FR2621924A1 - Gene recombinant, notamment retrovirus recombinant defectif et activable par un transactivateur, cellules les contenant, leur procede de fabrication et leurs applications, notamment pour la detection in vitro d'une infection retrovirale ou de l'etude de l'inhibition in vitro de l'infection par des principes actifs de medicaments - Google Patents

Gene recombinant, notamment retrovirus recombinant defectif et activable par un transactivateur, cellules les contenant, leur procede de fabrication et leurs applications, notamment pour la detection in vitro d'une infection retrovirale ou de l'etude de l'inhibition in vitro de l'infection par des principes actifs de medicaments Download PDF

Info

Publication number
FR2621924A1
FR2621924A1 FR8714384A FR8714384A FR2621924A1 FR 2621924 A1 FR2621924 A1 FR 2621924A1 FR 8714384 A FR8714384 A FR 8714384A FR 8714384 A FR8714384 A FR 8714384A FR 2621924 A1 FR2621924 A1 FR 2621924A1
Authority
FR
France
Prior art keywords
retrovirus
cells
gene
recombinant
region
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
FR8714384A
Other languages
English (en)
Other versions
FR2621924B1 (fr
Inventor
Jean-Francois Nicolas
Claire Bonnerot
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Centre National de la Recherche Scientifique CNRS
Institut Pasteur de Lille
Institut National de la Sante et de la Recherche Medicale INSERM
Original Assignee
Centre National de la Recherche Scientifique CNRS
Institut Pasteur de Lille
Institut National de la Sante et de la Recherche Medicale INSERM
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Centre National de la Recherche Scientifique CNRS, Institut Pasteur de Lille, Institut National de la Sante et de la Recherche Medicale INSERM filed Critical Centre National de la Recherche Scientifique CNRS
Priority to FR8714384A priority Critical patent/FR2621924B1/fr
Priority to EP88909550A priority patent/EP0336956A1/fr
Priority to PCT/FR1988/000514 priority patent/WO1989003878A1/fr
Priority to JP63508825A priority patent/JPH02501621A/ja
Publication of FR2621924A1 publication Critical patent/FR2621924A1/fr
Priority to DK300289A priority patent/DK300289A/da
Application granted granted Critical
Publication of FR2621924B1 publication Critical patent/FR2621924B1/fr
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/005Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6897Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids involving reporter genes operably linked to promoters
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/70Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving virus or bacteriophage
    • C12Q1/701Specific hybridization probes
    • C12Q1/702Specific hybridization probes for retroviruses
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/70Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving virus or bacteriophage
    • C12Q1/701Specific hybridization probes
    • C12Q1/702Specific hybridization probes for retroviruses
    • C12Q1/703Viruses associated with AIDS
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2740/00Reverse transcribing RNA viruses
    • C12N2740/00011Details
    • C12N2740/10011Retroviridae
    • C12N2740/14011Deltaretrovirus, e.g. bovine leukeamia virus
    • C12N2740/14022New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2740/00Reverse transcribing RNA viruses
    • C12N2740/00011Details
    • C12N2740/10011Retroviridae
    • C12N2740/16011Human Immunodeficiency Virus, HIV
    • C12N2740/16311Human Immunodeficiency Virus, HIV concerning HIV regulatory proteins
    • C12N2740/16322New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • AIDS & HIV (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

L'invention concerne des moyens (produits et procédés) applicables à la détection in vitro de la présence d'un rétrovirus infectieux dans un échantillon biologique, notamment d'un virus du SIDA (HIV). Ces moyens consistent notamment en des cellules sensibles à l'infection par le HIV et qui comporte un gène recombinant qui contient un ADN correspondant essentiellement à la totalité du génome d'un rétrovirus comportant un gène activable par un trans-activateur rétroviral placé sous le contrôle d'un promoteur, cet ADN étant cependant, d'une part, dépourvu de la séquence codant pour le trans-activateur rétroviral et, d'autre part, pourvu d'un marqueur hétérologue placé sous le contrôle du promoteur, en l'occurence le LTR**5**', normalement associé aux séquences codant pour les protéines qaq, pol et env. La présence de rétrovirus infectieux dans l'échantillon se manifeste par l'activation du marqueur.

Description

GENE RECOMBINANT, NOTAMMENT RETROVIRUS RECOMBINANT
DEFECTIF ET ACTIVABLE PAR UN TRANSACTIVATEUR . CELLULES
LES CONTENANT, LEUR PROCEDE DE FABRICATION ET LEURS
APPLICATIONS. NOTAMMENT POUR LA DETECTION IN VITRO D'UNE
INFECTION RETROVIRALE OU DE L'ETUDE DE L'INHIBITION IN
VITRO DE L'INFECTION PAR DES PRINCIPES ACTIFS DE MED I CAMENT S
L'invention concerne des moyens (produits et procédés) applicables à la détection in vitro de la présence d'un rétrovirus infectieux dans un échantillon biologique, notamment dans un prélèvement provenant d'un patient ou porteur présumé du rétrovirus. Une application préférée de l'invention s'adresse à la détection d'un virus du SIDA (HIV) ou de séquences nucléiques de ce rétrovirus dans de tels échantillons biologiques.
Dans une autre variante d'application, l'invention a pour but de permettre l'étude de l'influence d'agents extérieurs, notamment de principes actifs de médicaments susceptibles d'inhiber, à tout le moins moduler, le caractère infectieux in vivo du rétrovirus étudié.
La mise au point d'un système de détection directe et ultrasensible plus particulièrement des virus HIV devient urgente. Les tests de séro-positivité mettant en oeuvre la détection d'anticorps contre le rétrovirus HIV chez les porteurs éventuels peuvent s'avérer insuffisants, compte tenu de l'observation qui a été faite que les anticorps recherchés n'apparaissent souvent chez le sujet infecté par le virus HIV qu'après une durée d'incubation de 12 à 18 mois. D'autres tests actuellement utilisés, tels que la détection et le dosage de l'activité réverse transcriptase du virus éventuellement présent dans les prélèvements étudiés ne présentent pas toujours le degré de sensibilité voulue pour conclure utilement à l'infection ou non du sujet dont provenait le prélèvement.
L'invention a pour but de remédier au moins en grande partie aux inconvénients des tests existant, notamment de fournir des moyens et des procédés extrêmement sensibles de détection d'une infection rétrovirale et ce meme à un stade très précoce de l'infection.
En particulier, un premier but de l'invention est de permettre la détection, invîtro, de l'existence ou non d'une infection rétrovirale chez un hôte (humain ou animal) sensible à ladite infection rétrovirale, et ce même à un stade très précoce de l'évolution de cette infection.
Un autre but de l'invention est l'étude de l'influence d'agents extérieurs sur la capacité d'infection des lignées cellulaires par ce rétrovirus provenant de cet hôte (ou apparentées à celles-ci), par exemple de principes actifs de médicaments visant à inhiber le caractère infectieux in vivo de ce rétrovirus. Mais ces agents extérieurs peuvent aussi consister en d'autres facteurs, susceptibles au contraire d'accélérer l'infection rétrovirale.
D'autres buts encore de l'invention sont de permettre la détection de la capacité d'un rétrovirus déterminé à infecter une lignée cellulaire donnée, ou l'identification de ceux des clones cellulaires qui, au sein d'une culture cellulaire, sont infectables par ce rétrovirus ou encore l'étude invitro de la capacité potentielle d'agents divers, parmi lesquels des principes actifs de médicaments potentiels d'affecter l'infection rétrovirale de cellules sensibles exposées au rétrovirus étudié.
L'invention met à profit la capacité que possèdent des rétrovirus recombinants (ou des gènes recombinants issus de ces rétrovirus) contenant un gène exogène dont l'expression est recherchée, à s'incorporer dans le génome de cellules individuelles infectables par le rétrovirus sauvage correspondant et à permettre l'expression du gène exogène, le cas échéant dans des conditions d'activation appropriées, dans les cellules individuelles infectées auxquelles le recombinant rétroviral a été incorporé, ce gène exogène étant transmissible d'une génération cellulaire à l'autre.
L'invention met en outre à profit le fait que l'activité génique de plusieurs rétrovirus, notamment de rétrovirus humains et de mammifères supérieurs (HTLV,
BLV), dépend en général d'une trans-activation (ou transstabilisation) par une protéine virale codée par un gène endogène faisant partie du gène rétroviral. Par exemple dans le cas des rétrovirus HIV, l'activité génique du virus dépend d'une trans-activation (ou transstabilisation) par le gène HIV-tjt (également connu sous la dénomination "gène Q"), l'une au moins des cibles de la protéine codée par le gène tat étant constituée par une séquence contenue dans la région R, elle-même normalement dans la région LTR5, du génome rétroviral.La transactivation (ou trans-stabilisation) du rétrovirus sous le contrôle du gène tat est une condition essentielle à une réplication efficace du rétrovirus, en particulier au niveau de la transcription des gènes codant pour les protéines axas, env et Pol. L'absence de trans-activation n'est pas un obstacle total à la capacité de réplication virale. Néanmoins il peut être estimé que l'efficacité de réplication sous I'effet de cette trans-activation est de 500 à 1 000 fois supérieure à celle d'un rétrovirus défectif au niveau de la région tat.
Le procédé de détection de l'invention d'une infection rétrovirale repose sur l'idée d'assurer dans des cellules contenant déjà une séquence génique ou un provirus défectif au niveau de la région tat (ou de la région analogue s'agissant d'un autre rétrovirus), la susdite trans-activation ou trans-stabilisation par un apport extérieur (en "trans") d'un trans-activateur codé par la région tat du génome rétroviral du rétrovirus éventuellement présent dans l'échantillon ou prélèvement biologique à étudier. Pour parvenir à cette fin, l'invention fournit également des moyens permettant la mise en oeuvre de ce procédé et la révélation de la trans-activation ainsi induite dans les cellules susdites, dès lors qu'elles ont été mises au contact de l'échantillon à étudier et infectées par le rétrovirus éventuellement présent dans cet échantillon.
L'invention concerne plus particulièrement un gène recombinant incorporable à des lignées cellulaires infectables par le rétrovirus dont la présence est recherchée, ce gène recombinant étant lui-même activable par un transactivateur rétroviral du virus recherché, et plus particulièrement caractérisée
- en ce qu'il comporte une séquence recombinante résultant de la fusion d'une séquence activable par ce trans-activateur, cette séquence étant dérivée du génome du rétrovirus homologue et fusionnée à un marqueur hétérologue, ladite séquence recombinante étant elle-même placée sous le contrôle d'un promoteur présent dans le gène recombinant et permettant l'expression du marqueur dans un hôte cellulaire sensible, infectable par le rétrovirus sauvage correspondant
- en ce que ce gène recombinant est dépourvu de l'essentiel de la séquence codant pour le susdit transactivateur rétroviral.
L'invention concerne donc aussi les cellules auxquelles le susdit gène recombinant activable a été incorporé, que ce soit par transfection ou infection de ces cellules avec un vecteur contenant le susdit gène recombinant activable dans des conditions permettant l'expression d'un marqueur hétérologue au sein de cette cellule ou de ces cellules.
Avantageusement dans une forme de réalisation préférée de ces cellules, le gène recombinant est incorporé à leur propre patrimoine génétique.
Dans une forme préférée du gène recombinant selon l'invention, le gène recombinant contient un ADN correspondant essentiellement à la totalité du génome d'un rétrovirus comportant un gène activable par un transactivateur rétroviral placé sous le contrôle d'un promoteur, cet ADN étant cependant, d'une part, dépourvu de la séquence codant pour le trans-activateur rétroviral et, d'autre part, pourvu d'un marqueur hétérologue placé sous le contrôle du promoteur, en l'occurence le LTR5 , normalement associé aux séquences codant pour les protéines liq, pol et env.
Les séquences codant pour les protéines qêq, env,
Dol peuvent être délétées au moins en partie. En d'autres termes, et plus particulièrement dans le cas où le rétrovirus concerné est un virus HIV, le gène recombinant correspondant contient la région R d'un rétrovirus HIV et est dépourvu de la région tat d'un rétrovirus HIV.
L'invention concerne plus particulièrement un rétrovirus recombinant défectif dérivé d'un rétrovirus sauvage ou natif, contenant les éléments agissant en "cis" pour activer la transcription des séquences codant pour les protéines virales sous l'effet d'un transactivateur codant une autre région du génome rétroviral, ainsi que les parties agissant en "cis" du virus sauvage et assurant normalement l'empaquetage du rétrovirus, sa réversetranscription en une molécule ADN et son intégration dans le génome de la cellule hôte, ainsi que le site de polyadénylation de cet ARN, ce rétrovirus recombinant étant plus particulièrement caractérisé en ce qu'il comporte
- une délétion d'au moins une partie sinon de la totalité de la susdite région codant pour le susdit transactivateur du virus sauvage ou natif, la partie délétée étant suffisamment importante pour que soit interdite la production endogène, dans la cellule-hôte, d'un polypeptide ayant la propriété d'activer les susdits éléments activateurs et
- une séquence codant pour un marqueur de cellules-hôtes infectées par le rétrovirus recombinant défectif ainsi constitué, soit à l'état incorporé à la région rétrovirale comportant normalement les gènes caa,
Dol et env, soit en remplacement de tout ou partie de cette région.
La mise en contact d'une cellule hôte ainsi infectée avec une préparation de virus sauvage ou natif induit alors l'expression des éléments activateurs, grâce à l'apport extérieur du trans-activateur. Lorsque le marqueur code pour une enzyme agissant sur un substrat colorable, les cellules marquées peuvent être identifiées grâce à leur coloration sélective.
Le promoteur sous le contrôle duquel est placée la séquence activable par le trans-activateur est un promoteur susceptible d'être reconnu par les polymérases de l'hôte cellulaire infectable. La séquence génique peut être limitée pour l'essentiel à la séquence codant pour le marqueur, placée sous le contrôle direct de la région U3 du LTR du rétrovirus. En variante encore, l'une ou l'autre des régions LTR, ou les deux à la fois, sont dépourvues de promoteur(s), la séquence génique codant pour le marqueur étant alors sous le contrôle d'un promoteur distinct remplaçant la région U3 de façon à ce que la transcription se fasse toujours à partir de la région R transactivatrice.
Par exemple un rétrovirus recombinant défectif conforme à l'invention, dérivé de HIV, comprend successivement - la région R du LTR5 du rétrovirus sauvage correspondant, précédée de la région U3 du LTR5 ou d'un promoteur distinct substitué au précédent, cette région R étant, le cas échéant, suivie de la région d'empaquetage - le site d'initiation de l'ARN correspondant aux protéines virales normalement codées par les gènes qgq, ool et env - la séquence codant pour le marqueur incorporée à la région rétrovirale comportant les gènes aaa. Dol et env, ou substituée à tout ou partie de cette région rétrovirale, - une délétion ou une mutation dans la région tat, et - la région LTR31, qui coincide avec le site de polyadénylation de l'ARN.
Les séquences géniques recombinantes ou rétrovecteurs défectifs recombinants selon l'invention peuvent être fabriqués par des techniques classiques en matière de génie génétique, notamment par recombinaison in vitro des éléments constitutifs caractéristiques entrant dans la séquence génique recombinante ou le rétrovirus défectif recombinant tels qu'ils ont été définis ci-dessus. A cet égard, l'invention concerne également les vecteurs recombinants contenant l'ADN du virus recombinant défectif sus-défini, incorporé à tout vecteur permettant l'amplification de l'ensemble dans un hôte cellulaire compétent, par exemple un plasmide bactérien.
L'invention concerne également les cellules ou lignées cellulaires infectables par le rétrovirus sauvage ou natif correspondant au rétrovirus dont certaines parties interviennent dans la séquence des susdits rétrovirus défectifs et séquences géniques, ces cellules étant ellesmêmes modifiées par incorporation dans leur propre patrimoine génétique desdites séquences géniques ou de provirus défectifs recombinants correspondant auxdits rétrovirus défectifs.
Ces cellules indicatrices peuvent être produites par tout procédé classique, notamment par infection de cellules sensibles à l'infection par un rétrovirus défectif recombinant produit in vitro ou par transformation de ces mêmes cellules par un vecteur contenant la séquence génique recombinante ou la totalité du génome du rétrovirus défectif recombinant.
Les observations suivantes peuvent être faites quant aux divers éléments constitutifs de la séquence génique recombinante ou du rétrovirus défectif recombinant selon l'invention.
Le marqueur lui-même est avantageusement constitué par une enzyme produite dans les cellules transformées par le gène ou virus recombinant défectif, pour lui conférer une coloration particulière ou la capacité d'agir sur un substrat pénétrant dans les cellules transformées ou infectées, notamment de subir une modification de coloration ou plus généralement de son spectre d'absorption des radiations lumineuses, sous l'action de cette enzyme. A titre d'exemples d'enzymes codées par la séquence codante, contenue dans la séquence génique mise en oeuvre dans l'invention, on mentionnera la 6-salactosidase, la 6-glucuronidase ou la luciférase. Il va de soi que l'on peut avoir recours à toute autre séquence codante, dès lors qu'elle code pour une protéine susceptible de jouer le rôle de marqueur permettant de repérer aisément les cellules transformées.
L'utilisation de tels types de marqueurs dans le cadre de l'invention est particulièrement avantageux, en tant qu'elle permet une observation individualisée des cellules auxquelles les virus ou provirus défectifs recombinants sus-définis ont été incorporés, notamment à l'occasion de la révélation de l'expression du marqueur, par exemple dans les conditions décrites plus loin.
Il est avantageux, pour obtenir un marquage sensible, d'utiliser le marqueur qui sera localisé dans un compartiment cellulaire aisément identifiable des cellules étudiées, l'ensemble formant la séquence génique susdéfinie, elle-même placée sous le contrôle de la région LTR5, du rétrovirus concerné. Une séquence génique avantageuse comprend la séquence "nls-Lac Z" décrite par
Kalderon, D. et al (1984), Cell 39, 499-509, et contenant une région signal de localisation de l'antigène T (nls) du virus de singe SV40 fusionnée au gène Lac Z, cette séquence nls-LacZ étant, par exemple, placée sous le contrôle du LTRS du HIV.La protéine de fusion correspondante nls-ss-Gal est enzymatiquement active et reste associée avec le noyau des cellules auxquelles une telle séquence génique est incorporée, plus particulièrement avec les membranes des noyaux cellulaires desdites cellules, plutôt que de s'accumuler dans le nucléoplasme. On obtient ainsi une sensibilité maximale. Quand la lignée indicatrice est infectée par le virus sauvage, l'expression du gène LacZ peut être facilement détectée histochimiquement au niveau de la cellule. A chaque cellule de la lignée indicatrice
LacZ infectée correspond alors une cellule Sgal décelable par marquage histochimique in situ.
Avantageusement, le promoteur sous le contrôle duquel est placée la séquence codant pour le marqueur est un promoteur faible ou affaibli. En particulier, un promoteur affaibli dérivé de la séquence du LTR5 de virus
HIV est constitué par ce LTR lui-même, partiellement délété. En particulier, ce promoteur peut être délété d'une partie de la région U3, sans pour autant supprimer la totalité de l'activité promotrice de la région U3.
En effet, comme cela a été indiqué plus haut, la délétion de la région tat ne forme pas un obstacle total à la réplication du virus, cas dans lequel la protéine marqueur peut quelquefois être légèrement exprimée dans une lignée de cellules infectées par le rétrovirus défectif.
L'affaiblissement du promoteur a pour but de rendre encore plus faible l'expression du marqueur en l'absence de contact entre ces lignées cellulaires et un milieu extérieur contenant le rétrovirus sauvage. Il ne s'agit là que d'un perfectionnement non nécessaire, car même avec un promoteur non délété le degré d'expression du marqueur est à ce point plus élevé lorsque ces cellules sont mises au contact d'un apport en rétrovirus sauvage extérieur, que dans le cas où elle s'en trouve protégée que la confusion entre les degrés de marquage observables dans les deux cas est pratiquement impossible.
Le procédé selon l'invention pour la détection d'une infection rétrovirale dans un échantillon contenant des cellules éventuellement infectées (tel qu'un prélèvement de sérum humain contenant des lymphocytes T4, s'agissant d'apprécier s'il est infecté par un virus HIV) ou le milieu, tel qu'un surnageant de culture, avec lequel ces cellules avaient auparavant été en contact, est caractérisé par les étapes que constituent - la mise en contact de cet échantillon avec les cellules contenant la séquence génique selon l'invention, notamment un provirus défectif susceptible d'être lui-même transactivé par l'apport extérieur en rétrovirus éventuellement contenu dans l'échantillon, et ce dans des conditions (notamment de température et de durée d'incubation appropriées) permettant l'infection desdites cellules par le rétrovirus éventuellement présent dans l'échantillon, et - la détection de l'infection éventuelle desdites cellules par révélation de l'expression du marqueur résultant de la transactivation de la séquence génique ou du provirus défectif présent dans ces dernières cellules, à l'aide d'un révélateur approprié.
Un tel procédé permet la détection très sensible, dans des délais très rapides, de la présence d'une infection rétrovirale dans l'échantillon cellulaire initial qui était à tester, et même le dosage du degré de l'infection rétrovirale dans l'échantillon testé, au moment où le test a été réalisé.
On appréciera que ce test permet aussi d'étudier l'évolution de l'infection chez un patient atteint de la maladie induite par le rétrovirus sauvage, s'il est répété dans le temps, sur des prélèvements de sérums, de tout autre fluide ou tissu biologique infecté provenant de ce patient.
Ce procédé peut aussi être mis en oeuvre pour l'étude de l'efficacité éventuelle d'un principe actif de médicament vis-à-vis de l'interaction entre le rétrovirus considéré et des cellules sensibles, notamment lorsque la susdite mise en contact sus-indiquée est opérée en présence de ce principe actif. On apprécie que le test ainsi modifié permet à la fois de sélectionner le principe actif de médicament qui pourrait se révéler le plus actif, de déterminer les doses qui pourraient être efficaces pour traiter le patient ayant fourni le prélèvement, ces doses efficaces découlant notamment de celles qui, dans la mise en oeuvre du test sus-indiqué, n'autorisent pas l'infection des cellules contenant le rétrovirus ou provirus recombinant défectif au contact de prélèvements provenant du malade à traiter ou le surnageant du milieu dans lequel cet échantillon cellulaire avait été maintenu.
Plus généralement, l'invention permet l'étude in vitro de l'influence de facteurs susceptibles d'interférer avec l'infection virale, le procédé sus-défini comprenant alors la mise en contact des cellules contenant la séquence génique ou le provirus recombinant selon l'invention, en présence de ce facteur, avec des quantités déterminées de rétrovirus extérieur et la détection des doses de facteurs, notamment de principe actif de médicament, qui préviennent l'infection rétrovirale, détectable par l'activation du marqueur, desdites cellules.
L'invention concerne donc également des nécessaires ou kits permettant la mise en oeuvre du procédé qui vient d'être décrit, ces kits comportant - des cellules sensibles modifiées contenant le rétrovirus ou provirus recombinant défectif sus-défini, - des moyens de révélation de l'expression du marqueur, notamment lorsque le marqueur est une enzyme, un substrat spécifique de l'enzyme, - éventuellement les tampons et réactifs nécessaires à la réalisation de la mise en contact, avec l'échantillon biologique, des cellules contenant la séquence génique ou le rétrovirus recombinant défectif à étudier et l'incubation du mélange de réaction dans des conditions permettant l'infection éventuelle de ces cellules au contact de l'échantillon étudié, - le cas échéant des milieux de conservation ou de culture desdites cellules saines et modifiées.
Avantageusement les cellules indicatrices utilisées dans ces kits sont constituées par des lignées cellulaires "immortalisées" infectables par le rétrovirus recombinant correspondant. Par exemple, dans le cas d'un kit destiné à la détection d'un virus HIV, lesdites cellules sensibles modifiées et les cellules saines appartiendraient toutes deux à des lignées cellulaires du type
CEM, HUT, etc.
Dans les exemples indiqués plus loin, les possibilités de l'invention sont illustrées en rapport avec la production d'un virus recombinant défectif dérivé d'un virus HIV-1.
Il est donc tout à fait clair que l'invention s'adresse à la détection de tout type de rétrovirus éventuellement infectieux vis-à-vis de cultures cellulaires déterminées et présentant les caractéristiques essentielles de structure dont il a été question plus haut. En particulier, elle s'applique à la fabrication de rétrovirus recombinants défectifs permettant, dans les conditions qui ont été indiquées, la détection du pouvoir infectieux (ou la modulation du pouvoir infectieux) des rétrovirus connus sous les dénominations HTLV I, HTLV II,
HIV I (ou encore LAV ou HTLV III), HIV II (ou LAV II),
HTLV IV. Il en est encore de même pour de nombreux rétrovirus infectieux à l'égard de l'animal. A titre d'exemple, on mentionnera les rétrovirus leucémiques des bovins (Bovine Leukemia Viruses) et des félins (FeLV).
Des caractéristiques supplémentaires de l'invention apparaitront encore au cours de la description d'exemples de réalisation, appliquée à la production de rétrovirus recombinants défectifs conformes à l'invention, dérivé de HIV-1.
D'autres buts de l'invention et les moyens qui permettent de les atteindre résulteront encore de la description de certains des modes de réalisation présentés, soit à titre préféré, soit à titre d'illustration des possibilités offertes par l'invention pour l'étude de tous les aspects des diverses interactions possibles entre des rétrovirus sauvages déterminés et des cellules indicatrices infectables par ces rétrovirus et de la modulation de ces interactions.
Il sera dans ce qui suit fait référence aux figures dans lesquelles
- les figures la et lb font apparaitre de façon schématique les caractéristiques de séquences géniques recombinantes conformes à l'invention
- les figures 2a, 2b et 2c sont des représentations schématiques d'exemples de rétrovirus défectifs recombinants conformes à l'invention.
Les figures la et lb sont illustratives de deux gènes recombinants conformes à l'invention, tous deux dépourvus de la région tat. Le gène recombinant de la figure lb se distingue de celui de la figure la par une délétion partielle du LTR5,. Ces gènes, incorporés dans le génome de cellules sensibles à l'infection par HIV, sont fonctionnels lorsque les cellules en cause sont placées au contact de source de virus HIV sauvage.
EXEMPLES : tes de détection d'un rétrovirus sauvage de type HIV par trans-activation d'une copie défective intégrée dans une cellule infectable
L'ADN recombinant dont l'expression doit être amplifiée par la présence du produit du gène tat externe possède les éléments suivants
1 un promoteur (pro dans la figure 2a) permettant la transcription d'une séquence susceptible d'être exprimée, placée sous son contrôle
2 la région R de HIV-1 jusqu'au site Hind III (nucléotide n 83 selon WRIGHT et al., Science fli, p. 988 ou nucléotide n- 77 dans CSH, RNA tumor virus, tome 2, p. 1 104, 1985) comme démontré dans l'article de WRIGHT et al., Science 234, p. 988.Ce fragment contient en effet les éléments qui confèrent en cis la trans-activation par les produits du gène tat
3 un gène marqueur tel que par exemple le fragment de 3.3 kb du gène nls LacZ tel que décrit dans l'article de KALDERON et SMITH
4 un signal de polyadénylation de l'ARN.
Cette structure est schématisée en figure 2a.
Un autre exemple particulier est donné en figure 2b dans laquelle la séquence recombinante comprend le LTR complet d'un rétrovirus HIV-1 comportant donc le promoteur (U3), la région cis (R) nécessaire à la trans-activation, fusionnée par recombinaison génétique avec un fragment nls
LacZ extrait à l'aide d'enzymes de restriction du vecteur L7RHBgal décrit dans l'article de KALDERON et SMITH avant d'être placé par ligation in vitro sous la dépendance de la région R du LTR et relié, également par ligation, au signal de polyadénylation du virus HBV.
Un autre exemple particulier est donné dans la figure 2c où l'ADN du provirus infectieux décrit dans l'article de M. MARTIN et al. (Journal of Virol., vol. 59, p. 284-291) a été fragmenté par les enzymes de restriction Sphl (nucléotide n' 989 de la séquence publiée dans RNA tumor viruses, Cold Spring Harbor 1985) et BamHI (nucléotide 8 032, même référence) comme indiqué à la figure 2c et où le gène nls LacZ (fragment SalI BamHI du plasmide pMMuLVnls LacZ) a été mis à la place de qgq, nol et env.
Ces fragments sont coupés, isolés et lignés comme indiqué dans MANIATIS.
Les plasmides décrits dans les figures la, lb ou 2a, 2b, 2c peuvent être introduits, de préférence par cotransfection, en utilisant les méthodes habituelles décrites par exemple dans GRAHAM et VANDER Eb 19873,
Virology 52, 456 et NICOLAS et BERG, CHS, Cell proliferation, 10, 469, dans des cellules infectables par le rétrovirus HIV sauvage, telles que les lignées de cellules
Leu 30KT4 auxquelles se réfère l'article de MALCOLM MARTIN ou CEM (CNCM 1-416 et CNCM I-417) ou SupTI.
Quel que soit le gène recombinant introduit, il ne conduira qu'à une expression minimale du gène LacZ dans les cellules dans lesquelles il a été introduit. Une telle cellule (formant la cellule indicatrice) comporte une ou plusieurs copies de la construction LacZ. Ces cellules indicatrices peuvent alors être mises en oeuvre dans un test de détection dans un échantillon biologique d'un virus sauvage. L'infection d'une cellule indicatrice entrainera l'activation (en trans) du gène LacZ et, par conséquent, son expression.
Cette activation peut être mise en évidence par l'essai histochimique basé par exemple sur l'utilisation de X-gal selon la technique décrite par SANES et al. Embo
J. 1986) qui permet une détection in site de l'activité p-galactosidase. A chaque évènement d'infection par un virus sauvage correspondra une cellule Bgal+ détectable au plus 48 heures plus tard.
Les virus présents dans les humeurs ou cellules de malade ou même dans les embryons humains peuvent ainsi être détectés de façon très rapide, et ce à un stade très précoce de l'infection rétrovirale.

Claims (11)

REVENDICATIONS
1. Gène recombinant caractérisé
- en ce qu'il comporte une séquence recombinante résultant de la fusion d'une séquence activable par ce trans-activateur, cette séquence étant dérivée du génome du rétrovirus homologue et fusionnée à un marqueur hétérologue, ladite séquence recombinante étant elle-même placée sous le contrôle d'un promoteur présent dans le gène recombinant et permettant l'expression du marqueur dans un hôte cellulaire sensible, infectable par le rétrovirus sauvage correspondant
- en ce que ce gène recombinant est dépourvu de l'essentiel de la séquence codant pour le susdit transactivateur rétroviral.
2. Gène recombinant selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il contient un ADN correspondant essentiellement à la totalité du génome d'un rétrovirus comportant un gène activable par un trans-activateur rétroviral placé sous le contrôle d'un promoteur, cet ADN étant cependant, d'une part, dépourvu de la séquence codant pour le trans-activateur rétroviral et, d'autre part, pourvu d'un marqueur hétérologue placé sous le contrôle du promoteur, en l'occurence le LTR5,, normalement associé aux séquences codant pour les protéines qgg,
Dol et env.
3. Gène recombinant selon la revendication 1 ou la revendication 2, caractérisé en ce qu'il est dérivé d'un
HIV.
4. Gène recombinant selon l'une quelconque des revendications I à 3, caractérisé en ce qu'il est constitué par un rétrovirus recombinant défectif comportant
- une délétion d'au moins une partie sinon de la totalité de la susdite région codant pour le susdit transactivateur du virus sauvage ou natif, la partie délétée étant suffisamment importante pour que soit interdite la production endogène, dans la cellule-hôte, d'un polypeptide ayant la propriété d'activer les susdits éléments activateurs et
- une séquence codant pour un marqueur de cellules-hotes infectées par le rétrovirus recombinant défectif ainsi constitué, soit à l'état incorporé å la région rétrovirale comportant normalement les gènes sji,
Dol et env, r soit en remplacement de tout ou partie de cette région.
5. Rétrovirus recombinant défectif selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisé en ce qu'il comprend - la région R du LTR5 du rétrovirus sauvage correspondant, précédée de la région U3 du LTR5 ou d'un promoteur distinct substitué au précédent, cette région R étant, le cas échéant, suivie de la région d'empaquetage - le site d'initiation de l'ARN correspondant aux protéines virales normalement codées par les gènes aaa, Dol et env - la séquence codant pour le marqueur incorporée à la région rétrovirale comportant les gènes ciao. Dol et env, ou substituée à tout ou partie de cette région rétrovirale, - une délétion ou une mutation dans la région tat, et - la région LTR31, qui coïncide avec le site de polyadénylation de l'ARN.
6. Gène recombinant selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, caractérisé en ce que le marqueur est la 8-galactosidase.
7. Cellules ou lignées cellulaires infectables par le rétrovirus sauvage ou natif correspondant au rétrovirus dont certaines parties interviennent dans la séquence des susdits rétrovirus défectifs et séquences géniques selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, ces cellules étant elles-mêmes modifiées par incorporation dans leur propre patrimoine génétique desdites séquences géniques ou de provirus défectifs recombinants correspondant auxdits rétrovirus défectifs.
8. Procédé pour la détection d'une infection rétrovirale dans un échantillon contenant des cellules éventuellement infectées (tel qu'un prélèvement de sérum humain contenant des lymphocytes T4, s'agissant d'apprécier s'il est infecté par un virus HIV) ou le milieu, tel qu'un surnageant de culture, avec lequel ces cellules avaient auparavant été en contact, caractérisé par les étapes que constituent - la mise en contact de cet échantillon avec les cellules contenant la séquence génique selon l'invention, notamment un provirus défectif susceptible d'être lui-même transactivé par l'apport extérieur en rétrovirus éventuellement contenu dans l'échantillon, et ce dans des conditions (notamment de température et de durée d'incubation appropriées) permettant l'infection desdites cellules par le rétrovirus éventuellement présent dans l'échantillon, et - la détection de l'infection éventuelle desdites cellules par révélation de l'expression du marqueur résultant de la transactivation de la séquence génique ou du provirus défectif présent dans ces dernières cellules, à l'aide d'un révélateur approprié.
9. Procédé selon la revendication 8, caractérisé en ce que le marqueur est constitué par un gène LacZ et que l'expression du gène LacZ est détectée par un substrat spécifique de la B-galactosidase.
10. Procédé selon la revendication 9, caractérisé en ce que la susdite mise en contact est faite en présence d'un principe dont on veut étudier la capacité à interférer avec le pouvoir infectieux du rétrovirus considéré.
11. Nécessaire ou kit permettant la mise en oeuvre du procédé selon la revendication 10, ce kit comportant - des cellules sensibles modifiées contenant le rétrovirus ou provirus recombinant défectif sus-défini, - des moyens de révélation de l'expression du marqueur, notamment lorsque le marqueur est une enzyme, un substrat spécifique de l'enzyme, - éventuellement les tampons et réactifs nécessaires à la réalisation de la mise en contact, avec l'échantillon biologique, des cellules contenant la séquence génique ou le rétrovirus recombinant défectif à étudier et l'incubation du mélange de réaction dans des conditions permettant l'infection éventuelle de ces cellules au contact de l'échantillon étudié, - le cas échéant des milieux de conservation ou de culture desdites cellules saines et modifiées.
FR8714384A 1987-10-19 1987-10-19 Gene recombinant, notamment retrovirus recombinant defectif et activable par un transactivateur, cellules les contenant, leur procede de fabrication et leurs applications, notamment pour la detection in vitro d'une infection retrovirale ou de l'etude de l'inhibition in vitro de l'infection par des principes actifs de medicaments Expired - Lifetime FR2621924B1 (fr)

Priority Applications (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FR8714384A FR2621924B1 (fr) 1987-10-19 1987-10-19 Gene recombinant, notamment retrovirus recombinant defectif et activable par un transactivateur, cellules les contenant, leur procede de fabrication et leurs applications, notamment pour la detection in vitro d'une infection retrovirale ou de l'etude de l'inhibition in vitro de l'infection par des principes actifs de medicaments
EP88909550A EP0336956A1 (fr) 1987-10-19 1988-10-19 Gene recombinant defectif et activable par un transactivateur
PCT/FR1988/000514 WO1989003878A1 (fr) 1987-10-19 1988-10-19 Gene recombinant defectif et activable par un transactivateur
JP63508825A JPH02501621A (ja) 1987-10-19 1988-10-19 組換え遺伝子、特にトランス型活性化物質によって活性化し得る欠陥組換えレトロウイルス、これらを含む細胞、その製造方法及び使用
DK300289A DK300289A (da) 1987-10-19 1989-06-16 Defekt rekombinant gen, som kan aktiveres af en transaktivator

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FR8714384A FR2621924B1 (fr) 1987-10-19 1987-10-19 Gene recombinant, notamment retrovirus recombinant defectif et activable par un transactivateur, cellules les contenant, leur procede de fabrication et leurs applications, notamment pour la detection in vitro d'une infection retrovirale ou de l'etude de l'inhibition in vitro de l'infection par des principes actifs de medicaments

Publications (2)

Publication Number Publication Date
FR2621924A1 true FR2621924A1 (fr) 1989-04-21
FR2621924B1 FR2621924B1 (fr) 1990-01-12

Family

ID=9355935

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
FR8714384A Expired - Lifetime FR2621924B1 (fr) 1987-10-19 1987-10-19 Gene recombinant, notamment retrovirus recombinant defectif et activable par un transactivateur, cellules les contenant, leur procede de fabrication et leurs applications, notamment pour la detection in vitro d'une infection retrovirale ou de l'etude de l'inhibition in vitro de l'infection par des principes actifs de medicaments

Country Status (5)

Country Link
EP (1) EP0336956A1 (fr)
JP (1) JPH02501621A (fr)
DK (1) DK300289A (fr)
FR (1) FR2621924B1 (fr)
WO (1) WO1989003878A1 (fr)

Families Citing this family (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2651005B1 (fr) * 1989-08-17 1992-01-03 Pasteur Institut Lignees de cellules infectables par un retrovirus et contenant un marqueur activable a l'occasion de l'infection
CA2044679A1 (fr) * 1990-06-22 1991-12-23 Alexander Honigman Depistage de l'infection a vih par bioluminescence
GB9017443D0 (en) * 1990-08-09 1990-09-26 Amersham Int Plc Reporter bacteria for rapid microbial detection
AU654713B2 (en) * 1991-05-15 1994-11-17 L'institut De Recherches Cliniques De Montreal Transgenic non-human animal carrying a non-infectious HIV genome
GB9114437D0 (en) * 1991-07-03 1991-08-21 Health Lab Service Board Recombinant adenoviruses and the use thereof for detecting the presence in eukaryotic cells of the expression products of specific genes
US5733720A (en) * 1992-06-18 1998-03-31 Washington University Genetically engineered cell lines for detecting infectious herpesvirus and methods therefor
US5958676A (en) * 1992-06-18 1999-09-28 Washington University Genetically engineered cell lines for detecting infectious herpesvirus and methods therefor
US7132247B1 (en) 1998-09-17 2006-11-07 Regents Of The University Of Minnesota Composite devices incorporating biological material and methods
WO2005014805A1 (fr) 2003-08-08 2005-02-17 Regents Of The University Of Minnesota Matiere structuree pour produire de l'hydrogene

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0233764A1 (fr) * 1986-02-14 1987-08-26 THE UNITED STATES OF AMERICA as represented by the Secretary United States Department of Commerce Plasmides inhibant la réplication de virus lymphotropique type III de T-cellules humaines

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0233764A1 (fr) * 1986-02-14 1987-08-26 THE UNITED STATES OF AMERICA as represented by the Secretary United States Department of Commerce Plasmides inhibant la réplication de virus lymphotropique type III de T-cellules humaines

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
SCIENCE, vol. 227, 11 janvier 1985, pages 171-173; J.SODROSKI et al.: "Trans-acting transcriptional regulation of human T-cell leukemia virus type III long terminal repeat" *
SCIENCE, vol. 234, 21 novembre 1986, pages 988-992; C.M.WRIGHT et al.: "Expression and characterization of the trans-activator of HTLV-III/LAV virus" *
SCIENCE, vol. 239, 8 janvier 1988, pages 184-187; B.K.FELBER et al.: "A quantitative bioassay for HIV-1 based on trans-activation" *

Also Published As

Publication number Publication date
WO1989003878A1 (fr) 1989-05-05
FR2621924B1 (fr) 1990-01-12
DK300289D0 (da) 1989-06-16
EP0336956A1 (fr) 1989-10-18
JPH02501621A (ja) 1990-06-07
DK300289A (da) 1989-06-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP4183749B2 (ja) 抗ウィルス剤感受性及び耐性を決定するための組成物及び方法並びに抗ウィルス剤のスクリーニング
EP1187928B1 (fr) Particules de type viral, preparation et utilisation de ces dernieres, de preference dans le criblage pharmaceutique et la genomique fonctionnelle
WO1988003167A1 (fr) Retrovirus recombinant defectif
Alin et al. Amino acid substitutions in the CA protein of Moloney murine leukemia virus that block early events in infection
FR2621924A1 (fr) Gene recombinant, notamment retrovirus recombinant defectif et activable par un transactivateur, cellules les contenant, leur procede de fabrication et leurs applications, notamment pour la detection in vitro d'une infection retrovirale ou de l'etude de l'inhibition in vitro de l'infection par des principes actifs de medicaments
EP0946731B1 (fr) Souches de vih-1 non-m non-o, fragments et applications
Lubiniecki Continuous cell substrate considerations
Mertz et al. Rev and Rex proteins of human complex retroviruses function with the MMTV Rem-responsive element
US7419802B2 (en) Virus like particles, their preparation and their use preferably in pharmaceutical screening and functional genomics
US20160251680A1 (en) Dry transfection compositions and methods for making and using the same
Lee et al. Generation of the replication-competent human immunodeficiency virus type 1 which expresses a jellyfish green fluorescent protein
US20020052040A1 (en) Virus like particles, their preparation and their use preferably in pharmaceutical screening and functional genomics
FR2651005A1 (fr) Lignees de cellules infectables par un retrovirus et contenant un marqueur activable a l'occasion de l'infection
OA10208A (fr) Gene recombinant notamment retrovirus recombinant défectif et activable par un transactivateur
EP1219705A1 (fr) Particules du type virus, leur préparation et leur utilisation en criblage pharmaceutique et en analyse fonctionelle de génomes
EP1034259B1 (fr) Procede de clonage par digestion multiple
EP0796338B1 (fr) Lignees cellulaires d'encapsidation pour la transcomplementation de vecteurs retroviraux defectifs
JPH05227996A (ja) 生長する哺乳動物細胞における遺伝子の発現についての生物発光アツセイ
Jong et al. Role of gag sequence in the biochemical properties and transforming activity of the avian sarcoma virus UR2-encoded gag-ros fusion protein
US7476517B2 (en) Virus like particles, their preparation and their use preferably in pharmaceutical screening and functional genomics
JPH05137593A (ja) 生物発光によるhivの感染の検出
Braaten Cyclophilin A is required for wildtype replication kinetics of HIV-1
Faysal Single-particle HIV-1 capsid uncoating analysis to elucidate the role of the cofactor IP6 and the mode of action of the capsid-targeting drug Lenacapavir
Poston et al. Derivation and characterization of an HIV-1 mutant that rescues IP
EP0844483A1 (fr) Méthode de mise en évidence de l'activité cytotoxique de cellules

Legal Events

Date Code Title Description
ST Notification of lapse