ES2691301T3 - Bacterias de ácido láctico para la enfermedad celíaca - Google Patents

Bacterias de ácido láctico para la enfermedad celíaca Download PDF

Info

Publication number
ES2691301T3
ES2691301T3 ES10714066.7T ES10714066T ES2691301T3 ES 2691301 T3 ES2691301 T3 ES 2691301T3 ES 10714066 T ES10714066 T ES 10714066T ES 2691301 T3 ES2691301 T3 ES 2691301T3
Authority
ES
Spain
Prior art keywords
seq
mer peptide
peptide
strain
strains
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
ES10714066.7T
Other languages
English (en)
Inventor
Agusti Montserrat Carreras
Montserrat Andreu Corominas
Daniel Ramon Vidal
Salvador Genoves Martinez
Esther Bataller Leiva
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Gervais Danone SA
Original Assignee
Gervais Danone SA
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Gervais Danone SA filed Critical Gervais Danone SA
Application granted granted Critical
Publication of ES2691301T3 publication Critical patent/ES2691301T3/es
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/66—Microorganisms or materials therefrom
    • A61K35/74—Bacteria
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/66—Microorganisms or materials therefrom
    • A61K35/74—Bacteria
    • A61K35/741—Probiotics
    • A61K35/744—Lactic acid bacteria, e.g. enterococci, pediococci, lactococci, streptococci or leuconostocs
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/66—Microorganisms or materials therefrom
    • A61K35/74—Bacteria
    • A61K35/741—Probiotics
    • A61K35/744—Lactic acid bacteria, e.g. enterococci, pediococci, lactococci, streptococci or leuconostocs
    • A61K35/747—Lactobacilli, e.g. L. acidophilus or L. brevis
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P1/00—Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system
    • A61P1/12—Antidiarrhoeals
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14—Fungi; Culture media therefor
    • C12N1/16—Yeasts; Culture media therefor
    • C12N1/18—Baker's yeast; Brewer's yeast
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
    • C12N1/205—Bacterial isolates
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/02—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/01—Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
    • C12R2001/225—Lactobacillus
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/01—Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
    • C12R2001/225—Lactobacillus
    • C12R2001/245—Lactobacillus casei
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/01—Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
    • C12R2001/46—Streptococcus ; Enterococcus; Lactococcus

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Coloring Foods And Improving Nutritive Qualities (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Abstract

Una cepa de bacteria láctica para su uso en el tratamiento y/o en la prevención de la enfermedad celíaca, en donde dicha bacteria láctica es capaz de degradar el péptido 33-mérico LQLQPFPQPQLPYPQPQLPYPQPQLPYPQPQPF (SEQ ID NO: 1), el péptido 20-mérico QQLPQPQQPQQSPFQQQRPF (SEQ ID NO: 2), el péptido 13-mérico LGQQQPFPPQQPY (SEQ ID NO: 3) y/o el péptido 18-mérico PQLPYPQPQLPYPQPQPF (SEQ ID NO: 4), y en donde la bacteria láctica es Lactobacillus casei CNCM I-4270.

Description

5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
DESCRIPCION
Bacterias de ácido láctico para la enfermedad celíaca Campo
La invención se refiere a lactobacilos o estreptococos en el tratamiento o la prevención de la enfermedad celíaca. Antecedentes de la técnica
La enfermedad celíaca es un trastorno autoinmune del intestino delgado que se presenta en personas genéticamente predispuestas de todas las edades desde la infancia en adelante. La enfermedad celíaca está causada por una reacción hacia las gliadinas, una familia de proteínas ricas en prolina y glutamina relacionadas de la proteína del gluten, que se encuentran en el trigo (y proteínas similares de la tribu Triticeae, tales como la cebada y el centeno). Tras la exposición a la gliadina, la enzima transglutaminasa tisular modifica la proteína, y el sistema inmunitario de los sujetos predispuestos a la enfermedad celíaca reacciona y reacciona de forma cruzada con el tejido del intestino delgado, provocando una reacción inflamatoria. La inflamación posteriormente conduce a la atrofia de las vellosidades e interfiere en la absorción de los nutrientes, incluyendo los minerales y las vitaminas liposolubles. Los síntomas clásicos de la enfermedad celíaca incluyen distensión abdominal, vómitos, diarrea, pérdida de peso (o crecimiento atrofiado en los niños), anemia y fatiga. La respuesta más potente y más común del sistema inmunitario hacia la gliadina se dirige hacia un fragmento de a2-gliadina de 33 aminoácidos de longitud (representado en la presente memoria como SEQ ID NO: 1) (Shan et al. 2005 J. Proteome Res.4:1732- 1741; Moron et al. 2008; Am. J. Clin. Nut 87(2): 405-14).
La frecuencia de la enfermedad celíaca diagnosticada clínicamente es del 0,05 al 0,27 %. Sin embargo, los estudios de población de partes de Europa, India, América del Sur, Australia y Estados Unidos indican que la frecuencia puede estar entre el 0,33 y 1,06 % de los niños y 0,18-1,2 % de los adultos. Hay indicios de que muchas personas no han sido diagnosticadas y solo tienen síntomas leves de malestar gastrointestinal.
El único tratamiento eficaz conocido hasta la fecha es una dieta sin gluten durante toda la vida.
En Siegel M. et al. (2006, Chem Biol 13 (6): 649-58), se describe una combinación de enzimas (prolil endopeptidasa y una cisteína endopeptidasa específica de la glutamina de la cebada (EP-B2)) que degradan el supuesto epítopo del péptido 33-mérico de a2-gliadina en el duodeno. Piper et al. (2004, J Pharm Exper. Therap 311: 213-219) describen el uso de prolil-endopeptidasa para degradar los péptidos de gliadina. El documento WO 2007/108763 describe cepas de Lactobacillus plantarum y una cepa de Lactobacillus rhamnosus para potenciar la inmunotolerancia en la enfermedad celíaca o la dermatitis atópica. El documento WO 2006/097415 describe una mezcla de 8 bacterias lácticas y bifidobacterias de la masa fermentada capaces de degradar los péptidos de gliadinas, tales como el fragmento 62-75 de la A-gliadina y el péptido epítopo 33-mérico, gracias a una actividad proteolítica complementaria entre las bacterias. Los alimentos horneados obtenidos a partir de estas bacterias lácticas y bifidobacterias se pueden usar en la dieta de un sujeto que padezca la enfermedad celíaca. El documento WO 03/028745 describe cepas de bacterias lácticas con peptidasas internas capaces de degradar la exorfina A5, un péptido 5-mérico derivado de la proteína del gluten. Estas cepas son capaces de reducir la concentración de los péptidos patógenos intestinales.
Angelis et al. (Biochimica et Biophysica Acta, 1762(1):80-93, 2006) describen la capacidad de un preparado probiótico comercial para hidrolizar por completo el péptido de gliadina 33-mérico.
Compendio de la invención
Se llevaron a cabo estudios in vitro para seleccionar cepas de bacterias lácticas con características probióticas. Se examinó una gran cantidad de cepas pertenecientes a los géneros Lactobacillus, Streptococcus o Bifidobacterium para determinar la actividad peptidasa en el sobrenadante de cultivo capaz de degradar el péptido 33-mérico LQLQPFPQPQLPYPQPQLPYPQPQLPYPQPQPF (SEQ ID NO: 1) que participa en la enfermedad celíaca.
Las cepas seleccionadas inicialmente se exploraron para determinar su capacidad para sobrevivir en el tracto gastrointestinal y la estabilidad de la actividad peptidasa del sobrenadante en el tracto gastrointestinal, es decir, su capacidad para alcanzar y conservar una actividad peptidasa degradante del péptido 33-mérico en el sitio de acción de la enfermedad celíaca, es decir, en el intestino delgado.
Posteriormente, las cepas seleccionadas se ensayaron para determinar su capacidad para degradar otros péptidos supuestamente implicados en la enfermedad celíaca, en concreto, un péptido 20-mérico de a-gliadina QQLPQPQQPQQSPFQQQRPF (SEQ ID NO: 2) y uno 13-mérico de A-gliadina, LGQQQPPPPQQPY (SEQ ID NO: 3).
Sorprendentemente, se descubrió que el péptido 33-mérico se degradó lentamente en condiciones que simulaban el tracto digestivo humano y que surgió un producto de descomposición del péptido 18-mérico PQLPYPQPQLPYPQPQPF (SEQ ID NO: 4) que era completamente resistente a la degradación adicional por las
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
enzimas digestivas humanas. Este nuevo hallazgo permitió una mejor selección adicional, al explorar las cepas bacterianas lácticas para determinar su capacidad para degradar el péptido 18-mérico.
De un gran número de cepas, finalmente se seleccionaron tres cepas individuales y una mezcla de dos cepas. Estas cepas son resistentes a las condiciones gastrointestinales, producen una alta actividad peptidasa estable en las condiciones gastrointestinales y, de manera ventajosa, degradan los péptidos 33-mérico, 20-mérico y 13-mérico, que participan en la enfermedad celíaca, y también degradan el péptido 18-mérico resistente. Se purificó la enzima responsable de la degradación peptídica a partir de estas cepas y se caracterizó, se secuenció y se identificó como una proteína idéntica al factor de elongación Tu en el caso de Lactobacillus casei y como un factor de elongación G en el caso de Streptococcus thermophilus.
Por lo tanto, el consumo de estas cepas específicas de bacterias lácticas o de las enzimas producidas por estas bacterias con actividad peptidasa se puede usar ventajosamente en las personas que padecen la enfermedad celíaca o en las personas con riesgo de padecer la enfermedad celíaca, tales como las personas con antecedentes familiares de la enfermedad celíaca o personas con problemas gastrointestinales leves asociados con la enfermedad celíaca. Preferiblemente, las cepas se administran en un producto recién fermentado, más preferiblemente, en un producto lácteo fermentado.
Descripción detallada de la invención
El alcance de la invención está definido por los términos de las reivindicaciones adjuntas.
Por consiguiente, la presente invención proporciona una cepa de bacteria láctica para su uso en el tratamiento y/o en la prevención de la enfermedad celíaca como se relata en la reivindicación 1.
En la presente memoria, se describe un medio fermentado por una cepa de bacteria láctica para su uso en el tratamiento y/o en la prevención de la enfermedad celíaca, en donde el medio fermentado por la bacteria láctica es capaz de degradar el péptido 33-mérico LQLQPFPQPQLPYPQPQLPYPQPQLPYPQPQPF (SEQ ID NO: 1), el péptido 20-mérico QQLPQPQQPQQSPFQQQRPF (SEQ ID NO: 2), el péptido 13-mérico LGQQQPFPPQQPY (SEQ ID NO: 3) y/o el péptido 18-mérico PQLPYPQPQLPYPQPQPF (SEQ ID NO: 4), y en donde la bacteria láctica se selecciona del grupo que consiste en el género Lactobacillus y Streptococcus.
En la realización preferida, dichas bacterias lácticas y/o dicho medio fermentado por dichas bacterias lácticas son capaces de degradar el péptido 33-mérico de SEQ ID NO: 3 y el péptido 18-mérico de SEQ ID NO: 4.
Se describe una mezcla de dos cepas de bacterias lácticas y/o un medio fermentado por una mezcla de dos cepas de bacterias lácticas para su uso en el tratamiento y/o en la prevención de la enfermedad celíaca, en donde dichas bacterias lácticas y/o dicho medio fermentado por las bacterias lácticas son capaces de degradar el péptido 33- mérico de SEQ ID NO: 1, el péptido 20-mérico de SEQ ID NO: 2, el péptido 13-mérico de SEQ ID NO: 3 y/o el péptido 18-mérico de SEQ ID NO: 4, preferiblemente el péptido de 33-mérico de SEQ ID NO: 3 y el péptido 18- mérico de SEQ ID NO: 4, y en donde las bacterias lácticas se seleccionan del grupo que consiste en el género Lactobacillus y Streptococcus.
La presente invención también proporciona una composición que comprende la cepa Lactobacillus casei CNCM 14270. También se describe al menos al menos una cepa seleccionada del grupo que consiste en Lactobacillus helveticus CNCM 1-4279, L. delbrueckii subsp. lactis CNCM 1-4280, Lactobacillus casei CNCM 1-4270, Streptococcus thermophilus CNCM 1-4269 y una mezcla de S. thermophilus CNCM 1-2776 y L. bulgaricus CNCM 12787.
La presente invención también proporciona el uso de la cepa Lactobacillus casei CNCM 1-4270 como se relata en la reivindicación 13. Se describe el uso de al menos una cepa de bacterias lácticas seleccionada del grupo que consiste en el género Lactobacillus y Streptococcus que producen un factor de elongación proteico para la degradación del péptido 33-mérico de SEQ ID NO: 1, el péptido 20-mérico de SEQ ID NO: 2, el péptido 13-mérico de SEQ ID NO: 3 y/o el péptido 18-mérico de SEQ ID NO: 4, preferiblemente el péptido 33-mérico de SEQ ID NO: 3 y el péptido 18-mérico de SEQ ID NO: 4.
En la presente memoria, se describe un método para seleccionar cepas de bacterias lácticas para su uso en el tratamiento y/o en la prevención de la enfermedad celíaca que comprende las etapas de seleccionar las cepas con la capacidad de degradar el péptido 18-mérico de SEQ ID NO: 4, cuando al menos el 45%, preferiblemente al menos el 70 %, de dicho péptido se hidroliza en presencia de un sobrenadante de cultivo de dichas cepas.
Enfermedad celíaca:
La enfermedad celíaca o celiaquía también se conoce a veces como esprúe celíaco, esprúe no tropical, esprúe endémico, enteropatía del gluten, enteropatía sensible al gluten e intolerancia al gluten. La enfermedad es diagnosticada por un médico como se conoce en la técnica, e implica análisis serológicos de sangre y, normalmente, una endoscopia/gastroscopia y una biopsia.
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
55
La enfermedad celíaca es un trastorno del intestino delgado causado por una reacción a las gliadinas, una familia de prolinas ricas en prolina y en glutamina relacionadas de la proteína del gluten, que se encuentran en el trigo, la cebada y el centeno. Al exponerse a la gliadina, el sistema inmunitario provoca una reacción inflamatoria que conduce a la atrofia de las vellosidades e interfiere en la absorción de los nutrientes, incluyendo los minerales y las vitaminas liposolubles. Los pacientes con enfermedad celíaca suelen padecer distensión abdominal, vómitos, diarrea, pérdida de peso (o crecimiento atrofiado en los niños), anemia y fatiga.
Bacterias lácticas:
Una bacteria láctica, una mezcla de bacterias lácticas o un medio fermentado por bacterias lácticas como se describe en la presente memoria es capaz de degradar un péptido como se definió anteriormente cuando al menos el 45 %, y por orden de preferencia creciente al menos el 50 %, 55 %, 60 %, 65 %, 70 %, 75 %, 80 %, 85 % y 90 % de dicho péptido se hidroliza en presencia de un sobrenadante de cultivo de una bacteria láctica seleccionada o una mezcla de bacterias lácticas seleccionadas.
El ensayo de degradación de péptidos se puede llevar a cabo mediante la actividad de proteólisis enzimática presente en el sobrenadante de cultivo de una bacteria láctica seleccionada o de una mezcla de bacterias lácticas seleccionadas obtenidas en cultivo en fase logarítmica y estacionaria de la siguiente manera: el ensayo se lleva a cabo con una mezcla que contiene PBS (p.ej., 100 mM, pH 7,3), el péptido (p.ej., 1-2 mM) y el sobrenadante de cultivo (por ejemplo, 20-30 jl) durante 48 horas a 37 °C; luego, la muestra se hierve, se filtra (p.ej., a través de 0,45 jm) y se analiza mediante cromatografía líquida de alto rendimiento.
Se llevaron a cabo estudios in vitro para seleccionar cepas de bacterias lácticas con estas propiedades. Se examinó un gran número de cepas pertenecientes a los géneros Lactobacillus, Streptococcus o Bifidobacterium para determinar la actividad peptidasa en el sobrenadante de cultivo capaz de degradar el péptido 33-mérico LQLQPFPQPQLPYPQPQLPYPQPQLPYPQPQPF (SEQ ID NO: 1) que participa en la enfermedad celíaca.
Todas las cepas seleccionadas inicialmente con esta capacidad pertenecían al género Lactobacillus y Streptococcus. Posteriormente, se examinaron para determinar su capacidad para sobrevivir en el tracto gastrointestinal y la estabilidad de la actividad peptidasa del sobrenadante en el tracto gastrointestinal, es decir, su capacidad para alcanzar y mantener una actividad peptidasa activa degradante del péptido 33-mérico en el sitio de acción de la enfermedad celíaca, que es el intestino delgado.
Posteriormente, las cepas seleccionadas se ensayaron para determinar su capacidad para degradar otros péptidos supuestamente implicados en la enfermedad celíaca, en concreto, un péptido 20-mérico de a-gliadina QQTPQPQQPQQSPFQQQRPF (SEQ ID NO: 2) y 13-mérico de A-gliadina, LGQQQPFPPQQPY (SEQ ID NO: 3).
Sorprendentemente, se descubrió que el péptido 33-mérico se degradó lentamente en condiciones que simulaban el tracto digestivo humano y que surgió un producto de descomposición del péptido 18-mérico
PQLPYPQPQLPYPQPQPF (SEQ ID NO: 4) que era completamente resistente a la degradación adicional por las enzimas digestivas humanas. Este nuevo hallazgo permitió una mejor selección adicional, al explorar las cepas bacterianas lácticas para determinar su capacidad para degradar el péptido 18-mérico.
De un gran número de cepas, finalmente se seleccionaron cinco cepas individuales y una mezcla de dos cepas. Estas cepas degradan el péptido de gliadina 33-mérico en la mayor medida (al menos el 45 %, preferiblemente al menos el 70 %, de dicho péptido se hidroliza en presencia de un cultivo de sobrenadante de una cepa bacteriana láctica seleccionada o dicha mezcla como se describió anteriormente). De esta selección, se prefiere una subselección de tres cepas individuales y una mezcla de dos cepas, ya que tienen la mayor resistencia a las condiciones gastrointestinales, producen una alta actividad peptidasa estable en las condiciones gastrointestinales y también degradan los péptidos 20-mérico y 13-mérico implicados en la enfermedad celíaca, degradando también el péptido 18-mérico resistente, que se formó a partir del péptido 33-mérico.
Se encontró el sobrenadante de cultivo (medio fermentado) de las siguientes cepas de bacterias lácticas como el más eficaz para degradar los péptidos relacionados con la enfermedad celíaca:
- cepa DN_114001, siendo Lactobacillus casei, depositada según el Tratado de Budapest en la CNCM (Colección Nacional de Cultivos de Microorganismos, 25 Rue du Docteur Roux, París) con el número I-1518 el 23 de enero de 1995. Las características detalladas de esta cepa se describen en la solicitud PCT WO 96/20607;
- cepa DN_114077, Lactobacillus casei, depositada según el Tratado de Budapest en la CNCM con el número I-4270 el 16 de diciembre de 2009. Esta cepa se identificó como perteneciente a L. casei basándose tanto en la tipificación por PCR como en la actividad bioquímica en el kit API 50 CHL (Biomerieux, Francia). Según los resultados de Api 50CHL, la cepa I-4270 fermenta los siguientes azúcares y alcoholes: ribosa, galactosa, glucosa, fructosa, manosa, sorbosa, ramnosa (reacción débil), manitol, sorbitol, alfa-metil-D-glucósido, W-acetil-glucosamina, amigdalina, arbutina, esculina, salicina, celobiosa, maltosa lactosa, sacarosa, trehalosa, inulina, melezitosa, almidón (reacción débil), gentiobiosa, turanosa, tagatosa, L-arabitol y gluconato;
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
55
- cepa DN_1190118, Lactobacillus helveticus, depositada según el Tratado de Budapest en LA CNCM con el número I-4279 el 25 de febrero de 2010. Esta cepa se identificó como perteneciente a L. helveticus basándose en la tipificación por PCR y la actividad bioquímica en el kit API 50 CHL (Biomerieux, Francia). Según los resultados de Api 50CHL, la cepa I-4279 fermenta los siguientes azúcares y alcoholes: galactosa, glucosa, fructosa, manosa, N- acetil-glucosamina y lactosa;
- cepa DN_001343, Streptococcus thermophilus, depositada según el Tratado de Budapest en la CNCM con el número I-2776 el 24 de enero de 2002. Esta cepa se identificó como perteneciente a S. thermophilus basándose tanto en la tipificación por PCR como en la actividad bioquímica en el kit API 50 CHL (Biomerieux, Francia). Según los resultados de Api 50CHL, la cepa I-2776 fermenta los siguientes azúcares y alcoholes: glucosa, lactosa y sacarosa;
- cepa DN_100290, Lactobacillus bulgaricus, depositada según el Tratado de Budapest en la CNCM con el número I- 2787 el 24 de enero de 2002. Esta cepa se identificó como perteneciente a L. bulgaricus basándose tanto en la tipificación por PCR como en la actividad bioquímica en el kit API 50 CHL (Biomerieux, Francia). Según los resultados de Api 50CHL, la cepa I-2787 fermenta los siguientes azúcares y alcoholes: glucosa, fructosa, manosa y lactosa;
- cepa DN_001546, Streptococcus thermophilus, CNCM 1-4269, depositada según el Tratado de Budapest en la CNCM el 16 de diciembre de 2009. Esta cepa se identificó como perteneciente a S. thermophilus basándose tanto en la tipificación por PCR como en la actividad bioquímica en el kit API 50 CHL (Biomerieux, Francia). Según los resultados de Api 50CHL, la cepa I-4269 fermenta los siguientes azúcares y alcoholes: glucosa, lactosa y sacarosa; y
- cepa DN_1110272, Lactobacillus delbrueckii subsp lactis, depositada según el Tratado de Budapest en la CNCM con el número I-4280 el 25 de febrero de 2010. Esta cepa se identificó como perteneciente a L. delbrueckii subsp lactis basándose tanto en la tipificación por PCR como en la actividad bioquímica en el kit API 50 CHL (Biomerieux, Francia). Según los resultados de Api 50CHL, la cepa I-4280 fermenta los siguientes azúcares y alcoholes: galactosa, glucosa, fructosa, manosa, N-acetil-glucosamina, maltosa y lactosa.
Preferiblemente, se usan juntas en una mezcla, tal como en un cultivo iniciador de yogur, S. thermophilus CNCM I- 2776 y L. bulgaricus CNCM I-2787.
En una realización preferida, la bacteria láctica se selecciona del grupo que consiste en Lactobacillus casei, Lactobacillus helveticus, Lactobacillus bulgaricus, Lactobacillus delbrueckii subsp. lactis y Streptococcus thermophilus.
En otra realización preferida, dicha cepa de bacteria láctica o mezcla de dos cepas se selecciona del grupo que consiste en Lactobacillus casei CNCM I-1518, Lactobacillus casei CNCM I-4270, Lactobacillus helveticus CNCM I- 4279, Streptococcus thermophilus CNCM I-4269, L. delbrueckii subsp. lactis CNCM I-4280 y una mezcla de Streptococcus thermophilus CNCM I-2776 y Lactobacillus bulgaricus CnCm I-2787.
Las cepas más eficaces en las condiciones gastrointestinales y, por lo tanto, preferidas, se seleccionan entre Lactobacillus casei CNCM I-1518 (cepa DN_114001), L. helveticus CNCM I-4279 (cepa DN_1190118), Lactobacillus delbrueckii subsp. lactis CNCM I-4280 (cepa DN_1110272); y S. thermophilus CNCM I-2776 (cepa DN_001343) mezclada con Lactobacillus bulgaricus cNcM I-2787 (cepa DN_100290).
También se describe el uso de las cepas mencionadas anteriormente, pero también de cepas mutantes o cepas transformadas genéticamente derivadas de una cualquiera de las cepas parentales que todavía tienen actividad peptidasa contra los péptidos del gluten, para combatir la enfermedad celíaca. Estas cepas mutantes o transformadas genéticamente pueden ser cepas en donde uno o más genes endógenos de la cepa parental han sido mutados, por ejemplo, para modificar algunas de sus propiedades metabólicas (p. ej., su capacidad para fermentar los azúcares, su resistencia a la acidez), su supervivencia al transporte en el tracto gastrointestinal, su postacidificación o su producción de metabolitos). También pueden ser cepas resultantes de la transformación genética de la cepa parental por uno o más genes de interés, por ejemplo, para dar a dicha cepa características fisiológicas adicionales, o para permitirle expresar proteínas de interés terapéutico o de vacunación que se deseen administrar a través de dichas cepas.
Sin embargo, la presente invención no engloba las cepas de Lactobacillus plantarum LB931 (DSM 11918), LB7c (DSM 17853) y LB3e (DSM 17852) y la cepa de Lactobacillus rhamnosus LB21 (NCIMB 40564) descritas en la solicitud PCT WO 2007/108763.
Actividad peptidasa del sobrenadante de cultivo contra péptidos del gluten:
La actividad peptidasa, que estaba ubicada en el exterior de las células, fue la más alta en los cultivos en donde las células crecieron hasta la fase logarítmica media. Esto es indicativo de que la actividad peptidasa forma parte del metabolismo primario. La actividad peptidasa de algunas cepas fue altamente estable (de al menos el 25 %, preferiblemente de al menos el 30 %, degradación de péptidos), en las circunstancias que imitaban el tracto
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
55
gastrointestinal humano. La actividad peptidasa produce la escisión de LQLQPFPQPQLPYPQPQLPYPQPQLPYPQPQPF (SEQ ID NO: 1), QQLPQPQQPQQSPFQQQRPF (SEQ ID NO: 2), LGQQQPFPPQQPY (SEQ ID NO: 3) y del producto de descomposición del péptido 18-mérico resistente a la degradación PQLPYPQPQLPYPQPQPF (SeQ iD NO: 4), preferiblemente el péptido 33-mérico de SEQ ID NO: 3 y el péptido 18-mérico de SEQ ID NO: 4, como se definió anteriormente.
La actividad peptidasa se aisló, se purificó y se secuenció a partir de la cepa DN_114001, Lactobacillus casei, CNCM I-1518 y la cepa DN_001343, S. thermophilus, CNCM I-2776, y sorprendentemente resultaron ser factores de elongación. El factor de elongación Tu, en caso de Lactobacillus, y el factor de elongación G, en caso de S. thermophilus. Los factores de elongación Tu y G son genes/proteínas ortólogos. Los factores de elongación son proteínas que facilitan las elongaciones de la traducción, las etapas de la síntesis de proteínas desde la formación del primer enlace peptídico hasta la formación del último. El factor de elongación bacteriano Tu puede degradar las proteínas bloqueadas en el extremo N. Además, los factores de elongación son proteínas superficiales que poseen características de un factor de adhesión. Dichos factores desempeñan un papel en la capacidad de unión de la mucina.
Composición:
También se describe una composición que comprende una bacteria láctica o una mezcla de dos cepas de bacterias lácticas y/o un medio fermentado por al menos una bacteria láctica o una mezcla de dos cepas de bacterias lácticas, en donde las bacterias lácticas se seleccionan del grupo que consiste en el género Lactobacillus y Streptococcus. Dichas bacterias lácticas, mezcla de dos cepas de bacterias lácticas y/o medio fermentado son capaces de degradar el péptido 33-mérico LQLQPFPQPQLPYPQPQLPYPQPQLPYPQPQPF (SEQ ID NO: 1), el péptido 20-mérico QQLPQPQQPQQSPFQQQRPF (SEQ ID NO: 2), el péptido 13-mérico LGQQQPFPPQQPY (SEQ ID NO: 3) y/o el péptido 18-mérico PQLPYPQPQLPYPQPQPF (SEQ ID NO: 4), preferiblemente, el péptido 33-mérico de SEQ ID NO: 3 y el péptido 18-mérico de SEQ ID NO: 4, como se definió anteriormente.
Preferiblemente, las bacterias lácticas descritas en la presente memoria con la capacidad de degradar péptidos del gluten se usan para preparar composiciones adecuadas para la administración enteral.
En una realización, las composiciones comprenden células de las bacterias lácticas como se definieron anteriormente.
Preferiblemente, la composición comprende al menos una cepa seleccionada del grupo que consiste en Lactobacillus helveticus CNCM I-4279, L. delbrueckii subsp. lactis CNCM I-4280, Lactobacillus casei CNCM I-4270, Streptococcus thermophilus CNCM I-4269 y una mezcla de S. thermophilus CNCM I-2776 y L. bulgaricus CNCM I- 2787, preferiblemente Lactobacillus helveticus CNCM I-4279, L. delbrueckii subsp. lactis CNCM I-4280, y una mezcla de S. thermophilus CNCM I-2776 y L. bulgaricus CNCM I-2787.
Preferiblemente dichas células son viables. Como alternativa, las células pueden inactivarse, pero la inactivación debe producirse de manera suave, para no destruir la actividad de la enzima en un grado demasiado alto. Si hay células viables presentes en dicha composición, preferiblemente están presentes en una cantidad de 105 a 1013 unidades formadoras de colonias (ufc), preferiblemente de al menos 106 ufc, más preferiblemente de al menos 107 ufc, aún más preferiblemente de al menos 108 ufc, y lo más preferiblemente de al menos 109 ufc por g de peso seco de la composición. En el caso de una composición líquida, en general, esto corresponde a de 104 a 1012 unidades formadoras de colonias (ufc), preferiblemente de al menos 105 ufc, más preferiblemente de al menos 106 ufc, aún más preferiblemente de al menos 107 ufc y lo más preferiblemente de al menos 108 ufc/ml.
Las células viables pueden estar presentes opcionalmente en una composición sin el sobrenadante que comprende la actividad peptidasa. Tras la propagación de las células en el tracto gastrointestinal, la nueva actividad peptidasa será in situ. Por lo tanto, las composiciones con células solo tienen una actividad contra el gluten. Preferiblemente, las células bacterianas pueden aislarse y añadirse a una composición, por ejemplo, en forma de células bacterianas secas, congeladas o liofilizadas.
En una realización, las células bacterianas se retiran de la composición, pero el sobrenadante que comprende la actividad peptidasa está presente en el producto. Dicha composición es preferiblemente un producto fermentado del que se han retirado las células bacterianas. Las formas adecuadas para retirar las células bacterianas son la filtración o la centrifugación.
En una realización preferida, están presentes en la composición tanto las células como el sobrenadante que comprende la actividad peptidasa. Por lo tanto, preferiblemente, las bacterias lácticas descritas en la presente memoria se usan para preparar un producto fermentado. El producto fermentado normalmente tiene presentes todos los metabolitos extracelulares de las bacterias producidas durante la fermentación, incluyendo la actividad peptidasa del gluten. Opcionalmente, pueden estar presentes otras cepas de bacterias lácticas. El producto fermentado puede estar presente en forma de un líquido o presente en forma de un polvo seco obtenido mediante el secado del líquido fermentado.
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
Preferiblemente, el producto fermentado es un producto fresco. Un producto fresco, que no se ha sometido a etapas intensas de tratamiento térmico, tiene la mayor actividad peptidasa (al menos el 45 %, preferiblemente al menos el 70 %, de un péptido como se definió anteriormente está hidrolizado).
Preferiblemente, el producto fermentado es un producto lácteo, más preferiblemente leche fermentada y/o suero de leche fermentado. Preferiblemente, la composición nutricional es yogur, o una leche fermentada en forma cuajada, agitada o bebible. Preferiblemente el producto fermentado es un queso.
Preferiblemente, el producto fermentado es un vegetal fermentado, tal como soja fermentada, cereales y/o frutas en forma de cuajada, agitada o bebible.
Preferiblemente, la composición nutricional presente es una comida para bebés, una fórmula de leche para bebés o una fórmula de continuación para bebés. Preferiblemente, la presente composición es un producto nutracéutico o farmacéutico, un suplemento nutricional o alimento médico.
La composición puede comprender opcionalmente otras cepas de bacterias lácticas. Estas otras cepas de bacterias pueden usarse para fermentar un producto, preferiblemente un producto lácteo.
Método:
También se describe un método para seleccionar cepas de bacterias lácticas para su uso en el tratamiento y/o en la prevención de la enfermedad celíaca que comprende las etapas de seleccionar las cepas con la capacidad de degradar el péptido 33-mérico de SEQ ID NO: 1, el péptido 20-mérico de SEQ ID NO: 2, el péptido 13-mérico de SEQ ID NO: 3 y/o el péptido 18-mérico de SEQ ID NO: 4, preferiblemente el péptido 18-mérico de SEQ ID NO: 4, cuando al menos el 45 %, preferiblemente al menos el 70 % de dichos péptidos se hidroliza en presencia de un sobrenadante de cultivo de dichas cepas.
En una realización de dicho método, comprende además la etapa de seleccionar las cepas en donde la capacidad de degradar el péptido 33-mérico de SEQ ID NO: 1, el péptido 20-mérico de SEQ ID NO: 2, el péptido 13-mérico de SEQ ID NO: 3 y/o el péptido 18-mérico de SEQ ID NO: 4 es estable (es decir, más del 25 %, preferiblemente más del 30 %, de dicho péptido se degrada) a pH entre 4 y 6, preferiblemente a pH 5 y/o estable (es decir, más del 25 %, preferiblemente más del 35 % de dichos péptidos se degradan) en presencia de enzimas digestivas seleccionadas del grupo que consiste en lisozima, pepsina, quimotripsina y tripsina.
EJEMPLO 1: EXPLORACIÓN DE SOBRENADANTES DE BACTERIAS LÁCTICAS PARA DETERMINAR LA CAPACIDAD DE DEGRADAR EL PÉPTIDO 33-MÉRICO DE SEQ ID NO: 1.
Se seleccionaron 34 cepas de Lactobacillus, 10 cepas de Streptococcus y 3 cepas de Bifidobacterium, y se evaluó su capacidad para producir una actividad proteolítica con la capacidad de degradar el péptido 33-mérico LQLQPFPQPQLPYPQPQLPYPQPQLPYPQPQPF (SEQ ID NO: 1) de a2-gliadina (supuesta responsable de la enfermedad celíaca).
Todos los microorganismos incluidos se cultivaron tanto en un medio general como específico.
Para las cepas de Lactobacillus, se usó el medio general MRS (20 g/l de dextrosa, 10 g/l de peptona, 8 g/l de extracto de carne, 5 g/l de acetato de sodio, 2 g/l de fosfato dipotásico, 2 g/l de citrato de amonio, 1 ml de Tween 80, 0,2 g/l de sulfato de magnesio, 0,05 g/l de sulfato de manganeso) y se usó el medio específico YGBLP (10 g/l de peptona, 8 g/l de extracto de carne, 3 g/l de extracto de levadura, 2,5 g/l de sulfato monopotásico, 2,5 g/l de fosfato dipotásico, 0,2 g/l de sulfato de magnesio, 0,05 g/l de sulfato de manganeso, 5 g/l de glucosa, 5 g/l de lactosa).
Para las cepas de Streptococcus, se usó el medio general Elliker (5 g/l de dextrosa, 20 g/l de triptona, 5 g/l de sacarosa, 1,5 g/l de acetato de sodio, 2,5 g/l de gelatina, 0,5 g/l de ácido ascórbico, 5 g/l de extracto de levadura, 5 g/l de lactosa, 4 g/l de cloruro de sodio) y se usó el medio específico BHI (12,5 g/l de sólidos de infusión de cerebro de ternera, 5 g/l de sólidos de infusión de corazón de ternera, 10 g/l de proteasa peptona, 2 g/l de glucosa, 5 g/l de cloruro de sodio, 2,5 g/l de fosfato disódico).
Para Bifidobacterium, las cepas se cultivaron en un medio general que consistía en MRS con cisteína (0,5 g/l) y en el medio específico de la especie Bifidobacterium (10 g/l de caseína peptona, 5 g/l de extracto de carne, 5 g/l de extracto de levadura, 10 g/l de glucosa, 1 ml de Tween 80, 3 g/l de fosfato dipotásico y 0,5 g/l de cisteína).
La temperatura del cultivo escogida fue de 25 °C y 37 °C para las cepas de Lactobacillus y de 37 °C para las cepas de Streptococcus y Bifidobacterium. El crecimiento fue en condiciones aeróbicas y en condiciones anaeróbicas. Los sobrenadantes obtenidos tras 5 minutos de centrifugación a 10.000 rpm se usaron para el ensayo de degradación del péptido 33-mérico in vitro. Se obtuvieron sobrenadantes del crecimiento en medio general y específico en cultivos en fase logarítmica y estacionaria para detectar la actividad degradante como resultado del metabolismo primario y secundario.
El ensayo de degradación del péptido 33-mérico se llevó a cabo mediante la actividad de proteólisis enzimática presente en los sobrenadantes de cultivo de los microorganismos seleccionados. La reacción se llevó a cabo con
114 jl de PBS (100 mM, pH 7,3), 12 |jl de péptido 33-mérico (1,7 mM) que se sintetizó y se obtuvo mediante el GENSCRIPT (Pscataway, EE. UU.) y 24 jl de sobrenadante de cultivo durante 48 horas a 37 °C. Posteriormente, las muestras se hirvieron, se filtraron a través de 0,45 jm y se analizaron mediante cromatografía líquida de alto rendimiento dotada de un detector de matriz de fotodiodos.
5 La cuantificación del péptido 33-mérico residual se evaluó mediante HPLC con una columna C-is de Waters. La detección del péptido se realizó a 220 nm y 35 °C. Los disolventes usados fueron agua mili-Q con TFA (0,1 %) y acetonitrilo con TFA (0,1 %).
La siguiente Tabla 1 describe los resultados de la exploración de los sobrenadantes. Resultó que, en especial, los sobrenadantes de las cepas pertenecientes a los géneros Lactobacillus y Streptococcus fueron capaces de degradar 10 el péptido y que las células cultivadas en la fase logarítmica fueron más eficaces en la degradación del péptido que las células cultivadas en la fase estacionaria. Además, las células cultivadas en el medio general, en la mayoría de los casos, fueron más capaces de degradar el péptido 33-mérico que las células cultivadas en un medio específico.
Tabla 1: Porcentaje de la degradación del péptido 33-mérico LQLQPFPQPQLPYPQPQLPYPQPQLPYPQPQPF (SEQ ID NO: 1) por sobrenadantes de cultivo de las cepas de Lactobacillus, Bifidobacterium y Streptococcus 15 cultivadas hasta la fase logarítmica y la fase estacionaria del cultivo en medio específico o general.
Fase de crecimiento
logarítmica estacionaria
Medio de crecimiento
general específico general específico
Cepa
Lactobacillus
P02431
C3 - - 52,4 ± 1,5 30,3 ±9,6
F2 - - 58,5 ±2,0 38,8 ± 12,4
A3 - - 43,3 ±2,4 53,6 ± 10,8
G2 - - 3,9 ± 10,1 0,0 ± 0,0
E1 76,5 ± 1,9 15,6 ±2,3 32,1 ± 10,4 0,0 ± 0,0
C7 74,6±1,4 15,6 ±3,0 39,7 ±3,3 9,6 ± 1,6
C1 81,9 ± 1,1 33,1 ± 15,0 43,7 ± 1,1 14,3 ±4,9
D1 36,5 ±3,3 22,6 ±3,0 45,9 ±0,3 7,4 ± 8,6
F1 78,0 ±0,2 10,5 ±3,8 47,0 ±2,6 10,0± 1,2
G1 80,9 ±0,5 17,2 ± 1,4 44,2 ±2,0 6,5 ± 5,1
A2 77,4 ± 1,2 12,4 ±3,2 32,8 ± 1,0 0,0 ± 0,0
P02503
A1 72,5 ±0,0 19,3 ±4,1 25,6 ±5,7 8,3 ±2,0
H3 81,6 ±3,7 16,9 ±6,9 39,7 ±3,0 0,0 ±0,0
C4 66,1 ± 4,2 10,1 ± 1,3 27,8 ±3,1 0,3 ±0,9
Fase de crecimiento
logarítmica estacionaria
Medio de crecimiento
general específico general específico
C2 76,9 ± 2,4 19,3 ±4,4 7,6 ± 3,1 0,0 ± 0,0
A3 87,5 ± 1,0 15,9 ± 1,4 18,3 ± 1,1 0,0 ± 0,0
B3 58,7 ±2,7 17,3 ±3,9 14,1 ± 1,2 0,0 ± 0,0
E1 74,9 ±0,8 10,1 ± 2,9 11,0 ±2,5 0,0 ± 0,0
A2 55,1 ± 1,9 17,1 ± 5,5 19,2 ±2,1 2,9 ± 7,3
F2 59,2 ± 1,3 11,6 ±0,4 34,7 ±2,3 2,0 ± 3,5
H2 73,7 ±0,4 19,0 ±2,7 35,6 ±2,6 0,5 ±4,4
P02535
G1 49,4 ± 1,4 - 34,7 ±2,3 2,0 ±3,5
D5 10,7 ± 1,5 0,7 ± 12,5 35,6 ±2,6 0,5 ±4,4
H3 - - 0,0± 1,4 8,4 ±0,7
A1 5,0 ± 8,0 5,9 ±2,3 29,7 ±3,2 11,5 ±3,2
P02523
H3 64,9 ±6,9 18,2 ±7,0 27,8 ± 1,3 -
B3 65,3 ± 1,7 28,7 ±3,3 32,3 ±2,1 4,2 ±0,2
F3 63,6 ±5,5 35,8 ±0,0 28,9 ±0,1 0,1 ± 1,5
A4 71,7 ±0,0 24,4 ±2,6 25,8 ± 1,1 0,0 ± 3,2
B7 3,6 ± 15,4 11,5 ±0,9 24,5 ±0,1 0,2 ±4,8
P02445
B1 71,9 ± 1,9 27,1 ± 5,1 28,7 ±3,9 9,0 ±2,5
H7 73,2 ±0,0 8,2 ± 1,9 73,5 ±0,6 3,0 ± 5,7
A8 56,4 ±22,3 10,3 ±6,6 43,1 ± 2,9 0,7 ±4,1
C8 54,2 ±26,3 2,1 ± 3,4 42,9 ± 1,9 6,5 ± 5,3
E10 62,6 ± 1,0 27,7 ±3,6 0,0 ± 3,1 27,0 ±4,9
B9 0,0 ± 0,0 26,3 ±3,0 0,0± 1,9 22,4 ±2,3
F8 27,4 ±5,4 0,0 ±0,2 0,0 ±2,3 22,7 ±4,5
G8 0,0 ±4,1 19,0 ±2,4 4,3 ± 12,7 21,6 ±4,5
Bifidobacterium
Fase de crecimiento
logarítmica estacionaria
Medio de crecimiento
general específico general específico
P02495
D1 64,2 ± 6,9 - - -
H1 65,9 ±7,4 - - -
F5 48,6 ±8,4 21,32 ± 4,22 26,1 ± 2,9 64,5 ± 12,2
A4 32,2 ±7,8 23,56 ± 8,59 2,9 ±23,1 1,6 ± 14,9
G5 15,8 ± 16,3 15,65 ± 1,21 24,8 ±5,0 25,1 ± 4,7
Streptococcus
P02654
G1 81,1 ± 3,5 53,4 ± 15,3 73,7 ±0,4 71,8 ±7,5
P02646
A7 80,9 ±21,2 45,2 ±3,2 78,6 ±2,5 50,4 ± 15,6
A9 93,8 ±0,9 44,6 ±3,3 78,4 ± 1,1 76,9 ±20,5
E1 84,6 ±0,0 44,0 ± 1,9 77,9 ±2,9 62,7 ±0,9
B3 85,3 ±0,7 47,4 ±2,2 79,8 ±0,3 40,9 ±3,0
P02638
H7 87,5 ±2,0 49,7 ±2,8 62,9 ±0,7 86,7 ±3,2
F9 82,4 ±3,7 93,6 ±9,1 57,3 ±3,0 58,1 ± 6,3
B10 82,9 ± 1,2 70,4 ±0,3 58,5 ±0,9 46,0 ±5,4
D10 82,1 ± 1,7 66,3 ±0,2 51,2 ±5,4 35,3 ±4,4
G10 76,6 ±3,3 83,1 ± 1,0 59,3 ±0,7 49,9 ± 1,6
EJEMPLO 2: EXPLORACION DE CELULAS Y SOBRENADANTES SELECCIONADOS DE ACIDO LACTICO PARA DETERMINAR LA RESISTENCIA AL TRACTO GASTROINTESTINAL
Se seleccionaron las cepas más eficaces en la degradación del péptido 33-mérico, la cepa P02503 A1, P02503 A3, 5 P02431 C1, P02445 H7, P02638 H7, P 02646 A9, y también se seleccionó una mezcla de P 02638 F9/P02523 A4
como la simbiosis típica del yogur. La identificación se realizó basándose en la tipificación por PCR y en la actividad bioquímica en el kit API 50 CHL (Biomerieux, Francia).
P02503 A1 es la cepa DN_114001, Lactobacillus casei, depositada en la CNCM con el número I-1518 el 23 de enero de 1995.
10 P02431 C1 es la cepa DN_1190118, Lactobacillus helveticus, depositada en la CNCM con el número I-4279 el 25 de
febrero de 2010.
P02445 H7 es la cepa DN_1110272, Lactobacillus delbrueckii subsp. lactis, depositada en la CNCM con el número I- 4280 el 25 de febrero de 2010.
P02638 F9 es la cepa DN_001343, Streptococcus thermophilus, depositada en la CNCM con el número I-2776 el 24 15 de enero de 2002.
P02523 A4 es la cepa Lactobacillus bulgaricus DN_100290 depositada en la CNCM con el número I-2787 al 24 de enero de 2002. Estas dos cepas se usan en una mezcla como cultivo iniciador del yogur.
P02503 A3 es la cepa DN_114077, Lactobacillus casei, depositada en la CNCM con el número I-4270 el 16 de diciembre de 2009.
20 P02646 A9 es la cepa DN_001546, Streptococcus thermophilus, depositada en la CNCM con el número I-4269 el 16
de diciembre de 2009.
5
10
15
20
25
Se ensayó la resistencia de estas cepas a un pH bajo y a las enzimas digestivas. Se han de seleccionar las cepas que sean resistentes a un pH bajo y resistentes a las enzimas digestivas, ya que dichas cepas pueden sobrevivir a su paso a través de la boca, del estómago y del tracto intestinal, lo que es un requisito previo para ejercer los efectos contra la enfermedad celíaca in vivo. No solo se ensayaron las células, sino también los sobrenadantes que comprendían la actividad peptidasa contra el péptido 33-mérico, para determinar su resistencia al bajo pH y a las enzimas digestivas. Las células se cultivaron durante 17 h y se recogieron por centrifugación (4000 rpm, 5 min), y se volvieron a suspender en tampón PBS. Para el ensayo de resistencia al pH, el tampón tenía pH 2, 3, 4, 5, 6, 7 u 8. Los resultados se muestran en la Tabla 2. Solo se muestran los resultados de pH 3 y 5, que son típicos de la resistencia al pH. Para la resistencia a las enzimas digestivas, se volvieron a suspender las células en tampón PBS a pH 3 (pepsina), a pH 7 (quimotripsina y tripsina) y a pH 6 (lisozima). Las células se incubaron durante 2 horas a 37 °C, excepto en el caso de la lisozima. Cuando se ensayó la lisozima, las células se incubaron durante 5 min.
En el caso de los ensayos del sobrenadante, las células se cultivaron durante 17 h, y las células se retiraron mediante centrifugación (4000 rpm). El sobrenadante se liofilizó y se volvió a suspender en las mismas condiciones descritas anteriormente para las células.
Tabla 2: Resistencia de las células de bacterias lácticas y de la actividad peptidasa de los sobrenadantes del cultivo al pH bajo y a la presencia de enzimas digestivas
pH Enzimas digestivas
Cepa
pH 5 pH 3 Lisozima Pepsina Quimio- tripsina Tripsina
P02503 A1
Células3 100 91 100 100 100 95
Sobrenadante15 34,9 42,7 36,7 63,2 47,1 56,2
P02503 A3
Células 100 100 100 26,2 42,6 24,9
Sobrenadante ndc nd nd nd nd nd
P02431 C1
Células 86 81 65,9 101 63,8 38,2
Sobrenadante 36,1 33,1 69,9 67,8 59,1 56,2
P02445 H7
Células 80 47 4,5 62 88,1 99,1
Sobrenadante 32,6 35,7 61,2 60,1 37,4 86,4
P02638 H7
Células 3 4 42,6 3,0 3,3 4,0
Sobrenadante nd nd nd nd nd nd
P 02646 A9
Células 3 3 2,0 100 4,3 52,9
Sobrenadante nd nd nd nd nd nd
P 02638 F9 /
Células 100 97 29,1 66,7 82,7 100
P02523 A4
Sobrenadante 39,2 39,3 85,6 55,5 54,0 81,8
a: % de viabilidad. b: % de actividad de degradación del péptido 33-mérico residual. c: nd: no determinado.
La mayoría de las células y de los sobrenadantes seleccionados muestran un alto porcentaje de supervivencia en condiciones de pH bajo y en presencia de enzimas digestivas. Con respecto a los sobrenadantes del cultivo, la mayoría de ellos pudieron degradar el péptido de 33-mérico in vitro.
EJEMPLO 3: EXPLORACIÓN DE LOS SOBRENADANTES DE CEPAS SELECCIONADAS PARA DETERMINAR LA CAPACIDAD DE DEGRADAR EL PÉPTIDO 20-MÉRICO DE SEQ ID NO: 2 Y EL PÉPTIDO 13-MÉRICO DE SEQ ID NO: 3.
Posteriormente, se realizó una exploración para determinar la capacidad de degradación de otros péptidos relacionados con la enfermedad celíaca, en concreto, del péptido 20-mérico y del péptido 13-mérico.
5
10
15
20
25
30
35
De la misma manera que en el Ejemplo 1, se ensayó la capacidad de diferentes sobrenadantes (P02503 A1, P02431 C1, P02445 H7 y la mezcla P02523 A4 - P02638 F9 para degradar otros péptidos implicados en la enfermedad celíaca como el péptido 20-mérico de a-gliadina (QQLPQPQQPQQSPFQQQRPF) y el péptido 13-mérico de A- gliadina (LGQQQPFPPQQPY). Se detectó una alta degradación de ambas muestras con las cepas seleccionadas (Tabla 3). Estos datos subrayan el importante papel de la actividad proteolítica de los sobrenadantes de cultivo de las cepas seleccionadas, no solo del péptido principal relacionado con la enfermedad celíaca, sino también de otros péptidos implicados en este trastorno.
Tabla 3: Porcentaje de degradación del péptido 13-mérico y 20-mérico por las cepas seleccionadas
Cepa
Péptido 13-mérico Péptido 20-mérico
P02503 A1
74,86 ± 1,31 61,08 ± 2,22
P02431 C1
52,46 ± 0,00 50,54 ± 0,87
P02445 H7
72,05 ± 1,93 47,06 ± 0,36
P02523 A4 - P02638 F9
71,38 ± 1,10 63,13 ± 5,22
EJEMPLO 4: IDENTIFICACION DE OTROS PEPTIDOS MAS RESISTENTES POTENCIALMENTE IMPLICADOS EN LA ENFERMEDAD CELIACA
Aunque el péptido 33-mérico de a-gliadina es un contribuyente principal a la inmunotoxicidad del gluten y es responsable de la enfermedad celíaca, se desarrolló un modelo de digestión enzimática in vitro de un tracto digestivo in vivo para imitar las condiciones fisiológicas con el fin de verificar y certificar que el péptido no era degradado a su paso por el tracto gastrointestinal por el proceso digestivo. Las concentraciones de pepsina, pancreatina y bilis se optimizaron usando un diseño experimental (Granato-Lorencio, et al., (2007). J. Agrie. Food Chem., 55, 6387-6394).
Por medio de una cromatografía líquida de alto rendimiento, se observó que el péptido 33-mérico LQLQPFPQPQLPYPQPQLPYPQPQLPYpQPQPF se había degradado completamente al final del proceso, lo que es representativo de la parte distal del intestino delgado. Sorprendentemente, mediante espectrometría de masa/masa (MS/MS), se identificó la presencia de un péptido 18-mérico (PQLPYPQPQLPYpQPQPF) como producto de degradación principal, que tenía la capacidad de atravesar el tracto digestivo sin cambios, sin degradación adicional.
Por esta razón, también se seleccionaron los sobrenadantes para determinar su capacidad para degradar el péptido 18-mérico.
Los resultados se muestran en la Tabla 4.
Tabla 4: Capacidad para degradar el péptido 18-mérico
Cepa
% de degradación del péptido 18-mérico
P02503 A1
100
P02638 F9
100
EJEMPLO 5: PURIFICACION Y CARACTERIZACION DE LA PROTEASA CAPAZ DE DEGRADAR EL PEPTIDO 33-MERICO DE SEQ ID NO: 1 Y EL PÉPTIDO 18-MÉRICO DE SEQ ID NO: 4) IMPLICADOS EN LA ENFERMEDAD CELÍACA
Se purificó la proteasa capaz de degradar in vitro el péptido 33-mérico, así como el péptido 18-mérico, de dos cepas seleccionadas de Lactobacillus (P02503 A1) y Streptococus (P02638 F9).
Se cultivaron cuatro litros de las cepas seleccionadas de Lactobacillus A1 y Streptococcus F9 sin agitación en los medios MRS con cisteína y BHI, respectivamente, y se purificó la enzima sobrenadante que tenía la actividad proteolítica hasta la homogeneidad mediante precipitación con sulfato de amonio. Se sometió a diálisis el sulfato de amonio residual que se unió a la proteína frente a un tampón de baja concentración de sal.
La purificación de las proteasas A1 y F9 se realizó mediante cromatografía de intercambio aniónico con una columna HiPrep 16/10 Q XL en un sistema de cromatografía AKTA Explorer. Se sometieron las fracciones a desorción con tampón de Tris-HCl 20 mM, pH 8,5, CaCl2 5 mM con un gradiente lineal de NaCl de 0 a 1 M, y luego se analizaron in
vitro a 37 °C durante 48 horas para evaluar la actividad proteasa frente a los péptidos 33-mérico y 18-mérico.
Las fracciones con actividad de proteasa frente al péptido 33-mérico y 18-mérico se purificaron adicionalmente en una cromatografía de interacción hidrófoba (HIC) con una columna HiPrepTM 16/10 Phenyl FF (high sub), y las fracciones se sometieron a desorción con tampón de fosfato sódico 100 mM, pH 7, con un gradiente lineal de 5 (NH4)2SO4 de 1,5 a 0 M. Se ensayaron in vitro todas las fracciones de la cromatografía de interacción hidrófoba, y
las que contenían actividad proteasa se agruparon y aislaron usando una membrana de corte de peso molecular de 10 kDa (Amicon Ultra, Millipore). Se usó la electroforesis en gel de poliacrilamida con dodecilsulfato sódico nativa 1- D (SDS-PAGE) para la separación de las proteínas individuales, y se secuenciaron las enzimas de Lactobacillus A1 y Streptococcus F9 purificadas, y se identificaron como el "factor de elongación Tu" de Lactobacillus casei y el “factor 10 de elongación G” de Streptococcus thermophilus con una masa molecular de 45,3 kDa y 76,6 kDa, respectivamente. En la caracterización y los parámetros cinéticos de la enzima "factor de elongación Tu" de Lactobacillus A1 y la enzima "factor de elongación G" de Streptococcus F9, se encontró que su actividad proteasa máxima contra el péptido 18-mérico se produjo a pH 7,3 y a 37 °C, y las concentraciones micromolares de Zn2+ produjeron la inhibición de la proteólisis del péptido 18-mérico. Los valores de Km y Vmáx para la proteasa de Lactobacillus A1 15 fueron de 0,643 mg de péptido 18-mérico/ml y 1,272 mg de péptido 18-mérico/ml respectivamente, y los valores de Km y Vmáx para la proteasa de Streptococcus F9 fueron de 0,794 mg de péptido 18-mérico/ml y de 1,5022 mg de péptido 18-mérico/ml respectivamente.

Claims (14)

  1. 5
    10
    15
    20
    25
    30
    35
    REIVINDICACIONES
    1. Una cepa de bacteria láctica para su uso en el tratamiento y/o en la prevención de la enfermedad celíaca, en
    donde dicha bacteria láctica es capaz de degradar el péptido 33-mérico LQLQPFPQPQLPYPQPQLPYPQPQLPYPQPQPF (SEQ ID NO: 1), el péptido 20-mérico
    QQLPQPQQPQQSPFQQQRPF (SEQ ID NO: 2), el péptido 13-mérico LGQQQPFPPQQPY (SEQ ID NO: 3) y/o el péptido 18-mérico PQLPYPQPQLPYPQPQPF (SEQ Id NO: 4), y en donde la bacteria láctica es Lactobacillus casei CNCM I-4270.
  2. 2. Una cepa de bacteria láctica para su uso según la reivindicación 1, en donde dicha bacteria láctica es capaz de degradar el péptido 33-mérico de SEQ ID NO: 1 y el péptido 18-mérico de SEQ ID NO: 4.
  3. 3. Una cepa de bacteria láctica para su uso según la reivindicación 1 o la reivindicación 2, en donde dicha bacteria láctica produce factores de elongación proteicos, y en donde dichos factores de elongación proteicos tienen una actividad peptidasa capaz de degradar el péptido 33-mérico de SEQ ID NO: 1, el péptido 20-mérico de SEQ ID NO: 2, el péptido 13-mérico de SEQ ID NO: 3 y/o el péptido 18-mérico de SEQ ID NO: 4.
  4. 4. Una cepa de bacteria láctica para su uso según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, en donde la degradación de dichos péptidos se produce en el intestino delgado de un sujeto.
  5. 5. Una cepa de bacteria láctica para su uso según la reivindicación 3 o la reivindicación 4, en donde al menos el 45 % del péptido 33-mérico de SeQ ID NO: 1, del péptido 20-mérico de SEQ ID NO: 2, del péptido 13-mérico de SEQ ID NO: 3 y/o del péptido 18-mérico de SEQ ID NO: 4 se hidroliza en presencia de un sobrenadante de cultivo de dichas cepas.
  6. 6. Una composición que comprende la cepa Lactobacillus casei CNCM I-4270.
  7. 7. Una composición según la reivindicación 6 para su uso en la prevención y/o en el tratamiento de la enfermedad celíaca.
  8. 8. Una composición según la reivindicación 6 o para su uso según la reivindicación 7, en donde la composición es un producto líquido.
  9. 9. Una composición según cualquiera de las reivindicaciones 6 u 8, o para su uso según cualquiera de las reivindicaciones 7 a 8, en donde la composición es un producto lácteo.
  10. 10. Una composición según cualquiera de las reivindicaciones 6 y 8 a 9, o para su uso según cualquiera de las reivindicaciones 7 a 9, en donde la composición es un producto fermentado.
  11. 11. Una composición según cualquiera de las reivindicaciones 6 y 8 a 10, o para su uso según cualquiera de las
    reivindicaciones 7 a 10, en donde la composición comprende de 105 a 1013 ufc por g de peso seco.
  12. 12. Una composición según cualquiera de las reivindicaciones 6 y 8 a 11, o para su uso según cualquiera de las
    reivindicaciones 7 a 11, en donde las bacterias lácticas se administran a un sujeto a una dosis de al menos
    1010 ufc/día.
  13. 13. Uso de la cepa Lactobacillus casei CNCM I-4270 que produce un factor de elongación proteico para la degradación in vitro del péptido 33-mérico de SEQ ID NO: 1, del péptido 20-mérico de SEQ ID NO: 2, del péptido 13- mérico de SEQ ID NO: 3 y/o del péptido 18-mérico de SEQ ID nO: 4.
  14. 14. Una bacteria láctica que es Lactobacillus casei CNCM I-4270.
ES10714066.7T 2010-03-12 2010-03-12 Bacterias de ácido láctico para la enfermedad celíaca Active ES2691301T3 (es)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PCT/IB2010/000699 WO2011110884A1 (en) 2010-03-12 2010-03-12 Lactic acid bacteria for coeliac disease

Publications (1)

Publication Number Publication Date
ES2691301T3 true ES2691301T3 (es) 2018-11-26

Family

ID=42983265

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ES10714066.7T Active ES2691301T3 (es) 2010-03-12 2010-03-12 Bacterias de ácido láctico para la enfermedad celíaca

Country Status (7)

Country Link
US (2) US20130121976A1 (es)
EP (1) EP2545160B1 (es)
CN (1) CN103097513B (es)
BR (1) BR112012023028B1 (es)
EA (1) EA031179B1 (es)
ES (1) ES2691301T3 (es)
WO (1) WO2011110884A1 (es)

Families Citing this family (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2014516589A (ja) 2011-06-20 2014-07-17 エイチ．ジェイ．ハインツ カンパニー プロバイオティック組成物及び方法（ｐｒｏｂｉｏｔｉｃｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎａｎｄｍｅｔｈｏｄｓ）
DK2861242T3 (en) * 2012-06-18 2018-10-29 Heinz Co Brands H J Llc GLUTEN RELATED DISORDERS
WO2014044281A1 (en) 2012-09-19 2014-03-27 Rigshospitalet Inhibition of a 33-mer gliadin peptide for treatment of diabetes
BR112015019748A2 (pt) * 2013-02-19 2017-08-22 Danone Sa Peptídeo tendo atividade inibitória da pl e/ou pla2, produto alimentício adequado para o tratamento da obesidade e/ou estresse oxidativo, e, uso de streptococcus thermophilus cncm i-2776 e/ou streptococcus thermophilus cncm i-1630 e/ou lactobacillus paracasei subsp paracasei cncm i-4270
BR112015028164B1 (pt) 2013-05-10 2022-02-08 H.J. Heinz Company Brands Llc Usos da bactéria probiótica, lactobacillus paracasei, para tratar uma infecção microbiana e para prevenir ou reduzir a gravidade de uma infecção microbiana
CA2949321A1 (en) * 2014-05-23 2015-11-26 Consejo Superior De Investigaciones Cientificas (Csic) New strain of lactobacillus casei with ability to degrade the immunotoxic peptide from gluten
FI127483B (en) 2014-06-11 2018-07-13 Gut Guide Oy Microbial marker for celiac disease and related product
RU2687346C1 (ru) * 2015-05-07 2019-05-13 Компани Жервэ Данон Получение сцеженных ферментированных молочных продуктов
IT201900014550A1 (it) * 2019-08-09 2021-02-09 Abiogen Pharma Spa Uso di colecalciferolo come agente attivo nel trattamento della celiachia
BR112022012571A2 (pt) 2019-12-23 2022-09-06 Evonik Operations Gmbh Processo para identificar consórcios de cepas probióticas adequadas para degradação de glúten
CN112056496A (zh) * 2020-09-09 2020-12-11 中国农业大学 一种利用乳酸菌降低面团麸质蛋白含量的方法
CN114657091B (zh) * 2022-03-03 2023-08-11 中国疾病预防控制中心传染病预防控制所 一种弯曲菌增菌培养液及其制备方法、应用

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2809312B1 (fr) * 2000-05-25 2002-07-12 Gervais Danone Sa Utilisation de l. casei dans des compositions immunostimulantes
US7320788B2 (en) * 2002-02-14 2008-01-22 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Enzyme treatment of foodstuffs for Celiac Sprue
WO2006097949A1 (en) * 2005-03-16 2006-09-21 Actial Farmacêutica, Lda. Mixture of at least 6 species of lactic acid bacteria and/or bifidobacteria in the manufacture of sourdough
ITMI20051910A1 (it) * 2005-10-11 2007-04-12 Anidral Srl Metodo per la preparazione di colture batteriche probiotiche anallergiche e relativo impiego
ES2619185T3 (es) * 2006-03-17 2017-06-23 Probi Aktiebolag Cepas de Lactobacillus termoestables
EP2065048A1 (en) * 2007-11-30 2009-06-03 Institut Pasteur Use of a L. casei strain, for the preparation of a composition for inhibiting mast cell activation
FR2937252B1 (fr) * 2008-10-17 2011-05-20 Pf Medicament Association d'un extrait de sureau et d'une souche de l. paracasei.
MY147929A (en) * 2009-03-13 2013-02-15 Chan Yap Kee Camera flash reflector assembly

Also Published As

Publication number Publication date
CN103097513A (zh) 2013-05-08
WO2011110884A1 (en) 2011-09-15
US10603342B2 (en) 2020-03-31
EA031179B1 (ru) 2018-11-30
EP2545160A1 (en) 2013-01-16
BR112012023028B1 (pt) 2020-12-08
EA201290902A1 (ru) 2013-04-30
US20170145379A1 (en) 2017-05-25
BR112012023028A2 (pt) 2017-02-07
EP2545160B1 (en) 2018-07-18
CN103097513B (zh) 2018-01-30
US20130121976A1 (en) 2013-05-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
ES2691301T3 (es) Bacterias de ácido láctico para la enfermedad celíaca
US11130938B2 (en) Compositions comprising live probiotic bacterial cultures of Lactobacillus, Bifidobacterium, Lactococcus, Streptococcus, or Staphylococcus
ES2234686T3 (es) Lactobacillus helveticus que produce dipeptidos y tripeptidos antihipertensivos.
ES2360341T3 (es) Cepas probióticas de lactobacillus salivarius y agentes antimicrobianos obtenidos a partir de las mismas.
CN101983237B (zh) 改善与谷蛋白摄入相关之病症个体健康状况的微生物
ES2431572T3 (es) Especies bifidobacterianas
JP4022780B2 (ja) コレステロールを低下および同化する能力を有する酸および胆汁酸塩耐性のＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ分離株
US20140072544A1 (en) Polybacterial preparation with health benefits: antioxidant effect, reduction of cholesterol concentration, anti-inflammatory immunomodulating effect and release of bioactive peptides inhibiting angiotensin-converting enzyme
ZA200301244B (en) Lactic acid bacteria capable of reducing an individual's tendency to develop allergic reactions.
AU2002220561A1 (en) Lactic acid bacteria capable of reducing an individual's tendency to develop allergic reactions
CN105733983A (zh) 分离的微生物菌株格氏乳杆菌mcc2 dsm 23882及其用途
Tzvetkova et al. Hydrolysis of major dairy proteins by lactic acid bacteria from Bulgarian yogurts
Nur et al. Isolation of lactic acid bacteria as a potential probiotic in dangke, a traditional food from Enrekang, Indonesia
ES2881959T3 (es) L salivarius SGL03: actividades probióticas y producción de proteínas antimicrobianas
Lee et al. Potential probiotic properties of Lactococcus lactis NK34 isolated from jeotgal
WHISETKHAN et al. CHARACTERIZATION OF PROBIOTIC LACTIC ACID BACTERIA WITH CHOLESTEROL-LOWERING POTENTIAL IN VITRO AND IN VIVO AND THEIR APPLICATION IN DAIRY PRODUCT
Dubná et al. Growth of bifidobacteria in a fermented wheat germ medium
Acharya Production of functional food, Fruit ravioli with antihypertensive peptides
Guo LiDong et al. Cholesterol removal by Lactobacillus plantarum isolated from homemade fermented cream in Inner Mongolia of China.