ES2349941T3 - Composición de ácaros que comprende ácaros glycyphagidae y fitoseidos, su uso, método para la cría de un ácaro depredador fitoseido, sistema de cría de dicho ácaro depredador fitoseido y métodos para el control biológico de plagas en una cosecha. - Google Patents

Abstract

Composición de ácaros, que comprende: - una población de cría de una especie de ácaros depredadores fitoseidos, - una población de anfitrión facticio, - y un portador para individuos de dichas poblaciones, caracterizada porque la población de anfitrión facticio comprende al menos una especie seleccionada de la familia de Glyciphagidae, con la condición de que el ácaro depredador fitoseido se selecciona de una especie diferente a Amblyseius swirskii.

Description

[0001]Esta invención de acuerdo con un primer aspecto se refiere a una composición nueva de ácaros que comprende al menos una especie de Glycyphagidae y al menos

5 una especie de ácaros fitoseidos seleccionada entre especies diferentes a Amblyseius swirskii. [0002]De acuerdo con un segundo aspecto, la invención se refiere a un método nuevo para la cría de una especie de ácaros depredadores fitoseidos seleccionada entre especies diferentes a Amblyseius swirskii.

10 [0003]De acuerdo con un tercer aspecto la invención se refiere a un uso nuevo de una especie de ácaros astigmátidos seleccionada de la familia Glycyphagidae como un anfitrión facticio, para desarrollar un ácaro depredador fitoseido seleccionado entre especies diferentes a Amblyseius swirskii. [0004]De acuerdo con un cuarto aspecto, la invención se refiere a un nuevo sistema

15 de cría para ácaros depredadores fitoseidos seleccionada entre especies diferentes a Amblyseius swirskii. [0005]De acuerdo con un quinto aspecto, la invención se refiere al uso de la composición de ácaros o el sistema de cría para el control de plagas de cosechas. [0006]De acuerdo con otros aspectos adicionales, la invención se refiere a un método

20 para control biológico de plagas en una cosecha, que emplea la composición de ácaros de acuerdo con la invención. [0007]En la siguiente descripción y reivindicaciones, los nombres de las subfamilias de géneros y especies de ácaros fitoseidos, es como se refiere en de Moraes, G.J. et al., 2004, a menos que se establezca de otra forma. En la siguiente descripción y

reivindicaciones, los nombres de las subfamilias, géneros y especies de Glycyphagidae

son como se refiere en Hughes, A.M., 1977, a menos que se establezca de otra forma. En las Figuras 1 y 2 se proporciona información general de las familias, subfamilias, géneros y especies referidos. [0008]Los ácaros depredadores fitoseidos (Phytoseiidae) son ampliamente utilizados

5 para el control biológico de Tetranychidae y tisanópteros en cosechas de invernaderos. Sus hábitos alimenticios están bien documentados (McMurtey J.A. y Rodríguez J.G., 1987). Las especies de tisanópteros más importantes en cosechas de invernaderos son los tisanópteros occidentales de las Flores (Frankliniella occidentalis) y tisanópteros de la cebolla (Thrips tabaci). Pueden ser controlados con los ácaros

10 depredadores Neoseiulus cucumeris y Neoseiulus barkeri (Hansen, L. S. y Geyti, J., 1985; Ramakers, P.M.J, y van Lieburg, M.J., 1982; Ramakers, P.M.J., 1989; Sampson, C, 1998; y Jacobson, R.J., 1995) e Iphiseius degenerans (Ramakers, P.M.J, y Voet, S.J.P., 1996). En la ausencia de presas, estas especies son capaces de establecer, desarrollar y mantenerse en cosechas que proporcionan un suministro continuo de

15 polen, tales como pimiento dulce (Capsicum annuum L.) y berenjena (Solarium melogena). Por lo tanto pueden liberarse en forma preventiva en estas cosechas, antes de que esté presente la presa plaga objetivo apropiada. También son capaces de sobrevivir y continuar desarrollándose, una vez que la plaga objetivo se ha controlado. La posibilidad por liberaciones preventivas es muy importante a fin de obtener un

20 programa de control biológico robusto. Se obtienen excelentes resultados con la liberación preventiva de ácaros depredadores (debido a que la presa puede ser controlada inmediatamente cuando entra en la cosecha). En cosechas en las que el polen no está libremente disponible, como por ejemplo en pepinos y en la mayoría de las cosechas ornamentales, estas especies de ácaros fitoseidos no pueden liberarse

en forma preventiva, a menos de que se proporcione alimento artificialmente. Por

ejemplo esto puede llevarse a cabo espolvoreando en la cosecha polen de plantas recolectado artificialmente. [0009]Alternativamente, o adicionalmente, también puede realizarse liberando la presa de plaga objetivo antes o junto a la liberación de los ácaros depredadores

5 fitoseidos. Este método, conocido como primero-plaga ("pest-in-first"), implica los riesgos evidentes de introducir la plaga y requiere mucha experiencia. El ejemplo mejor conocido de primero-plaga es la liberación de Tetranychus urticae junto o antes de la liberación del ácaro fitoseido Phytoseiulus persimilis. [0010]En el caso de Neoseiulus cucumeris, alternativamente puede emplearse un

10 sistema de cría de liberación controlada (como se describe por Sampson, C. (1998) o en GB2393890) para la liberación preventiva de esta especie de ácaro fitoseido. Este sistema de cría de liberación controlada, consiste en un saco con un compartimiento que contiene una mezcla de alimento, que consiste en salvado, levadura y germen de trigo; una población del ácaro de grano Tyrophagus putrescentiae y una población del

15 ácaro depredador Neoseiulus cucumeris. El ácaro de grano Tyrophagus putrescentiae reproducirá y desarrollará una población activa en la mezcla de alimentos y sirve como un anfitrión facticio para la población de ácaros depredadores. Los sacos se cuelgan en la cosecha con medios apropiados, por ejemplo mediante un gancho y liberarán continuamente ácaros depredadores durante un periodo de 4 a 6 semanas.

20 [0011]En cosechas que proporcionan un suministro continuo de polen o en el caso en que las poblaciones de plagas ya estén presentes, no se requiere un saco de liberación lenta y el producto puede aplicarse en la cosecha como material suelto, que comprende un medio de cría apropiado con una población del ácaro de granos Tyrophagus putrescentiae y el fitoseido Neoseiulus cucumeris.

25 [0012]Debido a que Neoseiulus cucumeris tiene una respuesta numérica más bien débil a la presencia de alimentos, tendrán que liberarse grandes cantidades de ácaros depredadores en una cosecha a fin de tener suficiente control de plaga. Esto es económicamente posible debido a que el desarrollo de Neoseiulus cucumeris puede ser económico en cantidades muy grandes con el ácaro de granos Tyrophagus

5 putrescentiae, que puede desarrollarse en cantidades suficientes en la mezcla de alimentos anteriormente descrita. [0013]Aunque hay ácaros depredadores mucho más eficientes para control de tisanópteros con una mayor velocidad de depredación y respuesta numérica, tales como Typhiodromalus limonicus e Iphiseius degenerans, Neoseiulus cucumeris todavía

10 es la especie más comúnmente empleada debido a que puede desarrollarse fácilmente en cantidades muy grandes. [0014]Iphiseius degenerans se cría masivamente en las plantas de ricino (Ricinus communis L., Euphorbiaceae) que proporcionan un suministro continuo de polen en el que los ácaros pueden desarrollar grandes poblaciones. Debido a la gran superficie y

15 la alta inversión en invernaderos requeridos para desarrollar las plantas y debido a las técnicas de cosecha laboriosas, el precio de costo de Iphiseius degerenans es muy alto en comparación con Neoseiulus cucumeris. Debido a su alto precio, los cultivadores solo pueden liberar cantidades muy pequeñas, típicamente 1000-2000 ácaros depredadores por hectárea. Por lo tanto, el uso de Iphiseius degenerans está limitado a

20 pimientos (Capsicum annuum L.), que proporcionan suficiente polen para que los ácaros depredadores puedan desarrollar una población, lo que es suficiente para control de plagas. Debido a que solo pueden liberarse pequeñas cantidades de ácaros al inicio de la temporada de crecimiento, pasan varios meses antes de que la población de Iphiseius degenerans es suficientemente fuerte en la cosecha para poder tener un

impacto significativo en las poblaciones de las plagas de tisanópteros.

[0015]El Tetranychus urticae se controla con éxito en cosechas de invernaderos y en exteriores en todo el mundo mediante la liberación de ácaros depredadores. Las especies más importantes son Phytoseiulus persimilis (Hussey, N. W. y Scopes, N. E.A., 1985), que es el ácaro comercial para control biológico más antiguo y Neoseiulus

5 californicus (Wei-Lan Ma y Laing, J. E., 1973). Ambos ácaros depredadores se desarrollan masivamente en su anfitrión natural Tetranychus urticae en plantas de judía (Phaseolus vulgaris) en invernaderos. Castagnoli, M. y Simoni, S. (1999) también han descrito un método para criar masivamente Neoseiulus californicus en el ácaro doméstico del polvo Dermatophagoides farinae. Sin embargo, los ácaro doméstico del

10 polvo (Dermatophagoides farinae y Dermatophagoides pteronyssinus) producen alergenos importantes, implicados en el asma alérgico, rinitis, conjuntivitis y dermatitis. Por lo tanto, su uso en sistemas de cría de liberación controlada para liberar ácaros depredadores en cosechas tiene desventajas. Otra desventaja es que cuando los ácaros domésticos del polvo se utilizan para propósitos de cría masiva, son necesarias

15 importantes medidas de protección para los trabajadores. La literatura científica describe muchos ácaros depredadores que son altamente efectivos contra especies de plagas dañinas a cosechas, tales como moscas blancas, tisanópteros, Tetranychidae, ácaros tarsonémidos y ácaros eriófidos, pero debido a la falta de un sistema de cría masivo eficiente y rentable, solo unas cuantas especies están disponibles

20 comercialmente para propósitos de control biológico de plagas. [0016]El documento de patente japonesa JP03108433 describe el uso de Tetranychidae como presa natural para la cría de ácaros fitoseidos en un contenedor para que puedan ser utilizados posteriormente en el control de una plaga agrícola. [0017]Recientes investigaciones han mostrado el potencial de los ácaros

depredadores Amblyseius swirskii, Euseius ovalis, Euseius scutalis y Typhiodromalus

limonicus como agentes muy eficientes para el control biológico de tisanópteros (Thrips tabaci y Frankliniella occidentalis) y moscas blancas (Trialeurodes vaporariorum y Bemisia tabaci) (Nomikou, M., Janssen, A., Schraag, R. y Sabelis, M. W., 2001; Messelink, G. & Steenpaal, S. 2003; Messelink, G. 2004; Messelink, G. & Steenpaal, S.

5 2004; Bolckmans, K. & Moerman, M. 2004; Messelink, G. & Pijnakker, J. 2004; Teich, Y. 1966; Swirski, E. et al., 1967). Sin embargo, el uso práctico de estos y otros ácaros depredadores fitoseidos como un agente para control biológico aumentativo, depende de la disponibilidad de un método apropiado para la cría en masa de estos ácaros depredadores.

10 [0018]En la actualidad para el control biológico de moscas blancas solo está disponible comercialmente Amblyseius swirskii. Recientemente, este ácaro fitoseido se introdujo en el mercado por Koppert B. V. La Introducción en el mercado de Amblyseius swirskii fue posible gracias al desarrollo de un método comercialmente factible para la cría masiva de este ácaro depredador, que incluye el uso de Carpoglyphus lactis como

15 un anfitrión facticio. Este método es parte de la materia de la solicitud internacional no prepublicada pendiente NL2004/000930, publicada el 1 de Junio de 2006 bajo el número de publicación internacional WO2006/057552. [0019]La razón para que solo recientemente haya salido al mercado un ácaro depredador que hace presa en moscas blancas probablemente es que, a pesar de la

20 capacidad de depredación conocida de los ácaros depredadores hacia las moscas blancas, su uso como agentes de control biológico aumentativos contra moscas blancas no se ha reconocido en la técnica. En control biológico aumentativo, los agentes biológicos se liberan en una cosecha para el control de una plaga. [0020]Aún es más relevante que, con la excepción del sistema de cría de Amblyseius

swirskii desarrollado recientemente, en la técnica no hay disponibles sistemas

económicos de cría masiva de especies de ácaros depredadores, por ejemplo aquellos que podrían ser potencialmente eficaces contra la mosca blanca y otras plagas agrícolas, necesarios para permitir la liberación de grandes cantidades de ácaros depredadores en una cosecha, que es de una importancia fundamental para su uso

5 como agente de control biológico aumentativo. [0021]El control biológico de plagas agrícolas con ácaros depredadores que pueden ser criados de manera económica en grandes cantidades con un ácaro anfitrión facticio en un medio de cría sería muy ventajoso debido a que este sistema de cría utiliza una superficie limitada. Aún más, en este sistema la cría del ácaro depredador puede

10 realizarse en ambientes con clima controlado. De esta manera no son necesarias grandes inversiones en invernaderos y cosechas. [0022]La técnica anterior describe la cría de Neoseiulus cucumeris y Neoseiulus barkeri con el auxilio de una especie de ácaro anfitrión facticio del género Tyrophagus, en particular Tyrophagus putrescentiae, Tyrophagus tropicus, Tyrophagus casei

15 (Sampson, C, 1998; Jacobson, R.J., 1995; Bennison, J.A. y R. Jacobson, 1991; Karg et al., 1987; y GB293890) y del género Acarus, en particular Acarus siro (Beglyarov et al., 1990) y Acarus farris (Hansen, L. S. y J. Geyti, 1985; Ramakers, P.M.J, y van Lieburg,

M. J., 1982), todos los cuales pertenecen a la familia de Acaridea. [0023]El anfitrión de cría más común para Neoseiulus cucumeris es Tyrophagus

20 putrescentiae. Una desventaja importante de Tyrophagus putrescentiae es que puede provocar daños en las hojas de plantas jóvenes cuando está presente en las cosechas, por ejemplo cuando se utiliza como un anfitrión facticio en saquitos de cría de liberación lenta similares a los descritos por (Sampson, C, 1998) o en GB293890. Más concretamente, éste es el caso de cosechas de pepinos durante periodos de alta

humedad especialmente en combinación con una intensidad de luz baja.

[0024]Castagnoli et al., también ha descrito la posibilidad de cría masiva de Neoseiulus californicus (Castagnoli, M. y S. Simoni, 1999) y Neoseiulus cucumeris (Castagnoli, M., 1989) en el Ácaro doméstico del polvo Dermatophagoides farinae como un anfitrión de cría facticio. Sin embargo, los Ácaros Domésticos del Polvo

5 (Dermatophagoides farinae y Dermatophagoides pteronyssinus) producen alergenos importantes, implicados en asma alérgica, rinitis, conjuntivitis y dermatitis. [0025]Por lo tanto, el método tradicional para la cría en masa de Neoseiulus californicus es en plantas de frijol (Phaseolus vulgaris) infestadas con Tetranychus urticae o Tetranychus pacificus en invernaderos, lo que resulta en un coste bastante

10 elevado. Debido al coste de los ácaros criados con este sistema, para el control de las plagas de una cosecha solo pueden liberarse cantidades relativamente bajas. El desarrollo de un método de cría masiva con un anfitrión facticio que pueda ser criado en un medio apropiado, resultaría en un coste mucho menor y por lo tanto permitirá la liberación de cantidades mucho mayores como agentes de biocontrol en cosechas. Los

15 anfitriones facticios conocidos en la técnica, tales como Tyrophagus spp., Acarus spp. Solo son adecuados para la cría masiva de un número limitado de especies de ácaros fitoseidos. Por ejemplo, los ácaros fitoseidos N. californicus y N. fallacis no pueden criarse eficientemente en Tyrophagus putrescentiae y Acarus siro. [0026]Así, existe la necesidad en la técnica de disponer de otros anfitriones facticios

20 que puedan emplearse para la cría masiva de ácaros benéficos, como por ejemplo ácaros depredadores. Más concretamente para la cría de Neoseiulus fallacis, Neoseiulus californicus, Typhiodromips montdorensis, Neoseiulus womersleyi, Euseius ovalis o Euseius scutalis. Para muchas especies de ácaros depredadores fitoseidos en la literatura solo se había descrito la crianza en polen de planta.

25 [0027]La cría en polen requiere grandes áreas de invernadero para la producción de plantas tales como ricino (Ricinus communis) para obtener polen suficiente, o recolectar polen apropiado de plantas como por ejemplo de enea (Typha spp.) o roble (Quercus spp.) en exteriores. Recolectar polen de plantas en exteriores es muy laborioso y por lo tanto es costoso y solo pueden recolectarse cantidades limitadas. El

5 polen de plantas recolectado por las abejas no es adecuado para la cría de ácaros depredadores. [0028]La cría de ácaros A. swirskii solo se ha descrito en la técnica utilizando polen (Messelink, G. & Pijnakker, J. 2004) o huevos de lepidópteros lepidopterans Corcyra cephalonica o Ephestia kuehniella (Romeih, A. H. M. et al., 2004).

10 [0029]La cría con huevos de lepidópteros requiere grandes inversiones en instalaciones de producción y por lo tanto es muy costosa. También, la cría con huevos de lepidópteros no es adecuada para varias especies de ácaros tales como por ejemplo Neoseiulus californicus y Neoseiulus fallacis. [0030]Además de esta cría masiva de Amblyseius swirskii en el anfitrión facticio,

15 Carpoglyphus lactis ahora se conoce. A fin de cumplir completamente con las demandas del mercado, son necesarios anfitriones facticios adicionales. [0031]La solicitud internacional no prepublicada WO2006/071107 publicada el 6 de Julio de 2006 describe el uso de ácaros de la familia de los Carpoglyphidae como anfitrión facticio para la cría de ácaros depredadores fitoseidos.

20 [0032]Ahora se ha encontrado que las especies de ácaros astigmátidos de la familia de Glycyphagidae pueden emplearse como anfitrión facticio para una gran cantidad de especies de ácaros depredadores fitoseidos. [0033]Así, de acuerdo con un primer aspecto la invención se refiere a una composición de ácaros que comprende una población de cría de una especie de

ácaros depredadora de fitoseidos y una población anfitriona facticia que comprende al

menos una especie seleccionada de la familia de Glycyphagidae. [0034]La composición de ácaros de acuerdo con invención preferiblemente comprende una cantidad limitada de diferentes especies. Se entenderá que la composición de ácaros comprenderá al menos dos especies distintas, el ácaro

5 fitoseido y el anfitrión facticio seleccionado de Glycyphagidae. Sin embargo es posible que la composición de ácaros comprenderá más de dos especies, por ejemplo que comprenda más de una, como por ejemplo dos o tres especies de anfitriones facticios

o que comprenda más de una, como por ejemplo dos o tres especies de ácaros fitoseidos. Sin embargo es menos preferible que la composición de ácaros comprenda

10 más un especie de ácaros fitoseidos ya que puede ocurrir depredación entre ellos. [0035]Las especies de ácaros depredadores fitoseidos que más probablemente podrán alimentarse de especies seleccionadas de las especies de Glycyphagidae y en particular de Lepidoglyphus destructor o Glycyphagus domesticus son especies de ácaros depredadores fitoseidos oligófagos. Una especie de ácaros depredadores

15 fitoseidos oligófagos es una especie de ácaros depredadores fitoseidos que es capaz de utilizar al menos unas pocas especies de presas diferentes como fuente de alimentos para el desarrollo de su población (reproducción y completo desarrollo de sus individuos desde huevos a adultos sexualmente maduros). Como tal, el término especies de ácaros depredadores oligófagos en este documento, incluye una especie

20 de ácaros polífagos, que es un ácaro depredador que puede utilizar una gran cantidad especies de presa como fuente de alimentos para su reproducción y completo desarrollo. Así, el término especie de ácaros depredadores oligófagos se entenderá que significa una especie de ácaros depredadores no monófagos, como por ejemplo especies de ácaros depredadores del género Phytoseiulus que tienen una variedad de

anfitriones muy restringida, principalmente limitada al género Tetranychus.

[0036]Especies anfitrionas facticias y especies de presas facticias son especies que ocupan hábitats naturales distintos que el ácaro depredador fitoseido, pero aún así una

o más etapas vitales del anfitrión facticio o presa facticia son presa adecuada para al menos una etapa vital del ácaro depredador fitoseido. Debido a que los anfitriones

5 facticios y presas facticias se encuentran en un hábitat natural diferente que los ácaros depredadores fitoseidos, cuyo hábitat natural es la filosfera de plantas, los fitoseidos normalmente no se alimentan de ellos en la naturaleza. El ácaro depredador fitoseido tiene la capacidad de reproducirse y desarrollarse eficientemente desde los huevos a los adultos sexualmente maduros cuando se alimentan de una dieta del anfitrión

10 facticio de manera que el número de individuos en la población de cría del ácaro fitoseido, puede crecer con al menos 50%, preferiblemente 75%, más preferiblemente 100% en 7 días (T=25ºC; RH=80% de alimentación ad libidum). [0037]En contraste, una presa facticia es una presa que una especie de ácaro fitoseido es capaz de depredar, sin embargo el desarrollo desde los huevos a los

15 adultos sexualmente maduros no es eficiente. Se observa una fecundidad muy baja y una mortalidad alta durante el desarrollo desde los huevos a los adultos, resultando en un aumento de población inferior al 50% en 7 días bajo condiciones de cría masiva. Así, cuando una población de crianza de un ácaro depredador fitoseido se alimenta de una dieta que consiste solamente de una presa facticia, no será capaz incrementar el

20 número de sus individuos en al menos 50%, en un tiempo de 7 días (T=25ºC; RH=80%, alimentándose ad libidum), lo que se considera un requerimiento mínimo para la cría masiva comercial. [0038]El hábitat de los ácaros depredadores fitoseidos para la caza de organismos de plagas (insectos y ácaros) son las plantas. Pueden aislarse de sus hábitats naturales

como se describe por de Moraes et al. , 2004.

[0039]Los Glycyphagidae se describen por Huges, A.M. (1977). Basándose en la descripción de este documento, el experto en la materia será capaz de aislar especies específicas de esta familia de su hábitat natural. Como se describe por Hughes, A.M. (1977) Glycyphagidae están asociados con insectos o pequeños mamíferos o nidos de

5 pequeños animales e insectos sociales tales como las abejas. Típicamente están asociados con casas, establos y con el almacenamiento o el procesado de productos alimenticios secos tales como granos y molinos de harina. En las casas, pueden encontrarse en materiales tales como el polvo del suelo, tapiz de papel húmedo y enmohecido, fieltro, piel seca de animales, almacenamiento de productos alimenticios y

10 en tapicería elaborada de fibras de plantas procesadas. En establos de animales, pueden encontrarse en materiales como por ejemplo heno, paja, polvo del suelo, alimento de animales seco (gránulos o harina), granos almacenados y excremento de aves. Típicamente, Glycyphagidae puede encontrarse en productos alimenticios almacenados como harina, granos, cereales, queso, jamón, pescado seco, levadura

15 seca, semillas y frutas secas. [0040]Así, la composición de acuerdo con la invención proporciona una nueva asociación de ácaros, que no se encuentran en la naturaleza, ya que los ácaros depredadores fitoseidos ocupan un hábitat diferente a los Glycyphagidae. [0041]Dyadechko, N. P. y Chizhik, R.I. (1972) describen experimentos en donde se

20 recoge Typhlodromus aberrans (conocido actualmente como Campynodromus aberrans (Oudemans 1930)) en bandas de fieltro durante el otoño con el objetivo de liberarlos en otros huertos la primavera siguiente. Aparte de Typhlodromus aberrans, se recolecta Tetranychus telarius. Se describe la depredación de Tetranychus telarius por Typhlodromus aberrans. Se describe que después de haber erradicado totalmente a

Tetranychus telarius de las bandas de fieltro, Typhlodromus aberrans se alimenta de

una especie no especificada de Glycyphagus que estaba presente en las bandas de fieltro. No se da información respecto la reproducción de T. aberrans en presencia de la especie Glycyphagus no especificada, sólo respecto a la depredación. [0042]La composición de acuerdo con la invención no sólo es adecuada para cría

5 masiva de un ácaro depredador fitoseido. Ya que también comprende etapas vitales móviles depredadoras de un ácaro depredador fitoseidos, o etapas vitales que pueden dar estas etapas vitales móviles, también pueden emplearse como un agente biológico de protección de cosechas. [0043]La composición comprende un portador para los individuos de las poblaciones.

10 El portador puede ser cualquier material sólido que sea adecuado para proporcionar una superficie portadora a los individuos. Preferiblemente el portador proporciona un medio poroso, que permite intercambio de gases metabólicos y del calor producido por las poblaciones de ácaros. Ejemplos de portadores apropiados son materiales de plantas tales como por ejemplo salvado (trigo), vainas de trigo sarraceno, vainas de

15 arroz, serrín, sémola de maíz, etc. [0044]Más preferiblemente se añade a la composición una substancia alimenticia adecuada para el desarrollo de una población de anfitriones facticios. Alternativamente, el propio portador puede comprender una substancia alimenticia apropiada. Una substancia alimenticia apropiada puede ser similar a la descrita por Parkinson, CL.,

20 1992; Solomon, M. E. & Cunnington, A.M., 1963; Chmielewski, W, 1971a; Chmielewski, W, 1971b o GB2393890. [0045]De acuerdo con una realización preferida de la composición, el ácaro depredador fitoseidos se selecciona entre:

-la subfamilia de los Amblyseiinae, como por ejemplo el género Amblyseius, por

ejemplo Amblyseius andersoni o Amblyseius largoensis, del género Euseius por

ejemplo Euseius finlandicus, Euseius hibisci, Euseius ovalis, Euseius victoriensis, Euseius stipulatus, Euseius scutalis, Euseius tularensis, Euseius addoensis, Euseius concordis, Euseius ho o Euseius citri, del género Neoseiulus por ejemplo Neoseiulus barkeri, Neoseiulus californicus, Neoseiulus cucumeris, Neoseiulus

5 longispinosus, Neoseiulus womersleyi, Neoseiulus idaeus, Neoseiulus anonymus o Neoseiulus fallacis, del género Typhlodromalus por ejemplo Typhlodromalus limonicus, Typhlodromalus aripo o Typhlodromalus peregrinus del género Typhlodromips por ejemplo Typhlodromips montdorensis;

-la subfamilia de Typhlodrominae, tales como del género Galendromus, por ejemplo

10 Galendromus occidentalis, del género Typhlodromus por ejemplo Typhlodromus pyri, Typhlodromus doreenae o Typhlodromus athiasae. Estas especies de ácaros depredadores fitoseidos pueden considerarse como especies de ácaros depredadores oligófagos. [0046]De acuerdo con una realización preferida de la invención, el ácaro depredador

15 fitoseido se selecciona de la subfamilia Amblyseiinae como se describe por de Moraes et al. , 2004. En una realización preferida adicional, el ácaro depredador fitoseidos se selecciona de Neoseiulus fallacis, Neoseiulus californicus, Typhlodromips montdorensis, Neoseiulus womersleyi, Euseius ovalis o Euseius scutalis. Para estas especies no se ha descrito en la técnica la cría masiva económica en un ácaro anfitrión

20 facticio, con la excepción de A. swirskii y N. californicus. [0047]La cría masiva de Neoseiulus californicus en Dermatophagoides farinae se ha descrito en la técnica (Castagnoli, M. y Simoni, S. (1999)) como se ha discutido anteriormente en el presente documento. Sin embargo, esto está asociado con problemas referentes a los alergenos transportados por Dermatophagoidea. La cría en

masa de esta especie en Tetranychus urticae o Tetranychus pacificus en judías

(Phaseolus vulgaris) en invernaderos o en exteriores también se ha descrito en la técnica (Hendrickson, R. M., Jr., (1980); Glasshouse Crops Research Institute, UK. (1976)) como se ha discutido anteriormente en el presente documento. Sin embargo, está asociado a una alta inversión en invernaderos y una gran inversión en mano de

5 obra, material y energía. [0048]Se ha descrito la cría de Typhlodronmips montdorensis, Neoseiulus womersleyi, Euseius ovalis y Euseius scutalis a escala de laboratorio utilizando polen de plantas. Sin embargo, la cría masiva comercial con polen es costosa y no es rentable. [0049]Neoseiulus fallacis es comercial. Sin embargo, éste ácaro depredador se cría

10 masivamente con su presa natural, lo que implica grandes inversiones. [0050]La presente invención, ahora por primera vez, describe una composición de ácaros, que comprende una especie de la familia Glycyphagidae como un anfitrión facticio, que puede utilizarse para cría económica de estos y otras especies de ácaros depredadores fitoseidos. Haciendo posible utilizarlos como un agente biológico para el

15 control aumentativo de plagas. [0051]Sin embargo habrá de entenderse que en ciertas realizaciones de la invención, las especies de ácaros depredadores fitoseidos se seleccionan entre especies diferentes a aquellos, que son particularmente preferidos. [0052]Pueden observarse diferencias entre diferentes cepas de las especies de

20 ácaros depredadores fitoseidos en aceptación del anfitrión facticio. Además, puede ser posible el criar una cepa adaptada para un anfitrión facticio específico mediante cría selectiva. [0053]En el presente documento el término cría debe entenderse que incluye la propagación y el aumento de una población mediante reproducción sexual.

25 [0054]Una población de cría puede comprender adultos sexualmente maduros de ambos sexos, y/o individuos de ambos sexos de en otras etapas vitales, por ejemplo huevos y/o ninfas, que pueden madurar hasta adultos sexualmente maduros. Alternativamente, la población de cría puede comprender una o más hembras fertilizadas. En esencia, la población de cría es capaz de incrementar el número de sus

5 individuos mediante reproducción sexual. [0055]Preferiblemente, la población anfitriona facticia es una población de cría, como se definió anteriormente en el presente documento, tal que puede sostenerse o incluso desarrollarse en cierto grado. Si el anfitrión facticio se proporciona como una población de cría, preferiblemente se proporciona también una sustancia alimenticia para el

10 anfitrión facticio. La sustancia alimenticia puede ser similar a una sustancia alimenticia como se describe en Solomon, M. E. y Cunnington, A.M., 1963; Parkinson, CL., 1992; Ramakers, P.M.J, y van Lieburg, M.J., 1982; GB2393890. El anfitrión facticio preferiblemente se selecciona de la subfamilia Ctenoglyphinae, como por ejemplo del género Diamesoglyphus, por ejemplo D. intermedins o del género Ctenoglyphus, por

15 ejemplo C. plumiger, C. canestrinii, C. palmifer; la subfamilia Glycyphaginae, como por ejemplo del género Blomia, por ejemplo B. freemani o del género Glycyphagus, por ejemplo G. ornatus, G. bicaudatus, G. privatus, G. domesticus, o del género Lepidoglyphus por ejemplo L. michaeli, L. fustifer, L. destructor, o del género Austroglycyphagus, por ejemplo A. geniculatus; de la subfamilia Aëroglyphinae, tal

20 como del género Aëroglyphus, por ejemplo A. robustus; de la subfamilia Labidophorinae, como por ejemplo del género Gohieria, por ejemplo G. fusca; o de la subfamilia Nycteriglyphinae como por ejemplo género Coproglyphus, por ejemplo C. Stammeri, y más preferiblemente se elige de la subfamilia Glycyphaginae, más preferiblemente del género Glycyphagus o del género Lepidoglyphus más

preferiblemente seleccionado de G. domesticus o L. destructor. Al contrario que para

Tyrophagus putrescentiae, para los Glycyphagidae y en particular Lepidoglyphus destructor y Glycyphagus domesticus no se ha observado daño a las cosechas en pruebas de campo comparativas. Por lo tanto, un anfitrión facticio de esta selección tendrá beneficios cuando la composición de acuerdo a la invención se utiliza para

5 protección de cosechas de tal manera que individuos en la población de anfitriones facticios pueda entrar en contacto con la cosecha, por ejemplo cuando se aplica directamente en o en la proximidad de la cosecha o cuando se utiliza en saquitos de liberación lenta/controlada/sostenida. [0056]Un beneficio adicional de los Glycyphagidae y particularmente de

10 Lepidoglyphus destructor y Glycyphagus domesticus es que se consideran especies cosmopolitas. Como tales, el comercio internacional de productos que comprenden uno de ellos sufrirá menos restricciones regulatorias ya que se encuentra en muchos países para especies extranjeras. [0057]Un beneficio adicional de los Glycyphagidae y en particular de Lepidoglyphus

15 destructor y Glycyphagus domesticus es que pueden emplearse para la cría masiva comercial de ciertas especies depredadoras fitoseidas que no pueden criarse con Tyrophagus spp. o Acarus spp., como por ejemplo Neoseiulus fallacis y Neoseiulus californicus. [0058]También se ha encontrado que Lepidoglyphus destructor y Glycyphagus

20 domesticus son en particular anfitriones facticios apropiados para Neoseiulus californicus y para Neoseiulus fallacis ya que estos depredadores pueden alimentarse en múltiples etapas vitales y bajo ciertas circunstancias en todas las etapas vitales de estos anfitriones. [0059]En la composición, el número de individuos de las especies de ácaros

depredadores del ácaro fitoseido respecto al número de individuos del anfitrión facticio

puede ser de aproximadamente 1000:1 a 1:20, por ejemplo aproximadamente 100:1 a

1:20 por ejemplo 1:1 a 1:10, preferiblemente aproximadamente 1:4, 1:5 o 1:7. [0060]Los números relativos pueden depender del uso específico que se pretenda para la composición y/o la etapa de desarrollo de la población de ácaros fitoseidos en

5 el anfitrión facticio. En general, para criar las especies de ácaros fitoseidos se prefieren composiciones donde los individuos del anfitrión facticio están presentes en exceso respecto a los individuos del ácaro fitoseido, de manera que al ácaro fitoseido se le proporcionan presas suficientes. Sin embargo, ya que la población de ácaros fitoseidos aumentará mientras cace al anfitrión facticio, el número relativo de individuos de la

10 especie de ácaro fitoseido aumentará. [0061]Una composición que comprende una cantidad relativamente alta de los ácaros depredadores fitoseidos, puede formarse a partir de una composición que comprende una cantidad relativamente pequeña y permitir que la población de cría del ácaro depredador fitoseido se desarrolle al cazar al anfitrión facticio. Alternativamente, una

15 composición que comprende una cantidad relativamente pequeña del ácaro depredador fitoseido puede formarse al mezclar una composición que comprende un número relativamente superior con una composición que comprende un número relativamente menor, incluyendo una composición que comprende solamente el anfitrión facticio, opcionalmente en combinación con el portador y/o una sustancia

20 alimenticia adecuada para el anfitrión facticio. [0062]De acuerdo con una realización preferida, la composición de ácaros comprende una fuente nutricional adicional para el ácaro fitoseido. El término fuente nutricional deberá entenderse como que comprende cualquier fuente de material que puede servir como alimento para el ácaro fitoseido. Esta fuente nutricional puede comprender una

dieta artificial, tal como se describe en US6129935. Sin embargo, las fuentes

nutricionales preferidas son polen de plantas o una presa. La presa puede comprender un anfitrión facticio tal como una especie seleccionada de la familia de Carpoglyphidae como por ejemplo el género Carpoglyphus, preferiblemente las especies Carpoglyphus lactis o de otras familias o géneros que pertenecen a la Astigmata. Al presentar una

5 fuente nutricional adicional, al ácaro fitoseido se le presenta una dieta más diversa. Se ha observado que la combinación de fuentes nutricionales puede llevar a efectos sinérgicos respecto a las respuestas del predador, en términos de crecimiento y/o reproducción. [0063]De acuerdo con un aspecto adicional la presente invención se refiere a un

10 método para criar las especies de ácaros depredadores fitoseidos. El método comprende proporcionar una composición de acuerdo con la invención y permitir que los individuos del ácaro depredador fitoseido se alimenten de individuos de la población de anfitriones facticios. [0064]Para un desarrollo óptimo del ácaro depredador fitoseido, la composición se

15 mantiene por ejemplo a 18-35 ºC, preferiblemente 20-30 ºC, más preferiblemente 20-25 ºC, más preferiblemente 22-25 ºC. Intervalos de humedad relativos apropiados están entre 60-95%, preferiblemente 70-90%. Estos intervalos de temperatura y humedad relativa en general son también apropiados para mantener la especie anfitriona facticia. Se prefiere que la composición comprenda un portador que pueda proporcionar un

20 medio poroso, y una sustancia alimenticia para las especies anfitrionas facticias, y que las especies anfitrionas facticias se mantengan como un cultivo tridimensional en el portador. En dicho cultivo tridimensional, los miembros de la especie anfitriona facticia pueden moverse en tres dimensiones. De esta manera, pueden infestar un gran volumen del portador y utilizar la sustancia alimenticia de manera más óptima.

Considerando el tamaño de las etapas móviles de las especies de ácaros

depredadores fitoseido respecto a individuos del anfitrión facticio, generalmente este organismo también infestará el volumen total del portador, al buscar alimento en el anfitrión facticio. Preferiblemente el cultivo tridimensional se obtiene al proporcionar el portador en una capa tridimensional, es decir una capa que tiene tres dimensiones, de

5 las cuales dos dimensiones son más grandes que una dimensión. Un ejemplo es una capa horizontal con una longitud y un ancho del orden de metros y un cierto espesor del orden de centímetros. Una capa tridimensional es preferida debido a que permitirá suficiente intercambio de calor metabólico y gases y proporcionará un volumen de producción mayor en comparación con una capa bidimensional.

10 [0065]De acuerdo con un aspecto adicional la invención se dirige al uso de un ácaro astigmátido seleccionado de la familia de Glycyphagidae como un anfitrión facticio para crear un ácaro depredador fitoseido diferente a Amblyseius swirskii. [0066]Preferiblemente, el ácaro astigmátido se elije de la subfamilia Ctenoglyphinae, por ejemplo del género Diamesoglyphus por ejemplo D. intermedins o del género

15 Ctenoglyphus, por ejemplo C. plumiger, C. canestrinii, C. palmifer; la subfamilia Glycyphaginae, tal como el género Blomia, por ejemplo B. freemani o del género Glycyphagus, por ejemplo G. ornatus, G. bicaudatus, G. privatus, G. domesticus, o del género Lepidoglyphus por ejemplo L. michaeli, L. fustifer, L. destructor, o del género Austroglycyphagus, por ejemplo A. geniculatus; de la subfamilia Aëroglyphinae, tal

20 como del género Aëroglyphus, por ejemplo A. robustus; de la subfamilia Labidophorinae, tal como del género Gohieria, por ejemplo G. fusca; o de la subfamilia Nycteriglyphinae tal como del género Coproglyphus, por ejemplo C. Stammeri, y más preferiblemente se selecciona de la subfamilia Glycyphaginae, y preferiblemente se elije del género Glycyphagus o del género Lepidoglyphus, más preferiblemente se elije

de G. domesticus o L. destructor.

[0067]El ácaro depredador fitoseido preferiblemente se selecciona de:

-la subfamilia Amblyseiinae, tal como del género Amblyseius, por ejemplo Amblyseius andersoni, Amblyseius largoensis o Neoseiulus fallacis, del género Euseius por ejemplo Euseius finlandicus, Euseius hibisci, Euseius ovalis, Euseius victoriensis,

5 Euseius stipulatus, Euseius scutalis, Euseius tularensis, Euseius addoensis, Euseius concordis, Euseius ho, o Euseius citri, del género Neoseiulus por ejemplo Neoseiulus barkeri, Neoseiulus californicus, Neoseiulus cucumeris, Neoseiulus longispinosus, Neoseiulus womersleyi, Neoseiulus idaeus, Neoseiulus anonymus o Neoseiulus fallacis, del género Typhlodromalus por ejemplo Typhlodromalus limonicus,

10 Typhlodromalus aripo o Typhlodromalus peregrinus del género Typhlodromips por ejemplo Typhlodromips montdorensis; -la subfamilia de Typhlodrominae, tales como del género Galendromus, por ejemplo Galendromus occidentalis, del género Typhlodromus, por ejemplo Typhlodromus pyri, Typhlodromus doreenae o Typhlodromus athiasae.

15 [0068]Se prefiere una selección de la subfamilia de Amblyseiinae. [0069]De acuerdo con un aspecto adicional, la invención se refiere a un sistema de cría del ácaro depredador fitoseido. [0070]El sistema de cría comprende un recipiente que contiene la composición de acuerdo con la invención. El recipiente puede ser de cualquier tipo que sea adecuado

20 para contener individuos de ambas poblaciones. El sistema de cría puede comprender medios que faciliten el intercambio de gases metabólicos y calor entre su interior y su exterior tales como orificios de ventilación. Estos orificios de ventilación no deben permitir una sustancial salida del recipiente de individuos de las poblaciones. Esto puede lograrse al crear una barrera en o alrededor de los orificios de ventilación que

evitan el salida sustancial de ácaros del recipiente mientras que facilita el intercambio

de gases y calor metabólico. [0071]Debido a la depredación de los ácaros depredadores fitoseidos, el número de individuos del anfitrión facticio en la composición disminuirá. De ser necesario, el anfitrión facticio puede reabastecerse de una fuente que comprende el anfitrión facticio,

5 preferiblemente en conjunto con el portador y/o sustancia alimenticia para el anfitrión facticio. [0072]El sistema de cría puede ser adecuado para la cría masiva de las especies de ácaros fitoseidos. Alternativamente el sistema de crianza también puede utilizarse para liberar el ácaro depredador fitoseido en una cosecha. En este caso, se prefiere que el

10 recipiente pueda hacerse adecuado para liberar etapas móviles del ácaro depredador fitoseido en un cierto momento. Esto puede lograrse al proporcionar una abertura cerrada en el recipiente que pueda abrirse. Alternativamente, o en combinación, una abertura de liberación relativamente pequeña puede proporcionarse en el recipiente, tal que el número de etapas móviles de fitoseido que abandonan el recipiente en un

15 intervalo de tiempo determinado se restrinja. De esta manera el sistema de crianza puede funcionar de manera similar al sistema de liberación sostenida o liberación lenta como se describe por Sampson, C, 1998 y en GB2393890. [0073]En este sistema de cría, para liberar el ácaro depredador fitoseido en una cosecha, el recipiente de preferencia se dimensiona de manera que pueda colgarse en

20 la cosecha o colocarse en la base de la cosecha. Para colgar en la cosecha, el recipiente puede proporcionarse con medios para colgar, tales como una cuerda o un gancho. [0074]De acuerdo con un aspecto adicional, la invención se dirige al uso de la composición o sistema de cría para controlar plagas de cosechas en una cosecha

comercial.

[0075]Dependiendo de la especie del ácaro fitoseido pueden utilizarse para controlar diferentes especies de plagas. La plaga puede seleccionarse de, moscas blancas, tales como Trialeurodes vaporariorum o Bemisia tabaci; tisanópteros, tales como Trips tabaci

o Frankliniella spp., tal como Frankliniella occidentalis; Tetranychidae tales como

5 Tetranychus urticae o Panonychus spp.; ácaros tarsonemidas tales como Polyphagotarsonemus latus; ácaros eriófidos tales como el ácaro del bronceado del tomate Aculops lycopersici; ninfas de piojo harinoso tales como de Citrus Mealybug Planococus de cítricos; ninfas de piojos tales como del piojo rojo de California Aonidiella aurantii.

10 [0076]Los ácaros depredadores fitoseidos Euseius ovalis y Euseius scutalis, han mostrado buena eficacia para controlar moscas blancas y tisanópteros. En el caso de Neoseiulus californicus, Neoseiulus fallacis, Neoseiulus womersleyi las plagas objetivo preferidas son Tetranychidae que pertenecen al género Tetranychus y Panonychus, ácaros tarsonémidos tales como el ácaro blanco Polyphagotarsonemus latus y el ácaro

15 de Ciclamen Tarsonemus pallidus. En el caso de Neoseiulus womersleyi se ha mostrado buena eficacia contra tisanópteros tales como Frankliniella occidentalis y contra ácaros eriófidos tales como el ácaro del bronceado del tomate Aculops lycopersici. [0077]La cosecha puede seleccionarse de, pero no se restringe a cosechas de

20 vegetales (invernadero) tales como tomates (Lycopersicon esculentum), pimientos (Capsicum annuum), berenjenas (Solanum melogena), Curcubitáceas (Cucurbitaceae) como por ejemplo pepinos (Cucumis sativa), melones (Cucumis melo), sandías (Citrullus lanatus); fruta suave (tales como fresas (Fragaria x ananassa), frambuesas (Rubus ideaus)), cosechas ornamentales (invernadero) (tales como rosas, gerberas,

crisantemos), cosechas de árboles tales como Citrus spp., almendras, plátanos o

cosechas de campo abierto tales como algodón, maíz. [0078]La invención además se refiere a un método para el control biológico de plagas en una cosecha que comprende proporcionar a la cosecha una composición de acuerdo con la invención.

5 [0079]La plaga puede seleccionarse de manera similar como se hace en el uso de acuerdo con la invención. [0080]En el método de acuerdo con la invención la composición puede proporcionarse al aplicar una cantidad de la composición en la proximidad, tal como en o en la base de un número de plantas. La composición puede proporcionarse a la planta de cosecha,

10 simplemente al dispersarla en la planta de cosecha o en la base de planta de cosecha como es práctica común para emplear composiciones de ácaros depredadores, para aumentar el control biológico de la plaga. La cantidad de la composición que puede proporcionarse a cada planta de cosecha individual mediante dispersión puede estar en el intervalo de 1-20 ml como por ejemplo 1-10 ml, preferiblemente 2-5 ml, cuando se

15 aplica en la base de las plantas de la cosecha y 0.1 a 5 ml cuando se aplica en el dosel de hojas de las plantas. [0081]Alternativamente, la composición puede proporcionarse al número de plantas de cosechas en el sistema de cría de acuerdo con la invención, que es adecuado para liberar el ácaro depredador fitoseido en una cosecha. El sistema de cría puede

20 colocarse en la proximidad, tal como sobre o en la base de un número de plantas de cosecha. [0082]En el método para el control biológico de una plaga de acuerdo a la invención puede no ser necesario proporcionar la composición a todas las plantas de la cosecha. Ya que las cosechas comerciales normalmente se cultivan en forma densa. Los ácaros

depredadores fitoseido pueden diseminarse desde una planta de la cosecha a otra. El

número de plantas de la cosecha a las que debe proporcionarse la composición de acuerdo con la invención a fin de proporcionar suficiente protección a la cosecha puede depender de las circunstancias específicas y puede determinarse fácilmente por el experto en la técnica, basándose en sus experiencias en la técnica. Usualmente el

5 número de ácaros depredadores fitoseidos liberados por hectárea es más determinante. Esta cantidad puede estar en el intervalo desde 1000-4 millones por hectárea, típicamente 100000 - 1 millón o 50000 - 500000 por hectárea. Estas cifras pueden liberarse de una vez o en múltiples veces por temporada de crecimiento, dependiendo de las condiciones climáticas, presión de la plaga y del uso de pesticidas

10 nocivos. [0083]En una realización preferida adicional del método para control biológico de plaga de acuerdo con la invención, la cosecha se elije como se describió con relación al uso de la composición. [0084]Ahora se describe la invención adicionalmente con referencia a los siguientes

15 ejemplos, que muestran realizaciones no limitantes de aspectos diferentes de la invención. [0085]Experimento 1 prueba de Oviposición de N. fallacis en L. destructor. MATERIALES Y MÉTODOS [0086]Al inicio del experimento, los adultos de N. fallacis se tomaron de un cultivo

20 masivo de N. fallacis en la fuente de alimentos L. destructor, que se inició unas semanas antes. De este cultivo masivo se seleccionaron 20 hembras adulto jóvenes y 8 machos y se transfirieron a cuatro recipientes de cría recientemente preparados. En cada uno se colocaron 5 hembras y 2 machos de N. Fallacis. Como fuente de alimento se coloco en todos ellos una cantidad amplia de L. destructor.

25 [0087]Una vez se prepararon los cuatro cultivos de prueba, se ubicaron en una habitación climatizada bajo condiciones de temperatura controlada (25 ºC) y humedad (75%). Después de dos o tres días en esas condiciones, se retiraron. Se prepararon cuatro nuevos recipientes de cría, similares a los anteriores, para transferir las mismas 5 hembras y 2 machos empleados previamente.

5 [0088]Como en la etapa anterior, se añadió a cada cultivo de ensayo una cantidad amplia de L. destructor como fuente de alimentos. Después de transferir los machos y las hembras, se contó el número de huevos en los recipientes de cría de los cuales se transfirieron. [0089]Los sistemas viejos de cría se conservaron en la habitación climatizada durante

10 dos o tres días para contar por segunda vez a fin de detectar algunos descendientes ocultos, después de lo cual se destruyeron. Igual que con los sistemas de crianza viejos, los nuevos se mantuvieron para repetir el mismo procedimiento. Cada día, se verificó la cantidad residual de L. destructor en cada recipiente de cría. De ser necesario, se agregó una cantidad suficiente.

15 [0090]Cada dos o tres días se obtuvieron datos al evaluar el número de descendientes tanto de la nueva cría (primera cuenta) como la vieja (segunda cuenta). Basándose en el número de hembras y del total descendientes que se encontraron en cada recipiente de cría, se obtuvo el número promedio de huevos colocados por hembra y día.

20 RESULTADOS [0091]Al comparar la evolución del número de huevos colocados por hembra durante el experimento total (haciendo una evaluación de conteo cada 2-3 días), el promedio estuvo entre 1.80 y 2.63 huevos/hembra/día. [0092]Durante todo el periodo, el promedio general es 2.14 huevos por hembra y por

25 día. La cantidad total de huevos colocados por hembra es aproximadamente 23 sobre un periodo de 11 días. Al comparar el número promedio de huevos colocados por hembra por día por el primer, segundo, tercero y cuarto recipientes de cría independientes, estos son 2.07, 2.09, 2.42 y 2.00, respectivamente. Los datos experimentales se presentan en la tabla 1 siguiente. Tabla 1. Fuente de alimentos: todas las etapas de L. destructor. Datos del promedio numérico de huevos colocados por hembra de N. fallacis por día para los 4 sistemas de cría independientes y para el experimento global.

Exp.

Día Hembras Total de descendientes Huevo/día/ hembra Promedio de huevo/día/hembra

2

5 18 1.80 2.07

4

5 20 2.00

1

7 5 29 1.93

9

5 24 2.40

11

5 22 2.20

2

5 19 1.90 2.09

4

5 18 1.80

2

7 5 32 2.13

9

5 25 2.50

11

5 21 2.10

2

5 18 1.80 2.42

4

5 23 2.30

3

7 5 34 2.27

9

5 31 3.10

11

4 21 2.63

(continúa)

4

2 5 18 1.80 2.00

4

5 18 1.80

7

5 33 2.20

9

5 23 2.30

11

5 19 1.90

Día

Periodo Hembras Descendientes Huevos/día/ hembra Promedio de huevos/día/ Hembra

2

0-2 días 20 73 1.83 2.14

4

3-4 días 20 79 1.98

7

5-7 días 20 128 2.13

9

8-9 días 20 103 2.58

11

10-11 días 19 83 2.18

Experimento 2: Prueba de oviposición de N. californicus en L. destructor [0093]La prueba de oviposición se realizó para N. fallacis de manera esencialmente

5 similar al método descrito en el experimento 1. [0094]Estos experimentos difieren como sigue: -En lugar de 4 subexperimentos con 5 hembras A. fallacis, se realizaron 4 subexperimentos con 4 hembras de N. californicus.

- El periodo de prueba con N. californicus fue de 14 días en lugar de 11 días.

10 RESULTADOS [0095]Al comparar la evolución del número de huevos colocados por hembra durante el experimento total (haciendo una evaluación de conteo cada 2-3 días), el promedio es

de 1.25 a 3.33 huevos/hembra/día. [0096]Durante todo el periodo, el promedio general es 2.27 huevos por hembra y día. La cantidad total de huevos colocados por hembra es de aproximadamente 31 durante un periodo de 14 días. El comparar el número promedio de huevos colocados por

5 hembra por día para el primero, segundo, tercer y cuarto recipientes de cría independientes, estos son 2.50, 2.44, 2.49 y 1.70, respectivamente. Los datos experimentales se presentan en la tabla 2 siguiente. Tabla 2. Fuente de alimentos: todas las etapas de L. destructor. Datos del número promedio de huevos colocados por hembra de N. californicus, por día para los 4

10 sistemas de cría independientes y para el experimento global.

Exp.

Día Hembras Total de descendientes Huevo/día/ hembra Promedio huevo/día/hembra

2

4 23 2.88 2.50

5

4 35 2.92

1

7 4 18 2.25

9

4 19 2.38

12

4 25 2.08

14

4 20 2.50

2

4 21 2.63 2.44

5

4 29 2.42

2

7 4 20 2.50

9

4 15 1.88

12

4 29 2.42

14

3 17 2.83

(continúa)

3

2 43 20 2.50 2.49

5

3 30 3.33

7

3 14 2.33

9

3 15 2.50

12

3 16 1.78

14

4 15 2.50

2

4 14 1.75 1.70

5

4 25 2.08

4

7 4 13 1.63

9

4 14 1.75

12

4 15 1.25

14

4 14 1.75

Día

Periodo (días) Hembras Descendientes Huevos/día/ hembra Promedio huevo/día/Hembra

2

0-2 16 78 2.44 2.27

5

3-5 15 119 2.64

7

6-7 15 65 2.17

9

8-9 15 63 2.10

12

10-12 15 85 1.89

14

13-14 14 66 2.36

Parámetros biológicos de N. californicus en las primeras 3 generaciones y después de adaptación en Lepidoglyphus destructor [0097]Procedimientos experimentales -N. californicus se recolectó de una cría masiva en polen de Quercus spp. mantenido a aproximadamente 25 ºC, RH>80% y 16L: 8D. El experimento se realizó en las mismas condiciones. Las unidades de cría (RU = Rearing Units) fueron una superficie de plástico (diámetro de aproximadamente 4.5 cm), circundada por algodón húmedo y parcialmente cubierto. Hembras jóvenes de N. californicus en oviposición se colocaron en la RU y se alimentaron con L. destructor. La

5 presa (en todas las etapas) se agregó a las superficies de manera que diariamente se mantuvo un número de presas superior al consumo de los fitoseidos. [0098]Los huevos de N. californicus puestos en los primeros 2 días se retiraron. Los huevos colocados los dos días sucesivos se recolectaron diariamente; algunos de ellos se colocaron en una nueva RU en pequeños grupos para calcular la mortalidad y

10 proporción de sexo, los otros se aislaron individualmente para calcular los tiempos de desarrollo y el tiempo de huevo-a-huevo. De la progenie, se confinaron nuevas hembras vírgenes con un macho maduro y diariamente cada pareja fue seguida hasta el día N para registrar la oviposición y la longevidad de la hembra en el periodo. [0099]Los huevos coetáneos obtenidos se recolectaron y se emplearon para empezar

15 la segunda generación en L. destructor: el procedimiento empleado para la primera generación se repitió para la segunda y la tercera generaciones. [00100] El desempeño de N. californicus en L. destructor se evaluó en las generaciones primera-tercera y en una cepa adaptada (más de un año y medio de alimentación en L. destructor)

20 Tabla 3. Parámetros biológicos de N. californicus en L. destructor (25 ºC + 2 ºC, RH >80%, fotoperiodo 16L: 8D)

Generaciones

Primera

Segunda Tercera Enésima

Tiempo huevo-a-huevo (días)

8.6+ 0.96 a n=36 9.9+1.27 b n=25 9.5+1.20 b n=33 8.6+1.10 a n=34

(continúa)

Mortalidad juvenil (%)

0.39 n=259 a 0.65 n=159 a 1.60 n=187 a 1.67 n=180 a

Proporción de sexo (% de hembras)

66.67 n=258 a 63.64 n=154 a 58.70 n=184 ab 55.37 n=177 b

Proporción de escape (%)

13.71 n=300 21.43 n=197 25.51 n=250 30.32 n=254

Huevos/hembra/-día (periodo de 10 días)

2.29+0.43 a n=33 2.03+0.45 b n=32 2.75+0.49 c n=31 2.15+0.50 ab n=26

Parámetros demográficos de N. californicus en L. destructor

Datos obtenidos de L. destructor se utilizaron para calcular rg y rm. Los valores obtenidos se resumen en la Tabla 4. Tabla 4. Velocidad de reproducción neta (rg) y velocidad de crecimiento intrínsica estimada (rm) de N. californicus en L. destructor en la diferente generación a 25 ºC y RH >80%.

rg calculada (días -1)

rm estimada (día -1)

1ª generación

0.222 0.244

2ª generación

0.205 0.225

3ª generación

0.199 0.218

nª generación

0.203 0.223

Referencias

Athias-Henriot, C. (1962) Amblyseius swirskii, un nouveau phytoseiide voisin d'A. andersoni (Acariens anactinotriches). Annales de l'Ecole Nationale d' Agriculture d1 Alger, Algeria, 3, 1-7. Beglyarov et al., 1990, Flour mite for mass breeding of phytoseiids, Zashchita-Rastenii,

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5 Bolckmans, K. & Moerman, M. 2004, Nieuwe roofmijt verandert bestrijding in paprika. Groenten & Fruit 41: 24-25 Castaqnoli, M., 1989, Biologia e prospettive di allevamento massale di Amblyseius cucumeris (Oud.) (Acarina: Pyroglyphidae) com preda. Castagnoli, M. y Simoni, S., 1999, Effect of long-term feeding history on functional and numerical response of Neoseiulus californicus (Acari : Phytoseiidae) , Experimental &

10 Applied Acarology, 23, pp 217-234. Castagnoli M., Simoni S., Biliotti N., 1999, Mass-rearing of Amblyseius californicus on two alternative food source - In: J. Bruin, L. P. S. van der Geest and M. W. Sabelis (eds), Ecology and Evolution of the Acari, Kluwer Acad, Publ . , Dordrecht, The Nederlands, pp. 425-431.

15 Chant, D .A., y J.A. , McMurtrv, 2004, A review of the subfamily Amblyseiinae Muma (Acari: Phytoseiidae) : Part III. The tribe Amblyseiini wainstein, subtribe Amblyseiina N. subtribe. Internat. J.Acarol . , vol.30, Nr.3, p.171-228. Chmielewski, W., 1971 (a), Wyniki badan morfologicznych, biologicznych i ekologicznych nad roztoczkiem suszowym, Carpoglyphus lactis (L.) (The results of

20 investigations on the morphology, biology and ecology of the dried-fruit mite, Carpoglyphus lactis (L.)), Prace-Naukowe-Instytutu-Ochrony- Roslin. 1971, publ . 1972,

13: 1, 87-106. Chmielewski, W., 1971 (b), Morfologia, biologia i ekologia Carpoglyphus lactis (L., 1758) (Glycyphagidae, Acarina) (The morphology, biology and ecology of Carpoglyphus

lactis (L., 1758) (Glycyphagidae, Acarina) ) , Prace-Naukowe-Instytutu- Ochrony-Roslin.

1971, publ. 1972, 13: 2, 63-166. De Moraes, G.J., McMurtry, J.A. , Denmark, H.A. & Campos, CB., 2004. A revised catalog of the mite family Phytoseiidae. Magnolia Press Auckland New Zealand 494 pp. Dyadechko, N. P. & Chizhik, 1972 (On the multiplication of yphlodromus) (in Russian) .

5 Zashch. Rast . 17(2):22. Glasshouse Crops Research Institute, UK. 1976, Biological Pest Control. Rearing parasites and predators. Grow. Bull. Glasshouse Crops Res. Inst.: 23 pp. Hansen, L. S. y Geyti. J., 1985, Possibilities and limitation of the use of Amblyseius McKenziei Sch. & Pr. for biological control of thrips (Thrips tabaci Lind.) On glasshouse

10 corps of cucumber, Department of Zoology, Danish Research Centre for Plant Protection, Lyngby, Denmark, ppl45- 150. Hendrickson, R.M., Jr., 1980, Continuous production of predacious mites in the greenhouse. J.N. Y. Entomol . Soc . 88(4) : 252-256. Hughes, A.M., 1977, The mites of stored food and houses. Ministry of Agriculture,

15 Fisheries and Food, Technical Bulletin No. 9: pp 133-186 Hussey, N. W. and N.E.A. Scopes, 1985, Biological Pest Control: the Glasshouse Experience. Poole, UK.: Blandford Press (Ithaca, N. Y.. : Cornell University Press) Jacobson, R. J., 1995, Integrated pest management in cucumbers - prevention of establishment of Frankliniella occidentalis (Pergande) , Med. Fac . Landbouw. Univ.

20 Gent, 60/3a, pp 857-863. Karq et al . , 1987, Advantages of oligophagous predatorymites for biological control, Institute of Plant Protection Klenmachnow, pp 66-73. Karg et al., 1989, Fortschritte bei der Anwendung von Raubmilben zur biologischen Schadlingsbekampfung in Gewachshausern, Gartenbau, 36, pp 44-46. Karg, W., 1989, Die ölogische Differenzierung der Faubmilbarten der Überfamilie

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Messelink, G. & Steenpaal, S. 2003, Nieuwe roofmij ten tegen trips in komkommer. Groenten & Fruit 43: 34-35. Messelink, G. 2004, Nieuwe roofmijt wint met overmacht in komkommer. Groenten & Fruit 35: 22-23.

5 Messelink, G. & Pijnakker, J. 2004, Roofmij ten bestrijden wittevlieg. Vakblad voor de Bloemisterij 43: 62. Messelink, G. & Steenpaal, S. 2004, Roofmijt nu ook kaswittevlieg de baas. Groenten & Fruit 45: 26-27. McMurtry, J.A. y Rodríguez, J.G., 1987 Nutritional Ecology of insects, mites, spiders and related invertebrates. John Wiley and Sons, New York: 609-644.

10 McMurtry, J.A. y Croft B. A., 1997, Life-styles of phytoseiid mites and their role in biological control, Annual Review of Entomology, Vol. 42: 291-321. Nomikou, M., Janssen, A., Schraag, R. and Sabelis, M.W. , 2001 , Phytoseiid predators as biological control agents for Bemisia tabaci . Exp .Appl .Acarol . 25: 270-290 Parkinson, C.L., 1992, "Culturing free-living astigmatid mites." Arachnida: Proceedings

15 of a one day symposium on spiders and their allies held on Saturday 21st November 1987 at the Zoological Society of London, eds . Cooper, J. E., Pearce- Kelly,P, Williams,

D. L. , p. 62-70. Ramakers, P.M.J, y Van Lieburg, M.J., 1982, Start of commercial production and introduction of Amblyseius mckenzei Sch. Sc Pr. (Acarina: Phytoseiidae) for the control

20 of Thrips tabaci Lind. (Thysanoptera : Thripidae) in glasshouses, Med. Fac. Landbouww. Rijksuniv. Gent, 47/2, pp 541-545. Ramakers, P.M.J., 1989, Large scale introductions of Phytoseiid predators to control thrips on cucumber, Med. Fac. Landbouww. Rijksuniv. Gent, 54/3a, pp 923-929. Ramakers, P.M.J, y Voet , S. J. P., 1996, Introduction of Amblyseius degenerans for

thrips control in sweet peppers with potted castor beans as banker plants. IOBC/WPRS

working group on integrated control in glasshouses 19(1): 127-130. Rasmy et al., 1987, A new diet for reproduction of two predaceous mites Amblyseius gossipi and Agistemus exsertus (Acari : Phytoseiidae, Stigmaeidae) , Entomophaga 32(3), pp 277- 280. 5 Romeih, A.H.M., El-Saidy, E. M .A. y El Arnaouty, S.A., 2004, Suitability Of Two Lepidopteran Eggs As Alternative Preys For Rearing Some Predatory Mites. The first Arab Conference of Applied Biological Pest Control, Cairo, Egypt, 5-7 April 2004. Swirski, E., Amitai, S. y Dorzia, N., 1967, Laboratory studies on the feeding, development and oviposition of the predaceous mite Amblyseius rubini Swirksi and 10 Amitai an Amblyseius swirskii Athias-Henriot (Acarina: Phytoseiidae) on various kiinds of food substances. Israel J.Agric.Res. 17:101- 119 Sampson, C, 1998, The commercial development of an Amblyseius cucumeris controlled release method for the control of Frankliniella occidentalis in protected crops, The 1998 Brighton conference - Pests & Diseases, 5B-4, pp 409-416. 15 Solomon, M. E. y Cunninqton, A.M., 1963, Rearing acaroid mites, Agricultural Research Council, Pest Infestation Laboratory, Slough, England, pp 399-403. Teich, Y. 1966, Mites of the family of Phytoseiidae as predators of the tobacco whitefly, Bemisia tabaci Gennadius. Israel J. Agric. Res. 16: 141-142. Wei-Lan Ma y J. E. Laing, 1973, Biology -- of Amblyseius (Neoseiulus) californicus, 20 Entomophaga, 47-60.

REFERENCIAS CITADAS EN LA DESCRIPCIÓN

Esta lista de referencias citadas por el solicitante únicamente es para comodidad del lector. Dicha lista no forma parte del documento de patente europea. Aunque se ha tenido gran cuidado en la recopilación de las referencias, no se pueden excluir errores u omisiones y la EPO rechaza toda responsabilidad a este respecto.

Documentos de patente citados en la descripción

•

GB 2393890 A [0010] [0044] [0055] [0072]

•

JP 03108433 B [0016]

•

NL 2004000930 [0018]

•

WO 2006057552 A [0018]

•

GB 293890 A [0023]

•

WO 2006071107 A [0031]

•

US 6129935 A [0062]

Bibliografía no relativa a patentes citada en la descripción

•

Athias-Henriot, C. Amblyseius50 swirskii, un nouveau phytoseiide voisin d’ A. andersoni (Acariens anactinotriches). Annales de l’Ecole Nationale d’ Agriculture d’ Alger, 1962, vol. 3, 1-7 [0103] 55

•

Beglyaroy et al. Flour mite for mass breeding of phytoseiids. Zashchita-Rastenii, 1990, 25 [0103]

•

Bennison, J.A. ; Jacobson, R.

Integrated control of Frankliniella 60 occidentalis (Pergande) in UK cucumber crops - evaluation of a controlled release system of introducing Amblyseius cucumeris. Med. Fac. Landbouww. Rijksuniv. Gent, 56/2a,65 1991, 251-255

[0103]

• Bolckmans, K. ; Moerman, M.

Nieuwe roofmijt verandert bestrijding in paprika. Groenten & Fruit, 2004, vol. 41, 70 24-25 [0103]

•

Castagnoli, M. Biologia e prospettive di allevamento massale di Amblyseius cucumeris (Oud.) (Acarina: Pyroglyphidae), 1989 [0103] 75

•

Castagnoli, M. ; Simoni, S. Effect of long-term feeding history on functional and numerical response of Neoseiulus californicus (Acari: Phytoseiidae). Experimental & Applied Acarology, 80 1999, vol. 23, 217-234 [0103]

•

Mass-rearing of Amblyseius

californicus on two alternative food source. Castagnoli M. ; Simoni S. ; Biliotti N. Ecology and Evolution of the Acari. Kluwer Acad., Publ, 1999, 425431 [0103]

•

Chant, D.A. ; J.A., McMurtry. A review of the subfamily Amblyseiinae Muma (Acari: Phytoseiidae): Part III. The tribe Amblyseiini wainstein, subtribe Amblyseiina N. subtribe. Internat.J.Acarol., 2004, vol. 30 (3), 171-228 [0103]

•

Chmielewski, W. Wyniki badan morfologicznych, biologicznych i ekologicznych nad roztoczkiem suszowym, Carpoglyphus lactis (L.) (The results of investigations on the morphology, biology and ecology of the dried-fruit mite. Carpoglyphus lactis (L.)), Prace-Naukowe-InstytutuOchrony-Roslin, 1971, vol. 13 (1), 87106 [0103]

•

Chmielewski, W. Morfologia, biologia i ekologia Carpoglyphus lactis (L., 1758) (Glycyphagidae, Acarina) (The morphology, biology and ecology of Carpoglyphus lactis (L., 1758) (Glycyphagidae, Acarina)). PraceNaukowe-Instytutu-Ochrony-Roslin., 1971, vol. 13 (2), 63-166 [0103]

•

De Moraes, G.J. ; McMurtry, J.A. ; Denmark, H.A. ; Campos, C.B. A revised catalog of the mite family

Phytoseiidae. Magnolia Press, 200450

[0103]

•

Dyadechko, N.P. ; Chizhik. (On the multiplication of yphlodromus) (in Russian). Zashch. Rast., 1972, vol. 17 (2), 22 [0103] 55

•

Glasshouse Crops Research Institute, UK. 1976, Biological Pest Control. Rearing parasites and predators. Grow. Bull. Glasshouse Crops Res. Inst., 1976, 23 [0103] 60

•

Hansen, L.S. ; Geyti. J. Possibilities and limitation of the use of Amblyseius McKenziei Such. & Pr. For biological control of thrips (Thrips tabaci Lind.) On glasshouse corps of cucumber, 65 Department of Zoology. Danish Research Centre for Plant Protection, 1985, 145-150 [0103]

•

Hendrickson, ,R.M., Jr. Continuous production of predacious mites in the 70 greenhouse. J.N.Y. Entomol. Soc., 1980, vol. 88 (4), 252-256 [0103]

•

Hughes, A.M. The mites of stored food and houses. Ministry of Agriculture, Fisheries and Food. Technical Bulletin, 75 1977, 133-186 [0103]

•

Hussey, N.W. ; N.E.A. Scopes.

Biological Pest Control: the Glasshouse Experience. Blandford Press, 1985

[0103] 80

•

Jacobson, R.J. Integrated pest management in cucumbers - prevention of establishment of Frankliniella occidentalis (Pergande). Med. Fac. Landbouw. Univ. Gent, 1995, vol. 60/3a, 85 857-863 [0103]

•

Karg et al. Advantages of oligophagous predatory mites for biological control. Institute of Plant Protection Klenmachnow, 1987, 66-73 90

[0103]

•

Karg et al. Fortschritte bei der Anwendung von Raubmilben zur biologischen Schädlingsbekämpfung in Gewachshausern. Gartenbau, 1989, 95 vol. 36, 44-46 [0103]

•

Karg, W. Die ökologische Differenzierung der Faubmilbarten der

Überfamilie Phytoseiidea KARG (Acarina, Parasitiformes). Zool. Jb. Syst., 1989, vol. 116, 31-46 [0103]

• Messelink, G. ; Steenpaal, S. Nieuwe roofmijten tegen trips in komkommer. Groenten & Fruit, 2003, vol. 43, 34-35

[0103]

• Messelink, G. Nieuwe roofmijt wint met overmacht in komkommer. Groenten & Fruit, 2004, vol. 35, 22-23

[0103]

• Messelink, G. ; Pijnakker, J.

Roofmijten bestrijden wittevlieg. Vakblad voor de Bloemisterij, 2004, vol. 43, 62 [0103]

• Messelink, G. ; Steenpaal, S.

Roofmijt nu ook kaswittevlieg de baas. Groenten & Fruit, 2004, vol. 45, 26-27

[0103]

• McMurtry, J.A. ; Rodríguez, J.G.

Nutritional ecology of insects, mites, spiders and related invertebrates. John Wiley and Sons, 1987, 609-644 [0103]

• McMurtry, J.A. ; CroftB. A. Life-styles of phytoseiid mites and their role in biological control. Annual Review of Entomology, 1987, vol. 42, 291-321

[0103]

•

Nomikou, M. ; Janssen, A. ; Schraag, R. ; Sabelis, M.W. Phytoseiid predators as biological control agents for Bemisia tabaci. Exp.Appl.Acarol., 2001, vol. 25, 270-290 [0103]

•

Culturing free-living astigmatid mites. Parkinson, C.L. Arachnida: Proceedings of a one day symposium on spiders and their allies held. November 1987, 62-70 [0103]

•

Ramakers, P.M.J. ; Van Lieburg,

M.J. Start of commercial production and introduction of Amblyseius mckenzei Sch. & Pr. (Acarina: phytoseiidae) for the control of Thrips tabaci Lind. (Thysanoptera: Thripidae) in glasshouses. Med. Fac. Landbouww. Rijksuniv. Gent, 1982, vol. 47/2, 541545 [0103]

• Ramakers, P.M.J. Large scale introductions of Phytoseiid predators to control thrips on cucumber. Med. Fac. 50 Landbouww. Rijksuniv. Gent, 1989, vol. 54/3a, 923-929 [0103]

• Ramakers, P.M.J. ; Voet, S.J.P.

Introduction of Amblyseius degenerans for thrips control in sweet peppers with potted castor beans as banker plants. IOBC/WPRS working group on integrated control in glasshouses, 1996, vol. 19 (1), 127-130 [0103]

•

Rasmy et al. A new diet for reproduction of two predaceous mites Amblyseius gossipi and Agistemus exsertus (Acari: Phytoseiidae, Stigmaeidae). Entomophaga, 1987, vol. 32 (3), 277-280 [0103]

•

Romeih, A.H.M. ; E1-Saidy, E.M.A. ; El Arnaouty, S.A. Suitability Of Two Lepidopteran Eggs As Alternative Preys For Rearing Some Predatory Mites. The first Arab Conference of Applied Biological Pest Control, 05 April 2004

[0103]

• Swirski, E. ; Amitai, S. ; Dorzia, N.

Laboratory studies on the feeding, development and oviposition of the predaceous mite Amblyseius rubini Swirksi and Amitai an Amblyseius swirskii Athias-Henriot (Acarina: Phytoseiidae) on various kiinds of food substances. Israel J.Agric.Res., 1967, vol. 17, 101-119 [0103]

•

Sampson, C. The commercial development of an Amblyseius cucumeris controlled release method for the control of Frankliniella occidentalis in protected crops. The 1998 Brighton conference - Pests & Diseases, 1998, vol. 5B-4, 409-416 [0103]

•

Solomon, M.E. ; Cunnington, A.M.

Rearing acaroids mites, Agricultural Research Council. Pest Infestation Laboratory, 1963, 399-403 [0103]

•

Teich, Y. Mites of the family of Phytoseiidae as predators of the tobacco whitefly, Bemisia tabaci Gennadius. Israel J. Agric. Res., 1966, vol. 16, 141-142 [0103]

•

Wei-Lan Ma ; J.E. Laing. Biology -- of

Amblyseius (Neoseiulus)californicus. Entomophaga, 1973, 47-60 [0103]

Claims (21)

1. REIVINDICACIONES

   1. Composición de ácaros, que comprende:

   -

   una población de cría de una especie de ácaros depredadores fitoseidos,

   -

   una población de anfitrión facticio,

   5 - y un portador para individuos de dichas poblaciones, caracterizada porque la población de anfitrión facticio comprende al menos una especie seleccionada de la familia de Glyciphagidae, con la condición de que el ácaro depredador fitoseido se selecciona de una especie diferente a Amblyseius swirskii.
2. 2. Composición de acuerdo con la reivindicación 1, donde las especies de ácaros

   10 depredadores fitoseidos se seleccionan entre: la subfamilia de Amblyseiinae, tal como del género Amblyseius, por ejemplo Amblyseius andersoni o Amblyseius largoensis, del género Euseius por ejemplo Euseius finlandicus, Euseius hibisci, Euseius ovalis, Euseius victoriensis, Euseius stipulatus, Euseius scutalis, Euseius tularensis, Euseius addoensis, Euseius concordis, Euseius ho o Euseius citri, del género Neoseiulus por

   15 ejemplo Neoseiulus barkeri, Neoseiulus californicus, Neoseiulus cucumeris, Neoseiulus longispinosus, Neoseiulus womersleyi, Neoseiulus idaeus, Neoseiulus anonymus o Neoseiulus fallacis, del género Typhlodromalus por ejemplo Typhlodromalus limonicus, Typhlodromalus aripo o Typhlodromalus peregrinus del género Typhlodromips por ejemplo Typhlodromips montdorensis;

   20 - la subfamilia de Typhlodrominae, tal como del género Galendromus por ejemplo Galendromus occidentalis, del género Typhlodromus por ejemplo Typhlodromus pyri, Typhlodromus doreenae o Typhlodromus athiasae.

3. 3.

   Composición de acuerdo con la reivindicación 1-2, que comprende una sustancia alimenticia adecuada para dicha población de anfitriones facticios.

4. 4.

   Composición de acuerdo con la reivindicación 1-3, donde la población de anfitriones

   facticios es una población de cría.

5. 5.

   Composición de acuerdo con la reivindicación 1-4, donde el número de individuos de la especie de ácaros depredadores fitoseidos respecto al número de individuos del anfitrión facticio es de aproximadamente 100:1 a 1:20, tal como aproximadamente 1:1

   5 a 1:10, por ejemplo aproximadamente 1:4, 1:5 o 1:7.
6. 6. Composición de acuerdo con la reivindicación 1-4, donde la especie anfitriona facticia se selecciona entre la subfamilia Ctenoglyphinae, tal como del género Diamesoglyphus, por ejemplo D. intermedins o del género Ctenoglyphus, por ejemplo

   C. plumiger, C. canestrinii, C. palmifer; la subfamilia Glycyphaginae, tal como del

   10 género Blomia, por ejemplo B. freemani o del género Glycyphagus, por ejemplo G. ornatus, G. bicaudatus, G. privatus, G. domesticus, o del género Lepidoglyphus por ejemplo L. michaeli, L. fustifer, L. destructor, o del género Austroglycyphagus, por ejemplo A. geniculatus; de la subfamilia Aëroglyphinae, tal como del género Aeroglyphus, por ejemplo A. robustus; de la subfamilia Labidophorinae, tal como del

   15 género Gohieria, por ejemplo G. fusca; o de la subfamilia Nycteriglyphinae tal como del género Coproglyphus, por ejemplo C. Stammeri, y más preferiblemente se elige de la subfamilia Glycyphaginae, más preferiblemente se elige del género Glycyphagus o el género Lepidoglyphus más preferiblemente se elige de G. domesticus o L. destructor.
7. 7. Composición de acuerdo con las reivindicaciones 1-6 que comprende una fuente 20 nutricional adicional para el ácaro fitoseido, tal como polen o una presa.

8. 8.

   Composición de acuerdo con la reivindicación 7, donde la presa comprende un anfitrión facticio tal como una especie seleccionada entre la familia de Carpoglyphidae tal como del género Carpoglyphus, preferiblemente la especie Carpoglyphus lactis.

9. 9.

   Método para la cría de un ácaro depredador fitoseido que comprende:

   -proporcionar una composición de acuerdo con la reivindicación 1-6,

   - permitir que individuos del ácaro depredador fitoseido se nutran de individuos de la población de anfitriones facticios.
10. 10. Método de acuerdo con la reivindicación 9, donde la composición se mantiene a 18-35ºC y/o 60-95% de humedad relativa.

    5 11. Método de acuerdo con la reivindicación 9-10, donde la composición comprende un portador y una sustancia alimenticia apropiada y la población de anfitrión facticio se mantiene en el portador en forma de cultivo tridimensional.
11. 12. Uso de un ácaro astigmátido seleccionado de la familia de Glycyphagidae, como

    anfitrión facticio para la cría de un ácaro depredador fitoseido seleccionado de una 10 especie diferente a Amblyseius swirskii.
12. 13. Uso de acuerdo con la reivindicación 12, donde el ácaro fitoseido se selecciona de:

    - la subfamilia de Amblyseiinae, tal como del género Amblyseius, por ejemplo Amblyseius andersoni o Amblyseius largoensis, del género Euseius por ejemplo Euseius finlandicus, Euseius hibisci, Euseius ovalis, Euseius victoriensis, Euseius

    15 stipulatus, Euseius scutalis, Euseius tularensis, Euseius addoensis, Euseius concordis, Euseius ho o Euseius citri, del género Neoseiulus por ejemplo Neoseiulus barkeri, Neoseiulus californicus, Neoseiulus cucumeris, Neoseiulus longispinosus, Neoseiulus womersleyi, Neoseiulus idaeus, Neoseiulus anonymus o Neoseiulus fallacis, del género Typhlodromalus por ejemplo Typhlodromalus limonicus, Typhlodromalus aripo o

    20 Typhiodromalus peregrinus del género Typhlodromips por ejemplo Typhlodromips montdorensis;

    - la subfamilia de Typhlodrominae, tales como del género Galendromus por ejemplo Galendromus occidentalis, del género Typhlodromus por ejemplo Typhlodromus pyri, Typhlodromus doreenae o Typhlodromus athiasae.
13. 14. Sistema de cría para criar un ácaro depredador fitoseido, este sistema comprende

    un recipiente que contiene la composición de acuerdo con la reivindicación 1-8. 15. Sistema de cría de acuerdo con la reivindicación 14, donde dicho recipiente comprende una salida para al menos una etapa vital móvil del ácaro fitoseido. 16. Sistema de cría de acuerdo con la reivindicación 15, donde dicha salida es

    5 apropiada para proporcionar una liberación sostenida de dicha al menos una etapa vital móvil.

14. 17.

    Uso de la composición de acuerdo con la reivindicación 1-8 o el sistema de cría de acuerdo con la reivindicación 15-16 para controlar una plaga de cosecha.

15. 18.

    Uso de acuerdo con la reivindicación 17 donde la plaga de cosecha se selecciona

    10 entre moscas blancas, tales como Trialeurodes vaporariorum o Bemisia tabaci; tisanópteros, tales como Thrips tabaci o Frankliniella spp., tales como Frankliniella occidentalis; Tetranychidae tales como Tetranychus spp. tales como Tetranychus urticae, Teranychus evansi y Teranychus kanzawai o Panonychus spp., tales como Panonychus ulmi; ácaros tarsonémidos tales como Polyphagotarsonemus latus o

    15 Tarsonemus pallidus; ácaros eriófidos tales como Aculops lycopersici; ninfas de piojo harinoso tales como de Panonychus citri; ninfas de piojos tales como Aonidiella aurantii.
16. 19. Uso de acuerdo con la reivindicación 18, donde la cosecha se elige de cosechas de vegetales (invernadero), tales como tomates (Lycopersicon esculentum), pimientos

    20 (Capsicum annuum), berenjenas (Solanum melogena), Curcubitáceas (Cucurbitaceae) tales como pepinos (Cucumis sativa), melones (Cucumis melo), sandías (Citrullus lanatus); fruta suave (tales como fresas (Fragaria x ananassa), frambuesas (Rubus ideaus)), cosechas ornamentales (invernadero) (tales como rosas, gerberas, crisantemos), cosechas de árboles tales como Citrus spp., almendras, plátanos o

    cosecha de campo abierto tales como algodón, maíz.

17. 20.

    Método para control biológico de plagas en una cosecha, que comprende proporcionar una composición de acuerdo con la reivindicación 1-8 a dicha cosecha.

18. 21.

    Método de acuerdo con la reivindicación 20 donde la plaga se selecciona entre moscas blancas, tales como Trialeurodes vaporariorum o Bemisia tabaci; tisanópteros,

    5 tales como Thrips tabaci o Frankliniella spp., tales como Frankliniella occidentalis; Tetranychidae tales como Tetranychus spp. tales como Tetranychus urticae, Teranychus evansi y Teranychus kanzawai o Panonychus spp., tales como Panonychus ulmi; ácaros tarsonémidos tales como Polyphagotarsonemus latus o Tarsonemus pallidus; ácaros eriófidos tales como Aculops lycopersici; ninfas de piojos harinosos

    10 tales como de Panonychus citri; ninfas de piojos tales como de Aonidiella aurantii.
19. 22. Método de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 20-21, donde la composición se proporciona mediante la aplicación de una cantidad de dicha composición en la proximidad, tal como en la base, de un número de plantas de cosecha, preferiblemente en cada planta de cosecha.

    15 23. Método de acuerdo con la reivindicación 22, donde la cantidad es de 1-10 ml, preferiblemente 2-5 ml.
20. 24. Método de acuerdo con la reivindicación 20-21, donde la composición se proporciona en el sistema de cría de acuerdo con las reivindicaciones 15-17, colocando el sistema de cría en la proximidad de un número de plantas de cosecha,

    20 preferiblemente en cada planta de cosecha, tal como al colgar el sistema de cría en la planta de cosecha.
21. 25. Método de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 20-24, donde la cosecha se selecciona de cosechas vegetales de (invernadero) tales como tomates (Lycopersicon esculentum), pimientos (Capsicum annuum), berenjenas (Solarium

    25 melogena), Curcubitáceas (Cucurbitaceae) tales como pepinos (Cucumis sativa), melones (Cucumis melo), sandías (Citrullus lanatus); fruta suave (tales como fresas (Fragaria x ananassa), frambuesas (Rubus ideaus)), cosechas ornamentales (invernadero) (tales como rosas, gerberas, crisantemos), cosechas de árboles tales como Citrus spp., almendras, plátanos o cosechas de campo abierto tales como algodón, maíz.