ES2321687T3 - Receptor activador implicado en la citotoxicidad natural mediada por las celulas destructoras naturales humanas y anticuerpos que identifican dicho receptor. - Google Patents

Receptor activador implicado en la citotoxicidad natural mediada por las celulas destructoras naturales humanas y anticuerpos que identifican dicho receptor. Download PDF

Info

Publication number
ES2321687T3
ES2321687T3 ES00989877T ES00989877T ES2321687T3 ES 2321687 T3 ES2321687 T3 ES 2321687T3 ES 00989877 T ES00989877 T ES 00989877T ES 00989877 T ES00989877 T ES 00989877T ES 2321687 T3 ES2321687 T3 ES 2321687T3
Authority
ES
Spain
Prior art keywords
cells
isolated
antibody
nkp30
antibodies
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
ES00989877T
Other languages
English (en)
Inventor
Alessandro Moretta
Cristina Bottino
Roberto Biassoni
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Innate Pharma SA
Universita degli Studi di Genova
Original Assignee
Innate Pharma SA
Universita degli Studi di Genova
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from CA2288307A external-priority patent/CA2288307C/en
Application filed by Innate Pharma SA, Universita degli Studi di Genova filed Critical Innate Pharma SA
Application granted granted Critical
Publication of ES2321687T3 publication Critical patent/ES2321687T3/es
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/705Receptors; Cell surface antigens; Cell surface determinants
    • C07K14/70503Immunoglobulin superfamily
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P1/00Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system
    • A61P1/16Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system for liver or gallbladder disorders, e.g. hepatoprotective agents, cholagogues, litholytics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P11/00Drugs for disorders of the respiratory system
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P17/00Drugs for dermatological disorders
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12Antivirals
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00Antineoplastic agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00Drugs for immunological or allergic disorders
    • A61P37/02Immunomodulators
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00Drugs for immunological or allergic disorders
    • A61P37/02Immunomodulators
    • A61P37/06Immunosuppressants, e.g. drugs for graft rejection
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/18Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
    • C07K16/28Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants
    • C07K16/2803Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants against the immunoglobulin superfamily
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K2317/00Immunoglobulins specific features
    • C07K2317/30Immunoglobulins specific features characterized by aspects of specificity or valency
    • C07K2317/34Identification of a linear epitope shorter than 20 amino acid residues or of a conformational epitope defined by amino acid residues

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Transplantation (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Pulmonology (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Polipéptido aislado con propiedades activadoras del receptor de células destructoras naturales (NK), que es capaz de unirse a péptidos de transducción de señal de CD3xi (grupo determinante), presentando dicho polipéptido una secuencia con por lo menos el 80% de homología con una secuencia seleccionada de entre el grupo constituido por la SEC. ID. nº 2, SEC. ID. nº 4, SEC. ID. nº 5, SEC. ID. nº 6 y SEC. ID. nº 7.

Description

Receptor activador implicado en la citotoxicidad natural mediada por las células destructoras naturales humanas y anticuerpos que identifican dicho receptor.
Campo de la invención
La presente invención se refiere a un nuevo compuesto denominado NKp30 que es expresado de manera selectiva por todas las células NK maduras y que está implicado en la citotoxicidad natural humana como receptor activador, a nuevos anticuerpos que se unen a la estructura NKp30 y a las utilizaciones farmacéuticas y medicinales de los
mismos.
Antecedentes de la invención
Las células destructoras naturales (células NK) proporcionan un mecanismo efector eficaz mediante el cual la inmunovigilancia elimina las células tumorales o infectadas por virus. Una característica bien definida de las células NK es su capacidad para lisar células diana deficientes en la expresión de moléculas MHC de clase I. Esta observación ha sido básica para la identificación de diferentes receptores inhibidores expresados por las células NK. En la unión a las moléculas MHC de clase I expresadas en las células diana, estos receptores liberan señales inhibidoras que regulan por disminución las funciones citolíticas. En los seres humanos, el reconocimiento de las moléculas HLA de clase I está mediado por dos tipos de receptores: los que pertenecen a la superfamilia Ig que incluyen tanto a las proteínas KIR como a LIR-1/ILT-2 cuyos ligandos están representados por varios grupos de alelos HLA-A, -B y -C y el complejo receptor CD94/NKG2A lectinoide que reconoce las moléculas HLA-E. La expresión de estos receptores inhibidores explica cómo las células NK pueden distinguir entre células HLA deficientes y las normales. Por otra parte, existió información limitada en los receptores NK activadores responsables de la activación de la citotoxicidad natural. Sólo recientemente se ha identificado dos receptores distintos específicos de NK que desempeñan una función importante en el reconocimiento mediado por las células NK y la destrucción de células diana defectuosas HLA de clase I. Estos receptores, denominados NKp46 y NKp44, son miembros de la superfamilia Ig. Su reticulación provocada por los mAb específicos conduce a una activación potente de las células NK lo que produce un aumento de las concentraciones de Ca^{++} intracelular, en la activación de la citotoxicidad y liberación de linfocina. Significativamente, el enmascaramiento mediado por el mAb NKp46 y/o NKp44 produjo la inhibición de la citotoxicidad de NK frente a la mayoría, pero no todas, las células diana. Estos descubrimientos, aunque proporcionan pruebas para una función central de NKp46 y NKp44 en la citotoxicidad natural, también implicaban la existencia de receptores adicionales.
Sumario de la invención
La presente invención da a conocer la identificación de un nuevo receptor activador implicado en el reconocimiento y la destrucción de células diana, mediados por las células NK. Este nuevo receptor de aproximadamente 30 kD en SDS-PAGE ha sido denominado NKp30, y es un miembro de la superfamilia Ig caracterizado por un único dominio de tipo V, un resto cargado en la porción transmembranaria y la ausencia del motivo ITAM en la cola citoplasmática. La búsqueda en las bases de datos EMBUGenbank/DDBJ puso de manifiesto que el ADNc de NKp30 clonado es idéntico a una forma cortada y empalmada alternativamente identificada previamente del gen 1 C7 (disponible bajo el nº de registro AF031138). Hasta la fecha, sin embargo, debido a la falta de anticuerpos monoclonales específicos, no pudo identificarse ni la función ni la distribución de la superficie en el supuesto producto del gen 1 C7. El documento WO 99/23867 da a conocer una secuencia nucleotídica que presenta una homología con la secuencia que codifica el nuevo receptor de activación, pero codificando proteínas con diferentes actividades biológicas, es decir BMOG, un miembro proteico de la familia de la glucoproteína mielina oligodendrocítica. El documento WO 95/06247 da a conocer una molécula específica para las células NK pero constituida por un par glucoproteínico PEN5-\alpha y PEN5-\beta. La base de datos EMBL de 1 sept. 1999, nº de registro AJ 22 31 53 da a conocer únicamente una secuencia nucleotídica específica correspondiente a la SEC. ID. nº 1 y la base de datos SWISSPROT, 01 enero 1998, nº de registro 01 49 32 una secuencia de aminoácidos específica correspondiente a la SEC. ID. nº 2.
AcNKp30 se expresa de manera selectiva en la superficie de las células humanas NK maduras, y se asocia a los péptidos de transducción de señal CD3\zeta que se transforman en tirosina fosforilada durante la activación de la célula. NKp30 puede cooperar con NKp46 y/o NKp44 en la producción de citotoxicidad mediada por NK frente a la mayoría de las células diana, mientras que representa el mayor receptor de activación en la destrucción de determinados tumores (por ejemplo melanoma humano de tipo MEL15).
La invención proporciona anticuerpos que se unen de manera selectiva a estructuras de NKp30. La reticulación mediada por anticuerpos de NKp30 produce la activación potente de las células NK, mientras que el enmascaramiento de NKp30 mediado por anticuerpos inhibe la citotoxicidad natural de NK. Un hibridoma que produce anticuerpos monoclonales denominados AZ20 en el apartado "Ejemplos" más adelante se ha depositado en la C.N.C.M. el 8 de noviembre de 2000 (C.N.C.M. Institut Pasteur; 25, rue du Docteur Roux; F-75724 Paris Cedex 15; Francia).
La presente invención proporciona de este modo herramientas útiles para la purificación de células positivas a NK y para la regulación de la citotoxicidad natural de las células NK. Las herramientas según la invención son de particular interés para la regulación de las reacciones del aloinjerto en el hospedador o del injerto en el hospedador (mejora del injerto o del trasplante, injerto contra hospedador GvH, pero también injerto contra tumor GvT o injerto contra leucemia GvL) y para la regulación del crecimiento de células patológicas tales como las células tumorales, las células infectadas por microorganismos o infectadas por virus.
Descripción detallada de la invención
La presente invención se refiere a un polipéptido aislado tal como se define en las reivindicaciones 1 y 2.
La presente invención da a conocer compuestos aislados que comprenden por lo menos una secuencia de aminoácidos que es por lo menos 80% idéntica en toda su longitud a una secuencia de aminoácidos seleccionada de entre el grupo constituido por la SEC. ID. nº 2, SEC. ID. nº 4, SEC. ID. nº 5, SEC. ID. nº 6, a las secuencias de aminoácidos de cualquier fragmento inmunógeno de las mismas y a la secuencia SEC. ID. nº 7.
Entre estos compuestos, se prefieren los que comprenden por lo menos una secuencia de aminoácidos que es por lo menos 90% idéntica en toda su longitud a una secuencia de aminoácidos seleccionadas de entre dicho grupo y se prefieren especialmente aquellos para los cuales dicha identidad es de por lo menos el 95%. Además, son muy preferidos aquellos para los que dicha identidad es de por lo menos el 97% y son especialmente muy preferidos entre aquellos para los que dicha identidad es de por lo menos el 98% y por lo menos el 99%, con aquellos para los que es de por lo menos el 99% son las más preferidos.
El término "Identidad", tal como se conoce en la técnica, es una relación entre dos o más secuencias polipeptídicas, o dos o más secuencias polinucleotídicas, como puede darse el caso, determinada comparando las secuencias. En esta materia, "identidad" significa también el grado de conexión de la secuencia entre las secuencias polipeptídicas o polinucleotídicas, como puede darse el caso, determinado por la igualdad entre los segmentos de dichas secuencias. La "identidad" puede calcularse fácilmente por procedimientos conocidos, incluyendo pero sin limitarse a los descritos en Computational Molecular Biology, Lesk, A.M., ed., Oxford University Press, Nueva York, 1988. Los procedimientos para determinar la identidad se diseñan para dar la mayor compatibilidad entre las secuencias probadas. Además, los procedimientos para determinar la identidad están codificados en programas informáticos disponibles al público, tal como el programa GAP en el paquete del programa GCG (Devereux, J., et al., Nucleic Acids Research 12(1): 387 (1984), BLAST, BLASTN (Altschul, S.F. et al., J. Molec. Biol. 215: 403-410 (1990) y FASTA (Pearson y Lipman Proc. Natl. Acad. Sci. USA 85; 2444-2448 (1988).
La SEC. ID. nº 2 se refiere al polipéptido humano NKp30 de 190 aminoácidos (aproximadamente 30 kD en SDS-PAGE), (que es expresado de manera selectiva por las células NK, y particularmente las células NK maduras, a la SEC. ID. nº 4 para la zona extracelular del receptor NKp30 humano, a la SEC. ID. nº 5 para la zona transmembranaria del receptor NKp30 humano, a la SEC. ID. nº 6 para la cola citoplasmática del receptor NKp30 humano, a la SEC. ID. nº 7 para un péptido inmunógeno de 15 aminoácidos derivado de la SEC. ID. nº 2. La presente invención da a conocer también variantes de los polipéptidos mencionados anteriormente, es decir polipéptidos que varían de los referentes por sustituciones conservadoras de aminoácidos, mediante las cuales un resto es sustituido por otro con características similares. Dichas sustituciones típicas son entre otras Ala, Val, Leu e Ile; entre Ser y Thr; entre los restos ácidos Asp y Glu; entre Asn y Gln; y entre los restos básicos Lys y Arg; o los restos aromáticos Phe y Tyr. Más generalmente, las variantes conservadoras son incluso capaces de actuar como receptores de activación cuando son expresados por células NK en una posición apropiada al receptor. Estos compuestos se denominarán en la presente memoria "compuestos de aminoácidos de la invención".
Asimismo, se proporcionan compuestos aislados que comprenden:
-
por lo menos una secuencia de aminoácidos que es por lo menos 80% idéntica en toda su longitud a una secuencia de aminoácidos seleccionadas de entre el grupo constituido por las SEC. ID. nº 2, SEC. ID. nº 4, SEC. ID. nº 5, SEC. ID. nº 6, las secuencias de aminoácidos de cualquier fragmento inmunógeno de las mismas, y la secuencia SEC. ID. nº 7 (preferentemente ésta es por lo menos una secuencia de aminoácidos 100% idéntica en toda su longitud a una secuencia de aminoácidos seleccionada de entre grupo) y que comprende también
-
por lo menos una cadena CD3\zeta.
La expresión "Fragmento inmunógeno", significa en la presente memoria cualquier fragmento polipeptídico o peptídico que es capaz de provocar una respuesta inmunitaria tal como (i) la generación de anticuerpos que unen dicho fragmento y/o que unen cualquier forma de la molécula NKp30 que comprende dicho fragmento, incluyendo el receptor de la membrana y mutantes procedentes del mismo, (ii) la estimulación de una respuesta de linfocitos T que implica linfocitos T que reaccionan con el complejo bimolecular que comprende cualquier molécula MHC y un péptido derivado de dicho fragmento, (iii) la unión de vehículos transfectados tales como bacteriófagos o los genes que expresan bacterias que codifican inmunoglobulinas de mamífero. Alternativamente, un fragmento inmunógeno se refiere también a cualquier construcción capaz de provocar una respuesta inmunitaria como se definió anteriormente, tal como un fragmento peptídico conjugado con una proteína transportadora por acoplamiento covalente, un montaje híbrido de polipéptido recombinante que comprende dicho fragmento peptídico en su secuencia de aminoácidos y específicamente incluye células transfectadas con un ADNc de cuya secuencia comprende una fracción que codifica dicho fragmento.
La presente invención da a conocer asimismo algún compuesto aislado que comprende por lo menos una secuencia polinucleotídica que es por lo menos 80% idéntica en toda su longitud a una secuencia polinucleotídica seleccionada de entre el grupo constituido por las SEC. ID. nº 1, SEC. ID. nº 10, SEC. ID. nº 12, SEC. ID. nº 13 y las secuencias polinucleotídicas que codifican según el código genético universal y teniendo en cuenta su redundancia, las secuencias SEC. ID. nº 2, SEC. ID. nº 4, SEC. ID. nº 5 y SEC. ID. nº 6, las secuencias de aminoácidos de cualquier fragmento inmunógeno de las secuencias SEC. ID. nº 2, SEC. ID. nº 4, SEC. ID. nº 5 y SEC. ID. nº 6 y la secuencia SEC. ID. nº 17. Entre estos compuestos, se prefieren los que comprenden por lo menos una secuencia polinucleotídica que es por lo menos 90% idéntica en toda su longitud a una secuencia polinucleotídica seleccionada de dicho grupo y se prefieren especialmente las que dicha identidad es por lo menos del 95%. Además, son muy preferidas las que dicha identidad es de por lo menos el 97%; entre éstas, son particularmente preferidas las que dicha identidad es de por lo menos el 98% y por lo menos el 99%, con las que son de por lo menos el 99% son las más preferidas. Preferentemente los compuestos aislados comprenden por lo menos una secuencia polinucleotídica que codifica un polipéptido que conserva sustancialmente la misma función o actividad biológica que el polipéptido maduro codificado por un ADN de SEC. ID. nº 1, SEC. ID. nº 10, SEC. ID. nº 12 y SEC. ID. nº 13. Se proporcionan compuestos que comprenden por lo menos un polinucleótido que hibrida, particularmente en condiciones severas, a dichos compuestos aislados. Dichos polinucleótidos de hibridación incluyen principalmente el grupo de polinucleótidos complementarios a los de la SEC. ID. nº 1, SEC. ID. nº 10, SEC. ID. nº 12 y SEC. ID. nº 13. Un ejemplo específico de condiciones severas de hibridación es la incubación durante la noche a 42ºC en una solución que comprende: formamida al 50%, 5 \times SSC (NaCl 150 mM, citrato trisódico 15 mM), fosfato sódico 50 mM (pH 7,6), 5\times solución de Denhardt, sulfato de dextrano al 10% y 20 microgramos/ml de ADN de esperma de salmón desnaturalizado y cizallado, seguido de lavado del soporte de hibridación en 0,1\times SSC a aproximadamente 65ºC. Las condiciones de hibridación y lavado son muy conocidas y están ejemplificadas en Sambrook, et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, segunda edición, Cold Spring Harbor, N.Y., (1989), particularmente el capítulo 11 en la misma. La solución de hibridación puede utilizarse también con secuencias polinucleotídicas proporcionas por la invención. La presente invención también da a conocer variantes de NKp30 expresadas en cualquier especie de mamífero aparte de la especie humana, principalmente en mono, rata, ratón, perro, vaca y conejo. De hecho dichas variantes parecen muy conservadas entre las especies. Se da a conocer también los mutantes de NKp30 no funcionales tales como los mutantes puntuales del dominio transmembranario en los que el resto R es desplazado por un resto sin carga tal como A. Estos compuestos se denominarán en la presente memoria "compuestos pln de la invención".
La SEC. ID. nº 1 se refiere al ADNc de NKp30 humano (ARNm de aproximadamente 1 kb), la SEC. ID. nº 10 a la sonda de ADNc de NKp30 de 421 bp (posición 57 a posición 477 de la SEC. ID. nº 1), la SEC. ID. nº 12 a un producto de la ampliación del ADNc de NKp30 de 606 bp (desde la posición 57 hasta la posición 662 en la SEC. ID. nº 1), la SEC. ID. nº 13 a la secuencia de codificación NKp30 desde la posición 64 a la posición 636 en la SEC. ID. nº 1. Los polinucleótidos significan en la presente memoria que incluyen también oligonucleótidos, y corresponden a cualquier naturaleza polinucleotídica, incluyendo ADN, ADN genómico, ARN, ARNt, ARNm y ADNc. La presente invención proporciona también vectores de transfección que llevan por lo menos un compuesto aislado seleccionado de entre el grupo constituido por dichos producto polinucleótidos y con células transfectadas por al menos uno de dichos compuestos aislados o por al menos uno de dichos vectores.
La invención da a conocer asimismo compuestos polinucleotídicos seleccionados de entre el grupo constituido por la pareja (SEC. ID. nº 8; SEC. ID. nº 9), la pareja (SEC. ID. nº 8; SEC. ID. nº 11), el polinucleótido con la SEC. ID. nº 10, el polinucleótido con la SEC. ID. nº 12. Dichos compuestos son principalmente útiles para la detección de NKp30 en una muestra. Las parejas tales como la (SEC. ID. nº 8; SEC. ID. nº 9) y la (SEC. ID. nº 8; SEC. ID. nº 11) pueden utilizarse por ejemplo como pareja del cebador de la PCR arriba y abajo. Los polinucleótidos tales como los polinucleótidos con la SEC. ID. nº 10 y la SEC. ID. nº 12 pueden utilizarse como sondas de NKp30. La secuencia SEC. ID. nº 10 corresponde a un ADNc de 421 bp procedente de la sonda de la SEC. ID. nº 1 (desde la posición 57 hasta la posición 477 en la SEC. ID. nº 1); puede utilizarse por ejemplo como sonda de NKp30 que permite identificar y aislar el gen NKp30 en una muestra biológica. Este gen NKp30 aparece además como muy conservado entre las especies de mamífero. La SEC. ID. nº 12 corresponde a un ADNc de 606 bp procedente de la SEC. ID. nº 1 (desde la posición 57 hasta la posición 662 en la SEC. ID. nº 1); corresponde con el producto obtenido por ampliación por PCR con la pareja cebadora SEC. ID. nº 8 y nº 11.
En un aspecto adicional, la invención da a conocer una composición de tipo antisuero que es tal como la obtenida inmunizando un mamífero con por lo menos un compuesto de aminoácidos aislado de la invención (es decir cualquier compuesto de la invención que se define que comprende una secuencia de aminoácidos, es decir, definido en la reivindicación 1), por lo menos este compuesto de aminoácidos que está opcionalmente acoplado a un mejorador de inmunogenicidad y recoger el antisuero producido de este modo.
Asimismo, se dan a conocer:
-
\vtcortauna unos compuestos aislados que pueden reconocer en una reacción de tipo anticuerpo-antígeno por lo menos un compuesto de aminoácidos aislado de la invención (denominado en la presente memoria "compuestos aislados de tipo anticuerpo-antígeno" según la invención), y con
-
\vtcortauna unos anticuerpos aislados, y particularmente anticuerpos monoclonales aislados dirigidos contra por lo menos un compuesto de aminoácidos de la invención.
La presente invención se refiere a un anticuerpo aislado definido en las reivindicaciones 3 a 7.
La invención da a conocer más en particular algún anticuerpo aislado que está dirigido contra por lo menos un compuesto de aminoácidos de la invención y que no se une a ninguna molécula de la superficie de los linfocitos T, ni a ninguna molécula de la superficie de los linfocitos B. Los anticuerpos preferidos no se unen a monocitos, granulocitos y preferentemente no se unen a ninguna célula nucleada de la sangre periférica excepto a las células NK. Los anticuerpos aislados más preferidos no se unen a ningún fragmento extracelular de NKp46 ni de NKp44, ni a ningún otro fragmento extracelular de las células NK.
Dichas reacciones de unión significan en la presente memoria reacciones de unión tales como las observadas en las reacciones de tipo anticuerpo-antígeno en condiciones experimentales apropiadas para dichas reacciones de reconocimiento de tipo anticuerpo-antígeno. Dichas reacciones de unión pueden conseguirse por ejemplo poniendo en contacto una suspensión de leucocitos de la sangre periférica con el anticuerpo, detectando los complejos inmunitarios formados de este modo, por ejemplo poniendo en contacto con un reactivo secundario de anti-inmunoglobulina que lleva un marcador fluorescente y enumerando e identificando las células que se unen al anticuerpo utilizando un citómetro de flujo tal como el Coulter XL de Beckman. La identificación de varios subconjuntos de leucocitos en este experimento se basa en la magnitud y las propiedades ópticas de varios subconjuntos de células. Alternativamente, una vez que se contacta con el anticuerpo de interés como se describió anteriormente, la misma suspensión de leucocitos puede ponerse en contacto con un anticuerpo conjugado con fluorocromo que se une específicamente a un subconjunto de leucocitos tal como el anticuerpo UCHT-1 de CD3 que se une específicamente a los linfocitos T, permitiendo de este modo una definición fenotípica del subconjunto de leucocitos que es une al anticuerpo de interés. Pueden realizarse varios experimentos de marcado doble descritos, utilizando un panel de anticuerpos específicos para el subconjunto, para delimitar más la reactividad celular del anticuerpo de interés.
Los anticuerpos preferidos pueden producir un aumento (p<0,05) estadísticamente significativo en la activación de las células NK evaluado por (i) la citotoxicidad natural hacia las dianas negativas MHC de clase I, las células tumorales, las células infectadas por virus, las células de aloinjerto, (ii) la citotoxicidad hacia las células diana recubiertas con anticuerpo, (iii) aumentos de la concentración intracitoplásmica de Ca^{2+}, (iv) inducción de la fosforilación de tirosina de las moléculas de adaptador/efector intracitoplásmicas tales como ZAP70, Syk, LAT, SLP76, Shc, Grb2, enzimas de fosfolipasa C-gamma, fosfatidil-inositol 3-cinasas, (v) fosforilación de las cadenas KARAP/DAP12 que translucen el receptor asociado o CD3zeta o FcRgamma, (vi) secreción de citocina tal como interferón gamma, factores de la necrosis tumoral, IL5, IL10, quimiocinas (tal como MIP-1alfa); TGFbeta, (vii) regulación por aumento o disminución de las moléculas de la superficie de las células NK, tales como CD69 y PEN5 respectivamente.
Ejemplos de anticuerpos aislados preferidos de la invención incluyen los anticuerpos aislados que están dirigidos contra por lo menos un compuesto de aminoácidos aislado de la invención y que pueden provocar un aumento de por lo menos aproximadamente 4, preferentemente por lo menos aproximadamente 5, más preferentemente por lo menos aproximadamente 6 veces, en la citotoxicidad natural activada por una célula NK colocada en presencia de una célula diana en una proporción 1:1.
Los anticuerpos aislados más preferidos de la invención están dirigidos contra por lo menos un compuesto de aminoácidos aislado de la invención, no se unen a ninguna molécula de la superficie de los linfocitos T o B y pueden provocar un aumento de por lo menos aproximadamente 4, preferentemente por lo menos aproximadamente 5, más preferentemente por lo menos aproximadamente 6 veces, en la citotoxicidad natural activada por una célula NK colocada en presencia de una célula diana en una proporción 1:1.
Los anticuerpos aislados más preferidos de la invención incluyen los anticuerpos monoclonales. Varios ejemplos de dichos anticuerpos monoclonales se describen en el apartado "Ejemplos" a continuación (véase por ejemplo los anticuerpos monoclonales AZ20; A76 y Z25). El hibridoma que produce el anticuerpo monoclonal AZ20 de la invención se ha depositado el 8 de noviembre de 2000 en la C.N.C.M. (C.N.C.M. Collection Nationale de Microorganismes; Institut Pasteur, 25 rue du Docteur Roux; F-75724 París Cedex 15; Francia): el nº de depósito en la C.N.C.M. es I-2576. La invención se refiere de este modo al anticuerpo monoclonal aislado que es producido por el hibridoma I-2576.
Cualquier anticuerpo aislado de la invención puede estar acoplado a cualquier marcador apropiado con fines de observación. Dichos marcadores incluyen por ejemplo los marcadores fluorescentes, los marcadores radioactivos y los marcadores enzimáticos.
La presente invención se refiere también a cualquier hibridoma que produzca un anticuerpo monoclonal de la invención.
Los anticuerpos monoclonales de la invención pueden prepararse utilizando cualquier técnica que proporcione la producción de moléculas de anticuerpo por estirpes celulares continuas en cultivo. Éstas incluyen, pero no se limitan a, las técnicas originales de Köhler y Milstein, Nature, 265:495-497 (1975), modificadas tal como se describe en Anderson et al., J. Immunol. 143:1899 (1989). Como inmunógeno, es apropiado cualquier compuesto aminoácidos de la invención.
Los procedimientos de cribado que pueden utilizarse para cribar células de hibridoma que producen anticuerpos contra NKp30 incluyen, pero no se limitan a (1) ensayo de inmunoabsorbente con enzima ligada (ELISA), (2) inmunoprecipitación o (3) análisis de clasificación de células fluorescentes activadas (FACS). Muchos ELISAS diferentes que pueden utilizarse para identificar anticuerpos monoclonales anti-NKp30 pueden ser previstos por los expertos en la materia.
El cribado inicial se realiza preferentemente mediante el cribado de sobrenadantes de hibridoma por citometría de flujo para su reactividad con células NK, pero no con linfocitos T, y monocitos. La caracterización adicional de los hibridomas puede realizarse ensayando en poblaciones purificadas de células linfoides y no linfoides mediante ensayos de inmunofluorescencia indirecta y citometría de flujo, sustancialmente tal como se describe en los Ejemplos en la presente memoria. Los anticuerpos monoclonales que reconocen un epítopo de NKp30 reaccionarán con un epítopo que está presente en un alto porcentaje de células NK por ejemplo, por lo menos aproximadamente del 70 al 90%, por ejemplo aproximadamente el 80%, de dichas células, pero no reaccionará significativamente con los linfocitos T de CD3^{+} o con los linfocitos B de CD20^{+}. En las formas de realización preferidas, el anticuerpo será también no reactivo con monocitos, granulocitos, plaquetas y glóbulos rojos.
Los anticuerpos monoclonales que compiten con dichos anticuerpos en ensayos de competencia bien conocidos por los expertos en la materia son probablemente para reconocer esencialmente los mismos epítopos.
Uno de los hibridomas seleccionados se ha seleccionado y clonado, el anticuerpo resultante puede ser producido por una de las dos vías principales. El anticuerpo monoclonal más puro es producido por cultivo in vitro del hibridoma deseado en un medio adecuado durante un periodo de tiempo adecuado, seguido de la recuperación del anticuerpo deseado del sobrenadante. El periodo de tiempo y el medio son conocidos o pueden determinarse fácilmente. Esto en la técnica in vitro produce esencialmente anticuerpo monoclonal monoespecífico, exento esencialmente de otras especies de inmunoglobulina anti-humana. Sin embargo, el procedimiento in vitro puede no producir una cantidad o concentración suficiente de anticuerpo para algunos fines, ya que la cantidad de anticuerpo generada es solamente de aproximadamente 50 \mug/ml.
Para producir una cantidad mucho mayor de anticuerpo monoclonal, puede inyectarse el hibridoma deseado en un animal, tal como un ratón.
Preferentemente, los ratones están isotrasplantados o semisotrasplantados con la cepa de la que se obtiene el anticuerpo monoclonal que produce hibridomas. La inyección del hibridoma produce la formación de tumores que producen anticuerpos después de un periodo de incubación adecuado, que producirá una concentración elevada del anticuerpo deseado (aproximadamente 5 a 20 mg/ml) en la ascitis del animal hospedador.
Las moléculas de anticuerpo pueden purificarse por técnicas conocidas por ejemplo por inmunoabsorción o cromatografía por inmunoafinidad, procedimientos cromatográficos tales como la cromatografía líquida de alta resolución o una combinación de las mismas.
Siguiendo estos protocolos, cualquier experto en la materia en esta área de la tecnología puede aislar fácilmente hibridomas que producen un anticuerpo monoclonal de la invención, y en particular un anticuerpo monoclonal que presenta especificidad para NKp30. Los ejemplos de dichos hibridomas están descritos en el apartado "Ejemplos" a continuación y el hibridoma que produce el anticuerpo monoclonal AZ20 descrito se ha depositado en la C.N.C.M. el 8 de noviembre de 2000 (nº de depósito en la C.N.C.M.: I-2576). Se contempla de este modo que la presente invención comprende algunos de dichos hibridomas y algún anticuerpo monoclonal que puede obtenerse a partir de su sobrenadante. La invención da a conocer en particular cualquier anticuerpo monoclonal que presenta las características anti-NKp30 deseadas y principalmente cualquier anticuerpo monoclonal:
(i)
inmunizando un animal contra un compuesto de aminoácidos que comprende por lo menos una secuencia de aminoácidos que es por lo menos 80% idéntica en toda su longitud a una secuencia de aminoácidos seleccionada de entre el grupo constituido por la SEC. ID. nº 2, SEC. ID. nº 4, SEC. ID. nº 5 y SEC. ID. nº 6, las secuencias de aminoácidos de cualquier fragmento inmunógeno de las mismas y la secuencia SEC. ID. nº 17,
(ii)
produciendo hibridomas de las células del bazo de este animal y cultivándolas para producir anticuerpos monoclonales en sus sobrenadantes del cultivo,
(iii)
evaluando en los sobrenadantes la presencia de un anticuerpo que se une al compuesto de aminoácidos que se ha utilizado en la etapa (i) como inmunógeno,
(iv)
seleccionando y clonando los hibridomas que producen el anticuerpo deseado,
(v)
recuperando el anticuerpo monoclonal del sobrenadante por encima de dichos clones.
Siguiendo este procedimiento, principalmente cuando se utiliza la SEC. ID. nº 17 en la etapa (i) como inmunógeno, existe una probabilidad muy alta de éxito en la producción de varios de los hibridomas deseados. Los hibridomas clonados pueden ser como se desea además cribados y seleccionados para cualquier propiedad deseada tal como por ejemplo no unirse a ninguna célula de la sangre periférica excepto a las células NK y/o provocar un aumento de por lo menos 5 veces en la citotoxicidad natural desencadenada por una célula NK colocada en presencia de una célula diana en una proporción 1:1.
La presente invención se refiere a un fragmento inmunorreactivo aislado definido en la reivindicación 8 y a un anticuerpo humanizado definido en la reivindicación 10.
En otro aspecto, la invención da a conocer fragmentos inmunorreactivos aislados de cualquier anticuerpo seleccionado de entre el grupo constituido por los anticuerpos aislados y los anticuerpos monoclonales según la invención. Dichos fragmentos incluyen principalmente los fragmentos de anticuerpo Fab, F(ab')_{2} y de CDR. El experto en la materia observará que los anticuerpos humanizados de la invención pueden proceder de esta memoria como se desea, principalmente cuando se desea administrarlos a un experto en la materia. La expresión "Fragmentos inmunorreactivos de un anticuerpo", significa principalmente en la presente memoria cualquier fragmento de anticuerpo que comprenda la secuencia de fijación del anticuerpo. Dichos fragmentos incluyen de este modo los fragmentos F(ab')_{2} obtenidos ya sea por digestión enzimática de dicho anticuerpo por enzimas proteolíticas tales como la pepsina o la papaína y los fragmentos derivados de los mismos por reducción de los grupos sulfhidrilo situados en las zonas bisagra, conocidos por cualquier experto. Los fragmentos inmunorreactivos pueden comprender también una cadena individual recombinante o polipéptidos diméricos cuya secuencia comprende las zonas de la CDR del anticuerpo de interés. Las propias zonas de CDR aisladas se contemplan también en la definición de los fragmentos inmunorreactivos aislados de la invención. En otro aspecto, la presente invención se refiere a cualquier soporte sólido en el que está acoplado por lo menos un anticuerpo aislado o un fragmento inmunorreactivo de la invención. Cualquier soporte sólido que permita dicho acoplamiento es apropiado. Particularmente los soportes sólidos apropiados incluyen microesferas paramagnéticas que pueden utilizarse como matriz de afinidad tales como Dynabeads de Dynal a.s. (Oslo, Noruega), microperlas submicroscópicas MACS de Miltenyi Biotec GmbH (Gladbach, Alemania), sustrato semipermeable constituido por una red de fibras huecas tal como se describe en la patente US nº 5.763.194, partículas densas que permiten la separación por sedimentación tal como se describe en la patente US nº 5.576.185.
Una forma de realización ventajosa de estos soportes sólidos de la invención comprende la presencia, en dichos soportes, de anticuerpos anti-NKp46 y/o anti-NKp44, o fragmentos inmunógenos o derivados de los mismos acoplados además en dicho soporte sólido. Como se ilustra a continuación, el receptor NKp30 de la invención puede de hecho cooperar de manera adicional o sinérgica con los receptores de NKp46 y/o NKp44.
En un aspecto adicional, la invención da a conocer cualquier composición de tipo anti-antisuero que es tal como la que se obtiene inmunizando un mamífero con por lo menos una sustancia seleccionada de entre el grupo constituido por las composiciones de tipo antisuero según la invención, los compuestos de tipo anticuerpo-antígeno aislados de la invención, los anticuerpos y anticuerpos monoclonales de la invención, esto es por lo menos una sustancia que está opcionalmente acoplada a un potenciador de inmunogenicidad y recoger el anticuerpo producido de este modo. Se refiere asimismo a anticuerpos aislados y anticuerpos monoclonales que pueden reconocer en una reacción de tipo anticuerpo-antígeno por lo menos un compuesto aminoácidos aislado de la invención y a las composiciones farmacéuticas que comprenden los mismos.
Los productos de la invención pueden utilizarse de varias maneras. Las maneras ventajosas incluyen las aplicaciones medicinales de los mismos. NKp30 es expresado de manera selectiva por todas las células NK, tanto las recién aisladas como las cultivadas en presencia de una, dos o múltiples citocinas tales como IL-2, IL-12, IL-15, ligando FLT-3, SCF, representando de este modo un marcador óptimo para la identificación de células NK. La presente invención permite principalmente al experto en la materia llevar a cabo un procedimiento para detectar y/o cuantificar la presencia de células NK en una muestra biológica, que comprende la detección y/o cuantificación de las moléculas NKp presentes en dicha muestra. Los procedimientos de la invención comprenden principalmente:
-
\vtcortauna poner en contacto la muestra biológica con por lo menos un objeto seleccionado de entre el grupo constituido por compuestos de tipo anticuerpo-antígeno aislados según la presente invención, los anticuerpos aislados de la invención, los fragmentos inmunorreactivos aislados, los soportes sólidos y los hibridomas de la invención, y
-
\vtcortauna detectar y/o cuantificar los complejos inmunitarios formados de este modo.
La presente invención permite asimismo al experto en la materia llevar a cabo un procedimiento para la eliminación selectiva de células NK de una muestra biológica que comprende la eliminación selectiva de las células que son NKp30+. Dicho procedimiento comprende principalmente:
-
\vtcortauna poner en contacto la muestra biológica con por lo menos un objeto seleccionado de entre el grupo constituido por los compuestos de tipo anticuerpo-antígeno aislados de la invención, los anticuerpos aislados de la invención, los fragmentos inmunorreactivos aislados, los soportes sólidos y los hibridomas según la invención, en condiciones de contacto apropiadas para la formación del complejo inmunitario, y
-
\vtcortauna eliminar el complejo inmunitario formado de este modo (células positivas) de las que no llevan dicho complejo (células negativas).
La presente invención permite asimismo al experto en la materia llevar a cabo un procedimiento para la purificación positiva y selectiva de células NK en una muestra biológica, que comprende la purificación positiva y selectiva de las células que son NKp30^{+}. Dicho procedimiento comprende principalmente:
-
\vtcortauna poner en contacto la muestra biológica con por lo menos un objeto seleccionado de entre el grupo constituido por los compuestos de tipo anticuerpo-antígeno aislados de la invención, los anticuerpos aislados de la invención, los fragmentos inmunorreactivos aislados, los soportes sólidos y los hibridomas según la invención, en condiciones de contacto apropiadas para la formación del complejo inmunitario, y
-
\vtcortauna eliminar las células en las que se ha formado un complejo inmunitario. Las maneras convenientes para recuperar las células son bien conocidas por el experto en la materia. Éstas incluyen principalmente: (i) la destrucción mecánica de la conexión entre las células y el objeto con el que las células positivas han formado un complejo inmunitario, (ii) el ataque enzimático del objeto con el que las células positivas han formado un complejo inmunitario (por ejemplo con papaína tal como se describe en la patente US nº 5.081.030) o (iii) poner en contacto el complejo inmunitario con una cantidad en exceso de una molécula soluble capaz de competir con el anticuerpo incluido en el complejo inmunitario para la unión a las células positivas, dando como resultado la destrucción del complejo inmunitario, tal como se describe por ejemplo para la recuperación de las células CD34+ en la patente US nº 5.968.753.
De este modo, la invención refiere asimismo a cualquier kit para detectar, cuantificar, eliminar y/o purificar positivamente células NK en una muestra biológica que comprende por lo menos dicho objeto (respectivo), estando dicho objeto contenido en un recipiente.
Para la ejecución de los procedimientos de la invención, las muestras biológicas apropiadas incluyen sangre periférica, plasma, aspirados de médula ósea, tejidos linfoides, así como las células aisladas procedentes de la citaféresis, plasmaféresis y de recogida de fluidos tales como los fluidos sinovial, cerebroespinal, broncoalveolar y peritoneal.
En un aspecto particularmente ventajoso, la presente invención se refiere a un procedimiento para la estimulación in vitro de la citotoxicidad de células NK, que comprende:
-
\vtcortauna poner en contacto dichas células NK en condiciones fisiológicas (in vitro) con por lo menos un producto seleccionado de entre el grupo constituido por compuestos aislados de tipo anticuerpo-antígeno según la invención, los anticuerpos aislados, los soportes sólidos y los hibridomas según la invención.
\quad
Dicha puesta en contacto se realiza para que permita la reticulación de NKp30 en dichas células NK (reticulación de un compuesto en la superficie de dichas células NK que comprende una secuencia de aminoácidos que es por lo menos 80% idéntica en toda su secuencia a las SEC. ID. nº 2, SEC. ID. nº 4, SEC. ID. nº 5 y las variantes conservadoras de las mismas). Una forma de realización preferida de la reticulación incluye la puesta en contacto de dichas células NK en condiciones fisiológicas con por lo menos un soporte sólido de la invención en el que dicho objeto seleccionado por lo menos (por ejemplo anticuerpos anti-NKp30) se inmoviliza utilizando concentraciones de saturación de este objeto. La reticulación del receptor NKp30 de hecho provoca la estimulación de la actividad de las células NK. Cuando se desea conseguir un equilibrio de la regulación de la actividad de las células NK neto a favor de la estimulación, el experto en la materia seleccionará de este modo las condiciones que favorecen de manera significativa la reticulación de NKp30. Dichas condiciones incluyen principalmente la utilización de los compuestos cuya naturaleza permite una reticulación. Los productos listados en el grupo anterior corresponden a ejemplos de dichos compuestos o permiten la construcción de los mismos. Dichas condiciones pueden incluir también la utilización de dichos compuestos de reticulación en dichas cantidades y principalmente en una densidad tal (por ejemplo concentración de saturación) que dicha regulación se equilibra más fuertemente a favor de la estimulación de la citotoxicidad de las células NK. La estimulación puede realizarse in vitro.
\quad
El procedimiento de estimulación de la invención no requiere de manera ventajosa las etapas convencionales de incubación de células NK en interleucinas tales como IL-2, IL-12 e IL-15. Estas etapas, desde luego, no están sin embargo excluidas: el experto en la materia puede seleccionar añadir estas etapas convencionales al procedimiento de la invención. La presente invención se refiere asimismo a cualquier kit para estimular la citotoxicidad de las células NK, comprendiendo por lo menos uno de dichos productos contenidos en un recipiente.
Para la detección, cuantificación, eliminación, purificación positiva y/o estimulación de la citotoxicidad de las células NK, dichos procedimientos de la invención pueden comprender además poner en contacto dicha muestra biológica, o dichas células NK con unos anticuerpos anti-NKp46 o anti-NKp44; y dichos kits pueden comprender además anticuerpos anti-NKp46 o anti-NK44. La presente invención se refiere de este modo a cualquier kit para estimular la citotoxicidad de células NK que comprende por lo menos un producto seleccionado de dicho grupo, estando por lo menos dicho producto contenido en un recipiente. Dicho kit puede comprender además uno o varios anticuerpos seleccionados de entre el grupo constituido por anticuerpos anti-NKp46 y anticuerpos anti-NKp44.
De manera ventajosa, el procedimiento de purificación de la invención puede simultáneamente realizar una activación de células NK y viceversa. La purificación positiva simultánea de células NK y la forma de realización de estimulación citotóxica de células NK de la invención es de particular interés cuando se aplica a muestras biológicas, y particularmente a muestras que proceden de persona(s) y significa volver a administrar a un paciente humano tras el tratamiento.
Alternativamente, la presente invención da a conocer también un procedimiento para inhibir la citotoxicidad de células NK, que comprende poner en contacto dichas células NK en condiciones fisiológicas por lo menos con un compuesto:
(a)
capaz de inhibir la fijación de ligandos naturales NKp30 a receptores NKp30 expresados en dichas células NK, por ejemplo enmascarando secuencias de fijación de NKp30 y/o capaces de inhibir la reticulación de los receptores NKp30 expresados por dichas células NK, y/o
(b)
capaces de inhibir las interacciones entre las moléculas NKp30 expresadas por dichas células NK y sus elementos de transducción, principalmente CD3\zeta. Este procedimiento puede realizarse in vivo o in vitro según se desee.
Los compuestos según (a) comprenden principalmente los fragmentos inmunorreactivos de la invención (por ejemplo fragmentos Fab; F(ab')_{2}). Los anticuerpos monoclonales solubles NKp30 de varios isotipos (IgM y preferentemente IgG) o los fragmentos divalentes o monovalentes inmunorreactivos de los mismos pueden utilizarse a concentraciones de saturación correspondientes a un exceso de 10 veces su constante de disociación respectiva para enmascarar NKp30 expresado en las células NK.
Los compuestos según (b) comprenden principalmente los compuestos capaces de inhibir las interacciones entre el aminoácido cargado de la transmembrana de NKp30 (aminoácido R en la posición 143 en la SEC. ID. nº: 1) y dichos elementos de transducción. Dichos compuestos de (b) pueden corresponder principalmente a una molécula liposoluble capaz en condiciones fisiológicas de fijarse a la zona de la transmembrana de NKp30 (posición 138 a 157 de la SEC. ID. nº: 1) con el fin de inhibir o bloquear los grupos funcionales (fijación a CD3\zeta) de dicho aminoácido cargado de la transmembrana (R en la posición 143). Condiciones fisiológicas, significa en la presente memoria las condiciones in vivo o las condiciones in vitro que simulan las condiciones in vivo. La invención da a conocer también algún kit para la inhibición de la citotoxicidad de las células NK que comprende por lo menos dicho producto, por ejemplo un fragmento inmunorreactivo según la invención. La presente invención se refiere a un procedimiento definido en la reivindicación 22 y a un kit definido en la reivindicación 23.
Los procedimientos de la presente invención para la detección/cuantificación/selectiva/eliminación/positiva y la purificación selectiva de células NK de una muestra biológica, y para la estimulación de la citotoxicidad de las células NK puede comprender además la puesta en contacto de dicha muestra o de las células NK respectivamente, con compuestos capaces en dichas condiciones de estimular la actividad de receptores NK aparte de NKp30 y que puede funcionar además de con NKp30, o en sinergia con el mismo, por ejemplo los receptores NKp46 y/o NKp44. La estimulación puede conseguirse por ejemplo mediante la utilización de compuestos capaces en dichas condiciones de reticular dichos otros receptores de NK, principalmente NKp46 y/o NKp44.
Lo contrario, desde luego, aplica al procedimiento para inhibir la citotoxicidad de las células NK según la invención, por ejemplo el procedimiento de inhibición de la invención puede comprender además la utilización de compuestos capaces de inhibir la actividad de dichos otros receptores de NK, por ejemplo por inhibición de la fijación del ligando y/o inhibición de la fijación del elemento de transducción/efector.
Un aspecto muy útil de la invención corresponde a un nuevo procedimiento de injerto que comprende poner en contacto un organismo seleccionado de entre el grupo constituido por una célula que va a injertarse, un tejido que va a injertarse, un órgano que va a injertarse y el organismo hospedador con por lo menos un producto seleccionado de entre el grupo constituido por: los compuestos de tipo anticuerpo-antígeno aislados según la invención, los anticuerpos aislados, los soportes sólidos, los hibridomas según la invención, las células NK que pueden obtenerse por el procedimiento de purificación de la invención, las células NK que pueden obtenerse por el procedimiento de estimulación de la invención. "Injerto" en la presente memoria comprende también "trasplante". Dicho organismo hospedador puede ser cualquier mamífero, incluyendo un ser humano.
Este nuevo procedimiento de injerto es particularmente útil para el aloinjerto, y puede aplicarse por ejemplo para el injerto de médula ósea/células madre. También es de particular interés para la inhibición de GvH, o GvT y en particular para la estimulación de GvL. La esencia del nuevo procedimiento de injerto de la invención consiste en administrar al paciente células NK que han sido purificadas en dicho injerto y que han sido activadas según los procedimientos y los kits de la invención. Esto se aplica notablemente a injertos hematopoyéticos compatibles o incompatibles con MHC (células madre de médula ósea/periféricas). Estas células NK alogénicas activadas pueden, por ejemplo, ser infundidas por vía intravenosa en el paciente que va a ser injertado, y preferentemente en un intervalo de tiempo próximo a la infusión del injerto: al mismo tiempo, y hasta aproximadamente 2 días después. Las cantidades de células NK activadas y la frecuencia de infusión en los pacientes dependen de la patología.
El nuevo procedimiento de injerto de la invención es también de particular interés en el tratamiento antitumoral y/o contra la infección, la prevención, o paliación. En estos casos, las células NK autólogas de pacientes que padecen tumores sólidos o líquidos, o de una infección vírica u otro organismo miao, que han sido purificadas y activadas según los procedimientos y kits de la invención pueden estar "armadas" para con el tumor específico y/o la infección, por ejemplo incubando dichas células NK en presencia de una concentración de saturación de mAb reactivo para con dicho tumor y/o agente de infección. Las células NK purificadas, activadas y "armadas" según la invención pueden inyectarse a continuación por vía intravenosa a los pacientes. Las cantidades de células NK "armadas" y la frecuencia de infusión en los pacientes dependen de la patología.
Estos nuevos procedimientos de injerto de la invención constituyen de este modo una nueva inmunoterapia basada en las células NK basada en la activación de las células NK por activación de NKp30. Los procedimientos de la invención pueden comprender además la activación conjunta de otros receptores que pueden funcionar además de con NKp30 o en sinergia con NKp30 tales como los compuestos de reticulación NKp46 y/o NKp44 a través de NKp46 y/o NKp44. Por consiguiente, la presente invención se refiere a las utilizaciones definidas en las reivindicaciones 28 a 30.
La presente invención por consiguiente comprende también cualquier composición farmacéutica que comprenda por lo menos un producto seleccionado de entre el grupo constituido por:
\quad
los anticuerpos aislados, los soportes sólidos y los hibridomas según la invención, las células NK aisladas que pueden obtenerse por el procedimiento de purificación de la invención (y en particular las células NK aisladas purificadas del donante del injerto mediante el procedimiento de purificación de la invención), las células NK aisladas que pueden obtenerse por el procedimiento de estimulación de la invención (células NK aisladas de cuya citotoxicidad ha sido estimulada mediante el procedimiento de estimulación de la invención), junto con un vehículo farmacéuticamente aceptable.
Dichas células NK aisladas pueden recogerse de un ser humano, y en particular del donante del injerto (cuando se desea administrar la composición farmacéutica a un organismo hospedador que recibe el injerto) o de un paciente quien tiene un tumor tal como principalmente un melanoma (cuando se desea administrar la composición farmacéutica, tal como un fármaco antitumoral, al paciente). Dichas composiciones farmacéuticas de la invención pueden comprender además de manera ventajosa anticuerpos anti-NKp46 y/o anti-NKp44, o fragmentos inmunógenos de derivados de los mismos. Las composiciones farmacéuticas de la invención pueden utilizarse como fármaco. Una variedad de vehículos farmacéuticamente aceptables están disponibles para el experto en la materia; la selección de uno apropiado depende principalmente de la forma galénica y de la vía de administración deseada. La expresión "composiciones farmacéuticas" de este modo significa en la presente memoria cualquier forma galénica tal como un comprimido, polvo, pastillas, parches, gránulos, microgránulos, nanopartículas, solución coloidal, solución acuosa, soluciones inyectables, atomizadores o liposomas. La vía de administración para las modalidades terapéuticas in vivo puede incluir la vía intradérmica, intramuscular, intraperitoneal, intravenosa, o la inyección subcutánea, la vía intranasal y la vía quirúrgica. La forma galénica puede corresponder también a formas de liberación lenta y/o controlada.
Dicho por lo menos un producto ha de ser formulado propiamente para que sea tolerado y eficaz para el paciente al que se administrará dicha composición. Dichas formulaciones propias son bien conocidas por el experto en la materia; cuando el paciente es un ser humano, éstas incluyen por ejemplo la humanización de miméticos híbridos de dicho producto. Puede también incluir un vehículo farmacéuticamente aceptable de cuya solubilidad y/o propiedades químicas y/o galénicas se adapta a la vía de administración deseada y al nivel de eficacia pretendido. Dichos vehículos pueden por ejemplo incluir soluciones salinas o de dextrosa. La composición de la invención puede comprender también además cualquier tampón y/o cualquier compuesto estabilizante que el experto en la materia encontraría apropiado al caso. La dosis eficaz de por lo menos dicho producto estará en función del producto específico empleado, de la presencia y naturaleza del o de los reactivo(s) terapéutico(s) adicional(es) o sinérgico(s) (por ejemplo los anticuerpos anti-NKp46 y anti-NKp44 o fragmentos o derivados de los mismos), del paciente y de su estado clínico. Una dosis eficaz por lo general oscila entre 1 ng y 100 mg/kg de peso corporal.
Dichas composiciones farmacéuticas pueden por ejemplo estar dirigidas a la mejora del injerto/trasplante, para la prevención, paliación, terapia antitumoral, tales como prevención, paliación, terapia para melanoma, hepatocarcinoma, adenocarcinoma pulmonar, para la prevención, la paliación, la terapia antimicrobiana, tal como la prevención, paliación y terapia antivírica. El término "Paliación", en la presente memoria significa cualquier resultado biológico que corresponda a una mejora de la salud del paciente; esto principalmente incluye cualquier ralentización del crecimiento de las células patológicas.
En un aspecto ventajoso, la composición farmacéutica de la invención permite una citotoxicidad dirigida de NK. Dicha composición comprende por lo menos un producto seleccionado de entre el grupo constituido por:
\quad
los anticuerpos aislados, los soportes sólidos y los hibridomas según la invención, las células NK aisladas que pueden obtenerse por el método de purificación de la invención, las células aisladas que pueden obtenerse por el procedimiento de estimulación de la invención, estando dicho producto directa o indirectamente relacionado con una sustancia capaz de unirse en condiciones fisiológicas a la diana deseada,
\quad
junto con un vehículo farmacéuticamente aceptable.
Ejemplos de dicha sustancia de dirección incluyen los anticuerpos antitumorales, los anticuerpos contra microorganismos, los anticuerpos antivíricos y los equivalentes funcionales de los mismos. Dicha composición farmacéutica para la citotoxicidad dirigida de NK está dirigida más específicamente a la prevención, paliación, terapia antitumoral (por ejemplo melanomas, hepatocarcinoma o adenocarcinoma pulmonar) y a la prevención, paliación y terapia antimicrobianas.
La presente invención da a conocer también un procedimiento para identificar los ligandos naturales NKp30. Este procedimiento comprende la utilización de los anticuerpos, de los fragmentos de anticuerpo o de los soportes sólidos según la invención o las células NK. La presente invención permite de este modo el cribado de bancos químicos y/o biológicos para miméticos y/o antagonistas para los ligandos naturales de NKp30.
Los anticuerpos, los fragmentos de anticuerpo y los soportes sólidos según la invención permiten también la evaluación del nivel del ligando NKp30 superficial expresado por una célula diana sensible a NK, y la comparación de este nivel medido con la del patrón fisiológico. Esta evaluación es de especial interés para el diagnóstico de células tumorales y/o células infectadas por microorganismos y la prescripción de herramientas de prevención, paliación y terapia apropiadas. Los anticuerpos, los fragmentos de anticuerpo, los soportes sólidos de la invención pueden por consiguiente utilizar reactivos para el diagnóstico del tumor o de la infección.
Estas y otras características y ventajas de la invención se pondrán de manifiesto a partir de los ejemplos siguientes. Estos ejemplos se proporcionan a título ilustrativo únicamente, y de ninguna manera pretenden restringir el alcance de la presente invención. Las formas de realización alternativas pretendidas por cualquier experto en la materia estarán comprendidas en la presente invención.
Descripción de los dibujos
En estos ejemplos, se hace referencia a las figuras 1A a 9B (19 hojas con dibujos):
- Las figuras 1A, 1B y 1C ilustran la activación de la actividad citolítica mediada por NK provocada por tres nuevos mAb según la invención (mAb anti-NKp30).
\quad
En la Figura 1A, se analizó una población representativa de células NK policlonales (% de liberación específica de ^{51}Cr) para la actividad citolítica en un ensayo de destrucción redirigido contra la estirpe de células diana P815 positiva a Fc\gammaR en ausencia o en presencia de los mAb c127 (anti-CD16), BAB281 (anti-NKp46), Z231 (anti-NKp44), AZ20, A76, Z25 (anti-NKp30 mAb) y c218 (anti-CD56). La relación E/T (efector:diana) utilizada fue 1:1.
\quad
En la Figura 1B, se analizó el clon 3M16 de NK representativo (% de liberación específica de ^{51}Cr) en un ensayo de destrucción redirigido contra las células diana P815 (relación E/T 1:1) en presencia de cantidades graduales de los mAb AZ20 (cuadrados negros), c127 (anti-CD16) (triángulos blancos) o c128 (anti-CD56) (círculos blancos). Todos los mAb utilizados son del isótopo de IgG1.
\quad
En la Figura 1C, se analizó la movilización de [Ca^{++}]i en el clon 3M16 ([Ca^{++}]i nM en función del tiempo en segundos) en presencia de mAb AZ20 seguido del segundo reactivo anti-ratón de cabra (GAM). La referencia negativa está representa por las células tratadas con GAM solo.
- Las figuras 2A y 2B ilustran el análisis citofluorométrico de las células NK, policlonales o clonales, en reposo o activadas.
\quad
En la figura 2A, las poblaciones de las células NK policlonales, procedentes de donantes AM y CB (líneas del gráfico horizontal superiores y medias) y las células NK recién aisladas, procedentes del donante CB (líneas del gráfico horizontales inferiores), se analizaron por inmunofluorescencia y análisis FACS utilizando c218 (anti-CD56; segunda columna vertical), BAB281 (anti-NKp46; tercera columna vertical del gráfico) o AZ20 (anti-NKp30; última columna vertical del gráfico los mAb seguido de IgG1 anti-ratón de cabra conjugada con PE. La referencia (primera columna vertical del gráfico) está representada por las células incubadas con el segundo reactivo solo.
\quad
En la figura 2B, los clones de las células NK, procedentes del donante CB, se analizaron por inmunofluorescencia y análisis FACS utilizando los mAb BAB281 (anti-NKp46; columna media vertical del gráfico) o AZ20 (anti-NKp30; columna vertical a mano derecha del gráfico) seguidos por IgG1 anti-ratón de cabra conjugada con PE (las referencias están representadas en la columna vertical del gráfico a mano izquierda).
- Las figuras 3A y 3B ilustran el modelo de expresión de NKp30 en los linfocitos de la sangre periférica y en el análisis por transferencia Western.
\quad
En la figura 3A, los linfocitos de la sangre periférica recién aislados, procedentes de un donante representativo, se analizaron por inmunofluorescencia de dos colores y análisis FACS con mAb AZ20 en combinación con GPR 165 (IgG2a, anti-CD56). Los mAb KD1 (IgG2a, anti-CD16), JT3A (IgG2a, anti-CD3), D1-12 (IgG2a, anti-HLA-DR), KL247 (IgM, anti-NKp46) seguidos por FITC específico para isótopos o los segundos reactivos anti-ratón de cabra conjugados con PE (gráficos en izquierda superior y derecha, izquierda en la mitad y derecha e izquierda inferior). Se muestra también (a la derecha más abajo) la inmunofluorescencia doble con dos mAb anti-NKp46 de diferentes isotipos (KL247, IgM frente a BAB281, IgG1). Las representaciones del contorno se dividieron en cuadrantes que representan células no teñidas (izquierda inferior), células con sólo fluorescencia roja (izquierda superior), las células con fluorescencia roja y verde (derecha superior) y las células con sólo fluorescencia verde (derecha inferior).
\quad
En la figura 3B, las proteínas integrales de la membrana procedentes de Daudi (linfoma de Burkitt, referencia negativa) y de una población de células NK policlonal se analizaron en un SDS-PAGE al 11% en condiciones no reductoras y se sondaron con el mAb AZ20. Los marcadores de peso molecular (kDa) se indican a la izquierda.
- Las figuras 4A y 4B ilustran estas funciones de NKp30 como activador.
\quad
En la figura 4A, se analizó la actividad citolítica (% de liberación de ^{51}Cr específica) de los linfocitos NK de la sangre periférica recién aislados, procedentes de un donante representativo, en un ensayo de destrucción redirigido contra la estirpe de células diana P815 positivas para Fc\gammaR en ausencia o en presencia de los mAb c127 (anti-CD16), BAB281 (anti-NKp46), AZ20, A76, Z25 y c218 (anti-CD56). La relación E/T utilizada fue 20:1.
\quad
En la figura 4B, en las células NK de la sangre periférica recién aisladas se analizó la actividad citolítica contra las estirpes celulares de melanoma I-negativas de clase HLA/negativa/- Fc\gammaR indicadas en ausencia o presencia de mAb para las moléculas indicadas: se utilizaron los mAb c218 (anti-CD56), AZ20 (anti-NKp30), BAB281 (anti-NKp46). La relación E/T fue 20:1.
- La figura 5 ilustra la implicación de NKp30 y NKp46 en la lisis de la célula tumoral mediada por los clones de la célula NK. En tres clones de la célula NK se analizó la actividad citolítica contra MEL15, M14, SMMC y las estirpes de la célula diana negativa para A549 Fc\gammaR en ausencia (barras blancas) o en presencia de los mAb AZ20 (anti-NKp30; barras negras), BAB281 (anti-NKp46; barras listadas) o tanto AZ20 como BAB281 (barras listadas). La relación E/T fue 4:1.
- Las figuras 6A y 6B ilustran que NKp30 coopera con NKp46 y NKp44 en la provocación de citotoxicidad mediada por NK contra las células diana autólogas tumorales o normales.
\quad
En la figura 6A, se analizó la actividad citolítica (% de liberación de ^{51}Cr específica) del clon MIL69 de NK representativo contra FO-1 o las líneas de las células diana negativas para A549 Fc\gammaR en ausencia o presencia de los mAb para las moléculas indicadas. Se utilizaron los siguientes mAb: KL247 (anti-NKp46), AZ20 (anti-NKp30), KS38 (anti-NKp44). Las relaciones de E/T fueron: 2:1 (FO-1) y 3:1 (A549).
\quad
En la figura 6B, se analizó la actividad citolítica en los clones de las células NK (MX361 y P9) (% de liberación específica de ^{51}Cr) contra PHA Blasts autólogos en ausencia (barras blancas) o en presencia de los mAb para las moléculas indicadas (barras negras). Los mAb utilizados fueron A6-136 (anti-HLA clase I), KL247 (anti-NKp46), KS38 (anti-NKp44), AZ20 (anti-NKp30). La relación E/T fue de 10:1.
- Las Figuras 7A, 7B y 7C ilustran el análisis citofluorimétricos de las moléculas NKp30 expresadas en transfectados de células COS-7; la secuencia de aminoácidos (SEC. ID. nº: 2) y la representación de la hidrofobia de NKp30.
\quad
En la figura 7A, las células COS-7, transfectadas con el montaje de ADNc del clon 5C se tiñeron con anti-NKp30 (de izquierda a derecha: A76, AZ20 y Z25) o con el mAb anti-NKp46 (BAB 281) seguido de IgG1 anti-ratón de cabra conjugada con PE y analizado por citometría de flujo. Los perfiles blancos representan células incubadas con el segundo reactivo solo (es decir, referencias negativas).
\quad
En la figura 7B, el péptido señal (SEC. ID. nº: 3) se indica en letras minúsculas, la zona de la transmembrana (SEC. ID. nº: 5) está subrayada. La secuencia de la zona extracelular de NKp30 (SEC. ID. nº: 4) corresponde a la secuencia dada entre el péptido de señal y la zona de la transmembrana. La secuencia de la zona intracelular NKp30 (SEC. ID. nº: 6) corresponde a la secuencia dada después (C-terminal) de la secuencia de la transmembrana. Las cisteínas implicadas en el pliegue de tipo Ig están dentro de círculos, las supuestas secuencias de N-glucosilación están encasilladas. En la parte inferior se presenta la representación de hidrofobia de Kyte-Doolittle. Los análisis del ADN y de la secuencia de proteínas se realizaron utilizando GeneWorks, series de MacVector, NetOGlyc 2.0 (www.cbs.dtu.dk/services/NetOGlyc) y PSORT Prediction Servers (www.psort.nibb.ac.jp:8800/).
\quad
En la figura 7C, está representada la secuencia de ADNc de NKp30 (SEC. ID. nº: 1). La secuencia de codificación de NKp30 va desde la posición 64 hasta la posición 636 (SEC. ID. nº: 13). La sonda de ADNc de 421 bp (SEC. ID. nº: 10) para NKp30 corresponde a la secuencia dada desde la posición 57 a la posición 477 de la SEC. ID. nº: 1. El ADNc de 606 bp (SEC. ID. nº: 12) ampliado a partir de NKp30 para la clonación en pCR2.1 corresponde a la secuencia dada desde la posición 57 hasta la posición 662 de la SEC. ID. nº: 1.
- Las figuras 8A y 8B ilustran el análisis por transferencia Northern de la expresión del transcrito NKp30 y el análisis por inmunotransferencia Zoo.
\quad
En la figura 8A, se aisló ARN completo de las células de diferente origen. Bandas 1 y 2: poblaciones policlonales de células NK; banda 3: blanco; banda 4: estirpe celular NK (NKL); banda 5: estirpe celular NK (NK3.3); banda 6: monocitos humanos; banda 7: estirpe celular de linfoma histiocítico (U937); banda 8: estirpe celular de linfoma T (Jurkat); banda 9: estirpe celular de leucemia promielocítica aguda (HL60); banda 10: estirpe de linfocitos B transformados por EBV (LCL721.221). Diez microgramos de cada preparación de ARN (2 microgramos de poli A^{+} ARN procedente de las bandas 1 y 2 de las poblaciones de células NK policlonales) se hibridaron con la sonda de ADNc de NKp30 de 421 bp. Las posiciones de las subunidades 28S y 18S del ADN ribosómico se indican a la izquierda.
\quad
En la figura 8B, una transferencia Southern que contiene ADN genómico procedente del ser humano, macaco Rhesus, rata Sprague-Dawley, ratón BALB/c, perro, vaca, conejo, pollo y levadura Saccharomyces cerevisiae se hibridó en condiciones de baja severidad con la sonda de ADNc de NKp30 de 421 bp.
- Las figuras 9A y 9B ilustran el análisis bioquímico del complejo receptor de NKp30 mediante la utilización de un antisuero específico.
\quad
En la figura 9A, las proteínas de la membrana completas procedentes de Daudi (como referencia negativa) y de la población de células NK policlonales se analizaron en un SDS-PAGE al 11% en condiciones no reductoras y se sondaron con antisuero de conejo específico para NKp30 (I). Los marcadores de peso molecular (kDa) están indicados a la izquierda.
\quad
En la figura 9B, los lisados celulares con Digitonina al 1% procedentes de una población de células NK policlonal sin tratar (-) o tratada (+) con pervanadato sódico, se inmunoprecipitaron con mAb Z231 (anti-NKp44), mAb BAB281 (anti-NKp46), antisuero de conejo específico para NKp30 (I) y suero de conejo pre-inmunitario (pI). Se analizaron las muestras en un SDS-PAGE al 15% en condiciones reductoras y se sondaron con anti-fosfotirosina (anti-PTyr) o mAb anti-CD3\zeta (anti-\zeta). Las cadenas ligeras de Ig (Ig(L)), CD3\zeta fosforilado con Tyr (P-\zeta), KARAP/DAP12 fosforilado con Tyr (P-KARAP/DAP12) y la forma no fosforilada de CD3\zeta están indicadas por flechas. Los marcadores de peso molecular (en kDa) se indican a la derecha.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 1 Identificación y caracterización molecular de NKp30 Material y procedimientos Anticuerpos monoclonales (mAb)
Los mAb siguientes se produjeron en el laboratorio de los autores: JT3A (IgG2a, anti-CD3), BAB281 (Sivori, S., M. Vitale, L. Morelli, L. Sanseverino, R. Augugliaro, C. Bottino, L. Moretta y A. Moretta. 1997. p46, a novel Natural Killer cell-specific surface molecule which mediates cell activation. J. Exp. Med. 186: 1129-1136) y KL247 (IgG1 e IgM, respectivamente, anti-NKp46), Z231 (Vitale, M., C. Bottino, S. Sivori, L. Sanseverino, R., Castriconi, R. Marcenaro, R. Augugliaro, L. Moretta y A. Moretta. 1998. NKp44, a novel triggering surface molecule specifically expressed by activated Natural Killer cells is involved in non-MHC restricted tumor cell lysis. J. Exp. Med. 187:2065-2072) y KS38 (IgG1 e IgM, respectivamente, anti-NKp44), KD1 y c127 (IgG2a e IgG1, respectivamente, anti-CD16), c218 y GPR165 (IgG1 e IgG2a, respectivamente, anti-CD56), A6-136 (IgM, anti-HLA de clase I) (Ciccone E., D. Pende, M. Vitale, L. Nanni, C. Di Donato, C. Bottino, L. Morelli, O. Viale, A. Amoroso, A. Moretta y L. Moretta. 1994. Self Class I molecules Protect normal cells from lysis mediated by autologous Natural Killer Cells. Eur. J. Immunol. 24:1003-1006), GL183 (IgG1, anti-p58.2) (Moretta, A., G. Tambussi, C. Bottino, G. Tripodi, A. Merli, E. Ciccone, G. Pantaleo y L. Moretta. 1990. A novel surface antigen expressed by a subset of human CD3-CD16+ Natural Killer cells. Role in cell activation and regulation of cytolytic function. J. Exp. Med. 171:695-714), EB6 (IgG1, anti-p58.1) (Moretta A., C. Bottino, D. Pende, G. Tripodi, G. Tambussi, O. Viale, A.M. Orengo, M. Barbaresi, A. Merli, E. Ciccone y L. Moretta. 1990. Identification of four subset of human CD3-CD16+ NK cells by the expression of clonally distributed functional surface molecules. Correlation between subset assignment of NK clones and ability to mediate specific alloantigen recognition. J. Exp. Med. 172:1589-1598), Z199 (IgG2b), anti-NKG2A) (Sivori, S., M. Vitale, C. Bottino, E. Marcenaro, L. Sanseverino, S. Parolini, L. Moretta y A. Moretta, 1996. CD94 functions as a natural killer cell inhibitory receptor for different HLA-CLASS-I alleles. Identification of the inhibitory form of CD94 by the use of novel monoclonal antibodies. Eur. J. Immunol. 26:2487-2492). El mAb 01.12 (IgG2a) y el mAb HP2.6 (IgG2a) se utilizaron como anti-HLA-DR y anti-CD4, respectivamente.
Los nuevos mAb procedían en primer lugar convencionalmente de inmunizar ratones Balb/C de 5 semanas de vida con células NK (CD3-, CD56+, CD16+) bien clones de NK (EC1 y SA260 para los mAb A76 y Z25 respectivamente) o una población de células NK policlonales (para el mAb AZ20). Después de diferentes fusiones celulares, se seleccionaron los mAb por la capacidad de provocar lisis en ensayos de destrucción redirigidos contra células diana Fc\gammaR+ P815. Los mAb apropiados incluyen los que provocan un aumento estadísticamente significativo (p<0,05) en la activación de las células NK evaluado por (i) toxicidad natural hacia las dianas negativas MHC de clase I, células tumorales, células infectadas por virus, células de alotrasplante, (ii) citotoxicidad hacia células diana recubiertas por anticuerpo, (iii) aumentos en la concentración intracitoplásmica de Ca^{2+}, (iv) inducción de la fosforilación con tirosina de moléculas adaptadoras, efectoras intracitoplásmicas tales como ZAP70, Syk, LAT, SLP76, Shc, Grb2, fosfolipasa C-enzimas gamma, fosfatidilinositol 3-cinasas, (v) fosforilación de las cadenas KARAP/DAP12 o CD3zeta o FcR-gamma que translucen el receptor asociado, (vi) secreción de citocinas tales como interferón gamma, factores de la necrosis tumoral, IL5, IL10, quimiocinas (tal como MIP-1alfa), TGFbeta, (vii) regulación por aumento o disminución de las moléculas de la superficie de las células NK, tales como CD69 y PENS respectivamente. Los mAb preferidos provocan por ejemplo un aumento de por lo menos aproximadamente 5 en la lisis de las células diana con una proporción efector:diana (E:T) de 1:1 en comparación con la lisis de las células diana básica realizada por las células NK efectoras en ausencia de dichos mAb. De este modo se seleccionaron tres mAb: A76; Z25; AZ20. Un hibridoma que produce AZ20 se ha depositado en la C.N.C.M. (I-2576) el 8 de noviembre de 2000.
Purificación de linfocitos de la sangre periférica (PBL) y generación de poblaciones de células NK policlonales o clonales
Los linfocitos de la sangre periférica (PBL) procedían de donantes sanos por gradientes de Ficoll-Hipaque y eliminación de las células adherentes en plástico. A fin de obtener células PBL de NK enriquecidas se incubaron con los mAb anti-CD3 (JT3A), anti-CD4 (HP2.6) y anti-HLA-DR (D1.12) (30 min. a 4ºC) seguido de Dynabeads (Dynal, Oslo, Noruega) recubiertas con anti-ratón de cabra (30 min. a 4ºC) y eliminación inmunomagnética (Pende, D., L. Accame, L. Pareti, A. Mazzocchi, A. Moretta, G. Parmiani y L. Moretta. 1998. The susceptibility to Natural Killer cell-mediated lysis of HLA class I-positive melanomas reflects the expression of insufficient amounts of HLA class I alleles. Eur. J. Immunol. 28:2384-2394; Sivori, S., M. Vitale, L. Morelli, L. Sanseverino, R. Augugliaro, C. Bottino, L. Moretta y A. Moretta. 1997. p46, a novel Natural Killer cell- specific surface molecule which mediates cell activation. J. Exp. Med. 186: 1129-1126; Vitale, M., C. Bottino, S. Sivori, L. Sanseverino, R. Castriconi, R. Marcenaro, R. Augugliaro, L. Moretta y A. Moretta. 1998. NKp44, a novel triggering surface molecule specifically expressed by activated Natural Killer cells is involved in non-MHC restricted tumor cell lysis. J. Exp. Med. 187:2065-2072). Se utilizaron células CD3^{-}4^{-}DR^{-} en ensayos citolíticos o células alimentadoras cultivadas o irradiadas en presencia de 100 U/ml de rIL-2 (Proleukin, Chiron Corp., Emeryville, USA) y 1,5 ng/ml de PHA (Gibco Ltd, Paisley, Escocia) a fin de obtener poblaciones de células NK policlonales o, después de la dilución limitativa), clones de células NK (Moretta, A. 1985. Frequency and surface phenotype of human T lymphocytes producing interleukin-2. Analysis by limiting dilution and cell cloning. Eur. J. Immunol. 151:148-155).
Análisis citofluorimétrico de flujo
Se tiñeron las células con el mAb apropiado seguido de segundo reactivo anti-ratón de cabra específico para el isotipo, conjugado con PE o FITC (Southern Biotechnology Associated, Birmingham, AL). Se analizaron las muestras por análisis citofluorimétrico de uno o dos colores (FACScan Becton Dickinson & Co., Mountain View, CA) como se describió anteriormente (por ejemplo Moretta A., G. Tambussi, C. Bottino, G. Tripodi, A. Merli, E. Ciccone, G. Pantaleo y L. Moreta. 1990. A novel surface antigen expressed by a subset of human CD3-CD16+ Natural Killer cells. Role in cell activation and regulation of cytolytic function. J. Exp. Med. 171:695-714).
Estirpes celulares y ensayos citolíticos
Las dianas negativas a Fc\gammaR utilizadas fueron las siguientes: MEL15 (MEL15392, melanoma humano) (Pende, D., L. Accame, L. Pareti, A. Mazzocchi, A. Moretta, G. Parmiani y L. Moretta. 1998. The susceptibility to Natural Killer cell mediated lysis of HLA class I-positive melanomas reflects the expression of insufficient amounts of HLA I alleles. Eur. J. Immunol. 28:2384-2394); M14 (melanoma humano) (Pessino, A., S. Sivori, C. Bottino, A. Malaspina, L. Morelli, L. Moretta, R. Biassoni y A. Moretta. 1998. Molecular cloning of NKp46: a novel member of the immunoglobulin superfamily involved in triggering of natural cytotoxicity. J. Exp. Med. 188:953-960); SMMC (hepatocarcinoma humano) (Sivori, S., D. Pende, C. Bottino, E. Marcenaro, A. Pessino, R. Biassoni, L. Moretta y A. Moretta. 1999. NKp46 is the major triggering receptor envolved in the natural cytotoxicity of fresh or cultured human natural killer cells. Correlation between surface density of NKp46 and natural cytotoxicity against autologous, allogeneic or xenogeneic target cells. Eur. J. Immunol. 29:1656-1666); A549 (adenocarcinoma pulmonar humano; ATCC número CCL-185.1); FO-1 y 1174 mel (melanomas humanos); AUMA (melanoma humano).
La diana positiva a Fc\gammaR fue P815 (mastocitoma murino). PHA-Blasts, utilizadas como células diana normales, se obtuvieron cultivando PBL con 1,5 ng/ml de PHA (Gibco).
Se determinó la actividad catalítica en las células en un ensayo de liberación de ^{51}Cr de 4 h. (como se describió anteriormente), en ausencia o en presencia de varios mAb (Moretta A., C. Bottino, D. Pende, G. Tripodi, G. Tambussi, O. Viale, A.M. Orengo, M. Barbaresi, A. Merli, E. Ciccone y L. Moretta. 1990. Identification of four subset of human CD3-CD16+ NK cells by the expression of clonally distributed functional surface molecules. Correlation between subset assignment of NK clones and ability to mediate specific alloantigen recognition. J. Exp. Med. 172:1589-1555; Sivori, S., D. Pende, C. Bottino,E. Marcenaro, A. Pessino, R. Biassoni, L. Moretta y A. Moretta. 1999. NKp46 is the major triggering receptor involved in the natural cytotoxicity of fresh or cultured human natural killer cells. Correlation between surface density of NKp46 and natural cytotoxicity against autologous, allogeneic or xenogeneic target cells. Eur. J. Immunol. 29:1656-1666). Las concentraciones de varios mAb fueron de 10 microgramos/ml para los experimentos de enmascaramiento y de 0,5 microgramos/ml para los experimentos de destrucción redirigida. Las relaciones E/T están indicadas en el texto. Los mAb apropiados incluyen aquellos que aumentan de manera significativa la actividad citolítica observada en su ausencia. Ejemplo de dicho aumento significativo apropiado comprende un aumento de por lo menos aproximadamente 5 veces la actividad citolítica observada con una relación efector:diana de 1:1 en presencia de dichos mAb en comparación con la actividad citolítica observada en ausencia de estos mAb.
Determinación del aumento de calcio intracelular [Ca^{++}]i libre
La determinación de [Ca^{++}]i se realizó como se describió anteriormente (Poggi A., R. Pardi, N. Pella, L. Morelli, S. Sivori, M. Vitale, V. Revello, A. Moretta y L. Moretta. 1993. CD45-mediated regulation of LFA1 function in human natural killer cells. Anti-CD45 monoclonal antibodies inhibit the calcium mobilization induced via LFA1 molecules. Eur. J. Immunol. 23:2445-2463). Se incubaron células NK marcadas con Fura-2 durante 30' a 4ºC con cantidades de saturación de mAb anti-NKp30 (AZ20) o medio solo. La reticulación de este receptor se obtuvo añadiendo en la cubeta 20 \mug/ml de antisuero anti-ratón de cabra purificado por afinidad (GAM) (ICN Biomedicals, Aurora, Ohio).
Caracterización bioquímica de las moléculas NKp30
Se prepararon proteínas de la membrana de células NK íntegras (Bordier, C. 1981. Phase separation of integral membrane proteins in Triton X-114 solution. J. Biol. Chem. 256:1604-1606) de la forma siguiente: se lisaron 25\times10^{6} células en 100 \mul de tampón TX (tampón de fosfato sódico 20 mM, 1% de Triton X-114, EDTA 10 mM, pH 8) 30' a 4ºC, se centrifugaron (5', 10.000 RPM). Se dejó 10' a 37ºC el sobrenadante, se centrifugó y se volvió a poner en suspensión la fase inferior 1:2 en tampón TX y se dejó 10' a 4ºC a fin de clarificar los lisados. Se dejó a continuación la suspensión 10' a 37ºC, se centrifugó y se volvió a poner en suspensión la fase inferior 1:3 en EB (Tris 0,0625, pH 6,8, glicerol al 10%, SDS al 2,3%). Se analizaron las muestras en SDS-PAGE discontinuo, se transfirieron a Immobilon P (Millipore Corp, Bedform, MA) y se sondaron con el mAb AZ20 seguido de HRPO anti-ratón de conejo (DAKO A/S, Dinamarca) o con antisuero específico para NKp30 seguido de HRPO anti-conejo de mono (Amersham, Buckingamshire, UK). Para la detección se utilizó el kit de quimioluminiscencia Renaissance (NEN, Boston, MA).
Antisuero policlonal NKp30
Se inmunizó un conejo macho HY/Cr (Charles River) de 2,5 kg con 100 microgramos/100 microlitros del péptido WVSQPPEIRTLEGSC de 15 aminoácidos (SEC. ID. nº: 7: desde la posición 20 de aminoácidos a la posición 33 en la secuencia de proteínas de NKp30 SEC. ID. nº: 2, más un aminoácido C para enlace a KLH) conjugado con KLH (Pende D., R. Biassoni, C. Cantoni, S. Verdian, M. Falco, C. Di Donato, L. Accame, C. Bottino, A. Moretta y L. Moretta. 1996. The Natural Killer cell receptor specific for HLA.A allotypes: a novel member of the p58/p70 family of inhibitory receptors that is characterized by three immunoglobulin-like domains and is expressed as a 140 kD disulphide-linked dimer. J. Exp. Med. 184:505-518). Se realizaron cuatro tratamientos a la semana, el primero junto con 100 microlitos de adyuvante completo de Freund y todos los demás con 100 microlitros de adyuvante incompleto de Freund. Después de una semana a partir del último tratamiento, se extrajeron de 10 ml de sangre y el suero se analizó y valoró por ELISA frente al péptido inmunizante y los irrelevantes.
Análisis del complejo de transducción de señal de NKp30
Se estimularon o no células NK (10^{8}) con pervanadato sódico 100 microM (Cantoni, C., C. Bottino, M. Vitale, A. Pessino, R. Augugliaro, A. Malaspina, S. Parolini, L. Moretta, A. Moretta y R. Biassoni. 1999. NKp44, a triggering receptor involved in tumor cell lysis by activated human Natural Killer cells, is a novel member of the immunoglobulin superfamily. J. Exp. Med. 189:787-796) y los lisados de digitonina al 1% se preclarificaron cinco veces con mAb KD1 acoplado a Sepharose proteína A (anti-CD16). Los lisados se inmunoprecipitaron a continuación con Z231 acoplado a Sepharose-CNBr y los mAb BAB281 o con antisuero de conejo específico para NKp30 acoplado a Sepharose proteína A y suero de conejo preinmunitario. Se analizaron las muestras en un SDS-PAGE al 15% en condiciones reductoras (5% de 2Me), se transfirieron a Immobilon P (Millipore) y se sondaron con mAb anti-fosfotirosina (PY20-HRPO, Transduction Laboratories, Lexington, KY) o mAb anti-CD3\zeta (2H2, Immunotech, Marsella, Francia) seguido de HRPO anti-ratón de conejo (DAKO). Para la detección se utilizó el kit de quimioluminiscencia Renaissance (NEN).
Cribado del banco por expresión del ADNc en células COS-7
Se preparó el banco de expresión de ADNc en el plásmido VR1012 (Vical Inc., San Diego, CA), utilizando ARN extraído de células NK policlonales activadas por IL-2 obtenidas de dos donantes sanos como se describió anteriormente (Pessino, A., S. Sivori, C. Bottino, A. Malaspina, L. Morelli, L. Moretta, R. Biassoni y A. Moretta. 1998. Molecular cloning of NKp46; a novel member of the immunoglobulin superfamily involved in triggering of natural cytotoxicity. J. Exp. Med. 188:953-960, Cantoni, C., C. Bottino, M. Vitale, A. Pessino, R. Augugliaro, A. Malaspina, S. Parolini, L. Moretta, A. Moretta y R. Biassoni. 1999. NKp44, a triggering receptor involved in tumor cell lysis by activated human Natural Killer cells, is a novel member of the immunoglobulin superfamily. J. Exp. Med. 189:787-796).
El procedimiento de cribado del banco fue como se describe (Pessino, A., S. Sivori, C. Bottino, A. Malaspina, L. Morelli, L. Moretta, R. Biassoni y A. Moretta. 1998. Molecular cloning of NKp46; a novel member of the immunoglobulin superfamily involved in triggering of natural cytotoxicity. J. Exp. Med. 188:953-960, Cantoni, C., C. Bottino, M. Vitale, A. Pessino, R. Augugliaro, A. Malaspina, S. Parolini, L. Moretta, A. Moretta y R. Biassoni. 1999. NKp44, a triggering receptor involved in tumor cell lysis by activated human Natural Killer cells, is a novel member of the immunoglobulin superfamily. J. Exp. Med. 189:787-796, Brakenhoff, R.H., M. Gerretsen, E.M.C. Knippels, M. van Dijk, H. van Essen, D.O. Weghuis, R.J. Sinke, G.B. Snow y G.A.M.S. van Dongen. 1995. The human E48 antigen. Highly homologous to the murine Ly-6 antigen ThB, is a GPI-anchored molecule apparently involved in keratinocyte cell-cell adhesion. J. Cell. Biol., 129:1677-1689). En resumen, el banco de ADNc se transfirió temporalmente a células COS-7 y se llevó a cabo la selección de grupos positivos por tinción inmunocitoquímica utilizando el mAb A76 anti-NKp30 específico y selección con sib.
Secuenciado de ADN
Se realizó el secuenciado del ADN utilizando el kit d-Rhodamine Terminator Cycle Sequencing y el secuenciador automático 377 de Applied Biosystems (Perkin Elmer-Applied Biosystems, Foster City, CA).
Transfecciones transitorias
Se transfectaron células COS-7 (5\times10^{5}/placa) con VR1012-NK-A1 (clon 5C) o con el vector solo mediante los procedimientos con DEAE-dextrano o de electroporación descritos (Pende D., R. Biassoni, C. Cantoni, S. Verdiani, M. Falco, C.Di Donato, L. Accame, C. Bottino, A. Moretta y L. Moretta. 1996. The Natural Killer cell receptor specific for HLA.A allotypes: a novel member of the p58/p70 family of inhibitory receptors that is characterized by three immunoglobulin-like domains and is expressed as a 140 kD disulphide-linked dimer. J. Exp. Med. 184:505-518). Después de 48 h., se utilizaron las células transfectadas para el análisis citofluorimétrico.
Análisis de la expresión del transcrito NKp30 por inmunotransferencia Northern
A fin de analizar la expresión del transcrito NKp30 en diferentes estirpes celulares de ARN de origen hemopoyético se fraccionaron por tamaño mediante electroforesis en gel de agarosa desnaturalizante y se transfirieron a una membrana de nilón cargada positivamente (NEN). En particular, 10 \mug de ARN total preparado utilizando el gradiente de CsCl o 2 \mug de poli A^{+} ARN preparado utilizando separación de perlas magnéticas con oligo dT (Dynal) se colocó en cada banda. Se realizaron inmunotransferencias Northern en condiciones de alta severidad como se describe (Biassoni, R., S. Ferrini, I. Prigione, A. Moretta y E.O. Long. 1988. CD3-negative lymphokine-activated cytotoxic cells express the CD3 epsilon-gene. J. Immunol. 140:1685-1689). La sonda de ADNc de NKp30 de 421 bp (SEC. ID. nº: 10) se obtuvo por ampliación por PCR llevada a cabo con 25 pmoles de cada cebador durante 30 ciclos (30 s. a 94ºC, 30 s. a 60ºC, 30 s. a 72ºC), seguido de una incubación de 7 min. a 72ºC. Las secuencias de los cebadores son: CAG GGC ATC TCG AGT TTC CGA CAT GGC CTG GAT GCT GTT G (NKp30 arriba; SEC. ID. nº: 8) y GAC TAG GAT CCG CAT GTG TAC CAG CCC CTA GCT GAG GAT G (NKp30 abajo; SEC. ID. nº: 9). El fragmento de ADNc SEC. ID. nº: 10 estaba marcado con ^{32}P mediante cebado aleatorio (Maniatis, T., E.F. Fritsch & J. Sambrook. 1982. Molecular cloning: A laboratory manual. Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, NY).
Ampliación por RT- PCR del ADNc de NKp30
El ARN completo extraído utilizando ARNzol (Cinna/Biotecx, Houston, TX) de poblaciones de NK policlonal y linfocitos T y clones de diferentes estirpes de células hemopoyéticas se transcribió a la inversa utilizando cebado con oligo dT. Los cebadores utilizados para la ampliación con ADNc de NKp30 (606 bp; SEC. ID. nº: 12) fueron los siguientes: 5' CAG GGC ATC TCG AGT TTC CGA CAT GGC CTG GAT GCT GTT G (NKp30 arriba; SEC. ID. nº: 8) y 5' GAT TTA TTG GGG TCT TTT GAA G (cebador inverso; SEC. ID. nº: 11). La ampliación se realizó con 25 picomoles de cada cebador durante 30 ciclos (30 s. a 94ºC, 30 s. a 60ºC, 30 s. a 72ºC), seguido de 7 min. de incubación a 72ºC. Los productos de la ampliación se subclonaron en pCR2.1 mediante el kit de clonación TOPO-TA (Invitrogen, Carlsbad, CA) y se secuenciaron posteriormente.
Análisis por inmunotransferencia Zoo
Se realizó el análisis de conservación cruzada de especies del gen NKp30 utilizando una Zoo-inmunotransferencia (Clontech, Palo Alto, CA). La inmunotransferencia Southern contenía ADN genómico procedente del hombre, macaco Rhesus, rata Sprague-Dawley, ratón BALB/c, perro, vaca, conejo, pollo y levadura Saccharomyces cerevisiae. La sonda de hibridación fue el mismo fragmento de ADNc de 421 bp (SEC. ID. nº: 10) utilizado para hibridar la inmunotransferencia Northern. Se realizaron lavados en condiciones de baja severidad tal como se describe (Maniatis, T., E.F. Fritsch & J. Sambrook. 1982. Molecular Cloning: A laboratory manual. Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, NY).
Resultados Identificación de una nueva molécula de la superficie con activación específica para NK
Se inmunizaron ratones con clones de células NK CD3^{-}, 16^{+}, 56^{+} o la mayoría de las poblaciones. Se seleccionaron en primer lugar los anticuerpos monoclonales de diferentes fusiones según su capacidad para provocar lisis de las células diana Fc\gammaR+ P815 en un ensayo de destrucción redirigido utilizando poblaciones de células NK policlonales o clones como células efectoras. Se seleccionaron tres mAb A76, AZ20 y Z25 (todas del isótopo IgG1) que provocaron una fuerte actividad citolítica (fig. 1A) similar a la provocada por otros mAb específicos para receptores de NK de activación conocidos incluyendo CD16, NKp46 y NKp44 (aumento de actividad de más de cinco veces la actividad citolítica observada en ausencia de los mAb con E:T de 1:1). En la fig. 1B, la citotoxicidad de las células NK provocada por cantidades graduales del mAb AZ20 se compara con la de los mAb anti-CD16 o anti-CD56 compatibles con isótopos. La respuesta citolítica al mAb AZ20 fue paralela a la provocada por mAb anti-CD16 aunque mAb anti-CD56 no tuvo ningún efecto. Además, como se muestra en la fig. 1C, un aumento intracelular agudo de [Ca^{++}] se detectó en el clon 3M16 representativo tras la estimulación con el mAb AZ20. Notablemente, los aumentos de [Ca^{++}]i provocados por este anticuerpo se produjeron solamente en presencia del segundo reactivo anti-ratón de cabra, permitiendo la reticulación eficaz del receptor de activación.
El análisis de la distribución en la superficie celular de la(s) molécula(s) reconocido por los mAb A76, AZ20 y Z25, se realizó por inmunofluorescencia indirecta y análisis FACS, puso de manifiesto la reactividad con varias poblaciones de células NK policlonales o clonales activadas procedentes de diferentes donantes (véase a continuación). Éstos incluyeron también los clones de células NK negativas a CD16 infrecuentes. Por el contrario, no se detectó reactividad de mAb con las poblaciones de linfocitos T policlonales inducidos por PHA o los clones de linfocitos T, TCR, \alpha/\beta y \gamma/\delta (procedentes de diferentes donantes). Tampoco se detectó reactividad con las estirpes de linfocitos B provocada por EBV, las estirpes monocíticas y DC y diferentes estirpes de células tumorales hemopoyéticas y no hemopoyéticas incluyendo HL60, U937, E\sigma/A3, THP-1, Daudi, Jurkat, IGROV y todas las diversas estirpes de células tumorales que se utilizaron como células diana.
Los autores demostraron recientemente que las poblaciones de células NK policlonales procedentes de algunos donantes se caracterizaban por una distribución bimodal de la intensidad de fluorescencia de las moléculas NKp46 (NKp46^{brillante} y NKp46^{mate}) y que los clones NK procedentes de estos individuos expresaban un fenotipo estable de NKp46^{brillante} o de NKp46^{mate}. Significativamente, la actividad citolítica de los clones de las células NK contra las células diana sensibles a NK se correlacionó estrictamente con su fenotipo de NKp46. Los autores analizaron a continuación la reactividad de los nuevos mAb en poblaciones de células NK policlonales y los clones de las células NK se liberan de individuos que presentan diferentes modelos de expresión de NKp46. Como se muestra en la fig. 2A, la población de células NK policlonales procedente del donante AM representativo presentaba un fenotipo brillante de manera homogénea cuando se teñía con AZ20 o mAb anti-NKp46. Por el contrario, en las células NK policlonales procedentes del donante CB, que se tiñen con los mismos mAb produjo una distribución bimodal de la fluorescencia. Principalmente, en el donante CB el mismo modelo de intensidad de fluorescencia fue también detectable en células NK purificadas recientes (fig. 2A). Además, el análisis de varios clones procedentes del donante CB, pusieron de manifiesto que los clones de NKp46^{brillante} eran consecuentemente AZ20^{brillante}, mientras que los clones de NKp46^{mate} siempre presentaban un fenotipo de AZ20^{mate} (fig. 2B).
A fin de definir más el modelo de reactividad de los nuevos mAb en linfocitos recién aislados, PBL procedente de diferentes individuos se evaluó por análisis doble de fluorescencia utilizando los mAb informativos. Un donante representativo se presenta en la fig. 3A: la molécula de la superficie reconocida por el mAb AZ20 se expresó de manera selectiva en las células CD56^{+}. Además la mayoría de las células AZ20^{+} coexpresaron moléculas de CD16. Por otra parte, el mAb AZ20 no teñía los linfocitos T de CD3^{+} o los linfocitos B de HLA-DR^{+}. Obsérvese que la población de células AZ20^{-} de CD56^{+} detectadas en este donante sólo expresaban las moléculas CD3 de la superficie. Por consiguiente, también en los linfocitos recién derivados, la reactividad del mAb AZ20 se solapa con la del mAb anti-NKp46. Un análisis comparativo directo de la expresión en superficie de NKp46 y de las moléculas reactivas al mAb AZ20 se presenta en la fig. 3A. Las dos moléculas fueron expresadas conjuntamente de manera clara por el mismo subconjunto de células. Sin embargo, ninguna distribución en diagonal pudo detectarse en las células teñidas por AZ20 y mAb anti-NKp46 mientras que este tipo de distribución de fluorescencia se daba cuando las células eran teñidas simultáneamente por dos mAb anti-NKp46 de diferente isotipo.
Notablemente, se obtuvieron resultados idénticos a los descritos para el mAb AZ20 con los mAb A76 y Z25. Estos datos sugirieron que la molécula reconocida por los nuevos mAb puede ser distinta de NKp46. Para evaluar directamente esta posibilidad, células COS-7 transfectadas temporalmente con ADNc de NKp46 se analizó su reactividad con los mAb AZ20, A76 y Z25. Los transfectados celulares, aunque reaccionan con diferentes mAb anti-NKp46, no se teñían con los mAb AZ20, A76 y Z25. Los mAb A76, AZ20 y Z25 aparecen de este modo como específicos para una nueva molécula de superficie que define todas las células NK humanas maduras, pero es distinta de NKp46.
A fin de analizar las características bioquímicas de las moléculas de la superficie reconocidas por los mAb AZ20, A76 y Z25, las poblaciones de NK se marcaron en superficie con ^{125}I o biotina, se inmunoprecipitaron con uno u otro mAb y se analizaron por SDS-PAGE. En estas condiciones no pudo detectarse ninguna banda específica. De este modo, se prepararon proteínas íntegras de la membrana a partir de células NK para analizar más una posible reactividad de varios mAb en inmunotransferencia Western. Como se muestra en la fig. 3B, el mAb AZ20 reaccionó específicamente con una molécula de 30 kD, en lo sucesivo denominada NKp30. En las mismas condiciones, tanto los mAb A76 como Z25 presentaban una reactividad más escasa.
Reticulación de la actividad citolítica provocada por NKp30 también en células NK recién derivadas
Ya que la molécula NKp30 se expresó en células NK recientes, los autores analizaron si podía desencadenarse la actividad citolítica de estas células. Como se muestra en la fig. 4, los mAb AZ20, A76 y Z25 provocaban un fuerte aumento de actividad citolítica contra las células diana P815 mientras que el mAb anti-CD56 incompatible con el isotipo no tuvo efecto. El efecto desencadenante fue comparable al obtenido con el mAb anti-NKp46. Además, en estos experimentos, la utilización de fragmentos F(ab')_{2} de AZ20 no produjo desencadenamiento de la actividad citolítica lo que indica que la estimulación de NKp30 dependiente de mAb requiere reticulación eficaz mediada por Fc\gammaR en las células diana.
Implicación de NKp30 en la producción de citotoxicidad natural contra células normales o tumorales
Los datos anteriores demostraban que el enmascaramiento mediado por el mAb NKp46 o de NKp44 inhibía la lisis de las células tumorales MHC restringidas por células NK activadas. Además, el enmascaramiento de NKp46 inhibió también la citotoxicidad natural mediada por las células NK de la sangre periférica recién aisladas. Los autores evaluaron a continuación si el enmascaramiento de NKp30 podría afectar la actividad citolítica mediada por células NK recién derivadas o clones de NK frente a un panel de células diana tumorales negativas a Fc\gammaR. Como se muestra en la fig. 4B, el mAb anti-NKp30, pero no el mAb anti-CD56 compatible con el isotipo, inhibía la citotoxicidad natural mediada por células NK recientes contra las estirpes celulares de melanoma 1174 mel, AUMA y FO-1 negativas de HLA de clase I. Además se produjo un efecto inhibidor mayor cuando se utilizaron los mAb anti-NKp30 en combinación con mAb anti-NKp46. NKp30 y NKp46 representan de este modo receptores que actúan sinérgicamente en el desencadenamiento de la citotoxicidad natural de células NK recientes.
A la vista de estos datos, se analizó más el efecto de enmascaramiento de NKp30 mediado por mAb en la destrucción de las células tumorales por las células NK activadas. La Fig. 5 presenta tres clones de células NK representativos en un ensayo citolítico frente a las dianas del tumor diferentes incluyendo dos melanomas (MEL15 y M14), un hepatocarcinoma (SMMC) y un adenocarcinoma pulmonar (A549). En los estudios anteriores, los autores demostraron que la actividad citolítica contra el melanoma M14 estaba confinada a clones de NK que presentan el fenotipo de NKp46^{brillante} y pudo inhibirse mediante enmascaramiento mediado por el mAb del receptor NKp46. Por otra parte, los clones de NKp46^{brillante} también destruyeron MEL 15, sin embargo ni el enmascaramiento de NKp46 ni el de NKp44 inhibieron de manera significativa su actividad citolítica. Como se ilustró anteriormente, NKp30 se expresa brillantemente en los clones de NKp46^{brillante}; por consiguiente es concebible que pueda desempeñar una función en la destrucción de células diana MEL15. De hecho, como se muestra en la fig. 5, el mAb anti-NKp30 inhibió la lisis mediada por NK de las células MEL15 (>50% de inhibición). El mAb anti-NKp46 ejerció un efecto menor, mientras que un mAb anti-CD56 compatible con el isotipo no tuvo efecto. Por el contrario, la lisis de melanoma M14 fue inhibida por mAb anti-NKp46, mientras que el mAb anti-NKp30 no presentó teóricamente ningún efecto. Por lo tanto, mientras que NKp46 aparece como el receptor principal implicado en la lisis de M14, NKp30 desempeña una función principal en la destrucción de MEL15.
El análisis de los mismos clones de NK en ensayos citolíticos frente a otras células diana tumorales tales como SMMC y A549 (fig. 5) puso de manifiesto una contribución equilibrada de NKp46 y NKp30 a la provocación de citotoxicidad. De hecho, mientras que el enmascaramiento de NKp46 o NKp30 mediado por mAb sólo ejercía un moderado efecto inhibidor, el enmascaramiento simultáneo de las dos moléculas produjo una inhibición significativa. Estos resultados indican que los dos receptores pueden ejercer un efecto sinérgico en la provocación de citotoxicidad frente a determinadas células diana. Además el análisis puso de manifiesto que NKp30 podía ejercer un efecto aditivo o sinérgico en la provocación de citotoxicidad mediada por NK no solamente con NKp46 sino también con NKp44. La fig. 6A presenta la actividad citolítica del clon MIL69 de NK representativo frente a las células tumorales FO-1 o A549. La lisis de las células diana se inhibió solo parcialmente por enmascaramiento mediado por el mAb de los receptores NKp30, NKp44 o NKp46. Sin embargo, el enmascaramiento combinado de dos receptores produjo un efecto inhibidor mayor mientras que el enmascaramiento simultáneo de los tres receptores proporcionó la máxima inhibición. El mAb anti-CD56 compatible con el isótopo no ejerció ningún efecto inhibidor ni cuando se utilizó solo ni en combinación con otros mAb. Los autores analizaron además la función de NKp30 solo o en combinación con otros receptores, en el ensayo citolítico utilizando linfoblastos T producidos por PHA como fuente de células diana normales. En estos experimentos, la lisis de las células autólogas por los clones de las células NK se obtuvo por enmascaramiento mediado por el mAb de las moléculas HLA de clase I en las células diana para destruir la interacción con los receptores inhibidores específicos de HLA de clase I expresados en las células NK. Asimismo en estas condiciones experimentales, el enmascaramiento mediado por el mAb de los receptores individuales ejerció solamente un efecto inhibidor parcial en la citotoxicidad (fig. 6B). Por otra parte, el enmascaramiento simultáneo de los receptores de NKp30, NKp46 y NKp44 redujo fuertemente (o suprimió prácticamente) la lisis de las células diana (véanse los clones representativos MX361 y P9).
Estos datos apoyan la idea de que los ligandos reconocidos por estos receptores se expresan no solamente en el tumor sino también en las células normales.
Por último, los autores analizaron la posible implicación de NKp30 en el reconocimiento de las células diana murinas. El enmascaramiento de NKp30 mediado por mAb no ejerció ningún efecto en la lisis de las células diana del timoma murino tanto BW1502 como YAC-1.
En conjunto lo datos anteriores indican que las funciones de NKp30 como receptor principal implicado en la citotoxicidad mediada por NK contra células diana normales y la mayoría pero no todas las células tumorales. Además, NKp30 puede cooperar con NKp46 y NKp44, dependiendo lo más probablemente de la expresión de los ligandos específicos por la célula diana analizada.
Clonación molecular del ADNc que codifica la molécula de NKp30
En un intento de identificar el ADNc que codifica la molécula de NKp30, se generó un banco de expresión de ADNc a partir del ARNm de las células NK policlonales humanas (Pessino, A., S. Sivori, C. Bottino, A. Malaspina, L. Morelli, L. Moretta, R. Biassoni y A. Moretta. 1998. Molecular cloning of NKp46: a novel member of the immunoglobulin superfamily involved in triggering of natural cytotoxicity. J. Exp. Med. 188:953-960). Las células COS-7 transfectadas con diferentes grupos del banco de ADNc se tiñeron con mAb A76 por un procedimiento de detección inmunocitoquímica. Se aisló un ADNc de 674 bp (clon 5C de NKp30, SEC. ID. nº 1) que contenía un único marco de lectura abierto (ORF) de 573 bp (secuencia codificadora SEC. ID. nº 13). La transfección de las células COS-7 con el montaje del ADNc del clon 5C produjo la expresión en la superficie de una molécula que fue reconocida por todos los diversos mAb anti-NKp30 (fig. 7A) pero no por los mAb anti-NKp46 evaluados por análisis citofluorimétrico. Como se muestra en la fig. 7B, el clon 5C ORF codificó un supuesto polipéptido de 190 aminoácidos (SEC. ID. nº 2), que pertenece a la superfamilia de las inmunoglobulinas (Ig-SF), caracterizado por un péptido señal de 18 aminoácidos (SEC. ID. nº: 3) y por una zona extracelular de 120 aminoácidos (SEC. ID. nº: 4) que forma un dominio similar a Ig de tipo V. La fracción extracelular contiene dos secuencias de glucosilación potenciales unidas a N y ninguna secuencia de consenso para la glucosilación unida por O. Una zona rica en aminoácidos hidrófobos, potencialmente implicados en las interacciones proteína-proteína, está conectando el dominio de tipo Ig V con la zona de la transmembrana. La zona de la transmembrana de 19 aminoácidos (SEC. ID. nº: 5) contiene el aminoácido Arg cargado positivamente y la fracción citoplásmica de 33 aminoácidos (SEC. ID. nº: 6) carece de secuencias de consenso ITAM típicas. La presencia de un aminoácido cargado en el dominio de la transmembrana es una característica común a otros receptores de activación expresados en las células NK. Estos restos cargados se cree normalmente que están implicados en la asociación con polipéptidos de señalización que contienen ITAM.
La búsqueda en las bases de datos EMBL/GenBank pusieron de manifiesto que el ADNc del clon 5C (SEC. ID. nº: 1) era 76,8% idéntico a una forma cortada y empalmada alternativamente identificada anteriormente del gen 1 C7 (nº de registro AF031138). Este gen ha sido cartografiado en el cromosoma 6 humano, en el grupo TNF del gen MHC complejo (Nalabolu, S.R., H. Shukla, G. Nallur, S. Parimoo y S.M. Weissman. 1996. Genes in a 220-kb region spanning the TNF cluster in human MHC. Genomics 31:215-22). En la medida en que sin embargo, ni la función ni la distribución de la superficie del supuesto producto del gen 1 C7 pudo identificarse; y ningún mAb específico para 1 C7 estaba disponible. Además, el transcrito 1 C7 no pudo ser puesto de manifiesto por la inmunotransferencia Northern en diferentes tejidos y estirpes celulares. Por otra parte, el transcrito 1 C7 pudo ser ampliado por RT-PCR mediante el ARN aislado del bazo (pero no de otros tejidos) o determinadas estirpes celulares linfoides y mieloides. Estos datos sugirieron que los transcritos de 1 C7 podrían estar escasamente representados o podrían estar expresados en niveles sustanciales solamente en un intervalo estrecho de tipos de células. El presente análisis por los autores de la expresión de NKp30 por inmunotransferencia Northern puso de manifiesto un ARNm de aproximadamente 1 kb en las poblaciones de células NK policlonales y en las estirpes celulares de NK incluyendo NKL y NK3.3. Por el contrario, coherente con la falta de reactividad con los mAb anti-NKp30, no pudo detectarse ningún ARNm de NKp30 en monocitos humanos o en estirpes celulares de diferente histotipo incluyendo células U937, de Jurkat, HL60 y LCL 721.221 (fig. 8A). En algunas de estas estirpes celulares que eran negativas para la expresión de ARNm por inmunotransferencia Northern (y para la tinción en superficie de mAb anti-NKp30) ha sido posible detectar transcritos cuando se analizan por la técnica RT-PCR. Este descubrimiento es probable que refleje un bajo nivel de la transcripción de NKp30 dando como resultado la falta de expresión en la superficie de NKp30. Además, el análisis por inmunotransferencia Northern de múltiples tejidos humanos demostró expresión selectiva del transcrito de NKp30 solamente en el bazo. En conjunto estos datos son coherentes con el hecho de que la expresión de NKp30 es en gran parte específica de
NK.
Por último, la sonda de ADNc de NKp30 humana se hibridó con el ADN genómico de mono, rata, ratón, perro, vaca y conejo. Estos datos apoyan el hecho de que el gen que codifica a NKp30 está muy conservado en diferentes especies (fig. 8B).
\vskip1.000000\baselineskip
Caracterización bioquímica del complejo NKp30
Se generó antisuero específico para NKp30 inmunizando conejos con un péptido NKp30 N-terminal. Como se muestra en la fig. 9A, el antisuero reconoció en inmunotransferencia Western una molécula idéntica a la detectada anteriormente por el mAb AZ20. A diferencia del mAb AZ20, el antisuero inmunoprecipita moléculas NKp30 procedentes de poblaciones de células NK policlonales marcadas con biotina. De este modo, una población de células NK policlonales, tratadas o no con pervanadato sódico, se inmunoprecipitó con el antisuero específico de NKp30 y se sondó con mAb anti-fosfotirosina. A fin de evitar la unión no específica de la inmunoglobulina de conejo con las moléculas CD16, los lisados celulares se preclarificaron extensamente con mAb anti-CD16. Además, en todos los experimentos se utilizó suero de conejo preinmunitario como referencia negativa. En estos experimentos no pudo detectarse ninguna fosforilación de tirosina del receptor de NKp30. Por otra parte, el receptor de NKp30 asociado a una molécula que se transforma en tirosina fosforilada en el tratamiento con pervanadato sódico (fig. 9B) y que migra conjuntamente con la cadena CD3\zeta asociada a NKp46. La identidad entre la molécula asociada a NKp30 y los polipéptidos CD3\zeta se demostró directamente por su reactividad con el mAb anti-CD3\zeta (fig. 9B).
De este modo, NKp30, similar a otros receptores de activación de NK incluyendo CD16 y NKp46, puede transducir señales de activación mediante la asociación con los polipéptidos CD3\zeta que contienen ITAM. Estos datos están de acuerdo con la falta de ITAM en la cola citoplásmica de NKp30 y con la presencia de un resto cargado en su fracción transmembranaria.
Exposición
En el presente estudio, gracias a la generación de los mAb específicos, los autores identificaron y caracterizaron NKp30, un nuevo receptor de activación que desempeña una función importante en la citotoxicidad natural tanto de las células NK humanas en reposo como activadas. De manera similar a NKp46, NKp30 es expresado de manera selectiva por todas las células NK, tanto las recién aisladas como las cultivadas en IL-2, representando de este modo un marcador óptimo para la identificación de las células NK. Aunque pertenece a la superfamilia Ig, NKp30 no presenta ninguna homología sustancial con los receptores de NK identificados anteriormente.
En muchos aspectos NKp30 parece similar a NKp46. De hecho, su expresión paralela en todas las células NK (incluyendo las células CD16 raras), la existencia, para ambas moléculas, de un modelo de densidad alta o baja de la expresión en superficie junto con sus características funcionales similares condujo a la creencia de que la molécula de la superficie reconocida por los nuevos mAb podría ser idéntica a NKp46 o estrictamente relacionada con ésta. Sin embargo, NKp30 y NKp46 presentaban diferentes masas moleculares y, funcionalmente, parecía desempeñar una función complementaria en la producción de citotoxicidad natural. Además, la clonación molecular puso de manifiesto que NKp30 es una proteína con homología muy limitada con NKp46 ya que las dos moléculas presentan solamente el 13% de identidad y el 15% de similitud y son codificadas por genes situados en cromosomas diferentes.
Los receptores responsables de la activación de las células NK durante la citotoxicidad natural y la lisis de las células tumorales han sido difíciles de localizar hasta hace poco. Los datos disponibles eran coherentes con la hipótesis de la existencia de múltiples receptores de NK activadores implicados en la citotoxicidad natural. En este contexto, los autores identificaron hace poco a NKp46 y NKp44, dos receptores implicados en el reconocimiento y la lisis de varias dianas tumorales. Ambos pertenecen a la superfamilia Ig pero no presentan identidad significativa. Se asocian a diferentes polipéptidos de transducción de señal (CD3\zeta/Fc\varepsilonRI\gamma y KARAP/DAP12, respectivamente) que se convierten en tirosina fosforilada durante la activación de las células NK. Se demostró que NKp46 y NKp44 cooperan en el proceso de la lisis de las células tumorales por las células NK humanas. Sin embargo, la lisis de determinadas células diana era solamente dependiente de NKp46 y/o NKp44 marginalmente, ya que el enmascaramiento mediado por el mAb de estas moléculas no interfirió significativamente con la citotoxicidad. Además, aunque claramente dependiente de NKp46 y/o de NKp44, la actividad citolítica frente a otras estirpes de células tumorales no pudo ser suprimida por el enmascaramiento mediado por el mAb de ambas moléculas lo que sugiere de nuevo la existencia de receptor(es) adicional(es) que cooperan con NKp46 y NKp44. De hecho, los autores demuestran aquí que NKp30 representa un receptor que puede cooperar con NKp46 y NKp44 en la producción de citotoxicidad frente a una variedad de células diana. Quizás, más significativamente, NKp30 representa el receptor principal en provocar la destrucción mediada por NK de determinadas células diana tumorales cuya lisis es en gran medida independiente de NKp46/NKp44 (por ejemplo melanoma de tipo MEL15). Notablemente, NKp30, al igual que NKp46, está también implicado en la activación de células NK y la destrucción de células diana por células NK recientes.
Como se expuso anteriormente, la expresión en superficie de NKp30 es paralela a la de NKp46. De hecho, las células NK que presentan un fenotipo de NKp46^{mate} o NKp46^{brillante}, se caracterizaban también por fluorescencia de NKp30^{mate} o NKp30^{brillante}. Los autores demostraron anteriormente que los clones de células NK caracterizados por un fenotipo de NKp46^{mate} expresan continuamente bajas cantidades de NKp44. El descubrimiento de las células NK expresan densidades paralelas de diferentes receptores de activación puede explicar la existencia de subconjuntos de células NK que presentan diferente actividad citolítica "natural". Por ejemplo, era difícil entender por qué la actividad citolítica contra algunas células diana (tal como MEL15) aunque en gran medida independiente de NKp46, estaba esencialmente confinada a los clones de NK que expresan el fenotipo de NKp46^{brillante}. Estos resultados pueden explicarse ahora por el descubrimiento de que solamente las células NKp46^{brillante} expresan alta densidad del receptor de NKp30. De este modo, la demostración anterior de las mayores diferencias en la actividad citolítica de las células NKp46^{mate} y de NKp46^{brillante} puede aplicarse actualmente también a las células NK que presentan diferentes fenotipos de NKp30. A lo largo de esta línea, la actividad citolítica de los clones de las células NK NKp30^{mate} se redujo notablemente en comparación con los clones de NKp30^{brillante}.
NKp30, al igual que NKp46, se asocia con CD3\zeta que está implicado lo más probable en la vía de señalización del complejo receptor. Sin embargo, CD3\zeta no parece ser necesario para la expresión en superficie de ambos receptores por lo menos en las células COS-7. La clonación molecular puso de manifiesto que NKp30 es el producto de 1C7, un gen cartografiado anteriormente en el cromosoma 6 humano en la zona HLA de clase III (Nalabolu, S.R., H. Shukla, G. Nallur, S. Parimoo y S.M. Weissman. 1996. Genes in a 220-kb region spanning the TNF cluster in human MHC. Genomics 31:215-22; Neville, M.J. y R.D. Campbell. 1999. A new member of the Ig superfamily and a V-ATPase G subunit are among the predicted products of novel genes close to the TNF locus in the human MHC. J. Immunol. 162:4745-4754).
Sin embargo, ni la función ni la distribución celular del supuesto producto del gen IC7 eran conocidas y no existía ninguna indicación sobre su función en la citotoxicidad natural. Además, el análisis de la expresión del transcrito 1 C7 se limitó a RT-PCR aunque no ha sido posible ninguna detección por análisis de inmunotransferencia Northern. Debe también destacarse que no pudo establecerse ninguna correlación entre el transcrito y la expresión en la superficie debido a la falta de los mAb específicos. En la presente invención, los autores demuestran que existe una correlación precisa entre la expresión en superficie de NKp30, determinada tiñendo con tres mAb diferentes, y la expresión de ARNm, evaluada por inmunotransferencia Northern. Por el contrario, la detección de transcritos de 1C7 por RT-PCR no permite predecir la expresión en la superficie de la molécula 1 C7/NKp30.
En conclusión, la molécula NKp30 representa un tercer miembro de una familia emergente de receptores, denominados receptores de citotoxicidad natural (NCR), que están implicados en la activación de células NK durante el reconocimiento de ligandos distintos de HLA. Estos receptores parecen complementarse entre sí en la producción de la lisis de células diana por las células NK. La contribución relativa de cada receptor es probable que refleje la expresión/densidad de sus ligandos específicos en células diana. A lo largo de esta línea, se ha demostrado recientemente que también CD16 está implicada en la citotoxicidad natural sugiriendo de este modo que además de la fijación de Fc y ADCC, CD16 pueden desempeñar una función en la regulación de la función de las células NK. Además de CD16 y las diferentes NCR, varias otras moléculas de la superficie que pueden mediar en la activación de las células NK han sido identificadas en seres humanos y roedores. Éstas incluyen CD2, CD69, CD28, 2B4 y NKR-P1. Sin embargo, su función real en la citotoxicidad natural tiene que ser clarificada todavía ya que en la mayoría de los casos estas estructuras de activación no están limitadas a NK.
Por último, aunque la identificación de las diferentes NCR constituye una etapa principal hacia la comprensión por los autores de la fisiología de las células NK, tanto la naturaleza como la distribución de los ligandos naturales de NCR en las células diana continúa sin ser determinada con más precisión. Basándose en los datos disponibles, es posible prever un mecanismo nuevo de escape del tumor consistente en la regulación por disminución (en las células tumorales) de moléculas de ligando específicamente reconocidas por los receptores de activación específica de NK. De este modo, la identificación de dichos ligandos permitirá el análisis de su distribución en células normales frente a tumorales y definir si existe una correlación entre la expresión de ligando y la sensibilidad para la lisis mediada por NK por diferentes células tumorales.
Ejemplo 2 Preparación de anticuerpos anti-NKp30
Una vez proporcionada la secuencia de la proteína NKp30 SEC. ID. nº: 2 ilustrada en el ejemplo 1 anterior, los anticuerpos anti-NKp30 pueden generarse mediante procedimientos de producción de anticuerpos convencionales. Éstos incluyen animales para inmunización tales como ratones o ratas con un fragmento inmunógeno de NKp30 como se define en la presente memoria. Puede realizarse inmunización repetida. La respuesta al anticuerpo puede controlarse utilizando varias técnicas diferentes tales como ELISA o citometría de flujo para demostrar la presencia en el suero del animal inmunizado de las inmunoglobulinas que se unen al inmunógeno. Cuando se detecta una respuesta significativa al anticuerpo, se sacrifica el animal a fin de generar anticuerpos monoclonales tal como se describe en los procedimientos convencionales, tal como el procedimiento de Köhler y Milstein (Nature 1975, 256: 495-497; Antibodies, a laboratory manual, 1988, Harlow y David Lane, ed. Cold Spring Harbor laboratory), o tal como recoger los
esplenocitos inmunitarios y fusionarlos en una estirpe celular de hibridoma (Anderson, 1989, J. Immunol. 143: 1889).
La delineación de los subconjuntos de células teñidos por el anticuerpo puede conseguirse por citometría de flujo tal como se describió anteriormente a fin de identificar aquellos anticuerpos que tienen la capacidad deseada para reconocer selectivamente células NK entre una muestra biológica. Cualquiera de las indicaciones siguientes puede utilizarse en bioanálisis tal como se describe en el ejemplo 1 para caracterizar más la capacidad de estimulación de los anticuerpos monoclonales obtenidos: (i) producción de citotoxicidad natural hacia las dianas negativas MHC de clase I, células tumorales, células infectadas por virus, células de alotrasplante, (ii) estimulación de la citotoxicidad para con las células diana recubiertas de anticuerpos, (iii) aumentos en la concentración intracitoplásmica de Ca^{2+}, (iv) inducción de la fosforilación de tirosina de moléculas intracitoplásmicas de adaptador/efector tales como ZAP70, Syk, LAT, SLP76, Shc, Grb2, enzimas fosfolipasa C-gamma, fosfatidil-inositol 3-cinasas, (v) fosforilación de las cadenas KARAP/DAP12 o CD3zeta o FcRgamma de transducción asociada al receptor, (vi) secreción de citocinas tales como el interferón gamma, factores de la necrosis tumoral, IL5, IL10, quimiocinas tal como MIP-1alfa), TGFbeta, (vii) regulación por aumento o disminución de moléculas de la superficie de las células NK, tales como CD69 y PEN5 respectivamente.
Puede utilizarse otro procedimiento para generar anticuerpos que sean capaces de unirse a un fragmento inmunógeno de NKp30 y específicamente el cribado de bancos de fago que expresan un repertorio de fragmentos de inmunoglobulina en una forma oligomérica en su superficie. Esta identificación puede conseguirse apelmazando moléculas de NKp30 recombinantes en una fase sólida, poniendo en contacto una suspensión del fago con esta superficie recubierta, lavando los fagos unidos retenidos, replicando estos fagos y volviendo a iterar varias veces este procedimiento de cribado con un montaje del fago que expresa menos un fragmento de inmunoglobulina en su superficie a fin de seleccionar los fragmentos que presentan la afinidad mayor hacia la molécula inmunógena. En los fragmentos opcionalmente obtenidos puede determinarse su capacidad para teñir selectivamente las células NK en muestras biológicas y para competir con cualquier anticuerpo estimulante en cualquier ensayo funcional como se describió anteriormente.
Ejemplo 3 Purificación y activación de células NK
Los reactivos anti-NKp30 tales como los anticuerpos anti-NKp30 presentan de manera ventajosa una especificidad de las células NK apropiada para la purificación de las células NK a partir de muestras biológicas del complejo tales como muestras de recogida de plasmaféresis o citaféresis. El experto en la materia puede establecer varias formas de realización para la purificación de células.
Por ejemplo, los anticuerpos de NKp30 anti-NKp30 pueden injertarse por enlace covalente a microperlas MACS submicroscópicas de Miltenyl Biotec gmbh (Gladbach, Alemania). A continuación se pone en contacto una suspensión de un millón a 1000 millones de células nucleadas de la sangre del donantes obtenidas por citaféresis o por elutriación de la muestra de sangre periférica del donante con perlas magnéticas y se aplica a un dispositivo de clasificación magnética tal como el clasificador de células MACS de Miltenyl. Alternativamente, los anticuerpos anti-NKp30 pueden injertarse a partículas Dynabeads® de Dynal (Oslo, Noruega). La suspensión de células del donante se incuba con las perlas, se somete a un campo magnético en un dispositivo tal como un dispositivo Isolex de Baxter, y se recubre más por incubación con una molécula peptídica que permite la liberación de las células por competitividad con el antígeno NKp30.
Una vez purificadas, las células positivas deben recuperarse a continuación en un medio isotónico apropiado, y pueden infundirse al paciente a una dosis que oscila entre 0,1 y 100 millones. Las células pueden congelarse también después de la etapa de purificación antes de su utilización clínica. En los procedimientos autólogos, se extraen las células NK de la sangre del propio paciente. En este escenario, el tratamiento antitumoral puede conseguirse incubando más las células NK purificadas con un anticuerpo que se une a un antígeno expresado por un tumor, tal como CD20 en el caso del linfoma de Bell y volviendo a infundir las células tratadas al paciente junto con el anticuerpo antitumoral. Alternativamente, en un procedimiento diseñado para prevenir GvHD (injerto contra la enfermedad del huésped) la aparición en el alotrasplante, tal como el trasplante de médula ósea, las células NK pueden purificarse en la sangre del donante y volver a infundirse como tales en el receptor.
La purificación de células NK positivas basada en NKp30 presenta de hecho la ventaja adicional de permitir una activación de células NK simultánea, en determinadas circunstancias. Estas circunstancias incluyen principalmente la utilización de reactivos anti-NKp30 en tal densidad y/o de tal naturaleza que permiten la reticulación de la molécula NKp30 en las células NK. Por lo general, dicha matriz consta de una fase sólida recubierta con una cantidad de saturación del anticuerpo anti-NKp30, tal como fibras huecas, partículas de dextrano o partículas magnéticas.
Con el procedimiento simultáneo de purificación-activación según la invención, las etapas de incubación convencionales para la activación de las células NK tal como la incubación de las células NK purificadas en presencia de interleucinas (por ejemplo IL-2, IL-12, IL-15) no son una etapa necesaria ya. Debe sobreentenderse que dichas etapas convencionales no obstante pueden ser realizadas opcionalmente: el experto en la materia puede elegir añadir una etapa convencional al procedimiento según la invención, por ejemplo con fines de optimización.
Abreviaturas: NK, destructor natural; KIR, receptor del inhibidor destructor; NCR, receptores de citotoxicidad natural; ITAM, motivo de activación a base de tirosina inmunorreceptora; SDS-PAGE, electroforesis en gel de dodecilsulfato sódico-poliacrilamida; Ig-SF, superfamilia de inmunoglobulina; RT-PCR, reacción en cadena de transcriptasa inversa-polimerasa; ORF, marco de lectura abierto; mAb, anticuerpo monoclonal.
En la presente descripción, se hace referencia a varias metodologías conocidas por los expertos en materia de inmunología, biología celular, biología molecular y farmacología.
<110> INNATE PHARMA S.A.S.
\hskip1cm UNIVERSITA DI GENOVA
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<120> Receptor activador implicado en la citotoxicidad natural mediada por las células destructoras naturales humanas y anticuerpos que identifican dicho receptor
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<130> NKp30
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<140>
\vskip0.400000\baselineskip
<141>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 13
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<170> PatentIn Ver. 2.1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 674
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 190
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
\hskip1cm2
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
\hskip1cm3
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 120
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 4
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm4
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 5
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm5
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 33
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 6
\hskip1cm6
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 15
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la secuencia artificial: péptido derivado de una secuencia natural, útil para la producción de antisuero
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 7
\hskip1cm7
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 40
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la secuencia artificial: cebador superior para la ampliación ADNc de NKp30
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 8
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cagggcatct cgagtttccg acatggcctg gatgctgttg
\hfill
40
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 40
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la secuencia artificial: cebador inferior para la ampliación de ADNc de NKp30
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 9
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gactaggatc cgcatgtgta ccagccccta gctgaggatg
\hfill
40
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 421
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 10
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm8
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Descripción de la secuencia artificial: cebador inferior para la ampliación de ADNc de NKp30
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 11
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gatttattgg ggtcttttga ag
\hfill
22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 12
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 606
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 12
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm9
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 13
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 573
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 13
\hskip1cm10

Claims (29)

1. Polipéptido aislado con propiedades activadoras del receptor de células destructoras naturales (NK), que es capaz de unirse a péptidos de transducción de señal de CD3\xi (grupo determinante), presentando dicho polipéptido una secuencia con por lo menos el 80% de homología con una secuencia seleccionada de entre el grupo constituido por la SEC. ID. nº 2, SEC. ID. nº 4, SEC. ID. nº 5, SEC. ID. nº 6 y SEC. ID. nº 7.
2. Polipéptido aislado según la reivindicación 1, que comprende asimismo una cadena de CD3\xi.
3. Anticuerpo aislado dirigido contra por lo menos un polipéptido aislado según la reivindicación 1.
4. Anticuerpo aislado según la reivindicación 3, caracterizado porque no se une a ninguna molécula de la superficie de los linfocitos T ni a ninguna molécula de la superficie de los linfocitos B.
5. Anticuerpo aislado según la reivindicación 3 ó 4, caracterizado porque puede provocar un aumento de por lo menos 5 veces en la citotoxicidad natural desencadenada por una célula NK colocada en presencia de una célula diana en una proporción 1:1.
6. Anticuerpo aislado según cualquiera de las reivindicaciones 3 a 5, caracterizado porque es un anticuerpo monoclonal.
7. Anticuerpo aislado según la reivindicación 6, en el que dicho anticuerpo monoclonal se produce a partir del hibridoma 1-2576 (C.N.C.M. Institut Pasteur, Paris, Francia).
8. Fragmento inmunorreactivo aislado de un anticuerpo según cualquiera de las reacciones 3 a 7, que comprende el punto de fijación al antígeno de dicho anticuerpo.
9. Anticuerpo humanizado que comprende un fragmento según la reivindicación 8.
10. Soporte sólido sobre el cual se acopla por lo menos un anticuerpo aislado según cualquiera de las reivindicaciones 3 a 7, 9.
11. Hibridoma que produce un anticuerpo monoclonal según cualquiera de las reivindicaciones 3 a 7.
12. Hibridoma según la reivindicación 11, en el que dicho hibridoma es el hibridoma 1-2576 (C.N.C.M. Institut Pasteur, Paris, Francia).
13. Procedimiento para detectar y/o cuantificar la presencia de células destructoras naturales (NK) en una muestra biológica, que comprende:
-
\vtcortauna poner en contacto la muestra biológica con por lo menos un objeto seleccionado de entre el grupo constituido por los anticuerpos aislados según las reivindicaciones 3 a 7, 9, los fragmentos inmunorreactivos aislados según la reivindicación 8, los soportes sólidos según la reivindicación 10, los hibridomas según las reivindicaciones 11 y 12, y
-
\vtcortauna detectar y/o cuantificar los complejos inmunitarios formados de este modo.
\vskip1.000000\baselineskip
14. Kit para detectar y/o cuantificar células destructoras naturales (NK) de una muestra biológica que comprende por lo menos un objeto seleccionado de entre el grupo constituido por los anticuerpos aislados según las reivindicaciones 3 a 7, 9; los fragmentos inmunorreactivos aislados según la reivindicación 8, los soportes sólidos según la reivindicación 10 y los hibridomas según las reivindicaciones 11 y 12, estando dicho objeto contenido en un
recipiente.
15. Procedimiento para la eliminación selectiva de células destructoras naturales (NK) de una muestra biológica, que comprende:
-
\vtcortauna poner en contacto la muestra biológica con por lo menos un objeto seleccionado de entre el grupo constituido por los anticuerpos aislados según las reivindicaciones 3 a 7, 9, los fragmentos inmunorreactivos aislados según la reivindicación 8, los soportes sólidos según la reivindicación 10 y los hibridomas según las reivindicaciones 11 y 12, y
-
\vtcortauna eliminar los complejos inmunitarios formados de este modo.
\newpage
16. Procedimiento para la purificación positiva y selectiva de células naturales destructoras (NK) de una muestra biológica, que comprende:
-
\vtcortauna poner en contacto la muestra biológica con por lo menos un objeto seleccionado de entre el grupo constituido por los anticuerpos aislados según las reivindicaciones 3 a 7, 9, los fragmentos inmunorreactivos aislados según la reivindicación 8, los soportes sólidos según la reivindicación 10 y los hibridomas según las reivindicaciones 11 y 12, y
-
\vtcortauna recuperar las células de los complejos inmunitarios formados de este modo.
\vskip1.000000\baselineskip
17. Kit para la eliminación y/o purificación positiva de células destructoras naturales (NK) de una muestra biológica que comprende por lo menos un objeto seleccionado de entre el grupo constituido por los anticuerpos aislados según las reivindicaciones 3 a 7, 9; los fragmentos inmunorreactivos aislados según la reivindicación 8, los soportes sólidos según la reivindicación 10 y los hibridomas según las reivindicaciones 11 y 12, estando contenido dicho objeto en un recipiente.
18. Procedimiento para la estimulación in vitro de la citotoxicidad de células destructoras naturales (NK), caracterizado porque comprende: poner en contacto dichas células NK in vitro en condiciones fisiológicas con por lo menos un producto seleccionado de entre el grupo constituido por los anticuerpos aislados según las reivindicaciones 3 a 7, 9, los soportes sólidos según la reivindicación 10 y los hibridomas según las reivindicaciones 11 y
12.
19. Kit para la estimulación de la citotoxicidad de células destructoras naturales (NK), que comprende: por lo menos un producto seleccionado de entre el grupo constituido por los anticuerpos aislados según las reivindicaciones 3 a 7, 9; los soportes sólidos según la reivindicación 10, los hibridomas según las reivindicaciones 11 y 12, estando contenido por lo menos un producto en un recipiente.
20. Kit según cualquiera de las reivindicaciones 14, 17 y 19, que comprende asimismo un anticuerpo seleccionado de entre el grupo constituido por anticuerpos anti-NKp46 y anticuerpos anti-NKp44.
21. Kit según cualquiera de las reivindicaciones 14, 17, 19 y 20 que está dirigido a la mejora de trasplantes, a la inhibición de GvH, GvT y en particular a la estimulación de GvL.
22. Procedimiento para la inhibición in vitro de la citotoxicidad de las células destructoras naturales (NK), caracterizado porque comprende: poner en contacto in vitro dichas células NK en condiciones fisiológicas con un fragmento Fab o F(ab')_{2} de un anticuerpo según cualquiera de las reivindicaciones 3 a 7.
23. Kit para inhibir la citotoxicidad de las células destructoras naturales (NK) que comprende un fragmento Fab o F(ab')_{2} de un anticuerpo según cualquiera de las reivindicaciones 3 a 7.
24. Composición farmacéutica que comprende por lo menos un producto seleccionado de entre el grupo constituido por los anticuerpos aislados según las reivindicaciones 3 a 7, 9; los soportes sólidos según la reivindicación 10, los hibridomas según las reivindicaciones 11 y 12, las células NK aisladas que pueden obtenerse por el procedimiento de purificación según la reivindicación 16 y las células NK aisladas que pueden obtenerse por el procedimiento de estimulación según la reivindicación 18, junto con un vehículo farmacéuticamente aceptable.
25. Composición farmacéutica según la reivindicación 24, caracterizada porque por lo menos dicho producto seleccionado está directa o indirectamente unido a un anticuerpo antitumoral, a un anticuerpo anti-microorganismo o a un anticuerpo antivirus.
26. Composición farmacéutica según la reivindicación 24 ó 25, caracterizada porque dichas células NK aisladas se han recogido de un ser humano, y en particular de un donante del trasplante, o de un paciente que tiene un tumor, tal como un melanoma.
27. Composición farmacéutica según cualquiera de las reivindicaciones 24 a 26, caracterizada porque comprende asimismo un anticuerpo seleccionado de entre el grupo constituido por anticuerpos anti-NKp46 y anticuerpos anti-NKp44.
28. Utilización de por lo menos un producto seleccionado de entre el grupo constituido por los anticuerpos aislados según las reivindicaciones 3 a 7, 9, los soportes sólidos según la reivindicación 10, los hibridomas según las reivindicaciones 11 y 12, las células NK aisladas que pueden obtenerse por el procedimiento de purificación según la reivindicación 16 y las células NK aisladas que pueden obtenerse por el procedimiento de estimulación según la reivindicación 18 para la preparación de un medicamento destinado a la mejora de trasplantes, a la inhibición de GvH, GvT y en particular a la estimulación de GvL, y/o para la prevención, paliación y/o terapia de tumores sólidos o líquidos y/o de la infección por microorganismos, principalmente de la infección vírica.
\newpage
29. Utilización de por lo menos un producto seleccionado de entre el grupo constituido por los anticuerpos aislados según las reivindicaciones 3 a 7, 9, los soportes sólidos según la reivindicación 10, los hibridomas según las reivindicaciones 11 y 12, las células NK aisladas que pueden obtenerse por el procedimiento de purificación según la reivindicación 16 y las células NK aisladas que pueden obtenerse por el procedimiento de estimulación según la reivindicación 18 para la preparación de un medicamento destinado al tratamiento de melanoma, hepatocarcinoma y adenocarcinoma pulmonar.
ES00989877T 1999-11-15 2000-11-15 Receptor activador implicado en la citotoxicidad natural mediada por las celulas destructoras naturales humanas y anticuerpos que identifican dicho receptor. Expired - Lifetime ES2321687T3 (es)

Applications Claiming Priority (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US44051499A 1999-11-15 1999-11-15
CA2288307 1999-11-15
CA2288307A CA2288307C (en) 1999-11-15 1999-11-15 Novel triggering receptor involved in natural cytotoxicity mediated by human natural killer cells and antibodies that identify the same
US440514 1999-11-15

Publications (1)

Publication Number Publication Date
ES2321687T3 true ES2321687T3 (es) 2009-06-10

Family

ID=25681295

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ES00989877T Expired - Lifetime ES2321687T3 (es) 1999-11-15 2000-11-15 Receptor activador implicado en la citotoxicidad natural mediada por las celulas destructoras naturales humanas y anticuerpos que identifican dicho receptor.

Country Status (8)

Country Link
EP (1) EP1240326B1 (es)
JP (1) JP4776845B2 (es)
AT (1) ATE423848T1 (es)
AU (1) AU783899B2 (es)
DE (1) DE60041655D1 (es)
DK (1) DK1240326T3 (es)
ES (1) ES2321687T3 (es)
WO (1) WO2001036630A2 (es)

Families Citing this family (14)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE10261223A1 (de) * 2002-12-20 2004-07-08 MedInnova Gesellschaft für medizinische Innovationen aus akademischer Forschung mbH Steigerung der Immunantwort durch Substanzen, welche die Funktion von Natürlichen Killerzellen beeinflussen
JP2006514024A (ja) * 2002-12-23 2006-04-27 イネイト・ファーマ Nk細胞の増殖に対する効果を有する医薬組成物及びそれを使用する方法
EP1445614A1 (en) * 2003-02-06 2004-08-11 Institut National De La Sante Et De La Recherche Medicale (Inserm) A method for the in vitro assessment of the progression status of an HIV virus in an invidual
DK1648507T3 (en) 2003-07-24 2017-05-01 Innate Pharma Sa PROCEDURES AND COMPOSITIONS FOR INCREASING THE EFFECTIVENESS OF THERAPEUTIC ANTIBODIES USING COMPOUNDS THAT POTENTATE NK CELLS
CA2564244A1 (en) * 2004-04-30 2005-11-10 Innate Pharma Compositions and methods for enhancing nk cell activity
AU2005264993A1 (en) * 2004-06-18 2006-01-26 Genentech, Inc. Use of Apo2L receptor agonists and NK cells or NK cell activators
CA2575607C (en) 2004-08-03 2017-07-11 Innate Pharma Therapeutic and diagnostic methods and compositions targeting 4ig-b7-h3 and its counterpart nk cell receptor
EP1626059A1 (en) * 2004-08-09 2006-02-15 Institut National De La Sante Et De La Recherche Medicale (Inserm) Angiogenic and immunologic applications of anti-CD160 specific compounds obtainable from mAb CL1-R2
CA2591059C (en) 2004-12-28 2018-11-06 Innate Pharma Monoclonal antibodies against nkg2a
US9447185B2 (en) 2005-10-14 2016-09-20 Innate Pharma, S.A. Compositions and methods for treating proliferative disorders
CA2697992C (en) * 2007-10-04 2017-08-22 Zymogenetics, Inc. B7 family member zb7h6 and related compositions and methods
CN107850596B (zh) * 2015-07-24 2020-12-04 先天制药公司 用于检测组织浸润nk细胞的方法
AU2018371114A1 (en) 2017-11-21 2020-05-07 Innate Pharma Multispecific antigen binding proteins
WO2023110937A1 (en) 2021-12-14 2023-06-22 INSERM (Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale) Depletion of nk cells for the treatment of adverse post-ischemic cardiac remodeling

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CA2170352A1 (en) * 1993-08-27 1995-03-02 Paul Anderson Natural killer cell-specific antigen and antibodies that identify the same
WO1999023867A2 (en) * 1997-11-07 1999-05-20 Biogen, Inc. Bmog, a protein member of the myelin-oligodendrocyte glycoprotein family and its use
EP1066050B2 (de) * 1998-03-27 2010-06-02 Gabriele Prof. Dr. Multhoff Verwendung von hsp70 protein

Also Published As

Publication number Publication date
WO2001036630A3 (en) 2001-11-08
EP1240326A2 (en) 2002-09-18
ATE423848T1 (de) 2009-03-15
EP1240326B1 (en) 2009-02-25
AU783899B2 (en) 2005-12-22
WO2001036630A9 (en) 2002-09-19
DK1240326T3 (da) 2009-06-02
JP2003523735A (ja) 2003-08-12
AU2667701A (en) 2001-05-30
DE60041655D1 (de) 2009-04-09
JP4776845B2 (ja) 2011-09-21
WO2001036630A2 (en) 2001-05-25

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US7517966B2 (en) Triggering receptor involved in natural cytotoxicity mediated by human natural killer cells and antibodies that identify the same
JP6133209B2 (ja) 抗ssx−2t細胞受容体及び関連材料並びに使用方法
ES2279585T3 (es) Polipeptido coestimulante de celulas t, anticuerpos monoclonales, su preparacion y su uso.
Perussia et al. Murine natural killer cells express functional Fc gamma receptor II encoded by the Fc gamma R alpha gene.
TW202043263A (zh) Gprc5d嵌合抗原受體及表現其之細胞
JP7104624B2 (ja) トランスフォーミング増殖因子ベータ応答性ポリペプチド及びその使用方法
ES2321687T3 (es) Receptor activador implicado en la citotoxicidad natural mediada por las celulas destructoras naturales humanas y anticuerpos que identifican dicho receptor.
ES2353637T3 (es) Moléculas denominadas ldcam.
US20070065875A1 (en) NTB-A, a surface molecule involved in natural killer cells activity
JPH09509826A (ja) 活性化cd4▲上+▼t細胞の表層上のレセプターに対するリガンド(act−4−l)
AU2323301A (en) Receptor on the surface of activated T-cells: ACTS-4
Söderström et al. High expression of V gamma 8 is a shared feature of human gamma delta T cells in the epithelium of the gut and in the inflamed synovial tissue.
US6946255B1 (en) Monoclonal antibody reacting specifically reacting with Fas ligand and production process thereof
AU2002325333A1 (en) NTB-A, a surface molecule involved in natural killer cells activity
US7279291B2 (en) Polypeptides having a triggering NK activity and biological applications
Struijk et al. Inflamed joints of patients with rheumatoid arthritis contain T cells that display in vitro proliferation to antigens present in autologous synovial fluid functional analysis on the basis of synovial-fluid-reactive T-cell clones and lines
CA2288307C (en) Novel triggering receptor involved in natural cytotoxicity mediated by human natural killer cells and antibodies that identify the same
US5646251A (en) Alloreaction-associated antigen (ARAG): a novel member of the immunoglobulin gene superfamily
Morelli et al. Triggering of the cytotoxic activity of murine natural killer and lymphokine-activated killer cells through the NK2. 1 antigen.
EP4172213A1 (en) Methods and compositions for the reduction of chimeric antigen receptor tonic signaling
Smith Expression, function and ligands for the Ly-49H NK cell activation receptor
McQueen Genomic and functional analysis of mouse Ly49 natural killer cell receptor genes