ES2307594T3 - Agentes de union selectivos a antigenos de la proteina de union a osteoprotegerina. - Google Patents
Agentes de union selectivos a antigenos de la proteina de union a osteoprotegerina. Download PDFInfo
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Abstract
Un anticuerpo o dominio de unión a antígeno que reconoce un epítopo DE en proteína de unión a osteoprotegerina humana (OPGbp), a) siendo el epítopo DE un epítopo que comprende una porción de la secuencia de aminoácido de la región DE de OPGbp humana desde el radical de aminoácido 212 hasta el radical de aminoácido 250 de la secuencia GFYYLYANICFRHHETSGDLATEYLQLMVYVTKTSIKIP, y b) comprendiendo el epítopo DE la secuencia DLATE.
Description
Agentes de unión selectivos a antígenos de la
proteína de unión a osteoprotegerina.
La presente invención se refiere a anticuerpos o
a dominios de unión a antígeno que se unen a proteína de unión a
osteoprotegerina (OPGbp). Más en particular, la invención se refiere
a anticuerpos dominios de unión a antígeno que se unen
selectivamente a OPGbp y que se pueden utilizar para prevenir o
tratar estados patológicos relacionados con la pérdida de masa
ósea. Asimismo, se proporcionan moléculas de ácido nucleico,
vectores y células huésped para la producción de anticuerpos y
dominios de unión a antígeno según la invención.
El tejido óseo vivo presenta un equilibrio
dinámico entre el depósito y la resorción del huesos. Dichos
procesos están mediados principalmente por dos tipos de células:
osteoblastos, que segregan moléculas que comprenden la matriz
orgánica del hueso; y osteoclastos que promueven la disolución de la
matriz ósea y la solubilización de las sales del hueso. En los
individuos jóvenes con los huesos en crecimiento, la velocidad de
depósito óseo excede a la velocidad de resorción ósea, en cambio,
en los individuos maduros la velocidad de resorción puede exceder a
la de depósito. En ésta última situación, la mayor descomposición
del hueso lleva a una reducción de la masa y la resistencia del
hueso, a un mayor riesgo de fracturas y a una recuperación lenta o
incompleta de los huesos rotos.
Los osteoclastos son unas células multinucleadas
fagocíticas grandes que se forman a partir de células precursoras
hematopoyéticas en la médula ósea. Si bien el crecimiento y la
formación de osteoclastos funcionales maduros no se comprende
completamente, se cree que los osteoclastos maduran junto con el
linaje celular monocito/macrófago como respuesta a la exposición a
varios factores que favorecen el crecimiento. Se cree que el primer
desarrollo de células precursoras de médula ósea en preosteoclastos
está mediado por factores solubles como
factor-\alpha de necrosis de tumor
(TNF-\alpha), factor-\beta de
necrosis de tumor (TNF-\beta),
interleucina-1 (IL-1),
interleucina-4 (IL-4),
interleucina-6 (IL-6) y factor
inhibidor de leucemia (LIF). En cultivo, los preosteoclastos se
forman en presencia de factor de estimulación de colonia de
macrófagos añadido (M-CSF). Estos factores actúan
principalmente en las primeras etapas del desarrollo del
osteoclasto.
Se ha descrito un factor de polipéptido,
proteína de unión a osteoprotegerina (OPGbp), que estimula la
formación de osteoclasto y la resorción ósea que, según parece,
actúa en un último estadio del desarrollo. Ver PCT WO 98/46751.
OPGbp estimula la formación de osteoclasto desde las células
precursoras de la médula ósea sin que sea necesario un
co-cultivo en presencia de una línea celular de
estromas. La estimulación de la resorción ósea a través de OPGpb
requiere la interacción con su receptor cognado, receptor de
diferenciación y activación de oesteoprotegerina (ODAR), y la
inhibición de la interacción ODAR/OPGpb a través de osteoprotegerina
(OPG) también inhibe la resorción ósea. En consecuencia, la
regulación de la unión de OPGbp a ODAR afecta a la formación de
osteoclasto y la pérdida de hueso.
K. Tsukii y cols.: BIOCHEMICAL AND BIOPHYSICAL
RESEARCH COMMUNICATIONS, vol. 246, Nº 2, 19 de mayo 1998 describe
un anticuerpo policlonal contra OPGbp murínica que inhibe la
resorción ósea en ratones.
Uno de los objetos de la presente invención
consiste en identificar agentes de unión selectivos que regulan la
interacción de OPGbp y ODAR, especialmente los agentes que bloquean
la interacción de OPGbp y ODAR y/o inhiben al menos una actividad
de OPGbp, como la resorción ósea. Otro objeto más de la presente
invención consiste en la identificación de agentes de unión
selectivos que pueden utilizarse para prevenir y tratar la pérdida
de masa ósea. Otro objeto más de la presente invención consiste en
la identificación de un anticuerpo, o un dominio de unión a
antígeno, o un fragmento o variante del mismo, que regula la
interacción de OPGbp y ODAR y neutraliza al menos una actividad de
OPGbp. Los anticuerpos pueden utilizarse para prevenir y tratar la
pérdida de masa ósea.
La invención proporciona un anticuerpo o un
dominio de unión a anticuerpo de proteína de unión a
osteoprotegerina (OPGbp) que reconoce el epítopo DE en la proteína
de unión a oesteoprotegerina humana (OPGbp),
a) siendo el epítopo DE un epítopo que comprende
una porción de la secuencia de aminoácido de la región DE de OPGbp
humana desde el radical de amino ácido 212 hasta el radical de
aminoácido 250 de la secuencia.
GFYYLYANICFRHHETSGDLATEYLQLMVYVTKTSIKIP, y
b) comprendiendo el epítopo DE la secuencia
DLATE.
\vskip1.000000\baselineskip
En uno de los modos de realización, el
anticuerpo o dominio de unión a anticuerpo de la invención inhibe
parcial o completamente al menos una actividad de OPGbp; es decir,
el anticuerpo o dominio de unión a anticuerpo es un antagonista de
OPGbp. En otro modo de realización, el anticuerpo o dominio de unión
a anticuerpo se une a OPGbp de manera que inhibe parcial o
completamente la interacción de OPGbp con su receptor cognado,
receptor de diferenciación y activación de osteoclasto, u ODAR, y
de esta forma inhibe parcial o completamente la actividad de OPGbp.
Los anticuerpos o dominios de unión a antígeno de la invención
pueden consistir en una proteína natural y reciben el nombre en el
presente documento de agentes de unión selectivos proteináceos.
La invención proporciona asimismo un anticuerpo
o dominio de unión a antígeno del mismo, o fragmento o variante o
derivado del mismo, que se une a un epítopo en OPGbp y que inhibe
parcial o completamente al menos una actividad de OPGbp, es decir,
la formación o activación de osteoclasto o resorción ósea. En otras
palabras, el anticuerpo es un anticuerpo antagonista.
Preferiblemente, OPGbp es OPGbp de mamífero. Más preferiblemente,
OPGbp es una OPGbp humana que puede encontrarse en forma soluble
asociada a la superficie celular, o fragmentos, derivados y
variantes de los mismos.
Dicho anticuerpo se puede preparar por
inmunización de un animal con OPGbp, por ejemplo OPGbp murínica o
humana, preferiblemente OPGbp humana, o con un fragmento
inmunogénico, derivado o variante del mismo. Por otra parte, se
puede inmunizar a un animal con células transfectadas con un vector
que contiene una molécula de ácido nucleico que codifica OPGbp, de
manera que OPGbp es expresada y asociada con la superficie de las
células transfectadas. Alternativamente, se pueden obtener agentes
de unión selectivos que son anticuerpos por detección selectiva de
una biblioteca que comprende secuencias de anticuerpo o dominio de
unión a antígeno para la unión con OPGbp. Dicha biblioteca se
prepara convenientemente en bacteriofago como fusiones de proteína o
péptido con una proteína de recubrimiento de bacteriofago que se
expresan en la superficie de las partículas en fagos ensambladas y
las secuencias de ADN de codificación contenidas dentro de las
partículas en fagos (denominada "biblioteca de despliegue en
fagos"). En uno de los ejemplos, una biblioteca de fago
desplegado contiene secuencias de ADN que codifican anticuerpos
humanos, como cadenas pesadas y ligeras variables.
Los anticuerpos y los dominios de unión a
antígeno pueden ser glucoproteínas tetraméricas similares a los
anticuerpos nativos o pueden ser anticuerpos de cadena simple;
fragmentos Fv, Fab, Fab' o F(ab)', anticuerpos
biespecíficos, heteroanticuerpos u otros fragmentos, variantes o
derivados de los mismos, que se pueden unir a OPGbp y neutralizar
parcial o completamente la actividad de OPGbp. Los anticuerpos o
dominios de unión a antígeno se pueden producir en líneas celulares
de hibridoma (células de producción de anticuerpos como células de
bazo fusionadas con células de mieloma de ratón, por ejemplo) o se
pueden producir en líneas celulares heterólogas transfectadas con
moléculas de ácido nucleico que codifica dicho anticuerpo o dominio
de unió a antígeno.
\vskip1.000000\baselineskip
Un anticuerpo o dominio de unión a antígeno
según la invención se define según la reivindicación 1 y puede
comprender:
(a) una secuencia de aminoácidos de cadena
pesada Fab tal como se muestra en la figura 9 (SEQ ID NO: 51) o
figura 10 (SEQ ID NO: 53);
(b) una secuencia de aminoácidos de cadena
pesada que comprende sustituciones de aminoácido conservadoras de
la secuencia del punto (a);
(c) una secuencia de aminoácido de cadena pesada
que es idéntica en al menos aproximadamente un 80% a la secuencia
del punto (a); o
(d) un fragmento o derivado de (a), (b) o
(c);
uniéndose selectivamente el anticuerpo o dominio
de unión a antígeno a OPGbp.
\vskip1.000000\baselineskip
En otro modo de realización, un anticuerpo o
dominio de unión a antígeno de la invención, tal como se define en
la reivindicación 1, puede reconocer un epítopo en OPGbp humana
reconocido por un anticuerpo o dominio de unión a antígeno que
comprende una secuencia de aminoácido de cadena pesada Fab tal como
se muestra en la figura 9 (SEQ ID NO: 51) o la figura 10 (SEQ ID
NO: 53) y una secuencia de aminoácido ligera Fab, tal como se
muestra en la figura 5 (SEQ ID NO: 43) o la figura 6 (SEQ ID NO:
45).
Se proporciona un anticuerpo o dominio de unión
a anticuerpo anti-OPGbp que reconoce un epítopo DE
en OPGbp, comprendiendo el epítopo DE la secuencia DLATE.
Un anticuerpo o dominio de unión a antígeno
según la reivindicación 1 de la invención puede comprender una
cadena V_{l} y V_{h},
\newpage
comprendiendo cada una de las cadenas V_{l}
secuencias de aminoácido CDR designadas CDR1 (V_{l}),
CDR2(V_{l}) y CDR3 (V_{l}), separadas por secuencias de
amionoácido estructurales, seleccionándose CDR1 (V_{l}) del grupo
que consiste en:
RASQSISRYLN | (SEQ ID NO: 01); |
RASQSVGSYLA | (SEQ ID NO: 02); |
RASQSVSSSSLA | (SEQ ID NO: 03); y |
SGDALPKQY | (SEQ ID NO: 04) |
\vskip1.000000\baselineskip
seleccionándose CDR2 (V_{l}) del grupo que
consiste en:
GASSLQS | (SEQ ID NO: 05); |
DATNRAT | (SEQ ID NO: 06); |
GASSRAT | (SEQ ID NO: 07); y |
EDSERPS | (SEQ ID NO: 08); |
\vskip1.000000\baselineskip
y seleccionándose CDR3 (V_{l}) del grupo que
consiste en:
QHTRA | (SEQ ID NO: 09); |
QHRRT | (SEQ ID NO: 10); |
QQYGA | (SEQ ID NO: 11); y |
QSTDSSGTYVV | (SEQ ID NO: 12); |
seleccionándose CDR1 (V_{l}), CDR2 (V_{l}) y
CDR3 (V_{l}) independientemente entre sí; y
comprendiendo cada cadena V_{h} secuencias de
aminoácido CDR designadas CDR1 (V_{h}), CDR2 (V_{h}) y CDR3
(V_{h}), separadas por secuencias de aminoácido estructurales,
seleccionándos CR1 (V_{h}) del grupo que consiste en:
NYAIH | (SEQ ID NO: 13); |
NYPMH | (SEQ ID NO: 14); y |
DYAMH | (SEQ ID NO: 15); |
\vskip1.000000\baselineskip
seleccionándose CDR2 (V_{h}) del grupo que
consiste en:
WINAGNGNTKFSQKFQG | (SEQ ID NO: 16); |
VISYDGNNKYYADSVKG | (SEQ ID NO: 17); |
GISWNSGRIGYADSVKG | (SEQ ID NO: 18); |
\vskip1.000000\baselineskip
seleccionándose CDR3 (V_{h}) del grupo que
consiste en:
DSSNMVRGIIIAYYFDY | (SEQ ID NO: 19); |
GGGGFDY | (SEQ ID NO: 20); y |
GGSTSARYSSGWYY | (SEQ ID NO: 21); |
seleccionándose CDR1 (V_{h}), CDR2 (V_{h}) y
CDR3 (V_{h}) independientemente entre sí.
\vskip1.000000\baselineskip
Un anticuerpo o dominio de unión a antígeno
según la reivindicación 1 de la invención puede comprender una
cadena V_{l} y V_{h},
comprendiendo la cadena V_{l} CDR1 que tiene
la secuencia RASQSISRYLN (SEQ ID NO: 01), CDR2 que tiene la
secuencia GASSLQS (SEQ ID NO: 05) y CDR3 que tienen la secuencia
QHTRA (SEQ ID NO: 09) y
comprendiendo la cadena V_{h} CDR1 que tiene
la secuencia NYAIH (SEQ ID NO: 13), CDR2 que tiene la secuencia
WINAGNGNTKFSQKFQG (SEQ ID NO: 16) y CDR3 que tiene la secuencia
DSSNMVRGIIIAYYFDY (SEQ ID NO: 19);
estando cada CDR1, CDR2 y CDR3 en cada cadena
V_{l} y V_{h} separados por secuencias de aminoácido
estructurales.
Los anticuerpos o dominios de unión a antígeno
de la invención se derivan de secuencias de ácido nucleico de línea
germinal presentes en ADN genómico que codifica secuencias de
aminoácido de cadena pesada y ligera. Los anticuerpos están
codificados por secuencias de ácido nucleico que son los productos
del reordenamiento de la secuencia de línea germinal y mutación
somática.
Un anticuerpo o dominio de unión a antígeno
según la reivindicación 1 de la invención puede comprender una
cadena V_{l} y V_{h}
comprendiendo la cadena V_{l} una variante
reordenada o somática de los genes de línea germinal Vhl, tal como
se representa en la figura 19 (SEQ ID NO: 66); comprendiendo la
cadena V_{h} comprende una variante reordenada o somática de
genes de línea germinal Vh1, tal como se representa en la figura 16
(SEQ ID NO: 59); y uniéndose el anticuerpo selectivamente a un
polipéptido OPGbp.
La cadena V_{l} puede comprender también una
variante reordenada o somática de un gen de línea germinal Vk3 tal
como se representa en la figura 20 (SEQ ID NO: 68) y la cadena
V_{h} puede comprender una variante reordenada o somática de
genes de línea germinal Vh1 tal como se representa en la figura 16
(SEQ ID NO: 59).
La cadena V_{l} puede comprender también una
variante reordenada o somática de un gen de línea germinal Vk3 tal
como se representa en la figura 21 (SEQ ID NO: 70) y la cadena
V_{h} puede comprender también una variante reordenada o somática
de genes de línea germinal Vh3 tal como se representa en la figura
17 (SEQ ID NO: 62).
La cadena V_{l} puede comprender también una
variante reordenada o somática de un gen de línea germinal V13 tal
como se representa en la figura 22 (SEQ ID NO: 72) y la cadena
V_{h} puede comprender también una variante reordenada o somática
de genes de línea germinal Vh3 tal como se representa en la figura
18 (SEQ ID NO: 64).
Los agentes de unión selectivos de la invención
(anticuerpo o dominio de unión a antígeno) inhiben parcial o
completamente al menos una actividad de OPGbp, como por ejemplo la
unión de OPGbp a ODAR, la formación o activación de osteoclastos, o
la resorción ósea mediada por OPGbp, y se utilizan para prevenir y/o
tratar estados patológicos de los huesos. En un modo de
realización, se ha de administrar un antagonista de OPGbp, como por
ejemplo un anticuerpo o dominios de unión a antígeno, a un animal
que experimenta una pérdida de masa ósea, o que se encuentra en
riesgo de pérdida de masa ósea con el fin de prevenir o tratar la
pérdida de masa ósea. Se puede utilizar un antagonista de OPGbp
para prevenir y/o tratar osteoporosis, pérdida de masa ósea como
consecuencia de metástasis de cáncer al hueso; pérdida de masa ósea
como consecuencia de artritis reumatoide, hipercalcemia de
malignidad y osteoporosis inducida por esteroide.
Asimismo, se proporcionan composiciones que
comprenden anticuerpos o dominios de unión a antígeno según la
invención y un vehículo farmacéuticamente aceptable.
La figura 1 presenta un ensayo ELISA de patrones
Fab predominantes para reactividad con OPGpb
(143-317) humana. Se llevaron a cabo valoraciones
utilizando un máximo de 50 \mul de solución de fago por pocillo
para dar un intervalo típico de 10^{9}-10^{11}
fagos/pocillo en el ensayo ELISA. Se prepararon reservas de fagos
para ELISA tal como se describe en el ejemplo 1. Los valores fueron
de determinaciones en un solo punto. Los patrones "AB" y
"X" fueron superpuestos en la misma línea.
En la figura 2 se muestra la inhibición de la
unión de OPGbp a ODAR mediante Fabs "AT" y "Y". Se
purificaron Fabs tal como se ha descrito en el ejemplo 4 y se
añadieron a concentraciones de pocillo finales, que se muestran en
la figura. Los detalles del ensayo de unión OPGbp/ODAR se exponen en
el ejemplo 1. Los valores fueron las medias de determinaciones por
duplicado.
La figura 3 muestra los ensayos de la médula
ósea de Fabs "AT" "Y" y "P". Se muestran los
resultados de una preparación sin endotoxina (0,5 EU/ml o menos) de
cada Fabs "AT", "Y" y "P". Se purificaron las Fabs
tal como se describe en el ejemplo 4 y se añadieron a las
diluciones de pocillo finales que se indican en la figura (las
soluciones de reserva de Fab fueron de 750 \mug/ml a 1 mg/ml). El
formato de ensayo incluye una incubación previa de 1 hora del Fab
anti-hu-OPGbp con 10 ng/ml de
concentración final de células por pocillo de OPGbp
[143-317] humana. Los valores fueron las medias de
determinaciones por triplicado.
La figura 4 muestra los ensayos de célula RAW de
Fabs "AT", "Y" y "P". Se muestran los resultados de
una preparación sin endotoxina (0,5 EU/ml o menos) de cada Fabs
"AT", "Y" y "P". Se purificaron los Fabs tal como se
describe en el ejemplo 4. Se incubaron previamente las Fabs con
OPGbp [143-317] humana durante 1 hora a temperatura
ambiente antes de una dilución 1/20 hasta la concentración final de
células por pocillo que se muestra en el gráfico. La concentración
final de células por pocillo de OPGbp fue 20 ng/ml. La concentración
de células fue 1 x 10^{5}/ml. Los valores fueron de
determinaciones por triplicado con barras de error que designan 2
desviaciones típicas (2 STD).
La figura 5 muestra el nucleótido y la secuencia
de aminoácido de Fab "AT" de cadena ligera.
La figura 6 muestra el nucleótido y la secuencia
de aminoácido Fab "Y" de cadena ligera.
La figura 7 muestra el nucleótido y la secuencia
de aminoácido Fab "P" de cadena ligera.
La figura 8 muestra el nucleótido y la secuencia
de aminoácido Fab "S" de cadena ligera.
La figura 9 muestra el nucleótido y la secuencia
de aminoácido Fab "AT" de cadena pesada.
La figura 10 muestra el nucleótido y la
secuencia de aminoácido Fab "Y" de cadena pesada.
La figura 11 muestra el nucleótido y la
secuencia de aminoácido Fab "P" de cadena pesada.
La figura 12 muestra el nucleótido y la
secuencia de aminoácido Fab "S" de cadena pesada.
La figura 13 muestra una comparación de las
secuencias de aminoácido Fab que se presentan en las figuras
5-12. Se compararon las secuencias de aminoácido
previstas de Fabs de cadena ligera y pesada "AT", "Y",
"P" y "S" en cuanto a la identidad y la similitud. Las
cadenas pesadas "AT" y "Y" difieren solamente en una
posición de aminoácido. Como biblioteca designada, las cuatro Fabs
tienen regiones CH1 de cadena pesada idénticas que comprendían la
mitad carboxi de la cadena pesada que se incluyen en los cálculos de
identidad y similitud. Las cadenas ligeras "AT", "Y" y
"P" comparten las mismas familias V kappa, o similares, y por
lo tanto difieren solamente en 1 a 2 aminoácidos en la mitad
carboxilo de la cadena, que se incluye en los cálculos.
La figura 14 muestra una comparación de las
regiones que determinan complementaridad (CDRs) de cadena pesada y
ligera previstas de Fabs "AT", "Y", "P" y "S".
Para las comparaciones de cadena pesada, CDR1 incluye radicales de
aminoácido 32-36 inclusive para todas las Fabs; CDR2
incluye radicales de aminoácido 51-67 inclusive para
todas las Fabs; y CDR3 incluye radicales de aminoácido
100-116 inclusive para todas las Fabs "AT" y
"Y", 100-106 inclusive para Fab "P" y
100-113 inclusive para Fab "S". Para las
comparaciones de cadena ligera, CDR1 incluye radicales de
aminoácido 29-39 inclusive para Fabs "AT" y
"Y", 28-39 inclusive para Fab "P" y
27-35 inclusive para Fab "S"; CDR2 incluye
radicales de aminoácido 55-61 inclusive para Fabs
"AT", "Y" y "P" y 53-59 inclusive
para Fab "S"; y CDR3 incluye radicales de aminoácido
94-98 inclusive para Fabs "AT", "Y" y
"P" y 92-102 inclusive para Fab "S".
La figura 15 muestra una comparación de las
clases de Fab. La comparación de clases de Fab se obtuvo a partir
de un análisis PLOT ADN Base-V. El símbolo (*)
indica que la región (D) de diversidad de emparejamiento más
cercana, aunque relacionada con las secuencias de líneas germinales
conocida no pudo determinarse. El símbolo (**) indica que la
secuencia de la región (V) variable de línea germinal de la pareja
más próxima ha sido identificada pero no denominada formalmente
hasta la fecha, siendo de la familia lambda más rara.
La figura 16 muestra una comparación de las
secuencias de aminoácido de cadena pesada Fab "AT" y "Y"
previstas (radicales 2-127 inclusive en las figuras
9 y 10, respectivamente) con una secuencia de la línea germinal de
la familia VH1. La secuencia de la línea germinal comprende la
secuencia de la región V 1-03, la secuencia de la
región D 3-10 y la secuencia de la región J JH4 (SEQ
ID NO: 44). FR1, FR2 y FR3 designan las tres regiones
estructurales, CDR1, CDR2, y CDR3 designan las tras regiones de
determinación de complementaridad, y H1, H2 y H3 designan las
secuencias de unión correspondientes entre las regiones
estructurales y CDRs. Las diferencias entre "AT", "Y" y
las secuencias de línea germinal V, D o J están en negrita. El
número de radicales de aminoácido de línea germinal en las figuras
16-22 es como se describe en Kabat y cols.,
Sequences of Proteins of Immunological Interest. U.S.
Department of Health and Human Services, 4ª ed. (1991).
La figura 17 muestra una comparación de las
secuencias de aminoácido de cadena pesada "P" previstas
(radicales 2-117) inclusive en la figura 11) con
una secuencia de línea germinal de la familia VH3. La secuencia
comprende la secuencia de la región V 3-30 y La
secuencia JH4 de la región J. La secuencia de la región D es
desconocida.
En la figura 18 se muestra una comparación de
las secuencias de aminoácido de cadena pesada Fab "S" previstas
(radicales 2-124 inclusive en la figura 12) con una
secuencia de la línea germinal de la familia VH3. La secuencia de
la línea germinal comprende la secuencia de la región V
3-09, la secuencia de la región D
6-19 y la secuencia de las regiones J JH4.
La figura 19 muestra una comparación de la
secuencia de aminoácido de cadena ligera Fab "AT" prevista
(radicales 6-108 inclusive en la figura 5) con una
secuencia de línea germinal de la familia Vkappa1. La secuencia de
línea germinal comprende la secuencia de la región V 012 y la
secuencia de la región J JK1.
La figura 20 muestra una comparación de la
secuencia de aminoácido de cadena ligera Fab "Y" prevista
(radicales 6-108 inclusive en la figura 6) con una
secuencia de la línea germinal de la familia Vkappa3. La secuencia
de la línea germinal comprende la secuencia de la región V L6 y la
secuencia de la región J JK2.
La figura 21 muestra una comparación de la
secuencia de aminoácido de cadena ligera Fab "P" prevista
(radicales 5-108 inclusive en la figura 7) con una
secuencia de línea germinal de la familia Vkappa3. La secuencia de
la línea germinal comprende la secuencia de la región V A27 y la
secuencia de la región J JK4.
La figura 22 muestra una comparación de una
secuencia de aminoácido de cadena ligera Fab "S" prevista
(radicales 5-112 inclusive en la figura 8) con una
secuencia de línea germinal de la familia VL3. La secuencia de la
línea germinal comprende la secuencia de la región V 3m y la
secuencia de la región J JL2.
La figura 23 muestra ensayos de células RAW de
aislados "AT" 405, "AT" 406 y "AT" 407. Se fusionó
ADNc que codificaba Fab "AT" con ADNc que codificaba las
regiones CH1, CH2 y CH3 de IgG1 humano, tal como se describe en el
ejemplo 7. Se utilizaron diferentes secuencias líder para producir
los aislados resultantes designados "AT" 405, "AT" 406 y
"AT" 407. Se incubaron previamente "AT"
405-407 con OPGbp durante 1 hora, a temperatura
ambiente antes de la dilución hasta la concentración final de
péclulas por pocillo que se muestra en el gráfico. La concentración
final de células por pocillo de OPGbp fue 40 ng/ml. Los valores
fueron de determinaciones por triplicado con barras de error que
designaban desviaciones típicas 2 (2 STD).
La figura 24 muestra los ensayos de la médula
ósea de "AT" 405 y "AT" 407. Se muestran los resultados de
una preparación sin endotoxina (0,5 EU/ml o menos) de "AT" 405
y "AT" 407. Se incubaron previamente las muestras con OPGbp
humana [143-317] durante 1 hora a la temperatura
ambiente antes de la adición a las células. La dilución de células
final por pocillo para "AT" 405 y "AT" 407 desde la
reserva de muestra se indica en el eje de las X. La concentración
final de células por pocillo de OPGbp fue 20 ng/ml.
La figura 25 muestra un ensayo de médula ósea de
"AT" 406. Se muestran los resultados de una preparación sin
endotoxina (0,5 EU/ml o menos) de "AT" 406. Se incubaron
previamente las muestras con OPGbp [143-317] humana
durante 1 hora a temperatura ambiente antes de la adición a las
células. La concentración final de células por pocillo de la
muestra se indica en el eje de las x. La concentración final de
células por pocillo de OPGbp fue 20 ng/ml.
La figura 26 muestra un ensayo de médula ósea de
"S" 435 y "Y" 429. La construcción de "S" 435 e
"Y" 429 se describen en el ejemplo 7. Se muestran los
resultados de una preparación sin endotoxina (0,5 EU/ml o menos) de
cada "S" 435 y "Y" 429. Se incubaron previamente las
muestras con OPGbp [143-317] humana durante 1 hora
a temperatura ambiente antes de la adición de las células. La
concentración por pocillo de las células final de la muestra se
indica en el eje de las x. La concentración de células por pocillo
final de OPGbp fue 20 ng/ml.
La figura 27 presenta un ensayo de médula ósea
de "Y" 442 y "P" 444. La construcción y expresión de
"Y" 442 y "P" 444 se describe en el ejemplo 7. Se
muestran los resultados de una preparación sin endotoxina (0,5 EU/ml
o menos) de cada "Y" 442 y "P" 444. Se incubaron
previamente las muestras con OPGbp [143-317] humana
durante 1 hora a temperatura ambiente antes de la adición a las
células. La concentración final de células por pocillo se muestra
en el eje de las x. La concentración final de células por pocillo de
OPGbp fue 20 ng/ml.
La figura 28 presenta el ácido nucleico y la
secuencia de aminoácido de OPGbp/DE [153-136]
FLAG-murínico.
La figura 29 es un alineamiento de secuencias de
aminoácido OPGbp [143-317] humana, OPGbp murínico
[158-316] y OPGbp FLAG-murínico
[158-316]/DE en la región del bucle DE. Se subrayan
los radicales de aminoácido de OPGbp humana introducidos en OPGbp
de ratón para genera la molécula OPGbp/DE
FLAG-ratón.
La figura 30 es un inmunoensayo de enzima en el
que se examina la unión y reactividad del anticuerpo AT a placas
recubiertas con OPGbp [143-317] humana, OPGbp
[158-316] murínica o OPGbp
[158-316]/DE FLAG- murínica.
La presente invención proporciona agentes que se
unen selectivamente a proteína de unión a OPG (OPGbp) que reconoce
un epítopo DE en la proteína de unión a osteoprotegerina humana
(OPGbp),
a) siendo el epítopo DE un epítopo que comprende
una porción de la secuencia de aminoácido de una región DE de OPGbp
humana desde el radical de aminoácido 212 hasta el radical de
aminoácido 250 de la secuencia
GFYYLYANICFRHHETSGDLATEYLQLMVYVTKTSIKIP, y
b) comprendiendo el epítopo la secuencia
DLATE.
Preferiblemente, los agentes son antagonistas o
inhibidores de OPGbp que inhiben parcial o completamente al menos
una actividad de OPGbp, como por ejemplo la unión de OPGbp a su
receptor cognado, ODAR, formación y/o activación de osteoclasto o
resorción ósea. En un modo de realización, el agente de unión
selectivo es un anticuerpo que se une selectivamente a OPGbp, de
manera que bloquea parcial o completamente la unión de OPGbp a su
receptor cognado e inhibe parcial o completamente la formación de
osteoclasto y/o la resorción ósea.
El término "agente de unión selectivo" se
refiere a una molécula que se une preferentemente a OPGbp. Entre
los agentes de unión selectivos se incluyen una proteína, péptido,
ácido nucleico, hidrato de carbono, lípido o un compuesto de bajo
peso molecular. Un agente de unión selectivo es un anticuerpo o
dominio de unión a antígeno, como por ejemplo anticuerpos
policlonales, anticuerpos monoclonales (mAbs), anticuerpos
quiméricos, anticuerpos CDR-injertados, anticuerpos
anti-idiotípicos (anti-Id) para
anticuerpos que se pueden etiquetar en forma soluble o ligada, así
como fragmentos, regiones o derivados de los mismos, obtenidos a
través de técnicas conocidas, entre las que se incluyen, sin
limitarse sólo a ellas, segmentación enzimática, síntesis de
péptido o técnicas recombinantes. Los agentes de unión selectivos
anti-OPGbp de la presente invención pueden unir
porciones de OPGbp que inhiben la unión de OPGbp a receptores
ODAR.
Los anticuerpos y dominios de unión a antígeno
de la invención se unen selectivamente a OPGbp, es decir, se unen
preferentemente a OPGbp con una mayor afinidad de unión con respecto
a otros antígenos. Los anticuerpos se pueden unir selectivamente a
OPGbp humana, pero también se unen de forma detectable a OPGbp no
humana, como por ejemplo OPGbp murínica. Alternativamente, los
anticuerpos se pueden unir selectivamente a OPG no humana, pero
también se unen detectablemente a OPG humana. Alternativamente, los
anticuerpos se pueden unir de forma exclusiva a OPGbp humana, sin
unión detectable a OPGbp no humana.
El término "anticuerpo monoclonal" se
refiere a un anticuerpo obtenido desde una población de anticuerpos
sustancialmente homogéneos, reconociendo el anticuerpo monoclonal
típicamente un solo epítopo en el antígeno. El término
"monoclonal" no está limitado a un método en particular para la
obtención de un anticuerpo. Por ejemplo, los anticuerpos
monoclonales de la invención se pueden obtener según el método de
hibridoma descrito en Kohler y cols. Nature 256, 495 (1975)
o se pueden aislar desde bibliotecas de fagos empleando las técnicas
que se describen aquí, por ejemplo.
El termino "dominio de unión a antígeno" o
"región de unión a antígeno" se refiere a la porción de una
molécula de anticuerpo que contiene los radicales de aminoácido que
interactúan con un antígeno y confieren al agente de unión su
especificidad y afinidad para el antígeno. Preferiblemente, la
región de unión a antígeno será de origen humano. En otros modos de
realización, la región de unión a antígeno puede derivarse de otras
especies animales, en particular roedores como conejos, ratas o
hámster.
El término "epítopo" se refiere a la
porción de una molécula que puede ser reconocida y unirse al agente
de unión selectivo (por ejemplo un anticuerpo) en una o más de las
regiones de unión a antígeno del agente de unión. Los epítopos
consisten normalmente en agrupaciones superficiales químicamente
activas de moléculas como aminoácidos o cadenas laterales de azúcar
y tienen características estructurales tridimensionales específicas
así como características de carga específicas. Se entiende por
epítopo de "inhibición y/o neutralización" un epítopo que
cuando se une mediante un agente de unión selectivo, tiene como
resultado la pérdida de actividad biológica de la molécula o el
organismo que contiene el epítopo, in vivo, in vitro o in
situ, más preferiblemente in vivo, incluyendo la unión
de OPGbp a su receptor.
El término "cadena ligera", cuando se
utiliza haciendo referencia a un anticuerpo, se refiere a dos tipos
diferentes, denominados kappa (k) o lambda (\lambda) en función de
la secuencia de aminoácido de los dominios constantes.
El término "cadena pesada" cuando se
utiliza haciendo referencia a un anticuerpo se refiere a cinco tipos
distintos, denominados alfa, delta, épsilon, gamma y mu, en función
de la secuencia de aminoácido del dominio constante de cadena
pesada. Estos tipos diferentes de cadenas pesadas dan lugar a cinco
clases diferentes de anticuerpos, IgA, IgD, IgE, IgG e IgM,
respectivamente, incluyendo cuatro subclases de IgG, en concreto
IgG_{1}, IgG_{2}, IgG_{3} e IgG_{4}.
El término "región variable" o "dominio
variable" se refiere a una porción de las cadenas ligera y
pesada, típicamente, de aproximadamente 120 a 130 aminoácidos
amino-terminales en la cadena pesada y de
aproximadamente 100 a 110 aminoácidos en la cadena ligera, que
difieren extensivamente en la secuencia entre anticuerpos y se
utilizan en la unión y especificidad de cada anticuerpo en
particular para su antígeno en particular. La variabilidad en la
secuencia se concentra en las regiones denominadas regiones de
determinación de complementaridad (CDRs), mientras que las regiones
muy conservadas en el dominio variable reciben el nombre de regiones
estructurales (FR). Las CDR de las cadenas ligeras y pesadas son
las responsables de la interacción del anticuerpo con el
antígeno.
El término "región constante" o "dominio
constante" se refiere a una porción carboxi terminal de la cadena
ligera o pesada que no participa directamente en la unión del
anticuerpo al antígeno pero que presenta varias funciones
efectoras, como interacción con el receptor Fc.
El término "OPGbp" o "polipéptido de
OPGbp" se refiere a un polipéptido que comprende la secuencia de
aminoácido tal como se representa en la figura 4 de la publicación
PCT WO/46757, y polipéptidos relacionados. Entre los polipéptidos
relacionados se incluyen variantes alélicas; variantes de corte y
empalme; fragmentos; derivados; variantes de sustitución, supresión
e inserción; polipéptidos de fusión y homólogos de interespecie.
Asimismo, entran dentro de la definición formas solubles de OPGbp,
como por ejemplo los radicales 69-317 inclusive de
OPGbp humana (tal como se enumera en WO 98/46757), o un subgrupo de
los mismos que es suficiente para generar una respuesta
inmunológica. En un modo de realización, la OPGbp humana soluble
incluye los radicales 140-317 inclusive,
143-317 inclusive, o los fragmentos inmunógenos de
los mismos. OPGbp puede ser un polipéptido maduro, tal como se
define aquí, y puede tener o no un radical metionina amino
terminal, dependiendo del método a través del cual se
prepara.
prepara.
El término "fragmento", cuando se utiliza
en relación con OPGbp o un agente de unión selectivo proteináceo de
OPGbp se refiere a un péptido o polipéptido que comprende menos de
la secuencia de aminoácidos de longitud completa. Dicho fragmento
puede producirse, por ejemplo, por truncado en el término amino, un
truncado en el término carboxi, y/o una supresión interna de un
radical(es) desde la secuencia de aminoácidos. Los fragmentos
pueden ser el resultado de corte y empalme de ARN alternativo y de
la actividad in vivo de proteasa.
El término "variante" cuando se utiliza en
relación con OPGbp o en relación con un agente de unión selectivo
proteináceo de OPGbp se refiere a un péptido o polipéptido que
comprende una o más sustituciones, supresiones y/o adiciones de
secuencia de aminoácido en comparación con la secuencia nativa o sin
modificar. Por ejemplo, una variante de OPGbp puede ser el
resultado de uno o más cambios en la secuencia de aminoácido de la
OPGbp nativa. También a modo de ejemplo, una variante de un agente
de unión selectivo de OPGbp puede ser el resultado de uno o más
cambios en la secuencia de aminoácido de un agente de unión
selectivo nativo o sin modificar previamente. Las variantes pueden
ser naturales, como por ejemplo, variantes alélicas o variantes de
corte y empalme, o pueden construirse de forma artificial. Las
variantes de polipéptido pueden prepararse a partir de las
moléculas de ácido nucleico correspondientes que codifican dichas
variantes.
El término "derivado" cuando se utiliza en
relación con OPGbp o con un agente de unión selectivo proteináceo
de OPGbp se refiere a un polipéptido o péptido, o a una variante,
fragmento o derivado del mismo, que ha sido modificado
químicamente. Entre los ejemplos se incluyen la unión covalente de
uno o más polímeros, como por ejemplo, polímeros hidrosolubles,
unidos a N, o carbohidratos unidos a O, azúcares, fosfatos, y/o
otras moléculas similares. Los derivados se modifican de manera
diferente a la del péptido o polipéptido natural o de partida, o
bien en el tipo o bien en la localización de las moléculas unidas.
Los derivados incluyen además la supresión de uno o más grupos
químicos que están presentes de manera natural en el péptido o
polipéptido.
El término "fusión" cuando se utiliza en
relación con OPGbp o un agente de unión selectivo proteináceo de
OPGbp se refiere a la unión de un péptido o polipéptido, o
fragmento, variante y/o derivado del mismo, con un péptido o
polipéptido heterólogo.
El término "biológicamente activo" cuando
se utiliza en relación con OPGbp o con un agente de unión selectivo
proteináceo se refiere a un péptido o a un polipéptido que tiene al
menos una actividad característica de OPGbp o un agente de unión
selectivo. El agente de unión selectivo de OPGbp puede tener una
actividad agonista, antagonista, o neutralizante o de bloqueo en
relación con al menos una actividad biológica de OPGbp.
El término "natural" cuando se utiliza en
relación con materiales biológicos, como moléculas de ácido
nucleico, polipéptidos, células huésped y similares, se refiere a
las que se encuentran en la naturaleza y no han sido manipuladas
por un ser humano.
El término "aislado" cuando se utiliza en
relación con OPGbp o con un agente de unión selectivo proteináceo
de OPGbp de OPGbp se refiere a un péptido o polipéptido que está
libre de al menos un polipéptido contaminante que se encuentra en
su entorno natural, preferiblemente sustancialmente libre de
cualquier otro polipéptido de mamífero contaminante que pueda
interferir con su uso terapéutico o de diagnóstico.
El término "maduro" cuando se utiliza en
relación con OPGbp o con un agente de unión selectivo proteináceo
de OPGbp se refiere a un péptido o polipéptido que carece de una
secuencia líder. El término puede incluir también otras
modificaciones de un péptido o polipéptido como tratamiento
proteolítico del término amino (con o sin una secuencia líder) y/o
el término carboxi, segmentación de un polipéptido más pequeño desde
un precursor mayor, glucosilación ligada a N y/o ligada a O, y
similares.
Los términos "cantidad efectiva" y
"cantidad terapéuticamente efectiva" cuando se utilizan en
relación con un agente de unión selectivo de OPGbp se refiere a una
cantidad de un agente de unión selectivo que es útil o necesaria
para producir un cambio observable en el nivel de una o más de las
actividades biológicas de Opgbp. Dicho cambio puede consistir o
bien en un aumento o bien en una disminución del nivel de actividad
de OPGbp.
El término "sustitución de aminoácido
conservadora" se refiere a una sustitución de un radical de
aminoácido nativo con un radical no nativo de manera que se produce
un efecto pequeño o no se produce ningún efecto en la polaridad o
la carga del radical aminoácido en esa posición. Por ejemplo, tiene
lugar una sustitución conservadora a partir del reemplazamiento de
un radical no polar en un polipéptido con cualquier otro radical no
polar. Por otra parte, puede estar sustituido cualquier otro
radical nativo en un polipéptido con una alanina, tal como se ha
descrito anteriormente para mutagénesis de exploración de alanina
(Cunningham y cols. Science 244, 1081-1085
(1989). En la tabla I se exponen reglas ilustrativas de
sustituciones de aminoácido conservadoras.
Las sustituciones de aminoácido conservadoras
también abarcan radicales de aminoácido naturales que se incorporan
típicamente a través de síntesis de péptido química en lugar de por
síntesis en sistemas biológicos. Incluyen péptidomiméticos y otras
formas inversas o invertidas de fracciones de aminoácido.
Las modificaciones conservadoras de la secuencia
de aminoácido (y las modificaciones correspondientes para los
nucleótidos de codificación) pueden producir polipéptidos OPGbp (y
agentes de unión selectivos proteináceos de los mismos) que tienen
características funcionales y químicas similares a las de las OPGbp
o los agentes de unión selectivos naturales. En contraste, se
pueden conseguir sustanciales modificaciones en las características
funcionales y/o químicas de OPGbp (y agentes de unión selectivos
proteináceos de las mismas) seleccionando sustituciones que
difieren significativamente en su efecto de mantener (a) la
estructura de la cadena principal molecular en el área de
sustitución, por ejemplo, como una conformación en lámina o
helicoidal, (b) la carga o la hidrofobicidad de la molécula en el
sitio diana, o (c) el volumen de la cadena lateral. Los radicales
naturales pueden dividirse en grupos dependiendo de las propiedades
de la cadena lateral común:
1) Hidrofóbicos: norleucina, Met, Ala,
Val, Leu, Ile;
2) Hidrofílicos neutros: Cys, Ser,
Thr;
3) Ácidos: Asp, Glu;
4) Básicos: Asn, Gln, His, Lys, Arg;
5) Radicales que influyen en la orientación
de cadena: Gly, Pro, y
6) Aromáticos: Trp, Tyr, Phe.
Las sustituciones no conservadoras pueden
implicar el intercambio de un miembro de una de estas clases por un
miembro de otra clase.
La "identidad o similitud" de dos o más
moléculas y/o polipéptidos de ácido nucleico proporciona una medida
de parentesco de dos o más secuencias diferentes. El término
"identidad" se refiere a aminoácidos que son idénticos en las
posiciones correspondientes en dos secuencias de aminoácido
diferentes. El término "similitud" se refiere a aminoácidos
que o bien son idénticos o bien son sustituciones conservadoras, tal
como se ha definido anteriormente, en las posiciones
correspondientes en dos secuencias de aminoácido diferentes.
Este grado de identidad o similitud puede
calcularse fácilmente a través de métodos conocidos, entre los que
se incluyen sin limitarse sólo a los descritos en Computational
Molecular Biology, Lesk, A.M., ed., Oxford University Press, Nueva
York, 1988; Biocomptuting: Informatics and Genome Projects, Smith,
D.W., ed., Academic Press, Nueva York, 1993; Computer Analysis of
Sequence Data, Parte 1, Griffin, A.M., and Griffin, H.G. eds.
Humana Press, Nueva Jersey, 1994; Sequence Analysis in Molecular
Biology, von Heinje, G., Academic Press, 1987; Sequence Analysis
Primer, Gribskov, M. and Devereux, J., eds., M. Stockton Press,
Nueva York, 1991; and Carillo y cols., SIAM J. Applied
Math., 48, 1073 (1988).
Los métodos preferibles para determinar la
identidad y/o similitud están diseñados para dar la pareja más
grande entre las secuencias analizadas. Los métodos para determinar
la identidad y similitud se codifican en los programas informáticos
disponibles públicamente. Entre los ejemplos de métodos de
programación informáticos para determinar la identidad y similitud
entre dos secuencias se incluyen, sin limitarse sólo a ellos, el
paquete de programas GCG, que incluye GAP (Devereux y cols., Nucleic
Acids Research 12, 387 (1984); Genetics Computer Group,
University of Wisconsin, Madison, WI), BLASTP, BLASTN, y FASTA
(Altschul y cols., J. Mol. Biol. 215,
403-410 (1990). El programa BLAST está públicamente
disponible del National Center for Biotechnology Information (NCBI)
y otras fuentes (BLAST Manual, Altschul y cols., NCB NLM
Bethesda, MD). Se puede utilizar también el conocido algoritmo de
Smith Waterman para determinar la identidad.
Los polipéptidos OPGbp, y fragmentos, variantes
y derivados de los mismos, se utilizan como moléculas diana para la
detección selectiva y la identificación de los agentes de unión
selectivos de la invención. Cuando es deseable preparar anticuerpos
como agentes de unión selectivos, preferiblemente, los polipéptidos
de OPGbp son inmunogénicos, es decir, provocan una respuesta inmune
cuando se administran a un animal. Alternativamente, cuando se
preparan anticuerpos a través de técnicas in vitro, los
polipéptidos OPGbp utilizados como moléculas diana son capaces
unirse detectablemente a un anticuerpo o dominio de unión a
antígeno.
Los polipéptidos OPG se preparan a través de
métodos químicos y biológicos. Los métodos biológicos, como
expresión de secuencias de ADN que codifican OPGbp recombinante son
conocidas en la especialidad (ver por ejemplo Sambrook y cols.,
supra). Los métodos de síntesis químicos, como los que se
exponen en Merrifield y cols., J. Am. Chem. Soc., 85:2149
(1963), Houghten y cols., Proc. Natl. Acad. Sci. EE.UU.,
82:5132 (1985), y Stewart and Young, Solid Phase Peptide Synthesis,
Pierce Chemical Co., Rockford, IL (1984) pueden utilizarse también
para preparar los polipéptidos OPGbp de la invención. Dichos
polipéptidos pueden sintetizarse con o sin metionina en el término
amino. Los polipéptidos OPGbp sintetizados químicamente, o
fragmentos o variantes de los mismos, pueden oxidarse aplicando los
métodos expuestos en los documentos de referencia para formar
puentes de disulfuro. Los polipéptidos OPGbp de la invención
preparados a través de la síntesis química tendrán al menos una
actividad biológica comparable con los polipéptidos OPGbp
correspondientes producidos a través de métodos recombinantes o
purificados desde fuentes naturales.
Los polipéptidos OPGbp pueden obtenerse por
aislamiento desde muestras biológicas como por ejemplo tejidos y/o
fluidos de origen en los que se encuentran los polipéptidos de OPGbp
de forma natural. Las fuentes para los polipéptidos de OPGbp pueden
ser de origen humano o no humano. El aislamiento de los polipéptidos
de OPGbp naturales puede llevarse a cabo aplicando los métodos
conocidos en la especialidad, como separación por electroforesis
seguido de electroelución, diversos tipos de cromatografía
(afinidad, inmunoafinidad, tamices moleculares, y/o intercambio de
iones), y/o cromatografía de líquidos a alta presión. La presencia
del polipéptido de OPGbp durante la purificación puede vigilarse
utilizando, por ejemplo, un anticuerpo preparado contra polipéptido
de OPGbp producido por recombinación, o fragmentos de péptido del
mismo. Entre los ejemplos de polipéptidos se incluyen polipéptidos
de OPGbp aislados y polipéptidos relacionados con los mismos,
incluyendo fragmentos, variantes, polipéptidos de fusión y
derivados, tal como se han definido antes. Los fragmentos de OPGbp
de la invención pueden ser el resultado de truncados en el término
amino (con o sin una secuencia líder), truncados en el término
carboxi y/o supresiones internas en el polipéptido. Dichos
fragmentos de polipéptido de OPGbp pueden comprender opcionalmente
un radical metionina en el terminal amino. Los polipéptidos de la
invención serán inmunogénicos en el sentido de que serán capaces de
provocar una respuesta de anticuerpo. Entre los ejemplos de
variantes de polipéptido de OpGbp de la invención se incluyen una o
más sustituciones, adiciones y/o supresiones de aminoácido, en
comparación con la secuencia de aminoácido OPGbp nativa. Las
sustituciones de aminoácido pueden ser conservadoras, tal como se
ha definido antes, o no conservadoras o una combinación de las
mismas. Las variantes pueden tener adiciones de radicales de
aminoácido o bien en el término carboxi o bien en el término amino
(pudiendo comprender o no el término amino una secuencia líder),
incluyendo también variantes de glucosilación de OPGbp y variantes
de cisteína. Entre las variantes de glucosilación de OPGbp se
incluyen variantes en las que el número y/o tipo de sitios de
glucosilación ha sido alterado en comparación con un polipéptido
OPGbp. En un modo de realización, las variantes de glucosilación
OPGbp comprenden un número mayor o menor de sitios de glucosilación
unidos en N en comparación con Opgbp nativo. Se proporcionan también
variantes de glucosilación de OPGbp que comprenden un
reordenamiento de cadenas de carbohidrato unidas en N en las que se
eliminan uno o más sitios del glucosilación ligados en N
(típicamente los que se dan de forma natural) y se crea uno más
nuevos sitios ligados en N. Las variantes de cisteína de OPGbp
comprenden un mayor número o alternativamente un menor número de
radicales de cisteína en comparación con OPGbp nativa. En un modo
de realización, se suprimen o se sustituyen con otro aminoácido uno
o más radicales de cisteína (v.g., serina). Las variantes de
cisteína de OPGbp pueden mejorar la recuperación de la OPGbp
biológicamente activa favoreciendo replegamiento de OPGBp en una
conformación biológicamente activa tras el aislamiento desde un
estado desnaturalizado.
La preparación de variantes de polipéptido de
OPGbp se encuentra dentro del nivel de especialización en este
campo. En uno de los métodos, se puede introducir una o más
sustituciones, supresiones y/o adiciones de aminoácido en OPGbp
nativo, reteniendo la variante OPGbp la estructura nativa de OPGbp
y/o al menos una de las actividades biológicas. Uno de los métodos
consiste en comparar secuencias de polipéptidos de OPG a partir de
una variedad de diferentes especies con el fin de identificar
regiones de identidad y/o similitud relativamente alta y baja.
Puede apreciarse que las regiones de un polipéptido OPGbp que tienen
una identidad y/o similitud relativamente baja tienen menor
probabilidad de ser esenciales para la estructura y actividad y por
tanto pueden ser más tolerantes para alteraciones de aminoácido,
especialmente, las que no son conservadoras. Debe apreciarse
asimismo que incluso en regiones relativamente conservadas, se
pueden introducir sustituciones de aminoácido conservadoras al
mismo tiempo que se retiene la actividad.
En otro modo de realización, se pueden utilizar
las relaciones estructura-función para identificar
radicales en polipéptidos similares que son importantes para la
actividad o la estructura. Por ejemplo, se pueden comparar los
radicales de aminoácido conservados entre OPGbp y otros miembros de
la familia de factor de necrosis de tumor para los cuales están
disponibles análisis de estructura-función y, en
función de dicha comparación, predecir qué radicales de aminoácido
en OPGbp son importantes para la actividad o la estructura. Las
personas especializadas en la técnica podrán elegir sustituciones
de aminoácido similares químicamente para dichos radicales de
aminoácido importantes de OPGbp previstos.
En otro método más, se puede adoptar un análisis
de una estructura secundaria o terciaria de OPGbp (ya se determine
por difracción de rayos x de cristales de OPGbp o por métodos de
predicción de estructura) para determinar la localización de
radicales de aminoácido específicos en relación con estructuras
reales o predichas dentro de un polipéptido OPGbp. Empleando esta
información, se pueden introducir cambios de aminoácido de un modo
que busque retener lo más posible la estructura secundaria y/o
terciaria de un polipéptido de OPGbp.
En otro método más, se pueden analizar los
efectos de la alteración de aminoácidos en posiciones específicas
de forma experimental introduciendo sustituciones de aminoácido y
analizando los polipéptidos de OPGbp alterados para determinar la
actividad biológica utilizando los ensayos aquí descritos. Son
particularmente adecuadas técnicas como la mutagénesis de
exploración de alanina (Cunningham y cols., supra) para este
método. Se pueden analizar convenientemente muchas secuencias
alteradas introduciendo muchas sustituciones en diversas posiciones
de aminoácido en la OPGbp y realizando la detección selectiva de la
población de polipéptidos alterados como parte de la biblioteca de
despliegue en fagos. Utilizando este método, se pueden determinar
fácilmente las regiones de un polipéptido de OPGbp que son
esenciales para la actividad.
Los métodos mencionados son útiles para generar
variantes de OPGbp que retienen la estructura nativa. Por
consiguiente, los anticuerpos producidos contra estas variantes
tienen probabilidad de reconocer un determinante estructural
nativo, o epítopo, de OPGbp y también tienen probabilidad de unirse
a OPGbp nativa. No obstante, en algunos casos, puede ser deseable
producir variantes de OPGbp que no retienen la estructura de OPGbp
nativa o que quedan sin rellenar parcial o completamente. Los
anticuerpos producidos contra dichas proteínas reconocerán epítopos
enterrados en OPGbp.
La invención ilustra también polipéptidos de
fusión de OPGbp que comprenden polipéptidos de OPGbp, y fragmentos,
variantes y derivados de los mismos, fusionados con una proteína o
péptido heterólogo. Las proteínas y péptidos heterólogos incluyen,
sin limitarse sólo a ellos, un epítopo que permite la detección y/o
aislamiento de un polipéptido de fusión de OPGbp; una proteína de
receptor de transmembrana o una porción del mismo, como por ejemplo
un dominio extracelular, o una transmembrana y un dominio
intracelular; un ligando o una porción del mismo que se une a una
proteína de receptor de transmembrana; una enzima o una porción de
la misma que es catalíticamente activa; un proteína o péptido que
promueve la oligomerizacion, como un dominio de cremallera de
leucina; y una proteína o péptido que aumenta la estabilidad, como
por ejemplo una región constante de inmunoglobulina. Se puede
fusionar un polipéptido de OPGbp consigo mismo o con un fragmento,
variante o derivado del mismo. Las fusiones pueden realizarse o
bien en el término amino o bien en el término carboxi de un
polipéptido de OPGbp, y pueden ser directas sin molécula ligadora o
adaptadora. Puede designarse una molécula ligadora o adaptadora
también con un sitio de segmentación para una endonucleasa de
restricción de ADN o para una proteasa para permitir la separación
de las fracciones fundidas.
Se puede fusionar un polipéptido de OPGbp,
fragmento, variante y/o derivado del mismo con una región Fc de IgG
humana. En un ejemplo, se puede fusionar una región CH2, CH3 y
bisagra de IgG humana tanto en el término N como en el término C de
los polipéptidos OPGbp aplicando los métodos conocidos entre las
personas especializadas en la técnica. En otro ejemplo, se puede
fusionar una porción de una región bisagra y regiones CH2 y CH3. El
polipéptido de fusión Fc OPGbp así producido puede purificarse
mediante el uso de una columna de afinidad de proteína A. Por otra
parte, se ha observado que los péptidos y proteínas fusionadas con
una región Fc presentan una duración media sustancialmente mayor
in vivo en relación con su contrapartida sin fusionar.
Asimismo, una fusión con la región Fc permite la
dimerización/multimerización del polipéptido de fusión. La región Fc
puede ser una región Fc natural, o puede alterarse para mejorar
determinadas calidades, como por ejemplo calidades terapéuticas,
tiempo de circulación, reducir la agregación, etc.
Los polipéptidos de OPGbp quedan ilustrados en
la presente invención. Dichos derivados son composiciones de
polipéptido OPGbp modificados químicamente en los que el polipéptido
OPGbp está unido a un polímero. El polímero seleccionado es
típicamente hidrosoluble, de manera que la proteína a la que se une
no precipita en un entorno acuoso, como es el entorno fisiológico.
El polímero puede tener cualquier peso molecular, y puede estar
ramificado o sin ramificar. Se incluyen dentro del alcance de los
polímeros de polipéptido de OPGbp una mezcla de polímeros.
Preferiblemente, para el uso terapéutico de la preparación de
producto final, el polímero será farmacéuticamente aceptable.
El polímero hidrosoluble o mezcla de ellos puede
consistir por ejemplo en polietilen glicol (PEG),
monometoxi-polietoxilen glicol, dextrano (como por
ejemplo dextrano de bajo peso molecular, por ejemplo de
aproximadamente 6 kD), celulosa, y otros polímeros a base de
carbohidratos, poli(N-vinil pirrolidona),
polietilen glicol, homopolímeros de propilen glicol, un
co-polímero de óxido de polipropileno/óxido de
etileno, polialcoholes etilados (v.g., glicerol) y un polialcohol
vinílico.
Un polímero hidrosoluble preferible es
polietilen glicol. Tal como se utiliza aquí, se pretende que
polietilen glicol abarque cualquiera de las formas de PEG que se
han utilizado para formar derivados de otras proteínas, como por
ejemplo mono- (C_{1}-C_{10}) alcoxi, o
ariloxi-polietilen glicol. La presente invención
abarca asimismo moléculas de reticulación de PEG bifuncionales que
se pueden utilizar para preparar multímeros de OPGbp unidos
covalmentemente.
Los métodos para preparar polipéptidos de OPGbp
formados por derivación química son conocidos dentro de la
especialidad. A modo de ejemplo, la formación de derivados de
polipéptidos de OPGbp con PEG puede llevarse a cabo utilizando los
procedimientos descritos en Francis y cols., Focus on Growth
Factors, 3, 4-10 (1992); EP 0.154.316;
EP 0.401.384; y patente EE.UU. Nº 4.179.337. En un modo de
realización preferible, un derivado de polipéptido de OPGbp tendrá
una sola fracción PEG en el término amino. Ver la patente EE.UU. Nº
5.234.784.
Los derivados de polipéptido de OPGbp descritos
en el presente documento pueden presentar una potenciación o
reducción de al menos una actividad biológica de OPGbp en
comparación con un polipéptido sin modificar, o pueden presentar
una mayor o menor duración media o estabilidad.
Los polipéptidos de OPGbp, y los fragmentos,
variantes y derivados de los mismos, se pueden utilizar para
identificar agentes de unión selectivos de OPGbp. Tal como se ha
definido antes, un agente de unión selectivo de OPGbp abarca
agentes de unión tanto proteináceos como
no-proteináceos, y en un modo de realización
preferible de la presente invención, el agente de unión selectivo
es proteináceo. En otro modo de realización preferible, el agente
de unión selectivo es un anticuerpo o fragmento del mismo que se une
a OPGbp, preferiblemente OPGbp humana. Los anticuerpos de la
invención pueden ser anticuerpos agonistas, que potencian el nivel
de al menos una actividad biológica de OPGbp; o anticuerpos
antagonistas, que disminuyen el nivel de al menos una actividad
biológica de OPGbp. Los anticuerpos antagonistas de OPGbp pueden
recibir el nombre también de anticuerpos de inhibición o
neutralizantes de OPGbp. Si bien dichos anticuerpos son modos de
realización preferibles de la presente invención, se entiende que
quedan abarcados otros agentes de unión selectivos proteináceos que
son agonistas o antagonistas de la actividad de OPGbp según la
invención.
Tal como se describe en los ejemplos a
continuación, se han identificado anticuerpos y los dominios de
unión a antígeno de OPGbp, que inhiben al menos una actividad de
OPGbp según se expone en la reivindicación 1. Los modos de
realización de la invención incluyen anticuerpos que comprenden una
secuencia Fab de cadena pesada, tal como se muestra en cualquiera
de las figuras 9, 10, 11 o 12 y que comprenden además una secuencia
de cadena ligera kappa o lambda. Las secuencias Fab de cadena
ligera pueden ser tal como se representa en las figuras 5, 6, 7, u
8. Por ejemplo, el anticuerpo "AT" tiene secuencias de cadena
ligera y pesada en las figuras 5 y 9, respectivamente; el
anticuerpo "Y" tiene secuencias de cadena ligera y pesada en
las figuras 6 y 10, respectivamente; el anticuerpo "S" tiene
secuencias de cadena ligera y pesada en las figuras 7 y 11,
respectivamente; y el anticuerpo "P" tiene secuencias de
cadena ligera y pesada en las figuras 8 y 12, respectivamente. Los
anticuerpos de la invención comprenden además una región Fc humana a
partir de un cualquier isotipo, ya sea IgG, IgM, IgA, IgE o IgD.
Preferiblemente, la región Fc es de IgG humano, por ejemplo IgG1,
IgG2, IgG3 o IgG4.
La invención proporciona asimismo anticuerpos y
dominios de unión a antígeno, tal como se define en la
reivindicación 1, que comprenden fragmentos, variantes, o derivados
de la secuencia Fab aquí descrita. Los fragmentos incluyen dominios
variables de secuencias Fab de cadena tanto ligera como pesada que
se unen típicamente con dominios constantes ligero y pesado. Las
variantes incluyen anticuerpos que comprenden secuencias Fab de
cadena ligera que son idénticos o similares en al menos
aproximadamente 80%, 85%, 90%, 95%, 98% o 99%, a las secuencias Fab
o los dominios variables correspondientes, en cualquiera de las
figuras 5-8, o anticuerpos que comprenden
secuencias Fab de cadena pesada, o los dominios variables
correspondientes que son idénticos o similares en al menos
aproximadamente un 80%, 85%, 90%, 95%, 98% o 99% a las secuencias
Fab en cualquiera de las figuras 9 a 12. Los anticuerpos pueden
asociarse típicamente con regiones constantes de las cadenas pesada
y ligera para formar anticuerpos de longitud completa.
Los anticuerpos y dominios de unión a antígeno,
y los fragmentos, variantes y derivados de los mismos, según la
invención, tal como se definen en la reivindicación 1, retendrán la
capacidad para unirse selectivamente a un polipéptido de OPGbp,
preferiblemente a un polipéptido de OPGbp humana. En un modo de
realización, un anticuerpo se unirá a un polipéptido de OPGbp con
una constante de disociación (KD) de aproximadamente 1 nM o menos,
o alternativamente 0,1 nM o menos, o alternativamente 10 pM o menos
o alternativamente menos de 10 pM. En el ejemplo 8, se observó que
el anticuerpo "AT" se une a OPGbp con un KD de aproximadamente
0,33 a 0,43 nM.
Entre los anticuerpos de la invención se
incluyen anticuerpos biespecíficos y/o de cadena única, humanos
completamente, humanizados, quiméricos, recombinantes,
monoclonales, policlonales monoespecíficos policlonales. Entre los
fragmentos de anticuerpo se incluyen las porciones de un anticuerpo
anti-OPGbp que se unen a un epítopo en un
polipéptido OPGbp. Entre los ejemplos de dichos fragmentos se
incluyen fragmentos Fab F(ab'), F(ab)', Fv, sFv. Los
anticuerpos pueden generarse por segmentación enzimática de
anticuerpos de longitud completa o a través de técnicas de ADN
recombinante, como expresión de plasmidios recombinantes que
contienen secuencias de ácido nucleico que codifican regiones
variables de anticuerpo.
Los anticuerpos policlonales son poblaciones
heterogéneas de moléculas de anticuerpo derivadas del suero de
animales inmunizados con un antígeno. Un antígeno es una molécula o
una porción de una molécula que es capaz de unirse mediante un
anticuerpo que es capaz adicionalmente de inducir a un animal a
producir anticuerpo capaz de unirse a un epítopo de ese antígeno.
Un antígeno puede tener uno o más epítopos. Se pretende que la
reacción específica antes referida indique que el antígeno
reacciona, de una manera altamente selectiva, con su anticuerpo
correspondiente y no con la multitud de otros anticuerpos que pueden
ser evocados por otros antígenos.
Los anticuerpos policlonales dirigidos hacia un
polipéptido de OPGbp son producidos generalmente en animales (v.g.,
conejos o ratones) a través de múltiples inyecciones subcutáneas o
intraperitoneales de OPGbp y un adyuvante. De acuerdo con la
invención, puede ser útil conjugar un polipéptido de OPGbp, o una
variante, fragmento de derivado del mismo con una proteína vehículo
que es inmunogénica en la especie que se va a inmunizar, como por
ejemplo hemocianina de lapa californiana, suero, albúmina,
tiroglobulina bovina, o inhibidor de tripsina de soja. Asimismo, se
utilizan agentes de agregación como alum para mejorar la respuesta
inmune. Tras la inmunización, se sangra a los animales y se realiza
el ensayo del suero para determinar la valoración de anticuerpo
anti-OPGbp.
Los anticuerpos monoclonales (mAbs) contienen
una población sustancialmente homogénea de anticuerpos específicos
para antígenos, conteniendo dicha población sitios de unión a
epítopo sustancialmente similares. Dichos anticuerpos pueden ser de
cualquier clase de inmunoglobulina, incluyendo IgG, IgM, IgE, IgA,
IgD y cualquier subclase de las mismas. Se puede cultivar un
hibridoma que produce un anticuerpo monoclonal de la presente
invención in vitro, in situ, o in vivo. La
producción de valoraciones más altas in vivo o in situ
es un método de producción preferible.
Los anticuerpos monoclonales dirigidos hacia
OPGbp se producen aplicando cualquier método que proporcione la
producción de moléculas de anticuerpo mediante líneas de células
continuas en cultivo. Entre los ejemplos de métodos adecuados para
preparar anticuerpos monoclonales se incluyen métodos de hibridoma
de Kohler y cols., Nature, 256,
495-497 (1975), y el método de hibridoma de células
B humanas, Kozbor, J. Immunol. 133, 3001 (1984);
Brodeur y cols., Monoclonal Antibody Production Techniques and
Applications, pp. 51-63 (Marcel Dekker, Inc., Nueva
York, 1987); y Harlow and Lane, Antibodies: A Laboratory Manual,
Cold Spring Harbor Laboratory (1988).
Entre los agentes de unión selectivos
anti-OPGbp preferibles se incluyen anticuerpos
monoclonales que inhiben parcial o completamente la unión de OPGbp
humana con su receptor cognado, ODAR, o un anticuerpo que tiene
sustancialmente las mismas características de unión específicas, así
como fragmentos y regiones de los mismos. Los métodos preferibles
para determinar especificidad y afinidad de anticuerpo monoclonal a
través de inhibición competitiva pueden encontrarse en Harlow y
cols. Antibodies; A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory
Press, Cold Spring Harbor, N.Y., 1988), Colligan y cols., eds.,
Current Protocols in Immunology, Greene Publishing Assoc. and Wiley
Interscience, N.Y., (1992, 1993), y Muller, Meth. Enzymol.,
92: 589-601 (1983).
La presente invención proporciona también líneas
celulares de hibridoma que producen anticuerpos monoclonales que
son reactivos con polipéptidos de OPGbp.
Los anticuerpos quiméricos son moléculas en las
que varias porciones diferentes se derivan de diferentes especies
animales, como por ejemplo las que tienen una región variable
derivada de anticuerpo monoclonal murínico y una región constante
de inmunoglobulina humana. Los anticuerpos quiméricos se utilizan
principalmente para reducir la inmunogenicidad en la aplicación y
para aumentar los rendimientos de producción, por ejemplo, cuando
los anticuerpos monoclonales murínicos tienen unos rendimientos más
altos desde hibridomas pero una mayor inmunogenicidad en seres
humanos, como por ejemplo humana/murínica, se utilizan anticuerpos
monoclonales químéricos.
Los anticuerpos quiméricos y los métodos para su
producción son conocidos dentro de la especialidad. Cabilly y
cols., Proc. Natl. Acad. Sci. EE.UU. 81:
3273-3277 (1984); Morrison y cols., Proc. Natl.
Acad. Sci. EE.UU. 81:6851-6855 (1984);
Boulianne y cols., Nature, 312: 643-646
(1984); Neuberger y cols., Nature, 314:
268-270 (1985); Liu y cols., Proc. Natl. Acad.
Sci. EE.UU., 84: 3439-3443 (1987); y Harlow and
Lane Antibodies: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor
Laboratory (1988).
Por ejemplo, se pueden utilizar los anticuerpos
monoclonales quiméricos de la invención como agente terapéutico. En
dicho anticuerpo quimérico, una porción de la cadena pesada y/o
ligera es idéntica u homóloga a la secuencia correspondiente en
anticuerpos derivados de una especie en particular o que pertenece a
una clase o subclase de anticuerpos en particular, al mismo tiempo
que el resto de la cadena(s) es idéntico u homólogo a la
secuencia correspondiente en anticuerpos derivados de otra especie
o que pertenece a otra clase o subclase de anticuerpos, así como
fragmentos de dichos anticuerpos, siempre y cuando presenten la
actividad biológica deseada (ver la patente EE.UU. Nº 4.816.567;
Morrison y cols., Proc. Natl. Acad. Sci., 81,
6851-6855 (1985).
Tal como se utiliza aquí, el término
"anticuerpo quimérico" incluye inmunoglobulinas monovalentes,
divalentes o polivalentes. Un anticuerpo quimérico monovalente es
un dímero (HL) formado por una cadena H quimérica asociada a través
de puentes de disulfuro con una cadena L quimérica. El anticuerpo
quimérico divalente es tetrámero (H_{2}L_{2}) formado por dos
dímeros HL asociados a través de al menos un puente de disulfuro.
Puede producirse también un anticuerpo quimérico polivalente, por
ejemplo, empleando una región C_{H} que se agrega (v.g., desde
una cadena H de IgM o una cadena \mu).
Los anticuerpos murínicos y quiméricos,
fragmentos y regiones de la presente invención pueden comprender
cadenas de inmunoglobulina Ligeras (L) y/o pesadas (H)
individuales. Una cadena H quimérica comprende una región de unión
a antígeno derivada de la cadena H de un anticuerpo no humano
específico para OPGbp, que está unido a al menos una porción de una
región C de cadena H humana (C_{H}), como por ejemplo CH_{1} o
CH_{2}.
Una cadena L quimérica según la presente
invención comprende una región de unión a antígeno derivada de la
cadena L de un anticuerpo no humano específico para OPGbp, unido a
al menos una porción de una región C de cadena L humana
(C_{L}).
Los agentes de unión selectivos, como por
ejemplo anticuerpos, fragmentos, o derivados, que tienen cadenas H
y cadenas L quiméricas de la misma o diferentes especificidad de
unión a región variable, pueden prepararse también a través de la
asociación apropiada de cadenas de polipéptido individuales, con
arreglo a etapas de método conocidas, v.g., con arreglo a Ausubel,
y cols., eds. Current Protocols in Molecular Biology, Wiley
Interscience, N.Y. (1993), y Harlow y cols., Antibodies: A
Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring
Harbor, N.Y. (1988).
Con este método, se cultivan por separado
huéspedes que expresan cadenas H quiméricas (o sus derivados) de
huéspedes que expresan cadenas L quiméricas (o sus derivados), y se
recuperan por separado las cadenas de inmunoglobulina y después se
asocian. Alternativamente, se pueden co-cultivar los
huéspedes y dejar asociar las cadenas espontáneamente en el medio
de cultivo, seguido de la recuperación de la inmunoglobulina
ensamblada, fragmento o derivado.
A modo de ejemplo, es preferible que la región
de unión a antígeno del agente de unión selectivo (por ejemplo un
anticuerpo quimérico) de la presente invención se derive de un
anticuerpo no humano específico para OPGbp humana. Las fuentes
preferibles para ADN que codifica dicho anticuerpo no humano
incluyen líneas celulares que producen anticuerpos, como por
ejemplo líneas celulares de híbrido conocidas comúnmente como
hibridomas.
La invención proporciona también fragmentos,
variantes y derivados y fusiones de anticuerpos
anti-OPGbp, habiéndose definido en el presente
documento los términos "fragmentos", "variantes",
"derivados" y "fusiones". La invención abarca fragmentos,
variantes, derivados y fusiones de anticuerpos
anti-OPGbp que son funcionalmente similares a los
anticuerpos anti-OPGbp sin modificar, es decir, que
retienen al menos una de las actividades del anticuerpo sin
modificar. Además de las modificaciones que se han indicado, también
se incluye la adición de secuencias genéticas que codifican
proteínas citotóxicas, como toxinas vegetales y bacterianas. Los
fragmentos, variantes, derivados y fusiones de anticuerpos
anti-OPGbp pueden producirse a través de cualquiera
de los huéspedes de la presente invención.
Entre los fragmentos adecuados se incluye por
ejemplo Fab, Fab', F(ab')2, Fv y scFv. Estos fragmentos
carecen del fragmento Fc de un anticuerpo intacto, desaparecen más
rápidamente de la circulación y pueden tener menos unión de tejido
no específico que un anticuerpo intacto. Ver Wahl y cols., J.
Nucl. Med. 24: 316-325 (1983). Estos
fragmentos se producen desde anticuerpos intactos empleando métodos
conocidos en la especialidad, como por ejemplo segmentación
proteolítica con enzimas como papaína (para producir fragmentos Fab)
o pepsina (para producir fragmentos F(ab')2). La
identificación de estas regiones y/o epítopos de unión a antígeno
reconocidas por anticuerpos monoclonales de la presente invención
proporciona la información necesaria para generar anticuerpos
monoclonales adicionales con características de unión similares y
utilidad de diagnóstico y terapéutica que tienen parangón con los
modos de realización de esta solicitud.
La invención proporciona anticuerpos o dominios
de unión a antígeno anti-OPGbp, que reconocen y se
unen para inhibir y/o neutralizar epítopos en OpGbp (ver
reivindicación 1). Como resultado de esta unión, un anticuerpo
anti-OPGbp puede inhibir parcial o completamente la
unión de OPGbp a su receptor o pueden inhibir parcial o
completamente la formación de osteoclasto, la resorción ósea y/o la
pérdida de hueso. Más en particular, la invención proporciona
anticuerpos anti-OPGbp que reconocen y se unen a un
epítopo que comprende una porción de la secuencia de aminoácidos de
la región DE de OPGpb (un "epítopo DE") (ver reivindicación 1).
Una región DE de OPGbp se extiende por aproximadamente las regiones
de lámina D y E beta y la secuencia bucle que interviene (un
"bucle DE"). La región DE en OPGbp humana comprende desde
aproximadamente el radical de aminoácido 212 hasta aproximadamente
el radical de aminoácido 250 inclusive (ver figura 29). No obstante,
la secuencia de aminoácidos y los extremos de la región DE de OPGbp
humana son meramente ilustrativos, entendiéndose que las regiones
DE pueden tener secuencias y extremos que varían de los de OPGbp
humana. La invención abarca anticuerpos que se unen a dichas
regiones DE variables.
El anticuerpo anti-OpGbp o
dominio de unión a antígeno, pueden unirse en cualquier localización
dentro de la región DE. Un modo de realización preferible es un
anticuerpo anti-OPGbp que se une a al menos una
parte del bucle DE. El bucle DE en OPGbp humana se extiende
aproximadamente cinco aminoácidos y está localizado aproximadamente
en los radicales 230 a 234, inclusive. El bucle DE en OPGbp humana
tiene la secuencia DLATE. No obstante, la secuencia de aminoácidos
y los extremos del bucle DE de OPGbp humana son meramente
ilustrativos entendiéndose que los bucles DE podrían tener
secuencias y extremos que varían de los de OPGbp humana. La
invención abarca anticuerpos que se unen a dichos bucles DE
variables.
Tal como se muestra en la figura 10, la
introducción de la secuencia DLATE en el bucle DE correspondiente
de OPGbp murínica tuvo como resultado la unión de anticuerpo
"AT", mientras que el anticuerpo no tuvo afinidad detectable
para OPGbp murínica con la secuencia de bucle DE nativa hasta una
concentración de anticuerpo de aproximadamente 2 \mug/ml. En otro
modo de realización, el anticuerpo anti-OPGbp se une
a la secuencia de aminoácidos DLATE en OPGbp humana, o a una
porción de dicha secuencia. En otro modo de realización, un
anticuerpo anti-OPGbp, o dominio de unión a
antígeno, se une a OPGbp murínico que comprende las sustituciones de
aminoácido S229D, V23OL, P231A y D233E, pero no se une a OPGbp
murínico que carece de dichas sustituciones en condiciones
similares.
Si bien los anticuerpos de la invención se
caracterizan en parte por las secuencias de aminoácido en OPGbp a
las que se unen, las personas especializadas en la técnica
entenderán y apreciarán que un epítopo DE en OPGbp reconocido por
un anticuerpo comprende típicamente una estructura tridimensional
que puede implicar aminoácidos fuera de la región DE. En una
representación lineal de una secuencia OPGbp, los aminoácidos que
comprenden el epítopo DE pueden estar distantes de la región DE;
pero en una estructura tridimensional de OPGbp, los aminoácidos del
epítopo DE estarán probablemente en proximidad con la región DE. Por
lo tanto, debe entenderse que la unión de un anticuerpo
anti-OPGbp con un epítopo DE puede implicar
aminoácidos distintos a los de la región DE. No obstante, se ha
demostrado que los radicales de aminoácido en el bucle DE,
especialmente algunos o tosos los radicales de la secuencia DLATE,
participan en la unión de anticuerpos a OPGbp y la inhibición de la
actividad de OPGbp.
Se proporcionan también las variantes de agentes
de unión selectivos. En un modo de realización, las variantes de
anticuerpos y dominios de unión a antígeno comprenden cambios en las
secuencias de aminoácido de cadena ligera y/o pesada que son
naturales o que se introducen por ingeniería in vitro de
secuencias nativas utilizando técnicas de ADN recombinante. Las
variantes naturales incluyen variantes "somáticas" que se
generan in vivo en las secuencias de nucleótido de línea
germinal correspondiente durante la generación de una respuesta de
anticuerpo a un antígeno extraño. Las variantes codificadas por
mutaciones somáticas en secuencias de cadena ligera y pesada
variables de línea germinal que generan los ejemplos de Fab de la
presente invención en las secuencias se muestran en la figuras 16 y
19 para Fab "AT" Figuras 16 y 20 para Fab "Y", figuras 17
y 21 para Fab "P" y figuras 18 y 22 para Fab "S".
Las variantes para anticuerpos y dominios de
unión a antígeno anti-OPGbp también se preparan por
técnicas de mutagénesis conocidas en la especialidad. En un
ejemplo, se puede introducir cambios de aminoácido aleatoriamente
en toda la región de codificación de anticuerpo y se puede realizar
la detección selectiva de las variantes resultantes para determinar
la actividad deseada, como por ejemplo afinidad de unión para OPGbp.
Alternativamente, se pueden introducir cambios de aminoácido en
regiones seleccionadas de anticuerpo OPGbp, como por ejemplo CDRs
de cadena ligera y/o pesada, y regiones estructurales, y se puede
realizar la detección selectiva de los anticuerpos resultantes para
determinar la unión a OPGbp o alguna otra actividad. Los cambios de
aminoácido abarcan una o más sustituciones de aminoácido en una
CDR, que abarcan desde una sola diferencia de aminoácido y la
introducción de todas las permutaciones posibles de aminoácidos
dentro de una CDR dada, como CDR3. En otro método, la contribución
de cada uno de los radicales dentro de una CDR a la unión de OPGbp
puede valorarse sustituyendo al menos un radical dentro de la CDR
con alanina (Lewis y cols., Mol. Immunol. 32,
1065-1072 (1995)). Los radicales que no son
óptimos para la unión con OPGbp pueden cambiarse después con el fin
de determinar la secuencia más óptima. También quedan abarcadas las
variantes generadas por inserción de aminoácidos para aumentar el
tamaño de una CDR, como por ejemplo CDR3. Por ejemplo, la mayoría de
las secuencias CDR3 de cadena ligera son de 9 aminoácidos de
longitud. Las secuencias CDR3 de cadena ligera en un anticuerpo que
tienen una longitud inferior a nueve radicales pueden optimizarse
para la unión con OPGbp a través de la inserción de aminoácidos
apropiados para aumentar la longitud de la CDR.
En un modo de realización, las variantes de
anticuerpo o dominio de unión a antígeno comprenden uno o más
cambios de aminoácido en una o más de las CDR1, CDR2 o CDR3 de
cadena pesada o ligera y, opcionalmente, una o más de las regiones
estructurales FR1, FR2 o FR3 de cadena pesada o ligera.
Los cambios de aminoácido comprenden
sustituciones, supresiones y/o inserciones de radicales de
aminoácido. Entre los ejemplos de variantes se incluye una variante
de la región variable de cadena pesada de "AT" con uno o más
cambios de aminoácido en la secuencia NYAIH (SEQ ID NO: 13);
WINAGNGNTIKFSQKFQF (SEQ ID NO: 16); o DSSNMVRGIIIAYYFDY (SEQ ID NO:
19), o una variante de la región variable de cadena ligera de
"AT" con uno o más cambios de aminoácido en las secuencias
RASQSISRYLN (SEQ ID NO: 01); GASSLQS (SEQ ID NO: 05); o QHTRA (SEQ
ID NO: 09). Las variantes de la región variable de cadena pesada y
ligera de "AT" que se han mencionado comprenden además uno o
más cambios de aminoácido en las regiones estructurales. En un
ejemplo, se pueden introducir uno o más cambios de aminoácido para
sustituir un radical estructural mutado somáticamente con el
radical de línea germinal en esa posición. Cuando los cambios de
aminoácido mencionados son sustituciones, los cambios pueden
consistir en sustituciones conservadoras o no conservadoras.
Los ejemplos 11 y 12 proporcionan variantes de
la región CDR3 de cadena ligera y pesada del anticuerpo AT. En un
modo de realización, la invención proporciona variantes tanto en la
SEQ ID NO: 19 (CDR3 de cadena pesada) como en la SEQ ID NO: 9 (CDR3
de cadena ligera), de manera que los anticuerpos o dominios de unión
a antígeno resultantes se unen selectivamente a una proteína de
unión OPG. En un modo de realización, la OPGbp es OPGbp humana.
La invención proporciona anticuerpos
anti-OPGbp, tal como se definen en la reivindicación
1, que pueden comprender cadenas pesadas variables y ligeras
variables y que pueden comprender además una región CDR3 de cadena
pesada que tiene la secuencia seleccionada del grupo que consiste
en:
XSSNMVRGIIIAYYFDY | (SEQ ID NO: 80); |
DXSNMVRGIIIAYYFDY | (SEQ ID NO: 81); |
DSXNMVRGIIIAYYFDY | (SEQ ID NO: 82); |
DSSXMVRGIIIAYYFDY | (SEQ ID NO: 83); |
DSSNXVRGIIIAYYFDY | (SEQ ID NO: 84); |
DSSNMXRGIIIAYYFDY | (SEQ ID NO: 85); |
DSSNMVXGIIIAYYFDY | (SEQ ID NO: 86); |
DSSNMVRXIIIAYYFDY | (SEQ ID NO: 87); |
DSSNMVRGXIIAYYFDY | (SEQ ID NO: 88); |
DSSNMVRGIXIAYYFDY | (SEQ ID NO: 89); |
DSSNMVRGIIXAYYFDY | (SEQ ID NO: 90); |
DSSNMVRGIIIXYYFDY | (SEQ ID NO: 91); |
DSSNMVRGIIIAXYFDY | (SEQ ID NO: 92); |
DSSNMVRGIIIAYXFDY | (SEQ ID NO: 93); |
DSSNMVRGIIIAYYXDY | (SEQ ID NO: 94); |
DSSNXVRGIIIAYYFXY | (SEQ ID NO: 95); y |
DSSNMVRGIIIAYYFDY | (SEQ ID NO: 96); |
pudiendo ser X el radical
aminoácido que es diferente del radical de aminoácido normalmente
residente en esa posición, y uniéndose selectivamente el anticuerpo
resultante a una
OPGbp.
La invención proporciona también anticuerpos
anti-OPGbp tal como se han definido en la
reivindicación 1, que pueden comprender cadenas pesadas variables y
ligeras variables y que pueden comprender además una secuencia CDR3
de cadena ligera que ha sido aumentada desde cinco aminoácidos hasta
nueve aminoácidos. Más en particular, la secuencia CDR3 de cadena
ligera puede seleccionarse del grupo que consiste en:
QHTXXXXRA | (SEQ ID NO: 97) |
representando la primera aparición
de X desde la izquierda a la derecha cualquier radical aminoácido
distinto a arginina, representando la segunda, tercera y cuarta
aparición de X cualquier radical aminoácido, pero preferiblemente
alanina, y uniéndose selectivamente el anticuerpo resultante a una
OPGbp. En otro modo de realización de la invención, puede
seleccionarse una secuencia CDR de cadena ligera del grupo que
consiste
en:
QHTXAAARA | (SEQ ID NO: 98) |
siendo X cualquier radical
aminoácido distinto a
arginina.
En otro modo de realización, las variantes de
anticuerpo de la invención pueden comprender cadenas V_{l} que
tienen una secuencia CDR1 como en SEQ ID NO: 1 y una secuencia CDR2
como en SEQ ID NO: 5, y pueden comprender cadenas V_{h} que
tienen cadenas V_{h} que tienen una secuencia CDR1 como en SEQ ID
NO: 13 y una secuencia CDR2 como en SEQ ID NO: 16. En otro modo de
realización, las variantes de anticuerpo pueden comprender una
cadena Vl desde el anticuerpo "AT" con las variantes CDR3 de
cadena ligera antes mencionadas y una cadena V_{h} desde el
anticuerpo "AT" con las variantes CDR3 de cadena pesada antes
mencionadas. Pueden prepararse variantes también "revolviendo la
cadena" tanto de cadenas ligeras como pesadas (Marks y cols.,
Biotechnology 10, 779-783 (1992)).
Típicamente, se combina una sola cadena ligera (o pesada) con una
biblioteca que tiene un repertorio de cadenas pesadas (o ligeras) y
se realiza la detección selectiva de la población resultante para
una actividad deseada, como por ejemplo la unión a OPGbp. Esta
técnica permite la detección selectiva de una muestra más grande de
diferentes cadenas pesadas (o ligeras) en combinación con una sola
cadena ligera (o pesada) con respecto a lo que es posible con
bibliotecas que comprenden repertorios tanto de cadenas pesadas
como ligeras.
Los agentes de unión selectivos de la invención
pueden ser biespecíficos. Los agentes de unión selectivos
biespecíficos de la presente invención pueden tener varias
configuraciones. Por ejemplo, los anticuerpos biespecíficos se
parecen a anticuerpos simples (o fragmentos de anticuerpo) pero
tienen dos sitios de unión de antígeno diferentes (regiones
variables). Los anticuerpos biespecíficos se pueden producir a
través de técnicas químicas (ver v.g., Kranz y cols., Proc.
Natl. Acad. Sci. USA, 78:5807 (1981), a través de técnicas de
"polidoma" (ver patente EE.UU. Nº 4.474.893 para Reading) o a
través de técnicas de ADN recombinante.
Los agentes de unión selectivos de la invención
también pueden ser heteroanticuerpos. Los heteroanticuerpos
consisten en dos o más anticuerpos, o fragmentos de unión a
anticuerpo (Fab) unidos en combinación, teniendo cada anticuerpo o
fragmento una especificidad diferente.
La invención se refiere también a anticuerpos
"humanizados". Los métodos para humanizar anticuerpos no
humanos son muy conocidos dentro de la especialidad. Generalmente,
un anticuerpo humanizado lleva uno o más radicales de aminoácido
introducidos en un anticuerpo humano desde una fuente que es no
humana. En general, los radicales no humanos estarán presentes en
CDRs. La humanización puede llevarse a cabo siguiendo métodos
conocidos dentro de la especialidad (Jones y cols., Nature,
321, 522-525 (1986); Riechmann y cols.,
Nature, 332, 323-327 (1988);
Verhoeyen y cols., Science 239,
1534-1536 (1988)), por sustitución de regiones
determinantes de complementaridad de roedores (CDRs) por las
regiones correspondientes de un anticuerpo humano.
Los agentes de unión selectivos de la invención,
incluyendo anticuerpos quiméricos, injertados con CDR y humanizados,
se pueden producir a través de métodos recombinantes conocidos
dentro de la especialidad. Se introducen los ácidos nucleicos que
codifican los anticuerpos en células huésped y se expresan
utilizando los materiales y procedimientos aquí descritos y que se
conocen en la especialidad. En un modo de realización preferible,
los anticuerpos se producen en células huésped de mamífero, como
por ejemplo células CHO. Los anticuerpos totalmente humanos se
pueden producir a través de la expresión de ADN recombinante
transfectado en células huésped o a través de la expresión en
células de hibridoma tal como se ha descrito anteriormente.
Las técnicas para crear versiones de ADN
recombinante de las regiones de unión a antígeno de las moléculas
de anticuerpo que bordean la generación de anticuerpos monoclonales
entran dentro del alcance de la práctica de la presente invención.
Para hacerlo así, se extraen las moléculas de ARN mensajeras
específicas de anticuerpo desde células del sistema inmune tomadas
de un animal inmunizado, y se transcriben en ADN complementario
(ADNc). El ADNc se clona a continuación en un sistema de expresión
bacteriana. Un ejemplo de esta técnica, adecuada para la práctica
de la presente invención utiliza un sistema de vector lambda de
bacteriofago que tiene una secuencia líder que hace que la proteína
Fab expresada se desplace al espacio periplásmico (entre la membrana
de célula bacteriana y la pared celular) o que sea secretada. Se
puede generar rápidamente y detectar selectivamente un gran número
de fragmentos Fab funcionales para los que se une el antígeno.
Dichos agentes de unión selectivos de OPGbp (fragmentos Fab que se
unen específicamente para un polipéptido OPGbp) entran
específicamente dentro del alcance del término "anticuerpo"
tal como se ha definido, explicado y reivindicado en el presente
documento.
Entran también dentro del marco de la invención
las técnicas desarrolladas para la producción de anticuerpos
quiméricos por corte y empalme de genes a partir de una molécula de
anticuerpo de ratón de un especificidad para antígeno apropiada
junto con genes de una molécula de anticuerpo humana de actividad
biológica apropiada, como por ejemplo la capacidad de activar
complemento humano y mediar ADCC. (Morrison y cols., Proc. Natl.
Acad. Sci., 81: 6851 (1984); Neuberger y cols. Nature,
312: 604 (1984)). Un ejemplo es el reemplazamiento de una región Fc
con la de un isotipo diferente. Los agentes de unión selectivos,
como son los anticuerpos producidos a través de esta técnica,
entran dentro del marco de la presente invención.
En un modo de realización preferible de la
invención, los anticuerpos anti-OPGbp son
anticuerpos completamente humanos. Por consiguiente, entra dentro
del alcance de la invención anticuerpos que se unen a polipéptidos
de OPGbp y que están codificados por secuencias de ácido nucleico
que son variantes somáticas naturales de la secuencia de ácido
nucleico de inmunoglobulina de línea germinal humana, y fragmentos,
variantes de síntesis, derivados y fusiones de los mismos. Dichos
anticuerpos pueden producirse a través de cualquiera de los métodos
conocidos en la especialidad. Entre los ejemplos de métodos se
incluyen inmunización con un antígeno de OPGbp (cualquier
polipéptido de OPGbp capaz de provocar una respuesta inmune y,
opcionalmente, conjugado con un vehículo) de animales transgénicos
(v.g., ratones) que sean capaces de producir un repertorio de
anticuerpos humanos en ausencia de producción de inmunoglobulina
endógena. Ver por ejemplo, Jakobovits y cols., Proc. Natl. Acad.
Sci., 90, 2551-255 (1993); Jakobovits y
cols., Nature, 362, 255-258 (1993);
Bruggermann y cols., Year in Immunol., 7, 33
(1993).
Alternativamente, pueden generarse anticuerpos
humanos a través de la detección selectiva in vitro de
bibliotecas de anticuerpo de despliegue en fago. Ver Hoogenboom y
cols., J. Mol. Biol. 227, 381 (1991); Marks y cols.
J. Mol. Biol., 222, 581 (1991).
Se han descrito diversas bibliotecas de
despliegue en fago que contienen anticuerpo, pudiéndolas preparar
fácilmente la persona especializada en la técnica. Las bibliotecas
pueden contener una diversidad de secuencias de anticuerpos
humanos, como por ejemplo fragmentos Fab, Fv y scFv humanos, cuya
detección selectiva puede realizarse contra una diana apropiada. El
ejemplo 1 describe la detección selectiva de una biblioteca en fago
Fab contra OPGbp para identificar las moléculas que se unen
selectivamente a OPGbp. Se podrá apreciar que las bibliotecas de
despliegue en fagos pueden comprender péptidos o proteínas distintas
a anticuerpos que se pueden detectar selectivamente para
identificar agentes de unión selectivos de OPGbp.
Un anticuerpo anti-idiotípico
(anti-Id) es un anticuerpo que reconoce
determinantes únicos asociados generalmente con el sitio de unión a
antígeno de un anticuerpo. Se puede preparar un anticuerpo Id
inmunizando a un animal de la misma especie y tipo genético, (v.g.,
cepa de ratón), como fuente de anticuerpo monoclonal con el
anticuerpo monoclonal con el que se está preparando
anti-Id. El animal inmunizado reconoce y responde a
determinantes idiotípicos del anticuerpo de inmunización
produciendo un anticuerpo para estos determinantes idiotípicos (el
anticuerpo anti-Id). Ver por ejemplo, la patente
EE.UU. Nº 4.699.880.
El anticuerpo anti-Id puede
utilizarse también como "inmunógeno" para inducir una respuesta
inmune en otro animal más, produciendo lo que se denomina un
anticuerpo anti-anti-Id. El
anti-anti-Id puede ser
epitópicamente idéntico al anticuerpo monoclonal original que
indujo el anti-Id. Por lo tanto, al utilizar
anticuerpos para los determinantes idiotípicos de mAb, es posible
identificar otros clones que expresan anticuerpos de especificidad
idéntica.
Cuando el agente de unión selectivo de OPGbp que
se va a preparar es un agente de unión selectivo proteináceo, como
por ejemplo un anticuerpo o un dominio de unión a antígeno, se
dispone de varios métodos biológicos o químicos para producir dicho
agente.
Son preferibles los métodos biológicos para
producir cantidades suficientes de un agente de unión selectivo
para uso terapéutico. Las técnicas de ADN recombinante normales son
particularmente útiles para la producción de anticuerpos y dominios
de unión a antígeno según la invención. A continuación se describen
ejemplos de vectores de expresión, células huésped y métodos para
la recuperación del producto expresado.
Se inserta una molécula de ácido nucleico que
codifica un anticuerpo o dominio de unión a antígeno de OPGbp en un
vector de expresión apropiado aplicando técnicas de ligación
normales. El vector se selecciona típicamente para que sea
funcional en la célula huésped empleada en particular (es decir, el
vector es compatible con la maquinaria de célula huésped, de manera
que puede producirse la amplificación del gen y/o expresión del
gen). Se puede amplificar/expresarse una molécula de ácido nucleico
que codifica un anticuerpo anti-OPGbp en células
huésped procarióticas, de levadura, de insecto (sistemas de
baculovirus) y/o eucarióticas. La selección de la célula huésped
dependerá en parte de si el anticuerpo anti-OPGbp se
ha de modificar post-transicionalmente (v.g.,
glucosilar y/o fosforilar). Si es así, son preferibles células
huésped de levadura, insecto o mamífero. Para una revisión de los
vectores de expresión, ver Meth. Enz. v. 185, D.V. Goeddel, ed.
Academic Press Inc., San Diego, CA (1990).
Típicamente, los vectores de expresión
utilizados en las células huésped contendrán uno o más de los
siguientes componentes: un promotor, una o más secuencias
potenciadoras, un origen de replicación, una secuencia de
terminación transcripcional, una secuencia intrón completa que
contiene un sitio de corte y empalme donador y aceptor, una
secuencia líder para la secreción, un sitio de unión de ribosoma,
una secuencia de poliadenilación, una región de poliligador para
insertar el ácido nucleico que codifica el polipéptido que se va a
expresar, y un elemento marcador seleccionable. A continuación, se
explica en detalle cada una de estas secuencias.
Los componentes de vector pueden ser homólogos
(es decir, de la misma especie y/o cepa que la célula huésped),
heterólogos (es decir, de especies distintas a la especie o cepa de
la célula huésped), híbridos (es decir, una combinación de
diferentes secuencias de más de una fuente), sintéticos, o
secuencias nativas que funcionan normalmente para regular la
expresión de inmunoglobulina. Como tales, una fuente de los
componentes de vector puede ser cualquier organismo procariótico o
eucariótico, cualquier organismo vertebrado o invertebrado, o
cualquier planta, siempre y cuando los componentes sean funcionales
en la maquinaria de la célula huésped y puedan ser activados por
ella.
Se selecciona un origen de replicación en
función del tipo de célula huésped que se esté utilizando para la
expresión. Por ejemplo, el origen de la replicación desde el
plasmidio pBR322 (Producto Nº 303-3s, New England
Biolabs, Beverly, MA) es adecuado para la mayoría de las bacterias
gram-negativas, mientras que diversos orígenes
desde SV40, polioma, adenovirus, virus de estomatitis vesicular
(VSV) o papilomavirus (como HPV o BPV) son útiles para la clonación
de vectores en células de mamífero. Generalmente, el origen del
componente de replicación no es necesario para los vectores de
expresión de mamífero (por ejemplo, el origen SV40 se utiliza
frecuentemente solamente porque contiene el primer promotor.
Típicamente existe una secuencia de terminación
de transcripción localizada en 3' del extremo de un polipéptido que
codifica regiones y sirve para terminar la transcripción.
Normalmente, una secuencia de terminación de la transcripción en
células procarióticas es un fragmento rico G-C
seguido de una secuencia poli T. Si bien la secuencia se clona
fácilmente desde una biblioteca, o incluso se puede adquirir en el
comercio como parte de un vector, también se puede sintetizar
fácilmente empleando métodos para la síntesis de ácido nucleico
como los que se han descrito anteriormente.
Un elemento de gen marcador seleccionable
codifica una proteína necesaria para la supervivencia y crecimiento
de una célula huésped cultivada en un medio de cultivo selectivo.
Los genes marcadores de selección típicos codifican proteínas que
(a) confieren resistencia a antibióticos u otras toxinas, v.g.,
ampicilina, tetraciclina o canamicina para células huésped
procarióticas, (b) complementan deficiencias auxotrópficas de la
célula; o (c) suministran nutrientes críticos no disponibles desde
medios complejos. Los marcadores seleccionables preferibles son el
gen de resistencia a canamicina, el gen de resistencia a ampicilina,
y el gen de resistencia a tetraciclina. Se puede usar también un
gen de resistencia a neomicina para la selección en células huésped
procarióticas y eucarióticas.
Se pueden utilizar otros genes de selección para
amplificar el gen que se exprese. La amplificación es el proceso en
el que los genes que tienen una mayor demanda de producción de una
proteína crítica para crecimiento se reiteran en tandem dentro de
los cromosomas de generaciones sucesivas de células recombinantes.
Entre los ejemplos de marcadores seleccionables adecuados para
células de mamífero se incluyen dihidrofolato reductasa (DHFR) y
timidina cinasa. Los transformantes de célula de mamífero se sitúan
bajo la presión de selección, a la que solamente los transformantes
se adaptan de forma única para sobrevivir en virtud del marcador
presente en el vector. Se impone la presión de selección cultivando
las células transformadas en condiciones en las que la
concentración del agente de selección en el medio se cambia
sucesivamente, conduciendo así a la amplificación del gen de
selección y el ADN que codifica un anticuerpo
anti-OPGbp. Como resultado, se sintetizan mayores
cantidades de un anticuerpo a partir del ADN amplificado.
Normalmente, es necesario un sitio de unión a
ribosoma para la iniciación de la traducción de ARNm y se
caracteriza por una secuencia Shine-Dalgarno
(procariotas) o una secuencia Kozak (eucariotas). El elemento está
típicamente localizado en 3' para el promotor y en 5' para la
secuencia de codificación del polipéptido que se va a expresar. La
secuencia Shine-Dalgarno puede variar, aunque
típicamente es una polipurina (es decir, tiene un alto contenido
A-G). Se han identificado muchas secuencias
Shine-Dalgarno, pudiéndose sintetizar fácilmente
cada una de ellas aplicando los métodos que se han indicado
anteriormente y utilizarse en un vector procariótico.
Se utiliza una secuencia, o señal, líder para
dirigir la secreción de un polipéptido. Se puede colocar una
secuencia de señal dentro del extremo 5' de una región de
codificación de polipéptido o directamente en el él. Se han
identificado muchas secuencias de señal y se pueden seleccionar en
función de la célula huésped utilizada para la expresión. En la
presente invención, una secuencia de señal puede ser homóloga
(natural) o heteróloga para una secuencia de ácido nucleico que
codifica un anticuerpo o dominio de unión a antígeno
anti-OPGbp. Una secuencia de señal heteróloga
seleccionada deberá ser aquella que es reconocida y procesada, es
decir, segmentada, por una peptidasa de señal, a través de la célula
huésped. Para las células huésped procarióticas que no reconocen y
procesan una secuencia de señal de inmunoglobulina nativa, la
secuencia de señal es sustituida por una secuencia de señal
procariótica seleccionada, como por ejemplo, del grupo de los
líderes fosfatasa alcalina, penicilanasa o enterotoxina II estable
al calor. Para la secreción de levadura, se puede sustituir una
secuencia de señal de inmunoglobulina nativa por un líder de
levadura invertasa, factor alfa o fosfatasa ácida. En la expresión
de célula de mamífero, la secuencia de señal nativa es
satisfactoria, si bien pueden ser adecuadas otras secuencias de
señal de mamífero.
En la mayoría de los casos, la secreción de un
anticuerpo o dominio de unión a antígeno anti-OPGbp
desde una célula huésped tendrá como resultado la eliminación del
péptido de señal desde el anticuerpo. Por consiguiente, el
anticuerpo maduro carecerá de secuencias de señal o líder.
En algunos casos, como por ejemplo cuando se
desea la glucosilación en un sistema de expresión de célula huésped
eucariótica, se pueden manipular las diversas
pre-secuencias para mejorar la glucosilación o el
rendimiento. Por ejemplo, se puede alterar el sitio de segmentación
de peptidasa de un péptido de señal en particular o añadir
prosecuencias, que también pueden afectar a la glucosilación. El
producto de proteína final puede tener en la posición -1 (en
relación con el primer aminoácido de la proteína madura) uno o más
aminoácidos adicionales incidentes para la expresión, que pueden no
haber sido eliminados totalmente. Por ejemplo, el producto de
proteína final puede tener uno o dos aminoácidos que se encuentran
en el sitio de segmentación de peptidasa, unidos en el término N.
Alternativamente, el uso de algunos sitios de segmentación de enzima
puede tener como resultado una forma ligeramente truncada del
polipéptido OPGbp deseado, si la enzima corta en ese área dentro
del polipéptido maduro.
Los vectores de expresión de la presente
invención contendrán típicamente un promotor que es reconocido por
el organismo huésped y que está unido operativamente a una molécula
de ácido nucleico que codifica un anticuerpo o dominio de unión a
antígeno anti-OPGbp. Se puede utilizar tanto un
promotor nativo como heterólogo dependiendo de la célula huésped
utilizada para la expresión y el rendimiento de la proteína
deseado.
Los promotores adecuados para su uso con
huéspedes procarióticos incluyen los sistemas de promotor de
beta-lactamasa y lactosa; fosfatasa alcalina, un
sistema promotor de triptofano (trp); y promotores híbridos como el
promotor tac. También son adecuados otros promotores bacterianos
conocidos. Se han publicado sus secuencias, permitiendo así que las
personas especializadas en este campo puedan ligarlos a la(s)
secuencia(s) de ADN deseadas, utilizando ligadores o
adaptadores según sea necesario para suministrar los sitios de
restricción necesarios.
Los promotores adecuados para su uso con los
huéspedes de levadura también son conocidos dentro de la
especialidad. Ventajosamente se utilizan potenciadores de levadura
con promotores de levadura. Los promotores adecuados para su uso
con células huésped de mamífero son muy conocidos y entre ellos se
incluyen los que se obtienen de genomas de virus como virus de
polioma, virus de la viruela aviar, adenovirus (como Adenovirus 2),
virus de papiloma bovino, virus de sarcoma aviar, citomegalovirus,
un retrovirus, virus de hepatitis B y de manera más preferible
virus 40 de simio (SV40). Otros promotores de mamífero adecuados
incluyen promotores de mamífero heterólogos, v.g., promotores de
choque de calor y promotor de actina.
Otros promotores que se pueden utilizar para
expresar los agentes de unión selectivos de la invención incluyen,
sin limitarse sólo a ellos: la región promotora temprana SV40
(Bernoist and Chambon, Nature, 290: 304-301, 1981);
el promotor CMV; el promotor contenido en la repetición terminal
larga 3' de virus de sarcoma de Rous (Yamamoto, y cols., Cell,
22; 787-797, 1980); el promotor de timidina
cinasa de herpes (Wagner y cols., Proc., Natl. Acad. Sci. EE.UU.,
78; 144-1445, 1981); las secuencias
reguladoras del gen de metalotionina (Brinster y cols. Nature,
296; 39-42, 1982); los vectores de expresión
procarióticos como el promotor beta-lactamasa
(Villa-Kamaroff, y cols., Proc. Natl. Acad. Sci.
EE.UU. 75, 3727-3731, 1978); o el promotor
tac (DeBoer, y cols., Proc. Natl. Acad. Sci, EE.UU., 80,
21-25, 1983). También son de interés las siguientes
regiones de control transcripcional de animal, que presentan
especificidad de tejido y que se han utilizado en animales
transgénicos; la región de control de gen de elastasa I, que es
activa en células acinares pancreáticas (Swift y cols., Cell,
38, 639-646, 1984; Ornitz y cols., Cold
Spring Harbor Symp. Quant. Biol., 50;
399-409, 1986; MacDonald, Hepatology, 7,
425-515, 1987); la región de control de gen de
insulina que es activa en células beta pancreáticas (Hanahan,
Nature, 315, 115-122; 1985); la región de
control de gen de inmunoglobulina que es activa en células
linfoides (Grosschedl y cols., Cell, 38,
647-658, 1984; Adames y cols., Nature, 318;
533-538, 1985; Alexander y cols., Mol. Cell. Biol.,
7, 1436-1444, 1987); la región de control de
virus de tumor de mama de ratón que es activo en células de
testículo, de pecho, linfoides y mastocitos (Leder y cols., Cell,
45, 485-495, 1986), región de control de gen
de albúmina que es activa en el hígado (Pinkert y cols., Genes and
Devel., 1, 268-276, 1987); la región de
control de gen de alfafetoproteína que es activa en el hígado
(Kurmlauf y cols., Mol. Cell. Biol., 5;
1639-1648, 1985; Hammer y cols., Science,
235; 53-58; 1987); la región de control de
gen de alfa 1-antitripsina que es activa en el
hígado (Kelsey y cols., Genes and Devel., 1,
161-171, 1987); la región de control de gen
beta-globina que es activa en células mieloides
(Mogram y cols. Nature, 315; 338-340, 1985;
Kollias y cols., Cell, 46; 89-94, 1986); la
región de control de gen de proteína básica de mielina que es
activa en células de oligodendrocito en el cerebro (Readhead y
cols., Cell, 48, 703-712; 1987); la región
de control de gen de cadena-2 ligera de miosina que
es activa en el músculo esqueletal (Sani, Nature, 314,
283-286, 1985); y la región de control de gen de
hormona de liberación glonadotrópica que es activa en el hipotálamo
(Mason y cols., Science, 234; 1372-1378,
1986).
Se puede insertar una secuencia potenciadora en
el vector para aumentar la transcripción en células huésped
eucarióticas. Se conocen varias secuencias potenciadoras asequibles
desde mamíferos (v.g., globina, elastasa, albúmina,
alfa-feto-proteína e insulina). Sin
embargo, típicamente, se utilizará un potenciador desde un virus.
El potenciador SV40, el potenciador de promotor temprano de
citomegalovirus, el potenciador de polioma, y los potenciadores de
adenovirus son ejemplos de elementos de potenciación para la
activación de promotores eucarióticos. Si bien se puede cortar y
empalmar un potenciador en el vector en la posición 5' y 3' de la
región de codificación de polipéptido, típicamente queda localizado
en el sitio 5' desde el promotor.
Los vectores preferibles para la puesta en
práctica de la presente invención son los que son compatibles con
células huésped de bacterias, de insectos y de mamíferos. Dichos
vectores incluyen, entre otros, pCRII, pCR3, y pcDNA3.1 (Invitrogen
Company, San Diego, CA), pBSII (Stratagene Company, La Jolla, CA),
pET15 (Novagen, Madison, WI), pGEX (Pharmacia Biotech, Piscataway,
NJ), pEGFP-N2 (Clontech, Palo Alto, CA), pETL
(BlueBacII; Invitrogen), pDSR-alfa (publicación PCT
Nº WP90(14363) y pFastBacDual (Gibco/BRL, Grand Island,
NY).
Entre otros vectores posibles se incluyen, sin
limitarse sólo a ellos, cosmidios, plasmidios o virus modificados,
pero el sistema de vector debe ser compatible con la célula huésped
seleccionada. Entre dichos vectores se incluyen, sin limitarse sólo
a ellos plasmidios como derivados de plasmidio Bluescript® (un
fagémido a base de ColE1 de alto número de copias, Stratagene
Cloning Systems Inc., La Jolla CA), plasmidios de clonación PCR
designados para la clonación de productos PCR
Taq-amplificados (v.g., TOPO^{TM} TA Cloning ®
Kit, PCR2.1® plasmid derivatives, Invitrogen, Carlsbad, CA), y
vectores de mamífero, levadura o virus como un sistema de expresión
de baculovirus (derivados de plasmidio pBacPAK, Clontech, Palo Alto,
CA). Se pueden introducir las moléculas recombinantes en células
huésped a través de técnicas de transformación, transfección,
infección, electroporación y otras técnicas conocidas.
Las células huésped de la invención pueden ser
células huésped procarióticas (por ejemplo E. coli) o células
huésped eucarióticas (como por ejemplo células de levadura, células
de insecto o células de vertebrado). La célula huésped, cuando se
cultiva en condiciones apropiadas, expresa un anticuerpo o un
dominio de unión a antígeno de la invención que puede recogerse
después desde el medio de cultivo (si la célula huésped la secreta
en el medio) o directamente desde la célula huésped que la produce
(si no la secreta). La selección de la célula huésped apropiada
dependerá de varios factores como los niveles de expresión deseados,
las modificaciones de polipéptido que son deseables o necesarios
para la actividad, como glucosilación o fosforilación, y la
facilidad de plegamiento en una molécula biológicamente activa.
Se conoce una serie de células huésped adecuadas
en la especialidad y muchas de ellas están disponibles en la
American Type Culture Collection (ATCC), Manassas, VA. Entre los
ejemplos se incluyen células de mamífero, como células de ovario de
hámster chino (CHO) (ATCC Nº CCL61) células CHO DHFR (Urlaub y
cols., Proc. Natl. Acad. Sci. EE.UU. 97,
4216-4220 (1980), células de riñón embriónico humano
(HEK) 293 o 293T (ATCC Nº CRL1573) o células 3T3 (ATCC Nº CCL92).
La selección de células huésped de mamífero adecuadas y los métodos
para la transformación, cultivo, amplificación, detección selectiva
y producción y purificación de producto son conocidas en la
especialidad. Otras células de mamífero adecuadas, son líneas
celulares COS-1 (ATCC Nº, CRL1650) y
COS-7 (ATTCC Nº CCL651) de mono, y la línea celular
CV-1 (ATCC Nº CCL70). Otros ejemplos de células
huésped de mamífero incluyen líneas de células de primate y líneas
de células de roedores, incluyendo líneas de células transformadas.
También son adecuadas las células diploides normales, cepas de
células derivadas de cultivo in vitro de tejido primario,
así como explantes primarios. Las células canditato pueden ser
genotípicamente deficientes en el gen de selección o pueden
contener un gen de selección que actúe dominantemente. Otras líneas
celulares de mamífero adecuadas incluyen, sin limitarse sólo a
ellas, células N2A de neuroblastoma de ratón, HeLa, células
L-929 de ratón, líneas 3T3 derivadas de ratón Suizo,
BALB-c o NIH, líneas de células de hámster BHK o
HaK, que están disponibles de de la American Type Culture
Collection, Manassas, VA). Cada una de estas líneas celulares se
conoce y está disponible para las personas especializadas en el
campo de la expresión de proteína.
De manera similar, entre las células huéspedes
útiles adecuadas para la presente invención se encuentran las
células bacterianas. Por ejemplo, se conocen las diversas cepas de
E. coli (v.g. HB101, (ATCC Nº 33694) DH5\alpha, DH10 y
MC1061 (ATCC Nº 53338)) como células huésped en el campo de la
biotecnología. Se pueden emplear también en este método varias
cepas de B. subtilis, Pseudomonas spp., otras Bacillus
spp. Streptomyces spp. y similares.
También se dispone de muchas cepas de células de
levadura conocidas entre las personas especializadas en este campo
como células huésped para la expresión de los polipéptidos de la
presente invención. Entre las células de levadura preferibles se
incluyen por ejemplo, Saccharomyces cerivisae.
Adicionalmente, cuando se desee, se pueden
utilizar sistemas de células de insecto en los métodos de la
presente invención. Dichos sistemas se describen por ejemplo en
Kitts y cols. (Biotechniques, 14, 810-817
(1993)), Lucklow (Curr. Opin. Biotechnol., 4,
564-572 (1993)), Lucklow y cols. (J. Virol,
67, 4566-4579 (1993)). Las células de
insecto preferibles son Sf-9 y Hi5 (Invitorgen,
Carlsbad, CA).
La transformación o transfección de una molécula
de ácido nucleico que codifica un anticuerpo o dominio de unión a
antígeno anti-OPGbp en una célula huésped
seleccionada puede llevarse a cabo a través de métodos muy
conocidos, incluyendo métodos como método de cloruro de calcio,
electroporación, microinyección, lipofección o método
DEAE-dextrano. El método seleccionado se determinará
en parte en función del tipo de células huésped utilizada. Estos
métodos y otros métodos adecuados son muy conocidos entre las
personas especializadas en este campo y se exponen por ejemplo en
Sambrook y cols., supra.
Se pueden utilizar también animales transgénicos
para expresar agentes de unión selectivos glucosilados, como por
ejemplo anticuerpos y dominio de unión de antígeno. Por ejemplo, se
puede utilizar un animal de producción de leche transgénico (una
vaca o una cabra, por ejemplo) y obtener agentes de unión
glucosilados en la leche animal. Alternativamente, se pueden
utilizar plantas para producir agentes de unión selectivos
glucosilados.
Pueden cultivarse células huésped que comprenden
(es decir transformadas o transfectadas) un vector de expresión que
codifica un agente de unión selectivo de OPGbp utilizando medios
patrón muy conocidos entre las personas especializada en este
campo. Los medios contendrán normalmente todos los nutrientes
necesarios para el crecimiento y supervivencia de las células.
Entre los medios adecuados para el cultivo de células E. coli
se incluyen por ejemplo caldo de cultivo de Luria (LB) y/o caldo de
cultivo Terrific (TB). Entre los medios adecuados para el cultivo
de células eucarióticas se incluyen RPMI 1640, MEM, DMEM, que pueden
suplementarse todos ellos con suero y/o factores de crecimiento,
según se requiera para la línea de células en particular que se
cultive. Un medio adecuado para cultivos de insecto es medio de
Grace suplementado con hidrolizado de levadura, hidrolisado de
lactalbúmina y/o suero de becerro fetal, según sea necesario.
Típicamente, se añade un antibiótico u otro
compuesto útil para el crecimiento selectivo de células
transformadas o transfectadas como suplemento al medio. El
compuesto que se utilice vendrá dictado por el elemento marcador
seleccionable presente en el plasmidio con el que se transformó la
célula huésped. Por ejemplo, cuando el elemento marcador
seleccionado es resistencia a canamicina, el compuesto que se añada
al medio de cultivo será canamicina. Otros compuestos para
crecimiento selectivo incluyen ampicilina, tetraciclina y
neomicina.
La cantidad de anticuerpo o dominio de unión de
antígeno anti-OpGbp producida por una célula huésped
puede evaluarse utilizando métodos normales conocidos en la
técnica. Dichos métodos incluyen, sin limitarse sólo a ellos,
análisis de mancha de Western, electroforesis de gel
SDS-poliacrilamida, electroforesis de gel no
desnaturalizante, separación por HPLC, inmunoprecipitación, y/o
ensayos de actividad.
La purificación de un anticuerpo o dominio de
unión a antígeno anti-OPG que ha sido secretado
hacia un medio de células puede llevarse a cabo utilizando diversas
técnicas, entre las que se incluyen afinidad, inmunoafinidad o
cromatografía de intercambio iónico, cromatografía de tamiz
molecular, electroforesis de gel preparativa o enfoque
isoeléctrico, cromatoenfoque y cromatografía de líquidos a alta
presión. Por ejemplo, se pueden purificar convenientemente los
anticuerpos que comprenden una región Fc por cromatografía de
afinidad con una proteína A, que se une selectivamente a la región
Fc. Las formas modificadas de un anticuerpo o dominio de unión a
antígeno pueden prepararse con etiquetas de afinidad, como
hexahistidina u otros péptidos pequeños como FLAG (Eastman Kodak
Co., New Haven, CT) o myc (Invitrogen) en su término
carboxilo o su término amino y purificarse por columna de afinidad
en una etapa. Por ejemplo, polihistidina se une con mayor afinidad y
especificidad a níquel, de manera que se puede utilizar una cadena
de afinidad de níquel (como columnas de níquel Qiagen®) para la
purificación de agentes de unión selectivos etiquetados con
polihistidina. (Ver por ejemplo, Ausubel, y cols., eds., Current
Protocols in Molecular Biology, Sección 10.11.8, John Wiley
& Sons, Nueva York (1993)). En algunos casos, pueden ser
necesarias más de una etapa de purificación.
Los agentes de unión selectivos de la invención
que se expresan en células huésped procarióticas pueden estar
presentes en forma soluble, ya sea en el espacio periplásmico o en
el citoplasma, o en una forma soluble como parte de los cuerpos de
inclusión intracelulares. Los agentes de unión selectivos pueden
extraerse de la célula huésped utilizando cualquier técnica normal
conocida entre las personas especializadas. Por ejemplo, se pueden
lisar células huésped para liberar el contenido del
periplasma/citoplasma mediante prensa francesa, homogenización, y/o
sonicación seguido de centrifugado.
Las formas solubles de anticuerpo o dominio de
unión a antígeno anti-OPGbp presentes tanto en el
espacio de citoplasma como liberadas desde el espacio periplásmico
pueden purificarse después aplicando métodos conocidos dentro de la
especialidad, por ejemplo, se liberan fragmentos Fab desde el
espacio periplásmico bacteriano a través de técnicas de choque
osmótico.
Si un anticuerpo o dominio de unión a antígeno
ha formado cuerpos de inclusión, se pueden unir frecuentemente a
las membranas celulares interiores y/o exteriores y, por tanto, se
encontrarán principalmente en el material aglomerado tras el
centrifugado. El material aglomerado se tratará después a extremos
de pH, o con un agente caotrópico como, por ejemplo, un detergente,
guanidina, derivados de guanidina, urea, o derivados de urea, en
presencia de un agente de reducción como ditiotreitol a un pH
alcalino o tris carboxietil fosfina a un pH ácido para liberar,
descomponer y solubilizar los cuerpos de inclusión. El agente de
unión selectivo soluble puede analizarse después utilizando
electroforesis de gel, inmunoprecipitado o similares. Cuando es
deseable aislar un anticuerpo o dominio de unión a antígeno
solubilizado, se puede llevar a cabo el aislamiento utilizando
métodos normales, como los que se exponen más adelante y en Marston
y cols., (Meth Enz., 182: 264-275
(1990)).
En algunos casos, un anticuerpo o dominio de
unión a antígeno puede no estar biológicamente activo tras el
aislamiento. Se pueden utilizar varios métodos para el
"replegamiento" o conversión del polipéptido en su estructura
terciaria y la generación de uniones disulfuro, para restaurar la
actividad biológica. Dichos métodos incluyen la exposición del
polipéptido solubilizado a un pH normalmente por encima de 7 y en
presencia de una concentración concreta de un caotropo. La
selección del caotropo es muy similar a las opciones utilizadas
para la inclusión de solubilización de anticuerpo, pero normalmente
el caotropo se utiliza a una concentración inferior y no coincide
necesariamente con los mismos caotropos que los utilizados para la
solubilización. En la mayoría de los casos la solución de
replegamiento/oxidación contendrá también un agente de reducción o
el agente de reducción más su forma oxidada en una proporción
específica para generar un potencial redox concreto que permita que
se produzca el desordenamiento de disulfuro en la formación del
puente(s) de cisteína de proteína. Algunas de las parejas
redox comúnmente utilizadas incluyen cisteína/cistamina, glutationa
(GSH)/ditiobis GSH, cloruro cúprico, ditiotreitol (DTT)/ditiano
DTT, y 2-mercaptoetanol
(bME)/ditio-b (ME). En muchos casos, se puede
utilizar o puede ser necesario un co-disolvente para
aumentar la eficacia del replegamiento, incluyéndose entre los
reactivos comunes utilizados para este propósito glicerol,
polietilen glicol de diversos pesos moleculares, arginina y
similares.
Los anticuerpos y dominios de unión a antígeno
de la invención se pueden preparar a través de métodos de síntesis
química (como por ejemplo síntesis de péptido en fase sólida)
utilizando técnicas conocidas en la especialidad como las que se
exponen en Merrified y cols., (J. Am. Chem. Soc. 85:2149
(1963)] Houghten y cols. (Proc. Natl. Acad. Sci. EE.UU. 82:
5132 [1985]), y Stewart and Young (Solid Phase Peptide Synthesis,
Pierce Chemical Co., Rockford, IL [1984]). Dichos polipéptidos se
pueden sintetizar con o sin metionina en el término amino. Los
anticuerpos y dominios de unión a antígeno químicamente sintetizados
pueden oxidarse aplicando los métodos que se exponen en estos
documentos de referencia para formar puentes de disulfuro. Los
anticuerpos así preparados retendrán al menos una actividad
biológica asociada con un anticuerpo o dominio de unión a antígeno
anti-OPGbp producido por recombinación o
nativo.
La invención proporciona métodos de detección
selectiva para identificar agentes de unión selectivos que inhiben
parcial o completamente al menos una actividad biológica de OPGbp.
La inhibición de la actividad biológica de OPGbp incluye, sin
limitarse sólo a ellas, la inhibición de la unión de OPGbp a su
receptor cognado, ODAR, la inhibición de la estimulación de la
formación de osteoclasto in vitro o in vivo mediante
OPGbp, y/o la inhibición de recambio óseo o resorción ósea mediada
por OPGbp. Los agentes de unión selectivos de la invención incluyen
anticuerpos anti-OPGbp, y fragmentos, variantes,
derivados y fusiones de los mismos, péptidos, compuestos
peptidomiméticos o compuestos organomiméticos.
Los métodos de detección selectiva para la
identificación de agentes de unión que pueden inhibir parcial o
completamente una actividad biológica de OPGbp pueden incluir
ensayos in vitro o in vivo. Los ensayos in
vitro incluyen aquellos que detectan la unión de OPGbp a ODAR y
se pueden utilizar para la detección selectiva de agentes de unión
de OPGbp en cuanto a su capacidad para aumentar o disminuir la
velocidad o grado de unión de OPGbp a ODAR. En un tipo de ensayo,
se inmoviliza un polipéptido OPGbp, preferiblemente una forma
soluble de OPGbp, como por ejemplo un dominio extracelular, en un
soporte sólido (v.g., agarosa o perlas acrílicas) y se añade el
polipéptido ODAR, ya sea en presencia o en ausencia de un agente de
unión selectivo de OPGbp. Se mide el grado de unión de OPGbp y ODAR
con presencia o sin ella de agente de unión selectivo. Se puede
detectar la unión por ejemplo por etiquetado radioactivo, etiquetado
fluorescente o reacción enzimática. Alternativamente, la reacción
de unión puede llevarse a cabo utilizando un sistema detector de
resonancia de plasmon superficial, como por ejemplo el sistema de
ensayo BIAcore (Pharmacia, Piscataway, NJ). Las reacciones de unión
pueden llevarse a cabo con arreglo al protocolo del fabricante.
Los ensayos in vitro, como los que se han
descrito, pueden utilizarse ventajosamente para detectar
selectivamente rápidamente un gran número de agentes de unión
selectivos en cuanto a los efectos de unión de OPGbp con ODAR. Los
ensayos pueden ser automáticos para detectar selectivamente
compuestos generados en despliegue en fago, péptido sintético y
bibliotecas de síntesis química.
Se pueden detectar selectivamente también el
aumento o disminución de agentes de unión selectivos que se unen a
OPGbp con ODAR en cultivos celulares utilizando células y líneas
celulares que expresan cada polipéptido. Las células y líneas
celulares pueden obtenerse de cualquier mamífero, si bien es
preferible su obtención de seres humanos u otros primates, perros o
roedores. A modo de ejemplo, la unión de OPGbp a células que
expresan ODAR en la superficie se evalúa en presencia o ausencia de
agentes de unión selectivos y el grado de unión puede determinarse
por ejemplo por citometría de flujo utilizando un anticuerpo
biotinilado para OpGbp.
Los ensayos de actividad in vitro pueden
utilizarse también para identificar agentes de unión selectivos que
inhiben la actividad de OPGbp. Entre los ejemplos de ensayos se
incluyen la estimulación del crecimiento y proliferación de células
que dependen de OPGbp y la formación de osteoclasto mediada por
OPGbp desde células de médula ósea, describiéndose ésta última en
el ejemplo 1 de la presente invención.
Los ensayos in vivo también están
disponibles para determinar si un agente de unión selectivo es capaz
o no de disminuir o inhibir el recambio óseo y/o resorción ósea. Se
puede aumentar la resorción ósea en animales a través de diversos
métodos, entre los que se incluyen ovariectomía y administración de
agentes pro-resortivos como OPGbp o
IL-1. Ver WO 97/23614 y WO 98/46751. Los efectos de
los inhibidores de OPG en la resorción ósea en pacientes humanos se
puede medir a través de diversos métodos conocidos como
absorptiometría de fotón único (SPA), absorptiometría de fotón dual
(DPA), absorptiometría por rayos X de energía dual (DEXA),
tomografía computada cuantitativa (QCT) y ultrasonografía (ver
Johnston y cols., en Primer on the Metabolic Bone Disease and
Disorders of Mineral Metabolism, 2ª ed. M.J. Favus, ed. Raven Press
pp. 137-146). El recambio y resorción ósea pueden
determinarse también midiendo los cambios en determinados marcadores
bioquímicos, como osteocalcina de suero, fosfatasa alcalina de
suero, péptidos de extensión de procolágeno I de suero, telopéptido
de colágeno N-terminal o C-terminal
de suero o urinario, calcio urinario, hidroxiprolina y piridinolina
urinaria y desoxipiridinolina. Generalmente se reconoce que una
disminución de los niveles de los marcadores bioquímicos mencionados
indica que ha disminuido la resorción ósea y se está reduciendo la
pérdida de masa ósea. Alternativamente, se pueden determinar los
efectos de la resorción ósea midiendo un cambio en la resistencia
mecánica del hueso, en particular un aumento en la resistencia de
torsión del hueso (retorcimiento).
Para aplicaciones de diagnóstico, en
determinados modos de realización, los agentes de unión selectivos
de OPGbp, como por ejemplo anticuerpos y dominios de unión a
antígeno de los mimos, se etiquetarán típicamente con una fracción
detectable. La fracción detectable puede ser cualquiera que sea
capaz de producir, ya sea directa o indirectamente, una señal
detectable. Por ejemplo, una fracción detectable puede ser un
radioisótopo, como ^{3}H, ^{14}C, ^{32}P, ^{35}P, ^{35}S
o ^{125}I, un compuesto fluorescente o quimioluminiscente, como
isotiocianato de fluoresceína, rodamina, o luciferina; o una enzima
como fosfatasa alcalina, \beta-galactosidasa o
peroxidasa de rábano picante. Bayer y cols., Meth Enz. 184:
138-163 (1990).
Los agentes de unión selectivos de la invención
pueden emplearse en cualquier método de ensayo conocido, como
radioinmunoensayos, ensayos de unión competitiva, ensayos sandwich
directos e indirectos (ELISAs), y ensayos de inmunoprecipitación
(Sola, Monoclonal Antibodies: A Manual of Techniques, pp.
147-158 (CRC Press, 1987)) para detección y
cuantificación de polipéptidos de OPGbp. Los anticuerpos se unirán a
polipéptidos de OPGbp con una afinidad que es apropiada para el
método de ensayo que se emplee.
Los agentes de unión selectivos de la invención
también son útiles para la obtención de imágenes in vivo,
administrándose por ejemplo un agente de unión selectivo etiquetado
con una fracción detectable a un animal, preferiblemente en la
corriente sanguínea, y ensayándose la presencia y localización del
anticuerpo etiquetado en el huésped. El agente puede etiquetarse
con cualquier fracción que sea detectable en un animal, ya sea por
resonancia magnética nuclear, radiología, u otros medios de
detección conocidos en la especialidad.
La invención se refiere también a un equipo que
comprende un agente de unión selectiva de OPGbp, como un anticuerpo
o un dominio de unión a antígeno, y otros reactivos útiles para
detectar los niveles de OPGbp en muestras biológicas. Dichos
reactivos pueden incluir una actividad secundaria, una etiqueta
detectable, suero de bloqueo, muestras de control positivo y
negativo y reactivos de detección.
Los agentes de unión selectivos de la invención,
tal como se definen en la reivindicación 1, pueden utilizarse como
agentes terapéuticos. Los agentes de unión selectivos terapéuticos
pueden ser agonistas o antagonistas de OPGbp y, en un modo de
realización, son anticuerpo antagonistas anti-OPGbp
que inhiben al menos una de las actividad biológicas de un
polipéptido OPGbp in vitro o in vivo. Por ejemplo, un
antagonista de OPGbp inhibirá la unión de OPGbp con ODAR al menos
aproximadamente 100 veces, o aproximadamente 1000 veces, más de
aproximadamente 1000 veces. Alternativamente, un antagonista de
OPGbp inhibirá la formación de osteoclasto in vitro tal como
lo indica una IC_{50} mensurable (una concentración que da un 50%
de inhibición) en un ensayo de médula ósea, como se describe en el
ejemplo 1. Alternativamente, un antagonista de OPGbp disminuirá los
marcadores de recambio óseo en al menos un 20%, o al menos un 50% en
comparación con los niveles de la línea de referencia. Los agentes
de unión selectivos de OPGbp antagonistas (como por ejemplo
anticuerpos) se identifican a través de los ensayos de detección
selectiva que se han descrito aquí.
\global\parskip0.900000\baselineskip
Los antagonistas de OPGbp, como por ejemplo
anticuerpos y dominios de unión a antígeno antagonistas
anti-OPGbp, pueden utilizarse para prevenir o
tratar enfermedades óseas caracterizadas por una pérdida de la masa
ósea o por reemplazamiento del hueso estructuralmente normal con un
hueso estructuralmente anormal. Los antagonistas de OPGbp pueden
administrarse a un animal que padece pérdida de masa ósea o que es
susceptible de padecer pérdida de masa ósea a causa de uno de los
siguientes trastornos: osteoporosis, como por ejemplo osteoporosis
primaria, osteoporosis endocrina (hipertiroidismo,
hiperparatiroidismo, síndrome de Cushing y acromegalía, formas
hereditarias y congénitas de osteoporosis (osteogenesis imperfecta,
homocistinuria, síndrome de Menkes y síndrome de
Riley-Day) y osteoporosis como consecuencia de la
inmovilización de las extremidades; osteomielitis, o una lesión
infecciosa del hueso, que lleva a la pérdida de la masa ósea;
hipercalcemia como resultado de tumores sólidos (pecho, pulmón y
riñón) y malignidades hematológicas (mieloma múltiple, linfoma y
leucemia), hipercalcemia idiopática e hipercalcemia asociada con
hipertiroidismo y trastornos de la función renal; osteopenia
después de cirugía, inducida por administración de esteroides y
asociada con trastornos del intestino delgado y grueso y con
enfermedades hepáticas y renales crónicas; osteonecrosis, o muerte
celular ósea, asociada con lesión traumática o necrosis no
traumática asociada con enfermedad de Gaucher, anemia de células
falciformes, lupus eritematoso sistémico y otros estados
patológicos; pérdida de la masa ósea debido a artritis reumatoide;
pérdida periodontal de la masa ósea; osteoartritis; pérdida
prostética; y metástasis osteolítica. Los antagonistas de OPGbp
pueden utilizarse también para prevenir o tratar determinados
trastornos óseos que se caracterizan por un reemplazamiento del
hueso estructuralmente sólido con hueso incompetente
estructuralmente desorganizado, como enfermedad de hueso de Paget
(osteitis deformante) en adultos y edad juvenil;
hiperparatiroidismo, en trastornos óseos congénitos, como displasia
fibrosa y en metástasis ósea osteosclerótica.
En un modo de realización de la invención, los
antagonistas de OPGbp se utilizan ventajosamente para tratar la
pérdida de masa ósea como resultado de la destrucción osteolítica de
hueso causada por tumores malignos o metastáticos. Los polipéptidos
de OPG de la invención se pueden utilizar para tratar la pérdida de
masa ósea asociada con cánceres de pecho, próstata, tiroides,
riñón, pulmón, esófago, rectal, de vejiga, de útero, de ovario y de
hígado, así como cáncer del tracto gastrointestinal. También se
incluye la pérdida de masa ósea asociadas con determinadas
malignidades hematológicas como mieloma múltiple y linfomas como
enfermedad de Hodgkin.
Los antagonistas de OPGbp de la invención,
incluyendo los anticuerpos y dominios de unión a antígeno
antagonistas, se administran en solitario o en combinación con
otros agentes terapéuticos, en particular, en combinación con otros
agentes de terapia contra el cáncer. Dichos agentes incluyen por lo
general, terapia de radiación y quimioterapia. La quimioterapia
puede implicar el tratamiento con uno o más de los siguientes:
antraciclinas, taxol, tamoxifeno, doxorrubicina,
5-fluorouracilo, y otros fármacos conocidos entre
las personas especializadas. En un modo de realización, el agente
de terapia contra el cáncer es un antagonista de hormona de
liberación de hormona luteinizante (LHRH), preferiblemente un
antagonista de péptido. Más preferiblemente, un antagonista de LHRH
es un decapéptido que comprende la siguiente estructura:
A-B-C-D-E-F-G-H-I-J
en la
que:
A es piro-glu,
Ac-D-Nal,
Ac-D-Qal, Ac-Sar, o
Ac-D-Pal;
B es His o
4-Cl-D-Phe;
C es Trp, D-Pal,
D-Nal,
L-Nal-D-Pal(N-O)
o D-Trp;
D es Ser;
E es N-Me-Ala,
Tyr, N-Me-Tyr, Ser, Lys(iPr),
4-Cl-Phe, His, Asn, Met, Ala, Arg o
Ile;
F es
en la
que
R y X son independientemente H y alquilo;
e Y comprende una entidad polar pequeña.
G es Leu o Trp;
H es Lys (iPr), Gln, Met, o Arg;
I es Pro; y
J es Gly-NH_{2} o
D-Ala-NH_{2};
o una sal farmacéuticamente aceptable de los
mismos.
\global\parskip1.000000\baselineskip
En otro modo de realización, un antagonista de
LHRH comprende el péptido:
N-Ac-D-Nal-4-Cl-Phe-D-Pal-Ser-N-Me-Tyr-D-Asn-Leu-Lys
\hskip1cm(iPr)-Pro-D-Ala-NH_{2}.
Se utilizan en el presente documento las
abreviaturas y las convenciones estándar, abreviándose los radicales
y fracciones no estándar del siguiente modo:
- Nal
- 3-(2-naftil)alaninilo
- 4-Cl-Phe
- (4'-clorofenil)alaninilo
- Pal
- 3-(3'-piridil)alanilino
- Pal(N-O)
- 3-(3'-piridin-N-óxido)alaninilo
- iPr-Lys
- N-épsilon-2-propil-lisinilo
- Qal
- 3-(2'-quinolinil)alaninilo
Entran dentro del alcance de la presente
invención las formas alternativas de los decapéptidos antagonistas
de LHRH. Dichos decapéptidos se describen en la patente EE.UU. Nº
5.843.901.
Se incluyen asimismo combinaciones de
antagonistas de OPGbp con anticuerpos que se unen a células de tumor
e inducen un efecto citotóxico y/o citostático en el crecimiento de
tumor. Entre los ejemplos de dichos anticuerpos se incluyen los que
se unen a proteínas de superficie de célula Her2, CDC20, CDC33,
glucoproteína de tipo mucina y receptor de factor de crecimiento
epidermal (EGFR) presente en células de tumor y que induce un efecto
citostático y/o citotóxico en las células de tumor que despliegan
estas proteínas. Entre los ejemplos de dichos anticuerpos se
incluyen HERCEPTINA para el tratamiento de cáncer de pecho y RITUXAN
para el tratamiento de linfoma no Hodgkin. Se incluyen también como
agentes para terapia contra el cáncer polipéptidos que inducen
selectivamente apoptosis en células de tumor como TRAIL de
polipéptido relacionado con TNF. Los antagonistas de OPGbp se
pueden administrar antes, de forma concurrente o posteriormente al
tratamiento con un agente de terapia contra el cáncer. Los
antagonistas de OPGbp pueden administrarse profilácticamente para
prevenir o mitigar el inicio de la pérdida de la masa ósea por
cáncer metastático o pueden administrarse para el tratamiento de un
estado patológico existente de pérdida de masa ósea como
consecuencia de metástasis.
Los antagonistas de OPGbp de la invención pueden
utilizarse para prevenir y/o tratar el crecimiento de células de
tumor en el hueso. El cáncer que tiene metástasis en el hueso puede
extenderse rápidamente como células de tumor que estimulan a los
osteoclastos para reabsorber la matriz del hueso interna. El
tratamiento con un antagonista de OPGbp mantendrá la densidad ósea
inhibiendo la resorción y disminuirá la probabilidad de que se
extiendan las células de tumor por todo el esqueleto. Se puede
prevenir y/o tratarse cualquier cáncer tenga metástasis al hueso
con un antagonista de OPGbp.
En un modo de realización, se previene y/o se
trata mieloma múltiple con un antagonista de OPGbp, como por
ejemplo un anticuerpo. El mieloma múltiple está localizado en el
hueso y los pacientes afectados presentan típicamente una pérdida
de la masa ósea como consecuencia de una mayor activación de
osteoclasto en regiones localizadas. Las células de mieloma
producen directa o indirectamente OPGbp, que a su vez activa los
osteoclastos con el resultado a lisis del hueso local que rodea a
las células de mieloma embebidas en los espacios de la médula ósea.
Los osteoclastos normales adyacentes a la célula de mieloma, a su
vez, producen IL-6, que lleva a un crecimiento y
proliferación de células de mieloma. Las células de mieloma se
expanden en un modo clonal y ocupan espacios que están siendo
creados por una resorción ósea inapropiada. El tratamiento de un
animal con un antagonista de OPGbp bloquea la activación de
osteoclastos, lo que a su vez lleva a una disminución de la
producción de IL-6 por los osteoclastos, y a una
supresión del crecimiento y/o proliferación de mieloma.
Los antagonistas de OPGbp pueden utilizarse en
solitario para el tratamiento de los estados patológicos que se han
mencionado que tienen como resultado una pérdida de la masa ósea o
en combinación con una cantidad terapéuticamente efectiva de un
agente (anabólico) promotor del crecimiento óseo o un agente
anti-resortivo del hueso entre los que se incluyen
factores morfogénicos óseos designados BMP-1 a
BMP-12, factor-\beta de
crecimiento de transformación y miembros de la familia
TGF-\beta, factores de crecimiento de fibroblasto
FGF-1 a FGF-10, inhibidores de
interleucina-1, inhibidores de
THF-\alpha, hormona paratiroides, prostaglandinas
serie E, bisfosfonatos y minerales potenciadores del hueso, como
flúor y calcio. Los agentes antabólicos incluyen hormona
paratiroides y factor de crecimiento de tipo insulina (IGF),
formando preferiblemente este último agente complejo con una
proteína de unión IGF. Los modos de realización preferibles incluyen
también la combinación de un antagonista OPGbp con un antagonista
de receptor de interleucina-1 (IL-1)
o un antagonista de OPGbp con un receptor TNF soluble, como por
ejemplo receptor-1 de TNF soluble o
receptor-2 de TNF soluble. Un ejemplo de
antagonista de receptor de IL-1 es el que se
describe en WO 89/11540 y un ejemplo receptor-1 de
TNF soluble es el que se describe en WO 98/01555.
Una disminución en la velocidad de resorción
ósea puede llevar a osteopetrosis, un estado patológico marcado por
una densidad ósea excesiva. Los agonistas de OPGbp pueden aumentar
la formación de osteoclasto y la resorción ósea y se administran a
un animal que padece o es susceptible de una disminución en la
resorción ósea y un aumento anormal de la masa ósea.
Las composiciones farmacéuticas de agentes de
unión selectivos de OPGbp entran dentro del marco de la presente
invención. Dichas composiciones comprenden una cantidad terapéutica
o profilácticamente efectiva de un agente de unión selectivo de
OPGbp, como por ejemplo un anticuerpo, o un fragmento, variante,
derivado o fusión del mismo, mezclado con un agente
farmacéuticamente aceptable. En un modo de realización preferible,
las composiciones farmacéuticas comprenden anticuerpos antagonistas
anti-OPGbp que inhiben parcial o completamente al
menos una actividad biológica de OPGbp mezclados con un agente
farmacéuticamente aceptable. Típicamente, los anticuerpos estarán
suficientemente purificados para su administración a un animal.
Los agentes farmacéuticamente aceptables para su
uso en las composiciones de la invención incluyen vehículos,
excipientes, diluyentes, antioxidantes, conservantes, colorantes,
aromatizantes y agentes de dilución, agentes emulsionantes, agentes
de suspensión, disolventes, cargas, agentes de volumen, tampones,
vehículos de suministro, agentes de tonicicidad,
co-disolventes, agentes de humectación, agentes de
formación de complejo, agentes de tamponado, antimicrobianos y
agentes tensioactivos, tal como se conoce dentro de la
especialidad.
Una solución salina tamponada neutra o salina
mezclada con albúmina de suero son ejemplos de vehículos apropiados.
Asimismo se incluyen en las composiciones antioxidantes como ácido
ascórbico; polipéptidos de bajo peso molecular; proteínas, como
albúmina de suero, gelatina o inmunoglobulinas; polímeros hidrófilos
como polivinil pirrolidona; amino ácidos como glicina, glutamina,
asparagina, arginina o lisina; monosacáridos, disacáridos y otros
carbohidratos incluyendo glucosa, manosa o dextrinas, agentes
quelantes, como EDTA; alcoholes de azúcar como manitol o sorbitol;
contraiones de formación de sal como sodio; y/o agentes
tensioactivos no iónicos como Tween, pluronics o polietilen glicol.
Asimismo, a modo de ejemplo, entre los agentes de potenciación de la
tonicidad adecuados se incluyen haluros de metal alcalino
(preferiblemente cloruro de potasio o sodio), manitol, sorbitol y
similares. Entre los conservantes adecuados se incluyen, sin
limitarse sólo a ellos cloruro de benzalconio, trimerosal, alcohol
fenetílico, metil parabeno, propil parabeno, clorohexidina, ácido
sórbico y similares. También se pueden utilizar peróxido de
hidrógeno como conservante. Entre los ejemplos de
co-disolventes adecuados se incluyen glicerina,
propilen glicol, y polietilen glicol. Entre los agentes de formación
de complejo adecuados se incluyen por ejemplo cafeína, polivinil
pirrolidona, beta-ciclodextrina o
hidroxi-propil-beta-ciclodextrina.
Entre los agentes tensioactivos o agentes de humectación adecuados
se incluyen ésteres de sorbitano, polisorbatos como polisorbato 80,
trometamina, lecitina, colesterol, tiloxapal y similares. Los
tampones pueden ser tampones convencionales como acetato, borato,
citrato, fosfato, bicarbonatos, o Tris-HCl. Tampón
acetato que puede tener un pH en torno a 4,0-5,5 y
tampón Tris que puede tener un pH en torno a
7,0-8,5. En Remington's Pharmaceutical
Sciences, 18ª edición, A.R. Gennaro, ed. Mack Publishing
Company, 1990 se exponen otros agentes farmacéuticos
adicionales.
Las composiciones pueden presentarse en forma
líquida o en una forma liofilizada o deshidratada por congelado.
Las formas liofilizadas pueden incluir excipientes como
sacarosa.
Las composiciones de la invención son adecuadas
para administración parenteral. En los modos de realización
preferibles, las composiciones son adecuadas para inyección o
infusión en un animal a través de una ruta asequible para las
personas que trabajan en este campo, como las rutas subcutánea,
intravenosa, intramuscular, intraperitoneal, intracerebral
(intraparenquimal), intracerebroventricular, intramuscular,
intraocular, intraarterial, o intralesionales. Una formulación
parenteral será típicamente una solución acuosa isotónica sin
pirógenos, esterilizada, opcionalmente con contenido en
conservantes farmacéuticamente aceptables.
La formulación farmacéutica óptima puede ser
determinada por las personas especializadas dependiendo de la ruta
de administración pretendida, el formato de suministro y la dosis
deseada.
La invención contempla también otras
formulaciones. Las composiciones farmacéuticas pueden incluir
también preparaciones en partículas de compuestos poliméricos como
poliácido áctico, poliácido glicólico, etc. o la introducción de un
agente de unión selectivo de OPGbp (como por ejemplo un anticuerpo)
en liposomas. Se puede utilizar también un ácido hialurónico, que
puede tener el efecto de promover una duración sostenida en la
circulación. Las composiciones farmacéuticas incluyen también la
formulación de agentes de unión selectivos de OPGbp (como por
ejemplo anticuerpos) con un agente, como por ejemplo microesferas
inyectables, partículas o perlas bio-erosionables,
o liposomas, que proporcionan una liberación sostenida o controlada
del agente de unión selectivo que se puede suministrar después como
una inyección depot. Otros medios adecuados para el suministro
incluyen dispositivos de suministro implantables.
Se puede formular una composición farmacéutica
que comprende un agente de unión selectivo OPGbp (como por ejemplo
un anticuerpo) como un polvo deshidratado para inhalación. Dichas
soluciones para inhalación pueden formularse también en un
propelente licuado para suministro por aerosol. En otra formulación
más, se pueden nebulizar soluciones.
Se contempla asimismo, la posibilidad de
administrar determinadas formulaciones que contienen agentes de
unión selectivos de OPGbp por vía oral. Las formulaciones que se
administran de este modo pueden formularse con o sin los vehículos
que se utilizan habitualmente en la formación de compuestos de
formas de dosis sólidas, como por ejemplo tabletas y cápsulas. Por
ejemplo, se pueden diseñar cápsulas para liberar la porción activa
de la formulación en un punto del tracto gastrointestinal en el que
se aumenta al máximo la biodisponibilidad y se reduce al mínimo la
degradación pre-sistémica. Se pueden incluir agentes
adicionales para facilitar la absorción de un agente de unión
selectivo. Asimismo, se pueden emplear diluyentes, aromatizantes,
ceras de bajo punto de fusión, aceites vegetales, lubricantes,
agentes de suspensión, agentes de disgregación de tabletas y
aglutinantes.
Otras preparaciones pueden incluir una cantidad
efectiva de un agente de unión selectivo de OPGbp en una mezcla de
excipientes no tóxicos como los que son adecuados para la
fabricación de tabletas. Al disolver las tabletas en agua
esterilizada, u otro vehículo apropiado, se pueden preparar
soluciones en formas de dosis unitarias. Entre los excipientes
adecuados se incluyen, sin limitarse sólo a ellos, diluyentes
inertes, como carbonato cálcico, carbonato o bicarbonato sódico,
lactosa, o fosfato de calcio; o agentes de unión, como almidón,
gelatina o acacia; o agentes lubricantes como estearato de
magnesio, ácido esteárico o talco.
Otras formulaciones serán evidentes para las
personas especializadas en este campo, incluyendo formulaciones que
implican agentes de unión selectivos de OPGbp en combinación con uno
o más agentes terapéuticos. Las técnicas para la formulación de
distintos medios de suministro controlado o sostenido, como
vehículos de liposoma, micropartículas
bio-erosionables, o perlas porosas e inyecciones
depot, también son conocidas entre las personas especializadas en
este campo. Ver por ejemplo, Supersaxo y cols., Description of
controlled release porous polymeric microparticles for delivery of
pharmaceutical compositions (Ver WO 93/15722 (PCT/US93/00829).
Independientemente de la manera de
administración, la dosis específica puede calcularse con arreglo al
peso corporal, el área superficial del cuerpo o el tamaño del
órgano. Asimismo, el refinamiento de los cálculos necesarios para
determinar la dosis apropiada para el tratamiento en relación con
las formulaciones antes mencionadas es el realizado de forma
rutinaria por las personas especializadas en este campo y entra
dentro del ámbito de las tareas que llevan a cabo rutinariamente.
Las dosis apropiadas pueden determinarse a través del uso de los
datos de respuesta a dosis apropiados.
Asimismo, se pueden administrar las
composiciones farmacéuticas de la presente invención a través de la
administración pulmonar, v.g., v.g, PCT WO 94/200069, en la que se
describe el suministro pulmonar de proteínas químicamente
modificadas. Para el suministro pulmonar el tamaño de partícula
deberá ser el adecuado para el suministro en el pulmón distal. Por
ejemplo, el tamaño de partícula deberá estar comprendido entre 1
\mum y 5 \mum, si bien se pueden utilizar partículas más
grandes, como por ejemplo, cuando la partícula es bastante
porosa.
Alternativamente o adicionalmente, las
composiciones se pueden administrar localmente por implante en el
área afectada de una membrana, de una esponja u otro material
apropiado en el que se ha absorbido o en el que está encapsulado el
agente de unión selectivo de OPGbp. Cuando se utiliza un dispositivo
de implante, dicho dispositivo puede implantarse en cualquier
tejido u órgano adecuado, y el suministro del agente de unión
selectivo de OPGbp puede ser directo a través del dispositivo a
través de un bolo, o a través de administración continua, o a
través de un catéter utilizando infusión continua.
Las composiciones farmacéuticas de la invención
se pueden administrar también en una formulación o preparación de
liberación sostenida. Entre los ejemplos de preparaciones de
liberación sostenida se incluyen matrices de polímero
semi-permeables en forma de artículos moldeados,
v.g., películas o microcápsulas. Las matrices de liberación
sostenida incluyen poliésteres, hidrogeles, poliactidas (ver, v.g.,
patente EE.UU. Nº 3.773.919, EP 58.481), copolímeros de ácido
L-glutámico y gamma
etil-L-glutamato (Sidman y cols.,
Biopolymers, 22: 547-556 [1983]),
poli(metacrilato de 2-hidroxietilo) (Langer y
cols., J. Biomed. Mater. Res., 15: 167-277 y
Langer Chem. Thech.; 12: 98-105 [1982]),
acetato de etilen vilnilo, o ácido
poli-D(-)-3-hidroxibutírico.
Las composiciones de liberación sostenida pueden incluir también
liposomas, y se pueden preparar a través de cualquiera de los
diversos métodos conocidos en la especialidad. Ver v.g., Eppstein y
cols., Proc. Natl. Acad. Sci. EE.UU. 82:
3688-3692 (1985); EP 36.676; EP 88.046 y EP
143.949.
143.949.
Los agentes de unión selectivos de OPGbp, como
anticuerpos y fragmentos, variantes, derivados y fusiones de los
mismos, pueden emplearse en solitario o combinados con otras
composiciones farmacéuticas. Por ejemplo, se pueden utilizar
composiciones farmacéuticas que comprenden por separado o en
combinación un antagonista de OPGbp y un antagonista de receptor de
interleucina-1, un antagonista de OPGbp y un
receptor-1 de TNF soluble, o un antagonista de
OPGbp y un receptor-2 TNF soluble para el
tratamiento de artritis reumatoide. Por otra parte, se pueden
utilizar composiciones que comprenden por separado o en combinación
un antagonista de OPGbp y un agente de terapia contra el cáncer
para el tratamiento de cáncer y pérdida de masa ósea asociada. Son
posibles otras combinaciones con un antagonista o agonista de OPGbp
dependiendo del estado patológico que se esté tratando.
Puede ser deseable en algunos casos utilizar una
composición farmacéutica que comprenda las composiciones de agente
de unión selectivo de OPGbp de una manera ex vivo. En este
caso, se exponen las células, tejidos u órganos que han sido
extirpados del paciente a composiciones farmacéuticas que comprenden
agentes de unión selectivos de OPGbp, tras lo cual se vuelven a
implantar en el paciente las células, tejidos y/o órganos
posteriormente.
En otros casos, se puede suministrar una
composición que comprende un agente de unión selectivo de OPGbp a
través del implante en ciertas células del paciente que han sido
obtenidas por ingeniería genética, utilizando métodos como los que
se describen aquí, para expresar y secretar los polipéptidos,
agentes de unión selectivos, fragmentos, variantes o derivados.
Dichas células pueden ser células animales o humanas, y pueden
suministrarse desde el propio tejido del paciente o desde otra
fuente, ya sea humana o no humana. Opcionalmente, se pueden
inmortalizar las células. No obstante, para disminuir la posibilidad
de una respuesta inmunológica, es preferible que las células estén
encapsuladas para evitar la infiltración de los tejidos
circundantes. Los materiales de encapsulado consisten típicamente
en cubiertas o membranas poliméricas semi-permeables
biocompatibles que permiten la liberación del producto(s) de
proteína para prevenir la destrucción de las células a través del
sistema inmune del paciente o a través de otros factores negativos
de los tejidos de alrededor.
Los métodos utilizados para el encapsulado de
membrana de las células son conocidas para las personas
especializadas en este campo y la preparación de las células
encapsuladas y su implantación en pacientes pueden realizarse sin
un experimentación indebida. Ver. v.g., patentes EE.UU. Nº
4.892.538; 5.011.472; y 5.106.627. En PCT WO 91/10425 (Aebischer y
cols.) se describe un sistema de encapsulado de células vivas. Las
técnicas para formular otros medios de suministro sostenido o
controlado diversos, como vehículos de liposoma, partículas o perlas
bio-erosionables, también son conocidas entre las
personas especializadas en este campo, y están descritas. Las
células, con o sin encapsulado, pueden implantarse en tejidos u
órganos del cuerpo del paciente adecuados.
Una cantidad terapéutica o profilácticamente
efectiva de una composición farmacéutica que comprende un agente de
unión selectivo de OPGbp (como por ejemplo un anticuerpo
anti-OPGbp, o fragmento, variante, derivado o
fusión del mismo), dependerá por ejemplo de los objetivos
terapéuticos, como la indicación para la que se está utilizando la
composición, la ruta de administración y el estado del sujeto. Los
anticuerpos o dominios de unión a antígeno antagonistas de OPGbp de
la invención se administran en una cantidad terapéutica o
profilácticamente efectiva para prevenir y/o tratar pérdida de
hueso asociada a enfermedad ósea metastática. Una "cantidad
terapéutica o profilácticamente efectiva" de un anticuerpo
antagonista de OPGbp es la cantidad que reduce la velocidad y/o
extensión de la pérdida de masa ósea o que previene la pérdida de la
masa ósea en un sujeto que tiene una masa ósea normal. Los cambios
en la masa ósea se detectan a través de una serie de métodos
conocidos como absorptiometría de fotón único (SPA),
absorptiometría de fotón dual (DPA), absorptiometría de rayos X de
energía dual (DEXA), tomografía computada cuantitativa (QCT) y
ultrasonografía (ver Johnston y cols., en Primer on the Metabolic
Bone Disease and Disorderse of Mineral Metabolism, 2ª ed. M. J.
Favus, ed. Raven Press pp. 137-146). Las personas
especializadas en este campo pueden aplicar estos métodos para
determinar una cantidad terapéuticamente efectiva de un polipéptido
de fusión de OPG. Una cantidad terapéuticamente efectiva también
puede determinarse midiendo los cambios en los marcadores
bioquímicos para el recambio óseo, como por ejemplo osteocalcina de
suero, fosfatasa alcalina de suero, péptidos de extensión de
procolágeno I de suero, telopéptido de colágeno
C-terminal o N-terminal de suero o
urinario, calcio urinario, hidroxiprolina, piridinolina urinaria y
desoxipiridinolina. Generalmente, se reconoce que una disminución
de los niveles de los marcadores bioquímicos que se han mencionado
indica que se está reduciendo la resorción ósea y que se está
disminuyendo la pérdida de masa ósea. Alternativamente, se puede
determinar también una cantidad terapéuticamente efectiva de un
polipéptido de fusión de OPG midiendo un cambio en la resistencia
mecánica del hueso, en particular un aumento de la resistencia de
torsión (retorcimiento) del hueso.
Por consiguiente, puede ser necesario que la
persona encargada valore la dosis y modifique la ruta de
administración según sea necesario para obtener el efecto
terapéutico óptimo. Una dosis típica puede oscilar entre
aproximadamente 0,1 \mug/kg y hasta aproximadamente 100 mg/kg o
más, dependiendo de los factores que se han mencionado antes. En
otros modos de realización, la dosis puede oscilar entre 1 \mug/kg
hasta aproximadamente 100 mg/kg; o 5 \mug/kg hasta
aproximadamente 100 mg/kg; o 0,1 \mug/kg hasta aproximadamente 100
mg/kg; o 1 \mug/kg y hasta aproximadamente 100 mg/kg.
Típicamente, el especialista clínico administrará la composición
hasta alcanzar la dosis con la que se consiga el efecto deseado. La
composición puede administrarse por lo tanto como una dosis única,
o como dos o más dosis (que pueden contener o no la misma cantidad
de agente de unión selectivo de OPGbp) a lo largo del tiempo, o
como una infusión continua a través de un dispositivo de
implantación o un catéter.
Los ejemplos que se exponen a continuación
sirven para ilustrar mejor la invención, si bien no deben
considerarse como limitativos del marco de la misma, que se define
en las reivindicaciones.
La diana de detección selectiva utilizada en
estos estudios fue preparada a partir de la expresión de ADNc que
codifica OPGbp humana de 140 a 317 aminoácidos inclusive, tal como
se muestra en la figura 4 de PCT WO 98/46751 en una célula huésped
CHO y se purificó del siguiente modo. Se equilibró una columna de
Sefarosa Q (Pharmacia) con Tris 20 mM, pH 8,5. Se aplicó medio
acondicionado que había sido valorado también a un pH 8,5, se lavó
la columna con tampón Tris y se eluyeron las proteínas con un
gradiente NaCl 100-600 mM sobre 20 volúmenes de
columna. Se identificaron fracciones que contenían OPGL a través de
SDS-PAGE y análisis de mancha de Western. A
continuación, se valoraron fracciones que contenían OPGbp a un pH
4,8 y se aplicaron a una columna Sp (Pharmacia) que había sido
equilibrada con acetato sódico 20 mM, pH 4,8. Después del lavado,
se eluyeron las proteínas con gradiente de NaCl
0-0,3 M, seguido de etapas de NaCl 0,5 M y 1M. Se
eluyó OPGpb con todos los tampones, aunque solamente se encontraron
activas las fracciones de gradiente de NaCl 0-0,3 M
en los bioensayos de estimulación de osteoclasto in vitro. El
rendimiento fue 40 mg/l. El secuenciado
amino-terminal reveló que aproximadamente un 80% de
la proteína purificada empezaba con el aminoácido 143 de OPGbp
humana, mientras que el 20% restante comenzaba con el aminoácido
147. El producto final utilizado para la detección selectiva de
bibliotecas de fagos recibe el nombre de
OPGbp[143-317], la forma purificada
predominante.
Se prepararon anticuerpos policlonales
anti-OPGbp del siguiente modo. Se inyectaron
inicialmente en tres conejos neozelandeses blancos (Western Oregon
Rabbit co., Philomath, OR) cantidades iguales de Hunter Titer Max
(CytRx Corp., Altanta, GA) y OPGbp[143-317].
Se inyectaron 0,2 mg por conejo. Se repitió la misma operación
cuatro y seis semanas después. Se realizó extracción de 50 ml de
sangre a las siete semanas y una vez a la semana después con un
total de seis sangrados. Se purificaron por afinidad los anticuerpos
desde el suero de conejos inmunizados en una resina de OpGbp del
siguiente modo. Se añadieron 3 ml de resina Actigel Ald (Sterogene)
a una columna de 10 ml (Kontes Fex Colum) y se lavaron con 50 ml de
PBS. Se añadieron 3 mg de OPGbp[143-317]
diluidos en 3 ml de PBS a la columna de Actigel y se agitó
suavemente para su mezclado. Se añadieron 0,6 ml de
cianoborohidruro de Na 1 M y después se agitó la mezcla durante toda
la noche a 4ºC. Se lavó la columina con 50 ml de tampón de elución
Pierce Gentle (Pierce) seguido de 150 ml de PBS. Se filtraron para
esterilización 50 ml de sueros de conejos inmunizados a través de
un filtro de 0,45 \mum, se añadieron a la columna y se agitó la
mezcla durante toda la noche a 4ºC. Al día siguiente, se dejó en
reposo el contenido de la columna y se drenó la fase líquida. A
continuación, se lavó la columna con 150 ml de PBS hasta un
OD_{280} de 0,002. A continuación, se añadió tampón de elución
Pierce Gentle con 1% de ácido acético glaciar al 1% a la columna y
se recogieron fracciones de 1 ml a intervalos de 10 minutos y se
analizaron según OD_{280}. Se distribuyeron las fracciones que
contenían la cantidad más alta de material de absorción OD_{280} y
se dializaron contra dos litros de PBS durante 48 horas. Se produjo
un cambio de tampón durante este tiempo.
Se llevaron a cabo los ensayos ELISA en
distribuciones de fago eluidos colocando en placa
OPGbp[143-317] a 1,5 \mug/ml en PBS, pH
8,0 durante 1 horas a temperatura ambiente, en inmunoplacas Nunc
Maxisopr en una batidora. Se añadió una solución de enjuagado de
MPBS 2% (Tampón de bloqueo) a las inmunoplacas, se incubaron
durante 3 minutos a temperatura ambiente y se descartaron. Se llevó
a cabo el bloqueo durante 1 hora a temperatura ambiente con MPBS al
2%. Se realizaron lavados 5 x utilizando
TBS-Tween-20 (0,1%) (TBS; Solución
salina tamponada Tris; Tris-HCl 10 mM (pH 7,5),
EDTA 1 mM, NaCl 150 mM). Se añadió una valoración de fago utilizando
un mínimo de 10^{10} fagos/pocillo en tampón de dilución
conjugado (0,4% leche deshidratada sin grasa en TBS o 0,4%
M-TBS) durante 1 hora a temperatura ambiente. Se
realizaron los lavados utilizando
TBS-Tween-20 (0,1%. Se utilizó
conjugado de anticuerpo monoclonal peroxidasa de rábano picante
(HRP) anti-M13 (Pharmacia Piscataway, NJ) en una
dilución 1/2000 en MTBS al 0,4% durante 1,5 horas a temperatura
ambiente. Se llevaron a cabo los lavados 5 veces con
TBS-Tween-20 (0,1%). Se añadió ácido
2,2'-azinobis(3-etilbenztiazolina-sulfónico
(ABTS) (Pierce, Rockford, IL) una sustrato colorimétrico para
detección a OD_{405}. Se llevaron a cabo los controles positivos
para la detección de huOPG bp [143-317] en placa por
adición de OPG[22-194]-Fc,
seguido de fosfatasa
anti-Fc-alcalina y sustrato
para-nitrofenilfenol (pNPP) para la detección.
Se llevó a cabo una reacción en cadena de
polimerasa típica (PCR) en una placa Thermowell de 96 pocillos.
Cada pocillo contenía 20 \mul de una mezcla de reacción PCR (2
\mul 10 x tampón PCR (Gibco BRL Products, Grand Island, NY), 17,3
\mul de agua, 0,2 \mul dNTPs (25 mM), 0,2 \mul Primer
870-02, 0,2 \mul cebador 2182-83
(reservas de cebador 10 pmoles/\mul para amplificación por
inserto), 0,1 \mul de polimerasa Taq]. Se recogieron colonias
individuales y se resuspendieron en un pocillo y se superpusieron 20
\mul de aceite mineral, se sellaron y después se colocaron en una
máquina PCR.
870-02 | 5'-CCG ACT TTG CAC CTA GTT | (SEQ ID NO: 22) |
2182-83 | 5'-TTT GTC GTC TTT CCA GAC GTT AGT | (SEQ ID NO: 23) |
Se generó una placa por duplicado para preparar
cultivos transfiriendo la misma colonia recogida a la posición de
pocillo correspondiente en un segundo bloque de 96 pocillos
profundos. Se dejaron crecer los cultivos en 0,3 a 1,0 ml 2 x
TY-AG (caldo de cultivo 2x TY (16 g
bacto-triptona/litro de agua, 10 g extracto de
levadura/litro de agua, 5 g NaCl/litro de agua), con un contenido de
100 \mug/ml de amplicilina y 2% de glucosa). Se selló el bloque
con una cinta adhesiva permeable al aire, se centrifugó a 1000 rpm
durante 2 minutos para que bajara el líquido, y se incubó a 37ºC a
300 a 350 rpm durante toda la noche para el cultivo. Los cultivos
de toda la noche recibieron 150 \mul/pocillo de 50% glicerol, se
mezclaron y se congelaron a -80ºC.
Las condiciones de reacción PCR fueron 40 ciclos
de 45 segundos, a 90ºC, 45 segundos a 55ºC, 1,5 minutos a 72ºC,
seguido de 72ºC de extensión durante 10 minutos. Una vez completada
la reacción PCR, se hicieron correr 2,5 a 4,0 \mul sobre geles de
agarosa al 1% de 25-pocillos con 0,5 \mul/ml de
bromuro de etidio, utilizando patrones de peso molecular de ADN
(Gibco BRL Products, Grand Island, NY, o Stratagene, La Jolla, CA)
durante 90 minutos a 90 voltios. Se consideraron solamente insertos
de longitud total de más de 1,6 kb.
Se digirieron con BstNI partes alícuotas de 16
\mul de reacciones PCR durante 3 horas a 60ºC con una mezcla de
digestión total de 30 \mul que contenía 10 \mul de agua, 3
\mul de 10X tampón 2 React (GIBCO BRL products), 0,3 \mul BSA
(10 mg/ml), 0,7 \mul BstNI (GIBCO: 10.000 unidades/ml). Se
hicieron correr las muestras digeridas en geles de agarosa al 3% de
25-pocillos durante 3,5 horas a 80 voltios.
Se mezclaron varias concentraciones de muestras
de ensayo Fab con una cantidad constante de OPGBp
[143-317] humana y se incubaron durante al menos
una hora a temperatura ambiente en DMEM, suero bovino fetal al 10%
y 1 x mezcla de
glutamina-penicilina-estreptomicina.
Se indican las concentraciones de muestras Fab y OPGbp para cada
experimento. Tras la incubación, se añadió la mezcla a 2 x 10^{4}
células RAW 246,7/pocillo (American Type Cultive Collection,
Manassas, VA, Accession Nº TIB-71) en una placa de
cultivo de tejido de fondo plano de 96 pocillos. Se cultivaron las
células RAW en DMEM con suero bovino fetal al 10% y 1 x
glutamina-penicilina-estreptomicina.
Al cabo de tres días a 37ºC y CO_{2} al 5%, se aspiró el medio
desde los pocillos y se mancharon las células para determinar la
fosfatasa ácida resistente a tartrato (TRAP), un marcador de
diferenciación de osteoclasto, por adición de 100 \mul por
pocillo de tampón citrato 0,1 M con Tritón X-100 al
0,1%, incubación durante 5 minutos a temperatura ambiente, adición
de sustrato de paranitrofenilfosfato (pNPP) y tartrato en tampón
citrato que contenía Triton X-100 (la concentración
de sustrato fue 20 mM pNPP y 335 mM tartrato) e incubación durante
5 minutos más a temperatura ambiente. Se detuvo la reacción por
adición de NaOH hasta una concentración de 0,05 M. La fosfatasa
ácida convierte el sustrato pNPP en para-nitrofenol
que se detecta por absorbancia a 405 nm. Se trazó el gráfico del
cambio de absorbancia a 405 nm en función del log de dosis para los
controles y las muestras de ensayo. Se calculó un análisis de
varianza (ANOVA) y potencia relativa con un límite de confianza del
95%. Los controles positivos incluyeron diferentes concentraciones
de proteína de fusión OPG
[22-194]-Fc o una preparación de
anticuerpo policlonal anti-OPGbp preincubada con
OPGbp [143-317] e incubada con células RAW 264,7
tal como se ha descrito antes.
Se llevó a cabo un ensayo de la médula ósea
murínica para la determinar la formación de osteoclasto,
esencialmente, tal como describe Lacey y cols. (Cell 93,
165-176 (1988)) y Kong y cols., (Nature, 397,
315-323 (1999)). Brevemente, el ensayo es una
modificación del ensayo de co-cultivo de médula ósea
murínica descrito en PCT WO 97/23614 en el que se cultivaron
células de médula ósea murínicas no-adherentes en
medio durante siete días en presencia de OPGbp humana
(143-317), pero sin adición de la línea celular de
estroma ST2, 1,25 (OH)_{2} vitamina D3 y dexametasona. Se
detectaron las células que tenían un fenotipo de osteoclasto según
la presencia de células TRAP-positivas. Se midió la
actividad TRAP en solución y por manchado histoquímico.
Para la detección de la actividad TRAP en
solución, se lisaron las células de la médula ósea adultas en tampón
citrato 100 mM (Sigma, Cat # 91-5) + 0,1% Triton
X-100, pH 5,0, 3-5 minutos. Se
añadieron pNPP 20 mM, tartrato 80 mM y citrato 100 mM + Tritón 0,1%
X-100, pH 5,0 y se incubaron a temperatura ambiente
durante 3-5 minutos y se midieron a 405 nm después
de detener la reacción con 50 \mul de 500 mM NaOH/pocillo. Una
respuesta positiva fue una disminución de la absorbancia
dependiente de la concentración a 450 nm desde \sim2,0 OD a
\sim0,6 OD.
Para el manchado histoquímico, se fijaron las
células en una solución fijadora a base de formaldehído, después se
mancharon con Fast Garnet GBC (solución
2-metil-4-[(2-metilfenil)-azo]bencenodiazonio)
+ solución fosfato Naftol AS-BI
(C_{18}H_{25}BrNO_{6}P) + solución acetato + solución
tartrato), se incubó durante 1 hora a 37ºC, después se enjuagó, se
secó y se evaluó con el microscopio. Se consideró que una célula que
era TRAP positiva y contenía tres o más núcleos (MNC
TRAP-positiva) era una célula osteoclástica.
Se obtuvo una biblioteca de aproximadamente 4 x
10^{10} fragmentos Fab humanos únicos en bacteriofago M13 de
Target Quest, NV (Amsterdam, Países Bajos). Los procedimientos
generales para la construcción y detección selectiva de bibliotecas
Fab humanos se describe en Haard y cols. (Advanced Drug Delivery
Reviews 31, 5-31 (1998); J. Biol. Chem.
274, 18218-18230 (1999). Se realizó la
detección selectiva de la biblioteca para los fragmentos Fab que se
unen a OPGbp [143-317] siguiendo los procedimientos
que se indican a continuación.
Se inmovilizó OPGbp [143-317]
tal como se ha descrito anteriormente en una fase sólida utilizando
tubos de inmunoensayo Nunc Maxisorb (12 x 75 mm, capacidad 5 ml)
por depósito directo en la fase sólida a una concentración de
proteína de 1,5 \mug/ml en TBS, pH 8,0 (TBS es solución salina
tamponada con Tris: Tris 10 mM (pH 7,5), NaCl 150 mM) a temperatura
ambiente durante 2 horas. Estas condiciones permitieron un 80% de
deposito máximo de la fase sólida en 2 horas (máximo en 2 horas
seguía no saturado) al mismo tiempo que se retenían las capacidades
de unión a OPG [22-194]-Fc. Al cabo
de 2 horas de incubación, se lavó el tubo tres veces con PBS. Se
bloqueó la diana depositada rellenando el tubo de inmunoensayo con
leche deshidratada no grasa al 2% (Marvel o Carnation) en PBS
(MPBS) durante 1 a 4 horas a temperatura ambiente, se lavó dos
veces, cada una de ellas en PBS-Tween 20 (0,1%) y
PBS. Se pre-bloquearon los fagos concentrados con
PEG (aproximadamente 10^{13}) en MPBS al 2% para absorber el fago
de unión a leche antes de la exposición del fago a la diana en fase
sólida. Se incubaron los fagos pre-bloqueados en 4
ml con la diana depositada a temperatura ambiente durante 2 horas
(30 minutos de rotación transversal
("end-over-end") y 90 minutos
de reposo). Se lavó el contenido unido al tubo 20 veces con
PBS-Tween 20 (0,1%) y 20 veces con PBS para eliminar
el fago sin unir y reducir la unión no específica. Se eluyeron los
fagos desde la fase sólida con de elución de fagos total de diez
minutos con 1 ml de trietilamina 100 mM (TEA) pH 12, rotación del
tubo longitudinal (end-to-end),
seguido de neutralización con 0,5 ml de 1 M
Tris-HCl pH 7,4. Alternativamente, se recuperaron
ligadores de fago específicos por elución con 1 ml de 1 uM
OPGbp[143-317] o 1 uM
OPG[22-194]-Fc en 0,4% MPBS,
pH 8,0 o pH 7,4, respectivamente.
Se valoraron los fagos eluidos (ligadores) sobre
cepa TG1 de E. coli (Pharmacia, Piscataway, NJ.). Se llevó a
cabo la valoración por duplicado según una modificación del método
"Dilución continua" (Huycke y cols., BioTechniques 23,
648-650 (1997)) con 10 \mul de dilución de fago en
caldo de cultivo 2x TY en 90 ul de células TG1 en fase log (A600,
0,2 a 1,0 ODs, se mezclaron y se incubaron 20-30
minutos a temperatura ambiente. Se vetearon horizontalmente 10
\mul en una línea, 6 líneas por cada placa petri cuadrada
2xTY-AG (caldo de cultivo 2xTY, que contenía 2% de
glucosa, 100 \mul/ml ampicilina y 15 g/litro agar), y se incubó
durante toda la noche a 37ºC.
Se amplificaron los fagos eluidos (aglutinantes)
a través de la infección bacteriana en células TG1. Se inocularon
en 25 ml de caldo de cultivo 2 x TY células TG1 de E. coli y
se cultivaron a 30ºC durante más de 12 horas, 270 rpm. Se inoculó
el cultivo durante toda la noche 1:100 con 50 ml de caldo de cultivo
2x TY caldo de cultivo, y se desarrolló \sim1,5 horas, 270 rpm
hasta un OD_{600} de 0,5. Para la amplificación de fago
seleccionado, se añadieron 5 volúmenes de células TG1 de E.
coli exponenciales, 4 volúmenes de caldo 2xTY y 1 volumen de
fago eluido (neutralizado) en combinación y se incubó en un baño de
agua a 37ºC durante 30 minutos. Para reducir el volumen para el
depósito, se centrifugaron las células a 4.000 rpm y se resuspendió
el aglomerado en caldo de cultivo 2 x TY-AG (100
ug/ml ampicilina, 2% glucosa). En la primera vuelta de selección, se
depositó la muestra en dos a cuatro placas 16 cm^{2} 2 x
TT-G (caldo de cultivo 2 x TY que contenía 2% de
glucosa, 100 ug/ml de ampicilina y 15 g de agar) para mantener la
diversidad. Para las últimas vueltas de selección, fue suficiente
una placa. Se incubaron las placas durante toda la noche a 30ºC.
Después de un crecimiento durante toda la noche, se añadieron 5 ml
de 2xTG-AG a cada placa grande, y se rasparon las
bacterias para soltarlas con un dispersador esterilizado. Una vez
completada la resuspensión y la concentración por centrifugado a
4.000 rpm, 10 minutos, se transfirió una muestra concentrada a un
criotubo Nunc. Se añadió glicerol esterilizado a una concentración
final de 15% y se almacenó inmediatamente a -70ºC.
Se resuspendieron las células amplificadas en
caldo de cultivo 2 x TY-AG hasta \sim0,1 OD y se
desarrolló durante 1,5-2,5 horas a 37ºC, 270 rpm, a
un OD_{600} de 0,5 y se transfirió (5 ml) a un tubo Falcon de 50
ml que contenía una cantidad apropiada de fago ayudador M13K07
(Gibco BRL Products, Grand Island, NY) con una relación de 20 a 1
de fago a bacteria. Se incubó la mezcla de fagos y bacterias a 37ºC
durante 30 minutos sin agitación seguido de centrifugado durante 15
minutos, 3.700 rpm. Se extrajo el sobrenadante y se resuspendió el
aglomerado de bacterias en 25 ml de 2xTY-AK (100
ug/ml ampicilina, 25 ul/ml canamicina) y se transfirió a un matraz
de 250 ml para incubación durante toda la noche a 30ºC con
agitación a 270 rpm. Al día siguiente, se centrifugó el cultivo en
un tubo Falcon de 50 ml durante 20 minutos a 3.700 rpm para
aglomerar las bacterias. Se añadió al sobrenandante 1/5 del volumen
de una solución de polietilen glicol (PEG) (20% PEG 8000, 2,5 M
NaCl) y se mantuvo sobre hielo durante al menos 1 hora. Se
aglomeraron los fagos durante 20 minutos, 3.700 rpm a 4ºC. Se
descartó el sobrenadante y se resuspendió el aglomerado en \sim1,0
ml de PBS esterilizado y se transfirió a un tubo Eppendorf de 1,5
ml. Se microcentrifugó la muestra 2 minutos, \sim14.000 rpm para
eliminar el resto de las bacterias y se transfirió el sobrenadante
a un nuevo tubo. Se repitió el precipitado de PEG. Se utilizaron
los fagos precipitados con PEG concentrados en los ensayos de
selección o detección selectiva. El rendimiento normal fue
aproximadamente 1-5 x 10^{13} fago desde un
cultivo de 25 ml. Para un almacenamiento más prolongado, se añadió
glicerol al fago (15% de concentración final) y se almacenaron los
fagos a -70ºC.
En este procedimiento se describe una ronda de
detección selectiva que comprende las etapas de unión, elución y
amplificación. Típicamente, se llevaron a cabo de tres a cinco
rondas de detección selectiva con el fin de obtener una
distribución de fagos eluidos que se unen a OPGbp
[143-317] en un ensayo ELISA a un nivel al menos
cuatro veces mayor con respecto al fondo. Una vez completada la
detección selectiva, se depositaron en placa los fagos eluidos
finales para colonias individuales y se analizó el ADN insertado por
PCR de colonia y digestión con BstNI tal como se describe a
continuación.
Se bloquearon previamente los fagos durante 60
minutos en un rotador a temperatura ambiente en MPBS al 2%. Se
añadió bucle b-b' de OPGbp biotinilado (500 nM)
directamente a la mezcla de fagos equilibrada y se incubó durante
30 minutos a 1 hora en un rotador (transversal) a temperatura
ambiente. El péptido de bucle tenía la secuencia
[biotina[LC]-TDIPSGSHKVSLSSWYHDRG] (SEQ ID
NO: 24) en la que se utilizó LC (cadena lineal, es decir
(CH_{2})_{5}-NH_{2}) para unir la
secuencia de bucle b-b' OPGbp con biotina. Se
utilizaron perlas Dynabead revestidas con estreptavidina (100
\mul por selección en tubos Eppendorf de 1,5 ml) para la captura
en fase solución de complejos antígeno
biotinilado-fago (3 x para selección de antígeno
negativo, y 1X para selección de antígeno diana). Se
pre-equilibraron las perlas recubiertas con
estreptavidina arrastrándolas hacia un lado del tubo utilizando un
imán Dynal, se separó el tampón y se resuspendieron las perlas en 1
ml de MPBs al 2%. El equilibrio a temperatura ambiente fue 1 a 2
horas en un rotador transversal.
Se realizaron tres selecciones negativas en las
rondas 2 y 3. Para la selección negativa, se añadieron fagos
preobloqueados a un tubo de perlas Dynabeads revestidas con
estreptavidina pre-equilibradas en MPBS al 2% y se
incubaron durante 30 minutos en un rotador transversal a temperatura
ambiente (se repitió dos veces). Se arrastraron las perlas a un
lado y se transfirieron los fagos sin unir a un tubo Eppendorf nuevo
para su utilización para la selección de antígeno. Se añadió
péptido de bucle b-b' huOPGbp biotinilado (500 nM)
directamente a la mezcla de fagos equilibrada y se incubó durante
30 minutos a 1 hora en un rotador transversal a temperatura
ambiente. Se arrastraron perlas equilibradas a un lado del tubo, se
separó el tampón y se resuspendió con la mezcla de péptido
biotinilado-fago seguido de incubación durante 15
minutos en un rotador transversal a temperatura ambiente. Se
colocaron los tubos en una rejilla magnética durante 1 minuto, se
aspiraron y se lavaron las perlas 6x con 1 ml de 2%
MPBS-Tween-20 (0,1%), 6 x de 1 ml de
PBS-Tween-20 (0,1%) y 2 x con 1 ml
de PBS. Se eluyeron los fagos con 1 ml de TEA 100 mM, pH 12 durante
5-10 minutos en un rotador a temperatura ambiente,
seguido de neutralización con 0,5 ml de Tris-HCl 1
M, pH 7,4.
Se infectaron células TG1 de E. coli con
la distribución de fagos de una ronda de respuesta a ELISA y se
recogieron colonias individuales para el análisis PCR. Típicamente,
se recogieron de una a cuatro placas de las 96 colonias para cada
selección. Se amplificaron los ADNc de Fab por PCR con un grupo
específico de cebadores y se analizaron en un gel de agarosa para
determinar la longitud del inserto Fab. El inserto Fab tiene una
longitud de > 1,6 Kb de longitud completa. Se digirieron también
ADNc con la enzima de restricción BstNI y se analizó el patrón de
banda por electroforesis en geles de agarosa. Los clones que
presentaron insertos de longitud completa PCR de tamaño idéntico y
patrones de banda BstNI idénticos en dos o más aislados fueron
candidatos para otros análisis. Utilizando los criterios
mencionados, se identificaron los siguientes Fabs.
Se identificó el patrón "P" de Fab tras la
detección selectiva en fase solución utilizando tres rondas de
elución con trietilamina, pH 12, seguido de la detección selectiva
en fase sólida, tal como se ha descrito antes utilizando una ronda
de elución con 1 uM OPGbp [143-317].
Se identificó el patrón "S" de Fab por
detección selectiva en fase solución utilizando tres rondas de
elución con trietilamina, pH 12, seguido de detección selectiva en
fase sólida tal como se ha descrito antes utilizando dos rondas de
elución con 1 uM de
OPG[22-194]-Fc.
Se identificó el patrón "AT" de Fab por
detección selectiva en fase sólida tal como se ha descrito antes
utilizando cuatro rondas de elución con 1 uM
OPG[22-194]-Fc.
Se identificó el patrón "Y" de Fab por
detección selectiva en fase sólida tal como se ha descrito
utilizando tres rondas de elución con
OPGbp[143-317].
Se prepararon los fagos para colonias
individuales que presentaban los patrones AT, Y, P y S de Fab a
través del siguiente procedimiento. Se realizaron las
preparaciones de plasmidio y se transformaron en células TG1. Los
análisis de PCR confirmaron la transformación de un inserto de
longitud completa. Se desarrollaron las células tanto en un bloque
de pocillo profundo (0,5 ml de volumen) como en un cultivo de 10 ml.
Se rescataron los fagos por infección en una relación 20:1 de fago
ayudador M13K07/células, se hicieron precipitar en PEG 1 vez (como
en el protocolo de depósito en placa directo en fase sólida) y se
resuspendieron en \sim 200 ul desde un bloque de pocillo profundo
de tamaño de pocillo de 2 ml o \sim500 ul desde el cultivo de 10
ml en PBS.
Las valoraciones de fago fueron en el intervalo
de 10^{11}-10^{14} fago/ml en el ELISA. Se
realizaron las valoraciones en función del volumen utilizando un
máximo de adiciones de 50 \mul/pocillo dando un intervalo típico
de 10^{9}-10^{11} fago pocillo en un ensayo
ELISA. Se llevó a cabo el ensayo ELISA de fago tal como se ha
descrito antes. En el ensayo ELISA se utiliza conjugado
anti-M13-HRP para la detección de
fago unido con ABTs, un sustrato colorimétrico a 405 nm. Un
conjugado anti-M13 HRP fue específico para la
proteína VIII de recubrimiento principal en el fago. Los valores
fueron de determinaciones en un solo punto.
En la figura 1 se muestran los resultados de un
ELISA de un clon representativo para cada uno de los patrones
principales "AT", "Y", "P" y "S". Los cuatro
clones Fab mostraron una reactividad significativa con OPGbp
[143-317]. Se secuenciaron todos los miembros de
clon de los patrones "AT" y "Y" (27 miembros de 672 clones
y 9 miembros de 96 clones, respectivamente) y se encontraron
idénticos dentro de sus patrones. Por lo tanto, los miembros del
patrón serán representativos de todo el patrón para los patrones
"AT" e "Y".
Los patrones "Q" (3 miembros de 96 clones),
"X" (3 miembros de 96 clones) y "AB" (2 miembros de 96
clones) también fueron ELISA positivos para
OPGbp[143-317] en placa según lo determinó un
clon representativo (figura 1). Dado que las señales ELISA fueron
considerablemente más bajas que los patrones "AT", "Y",
"P" y "S" y estaban representados solamente por dos o
tres miembros en los 96 clones, se asumió que tenían Kds en el
intervalo \muM y no se siguieron analizando. El patrón "X"
fue solamente ELISA positivo cuando la concentración de
Tween-20 en los lavados se redujo de 0,1% a
0,01%.
Se infectaron fagos que contenían Fabs
"AT", "Y", "P" y "S" en HB2151 de E. coli
(Pharmacia, Piscataway, NJ) y se indujo la expresión de fragmentos
Fab por adición de IPTG a 1 mM generalmente durante al menos 5
horas, a excepción de que para el patrón Y se redujeron los niveles
de IPTG a 0,25 mM. Tras la inducción, se recogieron las células
(750 ml) por centrifugado y se liberaron los Fabs desde el espacio
periplásmico por choque osmótico.
Se resuspendió el aglomerado total en 8 ml de
TES enfriado con hielo (Tris 0,2 M, EDTA 0,5, sacarosa al 17,1%, pH
8,0), se transfirió a un tubo de 50 ml y se incubó durante 5 a 10
minutos en hielo con agitación suave ocasionalmente. Al mismo
tiempo, se lavaron tubos vacíos con 8,8 ml TES/H_{2}O (1:3) para
recuperar el resto del aglomerado de células y se añadió a las
otras células y se incubó durante otros 20 minutos sobre hielo. Se
centrifugaron las células a 14.000 rpm durante 3 minutos y se
transfirió el sobrenadante desde el aglomerado de células
ligeramente enlodado a otro tubo de 50 ml. Se volvió a centrifugar
el sobrenadante a 14.000 rpm durante 10 minutos a 4ºC para eliminar
la contaminación de células residuales. El sobrenadante recibió el
nombre de fracción periplásmica liberada por TES. Se resuspendió el
aglomerado bacteriano en 10 ml de TES más MgSO_{4} 15 mM, se
incubó en hielo durante 15 minutos y se centrifugó dos veces como en
el caso anterior. El sobrenadante recibió el nombre de fracción
periplásmica liberada con Mg. Se añadió albúmina de suero bovino
(BSA; tipo RIA, Sigma) como vehículo y estabilizante a cada
fracción periplásmica hasta una concentración final de 1 mg/ml y
se dializó durante toda la noche a 4ºC en 2 L con 1 intercambio de
tampón de columna Talon (Tris-HCl 20 mM/NaCl 0,1 M,
pH 8,5) más inhibidores de proteasa a las concentraciones finales,
Pefabloc 0,05 mg/ml, leupeptina 50 nM, aprotinina 0,06 \mug/ml y
pepstatina A 0,9 \mug/ml.
Se sometieron los extractos periplásmicos que
contenían Fab (liberados con TES y Mg) por separado a la unión por
método discontinuo 1 hora agitando a 4ºC con 0,8 ml a 1,5 ml (1/20
del volumen de extracto) de resina Talon
pre-equilibrada (Clontech), a continuación lavado
por método discontinuo en al menos 2 x volúmenes de 20 columnas de
tampón de columna. Se cargó la columna con resina Talon, se lavó con
10 volúmenes de columna de tampón de columna y 2 volúmenes de
columna de tampón columna más 50 mM de imidazol para liberar las
proteínas unidas no específicamente. Se eluyeron Los Fabs
purificadas con 2 a 3 volúmenes de columna de 200 mM de imidazol,
4% de glicerol. A continuación, se concentraron/intercambiaron los
extractos purificados con un Centricon 10 (Amicon, Inc. Beverly,
MA) en PBS, pH 7,4 hasta una concentración final de 0,5 a 5 mg/ml.
Se determinó la pureza de Fab "AT" soluble en un gel Bis Tris
NuPAGE Novex (San Diego, CA) al 10% con tampón de deslizamiento
NuPAGE MOPS SDS (no reductor) y tampón de muestra 4x LDS (pH 8,45).
Se calentaron muestras Fab purificadas que contenían el tampón de
muestra LDS a 70ºC durante 10 minutos y se cargaron con 40 ul/línea.
Se corrió el gel a 200 voltios, 20 minutos, después se redujo a 50
voltios, \sim 1,5 horas, se manchó con Novex Colloidal Coomassie
Blue Stain \sim14 h, y se destiñó. Se determinó Fab "AT"
soluble para que tuviera más de 98% de pureza.
Se analizó la actividad de Fabs "AT" y
"Y" solubles purificadas con los siguientes ensayos.
Se midió la interacción de OPGbp humana
[143-317] y su receptor ODAR en un ensayo de
transferencia de energía por fluorescencia (FRET). Se añadió una
hora de pre-incubación con OPGbp para una mayor
sensibilidad. Se construyó un dominio extracelular soluble de ODAR
humano como polipéptido de fusión con una etiqueta FLAG amino
terminal y una región Fc humana carboxi terminal. La región Fc es
reconocida por y se une a aloficocianina Fc específica
anti-humana de cabra policlonal (APC) que es
detectada por absorbancia a 665 nm. Se etiquetó OPGbp
[143-317]con Eu2 + que fue detectado por
absorbancia a 620 nm. La unión de OPGbp con ODAR en este ensayo
impulsa una transferencia de energía fluorescente y es muy sensible
para curvas de competencia. Una disminución en la relación de
absorbancia A665/A620 indica la inhibición de la unión de OPGbp a
ODAR.
Se observó una inhibición dependiente de
concentración de la unión OPGbp-Eu con
sODAR-Fc para preparaciones por duplicado de Fabs
solubles "AT" y "Y". Fab "AT" soluble (preparación A)
inhibió la unión de OPGbp con la fusión ODAR-Fc
soluble con una IC_{50} de 550 nM. Fab "Y" soluble la inhibió
con una IC_{50} de 6 \muM. El clon de Fab "AT" 1B5 fue del
patrón de 27 miembros predominante desde siete placas de 96 pocillos
(todas con la misma secuencia de aminoácido) obtenidas por elución
desde la diana OPGbp utilizando una solución de 1 \muM
OPG[22-194]-Fc durante 90
minutos. El clon de Fab "Y" 1B4 fue del patrón de 9 miembros
predominante desde una placa de 96 pocillos (todas con la misma
secuencia de aminoácido) desde el tamiz OPGbp depositado en placa
optimizado utilizando una elución de OPGbp 1 \muM durante 90
minutos. Una segunda purificación del clon de Fab "AT" 6F11
(designada preparación B) produjo una IC_{50} similar de 440 nm
para PBS y una IC_{50} de 354 nM para TBS. Una segunda
purificación de Fab "Y" (preparación B) produjo una IC_{50}
similar de 4,1 \muM para TBS. El control positivo fue OPGbp
[143-317] en TBS o PBS con las IC_{50}s
correspondientes de 0,89 y 0,93 nM, respectivamente. De manera
similar, se obtuvieron las IC_{50} con las preparaciones "A"
y "B" por duplicado. Los resultados de la preparación "B"
de Los Fabs "AT" y "Y" en TBS se muestran en la figura
2.
Se purificaron Fabs "AT", "Y" y
"P" solubles como en el ejemplo 4 seguido de dos etapas de
separación de endotoxina sucesivas utilizando una columna de
afinidad de polimixina (\sim1 ml; BioRad, Hercules, CA) en PBS a
temperatura ambiente con arreglo a las instrucciones del
fabricante, a excepción de lo que se señala a continuación. Para
aumentar la probabilidad de eliminación de endotoxina unida a Fab,
tras cada adición de muestra, se reciclaron partes alícuotas de 100
\mul a 150 \mul desde el fondo y la parte superior de la columna
cada 5 minutos durante 2 a 2,5 horas. Se eluyó Fab con 3 volúmenes
de columna de PBS con glicerol al 4%.
Se sometieron a ensayo las muestras para
determinar la endotoxina utilizando el sistema de detección de
E-toxato (lisado de amebocitos de limulus) (Sigma,
St. Louis MO) con arreglo a las instrucciones del fabricante. A
continuación, se esterilizaron por filtración las muestras (0,2
\mum). Se desnaturalizó Fab ``PE tras la purificación y se unió
escasamente a OPGbp [143-317] en un ensayo ELISA. Se
utilizó como control negativo en estos experimentos.
El formato de ensayo incluye una
pre-incubación de 1 hora del Fab
anti-OPGbp con 10 ng/ml de OPGbp humano
[143-317] (concentración de células final por
pocillo). Se llevaron a cabo los ensayos TRAP en solución utilizando
sustrato cromogénico pNPP. En la figura 3 se muestran los
resultados. Fab "AT" dio una disminución del 50% (IC_{50}) a
57,8 nM; Fab "Y" dio una disminución del 50% a 212 nM; Fab
"P" dio una disminución del 50% a 1,5 \muM. Se utilizó un
peso molecular de Fab estimado de 50.000 en estos cálculos para dar
un factor de conversión de 1 \mug/ml = 20 nM.
Las IC_{50} tal como se determinaron por
manchado histoquímico TRAP fueron similares a las determinadas en el
ensayo pNPP.
En la figura 4 se muestran los efectos de añadir
Fabs "AT", "Y" y "P" solubles al ensayo de células
RAW. El punto 50% para el gráfico fue tomado como 1,65 OD_{405}
nm. Fab "AT" tiene una IC_{50} de 15 \mug/ml, 300 nM
(suponiendo un peso molecular Fab de 50.000). Fab "Y" tiene una
disminución de la señal a 2,15 OD 405 desde 2,5 OD_{405}, un
punto 80%. Por extrapolación, un OD_{405} al punto de 50% de 1,65
para Fab "Y" se alcanzaría a \sim400 \mug/ml x 20 =
\sim8 \muM. "P" no presenta ninguna reactividad detectable
en el ensayo.
Las secuencias de ADN y aminoácido previstas
para las cadenas ligeras de Fabs "AT", "Y", "P" y
"S" se presentan en las figuras 5, 6, 7 y 8, respectivamente.
Las secuencias de ADN y aminoácido previstas para cadenas pesadas
de Fabs "AT", "Y", "P" y "S" se presentan en las
figuras 9, 10, 11 y 12, respectivamente. La figura 13 presenta una
matriz de comparación de la secuencia de aminoácido de la cadena
pesada y ligera, respectivamente de los cuatro clones de patrón Fab
predominantes en función de la identidad y la similitud. Se
obtuvieron la identidad y similitud o bien con programa GCG o bien
se calculó a mano. Las secuencias de cadena pesada de Fabs "AT"
y "Y" tienen la pareja más próxima ya que difieren en un solo
aminoácido (cambio conservador) y por tanto tienen una identidad de
99,6% y una similitud de 100%. Se compararon las secuencias de
aminoácido de cadena ligera entre los cuatro patrones de arriba
tanto la identidad como la similitud entre sí. Fabs "AT",
"Y" y "P" presentaron una identidad de al menos 85% y una
similitud de al menos 89%. El patrón "S" fue el más disimilar
al ser de la familia lambda V más rara.
En la figura 14 se muestra una comparación de
las secuencias de aminoácido de las regiones de determinación de
complementaridad (CDRs). Los Fabs "AT" e "Y" tuvieron
idénticas secuencias de aminoácido de cadena pesada en CDR1, CDR2 y
CDR3. La CDR1 de cadena pesada de Fabs "PE y "S" tenían 3
radicales de aminoácido idénticos a los de la secuencia CDR1
"AT" e "Y. La secuencia de CDR2 de "P" y "S"
presentó una mayor identidad entre sí que con la secuencia CDR2 de
"AT" e "Y". Las cadenas ligeras de Los Fabs "AT" e
"Y" presentaron longitudes idénticas a las de CDR1, CDR2 y
CDR3. Las CDR 1 y 3 de cadena ligera de patrones "AT" e
"Y" presentaron identidad en 7 de 11 radicales (64%) y 3 de 5
radicales (60%) respectivamente. Si bien la CDR2 de cadena ligera de
patrones "AT" e "Y" no presentan identidad entre sí, cada
uno de ellos contiene parte de la secuencia de consenso para la
CDR2 de cadena ligera. Cuando se combinaron los primeros 4 radicales
del patrón "AT" con los últimos 3 radicales del patrón
"Y", se obtuvo la cadena ligera CDR2 del patrón "P". La
cadena ligera CDR3 puede variar de longitud desde 5 a 25 radicales.
Por lo tanto, las CDR3 de cadena ligera obtenidas en los patrones
"AT", "Y" y "P" es muy corta. El más único de los
cuatro clones de patrón predominante fue Fab "S".
En la figura 15 se muestra una comparación de
las clases Fab representadas en los cuatro patrones predominantes.
Estos resultados fueron obtenidos del análisis de gráfico de ADN
V-Base. Según lo esperado los Fabs "AT" e
"Y" fueron de la misma familia VH1 (familia 1 pesada variable)
con las mismas regiones VDJ (Variable, diversidad y unión). Los
Fabs "AT" e "Y" pertenecen a diferentes familias de cadena
ligera. Los Fabs "P" y "S" pertenecen a la misma familia
de cadena pesada VH3, pero a diferentes familias de cadena ligera.
Todas las cadenas pesadas tienen las mismas regiones de unión
JH4b.
En las figuras 16-18 se muestra
un alineamiento de las secuencias Fab y las secuencias de línea
germinal correspondientes para las cadenas pesadas y, en las
figuras 19-22 para las cadenas ligeras. Los cambios
en las cadenas pesada y ligera de "AT", "Y", "P" y
"S" son el resultado de metástasis somática natural que tiene
lugar en las secuencias de línea germinal de anticuerpo durante la
respuesta a anticuerpo. Las regiones variables de las cadenas
pesadas "AT" e "Y" (Los aminoácidos 127 amino terminales
de las figuras 9 y 10, respectivamente) tuvieron cambios de
aminoácido 17 y 18 respectivamente, en comparación con las
secuencias de línea germinal VDJ correspondientes. La región
variable de la cadena pesada "P" (los aminoácidos 117 amino
terminales en la figura 11) tiene los cambios de aminoácido 16 en
comparación con la secuencia de línea germinal VDJ correspondiente.
La región variable de la cadena pesada "S" (los aminoácidos
124 amino terminales de la figura 12) tuvieron los cambios de
aminoácido 14 en comparación con las secuencias de línea germinal.
La región variable de la cadena ligera "AT" (radicales
6-108 en la figura 5) tuvo los cambios de aminoácido
16 en comparación con la secuencia de línea germinal VJ
correspondiente; la cadena ligera "Y" (radicales
6-108 en la figura 6) tuvo cambios de aminoácido
14; la cadena ligera "P" (radicales 5-108 en la
figura 7) tuvo los cambios de aminoácido 14; y la cadena ligera
"S" (radicales 5-112 en la figura 8) tuvo los
cambios de aminoácido 12. En general, las diferencias de aminoácido
se dieron con mayor frecuencia en las regiones CDR3 de las cadenas
tanto pesada como ligera.
Se convirtieron clones Fab en anticuerpos de
longitud completa siguiendo los procedimientos que se indican a
continuación.
Se digirió el plasmidio pDSR\alpha19: EPO con
Hind III y Sa1I para eliminar la región de codificación para
eritro-
poyhetina. Se utilizó el plasmidio pCRBLuntCH1-3 que contenía los dominios C_{H}1, bisagra, C_{H}2 y C_{H}3 de Igg humana insertados en el vector pCRBlunt (Invitrogen) para obtener un dominio constante IgG1 humano de 1,4 kb. Se digirió pCRBluntCH1-3 con HindIII y Sa1I y se insertaron las secuencias de dominio constante en pDSR\alpha19 para generar pDSR\alpha19: hCH
poyhetina. Se utilizó el plasmidio pCRBLuntCH1-3 que contenía los dominios C_{H}1, bisagra, C_{H}2 y C_{H}3 de Igg humana insertados en el vector pCRBlunt (Invitrogen) para obtener un dominio constante IgG1 humano de 1,4 kb. Se digirió pCRBluntCH1-3 con HindIII y Sa1I y se insertaron las secuencias de dominio constante en pDSR\alpha19 para generar pDSR\alpha19: hCH
Se clonaron cuatro ADNs de cadena pesada Fab
anti-huOPGbp en pDSR\alpha19: hCH para convertir
los Fabs en IgGs de longitud completa. La construcción de un
plasmidio que codifica cadena pesada "AT" se describe en el
presente documento. Se clonaron las otras cadenas pesadas Fab
utilizando procedimientos similares. Para generar Fab con una
secuencia de señal, se llevó a cabo PCR en tres etapas. En la
primera, se utilizaron los cebadores 2249-25 y
2248-22 con la plantilla de ADNc Fab. Las
condiciones fueron: 94ºC durante 1 minuto, (95ºC durante 3
segundos, 50ºC durante 1 minuto, 68ºC durante 1 minuto) durante 20
ciclos, 68ºC durante 10 minutos, con Pfu polimerasa y el tampón y
los nucleótidos apropiados. A continuación, se amplificó el producto
PCR con los cebadores 2209-21 y
2248-22 seguido de la amplificación con los
cebadores 2209-20 y 2248-22. Se
limpió el producto PCR final, se cortó con HindIII y BsmBI, y se
purificó con gel. Este fragmento contiene el Fab con un sitio
5'-Kozak (iniciación de traducción) y la siguiente
señal de secuencia de señal para expresión de mamífero de la cadena
pesada "AT" de Fab:
MEWSWVFLFFLSVTTGVHS | (SEQ ID NO: 25) |
Esta secuencia de señal se designa la secuencia
de señal VH2_{1}.
Se digirió el plasmidio pDSR\alpha19: hCH con
HindIII y BamBI para eliminar el poliligador antes de los dominios
C_{H}1-3 de IgG y se insertó el producto PCR Fab
para generar pDSR\alpha19: AT-VH21.
Cebadores:
Se clonaron los ADNs de cadena ligera Fabs
"AT", "Y", "P" y "S" en pDSR\alpha19 para
convertir los Fab en anticuerpos de longitud completa. Se describe
aquí la construcción de un plasmidio que codifica la cadena ligera
"AT". Se clonaron los otros Fab utilizando procedimientos
similares. Para generar Fab "AT" con una secuencia de señal,
se llevó a cabo la PCR en tres etapas. En la primera, se utilizaron
los cebadores 2233-50 y 2233-51 con
la plantilla de ADNc Fab. Las condiciones de PCR fueron: 94ºC
durante 1 minuto (95ºC durante 30 segundos, 50ºC durante 1 minuto,
68ºC durante 2 minutos) durante 20 ciclos, 68ºC durante 10 minutos
con Pfu polimerasa y el tampón y los nucleótidos apropiados. A
continuación, se amplificó el producto de PCR con los cebadores
2148-98 y 2233-51 seguido de la
amplificación con los cebadores 2148-97 y
2233-51. Se limpió el producto PCR final, se cortó
con HindIII y Sa1I, y se purificó con gel. Este fragmento contiene
el Fab con un sitio 5' Kozak (iniciación de la traducción) y la
siguiente secuencia de señal para expresión de mamífero de la
cadena ligera de "AT":
MDMRVPAQLLGLLLLWLRGARC | (SEQ ID NO: 33) |
Esta secuencia de señal se designa secuencia de
señal "ligera".
Se digirió el plasmidio pDSR\alpha19: EPO con
HINdIII y Sa1I para eliminar el gen EPO antes de insertar el
producto de PCR de cadena ligera de IgG para generar pDSR\alpha19:
AT-L.
Cebadores:
Se construyeron los vectores de expresión para
la producción de cadenas pesadas de longitud completa "AT",
"Y", "P" y "S" tal como se ha descrito anteriormente,
a excepción de que se modificaron los cebadores para introducir la
siguiente secuencia de señal:
MDAMKRGLCCVLLLCGAVFVFSPSRGRFRR | (SEQ ID NO: 42) |
Esta secuencia de señal se designa la secuencia
de señal "tPA-RGR".
Se construyó el vector de expresión que incluía
las cadenas pesada y ligera de "AT". Se digirió el plasmidio
pDSR\alpha19: AT-Vh21 con AatII y NdeI y se
cargaron los extremos con T4 ADN polimerasa. Se purificó con gel el
fragmento que contenía el cassette de expresión de cadena pesada
"AT" (secuencia de codificación de cadena pesada "AT"
flanqueada por el promotor y el sitio de poliadenilación desde
pDSR\alpha19) y se ligó con pDSR\alpha19: AT-L
que había sido linearizado con NheI, cargado con T4 ADN polimerasa y
desfosforilado con fosfatasa alcalina. El cassette de expresión de
cadena pesada se encontraba en la misma orientación de
transcripción que la cadena ligera y los genes DHFR.
Se transfectaron los vectores de expresión que
contenían ADNc de codificación de anticuerpos de longitud completa
de cadena pesada y ligera "AT", "Y", "S" y "P"
(o bien en vectores separados o bien en un único vector) en células
CHO y se cultivaron en condiciones que permitieron la expresión de
cadenas pesada y ligera y la secreción en el medio de células. Se
filtraron los medios acondicionados a través de un filtro de acetato
de celulosa de 0,45 \mum (Corning, Acton, MA) y se aplicó a
columna de sefarosa de proteína G (Amersham Pharmacia Biotech,
Piscataway, NJ) que había sido equilibrada con PBS - solución salina
tamponada con fosfato de Dulbecco sin cloruro cálcico y sin cloruro
de magnesio (Gibco BRL Products, Grand Island NY). Tras la
aplicación de muestra se lavó la columna con PBS hasta que la
absorbencia a 280 nm alcanzó la línea de referencia. Se consiguió
la elución de proteína utilizando glicina 100 mM, pH 2,5. Se
recogieron fracciones y se neutralizaron inmediatamente por adición
de Tris-HCl 1M, pH 9,2. Se detectaron los
anticuerpos con geles de SDS-poliacrilamida
visualizados por manchado Commassie.
Se distribuyeron las fracciones que contenían
anticuerpo, se concentraron y se diafiltraron en PBS utilizando o
bien Centricon 10 (Amicon) o bien, para volúmenes más grandes
Centriprep 10 (Amicon).
El anticuerpo aislado se caracterizó por
filtración de gel en Superose 6 (Amersham Pharmacia Biotech,
Piscataway, NJ) y se demostró que corría como una IgG
monomérica.
Se determinaron la constante de unión (Kd),
constante de velocidad de encendido (ka) y constante de velocidad
de apagado (kd) para los Fabs "AT" e "Y" y se determinó el
anticuerpo "AT" a través de técnicas de resonancia de plasmón
superficial (BIAcore, Pharmacia, Piscataway, Nueva Jersey) cuyos
resultados se muestran en la tabla II. Se prepararon Fabs tal como
se ha descrito en el ejemplo 4 y se preparó anticuerpo "AT" tal
como se ha descrito en el ejemplo 7. Se inmovilizó OPGbp en un
CM5-chip por acoplado con amina normal. Se
determinaron las constantes de velocidad y Kd con el programa
informático BIOEVALUATION 3.0 (Pharmacia).
\vskip1.000000\baselineskip
La afinidad de unión de Fab "AT" aumentó de
aproximadamente 140 nM a aproximadamente entre 0,33 y 0,43 nM, o
aproximadamente 350 a 400 veces más, cuando se añadió la región
constante de IgG1 Fc como se describe en el ejemplo 7.
Se sometieron a ensayo preparaciones de
anticuerpo "AT" designadas 405, 406 y 407 en un ensayo de
células RAW tal como se ha descrito en el ejemplo 1. "AT" 405,
"AT"406 y "AT"407 difirieron solamente en las secuencias
líder utilizadas para expresión ("AT" 405 fue expresado
utilizando la secuencia de señal "ligera", "AT"460
utilizó la secuencia de señal tPA-RGR y "AT"407
utilizó la secuencia de señal VH21). Los anticuerpos maduros
purificados fueron idénticos en cada preparación. En la figura 23 se
muestran los resultados.
Las IC_{50} para "AT" 405, "AT" 406
y "AT"407 fueron 20,1 nM, 60,3 nM y 21,4 nM, respectivamente,
que corresponden a 3,0 ug/ml, 9,0 ug/ml y 3,2 ug/ml,
respectivamente (presuponiendo un peso molecular de 150.000). Los
controles positivos de
OPG[22-194]-Fc y anticuerpo
policlonal anti-OPGbp fueron a 33 ng/ml y 150 ng/ml,
respectiva-
mente.
mente.
La diferencia en IC_{50} en el ensayo de
células RAW del fragmento Fab "AT" fue 300 nM en comparación
con aproximadamente 20 nM para la longitud completa "AT", o
aproximadamente 15 veces más para el anticuerpo de longitud completa
"AT". Teniendo en cuenta las diferencias en las
concentraciones de OPGbp en los dos experimentos (150 ng/ml/60
ng/ml = 2,5 veces), el aumento en la avidez de la función celular
para el anticuerpo de longitud completa "AT" fue
aproximadamente 15 x 2,5 = 37,5 veces.
En la figura 24 se muestran los efectos de la
adición de preparaciones de "AT"405 o "AT"407 al ensayo de
médula ósea murínica. Las IC_{50} para "AT"405 y
"AT"407 fueron 2,15 ug/ml (14,4 nM) y 1,85 ug/ml (12,5 nM),
respectivamente (peso molecular = 150.000). Un anticuerpo
policlonal anti-OPGbp de rata inhibió la formación
TRAP con una IC_{50} de \sim50 ng/ml.
En un experimento por separado, se sometió a
ensayo "AT"406 en el ensayo de co-cultivo de
médula ósea e inhibió la formación TRAP con una IC_{50} de 2,35
\mug/ml (14,4 nM) asumiendo un peso molecular de anticuerpo de
150.000 (ver figura 25).
La diferencia en la IC_{50} en el ensayo de
médula ósea para el fragmento Fab "AT" fue aproximadamente 50
nM en comparación con aproximadamente 13 nM para anticuerpo de
longitud completa "AT" o un aumento de 3,85 veces más.
Teniendo en cuenta las diferencias de las concentraciones de OPGbp
en los dos experimentos (50 nM/9 nM = 5,55 veces), la ganancia
aproximada de avidez de función celular a partir del anticuerpo de
longitud completa "AT" fue aproximadamente 3,85 x 5,55 = 21,4
veces.
Se fusionaron también ADNc que codificaban Fab
"Y", "P" y "S" para secuencias CH1, CH2, y CH3 de
IgG1 humana tal como se describe en el ejemplo 7 y se transfectaron
en células CHO. Se expresaron los anticuerpos resultantes y se
purificaron desde medio acondicionado y se eliminó la endotoxina
como en el caso anterior. Se sometieron a ensayo los anticuerpos de
cadena ligera "S" e "Y" (que recibieron el nombre de "S
ligero" e "Y ligero") en el ensayo de médula ósea,
mostrándose los resultados en la figura 26. Los anticuerpos "S
ligero" e "Y ligero" fueron expresados utilizando las
secuencias líder de cadena ligera correspondientes y se designaron
"S" 435 e "Y" 429 respectivamente. "Y" 429 ("Y
ligero") tenía una IC_{50} de 23 ug/ml o 154 nM. "S" 435
("S ligero") no presentó suficiente actividad para una
determinación de una IC_{50}.
"Y Campath" y "P ligero" fueron la
secuencia Hu-IgG1 "Y" y "P",
respectivamente, con la secuencia líder para la cadena
"Campath" y "ligera" y se designaron "Y" 442 y
"P" 444, respectivamente. "Y" 442 ("Y Campath") tenía
una IC_{50} de 20 \mug/ml o 134 nM. "P" 444 ("P
ligera") no presentó una actividad detectable (ver figura
27).
La diferencia en la IC_{50} en el ensayo de la
médula ósea del fragmento "Y" Fab fue 212 nM en comparación con
134-154 nM para el anticuerpo de longitud completa
"Y" o un aumento de aproximadamente 1,38 a 1,58 veces.
Teniendo en cuenta las diferencias de las concentraciones de OPGbp
en los dos experimentos (50 nM/9 nM = 5,55 veces), la ganancia
aproximada en la avidez de la función celular desde "Y" Fab a
anticuerpo de longitud completa "Y" fue aproximadamente (1,38
a 1,58) x 5,55 = 7,7 a 8,8 veces o aproximadamente 8 veces más.
Se produjo OPGbp [143-317]
humana tal como se ha descrito en el ejemplo 1. Se produjo OPGbp
[158-316] murínica que contenía los radicales de
aminoácido 158 a 316 tal como se muestra en la figura 1 de PCT WO
98/46751 precedido de un radical de metionina
N-terminal introducido en E. coli y se
purificó desde la fracción soluble de bacterias, tal como se ha
descrito anteriormente (Lacey y cols., Cell. 93,
165-176 (1998)). Se generó
OPGbp[158-316] FLAG-murínico
por introducción de radicales de ácido nucleico que codificaban una
metionina N-terminal seguido de una secuencia de
etiqueta FLAG (DYKDDDDKKL (SEQ ID NO: 99)) fusionada con el término
N de los radicales 158-316, tal como se muestra en
la figura 1 de PCT WO 98/46751 utilizando métodos conocidos entre
las personas especializadas en este campo. Se clonó la molécula
FLAG-OPGbp [158-316] en el vector de
expresión de bacteria pAMG21 (depositado en la American Type
Culture Collection que tenía el número de acceso 98113).
Se construyó una variante de polipéptido OPGbp
[158-316] FLAG-murínica en la que se
habían sustituido los radicales de aminoácido SVPTD en las
posiciones 229-233 inclusive, tal como se muestra en
la figura 1 (SEQ ID NO: 1) de WO 98/46751 con los radicales de
aminoácido correspondientes DLATE en las posiciones
230-234 inclusive, tal como se muestra en la figura
4 (SEQ ID NO: 3) de WO 98/46751. El constructo resultante que se
denomina "OPGbp[158-316]/DE
FLAG-murínico" tiene la secuencia de ácido
nucleico y proteína que se muestra en la figura 28. Los cambios en
la secuencia de aminoácido se localizan en una región de OPGbp
comprendida entre las regiones D y E. La figura 29 presenta una
comparación de las secuencias de aminoácido murínica, humana, y
variante DE murínica en esta región. Los cambios de secuencia en la
variante murínica son S229D, V23OL, P231A y D233E con la T en la
posición 234 invariable. Las secuencias de flanqueado en esta región
son virtualmente idénticas entre OPGbp murínica y humana.
Se construyó esta molécula utilizando una
reacción PCR de dos etapas, comprendiendo la primera etapa dos
reacciones PCR por separado, designadas reacción A y reacción B.
tanto para la reacción A como para la reacción B se utilizó ADN
OPGbp[158-316] pAMG21-FLAG
murínico como plantilla para PCR. La reacción A empleó
oligonucleótidos #2640-90 y
#2640-91 para PCR, mientras que la reacción B empleó
oligonucleótidos #2640-92 y 2640-93.
Se llevó a cabo el termociclado y se purificaron los productos de
PCR de las reacciones A y B desde un gel de agarosa aplicando los
métodos disponibles en la especialidad. La reacción de PCR en
segunda etapa, designada reacción C, empleó productos de PCR de
reacción A y reacción B purificados como plantilla y
oligonucleótidos #2640-90 y
#2640-93 como cebadores. Tras el termociclado, se
clonó el producto de la reacción C en vector de clonación
pCRII-TOPO (invitrogen) y se electroporó en células
DH10b (Gibco) utilizando los métodos proporcionados por el
fabricante. Se seleccionaron clones y se confirmó la secuencia que
verificaba que las mutaciones introducidas tenían como resultado un
cambio de la secuencia de aminoácido SVPTD en OPGbp
[158-316] murínica en DLATE. La secuencia verificó
que se había digerido entonces ADN con NdeI y XhoI, se había
purificado y se había subclonado en el vector de expresión
bacteriana pAMG21 para dar lugar al plásmidio
pAMG1-FLAG-murínico
OPGbp[158-316]/DE.
OPGbp[158-316]/DE.
2640-90: | CCTCTCATATGGACTACAAGGAC | (SEQ ID NO: 100) |
2640-91: | AGTAGCCAGGTCTCCCGATGTTTCATGATG | (SEQ ID NO: 101) |
2640-92: | CTGGCTACTGAATATCTTCAGCTGATGGTG | (SEQ ID NO: 102) |
2640-93: | CCTCTCCTCGAGTTAGTCTATGTCC | (SEQ ID NO: 103) |
Se cultivó el huésped GM94 de E. coli
(depositado en la American Type Culture Collection con el número de
acceso 202173) que contenía el plasmidio
pAMG21-FLAG-murínico OPGbp
[158-316]/DE en medio 2x YT hasta una fase de
crecimiento exponencial y se indujo para que expresara proteína
OPGbp[158-316]/DE
FLAG-murínica por adición de autoinductor v.
Fisheri sintético a 100 ng/ml. Aproximadamente
3-6 horas después de la inducción, se aglomeraron
las células y se purificó proteína
OPGbp[158-316]/DE FLAG murínica recombinante
desde la fracción soluble de E. coli utilizando los métodos
descritos en Lacey y cols. ibid.
Se recubrieron placas Costar E.I.A./R.I.A. (Flat
Botton Hig Binding, Cat. # 3590) con 100 \mul/pocillo de proteína
OPGbp[143-317] humana, proteína
OPGbp[158-316] murínica y proteína
OPGbp[158-316]/DE
FLAG-murínica a 3 \mug/ml en PBS, durante toda la
noche a 4ºC con agitación. Tras toda la noche de incubación, se
sacaron las soluciones de proteína de la placa y se añadieron 200
\mul de suero de pollo al 5% (Gibco/BRL cat #
16110-082) en PBST (PBS más 0,05% Tween 20) a cada
pocillo de la placa y se incubaron las placas a temperatura
ambiente (RT) durante 90 minutos con agitación. Tras la incubación y
el bloqueo se lavaron las placas 4 veces con solución de lavado 1 X
K-P en dH_{2}O (cat#
50-63-00, Kirkegaard & Perry
Laboratories) y se secaron. Se diluyó en serie el anticuerpo
"AT" purificado o la proteína
OPG[22-194]-Fc humana 1:1
desde 2 ug/ml descendentemente hasta 1,953 ng/ml en PBST y se
añadieron 100 ul/pocillo a los pocillos apropiados de la placa de
microvaloración recubierta con proteína
OPGbp[143-317] humana,
OPGbp[158-316] murínica o
OPGbp[158-316]/DE
FLAG-murínica. Se incubaron las placas durante tres
horas a temperatura ambiente, con agitación, se lavaron cuatro veces
con solución de lavado 1 x K-P y se secaron. Se
diluyó IgG anti-humana de cabra (Fc) (Jackson
ImmunoResearch, Cat# 109-036-098)
1:5000 en suero de pollo al 5% en PBST y se añadieron 100 \mul a
cada pocillo. Se incubaron las placas durante 1,25 horas a
temperatura ambiente con agitación, se lavaron seis veces con
solución de lavado 1 X K-P y se secaron. Se
añadieron 100 \mul de sustrato ABTS sin diluir (Kirkegaard &
Perry; cat \cdot 50-66-00) a cada
uno de los pocillos y se incubó el plato a temperatura ambiente
hasta que se reveló suficiente color azul-verde. Se
detuvo el revelado del color por adición de 100 \mul % SDS. Se
llevó a cabo la cuantificación del revelado de color utilizando una
lectora de placa de microvaloración con detección a 405 nm.
En la figura 30 se muestran los resultados de
EIA. El anticuerpo "AT" se une a
OPGbp[143-317] humana pero no muestra una
unión detectable a OPGbp [158-316] murínica por
encima del intervalo de concentración analizado. No obstante, el
anticuerpo "AT" se une tanto a
OPGbp[158-316]/DE
FLAG-murínica como
OPGbp[143-317] humana en las condiciones de
ensayo mencionadas. Se concluyó que los cambios de aminoácido en
OPGbp[158-316]/DE murínico en comparación
con OPGbp[158-316]/DE murínica tenían
relación con la unión de anticuerpo "AT".
Se sometió a ensayo
OPGbp[143-317]/DE
FLAG-murínico para determinar la actividad en el
ensayo de células RAW tal como se ha descrito en el ejemplo 1 y se
observó que tenía ED50 similar para la formación de osteoclasto con
respecto a OPGbp[143-317] humana, lo que
indica que la variante DE es activa para promover la actividad de
osteoclasto in vitro. Por consiguiente, la unión de
anticuerpo "AT" a OPGbp[158-316]/DE
murínica probablemente inhibe la formación de osteoclasto.
El epítopo del anticuerpo "AT" está
localizado en una región de OPGbp humana que incluye al menos
radicales de aminoácido DLATE (radicales 230 a 234 de OPGbp humana
tal como se muestra en la figura 4 de PCT WO98/46751).
\vskip1.000000\baselineskip
Se utilizaron tres métodos para generar
variantes CDR de anticuerpo "AT"; mutagénesis de exploración de
alanina de la región CDR3 de cadena pesada; mutagénesis de
sustitución de sitios seleccionados en la región CDR3 de cadena
pesada y mutagénesis de inserción de la región CDR3 de cadena
ligera.
Se llevó a cabo la mutagénesis de exploración de
alanina en la región CDR3 de la cadena pesada AT. La secuencia de
aminoácido para la exploración de alanina fue:
DSSNMVRGIIIAYYFDY | (SEQ ID NO: 104) |
Se sometieron a anelación los cebadores 12 y 15
entre sí y se extendieron por reacción en cadena de polimerasa
(PCR) en las siguientes condiciones: 25 pmoles para cada cebador, 6
ciclos de 30 segundos a 94ºC, 2 minutos a 55ºC y 20 segundos a
74ºC.
El producto de esta reacción recibe el nombre de
plantilla A.
Se extendió la plantilla A por PCR utilizando
los cebadores 22 y 14 en las siguientes condiciones: 0,5 microlitros
de plantilla A, 10 pmoles cada cebador, 15 ciclos de 30 segundos a
94ºC, 2 minutos a 43ºC, 20 segundos a 74ºC.
El producto PCR de esta reacción recibe el
nombre de plantilla B.
Se generaron variantes de alanina de CDR3
utilizando la plantilla A o la plantilla B. Se realizaron dos
vueltas de PCR (20 ciclos de 94ºC durante 20 segundos y 74ºC
durante 40 segundos) utilizando un cebador que contenía el codón
alanina deseado. El cebador que contenía el codón de alanina se
encontraba en la orientación de avance para los radicales CDR3 (la
numeración sigue el sistema Kabat, ver Kabat y cols., Sequences de
Proteins of Immunological Interest, U.S. Department of Health and
Human Services, 4ª edición (19991) D95, S96, V100, R100a. El
cebador que contenía el codón de alanina se encontraba en la
orientación invertida para los radicales S97, N98, M99, G100b,
I100c, I100d, I100e, Y100g, Y100h, F100i, D101, Y102.
A continuación, se realizaron las reacciones de
mutagénesis con hasta tres reacciones de extensión utilizando seis
cebadores comunes. Estas reacciones extendieron el producto para
abarcar toda la región CDR3 hasta los sitios de restricción de
flanqueado únicos BgqII y BstEII, e incluyéndolos.
A continuación, se muestran los cebadores para
la sustitución de alanina en la orientación 5' a 3'. El codón de
alanina aparece en negrita.
\newpage
A continuación se muestran los seis cebadores
comunes para PCR de extensión. Las secuencias de los sitios BglII
(hebra superior) BstEII (hebra inferior) de flanqueo se muestran en
negrita.
Cebadores comunes directos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Cebadores comunes inversos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(Tabla pasa a página
siguiente)
\newpage
En la tabla que se muestra a continuación, se
indican los pares de cebador y plantilla de partida utilizados en
secuencia para construir fragmentos de ADN sintéticos que contienen
radicales de alanina sustituidos.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Para los cebadores utilizados para la
exploración de alanina, las condiciones de PCR fueron 20 ciclos a
94ºC durante 20 segundos, a continuación 74ºC durante 40 segundos.
Para las reacciones de extensión con el par de cebadores 10 + 15,
las condiciones fueron 20-25 ciclos de 94ºC durante
20 segundos, 42ºC durante 1 minuto 30 segundos, 74ºC durante 20
segundos. Para las reacciones de extensión con el par de cebadores
10 a 14, las condiciones fueron 20-25 ciclos de
94ºC durante 20 segundos, 48-50ºC durante 1 minuto
30 segundos, 74ºC durante 20 segundos. Para las reacciones de
extensión con el par de cebadores 10 a 13, las condiciones fueron
20-25 ciclos de 94ºC durante 20 segundos, 64ºC
durante 1 minuto 30 segundos, 74ºC durante 20 segundos. Se
digirieron los productos de PCR con las enzimas de restricción
Bg1II y BstEII y se clonaron en FabAT que había sido digerido con
Bg1II y BstEII, reemplazando así la CDR3 de AT con la CDR3
sustituida de alanina. Se verificaron los constructos sustituidos
con alanina por secuenciado con ADN.
Se utilizó una estrategia similar a la utilizada
para la mutagénesis de exploración de alanina para la aleatorización
de las posiciones S96, S97 y N98 de la CDR3 de "AT" de cadena
pesada. Se generaron las plantillas A y B tal como se ha descrito
previamente. Se aleatorizaron las posiciones 96, 97 y 98 con un
grupo de cuatro cebadores para cada posición. Las posiciones entre
paréntesis tienen nucleótidos variables tal como queda indicado.
\newpage
para la posición S96
\vskip1.000000\baselineskip
Para la posición S97
\vskip1.000000\baselineskip
Para la posición N98
Se realizaron las reacciones de PCR utilizando
el cebador de aleatorización inversa y el cebador 10. Se extendió
el producto resultante con cuatro reacciones PCR sucesivas
utilizando los pares de cebadores 10 + 15, 10 + 14, 10 + 13 y 10 +
22. Se amplificó el extremo 5' de la región variable de cadena
pesada de "AT" a partir de un clon de longitud completa de la
región variable de cadena pesada "AT" utilizando los cebadores
16 y 72. Se purificaron con gel todos los productos PCR. Se
solaparon los productos de aleatorización con el producto 16/72,
siendo los cebadores de flanqueo 16 y 22. A continuación, se clonó
la región variable de longitud completa en un vector que contenía
la región constante IgG1 como un fragmento HindIII/BsmBI. Se
seleccionaron los clones de anticuerpo de longitud completa por
secuenciado.
\vskip1.000000\baselineskip
Se convirtieron las variantes S96A, S97A y N98A
desde Fabs a anticuerpos de longitud completa por amplificación por
PCR del clon Fab que tenía la secuencia de señal bacteriana
reemplazada con una secuencia de señal de mamífero. Se utilizó el
ADN de plasmidio del Fab que contenía la mutación deseada como
plantilla. Los pares de cebador en secuencia utilizados fueron 21 +
22, 98 + 22 y 16 + 22. Se seleccionaron clones correctos por
análisis de secuencia de ADN.
Se generaron variantes de alanina múltiples
(S96A, S97A; S96A, N98A; S97A, N98A y S96A, S97A y N98A) utilizando
el plasmidio de IgG1 de longitud completa de cadena pesada de AT
como platilla. Se llevaron a cabo las reacciones PCR iniciales con
uno de los cebadores enumerados a continuación y el cebador 22. A
continuación, se extendieron estos productos utilizando pares de
cebador 10 + 22. A continuación, se solapó ese producto con el
producto 16/72 utilizando cebadores de flanqueo 16 y 22, y se
clonaron en la región constante de IgG1 como en el caso anterior.
Se seleccionar clones correctos por análisis de secuencia de
ADN.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
La CDR3 de cadena ligera de AT contiene un bucle
de cinco aminoácidos que tiene la secuencia QHTRA (SEQ ID NO: 09).
Se construyeron las variantes de secuencia de CDR3 de cadena ligera
del siguiente modo. Se utilizaron los siguientes cebadores para PCR
utilizando un plasmidio que contenía ADNc de cadena ligera "AT"
Fab como plantilla:
indicando (ACGT) cuatro bases
mixtas en esta
posición.
El producto PCR resultante tenía una secuencia
de bucle CDR3 aumentada de cinco a nueve aminoácidos y cambió desde
QHTRA A GHTXAAARA pudiendo ser X cualquier aminoácido. Se digirió un
clon de AT con digestión HincII y AscI y se reemplazó la región
CDR3 de cadena ligera de "AT" con la secuencia variante. Se
aislaron los clones que contenían los veinte radicales de
aminoácido en la posición X junto con tres radicales de alanina
insertados en el bucle CDR3 y se confirmó su identidad por
secuenciado de ADN.
Se produjeron variantes de sustitución de
alanina de la CDR3 de cadena pesada y variantes de inserción de
CDR3 de cadena ligera y se purificaron como fragmentos Fab a través
del siguiente procedimiento. Se cultivó cada variante en 50 ml de
2XYT con glucosa al 2% y 100 \mug/ml de ampicilina al mismo tiempo
que se agitaba a 37ºC hasta un OD_{600} de
0,8-1,0. A continuación, se centrifugó cada cultivo
y se resuspendió en 50 ml de 2XYT con 100 \mug/ml de ampicilina
con 1 mM IPTG a 30ºC para inducir la producción de Fabs solubles. A
continuación, se desplazaron las Fab solubles al área periplásmica y
se concentraron durante toda la noche antes de la liberación por
choque osmótico. Se llevó a cabo el choque osmótico por lavado de
las células con solución de sacarosa 0,5 M fría en tampón Tris y
EDTA para romper la pared celular bacteriana y a continuación, por
dilución rápida en solución fría de concentración osmótica baja. Se
purificaron las Fabs solubles diluidas por cromatografía de
afinidad de metal TALON a través de 6 x radicales etiquetados con
His en la Fab expresada. Se eliminaron las impurezas por lavado con
NaCl y concentraciones de imidazol más bajas antes de eluir la
proteína con imidazol. Se analizó la expresión y purificación de
cada mutante con manchas de reducción, no reducción y de Western
anti-His. Se determinó la concentración de proteína
total por A_{280}.
Se determinaron la constante de unión (Kd) la
constante de velocidad de encendido (Ka) y la constante de velocidad
de apagado (kd) para las variantes de anticuerpo "AT" y la
constante de velocidad de apagado (Kd) para las variantes Fab
"AT" por técnicas de resonancia de plasmón superficial
(BIAcore) utilizando OPGbp [143-317] inmovilizada.
En las tablas IV -VIII se muestran los resultados. Las variantes
CDR3 de cadena ligera descritas en el ejemplo 11 no muestran una
unión detectable.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Si bien la invención ha sido descrita en los que
se refiere a los modos de realización preferibles, debe entenderse
que las personas especializadas en este campo podrán pensar en
variaciones y modificaciones de la misma. Por consiguiente, se
pretende que las reivindicaciones adjuntas cubran todas dichas
variaciones equivalentes que entran dentro del marco de la
invención, tal como se reivindica.
\global\parskip0.000000\baselineskip
<110> AMGEN INC.
\vskip0.400000\baselineskip
<120> AGENTES DE UNIÓN SELECTIVOS DE
PROTEÍNA DE UNIÓN DE OSTEOPROTEGERINA
\vskip0.400000\baselineskip
<130> A-633A
\vskip0.400000\baselineskip
<150> 09/511.139
\vskip0.400000\baselineskip
<151>
2000-02-23
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 154
\vskip0.400000\baselineskip
<170> PatentIn versión 3.0
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 12
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 4
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 5
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 6
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 7
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 8
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 9
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 10
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 11
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 12
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 12
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 13
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 13
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 14
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 15
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 5
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<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 15
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 16
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 17
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 16
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 17
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 17
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 17
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 17
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 18
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 17
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 19
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 7
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<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 20
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 21
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 22
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 23
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 24
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 25
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
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<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 25
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 26
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 45
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip0.400000\baselineskip
<210>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
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\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 26
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 27
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 27
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 28
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 44
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2)...(43)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 28
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 29
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 29
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 30
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 30
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 31
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 42
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
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<222> (1)...(42)
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 31
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 32
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 14
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<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 32
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 33
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 30
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<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 33
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 34
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 34
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 35
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 48
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (17)...(46)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 35
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 36
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 36
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 37
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 48
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (3)... (47)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 37
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 38
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 15
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 38
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 39
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 44
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2)... (43)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 39
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 40
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 40
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 41
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 32
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (20)... (31)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 41
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 42
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 42
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 43
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 30
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 43
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 44
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 645
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)... (645)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 44
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 45
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 215
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 45
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 46
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 645
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1) ... (645)
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 46
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 47
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 215
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 47
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 48
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 645
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1) ... (645)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 48
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 49
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 215
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 49
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 50
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 654
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1) ... (654)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 50
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 51
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 218
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 51
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 52
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 690
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1) ... (690)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 52
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 53
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 230
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 53
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 54
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 690
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1) ... (690)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 54
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 55
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 230
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 55
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 56
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 660
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1) ... (660)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 56
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
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<210> 57
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<211> 39
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<213> Murínico
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<211> 39
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<223> X es cualquier diferencia de
aminoácido desde el aminoácido normalmente residente en esa
posición
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<223> X es cualquier diferencia de
aminoácido desde el aminoácido normalmente residente en esa
posición
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<223> X es cualquier diferencia de
aminoácido desde el aminoácido normalmente residente en esa
posición
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aminoácido desde el aminoácido normalmente residente en esa
posición
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<223> X es cualquier diferencia de
aminoácido desde el aminoácido normalmente residente en esa
posición
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<223> X es cualquier diferencia de
aminoácido desde el aminoácido normalmente residente en esa
posición
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<223> X es cualquier diferencia de
aminoácido desde el aminoácido normalmente residente en esa
posición
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<223> X es cualquier diferencia de
aminoácido desde el aminoácido normalmente residente en esa
posición
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aminoácido desde el aminoácido normalmente residente en esa
posición
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aminoácido desde el aminoácido normalmente residente en esa
posición
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posición
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aminoácido desde el aminoácido normalmente residente en esa
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aminoácido desde el aminoácido normalmente residente en esa
posición
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aminoácido desde el aminoácido normalmente residente en esa
posición
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<223> X es cualquier diferencia de
aminoácido desde el aminoácido normalmente residente en esa
posición
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 96
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 17
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> rasgo misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> X es cualquier diferencia de
aminoácido desde el aminoácido normalmente residente en esa
posición
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 96
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 97
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> rasgo misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> La primera vez que aparece X de
izquierda a derecha representa un radical aminoácido distinto a
arginina, la segunda, tercera y cuarta vez que aparece X representa
cualquiera radical aminoácido.
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 97
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 98
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> rasgo misc
\vskip0.400000\baselineskip
<223> X es cualquier radical de aminoácido
distinto a arginina.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 98
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 99
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 99
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 100
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 100
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 101
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 30
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 101
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 102
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 30
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 102
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 103
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 25
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 103
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 104
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 17
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 104
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\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 105
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 39
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 105
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 106
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 36
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 106
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 107
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 33
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 107
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 108
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 36
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 108
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 109
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 39
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 109
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 110
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 39
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 110
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 111
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 42
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 111
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 112
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 39
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 112
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 113
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 36
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 113
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 114
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 36
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 114
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 115
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 38
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 115
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 116
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 45
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 116
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 117
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 42
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 117
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 118
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 39
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 118
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 119
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 36
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 119
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 120
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 45
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 120
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 121
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 45
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 121
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 12
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 42
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 122
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 123
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 39
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 123
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
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<210> 124
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 39
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 124
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 115
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 42
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 125
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 126
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 33
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 126
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 127
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 39
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 127
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
<211> 32
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 128
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
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\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
<211> 36
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<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 129
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
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\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
<211> 36
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 130
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 131
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 132
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 46
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 132
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 133
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 44
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 133
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
<211> 44
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
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<211> 46
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
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\vskip0.400000\baselineskip
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<211> 46
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<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
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\vskip0.400000\baselineskip
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<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
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\vskip0.400000\baselineskip
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\hskip1cm
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<210> 138
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 44
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
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\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 139
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 43
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 139
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\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 140
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<211> 43
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 140
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 141
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 41
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 141
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\hskip1cm
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<210> 142
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<211> 41
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<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 142
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 143
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 42
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 143
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 144
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 52
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
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<400> 144
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\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 145
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 36
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 145
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\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 146
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 30
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 146
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\hskip1cm
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 147
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 48
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 147
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\hskip1cm
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 148
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 53
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<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 148
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 149
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 53
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 149
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
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<210> 150
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 53
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<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
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<400> 150
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
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<210> 151
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<211> 40
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<212> ADN
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<213> Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
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<400> 151
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\hskip1cm
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<210> 152
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<211> 48
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<212> ADN
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<213> Sintético
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<400> 152
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\hskip1cm
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<210> 153
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<211> 51
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<212> ADN
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<213> Sintético
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<400> 153
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\hskip1cm
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<210> 154
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<211> 23
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<212> ADN
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<213> Sintético
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<400> 154
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
Claims (23)
1. Un anticuerpo o dominio de unión a antígeno
que reconoce un epítopo DE en proteína de unión a osteoprotegerina
humana (OPGbp),
a) siendo el epítopo DE un epítopo que comprende
una porción de la secuencia de aminoácido de la región DE de OPGbp
humana desde el radical de aminoácido 212 hasta el radical de
aminoácido 250 de la secuencia
GFYYLYANICFRHHETSGDLATEYLQLMVYVTKTSIKIP, y
b) comprendiendo el epítopo DE la secuencia
DLATE.
2. Un anticuerpo o dominio de unión a antígeno
según la reivindicación 1, que se une a OPGbp murínica que
comprende las sustituciones de aminoácido S229D, V230L, P231A, y
D233E, pero que no se une a OPGbp murínico que carece de dichas
sustituciones.
3. El anticuerpo o dominio de unión a antígeno
según la reivindicación 1, que inhibe la formación o activación de
osteoclastos.
4. El anticuerpo o dominio de unión a antígeno
según la reivindicación 1, que inhibe la resorción ósea.
5. El anticuerpo o dominio de unión a antígeno
según la reivindicación 1, que comprende una cadena ligera y una
cadena pesada, comprendiendo la cadena ligera la secuencia de
aminoácido SEQ ID NO: 43 y comprendiendo la cadena pesada la
secuencia de aminoácido SEQ ID NO: 51.
6. El anticuerpo o dominio de unión a antígeno
según las reivindicación 1 a 5 que es un anticuerpo humano o
humanizado, CDR injertado o quimérico.
7. Una molécula de ácido nucleico aislado que
codifica el anticuerpo o dominio de unión a antígeno según las
reivindicaciones 1 a 6.
8. Un vector de expresión que comprende la
molécula de ácido nucleico según la reivindicación 7.
9. Una célula huésped que comprende el vector de
expresión de la reivindicación 8.
10. La célula huésped según la reivindicación 9,
que es una célula CHO.
11. Un método para producir un anticuerpo que
comprende el cultivo de la célula huésped de la reivindicación 10
en condiciones que permitan la expresión de la molécula de ácido
nucleico.
12. El anticuerpo de las reivindicaciones 1 a 6,
que se selecciona entre IgG, IgM, IgA, IgE e IgD.
13. El anticuerpo de la reivindicación 12, en el
que el isotipo es IgG_{1}, IG_{2}, IgG_{3} o IgG_{4}.
14. Una composición que comprende el anticuerpo
o dominio de unión a antígeno según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 6 y un vehículo farmacéuticamente
aceptable.
15. Uso de un anticuerpo o dominio de unión a
antígeno según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6 para la
preparación de una composición farmacéutica para inhibir la
formación o activación de osteoclasto.
16. Uso de un anticuerpo o dominio de unión a
antígeno según las reivindicaciones 1 a 6 para la preparación de
una composición farmacéutica para inhibir la resorción ósea.
17. Uso de un anticuerpo o un dominio de unión a
antígeno según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6 para la
preparación de una composición farmacéutica para prevenir o tratar
la pérdida de masa ósea.
18. El uso de la reivindicación 17, siendo la
pérdida de masa ósea resultado de osteoporosis, metástasis de
cáncer de huesos; artritis reumatoide, hipercalcemia de malinidad y
osteoporosis inducida por esteroide.
19. El uso de cualquiera de las reivindicaciones
15 a 18, administrándose además una composición que comprende al
menos un agente anti-resortivo óseo.
20. El uso de la reivindicación 19, siendo el
agente anti-resortivo un estrógeno, un fisfosfonato,
un modulador receptor de estrógeno selectivo.
21. El uso de cualquiera de las reivindicaciones
15 a 18, administrándose además una composición que comprende un
agente anabólico.
22. El uso de la reivindicación 21, siendo el
agente anabólico una hormona paratiroides o un complejo de factor
de crecimiento de tipo insulina y una proteína de unión a factor de
crecimiento de tipo insulina.
23. El uso de cualquiera de las reivindicaciones
15 a 18, administrándose además un inhibidor de
interleucina-1 o un inhibidor de factor alfa de
necrosis de tumor.
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