ES2237200T3 - Produccion de proteinas. - Google Patents
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Abstract
Un procedimiento para la producción de una proteína por cultivo celular que comprende las etapas de: cultivar células NS0 transformadas por recombinación que producen de forma constitutiva dicha proteína en un medio de cultivo, el cual comprende ácido butírico o una sal metálica del mismo a una concentración mantenida de aproximadamente 0, 075 mM.
Description
Producción de proteínas.
La presente invención se refiere a la producción
de proteínas por técnicas de cultivo celular y, en particular, se
refiere a procedimientos nuevos y mejorados para la producción de
proteínas útiles en aplicaciones terapéuticas y diagnósticas.
La producción comercial de proteínas por cultivo
celular, en concreto para su uso en aplicaciones médicas, requiere
de un costoso esfuerzo principalmente debido a los niveles
relativamente bajos de proteínas (en concreto denominadas
"proteínas extrañas") producidas por varios tipos de células.
Una aproximación para abordar este problema es el uso de agentes
para inducir que las células produzcan cantidades más elevadas de lo
normal de la proteína deseada. Un ejemplo de tal agente es el ácido
butírico o, más típicamente, una sal del mismo como por ejemplo el
butirato de sodio, el cual se cree modifica la expresión de genes a
un nivel molecular a través de su efecto en el estado de metilación
del ADN, el cual afecta a su vez a la activación transcripcional de
genes. El agente inductor sirve de complemento a los medios de
cultivos durante el procedimiento de cultivo, y va típicamente
seguido de un período de cultivo celular. Durante el procedimiento,
los medios de cultivo que incluyen el agente inductor se pueden
cambiar por un procedimiento continuo en el que se añaden
continuamente medios frescos a la vez que se elimina el medio
antiguo, o bien, en un procedimiento de tipo lote, en el que de
alguno de los medios se eliminan las células y se reemplaza.
En el documento EP 0 239 292 B1, se incubaron
células NB1/19 con una serie de concentraciones de butirato de sodio
que variaban de 0,1 mM a 1,0 mM durante un período de sólo
aproximadamente 8 días. En el documento WO 89/06686 se sugiere un
procedimiento para aumentar la producción de proteínas por medio de
un cultivo de células eucarióticas a través de la adición de ácido
butírico o de una de sus sales en concentraciones de 0,1 mM a 10,0
mM. En esta revelación, se favorece primero el crecimiento de las
células hasta que confluyan antes de la adición del ácido o de la
sal. Generalmente, esto está en línea con el pensamiento aceptado de
que el ácido butírico, mientras que resulta efectivo en promover la
producción de proteínas, tiene un efecto potencialmente perjudicial
sobre la viabilidad de las células, haciendo que resulte prudente
llevar a las células a una confluencia o a una población celular
relativamente elevada, antes de exponerlas al ácido butírico.
En el documento US 5.705.364 se describe acerca
del uso de un ácido alcanoico o de una de sus sales a unas
concentraciones de entre 0,1 mM y 20 mM, junto con, opcionalmente,
un control osmótico para incrementar de forma específica el
contenido en ácido silac de las glicoproteínas. En el nº 21 de
Nucleic Acid Res., 1983, 11, se investigan los efectos del butirato
de sodio sobre la transferencia de genes mediadas por el ADN en
concentraciones que varían de 2 a 10 mM. En Can. Res., Vol 46, Feb
1986, 713-716, se describe una investigación acerca
de los efectos del butirato de sodio sobre la síntesis y mutilación
el ADN en células normales y en sus equivalentes transformadas. En
esta investigación se usan concentraciones que varían de 5 a 100 mM.
En el documento US 5.378.612, se describe un medio de cultivo para
cultivar las células transformadas. Los medios de cultivo pueden
contener ácido butírico en una concentración de por ejemplo 1
mM.
Los autores de la presente invención han
descubierto, contrariamente a las expectativas esperadas, que el uso
y mantenimiento de concentraciones inusualmente bajas de un ácido
alcanoico en medios de cultivo que comprenden cultivos celulares,
conduce a una producción aumentada de proteínas, durante un largo
período de tiempo, influyendo de manera significativa en la
viabilidad celular. Además, la baja concentración de ácido alcanoico
permite la presencia de ácido alcanoico en los medios de cultivo en
una etapa más temprana en el procedimiento de cultivo que la
descrita hasta la fecha.
De acuerdo con la presente invención, se
proporciona un procedimiento para la producción de una proteína por
cultivo celular que comprende las etapas de:
poner en cultivo células NS0
transformada por recombinación que producen de forma constitutiva
dicha proteína en un medio de cultivo, el cual comprende ácido
butírico o una de sus sales metálicas a una concentración mantenida
de aproximadamente 0,075
mM.
Los expertos en la técnica entenderán que los
términos "concentración mantenida" y "mantener la
concentración" no implican necesariamente que la concentración
en el medio de cultivo deba permanecer constante ya que se permite
un cierto grado de variación en la concentración siempre que se
alcancen los mismos resultados o similares. Por supuesto, 0 mM queda
excluido del término "menos de 0,1 mM".
Las proteínas que se pueden producir por la
presente invención incluyen proteínas eucarióticas terapéutica y/o
diagnósticamente útiles que pueden producirse de forma natural o
artificial (por ejemplo, proteínas de fusión). Son ejemplos de
proteínas de la presente invención cuya producción puede resultar
beneficiosa las hormonas, por ejemplo la hormona de crecimiento
humana como ejemplo de hormona de crecimiento, enzimas, inhibidores
de enzima o linfoquinas. El procedimiento de la presente invención
resulta particularmente útil en la producción de inmunoglobulinas,
por ejemplo anticuerpos o análogos o fragmentos de los mismos que se
producen de forma natural o artificiales (quiméricos y
humanizados).
Fragmentos adecuados de los mismos incluyen
fragmentos Fab y Fv y anticuerpos de una sola cadena. Los
anticuerpos pueden ser policlonales o más preferiblemente
monoclonales de cualquier clase o subclase adecuada. Se prefiere que
el anticuerpo sea una IgG, particularmente anticuerpo del tipo
IgG_{1} o un fragmento derivado del mismo. Tales proteínas son
preferiblemente adecuadas para su uso en el tratamiento terapéutico
(incluyendo profiláctico) o diagnóstico de enfermedades humanas,
como por ejemplo trastornos pro-inflamatorios como
por ejemplo la artritis reumatoide, osteoartritis u otros
trastornos. De esta forma, en el caso de anticuerpos, el anticuerpo
se puede producir bajo una forma humanizada.
El ácido y/o sal del mismo está presente en los
medios de cultivo celular en una concentración de aproximadamente
0,075 mM. Estas concentraciones proporcionan una producción de
proteína útil con, durante un período prolongado, efectos adversos
mínimos sobre la viabilidad celular. Además, la producción de
proteínas por células expuestas a estas concentraciones parece menos
variable en el tiempo que a concentraciones más elevadas, por
ejemplo 0,1 mM. Esto resulta beneficioso a la hora de proporcionar
una mayor consistencia durante cualquier recuperación de proteína
que puede tener lugar durante el procedimiento de cultivo. Además se
proporciona un grado de control sobre el procedimiento, el cual, se
apreciará, se desea durante los procedimientos comerciales de
fabricación.
Quedará claro para los expertos en la técnica que
se puede emplear experimentación rutinaria, por ejemplo experimentos
simples de valoración, para determinar empíricamente la
concentración o intervalo de concentraciones de ácido y/o sal del
mismo en la que, para un tipo de células dado, resulta evidente la
producción aumentada de proteína con efectos adversos mínimos sobre
la viabilidad celular, particularmente durante un período de tiempo
prolongado tal y como se mide, por ejemplo, por medio de un conteo
de viabilidad simple.
Se prefiere que la concentración del ácido y/o
sal presente en los medios de cultivo se mantenga a aproximadamente
la misma concentración durante el procedimiento de cultivo (la
concentración especificada), preferiblemente durante una mayor
proporción del procedimiento de cultivo, más preferiblemente, el
tiempo completo en el que el ácido y/o sal está presente en los
medios de cultivo. Cuando se de una variación en la concentración,
tal variación resultará adecuada dentro de \pm20 mM,
apropiadamente \pm10 mM, de la concentración especificada.
Los medios de cultivo celular de la presente
invención pueden comprender suero (por ejemplo suero animal, como
por ejemplo suero fetal de ternera) o ser suero libre, y puede
además comprender los componentes normales encontrados en medios de
cultivo celular convencionales. Los expertos en la técnica
apreciarán que en circunstancias en las que por ejemplo se emplee
una prueba de dependencia de glutamina, los medios de cultivo
deberían comprender poca glutamina, preferiblemente nada. El ácido
y/o sal se añade y se mezcla con los medios de cultivo antes de, al
comienzo o brevemente después del procedimiento de cultivo.
Se prefiere particularmente que el ácido y/o sal
del mismo sirva de complemento a los medios después de un breve
período de tiempo desde el comienzo en el que las células se ponen
en el cultivo en ausencia del ácido y/o sal del mismo para facilitar
el establecimiento de una población de células productoras de
proteína (esto es, estable). Se prefiere que las células se pongan
en cultivo durante un período mínimo de tiempo necesario para
establecer la población productora de proteína antes de la adición
del ácido y/o sal. El breve período se puede determinar
empíricamente para una línea celular dada, por ejemplo, para la
línea celular NS0-GS, el breve período es de
aproximadamente 4 días.
El mantenimiento de la concentración del ácido
y/o sal del mismo se puede alcanzar por adición a los medios de
ácido y/o sal del mismo como complemento por medio de un
procedimiento de tipo lote alimentado (en el que inicialmente se
proporcionan las células y el medio de cultivo a un recipiente de
cultivo y se administran continuamente nutrientes de cultivo
adicionales, o en incrementos discretos, al cultivo durante el
procedimiento de cultivo) o, de forma alternativa, a través de un
procedimiento continuo (esto es, perfusión) en el que se añaden
continuamente medios frescos a la vez que se eliminan los medios
viejos.
En formas preferidas, una parte del cultivo se
convierte en un subcultivo por ejemplo mediante un procedimiento de
vaciado-llenado, en el que una parte del cultivo se
elimina durante el procedimiento de cultivo, se ajustan los medios
de cultivo y se continúa con el cultivo de las células que quedan.
El subcultivo se complementa con ácido y/o sal adicional para
ajustar y, por lo tanto, mantener la concentración de este/esta a
menos de 0,1 mM. El procedimiento completo de cultivo tiene lugar
preferiblemente durante un período prolongado de tiempo, esto es,
mayor de 10 días, preferiblemente mayor de 40 días.
Preferiblemente, el ácido y/o sal está presente
continuamente en los medios de cultivo durante al menos una parte de
procedimiento de cultivo. En particular, se prefiere que el ácido
y/o sal del mismo esté continuamente presente en los medios de
cultivo durante una mayor proporción del procedimiento de cultivo,
de la forma más preferida, el procedimiento completo.
Los ejemplos de sistemas de cultivo que se pueden
emplear en la presente invención incluyen biorreactores de lecho
fluidizado, biorreactores de fibra hueca, cultivo en frascos de tipo
rodillo o biorreactores de tanque agitado. Generalmente, el cultivo
de células comprende sumergir las células (a una densidad de por
ejemplo 0,2 x 10^{5} células/ml) en los medios de cultivo
contenidos en un recipiente adecuado. Los medios que comprenden las
células y el ácido y/o sal se expone entonces a temperatura (por
ejemplo 36ºC), presión, pH, humedad y otras condiciones adecuadas
durante un período de tiempo.
El procedimiento de la presente invención se
puede usar junto con otras técnicas para incrementar la producción
de proteína en células en cultivo, por ejemplo provocando un estrés
osmótico de las células en cultivo.
La proteína deseada se puede aislar o recuperar
del cultivo celular por técnicas convencionales de separación. Esto
puede tener lugar durante o después de la terminación del
procedimiento de cultivo. Tales técnicas convencionales incluyen la
centrifugación para eliminar partículas de desechos celulares
tratando el sobrenadante recuperado después de la etapa de
centrifugación con, por ejemplo, columnas de ultrafiltración,
fraccionamiento o inmunoafinidad o intercambio iónico u otras
técnicas cromatográficas, y sometiendo a técnicas adicionales de
purificación para purificar, si se desea, hasta homogeneidad.
Las proteínas producidas por la presente
invención se pueden usar en la fabricación de composiciones
farmacéuticas que comprenden una cantidad eficaz de la proteína
junto con otros constituyentes como por ejemplo un vehículo
farmacéuticamente aceptable tal y como se conoce y se requiere por
la práctica farmacéutica aceptada. Otros constituyentes tales pueden
incluir otros agentes terapéuticos. La determinación de la cantidad
eficaz se puede averiguar por experimentación y observación
rutinarias tal y como es sabido por los expertos en la técnica.
De forma adecuada, se hace que las composiciones
farmacéuticas queden disponibles en forma de dosificación unitaria.
Las composiciones farmacéuticas pueden estar en cualquier forma
adecuada para la ruta de administración la cual, se apreciará, se
dicta en parte por las circunstancias prevalecientes, por ejemplo
por la afección a tratar. De esta forma, las composiciones
farmacéuticas pueden estar en forma de cápsulas, pastillas,
comprimidos, polvos o gránulos, suspensiones en un líquido estéril
acuoso o no acuoso, ungüento, pasta o pintura. Las composiciones
farmacéuticas se pueden usar, por ejemplo como parte de un régimen
de tratamiento, junto con otros agentes terapéuticos y/o de
diagnóstico. Particularmente se prevé que las proteínas de la
presente invención se usan en el tratamiento terapéutico y/o
diagnóstico de mamíferos, incluyendo seres humanos.
La presente invención quedará ahora ilustrada,
solamente a modo de ejemplo, y en referencia a las siguientes
figuras, en las que:
La Figura 1 ilustra la comparación de la
producción de anticuerpos en un cultivo de células NS0 cuando se
cultivan en medios complementados con cinco concentraciones de
butirato de sodio (0 - 0,1mM) durante un período de 56 días. Las
siguientes referencias numéricas indican la concentración usada:
(1): butirato de sodio 0 mM;
(2): butirato de sodio 0,025 mM;
(3): butirato de sodio 0,05 mM;
(4): butirato de sodio 0,075 mM;
(5): butirato de sodio 0,1 mM.
La Figura 2 ilustra el aumento de la producción
de anticuerpos por células NS0 puestas en cultivo en butirato de
sodio 0,075 mM en un cultivo de lotes repetidos. Las siguientes
referencias numéricas indican:
(10): viabilidad de células sin complemento de
butirato (control);
(11): viabilidad de células complementadas de
butirato de sodio (0,075 mM);
(12): título de anticuerpos de células control
(10);
(13): título de anticuerpos de células (11).
Se inocularon cinco matraces Erlenmeyer con
células NS0 recombinantes de ratón transfectadas con un anticuerpo
humanizado anti-CD23 de tipo
IgG_{1}(producido según el procedimiento de Bebbington
et al, tal y como se dijo anteriormente) en un medio libre de
proteína/glutamina que contenía colesterol a razón de 0,2 x 10^{6}
células/ml. Reañadió butirato de sodio (0,5 M) en PBS a los matraces
en las siguientes concentraciones: 0 mM; 0,025 mM; 0,05 mM; 0,075 mM
y 0,1 mM, y se incubaron a 36ºC y con agitación durante 4 días en
una incubadora de agitación. Posteriormente, se elaboraron
subcultivos a partir de los matraces cada cuatro días para un valor
de partida de 0,2 x 10^{5} células/ml, manteniendo las
concentraciones de butirato de sodio como anteriormente en cada
matraz. Los matraces fueron sometidos a muestreo y ensayo antes de
cada subcultivo. Se continuó con el cultivo en este modo
sacar/llenar en lotes repetidos durante 56 días, manteniendo las
concentraciones de butirato de sodio en las concentraciones
indicadas de principio a fin. Se contaron las célula viables para
cada muestra tomadas tal y como se resume posteriormente.
El cultivo se diluyó de la forma en que fue
necesaria en los medios de cultivo. Se examinó microscópicamente en
un hemocitómetro (cámara de recuento Neubauer) usando Eritrosina B
(Sigma) al 0,04% peso/volumen en PBS, pH 7 como tinte de exclusión.
Se calcularon el número de células viables y no viables por
milímetro y el porcentaje de viabilidad del cultivo.
Se determinó la cantidad de IgG humana por un
método nefelométrico (Tanford, C. (1961) Light Scattering. Physical
Chemistry o Macromolecules. New Cork: Wiley,
275-316; Whicher J. T. et al (1978), "An
evaluation of Hyland laser nephelometer PDQ system for the
measurement of immunoglobulins"; Ann. Clin. Biochem. 15, p
77-85), por lo cual se midió la formación de
inmuno-precipitina insoluble de IgG humana con
anticuerpo altamente específico para IgG humana. El nefelómetro
midió la intensidad de la luz dispersada por la
inmuno-precipitina insoluble en la solución de
reacción. El cambio en intensidad de la señal de luz dispersada es
proporcional a la concentración de IgG humana en la muestra sometida
a ensayo. La cantidad de IgG humana en la muestra se midió a partir
de una curva patrón construida a partir de la concentración de IgG
humana purificada frente a la tasa de señal de luz dispersada.
La Figura 1 ilustra una gráfica de títulos de
anticuerpo frente al tiempo a varias concentraciones de butirato.
Las concentraciones de butirato de 0,1 mM y 0,075 mM demostraron un
marcado aumento en el título de anticuerpos con respecto al control
después de 56 días de cultivo. Las concentraciones de butirato de
0,1 mM demostraron una producción de proteína variable durante el
procedimiento de cultivo mientras que a 0,075 mM se observaba una
producción más constante.
La Figura 2 ilustra una gráfica de producción de
anticuerpos por recuento de células viables durante 56 días de
cultivo. Las células cultivadas en presencia de butirato 0,075 mM
mostraron una ligera disminución en el recuento de células viables
durante las primeras etapas del procedimiento de cultivo,
reduciéndose considerablemente dicha disminución hacia el día 56
cuando se comparó con el control. Esto puede indicar que las células
NS0 cultivadas en butirato (0,075 mM) desarrollan un grado de
adaptación o tolerancia a la presencia de butirato en torno a esta
concentración. El título de anticuerpos a 0,075 mM mostró un marcado
aumento respecto al control.
Claims (5)
1. Un procedimiento para la producción de una
proteína por cultivo celular que comprende las etapas de:
cultivar células NS0 transformadas
por recombinación que producen de forma constitutiva dicha proteína
en un medio de cultivo, el cual comprende ácido butírico o una sal
metálica del mismo a una concentración mantenida de aproximadamente
0,075
mM.
mM.
2. El procedimiento de la reivindicación 1
comprendiendo además las etapas de;
- (a)
- elaborar subcultivos a partir del cultivo celular de la reivindicación 1;
- (b)
- complementar los medios de subcultivo con ácido butírico adicional o con una de sus sales metálicas para mantener la concentración en los mismos en aproximadamente 0,075 mM durante el procedimiento de cultivo.
3. El procedimiento de la reivindicación 1 ó 2,
en el que la sal es butirato de sodio.
4. El procedimiento de cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que la proteína se selecciona de
un grupo constituido por;
hormonas, enzimas, inhibidores de enzima,
linfoquinas, inmunoglobulinas.
5. El procedimiento de la reivindicación 4, en el
que la proteína es una inmunoglobulina.
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