ES2244246T3 - Utilizacion de una sustancia que se une al receptor periferico de las benzodiazepinas en el tratamiento de estres cutaneo. - Google Patents
Utilizacion de una sustancia que se une al receptor periferico de las benzodiazepinas en el tratamiento de estres cutaneo.Info
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Abstract
Utilización de al menos una sustancia que se une al receptor periférico de las benzodiazepinas o PBR, para la fabricación de una composición farmacológica o dermatológica tópica en el tratamiento del estrés cutáneo.
Description
Utilización de una sustancia que se une al
receptor periférico de las benzodiazepinas en el tratamiento de
estrés cutáneo.
La presente invención se refiere a una
composición que contiene un ligando de los receptores periféricos
de las benzodiazepinas para una utilización por vía tópica.
La invención se refiere a la utilización de una
sustancia que se une específicamente al receptor periférico de las
benzodiazepinas (PBR) para la fabricación de una composición para
la profilaxis o el tratamiento de los estrés cutáneos.
La invención se refiere igualmente a las
composiciones que contienen estas sustancias. Estas composiciones
pueden ser cosméticas o farmacéuticas, en particular dermatológicas
tópicas.
Por estrés cutáneo, se entienden las diferentes
situaciones que podrían provocar daños en particular a nivel de la
epidermis cualquiera que sea el agente que lo provoca. Este agente
puede ser interno y/o externo al organismo como un agente químico o
radicalario o bien externo como un rayo ultravioleta.
La composición según la invención está destinada
por lo tanto a prevenir y a luchar contra las irritaciones
cutáneas, las dartas, los eritemas, las sensaciones disestésicas,
las sensaciones de calentamiento, los pruritos de la piel y/o de las
mucosas, el envejecimiento y puede utilizarse también en los
desórdenes cutáneos tales como, por ejemplo, la psoriasis, las
enfermedades pruriginosas, el herpes, las fotodermatosis, las
dermatitis atópicas, las dermatitis de contacto, los líquenes, los
prurigos, los pruritos, las picaduras de insectos, en las fibrosis
y otros trastornos de la maduración de los colágenos, en los
desórdenes inmunológicos o también en afecciones dermatológicas como
el eccema.
El ligando PBR, igualmente llamado
"sustancia", contenido en la composición puede ser un
compuesto no peptídico, un péptido, un extracto de células o de
tejidos de origen animal o vegetal o un producto obtenido por
fermentación de un microorganismo, por ejemplo de una bacteria o de
un hongo.
Se describen numerosos ligandos PBR en la
bibliografía. Se pueden citar, a título de ejemplo, Ro
5-4864 o clorodiazepam, Ro 5-2807 o
diazepam, PK 11195 o se podrá hacer referencia al artículo
Peripheral Benzodiazepine Receptors, Ch. III, J. J. Bourguignon,
Ed. E. Giesen - Crouse, Academic Press.
El PBR es una proteína de 18 KD situada sobre la
membrana externa de las mitocondrias de los tejidos periféricos.
Está constituido por cinco dominios transmembranarios y de una
parte carboxiterminal dirigida hacia el citosol. Se atribuyen varias
funciones al PBR según la naturaleza del tejido considerado:
regulación de la esteroidogénesis, biosíntesis de hemo,
diferenciación y crecimiento celular, control de la respiración
mitocondrial (Krueger KE, Biochimica and Biophysica Acta 1995,
1241, 453-470). Aunque su función exacta no
ha sido todavía completamente elucidada, varios datos experimentales
recientes sugieren que PBR podría jugar un papel fundamental en la
regulación de los procesos de muerte celular programada y en la
protección antiradicalaria.
Se ha demostrado que PBR está en efecto
estrechamente asociado a nivel de la mitocondria con proteínas
reguladoras de la apoptosis tales como Bcl2 que previene la ruptura
del potencial de la membrana mitocondrial impidiendo así la
apoptosis inducida principalmente por la producción de radicales
oxigenados reactivos (Marchetti P. et al, J. Exp. Med. 1996,
184, 1155-1160); (Marchetti P. et al,
J. Immunol. 1996, 157, 4830-4836).
En el marco de la presente invención, se ha
observado el papel protector antiradicalario de PBR directamente
sobre células de origen hematopoyético para las que se ha puesto en
evidencia una correlación estrecha entre la densidad de PBR y la
protección antiradicalaria. Además, en este mismo estudio, se ha
demostrado que la transfección de PBR sobre células desprovistas de
este receptor confiere una protección contra los daños causados por
especies oxigenadas (Carayon P. et al, Blood 1996, 87,
3170-3178).
Varios datos de la bibliografía indican que PBR
jugaría un papel importante en la regulación de los procesos
apoptóticos y la protección de las células respecto de los daños
causados por los radicales libres.
Estudios filogenéticos recientes refuerzan esta
nueva noción de que PBR actúa como modulador de apoptósis implicado
en funciones antioxidantes. Existen similitudes significativas en
efecto entre PBR y la proteína CrtK de Rhodobacter
sphaeroides, una bacteria fotosintética. Esta proteína
bacteriana que funciona como un detector de oxígeno fotosensible,
regula la expresión de los genes implicados en la fotosíntesis en
respuesta a modificaciones medioambientales de la tensión en oxígeno
y de la intensidad lumínica. La comparación entre PBR y CrtK revela
una identidad de 35% y una conservación de secuencia entre estas dos
proteínas que se han diferenciado en la filogenia hace dos millares
de años. Esta homología sugiere una función altamente especializada
y conservada de PBR que parece similar a la de CrtK en la bacteria.
En efecto, se ha demostrado recientemente que el PBR de mamífero
transfectado en los mutantes Rhodobacter CrtK complementa la
función detector de oxígeno de CrTK. Así, este estudio sugiere un
papel clave de PBR en la transducción de las señales que dependen
del oxígeno (Yeliseev AA., et al, Proc. Natl. Acad. Sci.
1997, 94, 5101-5106).
Sin embargo, a día de hoy, no se ha indicado
nunca ninguna sustancia precisamente como ligando específico de los
receptores PBR cutáneos.
Con mayor razón, ninguna sustancia activa por vía
tópica, y que se une específicamente a los receptores PBR se ha
descrito en la bibliografía.
Se ha demostrado ahora, en el marco de la
presente invención, que PBR se expresa abundantemente a nivel de la
piel sobre los diferentes compartimentos celulares que la componen:
queratinocitos, células de Langerhans, folículos pilosos y células
endoteliales de la vasculatura dérmica. A nivel de la piel, la
expresión de PBR sigue un gradiente creciente de la capa basal
hacia la capa córnea. Esta organización remarcable que privilegia
las células diferenciadas de la epidermis más expuestas a los estrés
externos reviste sin duda una significación fisiológica de primera
importancia para la protección de las zonas de la epidermis más
vulnerables. Los estudios subcelulares realizados en microscopía
confocal indican como esperado una colocalización de PBR con Bcl2 a
nivel de la mitocondria. Los estudios histológicos sobre capa de
piel han puesto en evidencia una repartición sorprendente de PBR
(Figuras 1 y 2).
En efecto, la expresión de este receptor a nivel
de la epidermis sigue un gradiente de densidad creciente de las
capas basales hacia las capas más diferenciadas de queratinocitos.
Esta distribución espacial muy organizada que privilegia en término
de densidad las células de la epidermis más externas y por lo tanto
más expuestas, deja suponer que PBR a nivel de la piel podría
representar un sistema de protección natural contra los radicales
libres generados por la exposición a los rayos ultravioletas. La
observación concomitante que la distribución de la proteína
antiapoptótica Bcl2 obedece a un gradiente estrictamente inverso
sugiere un papel compensatorio de PBR para la preservación de las
células más diferenciadas.
El conjunto de estos datos que sugieren una
función protectora del PBR, más particularmente a nivel de la
epidermis, ha conducido a poner en evidencia ligandos naturales o
de síntesis que muestran que su interacción con PBR podría ser
beneficiosa en diferentes situaciones de estrés cutáneo provocado
por agentes químicos o radicalarios o también consecutivos a una
exposición UV.
Así, según uno de estos aspectos, la presente
invención se refiere a la utilización de un ligando específico del
PBR, Ro 5-4864 en los estrés cutáneos. Este ligando
es un agonista de PBR.
Según otro aspecto de la invención y en base a
estas observaciones, se ha llevado a cabo una criba que intenta
buscar ligandos naturales de PBR y ha permitido aislar varias
fracciones capaces de interaccionar con este receptor. El efecto
potencialmente protector de estos ligandos naturales se ha evaluado
posteriormente en diferentes ensayos que inducen un estrés cutáneo
y principalmente ensayos de eritemas cutáneos inducidos por
irradiaciones UV. Se han buscado igualmente las propiedades
antiradicalarias así como las capacidades de reparación
cutánea.
Se han utilizado ensayos bioquímicos y
farmacológicos para poner en evidencia la actividad y el interés de
las sustancias en diversos estrés cutáneos.
Los ensayos realizados con PBR tienen por
objetivo mostrar su implicación potencial en la regulación de
procesos apoptóticos y la preservación de las células cutáneas
respecto de diferentes estrés deletéreos.
Con ayuda del anticuerpo específico
anti-PBR, Ac 8D7 (mAb de ratones
anti-PBR, isotipo IgG1, Dussossoy et al.,
Cytometry, 1996, 24:39-48), un análisis por Western
Blot ha permitido poner en evidencia la presencia abundante de PBR
sobre seis líneas diferentes de queratinocitos humanos así como
sobre la piel humana normal (Figura 1).A nivel subcelular, los
análisis realizados en microscopía confocal confirman sobre los
queratinocitos una colocalización de PBR a nivel mitocondrial
(Figura 2).
Un estudio inmuno-histológico
realizado sobre una capa de epidermis humana normal con ayuda del
mismo anticuerpo revela un ordenamiento muy particular ya que la
expresión de PBR aumenta de la capa basal hacia la capa córnea. Por
lo tanto este receptor está presente abundantemente sobre los
queratinocitos más diferenciados, situados directamente bajo la
capa córnea (Figura 3).
Los estudios de unión o binding en el idioma
inglés, se realizaron sobre la línea de queratinocitos
A-431 (carcinoma epidermoide humano (ATCC,
CRL-1555)) por desplazamiento del ligando de
referencia [^{3}H]-PK11195. El análisis de
Scatchard indica un solo sitio de fijación, una densidad de
aproximadamente 470 000 receptores por célula y una fuerte afinidad
del ligando (KD = 1,5 nM) (Figura 4). La especificidad de la unión
sobre el receptor periférico portado por los queratinocitos se
testifica por los estudios farmacológicos que muestran una eficacia
decreciente del desplazamiento del ligando periférico de referencia
(PK 11195) por los ligandos siguientes:
Ro 5-4864 = (CI50 \approx 25
nM) > diazepam (CI50 \approx 100 nM) \ggg clonazepam
(inactivo a 3200 nM). Se recuerda que este último es un ligando del
receptor central de las benzodiazepinas, el diazepam es mixto, el Ro
5-4864 es específico del PBR (Figura 5).
Se han descrito dos tipos de experiencias en la
Figura 6. La primera consistió en comparar diferentes líneas de
origen linfoide o mieloide por su capacidad a resistir a la
toxicidad de los radicales oxigenados en relación con su nivel de
expresión de PBR. Los resultados indican una correlación muy fuerte
entre el número de sitios PBR por célula y la resistencia a la
toxicidad inducida por H_{2}O_{2}. Existe igualmente una
correlación similar cuando se considera esta vez el nivel de
expresión de Bcl2, proteína conocida por proteger las células de
los daños oxidativos. Este dato, junto con el hecho de que Bcl2 y
PBR son dos proteínas localizadas sobre la membrana externa de las
mitocondrias, sugiere que podrían presentar funciones comunes en la
protección celular. De manera interesante, mientras que la
expresión de PBR sigue un gradiente de densidad creciente de la
capa basal hacia el límite de la capa córnea, los datos de la
bibliografía indican un fenómeno inverso para la expresión de Bcl2,
que sugiere que a lo largo de la diferenciación de los
queratinocitos, PBR podría tomar el "relevo" de Bcl2 en lo que
se refiere a las funciones de protección antiradicalaria.
En la segunda experiencia, el papel posible de
PBR en la protección respecto de la toxicidad de los radicales
libres está reforzado por la demostración de la mejor viabilidad,
en presencia de H_{2}O_{2}, de células Jurkat transfectadas PBR+
en comparación con células homólogas PBR-.
La actividad anti-apoptótica de
los activos se midió sobre queratinocitos humanos y fibroblastos
(ATCC) que se sembraron en placas Petri de 35 mm (5 X 10^{5}
células/pocillos) en DMEM (Dubelco's Mode Eagle Medium) añadiendo
10% de suero de ternero fetal y se dejaron proliferar hasta
confluencia. Este medio de cultivo se aspiró luego, las células se
enjuagaron y se añadió 0,1% de suero de ternero fetal en presencia
de una solución salina. Se añadieron concentraciones crecientes de
la sustancia a estudiar. Veinticuatro horas después, se midió la
apoptosis con un equipo de dosificación ELISA (del inglés
"enzyme-linked immunosorbent assay").
Se sometieron queratinocitos a radiaciones
ultravioletas de tipo B (UVB) a la dosis de 250 J/m^{2} durante
16 horas (J. Invest. Dermatol. 1995, 104:
922-927). En presencia del ligando PBR Ro
5-4864, se ha demostrado que se previenen los
procesos de alteraciones celulares inducidos por la irradiación en
una gama de concentraciones de ligando comprendida entre 10 nM y 10
\muM.
El efecto fotoprotector del ligando se evaluó por
aplicación por vía cutánea sobre el cobaya albino.
La vía tópica cutánea se utilizó con el fin de
reproducir las condiciones de utilización en el hombre.
Se utilizaron cobayas Hartley, Charles River
France, Saint Aubin lès Elbeuf, 76410 Cléon, Francia.
Los animales se rasuraron, luego se depilaron
sobre los flancos anteriores derecho e izquierdo, 24 horas antes
del comienzo del tratamiento.
Los animales se irradiaron justo antes del primer
tratamiento. La energía se verificó antes de cada irradiación
realizada sobre los flancos derecho e izquierdo en el espectro UVB
a una dosis de 4000 mJ/cm^{2}.
El flanco derecho de los animales se trató con
0,2 ml de solución del ligando inmediatamente después de
irradiación luego 2 y 5 horas después de irradiación. El flanco
izquierdo no será tratado.
Una lámpara de vapor de Xeron Alta presión (IDEM
300) producirá la irradiación.
Las lecturas de las reacciones locales se
hicieron antes de tratamiento, luego 5 y 24 horas después de
irradiación.
Eritema y edema se evaluaron como sigue:
Eritema
0 no eritema; 1 eritema muy débil, apenas
perceptible; 2 eritema neto, rosa pálido; 3 eritema neto, rojo
franco; 4 eritema particularmente intenso
\newpage
Edema
0 no edema; 1 edema muy ligero (apenas visible);
2 edema ligero (contorno bien definido e hinchamiento aparente); 3
edema medio (espesor aproximadamente 1 mm); 4 edema grave (espesor
superior a 1 mm y superficie superior a la zona de aplicación).
A continuación se describen ejemplos de ligandos
naturales del receptor PBR producidos por fermentación con su
actividad.
Una criba o screening en el idioma inglés,
efectuado sobre extractos de microorganismos conducido sobre medio
sólido o líquido permitió seleccionar tres cepas de microorganismos
(bacterias y hongos microscópicos).
Las dos cepas seleccionadas después de diferentes
estudios llevados para optimizar las condiciones de producción de
cantidades significativas de extractos de cultivos que poseen
buenas actividades sobre el ensayo de medida de interacción con el
receptor PBR tienen por referencia SRL 4988 y SRL 5186.
Las tres cepas anteriores se depositaron en el
CNCM del Instituto Pasteur: fecha de 27 agosto 1999 con los números
de orden I-2305, I-2306
respectivamente.
La cepa SRL 4988 clasificada como Nocardia
species, aislada de una muestra de suelo tiene por caracteres
ecológico-fisiológicos, determinados después de
cultivo de dos semanas a 28ºC sobre medio ISP2: fototrofo negativo,
quimio-organotrofo, mesófilo y halófilo negativo.
Es no móvil y presenta espiras abiertas, no verticiladas.
La cepa SRL 5186 clasificada como
Streptomyces, aislada de una muestra de suelo tiene por
caracteres ecológico-fisiológicos, determinados
después de cultivo de dos semanas a 28ºC sobre medio ISP2:
fototrofo negativo, quimio-organotrofo, mesófilo y
halófilo negativo. Es no móvil y presenta hifas flexibles y
biverticiladas.
Después de cultivos sobre medio nutritivo geloso
y varios inóculos sucesivos que permitieron obtener un cultivo
abundante y puro, se fabricó un lote 0 de conservación de la cepa
madre luego lotes de sembrado primario y secundario.
Para ello, se preparó una suspensión de esporas a
partir de un cultivo sobre medio nutritivo geloso en placa Petri y
de un medio de recogida; este medio contenía un crioprotector que
permite asegurar una buena viabilidad de las esporas durante la
conservación por congelación.
La suspensión de esporas obtenida se repartió en
criotubos que se conservaron a -80ºC: estos tubos constituyen el
lote 0.
Siguiendo el mismo protocolo, pero a partir de un
tubo del lote 0, se preparó un lote de sembrado primario. Luego,
siempre siguiendo el mismo protocolo, se preparó un lote de
sembrado secundario a partir de un criotubo de sembrado primario. La
fabricación de los lotes de sembrado 0, 1 y 2 asegura una
accesibilidad durable de la cepa y por lo tanto de la actividad
buscada. Los cultivos de estas tres cepas que permiten obtener
ligandos naturales del receptor PBR pueden llevarse a cabo de manera
próxima con los medios de cultivos aerobios habituales, es decir
medios líquidos en fermentadores de cualquier capacidad con control
en línea del pH y de la aeración.
Ejemplo A SRL
4988
A título de ejemplo de cultivo en matraces
Erlenmeyer para la cepa SRL 4988: se utilizó un tubo de sembrado
secundario para sembrar placas Petri preparadas con un medio que
favorecía la esporulación de actinomicetos según la composición:
Glucosa | 20 g |
Soyoptim (SIO) | 10 g |
CaCO_{3} (OMYA) | 3 g |
Agar tipo E | 20 g |
Agua destilada CPS | 1 l |
Se incubaron los cultivos en placas durante 5
días a 28ºC. Entonces se obtuvo una suspensión de esporas al añadir
en cada placa Petri, 10 ml de un medio líquido de composición:
\newpage
Glucosa | 30 g |
Soyoptim (SIO) | 10 g |
Triptona U.S.P. (BIOKAR) | 4 g |
Extracto de levaduras (DIFCO) | 8 g |
NaCl | 2,5 g |
CaCO_{3} | 5 g |
Hidrolizado de caseína | 5 g |
Peptona papaínica de soja | 5 g |
cuyo pH se ajustó a 7,0 antes de
esterilización.
Se utilizaron 5 ml de las suspensiones de esporas
para inocular matraces estériles de 250 ml, rellenos con 50 ml del
mismo medio, que constituían los precultivos, se incubaron en una
cámara caliente a 28ºC sobre un agitador de baldas, o en un
incubador autónomo, regulándose las velocidades de rotación sobre
uno u otro de los sistemas a 210 rev/mn.
Después de dos días de agitación los matraces de
precultivo se utilizaron para sembrar los matraces de cultivo
propiamente dicho a razón de 5 ml de medio de precultivo por
Erlenmeyer de 500 ml relleno de medio de cultivo (100 ml) de
composición:
Glicerol | 10 g |
Almidón soluble | 30 g |
Soyoptim | 15 g |
Triptona | 2 g |
Extracto de levadura | 5 g |
CaCO_{3} | 5 g |
Solución de oligoelementos | 10 ml |
Agua CPS | 1 l |
pH 7 |
Composición de la solución de oligoelementos
utilizada:
FeSO_{4}, 7H_{2}O: | 1,0 g |
MnSO_{4}, 4 H_{2}O | 1,0 g |
CaCl_{2}, 2H_{2}O: | 0,025 g |
CaCl_{2}, 2H_{2}O: | 0,10 g |
H_{3}BO_{3} | 0,56 g |
(NH_{4})_{6} Mo_{7}O_{24}, 4 H_{2}O | 0,002 g |
ZnSO_{4}, 7H_{2}O: | 0,20 g |
Agua CSP | 1 l |
Así en este caso preciso, se utilizaron 5
matraces de precultivos para inocular 40 matraces de cultivos de
100 ml de medio de cultivo por Erlenmeyer de 500 ml, que después de
6 días de cultivo agitado a 28ºC en cámara caliente sobre un
agitador rotativo regulado a 210 rev/mn, proporcionaron 4 litros de
suspensión de bacterias.
Se centrifugaron los 4 litros de mosto de
fermentación en varias operaciones, a una temperatura de 4ºC, y a
un régimen de 13500 rev/mn (es decir 27 500 g con el rotor
utilizado), con el fin de separar la biomasa, es decir el fondo que
reunía las células del líquido sobrenadante de cultivo constituido
mayoritariamente por agua que provenía del medio nutritivo
utilizado y que contenía en solución restos de componentes del
medio nutritivo así como metabolitos producidos y excretados por las
células de las bacterias durante las diversas fases de su
crecimiento.
Las biomasas y líquidos sobrenadantes se
congelaron entonces a -20ºC.
Los 4 litros de líquido sobrenadante descongelado
se cargaron en un vaso de precipitados de 10 litros. Se añadió la
solución de 400 g de resina
poliestireno-divinilbenceno Amberlite XAD 16 (Rohm
& Haas). La suspensión se agitó con un motor equipado de unas
palas, girando a 20 rev/mn, durante 15 horas. La solución se filtró
luego, el filtrado se eliminó y la resina secada por succión se
recogió en 1 litro de metanol. Se mantuvo con agitación suave
durante una hora. Se filtró de nuevo la resina que se volvió a
tratar de forma idéntica con 1 litro de metanol. Durante una
tercera operación la resina se volvió a tratar esta vez con 1 litro
de acetona. La resina secada por succión se eliminó luego y los 3
litros de disolvente orgánico reunidos se evaporaron hasta sequedad
en un rotavapor a vacío.
El residuo de evaporación (17,7 g) se trituró con
50 ml de metanol, la suspensión obtenida se centrifugó a 3000
rev/mn durante 15 minutos, y el líquido sobrenadante decantado
obtenido constituyó el extracto del líquido sobrenadante de
cultivo.
Este extracto se ensayó en dilución en inhibición
de la unión sobre el receptor PBR y proporcionó una actividad
evaluada a 1/200 (50% de inhibición).
Las biomasas reunidas (199 g) en un vaso de
precipitados de 2 litros se trataron bajo agitación con una mezcla
de 750 ml de cloruro de metileno y de 750 ml de metanol. La
agitación se mantuvo durante 15 horas a temperatura ambiente. La
suspensión se filtró luego y la solución límpida obtenida se
concentró a vacío en un rotavapor. El residuo de evaporación (5,4
g) se trituró luego con 50 ml de metanol y constituyó el extracto
de biomasa.
Este extracto se ensayó en inhibición de la unión
del receptor PBR y proporcionó una actividad medida a 1/2200
(DI_{50} = 2200^{-1}).
Ejemplo A SRL
5186
Con los mismos protocolos y medios
respectivos:
- medio gelosado para las siembras en placa
Petri
- medio líquido de precultivo
- medio líquido de producción
14 matraces Erlenmeyer de 500 ml rellenos con 100
ml de medio de producción, e inoculados a 5%, se incubaron a 28ºC
en cámara caliente sobre un agitador rotativo que giraba a 210
rev/mn, durante 6 días.
Después de centrifugación y almacenamiento uno a
dos días en el congelador a -20ºC de las biomasas y líquidos
sobrenadantes de producción, estos productos se descongelaron antes
de proceder a su extracción.
Las biomasas (54,9 g) se trataron en un vaso de
precipitados, bajo agitación con una mezcla de 250 ml de
diclorometano y 250 ml de metanol, durante una decena de horas. La
suspensión se filtró luego y la solución límpida obtenida se
concentró hasta sequedad en un rotavapor.
El residuo seco (1,4 g) se trituró con 17,5 ml de
metanol, et la suspensión obtenida se centrifugó a 3000 rev/mn
durante 15 minutos. El líquido sobrenadante de centrifugación
tomado, constituyó el extracto de biomasa.
Este extracto, evaluado en dilución sobre el
ensayo de inhibición de la unión al receptor PBR proporcionó una
inhibición de 50% en el ensayo a la dilución 1/3750 (DI_{50}=
3750^{-1}).
A los 1400 ml de líquido sobrenadante
descongelado se añadieron 160 g de resina
poliestireno-divinilbenceno XAD 16 (Rohm & Haas)
y la suspensión se agitó durante 15 horas. La resina se filtró, el
filtrado se eliminó y la resina se volvió a tratar con 200 ml de
solución al 25% de metanol en agua durante 3 horas.
\newpage
La resina se filtró, y este segundo filtrado se
eliminó. La resina sufrió entonces tres tratamientos semejantes,
dos con 200 ml de metanol y el último con 200 ml de acetona. Estos
tres últimos filtrados se reunieron en un matraz, luego se
concentraron a vacío con ayuda de un rotavapor. El residuo seco
obtenido (2,2 g) se trituró luego con 17,5 ml de metanol y la
solución obtenida constituyó el extracto del líquido
sobrenadante.
Este extracto evaluado en dilución sobre el
ensayo de inhibición de la unión al receptor PBR dio una inhibición
de 50% a la dilución 1/940 (DI_{50} = 940^{-1}).
En las composiciones según la invención, la
sustancia que se unía a PBR se utilizó preferentemente en una
cantidad que iba de 0,00001 a 20% en peso con respecto al peso total
de la composición, y en particular en una cantidad que iba de 0,001
a 10% en peso con respecto al peso total de la composición.
Las composiciones según la invención pueden
presentarse en todas las formas galénicas normalmente utilizadas
para una aplicación tópica.
Las cantidades de los diferentes constituyentes
de las composiciones según la invención son aquellas utilizadas
clásicamente en los dominios considerados y son apropiados a su
forma galénica.
Para una aplicación tópica, las composiciones de
la invención comprenden un medio compatible con la piel. Estas
composiciones pueden presentarse principalmente en forma de
soluciones acuosas, alcohólicas o hidroalacohólicas, de geles, de
emulsiones de tipo agua-en-aceite o
aceite-en-agua teniendo el aspecto
de una crema o de un gel, de microemulsiones, de aerosoles, o
también en forma de dispersiones vesiculares que contienen lípidos
iónicos y/o no iónicos. Estas formas galénicas se preparan según
los métodos usuales de los dominios considerados.
Estas composiciones para aplicación tópica pueden
constituir principalmente una composición de protección, de
tratamiento o de cuidado cosmético o dermatológico para la cara,
para el cuello, para las manos o para el cuerpo, (por ejemplo cremas
de día, cremas de noche, cremas o aceites solares, leches
corporales), una composición de maquillaje (por ejemplo fondo de
maquillaje) o una composición de bronceado artificial.
Cuando la composición de la invención es una
emulsión, la proporción de cuerpo graso que contiene puede ir de 5%
a 80% en peso, et preferentemente de 5% a 50% en peso con respecto
al peso total de la composición. Los cuerpos grasos y los
emulsionantes utilizados en la composición en forma de emulsión se
eligen entre aquellos utilizados clásicamente en el campo cosmético
o dermatológico.
Como cuerpos grasos utilizables en la invención,
se pueden citar los aceites minerales (vaselina), los aceites
vegetales (fracción líquida de manteca de carité) y sus derivados
hidrogenados, los aceites animales, los aceites de síntesis
(perhidroescualeno), los aceites siliconados (dimetilpolisiloxano)
y los aceites fluorados. Como otros cuerpos grasos, se puede citar
también alcoholes grasos (alcohol cetílico, alcohol estearílico),
ácidos grasos (ácido esteárico) y ceras.
Los emulsionantes pueden estar presentes, en la
composición, en una proporción que va de 0,3% a 30% en peso y
preferentemente de 0,5 a 30% en peso con respecto al peso total de
la composición.
De manera conocida, las composiciones cosméticas
o dermatológicas de la invención pueden contener igualmente
adyuvantes habituales en los campos correspondientes, tales como
gelificantes hidrófilos o lipófilos, conservantes, antioxidantes,
disolventes, perfumes, cargas, filtros y materias colorantes.
Además, estas composiciones pueden contener activos hidrófilos o
lipófilos. Las cantidades de estos diferentes adyuvantes o activos
son aquellas utilizadas clásicamente en el campo cosmético o
dermatológico, y por ejemplo de 0,01% a 20% en peso total de la
composición. Estos adyuvantes o estos activos, según su naturaleza,
pueden introducirse en la fase grasa, en la fase acuosa y/o en
vesículas lipídicas.
Entre los activos que pueden contener las
composiciones de la invención, se pueden citar principalmente los
activos que tienen un efecto sobre el tratamiento de arrugas o
pequeñas arrugas y en particular los activos queratolíticos. Por
queratolítico, se entiende un activo que tiene propiedades
descamantes, exfoliantes o gomantes, o un activo capaz de ablandar
la capa córnea.
Entre estos activos que tienen un efecto sobre el
tratamiento de arrugas y pequeñas arrugas que pueden contener las
composiciones de la invención, se pueden citar en particular
hidroxiácidos y retinoides.
Los hidroxiácidos pueden ser por ejemplo
\alpha-hidroxiácidos o
\beta-hidroxiácidos, que pueden ser lineales,
ramificados o cíclicos, saturados o insaturados. Los átomos de
hidrógeno de la cadena carbonada pueden, además, estar sustituidos
por halógenos, radicales halogenados, alquilados, acilados,
aciloxilados, alcoxi=carbonilados o alcoxilados que tienen de 2 a 18
átomos de carbono.
Los hidroxiácidos que pueden utilizarse son
principlamente ácidos glicólico, láctico, málico, tártrico,
cítrico, 2-hidroxialcanoico, mandélico, salicílico,
así como sus derivados alquilados como ácido
n-octanoil-5-salicílico,
ácido
n-dodecanoil-5-salicílico,
ácido
n-decanoil-5-salicílico,
ácido
n-octil-5-salicílico,
ácido n-heptiloxi-5 o
-4-salicílico, ácido
2-hidroxi-3-metilbenzoico,
o también sus derivados alcoxilados como ácido
2-hidroxi-3-metoxibenzoico.
Los retinoides pueden ser principalmente ácido
retinoico y sus derivados, retinol (vitamina A) y sus ésteres tales
como palmitato de retinol, acetato de retinol y propionato de
retinol, así como sus sales.
Estos activos pueden utilizarse en particular en
concentraciones que van de 0,0001% a 5% en peso con respecto al
peso total de la composición.
Claims (11)
1. Utilización de al menos una sustancia que se
une al receptor periférico de las benzodiazepinas o PBR, para la
fabricación de una composición farmacológica o dermatológica tópica
en el tratamiento del estrés cutáneo.
2. Utilización de al menos una sustancia que se
une al PBR para la fabricación de una composición farmacológica y/o
dermatológica tópica con el fin de disminuir las arrugas, de
reducir el eritema solar o proteger contra los radicales libres.
3. Utilización según una de las reivindicaciones
1 ó 2, caracterizada porque la sustancia que se une al PBR
es un agonista del PBR elegido entre las moléculas de síntesis, las
sustancias naturales de extracción o una sustancia obtenida por
fermentación.
4. Utilización según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, caracterizada porque la sustancia
que se une al PBR es Ro 5-4864.
5. Utilización según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, caracterizada porque la sustancia
que se une al PBR es una sustancia obtenida por fermentación.
6. Utilización según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 5, caracterizada porque la sustancia
está presente en la composición farmacológica o dermatológica en
una cantidad que va de 0,00001 a 20% en peso con respecto al peso
total de la composición.
7. Utilización según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 6, caracterizada porque la sustancia
agonista está presente en la composición farmacológica o
dermatológica en una cantidad que va de 0,001 a 10% en peso con
respecto al peso total de la composición.
8. Utilización según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 7, caracterizada porque la composición
contiene además un hidroxiácido y/o un retinoide.
9. Utilización según la reivindicación 8,
caracterizada porque el hidroxiácido se elige entre
\alpha-hidroxiácidos o
\beta-hidroxiácidos, que pueden ser lineales,
ramificados o cíclicos, saturados o insaturados.
10. Utilización según la reivindicación 8,
caracterizada porque el retinoide se elige entre el grupo
que comprende ácido retinoico y sus derivados, retinol y sus
ésteres.
11. Composición farmacológica y/o dermatológica
tópica, caracterizada porque contiene como sustancia activa
una sustancia obtenida por fermentación de la cepa Nocardia especie
I-2305 o Streptomyces especie
I-2306.
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