EP0336956A1 - Gene recombinant defectif et activable par un transactivateur - Google Patents

Gene recombinant defectif et activable par un transactivateur

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EP0336956A1
EP0336956A1 EP88909550A EP88909550A EP0336956A1 EP 0336956 A1 EP0336956 A1 EP 0336956A1 EP 88909550 A EP88909550 A EP 88909550A EP 88909550 A EP88909550 A EP 88909550A EP 0336956 A1 EP0336956 A1 EP 0336956A1
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EP
European Patent Office
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retrovirus
cells
gene
recombinant
marker
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Withdrawn
Application number
EP88909550A
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German (de)
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Inventor
Jean-François Nicolas
Claire Bonnerot
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Institut Pasteur de Lille
Institut National de la Sante et de la Recherche Medicale INSERM
Original Assignee
Institut Pasteur de Lille
Institut National de la Sante et de la Recherche Medicale INSERM
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Filing date
Publication date
Application filed by Institut Pasteur de Lille, Institut National de la Sante et de la Recherche Medicale INSERM filed Critical Institut Pasteur de Lille
Publication of EP0336956A1 publication Critical patent/EP0336956A1/fr
Withdrawn legal-status Critical Current

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    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/005Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6897Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids involving reporter genes operably linked to promoters
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
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    • C12Q1/702Specific hybridization probes for retroviruses
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    • C12Q1/702Specific hybridization probes for retroviruses
    • C12Q1/703Viruses associated with AIDS
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2740/00Reverse transcribing RNA viruses
    • C12N2740/00011Details
    • C12N2740/10011Retroviridae
    • C12N2740/14011Deltaretrovirus, e.g. bovine leukeamia virus
    • C12N2740/14022New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2740/00Reverse transcribing RNA viruses
    • C12N2740/00011Details
    • C12N2740/10011Retroviridae
    • C12N2740/16011Human Immunodeficiency Virus, HIV
    • C12N2740/16311Human Immunodeficiency Virus, HIV concerning HIV regulatory proteins
    • C12N2740/16322New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes

Definitions

  • the invention relates to means (products and methods) applicable to the in vitro detection of the E 45 presence of an infectious retrovirus in a biological sample, in particular in a sample coming from a patient or suspected carrier of the retrovirus.
  • a preferred application of the invention is directed to the detection of an AIDS virus (HIV) or of nucleic sequences of this retrovirus in such biological samples.
  • HIV AIDS virus
  • the invention aims to allow the study of the influence of external agents, in particular of active principles of medicaments capable of inhibiting, at the very least modulating, the infectious character. in vivo of the retrovirus studied.
  • the object of the invention is to remedy at least in large part the drawbacks of existing tests, n- This is to provide extremely sensitive means and methods for detecting a retroviral infection even at a very early stage of the infection.
  • a first object of the invention is to allow the detection, in vitro, of the existence or not of a retroviral infection in a host (human or animal) sensitive to said retroviral infection, even at a very early stage in the development of this infection.
  • Another object of the invention is the study of the influence of external agents on the capacity of infection of cell lines by this retrovirus originating from this host (or related thereto), for example of principle.
  • ⁇ active drugs intended to inhibit the infectious nature in vivo of this retrovirus.
  • these external agents may also consist of other factors, which may on the contrary accelerate retroviral infection.
  • Still other aims of the invention are to enable the detection of the capacity of a determined retrovirus to infect a given cell line, or the identification of those of cell clones which, within cell culture, are infectable by this retrovirus or the in vitro study of the potential capacity of various agents, including active principles of potential drugs to affect the retroviral infection of sensitive cells exposed to the retrovirus studied.
  • the invention takes advantage of the capacity possessed by recombinant retroviruses (or recombinant genes derived from these retroviruses) containing an exogenous gene whose expression is sought, to be incorporated into the genome of individual cells infectable by the corresponding wild retrovirus. and to allow expression of the exogenous gene, if necessary under activation conditions appropriate, in the individual infected cells in which the retroviral recombinant has been incorporated, this exogenous gene being transmissible from one cell generation to another.
  • the invention also takes advantage of the fact that the gene activity of several retroviruses, in particular of human and higher mammalian retroviruses (HTLV, BLV), generally depends on a trans-activation (or trans-stabilization) by a viral protein encoded by an endogenous gene that is part of the retroviral gene.
  • HTLV human and higher mammalian retroviruses
  • the genetic activity of the virus depends on a trans-activation (or trans-stabilization) by the HIV-tat gene (also known under the name "Q gene"), one at less of the targets of the protein encoded by the tat gene being constituted by a sequence contained in the R region, itself normally in the LTR region of the retroviral genome.
  • Trans-activation (or trans-stabilization) of the retrovirus under the control of the tat gene is an essential condition for efficient replication of the retrovirus, in particular at the level of transcription of the genes coding for the ⁇ a ⁇ proteins. approx and pol.
  • the absence of trans-activation is not a total obstacle to the capacity for viral replication. However, it can be estimated that the replication efficiency under the effect of this trans-activation is 500 to 1000 times greater than that of a defective retrovirus in the tat region.
  • the method of detecting the invention of retroviral infection is based on the idea of ensuring in cells already containing a gene sequence or a defective pro ⁇ virus at the level of the tat region (or of the analogous region s 'acting from another retrovirus), the aforesaid trans-activation or trans-stabilization by an external contribution (in "trans") of a trans-activator coded by the region of the retroviral genome of the retrovirus possibly present in the sample or biological sample to be studied.
  • the invention also provides means allowing the implementation of this process and the revelation of the trans-activation thus induced in the abovementioned cells, as soon as they have been brought into contact with 1 sample to be studied and infected with the retrovirus possibly present in this sample.
  • the invention relates more particularly to a recombinant gene which can be incorporated into cell lines which cannot be infected with the retrovirus, the presence of which is sought after, this recombinant gene being itself activatable by a retroviral trans-activator of the sought virus, and more particularly characterized : in that it comprises a recombinant sequence resulting from the fusion of a sequence activatable by this trans-activator, this sequence being derived from the genome of the homologous retrovirus and fused with a heterologous marker, said recombinant sequence itself placed under the control of a promoter present in the recombinant gene and allowing expression of the marker in a sensitive cellular host, infectable with the corresponding wild re ⁇ trovirus; in that this recombinant gene lacks the essential part of the sequence coding for the above-mentioned retroviral activator.
  • the invention therefore also relates to the cells to which the above-mentioned activatable recombinant gene has been incorporated, whether by transfection or infection of these cells with a vector containing the above-mentioned recombinant gene which can be activated under conditions allowing the express ⁇ sion of a heterologous marker within this cell or these cells.
  • the recombinant gene is incorporated into their own genetic heritage.
  • the recombinant gene contains DNA corresponding essentially to the entire genome of a retrovirus comprising a gene activatable by a retroviral activator placed under the control of a promoter, this DNA being however, on the one hand, devoid of the sequence coding for the retroviral trans-activator and, on the other hand, provided with a heterologous marker placed under
  • control of the promoter in this case the LTR, normally associated with the sequences coding for the proteins gag, pol and env.
  • the sequences coding for the gag, env, pol proteins can be deleted at least in part.
  • the corresponding recombinant gene contains the R region of an HIV retrovirus and is devoid of the tat region of an HIV retrovirus. .
  • the invention relates more particularly to a defective recombinant retrovirus derived from a wild or native retrovirus, containing the elements acting in "cis" to activate the transcription of the sequences coding for the viral proteins under the effect of a transactivator coding another region.
  • this recombinant retrovirus being more particularly characterized in that it comprises: a deletion of at least part if not all of the above-mentioned region coding for the above-mentioned transactivator of the wild or native virus, the part deleted enough to prohibit the endogenous production, in the host cell, of a polypeptide having the property of activating the above activating elements and a sequence coding for a marker of host cells infected with the retrovirus defective recombinant thus constituted, either in the state incorporated into the retroviral region normally comprising the gag, pol and env genes, or in replacement of all or part of this region.
  • the bringing into contact of a host cell thus infected with a preparation of wild or native virus then induces the expression of the activating elements, thanks to the external contribution of the trans-activator.
  • the marker codes for an enzyme acting on a dyeable substrate
  • the labeled cells can be identified by their selective staining.
  • the promoter under whose control the sequence activatable by the trans-activator is placed is a promoter capable of being recognized by the polymerases of the infectable cell host.
  • the gene sequence can be essentially limited to the sequence coding for the marker, placed under the direct control of the U3 region of the 5 'LTR of the retrovirus.
  • one or the other of the LTR regions, or both at the same time are devoid of promoter (s), the gene sequence coding for the marker then being under the control of a distinct promoter replacing the U3 region so that transcription is always carried out from the transactivating R region.
  • a defective recombinant retrovirus in accordance with the invention successively comprises: the R region of the 5 ′ LTR of the corresponding wild retrovirus, preceded by the U3 region of the LTR or of a promoter distinct substituted for the previous one, this region R being, where appropriate, followed by the packaging region; the RNA initiation site corresponding to the viral proteins normally encoded by the gag, pol and env genes; the sequence coding for the marker incorporated into the retroviral region comprising the gag, pol and env genes, or substituted for all or part of this retroviral region,
  • the recombinant gene sequences or recombinant defective retro-vectors according to the invention can be produced by conventional techniques in the field of genetic engineering, in particular by in vitro recombination of the characteristic constitutive elements entering into the recombinant gene sequence or the defective retrovirus re ⁇ combining as defined above.
  • the invention also relates to the re-combining vectors containing the DNA of the above-defined defective recombinant virus, incorporated into any vector allowing the amplification of the whole in a competent cellular host, for example a plasmid. bacterial.
  • the invention also relates to cells or cell lines infectable by the wild or native retrovirus corresponding to the retrovirus, certain parts of which intervene in the sequence of the above-mentioned defective retroviruses and gene sequences, these cells being themselves modified by incorporation into their own patri ⁇ genetic monk of said gene sequences or of recombinant defective proviruses corresponding to said defective retroviruses.
  • These indicator cells can be produced by any conventional method, in particular by infection of cells susceptible to infection by a recombinant defective retrovirus produced in vitro or by transformation of these same cells with a vector containing the recombinant gene sequence or the entire genome of the defective retrovirus recombinant.
  • the marker itself advantageously consists of an enzyme produced in cells transformed by the defective recombinant gene or virus, to give it a particular coloration or the ability to act on a substrate penetrating into transformed or infected cells, in particular to undergo a change in color or more generally in its absorption spectrum of light radiation, under the action of this enzyme.
  • enzymes encoded by the coding sequence contained in the gene sequence used in the invention, mention will be made of ⁇ -galactosidase, ⁇ -glucuronidase or luciferase. It goes without saying that any other coding sequence can be used, as long as it codes for a protein capable of playing the role of marker making it possible to easily identify the transformed cells.
  • markers in the context of the invention is particularly advantageous, as it allows individual observation of the cells in which the above-defined recombinant defective viruses or proviruses have been incorporated, in particular on the occasion of revealing the expression of the marker, for example under the conditions described below.
  • An advantageous gene sequence comprises the "nls-Lac Z" sequence described by Kalderon, D. et al (1984), Cell 39; 499-509, and containing a signal signal localization region of the T (nls) antigen of the SV40 monkey virus fused to the Lac Z gene, this nls-LacZ sequence being, for example, placed under the control of the 5 'LTR of HIV.
  • the corresponding fusion protein nls- ⁇ -Gal is enzymatically active and remains associated with the nucleus of the cells in which such a gene sequence is incorporated, more particularly with the membranes of the cellular nuclei of the said cells, rather than accumulating in the nucleoplas e .
  • expression of the LacZ gene can be easily detected histochemically at the cell level. To each cell of the indicator line
  • An infected LacZ then corresponds to a ⁇ gal cell detectable by histochemical labeling in situ.
  • the promoter under whose control the sequence coding for the marker is placed is a weak or weakened promoter.
  • HIV is made up of this LTR itself, partially delimited.
  • this promoter can be deleted from part of the U3 region, without however eliminating all of the promoter activity of the U3 region.
  • the deletion of the tat region does not form a total obstacle to the replication of the virus, in which case the marker protein can sometimes be slightly expressed in a line of cells infected with the defective retrovirus.
  • the weakening of the promoter is intended to further lower expression of the marker in the absence of contact between these cell lines and an external medium containing the wild retrovirus. This is only an unnecessary improvement, because even with an undelete promoter the degree of expression of the marker is to this point higher when these cells are brought into contact with a contribution in wild outdoor retrovirus, that in the case where it is protected from it that the confusion between the degrees of marking observable in the two cases is practically impossible.
  • the method according to the invention for the detection of a retroviral infection in a sample containing possibly infected cells (such as a sample of human serum containing T4 lymphocytes, being concerned with assessing whether it is infected with an HIV virus) or the medium, such as a culture supernatant, with which these cells had previously been in contact is characterized by the steps which constitute: bringing this sample into contact with the cells containing the gene sequence according to the invention, in particular a defective provirus capable of being itself transac ⁇ tivated by the external supply of retrovirus possibly contained in the sample, and this under conditions (in particular of temperature and incubation time appropriate) allowing the infection of said cells by the retrovirus possibly present in the sample, and - the detection of the possible infection of said cells by revelation of the expression of the marker resulting from the transactivation of the gene sequence or of the defective provirus present in these latter cells, using an appropriate developer.
  • possibly infected cells such as a sample of human serum containing T4 lymphocytes, being concerned with assessing whether it is
  • Such a method allows very sensitive detection, within very rapid timeframes, of the presence of retroviral infection in the initial cell sample which was to be tested, and even the assay of the degree of infection. retroviral in the test sample, at the time the test was performed.
  • this test also makes it possible to study the evolution of the infection in a patient suffering from the disease induced by the wild retrovirus, if it is repeated over time, on samples of sera, of any other fluid or infected biological tissue from this patient.
  • This method can also be implemented for the study of the possible effectiveness of an active principle of a medicament with respect to the interaction between the retrovirus considered and sensitive cells, in particular when the aforementioned brought into contact with -indicated is operated in the presence of this active ingredient. It is appreciated that the test thus modified makes it possible both to select the active principle of the drug which could prove to be the most active, to determine the doses which could be effective for treating the patient who provided the sample, these effective doses arising in particular from those which, in the implementation of the above-mentioned test, do not authorize the infection of cells containing the defective recombinant retrovirus or provirus in contact with samples from the patient to be treated or the supernatant of the medium in which this cell sample had been maintained.
  • the invention allows the in vitro study of the influence of factors liable to interfere with viral infection, the above-defined method then comprising bringing the cells containing the genetic sequence or the provirus into contact recombinant according to the invention, in the presence of this factor, with determined quantities of external retrovirus and the detection of the doses of fac ⁇ tors, in particular of active principle of medicament, which pre ⁇ come retroviral infection, detectable by activa ⁇ tion of the marker, of said cells.
  • the invention therefore also relates to neces ⁇ saries or kits allowing the implementation of the process which has just been described, these kits comprising:
  • - modified sensitive cells containing the above-defined defective recombinant retrovirus or provirus means for revealing the expression of the marker, in particular when the marker is an enzyme, a specific substrate for the enzyme,
  • the indicator cells used in these kits consist of "immortalized" cell lines which can be infected with the corresponding recombinant retrovirus.
  • said modified sensitive cells and healthy cells would both belong to cell lines of the CEM, HUT, etc. type.
  • the invention is intended for the detection of any type of retrovirus which is possibly infectious with respect to determined cell cultures and having the essential structural characteristics which have been discussed more high.
  • it applies to the manufacture of defective recombinant retroviruses allowing, under the conditions which have been indicated, the detection of the infectious power (or the modulation of the infectious power) of the retroviruses known under the names HTLV I, HTLV II, HIV I (or LAV or HTLV III), HIV II (or LAV II), HTLV IV.
  • HTLV I, HTLV II, HIV I (or LAV or HTLV III), HIV II (or LAV II), HTLV IV The same is still the case for many infectious retroviruses against animals.
  • FIGS. 1a and 1b show diagrammatically the characteristics of recombinant gene sequences in accordance with the invention
  • Figures 2a, 2b and 2c are schematic representations of examples of recombinant defective retroviruses according to the invention.
  • Figures 1a and 1b are illustrative of two recombinant genes according to the invention, both lacking the tat region.
  • the recombinant gene for Figure 1b differs from that of Figure 1a by a partial deletion of the LTR 5 '.
  • EXAMPLES test for the detection of a wild type HIV retrovirus by trans-activation of a defective copy integrated in an infectable cell
  • the recombinant DNA the expression of which must be amplified by the presence of the product of the external tat gene, has the following elements:
  • a promoter (pro in FIG. 2a) allowing the transcription of a sequence capable of being expressed, placed under its control;
  • a marker gene such as for example the 3.3 kb fragment of the nls LacZ gene as described in the article by KALDERON and SMITH;
  • FIG. 2a Another particular example is given in FIG. 2b in which the recombinant sequence comprises the complete LTR of an HIV-1 retrovirus therefore comprising the promoter (U3), the cis region (R) necessary for trans-activation, fused by genetic recombination with a LacZ nls fragment extracted using restriction enzymes of the vector L7RH ⁇ gal described in the article by KALDERON and SMITH before being placed by in vitro ligation under the dependence of the R region of the LTR and linked, also by ligation, at polyadenylation signal of the HBV virus.
  • U3 promoter
  • R cis region
  • FIG. 2c Another particular example is given in FIG. 2c where the DNA of the infectious provirus described in the article by M. MARTIN et al. (Journal of Virol., Vol. 59, p. 284-291) was fragmented by the restriction enzymes Sph1 (nucleotide n * 989 of the sequence published in RNA tumor viruses, Cold Spring Harbor 1985) and BamHI (nucleotide 8,032, same reference) as indicated in FIG. 2c and where the nls LacZ gene (Sali BamHI fragment of the plasmid pMMuLVnls LacZ) has been put in place of gag, pol and env.
  • Sph1 nucleotide n * 989 of the sequence published in RNA tumor viruses, Cold Spring Harbor 1985
  • BamHI nucleotide 8,032, same reference
  • the plasmids described in FIGS. 1a, 1b or 2a, 2b, 2c can be introduced, preferably by co-transfection, using the usual methods described for example in GRAHAM and VANDER Eb 19873, Virology £ 2, 456 and NICOLAS and BERG, CHS, Cell proliferation, LQ, 469, in cells infectable by the wild HIV retrovirus, such as the Leu 30KT4 cell lines to which the article by MALCOLM MARTIN or CEM (CNCM 1-416 and CNCM) refers. 1-417) or SupTI.
  • the indicator cell contains one or more copies of the LacZ construct. These indicator cells can then be used in a detection test in a biological sample of a wild virus. Infection of an indicator cell will result in activation (in trans) of the LacZ gene and, therefore, its expression.
  • Viruses present in the moods or cells of patients or even in human embryos can thus be detected very quickly, and this at a very early stage of retroviral infection.

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Abstract

L'invention concerne des moyens (produits et procédés) applicables à la détection in vitro de la présence d'un rétro­ virus infectieux dans un échantillon biologique, notamment d'un virus du SIDA (HIV). Ces moyens consistent notamment en des cellules sensibles à l'infection par le HIV et qui comporte un gène recombinant qui contient un ADN correspondant essentiellement à la totalité du génome d'un rétrovirus comportant un gène activable par un transactivateur rétroviral pla­ cé sous le contrôle d'un promoteur, cet ADN étant cependant, d'une part, dépourvu de la séquence codant pour le transac­ tivateur rétroviral et, d'autre part, pourvu d'un marqueur hétérologue placé sous le contrôle du promoteur, en l'occurrence le LTR5′, normalement associé aux séquences codant pour les protéines gag, pol et env. La présence de rétrovirus infectieux dans l'echantillon se manifeste par l'activation du marqueur.
Abstract
The invention concerns means (products and processes) applicable to the in vitro detec­ tion of the presence of an infectious retrovirus in a biological specimen, in particular of an AIDS virus (HIV). These means consist, in par­ ticular, of cells which are susceptible to infec­ tion by HIV and which include a recombinant gene containing a DNA corresponding essen­ tially to the totality of the genome of rotrovi­ rus having a gene which can be activated by a retroviral transactivator controlled by a promo­ ter. Said DNA, however, does not contain the coding sequence for the retroviral transactivator but does contain a heterol­ ogous marker controlled by a promoter, in this case LTR⁵, which is normally associated with the coding sequences for the gag, pol and env proteins. The activation of the marker indicates the presence of infectious retrovirus in the specimen.

Description

Gène reσorabinant défectif et activable par un transactivateur.
L'invention concerne des moyens (produits et procédés) applicables à la détection in vitro de la E 45 présence d'un retrovirus infectieux dans un échantillon biologique, notamment dans un prélèvement provenant d'un patient ou porteur présumé du retrovirus. Une application préférée de l'invention s'adresse à la détection d'un virus du SIDA (HIV) ou de séquences nucléiques de ce retrovirus dans de tels échantillons biologiques.
Dans une autre variante d'application, l'invention a pour but de permettre l'étude de l'influence d'agents extérieurs, notamment de principes actifs de médicaments susceptibles d'inhiber, à tout le moins moduler, le ca¬ ractère infectieux in vivo du retrovirus étudié.
La mise au point d'un système de détection directe et ultrasensible plus particulièrement des virus HIV de¬ vient urgente. Les tests de séro-positivité mettant en oeuvre la détection d'anticorps contre le retrovirus HIV chez les porteurs éventuels peuvent s'avérer insuffisants, compte tenu de l'observation qui a été faite que les anti¬ corps recherchés n'apparaissent souvent chez le sujet in¬ fecté par le virus HIV qu'après une durée d'incubation de 12 à 18 mois. D'autres tests actuellement utilisés, tels que la détection et le dosage de l'activité réverse transcriptase du virus éventuellement présent dans les prélèvements étudiés ne présentent pas toujours le degré de sensibilité voulue pour conclure utilement à l'infec¬ tion ou non du sujet dont provenait le prélèvement.
L'invention a pour but de remédier au moins en grande partie aux inconvénients des tests existant, n- tamment de fournir des moyens et des procédés extrêmement sensibles de détection d'une infection retrovirale et ce même à un stade très précoce de l'infection.
En particulier, un premier but de l'invention est de permettre la détection, in vitro, de l'existence ou non d'une infection retrovirale chez un hôte (humain ou ani¬ mal) sensible à ladite infection retrovirale, et ce même à un stade très précoce de l'évolution de cette infection.
Un autre but de 1'invention est 1'étude de 1'in¬ fluence d'agents extérieurs sur la capacité d'infection des lignées cellulaires par ce retrovirus provenant de cet hôte (ou apparentées à celles-ci), par exemple de princi¬ pes actifs de médicaments visant à inhiber le caractère infectieux in vivo de ce retrovirus. Mais ces agents exté¬ rieurs peuvent aussi consister en d'autres facteurs, sus¬ ceptibles au contraire d'accélérer l'infection retrovi¬ rale.
D'autres buts encore de 1'invention sont de per¬ mettre la détection de la capacité d'un retrovirus déter¬ miné à infecter une lignée cellulaire donnée, ou l'iden¬ tification de ceux des clones cellulaires qui, au sein d'une culture cellulaire, sont infectables par ce rétro- virus ou encore 1'étude in vitro de la capacité poten¬ tielle d'agents divers, parmi lesquels des principes actifs de médicaments potentiels d'affecter l'infection retrovirale de cellules sensibles exposées au retrovirus étudié.
L'invention met à profit la capacité que possèdent des retrovirus recombinants (ou des gènes recombinants issus de ces retrovirus) contenant un gène exogène dont l'expression est recherchée, à s'incorporer dans le génome de cellules individuelles infectables par le retrovirus sauvage correspondant et à permettre l'expression du gène exogène, le cas échéant dans des conditions d'activation appropriées, dans les cellules individuelles infectées auxquelles le recombinant rétroviral a été incorporé, ce gène exogène étant trans issible d'une génération cellu¬ laire à l'autre.
L'invention met en outre à profit le fait que l'activité genique de plusieurs retrovirus, notamment de retrovirus humains et de mammifères supérieurs (HTLV, BLV) , dépend en général d'une trans-activation (ou trans¬ stabilisation) par une protéine virale codée par un gène endogène faisant partie du gène rétroviral. Par exemple dans le cas des retrovirus HIV, l'activité genique du virus dépend d'une trans-activation (ou trans¬ stabilisation) par le gène HIV-tat (également connu sous la dénomination "gène Q"), l'une au moins des cibles de la protéine codée par le gène tat étant constituée par une séquence contenue dans la région R, elle-même normalement dans la région LTR du génome rétroviral. La trans- activation (ou trans-stabilisation) du retrovirus sous le contrôle du gène tat est une condition essentielle à une réplication efficace du retrovirus, en particulier au niveau de la transcription des gènes codant pour les protéines σaσ. env et pol. L'absence de trans-activation n'est pas un obstacle total à la capacité de réplication virale. Néanmoins il peut être estimé que l'efficacité de réplication sous l'effet de cette trans-activation est de 500 à 1 000 fois supérieure à celle d'un retrovirus dé- fectif au niveau de la région tat.
Le procédé de détection de l'invention d'une in¬ fection retrovirale repose sur l'idée d'assurer dans des cellules contenant déjà une séquence genique ou un pro¬ virus défectif au niveau de la région tat (ou de la région analogue s'agissant d'un autre retrovirus), la susdite trans-activation ou trans-stabilisation par un apport ex¬ térieur (en "trans") d'un trans-activateur codé par la ré¬ gion tat du génome rétroviral du retrovirus éventuellement présent dans 1'échantillon ou prélèvement biologique à étudier. Pour parvenir à cette fin, l'invention fournit également des moyens permettant la mise en oeuvre de ce procédé et la révélation de la trans-activation ainsi in¬ duite dans les cellules susdites, dès lors qu'elles ont été mises au contact de 1'échantillon à étudier et in¬ fectées par le retrovirus éventuellement présent dans cet échantillon.
L'invention concerne plus particulièrement un gène recombinant incorporable à des lignées cellulaires infec¬ tables par le retrovirus dont la présence est recherchée, ce gène recombinant étant lui-même activable par un trans- activateur rétroviral du virus recherché, et plus particu¬ lièrement caractérisée : en ce qu'il comporte une séquence recombinante résultant de la fusion d'une séquence activable par ce trans-activâteur, cette séquence étant dérivée du génome du retrovirus homologue et fusionnée à un marqueur hété¬ rologue, ladite séquence recombinante étant elle-même placée sous le contrôle d'un promoteur présent dans le gène recombinant et permettant 1'expression du marqueur dans un hôte cellulaire sensible, infectable par le re¬ trovirus sauvage correspondant ; en ce que ce gène recombinant est dépourvu de l'essentiel de la séquence codant pour le susdit trans- activateur rétroviral.
L'invention concerne donc aussi les cellules aux¬ quelles le susdit gène recombinant activable a été incor¬ poré, que ce soit par transfection ou infection de ces cellules avec un vecteur contenant le susdit gène recom¬ binant activable dans des conditions permettant 1'expres¬ sion d'un marqueur hétérologue au sein de cette cellule ou de ces cellules.
Avantageusement dans une forme de réalisation préférée de ces cellules, le gène recombinant est incor¬ poré à leur propre patrimoine génétique.
Dans une forme préférée du gène recombinant selon l'invention, le gène recombinant contient un ADN corres¬ pondant essentiellement à la totalité du génome d'un re¬ trovirus comportant un gène activable par un trans- activateur rétroviral placé sous le contrôle d'un promo¬ teur, cet ADN étant cependant, d'une part, dépourvu de la séquence codant pour le trans-activateur rétroviral et, d'autre part, pourvu d'un marqueur hétérologue placé sous
5• le contrôle du promoteur, en 1'occurence le LTR , norma¬ lement associé aux séquences codant pour les protéines gag, pol et env.
Les séquences codant pour les protéines gag, env, pol peuvent être délétées au moins en partie. En d'autres termes, et plus particulièrement dans le cas où le rétro- virus concerné est un virus HIV, le gène recombinant cor¬ respondant contient la région R d'un retrovirus HIV et est dépourvu de la région tat d'un retrovirus HIV.
L'invention concerne plus particulièrement un retrovirus recombinant défectif dérivé d'un retrovirus sauvage ou natif, contenant les éléments agissant en "cis" pour activer la transcription des séquences codant pour les protéines virales sous l'effet d'un transactivateur codant une autre région du génome rétroviral, ainsi que les parties agissant en "cis" du virus sauvage et assurant normalement l'empaquetage du retrovirus, sa réverse- transcription en une molécule ADN et son intégration dans le génome de la cellule hôte, ainsi que le site de polyadénylation de cet ARN, ce retrovirus recombinant étant plus particulièrement caractérisé en ce qu'il com¬ porte : une délétion d'au moins une partie sinon de la totalité de la susdite région codant pour le susdit transactivateur du virus sauvage ou natif, la partie délétée étant suffisamment importante pour que soit in terdite la production endogène, dans la cellule-hôte, d'un polypeptide ayant la propriété d'activer les susdits élé¬ ments activateurs et une séquence codant pour un marqueur de cellules-hôtes infectées par le retrovirus recombinant défectif ainsi constitué, soit à l'état incorporé à la région retrovirale comportant normalement les gènes gag, pol et env, soit en remplacement de tout ou partie de cette région.
La mise en contact d'une cellule hôte ainsi in¬ fectée avec une préparation de virus sauvage ou natif induit alors l'expression des éléments activateurs, grâce à l'apport extérieur du trans-activateur. Lorsque le marqueur code pour une enzyme agissant sur un substrat colorable, les cellules marquées peuvent être identifiées grâce à leur coloration sélective.
Le promoteur sous le contrôle duquel est placée la séquence activable par le trans-activateur est un promo¬ teur susceptible d'être reconnu par les polymérases de l'hôte cellulaire infectable. La séquence genique peut être limitée pour 1'essentiel à la séquence codant pour le marqueur, placée sous le contrôle direct de la région U3 du LTR 5' du retrovirus. En variante encore, 1'une ou l'autre des régions LTR, ou les deux à la fois, sont dé¬ pourvues de promoteu (s) , la séquence genique codant pour le marqueur étant alors sous le contrôle d'un promoteur distinct remplaçant la région U3 de façon à ce que la transcription se fasse toujours à partir de la région R transactivatrice.
Par exemple un retrovirus recombinant défectif conforme à l'invention, dérivé de HIV, comprend successi¬ vement : la région R du LTR 5' du retrovirus sauvage correspon- dant, précédée de la région U3 du LTR ou d'un promoteur distinct substitué au précédent, cette région R étant, le cas échéant, suivie de la région d'empaquetage ; le site d'initiation de l'ARN correspondant aux pro¬ téines virales normalement codées par les gènes gag, pol et env ; la séquence codant pour le marqueur incorporée à la région retrovirale comportant les gènes gag, pol et env, ou substituée à tout ou partie de cette région rétro- virale,
- une délétion ou une mutation dans la région tat, et la région LTR 3 ' , qui coïncide avec le site de polyadé- nylation de l'ARN.
Les séquences géniques recombinantes ou rétro- vecteurs défectifs recombinants selon 1'invention peuvent être fabriqués par des techniques classiques en matière de génie génétique, notamment par recombinaison in vitro des éléments constitutifs caractéristiques entrant dans la sé¬ quence genique recombinante ou le retrovirus défectif re¬ combinant tels qu'ils ont été définis ci-dessus. A cet égard, l'invention concerne également les vecteurs re¬ combinants contenant l'ADN du virus recombinant défectif sus-défini, incorporé à tout vecteur permettant l'amplifi¬ cation de l'ensemble dans un hôte cellulaire compétent, par exemple un plasmide bactérien.
L'invention concerne également les cellules ou lignées cellulaires infectables par le retrovirus sauvage ou natif correspondant au retrovirus dont certaines par¬ ties interviennent dans la séquence des susdits retrovirus défectifs et séquences géniques, ces cellules étant elles- mêmes modifiées par incorporation dans leur propre patri¬ moine génétique desdites séquences géniques ou de provirus défectifs recombinants correspondant auxdits retrovirus défectifs.
Ces cellules indicatrices peuvent être produites par tout procédé classique, notamment par infection de cellules sensibles à l'infection par un retrovirus défec¬ tif recombinant produit in vitro ou par transformation de ces mêmes cellules par un vecteur contenant la séquence genique recombinante ou la totalité du génome du rétro- virus défectif recombinant.
Les observations suivantes peuvent être faites quant aux divers éléments constitutifs de la séquence ge¬ nique recombinante ou du retrovirus défectif recσmbinant selon l'invention.
Le marqueur lui-même est avantageusement constitué par une enzyme produite dans les cellules transformées par le gène ou virus recombinant défectif, pour lui conférer une coloration particulière ou la capacité d'agir sur un substrat pénétrant dans les cellules transformées ou infectées, notamment de subir une modification de colora¬ tion ou plus généralement de son spectre d'absorption des radiations lumineuses, sous 1'action de cette enzyme. A titre d'exemples d'enzymes codées par la séquence codante, contenue dans la séquence genique mise en oeuvre dans l'invention, on mentionnera la β-galactosidase, la β-glucuronidase ou la luciférase. Il va de soi que l'on peut avoir recours à toute autre séquence codante, dès lors qu'elle code pour une protéine susceptible de jouer le rôle de marqueur permettant de repérer aisément les cellules transformées.
L'utilisation de tels types de marqueurs dans le cadre de l'invention est particulièrement avantageux, en tant qu'elle permet une observation individualisée des cellules auxquelles les virus ou provirus défectifs recombinants sus-définis ont été incorporés, notamment à l'occasion de la révélation de l'expression du marqueur, par exemple dans les conditions décrites plus loin.
Il est avantageux, pour obtenir un marquage sen¬ sible, d'utiliser le marqueur qui sera localisé dans un compartiment cellulaire aisément identifiable des cellules étudiées, l'ensemble formant la séquence genique sus- définie, elle-même placée sous le contrôle de la région LTR du retrovirus concerné. Une séquence genique avan¬ tageuse comprend la séquence "nls-Lac Z" décrite par Kalderon, D. et al (1984), Cell 39; 499-509, et contenant une région signal de localisation de l'antigène T (nls) du virus de singe SV40 fusionnée au gène Lac Z, cette séquen¬ ce nls-LacZ étant, par exemple, placée sous le contrôle du LTR 5 ' du HIV. La protéine de fusion correspondante nls-β-Gal est enzymatiquement active et reste associée avec le noyau des cellules auxquelles une telle séquence genique est incorporée, plus particulièrement avec les membranes des noyaux cellulaires desdites cellules, plutôt que de s'accumuler dans le nucléoplas e. On obtient ainsi une sensibilité maximale. Quand la lignée indicatrice est infectée par le virus sauvage, l'expression du gène LacZ peut être facilement détectée histochimiquement au niveau de la cellule. A chaque cellule de la lignée indicatrice
LacZ infectée correspond alors une cellule βgal décelable par marquage histochimique in situ.
Avantageusement, le promoteur sous le contrôle duquel est placée la séquence codant pour le marqueur est un promoteur faible ou affaibli. En particulier, un pro-
5 ' moteur affaibli dérivé de la séquence du LTR de virus
HIV est constitué par ce LTR lui-même, partiellement dé- lété. En particulier, ce promoteur peut être délété d'une partie de la région U3, sans pour autant supprimer la to¬ talité de l'activité promotrice de la région U3.
En effet, comme cela a été indiqué plus haut, la délétion de la région tat ne forme pas un obstacle total à la réplication du virus, cas dans lequel la protéine mar¬ queur peut quelquefois être légèrement exprimée dans une lignée de cellules infectées par le retrovirus défectif. L'affaiblissement du promoteur a pour but de rendre encore plus faible l'expression du marqueur en l'absence de con¬ tact entre ces lignées cellulaires et un milieu extérieur contenant le retrovirus sauvage. Il ne s'agit là que d'un perfectionnement non nécessaire, car même avec un promo¬ teur non délété le degré d'expression du marqueur est à ce point plus élevé lorsque ces cellules sont mises au con¬ tact d'un apport en retrovirus sauvage extérieur, que dans le cas où elle s'en trouve protégée que la confusion entre les degrés de marquage observables dans les deux cas est pratiquement impossible.
Le procédé selon l'invention pour la détection d'une infection retrovirale dans un échantillon contenant des cellules éventuellement infectées (tel qu'un prélève¬ ment de sérum humain contenant des lymphocytes T4, s'agis¬ sant d'apprécier s'il est infecté par un virus HIV) ou le milieu, tel qu'un surnageant de culture, avec lequel ces cellules avaient auparavant été en contact, est caracté¬ risé par les étapes que constituent : la mise en contact de cet échantillon avec les cellules contenant la séquence genique selon l'invention, notamment un provirus défectif susceptible d'être lui-même transac¬ tivé par l'apport extérieur en retrovirus éventuellement contenu dans l'échantillon, et ce dans des conditions (notamment de température et de durée d'incubation appro¬ priées) permettant l'infection desdites cellules par le retrovirus éventuellement présent dans l'échantillon, et - la détection de l'infection éventuelle desdites cellules par révélation de l'expression du marqueur résultant de la transactivation de la séquence genique ou du provirus dé¬ fectif présent dans ces dernières cellules, à l'aide d'un révélateur approprié.
On tel procédé permet la détection très sensible, dans des délais très rapides, de la présence d'une infec¬ tion retrovirale dans l'échantillon cellulaire initial qui était à tester, et même le dosage du degré de l'infection retrovirale dans l'échantillon testé, au moment où le test a été réalisé.
On appréciera que ce test permet aussi d'étudier l'évolution de l'infection chez un patient atteint de la maladie induite par le retrovirus sauvage, s'il est répété dans le temps, sur des prélèvements de sérums, de tout autre fluide ou tissu biologique infecté provenant de ce patient.
Ce procédé peut aussi être mis en oeuvre pour l'étude de l'efficacité éventuelle d'un principe actif de médicament vis-à-vis de l'interaction entre le retrovirus considéré et des cellules sensibles, notamment lorsque la susdite mise en contact sus-indiquée est opérée en pré¬ sence de ce principe actif. On apprécie que le test ainsi modifié permet à la fois de sélectionner le principe actif de médicament qui pourrait se révéler le plus actif, de déterminer les doses qui pourraient être efficaces pour traiter le patient ayant fourni le prélèvement, ces doses efficaces découlant notamment de celles qui, dans la mise en oeuvre du test sus-indiqué, n'autorisent pas l'infec¬ tion des cellules contenant le retrovirus ou provirus recombinant défectif au contact de prélèvements provenant du malade à traiter ou le surnageant du milieu dans lequel cet échantillon cellulaire avait été maintenu.
Plus généralement, l'invention permet l'étude in vitro de l'influence de facteurs susceptibles d'interférer avec l'infection virale, le procédé sus-défini comprenant alors la mise en contact des cellules contenant la séquen¬ ce genique ou le provirus recombinant selon l'invention, en présence de ce facteur, avec des quantités déterminées de retrovirus extérieur et la détection des doses de fac¬ teurs, notamment de principe actif de médicament, qui pré¬ viennent l'infection retrovirale, détectable par 1 'activa¬ tion du marqueur, desdites cellules. L'invention concerne donc également des néces¬ saires ou kits permettant la mise en oeuvre du procédé qui vient d'être décrit, ces kits comportant :
- des cellules sensibles modifiées contenant le retrovirus ou provirus recombinant défectif sus-défini, des moyens de révélation de l'expression du marqueur, notamment lorsque le marqueur est une enzyme, un substrat spécifique de l'enzyme,
- éventuellement les tampons et réactifs nécessaires à la réalisation de la mise en contact, avec l'échantillon biologique, des cellules contenant la séquence genique ou le retrovirus recombinant défectif à étudier et 1'incuba¬ tion du mélange de réaction dans des conditions permettant l'infection éventuelle de ces cellules au contact de l'é¬ chantillon étudié,
- le cas échéant des milieux de conservation ou de culture desdites cellules saines et modifiées.
Avantageusement les cellules indicatrices utili¬ sées dans ces kits sont constituées par des lignées cel¬ lulaires "immortalisées" infectables par le retrovirus recombinant correspondant. Par exemple, dans le cas d'un kit destiné à la détection d'un virus HIV, lesdites cel¬ lules sensibles modifiées et les cellules saines appar¬ tiendraient toutes deux à des lignées cellulaires du type CEM, HUT, etc.
Dans les exemples indiqués plus loin, les possibi¬ lités de l'invention sont illustrées en rapport avec la production d'un virus recombinant défectif dérivé d'un virus HIV-1.
Il est donc tout à fait clair que 1'invention s'adresse à la détection de tout type de retrovirus éven¬ tuellement infectieux vis-à-vis de cultures cellulaires déterminées et présentant les caractéristiques essen¬ tielles de structure dont il a été question plus haut. En particulier, elle s'applique à la fabrication de rétro- virus recombinants défectifs permettant, dans les condi¬ tions qui ont été indiquées, la détection du pouvoir infectieux (ou la modulation du pouvoir infectieux) des retrovirus connus sous les dénominations HTLV I, HTLV II, HIV I (ou encore LAV ou HTLV III), HIV II (ou LAV II), HTLV IV. Il en est encore de même pour de nombreux rétro- virus infectieux à l'égard de l'animal. A titre d'exemple, on mentionnera les retrovirus leucémiques des bovins (Bovine Leukemia Viruses) et des félins (FeLV).
Des caractéristiques supplémentaires de 1'inven¬ tion apparaîtront encore au cours de la description d'exemples de réalisation, appliquée à la production de retrovirus recombinants défectifs conformes à l'invention, dérivé de HIV-1.
D'autres buts de l'invention et les moyens qui permettent de les atteindre résulteront encore de la des¬ cription de certains des modes de réalisation présentés, soit à titre préféré, soit à titre d'illustration des possibilités offertes par l'invention pour l'étude de tous les aspects des diverses interactions possibles entre des retrovirus sauvages déterminés et des cellules indicatri¬ ces infectables par ces retrovirus et de la modulation de ces interactions.
Il sera dans ce qui suit fait référence aux fi¬ gures dans lesquelles : les figures 1a et 1b font apparaître de façon schématique les caractéristiques de séquences géniques recombinantes conformes à 1'invention ; les figures 2a, 2b et 2c sont des représenta¬ tions schématiques d'exemples de retrovirus défectifs recombinants conformes à l'invention.
Les figures 1a et 1b sont illustratives de deux gènes recombinants conformes à l'invention, tous deux dépourvus de la région tat. Le gène recombinant de la figure 1b se distingue de celui de la figure 1a par une délétion partielle du LTR 5' . Ces gènes, incorpores dans le génome de cellules sensibles à l'infection par HIV, sont fonctionnels lorsque les cellules en cause sont placées au contact de source de virus HIV sauvage.
EXEMPLES : test de détection d'un retrovirus sauvage de type HIV par trans-activation d'une copie défective inté¬ grée dans une cellule infectable
L'ADN recombinant dont l'expression doit être am¬ plifiée par la présence du produit du gène tat externe possède les éléments suivants :
1* un promoteur (pro dans la figure 2a) permettant la transcription d'une séquence susceptible d'être ex¬ primée, placée sous son contrôle ;
2* la région R de HIV-1 jusqu'au site Hind III (nucléotide n* 83 selon WRIGHT et al., Science 234. p. 988 ou nucléotide n* 77 dans CSH, RNA tumor virus, tome 2, p. 1 104, 1985) comme démontré dans l'article de WRIGHT et al., Science 234, p. 988. Ce fragment contient en effet les éléments qui confèrent en cis la trans-activation par les produits du gène tat ,-
3* un gène marqueur tel que par exemple le fragment de 3.3 kb du gène nls LacZ tel que décrit dans l'article de KALDERON et SMITH ;
4e un signal de polyadénylation de 1'ARN. Cette structure est schématisée en figure 2a. On autre exemple particulier est donné en figure 2b dans laquelle la séquence recombinante comprend le LTR complet d'un retrovirus HIV-1 comportant donc le promoteur (U3), la région cis (R) nécessaire à la trans-activation, fusionnée par recombinaison génétique avec un fragment nls LacZ extrait à l'aide d'enzymes de restriction du vecteur L7RHβgal décrit dans l'article de KALDERON et SMITH avant d'être placé par ligation in vitro sous la dépendance de la région R du LTR et relié, également par ligation, au signal de polyadénylation du virus HBV.
On autre exemple particulier est donné dans la fi¬ gure 2c où 1'ADN du provirus infectieux décrit dans l'ar¬ ticle de M. MARTIN et al. (Journal of Virol. , vol. 59, p. 284-291) a été fragmenté par les enzymes de restriction Sph1 (nucléotide n* 989 de la séquence publiée dans RNA tumor viruses, Cold Spring Harbor 1985) et BamHI (nucléo¬ tide 8 032, même référence) comme indiqué à la figure 2c et où le gène nls LacZ (fragment Sali BamHI du plasmide pMMuLVnls LacZ) a été mis à la place de gag, pol et env.
Ces fragments sont coupés, isolés et lignés comme indiqué dans MANIATIS.
Les plasmides décrits dans les figures 1a, 1b ou 2a, 2b, 2c peuvent être introduits, de préférence par co- transfection, en utilisant les méthodes habituelles dé¬ crites par exemple dans GRAHAM et VANDER Eb 19873, Virology £2, 456 et NICOLAS et BERG, CHS, Cell prolifé¬ ration, LQ, 469, dans des cellules infectables par le retrovirus HIV sauvage, telles que les lignées de cellules Leu 30KT4 auxquelles se réfère l'article de MALCOLM MARTIN ou CEM (CNCM 1-416 et CNCM 1-417) ou SupTI.
Quel que soit le gène recombinant introduit, il ne conduira qu'à une expression minimale du gène LacZ dans les cellules dans lesquelles il a été introduit. One telle cellule (formant la cellule indicatrice) comporte une ou plusieurs copies de la construction LacZ. Ces cellules indicatrices peuvent alors être mises en oeuvre dans un test de détection dans un échantillon biologique d'un virus sauvage. L'infection d'une cellule indicatrice entraînera 1'activation (en trans) du gène LacZ et, par conséquent, son expression.
Cette activation peut être mise en évidence par l'essai histochimique basé par exemple sur l'utilisation de X-gal selon la technique décrite par SANES et al. Embo J. 1986) qui permet une détection in situ de l'activité β-galactosidase. A chaque événement d'infection par un virus sauvage correspondra une cellule βgal détectable au plus 48 heures plus tard.
Les virus présents dans les humeurs ou cellules de malade ou même dans les embryons humains peuvent ainsi être détectés de façon très rapide, et ce à un stade très précoce de l'infection retrovirale.

Claims

REVENDICATIONS
1. Gène recombinant incorporable à des lignées cellulaires infectables par le retrovirus dont la présence est recherchée, ce gène recombinant étant lui-même activable par un trans-activateur rétroviral du retrovirus recherché,caractérisé : en ce qu'il comporte une séquence recombinante résultant de la fusion d'une séquence activable par ce trans-activateur, cette séquence étant dérivée du génome du retrovirus homologue et fusionnée à un marqueur hété¬ rologue, ladite séquence recombinante étant elle-même placée sous le contrôle d'un promoteur présent dans le gène recombinant et permettant 1'expression du marqueur dans un hôte cellulaire sensible, infectable par le re¬ trovirus sauvage correspondant ; en ce que ce gène recombinant est dépourvu de l'essentiel de la séquence codant pour le susdit trans¬ activateur rétroviral.
- en ce que le marqueur lui-même est constitué par une enzyme qui, lorsqu'elle est produite dans les cellules transformées par le gène ou virus recombinant défectif, lui confère une coloration particulière ou la capacité d'agir sur un substrat pénétrant dans les cellules transformées ou infectées et subissant une modification de coloration ou plus généralement de son spectre d'absorption des radiations lumineuses, sous l'action de cette enzyme.
2. Gène recombinant selon la revendication 1 , caractérisé en ce qu'il contient un ADN correspondant essentiellement à la totalité du génome d'un retrovirus comportant un gène activable par un trans-activateur rétroviral placé sous le contrôle d'un promoteur, cet ADN étant cependant, d'une part, dépourvu de la séquence codant pour le trans-activateur rétroviral et, d'autre part, pourvu d'un marqueur hétérologue placé sous le 5' contrôle du promoteur, en l'occurence le LTR , normale¬ ment associé aux séquences codant pour les protéines gag, pol et env.
3. Gène recombinant selon la revendication 1 ou la revendication 2, caractérisé en ce qu'il est dérivé d'un HIV.
4. Gène recombinant selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce qu'il est consti¬ tué par un retrovirus recombinant défectif comportant : une délétion d'au moins une partie sinon de la totalité de la susdite région codant pour le susdit transactivateur du virus sauvage ou natif, la partie délétée étant suffisamment importante pour que soit in¬ terdite la production endogène, dans la cellule-hôte, d'un polypeptide ayant la propriété d'activer les susdits élé¬ ments activateurs et une séquence codant pour un marqueur de cellules-hôtes infectées par le retrovirus recombinant défectif ainsi constitué, soit à l'état incorporé à la région retrovirale comportant normalement les gènes gag, pol et env, soit en remplacement de tout ou partie de cette région.
5. Retrovirus recombinant défectif selon 1'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisé en ce qu'il comprend :
5•
- la région R du LTR du retrovirus sauvage correspon-
5' dant, précédée de la région 03 du LTR ou d'un promoteur distinct substitué au précédent, cette région R étant, le cas échéant, suivie de la région d'empaquetage ; le site d'initiation de l'ARN correspondant aux pro¬ téines virales normalement codées par les gènes gag, pol et env ;
- la séquence codant pour le marqueur incorporée à la région retrovirale comportant les gènes gag, pol et env, ou substituée à tout ou partie de cette région rétro- virale, - une délétion ou une mutation dans la région tat, et la région LTR 3' , qui coïncide avec le site de polyadé- nylation de l'ARN.
6. Gène recombinant selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, caractérisé en ce que le marqueur est la β-galactosidase.
7. Cellules ou lignées cellulaires infectables par le retrovirus sauvage ou natif correspondant au retrovirus dont certaines parties interviennent dans la séquence des susdits retrovirus defectifs et séquences géniques selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, ces cellules étant elles-mêmes modifiées par incorporation dans leur propre patrimoine génétique desdites séquences géniques ou de provirus defectifs recombinants correspondant auxdits retrovirus defectifs.
8. Procédé pour la détection d'une infection retrovirale dans un échantillon contenant des cellules éventuellement infectées (tel qu'un prélèvement de sérum humain contenant des lymphocytes T4, s'agissant d'apprécier s'il est infecté par un virus HIV) ou le mi¬ lieu, tel qu'un surnageant de culture, avec lequel ces cellules avaient auparavant été en contact, caractérisé par les étapes que constituent : la mise en contact de cet échantillon avec les cellules contenant la séquence recombinante selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, notamment un provirus défectif susceptible d'être lui-même transactivé par l'apport extérieur en retrovirus éventuellement contenu dans l'échantillon, et ce dans des conditions (notamment de température et de durée d'incubation appropriées) permettant l'in ection desdites cellules par le retrovirus éventuellement présent dans l'échantillon, et
- la détection de l'infection éventuelle desdites cellules par révélation de l'expression du marqueur résultant de la transactivation de la séquence genique ou du provirus dé¬ fectif présent dans ces dernières cellules.
9. Procédé selon la revendication 8, caractérisé en ce que le marqueur est constitué par un gène LacZ et que 1'expression du gène LacZ est détectée par un substrat spécifique de la β-galactosidase.
10. Procédé selon la revendication 9, caractérisé en ce que la susdite mise en contact est faite en présence d'un principe dont on veut étudier la capacité à interfé¬ rer avec le pouvoir infectieux du retrovirus considéré.
11. Nécessaire ou kit permettant la mise en oeuvre du procédé selon la revendication 10, ce kit comportant :
- des cellules sensibles modifiées contenant le retrovirus ou provirus recombinant défectif sus-défini, des moyens de révélation de l'expression du marqueur, notamment un substrat spécifique de l'enzyme, éventuellement les tampons et réactifs nécessaires à la réalisation de la mise en contact, avec l'échantillon biologique, des cellules contenant la séquence genique ou le retrovirus recombinant défectif à étudier et 1'incuba¬ tion du mélange de réaction dans des conditions permettant l'infection éventuelle de ces cellules au contact de l'é¬ chantillon étudié,
- le cas échéant des milieux de conservation ou de culture desdites cellules saines et modifiées.
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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2651005B1 (fr) * 1989-08-17 1992-01-03 Pasteur Institut Lignees de cellules infectables par un retrovirus et contenant un marqueur activable a l'occasion de l'infection
CA2044679A1 (fr) * 1990-06-22 1991-12-23 Alexander Honigman Depistage de l'infection a vih par bioluminescence
GB9017443D0 (en) * 1990-08-09 1990-09-26 Amersham Int Plc Reporter bacteria for rapid microbial detection
AU654713B2 (en) * 1991-05-15 1994-11-17 L'institut De Recherches Cliniques De Montreal Transgenic non-human animal carrying a non-infectious HIV genome
GB9114437D0 (en) * 1991-07-03 1991-08-21 Health Lab Service Board Recombinant adenoviruses and the use thereof for detecting the presence in eukaryotic cells of the expression products of specific genes
US5733720A (en) * 1992-06-18 1998-03-31 Washington University Genetically engineered cell lines for detecting infectious herpesvirus and methods therefor
US5958676A (en) * 1992-06-18 1999-09-28 Washington University Genetically engineered cell lines for detecting infectious herpesvirus and methods therefor
US7132247B1 (en) 1998-09-17 2006-11-07 Regents Of The University Of Minnesota Composite devices incorporating biological material and methods
WO2005014805A1 (fr) 2003-08-08 2005-02-17 Regents Of The University Of Minnesota Matiere structuree pour produire de l'hydrogene

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU594444B2 (en) * 1986-02-14 1990-03-08 United States of America, as represented by the Secretary, U.S. Department of Commerce, The Plasmids which inhibit human t-cell lymphotropic virus type iii replication

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
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DK300289D0 (da) 1989-06-16
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JPH02501621A (ja) 1990-06-07
DK300289A (da) 1989-06-16
FR2621924A1 (fr) 1989-04-21

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