το συμπληρωματικό DNA (cDNA), πραγματοποίηση nested PCR και προσδιορισμός της αλληλουχίας των προϊόντων PCR χρησιμοποιώντας μαζικά παράλληλη αλληλούχηση.
Η παρούσα εφεύρεση παρέχει περαιτέρω “«kit»” για την ανίχνευση της παρουσίας SARS-CoV-2 ή για την ανίχνευση ορισμένων μεταλλάξεων του SARS-CoV-2 σε ένα δείγμα με τη χρήση nested PCR.
ΣΥΝΤΟΜΗ ΠΕΡΙΓΡΑΦΗ ΤΩΝ ΕΙΚΟΝΩΝ Η Εικόνα 1 δείχνει ηλεκτροφόρηση σε πήκτωμα αγαρόζης προϊόντων PCR από τη δοκιμασία που βασίζεται στο CDC / 2019-nCoV_N1 και από προσδιορισμούς της παρούσας εφεύρεσης.
Η Εικόνα 2 δείχνει ηλεκτροφόρηση σε πήκτωμα αγαρόζης προϊόντων PCR από προσδιορισμούς της παρούσας εφεύρεσης.
Η Εικόνα 3 δείχνει καμπύλες ποσοτικοποίησης και πρότυπες καμπύλες αναφοράς από προσδιορισμούς nested PCR πραγματικού χρόνου της παρούσας εφεύρεσης.
Η Εικόνα 4 δείχνει καμπύλες ποσοτικοποίησης και πρότυπες καμπύλες αναφοράς από προσδιορισμούς nested PCR πραγματικού χρόνου της παρούσας εφεύρεσης.
Η Εικόνα 5 δείχνει ηλεκτροφόρηση σε πήκτωμα αγαρόζης προϊόντων PCR από προσδιορισμούς nested PCR της παρούσας εφεύρεσης.
Οι Εικόνες 6-19 δείχνουν περιοχές του RNA του SARS-CoV-2.
ΑΝΑΛΥΤΙΚΗ ΠΕΡΙΓΡΑΦΗ ΤΗΣ ΕΦΕΥΡΕΣΗΣ
Η ανίχνευση RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα παρουσιάζει ορισμένες προκλήσεις, οι οποίες δεν υπάρχουν σε δείγματα που λαμβάνονται από ένα άτομο, για παράδειγμα από έναν ανθρώπινο οργανισμό. Έτσι, η ποιότητα του δείγματος μπορεί να επηρεαστεί από περιβαλλοντικούς ή άλλους παράγοντες. Επιπρόσθετα, η σταθερότητα του RNA του ιού στο περιβάλλον μειώνεται, με αποτέλεσμα να δημιουργούνται διάφορα προϊόντα αποσύνθεσης. Επομένως, μια μέθοδος για την ανίχνευση ή την ανάλυση μεταλλάξεων RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα πρέπει να εμφανίζει υψηλή ειδικότητα και ευαισθησία.
Η παρούσα εφεύρεση παρέχει μια μέθοδο για την ανίχνευση RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα, και περιλαμβάνει τα εξής στάδια:
α) απομόνωση του RNA από το δείγμα,
β) αντίστροφη μεταγραφή του απομονωμένου RNA με τυχαία ολιγονουκλεοτίδια για τη δημιουργία συμπληρωματικού DNA (cDNA),
γ) πραγματοποίηση μιας nested PCR, η οποία στοχεύει μια περιοχή του RNA ιού, δ) ανίχνευση του προϊόντος της nested PCR.
Ένας ιός RNA είναι ένας ιός που έχει RNA ως γενετικό υλικό. Κατά προτίμηση, ο ιός RNA επιλέγεται από ιούς που προκαλούν κοινό κρυολόγημα, γρίπη, SARS, MERS, Ιό δάγκειου πυρετού, ηπατίτιδα C, ηπατίτιδα Ε, πυρετός του Δυτικού Νείλου, Έμπολα, λύσσα, πολιομυελίτιδα και SARS-CoV-2. Προτιμότερο είναι ο ιός RNA να είναι ο SARS-CoV-2.
Ο όρος «περιβαλλοντικό δείγμα» αναφέρεται σε ένα δείγμα που λαμβάνεται από μια μη βιολογική πηγή, όπως έδαφος, λάσπη ή νερό. Σε ορισμένες περιπτώσεις, το περιβαλλοντικό δείγμα είναι δείγμα νερού που λαμβάνεται από φυσικό περιβάλλον ή από βιομηχανικό, υγειονομικό ή οικιστικό περιβάλλον. Κατά προτίμηση, το περιβαλλοντικό δείγμα είναι δείγμα λυμάτων.
Η απομόνωση του RNA από το περιβαλλοντικό δείγμα μπορεί να διεξαχθεί χρησιμοποιώντας πολύ γνωστές μεθόδους, όπως η απομόνωση RNA με βάση μαγνητικά σφαιρίδια, ή στήλη πυριτίου ή με χρήση ισοθειοκυανικής γουανιδίνηςφαινόλης-χλωροφόρμιου. Όταν το περιβαλλοντικό δείγμα αποτελεί δείγμα λυμάτων, πριν την απομόνωση του RNA μπορεί να προηγηθεί, σύμφωνα με μια εφαρμογή της εφεύρεσης, από μια συμπύκνωση του δείγματος που μπορεί να πραγματοποιηθεί χρησιμοποιώντας γνωστές μεθόδους, όπως υπερδιήθηση ή η καταβύθιση πολυαιθυλενογλυκόλης (PEG).
Το απομονωμένο RNA υποβάλλεται σε αντίδραση αντίστροφης μεταγραφής με τυχαία ολιγονουκλεοτίδια. Τυχαία ολιγονουκλεοτίδια συντίθενται εντελώς τυχαία για να δημιουργηθεί ένα πλήθος αλληλουχιών που έχουν τη δυνατότητα να υβριδοποιηθούν σε πολλές τυχαίες περιοχές ενός εκμαγείου RNA και να δρουν ως εκκινητής για να ξεκινήσει η σύνθεση μονόκλωνου cDNA. Τα ολιγονουκλεοτίδια αυτά αναφέρονται επίσης συνήθως ως τυχαίοι εκκινητές. Κατά προτίμηση, τα τυχαία ολιγονουκλεοτίδια είναι εξαμερή.
To cDNA υποβάλλεται σε nested PCR. Η nested PCR είναι μια πολύ γνωστή παραλλαγή της PCR, η οποία περιλαμβάνει δύο ομάδες εκκινητών που χρησιμοποιούνται σε δύο διαδοχικές αντιδράσεις PCR. Το πρώτο σετ εκκινητών (ονομάζονται επίσης εξωτερικοί εκκινητές), χρησιμοποιείται σε μια αρχική αντίδραση PCR. Στη συνέχεια, τα αμπλικονίων που προέκυψαν από την πρώτη αντίδραση PCR χρησιμοποιούνται ως εκμαγεία για ένα δεύτερο σύνολο εκκινητών (που ονομάζονται επίσης εσωτερικοί εκκινητές) και για μια δεύτερη αντίδραση PCR. Έτσι, μια μεθοδολογία nested PCR περιλαμβάνει τη χρήση δύο ζευγών εκκινητών και δύο αντιδράσεων PCR. Το προϊόν της δεύτερης αντίδρασης PCR είναι το προϊόν της nested PCR.
Η ανίχνευση του προϊόντος της nested PCR μπορεί να πραγματοποιηθεί ποιοτικά ή ποσοτικά, χρησιμοποιώντας μεθόδους πολύ γνωστές στον κλάδο. Όταν η ανίχνευση διεξάγεται ποιοτικά, μπορεί να πραγματοποιηθεί για παράδειγμα, με ηλεκτροφόρηση σε πήκτωμα αγαρόζης. Όταν η ανίχνευση διεξάγεται ποσοτικά, μπορεί να πραγματοποιηθεί, για παράδειγμα, με χρήση ενός ιχνηθέτη φθορισμού, όπως ένας ιχνηθέτης ειδικός για συγκεκριμένη αλληλουχία.
Η μέθοδος nested PCR έχει σχεδιαστεί για να στοχεύει μια περιοχή του RNA του ιού. Αυτό σημαίνει ότι οι εκκινητές της μεθοδολογίας nested PCR έχουν σχεδιαστεί για να ενισχύουν μόνο cDNA, το οποίο είναι συμπληρωματικό προς μια περιοχή του RNA του ιού.
Σύμφωνα με μια προτιμώμενη υλοποίηση της παρούσας εφεύρεσης, εάν το αποτέλεσμα της πρώτης nested PCR είναι αρνητικό, δηλαδή εάν δεν ανιχνευθεί cDNA συμπληρωματικό προς το RNA του ιού, το δείγμα υποβάλλεται σε δεύτερη nested PCR που στοχεύει μια δεύτερη περιοχή του RNA του ιού. Εάν δεν ανιχνευθεί cDNA συμπληρωματικό προς το RNA του ιού μετά τη δεύτερη nested PCR, το δείγμα υποβάλλεται σε τρίτη nested PCR που στοχεύει μια τρίτη περιοχή του RNA του ιού. Εάν δεν ανιχνευθεί cDNA συμπληρωματικό του RNA του ιού μετά την τρίτη nested PCR, το δείγμα υποβάλλεται σε τέταρτη nested PCR που στοχεύει μια τέταρτη περιοχή του RNA του ιού. Η πρώτη, δεύτερη τρίτη και τέταρτη περιοχή του RNA του ιού είναι διαφορετικές περιοχές του RNA του ιού, πράγμα που σημαίνει ότι δεν υπάρχει αλληλοεπι κάλυψη μεταξύ των περιοχών.
Η παρούσα εφεύρεση παρέχει περαιτέρω μια μέθοδο για την ανίχνευση μιας μετάλλαξης RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα, και περιλαμβάνει τα στάδια: α) απομόνωση του RNA από το δείγμα,
β) αντίστροφη μεταγραφή του απομονωμένου RNA με τυχαία ολιγονουκλεοτίδια για τη δημιουργία συμπληρωματικού DNA (cDNA)
γ) πραγματοποίηση μιας nested PCR που στοχεύει μια περιοχή του RNA ιού, η οποία περιλαμβάνει μια θέση παραλλαγής ενδιαφέροντος,
δ) ανίχνευση του προϊόντος της nested PCR,
ε) αλληλούχηση του προϊόντος της nested PCR με τη χρήση μαζικά παράλληλης αλληλούχησης.
Η μαζικά παράλληλη αλληλούχηση ονομάζεται επίσης αλληλούχηση επόμενης γενιάς (NGS) ή αλληλούχηση δεύτερης γενιάς και περιλαμβάνει προσεγγίσεις υψηλής απόδοσης στην αλληλούχηση DNA. Συνήθως, η μαζική παράλληλη αλληλούχηση περιλαμβάνει τη δημιουργία DNA βιβλιοθηκών αλληλούχησης με PCR, την αλληλούχηση με σύνθεση του DNA και την ταυτόχρονη αλληλούχηση διαχωρισμένων, ενισχυμένων εκμαγείων DNA με μαζικά παράλληλο τρόπο χωρίς την απαίτηση για ένα στάδιο φυσικού διαχωρισμού. Ένα παράδειγμα μαζικής παράλληλης αλληλούχησης που μπορεί να χρησιμοποιηθεί σύμφωνα με την παρούσα εφεύρεση είναι η αλληλούχηση αμπλικονίου ή το στοχευμένο DNA-seq.
Σύμφωνα με μια προτιμώμενη πραγματοποίηση της παρούσας εφεύρεσης, ο ιός RNA είναι ο SARS-CoV-2.
Η παρούσα εφεύρεση παρέχει επίσης γονιδιωματικές περιοχές του SARS-CoV-2, οι οποίες μπορούν να χρησιμοποιηθούν ως στόχοι για τις nested PCR. Δηλαδή, οι παρόντες εφευρέτες έχουν βρει ότι οι περιοχές του RNA του SARS-CoV-2 που αποτελούνται από οποιαδήποτε από τις SEQ ID NO: 1 - 70 εμφανίζουν υψηλότερη σταθερότητα σε σύγκριση με άλλες περιοχές. Αυτό σημαίνει ότι μια περιοχή που αποτελείται από οποιοδήποτε από τα SEQ ID NO: 1 - 70 είναι πιο πιθανό να υπάρχει σε ένα περιβαλλοντικό δείγμα που περιλαμβάνει SARS-CoV-2 και επομένως είναι καλύτερος στόχος για μια nested PCR σε σύγκριση με άλλες περιοχές του RNA του ιού.
Έτσι, κατά προτίμηση, η nested PCR της παρούσας εφεύρεσης, ή οποιαδήποτε nested PCR, εάν χρησιμοποιούνται περισσότερες από μία δοκιμασίες, στοχεύει μια περιοχή του RNA του SARS-CoV-2 που αποτελείται από οποιαδήποτε από τις SEQ ID NO: 1 - 70 (όπως φαίνεται στα σχήματα 6-19). Πιο ιδανικά, η nested PCR της παρούσας εφεύρεσης ή οποιοσδήποτε nested PCR, εάν χρησιμοποιούνται περισσότερες από μία δοκιμασίες, στοχεύει μια περιοχή του RNA του SARS-CoV-2 που αποτελείται από οποιαδήποτε από τις SEQ ID NO: 1 - 36. Ακόμη πιο ιδανικά, η nested PCR της παρούσας εφεύρεσης ή οποιαδήποτε nested PCR, εάν χρησιμοποιούνται περισσότερες από μία δοκιμασίες, στοχεύει μια περιοχή του RNA του SARS-CoV-2 που αποτελείται από την SEQ ID NO: 1 - 24. Ιδανικότερα, η nested PCR της παρούσας εφεύρεσης ή οποιαδήποτε nested PCR, εάν χρησιμοποιούνται περισσότερες από μία δοκιμασίες, στοχεύει μια περιοχή του RNA του SARS-CoV-2 που αποτελείται από οποιαδήποτε από τις SEQ ID NO: 2, 4, 8, 11, 14, 15, 18, 19. Όταν χρησιμοποιούνται περισσότερες από μία nested PCR, κάθε δοκιμασία στοχεύει σε μια διαφορετική περιοχή του RNA του ιού.
Η παρούσα εφεύρεση παρέχει επιπλέον ζεύγη εκκινητών που μπορούν να χρησιμοποιηθούν στις nested PCR για την ανίχνευση του SARS-CoV-2 σε περιβαλλοντικά δείγματα.
Σύμφωνα με μια προτιμώμενη πραγματοποίηση, ο πρόσθιος και ο ανάστροφος εκκινητής της πρώτης αντίδρασης (εξωτερικό σετ) της nested PCR αποτελείται από SEQ ID NO: 71 και SEQ ID NO: 72 αντίστοιχα, ενώ ο πρόσθιος και ο ανάστροφο εκκινητής της δεύτερης αντίδρασης ( το εσωτερικό σετ) της nested PCR αποτελείται από SEQ ID NO: 73 και SEQ ID NO: 74, αντίστοιχα. Όταν η ανίχνευση των προϊόντων της nested PCR διεξάγεται ποσοτικά, ο ανιχνευτής είναι ένας ιχνηθέτης φθορισμού FAM-BHQ1 που αποτελείται από SEQ ID NO: 75.
Σύμφωνα με μια ακόμη προτιμώμενη πραγματοποίηση, ο πρόσθιος και ο ανάστροφος εκκινητής της πρώτης αντίδρασης (εξωτερικό σετ) της nested PCR αποτελείται από SEQ ID NO: 76 και SEQ ID NO: 77 αντίστοιχα, ενώ ο πρόσθιος και ο ανάστροφο εκκινητής της δεύτερης αντίδρασης ( το εσωτερικό σετ) της nested PCR αποτελείται από SEQ ID NO: 78 και SEQ ID NO: 79, αντίστοιχα. Όταν η ανίχνευση των προϊόντων της nested PCR διεξάγεται ποσοτικά, ο ανιχνευτής είναι ένας ιχνηθέτης φθορισμού FAM-BHQ1 που αποτελείται από SEQ ID NO: 80.
Σύμφωνα με μια ακόμη προτιμώμενη πραγματοποίηση, ο πρόσθιος και ο ανάστροφος εκκινητής της πρώτης αντίδρασης (εξωτερικό σετ) της nested PCR αποτελείται από SEQ ID NO: 81 και SEQ ID NO: 82 αντίστοιχα, ενώ ο πρόσθιος και ο ανάστροφο εκκινητής της δεύτερης αντίδρασης ( το εσωτερικό σετ) της nested PCR αποτελείται από SEQ ID NO: 83 και SEQ ID NO: 84, αντίστοιχα. Όταν η ανίχνευση των προϊόντων της nested PCR διεξάγεται ποσοτικά, ο ανιχνευτής είναι ένας ιχνηθέτης φθορισμού FAM-BFIQ1 που αποτελείται από SEQ ID NO: 85.
Σύμφωνα με μια ακόμη προτιμώμενη πραγματοποίηση, ο πρόσθιος και ο ανάστροφος εκκινητής της πρώτης αντίδρασης (εξωτερικό σετ) της nested PCR αποτελείται από SEQ ID NO: 86 και SEQ ID NO: 87 αντίστοιχα, ενώ ο πρόσθιος και ο ανάστροφο εκκινητής της δεύτερης αντίδρασης ( το εσωτερικό σετ) της nested PCR αποτελείται από SEQ ID NO: 88 και SEQ ID NO: 89, αντίστοιχα. Όταν η ανίχνευση των προϊόντων της nested PCR διεξάγεται ποσοτικά, ο ανιχνευτής είναι ένας ιχνηθέτης φθορισμού FAM-BFIQ1 που αποτελείται από SEQ ID NO: 90.
FI παρούσα εφεύρεση παρέχει περαιτέρω ένα “kit” για την ανίχνευση της παρουσίας SARS-CoV-2 σε ένα δείγμα, όπως ένα περιβαλλοντικό δείγμα, με nested PCR, όπου το “kit” περιλαμβάνει:
a) τέσσερα ολιγονουκλεοτίδια που αποτελούνται από SEQ ID NO: 71 , SEQ ID NO: 72, SEQ ID NO: 73, SEQ ID NO: 74 αντίστοιχα και προαιρετικά έναν ιχνηθέτη φθορισμού που αποτελείται από SEQ ID NO: 75, ή b) τέσσερα ολιγονουκλεοτίδια που αποτελούνται από SEQ ID NO: 76, SEQ ID NO: 77, SEQ ID NO: 78, SEQ ID NO: 79 αντίστοιχα και προαιρετικά έναν ιχνηθέτη φθορισμού που αποτελείται από SEQ ID NO: 80, ή c) τέσσερα ολιγονουκλεοτίδια που αποτελούνται από SEQ ID NO: 81 , SEQ ID NO: 82, SEQ ID NO: 83, SEQ ID NO: 84 αντίστοιχα και προαιρετικά έναν ιχνηθέτη φθορισμού που αποτελείται από SEQ ID NO: 85, ή d) τέσσερα ολιγονουκλεοτίδια που αποτελούνται από SEQ ID NO: 86, SEQ ID NO: 87, SEQ ID NO: 88, SEQ ID NO: 89 αντίστοιχα και προαιρετικά έναν ιχνηθέτη φθορισμού που αποτελείται από SEQ ID NO: 90. Κατά προτίμηση, το “kit” περιλαμβάνει τουλάχιστον δύο από τα a), b), c) και d), ακόμη προτιμότερα, το “kit” περιλαμβάνει τουλάχιστον τρία από τα a), b), c) και d) και ιδανικά, το “kit” περιλαμβάνει a), b), c) και d).
Η παρούσα εφεύρεση παρέχει επιπλέον ζεύγη εκκινητών που μπορούν να χρησιμοποιηθούν στις nested PCR για την ανίχνευση ορισμένων μεταλλάξεων του SARS-CoV-2 σε περιβαλλοντικά δείγματα σύμφωνα με την παρούσα εφεύρεση.
Σύμφωνα με μια προτιμώμενη πραγματοποίηση, για την ανίχνευση της παρερμηνεύσιμης μετάλλαξης D614G (23403A>G) στο γονίδιο S, ο πρόσθιος και ανάστροφος εκκινητής της πρώτης αντίδρασης (εξωτερικό σετ) της nested PCR αποτελούνται από SEQ ID NO: 91 και SEQ ID NO: 92 αντίστοιχα, και ο πρόσθιος και ανάστροφος εκκινητής της δεύτερης αντίδρασης (εσωτερικό σετ) της nested PCR αποτελούνται από SEQ ID NO: 93 και SEQ ID NO: 94 αντίστοιχα.
Σύμφωνα με μια προτιμώμενη πραγματοποίηση, για την ανίχνευση της παρερμηνεύσιμης μετάλλαξης Q57H (25563G>T) στο γονίδιο ORF3a, ο πρόσθιος και ανάστροφος εκκινητής της πρώτης αντίδρασης (εξωτερικό σετ) της nested PCR αποτελούνται από SEQ ID NO: 95 και SEQ ID NO: 96 αντίστοιχα, και ο πρόσθιος και ανάστροφος εκκινητής της δεύτερης αντίδρασης (εσωτερικό σετ) της nested PCR αποτελούνται από SEQ ID NO: 97 και SEQ ID NO: 98 αντίστοιχα.
Σύμφωνα με μια προτιμώμενη πραγματοποίηση, για την ανίχνευση της παρερμηνεύσιμης μετάλλαξης P323L (14408C>T) στο γονίδιο ORF1ab/RdRP, ο πρόσθιος και ανάστροφος εκκινητής της πρώτης αντίδρασης (εξωτερικό σετ) της nested PCR αποτελούνται από SEQ ID NO: 99 και SEQ ID NO: 100 αντίστοιχα, και ο πρόσθιος και ανάστροφος εκκινητής της δεύτερης αντίδρασης (εσωτερικό σετ) της nested PCR αποτελούνται από SEQ ID NO: 101 και SEQ ID NO: 102 αντίστοιχα.
Σύμφωνα με μια προτιμώμενη πραγματοποίηση, για την ανίχνευση της παρερμηνεύσιμης μετάλλαξης R203K (28881 G>A) και G204R (28883G>C) στο γονίδιο Ν, ο πρόσθιος και ανάστροφος εκκινητής της πρώτης αντίδρασης (εξωτερικό σετ) της nested PCR αποτελούνται από SEQ ID NO: 103 και SEQ ID NO: 104 αντίστοιχα, και ο πρόσθιος και ανάστροφος εκκινητής της δεύτερης αντίδρασης (εσωτερικό σετ) της nested PCR αποτελούνται από SEQ ID NO: 105 και SEQ ID NO: 106 αντίστοιχα.
Η παρούσα εφεύρεση παρέχει περαιτέρω ένα “kit” για την ανίχνευση μιας μετάλλαξης του SARS-CoV-2 σε ένα δείγμα, όπως ένα περιβαλλοντικό δείγμα, με nested PCR, όπου το “kit” περιλαμβάνει
τέσσερα ολιγονουκλεοτίδια που αποτελούνται από SEQ ID NO: 91 , SEQ ID NO: 92, SEQ ID NO: 93, SEQ ID NO: 94 αντίστοιχα, ή
τέσσερα ολιγονουκλεοτίδια που αποτελούνται από SEQ ID NO: 95, SEQ ID NO: 96, SEQ ID NO: 97, SEQ ID NO: 98 αντίστοιχα, ή
τέσσερα ολιγονουκλεοτίδια που αποτελούνται από SEQ ID NO: 99, SEQ ID NO: 100, SEQ ID NO: 101 , SEQ ID NO: 102 αντίστοιχα, ή
τέσσερα ολιγονουκλεοτίδια που αποτελούνται από SEQ ID NO: 103, SEQ ID NO: 104, SEQ ID NO: 105, SEQ ID NO: 106 αντίστοιχα.
Η παρούσα εφεύρεση επιτρέπει την ανίχνευση ενός ιού RNA, όπως ο SARS-CoV-2, με υψηλή ειδικότητα και εκλεκτικότητα ακόμη και όταν ο ιός υπάρχει σε ένα περιβαλλοντικό δείγμα σε πολύ μικρές συγκεντρώσεις. Επιπλέον, η παρούσα εφεύρεση επιτρέπει την ταυτοποίηση του προφίλ μεταλλάξεων και του γονιδιωματικού προφίλ RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα, το οποίο αντιπροσωπεύει μια αποτελεσματική και οικονομικά αποδοτική προσέγγιση για τη δημιουργία ενός συστήματος έγκαιρης προειδοποίησης για την παρακολούθηση της γονιδιωματικής επιδημιολογίας ενός ιού RNA στο επίπεδο κοινότητας / πληθυσμού.
ΠΑΡΑΔΕΙΓΜΑΤΑ
Παράδειγμα 1
Ανάλυση σταθερότητας του RNA του SARS-CoV-2
Η ανάλυση σταθερότητας του RNA του SARS-CoV-2 με χρήση υπολογιστή, πραγματοποιήθηκε με τον αλγόριθμο ScanFold [Andrews, R.J., J. Roche, and W.N. Moss, ScanFold: an approach for genome-wide discovery of local RNA structural elements-applications to Zika virus and HIV. PeerJ, 2018. 6: p. e6136], ο οποίος μπορεί να χρησιμοποιηθεί για να προσδιορίσει τα δομικά χαρακτηριστικά των ιικών μεταγραφωμάτων. Πιο συγκεκριμένα, το γονιδίωμα αναφοράς Wuhan-Hu-1 (NC_045512.2) αναλύθηκε με τον αλγόριθμο Scan Fold-Scan, χρησιμοποιώντας περιοχές 300 νουκλεοτιδίων και βήμα ανάλυσης ίσο με 150 νουκλεοτίδια, οδηγώντας έτσι στην ανάλυση 198 διαφορετικών περιοχών του γονιδιώματος. Οι περιοχές αυτές αναλύθηκαν με τον αλγόριθμο RNAfold, ο οποίος συμπεριλαμβάνεται στο πακέτο εφαρμογών ViennaRNA. Για κάθε περιοχή ανάλυσης, υπολογίστηκε η δομή με βάση την ελάχιστη ελεύθερη ενέργεια (MFE) ΔG°, η τιμή της οποίας προβλέφθηκε χρησιμοποιώντας το μοντέλο ενέργειας Τ urner στους 18°C. Γ ια το χαρακτηρισμό της MFE κάθε περιοχής 300 νουκλεοτιδίων του γονιδιώματος του ιού, υπολογίστηκε η τιμή ΔG° z-score για κάθε περιοχή. Ο αλγόριθμος ScanFold χρησιμοποιεί κάθε προβλεπόμενη τιμή MFE της αλληλουχίας προς ανάλυση (MFEnative) και τη συγκρίνει με τιμές MFE από 100 τυχαίες εκδόσεις αλληλουχίας με την ίδια σύνθεση νουκλεοτιδίων (MFErandom), χρησιμοποιώντας μια προσέγγιση που έχει χαρακτηριστεί από τους Clote et. Al [Clote, Ρ., et al., Structural RNA has lower folding energy than random RNA of the same dinucleotide frequency. RNA, 2005. 11(5): p.
578-91],
Επιπλέον, οι τιμές p-value που προέκυψαν αντιστοιχούν στον αριθμό των τιμών MFErandom, οι οποίες ήταν πιο σταθερές (πιο αρνητικές) από την MFEnative. Επιπλέον, η ανάλυση με το ScanFold επιτρέπει τον χαρακτηρισμό της πιθανής δομικής ποικιλομορφίας της προς ανάλυση ακολουθίας, υπολογίζοντας την ποικιλομορφία του συνόλου (ED) και την κεντροειδή δομή. Η κεντροειδής δομή απεικονίζει τα ζεύγη βάσεων που ήταν "πιο συνηθισμένα" (δηλαδή είχαν την ελάχιστη απόσταση ζευγών βάσεων) μεταξύ όλων των διαμορφώσεων συνόλου Boltzmann που προβλέπονται για την ακολουθία προς ανάλυση. Στη συνέχεια, ο ED προσπαθεί να ποσοτικοποιήσει την ποικιλία των διαφορετικών δομών, που υπήρχαν στο σύνολο. Συγκεκριμένα, οι υψηλότεροι αριθμοί ED υποδηλώνουν πολλαπλές δομές μοναδικές από την προβλεπόμενη MFE, ενώ οι χαμηλοί αριθμοί ED υποδηλώνουν την παρουσία μιας κυρίαρχης δομής MFE που αντιπροσωπεύεται ιδιαίτερα στο σύνολο.
Για να αυξηθεί η ακρίβεια της ανάλυσης σταθερότητας SARS-Cov-2, χρησιμοποιήθηκαν επιπλέον αλγόριθμοι, συμπεριλαμβανομένου του VfoldCPX Server [Xu, X. and S.J. Chen, VfoldCPX Server: Predicting RNA-RNA Complex Structure and Stability. PLoS One, 2016. 11(9): p. e0163454], Ως αποτέλεσμα, ελήφθησαν υπόψη παράμετροι όπως οι αλληλεπιδράσεις βρόχου-βρόχου και η χρήση εντροπίας φυσικού βρόχου για τον προσδιορισμό των πιο σταθερών περιοχών του SARS-Cov-2. Η εκτεταμένη ανάλυση με το VfoldCPX οδήγησε σε ένα σύνολο ενεργειακά σταθερών δομών, που ταξινομούνται με βάση τη σταθερότητά τους, παρέχοντας έτσι λεπτομερείς πληροφορίες σχετικά με τις πιο σταθερές γονιδιωματικές περιοχές SARS-Cov-2.
Η βιοπληροφορική ανάλυση με τους αλγορίθμους ScanFold και VfoldCPX, καθώς και η οπτικοποίηση των αποτελεσμάτων με το λογισμικό IGV, παρείχε μια επισκόπηση σχετικά με τις προβλεπόμενες πιο σταθερές περιοχές του SARS-Cov-2, οδηγώντας στον εντοπισμό των πιο υποσχόμενων ακολουθιών 300 νουκλεοτιδίων με αρνητικές τιμές ζ-scores, οι οποίες προβλέπεται να έχουν χαμηλές τιμές MFEnative, και επομένως είναι πιο σταθερές. Αλληλουχίες με αξιοσημείωτες αρνητικές βαθμολογίες z-score κατανεμήθηκαν σε ολόκληρο το γονιδίωμα του SARS-CoV-2. Με βάση τα αποτελέσματα οπτικοποίησης, οι πιο σταθερές αλληλουχίες με αρνητικές βαθμολογίες z-score στοιχίθηκαν σε διάφορα γονίδια του γονιδιώματος SARS-CoV-2.
Παράδειγμα 2
Ανίχνευση του SARS-CoV-2 σε λύματα.
Υλικά και μέθοδοι
Δειγματοληψία λυμάτων
Τα 24ωρα δείγματα σύνθετων υγρών αποβλήτων συλλέχθηκαν από το εργοστάσιο επεξεργασίας λυμάτων της Αθήνας, το οποίο έχει σχεδιαστεί για να εξυπηρετεί πληθυσμό ισοδύναμο των 5.200.000. Στο εργοστάσιο επεξεργασίας λυμάτων της Αθήνας έχει σχεδιαστεί μια πρωτογενής καθίζηση, διαδικασία βιολογικής αφαίρεσης αζώτου και φωσφόρου από λάσπη και δευτερογενής καθίζηση. Το εύρος pH (7, 5-8,0) και το εύρος θερμοκρασίας (17-20 ° C) για τα δείγματα που συλλέχθηκαν παρέχονται από το εργοστάσιο επεξεργασίας λυμάτων της Αθήνας. Όλα τα δείγματα είναι αναλογικά της ροής. Τα δείγματα υγρών λυμάτων συλλέχθηκαν σε προκαθορισμένες φιάλες πολυαιθυλενίου υψηλής πυκνότητας (HDPE), μεταφέρθηκαν σε πάγο στο εργαστήριο και αποθηκεύτηκαν στους 4°C. Όλα τα δείγματα που συλλέχθηκαν, αναλύθηκαν αμέσως μετά την άφιξη στο εργαστήριο. Το προσωπικό δειγματοληψίας ακολούθησε τους κατάλληλους κανονισμούς και οδηγίες και φορούσε τον ενδεδειγμένο εξοπλισμό ατομικής προστασίας.
Συμπύκνωση δειγμάτων και απομόνωση RNA
Τα δείγματα που συλλέχθηκαν, συμπυκνώθηκαν αμέσως μετά την άφιξή τους με τη μέθοδο καταβύθισης με πολυαιθυλενογλυκόλη 8000 (PEG 8000; Promega Corporation, Madison, Wl, USA). Πιο συγκεκριμένα, 50 mL λυμάτων φυγοκεντρήθηκαν σε 4,750 g για 30 λεπτά στους 4°C, προκειμένου να απομακρυνθούν βακτήρια και μεγάλα σωματίδια. Το υπερκείμενο μεταφέρθηκε σε έναν καθαρό σωλήνα φυγοκέντρησης, που περιείχε 3.5 g PEG και 0.8 g NaCI, αναμίχθηκε σε θερμοκρασία περιβάλλοντος έως ότου διαλυθεί πλήρως, και στη συνέχεια φυγοκεντρήθηκε στα 10,050 g για 2 h στους 4°C. Το μεγαλύτερο μέρος του υπερκείμενου διαλύματος απορρίφθηκε χωρίς να καταστραφεί το ιικό ίζημα και στη συνέχεια ο σωλήνας φυγοκεντρήθηκε στα 10,050 g για 5 λεπτά στους 4°C, και τελικά το ιικό ίζημα διαλυτοποιήθηκε σε 500 μΙ_ νερό χωρίς νουκελάσες.
Η απομόνωση RNA πραγματοποιήθηκε, σε 200 μΙ_ συμπυκνωμένο δείγμα χρησιμοποιώντας το «kit» Water DNA / RNA Magnetic Bead (IDEXX Laboratories Inc., Westbrook, Maine, USA), σύμφωνα με τις οδηγίες του κατασκευαστή, αμέσως μετά την συμπύκνωση.
Σύνθεση μονόκλωνου cDNA
Η αντίστροφη μεταγραφή του ολικού RNA από τα δείγματα λυμάτων πραγματοποιήθηκε αντιδράσεις όγκου 20 μΙ, οι οποίες περιείχαν 5.0 μl RNA, 1.0 μl of 10mM dNTPs mix (Jena Bioscience GmbH, Jena, Germany), 100 U αντίστροφη μεταγραφάσης Superscript III (Invitrogen, Carlsbad, CA, USA), 50 U ανασυνδυασμένου αναστολέα ριβονουκλεάσης RNaseOUT (Invitrogen) and 1.0 μl τυχαία εξαμερή συγκέντρωσης 50 μΜ (Invitrogen). Το μίγμα ολικού RNA, dNTPs και τυχαίων εξαμερών επωάστηκε στους 65°C για 5 λεπτά, ενώ η αντίστροφη μεταγραφή πραγματοποιήθηκε με επώαση στους 25°C για 10 λεπτά και στους 50°C για 50 λεπτά. Η απενεργοποίηση του ενζύμου πραγματοποιήθηκε στους 70°C για 15 λεπτά. Τέλος, το AMPLIRUN SARS-CoV-2 RNA (Vircell S.L., Granada, Spain) χρησιμοποιήθηκε ως δείγμα ελέγχου για το γονιδίωμα του SARS-CoV-2.
Nested PCR
Ο θερμικός κυκλοποιητής Veriti™ 96-Well Thermal Cycler (Applied Biosystems, Carlsbad, CA) χρησιμοποιήθηκε για τις αντιδράσεις nested PCR. Ο συνολικός όγκος της αντίδρασης ήταν 25 μl και περιλάμβανε 5.0 μl εκμαγείου cDNA (πρώτη PCR) ή 2.0 μl εκμαγείου PCR προϊόντος (δεύτερη PCR), 1.0 μl of 10ιπΜ dNTPs mix (Jena Bioscience GmbH), 500 nM από τον πρόσθιο και ανάστροφο εκκινητή και 1 U πολυμεράσης Kapa Taq polymerase (Kapa Biosystems, Inc., Woburn, ΜΑ). To θερμικό πρωτόκολλο περιλάμβανε ένα στάδιο ενεργοποίησης της πολυμεράσης στους 95°C για 3 λεπτά, το οποίο ακολούθησαν 15 κύκλοι (πρώτη PCR) ή 40 κύκλοι (δεύτερη PCR) που περιλάμβαναν αποδιάταξη στους 95°C για 30 sec, υβριδοποίηση των εκκινητών στους 60°C για 30 sec και επιμήκυνση στους 72°C για 1 λεπτό, ενώ τέλος ακολούθησε ένα στάδιο τελικής επιμήκυνσης στους 72°C για 5 λεπτά. Μετά την ολοκλήρωση της δεύτερης αντίδρασης PCR, 10μl του PCR προϊόντος ηλεκτροφορήθηκαν σε 1.5% β/ο πήκτωμα αγαρόζης, οπτικοποιήθηκαν με χρώση βρωμιούχου αιθιδίου. Και φωτογραφήθηκαν υπό ακτινοβολία UV.
Nested PCR ποανυατικού χρόνου
Η μεθοδολογίες PCR σε πραγματικό χρόνο βασισμένες στη χρήση ιχνηθέτη φθορισμού πραγματοποιήθηκαν στο μηχάνημα 7500 Fast Real-Time PCR System (Applied Biosystems). Τα PCR προϊόντα της πρώτης συμβατικής PCR - όπως περιγράφεται προηγουμένως - χρησιμοποιήθηκαν ως εκμαγεία για την αντίδραση PCR σε πραγματικό χρόνο (δεύτερη αντίδραση). Ο συνολικός όγκος της αντίδρασης ήταν 20 μl και περιλάμβανε 2.0 μΙ PCR προϊόν, 10 μl Kapa Probe Fast Universal 2X qPCR Master Mix (Kapa Biosystems), 500 nM από τον πρόσθιο και ανάστροφο εκκινητή και 125 nM από τον ιχνηθέτη φθορισμού. Το θερμικό πρωτόκολλο περιλάμβανε ένα στάδιο ενεργοποίησης της πολυμεράσης στους 95°C για 3 λεπτά, το οποίο ακολούθησαν 40 κύκλοι που περιλάμβαναν αποδιάταξη στους 95°C για 15 sec και ένα στάδιο υβριδοποίησης εκκινητών/ιχνηθέτη και επιμήκυνσης στους 60°C για 1 λεπτό.
Results
Λαμβάνοντας υπόψη την απαιτητική φύση των δειγμάτων λυμάτων, ο πρώτος στόχος της μελέτης ήταν να βελτιώσει την ευαισθησία της ανίχνευσης του SARS-CoV-2 με προσδιορισμούς που βασίζονται σε PCR. Με βάση τα αποτελέσματα της βιοπληροφορικής ανάλυσης σχετικά με τη σταθερότητα του RNA του SARS-CoV-2 (Παράδειγμα 1), σχεδιάστηκαν τέσσερις διαφορετικοί προσδιορισμοί nested PCR / PCR σε πραγματικό χρόνο: 1. στο Ν γονίδιο - προϊόν: φωσφοπρωτεΐνη νουκλεοκαψιδίου (προσδιορισμός Ν), 2. στο γονίδιο ORFlab - προϊόν: ελικάση (προσδιορισμός Helicase), 3. στο γονίδιο ORFlab - προϊόν: nsp3 (προσδιορισμός NSP3) και 4. στο γονίδιο ORF3a - προϊόν: πρωτεΐνη ORF3a (δοκιμή ORF3a). Οι εκκινητές και οι ιχνηθέτες αυτών των προσδιορισμών φαίνονται παρακάτω στον Πίνακα 1.
Πίνακας 1
FP: Πρόσθιος εκκινητής, RP: Ανάστροφος εκκινητής, Pr: ιχνηθέτης ποσοτικής
Για τη διερεύνηση της ικανότητας των προσδιορισμών nested PCR / PCR σε πραγματικό χρόνο να βελτιώσουν την ευαισθησία της ανίχνευσης του SARS-CoV-2, αναλύθηκαν σειριακές αραιώσεις του πρότυπου δείγματος ελέγχου, οι οποίες κάλυπταν 9 τάξεις μεγέθους (από 1000 μέχρι 2.5 αντίγραφα RNA/αντίδραση αντίστροφης μεταγραφής), με τη χρήση: a. nested PCR / PCR σε πραγματικό χρόνο, και b. της δοκιμασίας PCR με τη χρήση του σετ εκκινητών “2019-nCoV_N1” και του ιχνηθέτη που προτείνει το CDC (CDC/2019-nCoV_N1 -based assay) (https://www.cdc.gov/coronavirus/2019-ncov/lab/rt-pcr-panel-primer-probes.html). Χρησιμοποιώντας τη δοκιμασία CDC/2019-nCoV_N1 , πραγματοποιήθηκε η ανίχνευση του RNA του SARS-CoV-2 μέχρι: 5 αντίγραφα cDNA/αντίδραση PCR (αδύναμο PCR προϊόν) (Εικόνα 1 A). Η εφαρμογή των δοκιμασιών nested PCR / PCR σε πραγματικό χρόνο οδήγησε στη βελτίωση της απόδοσης ανίχνευσης στα 2 αντίγραφα cDNA/αντίδραση PCR για τα γονίδια Ν (Εικόνα 1Β), ORF3a (Εικόνα 1C) και Helicase (Εικόνα 2Α). Η χρήση της δοκιμασίας NSP3 οδήγησε στην ανίχνευση του SARS-CoV-2 μέχρι και σε 5 αντίγραφα cDNA/αντίδραση PCR (Εικόνα 2Β). Παρόμοια αποτελέσματα σχετικά με την απόδοση και το όριο ανίχνευσης παρατηρήθηκαν στο πρότυπο δείγμα ελέγχου του SARS-CoV-2 από τις δοκιμασίες nested PCR σε πραγματικό χρόνο. Η εικόνα 3Α δείχνει τις καμπύλες ποσοτικοποίησης (αριστερά) και τις πρότυπες καμπύλες αναφοράς (δεξιά) της δοκιμασίας nested PCR σε πραγματικό χρόνο στο γονίδιο Ν. Η εικόνα 3Β δείχνει τις καμπύλες ποσοτικοποίησης (αριστερά) και τις πρότυπες καμπύλες αναφοράς (δεξιά) της δοκιμασίας nested PCR σε πραγματικό χρόνο στο γονίδιο ORF3a. Η εικόνα 4Α δείχνει τις καμπύλες ποσοτικοποίησης (αριστερά) και τις πρότυπες καμπύλες αναφοράς (δεξιά) της δοκιμασίας nested PCR σε πραγματικό χρόνο στο γονίδιο Helicase. FI εικόνα 4Β δείχνει τις καμπύλες ποσοτικοποίησης (αριστερά) και τις πρότυπες καμπύλες αναφοράς (δεξιά) της δοκιμασίας nested PCR σε πραγματικό χρόνο στο γονίδιο NSP3.
Η ανίχνευση του SARS-CoV-2 σε λύματα βελτιώνεται με την ενίσχυση πολλαπλών στόχων
Η ανεπτυγμένη μεθοδολογία με τις δοκιμασίες nested PCR / PCR σε πραγματικό χρόνο, καθώς και η δοκιμασία CDC/2019-nCoV_N1 εφαρμόστηκαν σε 30 δείγματα λυμάτων (S1-S30), τα οποία συλλέχθηκαν από τον Αύγουστο (ν=2 δείγματα), Σεπτέμβριο (ν=16 δείγματα) και Οκτώβριο (ν=12 δείγματα) του 2020. Οι τιμές CT των θετικών δειγμάτων κάθε δοκιμασίας παρουσιάζονται στον πίνακα 2, ενώ τα πηκτώματα αγαρόζης στο οποία έχουν ηλεκτροφορηθεί περιλαμβάνονται στις εικόνες 5A-D.
Πίνακας 2. Τιμές CTτης ανεπτυγμένης μεθοδολογίας με τις δοκιμασίες nested PCR / PCR σε πραγματικό χρόνο, καθώς και της δοκιμασίας CDC/2019-nCoV_N1 που προέκυψαν από τα θετικά δείγματα για SARS-CoV-2.
Ο ιός SARS-CoV-2 ανιχνεύτηκε, από τουλάχιστον μια δοκιμασία, σε 17 δείγματα (17/30; 56.7%), ενώ 3 δείγματα ήταν αρνητικά (13/30; 43.3%). Από τα 17 θετικά δείγμα, η δοκιμασία CDC/2019-nCoV_N1 ανίχνευσε 5 δείγματα (ευαισθησία: 29.4%). Η ανεπτυγμένη μεθοδολογία με τις δοκιμασίες nested PCR / PCR σε πραγματικό χρόνο οδήγησε στην ανίχνευση του SARS-CoV-2 σε: α. 10 δείγματα (ευαισθησία: 58.8%) με τη δοκιμασία Ν, β. 9 δείγματα (ευαισθησία: 52.9%) με τη δοκιμασία NSP3, γ. 7 δείγματα (ευαισθησία: 41.2%) με τη δοκιμασία Helicase και δ.
5 δείγματα (ευαισθησία: 29.4%) με τη δοκιμασία ORF3a. Όπως ήταν αναμενόμενο, η εφαρμογή της ανεπτυγμένης μεθοδολογίας με τις δοκιμασίες nested PCR / PCR σε πραγματικό χρόνο οδήγησε σε σημαντικά μειωμένες τιμές CT (Πίνακας 2) σε σύγκριση με τη δοκιμασία CDC/2019-nCoV_N1 , τονίζοντας τη βελτιωμένη αναλυτική τους απόδοση. Η ανάλυση των δειγμάτων με τις δοκιμασίες nested PCR (Εικόνες 3Α, 3Β, 4Α, 4Β) οδήγησαν στα ίδια αποτελέσματα για τη συντριπτική πλειοψηφία των δειγμάτων. Πιο συγκεκριμένα, η συμφωνία μεταξύ των αποτελεσμάτων nested PCR και PCR σε πραγματικό χρόνο ήταν 100% για τις δοκιμασίες Ν και ORF3a. Μια διαφορά παρατηρήθηκε σε ένα δείγμα (S20), το οποίο βρέθηκε αρνητικό στη δοκιμασία NSP3 με nested PCR, καθώς επίσης 3 δείγματα (S1 , S8, and S15) έδειξαν αδύναμο θετικό σήμα στις δοκιμασία Helicase, συγκριτικά με τη δοκιμασία nested PCR σε πραγματικό χρόνο. Από αυτή την άποψη, η συνολική συμφωνία των δοκιμασιών nested PCR και PCR σε πραγματικό χρόνο ήταν 96,7%.
Πιο σημαντικά, στην πλειοψηφία των θετικών δειγμάτων (10/17; 58.8%) ο ιός SARS-CoV-2 ανιχνεύτηκε με μια δοκιμασία, ενώ μόνο ένα (1/17; 5.9%) και πέντε (5/17; 29.4%) δείγματα βρέθηκαν θετικά από τέσσερις ή τρεις δοκιμασίες, αντίστοιχα. Κατ’ επέκταση, πραγματοποιήθηκε μια πολύ σημαντική βελτίωση της ειδικότητας ανίχνευσης από το συνδυασμό: α. των δοκιμασιών Ν και NSP3 - 14 θετικά δείγματα (ευαισθησία 82.4%), και β. των δοκιμασιών Ν, NSP3 και Helicase - 16 θετικά δείγματα (ευαισθησία 94.1%). Τα αποτελέσματα αυτά σαφώς υποδηλώνουν πως η ανίχνευση του SARS-CoV-2 σε λύματα δεν είναι ανεξάρτητη από τη γενωμική περιοχή, καθώς η στόχευση διαφορετικών περιοχών του RNA του SARS-CoV-2 οδήγησε σε διαφορετικά αποτελέσματα, ενώ η εφαρμογή περισσότερων της μιας δοκιμασιών οδήγησε στην σημαντικά βελτιωμένη ευαισθησία ανίχνευσης.
Παράδειγμα 3
Ανάλυση μεταλλάξεων του SARS-CoV-2 σε λύματα με τη χρήση στοχευμένης αλληλούχησης DNA
Υλικά και μέθοδοι
Η δειγματοληψία, η συμπύκνωση των δειγμάτων και η απομόνωση RNA, η σύνθεση μονόκλωνου cDNA και οι αντιδράσεις nested PCR πραγματοποιήθηκαν όπως περιγράφονται στο Παράδειγμα 2.
Ανάλυση μεταλλάξεων του SARS-CoV-2 σε δείγματα λυμάτων με τη χρήση αλληλούχησης νέας γενιάς
Αναπτύχθηκε και εφαρμόστηκε μια μεθοδολογία στοχευμένης DNA αλληλούχησης, χρησιμοποιώντας την τεχνολογία αλληλούχησης με ημιαγωγό, για την ταυτοποίηση των παραλλαγών/μεταλλάξεων του ιού σε δείγματα λυμάτων. Πραγματοποιήθηκαν δοκιμασίες nested PCR όπως περιγράφονται στο Παράδειγμα 2, οι οποίες στόχευαν κάθε παραλλαγή/μετάλλαξη, ώστε να ενισχύσουν τις περιοχές -στόχους. Τα nested PCR προϊόντα που δημιουργήθηκαν, ηλεκτροφορήθηκαν σε πήκτωμα αγαρόζης για την εκτίμηση των αποτελεσμάτων.
Στη συνέχεια, χρησιμοποιήθηκε το Ion Xpress Plus Fragment Library «kit» (Ion Torrent, Thermo Fisher Scientific Inc.) για την κατασκευή των DNA βιβλιοθηκών προς αλληλούχηση, και συνολικά 1 μg μίγματος καθαρισμένων PCR προϊόντων ως αρχική ποσότητα δείγματος. Η πρόσδεση ειδικών προσαρμογέων (adapters), το “nick-repair” και ο καθαρισμός του μίγματος PCR προϊόντων πραγματοποιήθηκαν με βάση τις οδηγίες του κατασκευαστή. Η βιβλιοθήκη με τους προσκολλη μένους προσαρμογείς ποσοτικοποιήθηκε με τη χρήση του Ion Library TaqMan Quantitation «kit» (Ion Torrent) στο μηχάνημα ABI 7500 Fast Real-Time PCR System (Applied Biosystems).
To εκμαγείο αλληλούχησης δημιουργήθηκε με PCR σε γαλάκτωμα στο μηχάνημα OneTouch 2 System (Ion Torrent), με τη χρήση του Ion PGM Hi-Q View OT2 «kit» (Ion Torrent), ακολουθώντας με ακρίβεια τις οδηγίες του κατασκευαστή. Στη συνέχεια, χρησιμοποιήθηκε το μηχάνημα Ion OneTouch ES instrument (Ion Torrent) για τη διαδικασία εμπλουτισμού του εκμαγείου αλληλούχησης. Τελικά, πραγματοποιήθηκε αλληλούχηση νέας γενιάς με τη χρήση ημιαγωγού, στο μηχάνημα Ion Torrent PGM, για την αλληλούχηση των PCR προϊόντων που περιέχουν τις παραλλαγές/μεταλλάξεις του ιού.
Αποτελέσματα
Στην παρούσα μελέτη, πέντε παρερμηνεύσιμες μεταλλάξεις αποτέλεσαν στόχους, ονομαστικά, α. D614G (23403A>G) - γονίδιο S, β. Q57H (25563G>T) -γονίδιο ORF3a, γ. P323L (14408C>T) - γονίδιο ORF1ab/RdRP, δ. R203K (28881 G>A) - γονίδιο Ν και ε. G204R (28883G>C) - γονίδιο Ν. Για την ανάλυση των μεταλλάξεων που αναφέρθηκαν προηγουμένως με στοχευμένη αλληλούχηση DNA, σχεδιάστηκαν και εφαρμόστηκαν νέες δοκιμασίες nested PCR σε 5 δείγματα λυμάτων, τα οποία συλλέχθηκαν από το Σεπτέμβρη 2020 και 8 δείγματα από τον Οκτώβριο/Νοέμβριο 2020. Οι εκκινητές των δοκιμασιών αυτών φαίνονται στον πίνακα 3 παρακάτω.
Table 3
FP: Πρόσθιος εκκινητής, RP: Ανάστροφος εκκινητής
Στη συνέχεια, τα PCR προϊόντα χρησιμοποιήθηκαν για τη δημιουργία “barcoded” βιβλιοθηκών DNA για αλληλούχηση, οι οποίες αντιστοιχούσαν στο Σεπτέμβριο και Οκτώβριο/Νοέμβριο 2020. Το προφίλ των γενωμικών παραλλαγών (λίστα με τις παραλλαγές μια βάσης ή πολλών βάσεων) του SARS-CoV-2, το οποίο προέκυψε από την προσέγγιση αλληλούχησης υψηλής απόδοσης που αναπτύχθηκε, παρουσιάζεται στους πίνακες 4 και 5 παρακάτω.
Πίνακας 4. Προφίλ των γενωμικών παραλλαγών του SARS-CoV-2 σε δείγματα Σεπτεμβρίου 2020, όπως προέκυψε από τη στοχευμένη αλληλούχηση DNA.
Table 5. Προφίλ των γενωμικών παραλλαγών του SARS-CoV-2 σε δείγματα Οκτωβρίου/Νοεμβρίου 2020, όπως προέκυψε από τη στοχευμένη αλληλούχηση DNA.
Η ανάλυση έδειξε πως το στέλεχος G614 του SARS-CoV-2, το οποίο προκύπτει από τη σημειακή μετάλλαξη D614G (23403A>G) στο γονίδιο S, κυριαρχεί σχεδόν αποκλειστικά, >99.9%, έναντι του στελέχους D614 στα δείγματα λυμάτων. Το εύρημα αυτό έρχεται σε συμφωνία με τα γενωμικά δεδομένα της βάσης δεδομένων GISAID, που υποστηρίζουν πως το στέλεχος G164 υπάρχει σε ποσοστό >98% και ~100% παγκοσμίως και στην Ευρώπη, αντίστοιχα. Παρόμοια, η αντικατάσταση P323L (14408C>T) στο γονίδιο ORF1ab/RdPR είναι επικρατούσα, -99.9%, και στις δύο περιόδους δειγματοληψίας, και βρίσκεται επίσης σε συμφωνία με τα επιδημιολογικά δεδομένα σε επίπεδο γενωμικής (-99% παγκοσμίως και στην Ευρώπη). Επιπρόσθετα, η μετάλλαξη Q57H (25563G>T) στο γονίδιο ORF3a παρατηρήθηκε στα δείγματα Οκτωβρίου/Νοεμβρίου σε ποσοστό -47%, αποτέλεσμα που έρχεται σε συμφωνία με την αυξανόμενη τάση που παρατηρείται παγκοσμίως τους τελευταίους μήνες (-43% στο τέλος του Νοεμβρίου 2020).
Εκτός από τη χαρακτηρισμένη μετάλλαξη D614G, παρατηρήθηκε μια προηγουμένως άγνωστη σημειακή μετάλλαξη εντός του γονιδίου S, η H625R (23436A>G), σε ποσοστό 5.7% στα δείγματα Σεπτεμβρίου. Πιο συγκεκριμένα, η αντικατάσταση 23436A>G οδηγεί σε αλλαγή του αμινοξέος Ιστιδίνη σε Αργινίνη στη θέση 625 της πρωτεΐνης της ακίδας. Σε αντίθεση με την μετάλλαξη D614G, η οποία περιλαμβάνει την αντικατάσταση αμινοξέων με διαφορετικά χαρακτηριστικά πολικότητας, η μετάλλαξη H625R περιλαμβάνει την αντικατάσταση αμινιξέων με θετικά φορτισμένες πλευρικές αλυσίδες. Αν και η αντικατάσταση αυτή αφορά παρόμοια αμινοξέα, η ανάλυση της πρωτεϊνικής δομής με χρήση υπολογιστή έδειξε πως η μετάλλαξη H625R οδηγεί σε μικρές αλλαγές στην αναδίπλωση της πρωτεΐνης της ακίδας. Κατ’ επέκταση, η H625R μεταλλαγμένη πρωτεΐνη της ακίδας ενδέχεται να επιδεικνύει διαφορετικές βιοχημικές ιδιότητες, οι οποίες θα πρέπει να διερευνηθούν περαιτέρω, καθώς μπορεί να επιφέρουν σημαντικές αλλαγές όσον αφορά τη λειτουργία της πρωτεΐνης, αυξάνοντας την μεταδοτικότητα και τη μολυσματικότητα του ιού. Επιπλέον, ανιχνεύτηκε μια νέα σημειακή μετάλλαξη, η A54V (25553C>T), σε ποσοστό -9% στα δείγματα Σεπτεμβρίου, η οποία οδηγεί σε αντικατάσταση του αμινοξέος Αλανίνη σε Βαλίνη στη θέση 54 του πολυπεπτιδίου ORF3a. Και τα δύο αμινοξέα αντιπροσωπεύουν αλιφατικά, ουδέτερα αμινοξέα και συνεπώς δεν αναμένεται η συγκεκριμένη μετάλλαξη να επιφέρει σημαντικές αλλαγές όσον αφορά τη λειτουργία του ORF3a.
Σχετικά με το γονίδιο Ν, παρατηρήθηκε μια σημαντικά πτωτική πορεία για τις παρερμηνεύσιμες σημειακές μεταλλάξεις 28881 G>A (R203K) και 28883G>C (G204R), καθώς και για την συνώνυμη αντικατάσταση 28882G>A, από -90% στα δείγματα Σεπτεμβρίου σε -70% στα δείγματα Οκτωβρίου/Νοεμβρίου. Τα αποτελέσματα της παρούσας έρευνας έρχονται σε συμφωνία με την πτωτική τάση σε παγκόσμιο επίπεδο των αντικαταστάσεων 28881 G>A, 28882G>A και 28883G>C (από 45% στα τέλη Σεπτεμβρίου σε 28% στα τέλη Νοεμβρίου), αν και το απόλυτο ποσοστό στα ελληνικά δείγματα παραμένει σημαντικά υψηλότερο. Αξίζει να αναφερθεί πως η σημειακή μετάλλαξη 28884G>T, η οποία έχει παρατηρηθεί σε -1% παγκοσμίως, βρέθηκε σε μεγαλύτερα ποσοστό στα δεδομένα της παρούσας έρευνας. Πιο συγκεκριμένα, η αντικατάσταση 28884G>T ανιχνεύτηκε σε -70% και 35% στα δείγματα Σεπτεμβρίου και Οκτωβρίου/Νοεμβρίου, αντίστοιχα. Σημαντικό επίσης είναι το γεγονός πως η ανάλυση υπέδειξε μια σημαντική συσχέτιση μεταξύ της 28884G>T και της 28883G>C, οδηγώντας σε μια νέα αντικατάσταση του αμινοξέος Γλυκίνη σε Λεύκινη στη θέση 204 (G204L) της πρωτεΐνης του νουκλεοκαψιδίου, συγκριτικά με τις ατομικές αντικαταστάσεις 28883G>C (G204R) ή 28884G>T (G204V). Εκτός από την ανίχνευση των τεσσάρων διαδοχικών παραλλαγών στις γενωμικές θέσεις 28881-28884, τα δεδομένα αλληλούχησης που προέκυψαν αποκάλυψαν την ύπαρξη μιας ταυτόχρονης έλλειψης 4 νουκλεοτιδίων μετά τη θέση 28880 (θέσεις: 28881 ως 28884) και μιας προσθήκης 4 νουκλεοτιδίων (προσθήκη ACAT) μεταξύ των θέσεων 28885-28886 (Πίνακας 2). Οι δύο αυτές ταυτόχρονες παραλλαγές οδηγούν στις παρερμηνεύσιμες μεταλλάξεις R203K και G204H της πρωτεΐνης του νουκλεοκαψιδίου.
Τα ευρήματα υποδεικνύουν με σαφή τρόπο ότι η R203K συνυπάρχει με τις παραλλαγές G204R, G204L ή G204H. Αν και όλες αυτές οι μεταλλάξεις βρίσκονται στην περιοχή σύνδεσης (LKR) της φωσφοπρωτεΐνης νουκλεοκαψιδίου, η οποία εκτείνεται από την αμινοξική θέση 175 ως την 254, μόνο η R203K ανήκει στο υψηλής σημασίας πλούσιο σε σερίνη/αργινίνη μοτίβο της LKR, το οποίο περιέχει πιθανές τοποθεσίες φωσφορυλίωσης [Peng, Υ., et al., Structures of the SARS-CoV-2 nucleocapsid and their perspectives for drug design. EMBO J, 2020. 39(20): p. e105938]. Συνεπώς, η απουσία του αμινοξέος R203, εξαιτίας της μετάλλαξης R203K, αναμένεται να έχει άμεσο αντίκτυπο στην αναδίπλωση και τη λειτουργικότητα της πρωτεΐνης Ν, ενώ οποιαδήποτε από τις παραλλαγές στη θέση 204 της πρωτεΐνης (G204R, G204L ή G204H) οδηγεί μόνο σε λεπτές τροποποιήσεις.
Τέλος, αποκαλύφθηκε μια σημαντική αυξανόμενη τάση από 7% στα δείγματα Σεπτεμβρίου σε 27% στα δείγματα Οκτωβρίου/Νοεμβρίου της missense μετάλλαξης S194L (28854C>T), η οποία παρατηρήθηκε και σε παγκόσμιο επίπεδο (13% το Σεπτέμβριο έως 21% τον Νοέμβριο). Παρόμοια με το R203K, η μετάλλαξη S194L βρίσκεται επίσης στο μοτίβο σερίνης/αργινίνης της πρωτεΐνης νουκλεοκαψιδίου και περιλαμβάνει την αντικατάσταση της υδροξυλικής ουδέτερης σερίνης (S) με την αλειφατική ουδέτερη λεύκινη (L). Δεδομένου ότι αυτή η περιοχή ρυθμίζει τον ολιγομερισμό της Ν πρωτεΐνης κατά τη φωσφορυλίωση, η επαγόμενη από τη μετάλλαξη απουσία του S194 θα μπορούσε να έχει σημαντικό αντίκτυπο στη λειτουργία του νουκλεοκαψιδίου, η οποία έρχεται επίσης σύμφωνα με τις δραματικές αλλαγές στην προβλεπόμενη δομή πρωτεΐνης και συνεπώς αξίζει περαιτέρω μελέτη.

Claims (24)

ΑΞΙΩΣΕΙΣ
1. Μέθοδος για την ανίχνευση RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα, η οποία μέθοδος περιλαμβάνει τα στάδια
α) απομόνωση του RNA από το δείγμα
β) αντίστροφη μεταγραφή του απομονωθέντος RNA με τυχαία ολιγονουκλεοτίδια για την παραγωγή συμπληρωματικού DNA (cDNA), γ) εφαρμογή μιας πρώτης nested PCR δοκιμασίας που στοχεύει μια πρώτη περιοχή του RNA του ιού,
δ) ανίχνευση του προϊόντος της nested PCR δοκιμασίας.
2. Η μέθοδος για την ανίχνευση RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα σύμφωνα με την αξίωση 1 , όπου
αν δεν ανιχνευθεί cDNA συμπληρωματικό του RNA του ιού μετά την πρώτη nested PCR δοκιμασία, το δείγμα υποβάλλεται σε δεύτερη nested PCR δοκιμασία η οποία στοχεύει μια δεύτερη περιοχή του RNA του ιού, αν δεν ανιχνευθεί cDNA συμπληρωματικό του RNA του ιού μετά την δεύτερη nested PCR δοκιμασία, το δείγμα υποβάλλεται σε τρίτη nested PCR δοκιμασία η οποία στοχεύει μια τρίτη περιοχή του RNA του ιού,
αν δεν ανιχνευθεί cDNA συμπληρωματικό του RNA του ιού μετά την τρίτη nested PCR δοκιμασία, το δείγμα υποβάλλεται σε τέταρτη nested PCR δοκιμασία η οποία στοχεύει μια τέταρτη περιοχή του RNA του ιού, όπου δεν υπάρχει αλληλοεπι κάλυψη μεταξύ της πρώτης, δεύτερης, τρίτης και τέταρτης περιοχής του RNA του ιού.
3. Η μέθοδος για την ανίχνευση RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα σύμφωνα με τις αξιώσεις 1 και 2, όπου τα περιβαλλοντικά δείγματα λαμβάνονται από το έδαφος, τη λάσπη ή το νερό.
4. Η μέθοδος για την ανίχνευση RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα σύμφωνα με όποια από τις προηγούμενες αξιώσεις, όπου τα περιβαλλοντικά δείγματα είναι δείγματα λύματος.
5. Η μέθοδος για την ανίχνευση RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα σύμφωνα με όποια από τις προηγούμενες αξιώσεις, όπου τα τυχαία ολογονουκλεοτίδια είναι εξαμερή.
6. Η μέθοδος για την ανίχνευση RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα σύμφωνα με όποια από τις προηγούμενες αξιώσεις, όπου η ανίχνευση του προϊόντος της nested PCR είναι ποιοτική ή ποσοτική.
7. Η μέθοδος για την ανίχνευση RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα σύμφωνα με όποια από τις προηγούμενες αξιώσεις, όπου ο RNA ιός επιλέγεται από ιό που προκαλεί κοινό κρυολόγημα, γρίπη, SARS, MERS, ιός του δάγκειου πυρετού, ηπατίτιδα C, ηπατίτιδα Ε, πυρετό του Δυτικού Νείλου, Ebola, λύσσα, πολιομυελίτιδα ή SARS-CoV-2.
8. Η μέθοδος για την ανίχνευση RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα σύμφωνα με όποια από τις προηγούμενες αξιώσεις, όπου ο RNA ιός είναι ο SARS-CoV-2.
9. Η μέθοδος για την ανίχνευση RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα σύμφωνα με την αξίωση 8, όπου οποιαδήποτε από την πρώτη, δεύτερη, τρίτη ή τέταρτη περιοχή του RNA του ιού αποτελείται από οποιαδήποτε από τις SEQ ID NO: 1 - 70.
10. Η μέθοδος για την ανίχνευση RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα σύμφωνα με την αξίωση 9, όπου οποιαδήποτε από την πρώτη, δεύτερη, τρίτη ή τέταρτη περιοχή του RNA του ιού αποτελείται από οποιαδήποτε από τις SEQ ID NO: 1 - 36.
11 . Η μέθοδος για την ανίχνευση RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα σύμφωνα με την αξίωση 10, όπου οποιαδήποτε από την πρώτη, δεύτερη, τρίτη ή τέταρτη περιοχή του RNA του ιού αποτελείται από οποιαδήποτε από τις SEQ ID NO: 1 - 24.
12. Η μέθοδος για την ανίχνευση RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα σύμφωνα με την αξίωση 11 , όπου οποιαδήποτε από την πρώτη, δεύτερη, τρίτη ή τέταρτη περιοχή του RNA του ιού αποτελείται από οποιαδήποτε από τις SEQ ID NO: 2, 4, 8, 11 , 14, 15, 18, 19.
13. Η μέθοδος για την ανίχνευση RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα σύμφωνα με οποιαδήποτε από τις αξιώσεις 8 έως 12, όπου οποιαδήποτε από την πρώτη, δεύτερη, τρίτη ή τέταρτη nested PCR δοκιμασία
περιλαμβάνει ένα πρόσθιο και ένα ανάστροφο εκκινητή μιας πρώτης PCR αντίδρασης που αποτελούνται από τις SEQ ID NO: 71 και SEQ ID NO: 72 αντίστοιχα, ένα πρόσθιο και ένα ανάστροφο εκκινητή για μια δεύτερη PCR αντίδραση που αποτελούνται από τις SEQ ID NO: 73 και SEQ ID NO: 74 αντίστοιχα, και προαιρετικά ένα FAM-BHQ1 φθορισμογόνο ανιχνευτή αποτελούμενο από την SEQ ID NO: 75, ή
περιλαμβάνει ένα πρόσθιο και ένα ανάστροφο εκκινητή μιας πρώτης PCR αντίδρασης που αποτελούνται από τις SEQ ID NO: 76 και SEQ ID NO: 77 αντίστοιχα, ένα πρόσθιο και ένα ανάστροφο εκκινητή μιας δεύτερης PCR αντίδρασης που αποτελούνται από τις SEQ ID NO: 78 και SEQ ID NO: 79 αντίστοιχα, και προαιρετικά ένα FAM-BHQ1 φθορισμογόνο ανιχνευτή αποτελούμενο από την SEQ ID NO: 80, ή
περιλαμβάνει ένα πρόσθιο και ένα ανάστροφο εκκινητή μιας πρώτης PCR αντίδρασης που αποτελούνται από τις SEQ ID NO: 81 και SEQ ID NO: 82 αντίστοιχα, ένα πρόσθιο και ένα ανάστροφο εκκινητή μιας δεύτερης PCR αντίδρασης που αποτελούνται από τις SEQ ID NO: 83 και SEQ ID NO: 84 αντίστοιχα, και προαιρετικά ένα FAM-BFIQ1 φθορισμογόνο ανιχνευτή αποτελούμενο από την SEQ ID NO: 85, ή
περιλαμβάνει ένα πρόσθιο και ένα ανάστροφο εκκινητή μιας πρώτης PCR αντίδρασης που αποτελούνται από τις SEQ ID NO: 86 και SEQ ID NO: 87 αντίστοιχα, ένα πρόσθιο και ένα ανάστροφο εκκινητή μιας δεύτερης PCR αντίδρασης που αποτελούνται από τις SEQ ID NO: 88 και SEQ ID NO: 89 αντίστοιχα, και προαιρετικά ένα FAM-MGB φθορισμογόνο ανιχνευτή αποτελούμενο από την SEQ ID NO: 90.
14. Η μέθοδος για την ανίχνευση μετάλλαξης RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα, όπου η μέθοδος περιλαμβάνει τα στάδια
α) απομόνωση του RNA από το δείγμα,
β) αντίστροφη μεταγραφή του απομονωθέντος RNA με τυχαία ολιγονουκλεοτίδια για την παραγωγή συμπληρωματικού DNA
γ) εφαρμογή nested PCR δοκιμασίας, όπου η δοκιμασία στοχεύει μια περιοχή του RNA του ιού που φέρει τη μετάλλαξη ενδιαφέροντος,
δ) ανίχνευση του προϊόντος της PCR δοκιμασίας,
ε) αλληλούχηση του προϊόντος της nested PCR δοκιμασίας χρησιμοποιώντας μαζική παράλληλη αλληλούχηση.
15. Η μέθοδος για την ανίχνευση μετάλλαξης RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα σύμφωνα με την αξίωση 14, όπου το περιβαλλοντικά δείγματα λαμβάνονται από το έδαφος, τη λάσπη ή το νερό.
16. Η μέθοδος για την ανίχνευση μετάλλαξης RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα σύμφωνα με την αξίωση 15, όπου τα περιβαλλοντικά δείγματα είναι δείγματα λύματος.
17. Η μέθοδος για την ανίχνευση μετάλλαξης RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα σύμφωνα με την αξίωση 15 ή 16, όπου τα τυχαία ολιγονουκλεοτίδια είναι εξαμερή.
18. Η μέθοδος για την ανίχνευση μετάλλαξης RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα σύμφωνα με οποιαδήποτε από τις αξιώσεις 15 έως 17, όπου η ανίχνευση του προϊόντος της nested PCR δοκιμασίας είναι ποιοτική ή ποσοτική.
19. Η μέθοδος για την ανίχνευση μετάλλαξης RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα σύμφωνα με οποιαδήποτε από τις αξιώσεις 15 έως 18, όπου η μαζική παράλληλη αλληλούχηση διεξάγεται με στοχευμένη DNA-seq δοκιμασία.
20. Η μέθοδος για την ανίχνευση μετάλλαξης RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα σύμφωνα με οποιαδήποτε από τις αξιώσεις 15 έως 19, όπου ο RNA ιός επιλέγεται από ιό που προκαλεί κοινό κρυολόγημα, γρίπη, SARS, MERS, ιός του δάγκειου πυρετού, ηπατίτιδα C, ηπατίτιδα Ε, πυρετό του Δυτικού Νείλου, Ebola, λύσσα, πολιομυελίτιδα ή SARS-CoV-2.
21 . Η μέθοδος για την ανίχνευση μετάλλαξης RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα σύμφωνα με την αξίωση 20, όπου ο RNA ιός είναι ο SARS-CoV-2.
22. Η μέθοδος για την ανίχνευση μετάλλαξης RNA ιών σε περιβαλλοντικά δείγματα σύμφωνα με την αξίωση 21, όπου η nested PCR δοκιμασία περιλαμβάνει ένα πρόσθιο και ένα ανάστροφο εκκινητή μιας πρώτης PCR αντίδρασης που αποτελούνται από τις SEQ ID NO: 91 και SEQ ID NO: 92 αντίστοιχα, και ένα πρόσθιο και ένα ανάστροφο εκκινητή για μια δεύτερη αντίδραση που αποτελούνται από τις SEQ ID NO: 93 και SEQ ID NO: 94 αντίδραση, ή
περιλαμβάνει ένα πρόσθιο και ένα ανάστροφο εκκινητή μιας πρώτης PCR αντίδρασης που αποτελούνται από τις SEQ ID NO: 95 και SEQ ID NO: 96 αντίστοιχα, και ένα πρόσθιο και ένα ανάστροφο εκκινητή για μια δεύτερη αντίδραση που αποτελούνται από τις SEQ ID NO: 97 και SEQ ID NO: 98 αντίστοιχα, ή
περιλαμβάνει ένα πρόσθιο και ένα ανάστροφο εκκινητή μιας πρώτης PCR αντίδρασης που αποτελούνται από τις SEQ ID NO: 99 και SEQ ID NO: 100 αντίστοιχα, και ένα πρόσθιο και ένα ανάστροφο εκκινητή για μια δεύτερη αντίδραση που αποτελούνται από τις SEQ ID NO: 101 και SEQ ID NO: 102 αντίστοιχα, ή
περιλαμβάνει ένα πρόσθιο και ένα ανάστροφο εκκινητή μιας πρώτης PCR αντίδρασης που αποτελούνται από τις SEQ ID NO: 103 και SEQ ID NO: 104 αντίστοιχα, και ένα πρόσθιο και ένα ανάστροφο εκκινητή για μια δεύτερη αντίδραση που αποτελούνται από τις SEQ ID NO: 105 και SEQ ID NO: 106 αντίστοιχα.
23. Ένα “kit” για την ανίχνευση της παρουσίας του SARS-CoV-2 σε ένα δείγμα με nested PCR, όπου το “kit” περιλαμβάνει
τέσσερα ολιγονουκλεοτίδια αποτελούμενα από τις SEQ ID NO: 71 , SEQ ID NO: 72, SEQ ID NO: 73, SEQ ID NO: 74 αντίστοιχα και προαιρετικά από ένα FAM-BHQ1 φθορισμογόνο ανιχνευτή αποτελούμενο από την SEQ ID NO: 75, και/ή
τέσσερα ολιγονουκλεοτίδια αποτελούμενα από τις SEQ ID NO: 76, SEQ ID NO: 77, SEQ ID NO: 78, SEQ ID NO: 79 αντίστοιχα και προαιρετικά από ένα FAM-BHQ1 φθορισμογόνο ανιχνευτή αποτελούμενο από την SEQ ID NO: 80, και/ή
τέσσερα ολιγονουκλεοτίδια αποτελούμενα από τις SEQ ID NO: 81 , SEQ ID NO: 82, SEQ ID NO: 83, SEQ ID NO: 84 αντίστοιχα και προαιρετικά από ένα FAM-BHQ1 φθορισμογόνο ανιχνευτή αποτελούμενο από την SEQ ID NO: 85, και/ή
τέσσερα ολιγονουκλεοτίδια αποτελούμενα από τις SEQ ID NO: 86, SEQ ID NO: 87, SEQ ID NO: 88, SEQ ID NO: 89 αντίστοιχα και προαιρετικά από ένα FAM-MGB φθορισμογόνο ανιχνευτή αποτελούμενο από την SEQ ID NO: 90.
24. Ένα “kit” για την ανίχνευση μετάλλαξης του SARS-CoV-2 σε ένα δείγμα με nested PCR, όπου το “kit” περιλαμβάνει
τέσσερα ολιγονουκλεοτίδια αποτελούμενα από τις SEQ ID NO: 91 , SEQ ID NO: 92, SEQ ID NO: 93, SEQ ID NO: 94 αντίστοιχα, ή
τέσσερα ολιγονουκλεοτίδια αποτελούμενα από τις SEQ ID NO: 95, SEQ ID NO: 96, SEQ ID NO: 97, SEQ ID NO: 98 αντίστοιχα, ή
τέσσερα ολιγονουκλεοτίδια αποτελούμενα από τις SEQ ID NO: 99, SEQ ID NO: 100, SEQ ID NO: 101 , SEQ ID NO: 102 αντίστοιχα, ή
τέσσερα ολιγονουκλεοτίδια αποτελούμενα από τις SEQ ID NO: 103, SEQ ID NO: 104, SEQ ID NO: 105, SEQ ID NO: 106 αντίστοιχα.
GR20210100091A 2021-02-11 2021-02-11 Ανιχνευση και αναλυση μεταλλαξεων rna ιων σε περιβαλλοντικα δειγματα GR1010565B (el)

Priority Applications (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GR20210100091A GR1010565B (el) 2021-02-11 2021-02-11 Ανιχνευση και αναλυση μεταλλαξεων rna ιων σε περιβαλλοντικα δειγματα
PCT/EP2021/057316 WO2022171313A1 (en) 2021-02-11 2021-03-22 Detection and mutational analysis of an rna virus in an environmental sample
EP21716968.9A EP4291684A1 (en) 2021-02-11 2021-03-22 Detection and mutational analysis of an rna virus in an environmental sample

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GR20210100091A GR1010565B (el) 2021-02-11 2021-02-11 Ανιχνευση και αναλυση μεταλλαξεων rna ιων σε περιβαλλοντικα δειγματα

Publications (2)

Publication Number Publication Date
GR20210100091A GR20210100091A (el) 2022-09-06
GR1010565B true GR1010565B (el) 2023-11-17

Family

ID=75426557

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
GR20210100091A GR1010565B (el) 2021-02-11 2021-02-11 Ανιχνευση και αναλυση μεταλλαξεων rna ιων σε περιβαλλοντικα δειγματα

Country Status (3)

Country Link
EP (1) EP4291684A1 (el)
GR (1) GR1010565B (el)
WO (1) WO2022171313A1 (el)

Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN111004870A (zh) * 2020-03-10 2020-04-14 中山大学达安基因股份有限公司 新型冠状病毒n基因核酸检测试剂盒
CN111154922A (zh) * 2020-04-07 2020-05-15 广东环凯生物科技有限公司 一种SARS-CoV-2干粉化LAMP快速检测试剂盒
CN111560478A (zh) * 2020-05-27 2020-08-21 广州凯普医药科技有限公司 一种一步法反转录PCR结合Sanger测序检测新型冠状病毒的试剂盒
CN111676318A (zh) * 2020-06-18 2020-09-18 中国人民解放军疾病预防控制中心 新型冠状病毒全基因组的扩增引物和方法
CN111676325A (zh) * 2020-07-07 2020-09-18 云南科耀生物科技有限公司 一种用于检测SARS-CoV-2全基因组的引物组合及应用方法
CN111733295A (zh) * 2020-07-31 2020-10-02 广州领上源生物科技有限公司 用于检测新型冠状病毒的引物组及试剂盒

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN111004870A (zh) * 2020-03-10 2020-04-14 中山大学达安基因股份有限公司 新型冠状病毒n基因核酸检测试剂盒
CN111154922A (zh) * 2020-04-07 2020-05-15 广东环凯生物科技有限公司 一种SARS-CoV-2干粉化LAMP快速检测试剂盒
CN111560478A (zh) * 2020-05-27 2020-08-21 广州凯普医药科技有限公司 一种一步法反转录PCR结合Sanger测序检测新型冠状病毒的试剂盒
CN111676318A (zh) * 2020-06-18 2020-09-18 中国人民解放军疾病预防控制中心 新型冠状病毒全基因组的扩增引物和方法
CN111676325A (zh) * 2020-07-07 2020-09-18 云南科耀生物科技有限公司 一种用于检测SARS-CoV-2全基因组的引物组合及应用方法
CN111733295A (zh) * 2020-07-31 2020-10-02 广州领上源生物科技有限公司 用于检测新型冠状病毒的引物组及试剂盒

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
XP086194959 *
XP086453967 *

Also Published As

Publication number Publication date
EP4291684A1 (en) 2023-12-20
WO2022171313A1 (en) 2022-08-18
GR20210100091A (el) 2022-09-06

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Khan et al. Isothermal SARS-CoV-2 diagnostics: tools for enabling distributed pandemic testing as a means of supporting safe reopenings
US11186867B2 (en) Next generation genomic sequencing methods
AU2014342414B2 (en) Next generation genomic sequencing methods
WO2020056924A1 (zh) 核酸检测方法
Arola et al. Identification of enteroviruses in clinical specimens by competitive PCR followed by genetic typing using sequence analysis
Ghedin et al. Presence of oseltamivir-resistant pandemic A/H1N1 minor variants before drug therapy with subsequent selection and transmission
JP2011525365A (ja) Hiv親和性バリアントの検出のためのシステムおよび方法
KR20220155998A (ko) 바이러스 서열의 검출을 위한 조성물, 키트 및 방법
US9458516B2 (en) Kit for detecting bovine leukemia virus(BLV), and use thereof
Alves et al. Optimization and clinical validation of colorimetric reverse transcription loop-mediated isothermal amplification, a fast, highly sensitive and specific COVID-19 molecular diagnostic tool that is robust to detect SARS-CoV-2 variants of concern
RU2731390C1 (ru) Тест-система и способ для выявления РНК коронавируса SARS-COV-2, вируса-возбудителя коронавирусного заболевания 2019 COVID-19, методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени (Варианты)
WO2021198325A1 (en) Assays for the detection of sars-cov-2
JP2023516472A (ja) 重症急性呼吸器症候群コロナウイルス2(sars-cov-2)、インフルエンザa及びインフルエンザbを検出するための組成物及び方法
Mahony et al. Development of a novel bead-based multiplex PCR assay for combined subtyping and oseltamivir resistance genotyping (H275Y) of seasonal and pandemic H1N1 influenza A viruses
AU2017203556A1 (en) Ion torrent genomic sequencing
JP4950656B2 (ja) 核酸検出
US20120244523A1 (en) System and Method for Detection of HIV Integrase Variants
US20230416824A1 (en) Systems for the detection of targeted gene variations and viral genomes and methods of producing and using same
GR1010565B (el) Ανιχνευση και αναλυση μεταλλαξεων rna ιων σε περιβαλλοντικα δειγματα
JP2007514440A (ja) Sarsコロナウイルスを検出するための高感度かつ特異的な検査
US20120322665A1 (en) System and method for detection of hiv-1 clades and recombinants of the reverse transcriptase and protease regions
Kabir et al. Application of RT-Bst to enhance detection of pathogenic viruses of the respiratory tract
Castell et al. Xinsheng Nan, Patrick Hardinge 1Ε, Sven Hoehn, Shrinivas Nivrutti Dighe, John Ukeri 2, Darius F. Pease 3, Joshua Griffin 3, Jessica I. Warrington, Zack Saud 5, Emma Hottinger 3, Gordon Webster, Davey Jones 4, Peter Kille, Andrew Weightman, Richard Stanton 5
WO2022025824A1 (en) Methods for detecting rna viruses
CN113444840A (zh) 基于等温扩增的新型冠状病毒的快速检测方法

Legal Events

Date Code Title Description
PG Patent granted

Effective date: 20231211