ES2274537T3 - Anticuerpos erbb3. - Google Patents
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Abstract
SE DIVULGAN ANTICUERPOS QUE AGLUTINAN LA PROTEINA ERBB3 Y POSEEN ADEMAS UNA CUALQUIERA O MAS DE LAS SIGUIENTES PROPIEDADES: CAPACIDAD DE REDUCIR LA FORMACION INDUCIDA POR HEREGULINA DE UNA PROTEINA ERBB2 - ERBB3 COMPLEX, EN UNA CELULA QUE PONE DE MANIFIESTO ERBB2 Y ERBB3; LA CAPACIDAD DE INCREMENTAR LA AFINIDAD AGLUTINANTE DE HEREGULINA CON LA PROTEINA ERBB3; Y LA CARACTERISTICA DE REDUCIR LA ACTIVACION INDUCIDA POR HEREGULINA DE ERBB2 EN UNA CELULA QUE EXPRESA ERBB2 Y ERBB3.
Description
Anticuerpos ErbB3.
Esta invención se refiere generalmente a
anticuerpos que se unen al receptor ErbB3. En particular se refiere
a anticuerpos anti-ErbB3 que, sorprendentemente,
reducen la formación inducida por HRG de un complejo de proteínas
ErbB2-ErbB3 en una célula que expresa ambos
receptores y reduce la activación de ErbB2 inducida por heregulina
en dicha célula, y también puede incrementar la afinidad de unión de
heregulina (HRG) por la proteína ErbB3.
La transducción de señales que regulan el
crecimiento celular y la diferenciación se regula en parte mediante
la fosforilación de varias proteínas celulares. Las proteínas
tirosina quinasas son enzimas que catalizan este proceso. Se cree
que los receptores de proteínas tirosina quinasas dirigen el
crecimiento celular mediante la fosforilación de tirosina
estimulada por ligandos en sustratos intracelulares. Entre los
receptores de proteínas tirosina quinasas del factor de crecimiento
de la subfamilia de la clase 1 se incluyen el receptor del factor
de crecimiento epidérmico (EGFR) de 170 kDa codificado por el gen
erbB1, el cual se ha implicado casualmente en tumores
humanos. En particular, la expresión aumentada de este gen se ha
observado en los carcinomas más agresivos de mama, vejiga, pulmón y
estómago.
El segundo miembro de la subfamilia de la clase
1, p185^{neu}, se identificó originalmente como el producto del
gen de transformación de neuroblastomas de ratas químicamente
tratadas. El gen neu (también denominado erbB2 y
HER2) codifica un receptor de proteína tirosina quinasa de 185 kDa.
La amplificación y/o sobreexpresión del gen HER2 humano se
correlaciona con una prognosis pobre en los cáncer de mama y ovario
(Slamon et al., Science, 235:177-182 (1987);
y Salmón et al., Science, 244: 707-712
(1989)). La sobreexpresión de HER2 también se ha correlacionado con
otros carcinomas que incluyen carcinomas de estómago, endometrio,
glándulas salivares, pulmón, riñón, colon y vejiga.
También se ha descrito un gen relacionado
adicional, denominado erbB3 o HER3. Véase Patente de Estados
Unidos Nos. 5.183.884 y 5.480.968; Plowman et al., Proc.
Natl Acad. Sci. USA, 87: 4905-4909 (1990); Kraus
et al. Proc. Natl Acad. Sci. USA, 86:
9193-9197 (1989); Solicitud de Patente EP No.
444.961 A1; y Kraus et al., Proc. Natl Acad. Sci. USA, 90:
2900-2904 (1993). Kraus et al. (1989)
descubrieron que niveles notablemente elevados de ARNm de
erbB3 estaban presentes en ciertas líneas celulares de
tumores mamarios humanos indicando que erbB3, como
erbB1 y erbB2, pueden jugar un papel importante en
algunos tumores humanos. Estos investigadores demostraron que
algunas líneas celulares de tumores mamarios humanos muestran un
incremento significativo de la fosforilación de tirosina de ErbB3
en estado estacionario, indicando además que este receptor puede
jugar un papel en tumores humanos. Por consiguiente, los bioensayos
de diagnóstico que utilizan anticuerpos que se unen a ErbB3 se
describen por Kraus et al. en las Patentes de Estados Unidos
Nos. 5.183.884 y 5.480.968.
El papel de erbB3 en el cáncer ha sido
explorado por otros. Se ha observado que se sobreexpresa en el
cáncer de mama (Lemoine et al., Br. J. Cancer, 66:
1116-1121 (1992)), gastrointestinal (Poller et
al., J. Pathol., 168: 275-280 (1992),
Rajkumer et al., J. Pathol., 170:
271-278 (1993), y Sanidas et al., Int. J.
Cancer 54: 935-940 (1993)), y pancreático
(Lemoine et al., J. Pathol., 168:
269-273 (1992), y Friess et al. Clinical
Cancer Research 1: 1413-1420 (1995)).
ErbB3 es único entre la familia de receptores
ErbB en que posee una escasa o nula actividad de tirosina quinasa
intrínseca (Guy et al. Proc. Natl Acad. Sci. USA, 91:
8132-8136 (1994) y Kim et al. J. Biol.
Chem. 269: 24747-55 (1994)). Cuando ErbB3 se
coexpresa con ErbB2, se forma un complejo de señalización activo y
los anticuerpos dirigidos contra ErbB2 son capaces de deshacer este
complejo (Sliwkowski et al. J. Biol. Chem., 269 (20):
14661-14665 (1994)). Adicionalmente, la afinidad de
ErbB3 por heregulina (HER) aumenta hasta un estado de afinidad más
elevado cuando se coexpresa con ErbB2. Véase también, Levi et
al., Journal of Neuroscience 15:
1329-1340 (1995); Mortissey et al., Proc.
Natl Acad. Sci. USA, 92: 1431-1435 (1995); y
Lewis et al., Cancer Res, 56:
1457-1465 (1996) con respecto al complejo de
proteínas ErbB2-ErbB3.
Rajkumar et al., British Journal
Cancer 70(3): 459-465 (1994)
desarrollaron un anticuerpo monoclonal contra ErbB3 que tenía un
efecto agonístico en el crecimiento independiente del anclaje de
líneas celulares que expresan este receptor.
La subfamilia de la clase I de receptores de
proteínas tirosina quinasas del factor de crecimiento se ha
extendido además para incluir el receptor HER4/p180^{erbB4}. Ver
la Solicitud de Patente EP No. 599.274; Plowman et al.,
Proc. Natl Acad. Sci. USA 90: 1746-1750
(1993); y Plowman et al. Nature, 366:
473-475 (1993). Plowman et al. observaron
que el aumento de la expresión de HER4 se correlacionaba
estrechamente con ciertos carcinomas de origen epitelial,
incluyendo adenocarcinomas de mama. Por consiguiente, los métodos de
diagnóstico para la detección de condiciones neoplásicas humanas
(especialmente cánceres de mama) que evalúan la expresión de HER4 se
describen en la Solicitud de Patente EP No. 599.274.
\newpage
La búsqueda de un activador del oncogén de HER2
ha llevado al descubrimiento de una familia de polipéptidos de
heregulina. Estas proteínas parecen surgir del splicing ("corte y
empalme") de un gen único que se mapeó en el brazo corto del
cromosoma 8 humano por Lee et al., Genomics, 16:
790-791 (1993); y Orr-Urtreger et
al., Proc. Natl Acad. Sci. USA, Vol. 90 páginas
1867-1871 (1993).
Holmes et al. aislaron y clonaron una
familia de activadores de polipéptidos para el receptor HER2 que
denominaron heregulina-\alpha
(HRG-\alpha), heregulina-\beta1
(HRG-\beta), heregulina-\beta2
(HRG-\beta2), tipo
heregulina-\beta2 (tipo
HRG-\beta2), y heregulina-\beta3
(HRG-\beta3). Véase Holmes et al.,
Science, 256: 1205-1210 (1992); y WO
92/20798. El polipéptido de 45 kDa, HRG-\alpha, se
purificó a partir del medio condicionado de la línea celular del
cáncer de mama humano MDA-MB-231.
Estos investigadores demostraron la capacidad de los polipéptidos de
heregulina purificados para activar la fosforilación de tirosina del
receptor HER2 en células de tumores de mama MCF-7.
Además, se mostró la actividad mitogénica de los polipéptidos de
heregulina en células SK-BR-3 (que
expresan niveles elevados del receptor HER2)Como otros
factores de crecimiento que pertenecen a la familia de EGF, los
polipéptidos solubles de HRG parecen derivarse de un precursor unido
a membrana (denominado pro-HRG) que se procesa
proteolíticamente para liberar la forma soluble de 45 kDa. Estos
pro-HRGs carecen de un péptido señal
N-terminal.
Aunque las heregulinas son sustancialmente
idénticas en los primeros 213 residuos de aminoácidos, se clasifican
en dos tipos principales, \alpha y \beta, basándose en los
dominios variantes de tipo EGF que difieren en sus partes
C-terminales. No obstante, estos dominios de tipo
EGF son idénticos en el espaciado de seis residuos de cisteínas
contenidos en los mismos. En base a la comparación de la secuencia
de aminoácidos, Holmes et al. encontraron que entre la
primera y la sexta cisteína en el dominio de tipo EGF, las HRGs
tenían un 45% de similitud con el factor de crecimiento de tipo EGF
de unión a heparina (HB-EGF), un 35% de similitud
con amfiregulina (AR), un 32% de similitud con
TGF-\alpha y un 27% de similitud con EGF.
El factor de diferenciación neu (NDF) de
44 kDa, que es el equivalente en la rata de la HRG humana, se
describió en primer lugar por Peles et al. Cell. 69:
205-216 (1992) y Wen et al., Cell.
69:559-572 (1992). Como los polipéptidos de HRG, el
NDF tiene un dominio de homología de inmunoglobulina (1g) seguido de
un dominio de tipo EGF y carece de un péptido señal
N-terminal. Posteriormente, Wen et al.,
Mol. Cell Biol., 14 (3): 1909-1919 (1994)
llevó a cabo una "clonación exhaustiva" para extender la
familia de NDFs. Este trabajó reveló seis pro-NDFs
fibroblásticos distintos. Adoptando la nomenclatura de Holmes et
al., los NDFS se clasifican como polipéptidos \alpha o \beta
en base a las secuencias de los dominios de tipo EGF. Las isoformas
1 a 4 se caracterizan en base al tramo yuxtamembrana variable (entre
el dominio de tipo EGF y el dominio transmembrana). Además, se
describe que las isoformas a, b, y c tienen dominios citoplásmicos
de longitud variable. Estos investigadores concluyen que se generan
isoformas de NDF diferentes mediante "splicing" alternativo y
realizan funciones específicas de tejido diferentes.
Falls et al., Cell,
72:801-815 (1993) describen otro mimebro de la
familia de heregulinas que denominan polipéptido inductor de la
actividad del receptor acetilcolina (ARIA). El polipéptido ARIA
derivado de pollo estimula la síntesis de los receptores de
acetilcolina del músculo. Véase también WO 94/08007. ARIA es una
heregulina de tipo \beta y carece del espaciador "glico"
completo (rico en sitios de glicosilación) presentes entre el
dominio de tipo Ig y el dominio de tipo EGF de
HRG-\alpha, y
HRG\beta1-\beta3.
Marchionni et al., Nature,
362:312-318 (1993) identificó varias proteínas
derivadas de bovino que denominaron factores de crecimiento glial
(GGFs). Estos GGFs comparten el dominio de tipo Ig y dominio de tipo
EGF con las otras proteínas de heregulina descritas anteriormente,
pero también tienen un dominio único amino terminal. Los GGFs
generelamente no tienen el espaciador "glico" completo entre el
dominio de tipo Ig y el dominio de tipo EGF. Sólo uno de los GGFs,
GGFII, poseía un péptido señal N-terminal.
La expresión de la familia de receptores ErbB2 y
polipéptidos de heregulina en el cáncer de mama se estudian en Bacus
et al., Pathology Patterns, 102(4) (Suplementeo
1): S13-S24 (1994).
Véase también, Alimandi et al.,
Oncogene, 10:1813-1821 (1995); Beerli et
al., Molecular and Cellular Biology, 15:
6496-6505 (1995); Karunagaran et al., EMBO
J, 15:254-264 (1996); Wallasch et al.,
EMBO J., 14:4267-4275 (1995); y Zhang et
al., Journal of Biological Chemistry,
271:3884-3890 (1996), en relación con la familia de
receptores anterior.
La Patente de Estados Unidos 5480968 describe el
polipéptido erbB3, y el antisuero desarrollado con péptidos
específicos de ese polipéptido, uno de los cuales proviene del
dominio extracelular. Sin embargo, aunque se mencionan posibles
usos de los anticuerpos en la terapia y detección de erbB3, no se
menciona ningún efecto en la acción de la heregulina y, de hecho,
no reconoce su existencia. No se conoce si el antisuero para el
dominio extracelular tendría intrínsecamente dicha propiedad, pero
en cualquier caso renuncia a las reivindicaciones dirigidas a los
anticuerpos per se.
La presente invención da a conocer anticuerpos
que se unen a la proteína ErbB3 y poseen además las siguientes
propiedades: una capacidad para reducir la formación inducida por
heregulina de un complejo de proteínas ErbB2-ErbB3
en una célula que expresa ErbB2 y ErbB3; y la característica de
reducir la activación de ErbB2 inducida por heregulina en una célula
que expresa ErbB2 y ErbB3.
La afinidad de unión de la heregulina por la
proteína ErbB3 se puede aumentar o reducir, pero es preferible que
aumente.
Los anticuerpos preferidos son anticuerpos
monoclonales que se unen a un epítopo en el dominio extracelular
del receptor ErbB3. Generalmente, los anticuerpos de interés se
unirán al receptor ErbB3 con una afinidad de, como mínimo,
aproximadamente 10 nM, más preferiblemente, como mínimo,
aproximadamente 1 nM. En ciertas realizaciones, el anticuerpo se
inmoviliza en (por ejemplo, unido covalentemente a) una fase sólida,
por ejemplo, para purificación por afinidad del receptor o para
ensayos de diagnóstico.
Los anticuerpos de los párrafos anteriores se
pueden proporcionar en forma de una composición que comprende el
anticuerpo y un portador o diluyente farmacéuticamente
aceptable.
Se describen una molécula de ácido nucleico
aislada que codifica el anticuerpo de los párrafos anteriores que
puede comprender adicionalmente un promotor unido operativamente a
la misma; un vector de expresión que comprende la molécula de ácido
nucleico unida operativamente a secuencias de control reconocidas
por una célula huésped transformada con el vector; una línea
celular que comprende el ácido nucleico (por ejemplo, una línea
celular de hibridoma); y un proceso de utilización de una molécula
de ácido nucleico que codifica el anticuerpo para efectuar la
producción del anticuerpo que comprende el cultivo de una célula que
comprende el ácido nucleico y, opcionalmente, la recuperación del
anticuerpo del cultivo celular y, preferiblemente, el medio de
cultivo.
La presente invención también da a conocer la
utilización del anticuerpo en la fabricación de un medicamento para
el tratamiento de un mamífero.
Se describen un procedimiento para detectar
ErbB3 in vitro o in vivo que comprende el contacto
del anticuerpo con una célula sospechosa de contener ErbB3 y la
detección de si la unión ha tenido lugar, y un ensayo para detectar
un tumor caracterizado por la expresión amplificada de ErbB3 que
comprende las etapas de exposición de una célula al anticuerpo
descrito en la presente invención y la determinación de la extensión
de la unión del anticuerpo a la célula. Generalmente, el anticuerpo
a utilizar en dicho ensayo estará marcado. El ensayo de la presente
invención puede ser un ensayo in vitro (tal como un ensayo
ELISA) o un ensayo in vivo. Para el diagnóstico de tumores
in vivo, el anticuerpo está generalmente conjugado a un
isótopo radioactivo y está administrado a un mamífero, y la
extensión de la unión del anticuerpo a tejidos en el mamífero se
observa mediante rastreo externo para radioactividad.
La figura 1 representa la unión de HRG a células
K562 ErbB3 en presencia de varios anticuerpos monoclonales
anti-ErbB3. Los anticuerpos
anti-ErbB3 purificados se incubaron con una
suspensión de células K562 ErbB3 y
^{125}I-HRG\beta1_{(177-244)}.
Después de aproximadamente 18 horas en hielo, se midieron los
recuentos unidos a células. Los recuentos se muestran representados
como el porcentaje de unión en ausencia de anticuerpo (control). La
unión no específica se determinó utilizando un exceso de
HRG\beta1_{(177-244)} (HRG) no marcada. Los
anticuerpos con la proteína ErbB2 (2C4) y HSV (5B6) se utilizaron
como controles negativos.
La figura 2 muestra el efecto de la
concentración de anticuerpo en la unión de HRG. Se realizó un
experimento dosis-respuesta en el anticuerpo
3-8D6 que se observó que aumentaba la unión de HRG.
Se incubaron células K562 ErbB3 con una concentración fija de
^{125}I-HRG y concentraciones crecientes del
anticuerpo 3-8D6. Los datos del experimento se
muestran representados como recuentos unidos a célula frente a
concentración de anticuerpo.
La figura 3 muestra la unión de HRG a células
K562 ErbB3 en presencia y ausencia del anticuerpos
3-8D6 o un fragmento Fab del mismo. Se realizaron
experimentos de unión competitiva de ligando en ausencia (control) y
presencia de 3-8D6 o Fab 100 nM. Los datos se
representan como unido/total (B/T) frente a
HRG\beta1_{(177-244)} total.
A menos que se indique lo contrario, el término
"ErbB3" cuando se utiliza en la presente invención se refiere a
la proteína ErbB3 mamífera y "erbB3" se refiere a gen
erbB3 mamífero. La proteína ErbB3 preferida es la proteína
ErbB3 humana presente en la membrana celular de una célula. El gen
erbB3 humano se describe en la Patente de Estados unidos
5.480.968 de Plowman et al., Proc. Natl. Acad. Sci.
USA, 87: 4905-4909 (1990).
El anticuerpo de interés puede ser uno que no
reacciona de forma cruzada de manera significativa con otras
proteínas, tal como el codificado por los genes erbB1,
erbB2 y/o erbB4. En dichas realizaciones, el grado de
unión del anticuerpo a estas proteínas no-ErbB3 (por
ejemplo, unión de la superficie celular a receptor endógeno) será
inferior al 10% tal y como se determina mediante un análisis de
separación de células activadas por fluorescencia (FACS) o
radioinmunoprecipitación (RIA). Sin embargo, algunas veces el
anticuerpo puede ser uno que no reaccione de forma cruzada con el
receptor ErbB4 y, opcionalmente, no reacciones de forma cruzada con
el receptor EGFR y/o ErbB2, por ejemplo.
\newpage
"Heregulina" (HRG) cuando se utiliza en la
presente invención se refiere a un polipéptido que activa el
complejo de proteínas ErbB2-ErbB3 (es decir, induce
la fosforilación de residuos de tirosina en el complejo
ErbB2-ErbB3 tras la unión al mismo). Anteriormente
se han descrito varios polipéptidos de heregulina comprendidos por
este término. El término incluye fragmentos y/o variantes
biológicamente activos de un polipéptido de HRG naturales, tal como
un fragmento de dominio de tipo EGF del mismo (por ejemplo,
HRG\beta1_{177-244}).
El "complejo de proteínas
ErbB2-ErbB3" es un oligómero asociado no
covalentemente del receptor ErbB2 y el receptor ErbB3. Este complejo
se forma cuando una célula que expresa ambos receptores se expone a
HRG. El complejo se puede aislar mediante inmunoprecipitación y se
puede analizar mediante SDS-PAGE tal y como se ha
descrito en el Ejemplo posterior.
La expresión "reduce la formación inducida por
HRG de un complejo de proteínas ErbB2-ErbB3 en una
célula que expresa ErbB2 y ErbB3" se refiere a la capacidad del
anticuerpo de reducir estadísticamente de forma significativa el
número de complejos de proteínas ErbB2-ErbB3 que se
forman en una célula que se ha expuesto al anticuerpo y HRG en
relación con una célula no tratada (control). La célula que expresa
ErbB2 y ErbB3 puede ser una célula o línea de células naturales
(por ejemplo, célula Caov3) o se puede producir de forma
recombinante mediante la introducción de ácido nucleico que
codifica cada una de estas proteínas en una célula huésped.
Preferiblemente, el anticuerpo reducirá la formación de este
complejo en, como mínimo, un 50%, y más preferiblemente en, como
mínimo, un 70%, tal y como se determina mediante densitometría de
rastreo por reflectancia de transferencias Western del complejo
(véase el Ejemplo posterior).
El anticuerpo que "reduce la formación
inducida por HRG de un complejo de proteínas
ErbB2-ErbB3 en una célula que expresa ErbB2 y
ErbB3" es uno que reduce estadísticamente de forma significativa
la actividad de fosforilación de tirosina de ErbB2 que tiene lugar
cuando HRG se une a ErbB3 en el complejo de proteínas
ErbB2-ErbB3 (presente en la superficie de una célula
que expresa los dos receptores) en relación con una célula no
tratada (control). Esto se puede determinar en base a los niveles de
fosfotirosina en el complejo ErbB2-ErbB3 tras la
exposición del complejo a HRG y el anticuerpo de interés. La célula
que expresa las proteínas ErbB2 y ErbB3 puede ser una célula o línea
de células naturales (por ejemplo, célula Caov3) o se puede producir
de forma recombinante. La activación de ErbB2 se puede determinar
mediante transferencia Western seguido por el sondeo con un
anticuerpo anti-fosfotirosina tal y como se describe
en el Ejemplo posterior. Alternativamente, el ensayo de activación
del receptor quinasa descrito en WO 95/14930 y Sadick et al.,
Analitycal Biochemistry, 235: 207-214 (1996)
se puede utilizar para cuantificar la activación de ErbB2.
Preferiblemente, el anticuerpo reducirá la activación de ErbB2
inducida por heregulina en, como mínimo, un 50%, y más
preferiblemente, como mínimo, un 70%, tal y como se determina
mediante densitometría de rastreo por reflectancia de transferencias
Western del complejo sondado con un anticuerpo
anti-fosfotirosina (véase el Ejemplo posterior).
El anticuerpo puede ser uno que "aumenta la
afinidad de unión de heregulina por la proteína ErbB3". Esto
significa que, en presencia del anticuerpo (por ejemplo, anticuerpo
100 nM), la cantidad de HRG que se une a ErbB3 (por ejemplo, ErbB3
endógeno presente en una célula o línea de células naturales o
introducido en una célula mediante técnicas recombinantes, véase el
Ejemplo posterior), en relación al control (sin anticuerpo) aumenta
estadísticamente de forma significativa. Por ejemplo, la cantidad de
HRG que se une a la línea de células K562 transfectada con
erbB3, tal y como se describe en la presente invención, puede
aumentar en presencia de anticuerpo 100 nM en, como mínimo, un 10%,
más preferiblemente, como mínimo, un 50%, y aún más preferiblemente,
como mínimo, aproximadamente, un 100% (ver figura 1), en relación al
control.
El anticuerpo que reduce la unión de HRG a
proteína ErbB3 (por ejemplo, ErbB3 presente en una célula) es uno
que interfiere con el sitio de unión de HRG en la proteína ErbB3, de
manera que disminuye estadísticamente de manera significativa la
cantidad de heregulina que es capaz de unirse a este sitio en la
molécula. Entre los ejemplos dichos anticuerpos se incluyen
anticuerpos 3-2F9, 3-3E9 y
3-6B9 descritos en los Ejemplos de la presente
invención.
El término "anticuerpo" se utiliza en el
sentido más amplio y cubre espcíficamente anticuerpos monoclonales,
anticuerpos policlonales, anticuerpos multiespecíficos (por ejemplo,
anticuerpos biespecíficos) intactos formados a partir de, como
mínimo, dos anticuerpos intactos, y fragmentos de anticuerpos,
siempre y cuando muestren la actividad biológica deseada. El
anticuerpo puede ser una IgM, IgG (por ejemplo, IgG_{1},
IgG_{2}, IgG_{3} o IgG_{4}), IgD, IgA o IgE, por ejemplo. Sin
embargo, preferiblemente, el anticuerpo no es un anticuerpo IgM.
Los "fragmentos de anticuerpos" comprende
una parte de un anticuerpo intacto, generalmente la región de unión
a antígeno o variable del anticuerpo intacto. Entre los ejemplos de
fragmentos de anticuerpos se incluyen los fragmentos Fab, Fab',
F(ab')_{2} y Fv; diabodies; moléculas de anticuerpo de
cadena única; y anticuerpos multiespecíficos formados a partir de
fragmentos de anticuerpo.
El término "anticuerpo monoclonal" tal y
como se utiliza en la presente invención se refiere a un anticuerpo
obtenido de una población de anticuerpos sustancialmente homogéneos,
es decir, los anticuerpos individuales que comprenden la población
son idénticos a excepción de posibles mutaciones naturales que
pueden estar presentes en cantidades menores. Los anticuerpos
monoclonales son altamente específicos, dirigiéndose contra un sitio
antigénico único. Además, a diferencia de preparaciones de
anticuerpos convencionales (policlonales) que incluyen habitualmente
diferentes anticuerpos dirigidos contra determinantes (epítopos)
diferentes, cada anticuerpo monoclonal se dirige contra un
determinante único en el antígeno. Además de su especificidad, los
anticuerpos monoclonales son ventajosos en que se sintetizan
mediante el cultivo de hibridomas, sin estar contaminados por otras
inmunoglobulinas. El modificador "monoclonal" indica el
carácter del anticuerpo por obtenerse a partir de una población
sustancialmente homogénea de anticuerpos, y no debe interpretarse
que se requiere la producción del anticuerpo mediante cualquier
procedimiento particular. Por ejemplo, los anticuerpos monoclonales
a utilizar según la presente invención, se pueden fabricar mediante
el método del hibridoma descrito por primera vez por Kohler et
al., Nature, 256:495 (1975), o se puede fabricar mediante
procedimientos de ADN recombinante (véase, por ejemplo, la Patente
de Estados Unidos No. 4.816.567). Los "anticuerpos
monoclonales" también se pueden aislar de las bibliotecas de
fagos-anticuerpos fagos utilizando las técnicas
descritas en Clackson et al., Nature, 352:
624-628 (1991) y Marks et al, J. Mol.
Biol., 222: 581-597 (1991), por ejemplo.
Entre los anticuerpos monoclonales de la
presente invención incluyen específicamente anticuerpos
"quiméricos" (inmunoglobulinas) en los que una parte de la
cadena pesada y/o ligera es idéntica con u homóloga a las secuencias
correspondientes en anticuerpos derivados de una especie particular
o que pertenece a una clase o subclase de anticuerpo particular,
mientras que el resto de cadena o cadenas es idéntico con u homólogo
a las secuencias correspondientes en anticuerpos derivados de otras
especies o que pertenece a otra clase o subclase de anticuerpo, así
como fragmentos de dichos anticuerpos, siempre y cuando muestren la
actividad biológica deseada (Patente de Estados Unidos No.
4.816.567; Morrison et al., Proc. Natl. Acad. Sci.
USA, 81: 6851-6855 (1984)).
Las formas "humanizadas" de anticuerpos no
humanos (por ejemplo, murinos) son inmunoglobulinas quiméricas,
cadenas de inmunoglobulinas o fragmentos de las mismas (tales como
Fv, Fab, Fab', F(ab')_{2} u otras subsecuencias de unión a
antígeno de anticuerpos) que contienen una secuencia mínima derivada
de inmunoglobulina no humana. Para la mayor parte, los anticuerpos
humanizados son inmunoglobulinas humanas (anticuerpo receptor) en
que los residuos de una región determinante de la complementariedad
(CDR) del receptor se sustituyen por residuos de una CDR de una
especie no humana (anticuerpo dador), tal como ratón, rata o conejo
que tiene la especificidad, afinidad y capacidad deseadas. En
algunos casos, los residuos del marco de la región (FR) de Fv de la
inmunoglobulina humana se sustituyen por los correspondientes
residuos no humanos. Además, los anticuerpos humanizados pueden
comprender residuos que no se encuentran ni en el anticuerpo
receptor ni en las secuencias de CDR o marco importadas. Estas
modificaciones se realizan para refinar adicionalmente y optimizar
la acción del anticuerpo. En general, el anticuerpo humanizado
comprenderá sustancialmente todos de, como mínimo, uno, y
habitualmente dos, dominios variables, en que todas o
sustancialmente todas las regiones CDR corresponden a aquellas de
las de una inmunoglobulina no humana y todas o sustancialmente todas
las regiones FR son aquellas de una secuencia de inmunoglobulina
humana. El anticuerpo humanizado también comprenderá óptimamente,
como mínimo, una parte de una región constante (Fc) de
inmunoglobulina, habitualmente la de una inmunoglobulina humana.
Para más detalles, véase Jones et al., Nature, 321:
522-525 (1986), Reichmann et al.,
Nature 332: 323-329 (1988); y Presta,
Curr. Op. Struct. Biol., 2: 593-596 (1992).
El anticuerpo humanizado incluye un anticuerpo Primatizado^{TM} en
el que la región de unión a antígeno del anticuerpo se deriva de un
anticuerpo producido mediante la inmunización de monos macaco con
el antígeno de interés.
Los fragmentos de anticuerpo "Fv de cadena
única" o "sFv" comprenden los dominios V_{H} y V_{L} del
anticuerpo, en los que estos dominios se presentan en una única
cadena de polipéptido. Generalmente, el polipéptido Fv comprende
además un polipéptido enlazador entre los dominios V_{H} y V_{L}
que permite que el sFv forme la estructura deseada para la unión a
antígeno. Para una revisión de sFv véase Pluckthun en The
Pharmacology of Monoclonal Antibodies, vol. 113, Rosenburg y
Moore eds., Springer-Verlag, Nueva York, páginas
269-315 (1994).
El término "diabodies" se refiere a
pequeños fragmentos de anticuerpos con dos sitios de unión a
antígeno, cuyos fragmentos comprenden un dominio variable de cadena
pesada (V_{H}) conectado a un dominio variable de cadena ligera
(V_{L}) en la misma cadena de polipéptido (V_{H} - V_{L}).
Utilizando un enlazador que es demasiado corto para permitir el
emparejamiento entre los dos dominios en la misma cadena, los
dominios son forzados a emparejarse con los dominios
complementarios de otra cadena y crean dos sitios de unión a
antígeno. Los diabodies se describen más detalladamente en, por
ejemplo, EP 404.097; WO 93/11161; y Hollinger et. al.,
Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 90: 6444-6448
(1993).
Un anticuerpo "aislado" es uno que se ha
identificado y separado y/o recuperado a partir de un componente de
su medio natural. Los componentes contaminantes de su medio natural
son materiales que interferirían con las utilizaciones de
diagnóstico y terapéuticas del anticuerpo, y pueden incluir enzimas,
hormonas, y otros solutos proteináceos y no proteináceos. En
realizaciones preferidas, el anticuerpo se purificará (1) hasta más
de un 95% en peso de anticuerpo según se determina por el método de
Lowry, y más preferiblemente más de un 99% en peso, (2) hasta un
grado suficiente para obtener por lo menos 15 residuos de secuencia
de aminoácidos N-terminal o interna mediante la
utilización de un secuenciador de copa giratoria, o (3) hasta la
homogeneidad mediante SDS-PAGE en condiciones
reductoras o no reductoras utilizando azul de Coomassie o,
preferiblemente, tinción con plata. El anticuerpo aislado incluye
el anticuerpo in situ dentro de las células recombinantes ya
que por lo menos un componente del medio natural del anticuerpo no
estará presente. Normalmente, sin embargo, el anticuerpo aislado se
preparará mediante por lo menos una etapa de purificación.
Tal y como se utiliza en la presente invención,
el término "epítopo de unión del receptor de rescate" se
refiere a un epítopo de la región Fc de una molécula IgG (por
ejemplo, IgG_{1}, IgG_{2}, IgG_{3}, o IgG_{4}) que es
responsable para aumentar la vida media de suero in vivo de
la molécula IgG.
\newpage
El "tratamiento" se refiere al tratamiento
terapéutico y a medidas profilácticas o preventivas. Entre los que
necesiten el tratamiento se incluyen los que ya padecen el trastorno
así como aquellos en los que se previene el trastorno.
"Mamífero" para los objetivos de
tratamiento se refiere a cualquier animal clasificado como un
mamífero, incluyendo humanos, animales domésticos y de granja,
animales de zoo, deportes o de compañía, tales como perros,
caballos, gatos, vacas, etc. Preferiblemente, el mamífero es
humano.
Un "trastorno" es cualquier condición que
se beneficiaría del tratamiento con el anticuerpo
anti-ErbB3. Esto incluye trastornos crónicas y
agudos o enfermedades que incluyen aquellas condiciones patológicas
que predisponen al mamífero al trastorno en cuestión. Generalmente,
el trastorno será uno en el que tiene lugar una activación excesiva
del complejo de proteínas ErbB2-ErbB3 por
heregulina. Entre los ejemplos no limitantes de trastornos a tratar
en la presente invención se incluyen tumores benignos y malignos;
leucemias y tumores de linfoides; trastornos neuronales, gliales,
astrocitales, hipotalámicos y otros trastornos glandulares,
macrofágicos, epiteliales, estromales y blastocoélicos; y trastornos
inflamatorios, angiogénicos e inmunológicos.
Los términos "cáncer" y "canceroso/a"
se refieren a o describen la condición fisiológica en mamíferos que
se caracteriza habitualmente por un crecimiento celular no regulado.
Entre los ejemplos de cáncer se incluyen, pero no se limitan a,
carcinoma, linfoma, blastoma, sarcoma y leucemia. Entre más ejemplos
particulares de dichos cánceres se incluyen cáncer de células
escamosas, cáncer de pulmón de células pequeñas, cáncer de pulmón de
células no pequeñas, cáncer gastrointestinal, cáncer pancreático,
glioblastoma, cáncer cervical, cáncer de ovario, cáncer de hígado,
cáncer de vejiga, hepatoma, cáncer de mama, cáncer de colon, cáncer
colorectal, carcinoma endometrial, carcinoma de glándulas salivares,
cáncer de riñón, cáncer renal, cáncer de próstata, cáncer de vulva,
cáncer de tiroides, carcinoma hepático y varios tipos de cáncer de
cabeza y cuello.
El término "agente citotóxico", tal y como
se utiliza en la presente invención, se refiere a una sustancia que
inhibe o evita la función de células y/o provoca la destrucción de
células. El término pretende incluir isótopos radioactivos (por
ejemplo, I, Y y Pr), agentes quimioterapéuticos, y toxinas, tales
como toxinas enzimáticamente activas de bacterias, hongos, de origen
animal o vegetal, o fragmentos de las mismas.
Un "agente quimioterapéutico" es un
compuesto químico útil en el tratamiento del cáncer. Entre los
ejemplos de agentes quimioterapéuticos se incluyen Adriamicina,
Doxorubicina, 5-Fluoroacilo, Arabinósido de citosina
("Ara-C"), Ciclofosfamida, Tiotepa, Busulfano,
Citoxina, Taxol, Metotrexato, Cisplatino, Melfalano, Vinblastina,
Bleomicina, Etopósido, Ifosfamida, Mitomicina C, Mitoxantrona,
Vincristina, Vinorelbina, Carboplatino, Tenipósido, Daunomicina,
Carminomicina, Aminopterina, Dactinomicina, Mitomicinas,
Esperamicinas (véase Patente de Estados Unidos No. 4.675.187),
Melfalano y otros gases de nitrógeno relacionados.
El término "citoquina" es un término
genérico para proteínas liberadas por una población de células que
actúan sobre otra célula como mediadores intercelulares. Algunos
ejemplos de dichas citoquinas son linfoquinas, monoquinas, y
hormonas de polipéptidos tradicionales. Entre las citoquinas se
incluyen hormonas del crecimiento, tales como hormona del
crecimiento humano, hormona del crecimiento humano
N-metionilo y hormona de crecimiento bovino;
hormona paratiroidal; tiroxina; insulina; proinsulina; relaxina;
prorelaxina; hormonas de glicoproteínas, tales como hormona
estimulante del folículo (FSH), hormona estimulante de la tiroides
(TSH), y hormona luteínica (LH); factor de crecimiento hepático;
factor de crecimiento de fibroblastos; prolactina; lactógeno
placentario; factores \alpha y \beta de necrosis tumoral;
sustancia inhibidora mulleriana; péptido asociado a gonadotropina
de ratón; inhibina; activina; factor de crecimiento endotelial
vascular; integrina; trombopoyetina (TPO); factores de crecimiento
nervioso, tales como NGF-\beta; factor de
crecimiento plaquetario; factores de crecimiento transformante
(TGFs), tales como TGF-\alpha y
TGF-\beta, factor de crecimiento I y II de tipo
insulina; eritropoyetina (EPO); factores osteoinductivos;
interferones, tales como interferón-\alpha,
\beta, y \gamma; factores estimulantes de colonias (CSFs),
tales como macrófago-CSF (M-CSF);
granulocito-macrófago-CSF
(GM-CSF); y granulocito-CSF
(G-CSF); interleuquinas (ILs), tales como
IL-1, IL-1\alpha,
IL-2, IL-3, IL-4,
IL-5 IL-6, IL-7,
IL-8, IL-9, IL-11,
IL-12; un factor de necrosis tumoral, tal como
TNF-\alpha o TNF-\beta, y otros
factores de polipéptidos que incluyen LIF y ligando kit (LK). Tal y
como se utiliza en la presente invención, el término citoquina
incluye proteínas de fuentes naturales o de cultivos de células
recombinantes y equivalentes biológicamente activos de las
citoquinas de secuencia nativa.
El término "profármaco", tal y como se
utiliza en esta solicitud, se refiere a un precursor o una forma
derivada de una sustancia farmacéuticamente activa que es menos
citotóxica para las células tumorales en comparación con fármaco
parental y es capaz de activarse enzimáticamente o convertirse en la
forma parental más activa. Véase, por ejemplo, Filman, "Prodrugs
in Cancer Chemotherapy" Biochemical Society Transactions,
14, páginas 375-382, 615th Meeting Belfast (1986) y
Stella et al., "Prodrugs: A Chemical Approach to Targeted
Drug Delivery", Directed Drug Delivery. Borchardt et
al. (ed.), páginas 247-267. Humana Press (1985).
Los profármacos de la presente invención incluyen, pero no se
limitan a, profármacos que contienen fosfato, profármacos que
contienen tiofosfato, profármacos que contienen sulfato, profármacos
que contienen péptido, profármacos modificados con
D-aminoácidos, profármacos glicosilados, profármacos
que contienen \beta-lactama, profármacos que
contienen fenoxiacetamida opcionalmente sustituida o profármacos que
contienen fenilacetamida opcionalmente sustituida, profármacos de
5-fluorocitosina y otros profármacos de
5-fluorouridina que se pueden convertir en el
fármaco libre citotóxico más activo. Entre los ejemplos de fármacos
citotóxicos que se pueden derivatizar a una forma profármaco para la
utilización en la presente invención se incluyen, pero no se limitan
a, los agentes quimioterapéuticos descritos anteriormente.
La palabra "marcador" cuando se utiliza en
la presente invención se refiere a un compuesto o composición
detectable que se conjuga directa o indirectamente al anticuerpo. El
"marcador" puede ser detectable por sí mismo (por ejemplo,
marcadores radioisótopos o marcadores fluorescentes) o, en el caso
de un marcador enzimático, puede catalizar la alteración química de
un compuesto o composición sustrato que es detectable.
Por "fase sólida" se entiende una matriz no
acuosa a la que se puede adherir el anticuerpo de la presente
invención. Entre los ejemplos de fases sólidas que se engloban en la
presente invención se incluyen las formadas parcial o totalmente de
vidrio (por ejemplo, vidrio de poro controlado), polisacáridos (por
ejemplo, agarosa), poliacrilamidas, poliestireno, polivinilalcohol y
siliconas. En ciertas realizaciones, dependiendo del contexto, la
fase sólida puede comprender el pocillo de una placa de ensayo; en
otras es una columna de purificación (por ejemplo, una columna de
cromatografía de afinidad). Este término también incluye una fase
sólida discontinua de partículas discretas, tales como las descritas
en la Patente de Estados Unidos No. 4.275.149.
Un "liposoma" es una vesícula pequeña
compuesta de varios tipos de lípidos, fosfolípidos y/o tensoactivos
que es útil para la liberación de un fármaco (tal como los
anticuerpos anti-ErbB3 descritos en la presente
invención y, opcionalmente, un agente quimioterapéutico) a un
mamífero. Los componentes del liposoma se disponen habitualmente en
una formación de bicapa, similar a la disposición de las membranas
biológicas.
Una molécula de ácido nucleico "aislada" es
una molécula de ácido nucleico que se identifica y se separa de por
lo menos una molécula de ácido nucleico contaminante con la que está
asociada normalmente en el medio natural del ácido nucleico del
anticuerpo. Una molécula de ácido nucleico aislada está en una forma
o composición diferente de la que se encuentra en la naturaleza. Por
lo tanto, las moléculas de ácido nucleico aisladas se distinguen de
la molécula de ácido nucleico ya que existe en células naturales.
Sin embargo, una molécula de ácido nucleico aislada incluye
moléculas de ácido nucleico contenidas en células que normalmente
expresan el anticuerpo cuando, por ejemplo, la molécula de ácido
nucleico está en una localización cromosómica diferente de la de
las células naturales.
La expresión "secuencias de control" se
refiere a secuencias de ADN necesarias para la expresión de una
secuencia codificante unida operativamente en un organismo huésped
particular. Las secuencias de control que son adecuadas para
procariotas incluyen, por ejemplo, un promotor, opcionalmente una
secuencia operadora, y un sitio de unión a ribosoma. Se sabe que las
células eucariotas utilizan promotores, señales de poliadenilación y
potenciadores.
Un ácido nucleico está "unido
operativamente" cuando está situado en una relación funcional con
otra secuencia de ácidos nucleicos. Por ejemplo, el ADN para una
presecuencia o líder secretor está unido operativamente a ADN para
un polipéptido si se expresa como una preproteína que participa en
la secreción del polipéptido; un promotor o potenciador está unido
operativamente a una secuencia codificante si afecta la
transcripción de la secuencia; o un sitio de unión a ribosoma está
unido operativamente a una secuencia codificante si está situado
para facilitar la traducción. Generalmente, "unido
operativamente" significa que las secuencias de ADN que se unen
están contiguas y, en el caso de un líder secretor, contiguas y en
fase de lectura. Sin embargo, los potenciadores no tienen que estar
contiguos. La unión se realiza mediante la unión en los sitios de
restricción convenientes. Si dichos sitios no existen, los
adaptadores o enlazadores de oligonucleótidos sintéticos se utilizan
según la práctica convencional.
Tal y como se utiliza en la presente invención,
las expresiones "célula", "línea celular" y "cultivo
celular" se utilizan indistintamente y todas las denominaciones
incluyen progenie. De este modo, las palabras "transformantes"
y "células transformantes" incluyen las células primarias del
sujeto y los cultivos derivados de las mismas sin considerar el
número de transferencias. También debe entenderse que la progenie no
puede ser precisamente idéntica en el contenido de ADN, debido a
mutaciones deliberadas o involuntarias. Se incluye la progenie
mutante que tiene la misma función o actividad biológica tal y como
se rastrea en la célula originalmente transformada. Cuando se
pretenden designaciones diferentes, serán obvias a partir del
contexto.
La descripción siguiente se muestra como
técnicas de ejemplo para la producción de los anticuerpos
reivindicados.
Los anticuerpos policlonales se desarrollan
generalmente en animales mediante inyecciones subcutáneas (sc) o
intraperitoneales (ip) múltiples del antígeno pertinente y un
adyuvante. Puede ser útil conjugar el antígeno pertinente a una
proteína que es inmunogénica en las especies a inmunizar, por
ejemplo, la hemocianina de la lapa californiana, albúmina de suero,
tiroglobulina bovina o inhibidor de tripsina de soja utilizando un
agente bifuncional o derivatizante, por ejemplo, éster de
maleimidobenzoil sulfosuccinimida (conjugación a través de residuos
de cisteína), N-hidroxisuccinimida (a través de
residuos de lisina), glutaraldehído, anhídrido succínico,
SOCl_{2}, o R^{1}N=C=NR, donde R y R^{1} son grupos alquilo
diferentes.
Los animales se inmunizan contra el antígeno,
conjugados inmunogénicos o derivados mediante la combinación de, por
ejemplo, 100 \mug o 5 \mug de la proteína o conjugado (para
conejos o ratones, respectivamente) con 3 volúmenes de adyuvante
completo de Freund y la inyección de la solución intradérmicamente
en sitios múltiples. Un mes más tarde, los animales se estimulan con
1/5 a 1/10 de la cantidad original de péptido o conjugado en
adyuvante completo de Freund mediante inyección subcutánea en sitios
múltiples. De siete a catorce días más tarde los animales sangran y
el suero se ensaya para el título de anticuerpo. Los animales se
estimulan hasta que el título se estabiliza. Preferiblemente, el
animal se estimula con el conjugado del mismo antígeno, pero
conjugado a una proteína diferente y/o a través de un reactivo de
reticulación diferente. Los conjugados también se pueden producir en
cultivos de células recombinantes como fusiones de proteínas.
Además, los agentes de agregación, tales como el alumbre, se
utilizan de forma adecuada para potenciar la respuesta inmune.
Los anticuerpos monoclonales se obtienen de una
población de anticuerpos sustancialmente homogéneos, es decir, los
anticuerpos individuales que comprenden la población son idénticos a
excepción de posibles mutaciones naturales que pueden estar
presentes en cantidades menores. De este modo, el modificador
"monoclonal" indica el carácter del anticuerpo que no es una
mezcla de anticuerpos discretos.
Por ejemplo, los anticuerpos monoclonales se
pueden producir utilizando el método del hibridoma descrito por
primera vez por Kohler et al., Nature 256:495 (1975) o
se pueden producir mediante métodos de ADN recombinante (Patente de
Estados Unidos No. 4.816.567).
En el método del hibridoma, un ratón u otro
animal huésped apropiado, tal como un hámster, se inmuniza como se
ha descrito anteriormente para conseguir linfocitos que producen o
son capaces de producir anticuerpos que se unirán específicamente a
la proteína utilizada para la inmunización. Alternativamente, los
linfocitos se pueden inmunizar in vitro. A continuación, los
linfocitos se fusionan con células de mieloma utilizando un agente
de fusión adecuado, tal como polietilenglicol, para formar una
célula de hibridoma (Coding, Monoclonal Antibodies: Principles
and Practice, páginas 59-103 (Academia Press.
1986)).
Las células de hibridoma preparadas de esta
manera se siembran y se desarrollan en un medio de cultivo adecuado
que contiene preferiblemente una o más sustancias que inhiben el
crecimiento o la supervivencia de las células de mieloma parentales
no fusionadas. Por ejemplo, si las células de mieloma parentales
carecen del enzima hipoxantina guanina fosforibosil transferasa
(HGPRT o HPRT), el medio de cultivo de los hibridomas incluirán
habitualmente hipoxantina, aminopterina y timidina (medio HAT),
cuyas sustancias evitan el crecimiento de células deficientes de
HGPRT.
Las células de mieloma preferidas son aquellas
que se fusionan de manera eficaz, contribuyen a una producción a un
nivel elevado estable de anticuerpo por las células productoras de
los anticuerpos seleccionados, y son sensibles a un medio, tal como
medio HAT. Entre éstos, las líneas de células de mieloma preferidas
son líneas de mieloma murinas, tales como las derivadas de tumores
de ratón MOPC-21 y MPC-11
disponibles en el Salk Institute Cell Distribution Center, San
Diego, California USA, y las células SP-2 o
X63-Ag8-653 disponibles en la
American Type Culture Collection, Rockville, Maryland, Estados
Unidos. También se han descrito líneas de células de mieloma humano
y de heteromieloma ratón-humano para la producción
de anticuerpos monoclonales humanos (Kozbor, J. Immunol. 133:
3001 (1984); Brodeur et al., Monoclonal Antibody
Production Techniques and Applications, páginas
51-63 (Marcel Dekker, Inc., Nueva York, 1987)).
Se ensaya el medio de cultivo en el que las
células de hibridoma están en crecimiento para la producción de
anticuerpos monoclonales dirigidos contra el antígeno.
Preferiblemente, la especificidad de unión de anticuerpos
monoclonales producidos por células de hibridoma se determina
mediante la inmunoprecipitación o mediante un ensayo de unión in
vitro, tal como radioinmunoensayo (RIA) o ensayo
inmunoabsorbente unido a enzima (ELISA).
La afinidad de unión del anticuerpo monoclonal
se pueden determinar, por ejemplo, mediante análisis Scatchard de
Munson et al., Anal. Biochem., 107:220 (1980).
Después de identificar las células de hibridoma
que producen anticuerpos de la especificidad, afinidad y/o actividad
deseadas, los clones se pueden subclonar limitando los
procedimientos de dilución y se pueden desarrollar mediante métodos
estándar (Goding, Monoclonal Antibodies: Principles and
Practice, páginas 59-103 (Academia Press,
1986)). Entre los medios de cultivo adecuados para este objetivo se
incluyen, por ejemplo, medio D-MEM o medio
RPM1-1640. Además, las células de hibridoma se
pueden desarrollar in vivo como tumores ascitis en un
animal.
Los anticuerpos monoclonales secretados por los
subclones se separan de forma adecuada del medio de cultivo, fluido
de ascitis, o suero mediante procedimientos de purificación de
inmunoglobulinas convencionales, tales como, por ejemplo, proteína
A-Sefarosa, cromatografía de hidroxilapatito,
electroforesis en gel, diálisis o cromatografía de afinidad.
El ADN que codifica los anticuerpos monoclonales
se aisla fácilmente y se secuencia utilizando procedimientos
convencionales (por ejemplo, utilizando sondas de oligonucleótidos
que son capaces de unirse específicamente a genes que codifican las
cadenas pesada y ligera de anticuerpos murinos). Las células de
hibridoma sirven como una fuente preferida de dicho ADN. Una vez
aislado, el ADN se puede colocar en vectores de expresión, que a
continuación se transfectan en células huésped, tales como células
E. coli, células COS de simios, células de ovario de hámster
chino (CHO), o células de mieloma que de ningún modo producen
proteína inmunoglobulina, para obtener la síntesis de anticuerpos
monoclonales en las células huésped recombinantes. Entre los
artículos de estudios sobre la expresión recombinante en bacterias
de ADN que codifican el anticuerpo se incluyen Skerra et al.,
Curr. Opinión in Immunol., 5:256-262 (1993) y
Plückthun, Immunol Revs., 130:151-188
(1992).
Los anticuerpos o fragmentos de anticuerpos se
pueden aislar de bibliotecas de fagos-anticuerpos
generados utilizando las técnicas descritas en McCafferty et
al., Nature, 348: 552-554 (1990).
Clackson et al., Nature, 352: 624-628
(1991) y Marks et al, J. Mol. Biol., 222:
581-597 (1991) describen el aislamiento de
anticuerpos murinos y humanos, respectivamente, utilizando
bibliotecas de fagos. Las posteriores publicaciones describen la
producción de anticuerpos humanos de afinidad elevada (rango de nM)
mediante intercambio de cadenas (Marks et al., Biol.
Technology, 10:779-783 (1992)), así como
infección combinatoria y recombinación in vivo como
estrategia para construir bibliotecas de fagos muy grandes
(Waterhouse et al., Nuc. Acids. Res., 21:
2265-2266 (1993)). De este modo, estas técnicas son
alternativas viables a las técnicas convencionales de hibridoma de
anticuerpos monoclonales para el aislamiento de anticuerpos
monoclonales.
El ADN también se puede modificar, por ejemplo,
mediante la sustitución de la secuencia codificante de los dominios
constantes de las cadenas pesada y ligera en lugar de secuencias
murinas homólogas (Patente de Estados Unidos No. 4.816.567; Morrison
et al. Proc. Natl Acad. Sci. USA, 81:6851 (1984)), o
mediante unión covalente a la secuencia codificante de
inmunoglobulina de toda o parte de la secuencia codificante de un
polipéptido que no es inmunoglobulina.
Habitualmente, dichos polipéptidos que no son
inmunoglobulinas se sustituyen por los dominios constantes de un
anticuerpo o se sustituyen por los dominios variables de un sitio de
combinación a antígeno de un anticuerpo para crear un anticuerpo
divalente quimérico que comprende un sitio de combinación a antígeno
que tiene especificidad por un antígeno y otro sitio de combinación
a antígeno que tiene especificidad por un antígeno diferente.
Los métodos para humanizar anticuerpos no
humanos son bien conocidos en la técnica. Generalmente, un
anticuerpo humanizado tiene uno o más residuos de aminoácidos
introducidos en el mismo a partir de una fuente que es no humana.
Estos residuos de aminoácidos no humanos se denominan frecuentemente
como residuos "importados", que habitualmente se sacan de un
dominio variable "importado". La humanización se puede realizar
esencialmente siguiendo el método de Winter y colaboradores (Jones
et al., Nature, 321: 522-525 (1986);
riechmann et al., Nature, 332:
323-327 (1988); Verhoeyen et al.,
Science, 239: 1534-1536 (1988)), mediante la
sustitución de CDRs de roedores o secuencias de CDR por las
secuencias correspondientes de un anticuerpo humano. Por
consiguiente, dichos anticuerpos "humanizados" son anticuerpos
quiméricos (Patente de Estados Unidos No. 4.816.567) en los que
sustancialmente menos de un dominio variable humano intacto se ha
sustituido por la secuencia correspondiente de una especie no
humana. En la práctica, los anticuerpos humanizados son
habitualmente anticuerpos humanos en los que algunos residuos de CDR
y posiblemente algunos residuos de FR se sustituyen por residuos de
sitios análogos en anticuerpos de roedores.
La elección de dominios variables humanos, tanto
ligero como pesado, para utilizar en la fabricación de los
anticuerpos humanizados es muy importante para reducir la
anteginicidad. Según el método denominado
"mejor-ajuste", la secuencia del dominio
variable de un anticuerpo de roedor se criba frente a toda la
biblioteca de secuencias de dominios variables humanos conocidos. A
continuación, la secuencia humana que está más próxima a la del
roedor se acepta como marco de la región humano (FR) para el
anticuerpo humanizado (Sims et al., J. Immunol., 151:
2296 (1993); Chothia et al., J. Mol. Biol., 196: 901
(1987)). Otro método utiliza un marco de región particular derivado
de la secuencia de consenso de todos los anticuerpos humanos de un
subgrupo particular de cadenas ligeras o pesadas. El mismo marco de
región se puede utilizar para varios anticuerpos humanizados
diferentes (Carter et al., Proc. Natl Acad. Sci. USA,
89: 4285 (1992); Presta et al., J. Immnol., 151: 2623
(1993)).
Es también importante que los anticuerpos se
humanicen manteniendo una afinidad elevada por el antígeno y otras
propiedades biológicas favorables. Para conseguir este objetivo,
según un método preferido, los anticuerpos humanizados se preparan
mediante un proceso de análisis de las secuencias parentales y
varios productos conceptuales humanizados utilizando modelos
tridimensionales de las secuencias parentales y humanizadas. Los
modelos tridimensionales de inmunoglobulinas están disponibles
normalmente y son familiares para los expertos en la materia. Hay
programas informáticos que muestran y visualizan probables
estructuras conformaciones tridimensionales de secuencias de
inmunoglobulinas candidatas seleccionadas. La observación de estas
visualizaciones permite el análisis de la probable función de los
residuos en el funcionamiento de la secuencia de inmunoglobulina
candidata, es decir, el análisis de residuos que influyen en la
capacidad de la inmunoglobulina candidata para unirse a su
antígeno. De esta manera, los residuos de FR se pueden seleccionar y
combinar del receptor e importar secuencias, de manera que se
consigue la característica del anticuerpo deseado, tal como una
mayor afinidad para el antígeno o antígenos diana. En general, los
residuos de CDR están directamente y más sustancialmente implicados
en la influencia sobre la unión al antígeno.
Alternativamente, actualmente es posible
producir animales transgénicos (por ejemplo, ratones) que son
capaces, tras la inmunización, de producir un repertorio completo de
anticuerpos humanos en ausencia de producción de inmunoglobulinas
endógenas. Por ejemplo, se ha descrito que la deleción homocigótica
del gen de la región de unión de la cadena pesada del anticuerpo
(J_{H}) en ratones quiméricos y mutantes en la línea germinal da
lugar a una inhibición completa de la producción de anticuerpos
endógenos. La transferencia del grupo de genes humanos de
inmunoglobulinas de la línea germinal en dichos ratones mutantes en
la línea germinal dará lugar a la producción de anticuerpos humanos
tras la inducción de los antígenos. Véase, por ejemplo, Jakobovits
et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 90:2551 (1993);
Jakobovits et al. Nature, 362:255-258
(1993); Bruggermann et al., Year in Immuno., 7:33
(1993). Los anticuerpos humanos también se pueden derivar de
bibliotecas de expresión de fagos (Hoogenboom et al. J.
Mol. Biol., 227:381 (1991); Marks et al., J. Mol.
Biol., 222:581-597 (1991)).
Se han desarrollado varias técnicas para la
producción de fragmentos de anticuerpos. Habitualmente, estos
fragmentos se derivaban mediante la digestión proteolítica de
anticuerpos intactos (véase, por ejemplo, Morimoto et al.,
Journal of Biochemical and Biophysical Methods
24:107-117 (1992) y Brennan et al.,
Science 229:81 (1985)). Sin embargo, estos fragmentos se
pueden producir actualmente directamente mediante células huésped
recombinantes. Por ejemplo, los fragmentos de anticuerpos se pueden
aislar de las bibliotecas de fagos-anticuerpos
descritas anteriormente. Alternativamente, los fragmentos
Fab'-SH se pueden recuperar directamente de E
coli y acoplarse químicamente para formar fragmentos
F(ab’)_{2} (Carter et al., Bio/Technology
10:163-167 (1992)). Según otra aproximación, los
fragmentos F(Ab')_{2} se pueden aislar directamente del
cultivo de células huésped recombinantes. Otras técnicas para la
producción de fragmentos de anticuerpos serán evidentes para el
técnico de la materia.
Los anticuerpos biespecíficos son anticuerpos
que tiene especificidades de unión con por lo menos dos epítopos
diferentes. Los anticuerpos biespecíficos de ejemplo se pueden unir
a dos epítopos diferentes de la proteína ErbB3. Otros de dichos
anticuerpos pueden combinar un sitio de unión a ErbB3 con sitio o
sitios de unión para EGFR, ErbB2 y/o ErbB4. Alternativamente, un
brazo anti-ErbB3 puede combinarse con un brazo que
se une a una molécula inductora en un leucocito, tal como una
molécula receptora de células T (por ejemplo, CD2 o CD3) o
receptores Fc para IgG (FC\gammaR), tal como FC\gammaRI (CD64),
FC\gammaRII (CD32) y FC\gammaRIII (CD16) con el fin de centrar
los mecanismos de defensa celular en la célula que expresa ErbB3.
Los anticuerpos biespecíficos también se pueden utilizar para
localizar agentes citotóxicos en células que expresan ErbB3. Estos
anticuerpos poseen un brazo de unión a ErbB3 y un brazo que se une
al agente citotóxico (por ejemplo, saporina,
anti-interferón-\alpha, alcaloide
vinca, cadena A de ricina, metotrexato o isótopo radioactivo de
hapteno). Los anticuerpos biespecíficos se pueden preparar como
anticuerpos de longitud completa o fragmentos de anticuerpos (por
ejemplo, anticuerpos biespecíficos F(ab’)_{2}).
Los procedimientos para realizar anticuerpos
biespecíficos son conocidos en la técnica. La producción habitual de
anticuerpos específicos de longitud completa se basa en la
coexpresión de dos pares de cadena pesada-cadena
ligera de inmunoglobulina, donde las dos cadenas tiene diferentes
especificidades (Milstein et al., Nature,
305:537-539 (1983)). Debido a la variedad aleatoria
de cadenas pesadas y ligeras de inmunoglobulina, estos hibridomas
(cuadromas) producen una mezcla potencial de 10 moléculas de
anticuerpos diferentes, de las cuales sólo una tiene la estructura
biespecífica correcta. La purificación de la molécula correcta, que
se realiza habitualmente mediante etapas de cromatografía de
afinidad, es bastante incómoda y los rendimientos de producto son
bajos. En WO 93/08829 y en Truanecker et al., EMBO J.,
10:3655-3659 (1991) se describen procesos
similares.
Según una aproximación diferente, los dominios
variables de anticuerpos con las especificidades de unión deseadas
(sitios de combinación anticuerpo-antígeno) se
fusionan a secuencias del dominio constante de inmunoglobulina. La
fusión se produce preferiblemente con una dominio constante de
cadena pesada de la inmunoglobulina, que comprende por lo menos
parte de las regiones flexibles CH2 y CH3. Se prefiere que la
primera región constante de cadena pesada (CH1) contenga el sitio
necesario para la unión a cadena ligera, presente en por lo menos
una de las fusiones. Los ADNs que codifican las fusiones de la
cadena pesada de inmunoglobulina y, si se desea, la cadena ligera
de inmunoglobulina, se insertan en vectores de expresión separados y
se cotransfectan en un organismo huésped adecuado. Esto proporciona
una gran flexibilidad en el ajuste de las proporciones mutuas de los
tres fragmentos de polipéptido cuando la proporción desigual de las
tres cadenas de polipéptido utilizadas en la construcción
proporciona rendimientos óptimos. Sin embargo, es posible insertar
las secuencias codificantes de dos o las tres cadenas de
polipéptido en un vector de expresión cuando la expresión de por lo
menos dos cadenas de polipéptido en proporciones iguales da lugar a
rendimientos elevados o cuando las proporciones no tienen particular
importancia.
Los anticuerpos biespecíficos pueden estar
compuestos de una cadena pesada de inmunoglobulina híbrida con una
primera especificidad de unión en un brazo, y una pareja de cadena
pesada-cadena ligera de inmunoglobulina híbrida (que
proporciona una segunda especificidad de unión) en el otro brazo. Se
observó que esta estructura asimétrica facilita la separación del
compuesto biespecífico deseado a partir de combinaciones de cadenas
de inmunoglobulinas no deseadas, ya que la presencia de una cadena
ligera de inmunoglobulina en sólo una mitad de la molécula
biespecífica proporciona una vía sencilla de separación. Esta
aproximación se describe en WO 94/04690. Para más detalles sobre la
generación de anticuerpos biespecíficos véase, por ejemplo, Suresh
et al., Methods in Enzymology 121:210 (1986).
Según otra aproximación, la interfase entre una
pareja de moléculas de anticuerpos se puede diseñar para maximizar
el porcentaje de heterodímeros que se recuperan de cultivos de
células recombinantes. La interfase preferida comprende por lo menos
una parte del dominio C_{H}3 de dominio constante de anticuerpo.
En este método, una o más cadenas laterales de aminoácidos pequeñas
de la interfase de la primera molécula de anticuerpo se sustituyen
por cadenas laterales más grandes (por ejemplo, tirosina o
triptófano). Las "cavidades" compensatorias de tamaño idéntico
o similar a la cadena o cadenas laterales grandes se crean en la
interfase de la segunda molécula de anticuerpo mediante la
sustitución de cadenas laterales de aminoácidos grandes por pequeñas
(por ejemplo, alanina o treonina). Esto proporciona un mecanismo
para aumentar el rendimiento del heterodímero sobre otros productos
finales no deseados, tales como homodímeros.
Entre los anticuerpos biespecíficos se incluyen
anticuerpos reticulados o "heteroconjugados". Por ejemplo, uno
de los anticuerpos en el heteroconjugado se puede acoplar a avidina,
y el otro a biotina. Dichos anticuerpos se han propuesto, por
ejemplo, para dirigir células del sistema inmune a células no
deseadas (Patente de Estados Unidos No. 4.676.980) y para el
tratamiento de la infección por VIH (WO 91/00360, WO 92/200373 y EP
03089). Los anticuerpos de heteroconjugado se pueden fabricar
utilizando cuando cualquier método de reticulación conveniente. Los
agentes de reticulación adecuados son bien conocidos en la técnica y
se describen en la Patente de Estados Unidos No. 4.676.980 junto con
un grupo de técnicas de reticulación.
Las técnicas para generar anticuerpos
biespecíficos a partir de fragmentos de anticuerpos también se han
descrito en la literatura. Por ejemplo, se pueden preparar
anticuerpos biespecíficos utilizando enlaces químicos. Brennan et
al., Science, 229: 81 (1985) describen un procedimiento
en el que anticuerpos intactos se pueden descomponer
proteolíticamente para generar fragmentos F(ab')_{2}. Estos
fragmentos se reducen en presencia del agente complejante de ditiol,
arsenito sódico, para estabilizar los ditioles vecinales y evitar la
formación de enlaces disulfuro intermoleculares. A continuación, los
fragmentos Fab' generados se convierten en derivados de
tionitrobenzoato (TNB). Uno de los derivados de
Fab'-TNB se reconvierte a continuación en
Fab'-tiol mediante la reducción con
mercaptoetilamina y se mezcla con una cantidad equimolar del otro
derivado de Fab'-TNB para formar el anticuerpo
específico. Los anticuerpos biespecíficos producidos se pueden
utilizar como agentes para la inmovilización selectiva de
enzimas.
El progreso reciente ha facilitado el
descubrimiento directo de fragmentos Fab'-SH de
E. coli, que se pueden acoplar químicamente para formar
anticuerpos biespecíficos. Shalaby et al., J. Exp.
Med, 175: 217-225 (1992) describen la producción
de una molécula de anticuerpo biespecífico completamente humanizado
F(ab')_{2}. Cada fragmento de Fab' se secretó se manera
separada de E. coli y se sometió a un acoplamiento químico
dirigido in vitro para formar el anticuerpo biespecífico. El
anticuerpo biespecífico así formado era capaz de unirse a células
que sobreexpresan el receptor HER2 y células T humanas normales, así
como desencadenar la actividad lítica de linfocitos citotóxicos
humanos contra dianas de tumores de mama humanos.
Se han descrito también varias técnicas para
fabricar y aislar fragmentos de anticuerpos biespecíficos
directamente de cultivos de células recombinantes. Por ejemplo, se
han producido anticuerpos biespecíficos utilizando cremalleras de
leucina. Kostelny et al., J. Immunol. 148(5):
1547-1553 (1992). Los péptidos cremallera de leucina
de las proteínas Fos y Jun se unieron a las partes de Fab’ de dos
anticuerpos diferentes mediante fusión génica. Los homodímeros del
anticuerpo se redujeron en la región flexible para formar monómeros
y, a continuación, se reoxidaron para formar los heterodímeros del
anticuerpo. Este procedimiento también se puede utilizar para la
producción de homodímeros de anticuerpo. La tecnología de
"diabody" descrita por Hollinger et al., Proc. Natl.
Acad. Sci. USA 90: 6444-6448 (1993) ha
proporcionado un mecanismo alternativo para fabricar fragmentos de
anticuerpos biespecíficos. Los fragmentos comprenden un dominio
variable de cadena pesada (V_{H}) conectado a un dominio variable
de cadena ligera (V_{L}) mediante un enlazador que es demasiado
corto para permitir el emparejamiento entre los dos dominios en la
misma cadena. Por consiguiente, los dominios V_{H} y V_{L} de
un fragmento se fuerzan a emparejarse con los dominios V_{L} y
V_{H} complementarios de otro fragmento, formando así dos sitios
de unión a antígeno. También se ha descrito otra estrategia para
fabricar fragmentos de anticuerpos biespecíficos mediante la
utilización de dímeros de Fv de cadena única (sFv). Véase Gruber
et al., J. Immunol. 152:5368 (1994).
Se consideran los anticuerpos con más de dos
valencias. Por ejemplo, se pueden preparar anticuerpos
triespecíficos. Tutt et al., J. Immunol. 147:60
(1991).
Las técnicas para generar anticuerpos se han
descrito anteriormente. Se seleccionan anticuerpos que tienen las
características descritas en la presente invención.
Para seleccionar anticuerpos que reducen la
formación inducida por HRG del complejo de proteínas
ErbB2-ErbB3, las células que expresan ambos
receptores (por ejemplo, células Caov3) se pueden preincubar con
tampón (control) o anticuerpo, a continuación se tratan con HRG o el
tampón control. A continuación, las células se lisan y los lisados
crudos se pueden centrifugar para eliminar el material insoluble.
Los sobrenadantes se pueden incubar con un anticuerpo específico
para ErbB2 acoplado covalentemente a una fase sólida. Tras el
lavado, los inmunoprecipitados se pueden separar mediante
SDS-PAGE. A continuación las transferencias Western
de los geles se sondan con anticuerpo anti-ErbB3.
Tras la visualización, los puntos de transferencia se pueden poner
en tiras y resondar con un anticuerpo anti-ErbB2. La
densitometría de rastreo de reflectancia del gel se puede realizar
con el fin de cuantificar el efecto del anticuerpo en cuestión en la
formación inducida por HRG del complejo. Se pueden seleccionar
anticuerpos que reducen la formación del complejo
ErbB2-ErbB3 con relación al control (células no
tratadas). Véase el Ejemplo posterior.
Para seleccionar los anticuerpos que reducen la
activación de ErbB2 inducida por HRG en una célula que expresa los
receptores ErbB2 y ErbB3, las células se pueden preincubar con
tampón (control) o anticuerpo, a continuación se tratan con HRG o el
tampón control. A continuación, las células se lisan y los lisados
crudos se pueden centrifugar para eliminar el material insoluble. La
activación de ErbB2 se puede determinar mediante transferencia
Western seguido por el sondeo con un anticuerpo
anti-fosfotirosina tal y como se describe en el
Ejemplo posterior. La activación de ErbB2 se puede cuantificar
mediante densitometría de rastreo de reflectancia del gel, por
ejemplo. Alternativamente, el ensayo de la activación del receptor
de quinasa en WO 95/14930 y Sadick et al., Analytical
Biochemistry, 235: 207-214 (1996) se puede
utilizar para determinar la activación de ErbB2.
El efecto del anticuerpo en la unión de HRG a
ErbB3 se puede determinar mediante la incubación de células que
expresan este receptor (por ejemplo, células 4E9H3 transfectadas
para expresar ErbB3) con HRG radiomarcada (por ejemplo, el dominio
de tipo EGF de la misma), en ausencia (control) o presencia del
anticuerpo anti-ErbB3, tal y como se describe en el
Ejemplo posterior, por ejemplo. Los anticuerpos que aumentan la
afinidad de unión de la HRG por el receptor ErbB3 se pueden
seleccionar para un desarrollo posterior. Cuando el anticuerpo de
elección es el que bloquea la unión de HRG a ErbB3, se pueden
identificar los anticuerpos que así lo hacen en el ensayo.
Para cribar los anticuerpos que se unen al
epítopo en ErbB3 unidos mediante un anticuerpo de interés (por
ejemplo, los que bloquean la unión del anticuerpo
3-8BS a ErbB3), se puede realizar un ensayo de
bloqueo cruzado de rutina, tal como el descrito en Antibodies. A
Laboratory Manual. Cold Spring Harbor Laboratory. Ed Harlow y
David Lane (1998).
Se puede desear modificar el anticuerpo de la
presente invención con respecto a la función efectora a efectos de
aumentar la efectividad del anticuerpo en el tratamiento del cáncer,
por ejemplo. Por ejemplo, el residuo o residuos de cisteína se
pueden introducir en la región Fc, permitiendo así la formación en
esta región de enlaces disulfuro entre cadenas. El anticuerpo
homodimérico así generado puede mejorar la capacidad de
internalización y/o aumentar la eliminación de células mediada por
el complemento y la citotoxicidad celular dependiente del
anticuerpo (ADCC). Véase Caron et al., J. Exp Med.
176:1191-1195 (1992) y Shopes, B. J. Immunol.
148: 2918-2922 (1992). Los anticuerpos homodiméricos
con una mayor actividad antitumoral también se pueden preparar
utilizando reticuladores heterobifuncionales tal y como se ha
descrito en Wolff et al., Cancer Research 53:
2560-2565 (1993). Alternativamente, se puede diseñar
un anticuerpo que tenga regiones Fc duales y de este modo puede
aumentar la lisis por complemento y las capacidades de ADCC. Véase
Stevenson et al., Anti-Cancer Drug
Design 3: 219-230
(1989).
(1989).
Se prevén inmunoconjugados que comprenden el
anticuerpo de la presente invención conjugado a un agente
citotóxico, tal como un agente quimioterapéutico, toxina (por
ejemplo, una toxina enzimáticamente activa de origen bacteriano,
fúngico, vegetal o animal, o fragmentos de la misma) o un isótopo
radioactivo (es decir, un radioconjugado).
Los agentes quimioterapéuticos útiles para la
generación de dichos inmunoconjugados se ha descrito anteriormente.
Entre las toxinas enzimáticamente activas y fragmentos de las mismas
que se pueden utilizar se incluyen la cadena A de difteria,
fragmentos activos no enlazantes de toxina de difteria, cadena A de
exotoxina (de Pseudomonas aeruginosa), cadena A de ricina,
cadena A de abrina, cadena A de modeccin,
alfa-sarcina, proteínas de Aleurites fordii,
proteínas de diantina, proteínas de Phytolaca americana
(PAPI, PAPII, y PAPS), inhibidor de momordica charantia, curcina,
crotina, inhibidor de sapaonaria officinalis, gelonina, mitogelina,
restrictocina, fenomicina, enomicina, y los tricotecenos. Hay un
conjunto de radionucleidos disponibles para la producción de
anticuerpos anti-ErbB3 radioconjugados. Entre los
ejemplos se incluyen ^{212}Bi, ^{131}I, ^{131}In, ^{90}Y y
^{186}Re.
Los conjugados del anticuerpo y el agente
citotóxico se fabrican utilizando un conjunto de agentes
bifuncionales acopladores de proteínas, tales como
N-succinimidil-3-(2-piridilditiol)propionato
(SPDP), iminotiolano (IT), derivados bifuncionales de imidoésteres
(tales como dimetil adipimidato HCl), ésteres activos (tales como
disuccinimidil suberato), aldehídos (tales como glutaraldehído),
compuestos bis-azido (tales como
bis(p-azidobenzoil)hexanodiamina),
derivados de bis-diazonio (tales como
bis-(p-diazoniobenzoil)-etilendiamina),
diisocianatos (tales como toluen 2,6-diisocianato) y
compuestos de flúor bis-activos (tales como
1,5-difluoro-2,4-dinitrobenceno).
Por ejemplo, una inmunotoxina de ricina se puede preparar tal y como
se describe en Vitetta et al., Science, 238: 1098
(1987). El ácido
1-isotiocianatobencil-3-metildietilen
triaminopentaacético (MX-DTPA) marcado con carbono
14 es un ejemplo de agente quelante para la conjugación de
radionucleidos al anticuerpo. Véase WO94/11026.
El anticuerpo se puede conjugar a un
"receptor" (tal como estreptavidina) para la utilización en el
premarcado de tumores en los que el conjugado
anticuerpo-receptor se administra al paciente,
seguido de la eliminación de conjugado no enlazado de la circulación
utilizando un agente clarificador y, a continuación, la
administración de un "ligando" (por ejemplo, avidina) que se
conjuga a un agente citotóxico (por ejemplo, un radionucleido).
Los anticuerpos anti-ErbB3
descritos en la presente invención también se pueden formular como
inmunoliposomas. Los liposomas que contienen el anticuerpo se
preparan mediante procedimientos conocidos en la técnica, tales como
los descritos en Epstein et al., Proc. Natl. Acad. Sci.
USA, 82: 3688 (1985); Hwang et al., Proc. Natl. Acad.
Sci USA, 77: 4030 (1980); y las Patentes de Estados Unidos Nos.
4.485.045 y 4.544.545. Los liposomas con un mayor tiempo de
circulación se describen en la Patente de Estados Unidos No.
5.013.556.
Se pueden generar liposomas particularmente
útiles mediante el procedimiento de evaporación de fase inversa con
una composición lipídica que comprende fosfatidilcolina, colesterol,
y fosfatidiletanolamina derivada de PEG (PEG-PE).
Los liposomas se extruyen a través de filtros de tamaño de poro
definido para obtener liposomas con el diámetro deseado. Los
fragmentos Fab' del anticuerpo de la presente invención se pueden
conjugar a los liposomas tal y como se describen en Martin et
al., J. Biol. Chem., 257: 286-288 (1982)
mediante una reacción de intercambio de enlaces disulfuro.
Opcionalmente, el liposoma contiene un agente quimioterapéutico (tal
como Doxorubicina). Véase Gabizon et al., J. National
Cancer Inst., 81(19): 1484 (1989).
El anticuerpo de la presente invención también
se puede utilizar en ADEPT mediante la conjugación del anticuerpo a
un enzima activador de profármaco que convierte un profármaco (por
ejemplo, un agente quimioterapéutico peptidilo, véase WO 81/01145) a
un fármaco anticancerígeno activo. Véase, por ejemplo, WO 88/07378 y
la Patente de Estados Unidos No. 4.975.278.
El componente enzimático del inmunoconjugado
útil para ADEPT incluye cualquier enzima capaz de actuar en un
profármaco de manera que lo convierte en su forma citotóxica más
activa.
Entre los enzimas que son útiles en el
procedimiento se incluyen, pero no se limitan a, fosfatasa alcalina
útil para convertir profármacos que contienen fosfato en fármacos
libres; arilsulfatasa útil para convertir profármacos que contienen
sulfato en fármacos libres; citosina desaminasa útil para convertir
5-fluorocitosina no tóxica en el fármaco
anticancerígeno, 5-fluoroacilo; proteasas, tales
como serratia proteasa, termolisina, subtilisina, carboxipeptidasas
y catepsinas (tales como catepsinas B y L), que son útiles para
convertir profármacos que contienen péptidos en fármacos libres;
D-alanilcarboxipeptidasas, útiles para convertir
profármacos que contienen sustituyentes de
D-aminoácidos; enzimas que que dividen los
carbohidratos, tales como \beta-galactosidasa y
neuraminidasa útiles para convertir profármacos glicosilados en
fármacos libres; \beta-lactamasa útil para
convertir profármacos derivatizados con
\beta-lactamas en fármacos libres; y penicilin
amidasas, tales como penicilin V amidasa o penicilin G amidasa,
útiles para convertir fármacos derivatizados en sus nitrógenos amina
con grupos fenoxiacetilo o fenilacetilo, respectivamente, en
fármacos libres. Alternativamente, los anticuerpos con actividad
enzimática, también conocidos en la técnica como "abzimas" se
puede utilizar para convertir los profármacos en fármacos activos
libres (véase, por ejemplo, Massey Nature 328:
457-458 (1987)). Los conjugados
anticuerpo-abzima se pueden preparar tal y como se
ha descrito en la presente invención para la liberación del abisma a
una población de células tumorales.
Las enzimas se pueden unir covalentemente a los
anticuerpos anti-ErbB3 mediante técnicas bien
conocidas en la técnica, tal como la utilización de los reactivos de
reticulación heterobifuncionales descritos anteriormente.
Alternativamente, las proteínas de fusión que comprenden por lo
menos la región de unión a antígeno de un anticuerpo de la presente
invención unida a por lo menos una parte funcionalmente activa de
una enzima se pueden construir utilizando técnicas de ADN
recombinante bien conocidas en la técnica (véase, por ejemplo,
Neuberger et al., Nature 312: 604-608
(1984)).
En ciertas realizaciones de la presente
invención, puede ser deseable utilizar un fragmento de anticuerpo,
en lugar de un anticuerpo intacto, para aumentar la penetración en
el tumor, por ejemplo. En este caso, puede ser deseable modificar el
fragmento de anticuerpo con el fin de aumentar su vida media en
suero. Esto se puede conseguir, por ejemplo, mediante la
incorporación de una un epítopo de unión de receptor salvaje al
anticuerpo, fragmento (por ejemplo, mediante la mutación de la
región apropiada en el fragmento de anticuerpo o mediante la
incorporación del epítopo en un péptido etiqueta que a continuación
se fusiona al fragmento de anticuerpo en el extremo o en el centro,
por ejemplo, mediante síntesis de ADN o péptidos).
Un procedimiento sistemático para preparar dicha
variante de anticuerpo que tiene una vida media in vivo
comprende varias etapas. La primera implica la identificación de la
secuencia y la conformación de un epítopo de unión de receptor
salvaje de una región Fc de una molécula de IgG. Una vez se
identifica este epítopo, la secuencia del anticuerpo de interés se
modifica para incluir la secuencia y la conformación del epítopo de
unión identificado. Después de mutar la secuencia, se estudia la
variante del anticuerpo para ver si tiene una mayor vida media in
vivo que la del anticuerpo original. Si la variante del
anticuerpo no tiene una mayor vida media in vivo tras el
estudio, su secuencia se altera adicionalmente para incluir la
secuencia y la conformación del epítopo de unión identificado. Se
estudia el anticuerpo alterado para una vida media in vivo
más larga, y se continúa este proceso hasta que se obtiene una
molécula que muestra una vida media in vivo más larga.
El epítopo de unión de receptor salvaje
incorporado de esta manera al anticuerpo de interés es cualquiera de
los epítopos tal y como se han definido anteriormente, y su
naturaleza dependerá, por ejemplo, del tipo de anticuerpo que se
modifica. La transferencia se realiza de manera que el anticuerpo de
interés aún posee las actividades biológicas descritas en la
presente invención.
El epítopo generalmente constituye una región en
la que cualquier residuo o residuos de aminoácidos de uno o dos
bucles de un dominio Fc se transfieren a una posición análoga del
fragmento de anticuerpo. Incluso más preferiblemente, se transfieren
tres o más residuos de uno o más bucles del dominio Fc. Aún más
preferiblemente, el epítopo se extrae del dominio CH2 de la región
Fc (por ejemplo, de una IgG) y se transfiere a la región CH1, CH3 o
V_{H}, o más de una de dichas regiones del anticuerpo.
Alternativamente, el epítopo se extrae del dominio CH2 de la región
Fc y se transfiere a la región C_{L} o la región V_{L}, o ambas,
del fragmento de anticuerpo.
El epítopo de unión de receptor salvaje
comprende preferiblemente la secuencia (5' a 3'): PKNSSMISNTP (SEC
ID No: 1), y opcionalmente comprende además una secuencia
seleccionada del grupo que consiste en HQSLGTQ (SEC ID No: 2),
HQNLSDGK (SEC ID No: 3), HQNISDGK (SEC ID No: 4) o VISSHLGQ (SEC ID
No: 5), particularmente cuando el fragmento de anticuerpo es Fab o
F(ab')_{2} o el epítopo de unión de receptor salvaje es un
polipéptido que contiene la secuencia(s) (5' a 3'): HQNLSDGK
(SEC ID No: 3), HQNISDGK (SEC ID No: 4) o VISSHLGQ (SEC ID No: 5), y
la secuencia PKNSSMISNTP (SEC ID No: 1).
Se prevén el ácido nucleico aislado que codifica
un anticuerpo tal y como se describe en la presente invención,
vectores y células huésped que comprende el ácido nucleico; y
técnicas recombinantes para la producción del anti-
cuerpo.
cuerpo.
Para la producción recombinante del anticuerpo,
el ácido nucleico que lo codifica se aísla y se inserta en un vector
replicable para la clonación posterior (amplificación del ADN) o
para la expresión. El ADN que codifica el anticuerpo monoclonal se
aísla fácilmente y se secuencia utilizando procedimientos
convencionales (por ejemplo, utilizando sondas de oligonucleótidos
que son capaces de unirse específicamente a genes que codifican las
cadenas pesada y ligera del anticuerpo). Muchos vectores son útiles.
Entre los componentes del vector se incluyen generalmente, pero no
se limitan a, uno o más de los siguientes: una secuencia señal, un
origen de replicación, uno o más genes marcadores, un elemento
potenciador, un promotor, y una secuencia de terminación de
transcripción.
El anticuerpo anti-ErbB3 de la
presente invención se puede producir recombinantemente no sólo
directamente, sino también como un polipéptido de fusión con un
polipéptido heterólogo, que es preferiblemente una secuencia señal u
otro polipéptido que tiene un sitio de división específica en el
extremo N-terminal de la proteína o polipéptido
maduros. La secuencia señal heteróloga seleccionada preferiblemente
es la que es reconocida y procesada (es decir, dividida por una
señal peptidasa) por la célula huésped. Para células huésped
procariotas que no reconocen y procesan la secuencia señal de
anticuerpo anti-ErbB3 nativo, la secuencia señal se
sustituye por una secuencia señal procariota seleccionada, por
ejemplo, del grupo de la alcalina fosfatasa, penicilinasa, Ipp, o
líderes de enterotoxina II estables térmicamente. Para la secreción
en levaduras, se dispone de la secuencia señal nativa se puede
sustituir por, por ejemplo, líder de la levadura invertasa, líder de
factor \alpha (incluyendo líderes de factor \alpha de
Saccharomyces y Kluyveromyces) o líder de fosfatasa
ácida, líder de glucoamilasa de C albicans o la señal
descrita en WO 90/13646. En la expresión de células de mamíferos,
las secuencias señal de mamíferos, así como los líderes secretores
víricos, por ejemplo, la señal gG de herpes simplex.
El ADN para dicha región de precursor está
ligada en el marco de lectura a ADN que codifica el anticuerpo
anti-ErbB3.
Los vectores de expresión y clonación contienen
una secuencia de ácidos nucleicos que permite que el vector se
replique en una o más células huésped seleccionadas. Generalmente,
en los vectores de clonación, esta secuencia es la que permite que
el vector a replicar independientemente del ADN cromosómico del
huésped, e incluye orígenes de replicación o secuencias ARS. Dichas
secuencias son bien conocidas para un conjunto de bacterias,
levaduras y virus. El origen de la replicación del plásmido pBR322
es adecuado para la mayoría de bacterias
Gram-negativas, el origen del plásmido 2\mu es
adecuado para las levaduras, y varios orígenes víricos (SV40,
polioma, adenovirus, VSV o BPV) son útiles para vectores de
clonación en células de mamíferos. Generalmente, el origen del
componente de replicación no es necesario para vectores de expresión
de mamíferos (el origen de SV40 se puede utilizar habitualmente sólo
porque contiene el promotor temprano).
Los vectores de expresión y clonación puede
contener un gen de selección, también denominado un marcador
seleccionable. Los genes de selección habituales codifican proteínas
que (a) confieren resistencia a antibióticos u otras toxinas, por
ejemplo, ampicilina, neomicina, metotrexato o tetraciclina, (b)
deficiencias autotróficas de complemento, o (c) nutrientes de
suministro críticos no disponibles del medio complejo, por ejemplo,
el gen que codifica D-alanina racemasa para
Bacilli.
Un ejemplo de un esquema de selección utiliza un
fármaco para detener el crecimiento de una célula huésped. Las
células que se transforman de forma satisfactoria con un gen
heterólogo producen una proteína que confiere resistencia al fármaco
y sobreviven de esta manera al régimen de selección. Algunos
ejemplos de dicha selección dominante utilizan los fármacos
neomicina, ácido micofenólico e higromicina.
Otro ejemplo de marcadores seleccionables
adecuados para células de mamíferos son los que permiten la
identificación de células competentes para captar el ácido nucleico
del anticuerpo anti-ErbB3, tal como DHFR, timidina
quinasa, metalotioneina-I y -II, preferiblemente
genes de metalotioneina de primate, adenosina desaminasa, ornitina
descarboxilasa, etc.
Por ejemplo, las células transformadas con el
gen de selección DHFR se identificaron por primera vez mediante el
cultivo de todos los transformantes en un medio de cultivo que
contiene metotrexato (Mtx), un antagonista competitivo de DHFR. Una
célula huésped apropiada cuando la DHFR de tipo salvaje se utiliza
es la línea celular de ovario de hámster chino (CHO) deficiente en
la actividad de DHFR.
Alternativamente, las células huésped
(particularmente huéspedes de tipo salvaje que contienen DHFR
endógeno) transformadas o cotransformadas con secuencias de ADN que
codifican anticuerpo anti-ErbB3, proteína DHFR de
tipo salvaje, y se pueden seleccionar otros marcadores
seleccionables, tales como aminoglicósido
3'-fosfotransferasa (APH), mediante el crecimiento
celular en medio que contiene un agente de selección para el
marcador seleccionable, tal como un antibiótico aminoglicosídico,
por ejemplo, kanamicina, neomicina, o G418. Véase Patente de Estados
Unidos No. 4.965.199.
Un gen de selección adecuado para su utilización
en levaduras es el gen trp1 presente en el plásmido de
levaduras YRp7 (Stinchcomb et al. Nature, 282:39
(1979)). El gen trp1 proporciona un marcador de selección
para una cepa mutante de levadura que carece de la capacidad de
crecer en triptófano, por ejemplo, ATCC No. 44076 o
PEP4-1. Jones, Genetics, 85:12 (1977). La
presencia de la lesión en trp1 en el genoma de células
huésped de levadura proporciona a continuación un medio eficaz para
la detección de la transformación mediante el crecimiento en
ausencia de triptófano. De forma similar, las cepas de levadura
deficientes de Leu-2 (ATCC 20.622 ó 38.626)
se complementan mediante plásmidos conocidos que llevan el gen
Leu2.
Además, se pueden utilizar los vectores
derivados del plásmido circular de 1,6 \mum pKD1 para la
transformación de levaduras Kluyveromyces. Alternativamente,
se describió un sistema de expresión para una producción a gran
escala de quimosina recombinante de ternera para K. lactis.
Van der Berg, Biol. Technology, 8:135 (1990). También se han
descrito vectores de expresión multicopia estables para la secreción
de albúminas de suero humanos recombinante maduras mediante cepas
industriales de Kluyveromyces. Fleer et al., Biol.
Technology, 9:968-975 (1991).
Los vectores de expresión y clonación contienen
habitualmente un promotor que es reconocido por el organismo huésped
y está unido operativamente al ácido nucleico del anticuerpo
anti-ErbB3. Entre los promotores adecuados para la
utilización con huéspedes procariotas se incluyen el promotor
phoA, sistemas de promotores
\beta-lactamasa y lactosa, fosfatasa alcalina, un
sistema promotor de triptófano (trp), y promotores híbridos, tales
como el promotor tac. Sin embargo, son adecuados otros promotores
bacterianos conocidos. Los promotores para la utilización en
sistemas bacterianos también contendrán una secuencia
Shine-Dalgarno (S.D.) unida operativamente al ADN
que codifica el anticuerpo anti-ErbB3.
Las secuencias de promotor son conocidas para
eucariotas. Prácticamente, todos los genes eucariotas tienen una
región rica en AT localizada aproximadamente 25 a 30 bases en
dirección 5' desde el sitio en el que se inicia la transcripción.
Otra secuencia encontrada de 70 a 80 bases en dirección 5' desde el
inicio de la transcripción de muchos genes es una región CNCAAT en
la que N puede ser cualquier nucleótido. En el extremo 3’ de la
mayoría de genes eucariotas es una secuencia AATAAA que pueden ser
la señal para la adición de la cola poli A al extremo 3' de la
secuencia codificante. Todas estas secuencias se insertan de manera
adecuada en vectores de expresión
eucariotas.
eucariotas.
Entre los ejemplos de secuencias promotoras
adecuadas para la utilización en huéspedes de levadura se incluyen
los promotores para 3-fosfoglicerato quinasa u otros
enzimas glicolíticos, tales como enolasa,
gliceraldehído-3-fosfato
deshidrogenasa, hexoquinasa, piruvato descarboxilasa,
fosfofructoquinasa,
glucosa-6-fosfato isomerasa,
3-fosfoglicerato mutasa, piruvato quinasa,
triosefosfato isomerasa, fosfoglucosa isomerasa, y glucoquinasa.
Otros promotores de levadura, que son promotores
inducibles que tienen la ventaja adicional de transcripción
controlada por las condiciones de crecimiento, son las regiones de
promotor para la alcohol deshidrogenada 2, isocitocromo C, fosfatasa
ácida, enzimas degradativos asociados con el metabolismo del
nitrógeno, metalotioneina,
gliceraldehído-3-fosfato
deshidrogenada, y enzimas responsables de la utilización de maltosa
y galactosa. Los vectores y promotores adecuados para la utilización
en la expresión en levaduras se describen adicionalmente en EP
73.657. Los potenciadores de la levadura también se utilizan de
forma ventajosa con promotores de levadura.
La transcripción de anticuerpo
anti-ErbB3 de vectores en células huésped de
mamíferos se controla, por ejemplo, mediante promotores obtenidos de
los genomas de virus, tales como el virus del polioma, virus de la
viruela aviar, adenovirus (tal como Adenovirus 2), virus de papiloma
bovino, virus de sarcoma aviario, citomegalovirus, un retrovirus,
virus de la hepatitis B y más preferiblemente Virus del Simio 40
(SV40), de promotores de mamífero heterólogos, por ejemplo, el
promotor de actina o un promotor de inmunoglobulina, de promotores
de choque térmico, siempre y cuando dichos promotores sean
compatibles con los sistemas de células huésped.
Los promotores tempranos y tardíos del virus
Sv40 se obtienen convenientemente como un fragmento de restricción
SV40 que también contiene el origen de replicación vírico SV40. El
promotor temprano inmediato del citomegalovirus humano se obtiene
convenientemente como un fragmento de restricción HindIII E. En la
Patente de Estados Unidos No. 4.419.446 se describe un sistema para
expresar ADN en huéspedes de mamíferos que utiliza el virus de
papiloma bovino como vector se describe. En la Patente de Estados
Unidos No. 4.601.978 se describe una modificación de este sistema.
Véase también Reyes et al., Nature, 297:
598-601 (1982) en la expresión de ADNc de
\beta-interferón humano en células de ratón bajo
el control de un promotor de timidina quinasa del virus de herpes
simplex. Alternativamente, la repetición terminal larga del virus de
sarcoma de rous se puede utilizar como promotor.
La transcripción de un ADN que codifica el
anticuerpo anti-ErbB3 de la presente invención por
eucariotas superiores se incrementa frecuentemente mediante la
inserción de una secuencia potenciadora en el vector. Actualmente,
muchas secuencias potenciadoras de genes de mamíferos (globina,
elastasa, albúmina, \alpha-fetoproteína e
insulina). Habitualmente, sin embargo, se utilizará un potenciador
de un virus de células eucariotas. Entre los ejemplos se incluyen el
potenciador de SV40 en la cara tardía del origen de replicación (pb
100-270), el potenciador del promotor temprano de
citomegalovirus, el potenciador de polioma en la cara tardía del
origen de replicación, y potenciadores de adenovirus. Véase también
Yaniv. Nature 297:17-18 (1982) en elementos
de potenciación para la activación de promotores eucariotas. El
potenciador se puede empalmar en el vector en la posición 5' ó 3' a
la secuencia codificante del anticuerpo anti-ErbB3,
pero se localiza preferiblemente en un sitio 5' del promotor.
Los vectores de expresión utilizados en las
células huésped eucariotas (levadura, hongo, insecto, planta,
animal, humano o células nucleadas de otros organismos
multicelulares) también contendrán la secuencias necesarias para la
terminación de la transcripción y para estabilizar el ARNm. Dichas
secuencias están disponibles habitualmente desde 5' y alguna vez
desde 3', regiones no traducidas de ADNs o ADNcs eucariotas o
víricas. Estas regiones contienen segmentos de nucleótidos
transcritos como fragmentos poliadenilados en la parte no traducida
del ARNm que codifica el anticuerpo anti-ErbB3. Un
componente de terminación de la transcripción útil es la región de
poliadenilación de la hormona de crecimiento bovino. Véase WO
94/11026 y el vector de expresión descrito en la misma.
Entre las células huésped adecuadas para la
clonación o expresión del ADN en los vectores de la presente
invención se incluyen células procariotas, de levadura, o eucariotas
superiores descritas anteriormente. Entre las procariotas adecuadas
para este objetivo se incluyen eubacterias, tales como organismos
Gram-negativo o Gram-positivo, por
ejemplo, Enterobacteriaceae, tal como Escherichia, por
ejemplo, E. coli están disponibles públicamente, tales como
la cepa de E. coli Ka12 MM294 (ATCC 31.446); E. coli,
Enterobacter, Erwinia, Klebsiella, Proteus, Salmonella, por
ejemplo, Salmonella typhimurium, Serratia, por
ejemplo, Serratia marcescans, y Shigella, así como
Bacilli, tal como B. subtilis y B.
licheniformis (por ejemplo, B. licheniformis 41P descrito
en DD 266.710 publicada el 12 de abril de 1989), Pseudomonas,
tal como P. aeruginosa, y Streptomyces. Un huésped de
clonación E. coli preferido es E. coli 294 (ATCC
31.446), aunque otras cepas tales como E. coli B. E.
coli X1776 (ATCC 31.537) y E. coli W3110 (ATCC 27.325)
son adecuados. Estos ejemplso son ilustrativos en lugar de
limitantes.
Además de los procariotas, los microbios
eucariotas, tales como hongos o levaduras filamentosos, son
huéspedes de clonación o expresión adecuados para vectores que
codifican anticuerpo anti-ErbB3. El Saccharomyces
cerevisiae, o la levadura habitual del panadero, es el más
habitualmente utilizado entre los microorganismos de huéspedes
eucariotas inferiores. Sin embargo, un grupo de otros géneros,
especies y cepas están disponibles habitualmente y son útiles en la
presente invención, tales como Schizosaccharomyces pombe;
huéspedes de Kluyveromyces, tales como, por ejemplo, K.
lactis, K. fragilis (ATCC 12.424), K. bulgaricus (ATCC
16.045), K. wickeramii (ATCC 24.178), K. waltii (ATCC
56.500), K. drosophilarum (ATCC 36.906), K.
thermotolerans y K. marxianus; yarrowia (EP
402.226); Pichia pastoris (EP 183.070; Candida;
Trichoderma reesta (EP 244.234); Neurospora crassa;
Schwanmomyces, tales como Schwanniomyces occidentalis;
y hongos filamentosos, tales como, por ejemplo, Neurospora,
Penicillium, Tolypocladium y huéspedes de Aspergillus,
tales como A. nidulans y A. Níger.
Las células huésped adecuadas para la expresión
de anticuerpo anti-ErbB3 glicosilado se derivan de
organismos multicelulares. Entre los ejemplos de células de
invertebrados se incluyen células vegetales y de insectos. Se han
modificado numerosas cepas baculovíricas y variantes y las
correspondientes células huéspedes de insecto permisivas de
huéspedes, tales como Spodoptera frugiperda (oruga), Aedes
aegypti (mosquito), Aedes albopictus (mosquito),
Droshophila melanogaster (mosca de la fruta), y Bombyx
mori. Una serie de cepas víricas para la transfección están
públicamente disponibles, por ejemplo, la variante
L-1 de Autographa californica NPV y la cepa
Bm-5 de Bombyx mori NPV, y dichos virus se
pueden utilizar como el virus del presente documento según la
presente invención, particularmente para la transfección de células
de Spodoptera frugiperda.
\newpage
Los cultivos de células vegetales de algodón,
maíz, patata, soja, petunia, tomate y tabaco también se pueden
utilizar como huéspedes.
Sin embargo, el mayor interés ha estado en las
células de vertebrados, y la propagación de células de vertebrados
en un cultivo (cultivo de tejidos) se ha convertido en un
procedimiento rutinario. Entre los ejemplos de líneas de celulares
de huéspedes mamíferos están la línea CV1 de riñón de mono
transformada por SV40 (COS-7, ATCC CRL 1651); línea
de riñón de embrión humano (células 293 ó 293 subclonadas para el
crecimiento en cultivo de suspensión, Graham et al., J.
Gen Virol., 36:59 (1977)); células de riñón de hámster bebé BHK,
aTCC CCL 10; células de ovario de hámster chino/-DHFR (CHO. Urlaub
et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 77:4216 (1980));
células de sertoli de ratón (TM4, Mather, Biol. Reprod.,
23:243-251 (1980)); células de riñón de mono (CV1
ATCC CCL 70); células de riñón de mono verde africano
(VERO-76, ATCC CRL-1587); células de
carcinoma cervical humano (HELA, ATCC CCL2); células de riñón canino
(MDCK, ATCC CCL34); células de hígado de rata búfalo (BRL 3A, ATCC
CRL 1442); células de pulmón humano (W138, ATCC CCL 75); células de
hígado humano (Hep G2, HB 8065); tumor mamario de ratón (MMT 060562,
ATCC CCL51); células TRI (Mather et al., Annals N.Y. Acad
Sci. 383: 44-68 (1982)); células MRC 5; células
FS4 y una línea de hepatoma humano (Hep G2).
Las células huésped se transforman con los
vectores de expresión o clonación descritos anteriormente para la
producción del anticuerpo anti-ErbB3 y se cultivan
en un medio con nutrientes habituales según sea apropiado para
inducir promotores, seleccionar transformantes, i amplificar los
genes que codifican las secuencias deseadas.
Las células huésped utilizadas para producir el
anticuerpo anti-ErbB3 de la presente invención se
puede cultivar en una serie de medios. Los medios comercialmente
disponibles, tales como F10 de Ham (Sigma), Medio Mínimo Esencial
(MEM, Sigma), RPMI-1640 (Sigma), y Medio MEM
modificado por Dulbecco (DMEM, Sigma) son adecuados para el cultivo
de células huésped. Además, cualquiera de los medios descritos en
Ham et al., Meth. Enz. 58: 44 (1979), Barnes et
al., Anal. Biochem. 102: 255 (1980), Patente de Estados
Unidos Nos. 4.767.404; 4.657.866; 4.927.762; 4.560.655 ó 5.122.469;
WO 90/03430; WO 87/00195 o la Patente de Estados Unidos Re. 30.985
se pueden utilizar como medios de cultivo para las células huésped.
Cualquiera de estos medios se puede suplementar según sea necesario
con hormonas y/u otros factores de crecimiento (tales como insulina,
transferrina, o factor de crecimiento epidérmico), sales (tales como
cloruro sódico, calcio, magnesio y fosfato), soluciones tampón
(tales como HEPES), nucleótidos (tales como adenosina y timidina),
antibióticos (tales como el fármaco GENTAMYCIN^{TM}), elementos
traza (definidos como compuestos inorgánicos presentes habitualmente
en concentraciones finales a nivel micromolar), y glucosa o una
fuente de energía equivalente. Cualquier otro suplemento necesario
se puede también incluir en concentraciones apropiadas que serían
conocidas por los expertos en la materia. Las condiciones de
cultivo, tales como la temperatura, pH y similares, son las
utilizadas previamente con la célula huésped seleccionada para la
expresión y serán obvias para un técnico habitual.
Cuando se utilizan técnicas recombinantes, el
anticuerpo se puede producir intracelularmente, en el espacio
periplásmico, o directamente secretado en el medio. Si el anticuerpo
se produce intracelularmente, como primera etapa, la debris
particulada, células huésped o fragmentos lisados, se elimina, por
ejemplo, mediante centrifugación o ultrafiltración. Carter et
al., Biol Technology 10:163-167 (1992)
describen un procedimiento para aislar anticuerpos que se secretan
al espacio periplásmico de E. coli. Brevemente, se descongela
la pasta celular en presencia de acetato sódico (pH 3,5), EDTA y
fluoruro de fenilmetilsulfonilo (PMSF) durante aproximadamente 30
minutos. La debris celular se puede eliminar mediante
centrifugación. Cuando el anticuerpo se secreta al medio, los
sobrenadantes de dichos sistemas de expresión se concentran
generalmente en primer lugar utilizando un filtro de concentración
de proteínas disponible comercialmente, por ejemplo, una unidad de
filtración Amicon o Millipore Pellicon. Se puede incluir un
inhibidor de proteasa tal como PMSF en cualquiera de las etapas
anteriores para inhibir la proteolisis y se pueden incluir
antibióticos para evitar el crecimiento de contaminantes
accidentales.
La composición de anticuerpos preparados a
partir de células se puede purificar utilizando, por ejemplo,
cromatografía de hidroxilapatito, electroforesis en gel, diálisis, y
cromatografía de afinidad, siendo ésta última la técnica de
purificación preferida. La idoneidad de la proteína A como ligando
de afinidad depende de la especie y el isótopo de cualquier dominio
Fc de inmunoglobulina que está presente en el anticuerpo. La
proteína A se puede utilizar para purificar anticuerpos que están
basados en cadenas pesadas humanas \gamma1, \gamma2 o \gamma4
(Lindmark et al., J. Immunol Meth
62:1-13 (1983)). La proteína G se recomienda para
todos los isótopos de ratón y para \gamma3 humanas (Guss et
al., EMBO J. 5:1567-1575 (1986)). La
matriz a la que se une el ligando de afinidad es frecuentemente
agarosa, pero se disponen de otras matrices. Las matrices
mecánicamente estables, tales como el vidrio de poro controlado o
poli(estirenodivinil)benceno permite mayores
velocidades de flujo y tiempos de procesado más cortos que los que
se pueden conseguir con agarosa. Cuando el anticuerpo comprende un
dominio C_{H}3, la resina Bakerbond ABX^{TM} (J.T. Baker
Philipsburg, NJ) es útil para la purificación. Otras técnicas para
la purificación de proteínas son el fraccionamiento en una columna
de intercambio iónico, precipitación con etanol. La HPLC de fase
inversa, cromatografía en sílice, cromatografía en
heparina-Sefarosa^{TM}, cromatografía en una
resina de intercambio de anión o catión (tal como una columna de
ácido poliaspártico), cromatoenfocado, SDS-PAGE y
precipitación con sulfato amónico también están disponibles
dependiendo del anticuerpo a recuperar.
Tras cualquier etapa o etapas de purificación
preliminar, la mezcla que comprende el anticuerpo de interés y los
contaminantes se pueden someter a una cromatografía de interacción
hidrofóbica a pH bajo utilizando un tampón de elución a un pH entre
aproximadamente 2,5 y 4,5, preferiblemente a concentraciones de
sales bajas (por ejemplo, sal de aproximadamente
0-0,25 M)
Las formulaciones terapéuticas del anticuerpo se
prepararan para su almacenamiento mediante la mezcla del anticuerpo
que tiene el grado deseado de pureza con portadores, excipientes o
estabilizantes opcionales fisiológicamente aceptables
(Remington's Pharmaceutical Sciences 16ª Edición, Osol, A.
Ed. (1980)), en forma de formulaciones liofilizadas o soluciones
acuosas. Los portadores, excipientes o estabilizantes aceptables son
no tóxicos para los receptores en las dosis y concentraciones
utilizadas, e incluyen tampones, tales como fosfato, citrato y otros
ácidos orgánicos; antioxidantes que incluyen ácido ascórbico y
metionina; conservantes (tales como, cloruro de
octadecildimetilbencil amonio; cloruro de hexametonio; cloruro de
benzalconio, cloruro de benzetonio; fenol, alcohol butílico o
bencílico; alquil parabens, tales como metil o propil paraben;
catecol; resorcinol; ciclohexanol; 3-pentanol; y
m-cresol); polipéptidos de peso molecular bajo
(inferior a aproximadamente 10 residuos); proteínas, tales como
albúmina de suero, gelatina, o inmunoglobulinas; polímeros
hidrofílicos, tales como polivinilpirrolidona; aminoácidos, tales
como glicina, glutamina, asparagina, histidina o lisina;
monosacáridos, disacáridos y otros carbohidratos que incluyen
glucosa, manosa o dextrinas; agentes quelantes, tales como EDTA;
azúcares, tales como sacarosa, manitol, trehalosa o sorbitol;
contrapones formadores de sales, tales como sodio; complejos de
metales (por ejemplo, complejos de Zn-proteína); y/o
tensoactivos no iónicos, tales como Tween^{TM}, Pluronics^{TM} o
polietilenglicol
(PEG).
(PEG).
La formulación de la presente invención también
puede contener más de un compuesto activo según sea necesario para
la indicación concreta a tratar, preferiblemente aquellas con
actividades complementarias que no afectan de forma adversa entre
sí. Por ejemplo, puede ser deseable proporcionar adicionalmente
anticuerpos que se unen a EGFR, ErbB2, ErbB4 o el factor endotelial
vascular (VEGF) en la formulación. Alternativamente, o además, la
composición puede comprender un agente quimioterapéutico o una
citoquina. Dichas moléculas están presentes de forma adecuada
combinadas en cantidades que son eficaces para el objetivo
pretendido.
Los principios activos también pueden estar
contenidos en microcápsulas preparadas, por ejemplo, mediante
técnicas de coacervación o mediante polimerización interfacial, por
ejemplo, microcápsulas de hidroximetilcelulosa o gelatina y
microcápsulas de poli(metilmetacrilato), respectivamente, en
sistemas de liberación de fármacos coloidales (por ejemplo,
liposomas, microesferas de albúmina, microemulsiones, nanopartículas
y nanocápsulas) o en macroemulsiones. Dichas técnicas se describen
en Remington's Pharmaceutical Sciences 16ª Edición, Osol, A.
Ed. (1980).
Las formulaciones a utilizar para la
administración in vivo debe ser estéril. Esto se consigue
fácilmente mediante filtración a través de membranas de filtración
estériles.
Se pueden preparar preparaciones de liberación
controladas. Entre los ejemplos adecuados de preparaciones de
liberación controlada se incluyen matrices semipermeables de
polímeros hidrofóbicos sólidos que contienen el anticuerpo, cuyas
matrices están en forma de artículos conformados, por ejemplo,
películas o microcápsulas. Entre los ejemplos de matrices de
liberación controlada se incluyen poliésteres, hidrogeles (por
ejemplo,
poli(2-hidroxietil-metacrilato)
o poli(vinilalcohol)), poliláctidos (Patente U.S.A. No.
3.773.919), copolímeros de ácido L-glutámico y
\gamma etil-L-glutamato,
etileno-acetato de vinilo no degradables,
copolímeros de ácido lático-ácido glicólico, tales como el Lupron
Depot^{TM} (microesferas inyectables compuestas de copolímero de
ácido láctico-ácido glicólico y acetato de leuprolide) y ácido
poli-D-(-)-3-hidroxibutírico.
Mientras que polímeros, tales como etileno-acetato
de vinilo y ácido láctico-ácido glicólico permiten la liberación de
moléculas durante 100 días, ciertos hidrogeles liberan proteínas
durante periodos más cortos de tiempo. Cuando los anticuerpos
encapsulados permanecen en el cuerpo durante un periodo largo de
tiempo, se desnaturalizan o agregan como resultado de la exposición
a humedad a 37ºC, dando lugar a una pérdida de actividad biológica y
posibles cambios en la inmunogenicidad. Se pueden idear varias
estrategias racionales para la estabilización dependiendo del
mecanismo implicado. Por ejemplo, si el mecanismo de agregación se
descubre que es la formación de enlaces S-S
intermoleculares a través del intercambio de
tio-disulfuros, se puede conseguir la estabilización
mediante la modificación de residuos sulfhidrilos, la liofilización
de soluciones ácidas, el control del contenido de humedad, la
utilización de aditivos adecuados y el desarrollo de composiciones
de matriz de polímeros específicas.
Los anticuerpos de la presente invención se
pueden utilizar como agentes de purificación de afinidad. En este
proceso, los anticuerpos se inmovilizan en una fase sólida, tal como
una resina Sefadex o papel de filtro, utilizando los procedimientos
bien conocidos en la técnica. El anticuerpo inmovilizado se pone en
contacto con una muestra que contiene la proteína ErbB3 (o fragmento
de la misma) a purificar, y a continuación, el soporte se lava con
un disolvente adecuado que eliminará sustancialmente todo el
material en la muestra a excepción de la proteína ErbB3, que está
unida al anticuerpo inmovilizado. Finalmente, el soporte se lava
con otro disolvente adecuado, tal como tampón de glicina, pH 5,0,
que liberará la proteína ErbB3 del anticuerpo.
\newpage
Los anticuerpos anti-ErbB3
también pueden ser útiles en los ensayos de diagnóstico para la
proteína ErbB3, por ejemplo, la detección de su expresión el
células, tejidos o suero específicos. De este modo, los anticuerpos
se pueden utilizar en el diagnóstico de tumores humanos (véase, por
ejemplo, la Patente U.S.A. 5.183.884).
Para las aplicaciones de diagnóstico, el
anticuerpo se marcará habitualmente con un grupo detectable. Existen
numerosos marcadores disponibles que se pueden agrupar generalmente
en las siguientes categorías:
(a) Radioisótopos, tales como ^{35}S,
^{14}C, ^{125}I, ^{3}H, y ^{131}I. El anticuerpo se puede
marcar con el radioisótopo utilizando las técnicas descritas en
Current Protocols in Immunology, volúmenes 1 y 2. Coligen
et al., Ed., Wiley-Interscience. Nueva York,
Nueva York, Pubs., (1991), por ejemplo, y la radiactividad se puede
medir utilizando recuento por centelleo.
(b) Están disponibles marcadores fluorescentes,
tales como quelatos de tierras raras (quelatos de europio) o
fluoresceína y sus derivados, rodamina y sus derivados, dansilo,
Lissamina, ficoeritrina y Texas Red. Los marcadores fluorescentes se
pueden conjugar al anticuerpo utilizando las técnicas descritas en
Current Protocols in Immunology, supra., por ejemplo. La
fluorescencia se puede cuantificar utilizando un fluorímetro.
(c) Varios marcadores de
enzima-sustrato están disponibles y la Patente de
U.S.A. No. 4.275.149 proporciona una revisión de algunos de éstos.
La enzima generalmente cataliza una alteración química del sustrato
cromogénico que se puede medir utilizando varias técnicas. Por
ejemplo, la enzima puede catalizar un cambio de color en un
sustrato, que se puede medir espectrofotométricamente.
Alternativamente, la enzima puede alterar la fluorescencia o la
quimioluminiscencia del sustrato. Las técnicas para cuantificar un
cambio en la fluorescencia se describen anteriormente. El sustrato
quimioluminiscente se vuelve electrónicamente excitado mediante una
reacción química y puede entonces emitir luz que se puede medir
(utilizando un quimioluminómetro, por ejemplo) o dona energía a un
aceptor fluorescente. Entre los ejemplos de marcadores enzimáticos
se incluyen luciferasas (por ejemplo, luciferasa de luciérnaga y
luciferasa bacteriana; Patente U.S.A. No. 4.737.456), luciferina,
2,3-dihidroftalazinedionas, malato deshidrogenada,
ureasa, peroxidasa, tal como peroxidasa de rábano picante (HRPO),
fosfatasa alcalina, \beta-galactosidasa,
glucoamilasa, lisozima, sacarida oxidasas (por ejemplo, glucosa
oxidasa, galactosa oxidasa, y
glucosa-6-fosfato deshidrogenasa),
oxidasas heterocíclicas (tales como uricasa y xantina oxidasa),
lactoperoxidasa, microperoxidasa, y similares. Las técnicas para
conjugar enzimas a anticuerpos se describen en O'Sullivan et
al., Methods for the Preparation of
Enzyme-Antibody Conjugates for use in Enzyme
Immunoassay, en Methods in Enzym (ed J. Langone y H. Van
Vunakis), Academic press, Nueva York,72: 147-166
(1981).
Entre los ejemplos de combinaciones de
enzima-sustrato se incluyen, por ejemplo:
(i) peroxidasa de rábano picante (HRPO) con
hidrógeno peroxidasa como sustrato, donde la hidrógeno peroxidasa
oxida un precursor de colorante (por ejemplo, ortofenilen diamina
(OPD) o clorhidrato de 3,3’,5,5’-tetrametil benzidina (TMB));
(ii) fosfatasa alcalina (AP) con
para-nitrofenil fosfato como sustrato cromogénico;
y
(iii)
\beta-D-galactosidasa
(\beta-D-Gal) con un sustrato
cromogénico (por ejemplo,
p-nitrofenil-\beta-D-galactosidasa)
o sustrato fluorogénico
4-metillumbeliferil-\beta-D-galactosidasa.
Para los expertos en la materia, están
disponibles numerosas otras combinaciones de
enzima-sustrato. Para una revisión general de las
mismas, véase la Patente de U.S.A. Nos. 4.275.149 y 4.318.980.
Algunas veces, el marcador está directamente
conjugado con el anticuerpo. El técnico experto conoce las técnicas
para conseguir esto. Por ejemplo, el anticuerpo se puede conjugar
con biotina y cualquiera de las tres amplias categorías de
marcadores mencionados anteriormente se pueden conjugar con avidina,
o viceversa. La biotina se une selectivamente a avidina y, de este
modo, el marcador se puede conjugar con el anticuerpo de esta manera
indirecta. Alternativamente, para conseguir la conjugación indirecta
del marcador con el anticuerpo, el anticuerpo se conjuga con un
hapteno pequeño (por ejemplo, digoxina) y uno de los diferentes
tipos de marcadores mencionados anteriormente se conjuga con un
anticuerpo anti-hapteno (por ejemplo, anticuerpo
anti-digoxina). De este modo, se puede conseguir la
conjugación indirecta del marcador con el anticuerpo.
El anticuerpo anti-ErbB3 no
necesita estar marcado, y la presencia del mismo se puede detectar
utilizando un anticuerpo marcado que se une al anticuerpo de
ErbB3.
Los anticuerpos de la presente invención se
puede utilizar en cualquier método de ensayo conocido, tal como
ensayos de unión competitiva, ensayos de sándwich directo e
indirecto, y ensayos de inmunoprecipitación. Zola, Monoclonal
Antibodies A Manual of Techniques, páginas
147-158 (CRC Press. Inc., 1987).
Los ensayos de unión competitiva dependen de la
capacidad de un patrón marcado para competir con el analito de la
muestra de prueba para la unión con una cantidad limitada de
anticuerpo. La cantidad de proteína ErbB3 en la muestra de prueba es
inversamente proporcional a la cantidad de patrón que se une a los
anticuerpos. Para facilitar la determinación de la cantidad de
patrón que se une, los anticuerpos generalmente están
insolubilizados antes o después de la competición, de manera que el
patrón y el analito que están unidos a los anticuerpos se pueden
separar de manera adecuada del patrón y el analito que permanecen no
unidos.
Los ensayos de sándwich implican la utilización
de dos anticuerpos, cada uno capaz de unirse a una parte
inmunogénica diferente, o epítopo, de la proteína a detectar. En un
ensayo de sándwich, el analito de la muestra de prueba se une a un
primer anticuerpo que está inmovilizado en un soporte sólido y, a
continuación, un segundo anticuerpo se une al analito, formando así
un complejo de tres partes insolubles. Véase, por ejemplo, la
Patente U.S.A. No. 4.376.110. El segundo anticuerpo puede estar
marcado en sí mismo con un grupo detectable (ensayos de sándwich
directos) o se puede medir utilizando un anticuerpo
anti-inmunoglobulina que está marcado con un grupo
detectable (ensayo de sándwich indirecto). Por ejemplo, un tipo de
ensayo de sándwich es un ensayo ELISA, en cuyo caso el grupo
detectable es una enzima.
Para la inmunohistoquímica, la muestra de tumor
puede ser reciente o congelada o puede estar envuelta de parafina y
fijada con un conservante, tal como formalina, por ejemplo.
Los anticuerpos también se pueden utilizar para
ensayos de diagnóstico in vivo. Generalmente, el anticuerpo
se marca con un radionucleido (tal como ^{111}In, ^{99}Tc,
^{14}C, ^{131}I, ^{125}I, ^{3}H, ^{32}P o ^{35}S), de
manera que el tumor se puede localizar utilizando
inmunocentelleografía.
A modo de comodidad, el anticuerpo de la
presente invención se puede disponer en un kit, es decir, una
combinación empaquetada de reactivos en cantidades predeterminadas
con instrucciones para llevar a cabo el ensayo de diagnóstico.
Cuando el anticuerpo está marcado con una enzima, el kit incluirá
sustratos y cofactores necesarios por la enzima (por ejemplo, un
precursor de sustrato que proporciona el cromóforo o fluoróforo
detectable). Además, se pueden incluir otros aditivos, tales como
estabilizantes, tampones (por ejemplo, un tampón de bloqueo o tampón
de lisis) y similares. Las cantidades relativas de los diversos
reactivos se pueden variar de forma amplia para proporcionar
concentraciones en solución de los reactivos que optimizan
sustancialmente la sensibilidad del ensayo. Particularmente, los
reactivos se pueden proporcionar como polvos secos, habitualmente
liofilizados, que incluyen excipientes que en disolución
proporcionarán una solución de reactivos que tienen la concentración
apropiada.
Se considera que el anticuerpo
anti-ERbB3 de la presente invención se puede
utilizar para tratar condiciones en las que tiene lugar la
activación excesiva del complejo ErbB2-ErbB3,
particularmente cuando dicha activación está mediada por un
polipéptido heregulina. Entre los ejemplos de condiciones o
trastornos a tratar con el anticuerpo de ErbB3 se incluyen tumores
benignos o malignos (por ejemplo, renal, hígado, vejiga, mama,
gástrico, ovárico, colorrectal, próstata, pancreático, pulmón,
vulva, tiroides, carcinomas hepáticos; sarcomas; glioblastomas; y
varios tumores de cabeza y cuello); leucemias y tumores de linfoide;
otros trastornos, tales como neuronales, gliales, astrocitales,
hipotalámicos y otros trastornos glandulares, macrofágicos,
epiteliales, estromales y blastocoélicos; y trastornos
inflamatorios, angiogénicos e inmunológicos.
Los anticuerpos de la presente invención se
administran a un mamífero, preferiblemente un humano, de acuerdo con
procedimientos conocidos, tales como la administración intravenosa
como un bolo o mediante la infusión continua durante un periodo de
tiempo, mediante rutas intramuscular, intraperitoneal,
intracerebroespinal, subcutánea, intra-articular,
intrasinovial, intratecal, oral, tópica o inhalación. Se prefiere la
administración intravenosa del anticuerpo.
Otras pautas terapéuticas se pueden combinar con
la administración de los anticuerpos anti-ErbB3 de
la presente invención. Por ejemplo, el paciente a tratar con los
anticuerpos descritos en la presente invención también puede recibir
terapia por radiación. Alternativamente, o adicionalmente, se puede
administrar un agente quimioterapéutico al paciente. La preparación
y la pauta de dosificación para dichos agentes quimioterapéuticos
se pueden utilizar según las instrucciones del fabricante o según se
determina empíricamente por un técnico experto. La preparación y la
pauta de dosificación para dicha quimioterapia también están
descritas en Chemotherapy Service Ed., M.C. Perry, Williams &
Wilkins, Baltimore, MD (1992). El agente quimioterapéutico puede
preceder o seguir a la administración del anticuerpo o se puede
administrar simultáneamente con el mismo.
Puede ser deseable administrar también
anticuerpos contra otros antígenos asociados a tumores, tales como
anticuerpos que se unen a EGFR, ErbB2, ErbB4 o el factor endotelial
vascular (VEGF). Se pueden coadministrar dos o más anticuerpos
anti-ErbB3 al paciente. Alternativamente, o
adicionalmente, se pueden administrar dos o más citoquinas al
paciente.
Para la prevención o el tratamiento de
enfermedades, la dosis apropiada de anticuerpo dependerá del tipo de
enfermedad a tratar, tal y como se ha definido anteriormente, la
gravedad y el transcurso de la enfermedad, si el anticuerpo se
administra con objetivos de prevención o terapéuticos, terapia
previa, el historial clínico del paciente y la respuesta al
anticuerpo, y la discreción del médico responsable. El anticuerpo se
administra de forma adecuada al paciente de una vez o durante una
serie de tratamientos.
\newpage
Dependiendo del tipo y gravedad de la
enfermedad, aproximadamente de 1 \mug/kg hasta 15 \mug/kg (por
ejemplo, 0,1-20 mg/kg) de anticuerpo es una dosis
candidata inicial para la administración al paciente, mediante, por
ejemplo, uno o más administraciones separadas o mediante infusión
continua. Una dosis diaria habitual podría variar desde,
aproximadamente, 1 \mug/kg a 100 mg/kg o más, dependiendo de los
factores mencionadas anteriormente. Para administraciones repetidas
durante varios días o más, dependiendo de la condición, el
tratamiento se mantiene hasta que tiene lugar la desaparición
deseada de los síntomas de la enfermedad. Sin embargo, pueden ser
útiles otras pautas de dosificación. El progreso de esta terapia se
monitoriza fácilmente mediante técnicas y ensayos
convencionales.
Se describe un artículo de fabricación que
contiene materiales útiles para el tratamiento de los trastornos
descritos anteriormente. El artículo de fabricación comprende un
recipiente y un marcador. Entre los recipientes adecuados se
incluyen, por ejemplo, botellas, viales, jeringas y tubos de prueba.
Los recipientes pueden estar formados de una variedad de materiales,
tales como vidrio o plástico. Los recipientes contienen una
composición que es eficaz para el tratamiento de la enfermedad y
puede tener un puerto de acceso estéril (por ejemplo, el recipiente
puede ser una bolsa o vial se solución intravenosa que tiene un
tapón penetrable por una aguja de injección hipodérmica). El agente
activo en la composición es el anticuerpo
anti-ErbB3. El marcador en, o asociado con, el
recipiente indica que la composición se utiliza para el tratamiento
de la enfermedad de elección. El artículo de fabricación puede
comprender además un segundo recipiente que comprende un tampón
farmacéuticamente aceptable, tal como una solución salina tamponada
con fosfato, solución de Ringer y solución de dextrosa. Pueden
incluir también otros materiales deseables desde un punto de vista
comercial y del usuario, incluyendo otros tampones, diluyentes,
filtros, agujas, jeringas y inserciones de empaquetamiento con
instrucciones para su uso.
La siguiente línea de células de hibridoma se ha
depositado con la American Type Culture Collection, 12301 Parklawn
Drive, Rockville, MD, USA (ATCC):
Designación de hibridoma/anticuerpo | ATCC No. | Fecha de depósito |
8B8 | HB-12070 | 22 marzo, 1996 |
Este depósito se realizó bajo las condiciones
del Tratado de Budapest sobre el Reconocimiento Internacional del
Depósito de Microorganismos a los fines del Procedimiento en Materia
de Patentes y las Regulaciones de las mismas (Tratado de
Budapest).
Los siguientes ejemplos se ofrecen a modo de
ilustración y no a modo de limitación.
Ejemplo
Este ejemplo describe la producción de los
anticuerpos anti-ErbB3 que tienen las
características descritas en la presente invención.
Líneas celulares. La línea de células de
leucemia mieloide humana K562 (que carece de receptores de proteínas
tirosina quinasas de la subfamilia de la clase 1 según se determina
mediante transferencia Northern) y la línea de células de carcinoma
de ovario humana Caov3 se obtuvieron de la American Type Culture
Collection (Rockville, MD). Ambas se cultivaron en medio RPMI 1640
suplementado con un 10% de suero bovino fetal, glutamina 2 mM,
penicilina 100 U/ml, estreptomicina 100 \mug/ml y HEPES 10 mM
("medio de crecimiento").
Transfección estable de células K562. La
línea de células K562 se trasnfectó y se seleccionaron clones de
expresión de ErbB3. Brevemente, el ADNc de erbB3 se subclonó en el
vector de expresión de células de mamíferos pcDNA-3
(Invitrogen) y se intrujeron en células K562 mediante
electroporación (1180 mF, 350 V). Las células transfectadas se
cultivaron en un medio de crecimiento que contenía G418 0,8 mg/ml.
Los clones resistentes se obtuvieron limitando la dilución y se
estudiaron para la expresión de ErbB3 mediante transferencia Western
y ensayos de unión a heregulina (HRG). El clon de expresión de
ErbB3 4E9H3 se utilizó en los experimentos descritos en esta
memoria. Se observó que la estimulación con forbol éster aumentaba
significativamente la expresión de ErbB3 en los transfectantes de
K562. Por lo tanto, las células 4E9H3 se colocaron en un medio de
crecimiento que contenía 10 ng/ml de
forbol-12-miristato acetato (PMA)
durante toda la noche antes de su utilización en los diversos
ensayos descritos a continuación.
Anticuerpos. Los anticuerpos monoclonales
específicos para la proteína ErbB3 se generaron contra un fragmento
recombinante del receptor correspondiente al dominio extracelular
(ECD) del mismo fusionado en su extremo amino terminal del epítopo
de la glicoproteína D (gD) del virus del herpes simplex de tipo 1
(HSV1) para el anticuerpo monoclonal 5B6. La secuencia codificante
de la secuencia señal de ErbB3 se sustituyó por una secuencia que
codificaba los aminoácidos 1-53 del polipéptido gD.
Los aminoácidos 1-25 codifican la secuencia señal de
gD mientras que los aminoácidos 26-53 contienen un
epítopo para el anticuerpo monoclonal 5B6. Véase WO 95/14776. La
construcción resultante, gD.ErbB3.ECD, se purificó utilizando una
columna de afinidad del anticuerpo anti-gD. Las
inmunizaciones se realizaron tal y como indica a continuación. Los
ratones hembra Balb/c (Charles River) se inyectaron inicialmente en
la planta de la pata con 5 \mug de gD.ErbB3.ECD en 100 \mul de
adyuvante de RIBI^{TM} (Ribi ImmunochemResearch, Inc., Hamilton,
MT). Los animales se estimularon dos veces con 5 \mug de
gD.ErbB3.ECD en su planta de la pata cada dos semanas seguido de una
inyección final en la planta de la pata de 5 \mug de gD.
ErbB3.ECD. Tres días después de la última inmunización, los nódulos
de la linfa popliteales se eliminaron y se preparó una única
suspensión de células para la fusión con PEG.
Los anticuerpos monoclonales se purificaron y se
ensayaron mediante un ELISA inmovilizado y de fase en solución para
la reactividad cruzada con ErbB2 y ErbB4. Para el ELISA
inmovilizado, se utilizó 1 \mug/ml de ErbB2.ECD, gD.ErbB3.ECD o
gD.ErbB4.ECD para recubrir una placa de microtítulos de 96 pocillos
durante toda la noche. Se añadió Mab anti-ErbB3 a 1
\mug/ml y se incubó durante 1 hora a temperatura ambiente (RT), se
lavó y se siguió de IgG de cabra anti-ratón (gam)
conjugado a HRPO. El ELISA se desarrolló y se leyó a 490 nm. Para el
ELISA de fase en solución, se utilizó 1 \mug/ml de IgG gam
(específico de Fc) para recubrir una placa de microtítulos de 96
pocillos durante toda la noche. Se añadió Mab
anti-ErbB3 a 1 \mug/ml y se incubó durante 1 hora
a RT, se lavó y se siguió de estrepavidina de HRPO. El ELISA se
desarrolló y se leyó a 490 nm. En este ensayo, ninguno de los
anticuerpos anti-ErbB3 reaccionó de forma cruzada
con ErbB2 o ErbB4.
Los fragmentos Fab del anticuerpo
3-8D6 se generaron mediante digestión con papaína.
Los fragmentos IgG y Fc no digeridos se eliminaron mediante
cromatografía de afinidad con proteína A seguido de una
cromatografía de filtración en gel. No se detectó IgG en el grupo
Fab mediante SDS-PAGE y mediante transferencia
Western se sondó con un anticuerpo específico de Fc.
Ensayos de unión a HRG. Todos los
experimentos de unión a HRG se realizaron utilizando el dominio de
tipo EGF de la isoforma \beta1, es decir, HRG
\beta1_{177-244} (Sliwkowski et al., J
Biol Chem. 269: 14661-5 (1994)). El grupo de
anticuerpos de ErbB3 se rastreó por un efecto en la unión a HRG
mediante la incubación de 5,0 x 10^{4} células 4E9H3 con
^{125}I-HRG 100 pM durante toda la noche a 0ºC, en
ausencia (control) o presencia de anticuerpo
anti-ERbB3 100 nM. Las IgGs irrelevantes se
utilizaron como controles negativos. Las células se recogieron y se
lavaron rápidamente con tampón de ensayo enfriado con hielo (medio
RPMI que contiene HEPER 10 mM, pH = 7,2) en un dispositivo de
filtración de 96 pocillos (Millipore). A continuación, los filtros
se extrajeron y se contaron.
Para los experimentos
dosis-respuesta de los anticuerpos, se incubaron
células 4E9H3 con ^{125}I-HRG 100 pM en presencia
de concentraciones crecientes de anticuerpo. Las mediciones de
afinidad de HRG se determinaron en ausencia (control) o presencia de
anticuerpo o fragmento Fab 100 nM. Estos experimentos se realizaron
en un formato de inhibición competitiva con cantidades crecientes de
HRG no marcada y una concentración fija (35 pM) de
^{125}I-HRG. Para el experimento de control (sin
anticuerpo) se utilizaron 1 x 10^{5} células 4E9H3 para cada
muestra. Debido a las limitaciones en el intervalo dinámico del
ensayo, el número de células 4E9H3 utilizadas para la unión en
presencia del anticuerpo o del Fab se redujo a 2,5 x 10^{4}
células por muestra.
Reducción de anticuerpos de fosforilación
estimulada por HRG. Se preincubaron células Caov3, que expresan
de forma natural ErbB2 y ErbB3, con 250 nM de anticuerpo
anti-ErbB3 3-8D6, fragmentos Fab de
este anticuerpo, o tampón (control), durante 60 minutos a
temperatura ambiente. El anticuerpo anti-ErbB2, 2C4
(Fendly et al., Cancer Res.,
50:1550-1558 (1990)), que se observó previamente que
bloqueaba la fosforilación estimulada por HRG de ErbB2, se incluyó
como control positivo. A continuación, las células se estimularon
con HRG a una concentración final de 10 nM durante 8 minutos a
temperatura ambiente, o se dejaron sin estimulación. La reacción se
detuvo mediante la eliminación de los sobrenadantes y disolviendo
las células en tampón muestra de SDS. A continuación, los lisados se
desarrollaron en SDS-PAGE. Las transferencias
Western de los geles se sondaron con
anti-fosfotirosina conjugado con peroxidasa de
rábano picante (Transduction Labs), y las manchas se visualizaron
utilizando un sustrato quimioluminiscente (Amersham). Las manchas se
escanearon con un densitómetro de escaneo por reflectancia tal y
como se describe en Holmes et al., Science, 256:
1205-1210 (1992).
Reducción de anticuerpos de la formación del
complejo de proteínas ErbB2-ErbB3. Se
preincubaron células Caov3 con tampón (control), 250 nM de
anticuerpo anti-ErbB3 3-8D6,
fragmentos Fab de este anticuerpo, o el anticuerpo
anti-ErbB2 (2C4) durante 60 minutos a temperatura
ambiente, a continuación se trataron con 10 nM de HRG o tampón
control durante 10 minutos. Las células se lisaron en 25 mM de Tris,
pH = 7,5, 150 mM NaCl, 1 mM de EDTA, 1,0% de Triton
X-100^{TM}, 1,0% de CHAPS, 10% v/v de glicerol,
que contenía 0,2 mM de PMSF, 50 mTU/ml de aprotinina, y 10 mM de
leupeptina ("tampón de lisis") y los lisados de crudo se
centrifugaron brevemente para eliminar el material insoluble. Los
sobrenadantes se incubaron con 3E8, un anticuerpo monoclonal
específico para ErbB2 (Fendly et al., Cancer Res.,
50:1550-1558 (1990)), acoplado covalentemente a un
soporte insoluble (Affi Prep-10^{TM},
Bio-Rad). La incubación se llevó a cabo durante toda
la noche a 4ºC. Los inmunoprecipitados se lavaron dos veces con
tampón de lisis enfriado con hielo, se resuspendieron con un
anti-ErbB3 policlonal (Santa Cruz Biotech). Las
manchas se escanearon con un densitómetro de escaneo por
reflectancia tal y como se describe en Holmes et al.,
Science, 256: 1205-1210 (1992). Tras la
visualización con el sustrato quimioluminiscente ECL, las manchas se
pusieron en tiras y se resondaron con un anti-ErbB2
policlonal (Santa Cruz Biotech). Una mancha duplicada sondada con
anti-ErbB2 mostró que se inmunoprecipitaban
cantidades iguales de ErbB2 de cada muestra.
Un grupo de anticuerpos monoclonales dirigidos
contra el dominio extracelular de ErbB3 se evaluó por su capacidad
de afectar la unión de HRG a ErbB3. El rastreo inicial se realizó
mediante la incubación de cada uno de los anticuerpos purificados a
una concentración final de 100 nM con células 4E9H3 en presencia de
células ^{125}I-HRG 4E9H3, que son transfectantes
ErbB3 de la línea de células de leucemia mieloide humana K562. La
línea celular K562 no expresa receptores ErbB2 endógeno de HRG. Por
lo tanto, la unión de heregulina a células 4E9H3 tiene lugar
exclusivamente a través de ErbB3. Después de incubar las muestras
durante toda la noche en hielo, los recuentos asociados a las
células se midieron tal y como se muestra en la figura 1. Dos de los
anticuerpos monoclonales anti-ErbB3 (2F9 y 3E9)
redujeron la cantidad de ^{125}I-HRG unida a
células con respecto al control (sin anticuerpo). Sin embargo,
varios otros aumentaron significativamente la unión del ligando.
Estos resultados sugerían que estos anticuerpos
anti-ErbB3 eran capaces de aumentar la afinidad de
la unión de HRG y/o aumentar la disponibilidad de los sitios de
unión de HRG. Para caracterizar adicionalmente la influencia de
estos anticuerpos en la unión de HRG a ErbB3, se realizaron
experimentos de dosis-respuesta utilizando el
anticuerpo 3-8D6 que aumentaba la unión de HRG. Las
células 4E9H3 se incubaron con 100 pM de
^{125}I-HRG en presencia de concentraciones
crecientes del anticuerpo 3-8D6. Los recuentos
asociados a las células se midieron a continuación después de una
incubación durante toda la noche en hielo. Los resultados se
muestran en la figura 2 como representaciones de recuentos de
células frente a concentraciones de anticuerpo. Existe una
correlación entre la unión de HRG aumentada y la concentración de
anticuerpo creciente. La unión a heregulina alcanzó la saturación
entre 10 y 100 nM de IgG. El valor de EC_{50} para el anticuerpo
3-8D6 fue de 722 pM. No se observó para ningún
anticuerpo un descenso en las curvas de
dosis-respuesta en concentraciones elevadas de
anticuerpo.
El análisis Scatchard de la unión a HRG se
determinó en presencia de estos anticuerpos y los resultados se
muestran en la Tabla 1.
Grupo de datos | K_{d} | Sitios/célula |
Control | 1,2 x 10^{-9} | 3,6 x 10^{5} |
Mab 3-8D6 | 2,1 x 10^{-10} | 2,4 x 10^{5} |
Fab 3-8D6 | 2,8 x 10^{-10} | 2,9 x 10^{5} |
En ausencia del anticuerpo, se midió una Kd de
1200 pM para la unión de HRG a ErbB3 que está de acuerdo con una
medición de la afinidad medida previamente de la unión de HRG a
ErbB3. El número de sitios de unión por célula se determinó que era
36.000. En presencia del anticuerpo, 3-8D6, la
constante de unión medida para la unión de HRG aumenta
significativamente hasta 210 pM. Sin embargo, el número de sitios de
unión de HRG no aumenta en presencia de 3-8D6.
Para determinar si el aumento en la afinidad de
unión del ligando ErbB3 era dependiente del anticuerpo por ser
bivalente, se realizaron experimentos de unión de HRG en presencia
de 100 nM de un fragmento Fab preparado por digestión con papaína
del anticuerpo 3-8D6. Los fragmentos Fab utilizados
para estos experimentos se purificaron mediante cromatografía de
afinidad de Proteína A y mediante cromatografía de filtración en
gel. No se detectó IgG intacta en esta preparación purificada por
SDS-PAGE. Tal y como se muestra en la figura 3, la
unión de HRG en presencia de anticuerpo intacto o la Fab resultante
es casi idéntica. El análisis Scatchard de estos datos produjo una
constante de disociación para la unión de HRG en presencia de Fab de
280 pM y el número de receptores por célula determinado a partir de
este experimento también fue esencialmente el mismo que el de
control. Estos datos concuerdan con los presentados en la figura 2,
en la que las curvas de dosis-respuesta con los
anticuerpos intactos mostraron una línea recta en lugar de una curva
en forma de campana a concentración de anticuerpo más elevada, donde
podría tener lugar la unión de anticuerpo univalente. Sin estar
relacionado con ninguna teoría, estos datos sugieren que la
alteración en la unión de HRG observada en presencia de estos
anticuerpos no requiere un anticuerpo divalente.
A continuación se examinó el efecto del
anticuerpo 3-8D6 en un ensayo de fosforilación de
receptor tirosina, utilizando la línea de células de tumor de ovario
Caov3 que coexpresa ErbB2 y ErbB3. Las células se estimularon con 10
nM de HRG tras una preincubación de 60 minutos con el anticuerpo
3-8D6 (a 250 nM) o tampón (control). Se analizaron
todos los lisados de células en una transferencia Western sondados
con anti-fosfotirosina. El tratamiento con HRG no
estimuló la fosforilación en células 4E9H3. El tratamiento de
células 4E9H3 con el anticuerpo 3-8D6 no indujo la
fosforilación de ErbB3 por sí misma ni tuvo ningún efecto en la
fosforilación de tirosina en células Caov3. Tras la estimulación se
detectó una señal de fosforilación de tirosina marcada en una
proteína con un tamaño molecular de aproximadamente 180 kDa. El
tratamiento de células Caov3 con un anticuerpo 2C4 específico de
ErbB2, era capaz de bloquear la señal de fosforilación de tirosina
mediada por HRG. Cuando las células se trataron con el anticuerpo
anti-ErbB3, 3-8D6, antes de la
estimulación con HRG, la fosforilación de tirosina también
disminuyó. Mediante la densitometría de escaneo de las manchas de
anti-fosfotirosina de todos los lisados de células,
se observó que el 3-8D6 inhibe la señal de
fosfotirosina a 180-185 kDa en aproximadamente un
80% (intervalo de 76-84%). Esta señal está
proporcionada por los residuos de fosfato de tirosina en ErbB3 y
ErbB2. El tratamiento de las células Caov3 con los fragmentos Fab
preparados del anticuerpo 3-8D6, también redujo la
fosforilación estimulada por HRG de la banda de 180 kDa con respecto
al control. Sin embargo, la actividad inhibidora del Fab era
ligeramente menos potente que el anticuerpo intacto.
El incremento mediado por el anticuerpo
3-8D6 en la afinidad del receptor en células que
expresan ErbB3 solo es análogo al incremento en la afinidad asociada
con la coexpresión de ErbB2 con ErbB3. Además, este anticuerpo
bloquea la actividad quinasa de ErbB2 estimulada por HRG en células
que expresan ambos receptores. Para determinar si el anticuerpo
anti-ErbB3 compite directamente con ErbB2 para
unirse a ErbB3, se realizaron una serie de experimentos de
coinmunoprecipitación utilizando células Caov3. Las células se
preincubaron con anticuerpo, o tampón (control) y, a continuación,
se trataron con HRG 10 nM durante 10 minutos. Los lisados de las
células se inmunoprecipitaron a continuación con un anticuerpo
monoclonal contra ErbB2. A continuación, los inmunoprecipitados se
analizaron mediante transferencia Western para la presencia de
ErbB3. Los resultados de estos experimentos indicaron que ErbB3
estaba presente en el inmunoprecipitado de ErbB2 del lisado de
células estimulado por HRG, pero no en el inmunoprecipitado de
lisado no estimulado. Estos datos sugieren que la HRG dirige la
formación de un complejo ErbB2-ErbB3 en células
Caov3. El ErbB2 no era detectable en el inmunoprecipitado de la
muestra tratada con el anticuerpo monoclonal
anti-ErbB2, 2C4. Se observó un descenso
significativo en la señal de ErbB3 cuando las células se
preincubaron con el anticuerpo 3-8D6 o su Fab
resultante antes de la estimulación por HRG. Estos datos indican que
el anticuerpo 3-8D6 inhibe la formación de un
complejo ErbB2-ErbB3 tras el tratamiento con HRG. La
desitometría de escaneo de las transferencias Western
anti-ErbB3 de inmunoprecipitados
anti-ErbB2 reveló que la señal
anti-ErbB3 (que indica el número de complejos
ErbB2-ErbB3 presentes) también disminuye mediante
3-8D6 en aproximadamente un 80% (intervalo de
71-90%). Cuando se sondaron manchas duplicadas con
anti-ErbB2, se encontraron presentes cantidades
equivalentes de ErbB2 en todas las bandas.
(1) INFORMACIÓN GENERAL:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- SOLICITANTE: Genentech, Inc.
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TÍTULO DE LA INVENCIÓN: Anticuerpos de ErbB3
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- NÚMERO DE SECUENCIAS: 5
\vskip0.800000\baselineskip
- (iv)
- DIRECCIÓN PARA LA CORRESPONDENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- DESTINATARIO: Genentech, Inc.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- CALLE: 460 Point San Bruno Blvd
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CIUDAD: South San Francisco
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- ESTADO: California
\vskip0.500000\baselineskip
- (E)
- PAÍS: Estados Unidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (F)
- CP: 94080
\vskip0.800000\baselineskip
- (v)
- FORMA LEGIBLE POR ORDENADOR:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- TIPO DE MEDIO: disquete de 3,5 pulgadas, 1,44 Mb
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- ORDENADOR: PC compatible de IBM
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- SISTEMA OPERATIVO: PC-DOS/MS-DOS
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- SOFTWARE: WinPatin (Genentech)
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- DATOS DE LA SOLICITUD ACTUAL:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NÚMERO DE SOLICITUD:
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- FECHA DE SOLICITUD:
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CLASIFICACIÓN:
\vskip0.800000\baselineskip
- (viii)
- INFORMACIÓN DEL ABOGADO/AGENTE:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE: Lee, Wendy M.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- NÚMERO DE REGISTRO: 40.378
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- NÚMERO DE REFERENCIA/EXPEDIENTE: P1003PCT
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- INFORMACIÓN DE TELECOMUNICACIONES:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- TELÉFONO: 415/225-1994
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- FAX: 415/952-9881
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TELEX: 910/371-7168
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC. ID No: 1:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 11 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: Aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TOPOLOGÍA: Lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC. ID No: 1:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC. ID No: 2:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 7 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: Aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TOPOLOGÍA: Lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC. ID No: 2:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC. ID No: 3:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 8 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: Aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TOPOLOGÍA: Lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC. ID No: 3:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC. ID No: 4:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 8 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: Aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TOPOLOGÍA: Lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC. ID No: 4:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC. ID No: 5:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 8 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: Aminoácido
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TOPOLOGÍA: Lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC. ID No: 5:
\vskip1.000000\baselineskip
Claims (17)
1. Anticuerpo que se une a la proteína ErbB3
y
(i) reduce la formación inducida por heregulina
de un complejo de proteínas ErbB2-ErbB3 en una
célula que expresa ErbB2 y ErbB3, y
(ii) reduce la activación de ErbB2 inducida por
heregulina en una célula que expresa ErbB2 y ErbB3.
2. Anticuerpo según la reivindicación 1, que
también incrementa la afinidad de unión de la heregulina por la
proteína ErbB3.
3. Anticuerpo según la reivindicación 1 o la
reivindicación 2, que es un anticuerpo monoclonal.
4. Anticuerpo según la reivindicación 3, que
está humanizado.
5. Anticuerpo según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, que es humano.
6. Anticuerpo según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 5, que es un fragmento de anticuerpo.
7. Fragmento de anticuerpo según la
reivindicación 6, que es un Fab.
8. Anticuerpo que se une al epítopo unido
mediante el anticuerpo 8B8 obtenible de la línea de células del
hibridoma ATCC no. HB-12070.
9. Anticuerpo según la reivindicación 8, que es
obtenible de la línea de células del hibridoma ATCC no.
HB-12070.
10. Anticuerpo que tiene las regiones
determinantes de complementariedad del anticuerpo 8B8 obtenible de
la línea de células del hibridoma ATCC no.
HB-12070.
11. Anticuerpo según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 10, que está marcado.
12. Anticuerpo según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 11, que está inmovilizado en una fase
sólida.
13. Composición que comprende el anticuerpo
según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 10 y un portador
farmacéuticamente aceptable.
14. Línea celular que produce el anticuerpo
según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 10.
15. Línea celular de hibridoma que produce el
anticuerpo 8B8 (ATCC no. HB-12070).
16. Anticuerpo según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 10, para la utilización en un procedimiento de
tratamiento médico.
17. Utilización de un anticuerpo según
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 10, en la fabricación de un
medicamento destinado al tratamiento de una condición en la que
tiene lugar una activación excesiva del complejo de proteínas
ErbB2-ErbB3, tal como tumores benignos y malignos;
leucemias y tumores de linfoides; trastornos neuronales, gliales,
astrocitales, hipotalámicos y otros trastornos glandulares,
macrofágicos, epiteliales, estromales y blastocoélicos; y trastornos
inflamatorios, angiogénicos e inmunológicos.
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