FR2930644A1 - Procede d'evaluation de la pigmentation - Google Patents

Abstract

L'invention concerne un procédé d'évaluation de la capacité d'un agent à moduler la pigmentation caractérisé en ce quea)on applique ledit agent à un équivalent de peau in vitro, ledit équivalent de peau comprenant au moins un équivalent d'épiderme comportant des mélanocytes produisant de la mélanine de façon constitutive et au moins un équivalent de derme comportant des fibroblastes vivants, etb)on compare la pigmentation (i) de l'équivalent de peau in vitro auquel a été appliqué l'agent à évaluer à celle (ii) d'un équivalent de peau témoin n'ayant pas été soumis à l'agent.

Description

La présente invention se rapporte au domaine des peaux reconstruites et plus particulièrement aux procédés d'évaluation des phénomènes de pigmentation cutanée, et d'agents susceptibles de moduler cette pigmentation, qu'elle soit constitutive ou induite.

La couleur de la peau est principalement due à la présence d'un pigment, la mélanine dans l'épiderme. La mélanine est synthétisée par des cellules dendritiques spécifiques localisées dans la couche basale de l'épiderme, les mélanocytes. La mélanogénèse prend place dans des organelles, les mélanosomes qui, chargés de mélanine, sont transférés aux cellules voisines épidermiques, les kératinocytes, via les dendrites.

Cette pigmentation peut être modulée par des facteurs physiques, tels que les rayonnements U.V., chimiques, tels que des produits dépigmentants ou pro-pigmentants, et/ou au cours de modifications physiologiques ou pathologiques du fonctionnement de la peau.

Il est donc souhaitable de disposer de modèles qui permettent, d'une part, d'effectuer les études nécessaires à la meilleure compréhension du rôle de la peau tant dans le domaine mécanique que dans le domaine physiologique, et d'autre part, qui constituent des tests prédictifs de l'activité d'actifs cosmétiques et/ou pharmaceutiques ou encore des effets secondaires d'ingrédients topiques.

Pour évaluer une modulation de la pigmentation, des modèles in vitro existent à l'heure actuelle. Il s'agit en particulier des modèles suivants : - Inhibition in tubo de la tyrosinase de champignon ou humaine recombinante (modèle non cellulaire uniquement biochimique) (Virador Analytical Biochem 1999) - Monoculture de mélanocytes normaux ou issus de mélanome en monocouche (Virador Analytical Biochem 1999, Ni-komatsu JID 2007) - Co-culture de mélanocytes- kératinocytes humains normaux ou immortalisés en monocouche (Régnier Cell Mol Biol 1999, Yoon Pigment Cell Res 2003) - Epiderme reconstruit pigmenté sur derme dé-épidermisé mort ou sur filtre inerte de polycarbonate : modèle 3D constitué de mélanocytes et de kératinocytes uniquement

Les brevets FR 2 689904 et WO 95/10600 décrivent la préparation d'un équivalent d'épiderme contenant des kératinocytes et des mélanocytes, et son utilisation dans des tests de bronzage. Toutefois, ces équivalents d'épiderme sont obtenus sur un support inerte ne reproduisant pas les interactions physiologiques avec le derme, et ne contenant pas de fibroblastes ni d'environnement matriciel. De plus, les conditions de culture ne permettent pas de conserver les mélanocytes dans un phénotype normal en raison de l'emploi d'un promoteur de tumeur (TPA).

Cependant, aucun de ces modèles ne permet d'appréhender la modulation de la pigmentation par les acteurs du derme (fibroblastes, matrice extracellulaire, composants de la jonction dermo-épidermique) car ils ne comprennent pas de derme vivant.

Même quand des modèles organotypiques humains comprenant des fibroblastes vivants sont développés, ils ne permettent pas d'évaluer une modulation de la pigmentation dans un contexte physiologique car ils présentent des défauts de fonctionnalité.

Des modèles de peau pigmentée ont été développés sur derme mort dé-epidermisé ou sur éponge (matrice de collagène + GAG) recolonisés par des fibroblastes. Cependant, la localisation des mélanocytes y est souvent imparfaite et ces modèles présentent des défauts de fonctionnalité. En effet, ils ne montrent pas ou peu de pigmentation constitutive et la stimulation de la pigmentation par les UV ou par un agent propigmentant physiologique n'est pas observée dans ces modèles; en particulier, ils ne répondent pas à une référence propigmentante telle que l'a-MSH (Hedley Pigment cell Res 2002).

Des fibroblastes enchâssés dans une matrice de collagène libre (non tendue) ont été aussi employés pour reconstruire une peau pigmentée. Cependant, ces modèles présentent des inconvénients qui ne permettent pas de les utiliser pour évaluer la modulation de la pigmentation. En effet, par exemple, Bertaux et al (Br J Dermatol 1988), ont réalisé un modèle de peau pigmentée en insérant une biopsie de peau sur l'équivalent dermique afin que les cellules épidermiques sortent de l'épiderme et prolifèrent sur la surface de la lattice. Parmi les inconvénients d'une telle technique, on peut citer l'absence de contrôle des cellules épidermiques et le fait qu'une seule reconstruction de peau est possible avec une biopsie : aucune expérience n'est donc comparable à l'autre (pas de reproductibilité). De plus comme le modèle développé par Haake et Scott (Scott et Haake, J Invest Dermatol 1991) ce modèle ne montre pas de réelle fonctionnalité : il n'y pas de présence de mélanine ni constitutive ni induite. Dans le modèle d'Archambault et al (J Invest Dermatol. 1995), une stimulation de mélanogénèse est induite après UVB mais pour des doses induisant une altération épidermique (dose cytotoxique) constituant des conditions rédhibitoires pour pouvoir étudier la pigmentation et sa modulation dans un contexte vitro proche du physiologique.

D'autres tentatives plus récentes de reconstruction de peau reconstruite pigmentée ont été réalisées sur un support lattice libre, cependant les modèles obtenus ne correspondent pas à des modèles de peau humaine normale car ils sont créés soit à partir de mélanocytes de souris (Yoshimura J Dermatol Sci 2001), soit les mélanocytes sont cultivés dans des conditions inductrices de transformation tumorale , en présence de TPA (Liu Cell Biol Int 2007). Quant à celui développé par Martinhao Sauto et coll. (Sao Paulo Med J 2006), aucun mélanocyte n'est présent ou n'est montré dans l'épiderme.

Il existe donc un besoin de disposer de procédés d'évaluation de la modulation de la pigmentation de la peau, permettant d'appréhender de manière pertinente l'ensemble des mécanismes intervenant dans la pigmentation de la peau et sa dérégulation, reproduisant les interactions physiologiques de la peau humaine. En particulier, il existe un besoin d'un équivalent de peau comprenant des mélanocytes vivants fonctionnels présentant une localisation similaire à celle existant dans la peau humaine et un compartiment dermique avec des fibroblastes vivants.

C'est pourquoi la présente invention a pour objet un procédé d'évaluation de la capacité d'un agent à moduler la pigmentation caractérisé en ce que (a) on applique ledit agent à un équivalent de peau in vitro, ledit équivalent de peau comprenant au moins un équivalent d'épiderme comportant des mélanocytes produisant de la mélanine de façon constitutive et au moins un équivalent de derme comportant des fibroblastes vivants, et (b) on compare la pigmentation (i) de l'équivalent de peau in vitro auquel a été appliqué l'agent à évaluer à celle (ii) d'un équivalent de peau témoin n'ayant pas été soumis à l'agent. Par "un" agent il faut entendre, tout au long de la présente description, "au moins un", à moins qu'il ne soit spécifié différemment.

La modulation de la pigmentation au sens large peut être appréciée de manière qualitative et quantitative, aux fins de comparaison. On peut utiliser toutes méthodes permettant l'analyse : - de la pigmentation et/ou de la couleur de l'équivalent de peau et de la quantité, nature de la mélanine, de son transfert et dégradation dans les kératinocytes; on peut citer à titre d'exemple, par spectrocolorimétrie (mesure de la luminance et ITA) directe ou indirecte, par spectroscopie sélective (mesure au mexamètre), par Siascopie, par mesure en chromatographie liquide haute performance HPLC (mesure des DHI-mélanine, DHICA-mélanine, pheomélanine) par spectrophotométrie visible après dissolution de la peau par le Soluène ou la soude, par analyse d'image après coloration de la mélanine par Fontana-Masson, par imagerie confocale ou mutliphotonique, par résonance paramagnétique electronique, par microscopie électronique à transmission. - du nombre, forme et maturité des mélanosomes produits dans les mélanocytes , transférés et/ou dégradés dans les kératinocytes, - de la quantité, maturité et/ou activité enzymatique des protéines du mélanosome telles que par exemple, pmel-17, Tyrosinase, TRP-1, TRP-2 (DCT), MATP, protéine P MART-1, SCL117A, SLC24A5 (nckx5), OA1, - du nombre, répartition, morphologie (dendricité) des mélanocytes, - de la quantité, maturité et/ou activité enzymatique des récepteurs, molécules, facteurs de transcription, au niveau membranaire, cytosolique, nucléaire, qui participent aux voies de la mélanogénèse, de transport dans les dendrites et de transfert des mélanines et des mélanosomes dans les kératinocytes. A titre d'exemples, on peut citer, MC1-R, m-KIT, ETB-R, ETA-R, MITF, USF-1, SOX10, Myosine Va, Rho, Rac, Rab27A, melanophiline, Les méthodes employées pourront être des méthodes d'évaluation de la quantité et de l'activité des protéines et de l'expression de leur gène codant tels que les techniques de réaction à la Dopa, d'immunohistochimie, de coloration histologique, d'analyse d'images, de biologie moléculaire ( PCR) , de biochimie (WB, dosage immunoenzymatique ELISA) etc...

Les équivalents de peau in vitro utilisables dans le procédé selon l'invention comprennent des mélanocytes synthétisant de la mélanine de façon constitutive; cette mélanine est transférée aux kératinocytes. L'équivalent de peau selon l'invention contient en outre des fibroblastes vivants. L'équivalent de peau selon l'invention présente donc une pigmentation constitutive, c'est- à-dire en l'absence de toute stimulation par les rayonnements U.V. ou par des actifs pro-pigmentants. Cette pigmentation correspond à l'existence de mélanocytes qui, dans des conditions physiologiques, produisent une mélanine mature au sein de mélanosomes; par l'intermédiaire des dendrites du mélanocyte, la mélanine est transférée aux kératinocytes qui assurent une distribution homogène de la pigmentation dans l'équivalent d'épiderme.

Le procédé met plus particulièrement en oeuvre un équivalent de peau humaine, et notamment un équivalent de peau comportant au moins des mélanocytes et/ou des kératinocytes et/ou des fibroblastes issus de peau humaine, avantageusement comprenant au moins des mélanocytes de peau humaine.

En particulier le procédé s'applique ainsi sur une unité (ou complexe) de pigmentation globale et fonctionnelle incluant mélanocytes, kératinocytes, fibroblastes humains normaux et environnement matriciel; celle-ci comporte au moins un équivalent d'épiderme et au moins un équivalent de derme, et comprend une composante pigmentaire constitutive et fonctionnelle (pigmentation constitutive et inductible dans des conditions physiologiques).

En effet, ce modèle répond aux besoins rappelés plus haut, et présente les caractéristiques suivantes : - Il contient les acteurs cellulaires majeurs impliqués dans la pigmentation à savoir le mélanocyte mais aussi ses principaux partenaires cellulaires : les kératinocytes et les fibroblastes. - Il reproduit l'organisation tridimensionnelle de la peau afin de respecter et de permettre les contacts et les influences existant naturellement entre partenaires cellulaires, la jonction dermo-épidermique et la matrice extracellulaire. - Il est fonctionnel c'est-à-dire pigmenté à l'état basal (pigmentation constitutive) et capable d'être stimulé par les UV et/ou par des agents propigmentants, dans des conditions reproduisant les phénomènes physiologiques.

Le modèle utilisé dans le procédé selon l'invention contient les 3 types cellulaires majeurs présents dans la peau et impliqués dans la pigmentation, dans une architecture proche de celle de la peau, et permet ainsi de reproduire la régulation du mélanocyte et de la pigmentation par ses partenaires cellulaires et la matrice extracellulaire.

En effet, dans la peau, les cellules pigmentaires sont étroitement liées aux cellules épidermiques et dermiques voisines. De par sa localisation dans la couche basale, à l'interface épiderme-derme, des liens physiques et chimiques existent entre mélanocytes et kératinocytes et aussi entre mélanocytes et fibroblastes. Ces interactions avec ces deux types cellulaires ont une fonction de régulation du mélanocyte et de la pigmentation.

Il est reconnu que par l'intermédiaire de facteurs paracrines relargués par les kératinocytes et par les connexions directes physiques établies par les E-cadhérines, les kératinocytes régulent l'adhésion, la croissance, la survie des mélanocytes, la quantité et la qualité de mélanine produite. Parmi ces facteurs, on peut citer par exemple, l'alpha Melanocyte Stimulating Hormone (MSH), l'Endothéline 1 (ET1), le Stem Cell Factor (SCF), les Prostaglandines E2 et F2a (PGE2, PGF2a), le basic Fibroblast Growth Factor (bFGF) ou le Nerve Growth Factor (NGF). De même, le rôle joué par les fibroblastes dans la pigmentation est maintenant indiscutable : en sécrétant des facteurs identiques à ceux produits par les kératinocytes, tels que le bFGF, SCF ou l'hepatocyte growth factor (HGF) ou différents tels que dickkopfl et des protéines de la matrice, les fibroblastes modulent le développement, la croissance, la morphologie et la différenciation des mélanocytes.

Par ailleurs, les composants de la jonction dermo-épidermique les molécules de la matrice extracellulaire dermique (ECM) ont aussi un impact sur le mélanocyte et la pigmentation. En effet, les mélanocytes adhèrent aux molécules de la membrane basale, via des intégrines et récepteurs, en particulier à la laminine et au collagène IV, et la présence des molécules de la membrane basale est nécessaire pour la bonne position basale des mélanocytes. La qualité de la jonction dermo-épidermique (ou JDE), dont les composants et leur localisation résultent de l'interaction entre fibroblastes et keratinocytes influence le type d'ancrage (intégrines) au niveau de la JDE.

La modulation des protéines ECM dérivées de fibroblastes affecte aussi la prolifération, la morphologie et l'activité mélanogénique de mélanocytes normaux. En particulier le collagène I, le collagène IV, la fibronectine et la laminine stimulent l'activité tyrosinase, modulent la dendricité des mélanocytes et leur prolifération.

De plus, il existe des boucles cellulaires de régulation de la pigmentation: - les kératinocytes peuvent agir directement sur les mélanocytes ou indirectement sur les fibroblastes qui à leur tour vont moduler les mélanocytes : par exemple, la sécrétion de IL-1 a et TNF-a par les kératinocytes peut stimuler la production de HGF et de SCF par les fibroblastes, qui en retour, active les mélanocytes. - les fibroblastes relarguent aussi des cytokines modulant les kératinocytes qui à leur tour vont stimuler ou diminuer la pigmentation. Il a été montré que les fibroblastes en activant la prolifération des kératinocytes réduisent le nombre de mélanocytes et la synthèse de pigment. De même, le KGF sécrété par les fibroblastes stimule le transfert des mélanosomes dans les kératinocytes. A l'inverse, le facteur DKK1 produit par les fibroblastes, en modulant les kératinocytes, réduit le transfert de mélanine dans les kératinocytes conduisant à un épiderme moins pigmenté.

On sait aussi que l'exposition au soleil de la peau induit une stimulation de la pigmentation : c'est le bronzage, qui correspond à une activation transitoire des mélanocytes et une augmentation de la synthèse de mélanine.

Cette réponse est largement due à la contribution des facteurs paracrines des cellules partenaires, les kératinocytes et les fibroblastes, dont la production est accrue par les UV. Le procédé selon l'invention permet de prendre en compte tous ces phénomènes et donc d'évaluer la capacité de substances ou des stimuli susceptibles de moduler la pigmentation cutanée, directement et/ou indirectement.

L'agent à évaluer selon l'invention pourra être toute substance ou composé chimique ou biologique, ou tout traitement ou phénomène physique susceptible ou apte à moduler la pigmentation, directement ou indirectement.

A titre d'exemple de traitement physique susceptible d'être évalué selon l'invention, on peut mentionner un rayonnement lumineux, par exemple UV ou IR, notamment avec un traitement LED (light emitting diode). Par application de l'agent à l'équivalent de peau on entend le fait de provoquer une interaction entre l'agent à évaluer et au moins une partie de l'équivalent de peau, que ce soit par contact direct ou par tout autre moyen. L'invention se rapporte en particulier à une méthode de criblage d'un agent susceptible de moduler la pigmentation, ledit agent pouvant être un composé ou un mélange de composés, obtenu notamment par synthèse chimique ou par extraction à partir de matière première d'origine végétale. Le procédé sera particulièrement utile pour cribler et identifier des actifs utiles dans le domaine de la cosmétique. Les agents peuvent ainsi être toutes molécules, facteurs de croissance, dérivés rétinoïques, hormones, extraits végétaux, pouvant intervenir sur le compartiment épidermique , dermique ou jonctionnel. Les modulateurs peuvent être des siRNA.

Le procédé pourra également être utile pour évaluer la modulation de la pigmentation d'actifs utiles dans le domaine pharmaceutique, notamment en dermatologie.

Selon un autre aspect, le procédé selon l'invention permettra d'évaluer les modifications des différents facteurs impliqués lors de l'application d'un agent modulant la pigmentation.

Par moduler la pigmentation on entend selon l'invention modifier le niveau de pigmentation constitutive ou induite de la peau, soit en l'augmentant, soit en la diminuant ou en l'inhibant, que ce soit directement ou indirectement.

L'équivalent de peau -ou peau reconstruite- présente un équivalent d'épiderme différencié stratifié, comprenant au moins une couche superficielle et au moins une couche basale. Avantageusement, les kératinocytes reproduisent les caractéristiques d'un épiderme in vivo, à savoir un épithélium multicouche stratifié avec une couche basale au contact de l'équivalent de derme et dont les strates supérieures témoignent d'une différenciation, reproduisant de la profondeur vers la périphérie une couche supra-basale (ou couche épineuse), une couche granuleuse (stratum granulosum) et une couche cornée (stratum corneum) d'un épiderme. Les kératinocytes utilisés dans l'équivalent d'épiderme peuvent être préparés selon toute méthode connue de l'art antérieur. On peut citer à titre d'exemple la culture à partir d'épiderme dissocié provenant de prélèvement de peau normale ou pathologique. Préférentiellement, selon l'invention les kératinocytes utilisés sont préparés à partir d'épiderme dissocié provenant de prélèvement de peau humaine normale ou pathologique, en particulier selon la méthode décrite dans Rheinwald et Green , Cell , vol 6 , 331-344 , 1975. Ils peuvent provenir de peau caucasienne, asiatique ou africaine, de différents sites anatomiques (tels que notamment dos, visage, sein, dos des mains, paumes etc..), de zones ayant été exposées ou non au soleil. On peut utiliser des kératinocytes provenant de peaux normales. Selon un mode particulier de mise en oeuvre de l'invention, on peut aussi utiliser des kératinocytes provenant de pathologies cutanées telles que par exemple taches de vieillesse (lentigo actinique), melasma, vitiligo, nevus, xeroderma pigmentosum ou mélanome. Ils peuvent être aussi des kératinocytes génétiquement modifiés surexprimant ou sous-exprimant certains gènes.

Les mélanocytes sont intégrés dans l'épiderme et sont localisés dans la couche basale de l'équivalent d'épiderme. Ces mélanocytes sont distribués de façon homogène dans l'équivalent d'épiderme, c'est-à-dire que leur densité de répartition est sensiblement constante dans un plan parallèle à la surface dudit équivalent de derme et sensiblement similaire à celle retrouvée dans la peau humaine. La totalité des mélanocytes se trouve ainsi dans la couche basale de l'équivalent d'épiderme, l'absence de mélanocytes dans les couches suprabasales et le stratum corneum de l'équivalent d'épiderme témoignant de la qualité de la reconstruction.

Les mélanocytes sont des mélanocytes provenant de peau humaine adulte, jeune ou de nouveau-né, en particulier de peau humaine adulte. De tels mélanocytes expriment l'enzyme TRP-2, contrairement aux mélanocytes du follicule pileux. La nature de la mélanine synthétisée est donc différente : les mélanocytes dans l'épiderme produisent de l'eumélanine composée de DHI-mélanine et de DHICA-mélanine alors que les mélanocytes dans le cheveu produisent principalement que de la DHI-mélanine du fait de l'absence de l'expression de TRP-2. Par ailleurs, le principal stimulus physiologique des mélanocytes de la peau est le rayonnement UV, qui en activant la mélanogénèse et la redistribution de la mélanine, induit un brunissement de la peau, le bronzage. Cette fonctionnalité physiologique ne concerne pas les mélanocytes du cheveu dont la pigmentation n'est pas induite par les UVs.

Les mélanocytes peuvent provenir de peau caucasienne, asiatique ou africaine, de différents sites anatomiques (tels que notamment dos, visage , sein, dos des mains, paumes etc..), de zones ayant été exposées ou non au soleil. On peut utiliser des mélanocytes provenant de peaux normales. Selon un mode particulier de mise en oeuvre de l'invention, on peut aussi utiliser des mélanocytes provenant de pathologies cutanées telles que par exemple taches de vieillesse (lentigo actinique), melasma, vitiligo, nevus, xeroderma pigmentosum ou mélanome. Ils peuvent être aussi des mélanocytes génétiquement modifiés surexprimant ou sous-exprimant certains gènes.

Les mélanocytes localisés dans la couche basale produisent des mélanosomes et de la mélanine qui sont transférés dans les kératinocytes voisins. On peut ainsi reproduire le phénotype des peaux présentant une pigmentation constitutive plus ou moins intense liée au type de mélanocytes. La pigmentation constitutive peut être quantifiée par toute méthode de mesure de la pigmentation ou de la quantité de mélanine, telles qu'indiqué plus haut. Elle peut être évaluée par exemple, par spectrocolorimétrie (mesure de la luminance), par mesure en chromatographie liquide haute performance HPLC, par spectrophotométrie visible après dissolution de la peau par le Soluène ou la soude ou par analyse d'image après coloration de la mélanine par Fontana-Masson, par imagerie confocale ou mutliphotonique. Avantageusement, l'équivalent de peau selon l'invention présente une luminance, mesurée selon la technique de Chardon et al. (In Biological responses to ultraviolet A radiation, Ed Urbach 1992) inférieure ou égale à 80, en l'absence de toute exposition aux UV et/ou à un agent propigmentant. Cette valeur pourra être plus faible, en particulier dans le cas d'équivalent de peau africaine, et pourra notamment varier de +80 à -40 pour des phénotypes allant de très clair à noir. En général, les peaux reconstruites pigmentées selon l'invention présentent un écart de luminance (Delta L) d'au moins 1,5 par rapport à une peau reconstruite ne comprenant pas de mélanocytes, et ce en l'absence de toute irradiation U.V.

L'équivalent de derme selon l'invention comprend des fibroblastes dont les axes principaux sont orientés dans au moins deux directions perpendiculaires.

Avantageusement, le pourcentage des fibroblastes orientés longitudinalement par rapport à la surface de l'équivalent de derme est inférieur à 50%.

L'équivalent de derme comporte au moins une matrice de collagène de type I dans laquelle sont répartis les fibroblastes. Elle peut contenir en outre d'autres constituants de la matrice extracellulaire. Par `constituant de matrices extracellulaires', on désigne notamment des molécules telles que les collagènes en particulier le collagène IV, les laminines, l'entactine, la fibronectine, les protéoglycanes, les glycosaminoglycans, l'acide hyaluronique, l'élastine, la fibrilline. Selon l'un des modes de réalisation de l'invention, l'équivalent de derme contient au moins du collagène IV et de la laminine; de préférence, il contient aussi de l'entactine. Les concentrations de ces différents constituants pourront être adaptées par l'homme du métier et seront par exemple pour la laminine comprises entre 1 et 15% du volume final, pour le collagène IV entre 0,3 et 4,5% du volume final et pour l'entactine entre 0,05 et 1% du volume final. Le collagène utilisé peut être du collagène d'origine bovine, de queue de rat ou de poisson ou toute autre source de collagène natif ou produit par génie génétique permettant une contraction en présence de fibroblastes.

La matrice est un gel de collagène non tendu, obtenue par contraction aussi bien horizontalement que verticalement, n'imposant pas d'organisation préférentielle des fibroblastes. Une telle matrice dite aussi "libre" n'adhère pas au support et ses volumes peuvent être modifiés à volonté, lui conférant une épaisseur et un diamètre variable; l'épaisseur de l'équivalent de derme sera généralement d'au moins 0,05 cm et notamment d'environ de 0.05 à 2 cm, mais pourra être augmentée sans nuire aux propriétés avantageuses de l'équivalent de peau selon l'invention ; de même, son diamètre sera adapté par l'homme du métier d'environ 3 mm à 20 cm ou plus.

Entre le compartiment dermique comprenant les fibroblastes vivants et l'équivalent d'épiderme multistratifié, le contact est direct et constitue une jonction dermoépidermique proche de celle existant in vivo tant sur le plan structural que biochimique. Sur le plan biochimique, elle comprend des composants de la membrane basale ; de la lamina densa, de la lamina lucida et de la zone sub-basale tels que, entre autres, le collagène IV, le collagène VII, la laminine 5, l'entactine, la fibronectine.

L'équivalent de peau utile dans le procédé selon l'invention peut aussi contenir des cellules endothéliales, des cellules de papilles dermiques, des cellules du système immunitaire, telles que des lymphocytes, des cellules dendritiques, des macrophages ou des cellules de Langerhans, des adipocytes, des cellules nerveuses, et leurs mélanges.

Dans le procédé selon l'invention, l'équivalent de peau témoin sera préparé et conservé dans des conditions identiques à celles de l'équivalent de peau auquel on applique l'agent à évaluer, et la mesure de la pigmentation sera effectuée à des temps identiques sur les équivalents de peau témoin et celui ayant reçu l'agent à évaluer.

Selon un mode de réalisation, l'agent à évaluer est appliqué par contact direct avec au moins une partie de l'équivalent de peau. Selon un autre mode de réalisation, l'agent peut également être appliqué dans le milieu de culture dudit équivalent de peau, voire avec un moyen qui provoquera une interaction indirecte de l'agent avec l'un des constituants de l'équivalent de peau. A titre non limitatif de mode d'application alternatifs de l'agent à l'équivalent de peau, on peut citer notamment l'injection, la mésothérapie ou l'iontophorèse.

L'agent à évaluer peut en particulier être appliqué sur un équivalent de peau comportant au moins des fibroblastes et/ou des kératinocytes et/ou des mélanocytes provenant de désordres pigmentaires tels que les taches de vieillesse (lentigo actinique).

Selon l'un des modes de mise en oeuvre du procédé, l'agent à évaluer est un agent inhibant la pigmentation, dont on veut mesurer l'activité dépigmentante et/ou antipigmentante. Le procédé permet notamment d'évaluer l'effet de produits destinés à prévenir, ralentir ou réduire les tâches pigmentaires et/ou d'autres désordres pigmentaires. Le procédé permet selon l'un de ses aspects d'évaluer un agent dépigmentant, c'est-à dire d'évaluer la capacité dudit agent à diminuer la pigmentation constitutive ou induite.

Selon un autre aspect, le procédé vise à évaluer un agent anti-pigmentant, c'est-à-dire de tester la capacité dudit agent à prévenir et/ou réduire la pigmentation induite. Selon un aspect de l'invention, le produit à évaluer sera appliqué sur un modèle pathologique tel que décrit dans ce qui précède, par exemple de désordres hyper ou hypopigmentés tels que le vitiligo, le mélanome, le nevus, le lentigo actinique, le mélasma .... à partir de cellules (mélanocytes mais aussi kératinocytes ou fibroblastes) isolées de ces pathologies ou modifiées génétiquement (silencing, sur expression,...).

Selon un autre mode de réalisation du procédé selon l'invention, l'agent à évaluer est un agent favorisant la pigmentation, seul ou en combinaison avec le rayonnement U.V.

Selon un mode de réalisation particulier, les équivalents de peau sont soumis en outre à une exposition à des rayonnements U.V., les rayonnements U.V. étant appliqués avant, concomitamment et/ou après l'application de l'agent à évaluer, ou pendant une période de temps équivalente sur l'équivalent de peau témoin. Le procédé selon l'invention sera notamment utile pour évaluer des filtres solaires.

Comme indiqué plus haut, l'équivalent de peau présente une pigmentation constitutive, et la pigmentation peut en outre être augmentée par exposition à un agent pro-pigmentant et/ou à des rayonnements U.V. En particulier, après stimulation par les UV à des doses équivalentes à l'irradiation quotidienne ou zénithale reçues par une peau humaine d'un individu en conditions physiologiques, les fibroblastes du modèle selon l'invention produisent des facteurs cytosolubles tels que des cytokines ou des facteurs de croissance qui participent à la pigmentation et/ou à sa modulation.

De plus, le nombre de mélanocytes dans la couche basale augmente après stimulation par les UV, notamment d'un facteur d'au moins 1.5, et leur morphologie est modifiée : ils présentent une augmentation de la dendricité marquée par une augmentation du nombre de dendrites ainsi que leur allongement ; la quantité de mélanine est également augmentée par synthèse et par augmentation du transfert dans les couches épidermiques d'un facteur supérieur ou égal à 1,5. L'augmentation de la pigmentation est évaluée par mesure de la variation de luminance de la peau ou toute autres méthodes de quantification de la mélanine comme par exemple, par mesure en chromatographie liquide haute performance HPLC, par spectrophotométrie visible après dissolution de la peau par le Soluène ou la soude, par analyse d'image après coloration de la mélanine par Fontana-Masson ou par imagerie confocale ou multiphotonique.

Le procédé selon l'invention permet d'évaluer l'effet des UV sur la pigmentation qui peuvent agir directement sur les mélanocytes et/ou indirectement sur les kératinocytes qui vont à leur tour activer les mélanocytes (action sur la mélanogénèse, la prolifération ou l'adhésion des mélanocytes) Il permet en plus de manière unique d'évaluer l'impact sur la pigmentation des UV qui peuvent agir : . sur les fibroblastes, les protéines de la matrice extracellulaire, et les éléments de la jonction dermo-épidermique. En réponse, ces facteurs ou modifications induits peuvent stimuler directement les mélanocytes et/ou indirectement les kératinocytes qui à leur tour vont stimuler les mélanocytes . sur les kératinocytes qui à leur tour vont moduler les fibroblastes, les protéines de la matrice extracellulaire, et les éléments de la jonction dermo-épidermique et en conséquence la pigmentation.

Il permet également de tester des produits ou des molécules qui interfèrent avec la pigmentation constitutive ou induite par le soleil (bronzage) : freiner, inhiber ou stimuler, par voie topique et systémique - dépigmentants, antipigmentants - propigmentants (activateurs de la pigmentation seuls ou avec les UV)

L' équivalent de peau pourra être préparé par un procédé qui comprend notamment les étapes suivantes : a) mise en contact de fibroblastes et d'une solution de collagène, puis incubation pendant un temps suffisant pour obtenir une matrice de collagène contracté dans laquelle sont répartis les fibroblastes, constituant un équivalent de derme, b) ensemencement par un mélange de kératinocytes et de mélanocytes sur l'équivalent de derme obtenu en a), et culture en immersion dans un milieu liquide, c) émersion de l'ensemble de la culture (kératinocytes et mélanocytes ensemencés sur l'équivalent de derme) obtenue en b), et poursuite de la culture à l'interface air-liquide jusqu'à obtention d'un équivalent d'épiderme pluristratifié contenant des mélanocytes, sur un équivalent de derme contenant des fibroblastes dans une matrice de collagène, constituant un équivalent de peau.

L'équivalent de peau ainsi obtenu peut être prélevé ou utilisé sur son support dans différents procédés d'évaluation.

L'étape a peut être effectuée avec du collagène de type I, notamment d'origine bovine, ou un mélange de collagènes I et III, (30 % environ par rapport au volume final de la lattice) en suspension homogène. Avantageusement, on y ajoute d'autres constituants tels que laminine (notamment de 1 à 15 % par rapport au volume final), collagène IV (notamment de 0.3% à 4.5% par rapport au volume final) et/ou entactine (notamment de 0.05% à 1% par rapport au volume final) pour obtenir une suspension homogène. Les fibroblastes sont obtenus à partir de peau humaine, avantageusement de peau adulte. Il peut s'agir de fibroblastes papillaires et/ou réticulaires, seuls ou en mélange en toute proportion, issus de peau caucasienne, asiatique ou africaine, de différents sites anatomiques ( dos, visage, sein, dos des mains, paumes etc..), de zones ayant été exposées ou non au soleil. Dans un mode de réalisation particulier, on utilise des fibroblastes provenant de pathologies cutanées telles que par exemple taches de vieillesse (lentigo actinique), melasma, vitiligo, nevus, mélanome ou xeroderma pigmentosum. Ils peuvent être aussi des fibroblastes génétiquement modifiés surexprimant ou sous-exprimant certains gènes.

Ils sont cultivés dans un milieu adapté, connu de l'homme du métier, puis mis en suspension avant mélange avec la suspension de collagène et des facteurs de croissance. Le mélange est incubé pendant 1 à 6 jours, de préférence pendant 4 ou 5 jours, à une température d'environ 37°C, généralement comprise entre 36°C et 37,5°C.

Avantageusement, le mélange est incubé sur un support ne permettant pas son adhésion, en particulier empêchant l'adhésion du mélange aux bords du support; un tel support peut notamment être obtenu par un traitement préalable de sa surface, par exemple par revétement dudit support par du sérum ou de l'albumine bovine. On obtient ainsi un gel de collagène qui s'est contracté librement dans plusieurs directions, en expulsant le milieu nutritif, et dans lequel sont enchâssés les fibroblastes.

Pour réaliser l'étape b, on utilise des kératinocytes provenant de peau humaine, de préférence de peau adulte humaine. Ils peuvent provenir de peau caucasienne, asiatique ou africaine, de différents sites anatomiques (dos, visage, sein, dos des mains, paumes etc..), de zones ayant été exposées ou non au soleil. Dans un mode de réalisation particulier, on utilise des kératinocytes provenant de pathologies cutanées telles que par exemple taches de vieillesse (lentigo actinique), melasma, vitiligo, nevus ou mélanome. Ils peuvent être aussi des kératinocytes génétiquement modifiés surexprimant ou sous-exprimant certains gènes.

Une préparation de kératinocytes peut être obtenue selon les méthodes classiques de culture cellulaire. En particulier, on pourra, à partir d'un expiant cutané prélevé sur un sujet, procéder comme suit : - on élimine le tissu sous-cutané à l'aide d'un scalpel ; - on décontamine le prélèvement cutané par un traitement antibiotique (ex : gentamycine) ; - on sépare le derme de l'épiderme par traitement protéolytique (ex : trypsine et dispase) puis dissection ; - on favorise ensuite la dissociation des cellules en présence d'une solution de trypsine 0,05% et EDTA 0,02% ; et on neutralise l'effet de la trypsine par l'ajout d'un milieu de culture DMEM contenant 10% de sérum ; - on homogénéise la suspension cellulaire, que l'on lave ensuite dans du milieu de culture pour kératinocytes selon la technique de Rheinwald et Green (Cell, 1975).

Les kératinocytes sont amplifiés avant ensemencement selon la technique de Rheinwald et Green (Cell, vol 6 , 331-344,1975) par culture sur un support nourricier constitué de fibroblastes 3T3 dans un milieu adapté connu de l'homme du métier, en présence de facteurs de croissance, notamment d'acides aminés, sérum, toxine cholérique, insuline, tri-iodo-thyronine et solution tampon de pH. En particulier, un tel milieu de culture pourra notamment contenir au moins un facteur de croissance mitogénique pour les kératinocytes (par exemple epidermal growth factor (EGF) et/ou keratinocyte growth factor (KGF)), de l'insuline, de l'hydrocortisone et facultativement un antibiotique (ex : gentamycine, amphotericine B). Avantageusement, ledit milieu pourra comprendre en outre du sérum ou un extrait pituitaire, par exemple d'origine bovine, de l'épinephrine, de la transferrine et/ou des acides aminés non essentiels.

Les mélanocytes sont des mélanocytes provenant de peau humaine, jeune ou adulte, issus de peau caucasienne, asiatique ou africaine, de différents sites anatomiques (dos, visage, sein, prépuce, dos des mains, paumes etc..), de zones ayant été exposées ou non au soleil. Dans un mode de réalisation particulier, on utilise des mélanocytes provenant de pathologies cutanées telles que par exemple taches de vieillesse (lentigo actinique), melasma, vitiligo, nevus, mélanome. Ils peuvent être aussi des mélanocytes génétiquement modifiés surexprimant ou sous-exprimant certains gènes.

Ils sont amplifiés par culture dans un milieu adapté en l'absence d'ester de phorbol composé d'un milieu de base tels que le DMEM/F12 ou le MCDB153 et additionné de facteurs de croissance spécifiques aux mélanocytes (tels que par exemple bFGF, SCF, ET-1, ET3, aMSH) et en particulier dans le milieu M2 (Promocell) ou dans d'autres milieux tel que le M254 (Cascades Biologics TM) Des suspensions cellulaires de mélanocytes et de kératinocytes sont préparées à partir de ces cultures, et mélangées pour obtenir des suspensions mixtes kératinocytes/mélanocytes. Le ratio mélanocytes/kératinocytes peut être compris entre 1:10 et 2:1, et est généralement d'environ 1:1.

On voit donc que selon des variantes de l'invention, on peut utiliser des kératinocytes et des mélanocytes de peau normale, ou bien utiliser des mélanocytes et des kératinocytes provenant de pathologies cutanées, voire l'un des 2 types cellulaires provenant de pathologies cutanées et l'autre correspondant à des cellules normales, saines.

Cette suspension mixte est déposée sur l'équivalent de derme; l'équivalent de derme est avantageusement fixé sur un support par un matériau biologique tel que du collagène. La suspension mélanocytes/kératinocytes est déposée dans un anneau ou tout moyen équivalent permettant son maintien sur une partie de surface délimitée. Un milieu nutritif liquide est ajouté de façon à recouvrir le mélange de cellules; ce milieu contient des facteurs de croissance connus de l'homme du métier, en particulier EGF et/ou KGF. Le milieu sera renouvelé régulièrement et la culture poursuivie en immersion, généralement pendant une durée comprise entre 2 et 10 jours, notamment de 5 à 8 jours, et d'environ 7 jours. Le milieu contiendra avantageusement du KGF à partir du 2ème jour d'immersion et idéalement à partir du 4ème jour d'immersion.

Comme indiqué précédemment, l'équivalent de derme pourra comprendre des fibroblastes normaux et/ou d'origine pathologique. Ces différents types de derme pourront être associés à un équivalent d'épiderme préparé à partir de mélanges kératinocytes/mélanocytes normaux ou pathologiques, selon les diverses variantes décrites plus haut.

Les peaux sont ensuite, de manière connue en soi, mises en émersion pour obtenir la différenciation des kératinocytes et la formation d'un équivalent d'épiderme stratifié. Cette étape c correspondant à la culture en émersion à l'interface airûliquide est poursuivie jusqu'à obtention d'une structure différenciée, en général environ 7 jours. Toutefois, l'étape c peut être poursuivie plus longtemps, par exemple pendant environ 28 jours tout en conservant un équivalent de peau présentant les caractéristiques avantageuses précisées dans ce qui précède. Le milieu de culture nutritif sera renouvelé régulièrement. L'équivalent de peau est ensuite prélevé pour effectuer des tests requis.

Selon une variante du procédé selon l'invention, on réalise en outre un groupe de mesure supplémentaire avec des produits de référence connus pour leur activité favorisant ou au contraire inhibant la pigmentation. Dans cette variante, on compare en outre la pigmentation (i) de l'équivalent de peau in vitro auquel a été appliqué l'agent à évaluer, à celle (iii) d'un équivalent de peau auquel a été appliqué une substance de référence favorisant ou inhibant la pigmentation. On pourra par exemple choisir de retenir les agents pour lesquels la pigmentation est au moins supérieure ou égale à celle observée pour la substance de référence, dans le cas d'un agent favorisant la pigmentation. Inversement, on pourra retenir les agents pour lesquels la pigmentation est inférieure ou égale à celle obtenue avec la substance de référence dans le cas d'un agent dépigmentant. On pourra également comparer la variation de pigmentation mesurée d'une part entre l'équivalent de peau auquel a été appliqué l'agent à évaluer et l'équivalent de peau témoin (i)-(ii) et d'autre part l'équivalent de peau auquel a été appliqué la substance de référence et l'équivalent de peau témoin (iii)-(ii); les agents sélectionnés seront ceux pour lesquels la modulation de la pigmentation sera au moins égale à celle mesurée pour la substance de référence.

Selon un mode de mise en oeuvre particulier, l'équivalent de peau in vitro comprend au moins des kératinocytes, mélanocytes et/ou des fibroblastes modifiés génétiquement, notamment par surexpression de cDNA, par extinction de gène par mutagénèse dirigée, ou par dsRNA,selon la technique des siRNA ou expression par shRNA.

Selon un autre mode de réalisation, l'équivalent de derme comprend un équivalent de matrice extracellulaire, les constituants dudit équivalent de matrice extracellulaire comprenant au moins du collagène de type I, et les constituants ont subi au moins une modification par rapport à un équivalent de matrice extracellulaire de peau jeune, saine. Il peut s'agir par exemple de modification de la nature, de la quantité ou des proportions des macromolécules constituant de l'équivalent de derme, et/ou de modifications chimiques. On pourra ainsi faire varier la composition de l'équivalent de derme, et/ou les proportions notamment de collagène IV, laminines, entactine, fibronectine, protéoglycanes, glycosaminoglycans et/ou acide hyaluronique présents, au-delà des concentrations classiquement utilisées et indiquées dans ce qui précède. Les constituants de l'équivalent de matrice extracellulaire peuvent en particulier avoir subi une modification chimique choisie parmi la glycation, la réticulation et l'oxydation Le procédé selon l'invention permet d'appréhender la voie de régulation de la mélanogénèse dans sa globalité. Ceci peut se traduire par une activité directe sur le mélanocyte mais aussi par une activité (pro ou anti pigmentante) médiée par le kératinocyte, le fibroblaste, l'ensemble du contexte tri-dimensionnel et l'influence du micro-environnement.

Il permet d'évaluer l'impact sur la pigmentation d'agents qui peuvent agir : . sur les fibroblastes, les protéines de la matrice extracellulaire, et les éléments de la jonction dermo-épidermique. En réponse, ces facteurs ou modifications induits peuvent stimuler directement les mélanocytes et/ou indirectement les kératinocytes qui à leur tour vont stimuler les mélanocytes . sur les kératinocytes qui à leur tour vont moduler les fibroblastes, les protéines de la matrice extracellulaire, et les éléments de la jonction dermo-épidermique et en conséquence la pigmentation. Le procédé peut ainsi être utile pour • Tester l'impact sur la pigmentation de cellules issues de désordres hyper ou hypopigmentés tels que le vitiligo, le mélanome, le nevus, le lentigo actinique, le mélasma .... à partir de cellules (mélanocytes mais aussi kératinocytes ou fibroblastes) isolées de ces pathologies ou modifiées génétiquement (silencing, sur expression,...) • étudier l'influence de dérégulations kératinocytaires ou fibroblastiques (kératinocytes ou fibroblastes pathologiques) sur la pigmentation. • pour étudier l'influence de dérégulations de la matrice extracellulaire sur la pigmentation (glycation, pontages (cross-link), oxydation des macromolécules de la matrice extracellulaire, ou modifications de la nature, de la quantité et de la proportion des macromolécules.35 L'invention va être illustrée plus en détail dans les exemples qui suivent. Dans ces exemples, on se référera aux figures suivantes :

Figure 1 : Peau reconstruite pigmentée humaine Figure 2 : Peau reconstruite pigmentée humaine avec une pigmentation constitutive liée au type de mélanocyte Figure 3 : Induction de la pigmentation par les UV dans la peau reconstruite pigmentée Figure 4 : Induction de la pigmentation par l'alpha MSH dans la peau reconstruite pigmentée Exemple 1: préparation des équivalents de peau Préparation des lattices (J-4) Les dermes équivalents sont réalisés avec du collagène I bovin et des fibroblastes humains issus de derme.

Les dermes équivalents sont réalisés avec du collagène I bovin et des fibroblastes humains issus de derme selon les techniques décrites par Asselineau et colt 1985 (Exp Cell Res . vol 159, 536-539) et Bernerd et Asselineau 1997 (Dev Biol , vol 183, 123-138). Un coating de la boite de Petri est préalablement réalisé avec du MEM contenant 10% de serum. Avant de couler la préparation de collagène contenant les cellules, une solution de laminine (3% /volume final) de collagène IV (1,5 %/ volume final) et d'entactine (0,35% / volume final) est ajoutée au mélange qui est vigoureusement agité. Cette suspension est placée à l'étuve (37°C ù 5 % CO2) pour permettre à la lattice de se contracter. Ensemencement des kératinocvtes et des mélanocvtes (JO) L'ensemencement en kératinocytes et mélanocytes sur le derme équivalent se fait après contraction des lattices.

Pour cela, les cellules sont amplifiées 7 jours avant ensemencement, dans leur milieu de 35 croissance respectif:30 Les mélanocytes sont amplifiés dans un milieu de culture pour mélanocytes, le Milieu M2 (Promocell) en l'absence de tout ester de phorbol.

Les kératinocytes sont amplifiés selon la technique de Rheinwald et Green, Cell, vol 6, 331-344,1975 par culture sur un support nourricier constitué de fibroblastes 3T3

Pour l'ensemencement des kératinocytes et des mélanocytes sur le derme équivalent, la lattice est d'abord collée au fond d'une boite à l'aide d'une préparation à base de collagène (pour 2 lattices, 0.46 ml MEM 1.76 X+ 0.09 ml FCS + 0.05 ml NaOH 0.1N+ 0.1 ml MEM Hépes 10% FCS + 0.3 ml de collagène dialysé).

Les mélanocytes et les kératinocytes sont trypsinés et les suspensions cellulaires sont ajustées à une concentration de 200 000 cellules / ml chacune avec du milieu constitué de MEM 10 % FCS + 2 mM L-Glutamine +1 mM Sodium Pyruvate , +1 X Acides aminés non essentiels ,+ 0.2% Penicilline Streptomycine + 0.1% antibiotique anti-mycotique +10 ng/ml EGF , 10-10 M Choléra Toxine + 0.4 pg/ml Hydrocortisone + 0.625p1/ml de SupplementMix (Promocell) = milieu PRP).

Une suspension mixte de mélanocytes et de kératinocytes est préparée avec 0.25m1 de la suspension de kératinocytes et 0.25m1 de suspension de mélanocytes. La suspension finale contenant donc 50 000 kératinocytes et 50 000 mélanocytes est déposée au sein d'un anneau (14 mm de diamètre) placé sur la lattice collée. Autour de l'anneau sont ajoutés 6ml de milieu PRP. Les boites sont placées à l'étuve 37°C-5% CO2. Après 2 heures, les anneaux sont retirés.

Le même milieu de culture est renouvelé 2 jours plus tard.

4 jours après ensemencement, l'EGF (10ng/ml) du milieu PRP est remplacé par du KGF (10ng/ml).

Culture-Emersion des peaux reconstruites pigmentées (J7) Après 7 jours de culture en immersion les peaux sont mises en émersion sur une grille (interface air-liquide). Le milieu est changé tous les 2 jours. Après 7 jours d'émersion, les peaux présentant une morphologie très proche de la peau humaine normale sont prêtes pour être prélevées et analysées ou peuvent être maintenues en culture plus longtemps pour différentes expériences avec un changement de milieu tous les 2 jours.

Exemple 2: Peau reconstruite pigmentée humaine contenant les 3 types cellulaires mélanocytes, kératinocvtes et fibroblastes (Figure 1) La peau après 7 jours d'émersion présente une histologie et une architecture tridimensionnelle proche de celle de la peau humaine. Elle possède un épiderme stratifié et différencié, constitué des différentes couches cellulaires (basale, épineuse, granuleuse) et une couche cornée. Le derme comprend des fibroblastes vivants enchassés dans la matrice collagénique (Figure 1A). Les mélanocytes sont intégrés dans l'épiderme et montrent une morphologie et une densité similaire à celles de la peau normale (figure 1C réaction de DOPA sur épiderme séparé). Ils sont bien localisés dans la couche basale (figure 1B, immunomarquage TRP1, ligne blanche pointillée indiquant la jonction dermo-épidermique), produisent des mélanosomes et de la mélanine qui sont transférés dans les kératinocytes voisins (figure 1 D, coloration de la mélanine par Fontana Masson).

Exemple 3: Peau reconstruite pigmentée humaine avec une pigmentation constitutive liée au type de mélanocyte (Figure 2) Le modèle est capable d'intégrer différentes souches de mélanocytes des moins pigmentées au plus pigmentées (modèle robuste) et le phénotype de la peau reconstruite, plus ou moins pigmenté, correspond au type de mélanocyte utilisé (maintien de la physiologie) : en effet, plus la souche de mélanocyte est pigmentée (de M03 à M504), plus la couleur macroscopique des peaux et la quantité de mélanine visible sur coupe sont intenses. Cette pigmentation macroscopique se traduit par une diminution de la luminance (Figure 2 Luminance).

Exemple 4: Induction de la pigmentation par les UV dans la Peau Reconstruite Pigmentée (Figure 3) A partir de 7 jours d'émersion, les peaux reconstruites sont soumises aux UVs solaires pour induire la pigmentation. Un simulateur solaire est utilisé : il délivre des UVB et des UVA avec un spectre comparable à celui du soleil (rapport UVB/UVA de 14). Les peaux sont exposées aux UVs 3 fois, une fois tous les 2 jours. Les peaux sont prélevées 48 h après la dernière exposition. Des conditions contrôles sont réalisées en absence d'exposition au simulateur solaire. Dans les peaux soumises aux UV, les mélanocytes sont toujours présents et bien localisés dans la couche basale (figure 3 immunomarquage de TRP1. la ligne blanche pointillée indique la jonction dermo-épidermique). Ils sont activés par les UV: plus nombreux (figure 3 graphe densité de mélanocytes), plus dendritiques et plus réactifs à la réaction Dopa que dans les peaux non exposées. Une augmentation de la quantité de mélanine est mesurée (x1.8) après coloration Fontana Masson dans les peaux photo- exposées par rapport aux peaux contrôles (figure 3 quantité de mélanine). Cette stimulation de la pigmentation par les UV est quantifiée par la mesure de la luminance(L*) : la diminution de la luminance (AL= 4.38) montre que les peaux exposées aux UV sont plus foncées que les peaux non exposées (figure 3 Luminance).

Exemple 5: Induction de la piqmentation dans la peau reconstruite piqmentée par un aqent propiqmentant (Fiqure 4) En présence d'un agent propigmentant connu, l'aMSH, mis dans le milieu à partir de la phase d'émersion et à la concentration de 50 nM, les peaux prélevées 18 jours après, sont macroscopiquement plus pigmentées. La mesure de la Luminance confirme ce brunissement puisque elle diminue de 6.7 points entre les peaux non traitées et celles traitées par l'aMSH (figure 4 Luminance). Les mélanocytes sont plus dendritiques et produisent nettement plus de mélanine visible par le marquage Fontana-Masson en présence d'aMSH (figure 4 coloration de Fontana Masson).

Claims (14)

1. Revendications1- Procédé d'évaluation de la capacité d'un agent à moduler la pigmentation caractérisé en ce que (a) on applique ledit agent à un équivalent de peau in vitro, ledit équivalent de peau comprenant au moins un équivalent d'épiderme comportant des mélanocytes produisant de la mélanine de façon constitutive et au moins un équivalent de derme comportant des fibroblastes vivants, et (b) on compare la pigmentation (i) de l'équivalent de peau in vitro auquel a été appliqué l'agent à évaluer à celle (ii) d'un équivalent de peau témoin n'ayant pas été soumis à l'agent.
2. 2- Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que ledit équivalent d'épiderme comprend des kératinocytes formant au moins une couche basale et au moins une couche superficielle, et en ce que les mélanocytes sont dans la couche basale de l'équivalent d'épiderme.
3. 3- Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 ou 2, caractérisé en ce que dans l'équivalent de derme, le pourcentage des fibroblastes orientés longitudinalement par rapport à la surface de l'équivalent de derme est inférieur à 50%.
4. 4- Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que ledit agent est appliqué à l'équivalent de peau par contact direct avec au moins une partie dudit équivalent de peau.
5. 5- Procédé selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que ledit équivalent de peau comporte au moins des fibroblastes et/ou des kératinocytes et/ou des mélanocytes provenant de désordres pigmentaires.
6. 6- Procédé selon la revendication précédente, caractérisé en ce que ledit agent est un agent inhibant la pigmentation.
7. 7- Procédé selon l'une des revendications 5 ou 6, caractérisé en ce que l'agent à évaluer est appliqué sur des zones de l'équivalent de peau présentant une hyperpigmentation.
8. 8- Procédé selon l'une au moins des revendications 1 à 5, caractérisé en ce que ledit agent à évaluer est un agent favorisant la pigmentation.
9. 9- Procédé selon l'une au moins des revendications précédentes caractérisé en ce que les équivalents de peau sont soumis en outre à une exposition à des rayonnements U.V., les rayonnements U.V. étant appliqués avant,concomitamment et/ou après l'application de l'agent à évaluer, ou pendant une période de temps équivalente sur l'équivalent de peau témoin.
10. 10- Procédé selon l'une au moins des revendications précédentes, caractérisé en ce qu'on compare en outre la pigmentation (i) de l'équivalent de peau in vitro auquel a été appliqué l'agent à évaluer, à celle (iii) d'un équivalent de peau auquel a été appliqué une substance de référence favorisant ou inhibant la pigmentation.
11. 11- Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que l'agent à évaluer module la pigmentation par action au moins en partie sur les kératinocytes, les fibroblastes, les constituants de la matrice extra-cellulaire et/ou la jonction dermo-épidermique.
12. 12- Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes caractérisé en ce que l'équivalent de peau in vitro comprend au moins des kératinocytes, mélanocytes et/ou des fibroblastes modifiés génétiquement.
13. 13- Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que l'équivalent de derme comprend un équivalent de matrice extracellulaire, les constituants dudit équivalent de matrice extracellulaire comprenant au moins du collagène de type I, et en ce que les constituants peuvent varier en quantité , en proportion ou subir au moins une modification choisie parmi la glycation, la réticulation et l'oxydation.
14. 14- Procédé selon l'une au moins des revendications 9 à 13, caractérisé en ce que l'agent à évaluer est un filtre solaire.