ES2323888T3 - Biosensor electroquimico. - Google Patents

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ES2323888T3 ES06002187T ES06002187T ES2323888T3 ES 2323888 T3 ES2323888 T3 ES 2323888T3 ES 06002187 T ES06002187 T ES 06002187T ES 06002187 T ES06002187 T ES 06002187T ES 2323888 T3 ES2323888 T3 ES 2323888T3
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Gang Cui
Jae Hyun Yoo
Moon Hwan Kim
Ju Yong Kim
Joung Su Lee
Keun Ki Kim
Hakhyun Nam
Geun Sig Cha
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Abstract

Un método para medir los niveles de glucosa en sangre, utilizando un biosensor electroquímico que se proporciona con una celda electroquímica de capa fina de tipo inverso, y dicha celda electroquímica de capa fina de tipo inverso consta de: un electrodo de trabajo (104) formado por un sustrato aislante plano (400); un electrodo auxiliar (105) formado por un sustrato aislante plano (300) separado de manera que se enfrenta al electrodo de trabajo (104); un electrodo para la determinación de la fluidez (107), situado a una distancia predeterminada del electrodo de trabajo (104) en el sustrato aislante plano (400, 300) utilizado para el electrodo de trabajo (104) o el electrodo auxiliar (105); un espaciador adhesivo (200), proporcionado con una parte para introducir la muestra (100) que tiene un microconducto, para separar espacialmente el electrodo de trabajo (104) y el electrodo auxiliar (105) al interponerse entre ellos; un electrodo conector (106), impreso con un material conductor grueso sobre una porción del electrodo auxiliar (105), para conectar de forma tridimensional el electrodo de trabajo (104) al electrodo auxiliar (105); y una capa de reactivo que contiene un mediador de transferencia de electrones y una enzima de oxidación, y dicho método consta de los pasos de: (1) introducir una muestra de sangre en la tira sensor insertada en el dispositivo de lectura; (2) aplicar respectivas diferencias de potencial predeterminadas entre el electrodo de trabajo (104) y el electrodo auxiliar (105), y entre el electrodo para la determinación de la fluidez (107) y el electrodo auxiliar (105); (3) provocar un primer cambio en la corriente entre el electrodo de trabajo (104) y el electrodo auxiliar (105) para permitir que estos electrodos tengan el mismo voltaje, a medida que se introduce la sangre; (4) detectar el flujo de la muestra de sangre con el electrodo de determinación de la fluidez (107) para provocar un segundo cambio en la corriente entre el electrodo auxiliar (105) y el electrodo de determinación de la fluidez (107) ajustando los voltajes del electrodo auxiliar (105) y el electrodo de determinación de la fluidez (107) al mismo valor, proporcionando así información sobre la diferencia de tiempo desde el cambio detectado por el electrodo de trabajo (104); (5) mezclar suficientemente la capa de reactivo con la muestra de sangre para aplicar un voltaje predeterminado entre el electrodo de trabajo (104) y el electrodo auxiliar (105) y provocar reacciones cíclicas en la celda electroquímica de capa fina de tipo inverso; y (6) determinar el nivel de glucosa en la muestra de sangre en base a la información de tiempo obtenida en el paso (4) y la corriente de estado estacionario obtenida en el paso (5).

Description

Biosensor electroquímico.
Campo de la invención
La presente invención está relacionada con un método para medir los niveles de glucosa en sangre utilizando un biosensor electroquímico.
Antecedentes de la invención
Para el diagnóstico y profilaxis de la diabetes mellitus, cada vez más se resalta la importancia de la monitorización periódica de niveles de glucosa en sangre. Actualmente, los biosensores de tipo tira diseñados para pequeños aparatos de lectura portátil, que se basan normalmente en colorimetría o electroquímica, permiten a los individuos monitorizar fácilmente sus niveles de glucosa en sangre.
La electroquímica aplicada a los biosensores se explica por la siguiente Fórmula de Reacción I, que representa la utilización de un mediador de transferencia de electrones. Ejemplos de mediadores de transferencia electrones incluyen: el ferroceno y derivados del mismo, quininas y derivados de las mismas, metales de transición que contengan compuestos orgánicos o inorgánicos, tales como rutenio hexamina, polímeros que contengan osmio, ferricianida de potasio, etc., sales orgánicas conductoras y viológeno.
Fórmula de Reacción I
Glucosa + GOx-FAD \rightarrow ácido glucónico + GOx-FADH_{2} GOx-FADH_{2} + M_{ox} \rightarrow GOx-FAD + M_{red}
en la que, GOx representa oxidasa de la glucosa; GOx-FAD y GOx-FADH_{2} respectivamente representan un estado oxidado y uno reducido de FAD asociado a glucosa (dinucleótido flavina adenina), un cofactor requerido para la catálisis de la oxidasa de la glucosa; y M_{ox} y M_{red} indican un estado oxidado y uno reducido del mediador de transferencia de electrones, respectivamente.
Como se muestra en la Fórmula de Reacción I, (1) la glucosa en sangre se oxida a ácido glucónico por la catálisis de la oxidasa de la glucosa, reduciéndose el cofactor FAD a FADH_{2}. (2) Entonces, el cofactor reducido FADH_{2} transfiere electrones al mediador, de forma que FADH_{2} vuelve a su estado oxidado, que es FAD, y el mediador se reduce. El mediador reducido difunde a la superficie de los electrodos. El potencial anódico aplicado al electrodo de trabajo produce una serie de ciclos de reacción, y se mide la corriente rédox, proporcional al nivel de glucosa.
Comparados con los biosensores basados en colorimetría, los biosensores electroquímicos (por ejemplo, basados en electroquímica) tienen la ventaja de no verse influenciados por el oxigeno y de permitir el uso de muestras, incluso si son turbias, sin pretratamiento de las mismas.
El documento G. Cui et al., Electroanalysis 2001 (13), 224 a 228, describe un sensor de glucosa amperométrico de película de grosor diferencial con una membrana de nitrocelulosa con enzima inmovilizada, en el que se utiliza hexacianoferrato (III) como mediador.
El documento G. Cui et al., Talanta 54: 1105 a 1111 (2001), describe un electrodo sensor de glucosa amperométrico desechable con una tira de nitrocelulosa con enzima inmovilizada, en el que se utiliza cloruro de rutenio hexamina (III) como mediador.
Aunque los biosensores electroquímicos son cómodos para la monitorización y control de los niveles de glucosa en sangre, su precisión depende enormemente de la presencia de varias especies fácilmente oxidables, como ácido ascórbico, acetaminofeno, ácido úrico, etc., en las muestras de sangre.
Otro importante sesgo de la medición resulta del hematocrito sanguíneo (medida del volumen de glóbulos rojos como un porcentaje del volumen total de sangre). Un sesgo dependiente del nivel de hematocrito elevado puede conducir a juicios erróneos para aquellos que regularmente deben monitorizar sus niveles de glucosa en sangre con un biosensor desechable de tiras, posiblemente causando incluso la muerte.
Se han sugerido métodos para reducir el sesgo de la medición causado por el hematocrito sanguíneo, lo que incluye el uso de una separación adicional de hematocrito; o una capa de exclusión de eritrocitos dispensada en la capa del reactivo (JP 1134461, JP 2000338076 y US 5658444); un reactivo pantalla imprimible/pasta para la separación de sangre formulada con una matriz de sílice (US 6241862 B1), y un método de corrección quimiométrico combinado con potenciales de doble excitación (WO 01/57510 A2).
Los métodos descritos, sin embargo, dificultan la dispensación de los cócteles de reactivo en un electrodo de trabajo, por lo que se requieren pasos extra durante el proceso de manufacturación o una gran pérdida de reactivos para la impresión de una capa de reactivo.
Para comodidad de los usuarios, es muy importante medir con precisión los niveles de glucosa en una pequeña muestra de sangre y en un corto periodo de tiempo utilizando un biosensor. Una medida precisa en un volumen pequeño de muestra, menos de 1 \mul, preferiblemente 0,5 \mul, o más preferiblemente 0,3 \mul, hace posible utilizar cualquier zona del cuerpo, por ejemplo, el antebrazo, como lugar de extracción de sangre, reduciendo así enormemente el dolor causado al paciente en las extracciones de sangre.
El periodo de tiempo de respuesta para la medida es preferiblemente de 10 s., más preferiblemente de 5 s. y más preferiblemente de 3 s. Sin embargo, el objetivo deseable es casi imposible de conseguir utilizando las técnicas conocidas hasta ahora.
En el documento EP-A 1 186 778 se propuso un biosensor electroquímico apropiado para tales mediciones, que consta de una composición de capas de reactivo que puede reducir sustancialmente el sesgo de la medición procedente del hematocrito, y otro en el documento US-A 2004/004.821, que consta de una parte para introducir la muestra que incluye un conducto para introducir la muestra, un conducto de descarga de aire y un vacío.
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Resumen de la invención
Por lo tanto, es un objetivo de la presente invención proporcionar un método para medir los niveles de glucosa en sangre utilizando un biosensor, que pueda reducir notablemente el sesgo de la medición que proviene del hematocrito en base a la información de la fluidez de la muestra.
También es un objetivo de la presente invención proporcionar un método para medir los niveles de glucosa en sangre utilizando un biosensor, que disminuya la posibilidad de obtener información incorrecta al excluir las muestras de sangre con una fluidez anormalmente elevada o reducida.
También es un objetivo de la presente invención proporcionar un método para medir los niveles de glucosa en sangre utilizando un biosensor, que pueda detectar un cambio en la velocidad de muestreo de la sangre causado por envejecimiento del biosensor, proporcionando de ese modo información de control de calidad tras la fabricación.
También es un objetivo de la presente invención proporcionar un método para medir los niveles de glucosa en sangre utilizando un biosensor, que permita que la muestra de sangre se introduzca de forma rápida y constante, sin pretratamiento y se analicen los niveles de glucosa en sangre de manera precisa y rápida.
Los anteriores objetivos pueden lograrse mediante la utilización de un método para medir los niveles de glucosa en sangre, que utiliza un biosensor electroquímico que se proporciona con una celda electroquímica de capa fina de tipo inverso, y dicha celda electroquímica de capa fina de tipo inverso consta de: un electrodo de trabajo formado por un sustrato aislante plano, un electrodo auxiliar formado por un sustrato aislante plano separado de forma que queda enfrentado al electrodo de trabajo, un electrodo de determinación de la fluidez, situado a una distancia predeterminada del electrodo de trabajo sobre el sustrato plano aislante utilizado para el electrodo de trabajo o el electrodo auxiliar, un separador adhesivo, que se proporciona con una parte para la introducción de la muestra que tiene un micro-conducto para separar espacialmente el electrodo de trabajo y el electrodo auxiliar al interponerse entre ellos; un conector de los electrodos, impreso con un material conductor grueso en una porción del electrodo auxiliar, para conectar de forma tridimensional el electrodo de trabajo al electrodo auxiliar; y una capa de reactivo que contenga un mediador de transferencia de electrones y una enzima de oxidación, cuyo método consta de los pasos de: (1) introducir una muestra de sangre en un dispositivo de lectura con un sensor de tira insertado; (2) aplicar las respectivas diferencias de potencial predeterminadas entre el electrodo de trabajo y el electrodo auxiliar y entre el electrodo para la determinación de la fluidez y el electrodo auxiliar; (3) provocar un primer cambio en la corriente entre el electrodo de trabajo y el electrodo auxiliar permitiendo así que esos electrodos tengan el mismo voltaje, mientras se introduce la sangre; (4) detectar el flujo de la muestra de sangre con el electrodo para la determinación de la fluidez para provocar un segundo cambio en la corriente entre el electrodo auxiliar y el electrodo para la determinación de la fluidez para ajustar el voltaje del electrodo auxiliar y del electrodo de determinación de la fluidez al mismo valor, proporcionando así información sobre la diferencia de tiempo entre el cambio detectado por el electrodo de trabajo; (5) mezclar de forma suficiente la capa de reactivo con la muestra de sangre para que al aplicar un voltaje predeterminado entre el electrodo de trabajo y el electrodo auxiliar provoque reacciones cíclicas en la celda electroquímica de capa fina de tipo inverso; y (6) determinar el nivel de glucosa en la muestra de sangre en base a la información de tiempo obtenida en el paso (4) y la corriente en el estado estacionario obtenida en el paso (5).
En este método, la muestra de sangre del paso (1) oscila en volumen desde 0,1 a 0,7 \mul y se introduce en la tira sensor sin pretratamiento.
En este método, las diferencias de potencial del paso (2) son provocadas por un cambio eléctrico entre el electrodo de trabajo y el electrodo auxiliar, y entre el electrodo de determinación de la fluidez y el electrodo auxiliar tras la aplicación de una corriente directa, una corriente alterna de baja o alta frecuencia, una elevada impedancia o un pulso seleccionado de entre ondas cuadradas, ondas piramidales, ondas semisinusoidales y ondas Gaussianas.
En este método, el cambio eléctrico se atribuye a un cambio en voltaje, corriente, impedancia o capacitancia.
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En este método, se evita que la muestra de sangre y la capa de reactivo sufran reacciones rédox en el paso (3) al controlar que el electrodo de trabajo y el electrodo auxiliar tengan el mismo voltaje.
Preferiblemente, la parte del biosensor para introducir la muestra contiene un conducto con una amplitud que oscila de 0,5 a 2 mm y con una altura entre 50 a 250 \mum, facilitando de ese modo la introducción de la muestra de sangre.
En este método, la capa de reactivo que contiene la enzima y el mediador de transferencia de electrones se forma en el electrodo de trabajo o en el electrodo auxiliar.
En una realización preferible del método, la capa de reactivo del biosensor se forma en el electrodo de trabajo o el electrodo de determinación de la fluidez, o en ambos, y los dos electrodos estén situados de forma que la constante de tiempo de la corriente en estado estacionario esté entre 0,05 y 8,0, ambos inclusive.
En una realización preferible del método, el mediador de transferencia de electrones es cloruro de rutenio hexamina (III), adaptado para facilitar la transferencia de electrones de la enzima al aceptor final de electrones, y la capa de reactivo además comprende un ácido graso o su sal y una sal de amonio cuaternario, lo que reduce sustancialmente el sesgo dependiente del nivel de hematocrito.
Según el método de la presente invención, una muestra de sangre puede introducirse de manera rápida y constante, sin pretratamiento y puede analizar los niveles de glucosa en sangre de manera precisa en 5 s.
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Breve descripción de las figuras
La aplicación de las realizaciones preferidas de la presente invención se entiende mejor en referencia a las figuras que la acompañan, en las que se usan números de referencia para las partes similares y correspondientes, en las que:
La Fig. 1 es una vista en perspectiva desmontada que muestra una celda electroquímica de capa fina de acuerdo con una realización preferible de la presente invención;
La Fig. 2 es una vista en perspectiva desmontada que muestra un biosensor de tipo inverso de acuerdo con una realización preferible de la presente invención;
La Fig. 3a es una vista en perspectiva desmontada que muestra un biosensor electroquímico de tipo inverso que se proporciona con una parte para introducir la muestra, en la que se forma un electrodo de determinación de la fluidez en un sustrato superior, de acuerdo con una realización preferible de la presente invención;
La Fig. 3b es una vista en perspectiva desmontada que muestra un biosensor electroquímico de tipo inverso que se proporciona con una parte para introducir la muestra, en la que se forma un electrodo de determinación de la fluidez en un sustrato inferior, de acuerdo con una realización preferible de la presente invención;
La Fig. 4a es una vista del plano de un dispositivo de lectura bidireccional con una tira sensor insertada;
La Fig. 4b es un diagrama de un circuito interno que ilustra el proceso de la operación de un biosensor de acuerdo con una realización preferible de la presente invención;
La Fig. 5 es un voltamograma cíclico de un biosensor de tipo inverso de acuerdo con una realización preferible de la presente invención;
La Fig. 6 es una gráfica cronoamperométrica que muestra una comparativa entre el tiempo de respuesta de un electrodo de tipo inverso de acuerdo con una realización preferible de la presente invención y un electrodo de tipo plano;
La Fig. 7 es una gráfica cronoamperométrica que muestra los resultados de tiempo de respuesta de un electrodo de tipo inverso de acuerdo con una realización preferible de la presente invención a varias concentraciones de glucosa;
La Fig. 8 es una gráfica que muestra la influencia de los componentes de interferencia en un electrodo de tipo inverso de acuerdo con una realización preferible de la presente invención;
La Fig. 9 es una gráfica que muestra una curva de calibración de un sensor de glucosa de tipo inverso con la sensibilidad a una solución estándar de glucosa;
La Fig. 10 es una gráfica que muestra las curvas dinámicas, obtenidas mediante un método cronoamperométrico, de un sensor de glucosa de tipo inverso para las soluciones estándar de glucosa; y
La Fig. 11 es una gráfica que ilustra la relación entre la fluidez de la muestra (como función del tiempo) y el nivel de hematocrito.
Descripción detallada de la invención
Debe hacerse referencia a las figuras, en las que se usan los mismos números de referencia en las diferentes figuras para designar los componentes iguales o similares.
El biosensor para medir los niveles de glucosa en sangre de acuerdo con la presente invención tiene una celda electroquímica de capa fina en la que un electrodo de trabajo 104 y un electrodo auxiliar 105, respectivamente formados en dos sustratos aislantes planos, se separan espacialmente el uno del otro por un espaciador adhesivo por presión de 50-250 \mum de grosor, se encuentran enfrentados simétricamente o asimétricamente, y se conectan eléctricamente el uno al otro a través de una línea de conexión formada junto con el electrodo de trabajo 104 en el mismo sustrato, siendo la línea de conexión de un material conductor grueso impreso en una porción del mismo y conectado de forma tridimensional al electrodo auxiliar 105 (ver: Converse-type electrodes: E. K. Bauman et al., Analytical Chemistry, Vol. 37, pág. 1378, 1965; K. B. Oldham en "Microelectrodes: Theory and Applications," Kluwer Academic Publishers, 1991).
En el espaciador fino, se proporciona un micro-recorrido en escala de volumen de microlitos para la inyección de la muestra de sangre en el espacio de medición, definido por el electrodo de trabajo 104 y el electrodo auxiliar 105, y que retiene la muestra en su interior. En el espaciador fino, se coloca el electrodo de determinación de la fluidez preferiblemente a una distancia predeterminada tal del electrodo de trabajo (o del electrodo auxiliar 105) que la sangre fluorada con un volumen corpuscular del 40% puede alcanzar el electrodo de trabajo (o el electrodo auxiliar) a lo largo del micro-recorrido de 0,5-2 mm de ancho y 50-250 \mum de alto en unos 600 ms., y más preferiblemente a una distancia predeterminada tal del electrodo de trabajo (o del electrodo auxiliar 105) que la sangre no fluorada puede alcanzar el electrodo a lo largo del micro-recorrido de 0,5-2 mm de ancho y 50-250 \mum de alto en 300 ms., y aún más preferiblemente en 200 ms.
Con referencia a la Fig. 3a, se muestra un biosensor de tipo inverso de acuerdo con una realización de la presente invención en el que un electrodo de trabajo 104, formado con un electrodo determinante de la fluidez 107 en el mismo sustrato, se enfrenta a un electrodo auxiliar 105, que funciona como electrodo de referencia, formado en un sustrato separado. La Fig. 3b muestra un biosensor de tipo inverso de acuerdo con otra realización de la presente invención, en el que un electrodo auxiliar, que funciona como electrodo de referencia, junto con un electrodo de determinación de la fluidez 107 en el mismo sustrato, se enfrenta a un electrodo de trabajo 104.
El biosensor tiene una estructura en la que puede formarse una composición de capas de solución de reactivo en el electrodo de trabajo 104 o en el electrodo auxiliar 105, y preferiblemente en el electrodo de determinación de la fluidez 107, así como en el electrodo de trabajo 104 o el electrodo auxiliar 105.
Como se muestra en la Fig. 3a, el biosensor electroquímico de acuerdo con una realización de la presente invención consta de un sustrato inferior 400 con el cual se construyen el electrodo de trabajo y el electrodo de determinación de la fluidez, ambos recubiertos con una composición de capas de solución de reactivo, y un conector de electrodos 106, fabricado en un material conductor, para conectar de forma tridimensional el electrodo de trabajo con el electrodo auxiliar; un sustrato intermedio (espaciador fino) que se proporciona con el patrón de una parte para introducir la muestra 100, que consta de una indentación para introducir la muestra 101, un canal de descarga de aire 102 y un espacio extra vacío, en el que la indentación para introducir la muestra se cruza con el canal de descarga de aire, dejando el espacio vacío en el cruce; y se construye un sustrato superior 300 en el que el electrodo auxiliar 105, que funciona como un electrodo de referencia, junto con un conector de electrodos 106, en una posición que corresponde a la del electrodo de determinación de la fluidez del sustrato inferior, realizándose capas de todos los sustratos citados en orden secuencial de forma que la estructura del sustrato superior se enfrenta con la del sustrato inferior, y en el que una capa de reactivo se forma preferiblemente en el electrodo de trabajo 104 solo o en combinación con el electrodo de determinación de la fluidez.
Particularmente, la capa de reactivo que contiene una enzima y un mediador de transferencia de electrones puede formarse sólo en el electrodo de trabajo 104 o en el electrodo auxiliar mientras los dos electrodos están dispuestos de manera que "la constante de tiempo de la corriente en estado estacionario" (definida como una proporción entre producto del coeficiente de difusión del mediador de transferencia de electrones y una corriente de estado estacionario, y el cuadrado del espacio entre los dos electrones) está entre 0,05 y 8,0, ambos inclusive. Opcionalmente, la capa de reactivo también puede contener un ácido graso y una sal de amonio cuaternario.
Por la línea de conexión entre el electrodo de trabajo 104 y el electrodo auxiliar 105, se conecta un dispositivo de lectura con el biosensor en el mismo sustrato que el electrodo de trabajo 104. También se forma un electrodo de determinación de la fluidez 107, posicionado sobre el sustrato de aislamiento del electrodo de trabajo 104 o el sustrato de aislamiento del electrodo auxiliar 105, que funciona en la medición de la fluidez de la muestra, a una distancia apropiada del electrodo de trabajo 104 o del electrodo auxiliar 105.
En un extremo del espaciador y para separar espacialmente el electrodo de trabajo 104 del electrodo auxiliar 105, se forma una parte para introducir la muestra 100 para que se introduzca una cantidad constante de muestra en el biosensor a través de la misma. En detalle, la parte para introducir la muestra 100 consta de una indentación para introducir la muestra 101, un canal de descarga de aire 102 y un espacio extra vacío 103. La indentación para introducir la muestra 101 se cruza con el canal de descarga de aire 102 por debajo del final de la indentación, con el espacio extra vacío formado en el cruce. La parte para introducir la muestra 100, formada por lo tanto con forma de r, permite que se introduzca la muestra de sangre desde el inicio de la tira del biosensor de forma precisa y cómoda. De manera notable, la indentación para introducir la muestra 101 se comunica con el canal de descarga de aire 102 de forma aproximadamente perpendicular, ligeramente por debajo del final del canal en forma de indentación, formando el espacio extra vacío 103 detrás del punto de comunicación. El término "se cruza con" como se utiliza aquí significa que la indentación para introducir la muestra 101 y el canal de descarga de aire 102 no están situados de forma lineal, sino que se cruzan el uno con el otro en un punto predeterminado. Durante la medición, el espacio extra vacío 103 ayuda a mantener un volumen constante y preciso de la muestra de sangre en la indentación mientras se descarga el exceso de muestra a través del canal de descarga de aire 102. Además, el espacio extra vacío 103 sirve para prevenir la formación de burbujas de aire, que a menudo pueden ocurrir en el punto de comunicación entre la indentación para introducir la muestra 101 y el canal de descarga de aire 102. La formación de burbujas de aire puede ocasionar medidas imprecisas. Para asegurar un muestreo exacto sin la formación de burbujas, se requiere un tratamiento hidrofílico de la indentación para introducir la muestra 101, incluyendo el espacio extra vacío 103.
La proporción entre la amplitud del canal de descarga de aire 102 y la de la indentación para introducir la muestra 101 no es superior a 1:2, y preferiblemente está en el rango de 1:5 a 1:2. Una proporción inferior a 1:2 asegura la contención de una cantidad exacta de muestra en la indentación para introducir la muestra 101, y permite que la muestra avance al canal de descarga de aire 102 a gran velocidad.
En la Fig. 1, se muestra que el ángulo de comunicación (\Phi) entre la indentación para introducir la muestra 101 y el canal de descarga de aire 102 es de 90º. Pero el ángulo puede variar en un rango de entre alrededor de 45º y 135º, preferiblemente en un rango de entre alrededor de 60º y 105º, y más preferiblemente en un rango de entre alrededor de 75º y 105º.
La parte para introducir la muestra 100 preferiblemente tiene una capacidad para retener 0,1-3,0 \mul de muestra. Más preferiblemente, la capacidad está en el rango de entre 0,1 y 1,0 \mul, y más preferiblemente en el rango de entre 0,3 y 0,7 \mul. Un volumen de muestra inferior a 0,1 \mul es demasiado reducido para dar una medida precisa en el rango de error del biosensor. Por otro lado, un volumen de muestra superior a 3,0 \mul es excesivo para el muestreo. La indentación para introducir la muestra 101 se utiliza como el lugar en el que se posiciona el electrodo de determinación de la fluidez 107.
En cooperación con la parte para introducir la muestra 100 y el recorrido, el electrodo de determinación de la fluidez 107 actúa para medir la fluidez de las muestras de sangre total. Como el hematocrito cambia la fluidez y la conductividad eléctrica de la sangre total, el tiempo de muestro a través del conducto capilar en forma de \Gamma indicado en la presente invención varía proporcionalmente con el nivel del hematocrito de las muestras de sangre total. El cambio en la fluidez de las muestras de sangre, que se detecta mediante el electrodo de determinación de la fluidez 107, puede usarse para corregir el sesgo dependiente del nivel de hematocrito en las medidas de glucosa en sangre. Asimismo, la fluidez de la sangre cambia enormemente en una tira vieja o en el caso que la capa de reactivo formada en el electrodo de trabajo 104 tenga una composición inapropiada. Por lo tanto, la tasa de flujo de sangre detectada por el electrodo de determinación de la fluidez 107 puede usarse para estimar el tiempo de fabricación del biosensor o para corregir cualquier error cometido durante la fabricación del mismo.
Al pasar una muestra de sangre por el electrodo de trabajo 104 y el electrodo de determinación de la fluidez 107, estén en orden secuencial o en orden inverso, desde la entrada de la celda electroquímica de capa fina, provoca en dos ocasiones un cambio eléctrico en el voltaje, corriente, impedancia o capacitancia, proporcionando información sobre el periodo de tiempo necesario para el paso de la muestra a través del conducto. Por lo tanto, aprovechando la medida de la velocidad del flujo de una muestra en el micro-recorrido de la celda electroquímica de capa fina, el biosensor tiene la función de determinar de manera precisa el nivel de un sustrato en la muestra o dar información sobre el año de su fabricación o de errores.
Además, el biosensor de la presente invención puede proporcionarse con una ventana de visualización 301 en el sustrato superior 300, que se localiza sobre una porción del electrodo de determinación de la fluidez en el sustrato inferior. La ventana 301 hace posible que se determine visualmente si se ha cargado muestra o no.
En la estructura del electrodo descrito anteriormente, la corriente alcanza un estado estacionario en pocos segundos debido al efecto cíclico de las reacciones rédox producidas por una enzima, un sustrato contenido en la muestra, y un mediador de transferencia de electrones. En este aspecto, la capa de reactivo formada en el electrodo de trabajo o en el electrodo auxiliar ha de disolverse fácilmente en la muestra introducida a través del canal de la muestra.
Cuando se utiliza a una concentración correcta, el cloruro de rutenio hexamina (III) puede transferir electrones decenas de veces más rápido que los mediadores de transferencia de electrones basados en Fe. De acuerdo con la presente invención, la capa de reactivo se fabrica con una composición que consta de cloruro de rutenio hexamina (III), un ácido graso, una sal de amonio cuaternario, y un dispersante de enzima auxiliar, que se disuelve fácilmente en la sangre y es capaz de reducir sustancialmente el sesgo dependiente del nivel de hematocrito.
Por lo tanto, el biosensor de la presente invención consta de una solución de una composición de reactivo en capas capaz de reducir el error de la medición atribuido al nivel de hematocrito de la sangre. Es decir, la solución de una composición de reactivo en capas comprende una enzima, un mediador de transferencia de electrones, un polímero soluble en agua, un ácido graso y una sal de amonio cuaternario.
En el biosensor, la solución de una composición de reactivo en capas funciona reduciendo notablemente el efecto del hematocrito además de excluir la influencia de componentes de interferencia tales como el ácido ascórbico, acetaminofeno y ácido úrico.
Como se puede observar en la Fórmula de Reacción I, la enzima reacciona con un metabolito de interés, reduciéndose el cofactor. Entonces, el cofactor reducido transfiere electrones al mediador de transferencia de electrones, analizando así cuantitativamente el metabolito de interés.
Aquí, debe hacerse notar que la presente invención, aunque se ha descrito en relación con los biosensores para el análisis de niveles de glucosa en sangre, puede introducir los enzimas y mediadores de transferencia de electrones apropiados al sistema de electrodos para que puedan analizarse cuantitativamente una gran variedad de muestras, lo que incluye materiales biológicos, como metabolitos, por ejemplo, colesterol, lactato, creatinina, proteínas, peróxido de hidrógeno, alcoholes, aminoácidos, y enzimas, por ejemplo, la GPT (transaminasa de glutamato piruvato) y la GOT (transaminasa de glutamato oxaloacetato), materiales ambientales, materiales agrícolas e industriales y materiales alimentarios. Es decir, puede analizarse el nivel de metabolitos versátiles una vez se han seleccionado enzimas apropiados conjuntamente con un mediador de transferencia de electrones. Por ejemplo, del mismo modo que se utiliza la oxidasa de la glucosa para el análisis cuantitativo del nivel de glucosa, puede aplicarse la oxidasa del lactato para el lactato, la oxidasa del colesterol para el colesterol, la oxidasa del glutamato para el glutamato, la peroxidada de rábano picante para el peróxido de hidrógeno, y la oxidasa de alcohol para el alcohol. Preferiblemente, la enzima apropiada para su utilización en la presente invención se selecciona del grupo que consta de GOx (oxidasa de la glucosa), GDH (deshidrogenasa de la glucosa), oxidasa del colesterol, la enzima esterasa del colesterol, la oxidasa del lactato, oxidasa del ácido ascórbico, oxidasa del alcohol, deshidrogenasa del alcohol, oxidasa de la bilirrubina, deshidrogenasa de la glucosa. En los ejemplos de la presente invención, el biosensor empleó la oxidasa de la glucosa o deshidrogenasa de la glucosa para analizar los niveles de glucosa en sangre.
Cuando reacciona con el cofactor de la enzima reducido, el mediador de transferencia de electrones se reduce. La difusión del mediador de transferencia de electrones reducido a la superficie de los electrodos provoca la aplicación de un potencial anódico al electrodo de trabajo, generando electricidad.
Como mediador de transferencia de electrones, puede usarse el ferroceno o sus derivados, quinona o sus derivados, sales conductoras orgánicas o viológeno. Preferiblemente, el mediador de transferencia de electrones es un compuesto de valencia mixta capaz de formar una pareja rédox, lo que incluye cloruro de rutenio hexamina (III), ferricianida de potasio, ferrocianida de potasio, DMF (dimetilferroceno), ferricino, FCOOH (ácido ferroceno monocarboxílico), TCNQ (7,7,8,8-tetracianoquinodimetano), TTF (tetratiafulvaleno), Nc (niqueloceno), NMA+ (N-metilacidino), TTT (tetratiatetraceno), NMP+ (N-metilfenazino), hidroquinona, MBTHDMAB (ácido 3-dimetilaminobenzoico), 3-metil-2-benzotiozolinona hidrazona, 2-metoxi-4-alilfenol, AAP (4-aminoantipirina), dimetilanilina, 4-aminoantipireno, 4-metoxinaftol, TMB (3,3',5,5'-tetrametilbencidina), 2,2-azino-di-[sulfonato de 3-etilbenziazolina], o-dianisidina, o-toluidina, 2,4-diclorofenol, 4-aminofenazona, bencidina y azul Prusiano.
De estos, es preferible el cloruro de rutenio hexamina (III) porque su potencial formal es suficientemente bajo como para minimizar la influencia de varios componentes de interferencia, tales como ácido ascórbico, acetaminofeno y ácido úrico.
El polímero soluble en agua que ayuda a la reacción de la enzima está contenido en una cantidad de entre el 0,1 y 10% en peso del peso total de la solución de una composición de reactivo en capas en estado sólido. Ejemplos de polímeros solubles en agua apropiados para su utilización en la presente invención incluyen PVP (polivinilpirrolidona), PVA (polivinilalcohol), perfluorosulfonato, HEC (hidroxietilcelulosa), HPC (hidroxipropilcelulosa), CMC (carboximetilcelulosa), acetato de celulosa y poliamidas, con preferencia por la PVP y HPC.
En la solución de una composición de reactivo en capas de la presente invención se encuentran un ácido graso y una sal de amonio cuaternario, representando un importante papel en la reducción del sesgo dependiente del nivel de hematocrito.
Cuando se utiliza, un ácido graso tiende a acortar el rango lineal dinámico de un biosensor, especialmente en la región de elevada concentración, además de ayudar enormemente a reducir el sesgo dependiente del nivel de hematocrito.
Antes de añadirse a la solución, se disuelve el ácido graso en agua o en un solvente miscible en agua. El ácido graso se utiliza en una cantidad de entre el 0,1 y 20% en peso del total de componentes sólidos de la solución. Será apropiado un ácido graso que contenga de 4 a 20 átomos de carbono o su sal. Es preferible un ácido graso saturado con una cadena alquilo de 6-12 carbonos o su sal. Ejemplos de ácidos grasos apropiados para su utilización en la presente invención incluyen el ácido caproico, ácido heptanoico, ácido caprílico, ácido nonanoico, ácido cáprico, ácido undecanoico y ácido láurico, ácido tridecanoico, ácido mirístico, ácido pentadecanoico, ácido palmítico, ácido heptadecanoico, ácido esteárico, ácido nonadecanoico y ácido araquidónico.
En cooperación con el ácido graso, una sal de amonio cuaternario puede reducir aun más el sesgo dependiente del nivel de hematocrito.
Un ejemplo de sal de amonio cuaternario apropiada son los compuestos haluro de dodeciltrimetilamonio, miristiltrimetilamonio, cetiltrimetilamonio, octadeciltrimetilamonio, tetrahexilamonio, etc. La sal de amonio cuaternario se utiliza en una cantidad de entre el 0,1 y 30% en peso del total de componentes de la solución de una composición de reactivo en capas.
La capa de reactivo se forma en el electrodo de trabajo simplemente dispensando una gota de la solución de una composición de reactivo en capas con ayuda de un dispensador. La gota de la composición de reactivo en capas es preferiblemente de unos 300-500 nl o más preferiblemente 200 nl o menos.
A continuación se proporcionará una descripción de un método de medición de los niveles de glucosa en sangre utilizando el biosensor de la presente invención. El método se realiza de acuerdo con los siguientes pasos, utilizando un dispositivo de lectura al que se le aplica una tira de sensor 509 como se muestra en la Fig. 4a. El concepto operativo del biosensor está ilustrado esquemáticamente en el diagrama del circuito de la Fig. 4b.
En el paso 1, una muestra de sangre tomada del antebrazo se introduce en el dispositivo de lectura 500 en el que se inserta la tira de sensor (celda electroquímica de capa fina) 509.
Un volumen de muestra apropiada para ensayo cuantitativo con mínimo dolor para el paciente está en el rango de entre 0,1 y 0,7 \mul. El biosensor de la presente invención no sólo no requiere tratamiento de la muestra de sangre para el análisis, sino que también permite una medida precisa y rápida de los niveles de glucosa en sangre. Esto es atribuible parcialmente al conducto que oscila entre 0,5 y 2 mm de anchura y entre 50 y 250 \mum de altura, y que se forma en la parte para introducir la muestra 100 del biosensor, de forma que facilita la introducción de las muestras de sangre mediante acción capilar.
En el paso 2, se dan respectivamente diferencias en el potencial constante entre el electrodo de trabajo 104 y el electrodo auxiliar 105, y entre el electrodo para determinar la fluidez 107 y el electrodo auxiliar 105.
Tan pronto como el biosensor detecta la inserción de la tira del biosensor en el dispositivo de lectura (Paso 1), se aplican potenciales constantes predeterminados entre el electrodo de trabajo 104 y el electrodo auxiliar 105, y entre el electrodo de determinación de la fluidez 107 y el electrodo auxiliar 105. El potencial aplicado al electrodo de trabajo 104 es independiente del aplicado al electrodo auxiliar 107, formando el circuito total un circuito abierto. El cambio eléctrico relacionado con la introducción de la muestra se convierte en una diferencia de potencial en un estado de circuito abierto y la señal de diferencia de potencial se utiliza como señal de inicio en el curso de la medición del biosensor.
La capa de reactivo que contiene una enzima y un mediador de transferencia de electrones se forma sobre el electrodo de trabajo 104 o el electrodo auxiliar 105, y estos electrodos se sitúan a una distancia tal que la constante de tiempo de la corriente en estado estacionario está en el rango de entre 0,05 y 8.0. Para la medida de los niveles de glucosa en sangre, se emplea la GOx (oxidasa de la glucosa) o GDH (deshidrogenasa de la glucosa) en el biosensor. Además se selecciona el cloruro de rutenio hexamina (III) como mediador de transferencia de electrones. Por la razón mencionada anteriormente, la capa de reactivo puede contener un ácido graso y una sal de amonio cuaternario.
La solución de una composición de reactivo en capas se dispensa sólo en el electrodo de trabajo 104, o tanto en el electrodo de trabajo 104 como en el electrodo que determina la fluidez 107, y estos electrodos se sitúan preferiblemente a una distancia tal que la constante de tiempo de la corriente en estado estacionario está en el rango de entre 0,05 y 8,0.
En el paso 3, la introducción de la muestra de sangre provoca un cambio eléctrico primario entre el electrodo de trabajo 104 y el electrodo auxiliar 105, y se controla que los electrodos tengan el mismo voltaje. Para conseguir el mismo voltaje, se permite que fluya una corriente entre ellos mientras la reacción rédox entre la muestra y la capa de reactivo se limita unos pocos segundos. La limitación de la reacción rédox se mantiene de forma continua durante entre 0,001 y 3 s.
La inserción de la tira en el dispositivo de lectura no conduce a la conexión del circuito total. Cuando una muestra de sangre se introduce a través de la parte para introducir la muestra 100, se detecta el flujo de una corriente primaria instantánea y se inicia la medida del periodo de tiempo de flujo. La muestra introducida a la boca del conducto de la tira contiene electrolitos, que sirven para iniciar el circuito de flujo de corriente entre el electrodo de trabajo 104 y el electrodo auxiliar 105 a través del conector de electrodos que hay entre ellos. Igualando el voltaje entre el electrodo de trabajo 104 y el electrodo auxiliar 105, la corriente limita la reacción rédox de la muestra durante el periodo de tiempo en el que la muestra se mezcla con la capa de reactivo, preferiblemente durante 3 s. y más preferiblemente durante 2 s. o menos. Durante este paso, el circuito permanece cerrado.
En el Paso 2, cuando contacta la muestra de sangre, el electrodo que determina la fluidez 107 detecta su fluidez para provocar un cambio eléctrico secundario, que conduce a un control en el mismo voltaje entre el electrodo auxiliar 105 y el electrodo que determina la fluidez 107. Por lo tanto, se detecta la información sobre la diferencia de tiempo entre el cambio eléctrico primario y el secundario.
Tan pronto como la muestra contacta con el espacio extra vacío 103, se detecta una segunda corriente instantánea y se registra el espacio de tiempo entre la primera y la segunda corriente instantánea. En detalle, cuando se ha introducido en la boca de la celda electroquímica de capa fina, la muestra pasa por el electrodo de trabajo 104 y el electrodo que determina la fluidez 107 en orden secuencial o en orden inverso, provocando dos veces un cambio eléctrico en voltaje, corriente, impedancia o capacitancia, lo que conduce a la información sobre el periodo de tiempo de flujo de la muestra a través del conducto.
El electrodo que determina la fluidez 107 se posiciona preferiblemente a una distancia predeterminada del electrodo de trabajo 104 de forma que la sangre fluorada con un volumen corpuscular del 40% puede alcanzar el electrodo de trabajo a lo largo del conducto de 0,5-2 mm de ancho y de 50-250 \mum de alto, en unos 600 ms. y que la sangre no fluorada puede alcanzar el electrodo a lo largo del conducto de 0,5-2 mm de ancho y de 50-250 \mum de alto, en unos 300 ms. y más preferiblemente en 200 ms.
Junto al electrodo que determina la fluidez 107, la parte para introducir la muestra 100 y el conducto forman una estructura apropiada para medir la fluidez de las muestras de sangre total. La fluidez de una muestra se determina como una función de la velocidad a la que la muestra llena el espacio entre el primer punto de contacto del electrodo cerca de la boca de la parte para introducir la muestra 100 y el electrodo que determina la fluidez 107, que se localiza en el vacío 103 o en el canal de descarga de aire 102.
El conducto formado en el espaciador fino de 50-250 \mum de grosor consta de una indentación lineal para la introducción de la muestra 101, en la que se mantiene un volumen constante de muestra, y un canal de descarga de aire 102 que colabora en la acción capilar de la parte para introducir la muestra 100. Como el hematocrito cambia la fluidez y la conductividad eléctrica de la sangre total, el periodo de tiempo del paso de la sangre a través del canal capilar en forma de \Gamma de la tira biosensor varía proporcionalmente con el nivel de hematocrito en las muestras de sangre total. Una vez detectadas por el electrodo que determina la fluidez 107, tales variaciones en la fluidez de las muestras de sangre pueden usarse para corregir el sesgo dependiente del nivel de hematocrito en las medidas de glucosa en sangre. Además, la fluidez de la sangre cambia enormemente en una tira vieja o en el caso que la capa de reactivo formada en el electrodo de trabajo 104 tenga una composición inapropiada. Por consiguiente, la tasa de flujo de sangre detectada por el electrodo que determina la fluidez 107 puede usarse para estimar el tiempo en que se fabricó el biosensor o para corregir un error cometido durante la fabricación del mismo.
A continuación se proporciona una ecuación de ajuste entre el tiempo de llenado de la muestra X y el nivel de hematocrito Y:
Fórmula Matemática
Y = -72.23 + 0.58691X – 0.00084073 X^{2} - 1.1211x10^{-6} X^{3} + 5.7521x10^{-9} X^{4} - 9.1172x10^{-12} X^{5}
El electrodo que determina la fluidez 107 distingue la fluidez anormal de las muestras de sangre, que puede resultar de un hematocrito demasiado alto o bajo de las muestras de sangre o de la introducción de una burbuja en la muestra de sangre. En tales casos anormales, aparecen mensajes de alerta o códigos de error de acuerdo con el programa instalado en el dispositivo de lectura.
En el Paso 5, cuando la muestra de sangre se ha mezclado suficientemente con la capa de reactivo en el electrodo de trabajo 104, se aplica un voltaje predeterminado entre el electrodo de trabajo 104 y el electrodo auxiliar 105 provocando de ese modo reacciones cíclicas en la celda electroquímica de capa fina de tipo inverso, seguidas de la lectura de la corriente en estado estacionario así obtenida. El estado estacionario se alcanza en segundos, por ejemplo, 2-10 s. Comparado con los electrodos de tipo plano convencionales, los electrodos de tipo inverso de la presente invención tienen ventajas en términos de tiempo de respuesta rápido y de elevada corriente en estado estacionario. Aunque depende de la tasa de reacción y de la tasa de transferencia de electrones del mediador de transferencia de electrones utilizado, los electrodos de tipo inverso proporcionan corrientes de estado estacionario en poco tiempo.
En el Paso 6, aprovechando la información de tiempo obtenida en el Paso 4 y la corriente de estado estacionario obtenida en el Paso 5, el biosensor determina el nivel del sustrato en la muestra. De acuerdo con la presente invención, la medida de los niveles de glucosa en sangre se realiza en 5, preferiblemente en 4 s., y más preferiblemente en 3 s.
Como se ha descrito anteriormente, la medida de los niveles de glucosa en sangre de acuerdo con la presente invención se consiguen sometiendo el analito de interés procedente de la sangre a ciclos continuos de reacciones rédox con la ayuda de una enzima apropiada y un mediador de transferencia de electrones, y luego determinando la cantidad de electrones transferidos durante las reacciones para analizar cuantitativamente el sustrato. Además, la información sobre la velocidad a la que la muestra fluye a través del micro-recorrido de la celda electroquímica de capa fina ayuda a determinar con bastante más precisión la cantidad de sustrato y a obtener información sobre la fabricación o estado de almacenamiento del biosensor.
Alternativamente, los Pasos 1 a 6 pueden modificarse como sigue:
(1) Se introduce una muestra de sangre en la tira insertada del dispositivo de lectura (Paso 1).
(2) Se aplican voltajes alternos con altas frecuencias constantes entre el electrodo de trabajo 104 y el electrodo auxiliar 105, y entre el electrodo que determinan la fluidez 107 y el electrodo auxiliar 105. Los voltajes aplicados al electrodo de trabajo 104 y al electrodo que determina la fluidez 107 son independientes, formando el circuito total un circuito abierto (Paso 2). Mientras se aplican voltajes alternos entre el electrodo de trabajo 104 y el electrodo auxiliar 105, y entre el electrodo que determina la fluidez 107 y el electrodo auxiliar 105, la introducción de la muestra resulta en un cambio eléctrico de la capacitancia, de forma que puede utilizarse como señal de inicio en el curso de la medida del biosensor.
(3) la muestra introducida en la boca del conducto en la tira provoca un cambio primario en la capacitancia entre el electrodo de trabajo 104 y el electrodo auxiliar 105. Al darse la aplicación del mismo voltaje en el electrodo de trabajo y el electrodo auxiliar 105, ese cambio de capacitancia provoca que la reacción rédox se detenga durante varios segundos, durante los cuales la muestra se mezcla con la capa de reactivo, preferiblemente durante 3 s. o menos, más preferiblemente durante 2 s. o menos. Durante este proceso, el circuito se mantiene cerrado (Paso 3).
(4) Cuando la muestra entra en contacto con el electrodo que determina la fluidez 107, ocurre un cambio secundario de capacitancia y permite que el electrodo auxiliar 105 y el electrodo que determina la fluidez 107 tengan el mismo voltaje, proporcionando la información sobre la diferencia de tiempo desde el cambio detectado por el electrodo de trabajo 104 (Paso 4).
(5) Cuando la muestra de sangre se ha mezclado suficientemente con la capa de reactivo en el electrodo de trabajo 104, se aplica una diferencia de potencial predeterminada constante entre el electrodo de trabajo 104 y el electrodo auxiliar 105 para iniciar así las reacciones cíclicas características de la celda electroquímica de capa fina tipo inverso. En pocos segundos, preferiblemente en 2 segundos, la corriente que fluye entre los electrodos alcanza un estado estacionario y se lee (Paso 5).
(6) El nivel del sustrato en la muestra analizada se determina en la base a la información de tiempo obtenida en el Paso 4, y la corriente en estado estacionario se lee en el Paso 5. El proceso entero, desde la introducción de una muestra hasta la determinación del nivel de sustrato, se realiza completamente en segundos, preferiblemente en 4 segundos, y más preferiblemente en 3 segundos.
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Otra realización del método puede conseguirse como sigue.
(1) Cuando se introduce una muestra de sangre en la tira insertada en el dispositivo de lectura, se activan circuitos de entrada de alta impedancia entre el electrodo de trabajo 104 y el electrodo auxiliar 105, y entre el electrodo que determina la fluidez 107 y el electrodo auxiliar 105 en el dispositivo de lectura (Paso 1).
(2) Como la muestra introducida a la boca del conducto en la tira contiene electrolitos, se crea una diferencia de potencial primaria en la interfase entre el electrodo y la muestra (Paso 2).
(3) Este cambio se detecta para dar lugar a la aplicación del mismo voltaje al electrodo de trabajo, provocando que la reacción rédox se detenga durante unos segundos, durante los cuales la muestra se mezcla con la capa de reactivo, preferiblemente durante 3 s. o menos, y más preferiblemente durante 2 s. o menos. Durante este proceso, se mantiene el circuito cerrado (Paso 3).
(4) Cuando la muestra entra en contacto con el electrodo que determina la fluidez 107, ocurre un cambio secundario de voltaje y se permite que el electrodo auxiliar 105 y el electrodo que determina la fluidez 107 tengan el mismo voltaje, proporcionado información sobre la diferencia de tiempo desde el cambio detectado por el electrodo de trabajo 104 (Paso 4).
(5) Cuando la muestra se ha mezclado suficientemente con la capa de reactivo en el electrodo de trabajo 104, se aplica una diferencia de potencial predeterminada constante entre el electrodo de trabajo 104 y el electrodo auxiliar 105, iniciando así las reacciones cíclicas características de la celda electroquímica de capa fina de tipo inverso. En segundos, preferiblemente en 2 segundos, la corriente que fluye entre los electrodos alcanza un estado estacionario y se lee (Paso 5).
(6) El nivel del sustrato en la muestra analizada se determina en base a la información de tiempo obtenida en el Paso 4 y la corriente en estado estacionario leída en el Paso 5. El proceso entero, desde la introducción de la muestra hasta la determinación del nivel de sustrato, se realiza completamente en segundos, preferiblemente en 4 segundos, y más preferiblemente en 3 segundos.
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Además pueden aplicarse corrientes directas, corrientes alternas de baja o alta frecuencia, altas impedancias, o varios tipos de pulsos, tales como ondas cuadradas, ondas piramidales, ondas semisinoidales u ondas Gaussianas, entre el electrodo de trabajo 104 y el electrodo auxiliar 105, y entre el electrodo que determina la fluidez 107 y el electrodo auxiliar 105 para analizar cuantitativamente el sustrato de interés. En estos casos, sin embargo, la determinación del tiempo de muestreo basada en el cambio químico que ocurre tras la introducción de la muestra es independiente del tiempo necesario para aplicar y medir las señales eléctricas entre el electrodo de trabajo 104 y el electrodo de referencia y auxiliar 105, pero se utiliza para corregir el cambio electroquímico causado por las reacciones químicas, junto a la información sobre el tiempo de trayecto de la muestra entre el electrodo de trabajo y el electrodo que determina la fluidez. Esto se realiza con un software preinstalado.
El método de medida de acuerdo con la presente invención puede reducir sustancialmente el sesgo dependiente del nivel de hematocrito, al aprovechar la información sobre la fluidez de la muestra, además de reducir la posibilidad de obtener información errónea al excluir las muestras de sangre de fluidez anormalmente alta o baja. Además, el biosensor por sí mismo puede detectar, el cambio en la velocidad de muestreo de la sangre causada por el envejecimiento del mismo, proporcionando de este modo la información de control de calidad tras la fabricación. Además, el método de medida de la presente invención tiene la ventaja de que la muestra de sangre puede introducirse de forma rápida y constante, sin pretratamiento y pueden analizarse de manera precisa los niveles de glucosa en sangre en 5 s.
Los biosensores que se proporcionan con la parte para introducir la muestra 100 gozan de las siguientes ventajas:
(1) El fenómeno bolsillo de aire, que puede aparecer en el punto de comunicación entre la indentación para introducir la muestra y el canal de descarga de aire tras la rápida introducción de la muestra mediante la acción capilar, se elimina por el espacio extra vacío proporcionado detrás del punto de comunicación.
(2) Como la parte para introducir la muestra 100 está bien unida a la boca estrecha y al canal de descarga de aire, y el conducto entero se cubre con el sustrato superior 300, casi no existe la posibilidad de que los biosensores de la presente invención pierdan la muestra introducida y puedan manchar la mano del usuario con la muestra. Además, los biosensores pueden mantener una concentración de muestra consistente con una mínima evaporación, mejorando así la reproducibilidad analítica.
(3) Los biosensores proporcionados con la parte para introducir la muestra 100, en la que la indentación para introducir la muestra 101 comunica con el canal de descarga de aire 102 en una manera aproximadamente perpendicular, son capaces de introducir rápidamente una cantidad predeterminada de sangre muestreada e incrementar la precisión y la reproducibilidad.
(4) Finalmente, los biosensores de la presente invención son más cómodos durante el muestreo de sangre porque la parte para introducir la muestra 100, adaptada a la punta, puede entrar en contacto fácilmente con partes del cuerpo.
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Puede proporcionarse una mayor comprensión de la presente invención con los siguientes ejemplos que se exponen para ilustrar, pero que no pretenden limitar la presente invención.
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Ejemplo 1 Preparación de la solución de una composición de reactivo en capas sin ácido graso
Se disolvió una mezcla que contenía 30 mg de cloruro de rutenio hexamina (III) (41,6% en peso), 1 mg de carboximetilcelulosa (1,4% en peso), 1 mg de Triton X-100 (1,4% en peso), y 40 mg de oxidasa de la glucosa (55,6% en peso) en 1 ml de tampón PBS (pH 6,4), seguido de la eliminación por filtración de las partículas no disueltas. La solución de reactivo así obtenida se puso en la jeringa de un dispensador neumático (EFD XL100).
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Ejemplo 2 Preparación de la solución de una composición de reactivo en capas con ácido graso
Se disolvió una mezcla que contenía 30 mg de cloruro de rutenio hexamina (III) (32,6% en peso), 1 mg de carboximetilcelulosa (0,8% en peso), 5 mg de polivinilpirrolidona (4% en peso), 1 mg de Triton X-100 (0,8% en peso), 20 mg de ácido láurico (15,7% en peso), 30 mg de bromuro de miristiltrimetilamonio (23,6% en peso), y 40 mg de oxidasa de la glucosa (31,5% en peso) en 1 ml de tampón PBS (pH 6,4), seguido de la eliminación por filtración de las partículas no disueltas. La solución de reactivo así obtenida se puso en la jeringa de un dispensador neumático (EFD XL100).
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Ejemplo 3
En este ejemplo, se describe un método para medir los niveles de glucosa en sangre. El electrodo auxiliar 105 mostrado en las Fig. 2 y 3b se usó como electrodo de referencia en el biosensor de tipo celda electroquímica de capa fina. Se fabricó una celda electroquímica de capa fina para la medición de los niveles de glucosa en sangre como sigue.
Como se muestra en las Fig. 2, 3a y 3b, se imprimió por serigrafía una pasta conductora de carbono en un electrodo de trabajo 104, y un conector de electrodos 106, que es suficientemente grueso para conectar de forma tridimensional con un electrodo auxiliar, y entonces se secó a 140ºC durante cinco minutos. Luego, se imprimió por serigrafía una pasta de plata en un conector de circuito, en uno de los extremos del conector de electrodos 106 hasta el grosor de la mitad del sustrato 200. Asimismo, se imprimió por serigrafía con pasta de carbono un electrodo de referencia (auxiliar) 105 sobre el sustrato superior 300 y se secó en las mismas condiciones que el electrodo del sustrato inferior 400. Finalmente, se imprimió por serigrafía una pasta de plata al final del electrodo de referencia 105 para proporcionar un conector de circuito.
El sustrato intermedio 200, en el que se fijan la indentación para introducir la muestra 101, el canal de descarga de aire 102 y el espacio extra vacío 103, de tal manera que el extremo del electrodo que determina la fluidez 107 se posiciona en el espacio extra vacío, se preparó presionando una cinta adhesiva de poliéster de doble cara. En esta conexión, la estructura del sustrato intermedio se diseñó de forma que la proporción de la anchura del canal de descarga de aire 102 respecto a la indentación para introducir la muestra 101 era de 2:1 y la parte para introducir la muestra 100 tenía una capacidad de 0,5 \mul.
Para ensamblar los sustratos en el biosensor, como se muestra en las Fig. 2, 3a y 3b, el sustrato intermedio se presionó contra el sustrato inferior 400 con el electrodo impreso, seguido de la aplicación de la solución de una composición de reactivo en capas preparada en el Ejemplo 1 o 2 al electrodo de trabajo 104 expuesto a través del conducto de la muestra. Tras el secado del electrodo de trabajo a 45ºC durante 30 min., el sustrato superior 300 se presionó contra el sustrato intermedio 200 de forma que los conectores del circuito formados en los respectivos sustratos se ponen en contacto uno con otro, obteniéndose así un biosensor de tipo inverso. Las Fig. 3a y 3b muestran biosensores que tienen el electrodo que determina la fluidez formado en el sustrato inferior y el sustrato superior, respectivamente.
Para medir los niveles de glucosa en sangre utilizando el sensor fabricado, se tomaron 0,5 \mul de sangre del antebrazo de un paciente con una tira del sensor. Tan pronto como la tira se introdujo en el dispositivo de lectura, éste empezó a operar. La inserción de la tira en el dispositivo de lectura provocó una diferencia de potencial de 200 mV a aplicar al electrodo de trabajo 104 y al electrodo auxiliar 105 en la celda.
En más detalle, la tira insertada en el dispositivo de lectura funcionó como sigue.
Cuando la muestra de sangre se introdujo, al combinar la tira del sensor con el dispositivo de lectura 500, (Paso 1), ocurrió una diferencia de potencial predeterminada entre el electrodo de trabajo 104 y el electrodo auxiliar 105, y entre el electrodo que determina la fluidez 107 y el electrodo auxiliar 105 (Paso 2). La muestra introducida en la boca del conducto en la tira provocó un cambio primario en la señal eléctrica entre el electrodo de trabajo 104 y el electrodo auxiliar 105, lo que conduce a que se aplique el mismo voltaje al electrodo de trabajo y al electrodo auxiliar 105 (Paso 3). Luego, cuando se detectó el flujo de la muestra, el electrodo que determina la fluidez 107 generó un cambio eléctrico secundario, que también provocó que el electrodo auxiliar 105 y el electrodo que determina la fluidez 107 tuvieran el mismo voltaje, proporcionando información sobre la diferencia de tiempo desde que se detectó el cambio mediante el electrodo de trabajo 104 (Paso 4). Cuando la muestra de sangre estaba suficientemente mezclada con la capa de reactivo en el electrodo de trabajo 104, se aplicaron 200 mV entre el electrodo de trabajo 104 y el electrodo auxiliar 105 iniciando así las reacciones cíclicas en la celda electroquímica de capa fina de tipo inverso, seguido de la lectura de la corriente así obtenida (Paso 5). Finalmente, el nivel del sustrato en la muestra se determinó en base a la información de tiempo obtenida en el Paso 4 y la corriente en estado estacionario leída en el Paso 5 (Paso 6).
A través de esta sucesión de pasos, los biosensores de la presente invención pueden medir los niveles de glucosa en sangre de forma fácil, rápida y precisa.
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Ejemplo experimental 1
Voltamograma Cíclico que depende de la velocidad de escaneo de sensor de glucosa de tipo inverso
Usando los electrodos de tipo inverso fabricados en el Ejemplo 3, se examinó el voltamograma cíclico según la velocidad de escaneo.
Se realizó una prueba en una solución de KCl 1 M que contenía [Fe (CN)_{6}/[Fe(CN))_{6}]^{4-} 0,05 mM. A velocidades de escaneo de 3 mV/s o menos, los electrodos de la presente invención mostraban curvas S, que son características de las corrientes de estado estacionario en microelectrodos. Bajo una condición limitante, la concentración en las superficies de los dos electrodos llegaba a cero mientras la corriente entre ellos era independiente del potencial, y también la corriente limitante era independiente del potencial. A medida que la velocidad de escaneo aumentaba, también aumentaba la histéresis entre un estado reversible y uno irreversible. Cuando el v alcanzó o superó los 20 mV/s, el CV en los electrodos de tipo inverso de la presente invención mostró el mismo tipo de señal que los electrodos de tipo plano, pero no una señal en forma de S. Los resultados se muestran en la Fig. 5. La separación de picos ocurrió a un CV de unos 55 mV, que representan un proceso de transferencia de electrones altamente reversible entre el electrodo y la [Fe (CN)_{6}]^{3-/4-}.
En conjunto estos resultados son similares a los del estudio de microelectrodos ensamblados al azar debido al cambio de la difusión hemisférica a difusión lateral en un voltámetro de escaneo lineal, lo que sugiere que los electrodos de carbono de la presente invención tienen propiedades similares a las de los microelectrodos formados de partículas de carbono de tamaño aleatorio.
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Ejemplo experimental 2
Comparación del tiempo de respuesta cronoamperométrica entre un sensor de glucosa de tipo plano y un sensor de tipo plano
El tiempo de respuesta cronoamperométrica de los electrodos de tipo inverso fabricados en el Ejemplo 3 se comparó con el de los electrodos de tipo plano, que se colocan en un sustrato aislante, como sigue:
Comparado con los electrodos de tipo plano, los electrodos de tipo inverso mostraron velocidades superiores de respuesta a la muestra y corrientes en estado estacionario superiores. Los resultados se proporcionan en la Fig. 6. Si la tasa de reacción y la tasa de transferencia de electrones del mediador de transferencia electrones utilizado eran apropiadas, los electrodos de tipo inverso proporcionaban corrientes en estado estacionario en un periodo de tiempo muy corto. En relación con esto, se introdujo la constante de tiempo de estado estacionario (t* = Dt/ d^{2}) para determinar el estado de la corriente de estado estacionario que varía con la localización de los electrodos y con la composición de la capa de reactivo.
En la curva de respuesta de un biosensor fabricado según una realización de la presente invención, el tiempo necesario para alcanzar una corriente en estado estacionario era de alrededor de 2 s., y el coeficiente de difusión del mediador de transferencia de electrones cloruro de rutenio hexamina (III) era de 1,8 x 10^{-5} cm^{2}/s, con un espacio de 100 \mum entre los electrodos, de forma que t* = 0,36.
Resultados previos de investigación (J. F. Cassidy et al., Analyst, 118, 415 (1993)) muestran que una corriente en estado estacionario se obtiene cuando t* > 0,01. Los biosensores propuestos en la presente invención cumplen la condición de que 0,05 \leq t* \leq 8.
La Fig. 7 muestra los resultados de tiempo de respuesta cronoamperométrica a medida que la concentración de glucosa aumenta desde 2,77 a 33,3 mM. El tiempo de respuesta aumenta con la concentración de glucosa. Sin embargo, como se muestra en la gráfica, todos los casos analizados resultaron en determinaciones de la corriente en estado estacionario en 2 s. Esta respuesta rápida y completa de corriente en estado estacionario hace posible procesar los datos a una tasa mejorada y aumentar el implemento analítico de los electrodos.
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Ejemplo experimental 3
Influencia de los componentes de interferencia en un sensor de glucosa de tipo inverso
Se midió la influencia de los componentes de interferencia, tales como ácido ascórbico, acetaminofeno y ácido úrico, en un sensor de glucosa de tipo inverso que tiene una parte para introducir la muestra 100 de 0,5 \mul, fabricado como se ha descrito en el ejemplo 3.
Concretamente, se midieron las corrientes de respuesta respectivas a (a) una solución de 177 mg/dL de glucosa en tampón fosfato (pH 7,4), (b) una solución de 177 mg/dL de glucosa + acetaminofeno 660 \muM en tampón PBS, (c) una solución de 177 mg/dL de glucosa + ácido ascórbico 570 \muM en tampón PBS y (d) una solución de 177 mg/dL de glucosa + ácido úrico 916 \muM en tampón PBS.
Las corrientes se determinaron mediante la lectura de la respuesta cronoamperométrica 5 segundos después de la aplicación de un potencial de +0,2 V al electrodo de trabajo 104 (frente al electrodo de referencia). Los resultados se muestran en la Fig. 8.
Como se ve en la Fig. 8, no existe una diferencia notable entre los resultados de las soluciones de tampón PBS que contienen sólo glucosa 177 mg/dL (línea a) y en combinación con acetaminofeno 660 \muM (línea b), con ácido ascórbico 570 \muM (línea c) o con ácido úrico 916 \muM (línea d). En consecuencia, estos datos muestran que los sensores no se ven significativamente afectados por la presencia de los materiales de interferencia al potencial aplicado de
+0,2 V.
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Ejemplo experimental 4
Curva de calibración de un sensor de glucosa de tipo inverso a una solución de glucosa estándar
Se analizó la sensibilidad a soluciones de glucosa estándar del sensor de glucosa de tipo inverso preparado en el Ejemplo 3.
En detalle, se midieron los valores de corriente diez veces a cada concentración de glucosa 0, 50, 150, 300, 450 o 600 mg/dL en presencia de un campo eléctrico para el potencial aplicado de 0,2 V respecto al electrodo de referencia. La cantidad de muestra aplicada en la parte para introducir la muestra fue de 0,5 \mul y el tiempo de llenado no fue superior a 200 ms. Las mediciones se realizaron 2 s. después de la introducción de la muestra aplicando 0,2 V durante 3 s., y los valores de corriente se leyeron en 5 s. Los resultados se representan en la Fig. 10.
La Fig. 10 muestra las curvas de respuesta dinámica obtenidas a concentraciones de glucosa de 0 mg/dL (curva a), 50 mg/dL (curva b), 150 mg/dL (curva c), 300 mg/dL (curva d), 450 mg/dL (curva e) y 600 mg/dL (curva f).
Como es evidente a partir de las curvas, el biosensor de la presente invención puede alcanzar corrientes en estado estacionario, lo que asegura una medición rápida y precisa.
En el biosensor de la presente invención, la pendiente era de 0,093 [\muA/ (mg/dL)] y el coeficiente de correlación era de 0,997. Con estos resultados se demostró que el biosensor electroquímico tiene una sensibilidad lineal excelente (Fig. 9).
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Ejemplo experimental 5
Medida de fluidez de la sangre y corrección del sesgo del hematocrito
Usando un sensor de glucosa de tipo inverso proporcionado con un electrodo que determina la fluidez, fabricado como en el Ejemplo 3, se realizaron ensayos de medición de la fluidez de la sangre y de corrección del sesgo del hematocrito.
Se aplicó un potencial de 200 mV al electrodo de trabajo 104 y al electrodo que determina la fluidez 107 (frente al electrodo de referencia 105). Cuando las muestras de sangre se introdujeron a través de la indentación para introducir la muestra 101, se detectó un primer cambio repentino en la corriente, y se inicia el tiempo de medición. En el momento en el que la muestra alcanzó el espacio vacío 103, se detectó un segundo aumento de la corriente y se registró el intervalo de tiempo entre el primer y el segundo aumento de la corriente. La relación entre el tiempo de entrada de la muestra y el nivel de hematocrito se muestra en la Fig. 11. El experimento se realizó con sangre total tratada con fluoruro de sodio que contenía 180 mg/dL de glucosa y con niveles de hematocrito varia-
bles.
La ecuación de ajuste se obtuvo mediante el resultado anterior.
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Fórmula matemática I
Y = -72.23 + 0.58691X – 0.00084073 X^{2} - 1.1211x10^{-6} X^{3} + 5.7521x10^{-9} X^{4} - 9.1172x10^{-12} X^{5}
(en la que Y es el nivel de hematocrito estimado a partir del tiempo de llenado de la muestra X medido con el electrodo determinante de la fluidez)
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(Tabla pasa a página siguiente)
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La Tabla 1 muestra el nivel de hematocrito estimado a partir de la velocidad de tiempo de llenado de la muestra.
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TABLA 1 Niveles de Hematocrito estimados a partir del tiempo de llenado de la muestra en el biosensor preparado en el Ejemplo 3
1
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En un experimento separado, se obtuvieron curvas de calibración con varios niveles de hematocrito en la sangre total y se formuló la relación entre el nivel de hematocrito y la pendiente de respuesta en la Tabla 2, a continuación.
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TABLA 2 Curvas de calibración para diferentes niveles de hematocrito
2
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Los factores de corrección derivados de esta manera se utilizaron para recalibrar el nivel de glucosa medida respecto a sangre total con un nivel de hematocrito del 40%, lo que resulta en un biosensor que puede proporcionar concentraciones de glucosa independientemente del hematocrito. El dispositivo detecta en primer lugar la velocidad de introducción de la muestra, y luego determina el nivel de hematocrito en la muestra de sangre. El aparato aprovecha las curvas de calibración correspondientes para determinar el nivel de glucosa a partir de las corrientes medidas. La Tabla 3 muestra los resultados del experimento realizado como se ha indicado anteriormente.
TABLA 3 Concentración de glucosa en la sangre total
3
La velocidad de entrada de la muestra se midió con el electrodo que determina la fluidez y las curvas de calibración de la Tabla 2 se utilizaron para estimar el nivel de glucosa en la sangre total.
El electrodo que determina la fluidez también discriminó las muestras de sangre de fluidez inusual, es decir, muestras con niveles de hematocrito demasiado elevados o demasiado reducidos, y la introducción incorrecta de muestras de sangre debido a la formación de burbujas de aire. En tales casos, puede programarse el dispositivo de lectura para que emita un mensaje de alerta o un código de error para esa medición.
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Ejemplo Experimental 6
Componente de interferencia del hematocrito reducido mediante una capa de reactivo que contiene ácidos grasos
Las tiras del biosensor se prepararon como en el Ejemplo 4. Las muestras de sangre total heparinizada se centrifugaron para separar el plasma y los corpúsculos, que se mezclaron de nuevo para obtener muestras de sangre de tres niveles diferentes de hematocrito, del 20, 40 y 60%. Se evaluó el efecto del hematocrito en la medida de glucosa a tres concentraciones diferentes de glucosa utilizando los biosensores preparados con las capas de reactivo de los Ejemplos 1 y 2. Los resultados se exponen en las Tablas 4 y 5.
TABLA 4 Efecto del hematocrito en la medición de glucosa con los biosensores preparados con la capa de reactivo del Ejemplo 1
5
TABLA 5 Efecto del hematocrito en la medición de glucosa con los biosensores preparados con la capa de reactivo del Ejemplo 2
6
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Los resultados resumidos en la Tabla 5 muestran que el biosensor basado en el reactivo del Ejemplo 2 muestra una respuesta de interferencia por la variación de los niveles de hematocrito (desde el 20% al 60%) sustancialmente reducida, cuyo sesgo de medición es inferior al 10% en relación a un nivel de hematocrito del 40%.
Como se ha descrito aquí anteriormente, el método de medición de acuerdo con la presente invención puede reducir sustancialmente el sesgo producido por el hematocrito, al aprovechar la información de la fluidez de la muestra, además de disminuir la posibilidad de obtener información errónea al excluir las muestras de sangre de fluidez anormalmente elevada o reducida. Además, el propio biosensor puede detectar los cambios en la velocidad de muestreo de la sangre provocados por el envejecimiento del mismo, proporcionando de este modo información de control de calidad tras la fabricación. Además, el método de medida de la presente invención tiene la ventaja de que la muestra de sangre se introduce de forma rápida y constante, sin necesidad de pretratamiento y que analiza de manera precisa los niveles de glucosa en sangre en segundos, preferiblemente en 5 s.
Además, el biosensor, que se proporciona con una parte para introducir la muestra 100 que permite que la muestra se introduzca de forma rápida y constante, sin pretratamiento, y con un electrodo que determina la fluidez 107 capaz de detectar la fluidez de las muestras de sangre total, tiene una estructura simple y puede fabricarse fácilmente. Pueden introducirse unos 0,1 - 0,7 \mul de muestra de forma constante en el biosensor sin pretratamiento. Los electrodos del biosensor muestran una excelente reproducibilidad. El biosensor se basa en una estructura de celda electroquímica de capa fina, de tipo inverso, en la que el electrodo de trabajo 104 y el electrodo auxiliar 105 están enfrentados el uno con el otro de forma simétrica o asimétrica, con un hueco de varios centenares de \mum localizado entre los electrodos. En esta estructura de electrodo, la corriente alcanza un estado estacionario en 2 s. debido al efecto cíclico de las reacciones rédox formadas por una enzima, un sustrato contenido en la muestra y un mediador de transferencia de electrones. Al respecto, la capa de reactivo formada en el electrodo de trabajo o en el electrodo auxiliar se disuelve fácilmente en la muestra introducida a través del canal de la muestra. El cloruro de rutenio hexamina (III) que se utiliza en la presente invención puede transferir electrones decenas de veces más rápido que los mediadores de transferencia de electrones basados en Fe y se disuelve fácilmente. Además, la composición de la capa de reactivo empleada en el biosensor puede reducir sustancialmente el sesgo en la medición que se obtiene a causa del hematocrito, eliminando así la influencia de componentes de interferencia, componentes activadores de los electrodos y del hematocrito.

Claims (13)

1. Un método para medir los niveles de glucosa en sangre, utilizando un biosensor electroquímico que se proporciona con una celda electroquímica de capa fina de tipo inverso, y dicha celda electroquímica de capa fina de tipo inverso consta de:
un electrodo de trabajo (104) formado por un sustrato aislante plano (400);
un electrodo auxiliar (105) formado por un sustrato aislante plano (300) separado de manera que se enfrenta al electrodo de trabajo (104);
un electrodo para la determinación de la fluidez (107), situado a una distancia predeterminada del electrodo de trabajo (104) en el sustrato aislante plano (400, 300) utilizado para el electrodo de trabajo (104) o el electrodo auxiliar (105);
un espaciador adhesivo (200), proporcionado con una parte para introducir la muestra (100) que tiene un micro-conducto, para separar espacialmente el electrodo de trabajo (104) y el electrodo auxiliar (105) al interponerse entre ellos;
un electrodo conector (106), impreso con un material conductor grueso sobre una porción del electrodo auxiliar (105), para conectar de forma tridimensional el electrodo de trabajo (104) al electrodo auxiliar (105); y
una capa de reactivo que contiene un mediador de transferencia de electrones y una enzima de oxidación, y dicho método consta de los pasos de:
(1) introducir una muestra de sangre en la tira sensor insertada en el dispositivo de lectura;
(2) aplicar respectivas diferencias de potencial predeterminadas entre el electrodo de trabajo (104) y el electrodo auxiliar (105), y entre el electrodo para la determinación de la fluidez (107) y el electrodo auxiliar (105);
(3) provocar un primer cambio en la corriente entre el electrodo de trabajo (104) y el electrodo auxiliar (105) para permitir que estos electrodos tengan el mismo voltaje, a medida que se introduce la sangre;
(4) detectar el flujo de la muestra de sangre con el electrodo de determinación de la fluidez (107) para provocar un segundo cambio en la corriente entre el electrodo auxiliar (105) y el electrodo de determinación de la fluidez (107) ajustando los voltajes del electrodo auxiliar (105) y el electrodo de determinación de la fluidez (107) al mismo valor, proporcionando así información sobre la diferencia de tiempo desde el cambio detectado por el electrodo de trabajo (104);
(5) mezclar suficientemente la capa de reactivo con la muestra de sangre para aplicar un voltaje predeterminado entre el electrodo de trabajo (104) y el electrodo auxiliar (105) y provocar reacciones cíclicas en la celda electroquímica de capa fina de tipo inverso; y
(6) determinar el nivel de glucosa en la muestra de sangre en base a la información de tiempo obtenida en el paso (4) y la corriente de estado estacionario obtenida en el paso (5).
2. El método de acuerdo con la reivindicación 1, en el que la muestra de sangre del paso (1) oscila entre un volumen de 0,1 y 0,7 \mul, y se introduce en la tira sensor sin pretratamiento.
3. El método de acuerdo con la reivindicación 1, en el que las diferencias de potencial del paso (2) se provocan mediante un cambio eléctrico entre el electrodo de trabajo (104) y el electrodo auxiliar (105), y entre el electrodo de determinación de la fluidez (107) y el electrodo auxiliar (105), tras la aplicación de una corriente directa, una corriente alterna de alta o baja frecuencia, una impedancia elevada, o un pulso seleccionado de entre las ondas cuadradas, ondas piramidales, ondas semisinusoidales y ondas Gaussianas.
4. El método de acuerdo con la reivindicación 1, en el que un cambio eléctrico se atribuye a un cambio de voltaje, corriente, impedancia o capacitancia.
5. El método de acuerdo con la reivindicación 1, en el que la parte para introducir la muestra del biosensor tiene un conducto con una anchura que oscila entre 0,5 y 2 mm y una altura entre 50 y 250 \mum, facilitando así la introducción de la muestra de sangre.
6. El método de acuerdo con la reivindicación 1, en el que se impide que la muestra de sangre y la capa de reactivo desarrollen reacciones rédox en el paso (3), cuando se controla que el electrodo de trabajo (104) y el electrodo auxiliar (105) tengan el mismo voltaje.
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7. El método de acuerdo con la reivindicación 1, en el que la capa de reactivo que contiene la enzima y el mediador de transferencia de electrones se forma sobre el electrodo de trabajo (104) o sobre el electrodo auxiliar (105).
8. El método de acuerdo con la reivindicación 7, en el que se utiliza la oxidasa de la glucosa o deshidrogenasa de la glucosa como enzima.
9. El método de acuerdo con la reivindicación 7, en el que el mediador de transferencia de electrones facilita la transferencia de electrones desde la enzima al aceptor final de electrones y es cloruro de rutenio hexamina (III).
10. El método de acuerdo con la reivindicación 7, en el que la capa de reactivo comprende además un ácido graso o su sal y una sal de amonio cuaternario para reducir además el sesgo dependiente del nivel de hematocrito.
11. El método de acuerdo con la reivindicación 10, en el que el ácido graso tiene una cadena alquilo de 4 a 20 carbonos, preferiblemente en el que el ácido graso se selecciona de entre el grupo que consta de ácidos grasos saturados que tienen 6 a 12 átomos de carbono, más preferiblemente en el que el ácido graso se selecciona del grupo que consiste en el ácido caproico, ácido heptanoico, ácido caprílico, ácido nonanoico, ácido cáprico, ácido undecanoico, ácido láurico, ácido tridecanoico, ácido mirístico, ácido pentadecanoico, ácido palmítico, ácido heptadecanoico, ácido esteárico, ácido heptadecanoico, ácido esteárico, ácido nonadecanoico y ácido araquidónico, y más preferiblemente en el que el ácido graso o su sal se añade en una cantidad de entre el 0,1 y el 20% en peso de todos los componentes sólidos.
12. El método de acuerdo con la reivindicación 10, en el que la sal de amonio cuaternario se selecciona del grupo que consiste en los compuestos haluro del dodeciltrimetilamonio, miristiltrimetilamonio, cetiltrimetilamonio, octadeciltrimetilamonio y tetrahexilamonio, y se añade preferiblemente en una cantidad de entre el 0,1 y el 30% en peso de todos los componentes sólidos.
13. El método de acuerdo con la reivindicación 1, en el que la capa de reactivo del biosensor se forma en el electrodo de trabajo (104) o el electrodo de determinación de la fluidez (107), o en ambos, y los dos electrodos se sitúan de manera que la constante de tiempo de la corriente en estado estacionario está entre 0,05 y 8,0, ambos inclusive.
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Families Citing this family (76)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8057404B2 (en) * 2005-10-12 2011-11-15 Panasonic Corporation Blood sensor, blood testing apparatus, and method for controlling blood testing apparatus
US8114269B2 (en) * 2005-12-30 2012-02-14 Medtronic Minimed, Inc. System and method for determining the point of hydration and proper time to apply potential to a glucose sensor
TW200813429A (en) * 2006-09-01 2008-03-16 Gen Life Biotechnology Co Ltd Sensor for inspecting the total cholesterol in blood sample
EP2058651B1 (en) * 2006-10-19 2015-09-02 Panasonic Healthcare Holdings Co., Ltd. Method for measuring hematocrit value of blood sample, method for measuring concentration of analyte in blood sample, sensor chip and sensor unit
EP2122344B8 (en) 2007-02-20 2019-08-21 Oxford Nanopore Technologies Limited Lipid bilayer sensor system
GB2447043A (en) * 2007-02-20 2008-09-03 Oxford Nanolabs Ltd Lipid bilayer sensor system
KR100854389B1 (ko) * 2007-02-28 2008-08-26 주식회사 아이센스 전기화학적 바이오센서
KR20080080841A (ko) * 2007-03-02 2008-09-05 주식회사 아이센스 전기화학적 바이오센서 및 이의 측정기
KR100874158B1 (ko) * 2007-03-14 2008-12-15 주식회사 아이센스 전기화학적 바이오센서 및 이의 측정기
KR100874159B1 (ko) * 2007-03-28 2008-12-15 주식회사 아이센스 전기화학적 바이오센서 및 이의 측정기
CN101303347B (zh) * 2007-04-20 2013-07-31 天津亿朋医疗器械有限公司 生物传感器
US8709709B2 (en) 2007-05-18 2014-04-29 Luoxis Diagnostics, Inc. Measurement and uses of oxidative status
KR100885074B1 (ko) * 2007-07-26 2009-02-25 주식회사 아이센스 미세유로형 센서 복합 구조물
KR100896234B1 (ko) * 2007-08-10 2009-05-08 주식회사 아이센스 전기화학적 바이오센서 및 이의 측정기
JP2009097877A (ja) * 2007-10-12 2009-05-07 National Institute Of Advanced Industrial & Technology バイオセンサチップ
KR100906023B1 (ko) 2007-10-23 2009-07-06 주식회사 헬스피아 혈당 측정 시스템
KR100890988B1 (ko) * 2007-10-29 2009-03-31 주식회사 아이센스 일정 소량의 시료를 균일하게 도입할 수 있는 시료도입부를구비한 전기화학적 바이오센서
GB0724736D0 (en) 2007-12-19 2008-01-30 Oxford Nanolabs Ltd Formation of layers of amphiphilic molecules
US7678250B2 (en) * 2008-01-22 2010-03-16 Home Diagnostics, Inc. Reagent compositions for use in electrochemical detection
KR200448186Y1 (ko) * 2008-03-28 2010-03-24 한국생명공학연구원 바이오센서용 다채널 스트립
KR100972108B1 (ko) 2008-07-09 2010-07-26 주식회사 올메디쿠스 바이오센서
US8636884B2 (en) * 2008-09-15 2014-01-28 Abbott Diabetes Care Inc. Cationic polymer based wired enzyme formulations for use in analyte sensors
EP2387714B1 (en) * 2009-01-23 2018-03-14 Polymer Technology Systems, Inc. Diagnostic multi-layer dry phase test strip with integrated biosensors
GR1007310B (el) 2009-03-09 2011-06-10 Αχιλλεας Τσουκαλης Εμφυτευσιμος βιοαισθητηρας με αυτοματη βαθμονομηση
KR101032691B1 (ko) * 2009-04-17 2011-05-06 (주)디지탈옵틱 신속한 혈구분리가 가능한 질병진단용 바이오센서
TW201107484A (en) * 2009-08-27 2011-03-01 Nat Univ Tsing Hua Detection device of screen-printed electrode with high sensitivity
US8101065B2 (en) * 2009-12-30 2012-01-24 Lifescan, Inc. Systems, devices, and methods for improving accuracy of biosensors using fill time
US8877034B2 (en) 2009-12-30 2014-11-04 Lifescan, Inc. Systems, devices, and methods for measuring whole blood hematocrit based on initial fill velocity
JP5509969B2 (ja) * 2010-03-25 2014-06-04 ニプロ株式会社 測定装置及び測定方法
US8235897B2 (en) 2010-04-27 2012-08-07 A.D. Integrity Applications Ltd. Device for non-invasively measuring glucose
KR20130132529A (ko) * 2010-12-09 2013-12-04 아서 퀘밸 유체 샘플의 분석을 위한 미세-유체 장치
RU2564923C2 (ru) * 2010-12-31 2015-10-10 Цилаг Гмбх Интернэшнл Системы и способы измерений аналита с высокой точностью
TWI425211B (zh) * 2011-04-12 2014-02-01 Eps Bio Technology Corp 電化學測試片及電化學測試方法
CN102954994A (zh) * 2011-08-25 2013-03-06 苏州富宜康生物科技有限公司 一种具备抗干扰功能的生物电化学池
KR101355127B1 (ko) * 2011-09-30 2014-01-29 주식회사 아이센스 전기화학적 바이오센서용 산화환원반응 시약조성물 및 이를 포함하는 바이오센서
US8623660B2 (en) * 2011-09-30 2014-01-07 Lifescan Scotland Limited Hand-held test meter with phase-shift-based hematocrit measurement circuit
KR101367262B1 (ko) * 2011-11-11 2014-02-26 주식회사 아이센스 자가혈당측정기 및 이를 이용한 측정 이상 감지 방법
GB201202519D0 (en) 2012-02-13 2012-03-28 Oxford Nanopore Tech Ltd Apparatus for supporting an array of layers of amphiphilic molecules and method of forming an array of layers of amphiphilic molecules
TWI472755B (zh) * 2012-03-06 2015-02-11 Univ Nat Central 利用交流阻抗法量測糖化蛋白比例之方法
SG11201406203UA (en) 2012-04-19 2014-11-27 Aytu Bioscience Inc Multiple layer gel
KR101239381B1 (ko) 2012-05-02 2013-03-05 주식회사 아이센스 산화환원반응용 시약의 안정제 조성물
US9541518B2 (en) 2012-05-17 2017-01-10 Panasonic Intellectual Property Management Co., Ltd. Electrochemical detector and method for producing same
KR101357134B1 (ko) 2012-05-23 2014-02-05 주식회사 아이센스 전기화학적 바이오센서, 휴대용 계측기 및 이들을 사용한 혈액시료 중 분석대상물질의 농도 측정방법
KR101466222B1 (ko) * 2012-06-01 2014-12-01 주식회사 아이센스 정확도가 향상된 전기화학적 바이오센서
TWI513978B (zh) * 2012-06-08 2015-12-21 Hmd Biomedical Inc 檢測試片、檢測裝置及檢測方法
RU2713046C2 (ru) 2012-06-28 2020-02-03 Сименс Хелткэа Дайагностикс Инк. Считывающее устройство и способ усиления сигнала
JP6140284B2 (ja) * 2012-07-27 2017-05-31 アセンシア・ダイアベティス・ケア・ホールディングス・アーゲーAscensia Diabetes Care Holdings AG 既使用で乾燥したセンサを検出するシステム及び方法
TWI464396B (zh) * 2012-08-07 2014-12-11 Delbio Inc 生物檢測試片及其系統
AU2013334616A1 (en) * 2012-10-23 2014-06-26 Aytu Bioscience, Inc. Methods and systems for measuring and using the oxidation-reduction potential of a biological sample
GB201313121D0 (en) 2013-07-23 2013-09-04 Oxford Nanopore Tech Ltd Array of volumes of polar medium
TWI610077B (zh) * 2013-07-02 2018-01-01 來富肯蘇格蘭有限公司 基於電化學的分析試驗帶及用於測定一體液取樣中之一分析物的方法
WO2015079635A1 (ja) 2013-11-27 2015-06-04 パナソニックヘルスケアホールディングス株式会社 血液成分量の測定方法
WO2015103225A1 (en) * 2013-12-31 2015-07-09 Illumina, Inc. Addressable flow cell using patterned electrodes
US10436772B2 (en) 2014-08-25 2019-10-08 United Arab Emirates University Method and system for counting white blood cells electrically
WO2016030713A1 (en) 2014-08-25 2016-03-03 United Arab Emirates University Apparatus and method for detection and quantification of biological and chemical analytes
US10564123B2 (en) 2014-05-25 2020-02-18 United Arab Emirates University Bioreactor system and method of operating same for cellular composition identification and quantification
KR101671456B1 (ko) 2014-07-11 2016-11-16 최강 바이오센서
GB201418512D0 (en) 2014-10-17 2014-12-03 Oxford Nanopore Tech Ltd Electrical device with detachable components
KR102170067B1 (ko) * 2014-12-19 2020-10-27 에프. 호프만-라 로슈 아게 적어도 하나의 분석물을 전기 화학적으로 검출하기 위한 테스트 엘리먼트
WO2016127105A1 (en) * 2015-02-05 2016-08-11 The Regents Of The University Of California Multiple-use renewable electrochemical sensors based on direct drawing of enzymatic inks
TWI534426B (zh) 2015-03-27 2016-05-21 國立清華大學 生物檢測方法
US10107824B2 (en) 2015-04-20 2018-10-23 National Tsing Hua University Method for detecting cardiovascular disease biomarker
EP3088880B1 (en) 2015-04-28 2024-04-24 Industrial Technology Research Institute Methods for measuring analyte concentration
GB201511299D0 (en) * 2015-06-26 2015-08-12 Inside Biometrics Ltd Test device and method of using a test device
JP6403653B2 (ja) * 2015-11-05 2018-10-10 シラグ・ゲーエムベーハー・インターナショナルCilag GMBH International 高精度分析物測定用システム及び方法
CN108368472B (zh) 2016-02-04 2021-09-21 泰尔茂株式会社 血糖值测定试剂、血糖值测定芯片和血糖值测定装置套组
GB201611770D0 (en) 2016-07-06 2016-08-17 Oxford Nanopore Tech Microfluidic device
US20200405200A1 (en) * 2016-12-09 2020-12-31 Northeastern University Durable Enzyme-Based Biosensor and Process for Drop Deposition Immobilization
EP3578634B1 (en) 2017-07-14 2021-12-15 Terumo Kabushiki Kaisha Blood sugar level measurement chip and blood sugar level measurement device set
JP6609001B2 (ja) * 2018-06-04 2019-11-20 シラグ・ゲーエムベーハー・インターナショナル 高精度分析物測定用システム及び方法
WO2020183172A1 (en) 2019-03-12 2020-09-17 Oxford Nanopore Technologies Inc. Nanopore sensing device and methods of operation and of forming it
KR102255442B1 (ko) * 2019-03-29 2021-05-24 동우 화인켐 주식회사 바이오 센서
CA3088582C (en) * 2019-08-02 2023-10-31 Bionime Corporation Micro biosensor and method for reducing measurement interference using the same
EP4016068A1 (en) * 2020-12-21 2022-06-22 F. Hoffmann-La Roche AG Sensor assembly
KR20230147415A (ko) 2022-04-14 2023-10-23 서강대학교산학협력단 전기화학적 센서, 이를 이용한 검출방법 및 이의 제조방법
CN114964601B (zh) * 2022-05-24 2024-05-14 深圳市一鸣新材料有限公司 一种用于电池内部的压力变化实时监测装置

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5366609A (en) * 1993-06-08 1994-11-22 Boehringer Mannheim Corporation Biosensing meter with pluggable memory key
US6287451B1 (en) * 1999-06-02 2001-09-11 Handani Winarta Disposable sensor and method of making
JP2002155858A (ja) 2000-09-08 2002-05-31 Toyota Industries Corp 容量可変型圧縮機の制御弁
DE10065748A1 (de) 2000-12-29 2002-07-18 Infineon Technologies Ag Datenträgeranordnung mit einer Anzeigeeinrichtung
KR100475634B1 (ko) * 2001-12-24 2005-03-15 주식회사 아이센스 일정 소량의 시료를 빠르게 도입할 수 있는 시료도입부를구비한 바이오 센서
KR100554649B1 (ko) * 2003-06-09 2006-02-24 주식회사 아이센스 전기화학적 바이오센서

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