ES2307517T3 - Inmunoconjugados dirigidos contra diana neovascular. - Google Patents
Inmunoconjugados dirigidos contra diana neovascular. Download PDFInfo
- Publication number
- ES2307517T3 ES2307517T3 ES00941443T ES00941443T ES2307517T3 ES 2307517 T3 ES2307517 T3 ES 2307517T3 ES 00941443 T ES00941443 T ES 00941443T ES 00941443 T ES00941443 T ES 00941443T ES 2307517 T3 ES2307517 T3 ES 2307517T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- immunoconjugate
- cells
- domain
- tumor
- human
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K16/00—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
- C07K16/18—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
- C07K16/28—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants
- C07K16/30—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants from tumour cells
- C07K16/3053—Skin, nerves, brain
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P19/00—Drugs for skeletal disorders
- A61P19/02—Drugs for skeletal disorders for joint disorders, e.g. arthritis, arthrosis
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P27/00—Drugs for disorders of the senses
- A61P27/02—Ophthalmic agents
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P29/00—Non-central analgesic, antipyretic or antiinflammatory agents, e.g. antirheumatic agents; Non-steroidal antiinflammatory drugs [NSAID]
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P35/00—Antineoplastic agents
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P9/00—Drugs for disorders of the cardiovascular system
- A61P9/10—Drugs for disorders of the cardiovascular system for treating ischaemic or atherosclerotic diseases, e.g. antianginal drugs, coronary vasodilators, drugs for myocardial infarction, retinopathy, cerebrovascula insufficiency, renal arteriosclerosis
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K2039/505—Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising antibodies
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K2317/00—Immunoglobulins specific features
- C07K2317/60—Immunoglobulins specific features characterized by non-natural combinations of immunoglobulin fragments
- C07K2317/62—Immunoglobulins specific features characterized by non-natural combinations of immunoglobulin fragments comprising only variable region components
- C07K2317/622—Single chain antibody (scFv)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K2319/00—Fusion polypeptide
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K2319/00—Fusion polypeptide
- C07K2319/30—Non-immunoglobulin-derived peptide or protein having an immunoglobulin constant or Fc region, or a fragment thereof, attached thereto
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Public Health (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Immunology (AREA)
- Rheumatology (AREA)
- Orthopedic Medicine & Surgery (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Ophthalmology & Optometry (AREA)
- Pain & Pain Management (AREA)
- Vascular Medicine (AREA)
- Cardiology (AREA)
- Heart & Thoracic Surgery (AREA)
- Physical Education & Sports Medicine (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Neurology (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Steroid Compounds (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Composición útil en el tratamiento de estados patológicos caracterizados porque presentan neovascularización que comprende una proteína de inmunoconjugado construida como un dímero de dos cadenas idénticas, presentando cada una un dominio efector que es el dominio Fc de una cadena pesada de inmunoglobulina IgG1 conjugado con un dominio de direccionamiento que es una forma mutante del factor VII que se une al factor tisular pero que no inicia la coagulación sanguínea, en la que dicha forma mutante del factor VII comprende una mutación seleccionada de entre el grupo constituido por alanina por la lisina 341 y una alanina por la serina 344.
Description
Inmunoconjugados dirigidos contra diana
neovascular.
Esta invención se refiere al diseño, la síntesis
y la administración de reactivos de inmunoconjugados para tratar
pacientes que presentan enfermedades asociadas con el crecimiento de
nuevos vasos sanguíneos (neovascularización) tales como cáncer,
artritis reumatoide, la forma exudativa de degeneración macular y
aterosclerosis. La diana para los inmunoconjugados de la invención
es el factor tisular de receptor transmembrana expresado por células
endoteliales de la neovasculatura. El factor tisular también se
expresa por muchos tipos de células tumorales. Por tanto, los
métodos terapéuticos de la invención son especialmente eficaces en
la inmunoterapia frente a una amplia gama de tumores sólidos. El
reactivo terapéutico es un inmunoconjugado compuesto por un dominio
de direccionamiento y un dominio efector (figura 1). El dominio de
direccionamiento es una forma mutada del factor VII que se une con
alta afinidad y especificidad al factor tisular, pero que no inicia
la coagulación sanguínea. El dominio efector es la región Fc de una
inmunoglobulina IgG1.
Se observa angiogénesis patológica, la inducción
del crecimiento de vasos sanguíneos a partir de los vasos del
tejido circundante, en una variedad de enfermedades, desencadenadas
normalmente por la liberación de factores de crecimiento
específicos para células endoteliales vasculares. La angiogénesis
patológica puede dar como resultado neovascularización, que permite
al tumor sólido crecer y experimentar metástasis, provocando
disfunción visual en trastornos oculares, estimulando la
extravasación de leucocitos en trastornos inflamatorios y/o
influyendo en las consecuencias de enfermedades cardiovasculares
tales como aterosclerosis. De manera colectiva, éstas se denominan
algunas veces enfermedades angiogénicas.
Dado que la supervivencia y el crecimiento de un
tumor sólido depende críticamente del desarrollo de una
neovasculatura, el cáncer es una enfermedad angiogénica primordial
(Folkman, J. (1995) N. Engl. J. Med. 333,
1757-1763). Muchos cánceres progresan en estadios,
comenzando con proliferación de células tumorales primarias, a
continuación penetración de células tumorales en el sistema
circulatorio, colonización en sitios metastásicos diseminados y
proliferación de las células tumorales metastatizadas que son
responsables de la mayoría de muertes por cáncer (Vogelstein, B., y
Kinzler, K.W. (1993) TIG 9, 141-143). Debido a que
el cáncer permanece a menudo sin detectar hasta que la enfermedad
ha alcanzado el estadio metastásico, las terapias de cáncer que
pueden erradicar la infraestructura vascular y las células tumorales
metastásicas son particularmente deseables.
La angiogénesis también desempeña un papel
significativo en la artritis reumatoide (Szekanez, Z., et al.
(1998) J. Invest. Med. 46, 27-41). La artritis
reumatoide (RA) es una enfermedad inflamatoria sistémica crónica
que se produce en todo el mundo en todos los grupos étnicos y que
afecta predominantemente a las articulaciones diartrodiales y
frecuentemente a una variedad de otros órganos. El tejido sinovial
con RA está exhaustivamente neovascularizado. En la RA, migran
leucocitos inflamatorios al sinovio a través de la capa endotelial
de los vasos sanguíneos, dando como resultado una inflamación
sinovial y, finalmente, la destrucción de la articulación.
La angiogénesis subyace a la mayoría de las
enfermedades oculares que dan como resultado pérdida de visión
catastrófica (Friedlander, M., et al. (1996) Proc. Natl.
Acad. Sci. USA 93, 9764-9769). La causa principal
de ceguera en individuos por encima de 55 años de edad es la forma
exudativa ("húmeda") de degeneración macular relacionada con
la edad (ARMD) y, por debajo de 55 de edad, retinopatía diabética
proliferativa (PDR). Aunque la ARMD y PDR son enfermedades
prototípicas para la neovascularización coroidal y retinal,
respectivamente, otros estados degenerativos o inflamatorios pueden
provocar selectivamente angiogénesis de cualquier vasculatura
(ibidem.).
Por tanto, un enfoque al tratamiento de estos
estados patológicos, y particularmente de cáncer, ha sido
comprometer la función o el crecimiento de la neovasculatura
principalmente inhibiendo el crecimiento de nuevos vasos sanguíneos
(Chaplin, D.J., y Dougherty, G.J., (1999) Br. J. Cancer, 80,
57-64). Existen varias ventajas en el
direccionamiento vascular. En primer lugar, el daño a los vasos
sanguíneos puede detener el flujo sanguíneo y, aplicado al cáncer,
puede desencadenar la muerte de muchas células tumorales
dependientes. En segundo lugar, las células diana están adyacentes
al torrente sanguíneo, potenciando la administración del fármaco. En
tercer lugar, no es probable que surjan mutaciones resistentes al
tratamiento en células endoteliales vasculares.
Se han sugerido varias terapias
antiangiogénicas, incluyendo enfoques basados en terapia génica, de
anticuerpos y farmacológica. Éstos incluyen inhibidores de
metaloproteinasa, polisulfato de pentosano y
TNP-470, inhibidores selectivos de la tirosina
cinasa e inhibidores peptídicos de angiostatina y endostatina
(ibidem, y revisiones citadas en la misma). Éstos previenen
normalmente la angiogénesis en diversos estadios de la formación de
vasos, es decir, degradación de la membrana basal, migración de
células endoteliales, proliferación de células endoteliales y
formación del tubo. Sería deseable poseer terapias mejoradas que se
dirijan no solo a la angiogénesis, sino también a la neovasculatura
ya formada en estados patológicos angiogénicos.
Un objetivo de la invención consiste en
proporcionar un nuevo tratamiento para enfermedades que implican el
crecimiento de nuevos vasos sanguíneos (neovasculatura), incluyendo
cáncer, artritis reumatoide, la forma exudativa de degeneración
macular y aterosclerosis. Otro y más específico objetivo de la
invención consiste en proporcionar una terapia dirigida a la
neovasculatura que no sólo inhibe la angiogénesis observada en estos
estados patológicos, sino que también destruye la estructura
neovascular.
Estos y otros objetivos se logran mediante la
presente invención, que proporciona una composición que contiene
por lo menos un inmunoconjugado construido como un dímero de dos
cadenas idénticas, presentando cada una un dominio efector que es
la región Fc de una inmunoglobulina IgG1 humana conjugado con un
dominio de direccionamiento que comprende una forma mutante del
factor VII humano, tal como un factor VII con una sustitución de
alanina por lisina 341 y/o alanina por serina 344. Dado que el
factor tisular se expresa por células endoteliales que revisten la
neovasculatura del tumor pero no la neovasculatura normal, y también
por muchos tipos de células tumorales, los inmunoconjugados del
factor VII de la invención son especialmente eficaces en la
inmunoterapia frente a una amplia gama de tumores sólidos. La
invención difiere de las invenciones descritas anteriormente que
activan la coagulación en la neovasculatura y/o introducen factor
tisular o mutantes de factor tisular en la neovasculatura (tal como
se describió por Edgington y Morrissey en la patente US nº
6.001.978), lo que es superfluo porque se expresa específicamente
factor tisular por las células endoteliales de la neovasculatura,
en dos aspectos principales: se utiliza factor tisular como una
diana para inducir una respuesta inmunitaria citolítica mediada por
inmunoconjugados de la invención, en lugar de cómo un iniciador del
proceso de coagulación sanguínea, y se inicia una respuesta
inmunitaria citolítica que destruye la neovasculatura sin activar la
ruta de la coagulación sanguínea.
También se dan a conocer procedimientos para la
administración sistémica o local de los inmunoconjugados, que
implican la utilización de proteínas de inmunoconjugado purificadas
en composiciones farmacéuticas convencionales, o sistemas de vector
portadores de un ADNc que codifica para una forma secretada del
inmunoconjugado. Los tratamientos según la invención incluyen, pero
no se limitan a, inyección intravenosa o intratumoral periódica o
continua, o inyección en otros sitios, o cantidades eficaces de uno
o más tipos de proteína de inmunoconjugado purificada. Las formas
de realización alternativas implican el tratamiento de pacientes
mediante inyección intravenosa o intratumoral, o inyección en otros
sitios, de una cantidad eficaz de un vector de expresión portador
de un ADN que codifica para una forma secretada de uno o más tipos
de la proteína de inmunoconjugado. Los ejemplos de lo último
incluyen el tratamiento de pacientes mediante inyección intravenosa
o intratumoral, o inyección en otros sitios, de una vector
adenoviral de replicación deficiente o un vector adenoasociado
portador de un ADNc que codifica para una forma secretada de los
inmunoconjugados de la invención.
En algunas formas de realización tales como
inmunoterapia del cáncer, se administran los inmunoconjugados de la
invención junto con otro tipo de inmunoconjugado que presenta un
dominio de direccionamiento diferente. Éstos son normalmente
fragmentos de molécula Fv o V_{H} de cadena única aislados a
partir de bibliotecas de fagos de fusión de scFv o V_{H} humanas
que se unen selectivamente a moléculas de la superficie celular
expresadas en células tumorales, células endoteliales vasculares,
células invasivas en el sinovio en condiciones patológicas y
similares.
\vskip1.000000\baselineskip
La figura 1 es un diagrama que ilustra la
organización de una molécula de inmunoconjugado de la invención. TD:
dominio de direccionamiento. H: región de bisagra de una
inmunoglobulina IgG1 con 2 puentes disulfuro. CH2 y CH3: regiones
constantes de una inmunoglobulina IgG1. El dominio de
direccionamiento consiste normalmente en el factor VII humano con un
sitio activo mutado o una molécula scFv o V_{H} humana. El dominio
efector consiste normalmente en la región Fc de una IgG1 humana, sin
modificar o conjugada con un agente citotóxico tal como una molécula
radiactiva o una molécula de colorante fotoactivable.
La figura 2 es un gráfico de barras que muestra
la lisis dependiente de inmunoconjugado de células de melanoma
humanas mediante células citolíticas naturales (NK) humanas. El
dominio de direccionamiento del inmunoconjugado es una molécula scFv
humana específica de melanoma y el dominio efector es la región Fc
de una inmunoglobulina IgG1 humana. Se marcaron la línea celular de
melanoma humano A-2058 y el control de células de
fibroblastos humanos con el colorante fluorescente
Calcein-AM. Se midió mediante fluorescencia residual
la fracción de melanoma o células de fibroblastos que permanecían
intactas tras su exposición a células NK solas (barra A) o a células
NK con el inmunoconjugado de scFV E26-1
(barra B). Se varió la porporción de células efectoras NK con
respecto a células diana (E/T) desde 3 hasta 20. Se realizaron tres
juegos completos de experimentos tanto para las células de melanoma
como para las de fibroblastos; para cada experimento, los ensayos de
citólisis se realizaron por cuadriplicado. Las barras representadas
en la figura representan el promedio de los ensayos de citólisis
para los tres experimentos, que generalmente coincidían en el 10%.
Se calculó el % de citólisis tal como se describe en el ejemplo 1.
Se obtuvieron resultados similares con el inmunoconjugado de scFv
G71-1.
La figura 3 es un gráfico de barras que muestra
la lisis dependiente de inmunoconjugado de células de melanoma
humanas mediante el complemento. El procedimiento fue tal como se
describió en la leyenda de la figura 2, con la excepción de que se
utilizó suero humano o componentes del complemento del conejo
purificados en lugar de células NK. El inmunoconjugado y reactivos
del complemento para cada ensayo fueron tal como se muestran en el
ejemplo 1, tabla 1.
La figura 4 representa un ensayo
inmunohistoquímico para detectar la unión de un inmunoconjugado de
factor VII de ratón mutado (mfVIIasm) a células tumorales y
células endoteliales vasculares tumorales en un xenoinjerto hecho
crecer en ratones SCID. El 2º anticuerpo fue anticuerpo anticadena
\gamma humana marcado con AP, y el sustrato de AP fue BCIP/NBT que
produce un color azul, la contratinción fue verde de metilo. Panel
A: control teñido con hematoxilina + eosina que muestra una
vascularización extensa del xenoinjerto. Panel B: inmunohistoquímica
con el inmunoconjugado mfVIIasm que muestra tinción intensa
tanto de células endoteliales vasculares como tumorales. Panel C:
control inmunohistoquímico sin el inmunoconjugado
mfVIIasm.
La figura 5 son gráficos de líneas que muestran
concentraciones de los inmunoconjugados G71-1
scFv y mfVIIasm en la sangre de ratones SCID tras inyecciones
intravenosas de vectores adenovirales de replicación deficiente que
codifican para los inmunoconjugados. Se les inyectó a los ratones en
el día 0 y el día 7 2x10^{11} adenovirus que codifican para el
inmunoconjugado G71-1 (A) o 4x10^{11}
adenovirus que codifican para el inmunoconjugado mfVIIasm
(B). Se determinó la concentración del inmunoconjugado codificado en
la sangre mediante ELISA. Cada punto es el promedio de la
concentración para los 5 ratones en cada grupo.
La figura 6 es un gráfico de líneas que muestra
el efecto inhibidor de los inmunoconjugados
G71-1 y mfVIIasm sobre el crecimiento
de un xenoinjerto de melanoma humano en ratones SCID. Para cada
curva, se les inyectó a 5 ratones SCID por vía subcutánea 5x10^{5}
células TF2. Cuando los xenoinjertos habían crecido hasta un tamaño
palpable, los ratones recibieron inyecciones en la vena de la cola
en los días 0, 7 y 14 de los adenovirus indicados en la figura. La
cantidad de adenovirus inyectados fue de 4x10^{11} para el
control, 2x10^{11} para el adenovirus que codifica para el
inmunoconjugado G71-1 y 4x10^{11} para el
adenovirus que codifica para el inmunoconjugado mfVIIasm. Los
volúmenes tumorales estimados son los promedios para los 5 ratones
en cada grupo.
La figura 7 es un gráfico de barras que muestra
los pesos tumorales de los xenoinjertos del experimento del que se
informa en la figura 6 y el ejemplo 2. Se diseccionaron los
xenoinjertos de los ratones en el día 20, que era 6 días tras la
última inyección de adenovirus. Las alturas de las barras son los
pesos promedio para los 5 ratones en cada
grupo.
grupo.
La figura 8 es un gráfico de líneas que muestra
el efecto inhibidor de los inmunoconjugados
G71-1 y mfVIIasm sobre el crecimiento
de un xenoinjerto de melanoma humano grande en ratones SCID. A cada
ratón se le inyectó por vía subcutánea 5x10^{5} células de
melanoma, y se dejaron crecer los xenoinjertos hasta un volumen
tumoral estimado de 50 mm^{3} sobre la superficie de la piel (día
1). Se inyectó una mezcla de 2x10^{11} adenovirus que codifican
para el inmunoconjugado G71-1 y 7x10^{11}
adenovirus que codifican para el inmunoconjugado mfVIIasm en
la vena de la cola de 5 ratones en los días 1, 6, 12 y 19. Como
control, se les inyectó a 5 ratones 4x10^{11} adenovirus que no
codificaban para un inmunoconjugado. Los volúmenes tumorales
estimados son los promedios para los 5 ratones en cada grupo. Uno de
los ratones inyectados con los adenovirus que codifican para los
inmunoconjugados se encontró muerto en el día 17; los volúmenes
tumorales estimados en los días posteriores son los promedios para
los 4 ratones restantes.
La figura 9 es un gráfico de líneas que
representa el efecto inhibidor del inmunoconjugado mfVIIasm
sobre el crecimiento de un xenoinjerto de melanoma humano que
expresa un nivel bajo de factor tisular. Se les inyectó a los
ratones por vía subcutánea 5x10^{5} células LXSN, y cuando el
xenoinjerto había crecido hasta un tamaño palpable (día 0), se les
inyectó a 5 ratones por vía intravenosa 9 x10^{11} adenovirus que
codifican para el inmunoconjugado mfVIIasm y se les inyectó a
5 ratones 4x10^{11} adenovirus control. Se realizaron inyecciones
adicionales en los días 7, 13, 21 y 24 y en el día 25 se
diseccionaron los ratones para el examen morfológico e
inmunohistoquímico. Los volúmenes tumorales estimados son los
promedios para los 5 ratones en cada grupo.
La figura 10 ilustra la histoquímica de los
xenoinjertos de melanoma humanos del experimento del que se informa
o en la leyenda de la figura 9 y el ejemplo 2. Se diseccionaron los
xenoinjertos en el día 25, se incrustaron en parafina y se tiñeron
secciones con hematoxilina + eosina. Panel A: xenoinjerto de un
ratón control inyectado con el adenovirus que no codifica para un
inmunoconjugado. Panel B: xenoinjerto de un ratón inyectado con el
adenovirus que codifica para el inmunoconjugado mfVIIasm.
La figura 11 es un gráfico de líneas que muestra
el efecto de la dosificación de vectores adenovirales inyectados por
vía intratumoral sobre el crecimiento de un tumor de melanoma humano
en ratones SCID. En primer lugar, se les inyectó a los ratones por
vía subcutánea la línea celular de melanoma humano TF2, y cuando
había crecido un tumor cutáneo hasta el tamaño indicado en el día 0,
se le inyectó al tumor una mezcla de los dos vectores adenovirales
que codifican para los inmunoconjugados mfVIIasm y
G71-1. La dosis para los dos vectores fueron
las siguientes. \medcirc: 7x10^{8} UI; \nabla: 2x10^{9} UI;
\Box: 6x10^{9} UI. La dosis para el control, \lozenge, se
inyectó con 6x10^{9} UI de un vector adenoviral que no codificaba
para un inmunoconjugado.
La figura 12 es un gráfico de líneas que muestra
el efecto de una alta dosis de vectores adenovirales inyectados por
vía intratumoral sobre el crecimiento de un tumor de melanoma humano
en ratones SCID. En primer lugar, se les inyectó a los ratones por
vía subcutánea la línea de melanoma humano TF2, y cuando el tumor
cutáneo había crecido hasta el tamaño indicado en el día 0, se le
inyectó al tumor 6x10^{9} UI de los siguientes vectores
adenovirales: \medbullet, vector control (3 ratones);
\blacksquare, vector que codifica para el inmunoconjugado
mfVIIasm (5 ratones); >, mezcla de los dos vectores que
codifican para los inmunoconjugados mfVIIasm y
G71-1 (6 ratones). Se realizaron inyecciones
adicionales en los días 2, 5, 7, 9, 11, 13, 15 y 17. Los puntos en
cada curva son el promedio (\pm 20%) de las mediciones para todos
los ratones en el grupo correspondiente.
La figura 13 son fotografías de tumores de
melanoma de ratones SCID a los que se les inyectaron por vía
intratumoral los vectores adenovirales que codifican para una mezcla
de los inmunoconjugados mfVIIasm y
G71-1 o un control de vector adenoviral
vacío. El experimento se describe en la leyenda de la figura 12
anterior y en el ejemplo 3. Se diseccionaron los tumores 2 días tras
la última inyección y se fotografiaron. La escala completa en la
parte superior de la figura es de 1 cm.
La figura 14 son fotografías que muestran la
distribución de un vector adenoviral en el tumor y en el hígado tras
la inyección intratumoral. Se inyectó el vector control que codifica
para la proteína GFP pero no para un inmunoconjugado en 3 sitios de
un tumor cutáneo de melanoma humano que crece en ratones SCID. La
dosis de vector total fue de 6x10^{9} UI. Se diseccionaron el
tumor y el hígado 40 h tras la inyección y se examinaron intactos
bajo un microscopio de disección con óptica de fluorescencia. Se
detectó la señal de GFP con 480 nm de excitación y 630 nm de
emisión, y se detectó la señal de fondo con 577 nm de excitación y
630 nm de emisión. Panel A: GFP de tumor. Panel B: fondo de tumor.
Panel C: GFP hepática. Panel D: fondo hepático. También se detectó
una mancha fluorescente brillante similar a la del panel A en otros
dos sitios de tumor, presumiblemente correspondientes a los sitios
de inyección. Las fotografías están enfocadas a un nivel en los
tejidos. Sin embargo, también pudo detectarse la mancha de GFP
enfocando por encima y por debajo de ese nivel, lo que sugiere que
las células tumorales adyacentes a la trayectoria atravesada por la
aguja de inyección son las únicas células infectadas por el
vector.
La figura 15 muestra secciones hepáticas de
ratones SCID a los que se les inyectó por vía intravenosa o
intratumoral los vectores adenovirales. El experimento intravenoso
se describe en el ejemplo 2, y el experimento intratumoral se
describe en el ejemplo 3. A los paneles en la izquierda se les
inyectó el vector control y a los paneles a la derecha se les
inyectó una mezcla de los dos vectores que codifican para los
inmunoconjugados mfVIIasm y G71-1. Se
diseccionaron los hígados 2 días tras la última inyección, se
fijaron en formaldehído y se incrustaron en parafina. Se tiñeron las
secciones con hematoxilina y eosina y se fotografiaron a un aumento
de 100X.
La figura 16 es un gráfico de líneas que muestra
el efecto de inyecciones intravenosas en ratones inmunocompetentes
del vector adenoviral que codifica para el inmunoconjugado
mfVIIasm sobre el crecimiento de un melanoma cutáneo de
ratón. A los ratones C57BL/6 se les inyectó por vía subcutánea la
línea de melanoma de ratón B16F10, y cuando había crecido un tumor
cutáneo hasta el tamaño indicado en el día 0, se le inyectó al tumor
3x10^{10} PI del vector que codifica para el inmunoconjugado
mfVIIasm. El dominio Fc del inmunoconugado se derivó de una
inmunoglobulina IgG1 de ratón. Se le inyectó de nuevo al tumor en el
día 5 1,5x10^{10} PI.
La terapia de inmunoconjugado antivasculatura se
basa en la observación de que la vasculatura de mamíferos adultos
normales está generalmente en un estado quiescente (excepto para
ciertos procesos tales como el ciclo reproductor femenino y la
curación de heridas), al contrario que la neovasculatura que se
forma en ciertos estados patológicos tales como un tumor en
crecimiento que está en un estado activo de angiogénesis. Por tanto,
cualquier diferencia molecular entre células endoteliales
vasculares quiescentes o en proliferación sirve como diana para la
vasculatura patológica.
Normalmente, se activa un cambio desde un estado
quiescente hasta un estado angiogénico en el tejido vascular
patológico tal como el observado en el cáncer mediante el factor de
crecimiento endotelial vascular (VEGF), que se secreta por células
tumorales y se une con alta afinidad y especificidad a receptores de
VEGF en células endoteliales vasculares. Otra respuesta activada
por la unión de VEGF a receptores en células endoteliales
vasculares es la expresión de factor tisular, un receptor
transmembrana que se une al factor plasmático VII/VIIa para iniciar
la coagulación sanguínea. Debido a que sólo las células endoteliales
vasculares que presentan VEGF unido expresan factor tisular, una
diana supuesta para la vasculatura del tumor es el factor tisular
expresado en células endoteliales que debe unirse al factor VII/VIIa
que circula en la sangre.
Esta invención se basa en el hallazgo de que los
inmunoconjugados de la invención median una respuesta citolítica
frente a células seleccionadas como objetivo por las células
citolíticas naturales (NK) y las rutas del complemento del sistema
inmunitario (Wang, B., et al. (1999) Proc. Natl. Acad. Sci.
USA 96, 1627-1632). Dado que la unión entre el
factor tisular de receptor de la superficie celular expresado en la
superficie interna de vasos sanguíneos en crecimiento, pero no en
vasos sanguíneos estables presentes en tejidos normales, y su factor
VII de ligando natural muestra alta especificidad y afinidad (Hu,
Z., et al. (1999) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 96,
8161-8166), la invención proporciona un nuevo
protocolo de inmunoterapia para el tratamiento de enfermedades
asociadas con la neovascularización. La invención también
proporciona una eficacia potenciada para tratamientos del cáncer
debido a que el factor tisular también se expresa por muchos tipos
de células tumorales (Callander, N.S., et al. (1992) Cancer,
70, 1194-1201).
Sin embargo, debido a que la unión de un
inmunoconjugado de factor VII al factor tisular podría provocar
coagulación intravascular diseminada, se utilizan en la invención
mutantes del factor VII que inhiben la coagulación sin afectar a su
afinidad por el factor tisular. Estos inmunoconjugados que se unen
al factor tisular pero que no inician la coagulación sanguínea
compiten con el factor VII/VIIa endógeno por la unión al factor
tisular. Esta competición favorece fuertemente al inmunoconjugado
(Hu, et al., mencionado anteriormente) debido a que contiene
dos dominios de direccionamiento del factor VII (figura 1),
proporcionando un efecto de avidez que falta en la molécula de
factor VII endógena monomérica. El sitio activo del factor VII
humano se muta mediante mutagénesis dirigida al sitio, sustituyendo
alanina por Lys 341 y/o por Ser 344, con el fin de bloquear la
actividad proteolítica que inicia el proceso de coagulación
sanguínea cuando el factor VII se une al factor tisular. Debido a
que tanto los dominios de direccionamiento como efector pueden
derivarse de fuentes humanas, se minimizan las respuestas de
rechazo inmunitario significativas en pacientes humanos.
En la práctica generalizada de la invención, se
construyen inmunoconjugados tales como los expuestos en la figura 1
como un dímero de proteína que comprende dos cadenas, presentando
cada una un dominio efector conjugado con un dominio de
direccionamiento. Pueden utilizarse varios tipos de dominio efector,
siempre que estos muestren citotoxicidad tras la unión del
inmunoconjugado a su diana. Muchas proteínas de inmunoconjugado
típicas de la invención presentan, como dominio efector, la región
Fc de una inmunoglobulina IgG1. Tal como se utiliza en la presente
memoria, éste incluye variantes y versiones truncadas que muestran
la misma función biológica que la región Fc. El dominio efector
está conjugado con un dominio de direccionamiento que comprende una
forma mutante de factor VII que se une al factor tisular pero que
no inicia la coagulación sanguínea tal como se describió
anteriormente.
Las proteínas de inmunoconjugado de la invención
se administran a un paciente que presenta una enfermedad asociada
con la neovascularización tal como cáncer, artritis reumatoide, la
forma exudativa ("húmeda") de degeneración macular o
aterosclerosis. La administración puede ser local o sistémica,
dependiendo del tipo de estado patológico implicado en la terapia.
Tal como se utiliza en la presente memoria, el término
"paciente" incluye tanto seres humanos como otras especies; la
invención presenta así tanto aplicaciones médicas como
veterinarias. En composiciones y tratamientos veterinarios, se
construyen inmunoconjugados que utilizan dominios de
direccionamiento y efector derivados de las especies
correspondientes.
La administración puede ser mediante cualquier
procedimiento conocido en la técnica tal como, por ejemplo,
inyección intravenosa, intramuscular, intratumoral, subcutánea,
intrasinovial, intraocular, intraplaca o intradérmica del
inmunoconjugado purificado o de un vector adenoviral de replicación
deficiente, u otros vectores virales que portan un ADNc que
codifica para una forma secretada del inmunoconjugado. Otras vías de
administración pueden ser administración parenteral de líquidos y
similares. En las formas de realización preferidas, el paciente se
trata mediante inyección intravenosa o intratumoral, o inyección en
otros sitios, de una o más proteínas de inmunoconjugado, o mediante
inyección intravenosa o intratumoral, o inyección en otros sitios,
de uno o más vectores de expresión que portan un ADNc que codifica
para una forma secretada de uno o más tipos de proteínas de
inmunoconjugado. En algunas formas de realización, el paciente se
trata mediante inyección intravenosa o intratumoral de una cantidad
eficaz de uno o más vectores adenovirales de replicación deficiente,
o uno o más vectores adenoasociados que portan un ADNc que codifica
para una forma secretada de uno o más tipos de proteínas de
inmunoconjugado. Se ilustra un procedimiento que utiliza un vector
adenoviral de replicación deficiente a continuación en la presente
memoria. Muchas formas de realización típicas implican inyecciones
intratumorales y/o intramusculares de cantidades eficaces de un
vector que codifica para una forma secretada de un inmunoconjugado.
Cuando se utilizan vectores para cáncer, la inyección intratumoral
del vector proporciona una ventaja de seguridad importante sobre la
inyección intravenosa, debido a que el vector infecta
predominantemente las células del tumor inyectado.
Las administraciones que implican inyecciones de
proteínas de inmunoconjugado utilizan composiciones en las que la
proteína de inmunoconjugado, o una combinación de proteínas, se
dispersa o solubiliza en un vehículo farmacéuticamente aceptable.
En algunos casos, se sintetizan inmunoconjugados en células S2 de
Drosophila transfectadas con el vector de expresión
pMK33/higromicina, o en células de ovario de hámster chino (CHO)
transfectadas con el vector de expresión pcDNA3.1, o en un sistema
de expresión de baculovirus, portando cada vector un ADNc que
codifica para una forma secretada del inmunoconjugado.
La cantidad de inmunoconjugado necesaria para
llevar a cabo el tratamiento terapéutico no es fija per se,
y depende necesariamente de la concentración de componentes en la
composición administrada junto con un vehículo farmacéutico,
compuestos adyuvantes en la composición administrada que potencian
la respuesta del sistema inmunitario ilustrados de modo más
completo a continuación y de la edad, peso y estado clínico del
paciente que va a tratarse. Las composiciones preferidas
administran inmunoconjugado(s) en cantidades eficaces sin
producir toxicidad inaceptable para el paciente. Las composiciones
farmacéuticas o formulaciones de la invención también pueden
incluir otros vehículos, adyuvantes, estabilizadores, conservantes,
agentes de dispersión y otros agentes convencionales en la técnica
que se consideran en el tipo de formulación en cuestión.
Tal como se aplica en el cáncer, la invención
utiliza inmunoconjugados que presentan un dominio de
direccionamiento que selecciona específicamente como diana células
tumorales humanas o células endoteliales de la vasculatura del
tumor o ambas, y un dominio efector que activa una respuesta
inmunitaria citolítica o efecto citotóxico frente a las células
seleccionadas como diana. Tal como se describió anteriormente, los
inmunoconjugados que presentan, como dominio efector, la región Fc
de la inmunoglobulina IgG1, incluyendo la bisagra, conjugado con un
factor VII humano mutante que no inicia la coagulación sanguínea,
son particularmente eficaces en muchos tratamientos del cáncer
debido a que seleccionan como diana factor tisular expresado tanto
en células tumorales como de la vasculatura del tumor. En algunas
formas de realización, los efectos terapéuticos pueden potenciarse
adicionalmente administrando al paciente otra clase de
inmunoconjugados que seleccionan selectivamente como diana el
tumor, tales como inmunoconjugados que presentan, como dominio de
direccionamiento, un fragmento de anticuerpo scFv o V_{H}
anti-célula tumoral humana aislado seleccionando una
biblioteca de fagos de fusión de scFv o V_{H}, derivada de
linfocitos de sangre periférica de pacientes con cáncer, frente a
las células tumorales descritas previamente (Cai, X., y Garen, A.
(1997) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 94, 9261-9266).
Combinaciones de inmunoconjugados, administrados simultánea o
secuencialmente tal como se describió anteriormente, son
particularmente ventajosas cuando se observa sinergia que potencia
la citólisis de las células seleccionadas como diana.
En tratamientos del cáncer, se usan
inmunoconjugados antitumorales para tratar una variedad de cánceres,
particularmente tumores sólidos primarios o metastásicos,
incluyendo cáncer de melanoma, renal, de próstata, de mama, de
ovarios, cerebral, neuroblastoma, de cabeza y cuello, pancreático,
de vejiga y pulmonar. Los inmunoconjugados pueden utilizarse para
seleccionar como diana la vasculatura del tumor, particularmente
células endoteliales vasculares y/o células tumorales. La
vasculatura del tumor ofrece varias ventajas para la inmunoterapia,
tal como sigue. (i) Algunas de las dianas vasculares, incluyendo el
factor tisular, deben ser iguales para todos los tumores. (ii) Los
inmunoconjugados dirigidos a la vasculatura no tienen que infiltrar
una masa tumoral con el fin de alcanzar sus dianas. (iii) El
direccionamiento a la vasculatura del tumor debe generar una
respuesta terapéutica amplificada, debido a que cada vaso sanguíneo
nutre numerosas células tumorales cuya viabilidad depende de la
integridad funcional del vaso. (iv) No es probable que la
vasculatura desarrolle resistencia a un inmunoconjugado, debido a
que requeriría modificación de la capa de endotelio completa que
reviste un vaso. A diferencia de procedimientos antiangiogénicos
descritos previamente que inhiben el nuevo crecimiento vascular, los
inmunoconjugados de la invención provocan una respuesta citolítica
frente a la neovasculatura.
Los inmunoconjugados de la invención también
pueden ser eficaces para tratar pacientes con artritis reumatoide,
la forma exudativa ("húmeda") de degeneración macular,
aterosclerosis y otras enfermedades asociadas con la
neovascularización. La administración de un inmunoconjugado dirigido
al factor tisular mediante un factor VII humano mutado, que está
conjugado con el dominio Fc de una inmunoglobulina IgG1, puede
generar una respuesta inmunitaria citolítica frente a las células
endoteliales vasculares que invaden el sinovio en la artritis
reumatoide y que expresan factor tisular. Asimismo, los
inmunoconjugados del factor VII también pueden ser eficaces para
tratar la forma exudativa (húmeda) de degeneración macular debido a
la neovascularización extensa observada en ese estado patológico.
Los inmunoconjugados de la invención también pueden ser eficaces
para el tratamiento de aterosclerosis generando una respuesta
inmunitaria citolítica frente a células que expresan factor tisular
en placas.
En resumen, un programa de inmunoterapia global
según la invención implica la construcción de inmunoconjugados que
contienen, como dominio de direccionamiento, el factor VII con un
sitio activo mutado, que se une con alta avidez y especificidad al
factor tisular expresado en células endoteliales neovasculares y
también en células tumorales sin provocar coagulación sanguínea.
Los inmunoconjugados que contienen como dominio efector la región
Fc de una inmunoglobulina IgG1 median la lisis de células
seleccionadas como diana por células NK y el complemento, dando
como resultado la destrucción de la neovasculatura. Una ventaja
significativa de la invención es el hecho de que los
inmunoconjugados que contienen dos dominios de direccionamiento de
factor VII, al contrario que moléculas monoméricas de factor VII
endógenas, muestran una unión significativamente superior a la del
factor VII exógeno a células que expresan el factor tisular,
compitiendo de manera satisfactoria en presencia de ligando natural
en exceso. El ejemplo 2 a continuación ilustra un inmunoconjugado
que compitió de manera satisfactoria en presencia de un exceso
molar de por lo menos aproximadamente diez veces de ligando
natural, pero la invención comprende otras formas de realización que
muestran afinidad inferior o superior. La unión entre el factor VII
endógeno al factor tisular es una de las reacciones más específicas
y fuertes conocidas, con una K_{d} en el intervalo
picomolar. No obstante, esta invención mejora significativamente la
unión normal del factor VII al factor tisular como resultado del
efecto de avidez de presentar dos secuencias de factor VII en una
molécula de inmunoconjugado. Este efecto de avidez potencia el
direccionamiento y la unión de los inmunoconjugados de la
invención, de modo que compiten eficazmente con el factor VII
endógeno y la unión persiste durante más tiempo, de modo que la
respuesta inmunitaria provocada se maximiza. La respuesta
inmunitaria puede maximizarse adicionalmente administrando a un
paciente, como terapia complementaria, otro inmunoconjugado que
presenta un dominio efector, que es la región Fc de una
inmunoglobulina IgG1, conjugado con un dominio de direccionamiento
que es un fragmento de anticuerpo scFv o V_{H} que se une a la
neovasculatura y/o, en el caso de cáncer, al tipo de célula tumoral
del paciente.
Los ejemplos presentados en la presente memoria
ilustran y explican adicionalmente la presente invención y no deben
considerarse como limitativos en ningún aspecto. Algunos de los
procedimientos usados para generar y caracterizar inmunoconjugados
de la invención y anticuerpos monoclonales componentes se han
descrito en Cai, X., y Garen, A. (1995) Proc Natl. Acad. Sci. USA
92, 6537-6541, (1996) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 93,
6280-6285 y la referencia de 1997 mencionada
anteriormente; en el documento PCT/IB96/01032 de la Yale University
y Garen y Cai, publicado el 23 de enero de 1997 como documento WO
97/02479, en trámite actualmente en los EE.UU. como solicitud con
número de serie 08/983.607 presentada el 27/04/98, admitida el
3/3/00; en Wang, et al., mencionado anteriormente; y en Hu,
Z., et al., mencionado anteriormente.
En este ejemplo, se sintetizan y se someten a
prueba inmunoconjugados que contienen un dominio de direccionamiento
de Fv de cadena sencilla (scFv) humano conjugado con el dominio
efector Fc de IgG1 humana. Se aislaron originalmente los dominios
de direccionamiento de scFv como clones específicos de melanoma a
partir de una biblioteca de fagos de fusión de scFv, derivados del
repertorio de anticuerpos de un paciente con melanoma vacunado
(descrito con más detalle en las referencias de Cai y Garen
mencionadas anteriormente). Los inmunoconjugados purificados
mostraron una especificidad de unión similar a la de los clones de
fagos de fusión: se produjo unión a células de melanoma humano pero
no a melanocitos humanos ni a otros tipos varios de células normales
y células
tumorales.
tumorales.
\vskip1.000000\baselineskip
Cultivos celulares. Se hicieron crecer
las líneas de melanoma humano permanentes A2058 (Colección Americana
de Cultivos Tipo, Rockville, MD) y TF2 en DMEM + FCS al 10%. Se
extruyeron cultivos primarios de células endoteliales
microvasculares humanas y células de fibroblastos del prepucio de
recién nacidos y se cultivaron en medio RPMI complementado con FBS
al 8% y suero de periparto humano al 2%; se complementaron
adicionalmente las células endoteliales con
3-isobutil-1-metilxanteno
(IBMX) 33 mM y dibutiril-AMPc 0,5 mM. Se prepararon
cultivos primarios de melanocitos humanos a partir de prepucio de
recién nacidos por el Skin Disease Research Center en la Yale
University School of Medicine. Se hicieron crecer las células de
riñón humano transformadas 293-EBNA (Invitrogen) y
las células de ovario de hámster chino (CHO) en RPMI + FCS al 10%.
(v) Se hicieron crecer células de Drosophila (Schneider S2)
a 25ºC en medio Ex-cell 301 (JRH biosciences) + FBS
al 10%. Se aislaron las células NK en reposo de donantes normales
mediante leucoforesis e inmunoselección y se utilizaron en el plazo
de 18 h tras el aislamiento; la mayoría de las células (>97%)
eran CD3-, CD56+ y CD16+.
Preparación de los inmunoconjugados. Los
procedimientos implicaron la transfección del vector de expresión
pcDNA3.1 (Invitrogen) en células CHO, o el vector de expresión
pMK33/pMtHy en células de Drosophila; cada vector portaba un
ADNc que codificaba para un inmunoconjugado secretado (figura 1). Se
sintetizaron los ADNc para los dominios de direccionamiento de scFv
a partir del fago de fusión correspondiente (1) usando cebadores de
PCR que contenían sitios SacI o BamHI tal como sigue: a)
GTCGAGCAGAGCTCCAGGTGCAGCTGGTGCAGTCTGGGGCT
GAGGTGAGGTGAAGAAGCC (SEC ID nº: 1); b) ACGTTCAGGGGATCCACCTAGGACGGTCAGCTTGGTCCC (SEC ID nº: 2). Se sintetizó el dominio efector Fc humano a partir de una biblioteca de ADNc derivada de linfocitos de sangre periférica humana, usando PCR con cebadores que contenían sitios BamHI y SalI, tal como sigue: a) ACCTTGCAGGATCCGCAAGACCCAAATCTTGTGACAAAACTCAC (SEC ID nº: 3); b) GATCACGTGTC
GACTTATCATTTACCCGGAGACAGGGAGAGGCTCTTCTG (SEC ID nº: 4). Se sintetizó el ADNc para la secuencia líder de IgG1 hibridando dos oligonucleótidos complementarios que contenían extremos EcoRI y SacI,
tal como sigue: a) AATTCATGGAGTTTGGGCTGAGCTGGCTTTTTCTTGTTGCTGCATTAAGAGGTGTCCAGT
CCGAGCT (SEC ID nº: 5); b) CGGACTGGACACCTGTTAATGCAGCAACAAGAAAAGCCAGCTCAGCCCAAA
CTCATG (SEC ID nº: 6).
GAGGTGAGGTGAAGAAGCC (SEC ID nº: 1); b) ACGTTCAGGGGATCCACCTAGGACGGTCAGCTTGGTCCC (SEC ID nº: 2). Se sintetizó el dominio efector Fc humano a partir de una biblioteca de ADNc derivada de linfocitos de sangre periférica humana, usando PCR con cebadores que contenían sitios BamHI y SalI, tal como sigue: a) ACCTTGCAGGATCCGCAAGACCCAAATCTTGTGACAAAACTCAC (SEC ID nº: 3); b) GATCACGTGTC
GACTTATCATTTACCCGGAGACAGGGAGAGGCTCTTCTG (SEC ID nº: 4). Se sintetizó el ADNc para la secuencia líder de IgG1 hibridando dos oligonucleótidos complementarios que contenían extremos EcoRI y SacI,
tal como sigue: a) AATTCATGGAGTTTGGGCTGAGCTGGCTTTTTCTTGTTGCTGCATTAAGAGGTGTCCAGT
CCGAGCT (SEC ID nº: 5); b) CGGACTGGACACCTGTTAATGCAGCAACAAGAAAAGCCAGCTCAGCCCAAA
CTCATG (SEC ID nº: 6).
Se ligaron en primer lugar estos tres ADNc que
codificaban para un inmunoconjugado secretado en un vector de
clonación para la secuenciación y luego en los vectores de expresión
pcDNA3.1 y pMK33/pMtHy para la transfección en células CHO o S2 de
Drosophila, respectivamente. El procedimiento de transfección
para las células CHO implicó el crecimiento de las células en RPMI
+ FCS al 10% y la transfección con 5 \mug de un vector de
expresión usando SuperfectTM (Qiagen). Se seleccionaron
transfectantes estables en RPMI + FCS al 10% + G418 1 mg/ml. Para
la expresión de proteínas, se adaptaron en primer lugar células CHO
transfectadas para crecer en CHO medio libre de suero (Sigma) y
luego se hicieron crecer durante 3 días como cultivo en suspensión
(2 x 10^{5} células/ml) en el medio libre de suero. El
procedimiento de transfección para células S2 de Drosophila
implicó hacer crecer las células en medio Ex-cell +
FBS al 10% y transfectar con 10 \mug de un vector de expresión
usando LipofectinTM (Gibco-BRL). Se seleccionaron
transfectantes estables en medio Ex-cell + FBS al
10% + higromicina 300 \mug/ml, y se adaptaron para su crecimiento
como un cultivo en suspensión en medio Ex-cell
libre de suero. Se indujo la expresión del inmunoconjugado
codificado en el cultivo en suspensión mediante la adición de
sulfato de cobre 500 \muM.
Se purificaron los inmunoconjugados secretados
por las células S2 de Drosophila o CHO transfectadas del
medio de cultivo mediante cromatografía de afinidad sobre una matriz
de proteína A (Pierce).
Especificidad de unión de los
inmunoconjugados medida mediante citometría de flujo activada por
fluorescencia (FACS). Se recogieron células de melanoma y
células control en medio de disociación no enzimático (Sigma), se
lavaron con PBS/BSA + azida sódica al 0,1% y se incubaron en PBS/BSA
con inmunoconjugado añadido (1 \mug/ml) o en PBS/BSA sin
inmunoconjugado como control. Se lavaron las células con PBS/BSA, se
incubaron 30 min. a 4ºC con anticadena \gamma de Fc humano
marcado con fluoresceína (Vector) y se analizaron en un instrumento
FACsort de Becton-Dickenson.
Inmunoprecipitación de un extracto celular de
melanoma con un inmunoconjugado. Se suspendió una mezcla de
aproximadamente 1x10^{7} células de la línea de melanoma humano
A2058 en una disolución que contenía immunoconjugado 10 \mug/ml,
BSA al 1% y azida de sodio al 0,05% en PBS y se incubó durante 30
minutos en hielo. Se lavaron las células dos veces con PBS y se
lisaron en una disolución que contenía NP-40 al 1%,
inmunoconjugado 1 \mug/ml y PMSF 0,2 mM en PBS durante 20 minutos
en hielo. Se centrifugó el lisado a 13.000 RPM en microcentrífuga
durante 5 min. y se recuperaron los sobrenadantes y se incubaron con
perlas de proteína G durante la noche en un aparato rotador. Se
recogieron las perlas, se lavaron dos veces con una disolución que
contenía NP-40 al 1% en PBS y una vez con PBS, y se
recogieron las perlas, se sometieron a ebullición en tampón de carga
de PAGE y se analizaron mediante PAGE.
Espectrometría de masas por
ionización/desorción mediante láser asistida por matriz
(MALDI-MS) e identificación de proteínas por MS en
tándem/cromatografía de líquidos (LC/MS/MS). Se
extrajo del gel una banda de proteínas teñida con azul de Coomassie
y se digirió con tripsina tal como se describe en
http://info.med.yale.edu/wmkeck/
geldig3.htm. Se analizó una muestra del digesto tríptico mediante MALDI-MS en un aparato Micromass TofSpec SE. Para lograr el alto nivel de precisión necesario para buscar las masas peptídicas, se utilizó como calibrador interno bradiquinina 100 fmol que tenía una masa monoisotópica protonada de 1060,57, y ACTH/CLIP que tenía una masa monoisotópica protonada de 2465,2. Se buscaron las masas monoisotópicas resultantes de los péptidos trípticos en la base de datos OWL con el programa ProFound usando una tolerancia de masa de 0,2 dalton y en la base de datos EMBL/no-redundante con el programa PeptideSearch usando una tolerancia de masa del 0,015%. Otros criterios importantes usados en la búsqueda fueron un intervalo de masas que se extendía desde 140-560 Kda, un máximo de 1 escisión que falta y sin limitación con respecto a la taxonomía. Se llevaron a cabo estudios de química de proteínas y espectrometría de masas en la W.M. Keck Foundation & HHMI Biopolymer Laboratory en la Yale University. Puede encontrarse información adicional en http://info.med.yale.edu/wmkekc/.
geldig3.htm. Se analizó una muestra del digesto tríptico mediante MALDI-MS en un aparato Micromass TofSpec SE. Para lograr el alto nivel de precisión necesario para buscar las masas peptídicas, se utilizó como calibrador interno bradiquinina 100 fmol que tenía una masa monoisotópica protonada de 1060,57, y ACTH/CLIP que tenía una masa monoisotópica protonada de 2465,2. Se buscaron las masas monoisotópicas resultantes de los péptidos trípticos en la base de datos OWL con el programa ProFound usando una tolerancia de masa de 0,2 dalton y en la base de datos EMBL/no-redundante con el programa PeptideSearch usando una tolerancia de masa del 0,015%. Otros criterios importantes usados en la búsqueda fueron un intervalo de masas que se extendía desde 140-560 Kda, un máximo de 1 escisión que falta y sin limitación con respecto a la taxonomía. Se llevaron a cabo estudios de química de proteínas y espectrometría de masas en la W.M. Keck Foundation & HHMI Biopolymer Laboratory en la Yale University. Puede encontrarse información adicional en http://info.med.yale.edu/wmkekc/.
También se analizó una muestra de la banda de
proteína digerida con tripsina usada para el análisis de
MALDI-MS en un espectrómetro de masas de trampa
iónica LCQ. Se realizó una búsqueda Sequest de los datos de MS/MS,
usando un algoritmo de correlación de masas en tándem con una
tolerancia de masa de 2,0 dalton, para determinar si existen
similitudes significativas entre péptidos del digesto tríptico y los
espectros teóricos reconstruidos para una proteína en la base de
datos de NCBI nr. Puede obtenerse información adicional sobre este
procedimiento en
http://info.med.yale.edu/wmkeck/prochem.htm#ms/mspi.
Ensayos para determinar la citólisis
dependiente de inmunoconjugado de células de melanoma humano por
células NK y el complemento. Se utilizó el procedimiento de
retención de Calcein-AM para ambos ensayos. Las
células diana, o bien líneas de melanoma humano o bien células de
fibroblastos humanos primarios, se aislaron de frascos de cultivo
en un medio de disociación no enzimático (Sigma) y se añadieron a
placas de 96 pocillos (2 x 10^{4} células/pocillo). Se lavaron
las células diana adherentes una vez con PBS, y después de eso se
incubaron durante 20 minutos a 37ºC en medio de cultivo libre de
suero (GIBCO-BRL) que contenía un inmunoconjugado (1
\mug/ml) o sin inmunoconjugado como control. Entonces se marcaron
las células diana con Calcein-AM 7 \muM (Molecular
Probes Inc., Eugene, OR) en medio libre de suero durante 40 min. a
37ºC. Calcein-AM es un colorante fluorescente que
entra en las células, en las que se altera enzimáticamente y
permanece intracelular hasta que las células se lisan. Para los
ensayos citolíticos que implican células NK, se incubaron las
células diana marcadas 3-4 h a 37ºC con células NK
humanas usando las razones indicadas de células NK con respecto a
células diana. Para los ensayos citolíticos que implican el
complemento, se incubaron las células diana marcadas 1 h a 37ºC con
suero humano o componentes del complemento de conejo purificados
(Cedarlane Laboratories, Ontario, Canadá). Tras la incubación con
células NK o el complemento, se lavaron las células diana dos veces
con PBS, y se midió la fluorescencia en las células adherentes
restantes (fluorescencia residual) con un lector de placas. Se
determinó la máxima citólisis alcanzable de las células diana
midiendo la fluorescencia residual de las células diana tras el
tratamiento con tampón de lisis (borato de sodio 50 mM, Triton
X-100 al 0,1%, pH 9,0) durante 3 h a 37ºC. Se
determinó la fluorescencia residual máxima midiendo la fluorescencia
de células diana adherentes que no se expusieron a células NK o el
complemento. Se calculó el % de citólisis para cada muestra de
células diana tal como sigue: (fluorescencia residual de las
células diana de muestra menos fluorescencia residual de las
células diana lisadas)/(fluorescencia residual máxima de las células
diana menos fluorescencia residual de las células diana
lisadas).
\vskip1.000000\baselineskip
Síntesis y caracterización de los
inmunoconjugados antimelanoma. El inmunoconjugado codificó para
una secuencia líder de IgG1 humana para la secreción, para un
dominio scFv humano para seleccionar como diana células de melanoma
y un dominio efector Fc de IgG1 humana (figura 1). Se expresaron las
moléculas de inmunoconjugado en células S2 de Drosophila y
CHO transfectadas y se purificaron del medio de cultivo como
moléculas bicatenarias unidas por puentes disulfuro en la región de
bisagra del dominio Fc (figura 1). Se sintetizaron dos
inmunoconjugados, que contenían cada uno un dominio de
direccionamiento de scFV derivado del clon de fago de fusión
E26-1 o G71-1. Se
sometieron a prueba las especificidades de unión de los
inmunoconjugados E26-1 y
G71-1 mediante citometría de flujo (FACS)
usando dos líneas de melanoma humano; los controles fueron cultivos
primarios de células endoteliales vasculares umbilicales y
microvasculares, fibroblastos y melanocitos humanos normales, y la
línea de riñón humano 293-EBNA. Los resultados
mostraron que los inmunoconjugados se unen fuertemente a las líneas
celulares de melanoma pero no se unen a los controles, lo que está
de acuerdo con los resultados obtenidos con los clones de fago de
fusión E26-1 y G71-1.
La unión a células de melanoma se produjo cuando se recogieron las
células del frasco de cultivo usando un medio de disociación celular
no enzimático (Sigma), pero no cuando el medio de disociación
contenía tripsina o cuando las células disociadas se trataron
posteriormente con tripsina. Este hallazgo indicó que el/los
antígeno(s) de melanoma relacionado(s) para los
inmunoconjugados se ubican en la superficie de células de melanoma.
El/los antígeno(s) parecen ser excepcionalmente sensibles a
la tripsina, ya que la misma exposición a tripsina no afectó a la
unión a células de melanoma de anticuerpos frente a las moléculas de
la superficie celular ICAM-1, CMH de clase I y
factor tisular.
Identificación del antígeno de melanoma
relacionado para los inmunoconjugados. Se equilibraron células
cultivadas de la línea de melanoma humano A2058 con los
inmunoconjugados G71-1 o
E26-1 y se lisaron las células con
detergente. Se recogió el complejo de
inmunoconjugado-antígeno en el lisado sobre perlas
de proteína G y se analizó mediante PAGE. Se detectó una banda de
proteína con un peso molecular aparente de 250 kda en las células
de melanoma pero no en el control. El análisis de un digesto
tríptico de la banda de proteína mediante el procedimiento de
MALDI-MS identificó 75 masas peptídicas que no
estaban presentes en un digesto de un corte de gel control. Una
búsqueda de bases de datos de secuencias de proteínas mediante
ProFound produjo 50 masas peptídicas que se correspondían con las
masas peptídicas en la proteína núcleo MCSP, comprendiendo el 26%
de la secuencia de proteína completa. La puntuación de probabilidad
de ProFound para esta identificación fue de 1,0, y la puntuación
próxima más cercana fue de 2,2E-61. Una búsqueda
mediante Peptide Search hizo coincidir 45 péptidos a la proteína
núcleo MCSP, representando 38 péptidos la coincidencia próxima más
cercana.
También se analizó el digesto tríptico de la
proteína de 250 kda mediante el procedimiento de LC/MS/MS (Stone,
K.L., et al. (1998) Electrophoresis 19,
1046-1052). Una búsqueda Sequest de los datos de
MS/MS del digesto tríptico mostró una similitud significativa entre
los espectros de MS/MS para dos o más péptidos y los espectros de
MS/MS teóricos reconstruidos para dos o más péptidos de la proteína
núcleo MCSP en la base de datos de NCBI nr.
Los resultados de ambos análisis de
espectroscopia de masas indican que la proteína de melanoma
inmunoprecipitada por los inmunoconjugados
G71-1 y E26-1
correspondía a la proteína núcleo MCSP.
Citólisis dependiente de inmunoconjugado de
células de melanoma mediada por células NK y el complemento.
Una de las rutas citolíticas del sistema inmunitario implica a
células NK que pueden unirse directamente a células diana,
provocando la lisis independiente de anticuerpos de las células
diana. Las células NK también se unen al dominio efector Fc de un
anticuerpo, dando como resultado la lisis dependiente de anticuerpos
de células que se unen al dominio de direccionamiento del
anticuerpo. Esta ruta citolítica mediada por células dependiente de
anticuerpos (ADCC) también debe provocar la lisis de células que se
unen al dominio de direccionamiento de inmunoconjugados que
contienen un dominio efector Fc. Para someter a prueba para detectar
una respuesta ADCC dependiente de los inmunoconjugados
E26-1 y G71-1, se
marcaron células de melanoma y células control de fibroblastos con
el colorante fluorescente Calcein-AM, y se incubaron
las células marcadas con células NK humanas solas o junto con un
inmunoconjugado. Se sometió a ensayo la citólisis midiendo la
cantidad de colorante fluorescente retenido en las células que
permanecieron intactas. Los resultados para
E26-1 (figura 2) muestran que tras la
incubación con el inmunoconjugado y células NK, el porcentaje de
células de melanoma lisadas aumentó por encima del nivel basal que
se produce sin el inmunoconjugado, alcanzando casi el 100% de lisis
a una razón 20/1 de células NK con respecto a células de melanoma.
Al contrario que en la lisis eficaz de células de melanoma, las
células de fibroblastos no mostraron un aumento significativo en la
lisis celular tras su incubación con el inmunoconjugado y células
NK. Se obtuvieron resultados similares con el inmunoconjugado
G71-1.
La sensibilidad de las células diana a la lisis
por células NK aumenta mediante la expresión en la superficie de
las células diana de moléculas de adhesión tales como ICAM, y se
reduce mediante la expresión de moléculas del CMH de clase I (Zami,
L., et al. (1995) Cell. Immunol. 164, 100-104
y Storkus, W.J., et al. (1989) Proc. Natl. Acad. Sci. USA
86, 2361-2364). Para determinar si las diferencias
en la expresión de estas moléculas podrían contribuir a las
diferencias en las sensibilidades de células de melanoma y células
de fibroblastos en los ensayos de ADCC, se midió la expresión de
moléculas de ICAM-1 y del CMH de clase I por células
de melanoma y de fibroblastos mediante FACS. La expresión de ambas
moléculas era similar en los dos tipos de células, indicando que la
lisis específica de células de melanoma por células NK depende de la
unión de los inmunoconjugados a los antígenos relacionados
expresados en células de melanoma.
Otra ruta citolítica del sistema inmunitario
implica la cascada del complemento, que se activa cuando la molécula
C1q reacciona con la región Fc de anticuerpos unidos a una célula
diana (Bruggemann M., et al. (1987) J. Exp. Med. 166,
1351-1361). Para someter a prueba para detectar una
respuesta citolítica mediada por el complemento frente a células de
melanoma, dependiente de los inmunoconjugados
E26-1 y G71-1, se
utilizó el mismo procedimiento de ensayo utilizado para la
respuesta citolítica mediada por NK notificado anteriormente con un
cambio, concretamente que se sustituyó el suero humano o el suero de
conejo, que contienen los componentes de la cascada del
complemento, por células NK. Los resultados (figura 3 y tabla 1)
muestran que tras la incubación con los inmunoconjugados y o bien
suero humano o bien suero de conejo, hubo un aumento en la fracción
de células de melanoma lisadas de desde el 4% hasta casi el 100%.
Al contrario que en la lisis eficaz de células de melanoma, las
células de fibroblastos mostraron un pequeño aumento en la fracción
de células lisadas tras su incubación con los inmunoconjugados y
suero humano, y no mostraron un aumento significativo tras su
incubación con los inmunoconjugados y el suero de conejo.
\vskip1.000000\baselineskip
Para el presente estudio, se utilizaron las
moléculas de scFv de dos de los clones como dominios de
direccionamiento para construir inmunoconjugados que contienen un
dominio efector Fc de IgG1 humana (figura 1). Se identificó la
proteína inmunoprecipitada a partir de células de melanoma humano
por ambos inmunoconjugados mediante análisis espectroscópicos de
masas como la proteína núcleo de un proteoglicano de sulfato de
condroitina asociado a melanoma (MCSP) (Bumol, T.F. & Reisfeld,
R.A. (1982) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 79, 1245-1249
y Bumol, T., et al. (1984) J. Biol. Chem. 259,
12733-12741). Se identificó por primera vez la
molécula MCSP como el antígeno relacionado reconocido por el AcM
9.2.27, y parece ser el antígeno relacionado para otros varios AcM
(Reisfeld, R.A. & Cheresh, D.A. (1987) Adv. Immunol. 40,
323-377; Wilson, B.S., et al. (1981) Int. J.
Cancer 28, 293-300; Hellstrøm, I., et al.
(1983) J. Immunol. 130, 1467-1472). Se han aislado
varios clones de fago de fusión de scFv que se unen al antígeno de
melanoma HMW-MAA, que probablemente es el mismo que
MCSP, a partir de una biblioteca de scFv humano seleccionando frente
a HMW-MAA purificado (Desai, S.A., et al.
(1998) Cancer Res. 58, 2417-2425). La molécula de
MCSP se expresa predominantemente en la superficie de la mayoría de
las células de melanoma humano, y también en células endoteliales
capilares de tumores gliales. El hallazgo de que MCSP es el
antígeno relacionado para por lo menos dos de los clones específicos
de melanoma aislados a partir de una biblioteca de fagos de fusión
de scFv de un paciente con melanoma seleccionando frente a células
de melanoma, sugiere que MCSP es un antígeno de melanoma dominante
in vivo.
Como prueba inicial del potencial terapéutico de
los dos inmunoconjugados, se utilizó un ensayo citolítico in
vitro que implicaba células diana marcadas con fluorescencia
para determinar la capacidad de los inmunoconjugados para
seleccionar como diana células de melanoma humano para su lisis por
células NK y por el complemento. Ambos inmunoconjugados produjeron
un aumento brusco en la actividad citolítica de células NK y el
complemento frente a células de melanoma, dando como resultado la
lisis prácticamente completa de la población de células de melanoma
seleccionadas como diana y sólo un aumento menor o ninguno en la
lisis de las células de fibroblastos usadas como control. También
hubo un fondo significativo de citólisis independiente de
inmunoconjugado de células de melanoma y células de fibroblastos
por células NK y el complemento, lo que se espera para un ensayo
alogénico en el que las células tumorales, las células NK y el
complemento se aíslan a partir de individuos diferentes (Ciccone,
E., et al. (1992) J. Exp. Med. 175, 709-718).
Este fondo debe reducirse en un paciente con cáncer, porque todos
estos componentes son autólogos.
Los resultados de las pruebas citolíticas in
vitro proporcionan evidencia preliminar de que los
inmunoconjugados podrían presentar un posible papel en protocolos
de inmunoterapia con melanoma y otros cánceres para los que están
disponibles dominios de direccionamiento de VH o scFv
específicos de tumor. Un ensayo clínico de fase I limitado para la
inmunoterapia de melanomas con el AcM de ratón 9.2.27, que se une a
MCSP, mostró la ubicación específica del anticuerpo en los tumores
sin evidencia de toxicidad asociada (Oldham, R.K., et al.
(1984) J. Clin. Oncol. 2, 1235-1244). Los
inmunoconjugados de scFv que se unen a MCSP deben ser más eficaces
que un AcM de ratón para la inmunoterapia, porque el menor tamaño
molecular debe mejorar la penetración en el tumor y la derivación
humana de la molécula debe minimizar una respuesta de rechazo
inmunitario. Los inmunoconjugados G71-1 y
E26-1 se unen probablemente a diferentes
epítopos de MCSP, tal como se sugiere por las diferencias
principales en sus secuencias de V_{H} (véanse SEC ID nº: 11 y SEC
ID nº: 12 y el siguiente ejemplo), y por tanto podrían
administrarse juntos para potenciar su eficacia terapéutica.
\vskip1.000000\baselineskip
Este ejemplo notifica que un tratamiento de
inmunoterapia para el cáncer que selecciona como diana tanto la
vasculatura del tumor como células tumorales ha mostrado resultados
prometedores en un modelo de xenoinjerto de ratón inmunodeficiente
combinado grave de melanoma humano. El procedimiento implicaba la
administración sistemática a ratones SCID de dos inmunoconjugados,
compuesto cada uno por un dominio de direccionamiento al tumor
conjugado con una región de dominio efector Fc de una IgG1 humana.
El dominio efector induce una respuesta inmunitaria citolítica
frente a las células seleccionadas como diana por células
citolíticas naturales (NK) y el complemento. Los inmunoconjugados
se codifican como moléculas secretadas en un vector adenoviral de
replicación incompetente.
\vskip1.000000\baselineskip
Líneas celulares. Se derivaron las líneas
celulares de melanoma LXSN, TF2 y LXSN/VEGF de la línea de melanoma
humano YU-SIT1 mediante transfección y clonación
mediadas por retrovirus. Se transfectó la línea LXSN con el
retrovirus control y expresa un nivel bajo de TF. Se transfectó la
línea TF2 con un retrovirus que codifica para ADNc de TF y expresa
un nivel alto de TF. Se transfectó la línea LXSN/VEGF con un
retrovirus que codifica para ADNc de VEGF y expresa un nivel alto
de VEGF. Se adquirió la línea de riñón humano 293 de la Colección
Americana de Cultivos Tipo.
Vector de plásmido. La construcción del
vector de plásmido que codifica para el inmunoconjugado de scFv
(G71-1) se describió en el ejemplo 1 (véase
también SEC ID nº: 11). Para la construcción del vector que
codifica para el inmunoconjugado de factor VII de ratón (mfVII), se
amplificó el ADNc de mfVII mediante PCR a partir de una biblioteca
de ADNc de hígado de ratón (Quick-Clone cDNA,
Clonetech) usando el cebador en 5'
ACGA-TCTTAAGCTTCCC
CACAGTCTCATCATGGTTCCA (SEC ID nº: 7) y el cebador en 3' ACGGTAACGGATCCCAGTAGTGGGAGTCG
GAAAACCCC (SEC ID nº: 8). El ADNc de mfVII amplificado, que contiene las secuencias líder y codificante sin un codón de terminación, se clonó en los sitios HindIII y BamHI del vector pcDNA3.1 (+) (Invitrogen) en marco con un ADNc que codifica para el dominio Fc de IgG1 humana. Se amplificó el ADN del vector en células competentes HB101 (Life Technologies) y se secuenció. Se mutó el sitio activo del ADNc de mfVII sustituyendo un codón de alanina por lisina 341 (Dickinson, C.D., et al. (1996) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 93, 14379-14384). El procedimiento de mutagénesis se realizó tal como se describe en el manual de mutagénesis dirigida al sitio QuickChange (Stratagene). El cebador en 5' era GGTACCAAGGACGCCTGCGCGGGTGACAGCGGTGGCCCA (SEC ID nº: 9) y el cebador en 3' era TGGGCCACCGCTGTCACCCGCGCAG-GCGTCCTTGGTACC (SEC ID nº: 10). El ADNc de mfVII con la mutación del sitio activo se denomina mfVIIasm. Se transformó el plásmido que contiene el ADNc de mfVIIasm en células competentes HB101 y se seleccionaron colonias transformadas en agar 2XTY/carbenicilina. La secuencia del ADN de plásmido mostraba una sustitución de un codón de alanina (GCG) por el codón de lys 341 (AAG) en el ADN de mfVIIasm.
CACAGTCTCATCATGGTTCCA (SEC ID nº: 7) y el cebador en 3' ACGGTAACGGATCCCAGTAGTGGGAGTCG
GAAAACCCC (SEC ID nº: 8). El ADNc de mfVII amplificado, que contiene las secuencias líder y codificante sin un codón de terminación, se clonó en los sitios HindIII y BamHI del vector pcDNA3.1 (+) (Invitrogen) en marco con un ADNc que codifica para el dominio Fc de IgG1 humana. Se amplificó el ADN del vector en células competentes HB101 (Life Technologies) y se secuenció. Se mutó el sitio activo del ADNc de mfVII sustituyendo un codón de alanina por lisina 341 (Dickinson, C.D., et al. (1996) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 93, 14379-14384). El procedimiento de mutagénesis se realizó tal como se describe en el manual de mutagénesis dirigida al sitio QuickChange (Stratagene). El cebador en 5' era GGTACCAAGGACGCCTGCGCGGGTGACAGCGGTGGCCCA (SEC ID nº: 9) y el cebador en 3' era TGGGCCACCGCTGTCACCCGCGCAG-GCGTCCTTGGTACC (SEC ID nº: 10). El ADNc de mfVII con la mutación del sitio activo se denomina mfVIIasm. Se transformó el plásmido que contiene el ADNc de mfVIIasm en células competentes HB101 y se seleccionaron colonias transformadas en agar 2XTY/carbenicilina. La secuencia del ADN de plásmido mostraba una sustitución de un codón de alanina (GCG) por el codón de lys 341 (AAG) en el ADN de mfVIIasm.
Síntesis de inmunoconjugados en células
CHO. Los procedimientos para transfectar los ADNc de los
inmunoconjugados en células CHO y aislar clones se describieron en
el ejemplo 1. Se cultivaron las células CHO transfectadas en medio
libre de suero de CHO (EX-CELL 301, JRH
Biosciences); para la síntesis del inmunoconjugado mfVIIasm,
se complementó el medio libre de suero de CHO con vitamina K1
(Sigma) hasta una concentración final de 1 \mug/ml. Se
purificaron los inmunoconjugados mediante cromatografía de afinidad
sobre perlas de proteína A (Pierce) y se concentraron y desalaron
mediante centrifugación a través de un filtro
Ultrafree-15 Biomax-50 (Millipore)
y se ajustaron hasta Tris-HCl 10 mM pH 8,0. Se
midieron las concentraciones de inmunoconjugado mediante el
procedimiento de ensayo de proteínas de Bio-Rad.
Citometría de flujo activada por
fluorescencia (FACS). Se recogieron las células de melanoma en
disolución de disociación no enzimática (Sigma), se lavaron y se
resuspendieron en TBS/BSA/Ca^{2+} (Tris-HCl 10 mM
pH 7,4, NaCl 150 mM, CaCl_{2} 20 mM, BSA al 1% y NaN_{3} al_{
}0,1%). Se añadió un inmunoconjugado (concentración final de 5
\mug/ml) y se incubaron las células durante 30 min. o bien a 37ºC
para el inmunoconjugado mfVIIasm o bien en hielo para el
inmunoconjugado G71-1; se incubaron las
células control sin inmunoconjugado añadido. Tras la incubación, se
lavaron las células con TBS/BSA, se incubaron 30 min. en hielo con
cadena \gamma anti-Fc humano marcada con
fluoresceína (Vector Laboratories) y se analizaron en un instrumento
FACsort de Becton-Dickenson.
Vectores adenovirales. El sistema de
vector adenoviral consiste en los vectores lanzadera
pAdTrack-CMV y pShuttle-CMV, y el
vector de estructura principal pAdEasy-1 (He, T.C.,
et al. (1998) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 95,
2509-2514). Se aislaron los ADNc de los
inmunoconjugados a partir de vectores de plásmido pcDNA3.1 mediante
digestión con HindIII seguido por el fragmento Klenow para
rellenar el extremo 3' con huecos y entonces se digirieron con
Not1 para liberar el inserto de ADNc que se purificó mediante
electroforesis en gel de agarosa. Se digirieron en primer lugar los
vectores lanzadera con Kpn1 seguido por el fragmento Klenow
y entonces se digirieron con Not1 . Se ligaron los ADNc
de los inmunoconjugados en los vectores lanzadera mediante
incubación con ADN ligasa de T4 a 16ºC durante la noche y se
transformaron los vectores lanzadera en células competentes HB101
mediante choque térmico. Se seleccionaron colonias transformadas
sobre agar 2XTY/kanamicina y se extrajeron y purificaron los
vectores lanzadera. Los ADN de pAdTrack-CMV y los
vectores lanzadera purificados se digirieron con Pme1 a 37ºC
durante 2 h. Se sometió a electroporación una mezcla de 500 ng de
ADN de vector lanzadera y 100 ng de ADN de pAdEasy-1
en células competentes BJ5183 y se agitaron las células a 37ºC
durante 15 min. y se sembraron en placas en agar LB/kanamicina. Se
incubaron las placas a 37ºC durante la noche y se aislaron colonias
transformadas. Se purificaron los ADN de plásmido a partir de
minipreparaciones y se examinaron para seleccionar ADN adenoviral
recombinante mediante electroforesis en geles de agarosa al
0,6%.
Se transfectaron los ADN adenovirales
recombinantes que codifican para los inmunoconjugados en 1x10^{5}
células 293, siguiendo el protocolo descrito anteriormente para
transfectar células CHO. Se recogieron las células 7 días tras la
transfección y se liberaron los adenovirus mediante 3 ciclos de
congelación-descongelación y se amplificaron
infectando células 293 en una placa de cultivo de 150 mm. Tras 2
días, se recogieron los adenovirus tal como se describió
anteriormente y se amplificaron de nuevo infectando células 293 en
20 placas de cultivo. Se recogieron los adenovirus amplificados 2
días después y se purificaron mediante centrifugación en CsCl. Los
rendimientos finales fueron habitualmente de 10^{13} partículas de
virus tal como se estimó mediante la absorbancia a 260 nm; la
conversión es 1 unidad de D.O. = 1x10^{12} partículas. Se
dializaron los adenovirus purificados frente a PBS y se almacenaron
a -80ºC.
Experimentos con ratones SCID. Los
ratones SCID eran hembras de 4 a 5 semanas de edad de Taconic
laboratories. Se les inyectó a los ratones por vía subcutánea en el
flanco trasero derecho 5x10^{5} células de melanoma humano TF2 o
LXSN. Después de que los tumores hubiesen crecido hasta un tamaño
palpable por debajo de la superficie de la piel (\sim5 mm^{3})
o hasta un tamaño mayor por encima de la superficie de la piel
(\sim50 mm^{3}), se les inyectó a los ratones por la vena de la
cola el vector adenoviral que codifica para un inmunoconjugado, o
como control el vector adenoviral que no codifica para un
inmunoconjugado. Se midió la concentración de proteína de
inmunoconjugado secretada a la sangre recogiendo aproximadamente 0,1
ml de sangre de un ojo en un tubo microcapilar recubierto con
heparina y centrifugando la sangre para eliminar las células. Se
diluyó el plasma sobrenadante con tampón bicarbonato de sodio pH
9,6 y se distribuyó en pocillos de placas de ensayo
Pro-Bind (Falcon), y las placas se incubaron en
primer lugar a 37ºC durante 2 h y luego a 4ºC durante la noche. Se
bloquearon los pocillos con leche desnatada al 5% en PBS durante 30
min. y se lavaron 3 veces con PBS, y se añadió a los pocillos un
anticuerpo anti-IgG humana marcado con peroxidasa
diluido 1:2000 en leche desnadata al 5%. Se incubaron las placas
durante 1 h a temperatura ambiente y se lavaron con PBS, y se añadió
el sustrato de peroxidasa OPD y se midió la absorbancia a 490 nm en
un lector de microplacas. El patrón de proteína era IgG humana
(Sigma) purificada mediante cromatografía sobre perlas de proteína
A.
Se midió el tamaño de un tumor que aparecía
sobre la piel de un ratón SCID en dos dimensiones con un calibrador
y se estimó el volumen tumoral mediante la fórmula
(anchura)^{2} (longitud)/2. Al final de un experimento, se
diseccionaron los ratones y se pesaron los tumores. Se examinaron
los órganos para detectar evidencia morfológica de daño y se
prepararon secciones en parafina para el examen histológico.
Inmunohistoquímica. Se incubaron
secciones en parafina de los tumores y órganos en PBS+H_{2}O_{2}
al 0,3% durante 30 min. y se bloquearon en tampón TBS/BSA durante
30 min. Se añadió a las secciones una disolución que contenía 10
\mug/ml del inmunoconjugado mfVIIasm en tampón
TBS/BSA/Ca^{2+}, o como control el tampón sin el inmunoconjugado,
y se incubaron a 37ºC durante 1 h. Tras lavar 3 veces en el mismo
tampón, se incubaron las secciones a temperatura ambiente durante 1
h con anticuerpo anticadena \gamma humana marcado con fosfatasa
alcalina, se tiñeron con BCIP/NBT que produce un color azul y se
contratiñeron con verde de metilo.
\vskip1.000000\baselineskip
Propiedades de los inmunoconjugados. Se
sintetizaron los inmunoconjugados de scFv (G71-1) y
del factor VII de ratón mutado (mfVIIasm) en células CHO y
se purificaron del medio de cultivo mediante cromatografía de
afinidad sobre perlas de proteína A. Un análisis anterior mediante
SDS-PAGE mostró que el inmunoconjugado
G71-1 está compuesto por dos cadenas
idénticas, presumiblemente acopladas mediante puentes disulfuro
entre las regiones de bisagra de los dominios Fc (ejemplo 1). Se
obtuvo el mismo resultado con el inmunoconjugado mfVIIasm.
(Véanse SEC ID nº: 11 y SEC ID nº: 12.). Debido a que el
inmunoconjugado mfVIIasm presenta dos dominios de
direccionamiento, en comparación con el único dominio de
direccionamiento en la molécula de fVII endógena monomérica, puede
unirse cooperativamente a dos moléculas de TF, dando como resultado
una unión más fuerte que fVII endógeno a células que expresan TF.
Un ensayo FACS competitivo mostró que el fVIIa humano compite en
una base equimolar con el inmunoconjugado mfVIIasm por la
unión a la mitad de los sitios accesibles en células de melanoma
humano, probablemente debido a que sólo uno de los dominios de
direccionamiento en la molécula de inmnoconjugado puede unirse a TF
en estos sitios. La unión del inmunoconjugado mfVIIasm a los
sitios restantes no pudo competir en presencia de un exceso de diez
veces de fVIIa humano, lo que sugiere que ambos dominios de
direccionamiento de la molécula de inmunoconjugado pueden unirse en
estos sitios y proporcionar un efecto de avidez fuerte. Parece que
aproximadamente sólo la mitad de las moléculas de TF en las células
de melanoma están suficientemente cercanas a una segunda molécula de
TF para formar un sitio de unión cooperativa para ambos dominios de
direccionamiento en un inmnoconjugado mfVIIasm.
Se generaron los xenoinjertos para las pruebas
de inmunoterapia a partir de las líneas de melanoma humano LXSN y
TF2 que expresan, respectivamente, niveles bajos y altos de TF. El
inmunoconjugado mfVIIasm se une más exhaustivamente a las
células TF2 que a las células LXSN tal como se determinó mediante
FACS, lo que está de acuerdo con el nivel superior de expresión de
TF por células TF2. También se sometió a prueba el inmunoconjugado
mfVIIasm mediante inmunohistoquímica para detectar la unión a
secciones de un xenoinjerto de melanoma humano generado a partir de
la línea de melanoma LXSN/VEGF que produce un nivel alto de VEGF,
dando como resultado un xenoinjerto densamente vascularizado. Se
produjo unión a las células endoteliales vasculares del tumor así
como a las células tumorales (figura 4), lo que indica que se
expresa TF por ambos tipos de células en el xenoinjerto. Las
pruebas de inmunohistoquimímica con secciones de cerebro, pulmón,
riñón e hígado de ratón normales mostraron que el inmunoconjugado
mfVIIasm no se une a células endoteliales vasculares en estos
tejidos, lo que está de acuerdo con otras evidencias de que no se
expresa TF por células endoteliales vasculares de tejidos no
tumorales.
Pruebas de inmunoterapia. Para la
administración sistémica a ratones SCID, se codificó cada
inmunoconjugado como una molécula secretada en el sistema de vector
adenoviral de replicación deficiente basado en
pAdEasy-1 (He, et al., mencionado
anteriormente) y se inyectaron los vectores en la vena de la cola de
los ratones a los que se les había inyectado en primer lugar por
vía subcutánea células de melanoma humano. Las pruebas de
inmunoterapia iniciales implicaban inyectar cada vector por separado
y ambos vectores juntos en los ratones que habían desarrollado un
xenoinjerto de TF2 palpable. Se administraron un total de tres
inyecciones a intervalos semanales y se terminó el experimento 6
días tras la última inyección. Se monitorizó la concentración de los
inmunoconjugados en la sangre mediante ELISA tras las primera y
segunda inyecciones (figura 5). La concentración promedio tras la
primera inyección era de 4 mg/ml para el inmunoconjugado
G71-1 y de 0,04 mg/ml para el
inmunoconjugado mfVIIasm, lo que indica que la tasa de
síntesis era aproximadamente 100 veces superior para el
inmunoconjugado G71-1 que para el
inmunoconjugado mfVIIasm. La concentración de cada
inmunoconjugado aumentó tras la segunda inyección, lo que indica
que se habían infectado células adicionales por los adenovirus. El
crecimiento de los xenoinjertos se monitorizó midiendo en dos
dimensiones el tamaño del tumor que aparece en la superficie de la
piel, y usando las mediciones para estimar el volumen tumoral
(figura 6). En los ratones control a los que se les inyectó el
adenovirus que no codifica para un inmunoconjugado, el tumor creció
de manera continua a una tasa relativamente rápida, alcanzando un
volumen promedio de aproximadamente 2.000 mm^{3} tras 20 días. En
los ratones a los que se les inyectó un adenovirus que codificaba
para un inmunoconjugado, se inhibió el crecimiento tumoral, la
inhibición fue más fuerte para el inmunoconjugado mfVIIasm
que para el inmunoconjugado G71-1. Todos los
ratones permanecieron activos y parecían sanos al final del
experimento y el examen histológico del hígado, bazo, pulmón, riñón
y cerebro no mostró ninguna evidencia de necrosis, coagulación o
hemorragia. Los pesos del tumor tras la autopsia fueron inferiores
en los ratones tratados con los inmunoconjugados que en los ratones
control, lo que está de acuerdo con los volúmenes tumorales
estimados (figura 7). La reducción más fuerte del peso del tumor se
produjo en los ratones tratados con ambos inmunoconjugados.
Se concibieron los dos experimentos siguientes
para someter a prueba dos parámetros que podrían afectar a la
eficacia terapéutica de los inmunoconjugados, concretamente el
tamaño inicial del xenoinjerto y el nivel de expresión de TF por
las células de melanoma. (i) Las pruebas de inmunoterapia
precedentes implicaban xenoinjertos de melanoma palpables que
habían crecido hasta un volumen estimado de aproximadamente 5
mm^{3}, correspondiente a un tumor pequeño en seres humanos. Para
someter a prueba la eficacia terapéutica de los inmunoconjugados
frente a un xenoinjerto mayor, se dejaron crecer xenoinjertos de TF2
hasta un volumen estimado de aproximadamente 50 mm^{3} antes de
comenzar las inyecciones en la vena de la cola de los dos vectores
adenovirales. Los ratones recibieron 4 inyecciones durante un
periodo de 3 semanas y el experimento finalizó 2 días tras la
última inyección. El volumen tumoral promedio en los ratones a los
que se les inyectaron los adenovirus que codifican para los
inmunoconjugados fue aproximadamente el mismo al final que al
comienzo del experimento, al contrario que el volumen tumoral
promedio en los ratones a los que se les inyectó el adenovirus
control que aumentó en un factor de aproximadamente 27 durante el
mismo periodo (figura 8). Estos resultados muestran que se inhibe
el crecimiento tumoral tan eficazmente con el tumor mayor que con el
tumor más pequeño. Uno de los 5 ratones a los que se les inyectó el
adenovirus que codifica para los inmunoconjugados murió 5 días tras
la tercera inyección; la causa de la muerte no pudo determinarse
debido a que no se recuperó el ratón a tiempo para su examen. (ii)
Un parámetro que podría afectar a la eficacia del inmunoconjugado
mfVIIasm es el nivel de expresión de TF, que varía entre
diferentes tumores (Callender, N.S., et al. (1992) Cancer
70, 1194-1201). Para estudiar el efecto de variar la
expresión de TF por las células de melanoma en un xenoinjerto, se
utilizó la línea de melanoma LXSN para generar un xenoinjerto que
expresaba un nivel bajo de TF, para su comparación con el
xenoinjerto generado a partir de la línea relacionada TF2 que
expresa un nivel superior de TF (Bromberg, M.E., et al.
(1999) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 92, 8205-8209).
Después de que los xenoinjertos alcanzaran un tamaño palpable, los
ratones recibieron durante las siguientes 3 semanas 5 inyecciones
del adenovirus que codifica para el inmunoconjugado fVIIasm
o el adenovirus control (figura 11). En los 5 ratones a los que se
les inyectó el adenovirus control, el xenoinjerto creció de manera
continua, aumentando el volumen promedio hasta 1350 mm^{3} en el
segundo día tras la última inyección. Durante el mismo periodo, el
volumen promedio de los xenoinjertos en los ratones a los que se
les inyectó el inmunoconjugado mfVIIasm aumentó hasta 20
mm^{3}, lo que indica que la inhibición del desarrollo tumoral es
comparable para los xenoinjertos de LXSN y TF2 (comparar las
figuras 9 y 6). Las autopsias realizadas un día tras la última
inyección mostraron que se había erradicado el xenoinjerto en 2 de
los 5 ratones a los que se les inyectó el adenovirus que codifica
para el inmunoconjugado mfVIIasm; el peso de tumor promedio
en los otros 3 ratones fue de 0,11 g en comparación con el peso
promedio de 0,75 g en los 5 ratones a los que se les inyectó el
adenovirus control. Los tumores pequeños recuperados de estos 3
ratones mostraron regiones extensas de necrosis celular, que no se
produjeron en los tumores mayores de los ratones control (figura
10). Todos los ratones parecían sanos al final de este experimento,
pero un examen morfológico de los ratones diseccionados reveló daño
en el hígado y bazo en los 5 ratones a los que se les inyectó el
adenovirus que codifica para el inmunoconjugado mfVIIasm. El
examen histológico del hígado y bazo mostró que muchas de las
células hepáticas estaban ampliadas y el bazo estaba
exhaustivamente infiltrado con eritrocitos. También se produjeron
células hepáticas ampliadas en un experimento previo tras 3
inyecciones de los adenovirus que codifican para el inmunoconjugado
mfVIIasm, pero el bazo era normal, lo que indica que los
defectos en el bazo se desarrollaron en el transcurso de las últimas
2 inyecciones. Uno de los ratones también presentaba una hemorragia
cerebral subdural, que no se produjo en los otros ratones de este
experimento ni en ninguno de los experimentos previos. Es dudoso si
este efecto se indujo por la unión del inmunoconjugado
mfVIIasm a TF expresado en la vasculatura cerebral o si se
produjo espontáneamente.
\vskip1.000000\baselineskip
El procedimiento de inmunoterapia en este
ejemplo implicaba la administración sistemática a ratones SCID de
dos inmunoconjugados, compuesto cada uno por un dominio de
direccionamiento al tumor conjugado con la región Fc de una cadena
pesada de IgG1 humana, formando una molécula homodimérica similar a
un anticuerpo de cadena pesada de camélidos. Para un tipo de
inmunoconjugado, el dominio de direccionamiento al tumor era la
molécula de scFv humana G71-1 que se une al
antígeno de melanoma MCSP expresado por las células de melanoma en
los xenoinjertos. Para el otro tipo de inmunoconjugado, el dominio
de direccionamiento al tumor era una molécula de factor VII de
ratón que se une específica y fuertemente al factor tisular (TF),
tanto a TF de ratón expresado por las células endoteliales de la
vasculatura del tumor como a TF humano expresado por las células de
melanoma en los xenoinjertos. Para disminuir el riesgo de
coagulación intravascular diseminada (DIC) que podría resultar de
la unión de un inmunoconjugado de factor VII a TF, se introdujo una
mutación de sitio activo en el dominio de direccionamiento de fVII
de ratón (mfVIIasm), que inhibe la actividad proteolítica
requerida para iniciar la ruta de coagulación sanguínea.
El estudio notificado en el ejemplo 1 mostró que
el inmunoconjugado G71-1 media la citólisis
de células de melanoma humano cultivadas por células NK y el
complemento, Debido a que los ratones SCID conservan la capacidad
de producir complemento y células NK funcionales, los
inmunoconjugados también podrán mediar la citólisis de las células
endoteliales vasculares y las células tumorales seleccionadas como
diana de un xenoinjerto de melanoma humano que se hace crecer en
ratones SCID. La administración sistémica de los inmunoconjugados a
ratones SCID se logró mediante inyecciones en la vena de la cola de
un vector adenoviral de replicación deficiente que codifica para
los inmunoconjugados, que se secretaron a la sangre durante por lo
menos una semana tras cada inyección. En primer lugar, se les
inyectó a los ratones por vía subcutánea una línea celular de
melanoma humano que expresaba un nivel o bien bajo o bien alto de TF
y se dejó crecer el xenoinjerto resultante para dar un tumor
pequeño (\sim5 mm^{3}) o mayor (\sim50 mm^{3}) antes de
comenzar las inyecciones de los vectores adenovirales. Se evitó el
crecimiento adicional de todos los xenoinjertos durante el periodo
de 3 a 4 semanas de los experimentos mediante inyecciones múltiples
de los adenovirus que codifican para el inmunoconjugado
mfVIIasm, administrado por separado o junto con el adenovirus
que codifica para el inmunoconjugado G71-1;
en algunos de los ratones, el xenoinjerto experimentó regresión
completa. En los ratones control, a los que se les inyectó un
adenovirus que no codificaba para un inmunoconjugado, el volumen
promedio de los xenoinjertos aumentó en un factor de
aproximadamente 25 durante el mismo periodo. En los ratones que
recibieron 5 inyecciones de los vectores adenovirales que codifican
para los inmunoconjugados, muchas de las células hepáticas estaban
ampliadas y el bazo se infiltró con eritrocitos. Los defectos no
estaban provocados por los inmunoconjugados secretados, que no se
unen a las células hepáticas o del bazo. La causa principal es
probablemente la síntesis de nivel alto continua de los
inmunoconjugados codificados por las células hepáticas, que son las
células de ratón infectadas predominantemente por los vectores
adenovirales inyectados por vía intravenosa. Aunque la
concentración de inmunoconjugado en la sangre de ratones SCID a los
que se les inyectó un vector adenoviral era aproximadamente 100
veces superior para el inmunoconjugado G71-1
que para el inmunoconjugado mfVIIasm, sin embargo el efecto
inhibidor en un xenoinjerto de melanoma humano era más fuerte con el
inmunoconjugado mfVIIasm. Una ventaja clave del
inmunoconjugado mfVIIasm es la unión que se produce a células
endoteliales vasculares del tumor así como a células tumorales, al
contrario que el inmunoconjugado G71-1, que
se une sólo a células de melanoma. La unión a la vasculatura del
tumor debe ser específica del tumor, porque TF no se expresa por la
vasculatura normal. Aunque se expresa TF por varios otros tejidos
normales, tales como el cerebro, pulmón y glomérulos renales, estas
moléculas de TF no son accesibles para fVII endógeno o
inmunoconjugado de fVII debido a que las paredes de los vasos
sanguíneos forman una barrera que separa los componentes sanguíneos
mayores de células adyacentes. Sin embargo, los vasos sanguíneos del
tumor son porosos, permitiendo el acceso de TF expresado por
células tumorales. Por tanto, un inmunoconjugado fVIIasm
humano puede ser un agente terapéutico eficaz para un amplio
espectro de tumores humanos que expresan TF en las células
endoteliales vasculares y células tumorales. La eficacia
terapéutica de un inmunoconjugado fVIIasm humano puede
potenciarse administrando también un inmunoconjugado de scFv humano
que se une a una diana de célula tumoral diferente de TF.
\vskip1.000000\baselineskip
Este ejemplo notifica un estudio de la eficacia
y seguridad de un protocolo para el tratamiento contra el cáncer
sometido a prueba en un modelo de ratón SCID de melanoma de pulmón
metastásico y de piel humana, y en un modelo de ratón
inmunocompetente de melanoma de ratón. El protocolo implicaba
inyecciones intratumorales de vectores adenovirales de replicación
incompetente que codifican para inmunoconjugados de la invención que
provocan una respuesta inmunitaria citolítica frente a las células
tumorales y células endoteliales de la neovasculatura seleccionadas
como diana. Los experimentos de modelo de ratón mostraron que la
administración intratumoral del inmunoconjugado de factor VII, o
bien solo o bien junto con el inmunoconjugado de Fv de cadena
sencilla, dio como resultado una inhibición del crecimiento y una
regresión del tumor inyectado, y también de tumores metastásicos no
inyectados distantes, sin evidencia de daño a órganos normales. Hubo
una destrucción extensa de la neovasculatura del tumor,
presumiblemente mediada por el inmunoconjugado de factor VII unido
al factor tisular en células endoteliales de la neovasculatura.
Debido a que el factor tisular se expresa generalmente en células
tumorales y células endoteliales neovasculares, puede utilizarse un
inmunoconjugado de factor VII para inmunoterapia frente a una amplia
gama de tumores humanos.
\vskip1.000000\baselineskip
Líneas celulares. LXSN, TF2 y
Yusac2 son líneas de melanoma humano, Caki es una
línea de tumor renal humano, LnCap es una línea de tumor de
próstata humano, A204 es una línea de neuroblastoma humano,
B16F10 es una línea de melanoma de ratón, EMT6 es una
línea de tumor mamario de ratón, BT20 es una línea de tumor
de mama humano, Colo 357 es una línea de tumor pancreático
humano, MS es una línea de tumor gástrico humano y 293 es
una línea de riñón humano (ATCC, CRL-1573) usadas
para empaquetar los vectores adenovirales. El medio de cultivo era
DMEM+FBS al 10% para todas las líneas de tumor excepto LnCap,
que se cultivó en RPMI 1640 + FBS al 10%.
Vectores adenovirales. 1) Se usaron los
procedimientos resumidos en el ejemplo 2 anterior para producir y
purificar los vectores adenovirales que codifican para los
inmunoconjugados mfVIIasm y G71-1 con
la siguiente modificación. Tras digerir los ADN de vector lanzadera
con PmeI, en lugar de una etapa de precipitación con etanol,
se purificaron los ADN mediante electroforesis en gel de agarosa
seguido por el aislamiento de las bandas de ADN usando el kit QIAEX
II (Qiagen). 2). Se determinaron las concentraciones de vector en
las preparaciones purificadas mediante ensayos para determinar
partículas infecciosas (IP) y unidades infecciosas (IU), tal como
sigue. (i) El ensayo de IP implica diluir la preparación de vector
20 veces en tampón de lisis (SDS al 0,1% en PBS) y medir la
absorbancia a 260 nm; la conversión en IP es 1 unidad de D.O. = 1 X
10^{12} IP. (ii) El ensayo de IU implica infectar cultivos de
células 293 con diluciones en serie de la preparación de vector,
incubar los cultivos infectados durante 2 días y examinar las
células en un microscopio de fluorescencia para determinar la
expresión del gen de la proteína fluorescente verde (GFP) en el
genoma del vector. Se calcula el título de IU a partir del número de
células que expresan el gen de GFP. Los títulos de IP y IU
coincidían en \pm10%.
Síntesis del inmunoconjugado mfVIIasm en
células tumorales. Se hicieron crecer células tumorales casi
hasta confluencia en placas de 150 mm y se infectaron las células
con el adenovirus que codifica para el inmunoconjugado
mfVIIasm a una multiplicidad de 10 IU por célula. Se
cultivaron las células infectadas en medio libre de suero durante 4
días y se mezclaron 1,5 ml del medio con 10 \mul de una suspensión
de perlas de proteína A (Pierce) y se hicieron rotar a 4ºC durante
la noche. Se eluyó el inmunoconjugado mfVIIasm unido calentando las
perlas en 15 \mul de tampón de carga de SDS-PAGE a
80ºC durante 3 min. y se fraccionó el eluato mediante
SDS-PAGE y se transfirió a una membrana de
nitrocelulosa. Se detectó la banda de inmunoconjugado sometiendo a
inmunotinción con una sonda de anticuerpo de cabra
anti-IgG de ratón o anti-ser humano
(específica para Fc).
Pruebas de inmunoterapia en ratones
inmunodeficientes. Se usaron ratones C.B-17 SCID
hembra de 4 a 5 semanas de edad (Taconic Farms) para todos los
experimentos con ratones inmunodeficientes. Se disociaron cultivos
monocapa de las líneas de melanoma humano LXSN o TF en
PBS + EDTA 2 mM, se lavaron y se resuspendieron en PBS. Se
generaron tumores de piel mediante inyecciones subcutáneas de 5 X
10^{5} células en el flanco trasero derecho y se generaron
tumores de pulmón metastásicos mediante inyecciones intravenosas de
6 X 10^{5} células TF en la vena de la cola. Se midió el tamaño
del tumor de piel en dos dimensiones con un calibrador y se estimó
el volumen del tumor como (anchura)^{2} (longitud)/2.
Cuando un tumor de piel había crecido hasta un volumen de
aproximadamente 100 mm^{3}, se iniciaron inyecciones
intratumorales de un vector adenoviral que contenía un dominio
efector Fc humano. Para cada etapa de inyección, se inyectó un
volumen total de 50 \mul de la preparación de vector en 3 ó 4
sitios en el tumor. Al final del experimento, se realizaron
autopsias para tomar muestras de sangre y para preparar los tumores
y los órganos normales para el examen morfológico e histológico.
Pruebas de inmunoterapia en ratones
inmunocompetentes. Se utilizaron ratones C57BL/6 hembra de 4 a 5
semanas de edad (Charles River Laboratories) para todos los
experimentos que implicaban ratones inmunocompetentes. Se
suspendieron cultivos monocapa de células de melanoma de ratón
B16F10 en PBS + EDTA 2 mM, se lavaron y se resuspendieron en
PBS. Se generaron tumores de piel mediante inyecciones subcutáneas
de 5 X 10^{5} células en el flanco trasero derecho. Cuando los
tumores de piel habían crecido hasta un volumen estimado de 140 a
325 mm^{3}, se iniciaron inyecciones en la vena de la cola del
vector adenoviral que codifica para el inmunoconjugado
mfVIIasm que contiene un dominio efector Fc de ratón. Los
procedimientos para monitorizar la eficacia y seguridad del
protocolo son los mismos que los descritos anteriormente para
ratones SCID.
Ensayos de SGOT. Se tomaron muestras de
suero de ratones, se congelaron y se sometieron a ensayo para
determinar la transaminasa glutámico-oxalacética
utilizando un kit de diagnóstico convencional.
\vskip1.000000\baselineskip
Los dos inmunoconjugados usados para este
estudio están compuestos por un dominio de direccionamiento al tumor
y un dominio efector (figura 1). El dominio de direccionamiento es
o bien una molécula de factor VII de ratón mutada (mfVIIasm)
que se une a TF expresada en células tumorales y células
endoteliales vasculares tumorales pero no inicia la coagulación
sanguínea (ejemplo 2), o bien anticuerpo scFv
G71-1 que se une a su antígeno relacionado
expresado de manera selectiva en células de melanoma humano (Cai y
Garen, mencionados anteriormente, y ejemplo 1). El dominio efector
es la región Fc de una inmunoglobulina IgG1 humana o de ratón que
induce una respuesta inmunitaria citolítica frente a las células
seleccionadas como diana (ejemplo 1). El vector para administrar
los inmunoconjugados es un adenovirus de replicación incompetente
que codifica para una forma secretada de los inmunoconjugados
(ejemplo 1). En el ejemplo 1, las inyecciones intravenosas en
ratones SCID de los vectores que codifican para los
inmunoconjugados inhibieron el crecimiento tumoral pero provocaron
un daño histológico en el hígado, que es la diana primaria para la
infección mediante el vector inyectado por vía intravenosa. Con el
fin de determinar si la infección primaria podría redirigirse desde
células hepáticas a células tumorales, se inyectaron los vectores
por vía intratumoral en un melanoma de piel humana hecho crecer en
ratones SCID, y se mapeó la distribución del vector en el tumor e
hígado mediante la expresión del gen de la proteína fluorescente
verde (GFP) insertado en el genoma del vector (figura 14). Se
detectó una expresión de GFP intensa en el tumor pero no el hígado,
lo que indica que un tumor inyectado es la diana principal para la
infección mediante el vector. El patrón de expresión de GFP en el
tumor parecía estar restringido a unas pocas capas de células
tumorales adyacentes a la trayectoria atravesada por la aguja de
inyección.
El efecto de la dosis de vector sobre el
crecimiento tumoral se sometió a prueba inyectando una mezcla de
los dos vectores que codifican para los inmunoconjugados
mfVIIasm y G71-1 en una tumor de piel
de melanoma humano que se ha hecho crecer en ratones SCID, y
midiendo el volumen tumoral durante los siguientes 5 días. La razón
del vector de mfVIIasm con respecto al vector de
G71-1 en la mezcla era de 5 a 1, con el fin
de compensar el alto título del inmunoconjugado
G71-1 secretado a la sangre (ejemplo 2). La
dosis combinada de los dos vectores usados para las inyecciones se
varió desde 7 X 10^{8} hasta 6 X 10^{9} unidades infecciosas
(IU). Para un control, se inyectó un vector vacío sin un
inmunoconjugado codificado a una dosis de 6 X 10^{9} IU. Se
obtuvo la inhibición más fuerte del crecimiento tumoral con la mayor
dosis de los vectores que codifican para los inmunoconjugados. Se
usó esta dosis de vector para todos los experimentos con ratones
SCID siguientes.
En el siguiente experimento, se monitorizó el
efecto inhibidor sobre el crecimiento tumoral de la administración
de inyecciones intratumorales múltiples de los dos vectores que
codifican para los inmunoconjugados mfVIIasm y
G71-1 durante19 días. El título de las
proteínas de inmunoconjugados en la sangre de los ratones 2 días
tras la última inyección de los vectores adenovirales estaba
comprendido entre 1 mg/ml y 2 mg/ml, que representa aproximadamente
un cuarto del título producido mediante vectores inyectados por vía
intravenosa (ejemplo 2). El volumen promedio de estos tumores
disminuyó en aproximadamente el 70% en el plazo de un día tras la
primera inyección de los dos vectores, y los volúmenes no
aumentaron posteriormente durante el resto del experimento. Los
tumores a los que se les inyectó un vector control vacío crecieron
de manera continua, alcanzando al final del experimento un volumen
promedio de 1.900 mm^{3} en comparación con 30 mm^{3} para los
tumores a los que se les inyectó los vectores que codifican para
los dos inmunoconjugados. Los tumores a los se les inyectó sólo el
vector que codifica para el inmunoconjugado mfVIIasm se
inhibieron casi tan fuertemente como los tumores inyectados con
ambos vectores, lo que está de acuerdo con los experimentos
preliminares que implicaban inyecciones intravenosas de los
vectores (ejemplo 2). Los ratones permanecieron activos durante todo
el experimento y en autopsias realizadas 2 días tras las
inyecciones finales todos los órganos parecían morfológica e
histológicamente normales y no había evidencia de hemorragia. Dado
que los ratones SCID inyectados a los que se les inyectaron por vía
intravenosa los vectores que codifican para los inmunoconjugados
mostraron un daño histológica en las células hepáticas (ejemplo 2),
se sometieron a prueba los hígados de ratones SCID inyectados por
vía intratumoral para determinar el daño histológico y también
funcional. Al contrario que los cambios histológicos importantes
observados en las secciones de hígado de ratones inyectados por vía
intravenosa, las secciones de hígado de los ratones inyectados por
vía intratumoral mostraron cambios relativamente menores (figura
15). Se monitorizó la función hepática mediante ensayos para
determinar la enzima transaminasa
glutámico-oxalacética (SGOT) en sueros obtenidos de
los ratones durante la autopsia. Los niveles de SGOT en los ratones
control y los ratones a los que se les inyectó los vectores que
codifican para los inmunoconjugados permanecieron dentro del
intervalo normal (210 \pm 28 U/L), lo que indica que la función
hepática no resultó afectada.
Los tumores recuperados de los ratones
inyectados con los vectores que codifican para los inmunoconjugados
mfVIIasm y G71-1 carecían casi completamente de
vasos sanguíneos (figura 13), presumiblemente como resultado de una
respuesta inmunitaria citolítica frente a células endoteliales
vasculares inducida por el inmunoconjugado mfVIIasm unido a
TF.
La eficacia del protocolo de inyección
intratumoral depende no solo de la inhibición del tumor de piel
inyectado sino también de los tumores metastásicos que no son
accesibles para la inyección. Para someter a prueba un efecto
inhibidor sobre tumores metastásicos, se usó un modelo de ratón SCID
en el que se inyectan células TF de melanoma humano en la vena de
la cola, dando como resultado el transporte a través de la sangre de
las metástasis hasta los pulmones. También se les inyectó a los
ratones por vía subcutánea células LXSN de melanoma humano al mismo
tiempo y se les inyectó a los tumores de piel que se formaron 12
días más tarde los vectores que codifican para los dos
inmunoconjugados o un vector control vacío. Se continuó con las
inyecciones intratumorales con un programa bisemanal durante las
siguientes 8 semanas y se realizaron autopsias 2 días tras la última
inyección para determinar el número de nódulos tumorales sobre la
superficie de los pulmones (tabla 2). Los dos ratones a los que se
les inyectó el vector control presentaban 14 y 29 nódulos
pulmonares, respectivamente, al contrario que los cinco ratones a
los que se les inyectó los vectores que codifican para los dos
inmunoconjugados, tres de los cuales no presentaban nódulos
pulmonares y dos presentaban 1 y 5 nódulos, respectivamente. Estos
resultados indican que las inyecciones intratumorales de los
vectores que codifican para los dos inmunoconjugados pueden inhibir
el crecimiento de tumores metastásicos distantes así como del tumor
inyectado.
Se inyectaron ratones SCID en el día 0 con
células de melanoma humano por vía intravenosa para generar tumores
pulmonares metastásicos transportados a través de la sangre y por
vía subcutánea para generar un tumor de la piel. Se iniciaron las
inyecciones intratumorales de los vectores adenovirales que
codifican para los inmunoconjugados mfVIIasm y
G71-1 en el tumor de la piel en el día 10 y
se realizaron inyecciones adicionales bisemanalmente durante 7
semanas. Se realizaron las autopsias 2 semanas tras la última
inyección. El número de ratones era de 2 para el vector control y 5
para el vector que codifica para los inmunoconjugados.
Otro parámetro que puede afectar a la eficacia
del protocolo en una práctica clínica es la respuesta inmunitaria
de un paciente a los inmunoconjugados o el vector adenoviral. Debido
a que los dominios de direccionamiento y efector de
inmunoconjugados para uso clínico se derivarán de proteínas humanas,
los pacientes no deben mostrar una respuesta inmunitaria
significativa a los inmunoconjugados. Sin embargo, el vector
adenoviral es fuertemente inmunogénico en seres humanos y también
en ratones. Para evaluar el efecto de una respuesta inmunitaria al
vector adenoviral en ratones, se sometió a prueba el protocolo en
ratones inmunocompetentes que portan un tumor de piel de melanoma
de ratón. El experimento implicaba inyecciones intravenosas en vez
de intratumorales del vector, porque las células de melanoma de
ratón no pueden infectarse mediante el vector. Además, sólo el
inmunoconjugado mfVIIasm pudo someterse a prueba, porque las
células de melanoma de ratón se unen al inmunoconjugado mfVIIasm
pero no al inmunoconjugado G71-1. El dominio
efector de Fc del inmunoconjugado para este experimento se derivaba
de una inmunoglobulina IgG1 de ratón. Los resultados muestran que
las inyecciones intravenosas del vector adenoviral que codifica
para el inmunoconjugado mfVIIasm da como resultado la
inhibición del crecimiento de un tumor de melanoma en ratones
inmunocompetentes así como en ratones SCID (figura 16).
Debido a que TF se expresa generalmente mediante
células endoteliales vasculares tumorales y también mediante la
mayoría de las células tumorales metastásicas, un inmunoconjugado
fVIIasm pudo mediar una respuesta inmunitaria citolítica no
sólo frente a melanomas humanos sino también frente a un amplio
espectro de otros tumores humanos. Tal como se muestra en el
estudio notificado en la presente memoria, las inyecciones
intratumorales de un vector adenoviral que codifica para el
inmunoconjugado mfVIIasm en un tumor humano parecen ser un
protocolo seguro y eficaz para establecer y mantener un elevado
título en sangre del inmunoconjugado. Sin embargo, las células del
tumor inyectado deben ser susceptibles a una infección por el
adenovirus y poder sintetizar y secretar el inmunoconjugado
codificado. Un panel de líneas de tumor humano y de ratón, que
consistía en líneas de melanoma, cáncer de próstata, cáncer de
mama, cáncer de riñón, cáncer gástrico y neuroblastoma humano y
líneas de melanoma y cáncer de mama de ratón, se sometió a prueba
como huésped para el vector adenoviral que codifica para el
inmunoconjugado mfVIIasm. Todas las líneas de tumor humano
produjeron y secretaron aproximadamente la misma cantidad de la
proteína inmunoconjugada, lo que indica que el protocolo de
inyección intratumoral podría usarse también para otros tipos de
tumores sólidos humanos además de melanoma. Las líneas de tumor de
ratón no produjeron la proteína inmunoconjugada, probablemente
porque las células de ratón no se infectaron por el vector
adenoviral.
\vskip1.000000\baselineskip
El protocolo de inmunoterapia contra el cáncer
descrito en este ejemplo implica inyecciones intratumorales de
vectores adenovirales de replicación incompetente que codifican para
moléculas inmunoconjugadas que median en una respuesta inmunitaria
citolítica frente a la vasculatura del tumor y células tumorales
(figura 1). Las células infectadas por los vectores sintetizan los
inmunoconjugados codificados, que se secretan a la sangre y se unen
a las dianas homólogas en células tumorales y células endoteliales
de la vasculatura. La inyección intratumoral de los vectores
proporciona una ventaja de seguridad importante con respecto a la
inyección intravenosa, porque el vector infecta predominantemente
las células del tumor inyectado en lugar de las células hepáticas.
Ni el hígado ni otro órgano de los ratones mostraron un daño
significativo a partir de las inyecciones intratumorales repetidas.
También pueden infectarse mediante el vector varios tipos de células
de tumor humano distintos de melanoma y pueden sintetizar y
secretar el inmunoconjugado codificado. Por tanto, la vía de
inyección intratumoral para los vectores podrá aplicarse
generalmente a tumores sólidos humanos. Si ningún tumor es accesible
para la inyección, el vector podrá inyectarse en un tejido normal
susceptible.
La eficacia terapéutica del protocolo de
inyección se sometió a prueba en un modelo de ratón SCID de melanoma
de piel humana y melanoma de pulmón metastásico. Las pruebas
implicaban dos inmunoconjugados que contenían diferentes dominios
de direccionamiento. 1) Un dominio de direccionamiento es el
zimógeno sanguíneo, factor VII (fVII), que se une con alta afinidad
y especificidad al factor tisular de receptor transmembrana
expresado mediante células endoteliales de vasos sanguíneos en
crecimiento, incluyendo los vasos de la neovasculatura del tumor, y
también por la mayoría de las células de tumor humano. Un
inmunoconjugado de fVII debe competir in vivo con un factor
VII endógeno para unirse al factor tisular en las células
seleccionadas como diana. Esta competición favorece enormemente la
molécula inmunoconjugada homodimérica (figura 1) con respecto a la
molécula endógeno monomérica, porque el efecto de avidez de dos
dominios de direccionamiento potencia la unión a células que
expresan múltiples copias de factor tisular (ejemplo 2); además, el
título en sangre es mayor para el inmunoconjugado de fVII
codificado por el vector que para el factor VII endógeno. Se usó un
dominio de direccionamiento de fVII de ratón para los experimentos
que implican xenoinjertos de tumor humano que se hicieron crecer en
ratones SCID, porque se une estrechamente tanto al factor tisular
humano en las células tumorales como al factor tisular de ratón en
las células endoteliales de ratón en la vasculatura del tumor. Para
impedir la iniciación de la ruta de coagulación sanguínea mediante
la unión de un inmunoconjugado de fVII al factor tisular, lo que
podría provocar coagulación intravascular diseminada, se introdujo
una mutación en el sitio activo del dominio de direccionamiento de
fVII de ratón (mfVIIasm) . 2) El segundo dominio de
direccionamiento es el anticuerpo Fv monocatenario (scFv)
G71-1 que se une a un proteoglicano de
condroitina sulfato expresado de manera selectiva mediante células
de melanoma humano (ejemplos 1 y 2). Los resultados de las pruebas
de inmunoterapia mostraron que las inyecciones intratumorales del
vector que codifica para el inmunoconjugado mfVIIasm, o bien
solo o bien con el vector que codifica para el inmunoconjugado
G71-1, inhibieron el crecimiento del tumor
de piel inyectado y también los tumores de pulmón metastásicos
(figura 16 y tabla 2). El tejido tumoral residual restante tras las
inyecciones intratumorales de los vectores que codifican para los
inmunoconjugados carecía casi de vasos sanguíneos (figura 13), lo
que indica que el inmunoconjugado mfVIIasm induce una
respuesta inmunitaria citolítica potente que da como resultado una
destrucción extensa de la neovasculatura del tumor.
La descripción anterior se proporciona con el
fin de enseñar al experto ordinario en la materia cómo poner en
práctica la presente invención y no pretende detallar todas las
modificaciones y variaciones obvias de la misma que resultarán
evidentes para un experto a partir de la descripción. Sin embargo,
se pretende que todas las modificaciones y variaciones obvias de
este tipo estén incluidas dentro del alcance de la presente
invención, que se define mediante las reivindicaciones siguientes.
Las reivindicaciones pretenden cubrir los componentes y las etapas
reivindicados en cualquier secuencia que sea eficaz para cumplir los
objetivos pretendidos por los mismos, a menos que el contexto
indique específicamente lo contrario.
<110> Alan Garen
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<120> Inmunoconjugados dirigidos contra
diana neovascular
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<130> OCR-679B
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<140> Documento PCT/US00/
\vskip0.400000\baselineskip
<141> 14/06/2000
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<150> Documento US 60/142.161
\vskip0.400000\baselineskip
<151> 01/07/1999
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 12
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<170> MS DOS
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 60
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> cebador
\vskip0.400000\baselineskip
<223> usado en constructos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 39
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> cebador
\vskip0.400000\baselineskip
<223> usado en constructos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 44
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> cebador
\vskip0.400000\baselineskip
<223> usado en constructos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 50
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> cebador
\vskip0.400000\baselineskip
<223> usado en constructos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 4
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 67
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> cebador
\vskip0.400000\baselineskip
<223> usado en constructos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 5
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 57
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> cebador
\vskip0.400000\baselineskip
<223> usado en constructos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 6
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 38
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> cebador
\vskip0.400000\baselineskip
<223> usado en constructos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 7
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 38
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> cebador
\vskip0.400000\baselineskip
<223> usado en constructos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 8
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 39
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> cebador
\vskip0.400000\baselineskip
<223> usado en constructos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 9
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 49
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> cebador
\vskip0.400000\baselineskip
<223> usado en constructos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 10
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1569
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> inmunoconjugado
G71-1
\vskip0.400000\baselineskip
<223> incluye líder + G71 + ligador + VL +
IgG1Fc
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 12
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 2139
\vskip0.400000\baselineskip
<212> AND
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> inmunoconjugado hfVIIasm
\vskip0.400000\baselineskip
<223> incluye líder + hfVIIasm + IgG1Fc
humana
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 12
Claims (16)
1. Composición útil en el tratamiento de estados
patológicos caracterizados porque presentan
neovascularización que comprende una proteína de inmunoconjugado
construida como un dímero de dos cadenas idénticas, presentando cada
una un dominio efector que es el dominio Fc de una cadena pesada de
inmunoglobulina IgG1 conjugado con un dominio de direccionamiento
que es una forma mutante del factor VII que se une al factor tisular
pero que no inicia la coagulación sanguínea, en la que dicha forma
mutante del factor VII comprende una mutación seleccionada de entre
el grupo constituido por alanina por la lisina 341 y una alanina por
la serina 344.
2. Composición según la reivindicación 1, que
comprende además una segunda proteína de inmunoconjugado construida
como un dímero de dos cadenas idénticas, presentando cada una un
dominio efector que es el dominio Fc de una cadena pesada de
inmunoglobulina IgG1 humana conjugado con un dominio de
direccionamiento que es un fragmento de anticuerpo scFv o V_{H}
humano que se une a la neovasculatura.
3. Composición según la reivindicación 1, que
comprende además una segunda proteína de inmunoconjugado construida
como un dímero de dos cadenas idénticas, presentando cada una un
dominio efector que es el dominio Fc de una cadena pesada de
inmunoglobulina IgG1 conjugado con un dominio de direccionamiento
que es un fragmento de anticuerpo scFv o V_{H} que se une a un
tipo particular de célula tumoral.
4. Composición según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en la que la proteína de inmunoconjugado se
codifica como una molécula secretada en un vector de expresión.
5. Composición según la reivindicación 4, en la
que el vector de expresión es un vector adenoviral de replicación
deficiente.
6. Composición según la reivindicación 4, en la
que el vector de expresión es un vector de expresión
adenoasociado.
7. Utilización de por lo menos un tipo de
proteína de inmunoconjugado en la preparación de un medicamento
destinado al tratamiento de una enfermedad asociada con la
neovascularización en un paciente, comprendiendo dicha proteína de
inmunoconjugado el dominio Fc de una cadena pesada de
inmunoglobulina IgG1 conjugado con un dominio de direccionamiento
que comprende una forma mutante del factor VII que se une al factor
tisular pero que no inicia la coagulación sanguínea, en la que dicha
forma mutante del factor VII comprende una mutación seleccionada de
entre el grupo constituido por alanina por la lisina 341 y una
alanina por la serina 344.
8. Utilización según la reivindicación 7, en la
que se administra al paciente como terapia complementaria una
segunda proteína de inmunoconjugado que presenta un dominio efector
que es el dominio Fc de una cadena pesada de inmunoglobulina IgG1
conjugado con un dominio de direccionamiento que es un fragmento de
anticuerpo scFv o V_{H} humano que se une a la neovasculatura o a
las células tumorales.
9. Utilización según la reivindicación 7, que es
un tratamiento para una enfermedad seleccionada de entre el grupo
constituido por cáncer que implica un tumor vascularizado, artritis
reumatoide y la forma exudativa de la degeneración macular.
10. Utilización según cualquiera de las
reivindicaciones 7 a 9, en la que el paciente es tratado mediante la
administración de una proteína de inmunoconjugado en un vehículo
farmacéuticamente aceptable.
11. Utilización según cualquiera de las
reivindicaciones 7 a 9, en la que el paciente es tratado mediante la
administración de un vector adenoviral de replicación deficiente o
un vector adenoasociado que es portador de un ADNc que codifica para
una forma secretada de uno o más tipos de proteína de
inmunoconjugado.
12. Utilización según la reivindicación 11, en
la que se utiliza un vector adenoviral de replicación
deficiente.
13. Utilización de por lo menos un tipo de
proteína de inmunoconjugado en la preparación de un medicamento
destinado al tratamiento del cáncer en un paciente, comprendiendo
dicha proteína de inmunoconjugado el dominio Fc de una cadena pesada
de inmunoglobulina IgG1 humana conjugado con un dominio de
direccionamiento que comprende una forma mutante del factor VII
humano seleccionada de entre el grupo constituido por factor VII
nativo que presenta una sustitución de alanina por lisina 341,
factor VII nativo que presenta una sustitución de alanina por serina
344 y mezclas de las mismas.
14. Utilización según la reivindicación 13, en
la que se administra al paciente como terapia complementaria una
segunda proteína de inmunoconjugado que presenta un dominio efector
que es el dominio Fc de una cadena pesada de inmunoglobulina IgG1
humana conjugado con un dominio de direccionamiento que es un
fragmento de anticuerpo scFv o V_{H} humano que se une al tipo de
célula tumoral del paciente.
15. Utilización según la reivindicación 13 ó 14,
en la que el paciente es tratado mediante la administración del
inmunoconjugado en un vehículo farmacéuticamente aceptable.
16. Utilización según la reivindicación 13 ó 14,
en la que el paciente es tratado mediante la administración de un
vector adenoviral de replicación deficiente que es portador de un
ADNc que codifica para una forma secretada de uno o más tipos de la
proteína de inmunoconjugado.
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US14216199P | 1999-07-01 | 1999-07-01 | |
US142161P | 1999-07-01 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
ES2307517T3 true ES2307517T3 (es) | 2008-12-01 |
Family
ID=22498780
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
ES00941443T Expired - Lifetime ES2307517T3 (es) | 1999-07-01 | 2000-06-14 | Inmunoconjugados dirigidos contra diana neovascular. |
Country Status (11)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP1198479B1 (es) |
JP (2) | JP2003504315A (es) |
AT (1) | ATE398633T1 (es) |
AU (1) | AU775621B2 (es) |
CA (1) | CA2377381C (es) |
CY (1) | CY1110394T1 (es) |
DE (1) | DE60039240D1 (es) |
DK (1) | DK1198479T3 (es) |
ES (1) | ES2307517T3 (es) |
PT (1) | PT1198479E (es) |
WO (1) | WO2001002439A1 (es) |
Families Citing this family (23)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US7160540B2 (en) | 2000-06-30 | 2007-01-09 | Regents Of The University Of Minnesota | Methods for detecting activity of clottings factors |
US6423826B1 (en) | 2000-06-30 | 2002-07-23 | Regents Of The University Of Minnesota | High molecular weight derivatives of vitamin K-dependent polypeptides |
US20030211094A1 (en) | 2001-06-26 | 2003-11-13 | Nelsestuen Gary L. | High molecular weight derivatives of vitamin k-dependent polypeptides |
US7323440B2 (en) | 2002-02-13 | 2008-01-29 | Micromet Ag | De-immunized MOG (poly)peptide constructs |
AU2003220091B2 (en) * | 2002-03-08 | 2006-02-16 | Emory University | Novel curcuminoid-factor VIIa constructs as suppressors of tumor growth and angiogenesis |
EP1485476A2 (en) * | 2002-03-12 | 2004-12-15 | Novo Nordisk A/S | Dimeric tf antagonist |
WO2004007557A2 (en) * | 2002-07-12 | 2004-01-22 | Novo Nordisk A/S | Tf antagonist |
WO2004006962A2 (en) * | 2002-07-12 | 2004-01-22 | Novo Nordisk A/S | A tissue factor binding immunoconjugate comprising factor viia |
US7425328B2 (en) | 2003-04-22 | 2008-09-16 | Purdue Pharma L.P. | Tissue factor antibodies and uses thereof |
ES2361036T3 (es) | 2003-05-06 | 2011-06-13 | Syntonix Pharmaceuticals, Inc. | Proteínas quiméricas vii-fc del factor de coagulación para el tratamiento de un trastorno hemostático. |
AU2012203896B2 (en) * | 2003-05-06 | 2014-09-25 | Bioverativ Therapeutics Inc. | Clotting Factor-Fc Chimeric Proteins to Treat Hemophilia |
TWI353991B (en) | 2003-05-06 | 2011-12-11 | Syntonix Pharmaceuticals Inc | Immunoglobulin chimeric monomer-dimer hybrids |
US7348004B2 (en) | 2003-05-06 | 2008-03-25 | Syntonix Pharmaceuticals, Inc. | Immunoglobulin chimeric monomer-dimer hybrids |
WO2005025623A2 (en) * | 2003-07-28 | 2005-03-24 | Emory University | Ef-24-factor vii conjugates |
US20080193441A1 (en) * | 2003-11-18 | 2008-08-14 | Iconic Therapeutics, Inc. | Homogeneous Preparations of Chimeric Protein |
JP2009203161A (ja) * | 2006-06-05 | 2009-09-10 | Mebiopharm Co Ltd | リウマチ治療薬 |
CA2804280A1 (en) | 2010-07-09 | 2012-01-12 | Biogen Idec Hemophilia Inc. | Chimeric clotting factors |
DK3402537T3 (da) | 2016-01-15 | 2021-03-29 | Rigshospitalet | Kvantitativ PET-afbildning af vævsfaktorekspression under anvendelse af 18-F mærket, aktiv positions-inhiberet faktor VII |
WO2017181145A1 (en) * | 2016-04-14 | 2017-10-19 | Iconic Therapeutics, Inc. | Compositions and methods for treating disorders associated with νeοvascularization |
EP3541432A4 (en) | 2016-11-17 | 2020-08-05 | Minerva Imaging ApS | 177 LU MARKED FACTOR VII INHIBITED BY ACTIVE LOCATION |
EP3595707A4 (en) * | 2017-03-14 | 2021-01-13 | Ohio State Innovation Foundation | METHODS AND COMPOSITIONS RELATING TO IGG3 IMMUNOCONJUGATES TARGETING TISSUE FACTOR |
JP2020537640A (ja) * | 2017-09-27 | 2020-12-24 | オハイオ・ステイト・イノベーション・ファウンデーション | 組織因子標的化car−nk及びcar−t細胞療法 |
EP3833381B1 (en) * | 2019-08-15 | 2022-08-03 | Catalyst Biosciences, Inc. | Modified factor vii polypeptides for subcutaneous administration |
Family Cites Families (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5861374A (en) * | 1991-02-28 | 1999-01-19 | Novo Nordisk A/S | Modified Factor VII |
CA2131528C (en) * | 1992-03-05 | 2004-07-13 | Philip E. Thorpe | Methods and compositions for targeting the vasculature of solid tumors |
US5877289A (en) * | 1992-03-05 | 1999-03-02 | The Scripps Research Institute | Tissue factor compositions and ligands for the specific coagulation of vasculature |
US5879672A (en) * | 1994-10-07 | 1999-03-09 | Regeneron Pharmaceuticals, Inc. | Tie-2 ligand 1 |
DK0771216T3 (da) * | 1994-07-11 | 2001-02-05 | Scripps Research Inst | Fremgangsmåder og præparater til specifik koagulering af tumorvaskulatur |
IL130908A0 (en) * | 1997-01-22 | 2001-01-28 | Univ Texas | Tissue-factor (tf) compositions for coagulation and tumor treatment |
-
2000
- 2000-06-14 PT PT00941443T patent/PT1198479E/pt unknown
- 2000-06-14 DK DK00941443T patent/DK1198479T3/da active
- 2000-06-14 AT AT00941443T patent/ATE398633T1/de active
- 2000-06-14 DE DE60039240T patent/DE60039240D1/de not_active Expired - Lifetime
- 2000-06-14 ES ES00941443T patent/ES2307517T3/es not_active Expired - Lifetime
- 2000-06-14 AU AU56149/00A patent/AU775621B2/en not_active Expired
- 2000-06-14 CA CA2377381A patent/CA2377381C/en not_active Expired - Lifetime
- 2000-06-14 JP JP2001508226A patent/JP2003504315A/ja not_active Withdrawn
- 2000-06-14 EP EP00941443A patent/EP1198479B1/en not_active Expired - Lifetime
- 2000-06-14 WO PCT/US2000/016481 patent/WO2001002439A1/en active IP Right Grant
-
2008
- 2008-09-10 CY CY20081100974T patent/CY1110394T1/el unknown
-
2012
- 2012-09-27 JP JP2012213338A patent/JP5745486B2/ja not_active Expired - Lifetime
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
EP1198479A4 (en) | 2004-10-20 |
AU775621B2 (en) | 2004-08-05 |
AU5614900A (en) | 2001-01-22 |
CA2377381A1 (en) | 2001-01-11 |
JP2003504315A (ja) | 2003-02-04 |
CY1110394T1 (el) | 2015-04-29 |
JP2012255032A (ja) | 2012-12-27 |
EP1198479A1 (en) | 2002-04-24 |
DE60039240D1 (de) | 2008-07-31 |
EP1198479B1 (en) | 2008-06-18 |
JP5745486B2 (ja) | 2015-07-08 |
ATE398633T1 (de) | 2008-07-15 |
PT1198479E (pt) | 2008-08-12 |
DK1198479T3 (da) | 2008-10-13 |
WO2001002439A1 (en) | 2001-01-11 |
CA2377381C (en) | 2013-06-11 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
ES2307517T3 (es) | Inmunoconjugados dirigidos contra diana neovascular. | |
US8388974B2 (en) | Neovascular-targeted immunoconjugates | |
AU2021201003B2 (en) | Trispecific binding proteins and methods of use | |
ES2433967T3 (es) | Productos de fusión anticuerpo-LIGHT como productos terapéuticos de cáncer | |
ES2346205T3 (es) | Anticuerpo humanizado (h14.18) del anticurpo 14.18 de raton que se enlaza con gd2 y su fusion con la il-2. | |
ES2283114T3 (es) | Anticuerpo con capacidad de produccion mejorada. | |
US10167328B2 (en) | Methods for cancer therapy using mutant light molecules with increased affinity to receptors | |
JP2020531048A (ja) | 結合剤 | |
ES2239032T3 (es) | Anticuerpo terapeutico contra el antigeno muc-1 y metodos para su uso. | |
US20050008649A1 (en) | Chimeric molecules and methods of use | |
ES2534726T3 (es) | Antígeno ED-A del fibrinógeno que está asociado con linfomas | |
BR112021001201A2 (pt) | anticorpo anti-tigit e uso do mesmo | |
EA018985B1 (ru) | Новый антиген, ассоциированный с новообразованными сосудами опухолевых метастазов | |
CA2180834A1 (en) | Antibodies to egf receptor and their antitumour effect | |
JP2000511416A (ja) | フィブロネクチンのed―bドメインに対する抗体、それらの構造及び用途 | |
JP6447887B2 (ja) | 二重特異性抗体及びその使用 | |
US11390666B2 (en) | Vascular endothelial growth factor/anti-fibronectin antibody fusion proteins | |
KR102654035B1 (ko) | 도펠 단백질 억제제 | |
KR102207221B1 (ko) | 도펠-타겟팅 분자를 이용한 병리학적 신생혈관 생성을 억제하는 방법 | |
Zehnder-Fjällman | Vascular endothelial growth factor receptor-3 specific single chain antibodies |