ES2296416T3 - Anticuerpo pa14 frente a ccr5. - Google Patents
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Abstract
Un anticuerpo monoclonal anti-receptor CCR5 para quimioquinas o uno de sus fragmentos, en el que el anticuerpo o su fragmento se une al mismo epítopo al que se une el anticuerpo monoclonal PA14, siendo PA14 el anticuerpo monoclonal producido por una línea de células de hibridoma depositada en la ATCC, Núm. de Registro HB-12610 y denominada PA14.
Description
Anticuerpo PA14 frente a CCR5.
El virus de tipo 1 de la inmunodeficiencia
humana (HIV-1) induce la fusión de membranas
virus-célula para conseguir entrar en las células
diana (8, 15, 66). La primera interacción de alta afinidad entre el
virión y la superficie celular es la unión de la glicoproteína
gp120 de la superficie viral al antígeno CD4 (13, 30, 41, 42). Ésta
a su vez induce cambios conformacionales en gp120, que la permiten
interaccionar con uno de los varios receptores para quimioquinas
(4, 5, 21, 36). El receptor CCR5 para quimioquinas CC es el
correceptor principal para las cepas
macrófago-trópicas (R5) y desempeña un papel crucial
en la transmisión sexual de HIV-1 (4, 5, 21, 36).
Los virus trópicos hacia las líneas de células T (X4) usan CXCR4
para entrar en las células diana y normalmente, pero no siempre,
aparecen de manera tardía en la progresión de la enfermedad o como
consecuencia de la propagación del virus en cultivo de tejidos (4,
5, 21, 36). Algunos cultivos aislados primarios de
HIV-1 tienen un tropismo dual (R5X4) ya que pueden
usar ambos correceptores, aunque no siempre con la misma eficiencia
(11, 57). Estudios de mutagénesis unidos a la resolución de la
estructura cristalina de la zona central de gp120 demostraron que
el sitio de unión al correceptor en gp120 comprende varios residuos
conservados (32, 53, 65).
Se ha demostrado que las tirosinas y los
residuos con carga negativa del dominio
amino-terminal (Nt) de CCR5 son esenciales para la
unión de gp120 al correceptor y para la fusión y entrada de
HIV-1 (6, 18, 20, 22, 28, 31, 52, 54). Los residuos
de los lazos extracelulares (ECL) 1-3 eran
prescindibles para la función del correceptor, aunque la
configuración interdominios tenía que mantenerse para la fusión y
entrada óptimas del virus (24). Esto llevó a la conclusión de que,
o gp120 forma interacciones con una superficie difusa sobre los ECL,
o que el dominio Nt es mantenido en una conformación funcional por
medio de enlaces con residuos de los ECL. Estudios realizados con
correceptores quiméricos y con anticuerpos monoclonales
anti-CCR5 han revelado también la importancia de
los enlaces extracelulares para la entrada viral (5, 54, 64).
Las moléculas que se unen específicamente a CCR5
y CXCR4 y que bloquean las interacciones con sus ligandos son una
herramienta poderosa para investigar a fondo las relaciones entre
estructura/función de los correceptores. La caracterización de esos
compuestos puede ayudar también a diseñar agentes terapéuticos
efectivos que dirijan las etapas de la entrada viral mediadas por
correceptor. Los inhibidores de la función del correceptor CCR5 o
CXCR4, identificados hasta la fecha, son de diversa naturaleza e
incluyen moléculas pequeñas, péptidos, quimioquinas y sus
derivados, y anticuerpos monoclonales (mAb). Los mecanismos de
acción de las moléculas pequeñas que bloquean la entrada
interfiriendo con la función del correceptor CXCR4 no se conocen
bien (17, 49, 55, 68). Uno de esos inhibidores, la pequeña molécula
aniónica AMD3100, depende de residuos situados en ECL2 y en el
cuarto dominio transmembrana (TM) de CXCR4 para inhibir la entrada
viral, pero no está claro si lo hace alterando la unión de gp120 a
CXCR4 o las etapas posteriores a la unión que conducen a la fusión
de las membranas (16, 34, 55). Hasta la fecha, no se ha informado
sobre la existencia de moléculas pequeñas que bloqueen de manera
específica la entrada de HIV-1 mediada por CCR5. La
inhibición de la entrada de HIV-1 por acción de
quimioquinas está mediada por al menos dos mecanismos diferentes: el
bloqueo de la interacción gp120/correceptor y la internalización
del complejo quimioquina/receptor (3, 26, 59, 63). La variante
APO-RANTES también inhibe el reprocesamiento de
CCR5 hacia la superficie celular (40, 56). Variantes tales como la
RANTES 9-68 y Met-RANTES solamente
impiden la interacción gp120/CCR5 y no regulan CCR5 por disminución
(67). Las variantes de SDF-1 presumiblemente actúan
a través de un mecanismo similar para bloquear la entrada viral
mediada por CXCR4 (12, 27, 39). Sólo un mAb
anti-CXCR4, el mAb 12G5, ha sido caracterizado por
sus propiedades antivirales. Se ha informado que la eficiencia de
la inhibición de la entrada viral por acción de 12G5 depende tanto
de la célula como del virus aislado (43, 58). Este mAb se une al
ECL2 de CXCR4, pero se desconoce el mecanismo mediante el que
inhibe la entrada (7). Sólo unos cuantos de los mAb
anti-CCR5 caracterizados hasta la fecha impiden
eficientemente la entrada de HIV-1 (28,64).
Curiosamente, los mAb cuyos epítopos se encuentran situados en el
dominio Nt de CCR5, que contiene el sitio de unión para gp120,
inhiben la fusión y la entrada virales menos eficientemente que el
mAb 2D7, cuyo epítopo se encuentra situado en el ECL2. El mAb 2D7
también antagoniza la actividad de las quimioquinas CC (64).
Se han aislado y caracterizado un panel de seis
mAb murinos, denominados PA8, PA9, PA10, PA11, PA12 y PA14. Los
seis mAb se unieron específicamente a células CCR5^{+} pero con
eficiencias diferentes que fueron dependientes del tipo de célula.
Estudios sobre mapeo de epítopos identificaron los residuos que son
importantes para la unión de los mAb y también revelaron
información sobre el plegamiento y las interacciones de los dominios
extracelulares de CCR5. Todos los mAb inhibieron la fusión y la
entrada de HIV-1 pero no hubo correlación entre la
capacidad de un mAb para inhibir la fusión y la entrada, y su
capacidad para inhibir la unión de gp120/sCD4 a células
CCR5^{+}.
Esta invención proporciona un anticuerpo
monoclonal anti-receptor CCR5 para quimioquinas o
uno de sus fragmentos según se definen en las reivindicaciones
adjuntas, así como el uso de dicho anticuerpo monoclonal o de dicho
fragmento para la preparación de una composición para inhibir la
fusión de HIV-1 a células CD4^{+} y la entrada
viral en dichas células.
Se usó una citometría de flujo para detectar la
expresión de la proteína CCR5 sobre la superficie de células
L1.2-CCR5^{+} y de PBMC recién aisladas y
estimuladas con PHA/IL-2. Las células se incubaron
con concentraciones saturantes de cada uno de los mAb, que fueron
detectados con un anticuerpo de reporte IgG
anti-ratón, marcado con PE. Se muestran los
resultados de un experimento representativo. Los resultados
obtenidos para cada uno de los mAb están expresados tanto en forma
de las intensidades de fluorescencia medias (m.f.i.), como en forma
del % de las células seleccionadas. Debido a que PA8, PA12 y PA14
son todos ellos de la subclase IgG1, sus m.f.i. son directamente
comparables. 2D7 es una IgG2a.
Se llevaron a cabo experimentos similares a los
descritos en la leyenda de la Fig. 7 con diferentes combinaciones
de inhibidores de la entrada viral. Los mAb
anti-CCR5 se ensayaron combinados unos con otros,
combinados con quimioquinas CC y combinados con
CD4-IgG2, que inhibe la adhesión de
HIV-1 a las células diana. El intervalo de
concentraciones de PA11 y PA12 fue de 0 \mug/ml - 250 \mug/ml;
el intervalo de concentraciones de 2D7 y PA14 fue de 0 \mug/ml -
25 \mug/ml; el intervalo de concentraciones de RANTES fue de 0
ng/ml - 250 ng/ml; el intervalo de concentraciones
CD4-IgG2 de 0 \mug/ml - 25 \mug/ml. Las
concentraciones de los agentes individuales, o de sus mezclas,
requeridas para producir una inhibición de la fusión o entrada del
50% y del 90% se compararon cuantitativamente con un parámetro
conocido como Índice de Combinación (CI).
Con fines comparativos, se han resumido los
valores de IC_{50} obtenidos en los diferentes ensayos en los que
se ensayaron los mAb anti-CCR5. Los valores de
IC_{50} se calcularon solamente para los mAb que pudieron ejercer
una inhibición >90% de la fusión, entrada o unión.
Se usó un protocolo de tinción con dos colores
para evaluar la unión de los mAb a proteínas CCR5 mutantes,
identificadas en el extremo C-terminal con el
péptido HA. Células HeLa que expresan mutantes puntuales de CCR5,
se incubaron con concentraciones saturantes de cada uno de los mAb,
seguido de detección con una IgG anti-ratón,
marcada con PE. La expresión de correceptores de superficie celular
se midió mediante doble tinción de las células con un mAb
anti-HA, marcado con FITC. Las cuatro cuadrículas
corresponden a los cuatro dominios extracelulares de CCR5. La
primera fila de cada cuadrícula indica la secuencia de aminoácidos
del correspondiente dominio extracelular de CCR5 (SEQ ID NOs: 1 -
4). La unión de los mAb anti-CCR5 al mutante que
porta alanina de cada residuo se expresa como porcentaje de la
unión a la CCR5 de tipo salvaje, según se describe en Materiales y
Métodos.
Células L1.2-CCR5 se cargaron
con Indo-1AM y se estimularon secuencialmente con un
mAb anti-CCR5 o con PBS, y seguidamente con RANTES
(a). Los cambios en la fluorescencia se midieron con un
espectrofluorómetro y los registros corresponden a un experimento
representativo. Se realizaron ensayos de la inhibición del flujo de
calcio por acción de PA14 y 2D7 para un amplio intervalo de
concentraciones de los mAb (b). Los resultados están representados
gráficamente en forma del % de inhibición del flujo de entrada de
calcio = [1- (fluorescencia relativa en presencia del mAb
\textdiv fluorescencia relativa en ausencia del mAb)] x 100%, y
son las medias de los valores de tres experimentos diferentes.
La inhibición de la fusión
célula-célula por acción de los mAb
anti-CCR5 se determinó mediante el ensayo de RET
(a). Se añadieron 0 \mug/ml - 250 \mug/ml de PA8 - PA12 ó 0
\mug/ml - 25 \mug/ml de PA14 ó 2D7 a una mezcla de células
HeLa-EnV_{JR-FL} y células PM1,
marcadas con F18 y R18 respectivamente. La RET por fluorescencia se
midió después de 4 h de incubación. Los resultados son valores
medios de tres experimentos independientes y se expresan en forma
del % de inhibición de la fusión = [1 -(% RET en presencia del mAb
\textdiv % RET en ausencia del mAb)] x 100%. La inhibición de la
entrada de HIV-1 por acción de los mAb
anti-CCR5 se determinó mediante una única ronda de
un ensayo de entrada basado en la replicación y en la actividad de
luciferasa (b). Células U87-CD4^{+}CCR5^{+} se
infectaron con un virus de reporte NLluc^{+}env^{-} que porta
la envoltura de JR-FL, en presencia de PA8 - PA12 en
concentraciones de 0 \mug/ml - 250 \mug/ml, o en presencia de
PA14 ó 2D7 en concentraciones de 0 \mug/ml - 25 \mug/ml. La
actividad de luciferasa (unidades relativas de luz, r.l.u.) se
midió en los lisados celulares 72 h después de la infección. Los
resultados son los de un experimento representativo y están
expresados en forma del % de inhibición de la entrada = [1 -
(r.l.u. en presencia de mAb \textdiv r.l.u. en ausencia de mAb)] x
100%. Unión de gp120 biotinilada [b], de sCD4 y de complejos
b-gp120-CD4 a células
L1.2-CCR5^{+} (c). Se observa una fuerte unión
cuando la gp120 derivada del virus HIV-1_{JRFL}
de tipo R5 forma un complejo con una cantidad equimolar de sCD4. No
se observa unión en ausencia de sCD4 o en el caso de la gp120
derivada del virus HIV-1_{LAI} de tipo X4. La
unión de fondo a las células L1.2-CCR5 se ha
sustraído en todas las curvas. La inhibición de la unión de
gp120/sCD4 a células L1.2-CCR5^{+} se ensayó en
presencia de concentraciones variables de cada uno de los
anticuerpos (d). Las células se preincubaron en placas de 96
pocillos con un mAb anti-CCR5 y seguidamente se
incubaron con una concentración saturante de gp120
biotinilada/sCD4. Por último, se midió la unión de estreptavidina
marcada con PE a las células usando un lector de fluorescencia para
placas. Los resultados corresponden a un experimento representativo
y están expresados en forma del % de inhibición de la unión de
gp120/sCD4 = [1 -(m.f.i. en presencia de mAb \textdiv m.f.i. en
ausencia de mAb)] x 100%.
Se obtuvieron curvas de
dosis-respuesta para los mAb usados de manera
individual y en combinación. Se añadieron 0 \mug/ml - 50
\mug/ml de PA12, 0 \mug/ml - 25 \mug/ml de 2D7, o una
combinación de ambos en proporción 2:1, a una mezcla de células
HeLa-Env_{JR-FL}^{+} y células
PM1, marcadas con R18 y F18 respectivamente. Se midió la RET por
fluorescencia después de 4 horas de incubación. Los resultados están
expresados en forma del % de inhibición de la fusión y son las
medias de los valores de tres experimentos independientes. Los
datos se analizaron usando el principio del efecto intermedio, que
se puede escribir como:
(1)f = 1/[1 +
(K/c)^{m}]
en donde f es la fracción
afectada/inhibida, c es una concentración, K es la concentración de
agente requerida para producir el efecto intermedio y m es un
coeficiente empírico que describe la forma de la curva de dosis
respuesta. La Ecuación (1) es una forma generalizada de las
ecuaciones que describen la cinética enzimática de
Michaelis-Menten, las isotermas de adsorción de
Langmuir y los equilibrios de ionización de
Henderson-Hasselbalch, en la que m = 1. En el
presente caso, K es igual al valor de la IC_{50}. K y m se
determinaron ajuste de curvas dosis-respuesta y la
Ecuación (1) se reordenó para permitir el cálculo de c para un f
dado. Los parámetros mejor ajustados para K y c son 8,8 \mug/ml y
0,54 \mug/ml en el caso de PA12, 0,36 \mug/ml y 0,68 en el caso
de 2D7, y 0,ll y 1,1 en el caso de la combinación de los mismos.
Estas curvas están representadas gráficamente e indican una bondad
de ajuste razonable entre el experimento y la
teoría.
Esta invención proporciona un anticuerpo
monoclonal anti-receptor CCR5 para quimioquinas o
uno de sus fragmentos según se define en las reivindicaciones.
La descripción también se refiere a una
composición para inhibir una infección por HIV-1,
que comprende al menos dos compuestos en cantidades sinérgicamente
efectivas para inhibir la infección por HIV-1, en la
que al menos uno de los compuestos previene la interacción
productiva entre HIV-1 y un correceptor de la fusión
con HIV-1.
Según aquí se usa, "composición" significa
una mezcla. Las composiciones incluyen, pero no se limitan a,
aquellas composiciones adecuadas para su administración a un
individuo por vía oral, rectal, intravaginal, tópica, nasal,
oftálmica o parenteral. Según aquí se usa, "parenteral"
incluye, pero no se limita a, inyecciones subcutáneas,
intravenosas, intramusculares o intraesternales, o técnicas de
infusión.
Según aquí se usa, "HIV-1"
se refiere al virus tipo-1 de la inmunodeficiencia
humana. HIV-1 incluye, pero no se limita a,
partículas virales extracelulares y las formas de
HIV-1 encontradas en las células infectadas por
HIV-1.
Según aquí se usa, "infección por
HIV-1" significa la introducción de información
genética de HIV-1 en una célula diana, tal como
mediante fusión de la membrana de la célula diana con
HIV-1 o con una célula glicoproteína^{+} que
porta la glicoproteína de la envoltura de HIV-1. La
célula diana puede ser una célula corporal de un individuo. En la
realización preferida, la célula diana es una célula corporal de un
individuo humano.
Según aquí se usa, "inhibir una infección por
HIV-1" significa la disminución de la cantidad de
información genética de HIV-1 introducida en una
población de células diana, en comparación con la cantidad que
estaría introducida en ausencia de dicha composición.
Según aquí se usa, "compuesto" significa
una entidad molecular, que incluye, pero que no se limita a,
péptidos, polipéptidos y otras moléculas orgánicas o inorgánicas y
sus combinaciones.
Según aquí se usa, "sinérgicamente
efectivos" significa que el efecto combinado de los compuestos
cuando se usan de manera combinada es mayor que sus efectos
aditivos cuando se usan de manera individual.
Según aquí se usa, "interacción productiva"
significa que la interacción de HIV-1 y del
correceptor para HIV-1 conduciría a la fusión de
dicho HIV-1 o de una célula glicoproteína^{+} que
porta la glicoproteína de la envoltura de HIV-1, y
la membrana que porta el correceptor.
Según aquí se usa, "previene la interacción
productiva" significa que la cantidad de interacción disminuye
en comparación con la que tendría lugar sin el compuesto. Las
interacciones se pueden prevenir ocultando o alterando regiones
interactivas presentes en el correceptor o en HIV-1,
o alterando la expresión, agregación, conformación o el estado de
asociación del correceptor.
Según aquí se usa, "correceptor de la fusión
con HIV-1" significa un receptor celular que
media en la fusión entre la célula diana que expresa el receptor y
el HIV-1 o una célula que porta la glicoproteína de
la envoltura de HIV-1. Los correceptores de la
fusión con HIV-1 incluyen, pero no se limitan a,
CCR5, CXCR4 y otros receptores para quimioquinas.
Esta invención también proporciona una
composición que inhibe la fusión de HIV-1 o de una
célula glicoproteína^{+} que porta la glicoproteína de la
envoltura de HIV-1 a una célula diana, que comprende
al menos dos compuestos en cantidades sinérgicamente efectivas para
inhibir la fusión de HIV-1 o de una célula
glicoproteína^{+} que porta la glicoproteína de la envoltura de
HIV-1 a una célula diana, en la que al menos uno de
los componentes previene la interacción productiva entre
HIV-1 y un correceptor de la fusión con
HIV-1.
Según aquí se usa, "fusión" significa la
anexión o unión de las membranas de la bicapa lipídica encontradas
en células de mamíferos o en virus tales como el
HIV-1. Este proceso se distingue de la adhesión de
HIV-1 a una célula diana. La adhesión está mediada
por la unión de la glicoproteína exterior de HIV-1
al receptor CD4 de seres humanos, que no es un correceptor de
fusión.
Según aquí se usa, "inhibe" significa que
la cantidad disminuye en comparación con la cantidad que habría en
ausencia de la composición.
Según aquí se usa, "célula diana" significa
una célula capaz de ser infectada por, o de fusionarse con,
HIV-1 o células infectadas por
HIV-1.
Según aquí se usa, "quimioquina" significa
una citoquina que tiene capacidad para estimular el movimiento
leucocitario. Las quimioquinas se pueden clasificar como
cys-cys o cys-X-cys
dependiendo de si los dos residuos de cisteína amino terminales se
encuentran inmediatamente adyacentes o si están separados por un
aminoácido. Este término incluye, pero no se limita a, RANTES,
MIP-1\alpha, MIP-l\beta,
SDF-1 u otras quimioquinas que bloquean la
infección por HIV-1.
En una de las realizaciones de las composiciones
anteriormente mencionadas, el correceptor es un receptor para
quimioquinas. En le realización preferida de las composiciones
anteriormente mencionadas, el receptor para quimioquinas es CCR5 o
CXCR4. Se conocen otros varios receptores para quimioquinas y
receptores relacionados que actúan como correceptores para
HIV-1 y que incluyen, pero no se limitan a, CCR2,
CCR3, CCR8, STRL33, GPR-15, CX3CR1 y APJ (69).
Según aquí se usa, "receptor para
quimioquina" significa un miembro de una familia homóloga de
siete proteínas de superficie celular que se extienden a lo largo
de la región transmembrana y que se unen a quimioquinas.
Según aquí se usa, "CCR5" es un receptor
para quimioquinas que se une a miembros del grupo
C-C de quimioquinas y cuya secuencia de aminoácidos
comprende la secuencia que se proporciona en Genbank, Número
de Registro 1705896, y las variantes polimórficas relacionadas.
Según aquí se usa, "CXCR4" es un receptor
para quimioquinas que se une a miembros del grupo de quimioquinas
C-X-C y cuya secuencia de
aminoácidos comprende la secuencia que se proporciona en
Genbank, Número de Registro 400654, y las variantes
polimórficas relacionadas.
En una de las realizaciones de las composiciones
anteriormente mencionadas, al menos uno de los compuestos es una
molécula no peptídica. En una de las realizaciones, la molécula no
peptídica es el compuesto bicyclam AMD3100. (16).
Según aquí se usa, "molécula no peptídica"
significa una molécula que no consiste en su totalidad en una
secuencia lineal de aminoácidos unidos por enlaces peptídicos. Una
molécula no peptídica puede sin embargo contener uno o más enlaces
peptídicos.
En una realización preferida, el anticuerpo es
un anticuerpo anti-CCR5. El anticuerpo
anti-CCR5 incluye, pero no se limita a, PA14.
Hibridomas murinos que secretan los anticuerpos
monoclonales PA8, PA9, PA10, PA11, PA12 y PA14 respectivamente,
fueron depositados de conformidad con, y en cumplimiento de, los
requerimientos del Tratado de Budapest sobre el reconocimiento
internacional del depósito de microorganismos a los fines del
procedimiento en materia de patentes, en la American Type
Culture Collection (ATCC), 10801 University Boulevard,
Manassas, Virginia 20110- 2209, el 2 de Diciembre de 1998, con los
siguientes Números de Registro: ATCC, Núm. de Registro
HB-12605 (PA8), ATCC, Núm. de Registro
HB-12606 (PA9), ATCC, Núm. de Registro
HB-12607 (PA10), ATCC, Núm. de Registro
HB-12608 (P11), ATCC, Núm. de Registro
HB-12609 (PA12) y ATCC, Núm. de Registro
HB-12610 (PA14).
En otro aspecto la descripción se refiere a
composiciones para inhibir una infección por HIV-1,
que comprenden dos o más anticuerpos. Los anticuerpos incluyen,
pero no se limitan a, PA8, PA9, PA10, PA11, PA12, PA14 y 2D7. En
esta composición los anticuerpos están en una proporción adecuada.
La proporción varía desde 1:1 hasta 50:1.
Según aquí se usa, "anticuerpo" significa
una molécula de inmunoglobulina que comprende dos cadenas pesadas y
dos cadenas ligeras y que reconoce un antígeno. La molécula de
inmunoglobulina puede derivar de cualquiera de las clases
comúnmente conocidas, que incluyen, pero que no se limitan a, IgA,
IgA secretora, IgG e IgM. Las subclases de IgG son también muy
conocidas por los que trabajan en la técnica e incluyen, pero no
limitan a, IgG1, IgG2, IgG3 e IgG4 humanas. Este término incluye, a
modo de ejemplo, tanto anticuerpos presentes en la naturaleza como
anticuerpos no presentes en la naturaleza. De manera específica,
"anticuerpo" incluye anticuerpos policlonales y anticuerpos
monoclonales, y sus fragmentos monovalentes y divalentes. Además,
"anticuerpo" incluye anticuerpos quiméricos, anticuerpos
totalmente sintéticos, anticuerpos monocatenarios y sus fragmentos.
De manera opcional, un anticuerpo puede estar marcado con un
marcador detectable. Los marcadores detectables incluyen, por
ejemplo, marcadores radiactivos o marcadores fluorescentes. El
anticuerpo puede ser un anticuerpo de origen humano o un anticuerpo
de origen no humano. El anticuerpo de origen no humano se puede
humanizar mediante métodos recombinantes para disminuir su
inmunogenicidad en el hombre. Métodos para humanizar anticuerpos
son conocidos por los expertos en la técnica.
Según aquí se usa, "anticuerpo monoclonal",
también denominado mAb, se usa para describir moléculas de
anticuerpo cuyas secuencias primarias son esencialmente idénticas y
que exhiben la misma especificidad antigénica. Los anticuerpos
monoclonales se pueden producir mediante técnicas que utilizan
hibridomas, técnicas recombinantes, transgénicas u otras técnicas
conocidas por el experto en la técnica.
Según aquí se usa, "anticuerpo
anti-receptor para quimioquinas" significa un
anticuerpo que reconoce y se une a un epítopo de un receptor para
quimioquinas. Según aquí se usa, "anticuerpo
anti-CCR5" significa un anticuerpo monoclonal
que reconoce y se une a un epítopo del receptor CCR5 para
quimioquinas.
Según aquí se usa, "proporción adecuada" se
refiere a las proporciones en masa o las proporciones en moles en
las que los compuestos son sinérgicamente efectivos.
En una de las realizaciones de las composiciones
anteriormente mencionadas, al menos uno de los compuestos es una
quimioquina o un derivado de quimioquinas. Las quimioquinas
incluyen, pero no se limitan a, RANTES,
MIP-1\alpha, MIP-1\beta,
SDF-1 o una de sus combinaciones. En esta
composición, los compuestos están en una proporción adecuada. Los
derivados de quimioquinas incluyen, pero no se limitan a,
Met-RANTES, AOP-RANTES, RANTES
9-68 o una de sus combinaciones.
Según aquí se usa, "derivado de
quimioquinas" significa una quimioquina químicamente modificada.
Las modificaciones químicas incluyen, pero no se limitan a,
sustituciones, adiciones o deleciones, adiciones no peptídicas u
oxidaciones. El experto en la técnica será capaz de preparar esos
derivados.
En otra de las realizaciones de las
composiciones anteriormente mencionadas, al menos uno de los
compuestos es un anticuerpo y al menos otro de los compuestos es
una quimioquina o un derivado de quimioquinas. En esta composición,
los compuestos se encuentran en una proporción adecuada. La
proporción varía desde 100:1 hasta 1.000:1.
En otra de las realizaciones de las
composiciones anteriormente mencionadas, al menos uno de los
compuestos se une a la subunidad gp41 de la glicoproteína de la
envoltura de HIV-1. En una de las realizaciones, al
menos uno de los compuestos es el péptido T20 inhibidor de la
entrada de HIV-1 (70).
En otra de las realizaciones de las
composiciones anteriormente mencionadas, al menos uno de los
compuestos inhibe la adhesión de HIV-1 a una célula
diana. En una de las realizaciones, al menos uno de los compuestos
se une a CD4. En una de las realizaciones, al menos uno de los
compuestos es una glicoproteína de la envoltura de
HIV-1. En una de las realizaciones, al menos uno de
los compuestos es un anticuerpo anti-CD4. En una de
las realizaciones, al menos uno de los compuestos se une a la
glicoproteína de la envoltura de HIV-1. En una de
las realizaciones, al menos uno de los compuestos es un anticuerpo
dirigido contra la glicoproteína de la envoltura de
HIV-1. En una de las realizaciones, al menos uno de
los compuestos es una proteína basada en CD4. En una de las
realizaciones, al menos uno de los compuestos es
CD4-IgG2.
En otra de las realizaciones de las
composiciones anteriormente mencionadas, al menos uno de los
compuestos es un anticuerpo y al menos otro de los compuestos se
une a una glicoproteína de la envoltura de HIV-1. En
una de las realizaciones, el compuesto está basado en CD4. En una
de las realizaciones, el compuesto es CD4-IgG2. En
esta composición, los compuestos están en una proporción adecuada.
La proporción varía desde 1:1 hasta 10:1.
Según aquí se usa, "adhesión" significa el
procedimiento que está mediado por la unión de la glicoproteína de
la envoltura de HIV-1 al receptor CD4 de seres
humanos, que no es un correceptor de la fusión.
Según aquí se usa, "CD4" significa la
proteína CD4 unida a membrana, natural y madura, que comprende un
dominio citoplasmático, un dominio transmembrana hidrófobo y un
dominio extracelular que se une a la glicoproteína gpl20 de la
envoltura de HIV-1.
Según aquí se usa, "glicoproteína de la
envoltura de HIV-1" significa la proteína
codificada por HIV-1, que comprende la proteína
gp120 de superficie, la proteína gp41 de transmembrana y sus
oligómeros y precursores.
Según aquí se usa, "proteína basada en CD4"
significa toda proteína que comprende al menos una secuencia de
residuos de aminoácidos que corresponden a la porción de CD4 que se
requiere para que CD4 forme un complejo con la glicoproteína gpl20
de la envoltura de HIV-1.
Según aquí se usa,
"CD4-IgG2" significa una proteína de fusión
constituida por CD4 heterotetramérico-IgG2 de seres
humanos, codificada por los vectores de fusión depositados en la
ATCC con los Números de Registro 75.193 y 75.194.
En una de las realizaciones de las composiciones
anteriormente mencionadas, al menos uno de los compuestos comprende
un polipéptido que se une a un epítopo de CCR5. En una de las
realizaciones, el epítopo está situado en el extremo
N-terminal, una de las tres regiones de bucles
extracelulares, o una de sus combinaciones. En una de las
realizaciones, el epítopo está situado en el extremo
N-terminal. El epítopo puede comprender N13 e Y15
en el extremo N-terminal. El epítopo puede
comprender Q4 en el extremo N-terminal. En otra de
las realizaciones, el epítopo incluye residuos del extremo
N-terminal y del segundo bucle extracelular. El
epítopo puede comprender D2, Y3, Q4, S7, P8 y N13 del extremo
N-terminal, e Y176 y T177 del segundo bucle
extracelular. El epítopo puede comprender D2, Y3, Q4, P8 y N13 del
extremo N-terminal, e Y176 y T177 del segundo bucle
extracelular. El epítopo puede comprender D2 del extremo
N-terminal, y R168 e Y176 del segundo bucle
extracelular. En una de las realizaciones, el epítopo está situado
en el segundo bucle extracelular. El epítopo puede comprender Q170
y K171 del segundo bucle extracelular. El epítopo puede comprender
Q170 y E172 del segundo bucle extracelular.
Según aquí se usan, las siguientes abreviaturas
estándar se usan a lo largo de toda la memoria descriptiva para
indicar aminoácidos concretos:
- A = ala = alanina
- R = arg = arginina
- N = asn = asparagina
- D = asp= ácido áspartico
- C = cys = cisteína
- Q = gln = glutamina
- E = glu = ácido glutámico
- G = gly = glicina
- H = His = histidina
- I = ile = isoleucina
- L = leu = leucina
- K = lis = lisina
- M = met = metionina
- F = phe = fenilalanina
- P = pro = prolina
- S = ser = serina
- T = thr = treonina
- W = trp = triptófano
- Y = tyr = tirosina
- V = val = valina
\vskip1.000000\baselineskip
Según aquí se usa, "polipéptido" significa
dos o más aminoácidos unidos por un enlace peptídico.
Según aquí se usa, "epítopo" significa una
porción de una molécula o moléculas, que forma una superficie para
la unión de anticuerpos u otros compuestos. El epítopo puede
comprender aminoácidos contiguos o no contiguos, carbohidratos u
otros restos no peptídicos o superficies específicas de
oligómeros.
Según aquí se usa, "extremo
N-terminal" significa la secuencia de aminoácidos
que abarca la metionina inicial y la primera región
transmembrana.
\global\parskip0.900000\baselineskip
Según aquí se usa, "segundo bucle
extracelular" significa la secuencia de los aminoácidos que
abarcan las regiones transmembrana cuarta y quinta y que se
encuentran presentes sobre la superficie.
En una de las realizaciones de las composiciones
anteriormente mencionadas, al menos uno de los compuestos comprende
una cadena ligera de un anticuerpo. En otra de las realizaciones de
las composiciones anteriormente mencionadas, al menos uno de los
compuestos comprende una cadena pesada de un anticuerpo. En otra de
las realizaciones de las composiciones anteriormente mencionadas,
al menos uno de los compuestos comprende la porción Fab de un
anticuerpo. En otra de las realizaciones de las composiciones
anteriormente mencionadas, al menos uno de los compuestos comprende
el dominio variable de un anticuerpo. En otra de las realizaciones,
el anticuerpo se produce en forma de un polipéptido único o
anticuerpo "monocatenario" que comprende los dominios variables
de cadena pesada y de cadena ligera genéticamente unidos ligados a
través de una secuencia de aminoácidos interpuesta. En otra de las
realizaciones de las composiciones anteriormente mencionadas, al
menos uno de los compuestos comprende una o más porciones de CDR de
un anticuerpo.
Según aquí se usa, "cadena pesada"
significa el polipéptido más grande de una molécula de anticuerpo,
compuesta por un dominio variable (VH) y tres o cuatro dominios
constantes (CH1, CH2, CH3 y CH4), o sus fragmentos.
Según aquí se usa, "cadena ligera"
significa el polipéptido más pequeño de una molécula de anticuerpo,
compuesta por un dominio variable (VL) y por un dominio constante
(CL), o sus fragmentos.
Según aquí se usa, "Fab" significa un
fragmento monovalente de unión a antígeno, de una inmunoglobulina,
que consiste en una cadena ligera y parte de una cadena pesada. Se
puede obtener mediante una digestión corta con papaína o mediante
métodos recombinantes.
Según aquí se usa, "fragmento
F(ab')2" significa un fragmento bivalente de unión a
antígeno, de una inmunoglobulina, que consiste en ambas cadenas
ligeras y en parte de ambas cadenas pesadas. Se puede obtener
mediante una digestión corta con pepsina o mediante métodos
recombinantes.
Según aquí se usa, "CDR" o ``región
determinante de la complementariedad significa una secuencia de
aminoácidos altamente variable, del dominio variable de un
anticuerpo.
Esta descripción de refiere a las composiciones
anteriormente mencionadas y a un vehículo farmacéuticamente
aceptable. Los vehículos farmacéuticamente aceptables son muy
conocidos por los expertos en la técnica. Esos vehículos
farmacéuticamente aceptables pueden incluir, pero no se limitan a,
disoluciones acuosas o no acuosas, suspensiones y emulsiones.
Ejemplos de disolventes no acuosos son propilenglicol,
polietilenglicol, aceites vegetales tales como aceite de oliva, y
ésteres orgánicos inyectables tales como el oleato de etilo. Los
vehículos acuosos incluyen agua, disoluciones de alcohol/agua,
emulsiones o suspensiones, disolución salina y medios tamponados.
Los vehículos parenterales incluyen disolución de cloruro sódico,
dextrosa en Ringer, dextrosa y cloruro sódico, Ringer con lactato o
aceites no volátiles. Los vehículos intravenosos incluyen agentes de
reposición de fluidos y nutrientes, agentes de reposición de
electrolitos tales como los basados en dextrosa en Ringer, y
vehículos similares. También pueden encontrarse presentes
conservantes y otros aditivos, tales como, por ejemplo, agentes
antimicrobianos, antioxidantes, agentes quelantes, gases inertes y
agentes similares.
Esta descripción se refiere a un método para
tratar a un individuo afectado por HIV-1, que
comprende administrar al individuo una dosis efectiva de las
composiciones anteriormente mencionadas.
Según aquí se usa, "individuo" significa
cualquier animal o cualquier animal artificialmente modificado,
capaz de infectarse con HIV-1. Los animales
artificialmente modificados incluyen, pero no se limitan a, ratones
SCID con sistemas inmunológicos de seres humanos. Los animales
incluyen, pero no se limitan a: ratones, ratas, perros, cobayas,
hurones, conejos y primates. En la realización preferida, el
individuo es un ser humano.
Según aquí se usa, "tratar" significa o
retrasar o detener o revertir la progresión de un trastorno
producido por HIV-1. En la realización preferida,
"tratar" significa revertir la progresión hasta el punto de
eliminar el trastorno. Según aquí se usa, "tratar" significa
también la disminución del número de infecciones virales, la
disminución del número de partículas virales infecciosas, la
disminución del número de células infectadas por virus, o la
mejoría de los síntomas asociados con HIV-1.
Según aquí se usa, "afectado por
HIV-1" significa que el individuo tiene al menos
una célula que ha sido infectada por HIV-1.
Según aquí se usa, la "administración" se
puede efectuar o realizar usando cualquiera de los métodos conocidos
por el experto en la técnica. Los métodos pueden comprender medios
intravenosos, intramusculares o subcutáneos.
La dosis de la composición de la invención
variará dependiendo del individuo y de la vía de administración
concreta que se use. Las dosificaciones pueden variar desde 0,1
\mug/kg hasta 100.000 \mug/kg. Dependiendo de la composición,
la dosis se puede suministrar de manera continua, tal como mediante
una bomba continua, o a intervalos periódicos. Por ejemplo, en una
o más ocasiones distintas. Los intervalos de tiempo convenientes
entre dosis múltiples de una composición particular se pueden
determinar sin necesidad de una experimentación excesiva por parte
de un experto en la técnica.
\global\parskip1.000000\baselineskip
Según aquí se usa, "dosis efectiva"
significa una cantidad en cuantías suficientes para tratar al
individuo o para prevenir al individuo de que se infecte con
HIV-1. Una persona con una experiencia ordinaria en
la técnica puede realizar experimentos de titulación sencillos para
determinar cuál es la cantidad que se requiere para tratar al
individuo.
Esta descripción se refiere a un método para
prevenir que un individuo contraiga el HIV-1, que
comprende administrar al individuo una dosis efectiva de las
composiciones anteriormente mencionadas.
Según aquí se usa, "que contraiga
HIV-1" significa que se infecte con
HIV-1, cuya información genética se replica y/o se
incorpora en las células hospedadoras.
Esta invención proporciona un anticuerpo
monoclonal anti-CCR5. El anticuerpo incluye, pero no
se limita a, un anticuerpo producido por uno de los siguientes
hibridomas: PA8 (ATCC, Núm. de Registro: HB-12605),
PA9 (ATCC, Núm. de Registro: HB-12606), PA10 (ATCC,
Núm. de Registro: 12607), PA11 (ATCC, Núm. de Registro:
HB-12608), PA12 (ATCC, Núm. de Registro:
HB-12609) y PA14 (ATCC, Núm. de Registro:
HB-12610).
Esta invención proporciona formas humanizadas de
los anticuerpos anteriormente mencionados.
Según aquí se usa, "humanizados" describe a
los anticuerpos en los que algunos, la mayoría o la totalidad de
los aminoácidos situados fuera de las regiones CDR están
reemplazados con los correspondientes aminoácidos derivados de
moléculas de inmunoglobulinas humanas. En una de las realizaciones
de las formas humanizadas de los anticuerpos, algunos, la mayoría o
la totalidad de los aminoácidos situados fuera de las regiones CDR
están reemplazados con aminoácidos derivados de moléculas de
inmunoglobulinas humanas, pero en los que algunos, la mayoría o la
totalidad de los aminoácidos incluidos en una o más regiones CDR no
han sido cambiados. Son permisibles pequeñas adiciones, deleciones,
inserciones, sustituciones o modificaciones de aminoácidos siempre
y cuando no anulen la capacidad del anticuerpo para unirse a un
antígeno determinado. Las moléculas adecuadas de inmunoglobulinas
humanas incluirían moléculas de IgG1, IgG2, IgG3, IgG4, IgA e IgM.
Un anticuerpo "humanizado" conservaría una especificidad
antigénica similar a la del anticuerpo original, es decir, en la
presente invención, la capacidad para unirse a CCR5.
Esta descripción se refiere a moléculas de ácido
nucleico aisladas, que codifican estos anticuerpos monoclonales
anti-CCR5 o sus versiones humanizadas. La molécula
de ácido nucleico puede ser RNA, DNA o cDNA. En una de las
realizaciones, la molécula de ácido nucleico codifica la cadena
ligera. En una de las realizaciones, la molécula de ácido nucleico
codifica la cadena pesada. En una de las realizaciones, la molécula
de ácido nucleico codifica ambas cadenas ligera y pesada. En una de
las realizaciones, una o más moléculas de ácido nucleico codifican
la porción Fab. En una de las realizaciones, una o más moléculas de
ácido nucleico codifican porciones de CDR. En una de las
realizaciones, la molécula de ácido nucleico codifica el dominio
variable.
Esta invención se comprenderá mejor a partir de
los Detalles Experimentales que siguen a continuación. Sin embargo,
un experto en la técnica apreciará enseguida que los métodos
específicos y los resultados analizados en la Discusión son
meramente ilustrativos de la invención según ésta se describe de
manera más completa en las reivindicaciones que siguen
posteriormente.
El Mab 2D7 se adquirió procedente de
Pharmingen (San Diego, CA) y las quimioquinas CC y
quimioquinas CXC se obtuvieron procedentes de R&D
Systems (Minneapolis, MN). El CD4-IgG2 (1), el
CD4 soluble (s) (2) y la gp120 recombinante procedente de
HIV-1_{JR-FL}, fueron producidos
por Progenics Pharmaceuticals, Inc. (59).
Células L1.2-CCR5^{+} (63) se
incubaron durante 16 h en presencia de butirato de sodio 5 mM, el
cual activa la transcripción desde el promotor de citomegalovirus
(CMV) que controla la expresión de CCR5, dando como resultado un
incremento de 10 veces en la densidad del correceptor en la
superficie celular. Ratones hembras Balb/c se inmunizaron por vía
intraperitoneal con 10^{7} células L1.2-CCR5^{+}
a intervalos de 3 semanas, y se les administró una dosis de
refuerzo intravenosa de 10^{7} células L1.2- CCR5^{+} tres días
antes de la esplenoctomía. Los esplenocitos se fusionaron con la
línea celular Sp2/0. En un primer escrutinio, se sometieron a
ensayo los sobrenadantes procedentes de diez mil cultivos de
hibridomas; ciento veinte de estos sobrenadantes inhibieron la
fusión mediada por la envoltura de HIV-1, entre
células PM1 (10), que expresan CCR5 y CD4 de manera natural, y
células HeLa-Env_{JRFL}^{+}, en un ensayo de
transferencia de energía de resonancia (RET), según se ha descrito
previamente (19, 38). Los hibridomas que produjeron los
sobrenadantes inhibidores más potentes y que también tiñeron las
células CCR5^{+}, se subclonaron mediante dilución límite. Los
fluidos ascíticos fueron preparados por Harlan Bioproducts for
Science, Inc. (Indianapolis, IN) procedentes de ratones Balb/c
a los que se había inyectado hibridomas que producían los mAb
anti-CCR5 PA8, PA9, PA10, PA11, PA12 y PA14. Los
mAb se purificaron individualmente hasta obtener una homogeneidad de
>95% mediante precipitación con sulfato amónico, seguida de
cromatografía en presencia de Proteína A. Todos los mAb se
resuspendieron en disolución salina tamponada con fosfato (PBS) hasta alcanzar una concentración final de 5 mg/ml.
resuspendieron en disolución salina tamponada con fosfato (PBS) hasta alcanzar una concentración final de 5 mg/ml.
Se usó una citometría de flujo para detectar la
reactividad sobre la superficie celular de los mAb
PA8-PA12 y PA14 con CCR5. Células
L1.2-CCR5^{+} (10^{6}) tratadas con butirato de
sodio se incubaron con 0,25 \mug de anticuerpo durante 20 min a
4ºC en azida sódica (NaN_{3}) al 0,1% en 50 \mul de PBS de
Dulbecco (DPBS). El mAb 2D7 anti-CCR5 se usó como
control positivo y una IgG1 murina inespecífica se usó como control
negativo. Las células se sedimentaron mediante centrifugación, se
lavaron y se incubaron con IgG anti-ratón,
procedente de cabra, marcada con ficoeritrina (PE) (del inglés,
"Phycoerythrin") (Caltag, Burlingame, CA), diluida en
proporción 1:100, en las mismas condiciones que la incubación con el
primer anticuerpo. Finalmente, las células se analizaron mediante
citometría de flujo. Las PBMC se aislaron y se estimularon de la
manera previamente descrita (60) y se tiñeron usando métodos
similares.
Un procedimiento similar se usó para el mapeo de
los epítopos de los mAb anti-CCR5. Se ha descrito un
panel de setenta mutantes puntuales de CCR5 (20, 24, 52). Las
secuencias codificadoras de estas proteínas se encuentran
subclonadas en el vector pcDNA3.1 (Stratagene), en el que se
puede dirigir la transcripción con un promotor 5' de la polimerasa
de T7. Los mutantes de CCR5 portan una secuencia identificadora de 9
residuos de hemaglutinina (HA) en el extremo
C-terminal para detectar la proteína en lisados
celulares o mediante citometría de flujo. Células HeLa (2 x
10^{6}) se incubaron durante 5 h con lipofectina, 20 \mug/ml, y
con una cantidad igual de un plásmido que expresa la CCR5 de tipo
salvaje o una CCR5 mutante en OPTI-MEM (Life
Technologies, Gaithersburg, MD). Las células se infectaron
luego durante 12 h con 2 x 10^{7} p.f.u. de vTF7 (23) para
estimular la expresión de CCR5, se desprendieron con ácido
etilendiaminotetraacético (EDTA) 2 mM en PBS y se lavaron una vez
con el tampón de unión (BSA al 1%, NaN_{3} al 0,05% en DPBS). Las
células (l x 10^{6}) se marcaron en su superficie con los mAb
según se describe en los párrafos anteriores, se lavaron una vez
con el tampón de incubación y se resuspendieron en 1 ml de
FACSlyse 1X en agua (Becton Dickinson) durante 30 min
a temperatura ambiente, para permeabilizar las membranas celulares.
Las células a continuación se sedimentaron mediante centrifugación,
se lavaron con el tampón de incubación y se incubaron durante 1 h a
37ºC con una concentración de 4 \mug/ml de un mAb
anti-HA de ratón, marcado con isotiocianato de
fluoresceína (FITC) (BabCo, Richmond, CA) para marcaje
intracelular. Finalmente, las células se lavaron una vez con el
tampón de unión y una vez con PBS, se resuspendieron en formaldehído
al 1% en PBS y se analizaron mediante citometría de flujo. El grado
de la unión de un mAb a una CCR5 mutante se determinó mediante la
ecuación: (m.f.i. de PE de CCR5 mutante / m.f.i. de PE de CCR5 de
tipo salvaje) / (m.f.i. de FITC de CCR5 mutante / m.f.i. de FITC de
CCR5 de tipo salvaje) x 100%. Esta ecuación normaliza la unión de
los mAb para los niveles de expresión de los correceptores
mutantes.
La gpl20 se biotiniló usando
NHS-biotina (Pierce, Rockford, IL) conforme a las
instrucciones del fabricante, y la biotina no unida se retiró
mediante diafiltración. Células L1.2-CCR5^{+}
tratadas con butirato de sodio se incubaron con diferentes
diluciones de una mezcla equimolar de sCD4 y gpl20 biotinilada, o de
una concentración de 1,25 \mug/ml de sCD4 y una concentración de
2,5 \mug/ml de gpl20 biotinilada, en presencia de diferentes
concentraciones de los mAb anti-CCR5
PA8-PA12, PA14, 2D7 o de una IgG1 murina
inespecífica, durante 1 h a temperatura ambiente, en NaN_{3} al
0,1% en DPBS. Las células se lavaron con el tampón de incubación y
se incubaron con estreptavidina-PE (Becton
Dickinson) diluida en proporción 1:50, durante 1 h a temperatura
ambiente. Finalmente, las células se lavaron con el tampón de unión
y se analizaron usando un lector de fluorescencia para placas
(Perspective Biosystems, Framingham, MA).
La fusión mediada por la envoltura de
HIV-1 entre células
HeLa-Env_{JRFL}^{+} y células PM1 se detectó
usando un ensayo de RET. Cantidades iguales (2 x 10^{4}) de
células que expresan la envoltura, marcadas con el octadeciléster
de fluoresceína (F18) y de células PM1 marcadas con
octadecil-rodamina (R18) se sembraron en placas de
96 pocillos, en suero de ternera fetal al 15% en DPBS y se incubaron
durante 4 h a 37ºC, en presencia de diferentes concentraciones de
los mAb anti-CCR5 PA8-PA12, PA14,
2D7 o de una IgG1 murina inespecífica. La RET por fluorescencia se
midió con un lector de placas Cytofluor (PerSeptive
Biosystems) y el % de RET se determinó según se ha descrito
anteriormente (38). Virus NLluc^{+}env^{-} complementados en
trans por glicoproteínas de la envoltura procedentes de
JR-FL o Gun-1, se produjeron según
se ha descrito previamente (20). Células
U87MG-CD4^{+}CCR5^{+} (14) se infectaron con
virus de reporte quiméricos que contenían una concentración de 50
ng/ml - 100 ng/ml de p24 en presencia de diferentes concentraciones
de los mAb individuales. Después de 2 h a 37ºC, los medios que
contenían los virus se reemplazaron por medios recién preparados
que contenían mAb. Medios recién preparados que no contenían
anticuerpos, se añadieron de nuevo después de 12 h. Después de un
total de 72 h, a las células se añadieron 100 \mul de tampón de
lisis (Promega) y se midió la actividad de luciferasa (r.l.u.) de
la manera que se encuentra descrita (20). El % de inhibición de la
infección por HIV-1 se define como [1 - (r.l.u. en
presencia de anticuerpo / r.l.u. en ausencia de anticuerpo)] x
100%.
El fluorocromo Indo-lAM
(Molecular Probes, Eugene, OR) se añadió a células
L1.2-CCR5^{+} tratadas con butirato de sodio,
hasta una concentración final 5 \muM. Después de una incubación a
37ºC durante 30 min, las células se lavaron una vez y se
resuspendieron en disolución salina tamponada de Hank. Las células
(10^{6}) se estimularon de manera secuencial con un mAb
anti-CCR5 o con PBS, y 60 s después con RANTES. Los
mAb PA8-PA12 y PA14 se usaron a una concentración
de 100 \mug/ml, 2D7 se usó a 20 \mug/ml y RANTES se usó a 250
ng/ml. La inhibición del flujo de calcio por acción de PA14 y 2D7
se ensayó también para un intervalo amplio de concentraciones de
los mAb, que variaban de 0 \mug/ml - 100 \mug/ml. Los niveles
intracelulares de calcio se detectaron usando un espectrofotómetro
de fluorescencia Perkin-Elmer LS-50S
y midiendo la relación de las emisiones de fluorescencia a 402 nm
(colorante unido) y a 486 nm (colorante libre) después de una
excitación a 358 nm.
Se encontró que los péptidos que correspondían a
los dominios extracelulares de CCR5 eran ineficaces en inducir la
aparición de respuestas de anticuerpos específicas y con título alto
frente al receptor de superficie celular natural (50). Por
consiguiente, ratones Balb/c se inmunizaron con células
L1.2-CCR5^{+} y los sobrenadantes de los cultivos
de los hibridomas se ensayaron con respecto a su capacidad para
inhibir la fusión de membranas, mediada por la envoltura de
JR-FL, con células PM1 CD4^{+}CCR5^{+} mediante
el ensayo de RET (19, 38). Aún cuando muchos más de cien
sobrenadantes inhibieron la fusión célula-célula en
>50%, sólo seis sobrenadantes, los denominados PA8, PA9, PA10,
PA11, PA12 y PA14, tiñeron específicamente y con intensidad las
células L1.2-CCR5^{+} pero no las células L1.2
parentales, como se demuestra mediante citometría de flujo (datos no
mostrados). Sobre la base de la experiencia previa, se dio por
supuesto que los demás mAb capaces de inhibir la fusión
célula-célula probablemente se dirigían contra
moléculas de adhesión de la superficie celular tales como
LFA-1 (37). Mediante un ensayo ELISA de
determinación de isotipos (Cappell, Durham, NC) se determinó que los
hibridomas PA8-PA12 y PA14 secretaban mAb de tipo
IgG1. Se prepararon fluidos ascíticos procedentes de ratones Balb/C
a los que se habían inyectado los seis hibridomas, y se purificaron
las fracciones correspondientes a IgG1. PA8, PA9, PA11, PA12 y PA14
exhibieron diferentes perfiles de isoelectroenfoque, mientras que
PA10 presentó un perfil muy similar al de PA9 y por lo tanto puede
corresponder a un segundo material aislado del mismo mAb (datos no
mostrados).
Ninguno de los mAb anti-CCR5
purificados tiñeron la línea celular L1.2 parental (datos no
mostrados). Sin embargo, los mAb PA9-PA12 y PA14
tiñeron >90%, y PA8 tiñó \sim70%, de las células
L1.2-CCR5^{+}, según se determinó mediante
citometría de flujo, demostrando que reconocían a CCR5 (Fig. 1). El
mAb 2D7 anti-CCR5, que fue un control positivo en
estos experimentos, también tiñó >90% de las células
L1.2-CCR5^{+}. Los PA8-PA12 y
PA14 son todos ellos una IgG1, y reaccionan igual de bien con una
IgG anti-ratón procedente de cabra, mientras que
2D7 es una IgG2a y puede reaccionar de manera diferente con el
anticuerpo de reporte. Sólo las intensidades de fluorescencia
medias (m.f.i.) medidas con los mAb PA8-PA12 y PA14
son por lo tanto directamente comparables. El orden de importancia
de las intensidades de fluorescencia medias (m.f.i.) fue PA12 -
PA11 > (2D7 =) PA14 \sim PA10 - PA9 > PA8. La diferencia
entre la m.f.i. de PA12 y la m.f.i. de PA8 fue de tres veces. Las
diferencias en la intensidad de tinción entre PA8 y los demás mAb
permaneció constante a lo largo de un amplio intervalo de
concentraciones (datos no mostrados) y probablemente no correspondan
a diferencias en las afinidades de los mAb por CCR5. Esto implica
que PA8 interacciona solamente con un subgrupo de moléculas de CCR5
presentes sobre la superficie de las células
L1.2-CCR5^{+}.
Comparados con las células
L1.2-CCR5^{+}, las PBMC estimuladas por mitógeno
exhibieron diferentes patrones de tinción con los mAb
anti-CCR5. 2D7 y PA14 tiñeron >20%, PA11 y PA12
tiñeron \sim10%, y PA8, PA9 y PA10 tiñeron <5% de las PBMC
(Fig. 1). Las intensidades de fluorescencia medias de las PBMC
teñidas fueron aproximadamente diez veces más bajas que las
obtenidas con las células L1.2-CCR5^{+} para cada
uno de los mAb; Su orden de importancia fue (2D7 >) PA14 >
PA12 - PA11 \sim PA10 \sim PA9 - PA8. También esta vez, este
orden difiere algo del orden de las reactividades observadas en los
transfectantes de CCR5. La diferencia entre la m.f.i. de PA9 y la
m.f.i. de PA14 fue de siete veces. Otros grupos han observado
diferencias similares en la capacidad de los mAb
anti-CCR5 para teñir líneas celulares CCR5^{+}
estables frente a PBMC (28). Esto puede ser debido a diferencias
específicas de las células en la conformación del CCR5, en la
modificación post-traduccional o en la
oligomerización. Como alternativa, la asociación con otras moléculas
de superficie celular puede diferir entre las células. Dado que una
elección obvia de este tipo de molécula sería el antígeno CD4 de
superficie celular, que está ausente en las células
L1.2-CCR5^{+} y presente en las PBMC, se ensayó
también la capacidad de PA8-PA12, PA14 y 2D7 para
teñir células HeLa que expresan de manera transitoria CCR5 solo o
con CD4. No se observaron diferencias en la capacidad de ninguno de
los mAb para teñir el CCR5 de superficie celular en presencia de
CD4 (datos no mostrados). Si existe una asociación entre estas dos
proteínas, ésta no implica epítopos reconocidos por los mAb
anti-CCR5 de los que disponen los autores de la
invención. Como alternativa, una asociación entre CCR5 y CD4
pudiera solamente tener lugar en linfocitos primarios.
Ninguno de los anticuerpos fue capaz de detectar
la proteína CCR5 reducida o desnaturalizada mediante transferencia
Western lo que indica que reconocen epítopos conformacionalmente
sensibles (datos no mostrados). Se realizaron estudios sobre el
mapeo de epítopos de mAb usando un panel de setenta mutantes
puntuales que portan alanina, de residuos situados en el Nt y en
los ECL de CCR5. Células HeLa se sometieron a lipofección con
secuencias codificadoras de CCR5 mutante o de CCR5 de tipo salvaje
anexionadas a secuencias identificadoras HA
C-terminales, y se infectaron con vTF7 (23) para
estimular la expresión del correceptor. Las células se incubaron
luego con los mAb anti-CCR5 y su unión se puso de
manifiesto por medio de una IgG anti-ratón,
procedente de cabra, marcada con PE. Se llevó a cabo una segunda
tinción intracelular con un mAb anti-HA, marcado con
FITC (BabCo). Este control interno permitió normalizar directamente
la tinción por los mAb anti-CCR5 con respecto a los
niveles de expresión del correceptor mutante sobre la superficie de
la célula. Por ello, la unión de los mAb a cada mutante se expresa
en forma de porcentaje de la unión al CCR5 de tipo salvaje (Figura
4).
Determinadas mutaciones puntuales disminuyeron
la unión de todos los anticuerpos a CCR5 en >50%. En general,
PA8-PA12 fueron los más afectados, PA14 y 2D7 fueron
los menos afectados por esta clase de mutantes, que incluían el par
de cisteínas C101A y C178A, los mutantes en el Nt Y10A, D11A, K25A,
el mutante en el ECL1 D95A, los mutantes en el ECL2 K171A/E172A,
Q188A, K191A/N192A, y los mutantes en el ECL3 F263A y F264A (Fig.
4). Una de las interpretaciones es que estos residuos no son parte
per se de los residuos de los epítopos de los mAb, pero que
cambiándolos a alaninas se producen perturbaciones conformacionales
que tienen un efecto común sobre la unión de todos los mAb. Los
autores de la invención dieron por supuesto que si una mutación
disminuía la unión de un mAb individual en >75%, y además no
disminuía la unión de la mayoría de los otros anticuerpos,
probablemente ese residuo contribuía directamente al epítopo
reconocido por el mAb. Usando estas directrices restrictivas, se
llegó a la conclusión de que los siete mAb anti-CCR5
reconocen epítopos solapantes aunque distintos (Fig. 4). La unión
del mAb PA8 a CCR5 dependió de N13 e Y15 en el Nt. Los mAb PA9 y
PA10 requirieron D2, Y3, Q4, P8 y N13 en el Nt, e Y176 y T177 en el
ECL2. El mAb PA9 también requirió S7 en el Nt. La unión de los mAb
PA11 y PA12 dependió de Q4 en el Nt. PA14 requirió D2 en el Nt, y
R168 e Y176 en el ECL2. Por último, el mAb 2D7 requirió Q170 y
K171/E172 en el ECL2 para unirse a CCR5.
Los agentes que se unen a receptores para
quimioquinas pueden ser antagonistas o, más raramente agonistas, de
la señalización intracelular mediada por receptores. Como
alternativa, estos agentes pudieran no tener ningún efecto sobre la
señalización. CCR5 es capaz de unir a tres quimioquinas CC: RANTES,
MIP-l\alpha y MIP-l\beta, y de
transducir una señal que modula los niveles del calcio citosólico.
Por lo tanto, se han realizado ensayos de la actividad de
agonista/antagonista de diferentes concentraciones de los mAb
PA8-PA12, PA14 y 2D7. Los cambios en las
concentraciones del calcio intracelular, (Ca^{2+})i, se
midieron en células L1.2-CCR5^{+} cargadas con
Indo-1. Ninguno de los mAb estimuló un cambio en el
(Ca^{2+})i, lo que indica que no son agonistas de CCR5.
PA8-PA12 tampoco fueron capaces de inhibir los
flujos de Ca^{2+} inducidos por RANTES (Fig. 5A y datos no
mostrados), incluso a concentraciones altas como de 100 \mug/ml,
lo que demuestra que tampoco son antagonistas. Estas
concentraciones proporcionan una unión saturante de los mAb a las
células L1.2-CCR5^{+}, como se demuestra mediante
citometría de flujo y el ensayo de unión de gpl20/CCR5 (Fig. 6D y
datos no mostrados). Los mAb PA14 y 2D7, sin embargo, bloquearon la
movilización de calcio inducida por RANTES, aunque con diferentes
potencias (Fig. 5A, B). La IC_{50} en el caso de la inhibición del
flujo de entrada de calcio por acción de PA14 fue de 50 \mug/ml,
que era aproximadamente 8 veces más alta que la IC_{50} de 2D7
(Fig. 5B). Los flujos de calcio inducidos por RANTES,
MIP-1\alpha y MIP-1\beta, fueron
inhibidos cada uno de ellos por concentraciones similares de PA14
(datos no mostrados). Ninguno de los mAb tuvo efecto sobre la
movilización de calcio inducida por SDF-1 en células
L1.2-CCR5^{+}, que expresan CXCR4 de manera
endógena (datos no mostrados). Por último, ni los mAb ni las
quimioquinas CC tuvieron efecto sobre los niveles del calcio
citosólico en las células L1.2 parentales (datos no mostrados).
Los mAbs PA8-PA12 y PA14 se
seleccionaron inicialmente por su capacidad para inhibir la fusión
célula-célula mediada por la envoltura de
HIV-1. Esta actividad se confirmó y se cuantificó
para los mAb purificados. Como era de esperar, los seis mAb, así
como el mAb 2D7, bloquearon la fusión entre las células PM1
CD4^{+}CCR5^{+} y las células
HeLa-Env_{JR-FL}^{+} en el
ensayo de RET. El orden de importancia de la potencia fue
2D7-PA14 > PA12 > PA11 > PA10 \sim PA9 -
PA8 (Fig. 6A). Los valores de IC_{50} de PA14 y 2D7 fueron 1,7
\mug/ml y 1,6 \mug/ml respectivamente, para PA11 y PA12 estos
valores fueron 25,5 \mug/ml y 10,0 \mug/ml respectivamente
(Fig. 3). PA8, PA9 y PA10 inhibieron la fusión en solamente el 10% -
15% a 300 \mug/ml. Ninguno de los mAb tuvo efecto sobre la fusión
entre células PM1 y células HeLa-Env_{LAI}^{+},
que expresan la proteína de la envoltura de longitud completa de un
virus X4 (datos no mostrados).
También se ensayó la capacidad de los diferentes
mAb anti-CCR5 para inhibir la entrada de un virus R5
prototípico, el JR-FL, y de un virus R5X4, el
Gun-1, en un ensayo de entrada basado en la
actividad de luciferasa y en una única ronda de replicación. El
orden de importancia de la potencia en el ensayo de entrada fue
similar al determinado en el ensayo de fusión
célula-célula (Fig. 6B). No pudo obtenerse una
inhibición >50% de la entrada de JR-FL o de
Gun-1 con PA8-PA11. El valor de
IC_{50} de PA12 fue 2,5 \mug/ml. Sin embargo, no se pudo
obtener una inhibición de la entrada de >60% con este mAb. Los
valores de IC_{50} para la inhibición de la entrada de
JR-FL por acción de PA14 y 2D7 se determinó que eran
0,024 \mug/ml y 0,026 \mug/ml respectivamente (Fig. 3), y
fueron 60 veces inferiores a los obtenidos en el ensayo de fusión.
La entrada del virus dual-trópico
Gun-1 fue 2-3 veces más sensible a
la inhibición por acción de los mAb anti-CCR5 que
la entrada de JR-FL (datos no mostrados).
Los mAb anti-correceptor
pudieran inhibir la fusión mediada por la envoltura ya sea afectando
directamente a la interacción de gpl20/CCR5 o impidiendo las etapas
posteriores a la unión, implicadas en la formación de un complejo
de fusión activo. Para determinar el mecanismo de inhibición de la
fusión y entrada virales por acción de PA8 - PA12 y PA14, se ensayó
la capacidad de los diferentes mAb para bloquear la interacción de
gpl20/CCR5. Para ello se usó un ensayo que detecta la unión de la
gp120 biotinilada de HIV-1_{JR-FL}
en forma de complejo con sCD4, a células
L1.2-CCR5^{+}. No se observó unión de la gpl20
biotinilada en ausencia de sCD4 o de CCR5, o cuando se usó la gp120
de HIV-1_{LAI} (Fig. 6C).
Con la excepción del PA8, todos los mAbs
abolieron la unión de gpl20/sCD4 a las células
L1.2-CCR5^{+} (Fig. 6D). La inhibición producida
por PA8 se saturó a -40%, que coincide con los datos de la
citometría de flujo (Fig. 1) en sugerir que este mAb se une
solamente a un subgrupo de las moléculas CCR5 dispuestas sobre las
células L1.2-CCR5^{+}. Los mAb PA9, PA10, PA11 y
PA12 inhibieron la unión con valores de IC_{50} 0,24, 0,13, 0,33,
0,24 \mug/ml respectivamente (Fig. 3). Sorprendentemente, los mAb
PA14 y 2D7 fueron los dos inhibidores menos eficientes de la unión
de gpl20/sCD4, con valores de IC_{50} de 1,58 \mug/ml y 1,38
\mug/ml respectivamente (Fig. 3). Por lo tanto, no existía ninguna
correlación entre la capacidad de un mAb para inhibir la fusión de
membranas y la entrada, mediadas por gpl20/CD4/CCR5, y su capacidad
para bloquear la unión de gpl20/sCD4 al correceptor.
Agentes específicos para correceptores pueden
actuar en múltiples etapas del proceso de entrada y exhiben efectos
no aditivos cuando se usan en combinación. Desde una perspectiva
clínica, es importante determinar las interacciones de fármacos
candidatos, específicos para correceptores, con las quimioquinas
endógenas, que pueden proporcionar cierto nivel de protección
frente a la progresión de la enfermedad. Los mAb
anti-CCR5 se ensayaron por lo tanto combinados unos
con otros, o con RANTES, o con CD4-IgG2, que se une
a la gpl20 de HIV-1 para inhibir su anexión a las
células diana. Se obtuvieron curvas de
dosis-respuesta correspondientes a los agentes
usados de manera individual o usados en combinación, en ensayos de
determinación de la fusión y entrada viral. Los datos se analizaron
usando el principio del efecto intermedio (9). Las concentraciones
de los agentes individuales o de sus mezclas, requeridas para
producir un efecto determinado, se compararon cuantitativamente con
una expresión conocida como Índice de Combinación (CI). Un valor de
CI mayor que 1 indica antagonismo, CI - 1 indica un efecto aditivo
y CI < 1 indica un efecto sinérgico en el que la presencia de
uno de los agentes potencia el efecto de otro.
Las combinaciones de PA12 y 2D7 fueron las de
mayor poder sinérgico, con valores de CI que variaron entre 0,02 y
0,29, dependiendo de la proporción de los anticuerpos (Fig. 7 y Fig.
2). Se sabe que el grado de sinergia varía con la estequiometría de
los agentes. Los ensayos de entrada y fusión virales coincidieron de
modo general en identificar las combinaciones de los mAb que eran
altamente sinérgicas: PA12 y 2D7; moderadamente sinérgicas: PA12 y
PA14; aditivas: PA11 y PA12; y débilmente antagónicas: PA14 y 2D7.
La falta de sinergia entre PA14 y 2D7 no es sorprendente dado que
estos mAb compiten de manera cruzada en su unión a células
CCR5^{+} según se determina mediante citometría de flujo (datos
no mostrados). La observación de un efecto aditivo de PA11 y PA12
puede ser una indicación de que estos mAb se unen a epítopos
ligeramente diferentes del CCR5, mientras que comparten su
dependencia del residuo Q4 del Nt.
También se ensayó la capacidad de los mAb PA12,
PA14 y 2D7 para presentar un efecto sinérgico con RANTES en cuanto
a bloquear la fusión célula-célula. Las
combinaciones de PA12 y RANTES exhibieron una sinergia moderada
(Fig. 2). PA14 y 2D7 no exhibieron sinergia con RANTES, lo cual está
de acuerdo con que estos mAbs son inhibidores de la unión y
señalización por RANTES (Fig. 5A, B). Por último, se ensayó la
sinergia entre los mAb PA12, PA14, 2D7 y CD4-IgG2,
que interacciona con gpl20. Se observó una sinergia moderada entre
PA12 y CD4-IgG2 pero no se observó sinergia entre
PA14 ó 2D7 y CD4-IgG2 (Fig. 2).
Se aislaron y caracterizaron seis mAb IgG1
murinos anti-CCR5. Mientras que PA8, PA9, PA11, PA12
y PA14 son especies moleculares diferentes, PA9 y PA10 son
indistinguibles en los análisis y por lo tanto probablemente son el
mismo mAb. La totalidad de los mAbs que se aislaron reconocen
epítopos conformacionales complejos, como suele ser lo que sucede
con los mAb inducidos frente a proteínas naturales de superficie
celular. Se realizó el mapeo de epítopos de todos los mAb usando un
panel de mutantes puntuales de CCR5 que portan alanina. Los
residuos que afectaron a la unión de todos los mAbs de manera
similar, se supuso que producían perturbaciones conformacionales en
el correceptor y que no constituían parte de los epítopos de los
mAb. Sólo dos de estos residuos, Y10 y D11, se ha demostrado que
afectan a la entrada de HIV-1 (20, 52). Los epítopos
de PA8, PA11 y PA12 se localizan exclusivamente en el dominio Nt.
En acuerdo con estos resultados, PA8 fue capaz de unirse a un
péptido Nt biotinilado, que contenía los residuos desde D2 hasta
R31, en un ensayo ELISA (datos no mostrados). Sin embargo, PA11 y
PA12, cuya unión depende fuertemente sólo de Q4, no se unieron al
péptido Nt en disolución (datos no mostrados). Una de las
posibilidades es que es que el péptido Nt no adopte la conformación
correcta para su reconocimiento por PA11 y PA12, mientras que la
unión de PA8 quizá sea menos dependiente de la conformación. Como
alternativa, PA11 y PA12 pudieran interaccionar con residuos que no
se han mutado, o formar uniones débiles con aminoácidos situados en
otros dominios de CCR5, o unirse a átomos de la cadena principal del
péptido cuya presentación no se puede cambiar mediante mutagénesis.
Los anticuerpos PA9, PA10 y PA14 reconocieron epítopos que incluían
residuos tanto en el
dominio Nt como en el dominio ECL2 de CCR5, mientras que el epítopo de 2D7 se localizó exclusivamente en ECL2.
dominio Nt como en el dominio ECL2 de CCR5, mientras que el epítopo de 2D7 se localizó exclusivamente en ECL2.
El epítopo de PA14 comprende tanto el residuo D2
de Nt como el residuo R168 de ECL2, lo que indica que estos dos
residuos se encuentran próximos el uno del otro dentro del contexto
de una marca característica del mAb. Pueden incluso interaccionar
directamente entre sí a través de sus cargas opuestas.
Los mAb PA8-PA12 y PA14 tiñeron
las células CCR5^{+} con intensidades diferentes y de una manera
dependiente del tipo de células. Todos los mAb excepto PA8 tiñeron
las células L1.2-CCR5^{+} en >90%, observándose
la intensidad de fluorescencia media más alta con PA11 y PA12. Sin
embargo, PA14 y 2D7 tiñeron el porcentaje más alto de PBMC y
también produjeron las intensidades de fluorescencia medias más
altas en estas células. Hill y col. (28) recientemente han
caracterizado un panel de mAb anti-CCR5 que teñían
de manera similar células transfectadas, pero solamente dos de ocho
mAb tiñeron PBMC, y ninguno de ellos tiñó monocitos primarios. Una
baja afinidad por CCR5 explicaba probablemente la ausencia de
reactividad de dos de los mAb con las células primarias, pero ésta
no es probable que sea la explicación de la ineficacia de los otros
cuatro mAb para reaccionar. En el panel de mAb de los autores de la
invención, se observa que la tinción más intensa de las PBMC la
producen los mAbs 2D7 y PA14 que tienen epítopos localizados de
manera parcial o completa en los primeros diez residuos de ECL2.
Hill y col. informan sin embargo que los mAb específicos para Nt y
ECL1 tiñen las PBMC, mientras que los mAb específicos para ECL2 y
ECL3 no tiñen las PBMC, de manera que no se ha identificado un
patrón de reactividad consistente. Una de las explicaciones para la
tinción específica de célula que producen los mAb sería que las
PBMC (y los monocitos) activados secretan quimioquinas CC que se
unen al CCR5 de la superficie celular, ocultando algunos epítopos
para los mAb. Sin embargo, sería de esperar que esto fuera
especialmente cierto en los casos de PA14 y 2D7, que son
antagonistas de la movilización de calcio inducida por quimioquinas
y que presumiblemente compiten con las quimioquinas CC en su unión a
CCR5. Aún así estos mAb son los que tiñen las PBMC más
intensamente. Como alternativa, una exposición diferencial de
epítopos de CCR5 puede reflejar una oligomerización del receptor
específica del tipo de célula, una asociación con otras moléculas de
superficie celular, o diferentes modificaciones
post-traduccionales tales como glicosilación. Los
autores de la invención han demostrado que las diferencias
encontradas en la unión de los mAb es probable que no reflejen
diferencias específicas del tipo de célula en las interacciones
CD4/CCR5.
Los mAb PA8-PA12 no inhibieron
la movilización de calcio inducida por quimioquinas CC en células
CCR5^{+}, ni mediaron en la señalización a través de CCR5. Los
mAb 2D7 y PA14 fueron inhibidores de la movilización de calcio
inducida por quimioquinas CC, pero 2D7 fue casi un orden de magnitud
más potente que PA14. Esto puede ser debido a que el epítopo para
PA14 solapa menos con el dominio de unión a quimioquinas CC sobre
CCR5 que el epítopo para 2D7. Todos los mAb bloquearon también la
entrada de HIV-1 y la fusión de membranas mediada
por la envoltura, pero la inhibición de la fusión
célula-célula requirió en algunos casos una cantidad
de anticuerpo de casi dos órdenes de magnitud más que la que fue
necesaria para bloquear la entrada viral. Presumiblemente, se
establecen más interacciones gpl20/CD4/CCR5 así como interacciones
entre moléculas de adhesión, y actúan de manera cooperativa durante
la fusión célula-célula en comparación con la fusión
célula-virus, haciéndola más difícil de inhibir.
Esto se observa normalmente con anticuerpos dirigidos contra
LFA-1 o contra la glicoproteína de la envoltura de
HIV-1 (45, 51). PA8, PA9 y PA10 fueron incapaces de
bloquear la fusión célula-célula en >15% y la
entrada viral en >40%, incluso a las concentraciones más altas de
los anticuerpos. Sin embargo, una inhibición de la fusión >90%
se pudo alcanzar con PA11, PA12 y PA14, y una inhibición de la
entrada >90% se pudo alcanzar con PA14. El más potente de los
seis mAb en bloquear la fusión y la entrada fue PA14, que fue igual
de efectivo que 2D7. Sorprendentemente, PA14 y 2D7 estuvieron entre
los inhibidores menos potentes de la unión de gpl20/sCD4 a las
células L1.2-CCR5^{+}, mientras que
PA9-PA12 bloquearon con potencias similares, y PA8
fue incapaz de bloquear >40% la unión de gpl20/sCD4. Estas
observaciones suscitan preguntas sobre la naturaleza de las
moléculas CCR5 presentadas sobre diferentes células y sobre los
mecanismos de inhibición de la fusión y entrada virales. Puede ser
que el CCR5 que se encuentra sobre células L1.2, usadas en los
ensayos de unión de los mAb y de gpl20, no esté en una conformación
idéntica a la del CCR5 que se encuentra sobre las PBMC, usadas en
el ensayo de unión de los mAb, ni a la del CCR5 que se encuentra
sobre las células PM1 y U87MG usadas en los ensayos de fusión y
entrada.
La baja tinción de las PBMC y la inhibición
parcial de la fusión y entrada por parte de algunos de los mAb
utilizados por los autores de la invención indican que estos mAb son
solamente capaces de unirse a un subgrupo de las moléculas CCR5
expresadas sobre linfocitos primarios y sobre las líneas celulares
PM1 y U87MG-CD4^{+}CCR5^{+}. Sin embargo,
excepto PA8, todos los mAb son capaces de teñir las células
L1.2-CCR5^{+} en >90% y de bloquear por
completo la unión del complejo gpl20/sCD4 a estas células. Al menos
una de las diferencias entre las células
L1.2-CCR5^{+} y las demás células utilizadas es la
densidad de la proteína correceptora presente sobre la superficie
celular. De hecho, se estima que las células
L1.2-CCR5^{+} expresan de 10 a 100 veces más
correceptor en la superficie celular que las células PM1 y
U87MG-CD4^{+}CCR5^{+}. Pero cuando las células
HeLa se manipulan mediante ingeniería genética para que expresen de
manera transitoria la misma cantidad de correceptor que la línea
celular L1.2-CCR5^{+}, tampoco se pudo detectar la
unión de gpl20/sCD4 a ellas (datos no mostrados). La
sobre-expresión de CCR5 sobre L1.2, junto con otros
factores específicos, podría sin embargo favorecer una conformación
del correceptor que expusiera de manera destacada el Nt, haciéndolo
más accesible tanto a los mAb como a gpl20. Esa conformación
pudiera ser inducida por una oligomerización del receptor, por
asociaciones disminuidas o alteradas con proteínas de superficie
celular o por interacciones del receptor con proteínas G (25, 62).
¿Coexisten múltiples conformaciones de CCR5 sobre la superficie
celular y permiten todas ellas la entrada viral? Los patrones de
reactividad de los mAb así lo sugerirían, ya que la fusión y la
entrada de HIV-1 pueden tener lugar, aunque a
niveles reducidos, en presencia de concentraciones de mAb que
saturan los epítopos requeridos para la unión de gpl20 a las
células L1.2-CCR5^{+}. Los autores de la invención
están a favor de la hipótesis de que las moléculas del correceptor
presentes sobre las células L1.2-CCR5^{+} poseen
una conformación apta para la entrada de HIV-1,
mientras que las moléculas de CCR5 presentes sobre las PBMC, PM1 y
U87MG-CCR5^{+} existen en múltiples estados aptos
para la entrada, que presentan diferentes reactividades frente a
los mAb. Mientras que PA14 y 2D7 pueden reconocer todas las
conformaciones, otros mAb no pueden. Queda por determinar porqué
las células L1.2 son conducentes a una conformación particular apta
para la fusión.
Recientemente se ha demostrado que el dominio de
unión a gp120 se encuentra en los primeros veinte residuos de
aminoácidos del dominio Nt de CCR5. Los mAb dirigidos contra el
dominio de unión a gpl20 en CCR5 bloquean potentemente esta
interacción pero no son ni de cerca tan eficientes en cuanto a
inhibir la fusión y entrada de HIV-1 en las células
diana como PA14 y 2D7, cuyos epítopos se encuentran fuera de esta
región. PA14 reconoce la punta del Nt y los residuos de ECL2,
mientras que el epítopo para 2D7 se localiza exclusivamente en ECL2.
Solamente se pueden hacer especulaciones sobre el mecanismo de
acción de estos mAb. Puede ser que su unión a los primeros residuos
de ECL2 induzca cambios conformacionales en el correceptor que
impiden la fusión de las membranas. Como alternativa, la
obstrucción de los epítopos de ECL2 pudiera impedir la
oligomerización del correceptor y la formación de un complejo de
proteínas apto para la fusión. Otra posibilidad más es que los
residuos de ECL2 estén orientados hacia el interior del poro de
fusión y que la unión de los mAb impida que gp41 introduzca el
péptido de fusión en la membrana plasmática. En cambio, los mAb
PA8-PA12 probablemente inhiben la fusión y la
entrada nada más que compitiendo directamente por unirse con los
complejos gpl20/CD4. No se sabe si otros parámetros además de la
exposición de los epítopos y la afinidad por CCR5 determinan la
eficacia de la inhibición de la entrada viral por parte de estos
mAb. No está claro porqué la inhibición de las etapas posteriores a
la interacción gpl20/correceptor sería más eficiente que bloquear
directamente esa interacción. Una de las maneras de explicar esto
sería suponer que la velocidad de disociación de la unión de gpl20
a CCR5 es mucho menor que la velocidad de asociación de la unión de
los mAb a CCR5. Por lo tanto, cada vez que un mAb se desprende de
una molécula de correceptor, una molécula gpl20 asociada a un virión
lo sustituye de una manera casi irreversible debido a que esta
interacción conduce a la fusión de las membranas.
La sinergia entre las combinaciones de los mAb
anti-CCR5 probablemente es el resultado de sus
interacciones con distintos epítopos que están implicados en etapas
consecutivas e interdependientes de la entrada de
HIV-1. El grado de sinergia observado entre PA12 y
2D7 (CI < 0,1 en muchas circunstancias) es extraordinario ya que
valores de CI < 0,2 son raras veces observados en el caso de las
combinaciones de anticuerpos
anti-HIV-1 (33, 35, 61), de
inhibidores de la transcriptasa inversa (29), o de inhibidores de
proteasas (44). Debido a su potencia, la combinación de PA12:2D7 se
estudió con múltiples formatos de ensayos y proporciones de las
concentraciones, para los que se observaron niveles de sinergia
sistemáticamente muy altos. Se observó una sinergia moderada en el
caso de PA12 combinado con PA14. También se observó una sinergia
moderada entre PA12 y CD4-IgG2. El complejo
CD4/gpl20 es metastable y si no es capaz de interaccionar con un
correceptor, decae hacia un estado no fusogénico
(45-48). Debido a que PA12 bloquea directamente el
sitio de unión a gpl20 sobre CCR5, su presencia puede desplazar el
equilibrio hacia la inactivación del complejo gpl20/CD4. Esto
explicaría porqué se observa sinergia entre
CD4-IgG2 y el mAb PA12 con respecto a la inhibición
de la fusión y entrada. La falta de sinergia entre el mAb PA14 y
CD4-IgG2 sugiere que ambos actúan sobre dos etapas
independientes y no consecutivas de la entrada viral. Se necesitará
una combinación de estudios adicionales para determinar los
mecanismos precisos de la sinergia de los diferentes compuestos con
respecto a la inhibición de la entrada y fusión virales.
Los anteriores resultados están de acuerdo con
un modelo en el que la entrada de HIV-1 tiene lugar
en tres etapas distintas que implican la unión al receptor, la
unión al correceptor y la fusión de membranas mediada por el
correceptor. Se sugiere la existencia de eventos independientes de
unión al correceptor y de fusión, por la falta de correlación entre
las capacidades de los anticuerpos monoclonales para bloquear la
unión de gpl20 y la fusión/entrada de HIV-1. La
cronología de eventos durante la fusión es además sugerida por los
patrones de sinergias observados. Agentes, tales como PA12, que
inhiben potentemente la etapa media del procedimiento,
concretamente la unión de gp120, actúan sinérgicamente con
inhibidores de etapas anteriores y posteriores.
\vskip1.000000\baselineskip
1. Allaway, G.P., K.L.
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<212> PRT
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<400> 4
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\sa{Gln Glu Phe Phe Gly Leu Asn Asn Cys Ser Ser
Ser Asn Arg Leu Asp}
\sac{Gln}
Claims (15)
1. Un anticuerpo monoclonal
anti-receptor CCR5 para quimioquinas o uno de sus
fragmentos, en el que el anticuerpo o su fragmento se une al mismo
epítopo al que se une el anticuerpo monoclonal PA14, siendo PA14 el
anticuerpo monoclonal producido por una línea de células de
hibridoma depositada en la ATCC, Núm. de Registro
HB-12610 y denominada PA14.
2. El anticuerpo monoclonal
anti-receptor CCR5 para quimioquinas de la
reivindicación 1.
3. El fragmento del anticuerpo monoclonal
anti-receptor CCR5 para quimioquinas de la
reivindicación 1.
4. El anticuerpo o fragmento de cualquiera de
las reivindicaciones 1 - 3, en el que el anticuerpo es un anticuerpo
humanizado.
5. El anticuerpo o fragmento de cualquiera de
las reivindicaciones 1 - 4, que comprende regiones determinantes de
la complementariedad (CDR) derivadas del anticuerpo monoclonal o
hibridoma PA14.
6. El anticuerpo de la reivindicación 4, en el
que el anticuerpo comprende una región estructural derivada de una
molécula de inmunoglobulina humana.
7. El anticuerpo de la reivindicación 6, en el
que la molécula de inmunoglobulina humana se selecciona entre el
grupo que consiste en IgG1, IgG2, IgG3, IgG4, IgA e IgM.
8. El anticuerpo de la reivindicación 7, en el
que la molécula de inmunoglobulina humana es IgG4.
9. El anticuerpo de la reivindicación 7, en el
que la molécula de inmunoglobulina humana es IgG2.
10. El anticuerpo o fragmento de las
reivindicaciones 1 - 3, en el que el anticuerpo es un anticuerpo
quimérico.
11. El fragmento de anticuerpo monoclonal de la
reivindicación 3, en el que el fragmento es un fragmento
monovalente.
12. El anticuerpo monoclonal
anti-receptor CCR5 para quimioquinas de la
reivindicación 2, denominado PA14.
13. El anticuerpo monoclonal humanizado,
anti-receptor CCR5 para quimioquinas, de las
reivindicaciones 4 - 9, en el que el anticuerpo es un anticuerpo
humanizado derivado del anticuerpo monoclonal denominado PA14.
14. El anticuerpo monoclonal o fragmento de
cualquiera de las reivindicaciones 1 - 13, que se une
específicamente a células CCR5^{+}.
15. Uso del anticuerpo monoclonal o fragmento de
cualquiera de las reivindicaciones 1 - 14, para la preparación de
una composición para inhibir la fusión de HIV-1 a
células CD4+ y la entrada viral en dichas células.
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