ES2224210T3 - Vacuna de neospora viva atenuada. - Google Patents
Vacuna de neospora viva atenuada.Info
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Abstract
LA PRESENTE INVENCION PROPORCIONA CULTIVOS VIVOS ATENUADOS DEL PARASITO PROTOZOO PATOGENO NEOSPORA, Y VACUNAS VIVAS CONTRA NEOSPOROSIS PREPARADAS A PARTIR DEL MISMO QUE SON UTILES EN LA PREVENCION DE ENFERMEDADES CLINICAS Y ABORTOS EN MAMIFEROS.
Description
Vacuna de Neospora viva atenuada.
La presente invención se refiere a cepas
atenuadas del protozoo patógeno Neospora, y a vacunas
atenuadas frente a la neosporosis preparadas a partir de las cepas
atenuadas, que son útiles en la prevención de enfermedades clínicas
y el aborto en mamíferos.
Neospora es un protozoo patógeno parásito
de animales que se ha reconocido recientemente como una causa
principal del aborto, la muerte neonatal, la infección congénita y
la encefalitis en mamíferos. Dubey and Lindsay, 1993, Parasitology
Today, 9:452-458. N. caninum infecta a perros
e infecta de manera congénita a los cachorros, produciendo
frecuentemente parálisis. Los taquizoítos de N. caninum se
han aislado de cachorros infectados de forma natural. Lindsay and
Dubey, 1989, J. Parasitol. 75: 163-165. Las especies
de Neospora son una causa principal del aborto en el ganado
lechero. En cabras, ovejas y caballos se han descrito casos de
enfermedad relacionada con Neospora, es decir,
neosporosis.
Aunque N. caninum es similar
superficialmente al patógeno, Toxoplasma gondii, N. caninum y
T. gondii se han diferenciado unos de otros de forma
antigénica y ultrastructural. Dubey and Lindsay, 1993, citado
anteriormente. Además, los parásitos protozoarios similares a
Neospora, aislados de los cerebros de fetos bovinos abortados
y cultivados in vitro de forma continua mostraron ser
antigénica y ultrastructuralmente distintos de T. gondii y
Hammondia hammondi, y más parecidos a N.
caninum. Conrad et al., 1993, Parasitology
106:239-249. Más aún, el análisis de los genes del
ARN ribosómico de la subunidad pequeña nuclear reveló que no había
diferencias de nucleótidos entre las especies de Neospora
aisladas del ganado y de perros, pero mostró diferencias
consistentes frente a T. gondii. Marsh et al., 1995,
J. Parasitol. 81:530-535.
Se ha confirmado el papel etiológico de una cepa
bovina de Neospora en el aborto y la enfermedad congénita
bovinas. Barr et al., 1994, J. Vet. Diag. Invest.
6:207-215. Se ha desarrollado un modelo de
neosporosis en el sistema nervioso central de roedores, utilizando
ratones BALB/c endogámicos infectados por N. caninum. Lindsay
et al., 1995, J. Parasitol. 81:313-315.
Además, se han descrito los modelos para estudiar la transmisión
transplacentaria de N. caninum en ratones preñados exogámicos
y endogámicos por Cole et al., 1995, J. Parasitol.
81:730-732, y por Long et al., 1996, J.
Parasitol. 82:608-611, respectivamente. Más aún, se
ha mostrado un modelo experimental de cabra enana N. caninum
que se asemeja íntimamente al aborto inducido por Neospora en
ganado ocurrido de forma natural. Lindsay et al., 1995, Am.
J. Vet. Res. 56:1176-1180.
El documento WO 9525541 describe un cultivo
biológicamente puro de Neospora bovina, los procedimientos
para detectar anticuerpos anti-Neospora y ácidos nucleicos
específicos de Neospora, y una composición que contiene un
antígeno de Neospora bovina y un vehículo para su uso como
vacuna. Sin embargo, el documento WO 9525541 no muestra cultivos
vivos atenuados de Neospora, o vacunas atenuadas preparadas a
partir de éstas, que son capaces de desencadenar una respuesta
inmune protectora en un animal vacunado.
En un primer aspecto, la presente invención
proporciona cultivos celulares de una cepa derivada de una cepa
original patógena de una especie de Neospora, cuyas células
exhiben una patogenia atenuada comparada con la de la cepa original
pero que son capaces de desencadenar una respuesta inmune que
protege al mamífero frente a la neosporosis, cuando se administra en
forma de vacuna atenuada.
En un segundo aspecto, la presente invención
proporciona vacunas para proteger a un mamífero frente a la
neosporosis, que comprende una cantidad inmunológicamente eficaz de
células vivas de una cepa derivada de una cepa original patógena de
una especie de Neospora, cuyas células exhiben una patogenia
atenuada comparada con la de la cepa original pero que son capaces
de desencadenar una respuesta inmune que protege al mamífero frente
a la neosporosis cuando se administra en forma de vacuna atenuada, y
un vehículo veterinariamente aceptable. Las vacunas de la invención
pueden comprender además uno o más componentes incluyendo, por
ejemplo, un adyuvante. Las vacunas de la presente invención se
pueden administrar a cualquier especie de mamíferos susceptible de
infección y enfermedad causada por Neospora incluyendo, pero
sin limitarse a perros, vacas, cabras, ovejas y caballos.
En un tercer aspecto, la presente invención
proporciona procedimientos para la preparación de cultivos de
células atenuadas a partir de una cepa patógena de Neospora
para su uso en una vacuna que proteja a un mamífero frente a la
neosporosis, y que comprende la modificación de las células a partir
de una cepa original patógena de una especie de Neospora; la
selección y propagación clonal de una o más células modificadas que
exhiban una patogenia atenuada comparada con las células de la cepa
original; y la selección y propagación clonal de una o más células
atenuadas que sean capaces de desencadenar una respuesta inmune que
proteja al mamífero frente a la neosporosis cuando se administra en
una vacuna atenuada.
En un cuarto aspecto, la presente invención
proporciona procedimientos para la preparación de una vacuna que
proteja a un mamífero frente a la neosporosis, y que comprende la
modificación de células a partir de una cepa original patógena de
una especie de Neospora; la selección y propagación clonal de
aquellas células modificadas que exhiban una patogenia atenuada
comparada con las células de la cepa original pero que sean capaces
de desencadenar una respuesta inmune en el mamífero que proteja a
frente a la neosporosis cuando se administra en una vacuna atenuada;
y la combinación de una cantidad inmunológicamente eficaz de las
células atenuadas con un vehículo veterinariamente aceptable de
forma adecuada para la administración en forma de vacuna atenuada al
mamífero.
En un quinto aspecto, la presente invención
proporciona procedimientos para la vacunación un mamífero frente a
la neosporosis, comprendiendo la administración al mamífero una
cantidad inmunológicamente eficaz de una vacuna que comprende
células vivas de una cepa derivada de una cepa original patógena de
una especie de Neospora, cuyas células exhiben una patogenia
atenuada comparada con la de la cepa original pero que son capaces
de desencadenar una respuesta inmune que proteja al mamífero frente
a la neosporosis cuando se administra como vacuna atenuada, y un
vehículo veterinariamente aceptable.
En un sexto aspecto, la presente invención
proporciona vacunas mixtas, que comprenden una cantidad
inmunológicamente eficaz de células vivas de una cepa derivada de
una cepa original patógena de una especie de Neospora, cuyas
células exhiben una patogenia atenuada comparada con la de la cepa
original, pero que son capaces de desencadenar una respuesta inmune
que proteja al mamífero frente a la neosporosis cuando se administra
como vacuna atenuada; uno o más otros antígenos que desencadenan una
respuesta inmune que proteja al mamífero frente a una enfermedad o
un estado patológico; y un vehículo veterinariamente aceptable. Las
vacunas mixtas puede comprender además uno o más otros componentes
incluyendo, por ejemplo, un adyuvante.
Los Solicitantes han descubierto que se pueden
atenuar las células de una cepa patógena de una especie de
Neospora, y que las células atenuadas resultantes son capaces
de desencadenar una respuesta inmune que proteja a mamíferos frente
a la neosporosis cuando se administra como vacuna atenuada. Por lo
tanto, la presente invención proporciona cultivos celulares de una
cepa derivada de una cepa original patógena de una especie de
Neospora, cuyas células exhiben una patogenia atenuada
comparada con la de la cepa original pero que son capaces de
desencadenar una respuesta inmune que proteja a un mamífero frente a
la neosporosis cuando se administra como vacuna atenua-
da.
da.
La presente invención proporciona además
procedimientos para preparar cultivos de células atenuadas de una
especie de Neospora para su uso en una vacuna que proteja a
un mamífero frente a la neosporosis, comprendiendo la modificación
de células a partir de una cepa original patógena de una especie de
Neospora, por ejemplo, por un número elevado de pases
sucesivos, o por exposición a un agente mutágeno, o mediante
ingeniería genética utilizando técnicas de ADN recombinante; la
selección y propagación clonal de una o más células modificadas que
exhiban una patogenia atenuada comparada con las células de la cepa
original; y la selección y propagación clonal de una o más células
atenuadas que son capaces de desencadenar una respuesta inmune que
proteja al mamífero frente a la neosporosis cuando se administra en
una vacuna atenuada.
Como se usa en la presente memoria, el término
"neosporosis" se refiere a la infección de un mamífero por una
especie o una cepa de Neospora, o a cualquier síntoma
clínico, dolencia, suceso o patología asociados con la infección del
mamífero por Neospora.
El término "atenuado" como se usa en la
presente memoria describe una célula, un cultivo, o una cepa de
Neospora que exhibe una reducción detectable de la
infectividad o la virulencia in vitro o in vivo
comparada con la de la cepa original de Neospora de la que
proceden la célula, el cultivo o la cepa atenuadas. La reducción de
la virulencia abarca cualquier disminución detectable en cualquier
característica de virulencia, incluyendo la infectividad in
vitro o in vivo, o cualquier descenso en la gravedad o en
la velocidad de progresión de cualquier síntoma clínico o dolencia
asociados con la infección.
El término "cepa original" se refiere a una
cepa de Neospora que, cuando se administra a un mamífero,
exhibe un grado relativamente mayor de patogenia que una cepa
atenuada que procede de aquella por uno o más pases in vivo o
in vitro y/o una o más etapas de atenuación.
La presente invención incluye además la
preparación y el uso en una vacuna de células de una cepa de
Neospora derivada de una cepa o una especie que no es
patógena, en una especie concreta de mamíferos, pero cuyas células
se han modificado por medios genéticos o químicos para que sean
capaces de desencadenar una respuesta inmune protectora en los
miembros de esa especie de mamíferos.
Las células atenuadas vivas de la invención son
capaces de inducir una respuesta inmune que proteja a un mamífero
frente a la neosporosis después de una o más administraciones en
forma de vacuna atenuada. Una "respuesta inmune protectora" se
define como cualquier respuesta inmunológica, bien por un anticuerpo
o inmunidad celular, o ambas, que tiene lugar en el mamífero que
previene o reduce de manera detectable la infección posterior, o
elimina o reduce de manera detectable la gravedad, o ralentiza de
forma detectable la velocidad de progresión de uno o más síntomas
clínicos o dolencias asociadas con la neosporosis. La expresión
"cantidad inmunológicamente eficaz" se refiere a aquella
cantidad o dosis de vacuna o antígeno que desencadena una respuesta
inmune protectora cuando se administra a un mamífero.
Debido a que la invención se basa en el
descubrimiento de que se pueden atenuar las células de una cepa
patógena de Neospora, y que las células atenuadas resultantes
son capaces de desencadenar una respuesta inmune que proteja a un
mamífero frente a la neosporosis cuando se administra como vacuna
atenuada, la práctica de la invención no está limitada a ningún
procedimiento particular de atenuación. Preferiblemente, la
atenuación de las células de una cepa patógena de Neospora se
puede realizar por cualquier técnica o procedimiento conocido en la
técnica incluyendo, pero sin limitarse a, un número elevado de pases
sucesivos, o la exposición a un agente mutágeno, o mediante
ingeniería genética utilizando la tecnología del ADN recombinante, o
por alguna combinación de éstos.
El elevado número de pases sucesivos se puede
realizar mediante pases repetidos in vitro de las células de
una cepa patógena de Neospora en células huésped susceptibles
hasta que tenga lugar la atenuación. Los pases se pueden llevar a
cabo en condiciones medioambientales específicas para seleccionar
las células atenuadas. Por ejemplo, los pases se pueden llevar a
cabo a una temperatura por debajo de la temperatura corporal del
mamífero vacunado pretendido para seleccionar las cepas sensibles a
la temperatura de Neospora que no crecerán, o que solamente
crecerán a velocidad reducida, cuando se administran al mamífero en
una vacuna.
La mutagénesis se puede realizar mediante la
exposición de células de Neospora bien a un mutágeno químico
o a radiación, como se describe en la técnica. Un ejemplo no
limitante de un mutágeno químico útil en la práctica de la invención
es la N-metil-N-nitro-N-nitrosoguanidina (MNNG)
(Sigma), cuyo uso se describe más adelante en el ejemplo 1. La
radiación se puede seleccionar bien de la luz ultravioleta bien de
la radiación ionizante.
El grado de exposición del mutágeno, esto es, la
concentración del mutágeno químico, o el nivel de radiación, así
como la duración de la exposición, es preferiblemente aquella
cantidad que da lugar a la producción de una o más células viables
de Neospora que exhiben un nivel atenuado de patogenia pero
que son capaces de desencadenar una respuesta inmune que proteja a
frente a la neosporosis cuando se administra como vacuna atenuada a
un mamífero. Los parámetros apropiados para el uso de agentes
mutágenos se puede determinar empíricamente utilizando técnicas
estándar.
Las cepas patógenas de Neospora se pueden
atenuar también utilizando la tecnología del ADN recombinante según
las técnicas conocidas en la técnica, y la presente invención
pretende abarcar tales cepas y vacunas modificadas preparadas de
este modo. Los ejemplos no limitantes de técnicas de ADN
recombinante que se pueden utilizar para practicar la invención
incluyen la sustitución de genes o la inexpresión de genes para
desactivar uno o más genes, produciendo una cepa con una patogenia
atenuada. Los genes que se pueden desactivar incluyen, por ejemplo,
un gen metabólico esencial, o un gen que codifica un factor de
virulencia, o un gen que codifica un antígeno de superficie que
desempeña un papel en la modulación de la respuesta inmune en el
huésped mamífero.
Un ejemplo no limitante de un gen metabólico
esencial que se puede reconocer de manera útil para su interrupción
en el genoma de Neospora es el gen de la dihidrofolato
reductasa-timidilato sintasa
(DHFR-TS). Titus et al., 1995, Proc. Natl.
Acad. Sci. USA, 92:10267-10271, describe la
inexpresión del gen de DHFR-TS para producir una
vacuna segura atenuada frente a Leishmania. Mediante la
interrupción del gen de DHFR-TS en Neospora,
se crearán mutantes auxótrofos que necesitan timidina para su
crecimiento continuo, que exhiben una patogenia atenuada, y que son
capaces de desencadenar una respuesta inmune en un mamífero que
proteja a frente a la neosporosis cuando se administra como vacuna
atenuada.
Las técnicas de ADN recombinante para la
sustitución génica o la inexpresión de genes se conocen en la
técnica e incluyen, sin limitarse a, aquellas que utilizan la
recombinación homóloga. Por ejemplo, las células de una cepa
patógena de Neospora se pueden transformar o transfectar con
un vector, tal como un plásmido, que comprende secuencias homólogas
de nucleótidos que normalmente flanquean o se localizan dentro de,
por ejemplo, un gen metabólico esencial, preferiblemente un gen de
copia única, en una cepa patógena de Neospora. Entre o dentro
de las secuencias homólogas de nucleótidos, el vector puede
comprender además una secuencia de nucleótidos que corresponda con
la secuencia de nucleótidos en la cepa patógena, pero que sea
defectuosa como resultado, por ejemplo, de un cambio o una deleción
"no silente" en uno o más nucleótidos, comparada con la
secuencia de la cepa patógena. La transformación de una célula de la
cepa patógena con el vector continúa con la integración de la
secuencia génica defectuosa en el genoma de Neospora, que
también sirve para sustituir la secuencia original o "natural".
Por lo tanto, el gen reconocido se desactiva en la célula
transformada. Las células transformadas se pueden examinar después
para aquellas células que exhiben una patogenia atenuada. Las
células transformadas que exhibían una patogenia atenuada se pueden
examinar después de nuevo para aquellas células que son capaces de
desencadenar una respuesta inmune en un mamífero que proteja a
frente a la neosporosis cuando se administra como vacuna
atenuada.
Para ayudar en la selección de transformantes, el
vector se puede diseñar para comprender además una secuencia
codificante de un producto de un gen indicador u otro marcador
seleccionable. Los genes indicadores que pueden ser útiles en la
invención se conocen bien en la técnica e incluyen, por ejemplo, el
gen que codifica la cloranfenicol-acetiltransferasa
(CAT) o el gen que codifica la luciferasa. Un ejemplo adicional no
limitante de un gen indicador es una secuencia que codifica la
beta-galactosidasa de E. coli, la cual se
puede insertar en el vector y utilizarse para confirmar
transformantes mediante la detección de la actividad enzimática a
través de la conversión de un sustrato tal como, por ejemplo, el
beta-D-galactopiranósido rojo, hacia
un producto coloreado. Seeber and Boothroyd, 1996, Gene,
169:39-45, utilizaron esta enzima indicadora para
detectar transformantes en Toxoplasma gondii.
En la técnica se conocen bien las secuencias
codificantes que codifican marcadores seleccionables que pueden ser
útiles en la invención, e incluyen aquellos que codifican productos
de genes que confieren resistencia a antibióticos o a
antimetabolitos, o que proporcionan una necesidad auxótrofa. Los
ejemplos de tales secuencias incluyen aquellos que confieren
resistencia a higromicina, a neomicina o a fleomicina. Un ejemplo
del uso de un marcador de resistencia a un antibiótico en un
patógeno diferente se presenta en Messina et al., 1995, Gene,
165:213-217, que describe el uso de un marcador de
resistencia a fleomicina para construir transformantes estables en
T. gondii.
Cualquier secuencia codificante para un producto
de un gen indicador o marcador seleccionable se debería insertar
preferiblemente en el vector en asociación operativa con una
secuencia que codifique un elemento regulador. Como se usa en la
presente memoria, un "elemento regulador" incluye, pero no se
limita a, promotores, intensificadores, operadores y otros elementos
inducibles y no inducibles conocidos en la técnica que sirven para
dirigir y/o regular la expresión. También, como se usa en la
presente memoria, una secuencia de ADN codificante se encuentra en
"asociación operativa" con uno o más elementos reguladores en
los que los elementos reguladores regulan de manera eficaz y
permiten la transcripción de la secuencia de ADN codificante y/o la
traducción del correspondiente ARNm. Por ejemplo, los vectores para
la expresión del marcador seleccionable en las células de
Neospora se pueden construir al flanquear el marco de lectura
abierto ble (siglas en inglés, ORF) con regiones reguladoras
de los genes de Neospora o de las íntimamente relacionadas
Apicomplexa y Toxoplasma. Para expresar ble se
pueden usar las regiones flanqueantes 5' de diferentes genes de
copia única de Neospora o Toxoplasma. Los ejemplos de
genes de copia única de Toxoplasma son: (i) SAG1, que
codifica el principal antígeno de superficie de taquizoíto, p30.
(Burg et al., 1988, J. Immunol.
141:3584-3591); (ii) GRA1, que codifica una proteína
secretora, p23 (Cesbron-Delauw et al., 1989,
Proc. Natl. Acad. Sci. 86:7537-7541); y (iii) GRA2,
que codifica una proteína secretora, p28 (Mercier et al.,
1993, Mol. Biochem. Parasitol. 58:71-82). Los
ejemplos de genes de copia única de Neospora incluyen: (i)
homólogos de los genes SAG1, GRA1 y GRA2 de Toxoplasma,
identificados utilizando procedimientos estándar de PCR de acuerdo
con, por ejemplo, las secuencias de Toxoplasma; (ii) el gen
que codifica la principal proteína de la superficie celular,
NC-p43, de los taquizoítos de N. caninum
(Hemphill, 1996, Infect. Immun. 64:4279-4287); y
(iii) los genes que codifican las proteínas excretoras/secretoras
inmunodominantes de 17, 29, 30 y 37 kDa (Bjerkas et al.,
1994, Clin. Diag. Lab. Immun. 1:214-221). La región
flanqueante 3' del gen SAG1 se puede utilizar para proporcionar una
secuencia de poliadenilación. El vector base para la inserción del
promotor 5', el gen ble, y las secuencias de poliadenilación
en 3' puede ser cualquier plásmido estándar disponible
comercialmente, tal como pBLUESCRIPT™ (Stratagene).
Una vez que se construye un vector apropiado, se
usa para transformar o transfectar una o más células a partir de una
cepa original de Neospora. El vector se puede introducir en
las células de acuerdo con técnicas conocidas, incluidas, pero no
limitadas a la electroporación, la microinyección, la transfección
vírica, la transfección mediada por liposomas, el bombardeo con
microproyectiles, etc.
Una vez que el vector se introduce en las células
de Neospora, la presencia, la integración y el mantenimiento
de la secuencia codificante introducida en el genoma de la célula
huésped, o episómicamente, se puede confirmar y monitorizar mediante
técnicas estándar incluyendo, pero sin limitarse a, el análisis por
hibridación Southern; el análisis por PCR, incluida la PCR con
transcriptasa inversa (RT-PCR); los inmunoensayos o
ensayos colorimétricos para el producto proteico esperado; la
detección de la presencia o la ausencia de una función de gen
marcador, tal como la aparición de un nuevo auxotrofismo; o mediante
la detección de una atenuación en la patogenia.
En las siguientes publicaciones se describen los
ejemplos de construcción de vectores, transformación, selección de
transformantes, expresión en células huésped, etc., aplicados
específicamente a los protozoos patógenos: Seeber and Boothroyd,
1996, citado anteriormente; Titus et al., 1995, citado
anteriormente; Messina et al., 1995, Gene,
165:213-217; Sibley et al., 1994, Proc. Natl.
Acad. Sci. USA, 91:5508-5512; Donald and Roos, 1994,
Mol. Biochem. Parasitol., 63:243-253; Kim et
al., 1993, Science, 262: 911-914; Ryan et
al., 1993, Proc. Natl. Acad. Sci. USA,
90:8609-8613; Soldati and Boothroyd, 1993, Science,
260: 349-352; Eid and Sollner-Webb,
1991, Proc. Natl. Acad. Sci. USA,
88:2118-2121; LeBowitz et al., 1990, Proc.
Natl. Acad. Sci. USA, 87:9736-9740; Lee and
Van der Ploeg, 1990, Science, 250:1583-1586; Asbroek
et al., 1990, Nature, 348:174-175; Cruz and
Beverley, 1990, Nature, 348:171-173; y Laban et
al., Nature, 343:572-574.
Las técnicas generales de recombinación genética,
incluyendo construcción de vectores, transformación, selección de
transformantes, expresión en células huésped, etc., se describen
además en Maniatis et al., 1989, Molecular Cloning, A
Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press. Cold
Spring Harbor, N.Y.; Ausubel et al., 1989, Current
Protocols in Molecular Biology, Greene Publishing Associates
& Wiley Interscience, N.Y.; Sambrook et al., 1989,
Molecular Cloning: A Laboratory Manual. 2ª edición, Cold
Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, N.Y.; Innis
et al. (editores), 1995, PCR Strategies, Academic
Press, Inc., San Diego, Ca.; y Erlich (editor), 1992, PCR
Technology, Oxford University Press, Nueva York.
Después de la etapa de atenuación, las células
que exhiben uno o más indicadores de patogenia atenuada se
seleccionan del cultivo y se propagan de forma clonal después de
limitar la dilución. Los ejemplos de tales indicadores incluyen,
pero no se limitan a, la aparición de una nueva sensibilidad a
temperatura o un nuevo auxotrofismo in vitro, o una reducción
en una característica de virulencia tal como la infectividad o la
gravedad o la velocidad de progresión de uno o más síntomas o
estados en un mamífero tras la administración de células de la cepa
en comparación con la infección con la cepa original, entre otros.
Un ejemplo particular no limitante de una sensibilidad a la
temperatura que es útil en la práctica de la invención es una en la
que las células de la cepa atenuada crecerán a 32ºC, pero no a 37ºC.
Tal cepa sensible a la temperatura causará la lisis de las células
huésped infectadas a 32ºC, dando lugar a la aparición de lesiones o
placas en una monocapa de células huésped. Cuando crecen a 37ºC, la
cepa atenuada no se replicará suficientemente y por lo tanto dejará
de producir placas en las monocapas de células huésped.
Una cepa atenuada de Neospora puede
proceder de cualquier cepa patógena de cualquier especie del género
incluyendo, pero no limitada a, N. caninum. Un ejemplo no
limitante de una cepa patógena particular de N. caninum a
partir de la cual puede proceder de manera útil una cepa atenuada,
es la cepa NC-1, que está presente en células de
riñón de mono MARC145 infectadas, procedentes de American Type
Culture Collection (ATCC), 12301 Parklawn Drive, Rockville, MD
20852, EE.UU. (nº de acceso CRL-12231 en ATCC). La
cepa NC-1 también se describe en Dubey et
al., 1988, J. Am. Vet. Med. Assoc. 193:1259-63.
De manera alternativa, las cepas patógenas de Neospora se
pueden obtener a partir de tejidos, órganos o líquidos corporales de
animales infectados que presentan los síntomas clínicos de
neosporosis, utilizando las técnicas estándar de aislamiento
descritas, por ejemplo, en las publicaciones revisadas
anteriormente. Un ejemplo no limitante de una cepa atenuada
elaborada con células vivas, derivada de la cepa
NC-1 de N. caninum es NCTS-8,
que está presente en células de riñón de mono MARC145 infectadas,
procedentes de la ATCC (nº de acceso CRL-12230 en
ATCC).
Tanto las cepas originales como las cepas
atenuadas de Neospora se pueden cultivar in vitro por
infección de cualquier línea celular sensible, preferiblemente una
línea celular de mamífero, con taquizoítos de la cepa de acuerdo con
los métodos conocidos en la técnica. Las líneas celulares de
mamíferos en las que se pueden cultivar taquizoítos de
Neospora incluyen, por ejemplo, fibroblastos humanos de
prepucio (Lindsay et al., 1993, Am. J. Vet. Res.
54:103-106); células del endotelio aórtico
cardiopulmonar de bovino (Marsh et al., 1995, citado
anteriormente); y monocitos bovinos (Lindsay and Dubey, 1989, citado
anteriormente), entre otros. Por ejemplo, los taquizoítos de N.
caninum se pueden cultivar en monocapas de fibroblastos humanos
de prepucio Hs68 (nº de acceso CRL-1635 en ATCC)
(Lindsay et al., 1993, citado anteriormente). Los bradizoítos
se pueden cultivar y manipular de forma similar.
Los cultivos celulares de mamífero se pueden
crecer, y los cultivos celulares infectados con Neospora se
pueden mantener, en uno cualquiera de los diversos medios de cultivo
descritos en la técnica. Por ejemplo, los cultivos estacionarios en
monocapa de células del endotelio aórtico cardiopulmonar de bovino
infectadas con taquizoítos de N. caninum pueden crecerse en
Medio Esencial Mínimo de Dulbecco (DMEM: Gibco Laboratories, N.Y.),
enriquecido con suero de ternera fetal (STF) o suero de equino
adulto (SE) inactivado con calor al 10% (v/v),
L-glutamina 2 mM, penicilina 50 U/ml y
estreptomicina 50 \mug/ml (Conrad et al., 1993, citado
anteriormente). Las monocapas de fibroblastos humanos de prepucio
Hs68 se pueden mantener en RPMI 1640 (Gibco) conteniendo suero de
ternera fetal al 2% (v/v), piruvato sódico 1,0 mM, penicilina1 x
10^{4} U/ml, estreptomicina 1 x 10^{4} \mug/ml,
2-mercaptoetanol 5 x 10^{-2} mM y
L-glutamina 0,3 mg/ml (medio de mantenimiento). Los
cultivos en monocapa de fibroblastos humanos de prepucio Hs68
infectados con Neospora se pueden mantener en medios
idénticos, pero en los que el suero de ternera fetal está aumentado
al 10% (v/v) (medio de crecimiento). Las cepas atenuadas de
Neospora con nuevos auxotrofismos necesitarán una
modificación apropiada del medio de cultivo para proporcionar
crecimiento, como se conoce en la técnica.
Los cultivos en monocapa de células de mamífero,
infectadas con Neospora, se mantienen típicamente en
condiciones estándar de cultivo tisular tales como, por ejemplo, a
37ºC y CO_{2} al 5%. Los taquizoítos se introducen generalmente en
cultivos en monocapa sin infectar cuando el 70-90%
de las células de mamífero en cultivo se han infectado, lo cual se
puede determinar mediante microscopia utilizando técnicas estándar.
Los taquizoítos se pueden recoger de los cultivos celulares
mamíferos infectados mediante la lisis de las células huésped
utilizando técnicas estándar que permitan a los taquizoítos mantener
la viabilidad, y recogiendo los taquizoítos por filtración o por
centrifugación, por ejemplo.
La presente invención proporciona vacunas frente
a la neosporosis, que comprenden una cantidad inmunológicamente
eficaz de células vivas de una cepa derivada de una cepa original
patógena de una especie de Neospora, cuyas células exhiben
una patogenia atenuada comparada con la de la cepa original pero que
son capaces de desencadenar una respuesta inmune que proteja al
mamífero frente a la neosporosis cuando se administra como vacuna
atenuada, y un vehículo veterinariamente aceptable.
La presente invención proporciona además
procedimientos para preparar una vacuna que proteja a un mamífero
frente a la neosporosis, comprendiendo la modificación de células a
partir de una cepa original patógena de una especie de
Neospora; la selección y propagación clonal de aquellas
células modificadas que exhiban una patogenia atenuada comparada con
las células de la cepa original pero que sean capaces de
desencadenar una respuesta inmune en el mamífero que proteja a
frente a la neosporosis cuando se administra en una vacuna atenuada;
y la combinación de una cantidad inmunológicamente eficaz de las
células atenuadas con un vehículo veterinariamente aceptable, de
forma adecuada para la administración en forma de vacuna atenuada al
mamífero.
La presente invención proporciona además
procedimientos de vacunación de un mamífero frente a la neosporosis,
comprendiendo la administración al mamífero una cantidad
inmunológicamente eficaz de una vacuna que comprende células vivas
de una cepa derivada de una cepa original patógena de una especie de
Neospora, cuyas células exhiben una patogenia atenuada
comparada con la de la cepa original pero que son capaces de
desencadenar una respuesta inmune que proteja al mamífero frente a
la neosporosis cuando se administra como vacuna atenuada, y un
vehículo veterinariamente aceptable.
La vacuna de la invención comprende células vivas
de una cepa atenuada de Neospora, bien como el único
componente antigénico o combinado con uno o más otros antígenos que
desencadenan una respuesta inmune que proteja a un mamífero frente a
una enfermedad o un estado patológico que pueda estar o no
relacionado con la neosporosis. Por lo tanto, la presente invención
proporciona además vacuna mixtas, que comprenden una cantidad
inmunológicamente eficaz de células vivas de una cepa derivada de
una cepa original patógena de una especie de Neospora, cuyas
células exhiben una patogenia atenuada comparada con la de la cepa
original pero que son capaces de desencadenar una respuesta inmune
que proteja al mamífero frente a la neosporosis cuando se administra
como vacuna atenuada; uno o más otros antígenos que desencadenan una
respuesta inmune que proteja al mamífero frente a una enfermedad o
un estado patológico; y un vehículo veterinariamente aceptable. Las
vacunas mixtas pueden comprender además uno o más otros componentes
incluyendo, por ejemplo, un adyuvante.
La vacuna se administra convencionalmente por vía
parenteral, por ejemplo, bien por inyección subcutánea o
intramuscular. Sin embargo, la vacuna se puede administrar también
mediante vía intraperitoneal o intravenosa, o por otras vías,
incluyendo la vía oral, intranasal, rectal o vaginal, y cuando la
vacuna se administra de este modo, se selecciona de forma apropiada
un vehículo veterinariamente aceptable. La vacuna puede comprender
simplemente células atenuadas en el líquido de cultivo, que se
administran directamente al mamífero. Alternativamente, la vacuna
puede comprender células atenuadas combinadas con un vehículo
veterinaria o farmacéuticamente aceptable seleccionado de los
conocidos en la técnica, en función de la vía de administración y la
capacidad para mantener la viabilidad celular. Los ejemplos no
limitantes de tales vehículos incluyen el agua, la solución salina,
los vehículos tamponados y similares. Otros vehículos y aditivos
adecuados para vacunas se conocen, o serán evidentes, para los
expertos en la técnica. Véase, por ejemplo, Remington's
Pharmaceutical Science, 18ª edición, 1990, Mack
Publishing.
La vacuna puede comprender además uno o más otros
componentes tales como un agente inmunomodulador incluyendo, por
ejemplo, la interleucina 1, u otra sustancia inmunoestimulante tal
como un adyuvante veterinariamente aceptable. Los ejemplos no
limitantes de adyuvantes incluyen los adyuvantes completos e
incompletos de Freund, geles minerales incluyendo, por ejemplo,
hidróxido de aluminio y formulaciones de aceite en agua o agua en
aceite. Los agentes inmunomoduladores se seleccionan en función de
su capacidad para mantener tanto la viabilidad de las células
atenuadas de Neospora como la capacidad de las células para
desencadenar una respuesta inmune protectora en el mamífero
vacunado.
Los ejemplos no limitantes de formulaciones de
aceite en agua que son útiles como adyuvantes en las vacunas de la
invención incluyen las emulsiones 1 a 3, como sigue. La emulsión 1
estaba constituida por: (a) ME6201 (escualeno al 5% v/v, vitamina E
al 1,0% v/v, y dispersante Tween™ 80 al 0,8% v/v); (b) preparación
de saponina Quil A (QA) (Superfos) (200 \mug/ml); y (c) colesterol
(col.) (100 \mug/ml). La emulsión 2 estaba constituida por: (a)
ME6201; y (b) amina lipoidal Avridine (1 mg/ml). La emulsión 3
estaba constituida por ME6201 (escualeno al 5% v/v, vitamina E al
1,0% v/v, y dispersante Tween™ 80 al 0,8% v/v).
Mediante métodos convencionales se puede
determinar una dosificación eficaz, comenzando con una dosis baja de
células atenuadas y aumentando después la dosificación al tiempo que
se monitorizan los efectos, y se varía de forma sistemática la
dosificación de forma adicional. Cuando se determina una
dosificación óptima por animal se tienen que considerar numerosos
factores. Entre éstos son primordiales la especie, el tamaño del
animal, la edad del animal, el estado general del animal, la
presencia de otros fármacos en el animal, la virulencia de una cepa
particular de Neospora frente a la cual se está vacunando al
animal, y similares. La dosis actual se elegiría preferiblemente
después de la consideración de los resultados de otros estudios
animales.
Las pautas de vacunación se seleccionan también
en función de los factores descritos anteriormente. Los animales se
pueden vacunar en cualquier momento, incluyendo justo antes o en el
momento de la reproducción. Las administraciones suplementarias, o
revacunaciones, pueden ser necesarias para una completa protección.
Un procedimiento para detectar si se ha conseguido una protección
inmune adecuada es determinar la seroconversión y los valores de
anticuerpos en el animal después de la vacunación. Por lo tanto, la
vacuna de la invención se puede administrar en cualquier momento
durante la vida de un animal concreto a vacunar, dependiendo de
varios factores, que incluyen, por ejemplo, el desarrollo
cronológico de una epidemia de neosporosis entre otros animales,
etc. La vacuna se puede administrar a animales en edad de destete o
más jóvenes, o a animales más maduros, por ejemplo, en forma de
vacuna pregestacional para proteger frente a la enfermedad congénita
o al aborto relacionados con Neospora. La vacunación eficaz
puede requerir solamente una primovacunación, o una primovacunación
con una o más vacunaciones de refuerzo. Las vacunaciones de refuerzo
se pueden administrar en cualquier momento tras la primovacunación
dependiendo, por ejemplo, de la respuesta inmune tras la primera
vacunación, la gravedad de la epidemia, la virulencia de la cepa de
Neospora causante de la epidemia, la salud del vacunado, etc.
El desarrollo cronológico de vacunación y el número de
revacunaciones, si hubiera, se determinará preferiblemente por un
veterinario de acuerdo con el análisis de todos los factores
relevantes, algunos de los cuales se han descrito anteriormente.
Las células de Neospora utilizadas en la
vacuna son preferiblemente taquizoítos, pero en su lugar pueden ser
bradizoítos, u ovoquistes, o alguna combinación de éstos. La
concentración de células atenuadas en la vacuna preferiblemente
oscila de aproximadamente 1 x 10^{3}/ml a aproximadamente 1 x
10^{8}/ml, y más preferiblemente de aproximadamente 2 x
10^{6}/ml a aproximadamente 2 x 10^{7}/ml. Un volumen adecuado
de dosificación oscila de aproximadamente 0,5 ml a aproximadamente
1,0 ml. Por lo general, respecto a un sistema por dosis, el número
de células atenuadas administradas a un animal es preferiblemente de
aproximadamente 2 x 10^{4} a aproximadamente 2 x 10^{8}; más
preferiblemente de aproximadamente 2 x 10^{5} a aproximadamente 2
x 10^{7}; y lo más preferiblemente de aproximadamente 1 x 10^{6}
a aproximadamente 1 x 10^{7}.
La vacuna de la invención protege a un mamífero
frente a la infección o enfermedad causada por Neospora. La
vacuna es útil para proteger tanto a los mamíferos preñados como a
los no preñados, incluyendo, pero sin limitarse a especies bovinas,
ovinas, caprinas, caninas y equinas, frente a la infección, la
enfermedad clínica o el aborto resultantes de la neosporosis. El
término "protección" se usa ampliamente y no se limita a la
prevención absoluta de la infección por Neospora, pero
incluye una reducción en la infectividad, o en la gravedad de una
enfermedad o estado derivado de la infección, incluyendo una
reducción detectable de uno o más de los efectos o síntomas
patológicos derivados de la infección, o una reducción detectable en
la velocidad de progresión de uno o más de dichos efectos o síntomas
patológicos. La vacuna de la invención es también segura, esto es,
no produce enfermedad o efectos secundarios significativos en el
mamífero vacunado.
Los siguientes ejemplos se ofrecen para ilustrar
adicionalmente, pero no limitar, las composiciones y procedimientos
de la invención.
El objeto de este estudio fue la creación de
cepas sensibles a la temperatura de N. caninum (NCTS), y el
ensayo de la patogenia de estas cepas mediante el análisis de la
respuesta de anticuerpos en suero, los quistes tisulares y la
producción de lesiones cerebrales, y el desarrollo de los síntomas
clínicos en ratones BALB/c, que son conocidos por ser elevadamente
susceptibles a la neosporosis.
Los taquizoítos de la cepa NC-1
de N. caninum (Dubey et al., 1988, citado
anteriormente) se clonaron dos veces mediante dilución limitante y
se mantuvieron a 37ºC, como se ha descrito (Lindsay and Dubey, 1989,
citado anteriormente). Los taquizoítos se propagaron en matraces de
25 cm^{2} y se clonaron en placas de 96 pocillos que contenían
monocapas de fibroblastos humanos de prepucio Hs68 (nº de acceso
CRL-1635 en ATCC) (Lindsay et al., 1993,
citado anteriormente). Las células Hs68 se crecieron previamente en
RPMI 1640 que contenía suero de ternera fetal al 2% (v/v), piruvato
sódico 1,0 mM, penicilina 1 x 10^{4} U/ml, estreptomicina 1 x
to^{4} \mug/ml, 2-mercaptoetanol 5 x 10^{-2}
mM y L-glutamina 0,3 mg/ml (medio de mantenimiento).
Las monocapas de cultivos celulares infectados se mantuvieron en un
medio idéntico, pero en el que el suero de ternera fetal estaba
aumentado al 10% (v/v) (medio de crecimiento). Se aisló un clon y se
designó en el laboratorio como la línea
NC-1-2C, pero de aquí en adelante se
menciona simplemente como la cepa NC-1.
Los taquizoítos de la cepa NC-1
se mutagenizaron mediante la exposición a
N-metil-N-nitro-N-nitrosoguanidina (Sigma) 0,5
\muM en medio de crecimiento durante 24 horas, y después se
crecieron a 32,5ºC durante 3 meses en células Hs68 en medio de
mantenimiento, tras lo cual se clonaron los taquizoítos por dilución
limitante. Inicialmente se aislaron doce clones. Para un estudio
posterior se seleccionaron tres clones, designados como
NCTS-4, NCTS-8 y
NCTS-12 (NCTS = N. caninum ,termosensible),
después de mantenerse en células Hs68 en cultivo continuo a 32,5ºC
durante más de 8 meses en medio de mantenimiento.
El ensayo serológico de los ratones se realizó
como sigue. Se usó un ensayo indirecto de anticuerpo
immunofluorescente (siglas en inglés, IFAT) (Dubey et
al.,1988, citado anteriormente) para analizar los sueros de
ratones para la presencia de anticuerpos dirigidos frente a N.
caninum. Los sueros de ratón se obtuvieron inmediatamente antes
de la inoculación de exposición en los estudios de vacunación. El
suero también se obtuvo a partir de todos ratones que sobrevivieron
a los experimentos de patogenia. Los sueros se examinaron en
diluciones dobles comenzando en 1:50 y se evaluó el criterio de
valoración. Los taquizoítos se utilizaron como antígenos. Las
muestras positivas exhibieron una completa fluorescencia de
superficie para los taquizoítos. Las muestras negativas no mostraron
fluorescencia o solamente una fluorescencia en el extremo
anterior.
La presencia de lesiones en los cerebro de
ratones expuestos a diferentes cepas de N. caninum se
determinó como sigue. El cerebro de cada ratón se extrajo en la
necropsia, y una primera mitad se fijó en una solución de formol
tamponado neutro al 10% v/v para el examen histopatológico. Las
secciones de tejido se prepararon utilizando técnicas histológicas
habituales, y se tiñeron con hematoxilina y eosina para detectar la
presencia de lesiones de forma microscópica.
La evaluación de la lesión de las secciones de
cerebro teñidas con hematoxilina y eosina se realizó según los
criterios descritos en Lindsay et al, 1995, J. Parasitol.
81:313-315.
Se obtuvo una puntuación media de lesión
utilizando los tres valores enumerados antes. Un cerebro de ratón
normal y no infectado tendría una puntuación media de lesión de 3,0.
Las puntuaciones medias de lesión se evaluaron utilizando una prueba
no paramétrica de Kruskal-Wallis y procedimientos de
comparación por distribución libre múltiple. El número de ratones en
cada grupo con lesiones se examinó utilizando la prueba exacta de
Fisher. La significación estadística se estableció en un límite de
P<0,05.
Las secciones de cerebro de cada ratón se
examinaron también utilizando un anticuerpo monoclonal murino, 6G7,
específico para N. caninum, junto con una ensayo
inmunohistoquímico con el complejo de
avidina-biotina peroxidasa (ABC), para detectar los
estadios de N. caninum (Cole et al., 1993, J. Vet.
Diag. Invest. 5:574-589).
La segunda mitad de cada cerebro de ratón se
digirió en pepsina-ácido y se usó para inocular cultivos celulares
de mamífero para detectar la presencia de quistes tisulares de N.
caninum. Para digerir la segunda mitad del cerebro de ratón se
introdujo en 3 ml de solución salina equilibrada de Hank (siglas en
inglés, HBSS) y se pasó dos veces a través de una jeringa con una
aguja de 0,6 mm de diámetro. Se añadieron tres ml de la solución
pepsina-ácido (0,52 g de pepsina, 0,50 g de NaCI, 98,6 ml de
H_{2}O destilada, 1,4 ml de HCI concentrado, pH 0,8), al
homogeneizado y se incubó durante 10 minutos a 37ºC en un baño de
agua. La solución de pepsina ácida se separó por centrifugación y el
precipitado, que representa la segunda mitad cerebral completa, se
inoculó en un único matraz de cultivo tisular de 25 cm^{2} que
contenía una monocapa de fibroblastos humanos de prepucio Hs68
cultivados como se ha descrito antes. Tras 30 minutos, el inóculo se
retiró y se lavó la monocapa celular Hs68 y se incubó en medio de
mantenimiento reciente como antes. A continuación se examinaron los
cultivos celulares durante 30 días para detectar la presencia de
N. caninum (Lindsay and Dubey, 1989, citado anteriormente).
La patogenia de NC-1 y de las tres cepas NCTS
seleccionadas, es decir, NCTS-4,
NCTS-8 y NCTS-12, de N.
caninum se determinó como sigue. Se inocularon por vía
subcutánea ratones BALB/c (8 semanas, hembra) (Harlan Sprague Dawley
(HSD)) con HBSS (control), o con 5 x 10^{5} taquizoítos de cada
cepa NC-1, NCTS-4,
NCTS-8 o NCTS-12 de N.
caninum en HBSS (0,5 a 1,2 ml de volumen total). Los ratones
supervivientes se examinaron en la necropsia a los 42 ó 56 días
post-inoculación (PI) (véase la tabla 1). El suero
se extrajo de los ratones supervivientes en la necropsia. Los
cerebros de estos ratones se examinaron para la evaluación de la
lesión e inmunohistología, y una mitad de cada cerebro se usó para
la digestión pepsina-ácido para determinar la presencia de quistes
tisulares, como se ha descrito antes.
a = diferente significativamente respecto al control (HBSS) (P < 0,05). | |
b = diferente significativamente respecto a NCTS-4, NCTS-8 y NCTS-12 (P< 0,05). |
La neosporosis clínica y la mortalidad sucedieron
solamente en ratones BALB/c inoculados con la cepa
NC-1 (Tabla 1). Solamente uno de cada 10 ratones
BALB/c sobrevivieron a la infección por la cepa
NC-1. Las cepas NCTS-4,
NCTS-8 y NCTS-12 no produjeron
mortalidad en ratones BALB/c.
Las puntuaciones medias de lesión se presentan en
la Tabla 2. Se encontraron lesiones en los cerebros de algunos
ratones inoculados con las cepas NCTS, pero las puntuaciones medias
de lesión no fueron estadísticamente significativas al compararlas
con el control (HBSS). Se descubrió una diferencia significativa en
las puntuaciones medias de lesión y el número de ratones con
lesiones cuando se compararon los ratones inoculados con la cepa
NC-1 con los ratones inoculados con HBSS (control) o
con cualquiera de las cepas NCTS de N. caninum.
Los valores de anticuerpo en suero se presentan
en la Tabla 3. En todos los ratones expuestos (30/30) a cepas NCTS
se detectaron valores significativos de IFAT (> 400). Esto indica
que las cepas NCTS son capaces de estimular una respuesta de
linfocitos B en un animal inmunológicalmente intacto, pero
genéticamente susceptible. Los valores de IFAT en ratones expuestos
a NCTS fueron iguales a, o en algunos caso mayores, que los de los
ratones expuestos a NC-1.
Los quistes tisulares no se detectaron en ninguna
de las mitades cerebrales utilizando la técnica de digestión
pepsina-ácido descrita antes. Esto indica que los quistes tisulares,
si existen, son pocos en número en los ratones inoculados con las
cepas NCTS o NC-1 de N. caninum.
El objeto de este estudio fue determinar la
patogenia de las cepas NCTS de N. caninum en ratones
exogámicos HSD:ICR, que son inmunocompetentes y más resistentes a
Neospora que los ratones BALB/c endogámicos.
En este experimento se usaron ratones HSD:ICR (4
semanas, hembras). Todos los ratones HSD:ICR, excepto los controles,
se inocularon con 5 x 10^{5} taquizoítos de la cepa apropiada de
N. caninum en HBSS (volumen total 0,5 a 1,2 ml). Los ratones
de control se inocularon sólo con HBSS. Todos los ratones
supervivientes se sacrificaron a los 56 días PI. El suero se recogió
para el ensayo IFAT. Los cerebros de estos ratones se extrajeron y
se usó una primera mitad para la evaluación de la lesión e
inmunohistología, como antes. La segunda mitad de cada cerebro se
usó en la digestión pepsina-ácido para detectar los quistes
tisulares, como se ha descrito anteriormente.
Ninguna de las cepas analizadas de N.
caninum, incluyendo NC-1, produjeron mortalidad
en ratones HSD:ICR (Tabla 4), y no se observaron diferencias
significativas en una serie de ratones con lesiones o en las
puntuaciones medias de lesión, comparadas con los controles no
expuestos (Tabla 5). No se observaron quistes en el tejido cerebral
en las secciones histológicas o teñidas con ABC. No se aislaron
parásitos en los cultivos celulares.
- a = No se observaron diferencias significativas entre los grupos de tratamiento.
- a = Todos los valores se determinaron a día 56 PI.
Los valores de anticuerpos de ratones
supervivientes se presentan en la tabla 6. Los valores
significativos de IFAT (> 400) se detectaron en la mayoría de los
ratones (13/15) expuestos a las cepas NCTS, indicando que estas
cepas son capaces de inducir una respuesta de linfocitos B en
animales inmunológicalmente intactos, pero genéticamente
resistentes.
Los quistes tisulares no se detectaron en la
región del cerebro examinada histológicamente,
inmunohistológicamente o usando el procedimiento de digestión
pepsina-ácido. Estos resultados confirman los mostrados en el
anterior ejemplo 1, usando ratones BALB/c.
Un primer objeto de este estudio era determinar
la patogenia de las cepas NCTS de N. caninum en ratones
HSD:ICR inmunodeprimidos. Un segundo objeto de este estudio era
determinar si la reversión de la patogenia sucedía después de los
pases in vitro de las cepas NCTS de N. caninum a
37ºC.
Se inmunodeprimieron ratones HSD:ICR (4 semanas,
hembras) mediante la administración intramuscular de 2 mg de acetato
de metilprednisolona (siglas en inglés, MPA)
(Upjohn-Pharmacia) a los días -7, 0, y 7 PI. Véase
Lindsay and Dubey, 1989, J. Parasitology
75:772-779.
Los ratones HSD:ICR inmunodeprimidos se
inocularon a día 0 con 2 x 10^{5} taquizoítos de cualquiera de las
cepas NC-1, NCTS-4,
NCTS-8 o NCTS-12, o uno de los
controles de reversión potencial, designadas
NCTS-4-37,
NCTS-8-37 ó
NCTS-12-37, en HBSS (volumen total
de 0,5 a 1,2 ml). Posteriormente se examinaron los ratones
serológica, histológica y clínicamente, como se ha descrito
antes.
Los clones NCTS-4,
NCTS-8 y NCTS-12 se examinaron para
la reversión de la patogenia por el crecimiento a 37ºC durante 88
días (25 pases del cultivo celular), seguido de la inoculación en
ratones HSD:ICR inmunodeprimidos (las cepas de reversión potencial
se designan como NCTS-4-37,
NCTS-8-37,
NCTS-12-37).
Las cepas NC-1,
NCTS-4-37 y
NCTS-12-37 de N. caninum
produjeron un 100% de mortalidad en ratones HSD:ICR inmunodeprimidos
(Tabla 7). Las cepas NCTS-4, NCTS-8,
NCTS-12 y NCTS-8-37
fueron menos patógenas para los ratones HSD:ICR inmunodeprimidos y
produjeron solamente del 0% al 20% de mortalidad. Las puntuaciones
medias de lesión se presentan en la tabla 8. No se detectaron
taquizoítos las digestiones pepsina-ácido de cualquier ratón
examinado en la necropsia a los 56 días PI.
Los valores de anticuerpos de los ratones
supervivientes se presentan en la tabla 9. Los valores
significativos de IFAT (> 800) se detectaron en ratones
NCTS-4, -8 y -12, y
NCTS-8-37 a los 56 días después de
la exposición, lo que indica que estas cepas son capaces de
estimular una respuesta de linfocitos B en un animal
inmunodeprimido, pero genéticamente resistente.
\dotable{\tabskip\tabcolsep#\hfil\tabskip0ptplus1fil\dddarstrut\cr}{ * = Los ratones que estaban moribundos debido a la neosporosis encefalítica clínica se sacrificaron por\cr razones humanitarias.\cr}
- a = diferente significativamente respecto al control (grupo 16) (P< 0,05).
- a = Todos los valores se determinaron a día 56 PI.
Las cepas NCTS fueron menos patógenas en los
ratones HSD:ICR inmunodeprimidos que en las cepas
NC-1, NCTS-4-37 y
NCTS-12-37. La relativamente alta
tasa de supervivencia (4/5) de los ratones inoculados con la cepa de
reversión NCTS-8-37 comparada con la
tasa de mortalidad del 100% de los ratones inoculados con las cepas
de reversión NCTS-4-37 ó
NCTS-12-37 indica que la cepa de
reversión NCTS-8-37 retuvo una
patogenia atenuada tras pases sucesivos a 37ºC. De acuerdo con esta
retención demostrada de la patogenia atenuada, la cepa
NCTS-8 de N. caninum se seleccionó como un
candidato potencial de vacuna y se usó en estudios posteriores, como
se describe a continuación.
Un primer objetivo de este estudio fue determinar
si la vacunación con una cepa atenuada y sensible a la temperatura
de N. caninum puede proporcionar una protección frente a la
enfermedad causada por la posterior exposición a una cepa patógena,
por ejemplo, NC-1, de N. caninum. Un segundo
objetivo de este estudio fue determinar el nivel de protección
proporcionado por la vacunación de ratones BALB/c con taquizoítos
muertos (congelados) de NCTS-8 que se expusieron
posteriormente a la cepa NC-1 de N.
caninum.
Los ratones BALB/c (9 semanas, hembras) se
vacunaron mediante inyección subcutánea tanto con HBSS (control)
(0,5 ml), como con 5 x 10^{5} taquizoítos vivos de la cepa
NCTS-8 en HBSS (0,5 ml), o con 2 x 10^{6}
taquizoítos muertos (congelados) en HBSS (0,5 ml) (Tabla 10). Los
vacunados se revacunaron a los 21 días PI con el mismo material que
en la primoinyección. Los ratones se expusieron después por
administración subcutánea de 1 x 10^{6} taquizoítos de la cepa
NC-1 de N. caninum en HBSS, o sólo con HBSS
(control) (volumen total de 0,5 ml), 14 días después de la
revacunación.
El IFAT se usó para analizar los sueros de los
ratones que sobrevivieron al experimento para la presencia de los
anticuerpos frente a N. caninum, como se ha descrito antes.
En la necropsia se extrajo el cerebro de cada ratón. La primera
mitad se usó para histopatología e inmunohistología, y la segunda
mitad se usó para la digestión pepsina-ácido, como se ha descrito
antes. La viabilidad de los taquizoítos después de la congelación se
determinó mediante la inoculación de cultivos en monocapa de
fibroblastos humanos de prepucio Hs68, como se ha descrito
antes.
Ninguno de los ratones en ningún grupo de ensayo
murió tras la primovacunación o la revacunación. Dos de 10 ratones
vacunados con HBSS (controles), y 3 de 10 ratones vacunados con
taquizoítos muertos de NCTS-8, murieron tras ser
expuestos a taquizoítos de NC-1. Las puntuaciones
medias de lesión de ratones que sobrevivieron se presentan en la
tabla 11.
Los valores recíprocos de anticuerpos de ratones
supervivientes se presentan en la tabla 12. Los valores
significativos de IFAT (\geq 800) se detectaron en ratones
vacunados con taquizoítos vivos de NCTS-8 tras la
revacunación, lo que confirma los resultados previos descritos
antes. En cambio, no se mostraron valores significativos de IFAT en
ninguno de los ratones vacunados con taquizoítos muertos de
NCTS-8 antes de la exposición, lo que demuestra que
los taquizoítos muertos no pueden inducir una respuesta
significativa de anticuerpos en un huésped genéticamente
susceptible.
Los taquizoítos de N. caninum se aislaron
a partir de cultivos celulares inoculados con tejido cerebral
digerido con pepsina-ácido de dos ratones expuestos y vacunados con
placebo (grupo 24, ratones nº 1 y 2), y a partir de un ratón
vacunado con taquizoítos muertos de NCTS-8 (grupo
31, ratón nº 5). No se aislaron taquizoítos de los cultivos
inoculados con tejido cerebral a partir de ningún otro ratón.
a = diferente significativamente respecto a los grupos 24 + 25 (P < 0,05). | |
b = diferente significativamente respecto a los grupos 30 + 31 (P < 0,05). |
Los ratones vacunados con taquizoítos vivos de la
cepa NCTS-8 de N. caninum no murieron ni
desarrollaron los síntomas de la enfermedad clínica. Los ratones
vacunados con taquizoítos vivos de la cepa NCTS-8 y
expuestos posteriormente a los taquizoítos de la cepa
NC-1 (Tabla 11, grupos 28 + 29) tenían valores de
lesión que eran casi idénticos a los de los ratones vacunados con
taquizoítos vivos de la cepa NCTS-8 tras la
administración de HBSS (Tabla 11, grupos 26 + 27). Esto indica que
vacunación con taquizoítos vivos de la cepa NCTS-8
proporciona una protección sustancial frente a la enfermedad causada
por la infección con la cepa NC-1 de N.
caninum. La vacunación de ratones con taquizoítos muertos de la
cepa NCTS-8 ofreció poca protección ante la
neosporosis (Tabla 11, grupos 30 + 31).
El objeto de este estudio fue determinar si una
dosis baja, esto es, 5 x 10^{4} taquizoítos, de la cepa
NCTS-8 de N. caninum puede proporcionar
protección frente a una infección por una exposición posterior.
Los ratones BALB/c (7 semanas, hembras) se
vacunaron por vía subcutánea tanto con HBSS como con 5 x 10^{4}
taquizoítos de la cepa NCTS-8 de N. caninum
en HBSS (0,5 ml) (Tabla 13). Esta dosis de taquizoítos es la décima
parte de la cantidad utilizada en los ejemplos previos. Los ratones
se revacunaron a los 21 días PI con el mismo material que en la
primoinyección. Los ratones se expusieron 14 días después de la
revacunación a 1 x 10^{6} taquizoítos de la cepa
NC-1 de N. caninum.
El IFAT se usó para analizar los sueros de los
ratones que sobrevivieron al experimento para anticuerpos frente a
N. caninum ,como se ha descrito antes. En la necropsia se
extrajo el cerebro de cada ratón. Una primera mitad se usó para
histopatología e inmunohistología, y la otra segunda mitad se usó
para la digestión pepsina-ácido, como se ha descrito antes
Un ratón de control (administrado sólo HBSS)
murió tras la posterior exposición a taquizoítos de la cepa
NC-1 de N. caninum. Ninguno de los ratones
vacunados con la dosis baja de taquizoítos de la cepa
NCTS-8 de N. caninum murieron tras la
exposición posterior con taquizoítos de la cepa
NC-1. Las puntuaciones medias de lesión y el número
de ratones con lesiones fueron significativamente mayores en los
ratones de control vacunados falsamente sólo con HBSS que en ratones
vacunados con una dosis baja de la cepa NCTS-8
(Tabla 14). Los valores recíprocos de anticuerpos se muestran en la
tabla 15.
- a = diferente significativamente respecto al grupo 36 (P < 0,05).
El objeto de este estudio fue determinar el
efecto de añadir un adyuvante a una vacuna atenuada y modificada de
Neospora y el grado de protección obtenido a partir de ésta
frente a la neosporosis.
Los anteriores resultados in vitro (datos
no mostrados) indicaron que los taquizoítos de al menos una cepa
atenuada modificada de N. caninum, esto es,
NCTS-8, retenía la infectividad y la viabilidad
parcial in vitro cuando se coincubaba con una de varias
formulaciones diferentes de aceite en agua. Basándose en estos
resultados in vitro, se seleccionaron tres formulaciones
específicas para la evaluación in vivo como adyuvantes.
Se vacunaron por vía subcutánea (0,2 ml) grupos
de diez ratones BALB/c hembra de 15 semanas a días 0
(primovacunación) y 21 (de refuerzo) PI, bien con sólo HBSS
(control), o con 5 x 10^{5} taquizoítos de la cepa
NCTS-8 de N. caninum en HBSS, o con 5 x
10^{5} taquizoítos de la cepa NCTS-8 de N.
caninum en una de las tres siguientes emulsiones de aceite en
agua.
La emulsión 1 estaba constituida por: (a) ME6201
(escualeno al 5% v/v, vitamina E al 1,0% v/v, y dispersante Tween™
80 al 0,8% v/v); (b) preparación de saponina Quil A (QA) (Superfos)
(200 \mug/ml); y (c) colesterol (col.) (100 \mug/ml).
La emulsión 2 estaba constituida por: (a) ME6201;
y (b) amina lipoidal Avridine (1 mg/ml).
La emulsión 3 estaba constituida por ME6201
(escualeno al 5% v/v, vitamina E al 1,0% v/v, y dispersante Tween™
80 al 0,8% v/v).
Al día 35 PI, se expusieron todos los ratones
mediante una administración subcutánea de 1 x 10^{6} taquizoítos
de la cepa NC-1 de N. caninum en HBSS (0,2
ml). Se sacrificaron grupos de 3 a 5 ratones a los días 49 y 63 PI
para evaluar la eficacia de la vacuna.
Al comienzo del día 0, se evaluó la enfermedad
basándose en la mortalidad, así como en la aparición de rizos en las
capas del pelo, movimientos irregulares, parálisis de las
extremidades inferiores y debilidad generalizada.
El análisis histopatológico se llevó a cabo como
sigue. Las muestras de pulmón se obtuvieron a día 49, se fijaron en
formol tamponado neutro al 10 (v/v), y el tejido se seccionó y tiñó
utilizando técnicas histológicas habituales. Las secciones de pulmón
teñidas con hematoxilina y eosina se codificaron, y las lesiones se
evaluaron con ocultación, sin conocimiento de los grupos de
tratamiento. Las lesiones de neumonía se evaluaron utilizando el
siguiente sistema:
0 = ninguna; 1 = leve; 2 = moderada; 3 = notable; 4 = severa.
0 = ninguna; 1 = leve; 2 = moderada; 3 = notable; 4 = severa.
Los ratones vacunados con una formulación que
comprendía taquizoítos de la cepa NCTS-8 de N.
caninum y un adyuvante tuvieron una incidencia
significativamente menor de neumonía leve (33%) después de la
exposición con la cepa NC-1 de N. caninum que
los ratones de control vacunados sólo con HBSS (56%) (p<0,01).
Ninguno de los ratones vacunados con NCTS-8 y no
expuestos mostraron señal alguna de la encefalitis o de parásitos
cuando se les examinó a las 9 semanas tras la vacunación (datos no
mostrados), confirmando que la administración de
NCTS-8 no produce la enfermedad clínica.
Los resultados indicaron que la formulación que
comprendía los taquizoítos vivos y atenuados de Neospora y un
adyuvante es al menos tan eficaz y segura para su uso como vacuna
frente a la neosporosis, como la misma formulación sin adyuvante
(Tabla 17).
El objeto de este estudio fue determinar si la
vacunación de cabras enanas con una cepa atenuada elaborada con
células vivas de N. caninum podía proteger a las cabras
frente a la neosporosis. Más específicamente, se analizó la
capacidad de una vacuna que comprende taquizoítos vivos de la cepa
NCTS-8 de N. caninum para proteger a las
cabras enanas hembra frente al aborto inducido por
Neospora.
Las cabras enanas hembra de una edad aproximada
entre 2-5 años se asignaron aleatoriamente en los
grupos
A-E (Tabla 18). La dosis en cada administración de auténticas vacunas (grupos A-C) estaba compuesta por 4 x 10^{6} taquizoítos de la cepa indicada. Tras la vacunación subcutánea (1,0 ml/dosis) a día 0 (principal) y a día 21 (refuerzo), las hembras se sincronizaron utilizando la preparación de prostaglandinas LUTALYSE™ (Upjohn-Pharmacia) (10 mg/cabra, vía intramuscular) en los días 28 y 39. Las hembras se quedaron embarazadas de forma natural entre los días 52 y 56. Las hembras preñadas se determinaron por ecografía y fueron entre los 41 y 55 días de gestación a la hora de la exposición.
A-E (Tabla 18). La dosis en cada administración de auténticas vacunas (grupos A-C) estaba compuesta por 4 x 10^{6} taquizoítos de la cepa indicada. Tras la vacunación subcutánea (1,0 ml/dosis) a día 0 (principal) y a día 21 (refuerzo), las hembras se sincronizaron utilizando la preparación de prostaglandinas LUTALYSE™ (Upjohn-Pharmacia) (10 mg/cabra, vía intramuscular) en los días 28 y 39. Las hembras se quedaron embarazadas de forma natural entre los días 52 y 56. Las hembras preñadas se determinaron por ecografía y fueron entre los 41 y 55 días de gestación a la hora de la exposición.
Se expusieron hembras en los grupos
A-D con 4 x 10^{6} taquizoítos de la cepa
NC-1 de N. caninum en medio de mantenimiento
sin suero (0,45 ml) administrado por vía intravenosa a través de la
vena yugular. A continuación se monitorizaron las hembras por
ecografía, por temperatura obtenida diariamente durante los 7 días
después de la exposición, y por observación visual dos veces al día,
y se obtuvieron muestras de sangre una vez a la semana tras la
exposición.
Todas las cabras vacunadas bien con la cepa
NC-1 atenuada de N. caninum (grupo A) o bien
con la cepa NCTS-8 atenuada, elaborada con células
vivas de N. caninum (grupos B, C) seroconvirtieron y
presentaron valores de IFAT medibles a los 10 días después de la
revacunación (Tabla 19). Estos datos demuestran que
NC-1 y NCTS-8 son inmunogénicas en
cabras preñadas. El valor GMT para el grupo A fue numéricamente
mayor que para los grupos B y C, lo que sugiere una replicación
aumentada en el huésped de la cepa NC-1 comparada
con la cepa atenuada NCTS-8.
La tabla 20 demuestra la capacidad de una vacuna
que comprende taquizoítos vivos y atenuados de Neospora para
proteger cabras enanas hembra frente al aborto inducido por
Neospora. Las 4 cabras hembra vacunadas con la cepa atenuada
NC-1 (A) sufrieron un aborto después de la
exposición con NC-1 (0% de protección). Cinco de las
6 cabras hembra que se vacunaron con placebo (D) sufrieron un aborto
después de la exposición con NC-1 (17% de
protección). En cambio, solamente 2 de entre 5 cabras hembra
vacunadas con NCTS-8 (B) abortaron después de la
exposición con NC-1 (60% de protección), y sólo 2 de
entre 4 cabras hembra vacunadas con NCTS-8 con
adyuvante (C) abortaron después de la exposición con
NC-1 (50% de protección).
Estos resultados demuestran que las cabras enanas
hembra preñadas están protegidas sustancialmente frente al aborto
inducido por Neospora mediante la vacunación con taquizoítos
vivos y atenuados de la cepa NCTS-8 de N.
caninum. Esta es la primera demostración de la protección de una
mamífero preñado frente al aborto inducido por Neospora
mediante la vacunación con taquizoítos vivos y atenuados derivados
de una cepa patógena de Neospora.
Los siguientes materiales biológicos se
depositaron en la American Type Culture Collection (ATCC) en 12301
Parklawn Drive, Rockville, MD. 20852, EE.UU., el 6 de noviembre de
1996, y se les asignó los siguientes números de acceso:
1. Cepa NC-1 de Neospora
caninum en células de riñón de mono MARC145, nº de acceso
CRL-12231 en ATCC.
2. Cepa NCTS-8 de Neospora
caninum en células de riñón de mono MARC145, nº de acceso
CRL-12230 en ATCC.
Claims (14)
1. Un cultivo celular de una cepa derivada de una
cepa original patógena de una especie de Neospora, cuyas
células exhiben una patogenia atenuada comparada con la de la cepa
original pero que son capaces de desencadenar una respuesta inmune
que proteje a un mamífero frente a la neosporosis cuando se
administra como vacuna viva.
2. Un cultivo como se reivindica en la
reivindicación 1, cuyas células son sensibles a la temperatura.
3. Un cultivo como se reivindica en la
reivindicación 1 o la reivindicación 2, en el que la especie de la
cepa original es N. caninum.
4. Un cultivo como se reivindica en la
reivindicación 3, en el que la cepa original de N. caninum es
NC-1, la cual está presente en las células de riñón
de mono MARC145, con nº de acceso CRL-12231 en
ATCC.
5. Un cultivo como se reivindica en la
reivindicación 4, en el que la cepa de células atenuadas es
NCTS-8, la cual está presente en las células de
riñón de mono MARC145, con nº de acceso CRL-12230 en
ATCC.
6. Una vacuna para proteger a un mamífero frente
a la neosporosis, que comprende una cantidad inmunológicamente
eficaz de células vivas de una cepa derivada de una cepa original
patógena de una especie de Neospora, cuyas células exhiben
una patogenia atenuada comparada con la de la cepa original pero que
son capaces de desencadenar una respuesta inmune que proteje al
mamífero frente a la neosporosis cuando se administra como vacuna
viva, y un vehículo veterinariamente aceptable.
7. Una vacuna como se reivindica en la
reivindicación 6, en la que las células son como se define en una
cualquiera de las reivindicaciones 2 a 5.
8. Una vacuna como se reivindica en la
reivindicación 6 o la reivindicación 7, que comprende además un
adyuvante.
9. Una vacuna como se reivindica en la
reivindicación 8, en la que el adyuvante es una emulsión de aceite
en agua.
10. Un procedimiento para preparar un cultivo de
células atenuadas de una especie de Neospora para su uso en
una vacuna que proteje a un mamífero frente a la neosporosis, que
comprende la modificación de células a partir de una cepa original
patógena de una especie de Neospora; la selección y
propagación clonal de una o más células modificadas que exhiben una
patogenia atenuada comparada con la de las células de la cepa
original; y la selección y propagación clonal de una o más células
atenuadas que son capaces de desencadenar una respuesta inmune que
proteje al mamífero frente a la neosporosis cuando se administra en
una vacuna viva.
11. Un procedimiento como se reivindica en la
reivindicación 10, en el que las células son como se define en una
cualquiera de las reivindicaciones 2 a 5.
12. Un procedimiento para preparar una vacuna
para proteger a un mamífero frente a la neosporosis, que comprende
la modificación de células a partir una cepa original patógena de
una especie de Neospora; la selección y propagación clonal de
aquellas células modificadas que exhiban una patogenia atenuada
comparada con la de las células de la cepa original pero que son
capaces de desencadenar una respuesta inmune en el mamífero que le
proteja frente a la neosporosis cuando se administra en una vacuna
viva; y la combinación una cantidad inmunológicamente eficaz de las
células atenuadas con un vehículo veterinariamente aceptable de
forma adecuada para la administración en forma de vacuna viva al
mamífero.
13. Un procedimiento como se reivindica en la
reivindicación 12, en el que las células son como se define en una
cualquiera de las reivindicaciones 2 a 5.
14. Una vacuna de combinación, que comprende una
cantidad inmunológicamente eficaz de células vivas de una cepa
derivada de una cepa original patógena de una especie de
Neospora, cuyas células exhiben una patogenia atenuada
comparada con la de la cepa original pero que son capaces de
desencadenar una respuesta inmune que proteje al mamífero frente a
la neosporosis cuando se administra como vacuna viva; uno o más
otros antígenos que desencadenan una respuesta inmune que proteje al
mamífero frente a una enfermedad o un estado patológico; y un
vehículo veterinariamente aceptable.
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Families Citing this family (22)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DK0841392T3 (da) * | 1996-11-12 | 2004-11-22 | Pfizer | Svækket levende Neospora vaccine |
BR9803232A (pt) * | 1997-08-26 | 2000-01-11 | Pfizer Prod Inc | Vaicna de neospora. |
BR9812976A (pt) | 1997-10-20 | 2000-08-08 | Bayer Ag | Vacina de neospora |
EP0953641A3 (en) * | 1998-03-26 | 2002-03-13 | Pfizer Products Inc. | Polynucleotide molecules encoding neospora proteins |
DE19958388A1 (de) * | 1999-12-03 | 2001-06-07 | Bayer Ag | Triazinonverbindungen zur Behandlung von durch den Befall mit parasitischen Protozoen bedingten Krankheiten |
AUPQ905600A0 (en) * | 2000-07-28 | 2000-08-24 | Insearch Limited | Parasites |
WO2003038434A2 (en) * | 2001-10-31 | 2003-05-08 | Pfizer Products Inc. | Serological assay for neospora caninum |
FR2836924B1 (fr) * | 2002-03-08 | 2005-01-14 | Vivalis | Lignees de cellules aviaires utiles pour la production de substances d'interet |
WO2005007840A1 (en) | 2003-07-22 | 2005-01-27 | Vivalis | Production of poxviruses with adherent or non adherent avian cell lines |
KR20060123346A (ko) * | 2003-12-19 | 2006-12-01 | 시애틀 바이오메디칼 리서치 인스티튜트 | 유전적으로 감독된 말라리아 생 백신 |
US7722860B2 (en) * | 2004-12-03 | 2010-05-25 | Seattle Biomedical Research Institute | Live genetically engineered protozoan vaccine |
FR2884255B1 (fr) | 2005-04-11 | 2010-11-05 | Vivalis | Utilisation de lignees de cellules souches aviaires ebx pour la production de vaccin contre la grippe |
ES2319242B1 (es) | 2005-12-23 | 2009-12-01 | Laboratorios Hipra, S.A. | Aislado avirulento de neospora canimum y sus usos. |
AU2007283564B2 (en) * | 2006-08-09 | 2013-07-25 | Valneva | Method of production of transgenic avian using embryonic stem cells |
EP1985305A1 (en) | 2007-04-24 | 2008-10-29 | Vivalis | Duck embryonic derived stem cell lines for the production of viral vaccines |
EP1995309A1 (en) * | 2007-05-21 | 2008-11-26 | Vivalis | Recombinant protein production in avian EBx® cells |
ES2326770B1 (es) | 2007-07-13 | 2010-07-26 | Universidad Complutense De Madrid | Uso de un nuevo aislado de neospora caninum para el desarrollo de pruebas de diagnostico y para la fabricacion de productos para el tratamiento y prevencion de la infenccion causada por neospora. |
FR2994193B1 (fr) * | 2012-08-02 | 2016-05-20 | Vitamfero | Souches mutantes de neospora et leurs utilisations |
CA3003343C (en) | 2015-10-28 | 2024-05-28 | Universidad Complutense De Madrid | Neospora vaccine composition |
CN109789097B (zh) | 2016-10-05 | 2021-05-18 | 硕腾服务有限责任公司 | 提供用作强效活疫苗的稳定脱水的原生动物的冻干方法 |
JP2021525517A (ja) | 2018-05-30 | 2021-09-27 | インスティテュート・フォー・リサーチ・イン・バイオメディシンInstitute For Research In Biomedicine | 内在性活性化誘導シチジンデアミナーゼを利用することによるbリンパ球のエンジニアリング |
CN111187721A (zh) * | 2020-01-17 | 2020-05-22 | 中国农业大学 | grx 5基因缺失的新孢子虫弱毒虫株及其构建方法和应用 |
Family Cites Families (9)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5643718A (en) * | 1993-11-04 | 1997-07-01 | The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University | Transfection and genetic manipulations in obligate intracellular parasites |
US5976553A (en) | 1993-11-04 | 1999-11-02 | The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University | Transfection and genetic manipulations in obligate intracellular parasites |
US5707617A (en) | 1994-03-21 | 1998-01-13 | The Regents Of The University Of California | Bovine neospora isolates |
US6716423B1 (en) * | 1994-03-21 | 2004-04-06 | The Regents Of The University Of California | Recombinant neospora antigens and their uses |
US5889166A (en) * | 1996-05-10 | 1999-03-30 | The Regents Of The University Of California | Recombinant neospora antigens and their uses |
US6743430B1 (en) * | 1995-03-29 | 2004-06-01 | Richard E. Parizek | Multicomponent vaccine containing clostridial and non-clostridial organisms in a low dose |
WO1997017082A1 (en) * | 1995-11-09 | 1997-05-15 | Trustees Of Dartmouth College | A vaccine against toxoplasma gondii |
DK0841392T3 (da) * | 1996-11-12 | 2004-11-22 | Pfizer | Svækket levende Neospora vaccine |
US6071737A (en) | 1998-03-16 | 2000-06-06 | The Regents Of The University Of California | Equine Neospora isolate and its uses |
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