ES2257258T3 - Reactivo de prueba de cofactor de ristocetina listo para utilizar, estable a largo plazo. - Google Patents

Reactivo de prueba de cofactor de ristocetina listo para utilizar, estable a largo plazo.

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Abstract

Preparación líquida de trombocitos fijados con una estabilidad de al menos 10 meses, preferiblemente de 12 meses, consistente en una suspensión de trombocitos, tratándose los trombocitos en la elaboración final con una sustancia inhibidora serina-proteasa, se los fija y se los suspende en una solución acuosa, preferentemente tamponada, que no contiene ristocetina ni veneno de serpiente.

Description

Reactivo de prueba de cofactor de ristocetina listo para utilizar, estable a largo plazo.
La presente invención se refiere a un reactivo de prueba cofactor ristocetina listo para utilizar, estable a largo plazo, para utilizar en pruebas de coagulación.
El síndrome de von Willebrand-Jurgens es la tendencia a sangrar (diátesis hemorrágica o hemofilia de tipo A) de presentación más frecuente. En el 1% de la población, la proteína de von Willebrand (vWF) está cuantitativamente disminuida, o su función está perturbada. Para el diagnóstico de la enfermedad y de sus diversas formas, se llevan a cabo distintas pruebas. Como prueba de detección mas importante se ha establecido la prueba del cofactor ristocetina (vWF: RCo) (Rodeghiero F. et al.: Thromb. Haemost (1990) 64, Págs. 349 - 352). Según investigaciones de Rodeghiero (1990), presenta una sensibilidad del 50%, mientras que la prueba segunda en importancia, la determinación del antígeno de vWF, (vWF:-Ag), presenta sólo aproximadamente 32%.
La ristocetina es un antibiótico que fue retirado rápidamente del mercado debido a sus fuertes efectos secundarios. Ya en el año 1960 Gangarosa et al. (Gangarosa EJ et al., Arch. Intern. Med. (1960), Páginas 83-89) descubrieron que la ristocetina in vitro causa la agregación de trombocitos de conejo. También las plaquetas humanas en plasma rico en plaquetas (PRP) se agregan en presencia de ristocetina, pero no lo hacen en el caso de pacientes con síndrome de von Willebrand (Howard and Firkin, Thromb. Diath. Haemorrh. (1971), 26, Páginas 362-369). Basándose en ello, Weiss et al. (Weiss HJ et al., J. Clin. Invest. (1973) 52, Páginas 2708 - 2716) desarrollaron una prueba cuantitativa con trombrocitos adultos de donantes normales. No obstante, los trombocitos adultos sólo pueden utilizarse durante unas pocas horas. También se han empleado plaquetas fijadas, que tienen la ventaja de conservar su actividad durante un intervalo de tiempo más prolongado, por lo que se suprime la laboriosa preparación final de PRP fresco (Allain JP et al, J. Lab. Clin. Med. (1975), 85, Páginas 318 - 328).
El principio de la prueba del cofactor ristocetina se asemeja a la función in vivo de la proteína, por lo que la prueba se designa frecuentemente prueba de actividad. Mediante la adición de ristocetina a un preparado de prueba con trombocitos y factor de von Willebrand se desencadena la unión de la molécula de vWF al receptor GPIb/V/IX y con ello la aglutinación de trombocitos. El modo de acción no se conoce todavía. La ristocetina se une aparentemente al vWF, y se supone que una reacción decisiva es la modificación, ocasionada por la unión de la ristocetina, de la conformación de la molécula de vWF, de modo tal que ésta pueda unirse a su vez a GPIb/V/IX. Este proceso sería comparable con la variación de la conformación debida a la unión al subendotelio, que hace que el factor vW sea capaz de unirse (en especial en el caso de elevadas fuerzas de cizallamiento).
Acerca de la estabilidad de trombocitos fijos en relación con la actividad de vWF:Rco en caso de almacenamiento líquido, hay datos que oscilan entre 1 mes (Allain et al., J. Lab. Clin. Med. 1975, 85, Páginas 318 - 328) y hasta 6 meses (Thomas et al. (1994), Thromb. Res. 75, 4, Páginas 410-408).
Sin embargo, para el empleo comercial se necesita una estabilidad de al menos 10, mejor aún, de al menos 14 meses.
Hasta ahora una mejora esencial de la estabilidad solamente podía lograrse mediante una liofilización de los trombocitos (documentos US 4.145.185; DE 3141894A1, WO 99/55346) o mediante crioconservación (documentos 5.378.601; US 5.919.614), En este caso, en la Patente de los EE.UU. N° 4.145.185 Se describe la adición de un veneno de serpiente. En el documento DE 314894 se describe la utilización de un tanino, de un inhibidor serina-proteinasa y de ristocetina A. En la Solicitud Internacional WO 99/55346 se describe un método en el que los trombocitos se estabilizan mediante diafiltración y fijación. En la Patente de los EE.UU. N° 5.378.601 se describe un método en el que los trombocitos se estabilizan mediante adición de apirasa y de un antioxidante. En la Patente de los EE.UU. N° 5.919.614 se describe un método, en el que los trombocitos se conservan hasta su utilización en una solución que contiene una serie de diversos inhibidores de la función de las plaquetas. Todos los reactivos de trombocitos actualmente obtenibles en el comercio para la prueba del cofactor ristocetina están liofilizados. En especial en el caso de la utilización de un reactivo de este tipo, liofilizado, en un aparato de análisis total o parcialmente automatizado, es desventajoso que el producto no pueda emplearse directamente después de la abertura, ya que es necesario reconstituir primero el liofilizado. Además de ello, la liofilización es un procedimiento costoso, que además, debido ya sólo a los pasos de procedimiento adicionales, tanto en la producción como en la utilización, alberga en si el riesgo de errores adicionales y de dañar los trombocitos. Condicionado por el procedimiento de producción, existe en los reactivos liofilizados frecuentemente una desviación relativamente grande de los resultados dentro de una tanda de producción, de un frasquito a otro.
Por ello, la misión sobre la que se basa la presente invención consiste en poner a disposición un procedimiento para la prueba del cofactor ristocetina bajo utilización de una formulación líquida de un reactivo de trombocitos, que posibilite una utilización del reactivo líquido también después de un tiempo de almacenamiento claramente superior a 6 meses, preferentemente de al menos 10 meses, de manera especialmente preferida de al menos 14 meses, es decir, que en el empleo del reactivo en una prueba también después de este tiempo de almacenamiento se cumplan las especificaciones de la prueba tales, como por ejemplo, el intervalo de medición y la precisión.
\newpage
Un reactivo de este tipo es extraordinariamente ventajoso para el laboratorio de coagulación, ya que combina las ventajas de una fácil manipulabilidad (aptitud para el uso) con las ventajas de la elevada sensibilidad y buena reproducibilidad. De las reivindicaciones cabe deducir también otras formas de realización preferidas de la invención.
Se ha descubierto ahora sorpresivamente que en una preparado líquido listo-para-utilizarse (de aproximadamente 600.000 trombocitos/\mul) es posible lograr una estabilidad de 12 meses y más, si en la preparación final los trombocitos se tratan con una sustancia inhibidora serina proteasa (preferentemente fosfato de diisopropilfluor), se fijan y se suspenden en una solución acuosa tamponada que no contiene ristocetina ni veneno de serpiente (Figura 2).
Es posible mejorar la estabilidad de almacenamiento entre otros mediante la adición de proteínas neutras, tales como albúminas, en especial albúmina de suero humano o bovino. En el caso de una concentración suficiente de albúmina (mayor de 0,2%, preferentemente de 2%) es también posible agregar ristocetina en la preparación líquida. Es posible mejorar esencialmente la estabilidad de almacenamiento, también en presencia de ristocetina, mediante el tratamiento con o la adición de una isotiazolona, tal como por ejemplo Kathon®, preferentemente Kathon® CG (Rohm & Haas, Philadelphia, EE.UU.) o de Proclin®, o de algún otro material bactericida o bacteriostático. Estos compuestos se emplean ventajosamente en una concentración (vol/vol) de 0,1 a 2%, de manera especialmente ventajosa 0,5 a 1,4%, de manera muy especialmente ventajosa 0,8 a 1,2% en el reactivo.
Otros aditivos, en sí conocidos por la persona experta, tal como se describen por ejemplo en el documento DE 3141894, tienen adicionalmente un efecto ventajoso sobre la estabilidad a largo plazo en caso de almacenamiento líquido.
A menos que se indique otra cosa, la expresión almacenamiento se refiere entre otros al almacenamiento a 2 - 8°C (refrigerador), y la expresión estabilidad se refiere entre otros a la determinación de la prueba vWF:RCo (Thomas et al. (1994)).
El almacenamiento del reactivo con una concentración de trombocitos que hacen que el reactivo pueda emplearse sin dilución, directamente para la prueba (listo-para-usar) hace que según el estado conocido de la técnica deba esperarse una durabilidad peor que en el caso del almacenamiento en forma de concentrado. Un concentrado contiene típicamente 5 a 15 millones de trombocitos/\mul. De hecho, el reactivo conforme a la invención muestra, también en el caso
de un reactivo con 600.000 trombocitos/\mul, una durabilidad del reactivo de más de 12 meses (Figura 1 y Figura 2).
Además de ello, independientemente del tipo de reactivo se ha descubierto que la elevación de la concentración de ristocetina, independientemente de cuánta albúmina se encuentre presente en el reactivo o en el preparado de prueba, a un valor superior a 1,25 mg/ml en el preparado de prueba, puede tener una influencia positiva sobre la posibilidad de utilización de reactivo trombocitos que ha estado almacenado durante mucho tiempo. Un reactivo, que a razón de 1,0 mg/ml de ristocetina en el preparado de prueba ya no es suficientemente activo, puede, en el caso de una utilización de por ejemplo 1,5 mg/ml, presentar una actividad suficiente y no mostrar tampoco ninguna pérdida de actividad en el transcurso del plazo de vigencia del reactivo.
Un ejemplo de este efecto positivo de la mayor concentración de ristocetina en el preparado de prueba es el almacenamiento de un concentrado de trombocitos (100 ml) en un matraz de Erlenmeyer (250 ml), que fue abierto y nuevamente cerrado para la extracción de reactivo en el momento de medición. La frecuente abertura determina un fuerte contacto con el aire y un elevado peligro de contaminación. En el caso de la utilización de la concentración usual de ristocetina de 1,0 mg/ml en el preparado de prueba, después de 4,5 meses la reactividad de los trombocitos, es decir la actividad del cofactor ristocetina, ha caído considerablemente. En este casi no se determinó un valor de partida, pero la actividad del concentrado también puede compararse con la actividad de trombocitos liofilizados (la misma tanda), de los cuales es sabido que son muy estables (Figura 3). En el caso de una comparación de almacenamiento en estado líquido y secado por congelación, resultó después de 4 ½ meses de almacenamiento una fuerte pérdida de reactividad, cuando la concentración de ristocetina es de 1,0 mg/ml en el preparado, y no resultó en cambio ninguna diferencia esencial de reactividad, cuando la concentración de ristocetina en el preparado es de 1,75 mg/ml (Figura 3). Por lo tanto, la influencia perjudicial del almacenamiento en el matraz de Erlenmeyer (contacto con el aire, contaminación, envejecimiento) se compensó por la mayor concentración de ristocetina. Este efecto de almacenamiento es presumiblemente también la explicación de la caída de reactividad, relativamente fuerte, de esta medición en comparación con los resultados del en sayo representado en la Figura 2.
Otro ejemplo del efecto positivo de la mayor concentración de ristocetina en el preparado de prueba es la producción del reactivo según Thomas et al. (1994), que debería conducir a un reactivo estable durante 6 meses. Después de 18 meses la actividad ha decaído de manera muy considerable, lo que cabía esperar, cuando en el preparado de prueba se emplea 1,0 mg de ristocetina. En el caso de 1,5 mg de ristocetina en el preparado de prueba, la reactividad está muy lejos de haber caído tanto (Figura 4, paraformaldehido como agente de fijación). También en el caso de la fijación cor formalina y 8 meses de duración de almacenamiento, la caída de la reactividad en el caso de 1,5 mg de ristocetina en el preparado de prueba no es tan fuerte (Figura 4).
Por lo tanto, la mayor concentración de ristocetina determina una compensación de procesos de envejecimiento. Estos procesos de envejecimiento pueden presentarse en el caso de almacenamiento desventajoso también en el caso de tratamiento previo con DFF (Figura 3) o en el caso de un reactivo según el estado de la técnica (Thomas et al., 1994) (Figura 4).
Es posible elegir de manera ventajosa una mayor concentración de ristocetina en el preparado de prueba también en unión con el reactivo conforme a la invención.
Es preferible que la concentración de ristocetina en el preparado de prueba sea de 1 a 2,4 mg/ml, de manera especialmente preferida, de 1,25 a 2 mg/ml.
La causa de la mayor necesidad de ristocetina podría ser también la concentración de proteína en el tampón que aumenta en el transcurso del tiempo, ya que es sabido que la ristocetina se une a diversas proteínas y que es posible compensar una mayor concentración de proteínas mediante una mayor cantidad de ristocetina (Stibbe y Kirby, Thromb. Res. (1976), 8, Páginas 151 - 165). Por ello se lavaban trombocitos que habían estado almacenados durante 4 ½ meses, y se los incorporaba en tampón fresco (que nuevamente, contiene ristocetina). La actividad no se modificaba mediante lavado ni con 1,0 mg/ml ni con 1,75 mg/ml de ristocetina en el preparado de prueba. De ello cabe llegar a la conclusión que el proceso de envejecimiento actúa de hecho sobre los trombocitos propiamente dichos (Figura 3). El envejecimiento ocasiona visiblemente una sensibilidad disminuida frente a la acción de ristocetina. Esto es sorprendente en el sentido de que hasta ahora la acción principal de la ristocetina en la prueba del cofactor ristocetina se consideraba como una especie de activación de la proteína de von Willebrand, que hace que la proteína sea capaz de unirse al receptor GPIb. Sin embargo, cuando para la igual actividad de aglutinación las proteínas envejecidas necesitan más ristocetina, la interacción directa entre la ristocetina y los trombocitos es evidentemente más importante para la prueba del cofactor ristocetina de lo que se había supuesto hasta ahora.
Si se agrega ristocetina al reactivo trombocitos ya durante el almacenamiento, en este caso el reactivo es menos estable que sin ristocetina. No obstante, es posible mejorar esencialmente la estabilidad mediante la adición de una proteína neutra en una concentración de más de 1%, preferentemente albúmina, de manera especialmente preferida albúmina humana o bovina. Así, la estabilidad con 2% de albúmina es mejor que con 0,2% de albúmina (Figura 5).
Si se lavan trombocitos que se habían almacenado con 0,2% de albúmina y ristocetina, con tampón fresco que también contiene 0,2% de albúmina y ristocetina, la reactividad se hace nuevamente más fuerte, pero no vuelve al nivel de partida (Figura 6, diagrama a la izquierda). De esto puede llegarse a la conclusión que los trombocitos se han envejecido de esta manera por si solos.
De la bibliografía es sabido que la ristocetina precipita fibrinógeno y otras proteínas. Esta reacción puede reconocerse ya a 0,5 mg/ml, y a 2,0 mg/ml todo el fibrinógeno se ha precipitado en el plasma, mientras que las otras proteínas del plasma todavía no han sido afectadas (Howard and Firkin, Thromb. Diath. Haemorrh. (1971), 16, Páginas 362 - 369).
Se ha mostrado que en el procedimiento conforme a la invención, con una concentración de ristocetina de hasta 1,75 mg/ml en el preparado (40 \mul de muestra en 190 \mul de preparado de prueba), o de hasta 2,0 mg/ml (20 \mul de muestra en 190 \mul) no se presenta ninguna precipitación perturbadora de proteína (Figura 7).
En la medición de muestras en la prueba de vWF:RCo no se mostraron diferencias de resultado significativas para concentraciones de ristocetina de hasta 2,0 mg/ml (Figura 8). La concentración usual de ristocetina en el preparado de prueba vWF:RCo con trombocitos fijos es de 1 mg/ml (Thomas et al. 1994: 1,0 mg/ml).
Descripción de las figuras Figura 1
Estabilidad del reactivo concentrado de trombocitos, que se produjo sea con DFP como en el Ejemplo 1 sea sin DFP como en el caso de Thomas et al. (1994), Thromb. Res. 75, 4, Páginas 401-408).
Figura 2
Estabilidad de un reactivo trombocitos "listo para utilizar" con 6000.000 trombocitos/\mul.
Figura 3
Actividad del reactivo concentrado de trombocitos después de 4,5 meses de almacenamiento con 1,75 y 1,0 mg/ml de ristocetina en el preparado de ensayo.
Figura 4
Acción de la concentración de ristocetina en el preparado de prueba sobre la actividad del reactivo después de 18 ó 8 meses de almacenamiento. La elaboración final con paraformaldehido tuvo lugar según Thomas et al. (1994), Thromb. Res. 75, 4, Paginas 401 - 408), la elaboración final con formaldehído se realizó como en el Ejemplo 1. La concentración de ristocetina se refiere al preparado de prueba.
Figura 5
Estabilidad de un reactivo trombocitos que contiene ristocetina con 0,2% y 2% de albúmina.
Figura 6
Caída de la reactividad para diversas concentraciones de von Willebrand de un reactivo de trombocitos que contiene ristocetina con 0,2% de albúmina, después de 2 meses. Después del lavado de los trombocitos con tampón fresco de la misma composición que al inicio del almacenamiento, la reactividad vuelva a crecer un tanto.
Figura 7
Precipitación de proteínas de la muestra por elevadas concentraciones de ristocetina.
Figura 8
Influencia de elevadas concentraciones de ristocetina sobre la determinación de la concentración de von Willebrand con ayuda de la prueba del cofactor ristocetina.
Figura 9
Caída de la reactividad de un reactivo de trombocitos con 0,5 y 1,0 mg/ml de ristocetina en el preparado de prueba.
Los siguientes ejemplos ilustran la invención.
Ejemplo 1
Se aislaron trombocitos a partir de sangre completa mediante separación de los eritrocitos por centrifugación. El lavado triple de los trombocitos aislados tuvo lugar mediante incorporación en tampón fosfato A (0,07 mol de fosfato/l, 8,5 g de NaCl/L, 1,9 g de EDTA/l) y separación por centrifugación; ajuste del número de eritrocitos a aproximadamente 3 millones/\mul.
Después de adición de diisopropilfluorfosfato (DFP, 4,5 x 10E-4 M) se incubó durante 1 hora a temperatura ambiente bajo agitación. Después de lavado doble mediante separación por centrifugación y reincorporación en tampón fosfato B (0,15 mol de fosfato/l, 1,0 g de EDTA, pH 6,5), y después de la adición de formaldehído (concentración final: 4%) se acopló una incubación de 44 h a 4°C. Los trombocitos se separaron por centrifugación y se incorporaron en tampón fosfato C (0,07 mol de fosfato/l, 8,5 g de NaCl/L, 1,0 g de EDTA/l, 1 g de azida de sodio/l).
Seguidamente tuvo lugar una diálisis de la suspensión de trombocitos contra 20 veces el volumen de tampón fosfato C durante aproximadamente 24 horas. A continuación se ajustó el número de trombocitos mediante adición de tampón fosfato C. También se añadieron: sacarosa (10 g/l), glicina (10 g/l), glutaminato (16,7 g/l) y albúmina humana (2 g/l).
Seguidamente tuvo lugar el llenado en frasquitos de 5 ml con cierre de rosca estanco al aire.
Antes de la medición (medición de la extinción en mE) se añadieron 0,5 ml de solución de ristocetina a un volumen trasegado completo de 5 ml (21 mg/ml), con lo cual la concentración de ristocetina en el reactivo fue de 1,91 mg/ml. El preparado de prueba estaba compuesto de:
150 \mul de reactivo
20 \mul de plasma, y
20 \mul de solución isotónica de ClNa (al 0,9%)
Se determinó la velocidad de la caída de la extinción (Vmax). La concentración de ristocetina en el preparado de prueba era de 1,5 mg/ml.
Ejemplo 2
Realización como en el Ejemplo 1, pero la concentración de ristocetina en el reactivo trombocitos se ajustó antes de la medición a 1,3 mg/ml mediante adición, con lo que la concentración de ristocetina en el preparado de prueba era de 1,0 mg/ml (Figuras 1, 2 y 9).
Ejemplo 3
Realización como en el Ejemplo 1, pero la concentración de ristocetina en el reactivo trombocitos se ajustó antes de la medición a 2,2 mg/ml mediante adición, con lo que l concentración de ristocetina en el preparado de prueba era de 1,75 mg/ml (Figura 3).
Ejemplo 4
Realización como en el Ejemplo 1, pero antes del llenado de frasquitos de 5 ml con cierre atornillado hermético al aire se añadió una cantidad de ristocetina tal que la concentración final en el reactivo fue de 1,9 mg/ml. Esto corresponde a una concentración de ristocetina de 1,5 mg/ml en el preparado de prueba (Figura 5).

Claims (7)

1. Preparación líquida de trombocitos fijados con una estabilidad de al menos 10 meses, preferiblemente de 12 meses, consistente en una suspensión de trombocitos, tratándose los trombocitos en la elaboración final con una sustancia inhibidora serina-proteasa, se los fija y se los suspende en una solución acuosa, preferentemente tamponada, que no contiene ristocetina ni veneno de serpiente.
2. Preparación conforme a la reivindicación 1, que también después de un almacenamiento en estado líquido en un intervalo de tiempo de al menos 12 meses presenta una reactividad de al menos 80% del valor inicial, medida en la prueba del cofactor ristocetina.
3. Preparación conforme a la reivindicación 1, para la determinación y cuantificación del Factor de von Willebrand.
4. Preparación conforme a la reivindicación 1, en una preparación lista para utilizarse (aproximadamente 50.000 - 2.000.000 de trombocitos/\mul).
5. Preparación conforme a la reivindicación 4, con 200.000 - 1.000.000 de trombocitos/\mul, preferentemente de aproximadamente 600.000 trombocitos/\mul.
6. Uso de una preparación conforme a una de las reivindicaciones 1 a 5 en la prueba del cofactor ristocetina, en el que la concentración de ristocetina en el preparado de prueba es de 1 a 2,4 mg/ml, preferiblemente de 1,25 a 2 mg/ml.
7. Kit de prueba para una prueba del cofactor ristocetina, en el que se halla contenido una preparación conforme a una de las reivindicaciones 1 a 5.
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