ES2261681T3 - Nuevos derivados del hialuronano. - Google Patents
Nuevos derivados del hialuronano.Info
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Abstract
Utilización de los derivados de hialuronano en el que los grupos hidroxilo se encuentran esterificados o carbamoilados en unas cantidades comprendidas entre el 0, 01% y el 100% y en que los grupos carboxilo se encuentran total o parcialmente esterificados con alcoholes o se encuentran en forma salina, encontrándose su viscosidad intrínseca comprendida entre 0, 1 y 22 dl/g, en la preparación de fases estacionarias cromatográficas.
Description
Nuevos derivados del hialuronano.
El objetivo de la presente invención se refiere
a los derivados de hialuronano. Dichos nuevos compuestos presentan
unas características físico-químicas específicas que
hacen que sean adecuados para distintos propósitos. Pueden resultar
útiles por ejemplo como, selectores quirales en columnas
cromatográficas para la separación de enantiómeros.
El hialuronano, al que de ahora en adelante nos
referiremos como HA, es un componente importante de un amplio grupo
de biopolímeros naturales que se conocen también como
glucosaminoglucanos (GAGs). Dichos polímeros en proporciones
distintas con colágenos y glucoproteínas determinan la estructura y
la función de la matriz extracelular de los tejidos y órganos
animales. Su peso molecular medio se encuentra comprendido entre 1 y
10 millones en la mayoría de tejidos. El hialuronano está compuesto
de una unidad de repetición formada por un disacárido, el ácido
N-acetilhialobiurónico que consiste en unidades de
repetición del ácido D-glucurónico y la
2-acetamido-2-desoxi-D-glucosa
(N-acetilglucosamina) unidas mediante un enlace
glucosídico \beta(1 \rightarrow 3). Cada unidad de
repetición se une con la siguiente mediante un enlace glucosídico
\beta(1 \rightarrow 4) que forma un polímero lineal. El
número de dichas unidades de repetición en un polímero puede
alcanzar varios miles y producir una cadena de varios miles de
daltonios. El término "hialuronano" se utiliza habitualmente
para describir un grupo general de fracciones moleculares de HA con
unos pesos moleculares variables o también fracciones hidrolizadas
de dicho compuesto. El HA se encuentra presente en los organismos
superiores y puede extraerse a partir de fuentes animales, por
ejemplo de crestas de gallo, del cordón umbilical, de fuentes
microbianas (tales como por ejemplo algunas bacterias tales como
Streptococcus y
Pasteurella).
Pasteurella).
El HA desempeña un papel importante en diversos
procesos biológicos en los que la motilidad celular y las
interacciones intercelulares, además de su papel estructural que se
deriva de sus propiedades lubrificantes e hidratantes. Debido a
dichas propiedades biológicas, siempre se ha centrado la atención en
las aplicaciones biomédicas de dicho polímero. Como consecuencia de
ello, el HA se ha utilizado mucho en viscosuplementación y en
viscocirugía, y en particular en el tratamiento de las artropatías y
en la cirugía oftalmológica en la que se ha utilizado el HA sin
modificar en forma de gel acuoso.
Se ha encontrado un uso distinto para el
hialuronano, que consiste en la cromatografía de afinidad para la
separación de proteínas del cartílago. Dichas proteínas se separan
de los otros componentes mediante un enlace biológico específico con
dicho polímero. Dicho uso se basa en la actividad biológica de dicho
polímero, que consiste en la interacción fuerte entre el hialuronano
y la proteína. Dicho uso constituye el único uso del hialuronano sin
modificar que no forme parte de una aplicación biomédica.
Sin embargo, dicho uso también se encuentra
relacionado con las propiedades biológicas del HA debido a que
aprovecha la interacción específica del HA con la proteína.
Contrariamente, no se conoce nada de la interacción del dicho
polímero con sustratos distintos de los biológicos, tales como los
sustratos lipófilos y apolares.
Los derivados químicos del HA han sido muy
estudiados con el objetivo de mantener la biocompatibilidad de la
molécula y de obtener polímeros que se puedan procesar en productos
o artículos fabricados tales como sondas, endoprótesis, membranas,
esponjas, hilos y dispositivos quirúrgicos para implantes. Las
publicaciones describen dos propuestas generales de modificación
química del HA:
(a) entrecruzamiento del HA mediante reactivos
químicos bifuncionales y (b) la modificación del HA con reactivos
monofuncionales. Este último enfoque recurre a la presencia de tres
grupos reactivos presentes (los grupos acetamido, carboxilo e
hidroxilo) en el HA. El esfuerzo principal se dirigió a las
modificaciones químicas de las funciones carboxilo e hidroxilo. Las
reacciones de esterificación de los grupos carboxilo del HA se
describen en el documento EP 216453 que ilustra la esterificación
tanto total como parcial de los grupos carboxilo del HA con haluros
orgánicos monofuncionales para la producción de materiales con unas
propiedades interesantes y para utilizar en cosméticos, cirugía o
medicina. Las reacciones de amidación del HA se describen en el
documento US 4.937.270 que se refiere a un procedimiento de
preparación de un gel biocompatible insoluble en agua.
En lo que se refiere a los grupos hidroxilo del
HA, en las publicaciones se describen diversas reacciones de
esterificación. El documento US 5.679.657 describe la sal sódica de
HA en la que los grupos hidroxilo 2.6-3.6 de cada
unidad de repetición disacárida se convirtieron en grupos
acetilo.
Dicho producto es soluble en mezclas de agua y
etanol al 90% (p/p) y se analizó en relación con sus propiedades
suavizantes. Resultan solubles en mezclas de agua y etanol al 90%
(p/p). El éster de las sales de hialuronano con el ácido butírico
también se ha descrito en las técnicas actuales (documento WO
98/23648) como agente antiproliferativo.
El documento
JP-A-54036388 da a conocer unos
materiales polisacáridos que contienen por lo menos un grupo ácido
que se vuelve insoluble por el entrecruzamiento, la esterificación o
la eterificación de los grupos hidroxilo o por la esterificación de
los grupos ácido. Los materiales obtenidos son porosos y se utilizan
en la preparación de membrana para ultrafiltración, ósmosis inversa,
intercambiadores de iones, transportadores o riñones
artificiales.
El documento
JP-A-6025306 da a conocer unos
derivados del ácido hialurónico en los que los grupos hidroxilo se
encuentran esterificados con ácidos grasos que presentan por lo
menos 12 átomos de carbono y los grupos carboxilo se encuentran en
forma salificada o en forma ácida. Los derivados ácidos del ácido
hialurónico obtenidos de este modo se utilizan en la preparación de
fibras usadas en la sutura de heridas o en lámina finas destinadas a
la protección de heridas.
En lo que se refiere a la esterificación total
de tanto los grupos carboxilo como hidroxilo del HA, únicamente una
referencia bibliográfica (Khan et al., Carbohydrate
Research (1998) 306, 137-146) describe la
preparación de un derivado completamente acetilado del éster
bencílico (éster bencílico del hialuronano acetilado) y no se
encuentran más detalles sobre sus propiedades y usos posibles.
El propósito de dichos estudios sobre las
modificaciones químicas del HA desarrollados hasta la fecha se ha
relacionado con la preparación de nuevos derivados del HA que
mantienen las propiedades de biocompatibilidad natural y con la
preparación de nuevos biomateriales o nuevos sistemas de liberación
de fármacos que resulten útiles en la realización de productos
comerciales. Hasta el momento, todos los principales esfuerzos para
preparar hialuronano modificado químicamente se han centrado
únicamente en aplicaciones médicas; dicho polímero no se ha
orientado todavía a aplicaciones no biocompatibles.
Figura 1: lista de racematos analizados
La invención describe nuevos derivados del
hialuronano en los que los grupos hidroxilo se encuentran
esterificados o carbamoilados en cantidades comprendidas entre el
0,01% y el 100% y los grupos carboxilo se encuentran esterificados
total o parcialmente con alcoholes o se encuentran en forma
salina.
Los grupos hidroxilo se encuentran esterificados
con ácidos alifáticos lineales o ramificados, saturados o
insaturados y que presentan hasta 24 átomos de carbono; con ácidos
cicloalifáticos o alifático cicloalifáticos, tanto monocíclicos como
policíclicos, que presentan hasta 34 átomos de carbono; con ácidos
arilalifáticos en los que la cadena alifática presenta de 1 a 4
átomos y el residuo arilo puede sustituirse posiblemente con
alquilos C_{1}-C_{5} lineales o ramificados,
halógenos, grupos nitro, grupos ciano, grupos hidroxilo, grupos
amino, grupos metoxi; con ácidos de arilo en los que el residuo de
arilo puede sustituirse con alquilos C_{1}-C_{5}
lineales o ramificados, halógenos, grupos nitro, grupos ciano,
grupos hidroxilo, grupos metoxi; con ácidos inorgánicos; con ácidos
heterocíclicos aromáticos o no aromáticos, posiblemente condensados
con anillos aromáticos o no aromáticos, en los que el grupo
heterocíclico presenta de 3 a 20 átomos de carbono y puede
sustituirse posiblemente con alquilos
C_{1}-C_{5} lineales o ramificados, halógenos,
grupos nitro, grupos ciano, grupos hidroxilo, grupos amino y grupos
metoxi; y con ácidos inorgánicos. Los ejemplos de ésteres obtenidos
mediante la esterificación de los grupos hidroxilo con ácidos
alifáticos comprenden: el acetato, el butirato, el propionato, el
retinoato y el acetato de n-propilo. Los ejemplos de
ésteres obtenidos mediante la esterificación de los grupos hidroxilo
con los ácidos cicloalifáticos o alifáticos cicloalifáticos
comprenden: el carboxilato de ciclohexano, el acetilato de
ciclohexano y el carboxilato de ciclopropano. Los ejemplos de
ésteres obtenidos mediante la esterificación de los grupos hidroxilo
con los ácidos arilalifáticos comprenden: el acetato de fenilo, el
acetato de naftilo, el
2-(4-isobutilfenil)propionato, el
2-(6-metoxi-2-naftil)propionato
y el cinamato. Los ejemplos de ésteres obtenidos mediante la
esterificación de los grupos hidroxilo con los ácidos arílicos
comprenden: el benzoato, el benzoato sustituido tal como: el
halobenzoato, el alquilbenzoato, el nitrobenzoato y el
2-acetoxibenzoato. Los ejemplos de ésteres obtenidos
mediante la esterificación de los grupos hidroxilo con los ácidos
inorgánicos comprenden: el nitrato. Los ejemplos de ésteres
obtenidos mediante la esterificación de los grupos hidroxilo con los
ácidos heterocíclicos comprenden: el ácido cincónico, el ácido
quínico, la prolina, el ácido nicotínico y el ácido mecónico.
Como alternativa a la esterificación, los grupos
hidroxilo pueden presentarse carbamoilados con isocianatos de
alquilo, de alquilarilo, de arilo posiblemente sustituidos en los
que tanto el residuo alquilo lineal como ramificado, saturado o
insaturado, presenta de 2 a 6 átomos de carbono y el residuo arilo
consiste en un residuo mononuclear o polinuclear, posiblemente
sustituidos con alquilos C_{1}-C_{5} lineales o
ramificados, grupos halo, grupos nitro, grupos ciano, grupos
hidroxilo y grupos metoxi. Los ejemplos de carbamoilatos comprenden:
los halofenilcarbamoilatos, los alquifenilcarbamoilatos, los
dialquilfenilcarbamoilatos, los dihalofenilcarbamoilatos, los
haloalquilfenilcarbamoilatos, los trialquilfenilcarbamoilatos, los
metilfenilcarbamoilatos, los ciclohexilcarbamoilatos, los
terc-butilcarbamoilatos, los
1-feniletilcarbamoilatos y los bencilcarbamoilatos.
En dichos derivados de la invención, todos los grupos hidroxilo,
tanto los primarios como los secundarios, se pueden esterificar o
carbamoilar del mismo modo, o se pueden esterificar o carbamoilar
también los grupos primarios de un modo distinto al de los grupos
hidroxilo secundarios.
En los derivados de la invención, los grupos
carboxilo del hialuronano se encuentran total o parcialmente
esterificados con alcoholes o se encuentran en forma salina. Los
alcoholes aptos para la esterificación son los alcoholes alifáticos,
arílicos, cicloalifáticos o heterocíclicos. Los alcoholes alifáticos
consisten en alcoholes lineales o ramificados que presentan hasta 34
átomos de carbono, pueden encontrarse saturados o insaturados,
posiblemente sustituidos con halógenos, grupos nitro, grupos ciano,
grupos hidroxilo, grupos amino y grupos metoxi. Los ejemplos
comprenden el alcohol metílico, el alcohol etílico y el alcohol
propílico.
Los alcoholes que contienen residuos de benceno
posiblemente sustituidos con cadenas alquilo de 1 a 6 átomos de
carbono, con halógenos, con grupos hidroxilo y con grupos amino
pertenecen a los alcoholes arilalifáticos. Los ejemplos comprenden
el alcohol bencílico y el alcohol feniletílico. Los alcoholes
cicloalifáticos comprenden también los alcoholes
alifáticos-cicloalifáticos, pueden ser tanto
monocíclicos como policíclicos y pueden presentar hasta 34 átomos de
carbono. Los alcoholes heterocíclicos pueden contener heteroátomos
seleccionados de entre el grupo que consiste en O, S y N; pueden ser
tanto aromáticos como no aromáticos, encontrarse posiblemente
condensados con anillos tanto aromáticos como no aromáticos y
posiblemente sustituidos con alquilos
C_{1}-C_{5} lineales o ramificados, grupos halo,
grupos nitro, grupos ciano, grupos hidroxilo, grupos amino y grupos
metoxi. Los ejemplos comprenden: el tocoferol y la quercetina.
El grado de sustitución de los grupos hidroxilo
se expresa como porcentaje (%) de los grupos hidroxilo esterificados
o de los grupos carbamoilados. El grado de sustitución de los
derivados de la invención está comprendido entre el 0,01 y el 100%.
Los dos intervalos de sustitución preferidos de los grupos hidroxilo
son 0,01-0,2% y 7-100%.
Los grupos carboxilo de los derivados de la
invención se encuentran esterificados tanto totalmente como
parcialmente con alcoholes o se encuentran en forma de sal. El grado
de esterificación de los grupos carboxilo se expresa como porcentaje
(%) de los grupos carboxilo modificados con alcohol. El grado de
esterificación es del 100% cuando todos los grupos carboxilo se
encuentran esterificados. Cuando se encuentran parcialmente
esterificados, los grupos no esterificados se encuentran salificados
con cationes metálicos alcalinos, cationes metálicos alcalinotérreos
y cationes que contienen nitrógeno. Los cationes que contienen
nitrógeno comprenden aquéllos que contienen nitrógeno orgánico,
tales como las sales de tetraalquilamonio, en las que el grupo
alquilo presenta de 1 a 5 átomos de carbono. Otros ejemplos
comprenden las sales de lutidina, colidina e imidazol.
Cuando los derivados se encuentran parcialmente
esterificados, el grado preferido de esterificación es superior al
50%.
Los derivados preferidos del hialuronano de la
invención pertenecen a los grupos siguientes:
- primer grupo: derivados del hialuronano en los
que los grupos hidroxilo se encuentran esterificados o carbamoilados
en cantidades comprendidas entre el 0,01% y el 0,2% y los grupos
carboxilo se encuentran completamente esterificados (100% de grado
de esterificación);
- segundo grupo: derivados del hialuronano en
los que los grupos hidroxilo se encuentran esterificados o
carbamoilados en cantidades comprendidas entre el 70% y el 100% y
los grupos carboxilo se encuentran completamente esterificados (100%
de grado de esterificación);
- tercer grupo: derivados del hialuronano en los
que los grupos hidroxilo se encuentran esterificados o carbamoilados
en cantidades comprendidas entre el 70% y el 100% y los grupos
carboxilo se encuentran en forma salina.
Los compuestos preferidos que pertenecen, en lo
que se refiere a la sustitución y la esterificación, a uno de los
grupos anteriores presentan los grupos hidroxilo esterificados con
ácidos alifáticos lineales o ramificados, saturados o insaturados;
con ácidos arialifáticos; con ácidos arílicos, o presentan los
grupos hidroxilo carbamoilados con alquilarilo o arilisocianatos
posiblemente sustituidos; dichos compuestos presentan los grupos
carboxilo esterificados parcial o totalmente con alcoholes
alifáticos, arilalifáticos o arílicos o los grupos carboxilo se
encuentran en forma de cationes que contienen nitrógeno. Los
derivados preferidos comprenden hialuronano fenilcarbamoilado de
tetrabutilamonio, el éster bencílico del hialuronano
fenilcarbamoilado, el éster bencílico de benzoato de hialuronano, el
éster metílico del hialuronano butirado, el éster metílico del
hialuronano fenilcarbamoilado, el éster metílico del fenilacetato de
hialuronano, el éster metílico del benzoato de hialuronano, el éster
alílico del hialuronano fenilcarbamoilado, el éster bencílico del
hialuronano butirado, el éster bencílico del fenilacetato de
hialuronano, el éster bencílico del hialuronano
3,5-dimetilfenilcarbamoilado, el éster metílico del
3,5-dimetilfenilacetato de hialuronano.
Otro objetivo adicional de la invención consiste
en el procedimiento de preparación de los derivados. Dicho
procedimiento comprende las etapas siguientes:
a) la posible esterificación total o parcial de
los grupos carboxilo presentes en el hialuronano;
b) la esterificación o carbamoilación de los
grupos hidroxilo presentes en el hialuronano; pudiéndose aplicar las
etapas a) y b) en un orden cualquiera.
La etapa a) se realiza mezclando el hialuronano
en su forma ácida o salina con un haluro adecuado en presencia de un
disolvente orgánico según los procedimientos químicos
convencionales. Dicha reacción se realiza preferentemente en
N,N-dimetilformamida, a una temperatura comprendida entre 2 y
40ºC durante un período comprendido entre 10 y 60 horas. El material
inicial preferido es el hialuronano en forma de sal amónica
cuaternaria. Con las variaciones en las condiciones de reacción
descritas en la técnica actual, resulta posible obtener compuestos
con un grado distinto de esterificación.
La etapa b) puede comprender diversas etapas que
permiten la esterificación o la carbamoilación de los grupos
hidroxilo. La etapa b) se realiza en un único paso cuando los grupos
hidroxilo esterificados o carbamoilados son tanto los grupos
hidroxilo primarios como los secundarios. La reacción se realiza
añadiendo el reactivo adecuado tanto al producto obtenido de la
etapa a) como al hialuronano, tanto en forma ácida como salina, en
disolventes orgánicos. Los disolventes orgánicos preferidos
comprenden los disolventes apróticos tales como los
dialquilsulfóxidos, las dialquilcarboxiamidas, en particular los
dialquilsulfóxidos C_{1}-C_{6}, tales como el
dimetilsulfóxido, y las dialquilamidas
C_{1}-C_{6} de ácidos alifáticos
C_{1}-C_{6}, tales como la
N,N-dimetilformamida, la dietilformamida, la dimetilacetamida
y la dietilacetamida. La carbamoilación se realiza según los
procedimientos de reacción convencionales entre un alcohol y un
isocianato. Por lo tanto, los grupos hidroxilo del hialuronano, en
su forma ácida o salina, o en su forma esterificada, se hacen
reaccionar en el disolvente adecuado con el isocianato
correspondiente en presencia de una base de Lewis, tal como una
amina terciaria, o de un ácido de Lewis como catalizador. La
esterificación se realiza haciendo reaccionar el hialuronano en su
forma ácida, salina o esterificada en el grupo carboxilo con un
disolvente esterificador adecuado según los procedimientos conocidos
en la técnica actual. Dichos productos son formas activadas de los
ácidos carboxílicos correspondientes, tales como anhídridos y
haluros. Resulta preferible utilizar bases tales como aminas
terciarias o ácidos de Lewis como catalizadores. También pueden
utilizarse diversos disolventes orgánicos.
En algunos casos, pueden utilizarse
catalizadores específicos para acelerar la reacción. Con dicha
reacción, los grupos hidroxilo que se encuentran carbamoilados o
esterificados se encuentran tanto en los grupos hidroxilo primarios
como en los secundarios.
La etapa b) se realiza en diversos pasos cuando
los grupos hidroxilo primarios se encuentran esterificados de un
modo distinto a los secundarios. Un paso implica la modificación
selectiva de los grupos hidroxilo primarios tanto de los productos
obtenidos en a) como del hialuronano en su forma ácida o salina
según el procedimiento descrito en el documento WO 99/18133;
mientras que el otro paso implica la esterificación o la
carbamoilación de los grupos hidroxilo secundarios según los
procedimientos descritos anteriormente.
En los derivados obtenidos con el procedimiento
de preparación, los grupos carboxilo libres del polímero sustituido
parcialmente posiblemente se pueden salificar según procedimientos
conocidos.
Como material inicial, es posible utilizar
hialuronano extraído a partir de fuentes diversas, tanto animales
como biotecnológicas. El grado de pureza no resulta ser una
característica esencial en la preparación de los derivados. En
algunas aplicaciones específicas, resulta necesario obtener
fracciones de hialuronano con unos pesos moleculares bien
definidos.
Cuando ello tiene lugar, puede someterse el
hialuronano con un peso molecular elevado a procedimientos químicos,
enzimáticos, quimioenzimáticos o físicos para obtener las fracciones
con el peso molecular que se pretende.
El polímero que se ha de obtener puede
conseguirse directamente de desperdicios de HA (fracciones de peso
molecular) producidos para usos biomédicos. Dichos subproductos
pueden utilizarse ventajosamente como material inicial para la
preparación de los derivados de la presente invención.
Cuando el hialuronano inicial se encuentra en la
forma de sal cuaternaria, resulta preferible utilizar la sal de
tetraalquilamonio, con grupos alquilo con un número de átomos de
carbono entre 1 y 6. En la mayoría de los casos se utiliza el
tetrabutilamonio de hialuronano. Resulta posible prepara dichas
sales haciendo reaccionar la disolución acuosa de la sal sódica de
HA o su forma ácida con una resina sulfónica salificada con una sal
amónica cuaternaria. En este caso la sal que se utiliza presenta la
salinidad adecuada en los disolventes orgánicos utilizados en la
obtención.
La modificación química de los grupos carboxilo
y de los grupos hidroxilo del hialuronano para obtener los derivados
sustituidos de la invención conduce a una disminución drástica de la
hidrofilia de dichos derivados y por lo tanto de su utilización en
aplicaciones biocompatibles. Al mismo tiempo, dicha modificación
química permite obtener derivados solubles en un gran número de
disolventes orgánicos en los que los derivados del HA conocidos en
la técnica actual resultan insolubles. De hecho, se ha descubierto
que los derivados de la invención presentan propiedades de
solubilidad específica en disolventes orgánicos. Dicha solubilidad
depende de la naturaleza química de los sustituyentes, del grado de
sustitución y del peso molecular. En función del grado de
sustitución de los grupos hidroxilo, de los grupos carboxilo y del
tipo de sustituyente, puede utilizarse una amplia variedad de
disolventes orgánicos para solubilizar los derivados de la
invención. De hecho, se pueden solubilizar en disolventes tales como
los alcoholes, las cetonas, los ésteres, los éteres, los
dialquilsulfóxidos, las dialquilcarboxamidas, los alcoholes, las
cetonas alifáticas o heterocíclicas con un punto de ebullición bajo,
los hidrocarburos clorados y las mezclas de los mismos. Los
compuestos son insolubles en agua, en hidrocarburos alifáticos y en
éteres dialquílicos. Las propiedades de solubilidad, la
compatibilidad con disolventes específicos o las mezclas de
disolventes y la estabilidad en presencia de disolventes específicos
o mezclas representan una peculiaridad de los compuestos de la
invención que los diferencian de los derivados del HA conocidos en
las técnicas actuales y que por consiguiente permite unos usos
nuevos y peculiares.
Los derivados del hialuronano de la invención
pueden utilizarse ventajosamente en la preparación de fases
estacionarias cromatográficas, comprendiendo también fases
estacionarias quirales. De hecho, el solicitante ha descubierto
sorprendentemente que los derivados de la invención reconocen
enantiómeros específicos y que permiten su separación a partir de
las mezclas racémicas mediante el procedimiento cromatográfico.
Con el objetivo de preparar fases estacionarias
cromatográficas, dichos derivados del hialuronano se utilizan como
tales. O pueden utilizarse también tras haberse pulverizado o
moldeado en perlas y tras haber sido posible seleccionarlos
basándose en sus dimensiones de partículas. Alternativamente pueden
empaquetarse en una columna tras haberse depositado en un soporte
sólido. Como soporte sólido resultan aptos todos los soportes
utilizados en la separación cromatográfica. Pueden estar
constituidos de un material orgánico o preferentemente de un
material inorgánico. Los ejemplos de soportes inorgánicos aptos
comprenden el gel de sílice, alúmina, caolín, óxido de titanio,
óxido de magnesio, silicatos y polímeros sintéticos.
En una configuración preferida se utiliza sílice
funcionalizada, por ejemplo, se utiliza la
\gamma-aminopropil-sílice. Los
ejemplos de gel de sílice comprenden el Daisogel
SP-1000-7 y el Nucleosil
1000-7.
Para dicho uso, los derivados aptos presentan
una viscosidad intrínseca de 0,1 a 22 dl/g. Para los derivados de
hialuronano esterificados en el grupo funcional carboxilo, se
prefiere un intervalo de viscosidad comprendido entre 0,2 y 4
dl/g.
Los derivados con una viscosidad intrínseca
inferior no resultan útiles en la preparación de fases estacionarias
quirales ya que no separan eficazmente las mezclas racémicas y
debido también a que no presentan unas características de
reproducibilidad aptas. Además, algunos de los derivados con una
viscosidad muy reducida se hinchan notablemente tras unos pocos
ciclos de separación.
Un grupo de derivados interesantes a utilizar en
la preparación de fases estacionarias cromatográficas se encuentra
compuesto de derivados con un grado de sustitución de los grupos
hidroxilo bajo o muy bajo (0,01% a 0,2%) y en los que los grupos
carboxilo se encuentran completamente esterificados (100%).
Una ventaja de dichos derivados con un grado de
sustitución bajo o muy bajo radica en las propiedades de solubilidad
de los disolventes altamente polares. Dichos compuestos, cuando se
depositan en un soporte sólido, presentan una eficacia inesperada en
la separación de enantiómeros que contienen grupos funcionales
polares tales como los grupos amino, hidroxilo o carboxilo. La
ventaja sorprendente de dichos derivados consiste en la posibilidad
de preparar fases estacionarias que presenten la capacidad de
funcionar bajo condiciones de fase inversa, como, por ejemplo, al
utilizar mezclas de agua y disolventes orgánicos en cualquier
proporción o mezclas de disoluciones amortiguadoras del pH y
disolventes orgánicos con unos valores de pH definidos. Otra ventaja
más consiste en su utilización versátil. De hecho, pueden utilizarse
no únicamente bajo unas condiciones de fase inversa sino también en
fase normal con un único disolvente orgánico o con mezclas de
disolventes orgánicos, lo que permite que el operario pueda cambiar
de un modo de
funcionamiento a otro en función de las necesidades sin disminuir con ello la eficacia de la separación cromatográfica.
funcionamiento a otro en función de las necesidades sin disminuir con ello la eficacia de la separación cromatográfica.
Las fases estacionarias cromatográficas que
comprenden los derivados del hialuronano de la invención constituyen
otro objetivo de la presente invención. Dichas fases se preparan
según el procedimiento siguiente. Los derivados de la invención se
solubilizan en un disolvente apto y la disolución obtenida se añade
a un soporte cromatográfico. Se añade un producto que no sea
disolvente a la mezcla con la intención de depositar el derivado
sobre un soporte sólido. De este modo se aísla, se lava y se seca el
material. El soporte modificado obtenido de este modo se utiliza
como fase estacionaria quiral. A partir de esta etapa, resulta claro
que la solubilidad en un disolvente adecuado junto con las
propiedades quirópticas y enantioselectivas de los derivados del
hialuronano resultan ser una condición previa fundamental en la
producción de fases estacionarias quirales. Pueden aplicarse otros
métodos conocidos por los expertos a los derivados de la invención
para obtener fases estacionarias quirales.
Dichas fases estacionarias pueden utilizarse en
cromatografía de capa fina, cromatografía líquida, por ejemplo HPLC
(cromatografía líquida de alta resolución), cromatografía de lotes,
cromatografía de "lecho móvil simulado" (SMB), cromatografía de
fluido supercrítico (SFC). Además, la invención comprende un
procedimiento de separación de mezclas enantiómeras mediante dichas
fases estacionarias quirales.
La invención comprende además la utilización de
dichas fases estacionarias para la separación de diversas mezclas
racémicas de interés comercial e industrial. Permiten la separación
analítica y preparatoria de los enantiómeros de compuestos
estructuralmente distintos que pueden contener también grupos
polares así como de aquéllos completamente polares. Además, a partir
de una mezcla racémica de isómeros ópticos, resulta posible,
mediante la utilización de una de dichas fases estacionarias,
obtener la preparación de isómeros ópticamente puros o mezclas de
isómeros que presentan un contenido en enantiómeros superior al de
la mezcla inicial. Además, las fases permiten la determinación de la
composición en enantiómeros de las mezclas obtenidas por ejemplo por
síntesis asimétrica.
Los ejemplos específicos de la separación de
enantiómeros mediante las fases estacionarias de la invención se
describen en la parte experimental. La Figura 1 ilustra las
estructuras de los racematos analizados.
Otras utilizaciones de los compuestos de la
invención se identifican basándose en sus propiedades de solubilidad
específica, su compatibilidad relativa con los disolventes orgánicos
y sus propiedades térmicas que los distinguen de los derivados del
HA conocidos en la técnica actual. Como consecuencia de ellos, los
compuestos de la presente invención pueden utilizarse además en la
preparación de dispositivos, tales como por ejemplo, esponjas,
películas y fibras para utilizarse en envoltorios, en materiales
compuestos, en materiales de alta tecnología, o pueden utilizarse
también como aditivos para materiales plásticos, adhesivos y
barnices. Otras aplicaciones interesantes se refieren al campo de la
cosmética. Un ejemplo adecuado lo constituye la preparación de laca
para el cabello.
Los siguientes ejemplos ilustran el alcance de
la invención y no tienen un carácter limitativo.
Se disolvieron 3,5 g de tetrabutilamonio de
hialuronano preparados mediante intercambio catiónico a partir de
hialuronato sódico con un peso molecular viscosimétrico de 55000
(determinación según el Biochimica et Biophysica Acta, 1960,
42, 476-485) en 350 ml de
N,N-dimetilformamida en un matraz de tres bocas de
500 ml, a una temperatura de 30ºC, sometidos a un flujo de nitrógeno
y a agitación mecánica. Se añadieron 8,9 mg de yoduro de
tetrabutilamonio, 0,8 ml de trietilamina y 3,35 ml de bromuro de
bencilo, realizándose la reacción durante 18 horas. Se concentró el
producto a baja presión, se precipitó en 50 ml de acetato de etilo;
se realizó la redisolución y la reprecipitación del precipitado
varias veces, a continuación se secó y se recuperó. El rendimiento
resultó del 90%. El grado de esterificación, determinado mediante
^{1}H-NMR (resonancia magnética nuclear protónica)
en DMSO (sulfóxido de dimetilo) a 40ºC al comparar las zonas debidas
a los protones metilénicos del bencilo (5,0-5,4 ppm)
con las zonas debidas a las protones metílicos del residuo
N-acetilamida (1,6-1,2 ppm), resultó
del 100%. Se determinó la solubilidad del derivado en
N,N-dimetilformamida, en sulfóxido de dimetilo, en
acetato de etilo y en éter dietílico. El derivado es soluble en
N,N-dimetilformamida y en sulfóxido de dimetilo.
El procedimiento difiere del descrito en el
Ejemplo 1 en el hecho de que el hialuronano sódico inicial presenta
un peso molecular viscosimétrico de 120000 (determinación según el
Biochimica et Biophysica Acta, 1960, 42,
476-485). El producto presentó un grado de
esterificación del 100% y se determinó tal como se ha descrito en el
Ejemplo 1.
Se disolvió 1 g de tetrabutilamonio de
hialuronano preparado mediante intercambio catiónico a partir de
hialuronato sódico con un peso molecular viscosimétrico de 50000
(determinación según el Biochimica et Biophysica Acta, 1960,
42, 476-485) en 100 ml de
N,N-dimetilformamida en un matraz de tres bocas de
500 ml, a una temperatura de 30ºC, sometidos a un flujo de nitrógeno
y a agitación mecánica. Se añadieron 30 mg de yoduro de
tetrabutilamonio, 0,22 ml de trietilamina y 0,96 ml de bromuro de
bencilo, realizándose la reacción durante 18 horas. Se concentró el
producto a una presión reducida, a continuación se precipitó en 50
ml de acetato de etilo y después se realizó la redisolución y la
reprecipitación del precipitado varias veces, a continuación se
desecó. Se obtuvieron 720 mg del producto. El derivado presentó un
grado de esterificación del 100% que se determinó tal como se ha
descrito en el Ejemplo 1. Se analizó la solubilidad en disolventes
del derivado en N,N-dimetilformamida, en sulfóxido
de dimetilo, en acetato de etilo y en éter dietílico. El derivado es
soluble en N,N-dimetilformamida y en sulfóxido de
dimetilo.
El procedimiento difiere del descrito en el
Ejemplo 3 en el hecho de que el hialuronato sódico inicial presenta
un peso molecular viscosimétrico de 18000 (determinación según el
Biochimica et Biophysica Acta, 1960, 42,
476-485). El producto presentó un grado de
esterificación del 100% y se determinó tal como se ha descrito en el
Ejemplo 1.
Se dispersaron 1,06 g de éster bencílico de
hialuronano del Ejemplo 2 en 60 ml en 100 ml de
N,N-dimetilformamida en un matraz de tres bocas de
100 ml, a una temperatura de 25ºC, bajo un flujo de nitrógeno, con
un condensador y sometidos a agitación magnética. Tras 1 hora, se
añadieron 2,5 ml de isocianato de fenilo y 15 \mul de dilaurato de
dibutilestaño, realizándose la reacción durante 25 horas. A
continuación se añadieron ostros 2,0 ml de isocianato de fenilo y 10
\mul de dilaurato de dibutilestaño y se hizo reaccionar la mezcla
durante otras 14 horas. Se calentó la mezcla hasta 60ºC y se hizo
reaccionar durante otras 4 horas. A continuación se concentró la
disolución a una presión reducida de aproximadamente 1/5 de su
volumen y se precipitó en 200 ml de éter dietílico. Después se
filtró el sólido, se lavó y se secó. Se obtuvieron 660 mg del
producto. El grado de sustitución de los grupos hidroxilo, tal como
se determinó mediante ^{1}H-NMR al comparar las
zonas debidas a los protones aromáticos de los grupos fenilcarbamato
(6,2-7,6 ppm) con las zonas debidas a los protones
de los polisacáridos y los protones del bencilmetileno
(3,0-5,2 ppm), resultó del 100%. La viscosidad
intrínseca de producto resultó de 2,06 dl/g en acetona a 20ºC. Se
determinó la solubilidad de los derivados en
N,N-dimetilformamida, en acetona, en éter dietílico
y en hexano. Los derivados son solubles en
N,N-dimetilformamida y en acetona.
Se disolvió 1 g de tetrabutilamonio de
hialuronano preparado mediante intercambio catiónico a partir de
hialuronato sódico con un peso molecular viscosimétrico de 120000
(determinación según el Biochimica et Biophysica Acta, 1960,
42, 476-485) en 50 ml de
N,N-dimetilformamida en un matraz de tres bocas de
500 ml, a una temperatura de 50ºC, bajo un flujo de nitrógeno, con
un condensador y sometidos a agitación mecánica. Con una jeringuilla
se añadieron 480 \mul de
1,8-diazabiciclo[4.5.0]undec-7-eno(1.5-5)
(DBU) y 10 minutos más tarde, se añadieron 520 \mul de isocianato
de fenilo diluidos en 3 ml de N,N-dimetilformamida
mediante un embudo de goteo con un índice de flujo de 1 ml cada 10
minutos. Se repitió la adición dos veces cada 0,5 horas y se realizó
la reacción durante 0,75 horas tras la última adición. Se concentró
la disolución a una presión reducida de aproximadamente 1/3 del
volumen y se precipitó en 100 ml de éter. El producto se disolvió en
50 ml de acetona y se precipitó dos veces en 300 ml de éter.
Se filtró el precipitado y a continuación se
secó. Se obtuvieron 1,2 g del producto. El grado de sustitución de
los grupos hidroxilo, tal como se determinó mediante
^{1}H-NMR en DMSO a 40ºC al comparar las zonas
debidas a los protones aromáticos de los grupos fenilcarbamato
(7,4-6,8 ppm) con los protones aromáticos del grupo
metilo del residuo N-acetilamido
(1,8-1,6 ppm), resultó del 50%.
Se disolvieron 4 g de tetrabutilamonio de
hialuronano preparados mediante intercambio catiónico a partir de
hialuronato sódico con un peso molecular viscosimétrico de 120000
(determinación según el Biochimica et Biophysica Acta, 1960,
42, 476-485) en 200 ml de
N,N-dimetilformamida en un matraz de tres bocas de
500 ml, a una temperatura de 50ºC, bajo un flujo de nitrógeno, con
un condensador y sometidos a agitación mecánica. Con una jeringuilla
se añadieron 4,8 ml de DBU, diez minutos más tarde, se añadieron
gota a gota 3,5 ml de isocianato de fenilo diluidos en 5 ml de
N,N-dimetilformamida, mediante un embudo de goteo,
con un índice de flujo de 1 ml cada 10 minutos. Se repitió la
adición cada 1,5 horas y a continuación se realizó la reacción
durante 1,5 horas. Se concentró la disolución a una presión reducida
de aproximadamente 1/3 del volumen y se precipitó en 200 ml de éter.
El producto se disolvió en 200 ml de acetona y se precipitó dos
veces en 1 l de éter. Se filtró el precipitado y a continuación se
secó. Se obtuvieron 5 g del producto. El grado de sustitución del
producto resultó del 100% y se determinó tal como se ha descrito en
el Ejemplo 6.
La viscosidad intrínseca del producto fue de
11,5 dl/g en acetona a 20ºC.
Se disolvieron 2 g de tetrabutilamonio de
hialuronano preparados mediante intercambio catiónico a partir de
hialuronato sódico con un peso molecular viscosimétrico de 50000
(determinación según el Biochimica et Biophysica Acta, 1960,
42, 476-485) en 200 ml de
N,N-dimetilformamida en un matraz de tres bocas de
500 ml, a una temperatura de 50ºC, bajo un flujo de nitrógeno, con
un condensador y sometidos a agitación mecánica. Con una jeringuilla
se añadieron 2,4 ml de DBU, diez minutos más tarde, se añadieron
gota a gota 1,64 ml de isocianato de fenilo diluidos en 5 ml de
N,N-dimetilformamida, mediante un embudo de goteo,
con un índice de flujo de 1 ml cada 10 minutos. Se repitió la
adición dos veces cada 1,75 horas y a continuación se realizó la
reacción durante 19 horas tras la última adición. Se concentró la
disolución a una presión reducida de aproximadamente 1/3 del volumen
y se precipitó en 100 ml de éter. El producto se disolvió en 50 ml
de acetona y se precipitó dos veces en 300 ml de éter. Se filtró el
precipitado y a continuación se secó. Se obtuvieron 2,94 g del
producto. El producto presentó un grado de sustitución de los grupos
hidroxilo del 100% y se determinó tal como se ha descrito en el
Ejemplo 6.
Se disolvieron 0,750 g de éster bencílico de
hialuronano preparados tal como se ha descrito en el Ejemplo 1 en 75
ml de N,N-dimetilformamida en un matraz de tres
bocas de 250 ml, a una temperatura de 50ºC, bajo un flujo de
nitrógeno, con un condensador y sometidos a agitación mecánica. Con
una jeringuilla se añadieron 50 \mul de dilaurato de dibutilestaño
y 3,0 de isocianato de feniletílico y se hicieron reaccionar durante
22 horas. Se concentró el producto a una presión reducida de
aproximadamente 1/5 del volumen y se precipitó en 200 ml de éter, a
continuación se disolvió en 30 ml de acetona y finalmente se
precipitó en 200 ml de éter. A continuación se disolvió el
precipitado en 30 ml de diclorometano y se precipitó en 200 ml de
metanol. Se filtró el precipitado y a continuación se secó. Se
obtuvieron 870 mg del producto. El grado de sustitución de los
grupos hidroxilo, determinado mediante ^{1}H-NMR
en DMSO a 40ºC al comparar las zonas debidas a los protones
aromáticos de los grupos fenilcarbamato (6,2-7,6
ppm) con las zonas de los protones de los polisacáridos y del
metileno del grupo bencilo (3,0-5,2 ppm), resultó
del 100%. La viscosidad intrínseca del producto fue de 0,59 dl/g en
acetona a 20ºC.
Se determinó la solubilidad del derivado en
N,N-dimetilformamida, en sulfóxido de dimetilo, en
diclorometano, en acetona, en metanol y en éter dietílico. El
derivado es soluble en N,N-dimetilformamida, en
sulfóxido de dimetilo, en diclorometano y en acetona.
Se disolvieron 0,75 g de éster bencílico de
hialuronano preparados tal como se ha descrito en el Ejemplo 1 en 75
ml de N,N-dimetilformamida en un matraz de tres
bocas de 250 ml con un condensador, a una temperatura de 50ºC, bajo
un flujo de nitrógeno, y sometidos a agitación mecánica. Con una
jeringuilla se añadieron 0,74 g de dimetilaminopiridina y 1,67 ml de
anhídrido butírico, manteniendo la reacción de la mezcla durante 22
horas.
Se concentró la disolución a una presión
reducida de aproximadamente 1/5 del volumen y se precipitó en 150 ml
de éter. Se disolvió en 30 ml de acetona y se precipitó dos veces en
150 ml de éter. A continuación se filtró el precipitado y se secó.
Se obtuvieron 960 mg del producto. El grado de sustitución de los
grupos hidroxilo, determinado mediante ^{1}H-NMR
en DMSO a 40ºC al comparar las zonas debidas a los protones
aromáticos del bencilo (7-7,6 ppm) con las zonas
debidas al metilo del residuo bencilo (0,8-1 ppm),
resultó del 100%. La viscosidad intrínseca del producto fue de 0,65
dl/g en acetona a 20ºC. Se determinó la solubilidad del derivado en
N,N-dimetilformamida, en sulfóxido de dimetilo, en
diclorometano, en acetona, en cloroformo y en tetrahidrofurano. El
derivado es soluble en N,N-dimetilformamida, en
sulfóxido de dimetilo, en diclorometano, en acetona, en cloroformo y
en tetrahidrofurano. Se obtuvieron unas películas mediante la
evaporación lenta de las disoluciones (20 mg/0,5 ml) del derivado en
diclorometano y las del derivado en cloroformo.
Se dispersaron 0,5 g de éster bencílico de
hialuronano preparados tal como se ha descrito en el Ejemplo 3 en 40
ml de N,N-dimetilformamida en un matraz de tres
bocas de 100 ml, a una temperatura de 50ºC, bajo un flujo de
nitrógeno, con un condensador y sometidos a agitación mecánica. Dos
horas más tarde, se enfrió la mezcla a temperatura ambiente. Con una
jeringuilla se añadieron 50 mg de dimetilaminopiridina disueltos en
2 ml de N,N-dimetilformamida y 1,33 ml de anhídrido
acético y se hizo reaccionar la mezcla durante 48 horas. Se
concentró la disolución a una presión reducida de 1/5 del volumen y
se precipitó en 150 ml de éter. Se disolvió en 20 ml de acetona y se
precipitó 150 ml de éter; dicho procedimiento se repitió dos veces.
A continuación se filtró el precipitado y se secó. Se obtuvieron 520
mg del producto. El grado de sustitución de los grupos hidroxilo,
determinado mediante ^{1}H-NMR en DMSO a 40ºC al
comparar las zonas debidas a los protones aromáticos del residuo
bencilo (7,6-7 ppm) con las zonas debidas a los
protones del metilo de los residuos acetilados y de los residuos del
N-acetilamido (2,2-1,8 ppm), resultó
del 100%.
La viscosidad intrínseca del producto fue de
0,83 dl/g en acetona a 20ºC.
Se siguió el mismo procedimiento descrito en el
Ejemplo 11 pero el éster bencílico del Ejemplo 2 se dispersa en
N,N-dimetilformamida a una temperatura de 25ºC. El
grado de sustitución de los grupos hidroxilo, determinado mediante
^{1}H-NMR tal como se ha descrito en el Ejemplo 11
resulto del 100%. La viscosidad intrínseca del producto fue de 1,70
dl/g en acetona a 20ºC. Tras una evaporación lenta del disolvente,
resulta posible preparar películas del derivado solubilizadas en
acetona (100 mg/5 ml).
Se dispersaron 0,5 g de éster bencílico de
hialuronano preparados tal como se ha descrito en el Ejemplo 4 en
100 ml de N,N-dimetilformamida en un matraz de tres
bocas de 500 ml, a una temperatura de 80ºC, bajo un flujo de
nitrógeno, con un condensador y sometidos a agitación mecánica. Dos
horas más tarde, se enfrió la mezcla a una temperatura de 50ºC, con
una jeringuilla se añadieron 15 \mul de dilaurato de dibutilestaño
disueltos en 2 ml de N,N-dimetilformamida y 1,75 ml
de isocianato de fenilo, y se hizo reaccionar la mezcla durante 22
horas. Se concentró la disolución a una presión reducida de
aproximadamente 1/5 del volumen y se precipitó en 200 ml de éter. A
continuación se disolvió en 20 ml de acetona y se precipitó 200 ml
de éter; a continuación se filtró el sólido bajo una presión
reducida, se disolvió en 20 ml de diclorometano y se precipitó en
200 ml de metanol. Se volvió a disolver en 20 ml de acetona y se
precipitó en 200 ml de éter. El precipitado se filtró y se secó. Se
obtuvieron 530 mg del producto. El grado de sustitución de los
grupos hidroxilo, determinado mediante ^{1}H-NMR
al comparar las zonas debidas a los protones aromáticos del residuo
bencilo (7,6-7 ppm) con las zonas debidas a los
protones del metilo de los residuos del
N-acetilamido (2,2-1,8 ppm), resultó
del 100%. La viscosidad intrínseca del producto fue de 0,30 dl/g en
acetona a 20ºC. Se determinó la solubilidad del derivado en
N,N-dimetilformamida, en sulfóxido de dimetilo, en
diclorometano, en acetona, en metanol y en éter dietílico. El
derivado es soluble en N,N-dimetilformamida, en
sulfóxido de dimetilo, en diclorometano y en
acetona.
acetona.
Se dispersaron 1,0662 g de éster bencílico de
hialuronano tal como se ha descrito en el Ejemplo 2 en 100 ml de
N,N-dimetilformamida y 20 ml de piridina en un
matraz de tres bocas sometidos a agitación mecánica. La disolución
obtenida de este modo se dispuso en un baño de hielo picado y se
añadieron gota a gota 5 ml de cloruro de fenilacetilo al mismo. Se
enfrió la mezcla a temperatura ambiente y se sometió a agitación
constante durante 15 horas. Se volvió a disponer la disolución en un
baño de hielo picado y se añadieron gota a gota otros 5 ml de
cloruro de fenilacetilo al mismo. Se enfrió la mezcla a temperatura
ambiente y se sometió a agitación constante durante tres horas.
Se añadieron 350 ml de éter bajo agitación, se
recuperó el precipitado por filtración, a continuación se solubilizó
en acetona y se precipitó con metanol. Se repitió dos veces la
reprecipitación.
El producto se solubilizó con 50 ml de cloruro
de metileno, se precipitó en 150 ml de metanol y se solubilizó en
200 ml de acetato, se precipitó en 400 ml de agua, se lavó y
finalmente se secó. Se obtuvieron 0,7 mg del producto. El grado de
sustitución de los grupos hidroxilo, tal como se determinó mediante
^{1}H-NMR en CDC13 resultó del 100%. La viscosidad
intrínseca del producto en acetona a 20ºC fue de 2,28 dl/g.
Se dispersó 1 g de éster bencílico de
hialuronano preparado tal como se ha descrito en el Ejemplo 3 en 200
ml de N,N-dimetilformamida en un matraz de tres
bocas de 500 ml, a una temperatura de 50ºC, bajo un flujo de
nitrógeno, con un condensador y sometidos a agitación mecánica. Una
hora más tarde, con una jeringuilla se añadieron 15 \mul de
dilaurato de dibutilestaño disueltos en 2 ml de
N,N-dimetilformamida y 4,5 ml de isocianato de
fenilo, y se hizo reaccionar la mezcla durante 22 horas. Se
concentró la disolución a una presión reducida y se precipitó en 200
ml de éter. Se disolvió en 20 ml de acetona y se precipitó 200 ml de
metanol. A continuación se filtró el precipitado y se secó. Se
obtuvieron 0,9 g del producto. El grado de sustitución de los grupos
hidroxilo, determinado mediante ^{1}H-NMR al
comparar las zonas debidas a los protones aromáticos de los grupos
fenilcarbamato (6,2-7,6 ppm) con las zonas debidas a
los protones del polisacárido y del bencilmetileno
(3,0-5,2 ppm), resultó del 100%. Se determinó la
solubilidad del derivado en N,N-dimetilformamida, en
sulfóxido de dimetilo, en diclorometano, en acetona y en éter
dietílico. El derivado es soluble en
N,N-dimetilformamida y en sulfóxido de dimetilo. La
viscosidad intrínseca del producto fue de 0,6 dl/g en acetona: DMF
(9:1) a 20ºC.
Se dispersó 1 g de éster bencílico de
hialuronano preparado tal como se ha descrito en el Ejemplo 2 en 100
ml de N-metilpirrolidona en un matraz de tres bocas
de 250 ml, a una temperatura de 80ºC, bajo un flujo de nitrógeno,
con un condensador y sometidos a agitación magnética. Cuando se
completó la solubilización, se enfrió la mezcla a temperatura
ambiente, se añadieron 4 ml de anhídrido acético y 100 mg de
dimetilaminopiridina, haciéndose reaccionar la mezcla durante 48
horas a temperatura ambiente. A continuación se concentró la
disolución a una presión reducida de 1/3 de su volumen y se
precipitó en agua ácida. Después se recuperó el producto por
filtración y se disolvió en acetona; a continuación, se reprecipitó
en agua ácida, se filtró y se secó al horno de vacío a 50ºC. Se
obtuvieron 980 mg del producto. El producto presentó un grado de
sustitución del 100% de los grupos hidroxilo, determinado tal como
se ha descrito en el ejemplo 11. La viscosidad intrínseca del
producto en acetona a 20ºC fue de 0,64 dl/g.
Se disolvieron 500 mg de tetrabutilamonio de
hialuronano preparados mediante intercambio catiónico a partir de
hialuronato sódico con un peso molecular viscosimétrico de 52000
(determinación según el Biochimica et Biophysica Acta, 1960,
42, 476-485) en 100 ml de
N,N-dimetilformamida anhidra a una temperatura de
50ºC, sometidos a agitación magnética en un matraz de 250 ml con un
condensador. Se enfrió a la temperatura ambiente y a continuación se
vertió en un reactor de 1 litro. Se descendió la temperatura a 4ºC y
se añadieron 1,5 ml de yoduro de metilo; a continuación se hizo
reaccionar la mezcla durante 48 horas bajo agitación mecánica. Se
concentró la disolución a baja presión de aproximadamente 1/3 de su
volumen y se precipitó en 200 ml de éter dietílico. Se lavó el
producto dos veces en acetona, se filtró y se secó. Se obtuvieron
310 g del producto. Se caracterizó el derivado mediante
^{1}H-NMR y ^{13}C-NMR. Se
observó un desplazamiento significativo con respecto al polímero
inicial, principalmente de la señal debida al carboxilo del ácido
glucurónico (de 167 a 171 ppm) y las dos señales interglucosídicas
(de 81 a 83 ppm), produciendo el metilo una nueva señal a 53 ppm. Se
determinó la solubilidad del derivado en sulfóxido de dimetilo, en
éter dietílico y en acetona. El derivado es soluble en sulfóxido de
dimetilo.
Se dispersaron 250 mg de éster metílico de
hialuronano preparados tal como se ha descrito en el Ejemplo 17 en
100 ml de N,N-dimetilformamida en un matraz de tres
bocas de 250 ml, a una temperatura de 80ºC, bajo un flujo de
nitrógeno, con un condensador y sometidos a agitación magnética. Dos
horas más tarde, se descendió la temperatura a 50ºC y se añadió 1 ml
de isocianato de fenilo y 15 \mul de dilaurato de dibutilestaño;
se hizo reaccionar la mezcla durante 22 horas. A continuación se
concentró la disolución a una presión reducida de 1/5 de su volumen
y se precipitó en 200 ml de éter dietílico. Se filtró el sólido, se
lavó y se secó. Se obtuvieron 220 mg del producto. El grado de
sustitución se determinó mediante ^{1}H-NMR al
comparar las zonas debidas a los protones aromáticos de los grupos
fenilcarbamato (6,8-7,8 ppm), las debidas al grupo
N-acetilamido (1,6-2,0 ppm) y las
señales debidas al del polisacárido y al grupo metilo
(2,8-5,0 ppm), resultó del 35%. Se determinó la
solubilidad del derivado en N,N-dimetilformamida,
en sulfóxido de dimetilo, en éter dietílico y en acetona. El
producto es soluble en N,N-dimetilformamida y en
sulfóxido de dimetilo.
Se vertieron 964 mg de anhídrido benzoico en un
matraz de tres bocas de 50 ml con un condensador a una temperatura
de 50ºC y bajo un flujo de nitrógeno. Se prepararon 100 mg de éster
bencílico de hialuronano preparados tal como se ha descrito en el
Ejemplo 4 en 15 ml de N,N-dimetilformamida y 32
\mul de
1,8-diazabiciclo[5.4.0]undec-7-eno(1.5-5)
(DBU) y se hizo reaccionar durante 22 horas. A continuación se
concentró la disolución a una presión reducida de 1/3 de su volumen
y se precipitó en éter. Se filtró el sólido y se dispersó en 100 ml
de acetona que se eliminó a continuación bajo presión reducida. Se
lavó de nuevo el producto en cloroformo, se filtró y se secó. Se
obtuvieron 52 mg del producto. El grado de sustitución de los grupos
hidroxilo se determinó mediante ^{1}H-NMR al
comparar las zonas debidas a los protones aromáticos
(7,0-7,6 ppm), con los debidos al metileno del
bencilo (5,0-5,2 ppm) y con la señal del grupo
N-acetilamido (1,6-2,0 ppm), resultó
del 100%. Se determinó la solubilidad del derivado en
N,N-dimetilformamida, en sulfóxido de dimetilo, en
éter dietílico, en acetona y en cloroformo. El producto es soluble
en N,N-dimetilformamida y en sulfóxido de
dimetilo.
Se siguió el mismo procedimiento descrito en el
Ejemplo 3 pero el peso molecular viscosimétrico del hialuronato
sódico inicial es de 9000 (determinación según el Biochimica et
Biophysica Acta, 1960, 42, 476-485). El producto
presenta un grado de esterificación del 100% y se determinó tal como
se describe en el Ejemplo 1.
Se disolvieron 150 mg de tetrabutilamonio de
hialuronano preparados mediante intercambio catiónico a partir de
hialuronato sódico con un peso molecular viscosimétrico de 52000
(determinación según el Biochimica et Biophysica Acta, 1960,
42, 476-485) en 15 ml de
N,N-dimetilformamida anhidra en un matraz de tres
bocas de 50 ml a una temperatura de 30ºC, bajo un flujo de nitrógeno
y sometidos a agitación magnética. Cuando se hubo completado la
solubilización del polímero, se añadieron 200 \mul bromuro de
alilo, 40 \mul de trietilamina y una cantidad catalítica de yoduro
de tetrabutilamonio. Se hizo reaccionar la mezcla durante 26 horas.
A continuación se calentó hasta 50ºC, se añadieron 170 \mul de
isocianato de fenilo y 10 \mul de dilaurato de dibutilestaño,
haciéndose reaccionar la mezcla durante 21 horas. A continuación se
concentró la disolución a baja presión de aproximadamente 1/3 de su
volumen y se precipitó en éter dietílico. Después se filtró el
sólido, se lavó dos veces en acetona y se secó. Se obtuvieron 50 mg
del producto. Se caracterizó el derivado mediante NMR (^{1}H , 2D
COSY, ^{1}H DOSY, ^{13}C). A partir de la comparación de las
áreas debidas a las señales del grupo alílico conjugado con el
hialuronano (CH-O a 3,90 ppm - CH= a 5,90 ppm,
=CH_{2} de 5,22 a 5,35 ppm) con los debidos a los protones
aromáticos de los grupos fenilcarbamato (de 6,8 a 7,6 ppm) y con la
señal del grupo N-acetilamido
(1,6-2,0 ppm), el grado de esterificación resultó
del 50% y el grado de sustitución de los grupos hidroxilo del 100%.
Se determinó la solubilidad del derivado en
N,N-dimetilformamida, en sulfóxido de dimetilo, en
éter dietílico y en acetona. El producto es soluble en
N,N-dimetilformamida y en sulfóxido de dimetilo.
Se dispersaron 200 mg de éster bencílico de
hialuronano preparado tal como se ha descrito en el Ejemplo 3 en 50
ml de N,N-dimetilformamida en un matraz de tres
bocas de 100 ml, a una temperatura de 80ºC, bajo un flujo de
nitrógeno, con un condensador y sometidos a agitación magnética. Una
hora más tarde, se enfrió a 50ºC, se añadieron 15 \mul de
isocianato de fenilo y 50 \mul de dilaurato de dibutilestaño,
haciéndose reaccionar la mezcla durante 22 horas. A continuación se
concentró la disolución a una presión reducida de 1/5 de su volumen
y se precipitó en 200 ml de éter dietílico. Después se filtró el
sólido, se lavó y se secó. Se obtuvieron 130 mg del producto. El
grado de sustitución de los grupos hidroxilo, tal como se determinó
mediante ^{1}H-NMR al comparar las zonas debido a
los protones aromáticos (6,8-7,6 ppm) con la zona
debida al bencilmetileno (5,0-5,2 ppm) y con la
señal del grupo N-acetilamido
(1,6-2,0 ppm) resultó del 2%. Se determinó la
solubilidad del derivado en N,N-dimetilformamida, en
sulfóxido de dimetilo, en éter dietílico y en acetona. El producto
es soluble en N,N-dimetilformamida y en sulfóxido de
dimetilo.
Se siguió el mismo procedimiento descrito en el
Ejemplo 22 pero utilizando 5 \mul de isocianato de fenilo. El
grado de sustitución de los grupos hidroxilo determinado tal como se
ha descrito en el ejemplo 22 resultó del 0,2%. Se determinó la
solubilidad del derivado en N,N-dimetilformamida, en
sulfóxido de dimetilo, en éter dietílico y en acetona. El producto
es soluble en N,N-dimetilformamida y en sulfóxido
de dimetilo.
Se siguió el mismo procedimiento descrito en el
Ejemplo 9 pero utilizando éster bencílico de hialuronano preparado
tal como se describe en el Ejemplo 20. El grado de sustitución de
los grupos hidroxilo determinado tal como se ha descrito en el
ejemplo 9 resultó del 100%. La viscosidad intrínseca del producto en
acetona al 20ºC es de 0,09 dl/g.
Se utilizó un calorímetro de exploración
diferencial (DSC) de Perkin Elmer mod. Pyris 1 calibrado previamente
según el estándar. Se colocaron apropiadamente de 5 a 10 mg del
producto de la invención en una célula de aluminio y se mantuvieron
a 55ºC durante 30 minutos directamente en el calorímetro antes de
cada determinación. Para los productos descritos en el Ejemplo 10 y
el Ejemplo 11 se han seguido los siguientes ciclos térmicos: primero
se calentó de 55ºC a 200ºC con un índice de exploración de 10ºC/min,
posteriormente se enfrió a 200ºC/min y se realizó un segundo
calentamiento de 55ºC a 200ºC a 10ºC/min. Ambos productos
presentaron una transición vítrea que se produce a la temperatura
(punto de inflexión) de 130 a 132ºC para el producto del Ejemplo 10
y a la temperatura de 163 a 166ºC para el producto del Ejemplo 11.
Para el producto del Ejemplo 15 se siguieron los siguientes ciclos
térmicos: primero se calentó de 55ºC a 185ºC a un índice de
exploración de 10ºC/min, se enfrió a 10ºC/min, en segundo lugar se
calentó de 55ºC a 185ºC a 10ºC/min, se enfrió a 200ºC/min, y en
tercer lugar se realizó un nuevo calentamiento de 55ºC a 185ºC a
10ºC/min. El producto presentó una transición vítrea a la
temperatura (punto de inflexión) de 177 a 179ºC.
Se solubilizó el derivado de la invención en un
disolvente adecuado agitando enérgicamente la disolución. A
continuación se filtró la disolución y se añadió a una suspensión de
gel de sílice previamente aminopropilsilanizado. Después se mantuvo
el sistema sometido a agitación durante dos horas y pudo someterse a
tratamiento con ultrasonidos durante 30 minutos. Se añadió un
producto no disolvente y se dispuso la muestra en el sílice. Se
recuperó el precipitado y a continuación se secó. Tras eliminar las
partículas no deseadas y el disolvente, se secó el residuo y se
obtuvo la fase estacionaria quiral.
Se utilizó una bomba Knauer WellChrom
Maxi-Star K-1000 (Knauer GmbH,
Berlín, Alemania) con un inyector de HPLC Knauer con una válvula de
6 puertos y un bucle de 20 \mul. Se realizó la determinación a 254
nm con un detector Knauer WellChrom K-2500. La
integración de los picos de los cromatograma se realizó con el
paquete de software BDS (Barspec Ltd., Rehovot, Israel). El
empaquetamiento de la columna de HPLC, adquirida en Max Stevenson
(Berlín, Alemania, 150 x 4.6 mm) se realizó mediante la técnica
"sluny" utilizando una bomba Knauer para HPLC. Los
disolventes analíticos puros de J. T. Baker utilizados para HPLC, se
redestilaron antes de usarlos. El volumen muerto de la columna se
determinó con
1,3,5-tri-terc-butilbenceno.
Las estructuras de los racematos analizados se ilustran en la Figura
1.
Se llenaron las columnas cromatográficas con las
fases estacionarias HY-7, HY-8 y
HY-11 obtenidas respectivamente a partir de los
derivados descritos en los Ejemplos 5, 9 y 13. La fase móvil
utilizada para la separación de los racematos analizados es
n-hexano : 2-propanol (proporción de
9:1) con un índice de flujo de 1,0 ml/min. Los cromatogramas
obtenidos permiten la determinación del factor de separación
(\alpha) y el factor de resolución (Rs) ilustrados en la Tabla
1.
Racemato | HY-7 | HY-8 | HY-11 | |||
\alpha | Rs | \alpha | Rs | \alpha | Rs | |
2 | 1 | 0 | 1,53 | 2,87 | 1,15 | 0,62 |
9 | 1,53 | 0,26 | 2,40 | 7,43 | 1 | 0 |
10 | 1 | 0 | 1,09 | 0,37 | 1 | 0 |
11 | 1 | 0 | 1,17 | 0,77 | 1 | 0 |
12 | 1 | 0 | 2,21 | 8,25 | 1 | 0 |
16 | 1,44 | 0,67 | 1,98 | 1,36 | 1,28 | 0,89 |
La Tabla ilustra la capacidad del reconocimiento
enantiómero de los derivados analizados y la mayor capacidad del
derivado HY-8.
Los mismos racematos se analizaron utilizando
una columna cromatográfica llena con HY-14 obtenido
a partir del derivado del Ejemplo 24 y bajo las mismas condiciones
experimentales. En el presente caso no se separó racemato alguno y
la presión en la columna, que es baja en el inicio, tiende a
incrementarse lentamente pero con un ritmo constante durante los
análisis, indicando claramente de este modo que, bajo dichas
condiciones, el derivado se hincha.
Se analizó el racemato 12 mediante HPLC con una
columna de 150 mm x 4,6 mm de diámetro interior que contenía la fase
estacionaria quiral del derivado de hialuronano preparados tal como
se describió en el Ejemplo 11 bajo las condiciones siguientes: fase
móvil de hexano : isopropanol en una proporción de 9:1, índice de
flujo de 1 ml/min. La separación cromatográfica de los dos
enantiómeros se caracterizó mediante los siguientes parámetros: k'1
= 4,80, \alpha = 1,32, Rs = 1,36 que demuestran la resolución
"de referencia" del racemato. Tras dicha separación, se utilizó
de nuevo la columna bajo las condiciones siguientes: fase móvil de
hexano: diclorometano: metanol en una proporción de 68:30:2, índice
de flujo 1 ml/min durante 5 horas; fase móvil de hexano: acetato de
etilo en una proporción de 70:30, índice de flujo 1 ml/min durante 5
horas; fase móvil de diclorometano: acetato de etilo en una
proporción de 1:1, índice de flujo 1 ml/min durante dos horas. Tras
dicho tratamiento, se analizó de nuevo el racemato 12 bajo las
condiciones iniciales y se obtuvo la resolución de referencia. Queda
claro por lo tanto que el selector quiral no fue eliminado debido a
los cambios y al tipo de fase móvil utilizada.
Se analizó el racemato
metil-3-hidroxi-5-oxo-1-ciclopenteno-1-heptanoato
mediante HPLC con una columna de 250 mm x 4,6 mm de diámetro
interior que contenía la fase estacionaria quiral del derivado de
hialuronano preparados tal como se describió en el Ejemplo 16 bajo
las condiciones siguientes: fase móvil de hexano: isopropanol en una
proporción de 9:1, índice de flujo de 1 ml/min. El mismo racemato se
analizó mediante HPLC con dos distintas columnas comerciales
denominadas Chiralcel OD y Chiralcel OJ, ambas de 250 mm x 4,6 mm de
diámetro interior, bajo las mismas condiciones. Los resultados se
describen en la Tabla 2.
Fase estacionaria | \alpha | Rs |
HY-12 | 1,21 | 1,2 |
Chiralcel OD | 1,07 | 0,7 |
Chiralcel OJ | 1,16 | 1,1 |
La tabla demuestra que la fase estacionaria que
contiene el derivado de la invención permite una mejor separación
del racemato.
Se empaquetó la columna cromatográfica de HPLC
con HY-5 obtenido con el derivado del Ejemplo 8 y se
separaron varias mezclas racémicas. La fase móvil utilizada fue el
n-hexano, con un índice de flujo de 1,0 ml/min. Los
cromatogramas obtenidos permiten la determinación del factor de
separación (\alpha) y del factor de resolución (Rs) ilustrados en
la tabla 3.
Racemato | HY-5 | HY-5 |
\alpha | Rs | |
1 | 2,11 | 0,27 |
2 | 1,06 | 0,12 |
3 | 1,16 | 0,10 |
5 | 1,56 | 0,31 |
A partir de la tabla anterior resulta posible
comprender la capacidad de reconocimiento de enantiómeros al utiliza
un disolvente puro como fase móvil.
Se llenó la columna cromatográfica de HPLC con
la fase estacionaria obtenida a partir del derivado del Ejemplo 23 y
se separaron dos mezclas racémicas. La fase móvil utilizada fue el
metanol : agua (proporción de 1:1), con un índice de flujo de 1
ml/min. Se resolvieron los dos enantiómeros de cada mezcla y los
cromatogramas presentaron dos picos simétricos separados con el
factor de separación (\alpha) y el factor de resolución (Rs) que
se ilustran en la tabla 4.
Racemato HY-13 | ||
\alpha | Rs | |
Clenbuterol | 1,47 | 3,22 |
Prometazina | 1,35 | 1,87 |
A partir de la tabla anterior resulta posible
comprender la capacidad de reconocimiento de enantiómeros al utiliza
un disolvente puro como fase móvil.
Claims (24)
1. Utilización de los derivados de hialuronano
en el que los grupos hidroxilo se encuentran esterificados o
carbamoilados en unas cantidades comprendidas entre el 0,01% y el
100% y en que los grupos carboxilo se encuentran total o
parcialmente esterificados con alcoholes o se encuentran en forma
salina, encontrándose su viscosidad intrínseca comprendida entre 0,1
y 22 dl/g, en la preparación de fases estacionarias
cromatográficas.
2. Utilización de los derivados según la
reivindicación 1, en la preparación de fases estacionarias
quirales.
3. Fases estacionarias quirales que comprenden
derivados del hialuronano, en las que los grupos hidroxilo se
encuentran esterificados o carbamoilados en unas cantidades
comprendidas entre el 0,01% y el 100%, los grupos carboxilo se
encuentran total o parcialmente esterificados con alcoholes o se
encuentran en forma salina; y la viscosidad intrínseca de dichos
derivados está comprendida entre 0,1 y 22 dl/g.
4. Fases estacionarias quirales según la
reivindicación 3, en las que los grupos hidroxilo de los derivados
de hialuronano se encuentran esterificados con ácidos inorgánicos;
con ácidos alifáticos lineales o ramificados, saturados o
insaturados; con ácidos cicloalifáticos o alifático cicloalifáticos
que pueden ser policíclicos; con ácidos arilalifáticos; con ácidos
de arilo; con ácidos heterocíclicos pudiéndose encontrar dichos
ácidos sustituidos por alquilos C_{1}-C_{5}
lineales o ramificados, por halógenos, por grupos hidroxilo, por
grupos amino, por grupos nitro, por grupos metoxi o por grupos
ciano.
5. Fases estacionarias quirales según la
reivindicación 4, en las que los grupos hidroxilo de los derivados
de hialuronano se encuentran carbamoilados con isocianatos de
alquilo,; con isocianatos de alquil arilo, con isocianatos de arilo;
en las que dichos isocianatos son posiblemente sustituidos con
alquilos C_{1}-C_{5} lineales o ramificados,
halógenos, grupos nitro, grupos ciano o grupos metoxi, en las que el
residuo alquilo lineal o ramificado, saturado o insaturado, presenta
de 2 a 6 átomos de carbono y en las que el residuo arilo consiste en
un residuo mononuclear o polinuclear, posiblemente sustituido.
6. Fases estacionarias quirales según cualquiera
de las reivindicaciones 3 a 5, en las que los grupos carboxílicos de
los derivados del hialuronano se encuentran esterificados con
alcoholes alifáticos, arilalifáticos, arílicos, cicloalifáticos o
heterocíclicos.
7. Fases estacionarias quirales según cualquiera
de las reivindicaciones 3 a 6, en las que los grupos hidroxilo de
los derivados del hialuronano se encuentran esterificados o
carbamoilados en unas cantidades comprendidas entre el 0,01% y el
0,2% o en unas cantidades comprendidas entre el 70% y el 100%.
8. Fases estacionarias quirales según la
reivindicación 7, en las que los grupos hidroxilo se encuentran
esterificados o carbamoilados en unas cantidades comprendidas entre
el 0,01% y el 0,2% y los grupos carboxilo se encuentran totalmente
esterificados (un grado de esterificación del 100%).
9. Fases estacionarias quirales según la
reivindicación 7, en las que los grupos hidroxilo se encuentran
esterificados o carbamoilados en unas cantidades comprendidas entre
el 70% y el 100% y los grupos carboxilo se encuentran totalmente
esterificados (un grado de esterificación del 100%) o se encuentran
en forma salina.
10. Utilización de las fases estacionarias según
cualquiera de las reivindicaciones 3 a 9, en la preparación de
isómeros ópticamente puros o de mezclas de isómeros que presentan un
contenido enantiomérico superior al de la mezcla racémica
inicial.
11. Utilización de las fases estacionarias según
cualquiera de las reivindicaciones 3 a 9, en la separación
preparatoria o analítica de enantiómeros o mezclas de racematos.
12. Utilización de las fases estacionarias según
cualquiera de las reivindicaciones 10 ó 11 en cromatografía líquida,
en HPLC, en SMB, o en SCFC.
13. Derivados de hialuronano, en los que los
grupos hidroxilo se encuentran esterificados o carbamoilados en unas
cantidades comprendidas entre el 0,01% y el 100% y los grupos
carboxilo se encuentran total o parcialmente esterificados con
alcoholes o se encuentran en forma salina, con la excepción del
éster bencílico de hialuronano acetilado, siempre que los grupos
carboxilo se encuentren total o parcialmente esterificados con
alcoholes.
14. Derivados de hialuronano según la
reivindicación 13, en los que los grupos hidroxilo se encuentran
esterificados con ácidos inorgánicos; con ácidos alifáticos lineales
o ramificados, saturados o insaturados; con ácidos cicloalifáticos
monocíclicos o policíclicos o alifático cicloalifáticos; con ácidos
arilalifáticos; con ácidos de arilo; con ácidos heterocíclicos;
pudiéndose encontrar dichos ácidos sustituidos por alquilos
C_{1}-C_{5} lineales o ramificados, por
halógenos, por grupos hidroxilo, por grupos amino, por grupos nitro,
por grupos metoxi y por grupos ciano.
15. Derivados según la reivindicación 14, en los
que los grupos hidroxilo se encuentran esterificados con ácido
acético, ácido butírico, ácido retinoico, ácido benzoico, ácido
fenilacético.
16. Derivados según la reivindicación 13, en los
que los grupos hidroxilo se encuentran carbamoilados con isocianatos
de alquilo; con isocianatos de alquilarilo; con isocianatos de
arilo; encontrándose dichos isocianatos posiblemente sustituidos; en
los que el residuo alquilo lineal o ramificado, saturado o
insaturado, presenta de 2 a 6 átomos de carbono y en los que el
residuo arilo consiste en un residuo mononuclear o polinuclear,
posiblemente sustituido por alquilos C_{1}-C_{5}
lineales o ramificados, por halógenos, por grupos nitro, por grupos
ciano o por grupos metoxi.
17. Derivados según la reivindicación 16, en los
que los grupos hidroxilo se encuentran carbamoilados con isocianato
de fenilo, isocianato de dialquilfenilo, isocianato de
trialquilfenilo, o isocianato de 1-feniletilo.
18. Derivados según cualquiera las
reivindicaciones 13 a 18, en los que los grupos carboxilo se
encuentran esterificados con alcoholes alifáticos, arilalifáticos,
arílicos, cicloalifáticos o heterocíclicos.
19. Derivados según la reivindicación 18, en los
que los grupos carboxilo se encuentran esterificados con alcohol
metílico, alcohol bencílico, alcohol alílico o alcohol
propílico.
20. Derivados según cualquiera las
reivindicaciones 17 a 19, en los que los grupos hidroxilo se
encuentran esterificados o carbamoilados en unas cantidades
comprendidas entre el 0,01% y el 0,2% o en unas cantidades
comprendidas entre el 70% y el 100%.
21. Derivados según la reivindicación 20, en los
que los grupos hidroxilo se encuentran esterificados o carbamoilados
en unas cantidades comprendidas entre el 0,01% y el 0,2% y los
grupos carboxilo se encuentran totalmente esterificados (un grado de
esterificación del 100%).
22. Derivados según la reivindicación 20, en los
que los grupos hidroxilo se encuentran esterificados o carbamoilados
en unas cantidades comprendidas entre el 70% y el 100% y los grupos
carboxilo se encuentran totalmente esterificados (un grado de
esterificación del 100%).
23. Derivados según la reivindicación 20, en los
que los grupos hidroxilo se encuentran esterificados o carbamoilados
en unas cantidades comprendidas entre el 70% y el 100% y los grupos
carboxilo se encuentran en forma salina.
24. Procedimiento de preparación de los
derivados de hialuronano según cualquiera de las reivindicaciones 13
a 23, que comprenden las siguientes etapas de reacción:
a) la posible esterificación total o parcial de
los grupos carboxilo presentes en el hialuronano;
b) la esterificación o carbamoilación de los
grupos hidroxilo presentes en el hialuronano;
pudiéndose aplicar las etapas a) y b) en un
orden cualquiera.
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