ES2233997T3 - Procedimiento para la purificacion de proteasas similares a la trombina procedentes de venenos de serpientes. - Google Patents

Procedimiento para la purificacion de proteasas similares a la trombina procedentes de venenos de serpientes.

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Abstract

SE DESCRIBE UN METODO DE PURIFICACION DE PROTEASAS SIMILARES A LA TROMBINA DE VENENOS DE SERPIENTE QUE CONSISTE EN QUE LAS PROTEASAS SE LIBERAN DE IMPUREZAS EN TRES PASOS CROMATOGRAFICOS.

Description

Procedimiento para la purificación de proteasas similares a la trombina procedentes de venenos de serpientes.
La presente invención se refiere a un procedimiento para la purificación de proteasas similares a la trombina procedentes de venenos de serpiente.
Ejemplos de tales proteasas son batroxobina, crotalasa y especialmente ancrod. Esta última es un anticoagulante, que se aísla a partir del veneno de la serpiente Agkistrodon rhodostoma (Índice Merck, 1989, nº 664). Para su producción a partir de veneno de serpientes, se han descrito ya una variedad de métodos (patente de GB 1.094.301, patente de GB 1.177.506, patente de GB 1.293.793, patente de los EE.UU. 3.743.722, patente de los EE.UU. 3.879.369, publicación para información de solicitud de patente alemana 2.428.955, publicación para información de solicitud de patente alemana 2.734.427). Estos procedimientos se basan esencialmente en etapas cromatográficas y proporcionan el ancrod con diferentes rendimientos y pureza.
Hasta el momento no se ha conseguido la producción de ancrod sumamente puro a partir de veneno de serpiente. Siempre se ha aislado una mezcla de enzimas con ancrod como componente principal, que estaba contaminado con más o menos proteínas extrañas según la producción.
Ahora se ha encontrado una vía para producir proteasas similares a la trombina a partir de venenos de serpiente en forma sumamente pura.
Es objeto de la invención un procedimiento para la purificación de proteasas similares a la trombina procedentes de venenos de serpientes, que se basa en que
a.
se somete un producto bruto de proteasa a una purificación previa mediante cromatografía de afinidad o cromatografía con un intercambiador de iones básico,
b.
se somete la fracción con las enzimas similares a la trombina así obtenida a una cromatografía con un intercambiador de cationes débil o se separa mediante adsorción sobre vidrio en el intervalo básico y
c.
se somete el componente principal de la etapa b a una cromatografía en gel o se purifica mediante cromatografía en vidrio en el intervalo ácido,
en el que sin embargo al menos una de las etapas b y c comprende una separación mediante adsorción o cromatografía en vidrio.
Para la etapa b, se aconseja llevar a cabo la purificación mediante adsorción en vidrio y para la etapa c, con ayuda de cromatografía en gel.
En una forma de realización especialmente preferida de la invención, tanto en la etapa b como en la etapa c se purifica mediante adsorción o cromatografía en vidrio.
Para la purificación previa mediante cromatografía de afinidad, son adecuadas especialmente agmatina, arginina o heparina-sefarosa.
Como intercambiadores de iones básicos son adecuados para la purificación previa especialmente DEAE-celulosa y DEAE-sefarosa.
Para la cromatografía de intercambio iónico, deben mencionarse como tampón especialmente tampón Tris-fosfato y fosfato de sodio.
La cromatografía de intercambio iónico se lleva a cabo a un valor de pH de 5-9, preferiblemente de 6-8,5.
En la purificación previa, se separa aproximadamente el 70-80% de proteínas extrañas y otros componentes de la enzima bruta.
Si se lleva a cabo la segunda etapa (b) de la purificación con un intercambiador de cationes, entonces se consideran los siguientes intercambiadores débilmente ácidos: CM-SEPHAROSE, valor de pH 5-9 y AMBERLITE CG50, pH
5-9.
Cromatografía en vidrio significa que se unen el ancrod y las enzimas similares a la trombina emparentadas, así como proteasas fuertemente básicas para valores de pH de 7,5-9,0, preferiblemente 8,0-8,5 a la matriz de vidrio. Aproximadamente el 60% de proteínas extrañas, sobre todo ácidas, salen de la columna no unidas mediante lavado con el tampón de equilibrio (preferiblemente tampón Tris-fosfato o fosfato de sodio). El ancrod se eluye del vidrio de manera fraccionada en una pureza superior al 90%, mientras se aumenta la fuerza iónica del tampón a 0,3-1,0 M mediante la adición de sal común.
En la segunda etapa de purificación (b) se concentra la enzima hasta aproximadamente el 90%.
Para la cromatografía en gel, como etapa de purificación c se consideran especialmente: SEPHACRYL S-100HR, SUPERDEX, SEPHADEX, ULTRO-GEL y SUPEROSE.
Si para esta etapa de purificación c se elige la cromatografía en vidrio, entonces se adsorben proteínas extrañas básicas de la solución de ancrod en el intervalo de pH ácido de 4-6 en la superficie de vidrio, mientras que el ancrod puede eluirse de la columna con una pureza muy superior al 95% directamente en el tampón de equilibrio. La fuerza iónica deseada del tampón puede regularse mediante la adición de una sal, tal como sal común.
El nuevo procedimiento es adecuado muy especialmente para la obtención en estado puro de ancrod, que se produce tras este procedimiento de purificación en una pureza considerablemente superior al 95%.
Ejemplo 1 a. Purificación previa
Se disolvieron 3 g de veneno seco de serpiente mocasín de Malasia en 50 ml de tampón Tris-(hidroximetil)-aminometano (TRIS)-fosfato, pH 8,5, se eliminaron mediante centrifugación los componentes celulares insolubles del veneno y la solución clara, amarilla se aplicó sobre una columna de cromatografía que presentaba un diámetro de 1,6 cm y que se llenó hasta una altura de 30 cm con DEAE-SEPHAROSE-FF (empresa Pharmacia). Las enzimas similares a la trombina del veneno, así como las proteínas con carácter ácido se unieron a la matriz. Se llevó a cabo la cromatografía con una velocidad de flujo de 150-200 ml/h. Mediante lavado de la columna a temperatura ambiente con aproximadamente 300 ml de tampón de equilibrio (tampón TRIS-fosfato 10 mM, pH 8,5) hasta que el valor A_{280mm} del eluato descendió por debajo de 0,5 y lavado adicional con 400 ml de tampón TRIS-fosfato 35 mM, pH 6,0 hasta que el valor A_{280mm} del eluato era < 0,4, se eluyó aproximadamente el 70-80% de las proteínas extrañas (referido a la densidad óptica de la solución de partida a 280 nm). La fracción principal con ancrod se eluyó con un rendimiento del 85% en 150-200 ml de tampón TRIS-fosfato 150 mM, pH 6,0.
b. Purificación principal
El eluato que contenía el ancrod se concentró hasta 20 ml mediante ultrafiltración en una membrana con un límite de separación nominal de 10.000 Dalton y se tamponó con un tampón TRIS-fosfato 100 mM, pH 8,0. Esta solución se aplicó sobre una columna que tenía un diámetro de 1,6 cm y que se llenó hasta una altura de 15 cm con vidrio BIORAN-CPG (empresa Schott, diámetro de poro: 25-35 nm, tamaño de grano: 30-60 \mum). Mediante lavado de la columna a temperatura ambiente con 300 ml del tampón TRIS-fosfato 100 mM, pH 8,0 y con una velocidad de flujo de 250 ml por hora, se eluyó de la columna aproximadamente el 60% de las proteínas extrañas (referido a la densidad óptica de la capa a 280 nm).
Para la elución, se utilizó una solución de cloruro de sodio 0,5 M que se tamponó con TRIS-fosfato 100 mM hasta un valor de pH de 8,0. El eluato se recogió automáticamente en fracciones de aproximadamente 10 ml. Las enzimas similares a la trombina se eluyeron en un pico con zona de colas adyacente. Para obtener el componente principal (correspondiente a ancrod) en una forma que contenga como máximo el 5% de componentes secundarios similares a la trombina, se investigaron las fracciones individuales para determinar tanto su actividad fibrinogenasa específica como también su composición mediante HPLC de fase invertida durante la transición del pico principal a la zona de colas. Se unieron al pico principal sólo las fracciones que poseían una actividad específica superior a 1700 U/DO_{280nm} y que presentaron menos del 10% de componentes secundarios en la HPLC (aproximadamente 80 ml). Se obtuvo el componente principal con una pureza del 96% y un rendimiento del 72% de la columna de BIORAN.
c. Purificación fina
Se concentró hasta 2 ml el eluato con el componente principal ancrod mediante ultrafiltración en una membrana YM 10 (empresa Amicon) y el concentrado obtenido se aplicó sobre una columna que tenía un diámetro de 1,6 cm y que se llenó hasta una altura de 85 cm con SEPHARYL S-100 HR. La columna se equilibró anteriormente con un tampón de cloruro de sodio 100 mM y fosfato de sodio 100 mM, que presentaba un valor de pH de 6,9. Con esta cromatografía en gel se separaron las proteasas restantes, así como TRIS de ancrod. El rendimiento para esta etapa fue de aproximadamente el 90%.
Ejemplo 2 a. Purificación previa
Se disolvieron 2,1 g de veneno seco de serpiente mocasín de Malasia en 50 ml de tampón TRIS-fosfato 35 mM, pH 8,5, se eliminaron mediante centrifugación los componentes celulares insolubles del veneno y la solución clara, amarilla se aplicó sobre una columna de cromatografía que presentaba un diámetro de 1,6 cm, que se llenó hasta una altura de 30 cm con DEAE-SEPHAROSE-FF (empresa Pharmacia) y se equilibró con el tampón anteriormente mencionado. Mediante lavado de la columna a temperatura ambiente con 600 ml de tampón de equilibrio hasta que el valor A_{280} del eluato era < 0,2, se eluyó aproximadamente el 70% de las proteínas extrañas (referido a la densidad óptica de la solución de partida a 280 nm). La fracción principal se eluyó con un rendimiento del 90-100% con 200-250 ml de tampón TRIS-fosfato 150 mM, pH 6,0.
b. Purificación principal
El eluato se concentró como en el ejemplo 1 hasta 20 ml y se tamponó con un tampón fosfato de sodio 50 mM, pH 8,5. Esta solución se aplicó sobre la columna de vidrio BIORAN-CPG (diámetro: 1,6 cm, altura: 15 cm, diámetro de poro: 25-35 nm, tamaño de grano: 30-60 \mum). Mediante lavado de la columna a temperatura ambiente con 300 ml del tampón fosfato de sodio 50 mM, pH 8,5 y con una velocidad de flujo de 250 ml por hora, se eluyó de la columna aproximadamente el 60% de las proteínas extrañas (referido a la densidad óptica de la capa a 280 nm).
Para la elución de las enzimas similares a la trombina se utilizó una solución de cloruro de sodio 1 M que se había tamponado con fosfato de sodio 50 mM hasta un valor de pH de 8,0. Se eluyó aproximadamente el 80% de las unidades de enzima aplicadas con 150 ml de tampón.
c. Purificación fina
El eluato se concentró como anteriormente hasta 20 ml y se tamponó con un tampón fosfato de sodio 50 mM que presentaba un valor de pH de 5,0. Esta solución se aplicó sobre una columna que también tenía un diámetro de 1,6 cm y que se llenó hasta una altura de 15 cm con vidrio BIORAN-CPG, que poseía sin embargo un diámetro de poro de 90-110 nm y un tamaño de grano de 30-60 \mum. A pH 5,0, se unieron sólo las proteínas básicas, así como los componentes secundarios al vidrio BIORAN, mientras que se eluyó de la columna el componente principal ancrod con el tampón de equilibrio en una pureza de casi el 100% y con aproximadamente un rendimiento del 80-90% (referido a las unidades aplicadas).
Ejemplo 3 a, b. Purificación previa y principal
Se fraccionaron previamente 2,1 g de veneno seco de serpiente mocasín de Malasia de manera análoga al ejemplo 2 en DEAE-SEPHAROSE, se concentró el eluato de manera análoga al ejemplo 1 hasta 20 ml y se tamponó con un tampón TRIS-fosfato 40 mM, pH 6,2. Esta solución se aplicó sobre una columna de cromatografía, que presentaba un diámetro de 1,6 cm, que se llenó hasta una altura de 20 cm con CM-SEPHAROSE-FF (empresa Pharmacia) y que se equilibró con el tampón anteriormente mencionado. Mediante lavado de la columna a temperatura ambiente con 300 ml del tampón de equilibrio y con una velocidad de flujo de 250 ml/h, se eluyó de la columna aproximadamente el 60% de las proteínas extrañas (referido a la densidad óptica de la capa a 280 nm).
Para la elución de las enzimas similares a la trombina se utilizó, de manera análoga al ejemplo 2, una solución de cloruro de sodio 1 M que se había tamponado con fosfato de sodio 50 mM hasta un valor de pH de 8,0. Se eluyó aproximadamente el 80% de las unidades de las enzimas similares a la trombina aplicadas con 150 ml de tampón.
c. Purificación fina
La purificación fina de ancrod se llevó a cabo de manera análoga al ejemplo 2 en vidrio BIORAN-CPG (diámetro de poro de aproximadamente 100 nm; tamaño de grano: 30-60 \mum) con un tampón fosfato 50 mM, pH 5,0. Se eluyó el ancrod de la columna en una pureza superior al 95% y con un rendimiento de aproximadamente el 85% (referido a las unidades aplicadas).

Claims (3)

1. Procedimiento para la purificación de proteasas similares a la trombina procedentes de venenos de serpientes, caracterizado porque
a.
se somete un producto bruto de proteasa a una purificación previa mediante cromatografía de afinidad o cromatografía con un intercambiador de iones básico,
b.
se somete la fracción con las enzimas similares a la trombina así obtenida a una cromatografía con un intercambiador de cationes débil o se separa mediante adsorción en vidrio en el intervalo básico y
c.
se somete el componente principal de la etapa b a una cromatografía en gel o se purifica mediante cromatografía en vidrio en el intervalo ácido,
en el que sin embargo al menos una de las etapas b y c comprende una separación mediante cromatografía en vidrio.
2. Procedimiento según la reivindicación 1, caracterizado porque la purificación tiene lugar mediante adsorción en vidrio en la etapa b y la etapa c se lleva a cabo mediante cromatografía en gel.
3. Procedimiento según la reivindicación 1, caracterizada porque la purificación tiene lugar en las etapas b y c mediante cromatografía en vidrio.
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