ES2328446T3 - Uso de lipasa acida lisosomica para tratar la arterosclerosis y enfermedades asociadas. - Google Patents
Uso de lipasa acida lisosomica para tratar la arterosclerosis y enfermedades asociadas. Download PDFInfo
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Abstract
Uso de una proteína o polipéptido hidrolizante de lípidos seleccionado del grupo constituido por la proteína lipasa ácida lisosómica, una proteína que muestra al menos un 85% de homología de secuencia con la lipasa ácida lisosómica, una proteína variante polimórfica de lipasa ácida lisosómica con sustitución del aminoácido Pro(-6) por Thr y de Gly2 por Arg, o mezclas de las mismas, para la fabricación de un medicamento para tratar la aterosclerosis en un mamífero, en el que dicha proteína o polipéptido hidrolizante de lípidos se orienta a sitios de receptor para captación en lisosomas.
Description
Uso de lipasa ácida lisosómica para tratar la
arterosclerosis y enfermedades asociadas.
La presente invención se refiere al uso de
sustancias disolventes de lípidos para el tratamiento y la
prevención de enfermedad arterial coronaria. Más específicamente,
esta invención se refiere al uso de proteínas y/o polipéptidos
hidrolizantes de lípidos tales como lipasa ácida lisosómica (LAL)
para el tratamiento y la prevención de aterosclerosis en
mamíferos.
El número creciente de pacientes que padecen
aterosclerosis continúa impulsando la investigación del metabolismo
de colesterol y triglicéridos. Mediante un gran número de
investigaciones, se ha elucidado lo esencial del control del
metabolismo del colesterol en las dos últimas décadas (véase la
Figura 1). El sistema clave para el control del metabolismo del
colesterol requiere dos conjuntos de rutas separables: 1) la ruta
endógena y 2) las rutas de entrada de colesterol exógeno. Ambos
conjuntos de rutas se modulan mediante la proteína lipasa ácida
lisosómica (LAL) [1]. En la primera, la célula percibe la necesidad
de síntesis de colesterol endógeno mediante la liberación de los
factores de transcripción proteínas de unión a elemento regulador de
esterol (SREBP1 y 2), cuyos precursores se unen a la membrana
nuclear y al retículo endoplasmático. Las SREBP regulan
positivamente la HMG-CoA reductasa y otras enzimas
en las rutas de síntesis endógena [2-5]. Esta
regulación positiva deriva del mecanismo de realimentación
bioquímica de la célula que percibe un bajo nivel de colesterol
libre en los medios y/o plasma circundantes que deriva de la ruta de
endocitosis mediada por receptor; concretamente, la ruta exógena
[6]. Los receptores de lipoproteína de baja densidad (LDLR) y otros
receptores de membrana plasmática participan en este proceso de
captación. Estos lípidos suministrados por LDLR y asociados a otras
lipoproteínas se presentan al lisosoma para degradación por LAL. Una
vez se percibe un suministro de colesterol exógeno deficiente,
SREBP1 y 2 estimulan la transcripción de una cascada de enzimas que
conducen a la producción de colesterol intracelular libre y ácidos
grasos [7-10]. La célula percibe entonces la
suficiencia de los niveles de colesterol libre y, una vez
superados, se activa directamente la ACAT (acil CoA: colesterol
aciltransferasa) mediante el colesterol libre y se regula
positivamente la síntesis de ACAT. El efecto neto es retirar el
colesterol libre mediante esterificación a un conjunto de
almacenamiento citoplasmático de ésteres de colesterilo que no está
contenido en membranas, concretamente no lisosómico, y para retirar
el colesterol libre y los ésteres de colesterilo de las células.
Una vez la célula percibe que está disponible suficiente colesterol
libre, se mantiene un conjunto en estado estacionario de colesterol
libre [11].
Tanto SREBP1 como 2 son factores de
transcripción que se unen a elementos reguladores de esterol (SRE)
en las regiones promotoras de genes clave en la síntesis de
colesterol y ácido graso. Las SREBP se activan mediante un proceso
proteolítico en dos etapas que está mediado por proteasas que se
activan mediante elementos sensores de colesterol libre en la
membrana plasmática y, potencialmente, otros componentes de la
célula [12, 13]. Estas proteasas escinden las SREBP residentes en
el retículo endoplasmático (RE) y liberan sus componentes activos,
que se transportan entonces al núcleo. La SREBP2 tiene un solo
transcrito, mientras que el gen SREBP-1 produce dos
transcritos y proteínas, SREBP-1a y
SREBP-1c. Estas formas alternativas de SREBP1 surgen
del uso de sitios de inicio de la transcripción residentes en
primeros exones alternativos, que se cortan y empalman entonces en
un segundo exón común. En seres humanos, los ARNm de
SREBP-1a/-1c exhiben también corte y empalme
alternativos en el extremo 3' que conduce a proteínas que difieren
en 113 aminoácidos en el extremo C [14, 15]. Los tres miembros de
SREBP comparten los mismos dominios estructurales, indicando su
función común [16]. Estos dominios incluyen: 1) el segmento
NH_{2}-terminal de 480 aminoácidos es un activador
de la transcripción básico "similar" a
hélice-bucle-hélice-cremallera
de leucina, 2) el segmento medio de 80 aminoácidos comprende dos
secuencias que se extienden por la membrana y 3) la mitad
carboxi-terminal de 590 aminoácidos que funciona
como dominio regulador [17].
Existen al menos dos rutas para la entrada de
colesterol externo en células derivadas de monocitos/macrófagos
[18]: 1) los sistemas de proteína ldlr y relacionado con
ldlr [19]; y 2) el sistema receptor secuestrante (por
ejemplo, SRA, SR-B y CD36) para ésteres de
colesterilo (CE) unidos a lipoproteína [20-24]. La
ruta SR-B1 suministra ésteres de colesterilo a la
célula
\hbox{mediante transferencia de ésteres de colesterilo mediante SR-B1 sin captación de HDL [25, 26].}
En la ruta de LDL-CE (éster de
colesterilo) o LDL-TG (triglicérido), se captan los
complejos en células después de reconocimiento mediado por
receptor. La ruta endosómica suministra estos lípidos a los
liposomas después de desacoplar los complejos de
LDL-lípido del receptor en el compartimento
endosómico tardío acidificado. Una vez se suministra la partícula
de LDL-lípido al lisosoma, se liberan los lípidos,
posiblemente después de degradación de la partícula de LDL,
mediante proteólisis o mediante ataque simultáneo por proteólisis y
por LAL [27]. Este colesterol libre derivado se transporta entonces
fuera del lisosoma al citosol mediante una o más proteínas
residentes en o sobre la membrana lisosómica. Una vez sale del
lisosoma, el colesterol libre se mueve a la superficie interna de
la membrana plasmática y directamente al retículo endoplasmático.
Se transporta entonces el colesterol libre desde la superficie
interna de la membrana plasmática al retículo endoplasmático y
participa en el control de realimentación de la ruta sintética
endógena. Por tanto, a partir de esta visión general simplificada
del metabolismo de colesterol y triglicéridos en células, resulta
claro que la LAL ocupa una posición clave en el control de la
síntesis de colesterol endógeno puesto que, sin su actividad, no
pueden liberarse del lisosoma ni colesterol libre ni ácidos grasos
libres (FFA) derivados de la ruta de LDL para controlar estas rutas
críticas.
La importancia de la LAL en el metabolismo de
colesterol y triglicéridos está subrayada por los fenotipos humanos
resultantes de deficiencias hereditarias de LAL. Estas dos raras
enfermedades, enfermedad de Wolman y enfermedad de almacenamiento
de éster de colesterilo, son enfermedades de inicio temprano y
tardío, respectivamente [28]. La enfermedad de Wolman da como
resultado una acumulación masiva de ésteres de colesterilo y
triglicéridos en los lisosomas de una variedad de tejidos y
células, incluyendo aquellos del hígado (hepatocitos y células de
Kupffer), bazo, glándula suprarrenal y epitelio del intestino
delgado. Esto conduce a un fenotipo grave caracterizado por
hepatoesplenomegalia, calcificación suprarrenal y un intestino
delgado engrosado y dilatado. En comparación, la enfermedad de
almacenamiento de éster de colesterilo es una enfermedad mucho más
heterogénea con inicio en la niñez temprana y la adolescencia
tardía, e incluso la madurez, con hepatomegalia aislada y/o
cirrosis progresiva y principalmente almacenamiento de ésteres de
colesterilo.
El inventor ha descubierto que una evidencia
circunstancial adicional ha implicado bajas actividades de LAL en
monocitos y/o placas de pacientes con aterosclerosis o ateromas de
arteria carótida. Esta evidencia indica que variantes polimórficas
podrían conducir a una actividad diferencial de LAL en diversos
tejidos y pueden predisponer a, o ser un factor de riesgo adicional
en, el desarrollo de enfermedad aterosclerótica en seres humanos
[29]. Según esta invención, esto sugiere que el suplemento de
actividad LAL en células de implicación patológica en
aterosclerosis/arteriosclerosis puede proporcionar un medio para
disminuir los ésteres de colesterilo y triglicéridos acumulados
patológicos que están relacionados causalmente con estas
enfermedades.
Escary y col., Arterioscler. Thromb. Vasc.
Biol. (1998), 18(6), 991-998 dan a
conocer que, en la aterosclerosis, los macrófagos acumulan una gran
cantidad de ésteres de colesterilo (CE) formando las células
espumosas, que inician y participan activamente en la formación de
lesiones. La prevención o reversión de la acumulación de CE en
células espumosas de macrófagos podría dar como resultado la
protección de múltiples efectos patológicos. Se muestra que la
hidrólisis de CE catalizada por éster de colesterol hidrolasa neutra
puede modularse mediante la sobreexpresión de lipasa sensible a
hormona (HSL) en células espumosas de macrófago. En macrófagos de
murino transfectados con un vector de plásmido que codifica HSL, la
sobreexpresión de HSL estimulaba la hidrólisis neta de CE,
conduciendo a una hidrólisis más rápida de los depósitos lipídicos.
Se sugiere que la sobreexpresión de HSL en macrófagos, sola o en
combinación con inhibidores de ACAT, constituiría un enfoque
terapéutico útil. Sin embargo, nCEH y LAL no son la misma proteína:
LAL tiene 378 aminoácidos y está localizada en lisosomas, mientras
que nCEH tiene 593 aminoácidos y está localizada en el
citoplasma.
Sheriffet y col., J. Biol. Chem., 270,
1995, 27766-27772 estudian el papel y actividad de
la lipasa ácida lisosómica (LAL). Se dice que la LAL es esencial
para la hidrólisis de CE y triglicéridos que se suministran a
lisosomas mediante el sistema receptor de LDL. La deficiencia de LAL
está asociada a la enfermedad de almacenamiento de éster de
colesterilo (EAEC) y enfermedad de Wolman (EW). La mutagénesis
dirigida a sitio mostró que la Ser_{153} era importante para
retener la actividad catalítica. Por otro lado, la
N-glucosilación no es necesaria para la actividad
catalítica de la LAL, pero probablemente desempeña un papel en el
plegamiento inicial de la proteína.
Du Hong y col., Am. J. Human Genet., 57,
1995, A178 dan a conocer también que defectos genéticos con
mutaciones en LAL humana (hLAL) dan como resultado EAEC o EW. Se
clonaron dos formas polimórficas de hLAL que tenían un nivel de
actividad diferente. El polimorfismo se localizó en las posiciones 6
(Pro a Thr) y 2 (Gly a Arg).
En Du Hong y col., Human Molecular
Genetics, 7, 1998, 1357-1364, se afirma también
que la LAL es esencial para la hidrólisis de triglicéridos y
ésteres de colesterol en lisosomas, y que la deficiencia de LAL
produce dos fenotipos, EAEC y EW. Se prepararon ratones
homocigóticos deficientes (lal-/lal-) que no producían LAL. En
estos ratones, la acumulación masiva de triglicéridos y CE ocurre en
varios órganos. Estos ratones son útiles para estudiar el papel de
la LAL en el metabolismo y patogénesis de sus estados de deficiencia
(véase el resumen). Se menciona también que la LAL es una
glucoproteína de 378 aminoácidos que se transfiere al lisosoma
mediante el sistema receptor de 6-fosfato de
manosa.
Reader y col., FASEB J., 10, 1996, A233
dan a conocer la transfección de células HeLa y fibroblastos de
Wolman con un vector adenovírico que expresa hLAL. Este virus
recombinante puede ser útil en el estudio del papel de LAL en el
metabolismo lipídico celular mediante estudios de transferencia
génica en animales.
En la base de datos EMBL, número de acceso
X76448.1, NCBI locus CAA54026, se da a conocer la secuencia
aminoacídica de LAL humana, con relación a un artículo de revista
de Ameis D. (de fecha 1994) que describe la purificación y
caracterización de LAL humana.
Como se describe en la presente memoria, la
presente invención comprende el uso de una proteína o polipéptido
hidrolizante de lípidos o mezclas de los mismos según la
reivindicación 1 para disminuir y/o eliminar placas
ateroscleróticas en mamíferos, mediante tratamiento directo e
indirecto de estas placas, in situ, usando proteínas y/o
polipéptidos. Estas proteínas y/o polipéptidos son capaces de
retirada de lípidos, principalmente por hidrólisis, mediante un
proceso catalítico o estequiométrico, estando orientada la proteína
o polipéptido hidrolizante de lípidos a receptores en y/o sobre la
célula que conducen a la captación en el lisosoma. Los sitios
receptores se seleccionan del grupo constituido por receptores de
reconocimiento de oligosacáridos y receptores de reconocimiento de
secuencia peptídica.
Generalmente, las composiciones usadas para la
práctica de esta invención incluyen proteínas o polipéptidos
hidrolizantes de lípidos y, en particular, la proteína lipasa ácida
lisosómica (LAL) según la reivindicación 10. Sin embargo, pueden
usarse también otras proteínas o polipéptidos hidrolizantes de
lípidos, tales como proteínas que muestran al menos un 85% de
homología de secuencia con la lipasa ácida lisosómica. Otras
proteínas incluyen variantes polimórficas de lipasa ácida
lisosómica con sustitución del aminoácido Pro(-6) por Thr y de Gly2
por Arg, y también polipéptidos que muestran una actividad biológica
similar a la lipasa ácida lisosómica.
Las proteínas o polipéptidos hidrolizantes de
lípidos producidos exógenamente, contenidos en un portador
farmacéuticamente aceptable, pueden administrarse por vía oral,
parenteral, mediante inyección, infusión intravenosa, inhalación,
liberación de dosificación controlada o mediante administración
peritoneal para disminuir y/o eliminar placas ateroscleróticas. El
procedimiento preferido de administración es mediante infusión
intravenosa.
Las proteínas y/o polipéptidos hidrolizantes de
lípidos producidos endógenamente pueden usarse también para
disminuir y/o eliminar placas ateroscleróticas. Generalmente, dicho
procedimiento implica proporcionar una proteína o polipéptido
humano biológicamente activo hidrolizante de lípidos, tal como
lipasa ácida lisosómica humana, a células de un individuo que tiene
una deficiencia de proteína(s) o polipéptido(s)
humanos biológicamente activos hidrolizantes de lípidos. Esto se
consigue mediante el uso de un vector que comprende y expresa una
secuencia de ADN que codifica proteína o polipéptido humano
biológicamente activo hidrolizante de lípidos para la fabricación
de un medicamento para administración in vivo en células
competentes para la producción de proteína o polipéptido
biológicamente activo hidrolizante de lípidos según la
reivindicación 15. El vector usado puede ser un vector vírico,
incluyendo pero sin limitación un lentivirus, adenovirus, virus
adenoasociado y vectores similares a virus, un plásmido, o una
vesícula lipídica. El vector se capta por las células competentes
para la producción de proteína o polipéptido humano biológicamente
activo hidrolizante de lípidos. Se expresa la secuencia de ADN y se
produce la proteína o polipéptido humano biológicamente activo
hidrolizante de lípidos. Adicionalmente, las células que albergan
este vector secretarán esta proteína o polipéptido biológicamente
activo hidrolizante de lípidos, que se capta entonces posteriormente
por las otras células deficientes en la proteína o polipéptido
hidrolizante de lípidos.
Otras proteínas y/o polipéptidos que pueden
usarse para el tratamiento endógeno de placas arteroscleróticas
incluyen proteínas biológicamente activas que tienen al menos un 85%
de homología de secuencia con la lipasa ácida lisosómica, proteínas
variantes polimórficas de la lipasa ácida lisosómica con sustitución
del aminoácido Pro(-6) por Thr y Gly2 por Arg y polipéptidos que
muestran una actividad biológica similar a la lipasa ácida
lisosómica.
Figura 1: Esquema de una célula de mamífero para
ilustrar las rutas de incorporación de colesterol y ácido graso al
metabolismo celular. Se ilustran dos rutas: 1) la síntesis endógena
de colesterol y ácidos grasos controlada por los sistemas SREBP1 y
2 que percibe el nivel de colesterol celular extralisosómico
modulado por la escisión de LAL de ésteres de colesterilo y
triglicéridos en los lisosomas; 2) la ruta exógena mediante la cual
los ésteres de colesterilo y triglicéridos entran en la célula
mediante endocitosis mediada por receptor (mostrada como
LDL-CE como ejemplo) para suministro a los lisosomas
dentro de las células. El receptor de LDL y varios otros receptores
secuestrantes participan en esta ruta. La LAL controla la salida de
colesterol y ácidos grasos de los lisosomas, que entran en la
célula mediante esta ruta. La liberación de colesterol libre y/o
ácidos grasos mediante LAL u otros de dichos compuestos terapéuticos
conduce al efecto directo de reducir la síntesis de colesterol y
FFA en la célula mediante los sistemas sensores SREBP. Pueden
alcanzarse reducciones del colesterol y/o FFA celulares mediante
este efecto directo y/o mediante la eliminación del colesterol
libre y/o FFA de la célula mediante el transporte de colesterol a
través de la membrana plasmática y fuera de la célula.
Las abreviaturas de los componentes celulares
son las siguientes: MP= membrana plasmática, RE= retículo
endoplasmático, TGN= red trans-Golgi, MVB= cuerpo
multivesicular, EN=endosoma, FC= colesterol libre, FFA= ácido graso
libre, CYTO CE= éster de colesterilo (CE) no lisosómico
reesterificado o esterificado, NPC1= sitio del defecto C1 de
Niemann-Pick, LAL= lipasa ácida lisosómica.
Figura 2: Macropatología típica de ratones
lal-/- no tratados con LAL (LC2) y tratados (LA2 y LA4):
[Parte superior] Vistas ventrales que muestran el hígado infiltrado
con grasa amarilla en un ratón lal-/- no tratado (LC2)
típico. En ratones lal-/- tratados (LA2 y LA4), los hígados
tenían esencialmente un color normal. [Parte media] Apariencia
macroscópica de hígado (parte superior), bazo (parte media) y riñón
(parte inferior) de ratones LC2, LA4 y LA2. El bazo de ratón no
tratado es más claro que los bazos de ratones tratados. [Parte
inferior] Apariencia macroscópica del intestino delgado de ratones
no tratados LC2 y tratados LA4 y LA2. El intestino delgado de ratón
no tratado (LC2) da una apariencia más clara, indicando la formación
de colesterol y triglicéridos. Esto está en contraposición con los
intestinos más oscuros mostrados para los ratones tratados (LA4 y
LA2).
Figura 3: Microscopía óptica de hígado, bazo e
intestino delgado ratones lal-/- no tratados con LAL (LC2) y
tratados (LA2). Secciones teñidas con H & E del hígado (3A y
3B), y bazo (3E y 3F). Secciones teñidas congeladas de hígado (3C y
3D). A, C, E (izquierda) son de ratones lal-/- no tratados.
B, D y F (derecha) son de ratones tratados con LAL. Los ratones
tratados tenían números sustancialmente disminuidos de células de
almacenamiento de macrófagos en comparación con los de ratones no
tratados. La tinción indica grandes acumulaciones de grasa neutra
en hígados de ratones no tratados y su gran reducción a casi
ausencia en hígado.
Figura 4: Secciones representativas de la
válvula aórtica de ratones ldlr-/- con o sin tratamiento con
LAL teñidas con H & E. (A y B) Vetas grasas ricas en células
espumosas típicas en ratones ldlr-/- de 3,5 meses de edad en
HFCD durante 2 meses. El asterisco indica una zona necrótica cercana
a la capa media desestabilizada. La flecha apunta a
hendiduras/cristales de colesterol. La flecha de la derecha
(hendiduras/cristales de colesterol) muestra una arteria coronaria
cerca del ostio. (C) Células espumosas reducidas en las vetas grasas
de la válvula aórtica de ratones tratados con LAL. Esto era de los
ratones tratados con LAL más implicados. (D) Un ejemplo típico
(3/5) de válvulas aórticas normales de ratones tratados con LAL.
Los términos "aminoácido" o "secuencia
aminoacídica", como se usan en la presente memoria, designan un
oligopéptido, péptido, polipéptido o secuencia proteica, o un
fragmento de cualquiera de estos, y moléculas de origen natural o
sintético. Cuando se indica "secuencia aminoacídica" en la
presente memoria para designar una secuencia aminoacídica de una
molécula proteica de origen natural, no se pretende que "secuencia
aminoacídica" y términos similares limiten la secuencia
aminoacídica a la secuencia aminoacídica nativa completa asociada a
la molécula de proteína indicada.
Como se usa en la presenta memoria, el término
"proteínas o polipéptidos exógenos hidrolizantes de lípidos"
designa aquellos producidos o fabricados fuera del cuerpo y
administrados al cuerpo; el término "proteínas o polipéptidos
endógenos hidrolizantes de lípidos" designa aquellos producidos o
fabricados dentro del cuerpo mediante algún tipo de dispositivo
(biológico u otro) para suministro en o a otros órganos del
cuerpo.
Como se usa en la presenta memoria, el término
"biológicamente activo" designa una proteína que tiene
funciones estructurales, reguladoras o bioquímicas de una molécula
de origen natural.
El término "derivado", como se usa en la
presente memoria, designa la modificación química de una secuencia
polipeptídica o una secuencia polinucleotídica. Las modificaciones
químicas de una secuencia polinucleotídica pueden incluir, por
ejemplo, el reemplazo de hidrógeno por un grupo alquilo, acilo o
amino. Un derivado de polinucleótido codifica un polipéptido que
retiene al menos una función biológica de la molécula natural. Un
derivado de polipéptido es aquel modificado, por ejemplo mediante
glucosilación, o cualquier otro proceso que retiene al menos una
función biológica del polipéptido del que derivaba.
Las palabras "inserción" o "adición",
como se usan en la presente memoria, designan cambios en una
secuencia aminoacídica o nucleotídica que dan como resultado la
adición de uno o más residuos aminoacídicos o nucleótidos,
respectivamente, a la secuencia encontrada en la molécula de origen
natural.
Las frases "ácido nucleico" o "secuencia
de ácido nucleico", como se usan en la presente memoria, designan
un nucleótido, oligonucleótido, polinucleótido o cualquier
fragmento del mismo. Estas frases designan también ADN o ARN de
origen genómico o sintético que puede ser monocatenario o
bicatenario, y pueden representar la cadena con sentido o
antisentido, o cualquier material similar a ADN o similar a ARN. En
este contexto, "fragmentos" designa aquellas secuencias de
ácido nucleico que, cuando se traducen, producirían polipéptidos que
retienen alguna característica funcional, por ejemplo, actividad
lipasa, o característica de dominio estructural, del polipéptido
completo.
Las frases "identidad porcentual" u
"homología porcentual" designan el porcentaje de similitud de
secuencia encontrada en homólogos de una secuencia aminoacídica o
de ácido nucleico particular cuando se comparan dos o más de las
secuencias aminoacídicas o de ácido nucleico.
El término "aterosclerosis" designa los
procesos patológicos que conducen a una acumulación anormal de
colesterol y ésteres de colesterilo y lípidos relacionados en
macrófagos, células de músculo liso y otros tipos de células, que
conducen al estrechamiento y/u oclusión de una o varias arterias y
arteriolas del cuerpo y órganos corporales, incluyendo pero sin
limitación las arterias coronarias, aorta, arterias renales,
arterias carótidas y arterias que suministran sangre a los miembros
y al sistema nervioso central. Las reacciones inflamatorias
asociadas y mediadoras de este proceso patológico se incluyen
también en esta definición.
El término "placa aterosclerótica" designa
la formación de colesterol y triglicéridos debido a la
aterosclerosis.
Las consecuencias de la aterosclerosis son una
causa principal de mortalidad y morbilidad. Los macrófagos que
acumulan ésteres de colesterilo son conocidos por ser un componente
importante contribuyente a la formación de placas ateroscleróticas
en arterias coronarias así como arterias carótidas, la aorta y otros
vasos periféricos por todo el cuerpo. Estos ésteres de colesterilo
derivan de la circulación, donde se portan en lipoproteínas. Los
ésteres de colesterilo entran en las células mediante los receptores
de lipoproteína de baja densidad (LDL-R) y otros
receptores secuestrantes de partículas de lipoproteína de baja
densidad (LDL) oxidada. Una vez internalizadas, se suministran
estas partículas y sus ésteres de colesterilo unidos al lisosoma
para escisión a colesterol por la lipasa ácida lisosómica
(LAL).
Los enfoques terapéuticos actuales para tratar
la aterosclerosis incluyen tratamiento dietético (dietas bajas en
colesterol) y ejercicio, inhibidores de la síntesis de colesterol y
cirugía de derivación arterial coronaria. Sin embargo, la
insatisfacción con el éxito de estas intervenciones proporciona el
empuje para el desarrollo continuado de terapias
nuevas/alternativas/auxiliares para este importante grupo de
enfermedades.
Existen dos procedimientos principales empleados
para el tratamiento de la aterosclerosis y la disolución de la
placa aterosclerótica. El primer procedimiento de tratamiento es la
cirugía de derivación coronaria. Este procedimiento se usa para
tratar pacientes con angina establecida, inestable y/o angina
progresiva. El segundo procedimiento de tratamiento es la
inhibición química de la síntesis de colesterol hepático usando la
clase de medicamentos denominada "estatinas". Este enfoque
inhibe la síntesis de colesterol inhibiendo la acción de la enzima
limitante de la velocidad, HMG-CoA reductasa, en la
ruta sintética del colesterol. La cirugía de derivación arterial
coronaria es eficaz para disminuir los ataques de angina de
pacientes seleccionados y se ha mostrado que las estatinas reducen
exitosamente el colesterol plasmático y disminuyen la tendencia a
desarrollar placas ateroscleróticas. Sin embargo, ningún enfoque
ofrece el potencial para la disolución directa de las placas
ateroscleróticas existentes.
La LAL representa la ruta bioquímica principal
de entrada de éster de colesterilo en el cuerpo, y se usa
posteriormente para modular la biosíntesis de colesterol celular.
Una vez la LAL libera el colesterol de los ésteres de colesterilo,
el colesterol libre sale del lisosoma y conduce a la regulación
negativa de la síntesis de colesterol mediada por la proteína de
unión de elemento regulador de esterol (SREBP). La acumulación de
ésteres de colesterilo dentro de los macrófagos de placas
ateroscleróticas ocurre en presencia de cantidades normales de LAL.
Este hecho indica que el suministro de ésteres de colesterilo a
estas células supera la capacidad de las cantidades normales de LAL
de catabolizar los ésteres de colesterilo suministrados que inician
el desarrollo de placas ateroscleróticas. Este proceso
desestabiliza el metabolismo celular normal para la regulación de la
síntesis de colesterol celular endógeno y conduce a cantidades en
exceso de síntesis de colesterol y éster de colesterilo celular por
la falta de regulación negativa del sistema mediado por SREBP de
síntesis de colesterol y la ruta de acil CoA: colesterol
aciltransferasa (ACAT) para la síntesis de éster de colesterilo
intracelular [30].
Ocurren eventos similares en el hígado, que es
el órgano principal del cuerpo responsable de la biosíntesis de
colesterol y del mantenimiento de la homeostasis de colesterol. El
suministro de LAL a hepatocitos en exceso de las cantidades
normales potencia la salida de colesterol libre del lisosoma
(concretamente, aumenta el flujo de ésteres de colesterilo a través
del sistema lisosómico), que es una ruta importante para el
metabolismo de dichos lípidos suministrados a hepatocitos por la
circulación portal y la dieta. El resultado es un aumento del
colesterol liberado de lisosomas, que posteriormente modula
negativamente la síntesis de colesterol hepático y su suministro al
cuerpo. Esto disminuye la carga de colesterol y ésteres de
colesterilo a los sitios periféricos, reduciendo así el potencial
aterogénico.
El uso de una proteína o polipéptido adecuado,
tal como LAL o un homólogo de LAL que posea una actividad biológica
similar, ofrece un medio de terapia alternativo para aterosclerosis
así como enfermedad vascular periférica. La LAL funciona evitando
la progresión o promoviendo la regresión de las lesiones de placa
aterosclerótica mediante dos mecanismos: 1) entrando directamente
en las células espumosas de lesión y disolviendo enzimáticamente
los ésteres de colesterilo almacenados así como los tri-, di- y
monoacilglicéridos; y 2) indirectamente promoviendo la salida
lisosómica de colesterol libre y ácidos grasos libres que podrían
modular la síntesis lipídica celular (hepática, macrófaga y otras)
mediada por SREBP u otras rutas. Los pacientes que padecen
aterosclerosis tienen la tendencia a tener niveles reducidos de LAL
en las placas ateromatosas.
La LAL, un miembro de la familia de las lipasas,
es una glucoproteína de 372 aminoácidos que se transfiere al
lisosoma mediante el sistema receptor de manosa
[31-33]. La secuencia de ADNc que codifica LAL se ha
reseñado anteriormente [34]. Esta glucoproteína tiene seis
secuencias consenso de glucosilación
(Asn-X-Ser-/Thr) y tres en
Asn^{15}, Asn^{80} y Asn^{252} están conservadas entre los
miembros de la familia génica lipasa. Todos los miembros de la
familia génica lipasa tienen secuencias pentapeptídicas GXSXG
conservadas que contienen los nucleófilos de serina de sitio activo
[35-37]. La LAL tiene dos de dichas secuencias en
los residuos 97-101 y 151-155, con
nucleófilos de serina potenciales en los residuos 99 y 153, donde un
nucleófilo clave reside en el residuo Ser 153. La LAL escinde
ésteres de colesterilo y triglicéridos in vitro usando
sistemas de fosfolípido/detergentes. La Ser^{53} se ha definido
como una parte de la triada catalítica
Asp-Ser-His común a muchas
lipasas.
Las sustancias hidrolizantes lipídicas adecuadas
para uso en esta invención incluyen, pero sin limitación,
glucoproteínas tales como LAL, homólogos de LAL, en los que los
homólogos poseen al menos un 85% de homología de secuencia, debido
a la degeneración del código genético que codifica LAL, polipéptidos
que poseen una actividad biológica similar a LAL y sustancias
derivadas no peptídicas. Se incluyen también proteínas y
polipéptidos hidrolizantes de lípidos que contienen la triada de
lipasa catalítica Asp-Ser-His, donde
la Ser es un residuo Ser^{153}. Las sustancias adicionales
incluyen variantes polimórficas de LAL en las que dos de los
aminoácidos se reemplazan por aminoácidos diferentes. Se prepara un
ejemplo de dichas variantes polimórficas clonando LAL de una
colección de ADNc hepático humano normal y cambiando dos nucleótidos
(C86 a A y G107 a A), lo que da como resultado la sustitución del
aminoácido Pro(-6) por Thr y de Gly2 por Arg en LAL, proporcionando
cuatro variantes polimórficas diferentes de LAL. Las secuencias
aminoacídicas adicionales incluyen aquellas capaces de hidrólisis
lipídica, catalítica o estequiométrica, en las que el residuo 153 de
la cadena aminoacídica es un residuo de serina.
Las proteínas derivadas de LAL adicionales
incluyen aquellas proteínas que tienen la secuencia LAL nativa,
pero que tienen más de seis residuos de acetilglucosilación ligados
a N o menos de seis residuos de acetilglucosilación ligados a N.
Cada sitio de glucosilación tiene dos residuos de acetilglucosamina
ligados a N que son oligosacáridos terminales, siendo
preferiblemente el residuo terminal de oligosacárido un residuo de
\alpha-manosa y habiendo al menos tres residuos
terminales de oligosacárido en cada sitio de glucosilación.
Para el tratamiento de la aterosclerosis, la
sustancia hidrolizante de lípidos se orienta a los receptores que
conducen a la captación en el lisosoma. Estos receptores incluyen,
pero sin limitación, las categorías de receptores de reconocimiento
de oligosacárido, que incluye un receptor de manosa, el receptor de
6-fosfato de manosa y la categoría de receptores de
reconocimiento de secuencia peptídica, que incluye los receptores
CD 36 y LDL.
La LAL podría usarse junto con estatinas para
reducir el nivel de placas ateroscleróticas. Adicionalmente, la LAL
podría usarse también junto con cirugía de derivación para algunos
pacientes que desarrollan reestenosis y/o para prevenir el
resurgimiento de placas después de la cirugía. Además, el
tratamiento con agentes terapéuticos tales como LAL puede efectuar
mejoras en las arterias y/o arteriolas a las que no puede accederse
mediante cirugía u otros de dichos enfoques invasivos. Las ventajas
adicionales del tratamiento con LAL pueden incluir la eliminación
de la necesidad de cirugía en algunos pacientes y suministrar un
producto natural a pacientes sin los efectos secundarios
acompañantes o potenciales de los productos químicos sintéticos,
como es el caso para el enfoque de terapia con estatina.
La terapia con LAL puede usarse también para el
tratamiento de dos enfermedades humanas raras, enfermedad de Wolman
y enfermedad de almacenamiento de éster de colesterilo. Ambas
enfermedades son debidas a mutaciones en el locus LAL. La primera
conduce a la muerte en el primer año de vida y la segunda es una
enfermedad crónica con desarrollo de cirrosis del hígado en la vida
adulta. Ninguna de las enfermedades tiene actualmente disponibles
regímenes terapéuticos.
Los papeles terapéuticos potenciales adicionales
para el tratamiento con LAL incluyen su uso en el tratamiento de
esteatosis hepática en el embarazo, infiltración grasa inespecífica
del hígado, enfermedad aterosclerótica periférica debido a
enfermedades secundarias tales como diabetes mellitus, estenosis de
carótida debida a aterosclerosis y estados patológicos
similares.
La proteína o polipéptido hidrolizante de
lípidos puede usarse terapéuticamente como material exógeno o como
material endógeno. Las proteínas o polipéptidos exógenos
hidrolizantes de lípidos son aquellos producidos o fabricados fuera
del cuerpo y administrados al cuerpo. Las proteínas o polipéptidos
endógenos hidrolizantes de lípidos son aquellos producidos o
fabricados dentro del cuerpo mediante algún medio (biológico u otro)
para suministro en o a otros órganos del cuerpo. La LAL está
presente en el tejido corporal. Los pacientes que padecen
aterosclerosis tienen la tendencia a tener niveles reducidos de LAL
en las placas ateromatosas. Para conseguir dichos resultados
deseados para el tratamiento tanto directo como indirecto de las
placas, la proteína o polipéptido hidrolizante de lípidos se
orienta a órganos específicos mediante receptores específicos. Por
ejemplo, la LAL puede orientarse a sistemas de receptor de manosa, u
otros receptores específicos de oligosacárido, y entra en
macrófagos, células de músculo liso, células endoteliales y
hepatocitos.
Un tratamiento indirecto de placas implica
suministrar LAL a los órganos principales de la biosíntesis del
colesterol, principalmente el hígado. Esto conduce a un mayor
rendimiento lisosómico neto total de ésteres de colesterilo y al
suministro de colesterol libre al citoplasma, donde se reduciría la
síntesis de colesterol global. Da también como resultado una
reducción del suministro endógeno de colesterol desde el hígado a
órganos periféricos, concretamente macrófagos en placas
desarrolladas o en desarrollo.
Los principios de la terapia génica para la
producción de productos terapéuticos en el cuerpo incluyen el uso
de vehículos de suministro (denominados vectores) que pueden ser
variantes víricas no patogénicas, vesículas lipídicas (liposomas),
carbohidratos y/u otros conjugados químicos de secuencias
nucleotídicas que codifican la proteína o sustancia terapéutica.
Estos vectores se introducen en las células del cuerpo mediante
captación física (inyección directa), química o mediada por
receptor celular. Una vez dentro de las células, puede hacerse que
las secuencias nucleotídicas produzcan la sustancia terapéutica en
entornos celulares (episómico) o nucleares (núcleo). Los episomas
producen habitualmente el producto deseado durante periodos
limitados, mientras que las secuencias nucleotídicas incorporadas
al núcleo pueden producir el producto terapéutico durante periodos
extensos, incluso permanentemente.
Dichos enfoques de terapia génica se usan para
producir productos terapéuticos para efectos beneficiosos locales
(concretamente, en la célula u órgano) o distantes. Ambos pueden
proporcionar disminuciones de los efectos patológicos y pueden
combinarse para producir terapia aditiva y/o sinérgica. Para
cualquier efecto, local o distante, pueden necesitarse secuencias
nucleotídicas naturales (denominadas normales) o alteradas (mutadas)
para potenciar los efectos beneficiosos. Esto último puede ser
necesario para el suministro orientado al tipo celular específico
implicado en la patología de la enfermedad. Para la aterosclerosis,
sería necesario el suministro distante a macrófagos (células
espumosas), células de músculo liso y otros diversos tipos celulares
en las lesiones patológicas, conocidas como ateromas. El suministro
subcelular a los lisosomas puede ser también necesario y puede
necesitarse también poner a disposición o producir variantes para
dicho enfoque.
Puede conseguirse un enfoque para el uso de
sustancias de retirada de lípidos, particularmente proteínas y
polipéptidos hidrolizantes de lípidos, para el tratamiento de
aterosclerosis y la retirada de placas ateroscleróticas mediante
los enfoques de terapia génica discutidos anteriormente. Dichos
enfoques proporcionan una fuente de proteína o polipéptido activo
humano biológicamente activo hidrolizante de lípidos para suministro
al cuerpo mediante sistemas biológicos u otros sistemas de
producción. Este procedimiento de introducción puede conseguirse
mediante fuentes internas o de producción (biológicas u otras,
vectores de terapia génica, liposomas, activación génica, etc.) que
conducen a la producción de proteínas y polipéptidos humanos
biológicamente activos hidrolizantes de lípidos por ciertas células
del cuerpo. La fuente puede proporcionar el suministro local o
distante, por ejemplo, mediante efectos directos en la célula o
mediante secreción fuera de las células para suministro a otras
células del cuerpo, como aquellas en placas ateromatosas. Esto
incluye, pero sin limitación, enfoques de terapia génica somática
que permitirían la síntesis y/o producción de otro modo de la
sustancia terapéutica en el cuerpo. En particular, secuencias
nucleotídicas que codifican las secuencias funcionales hidrolizantes
de lípidos de lipasa ácida lisosómica incorporadas a conjugados,
liposomas, vectores víricos (concretamente, lentivirus, adenovirus,
virus adenoasociados u otros virus o dichos vectores similares a
virus) para la expresión de las secuencias activas para efecto
terapéutico. Además, podrían hacerse producir, expresar o preparar
de otro modo el compuesto necesario en cantidades terapéuticas a
las secuencias nucleotídicas que comprenden los componentes
funcionales de interés biológico y terapéutico y que residen en las
células del cuerpo. La proteína o polipéptido terapéutico
hidrolizante de lípidos así producido en el cuerpo conduciría a la
reducción o eliminación de las placas ateromatosas u otras lesiones
de placas ateroscleróticas.
Las variantes y secuencias nucleotídicas
homólogas o codificadas de lipasa ácida lisosómica incorporadas para
la síntesis y/o producción de la proteína/péptido activo se
integran transitoria o permanentemente en células para la
producción terapéutica. Las secuencias de lipasa ácida lisosómica
normal, variantes polimórficas, mutada específicamente o modificada
pueden expresarse a partir del contexto de los vectores incorporados
a células para una función normal y/o modificada específicamente
para potenciar o promover de otro modo los efectos
terapéuticos
beneficiosos.
beneficiosos.
Dichas secuencias pueden conducir a la síntesis
in vivo de la lipasa ácida lisosómica humana biológicamente
activa deseada u otras proteínas terapéuticas dentro de células
después de la incorporación a células mediante diversas rutas como
se describe anteriormente. Una vez dentro de las células, la lipasa
ácida lisosómica humana biológicamente activa sintetizada u otra
proteína terapéutica hidroliza ésteres de colesterilo y/o
triglicéridos en los lisosomas después de su suministro orientado.
La liberación de colesterol libre resultante de los lisosomas
conduce a la regulación negativa de la ruta sintética de colesterol
endógeno mediante los sistemas controlados por SREBP.
Adicionalmente, la lipasa ácida lisosómica humana u otras proteínas
o polipéptidos humanos terapéuticos producidos a partir de
secuencias nucleotídicas incorporadas se secretan de las células,
entran en el sistema circulatorio y se captan por células distantes
mediante endocitosis mediada por receptor u otros de dichos
sistemas de suministro lisosómico a los lisosomas de células
patológicamente implicadas de las placas ateromatosas. Dichas
placas incluyen, pero sin limitación, macrófagos y células de
músculo liso. La liberación lisosómica de colesterol libre dentro
de dichas células tiene al menos dos efectos beneficiosos sobre la
reducción y/o eliminación de la placa ateromatosa: 1) el colesterol
libre sale del lisosoma y participa en la regulación negativa
mediada por SRBEP de macrófago endógeno o síntesis de colesterol de
otro tipo celular, y 2) el colesterol libre sale del lisosoma y
sale de la célula mediante transporte de colesterol inverso. Ambos
efectos son beneficiosos para reducir la cantidad de ésteres de
colesterilo acumulados dentro de los lisosomas de macrófagos de
células espumosas y/u otras células de las lesiones
ateromatosas.
Los vectores génicos que contienen las
secuencias nucleotídicas necesarias u otros componentes necesarios
para expresión terapéutica se introducen en las células del cuerpo
mediante varias rutas como se describen anteriormente y también su
introducción directa en células de placa ateromatosa usando
suministro mediante dispositivo angiográfico.
La terapia endógena contempla también la
producción de una proteína o polipéptido en el que la célula se ha
transformado con una secuencia genética que activa el gen de origen
natural que codifica la proteína, concretamente técnicas de
activación génica endógena.
Un procedimiento para el tratamiento directo de
placas ateroscleróticas implica el suministro de LAL a placas y
macrófagos y a las células de músculo liso en las mismas, de modo
que se degradan y eliminan los ésteres de colesterilo y/o
triglicéridos que se almacenan o acumulan dentro de lisosomas de
estas células. Esto da como resultado posteriormente la liberación
de colesterol de los lisosomas y una disminución de la síntesis de
colesterol endógeno dentro de las células espumosas (macrófagos y
células de músculo liso). El efecto neto es reducir la cantidad de
colesterol que se acumula directamente en el sitio diana patológico
y disminuir el tamaño de las placas y otras de dichas lesiones
in situ.
Debe observarse que la orientación directa e
indirecta a las placas no son mutuamente excluyentes, y pueden ser
sinérgicas con efectos tanto locales como globales sobre la
homeostasis de colesterol y la disminución del potencial
aterogénico.
Las proteínas o polipéptidos hidrolizantes de
lípidos útiles en la presente invención para terapia exógena pueden
administrarse mediante cualquier medio adecuado. Un experto en la
técnica apreciará que están disponibles muchos procedimientos
adecuados de administración del compuesto a un hospedador en el
contexto de la presente invención, en particular un mamífero, y
que, aunque puede usarse más de una vía para administrar una
proteína o polipéptido particular, una vía de administración
particular puede proporcionar una reacción más inmediata y eficaz
que otra
vía.
vía.
Las formulaciones adecuadas para administración
por inhalación incluyen formulaciones de aerosol dispuestas en
propelentes aceptables a presión, tales como diclorodifluorometano,
propano, nitrógeno y similares. El agente activo puede
aerosolizarse con excipientes adecuados. Para administración por
inhalación, la composición puede disolverse o dispersarse en forma
líquida, tal como en agua o disolución salina, preferiblemente a una
concentración a la que la composición se solubilice completamente y
a la que pueda administrarse una dosis adecuada en un
volumen
inhalable.
inhalable.
Las formulaciones adecuadas para administración
oral incluyen (a) disoluciones líquidas, tales como una cantidad
eficaz del compuesto disuelta en diluyentes tales como agua o
disolución salina, (b) cápsulas, saquitos o comprimidos, que
contiene cada uno una cantidad predeterminada del ingrediente activo
en forma de sólidos o gránulos, (c) suspensiones en un líquido
apropiado y (d) emulsiones adecuadas. Las formas de comprimido
pueden incluir uno o más de lactosa, manitol, almidón de maíz,
almidón de patata, celulosa microcristalina, goma arábiga,
gelatina, dióxido de silicio coloidal, croscarmelosa de sodio,
talco, estearato de magnesio, ácido esteárico y otros excipientes,
colorantes, diluyentes, agentes de tamponación, agentes humectantes,
conservantes, agentes aromatizantes y portadores farmacológicamente
compatibles.
Las formulaciones adecuadas para infusión
intravenosa y administración intraperitoneal incluyen, por ejemplo,
disoluciones de inyección estériles isotónicas acuosas y no acuosas
que pueden contener antioxidantes, tampones, bacteriostatos y
solutos que vuelven la formulación isotónica con la sangre del
receptor pretendido, y suspensiones estériles acuosas y no acuosas
que pueden incluir agentes de suspensión, solubilizantes, agentes
espesantes, estabilizantes y conservantes. Las formulaciones pueden
presentarse en forma de dosis unitaria o envases sellados
multidosis, tales como ampollas y viales, y pueden almacenarse en
estado liofilizado que requiere sólo la adición de portadores
líquidos estériles, por ejemplo agua para inyecciones,
inmediatamente antes del uso. Las disoluciones y suspensiones de
inyección extemporánea pueden prepararse para polvos estériles,
gránulos y comprimidos del tipo descrito anteriormente.
La administración parenteral, si se usa, podría
ser también por inyección. Los inyectables pueden prepararse en
formas convencionales, como disoluciones líquidas o suspensiones,
formas sólidas adecuadas para disolución o suspensión en líquido
antes de la inyección, o como emulsiones. Un enfoque para
administración parenteral revisado más recientemente implica el uso
de un sistema de liberación lenta o sostenida, de tal modo que se
mantiene un nivel constante de dosificación. Véase, por ejemplo, la
patente de EE.UU. nº 3.710.795, Higuchi, expedida en 1973, que se
incorpora como referencia a la presente memoria.
La dosificación apropiada administrada en
cualquier caso dado variará, por supuesto, dependiendo de factores
conocidos tales como las características farmacodinámicas de la
proteína o polipéptido particular y de su modo y vía de
administración; la edad, estado general de salud, metabolismo, peso
del receptor y otros factores que influyen en la respuesta al
compuesto; la naturaleza y extensión de la aterosclerosis; el tipo
de tratamiento concurrente; la frecuencia de tratamiento y el
efecto deseado.
Un procedimiento preferido de tratamiento de
mamíferos que poseen placa aterosclerótica implica la introducción
de una proteína o polipéptido hidrolizante de lípidos adecuado
mediante infusión intravenosa de una cantidad segura y eficaz de
una proteína o polipéptido hidrolizante de lípidos para causar la
disminución y eliminación de la placa. Una cantidad segura y eficaz
de la proteína o polipéptido hidrolizante de lípidos se define como
una cantidad que causaría una disminución del nivel de placas
ateroscleróticas en un paciente minimizando los efectos secundarios
indeseados. Un médico experimentado experto en esta invención
tendría conocimientos de las relaciones de dosificación apropiadas.
El nivel de actividad de la proteína o polipéptido hidrolizante de
lípidos debe considerarse también para determinar el número de
unidades a administrar para conseguir el efecto deseado. Por tanto,
el nivel de actividad de la proteína o polipéptido hidrolizante de
lípidos debería ser suficiente para causar una reducción de las
placas ateroscleróticas dentro de una dosificación razonable
administrada.
Se diseñó este estudio para cohortes de edad
coincidente de ratones deficientes de lipasa ácida lisosómica,
lal-/-, o deficientes de receptor de lipoproteína de baja
densidad ldlr-/- en forma de un ensayo controlado abierto de
ratones tratados y no tratados. Se usó una sola dosis de LAL en
todos los ratones. Se sacrificaron todos los ratones después de 30
días de administración de LAL. Se administró LAL en forma de
inyección rápida i.v. por la vena de la cola cada tres días durante
30 días. Se dividieron las cohortes en grupos iguales para
inyecciones en días alternos. Se empezaron las inyecciones a los 2,0
ó 2,5 meses de edad para los ratones lal-/- o
ldlr-/-, respectivamente. Se presenta el diseño de estudio
global en la Tabla 1. Los ratones lal-/- recibieron una
dieta de pienso corriente a lo largo de todo el periodo de estudio.
La dosificación de LAL empezó a los 2 meses de edad. Se mantuvieron
los ratones ldlr-/- con una dieta de pienso corriente
durante 1,5 meses y después se dispusieron en una dieta rica en
colesterol (7,5% de grasa; 1,25% de colesterol). La dosificación de
LAL empezó después de que los ratones ldlr-/- hubieran estado
en la dieta rica en grasas/rica en colesterol durante 30 días,
concretamente, a los 2,5 meses de edad. Las dosis de LAL en los
grupos tratados fueron 1,48 U (21 \mug; 70 \mul) de LAL en
1\timesPBS con 2% de seroalbúmina humana y ditiotreitol 10 mM
(DTT). Los grupos de control recibieron 1\timesPBS con 2% de HSA y
DTT 10 mM. La cohorte final era la deficiencia combinada
lal-/-, ldlr-/-.
Los ratones consumieron ávidamente la dieta rica
en grasas/rica en colesterol y toleraron bien las inyecciones.
Todas las inyecciones (325) fueron exitosas con administración i.v.
obtenida para todas. Un ratón ldlr-/- murió justo antes de
iniciar las inyecciones. La alta mortalidad en los ratones
lal-/-, ldlr-/- era debida a infarto de intestino
delgado masivo posiblemente secundario al bloqueo de vasos por la
infiltración masiva de macrófagos de la submucosa y lámina propia.
Los datos de estos últimos homocigotos dobles no están incluidos
aquí.
Se obtuvieron muestras para determinaciones de
lípido plasmático y análisis de anticuerpo 32 días después de la
primera inyección. Se sacrificaron todos los ratones 48 h después de
la inyección de LAL final.
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\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Se controló la estabilidad de la actividad LAL a
4ºC cada 3-4 días durante 34 días. Las actividades
LAL permanecieron relativamente estables durante este periodo de
tiempo, aunque queda por realizar una estandarización rigurosa del
ensayo.
Animales. Se proporcionaron cuidados a
los ratones según las directrices institucionales y todos los
procedimientos recibieron aprobación previa por el IACUC de la
Children's Hospital Research Foundation, Cincinnati, Ohio. Los
ratones lal-/- se originaron a partir de fondos genéticos
mixtos de 129Sv y CF-1. Los ratones ldlr-/-
se adquirieron en Jackson Laboratory y eran cohortes de C57BL6/J. Se
albergaron los ratones en microaislamiento en ciclos de 12 h/12 h
de oscuridad/luz. Estaban disponibles agua y alimento, dietas de
pienso corriente o HFCD, a voluntad. Se genotiparon los ratones
mediante cribado de ADN de cola basado en PCR.
Análisis de lípidos plasmáticos. Se
recogió sangre de la vena cava inferior (VCI) de ratones después de
anestesiarlos con 200 \mul de sedante triple (ketamina,
acepromazina y xilazina). Se recogió el plasma después de la
filtración (5,000\timesg; 10 min; 4ºC) de la sangre y se almacenó
a -20ºC. Se determinó colorimétricamente el colesterol libre
plasmático total con un kit COD-PAP (Wako
Chemicals). Se determinaron los triglicéridos plasmáticos totales
en muestras de plasma con un kit de triglicéridos/GB (Boehringer
Mannheim). Se determinó el colesterol plasmático total usando un
kit de colesterol/HP (Boehringer Mannheim).
Análisis de lípidos de tejidos. Se
extrajeron los lípidos totales de hígado, bazo e intestino delgado
mediante el procedimiento de Folch (Folch, J., Lees, M. y
Sloane-Stanley, G. H. (1957) "A simple method for
the isolation and purification of total lipids from animal
tissue". J. Biol. Chem., 226, 497-505). Se
midieron las concentraciones de triglicéridos usando el análisis
químico desarrollado por Biggs. Brevemente, se evaporaron tanto
patrones como muestras en cloroformo a vacío. Se resuspendieron los
lípidos en los siguientes reactivos en orden: 0,5 ml de
isopropanol, 4,5 ml de H_{2}O: isopropanol: H_{2}SO_{4} 40 mM
(0,5:3,0:1,0) y 2,0 ml de heptano, y se mezclaron son agitación
vigorosa en cada etapa. Se dejaron los tubos hasta bifase (\sim5
minutos). Se añadieron 80 mg de florisil en un conjunto de tubos
nuevos, se transfirió 1,0 ml de la fase superior de cada muestra a
tubos que contenían florisil y se mezclaron por agitación. Se
transfirieron entonces 0,2 ml de esta fase superior a un nuevo
conjunto de tubos y se añadió alcóxido de sodio 28 mM (2,0 ml) y se
mezcló cuidadosamente. Se incubaron los tubos a 60ºC durante 5 min.
Se añadió metaperyodato de sodio (3 mM, 1 ml) a cada tubo y se
mezcló bien. Se dejaron oxidar los tubos durante 45 minutos.
Finalmente, se añadió 1,0 ml de acetilacetona 73 mM a cada tubo y
se incubaron a 60ºC durante 20 min. Se enfriaron los tubos a
temperatura ambiente (\sim25 min) y se leyeron a 410 nm en un
espectrofotómetro Beckman
DU640.
DU640.
Se midieron las concentraciones de colesterol en
tejido total usando O-ftalaldehído. Brevemente, se
evaporaron patrones de colesterol y muestras extraídas por Folch en
atmósfera de N_{2}. Se añadió O-ftalaldehído (3
ml, Sigma) a cada patrón de colesterol y se mezcló con muestra de
tejido. Se añadió lentamente ácido sulfúrico concentrado (1,5 ml),
se mezcló entonces durante 5-10 min y se leyó en un
espectrofotómetro Beckman DU640.
Análisis de transferencia Western y ensayo de
actividad LAL: Se realizaron inmunotransferencias con antisuero
anti-LAL como se describe. Se estimaron las
actividades de LAL con el sustrato fluorogénico oleato de
4-MU (4-MUO). Se realizaron todos
los ensayos por duplicado. Los ensayos eran lineales dentro del
marco temporal usado y se escindieron menos del 10% de los
sustratos.
Análisis histológicos. Se realizaron
exámenes de microscopía óptica de hígados, bazo, intestino,
glándulas suprarrenales, riñones, corazón, pulmón, timo, páncreas y
cerebro. Se tiñeron las secciones con hematoxilina/eosina
(embebidas en parafina) o aceite rojo O (ORO) (secciones congeladas)
para análisis de microscopio óptico.
Tinción inmunohistoquímica. Los análisis
inmunohistoquímicos fueron con secciones de hígado embebidas en
parafina y se realizaron con anticuerpo de conejo
anti-LAL. Se saturó la actividad peroxidasa endógena
mediante incubación en metanol que contenía 0,5% de H_{2}O_{2}
durante 10 min.
Se incubó el anticuerpo primario (1:200) a 40ºC
durante una noche. Se lavaron entonces las secciones con 1xPBS tres
veces (5 min por lavado), se incubaron con IgG conjugada con
fosfatasa alcalina como anticuerpo secundario durante 30 min a
temperatura ambiente y se lavaron con 1\timesPBS durante 5 min. Se
detectó la señal usando el kit VECTASTAIN ABC-AP
(Vector) y se contratiñó con rojo nuclear rápido.
Estudios de captación de LAL en cultivos de
macrófagos J774E y J774A.1: Se mantuvieron células J774E y
J774A.1 en medio DMEM con 6-tioguanina 60 \muM o
en medio DMEM suplementado, respectivamente, con suero de ternera
fetal al 10%, penicilina y estreptomicina (37ºC; 5% de CO_{2}).
Para los estudios de captación, se sembraron células a
2\times10^{5} por pocillo un día antes de añadir LAL o Ceredase.
En los momentos después de la incubación designados, se trataron
las células con 1\timesPBS dos veces, se recogieron con un
rascador de caucho y se centrifugaron (12.000 rpm, 1 min) a
temperatura ambiente. Se extrajeron las proteínas intracelulares
mediante lisis celular con 1% de taurocolato/1% de Triton
X-100, se congelaron/descongelaron cinco veces
(hielo seco y baño de agua a 37ºC) y se centrifugaron (12.000 rpm,
10 min.) a 4ºC. Se analizaron los extractos proteicos mediante
transferencia
Western.
Western.
Para tinción por inmunofluorescencia, se
sembraron células (1,5\times10^{5}) en un portaobjetos con
cámara, se incubaron con LAL durante 5, 18 ó 24 h, se lavaron dos
veces con PBS y se fijaron con paraformaldehído al 2% durante 1 h.
Se realizó la tinción por inmunofluorescencia.
a. Cambios fenotípicos y patológicos
macroscópicos (figura 2): En ratones lal-/-, el
tratamiento con LAL dio como resultado una corrección significativa
de los fenotipos de almacenamiento de lípidos en diversos órganos.
A los 3 meses de edad, los ratones lal-/- no tratados
desarrollaron un color amarillo/blanco cremoso en el hígado y
estaba presente una hepatoesplenomegalia significativa. En
comparación, los ratones tratados con LAL tenían hígados y bazos
con colores mucho más normales. Los hígados normales en controles
de edad coincidente eran aproximadamente un 5% del peso corporal,
mientras que los hígados eran un 14% en los ratones lal-/-
no tratados. La administración de LAL redujo éste en aproximadamente
un 30% (p=0,0029). Los pesos esplénicos eran similares en los
ratones lal-/- no tratados y tratados (p=0,5044). Sin
embargo, el color del bazo revirtió a casi normal en el grupo
tratado. El intestino delgado en los ratones lal-/- no
tratados era amarillo en el duodeno y blanco cremoso en el yeyuno.
En el grupo tratado, el intestino delgado revertía parcialmente a
un color normal.
b. Evaluación histológica: La tinción con
H & E o aceite rojo O de hígado, bazo e intestino delgado de
ratones no tratados y tratados mostró claras diferencias. En el
hígado, los ratones lal-/- tratados con LAL tenían
reducciones del tamaño y número de células de Kupffer rellenas de
lípido (véanse las Figuras 3A y B). Los hepatocitos tienen menos
almacenamiento lipídico que las células de Kupffer en ratones
lal-/- no tratados, y este almacenamiento de hepatocito
parece sin cambios en el grupo tratado. Usando tinción con aceite
rojo O para lípidos neutros, era evidente una diferencia
significativa entre los ratones tratados y no tratados (véanse las
Figuras 3C y D). En el bazo, el grupo tratado mostraba una reducción
de las células de almacenamiento lipídico en comparación con las
presentes en ratones no tratados. En el intestino delgado, la
tinción con aceite rojo O de ratones tratados con LAL y no tratados
mostró diferencias sustanciales. Las secciones de intestino de
ratones no tratados estaban llenas de células teñidas con aceite
rojo O (macrófagos) en lámina propia, mientras que las secciones
comparables de ratones tratados eran casi completamente negativas de
tinción con aceite rojo O. Los cayados aórticos, base y válvulas
aórticas y arterias coronarias de ratones lal-/-, tratados o
no tratados, eran esencialmente normales a lo largo del estudio.
c. Inmunohistoquímica: Los análisis
inmunohistológicos de hígado con anticuerpo anti-LAL
(hLAL recombinante producido por E. coli) mostraron una
tinción predominantemente oscura (positiva) de las células de
revestimiento sinusoidal. Pudo detectarse algo de antígeno en las
células de almacenamiento, pero esta señal estaba a un nivel bajo
debido al gran espacio de dilución presentado por estas células. Se
obtuvieron las muestras de hígado 30 min después de la inyección.
Los ratones lal-/- no inyectados tenían LAL indetectable.
d. Hallazgos bioquímicos: Se determinaron
el colesterol de tejido (tanto libre como esterificado) y los
triglicéridos de hígado, bazo e intestino delgado mediante análisis
químicos. En comparación con ratones de tipo silvestre de edad
coincidente, los ratones lal-/- tienen ésteres de colesterilo
y triglicéridos elevados en varios tejidos. El éster de colesterilo
total medio por órgano a los 3,5 meses de edad aumentaba 31 veces en
hígado y 19 veces en bazo en comparación con el tipo silvestre. La
administración de LAL a dichos ratones estaba asociada a
reducciones del colesterol total de un 47% en hígado total (267,22
\pm 8,22 mg frente a 144,23 \pm 7,99 mg; p= 0,0003, n=3) y un
69% en bazo total (8,73 \pm 0,43 mg frente a 2,63 \pm 0,50 mg,
p= 0,0008, n=3). Se observaron también reducciones similares de los
triglicéridos: 58% en hígado total (26,52 \pm 17,93 mg frente a
39,79 \pm 6,38 mg, p= 0,047, n=4) y 45% en bazo total (8,23 \pm
0,68 mg frente a 4,55 \pm 1,26 mg, p= 0,042, n=4). Aunque no se
observó cambio de la concentración de colesterol en el intestino
delgado (p= 0,67), la concentración de triglicéridos del grupo
tratado se redujo un 65% (49,52 \pm 2,40 \mug/mg frente a 17,09
\pm 4,8 \mug/mg, p= 0,042, n=4).
El tratamiento limitado de ratones lal-/-
con LAL (10 inyecciones en 30 días, 1,48 U/dosis) condujo a
correcciones macroscópicas, histológicas y bioquímicas de los
niveles de colesterol y triglicéridos en ratones tratados.
No se observaron diferencias en los niveles de
glucosa plasmática en ratones lal-/- o ldlr-/-
tratados o no tratados, aunque los ratones ldlr-/- tienen
niveles plasmáticos de glucosa mayores que el tipo silvestre de
ratones lal-/-. Los ratones lal-/- y ldlr-/-
tenían niveles de ácidos grasos plasmáticos no esterificados (NEFA)
aumentados en comparación con los controles de tipo silvestre (162%
y 227%, respectivamente). La administración de LAL estaba asociada
a aumentos de NEFA de un 32,6% en ratones lal-/- y de un
24,5% en ratones ldlr-/-. Los niveles plasmáticos de
triglicéridos se redujeron en ratones lal-/- tratados, pero
no cambiaron en ratones ldlr-/-. La HFCD produjo
hipercolesterolemia en ratones ldlr-/-. La concentración
plasmática de colesterol libre aumentó 22 veces y la concentración
plasmática de éster de colesterilo aumentó 13,8 veces en
comparación con ratones de tipo silvestre. Los ratones
ldlr-/- tratados con LAL tenían reducciones del colesterol
plasmático libre de un 18,2% (p=0,0894) y de ésteres de colesterilo
de un 26,7% (P= 0,0025). Los niveles de colesterol libre y éster de
colesterilo no cambiaron en ratones lal-/- tratados.
Los órganos viscerales de estos ratones parecían
normales. Se prepararon montajes completos de los cayados aórticos
de ratones ldlr-/- y se examinaron mediante transiluminación.
A los 3,5 meses, todos los ratones ldlr-/- no tratados (3/3)
tenían lesiones extensas en el cayado y arranques de los vasos
principales, concretamente arterias braquiocefálicas. Aunque no se
determinó cuantitativamente, la administración de LAL parecía tener
poco efecto sobre estas lesiones en ratones ldlr-/-
tratados.
Para evaluar las lesiones arteriales coronarias,
se seccionaron y analizaron secuencialmente los corazones de
ratones ldlr-/- tratados y no tratados. No se trataron cuatro
ratones ldlr-/-. Uno de estos se encontró muerto justo antes
de empezar la administración de LAL (a la edad de 2,5 meses). Ocho
ratones recibieron LAL y todos sobrevivieron durante todo el
periodo de estudio. Los resultados se resumen en la Tabla 2. Todos
los ratones ldlr-/- no tratados tenían lesiones de placa
graves en la válvula aórtica y los ostios de las arterias
coronarias (véanse las Figuras 4A y B). De las válvulas aórticas
examinadas en el grupo tratado, dos tenían una acumulación de
células espumosas leve a moderada (++), una muy leve (+) y dos
ninguna (véase la Figura 4C). Las válvulas aórticas de tres ratones
tratados no se examinaron histológicamente, ya que se habían
extirpado para los estudios de cayado aórtico de montaje
completo.
Las lesiones coronarias en el grupo no tratado
eran extensas y multifocales. Todas tenían una fuerte infiltración
de los ostios coronarios por macrófagos, con placas extendiéndose a
una distancia considerable en las arterias coronarias. También se
encontraron placas aisladas y dispersadas individuales a lo largo
del primer tercio de las arterias coronarias. En un caso, la rama
principal de la coronaria izquierda estaba completamente obstruida
con una lesión avanzada que contenía cristales de colesterol e
inflamación aparente. En comparación, 7/8 de los ratones
ldlr-/- tratados tenían vasos coronarios normales (véase la
Tabla 2). Un ratón ldlr-/- tratado con LAL tenía células
espumosas en un vaso coronario intramuscular pequeño. Las otras
arterias coronarias en este ratón eran normales. Este ratón
particular (RA1) tenía también lesiones
leves-moderadas de la válvula aórtica.
Para obtener una evaluación más cuantitativa de
las lesiones arteriales coronarias en ratones ldlr-/-, se
examinaron secciones de H&E secuenciales (total =210; 10 \mum)
del corazón en un ratón no tratado (RC2) y en un ratón tratado
(RB2). RC2 tenía múltiples placas en arterias coronarias, mientras
que RB2 tenía arterias coronarias completamente normales.
\vskip1.000000\baselineskip
Ratones no tratados con
LAL
\vskip1.000000\baselineskip
Ratones tratados con
LAL
\vskip1.000000\baselineskip
Estos resultados muestran un efecto selectivo
importante de un nivel de dosis fijada individual de LAL sobre la
presencia de células espumosas aórticas valvulares y arteriales
coronarias y lesiones aterogénicas progresivas.
Los resultados de lípidos plasmáticos se reseñan
anteriormente para los grupos ldlr-/- tratados y no tratados.
Los niveles hepáticos y esplénicos de colesterol y triglicéridos
aumentaron frente a ratones de tipo silvestre en el grupo
ldlr-/- no tratado. No se observaron efectos significativos
sobre el colesterol total en hígado (p= 0,8816) y bazo (p= 0,1061)
o la concentración de colesterol (0,0927) en el intestino delgado.
Se redujeron los triglicéridos a un 65,1% en hígado total (91,54
\pm 1,98 mg frente a 59,60 \pm 6,86 mg; p= 0,002), y a un 53,5%
en bazo total (3,24 \pm 0,39 mg frente a 1,73 \pm 0,33 mg; p=
0,0183). La concentración de triglicéridos en el intestino delgado
se redujo también a un 43% (41,74 \pm 3,69 \mug/mg frente a
23,79 \pm 2,08 \mug/mg, p= 0,001).
Se obtuvo suero en el sacrificio de cada ratón
de cada genotipo y se usó en análisis Western. Se usó la Prep nº 3
(2,65 ng/pocillo) como antígeno. Se usó suero a diluciones de 1:100.
Todos los ratones expuestos a 10 inyecciones de LAL dieron señales
Western positivas. Las bandas positivas comigraron con la LAL
detectada con anticuerpo de conejo anti-LAL. Con un
suero de ratón, se consiguieron señales positivas con diluciones
1:100 a 1:6400 usando la Prep. nº 3. Se realizaron estudios
adicionales para determinar la reactividad de estos sueros de ratón
ante LAL o LAL no glucosilada producida en E. coli. Usando
2,65 ng de antígeno, la LAL no glucosilada dio señales muy bajas a
ausentes con todos menos con un suero de ratón. Estos resultados
indican que la especificad del anticuerpo está dirigida más hacia
los oligosacáridos que a la proteína LAL en estas
conformaciones.
Los datos de ldlr-/- muestran efectos
claros y drásticos de la administración de LAL sobre la presencia
de placas y células espumosas valvulares aórticas y arteriales
coronarias. Todas las lesiones se redujeron en gran medida o
estaban ausentes en los ratones tratados en comparación con lesiones
muy graves en la cohorte no tratada. Los cambios en los
triglicéridos hepáticos, esplénicos e intestinales indican un efecto
directo de la LAL en estos órganos.
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Claims (17)
1. Uso de una proteína o polipéptido
hidrolizante de lípidos seleccionado del grupo constituido por la
proteína lipasa ácida lisosómica, una proteína que muestra al menos
un 85% de homología de secuencia con la lipasa ácida lisosómica,
una proteína variante polimórfica de lipasa ácida lisosómica con
sustitución del aminoácido Pro(-6) por Thr y de Gly2 por Arg, o
mezclas de las mismas, para la fabricación de un medicamento para
tratar la aterosclerosis en un mamífero, en el que dicha proteína o
polipéptido hidrolizante de lípidos se orienta a sitios de receptor
para captación en lisosomas.
2. El uso según la reivindicación 1, en el que
dicho sitio receptor se selecciona del grupo constituido por
receptores de reconocimiento de oligosacárido y receptores de
reconocimiento de secuencia peptídica.
3. El uso según cualquier reivindicación
precedente, en el que dicho sitio receptor es un sitio receptor de
manosa.
4. El uso según cualquier reivindicación
precedente, en el que la lipasa ácida lisosómica tiene menos de seis
residuos de acetilglucosilación ligados a N.
5. El uso según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en el que la lipasa ácida lisosómica tiene
más de seis residuos de acetilglucosilación ligados a N.
6. El uso según la reivindicación 4 ó 5, en el
que el residuo de N-acetilglucosilación es un
oligosacárido terminal.
7. El uso según la reivindicación 6, en el que
el residuo oligosacárido terminal es un residuo de manosa.
8. El uso según cualquier reivindicación
precedente, en el que dicha proteína o polipéptido hidrolizante de
lípidos se produce exógenamente, está en un portador
farmacéuticamente aceptable y ha de administrarse por vía oral,
parenteral, mediante inyección, infusión intravenosa, inhalación,
liberación de dosificación controlada o mediante administración
peritoneal.
9. El uso según cualquier reivindicación
precedente, en el que dicho medicamento es eficaz para tratar la
enfermedad de Wolman o la enfermedad de almacenamiento de éster de
colesterilo.
10. Una composición que comprende una cantidad
segura y eficaz de una proteína o polipéptido hidrolizante de
lípidos seleccionado del grupo constituido por la proteína lipasa
ácida lisosómica, una proteína que muestra al menos un 85% de
homología con la lipasa ácida lisosómica, una proteína variante
polimórfica de lipasa ácida lisosómica con sustitución del
aminoácido Pro(-6) por Thr y de Gly2 por Arg, mezclas de las mismas
y un portador farmacéuticamente aceptable para uso en un
procedimiento para tratar el cuerpo humano o animal mediante
terapia.
11. La composición según la reivindicación 10,
en la que la lipasa ácida lisosómica tiene menos de 6 residuos de
acetilglucosilación ligados a N.
12. La composición según la reivindicación 10,
en la que la lipasa ácida lisosómica tiene más de 6 residuos de
acetilglucosilación ligados a N.
13. La composición según la reivindicación 11 u
12, en la que el residuo de N-acetilglucosilación es
un oligosacárido terminal.
14. La composición según la reivindicación 13,
en la que el residuo terminal oligosacárido es un residuo de
manosa.
15. Uso de un vector que comprende y expresa una
secuencia de ADN que codifica proteína o polipéptido biológicamente
activo hidrolizante de lípidos seleccionado del grupo constituido
por la proteína lipasa ácida lisosómica, una proteína que muestra
al menos un 85% de homología con la lipasa ácida lisosómica, una
proteína variante polimórfica de lipasa ácida lisosómica con
sustitución del aminoácido Pro(-6) por Thr y de Gly2 por Arg, y que
expresa la secuencia de ADN en células para producir la proteína o
polipéptido biológicamente activo hidrolizante de lípidos para la
fabricación de un medicamento para tratar mamíferos que padecen
aterosclerosis, enfermedad de Wolman o enfermedad de almacenamiento
de ésteres de colesterilo, en el que dicho vector ha de
administrarse a las células, y las células que albergan el vector
secretan la proteína o polipéptido biológicamente activo
hidrolizante de lípidos que se capta por otras células deficientes
en la proteína o polipéptido hidrolizante de lípidos.
16. El uso según la reivindicación 15, en el que
el vector se selecciona del grupo constituido por un vector vírico,
un plásmido y una vesícula lipídica.
17. El uso según la reivindicación 16, en el que
dicho vector es un vector vírico seleccionado del grupo constituido
por lentivirus, adenovirus, virus adenoasociados y vectores
similares a virus.
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