ES2267199T3 - Nuevos inmunogenos anti-vih (toxoides), procedimientos de preparacion y aplicacion para la prevencion y para el tratamiento del sida. - Google Patents
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Abstract
Proteína o fragmento de proteína de 8 a 110 ácidos aminados, caracterizada porque son carboximetilados por reacción con el ácido idoacético y porque se trata de una proteína de regulación viral o fragmento de proteína de regulación viral.
Description
Nuevos inmunógenos anti-VIH
(toxoides), procedimientos de preparación y aplicación para la
prevención y para el tratamiento del SIDA.
El SIDA es inducido por la infección por el
virus VIH-1. Este virus está compuesto por varias
proteínas. Entre estas proteínas, la proteína Tat es, con la
proteína Nef, la producida más precozmente en el ciclo viral.
Para luchar contra los efectos de la proteína
Tat se han propuesto varias aproximaciones genéticas para bloquear
la acción transcripcional de la proteína Tat. Así se han realizado
unos ensayos clínicos con unos antisentido (sociedad Hybridon);
experimentos in vitro han demostrado la practicabilidad de
ribozimas o incluso de señuelos que utilizan el ARN de la zona TAR
(lugar de unión de la proteína Tat con el ARNm).
También se han descrito moléculas farmacológicas
inhibidoras del efecto transcripcional de la proteína Tat.
Todos estos métodos pretenden bloquear la
replicación del virus bloqueando la acción transcripcional de la
proteína Tat.
También se han propuesto desde hace tiempo
métodos inmunológicos.
Para una inmunización específica contra la
proteína Tat nativa el documento
WO-A-91/18454 refiere la
utilización de polipéptidos de proteínas retrovirales, incluyendo la
proteína Tat nativa, obtenidas mediante cortes proteolíticos,
síntesis química o recombinación genética, como inmunógenos para
prevenir la replicación retroviral y la actividad citotóxica
contra, en particular, los linfocitos y las células nerviosas
ejercidas por la proteínas retrovirales entre las cuales en
particular la proteína Tat. La toxicidad de la proteínas nativas o
sus fragmentos impide de todas formas su utilización para una
inmunización.
El documento
WO-A-95/31999 refiere la utilización
de la proteína Tat nativa del VIH-1, de fragmentos
de dicha proteína o de polipéptidos con unas
deleciones/sustituciones como inmunógenos con la finalidad de
bloquear la replicación del VIH-1 bloqueando la
captura de la proteína Tat extracelular por las células no
infectadas. Pese a la inmunogenicidad descrita, teniendo en cuenta
en particular los efectos tóxicos de la proteína nativa Tat, los
desordenes inmunitarios que induce, y la ausencia de anticuerpos
neutralizantes por la inmunización con los inmunógenos descritos en
esta patente, es efectivamente necesario desarrollar nuevos
inmunógenos Tat inactivados (que han perdido todos los efectos
nocivos de la proteína Tat nativa) capaces de inducir una respuesta
inmunitaria humoral y
celular.
celular.
El documento
WO-A-96/27389 refiere la utilización
de nuevos productos, unos toxoides de la proteína Tat y de
proteínas reguladoras retrovirales como inmunógenos capaces de
inducir una respuesta inmunitaria contra la proteína Tat nativa y
prevenir ó reparar sus efectos inmunosupresores. Estos toxoides, que
son unos productos inactivos pero inmunogénicos, han sido
preparados mediante tratamiento químico con formaldehído de la
proteína nativa o de unos segmentos derivados de esta proteína.
Pero la inactivación con ayuda de un aldehído es delicada. Ahora
bien, para una producción industrial, se necesitan resultados
regulares, en particular para la inactivación. Las agencias
sanitarias prefieren además unos productos que tengan una estructura
constante y bien definida para autorizar su puesta en el mercado.
Además, un producto ideal debería tener una buena estabilidad a lo
largo del tiempo.
Por estas razones la presente solicitud tiene
por objeto unos nuevos toxoides y un nuevo método simple y eficaz
para fabricar estos toxoides en particular a partir de las proteínas
de regulación del VIH-1 que contribuyen al efecto
inmunosupresor del VIH-1.
La estrategia de los toxoides tiene grandes
ventajas sobre las sustituciones/deleciones de ácidos aminados: las
zonas de la proteína Tat nativa responsables de los efectos
pleomorfos de la proteína Tat no están bien identificadas y es
difícil predecir a priori las sustituciones/deleciones que
aseguran una inocuidad total a la preparación. Por ejemplo la
mutación del residuo C25 en G anula el efecto transactivador de la
proteína Tat sin suprimir su efecto inmunosupresor. Por otra parte,
las sustituciones/deleciones pueden alterar en gran manera la
estructura de la molécula modificada con respecto a la molécula
nativa (antígenos lineales y de conformación) y así impedir el
desarrollo de una reacción inmunitaria eficaz contra la molécula
nativa. Este último punto es particularmente importante para la
generación de anticuerpos neutralizantes contra la proteína
nativa.
Por lo tanto la presente solicitud tiene por
objeto una proteína de regulación viral o un fragmento de 8 a 110
ácidos aminados de proteína de regulación viral caracterizados
porque son carboximetilados, por reacción con ácido iodoacético o
por reacción con la iodoacetamida.
En una condiciones preferidas de realización de
la invención, la proteína o el fragmento indicados anteriormente
provienen del virus VIH.1, VIH-2,
HTLV-1 ó HTLV-2 y en particular del
virus VIH-1 ó VIH-2.
En otras condiciones preferidas de realización
de la invención, la proteína o fragmento indicado anteriormente es
una proteína de regulación viral o un fragmento de proteína de
regulación viral.
En otra condiciones preferidas de realización de
la invención la proteína o fragmento indicado anteriormente
proviene de la proteína TAT en particular del
VIH-1.
La presente solicitud tiene también por objeto
un procedimiento de preparación de una proteína o de un fragmento
tal como los definidos anteriormente, caracterizado porque se somete
dicha proteína de regulación viral o dicho fragmento a una
carboximetilación, para obtener el compuesto esperado que se
aísla.
Según la invención, las proteínas o fragmentos
que se comportan como unas toxinas sobre el sistema inmunitario,
sean por ejemplo Tat o Nef son modificados por la carboximetilación.
Esta modificación química conduce a unas nuevas proteínas o
fragmentos que son inactivos biológicamente pero conservan su
inmunogenicidad. En otros términos, estas proteínas o fragmentos
que se comportan como toxinas sobre el sistema inmunitario son
reconocidos por unos anticuerpos producidos contra las proteínas o
fragmentos carboximetilados según la invención. Estas proteínas o
fragmentos carboximetilados conservan unas propiedades inmunógenas
suficientes para crear unos anticuerpos que neutralizan o bloquean
dicha proteína nativa y al mismo tiempo han perdido al menos 90%,
preferentemente al menos 95%, en particular al menos 99% de las
propiedades biológicas tóxicas de dicha proteína nativa es decir
sus bien conocidas propiedades biológicas habituales.
El compuesto inmunógeno carboximetilado según la
invención puede estar constituido por la totalidad o por un
fragmento de 8 a 110 ácidos aminados de la proteína de regulación y
puede presentar, como es bien sabido por el experto en la materia,
una o varias modificaciones en los ácidos aminados de esta proteína
o fragmento tales como unas deleciones, sustituciones, adiciones, o
funcionalizaciones tales como la acilación de ácidos aminados, en
la medida en que estas modificaciones quedan en el marco citado
anteriormente (ausencia de toxicidad, caracteres inmunológicos).
Por ejemplo, en general el reemplazo de un residuo leucina por un
residuo isoleucina no modifica dichas propiedades. Las
modificaciones deben generalmente referirse a menos del 30% de los
ácidos aminados, preferentemente a menos del 20% y muy
particularmente a menos del 10%.
Un fragmento puede comprender de 8 a 110 ácidos
aminados por ejemplo, preferentemente de 12 a 60 ácidos aminados y
en particular de 12 a 40 ácidos aminados. Dicho fragmento puede
también comprender del o de los lados C ó N terminal de 1 a 5
ácidos aminados suplementarios, es decir diferentes del segmento
original. Un fragmento debe además comprender una cisteina al menos
para poder ser objeto de la carboximetilación.
De forma general, en cuanto a lo que se refiere
a la modificaciones, la homología o la similitud entre el
inmunógeno modificado y la proteína o parte de la proteína nativa,
así como las dimensiones del compuesto inmunógeno, así como las
modalidades de utilización, o de acoplamiento del compuesto
inmunógeno según la invención con una proteína inmunógena tal como
el toxoide tetánico, se puede hacer en particular referencia al
documento WO-A-86/06 414 o al
documento EP-A-0.220.273 o también
al documento PCT/US.86/00831, que son equivalentes, y cuyas
enseñanzas son incorporadas aquí como referencia.
Los compuestos inmunógenos según la invención
que derivan de proteínas de regulación serán llamadas a veces
seguidamente en la parte experimental "toxoides virales".
En efecto, al igual que los toxoides bacterianos
clásicos, están desprovistos de toxicidad propia, pero son capaces
de todas formas de provocar una inmunización por administración a un
individuo.
Con la finalidad de verificar que la proteína de
regulación nativa es bien reconocida por unos anticuerpos dirigidos
contra dicha proteína de regulación modificada, se puede por ejemplo
verificar inmunológicamente por Elisa en presencia de anticuerpos
específicos, la formación de complejos
antígenos-anticuerpo como se verá seguidamente en
la parte experimental.
Con la finalidad de determinar si las
propiedades inmunógenas de la proteína de regulación han sido
conservadas lo suficiente para crear unos anticuerpos que
neutralizan dicha proteína nativa, se pueden, por ejemplo, inmunizar
unos mamíferos (conejos, ratas, ratones) con ayuda de un compuesto
inmunógeno según la invención y verificar que los anticuerpos
producidos neutralizan las actividades tóxicas de la proteína
Tat.
Con la finalidad de determinar si la proteína de
regulación modificada ha perdido al menos 90% de sus propiedades
biológicas tóxicas, se puede por ejemplo estudiar, con referencia a
la proteína Tat, el efecto de la proteína Tat inactivada sobre la
inmunosupresión de las células T o sobre la neoangiogénesis.
La inactivación de la proteína de regulación Tat
es verificada por ejemplo por el "Tat Rescue Assay" que utiliza
un mutante del HIV no infeccioso Tat deficiente cultivado sobre la
descendencia celular HL-1 cuya replicación depende
de un aporte exógeno de Tat nativa.
El compuesto inmunógeno según la invención puede
derivar en particular de una cualquiera de las proteínas de
regulación de los virus VIH-1,
VIH-2, HTLV-1 ó
HTLV-2 y en particular Nef, Rev y preferentemente
Tat de los virus VIH-1 y VIH-2.
También se puede citar la proteína Tax del
HTLV-1 o HLTV-2.
La presente solicitud tiene también por objeto
un procedimiento de preparación de una proteína o de un fragmento
tal como el definido anteriormente, caracterizado porque se somete
dicha proteína de regulación viral o dicho fragmento a una
carboximetilzación, por reacción con el ácido iodoacético o por
reacción con la iodoacetamida, para obtener el compuesto esperado
que si se desea se aísla.
La reacción de carboximetilación permite
modificar los grupos tiol (grupo sulfidril) presentes a nivel de
los residuos cisteina del encadenamiento de ácidos aminados. Estos
grupos reaccionan con el ácido iodoacético o la iodoacetamida
mediante una reacción de S-carboximetilzación ó
S-carboxiamidometilación, respectivamente.
Por ejemplo, la proteína Tat posee 7 cisteinas.
Estas cisteinas participan en la formación de puentes disulfuro
inter. e intracadenas y contribuyen a la formación de unos
oligómeros.
El producto de la reacción es en cada caso un
residuo S-carboximetilcisteinil o
S-carboximetilamidocisteinil.
La reacción de carboximetilación también se
puede realizar con otros agentes químicos como el ácido perfórmico,
el ácido 3-bromopropiónico, la etilenimina, el
bromuro de (2-bromoetil) trimetilamonio, el
2-bromoetansulfonato, la
1,3-propansulfona etc..
En unas condiciones preferidas de realización
del procedimiento descrito anteriormente, dicha proteína o dicho
fragmento de partida se presenta en forma fusionada con un marcador
(FP) cuando se le somete a la carboximetila-
ción.
ción.
Las proteínas o fragmentos de partida del
procedimiento son unos productos conocidos, descritos en la
literatura, por ejemplo para la Tat del VIH-1 por
Frankel A.D. et al. (Cellular Uptake of the tat protein from
human immunodeficiency virus, Cell, 1988,
55:1189-93) o para la Nef del VIH-1,
por Azad A.A. et al. (Large-scale production
and characterization of recombinant human immunodeficiency virus
type 1 Nef, J. Gen. Virol. 1994, 75: 651-55), o
pueden ser preparados de manera convencional.
Se pueden en particular preparar las proteínas o
fragmentos de partida mencionados anteriormente mediante:
- 1)
- Síntesis por ingeniería genética o síntesis bioquímica;
- 2)
- Purificación
Mediante la ingeniería genética, se pueden
purificar las proteínas producidas por cromatografía de afinidad
utilizando por ejemplo anticuerpos dirigidos contra la proteína o
uno de sus segmentos; se puede también sintetizar la proteína
fusionada con un marcador (FP) que servirá para el enganchado a una
columna de afinidad.
En otras condiciones preferidas de realización
del procedimiento descrito anteriormente, cuando la proteína o
fragmento está fusionada con un marcador (FP), es sometida a:
- -
- una concentración, por ejemplo, por ultrafiltración;
- -
- un desalado, por ejemplo, por gel filtración;
- -
- un tratamiento con bromuro de cianógeno o la enteroquinasa para escindir la proteína de fusión y liberar así la proteína o fragmento;
- -
- una concentración y diafiltración;
- -
- una cromatografía por intercambio catiónico;
- -
- una concentración por ultrafiltración, seguida por una filtración sobre gel de exclusión.
La reacción al bromuro de cianógeno anterior
permite escindir los tioéteres. La acción del bromuro de cianógeno
sobre las moléculas polipeptídicas es selectiva realizando una
escisión a nivel de los residuos de metionina existentes. Esta
reacción desemboca en la formación de 2 fragmentos polipéptidos por
residuo de metionina. Esta reacción puede ser ventajosamente
emparejada con la reacción de carboximetilación descrita
anteriormente pero no es necesaria para la inactivación.
En otras condiciones preferidas de realización
del procedimiento descrito anteriormente, se prepara la proteína o
el fragmento esperado(a) acoplado(a) a un compuesto
que permite su purificación, por ejemplo a un fragmento peptídico
que contenga varias histidinas, preferencia en secuencia continua de
4,5 en particular 6 histidinas o más que permitan la fijación a una
columna de Nickel. En la medida en que la presencia de este
compuesto no induce ninguna toxicidad y no modifica
desfavorablemente la inmunogenicidad de la proteína o del fragmento,
no es necesario escindirlo después de la purificación. De todas
formas, en unas condiciones de realización preferidas, se escinde
este compuesto para eliminarlo.
Los compuestos objeto de la presente invención
poseen propiedades farmacológicas muy interesantes. Son inactivos
biológicamente respecto a las funciones que ejercen habitualmente
como los efectos inmunosupresores, los efectos transactivadores del
promotor del VIH-1, o los efectos oxidativos para la
Tat.
Son inmunógenos en el ratón pero también en el
hombre. Permiten en particular la inducción de una respuesta
inmunitaria humoral con anticuerpos neutralizantes y una respuesta
inmunitaria celular.
Estas propiedades son ilustradas seguidamente en
la parte experimental. Justifican la utilización de las proteínas o
fragmentos descritos anteriormente así como de sus sales de adición
con los ácidos farmacéuticamente aceptables, a título de
medicamento.
Es por ello que la invención tiene también por
objeto una proteína o un fragmento carboximetilado mencionado
anteriormente, para su utilización en un método de tratamiento
terapéutico del cuerpo humano o animal, es decir a título de
medicamento.
Los medicamentos según la presente invención
encuentran su uso por ejemplo en el tratamiento tanto curativo como
preventivo de los efectos nocivos provocados por una sobreproducción
de una proteína de regulación de un virus, en particular de un
retrovirus VIH-1, VIH-2,
HTLV-1 ó HTLV-2.
Las proteínas Tat y Nef tienen unas zonas
relativamente bien conservadas. De todas formas, en caso necesario,
se podrá inmunizar el mismo sujeto con unos toxoides preparados a
partir de las cepas variables, en particular para adaptarse a las
variantes geográficas de la epidemia.
Los compuestos inmunógenos según la invención
pueden ser utilizados como sigue:
Se administra a un paciente un compuesto
inmunógeno según la invención, por ejemplo por vía subcutánea o
intramuscular, en cantidad suficiente para ser eficaz en al plano
terapéutico, a un sujeto que tenga necesidad de un tratamiento de
este tipo. La dosis administrada puede ir desde por ejemplo 50 a
1000 \mug por vía intramuscular en forma de emulsión e/h, una vez
al mes durante tres meses, y después periódicamente en función del
nivel de anticuerpos séricos inducidos, por ejemplo cada
2-6 meses.
A título de medicamentos, las proteínas o
fragmentos carboximetilados descritos anteriormente pueden por lo
tanto ser incorporados en unas composiciones farmacéuticas
destinadas a ser administradas por vía oral y en particular
parenteral.
Una composición según la invención puede ser
administrada por cualquier vía convencional en uso en el marco de
las vacunaciones, en particular por vía subcutánea, por vía
intramuscular, por vía intravenosa o por vía oral. La
administración puede tener lugar en una dosis única o repetida una o
varias veces después de un cierto intervalo de tiempo.
La invención tiene también por objeto las
composiciones farmacéuticas que contienen a título de principio
activo al menos uno de los compuestos citados anteriormente.
En estas composiciones, el principio activo está
ventajosamente presente en unas dosis fisiológicamente eficaces;
las composiciones citadas anteriormente contienen en particular una
dosis inmunógena eficaz de al menos un de los principios activos
mencionados. El compuesto inmunógeno puede ser acondicionado solo o
mezclado con un excipiente farmacéuticamente aceptable tal como un
adyuvante.
Estas composiciones farmacéuticas pueden ser, en
particular líquidas y presentarse en formas farmacéuticas de uso
corriente en la medicina humana para las vacunas, como por ejemplo
preparaciones inyectables en particular en forma de emulsión; son
preparadas según los métodos usuales. El o los principios activos
pueden ser incorporados a unos excipientes empleados habitualmente
en estas composiciones farmacéuticas, tales como los vehículos
acuosos, el fosfato de calcio, el alumbre.
La invención tiene en particular por objeto a
título de composiciones farmacéuticas.
- a)
- Una composición farmacéutica que comprende a título de agente preventivo o curativo un toxoide viral o un fragmento o análogo de proteína de regulación, en particular de Tat, según la invención.
- b)
- Una composición farmacéutica que comprende a título de agente preventivo o curativo unos anticuerpos anti-Tat producidos a partir de unos organismos inmunizados contra dicha proteína o sus fragmentos F(ab')2 o Fab, según la invención.
La presente invención tiene también por objeto
un procedimiento de preparación de la una composición descrita
anteriormente, caracterizado porque se mezcla, según unos métodos
conocidos en sí mismos, el o los principios activos con unos
excipientes aceptables, en particular farmacéuticamente
aceptables.
\newpage
Además, la invención tiene por objeto un kit que
comprende una composición farmacéutica en forma de vacuna que
además del principio activo (por ejemplo Tat-toxoide
o sus derivados o anticuerpos anti-Tat) puede
comprender un adyuvante y/ó otro inmunógeno de propiedades
antirretrovirus.
Se puede citar por ejemplo como otro inmunógeno
la proteína de envoltura GP 160, en particular la glicoproteina
transmembranaria GP 10 del VIH-1 o sus fragmentos
conocidos en el estado de la técnica, la proteína Gag de la cápside
viral, o incluso la proteína Pol.
La invención tiene finalmente por objeto la
utilización de una proteína o un fragmento carboximetilado
mencionado anteriormente, para la obtención de un medicamento
destinado a una utilización como inmunógeno.
Los ejemplos siguientes ilustran la presente
solicitud.
La figura 1 representa los resultados de la
evaluación de los efectos de la Tat nativa comparados con los del
producto del ejemplo 1 sobre la proliferación del linfocitos
normales estimulados por un antígeno de recuerdo.
Preparación
A
Se cultivan 2 ml de la bacteria depositada en la
Colección Nacional de Cultivos de Microorganismos de París el 26 de
Diciembre de 1997 con la referencia nº I-1964 que es
una bacteria de E. Coli en la que se ha insertado por
transfección un plásmido recombinante que contiene un gen
codificante para un polipéptido que comprende un fragmento
constituido por 6 histidinas, asociado al gen de la proteína Tat, en
400 ml de un medio de cultivo de base (extracto de levadura 5 g/l,
triptona 1 g/l, cloruro de sodio 1 g/l) y 40 ml de una solución
1(CaCl_{2}2H_{2}O: 0,175 g/i, MgSO_{4}7H_{2}O: 5,9
g/l, glucosa: 6 g/l). Así se incuba el cultivo a 30ºC durante 10
horas a 250 rpm.
A la prefermentación indicada anteriormente
sigue una fermentación en unas condiciones análogas, manteniendo el
nivel de oxígeno disuelto a un nivel del 70% de la saturación por
regulación de la agitación. Cuando la densidad óptica medida a 650
nm alcanza el valor 6, se añaden 100 ml de una solución estéril al
3,75% de IPTG (isopropilo
\beta-d-tiogalactopiranosido) en
agua desionizada. Al mismo tiempo, se suplementa el medio con una
solución estéril de extracto de levadura al 25%. Entonces se añade
una solución que comprende MgSO_{4}7H_{2}O: 5,9 g/l, glucosa:
300 g/l, (NH_{4})_{2}SO_{4}: 106 g/l, oligoelementos,
manteniendo la concentración de glucosa más allá de 2 g/l. Se
recoge entonces la masa bacteriana 4 horas después de la
introducción del IPTG. Se procede a una diafiltración contra un
tampón tris 0,1 M, NaH_{2}PO_{4} 0,1 M, ditrioteitol 1 Mm, pH
8,0, por filtración a contracorriente (umbral 0,3 \mum).
Tres litros del producto bruto indicado
anteriormente son lisados mediante 4 pasadas a una sobrepresión de
500 bares. El lisado es entonces centrifugado durante 15 mn a 4ºC y
5000 rpm. Se añade entonces al sobrenadante una cantidad suficiente
de urea para obtener una solución 8 M y se ajusta el pH a 8.
Se procede entonces a una purificación por
cromatografía de afinidad sobre una columna de
nickel-NTA agarosa (Qiagen) equilibrada previamente
con 600 ml de tampón A (uréa 8 M, NaH_{2}PO_{4} 0,1 M,
tris-HCl 0,1 M, DTT 1 Mm, pH 8,0). Una vez cargada,
la columna ha sido lavada con 250 ml de tampón A. Se eluye entonces
la proteína utilizando un gradiente discontinuo para obtener la
proteína fusionada que se espera.
Se concentra la solución obtenida de esta manera
sobre una membrana Amicon con un umbral de corte de 3000 daltons
para obtener una concentración final de 10 mg/ml. Así se obtiene un
eluido bruto que contiene la proteína recombinante fusionada del
VIH-1 Tat que se espera.
Se ha producido así una proteína de fusión Tat
fusionada genéticamente con un fragmento peptídico rico en
histidinas que permite su enganchado al nickel con vistas a una
purificación.
El eluato así obtenido será sometido a la
reacción de carboximetilación.
Ejemplo
1
Fase
A
Se añade una solución de la proteína TAT
fusionada con un fragmento peptídico rico en histidina preparada
con la preparación 1 descrita anteriormente para obtener las
siguientes concentraciones: Urea 8 M, Tris HCl 0,3 M, Ditrioteitol
10 Mm, pH 8,4.
Bajo una atmósfera inerte, se añaden 2,6 g de
ácido iodoacético a 100 ml de la solución anterior. Esta solución
es incubada a 37ºC a resguardo de la luz y bajo una atmósfera inerte
durante 90 mn. La reacción es bloqueada por la adición de 1 ml de
\beta-mercaptoetanol al 98% y la incubación
prosigue durante 60 minutos en las mismas condiciones.
La solución resultante de la etapa anterior es
concentrada con ayuda de un concentrador Amicon (Cat#8400) sobre
membrana YM3/(umbral de 3000 D) hasta una concentración de 10
mg/ml.
Entonces se la desala mediante su paso por una
columna Cellufine GH25 (MATREX) equilibrada con ayuda de 300 ml de
una solución de urea 4 M, 0,1 M HCl.
Fase
B
El eluato es entonces ultrafiltrado y tratado
con bromuro de cianógeno para escindir a nivel de la metionina la
parte amino terminal del producto carboximetilado. Se añade bromuro
de cianógeno en exceso bajo atmósfera inerte, en una proporción de
50 moles de bromuro de cianógeno por mol de metionina. Esta solución
es conservada en un recipiente cerrado durante 24 horas a 37ºC. El
exceso de bromuro de cianógeno es eliminado por evaporación a
presión reducida.
La solución obtenida es entonces concentrada,
diafiltrada contra tampón ácido acético-acetato de
sodio 0,05 M, pH 5 utilizando un diafiltrador Amicon provisto de
una membrana YM3 (umbral 3000 KD). La cantidad de producto inactivo
obtenido en solución es del orden de 450 mg.
Esta solución es filtrada en una columna
intercambiadora de iones SP-Sepharose FF equilibrada
previamente con 200 ml de tampón A y el producto es eluido por un
gradiente de NaCl.
El eluato es concentrado de nuevo por
diafiltración en el mismo sistema Amicon, y la fracción obtenida es
purificada por gelfiltración en columna de Sephacryl S (Pharmacia)
equilibrada con tampón fosfato pH 7,4. El producto final es
filtrado sobre una membrana de 0,22 \mum y almacenado a 4º hasta
su utilización.
Este producto ha sido sometido a los análisis
que a continuación se indican, y a sido objeto de test
farmacológicos.
- -
- Cantidad total de producto inactivado dosificado por el test de Bradford: 150 mg.
- -
- Electroforesis sobre gel de poliacrilamida Sulfododecilsulfato-PAGE, coloración plata (Phast System, Pharmacia, gel homogéneo al 20%): banda única con un peso molecular compatible con el esperado. No se han detectado otras bandas con unos pesos superiores o inferiores.
- -
- Electroforesis por gradiente isoeléctrico (Phast System, Pharmacia, GEL IEF 3-9): una sola banda visible.
- -
- Western Blot (Phast System, Pharmacia, anticuerpo monoclonal del hibridoma 5G11): se observa una sola banda y ausencia de material agregado o degradado.
- -
- Actividad biológica (inducción del gen CAT en la descendencia HELA-HIV-1-LTRCAT): no se ha detectado ninguna actividad.
- -
- Secuenciado de la parte N-terminal utilizando la técnica estándar de secuenciado de Edman con un secuenciador Applied Biosystems (modelo 477 A): los 20 primeros ácidos aminados obtenidos coinciden con la secuencia esperada E-P-V-D-P-R-L-E-P-W-K-H-P-G-S-Q-P-K-T-A
- -
- Endotoxinas (test LAL según el protocolo USP XXIII): menos de 0,5 unidades de endotoxinas por mg de proteína.
- -
- Esterilidad (según el protocolo USP XXIII): responde a las normas.
- -
- Medición del grado de sustitución: utilizando un reactivo de Ellman para determinar los grupos sulfidrilo libres en comparación con una curva estándar que mide las cisteinas. Comparando la Tat nativa con la Tat carboximetilada, se ha encontrado que únicamente 0,03% de las cisteinas permanecían activas en la Tat carboximetilada, es decir 1 cisteina activa por 3300 cisteinas inactivas. Un simple cálculo muestra que para tener una molécula Tat con 7 cisteinas activas, en estas condiciones, se necesitarían varios kg de proteína Tat. La inactivación es por lo tanto casi total.
Ejemplo
2
Para el clonado, se utilizan unos iniciadores
Nef para obtener el gen Nef por RT-PCR a partir del
ARN de células infectadas por el VIH-1.
Seguidamente se utiliza el mismo plásmido con el mismo segmento
fusógeno rico en lisina que permite el enganchado sobre la columna
de Nickel. El protocolo de producción y purificación es entonces el
mismo que en el ejemplo 1 pero el corte se realiza por acción de la
enteroquinasa y no del bromuro de cianógeno.
Los resultados de los análisis son similares a
los obtenidos con la proteína Tat.
Ejemplo
3
Esta vez el plásmido no utiliza una proteína de
fusión. La proteína es producida tal cual por ingeniería genética
sin segmento fusógeno, y es purificada utilizando una columna de
cromatografía a la que son enganchados unos anticuerpos
monoclonales anti-IFN\alpha. Una vez eluida, la
proteína es inmediatamente inactivada según el mismo protocolo que
el descrito en el ejemplo 1.
Los resultados de los análisis son idénticos a
los obtenidos con la proteína Tat con un test biológico que muestra
una actividad antiviral (virus VSV sobre células MDBK) nula: la
inactivación biológica es total.
Existe un test simple que muestra el efecto
inmunosupresor de la proteína Tat nativa. Se incuban unas células
de la sangre periférica (PBMCs) son incubadas en un medio sin suero
con proteína Tat nativa o Tat toxoide a unas concentraciones que
varían de 0 a 10 mg/ml. Después de 2 horas de contacto, se añade
suero a la concentración final del 10% y las células son
estimuladas de la forma habitual por Staphylococcus
Enterotoxine B (SEB) o por un antígeno de recuerdo Protein
Purified Derived (PPD). La proliferación es evaluada después de 3
días (SEB) o 5 días (PPD).
Se ve que la proliferación es disminuida de
forma dosis dependiente por la Tat nativa mientras que no lo es por
el toxoide.
En la figura 1, las 4 barras de la izquierda
corresponden a la Tat nativa y las 4 barras de la derecha
corresponden al compuesto del ejemplo 1 (Tat toxoide). Las cifras
de las abcisas son las concentraciones del producto en \mug/ml,
respectivamente 0,1,3, 10 \mug/ml. Las ordenadas precisan la
proliferación de las células T en porcentaje. El control
corresponde a una concentración de Tat utilizada igual a 0. Se ve
que la Tat nativa inhibe la proliferación celular mientras que el
compuesto del ejemplo 1 no tiene efecto.
Se ha utilizado Tat toxoide preparado según el
ejemplo 1 para inmunizar unos ratones. El protocolo de inmunización
es el utilizado clásicamente: Se inyecta por vía intramuscular (im)
a los ratones 100 \mul de emulsión (1:1) en adyuvante completo de
Freund que contiene 20 \mug de producto el día 0 con un recuerdo
de adyuvante incompleto de Freund de 5 \mug los días 21 y 35. El
suero de los ratones es extraído los días -2, 28 y 40 y los
anticuerpos anti-Tat medidos por ELISA sobre unas
placas sensibilizadas con la proteína Tat recombinante nativa (no
tratada químicamente) o con compuesto del ejemplo 1. Los sueros han
sido ensayados a una dilución al 1/1000. Los resultados obtenidos
expresados en densidad óptica sobre 3 ratones inmunizados (1 a 3) y
3 ratones no inmunizados (4 a 6) se presentan en la siguiente
tabla:
\vskip1.000000\baselineskip
Tat nativa | Tat toxoide | ||
Ratón 1 | J-2 | 0,3 | 0,3 |
J-28 | 1,6 | 1,5 | |
J-40 | 2 | 2,1 | |
Ratón 2 | J-2 | 0,2 | 0,3 |
J-28 | 1,9 | 1,8 | |
J-40 | 2,2 | 2,2 | |
Ratón 3 | J-2 | 0,4 | 0,4 |
J-28 | 1,7 | 1,5 | |
J-40 | 1,9 | 2,2 |
(Continuación)
Tat nativa | Tat toxoide | ||
Ratón 4 | J-2 | 0,2 | 0,2 |
J-28 | 0,3 | 0,2 | |
J-40 | 0,3 | 0,3 | |
Ratón 5 | J-2 | 0,4 | 0,4 |
J-28 | 0,4 | 0,3 | |
J-40 | 0,3 | 0,3 | |
Ratón 6 | J-2 | 0,3 | 0,3 |
J-28 | 0,4 | 0,3 | |
J-40 | 0,3 | 0,3 |
Estos resultados muestran que los ratones
inmunizados por el toxoide producen unos anticuerpos que reconocen
de la misma manera la proteína nativa y el toxoide.
Estos anticuerpos son además neutralizantes.
Esto ha sido establecido con la ayuda de 2 test diferentes:
El test de inactivación de la proteína Tat. Se
añade a unas células en cultivo de la descendencia
HELA-HIV-1-LTR-CAT,
que son transfectadas de manera estable con un plásmido que
contiene el Long Terminal Repeat (LTR) del VIH-1
como promotor del gen Chloranfenicol Acetil Transferasa (CAT), de la
proteína Tat nativa o del toxoide Tat, o de la proteína Tat nativa
preincubada 1 hora con suero (dilución 1/50) de ratones (J 0 o J
40), inmunizado o no inmunizado. La proteína Tat nativa a 5
\mug/ml penetra en las células y va a desarrollar su función de
transactivador sobre el LTR del VIH-1 e inducir la
expresión de la proteína CAT. Después de 48 H, las células son
lisadas y la cantidad de proteína CAT presente es medida por un test
ELISA (Boehringer). Los resultados están expresados en densidad
óptica:
Nº del ratón/día | DO (medida de proteína CAT) | |
Tat nativa | 1,4 | |
TaT toxoide | 0,2 | |
Tat nativa + suero de ratón | 2/J 0 | 1,5 |
Tat nativa + suero de ratón | 6/J 0 | 1,3 |
Tat nativa + suero de ratón | 2/J 40 | 0,3 |
Tat nativa + suero de ratón | 6/J 40 | 1,4 |
Estos resultados muestran que el suero de ratón
inmunizado (ratón 2) contiene unos anticuerpos que neutralizan la
proteína Tat nativa, lo que no es el caso para el suero de un ratón
no inmunizado.
Así mismo, si se utilizan los anticuerpos
producidos por los ratones inmunizados con el toxoide en el test de
inmunosupresión descrito en el estudio farmacológico 1) anterior
(dilución 1/50), se bloquea el efecto inmunosupresor de la proteína
Tat nativa.
Todos estos casos muestran que el compuesto del
ejemplo 1 es inmunógeno y permite inducir una respuesta inmunitaria
que neutraliza la proteína nativa.
Se ha utilizado toxoide IFN\alpha preparado
según el ejemplo 3 para inmunizar unos ratones. El protocolo de
inmunización es el utilizado clásicamente: los ratones son
inyectados (en im) con 100 \mul de emulsión (1:1) en adyuvante
completo de Freund que contiene 20 \mug de producto al día 0 con
un recuerdo en adyuvante incompleto de Freund de 5 \mug los días
21, y 35, 45. El suero de los ratones es extraído los días –2, 28 y
50 y analizado por ELISA sobre unas placas sensibilizadas con
proteína IFN\alpha recombinante nativa (no tratada químicamente)
o con toxoide. Los sueros han sido ensayados a una dilución al
1/1000. Los resultados obtenidos en densidad óptica sobre 3 ratones
inmunizados (1 a 3) y 3 ratones no inmunizados (4 a 6) se presentan
en la siguiente tabla:
IFN\alpha nativa | IFN\alpha toxoide | ||
Ratón 1 | J-2 | 0,3 | 0,3 |
J-28 | 1 | 0,9 | |
J-50 | 2,1 | 2,1 | |
Ratón 2 | J-2 | 0,2 | 0,3 |
J-28 | 1,2 | 1,1 | |
J-50 | 1,9 | 2 | |
Ratón 3 | J-2 | 0,4 | 0,4 |
J-28 | 0,8 | 0,9 | |
J-50 | 2 | 2,1 | |
Ratón 4 | J-2 | 0,1 | 0,1 |
J-28 | 0,2 | 0,2 | |
J-50 | 0,1 | 0,1 | |
Ratón 5 | J-2 | 0,2 | 0,2 |
J-28 | 0,2 | 0,2 | |
J-50 | 0,2 | 0,3 | |
Ratón 6 | J-2 | 0,3 | 0,3 |
J-28 | 0,2 | 0,3 | |
J-40 | 0,3 | 0,3 |
Estos resultados muestran que los ratones
inmunizados por el toxoide producen unos anticuerpos que reconocen
de la misma manera la proteína nativa y el toxoide. Por otra parte
esto confirma la inocuidad de la inmunización por el toxoide
IFN\alpha puesto que los ratones han tolerado muy bien la
inmunización.
Además estos anticuerpos son neutralizantes.
Esto ha sido establecido por el test clásico de virus VSV sobre las
células MDBK. Normalmente añadiendo de 1 a 10 unidades de
interferón, las células se vuelven resistentes a la lisis por el
virus VSV. Incubando la IFN\alpha nativa con el suero del ratón 1
ó 4 (J 0, J 50) diluidos al 1/50, se observa la lisis únicamente
cuando la IFN\alpha nativa ha sido preincubada con el suero del
ratón 1 de J 50.
Este ejemplo muestra que el compuesto del
ejemplo 3 es inmunógeno, con formación de anticuerpos
neutralizantes.
Se ha utilizado Nef toxoide preparado según el
ejemplo 2 para inmunizar unos ratones. El protocolo de inmunización
es el utilizado clásicamente: se inyectan por vía im a los ratones
100 \mul de emulsión (1:1) en adyuvante completo de Freund que
contiene 20 \mug de producto al día 0 con un recuerdo en adyuvante
incompleto de Freund de 5 \mug en los días 21, y 35. El suero de
los ratones es extraído los días –2, 28 y 40 y analizado por ELISA
sobre unas placas sensibilizadas con proteína Nef recombinante
nativa (no tratada químicamente) o con el toxoide del ejemplo 2.
Los sueros han sido ensayados a una dilución al 1/1000. Los
resultados obtenidos expresados en densidad óptica sobre 3 ratones
inmunizados (1 a 3) y 3 ratones no inmunizados (4 a 6) se presentan
en la siguiente tabla:
\newpage
Nef nativa | Nef toxoide | ||
Ratón 1 | J-2 | 0,1 | 0,1 |
J-28 | 1 | 0,9 | |
J-50 | 2,1 | 2,1 | |
Ratón 2 | J-2 | 0,1 | 0,1 |
J-28 | 1,5 | 1,4 | |
J-50 | 1,9 | 2 | |
Ratón 3 | J-2 | 0,1 | 0,1 |
J-28 | 0,8 | 0,9 | |
J-50 | 1,6 | 1,6 | |
Ratón 4 | J-2 | 0,1 | 0,1 |
J-28 | 0,1 | 0,1 | |
J-50 | 0,1 | 0,1 | |
Ratón 5 | J-2 | 0,1 | 0,1 |
J-28 | 0,1 | 0,1 | |
J-50 | 0,1 | 0,1 | |
Ratón 6 | J-2 | 0,1 | 0,1 |
J-28 | 0,1 | 0,1 | |
J-40 | 0,1 | 0,1 |
Estos resultados muestran que los ratones
inmunizados por el toxoide del ejemplo 2 producen unos anticuerpos
que reconocen de la misma manera la proteína nativa y el toxoide.
Por otra parte esto confirma la inocuidad de la inmunización por el
toxoide Nef puesto que los ratones han tolerado muy bien la
inmunización.
Se ha desarrollado un test de inmunosupresión
inducida por la infección VIH-1 in vitro.
Este test es realizado de la siguiente forma:
Se infectan unas células de la sangre periférica
(PBMCs) de un sujeto sano con una cepa de VIH-1
linfotrópico (HIV-HTLVIIIB). Después de realizar
una estimulación por fitohemaglutinina (PHA) y un cultivo durante 6
días en presencia de interleucina-2, las células
son irradiadas. Las células irradiadas son supresivas puesto que
son capaces de inhibir la proliferación de PBMCs autólogas
estimuladas por unos antígenos como el SEB o el PPD. Este efecto
inmunosupresor no va unido a un virus residual después de la
irradiación puesto que los tests de dosificación de la
transcriptasa inversa o del antígeno p24 en los sobrenadantes son
negativos. Si se realiza una preparación de células sin virus
(control), irradiadas de la misma manera 6 días después de la
estimulación por PHA, y se añaden a unas células autólogas
estimuladas por SEB o PPD no se observa ninguna inhibición de la
proliferación. El efecto inhibidor es debido al virus
VIH-1.
J F Zagury et al., (Cell Pharmacol AIDS
Sciences, 1996, Vol. 3, p. 97-103, A critical role
of the Tat and IFN\alpha in the HIV-1 induced
immunosuppression leading to AIDS) describe que la génesis de estas
células supresivas depende a la vez del IFN\alpha y de la
proteína Tat puesto que unos anticuerpos que neutralizan estas 2
proteínas inhiben la formación de las células supresivas. Cuando en
una experiencia de este tipo, se han añadido simultáneamente los
sueros (diluidos al 1/50) de los ratones inmunizados con los
productos descritos en los ejemplos 1 y 3 (Tat toxoide y
IFN\alpha toxoide), estos sueros bloquean la generación de
células supresoras. Este no es el caso con los sueros de ratones no
inmunizados (control negativo) o con los sueros tomados antes de la
inmunización. Si se utiliza suero de ratones inmunizados con la Tat
toxoide únicamente, no se bloquea la inmunosupresión. Por el
contrario, cuando se utiliza suero de ratones inmunizados con el
toxoide IFN\alpha, la inhibición de la supresión es del 70%. Si se
combinan los 2 sueros anti-Tat y
anti-IFN\alpha, se bloquea completamente la
génesis de las células supresoras. Se han obtenido estos resultados
utilizando diversos lotes de virus, en particular unos aislados
primarios. Esto demuestra que los anticuerpos
anti-Tat, obtenidos con solo un toxoide, pueden de
todas formas tener una reactividad cruzada.
Estos resultados descritos por J F Zagury et
al. (Cell Pharmacol AIDS Sciences, 1996, Vol. 3, P.
97-103, A critical role of the Tat and IFN\alpha
in the HIV-1 induced immunossuppression leading to
AIDS) confirman el efecto inhibidor combinado de la Tat y de la
IFN\alpha respecto al estado inmunosupresor en los pacientes en
la fase SIDA. Se confirman además la función iniciadora de la Tat y
la función determinante de la IFN\alpha en esta inmunosupresión
(ver publicación D. Zagury et al. (IFN and Tat involvement in
the immunossuppresion of uninfected T cells and C-C
chemokine decline in AIDS, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1998, en
prensa). Los resultados de estos trabajos muestran la necesidad de
luchar contra la proteína Tat extracelular por inducción de una
respuesta anticuerpo neutralizante interviniendo, si es posible,
desde la producción de la Tat por inducción de una respuesta
inmunitaria celular.
Las tablas 1, 2 y 3 describen los resultados
obtenidos durante un ensayo de fase 1 utilizando los toxoides de
los ejemplos 1 y 3 en emulsión 50-50 con ISA 51
(SEPPIC): volumen de 1 ml que contiene 100 \mug de un agente
activo según la invención. Las respuestas a la IFN\alpha toxoide
(datos no representados aquí) son similares a las ya descritas en
las publicaciones de Gringeri et al. en JAIDS 1994, Vol. 7,
978-988 y 1996, Vol. 13, 55-67
sobre un toxoide realizado por formolación.
Tabla 1: descripción de los pacientes incluidos
en el ensayo de fase 1
Tabla 2: parámetros biológicos en los tiempos
iniciales y finales (en general sobre 6 meses).
Tabla 3: análisis de la respuesta específica
anti-Tat
Código | Edad | Sexo | Factor de | Edad en el momento | Tratamiento | Inmunización | |
riesgo | de la seroconversión | antiviral | anti-IFN\alpha | ||||
Con proteinasa | |||||||
1 | 25 | M | Hemofilia | 12 | O | O | O |
2 | 39 | M | Hemofilia | 26 | N | N | N |
3 | 33 | F | Compañero sexual | 26 | O | O | O |
4 | 38 | M | Hemofilia | 23 | N | N | O |
5 | 25 | M | Hemofilia | 12 | N | N | N |
6 | 31 | M | Hemofilia | 19 | O | N | N |
7 | 19 | M | Hemofilia | 7 | N | N | O |
8 | 35 | M | Hemofilia | 22 | O | N | O |
9 | 26 | M | Hemofilia | 15 | N | N | N |
10 | 38 | M | Hemofilia | 26 | N | N | N |
11 | 26 | M | Hemofilia | 14 | O | O | N |
12 | 33 | M | Hemofilia | 20 | O | O | N |
13 | 40 | F | Compañero sexual | 36 | N | N | N |
14 | 26 | F | Compañero sexual | 20 | N | N | O |
\vskip1.000000\baselineskip
Código | Seguimiento | Recuento de las células | Virémie VIH-1 | Antígenos | |||
en meses | CD4 en células/mm^{3} | anti-VIH | |||||
Antes | Después | Basal | Después | Basal | Después | ||
1 | 8 | 284(28,4%) | 345(34,5%) | 5,75 | 5,71 | 11 | 4. |
2 | 8 | 453(16,8%) | 534(18,4%) | 2,06 | 2,15 | 32 | 3. |
3 | 12 | 227(28,4%) | 345(34,5%) | 0,35 | <0,005 | 17 | 4. |
4 | 3 | 287(22,1%) | 252(21,0%) | 0,49 | 0,70 | 3 | 3. |
5 | 5 | 282(28,2%) | 319(22,8%) | 3,34 | 0,91 | 4 | 4. |
6 | 9 | 224(11,8%) | 294(12,8%) | 5,23 | 3,90 | 3 | 3. |
7 | 3 | 313(24,1%) | 443(23,3%) | 5,39 | 5,55 | 4 | 4. |
8 | 4 | 275(30,6%) | 314(31,4%) | 4,12 | 3,18 | 5 | 4. |
9 | 6 | 274 (8,3%) | 386(9,9%) | 5,08 | 5,74 | 4 | 5. |
10 | 8 | 295(22,7%) | 372(26,6%) | 4,02 | 3,9 | 5 | 4. |
11 | 4 | 219(16,9%) | 235(23,5%) | 4,01 | <1 | 8 | 3. |
12 | 12 | 272(20,9%) | 340(30,9%) | 4,74 | 2,30 | n.a. | 4. |
13 | 9 | 435(33,5%) | 478(28,1%) | 4,30 | 4,07 | 3 | 4. |
14 | 3 | 257(13,5%) | 274(13,7%) | 2,05 | 2,90 | 3 | 3. |
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(Tabla pasa a página
siguiente)
Código de | Inmunización | Respuesta | Anticuerpos anti-Tatl | Respuesta | Respuesta | |
paciente | Tipo (A/B) | anti-Tatl | (en unidades de | HSR | CMI | |
anticuerpos | Densidad óptica) | |||||
Basal | Pico | |||||
1 | B | 0 | 0,240 | 1,230 | n.a. | n.a. |
2 | A | 0 | 0,104 | 1,526 | n.a. | POS |
3 | B | 0 | 0,217 | 0,537 | NEG | NEG |
4 | B | 0 | 0,214 | 1,063 | POS | n.a. |
5 | A | 0 | 0,446 | 1,612 | n.a. | n.a. |
6 | A | 0 | 0,213 | 0,664 | NEG | NEG |
7 | A | 0 | 0,204 | 1,139 | n.a. | n.a. |
8 | B | 0 | 0,104 | 1,045 | POS | POS |
9 | A | 0 | 0,422 | 0,812 | NEG | n.a. |
10 | B | 0 | 0,125 | 1,492 | n.a. | n.a. |
11 | A | 0 | 0,252 | 0,682 | NEG | n.a. |
12 | A | 0 | 0,410 | 2,219 | POS | POS |
13 | A | 0 | 0,162 | 0,508 | POS | POS |
14 | B | 0 | 0,120 | 2,012 | n.a | n.a |
HSR: Hipersensibilidad retardada | ||||||
CMI: Inmunidad con mediación celular |
Claims (27)
1. Proteína o fragmento de proteína de 8 a 110
ácidos aminados, caracterizada porque son carboximetilados
por reacción con el ácido idoacético y porque se trata de una
proteína de regulación viral o fragmento de proteína de regulación
viral.
2. Proteína o fragmento según la reivindicación
1, caracterizada porque el virus es el VIH-1
ó VIH-2.
3. Proteína o fragmento según la reivindicación
1 ó 2, caracterizada porque es una proteína de regulación
viral o un fragmento de proteína de regulación viral.
4. Proteína o fragmento según la reivindicación
1 ó 2, caracterizada porque proviene de Tat.
5. Procedimiento de preparación de una proteína
o de un fragmento tal como el definido a la reivindicación 1,
caracterizado porque se somete dicha proteína o dicho
fragmento a una carboximetilación por reacción con el ácido
iodoacético, para obtener el compuesto esperado que se aísla.
6. Procedimiento según la reivindicación 5,
caracterizado porque dicha proteína o dicho fragmento se
presenta en forma fusionada con un marcador (FP) durante la
carboximetilación.
7. Procedimiento según la reivindicación 6,
caracterizado porque el marcador es escindido después de la
purificación.
8. Procedimiento según la reivindicación 6 ó 7,
caracterizado porque el marcador comprende un compuesto
peptídico que comprende varias histidinas.
9. Proteína o fragmento según la reivindicación
1, para su utilización en un método de tratamiento terapéutico del
cuerpo humano o animal.
10. Proteína o fragmento de 8 a 110 ácidos
aminados de la proteína Tat del VIH-1
carboximetilada por reacción con el ácido iodoacético para su
utilización en un método de tratamiento terapéutico del cuerpo
humano o ani-
mal.
mal.
11. Composición farmacéutica,
caracterizada porque contiene a título de principio activo
una al menos de las proteínas o fragmentos carboximetilados tales
como los definidos en la reivindicación 1, así como un excipiente
farmacéuticamente aceptable.
12. Composición farmacéutica,
caracterizada porque contiene a título de principio activo
una al menos de las proteínas o fragmentos tales como los definidos
en cualquiera de las reivindicaciones 2 a 4 así como un excipiente
farmacéuticamente aceptable.
13. Vacuna, caracterizada porque contiene
a título de principio activo una al menos de las proteínas o
fragmentos tales como las definidas en una de las reivindicaciones
1 a 4.
14. Proteína, caracterizada porque se
obtiene por carboxiamidometilación por reacción con la iodoacetamida
y porque se trata de una proteína de regulación viral.
15. Proteína según la reivindicación 14,
caracterizada porque el virus es el VIH-1 o
el VIH-2.
16. Proteína según una de las reivindicaciones
14 ó 15, caracterizada porque consiste en la proteína
Tat.
17. Procedimiento de preparación de una proteína
según una de las reivindicaciones 14 a 16, caracterizado
porque se somete dicha proteína a una carboxiamidometilación por
reacción con la iodoacetamida, para obtener el compuesto esperado
que se aísla.
18. Procedimiento según la reivindicación 17,
caracterizado porque la proteína se presenta en forma
fusionada con un marcador (FP) cuando tiene lugar la
carboxiamidometilación.
19. Procedimiento según la reivindicación 18,
caracterizado porque el marcador es escindido después de la
purificación.
20. Procedimiento según una de las
reivindicaciones 18 y 19, caracterizado porque el marcador
comprende un compuesto peptídico que comprende varias
histidinas.
21. Fragmento de proteína de 8 a 110 ácidos
aminados, caracterizado porque se obtiene por
carboxiamidometilación por reacción con la iodoacetamida, porque se
trata de un fragmento de una proteína de regulación viral, que se
presenta en forma fusionada con un marcador (FP) cuando tiene lugar
la carboxiamidometilación.
22. Fragmento según la reivindicación 21,
caracterizado porque el marcador comprende un compuesto
peptídico que comprende varias histidinas.
23. Proteína o fragmento de proteína según una
de las reivindicaciones 14 a 16 y 21 a 22, para su utilización en
un método de tratamiento terapéutico del cuerpo humano o animal.
24. Composición farmacéutica,
caracterizada porque contiene a título de principio activo al
menos una proteína o un fragmento de proteína tales como los
definidos en una de las reivindicaciones 14 a 16 y 21 a 22, así
como un excipiente farmacéuticamente aceptable.
25. Vacuna, caracterizada porque contiene
a título de principio activo al menos una proteína o fragmento de
proteína tales como los definidos en una de las reivindicaciones 14
a 16 y 21 a 22.
26. Vacuna según la reivindicación 25,
caracterizada porque comprende un excipiente
farmacéuticamente aceptable.
27. Vacuna según la reivindicación 26,
caracterizada porque el excipiente farmacéuticamente
aceptable consiste en un adyuvante.
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