ES2209954T3 - Cepas de e.coli enteropatogena mutantes atenuadas (epec), procedimiento para su produccion y sus utilizaciones. - Google Patents
Cepas de e.coli enteropatogena mutantes atenuadas (epec), procedimiento para su produccion y sus utilizaciones.Info
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Abstract
Cepa de Escherichia coli enteropatógena (EPEC) de mamífero, no humana, atenuada, que comprende una supresión de una secuencia de un gen que codifica la intimina, en donde dicha supresión comprende la secuencia codificante completa o parte de la secuencia codificante, que resulta en una mutación por desplazamiento de la pauta, o resulta en una señal de detención transcripcional o de traducción, caracterizada porque además dicha supresión elimina completamente la expresión de una proteína intimina funcional.
Description
Cepas de E. coli enteropatógena mutantes
atenuadas (EPEC), procedimiento para su producción y sus
utilizaciones.
La presente invención concierne a un proceso para
obtener cepas mutantes atenuadas de Escherichia coli
enteropatógenas (EPEC), derivadas de cepas portadoras de parte o la
totalidad del locus del esfacelamiento enterocítico (enterocyte
effacement), que les proporciona ciertas características
patógenas. Estas características son, entre otras, la desaparición
del villi intestinal o borde ciliado, la reordenación de la
estructura del citoesqueleto, y la diarrea resultante. La invención
concierne igualmente a las cepas atenuadas que son el resultado de
este proceso y a su uso en una vacuna.
Se sabe que las cepas de EPEC son un agente
etiológico importante de la diarrea infantil en humanos y en
animales, mediante la adhesión a la mucosa intestinal y la
producción de la lesión de adhesión y esfacelamiento característica
en la membrana del borde ciliado del microvilli (26). Son también el
prototipo de una familia de patógenos que presentan este mecanismo
de virulencia único (27). Este grupo de Escherichia coli de
adhesión y esfacelamiento (AE) incluye la Escherichia coli
enterohemorrágica, la Hafnia alvei, y el patógeno del ratón
Citrobacter rodentium (6, 22). Las cepas de EPEC se
consideran como la única clase importante de Escherichia coli
AE en conejos (34). Se demostró además que la cepa
RDEC-1 del tipo EPEC del conejo posee los mismos
atributos descritos para las cepas EPEC humanas (6, 17). Las cepas
de EPEC del conejo se adhieren al tejido y células intestinales y
destruyen el microvilli. Hasta la fecha, no se han descrito
enterotoxinas termoestables o termolábiles conocidas, y la gran
mayoría de estas cepas no son enteroinvasoras (33a).
Junto con las características genéticas, las
cuales pueden detectarse ahora más fácilmente que antes, y a los
efectos AE característicos, los cuales se describen con mayor
detalle más adelante, hay ciertas características adicionales que
pueden detectarse usando procedimientos más tradicionales. A
continuación de la caracterización serológica de Salmonelas, se
desarrollo el esquema de serotipado para cepas de Escherichia
coli, basado originalmente en tres tipos de antígenos: el
antígeno somático (O), el antígeno capsular (K), y el antígeno
flagelar (H). Los antígenos somáticos son complejos de
lipopolisacáridos y parte de la estructura de la pared celular de
Escherichia coli. La unidades repetidas de polisacárido
proporcionan a los antígenos O su inmunogenicidad específica. Un
cierto número de los antígenos O reaccionan serológicamente de forma
cruzada con, o incluso son química y serológicamente idénticos a
antígenos somáticos de otros organismos, como los miembros de los
grupos Shigella y Salmonella. Algunas cepas, llamadas
cepas rugosas y denominadas OR, carecen de estas cadenas laterales
repetidas y devienen auto-aglutinables. Los
antígenos K capsulares son principalmente polisacáridos ácidos.
Actualmente, el tipado del antígeno K no se realiza regularmente,
excepto en ciertos casos. La diversidad de los antígenos H
flagelares se basa en los diferentes tipos de flagelina presentes
como parte de la estructura flagelar. Muchas Escherichia coli
son o bien sólo ligeramente móviles o no móviles a partir de su
aislamiento primario. Sin embargo, muchas cepas obtienen una
movilidad completa al pasar a través de agar semisólido. Aquellas
cepas que no desarrollan motilidad se denominan
no-móviles (NM) o H-. Por tanto, el tipo de O:K:H
describe las características serológicas de Escherichia coli
al completo. En general, el antígeno K se deja fuera, y una cepa se
considerará serotipada detectando solamente el tipo de O:H. En
algunos casos, también se detectan los antígenos F fimbriales, y en
ese caso el tipado completo de una cepa resulta en una denominación
O:K:H:F.
Hay indicaciones de que algunos serotipos están
más probablemente asociados con ciertos microentornos. No obstante,
el serotipado tan sólo etiqueta los organismos sin mostrar su
patogenicidad específica o sus factores de virulencia. Ciertos
serotipos parecen están asociados con ciertos rasgos de virulencia
(42). Mucho antes de que se conocieran sus características de
virulencia, las EPEC se demostraban primero en base a su serotipo.
En el conejo, hay un cierto número de serotipos descritos como más
(O15, O26, y O103) o menos (O128, O132) patogénicos. Hay también un
serotipo, O109, que parece ser más patogénico en conejos amamantados
y menos patogénicos en conejos destetados. Por tanto, el serotipado
nos proporciona, en combinación con un esquema de biotipado, una
primera indicación sobre las propiedades de virulencia de cepas de
EPEC de conejo aisladas.
Se mostró que un esquema de biotipado basado en
la capacidad de las cepas de fermentar dulcitol, rafinosa, ramnosa y
sorbosa, y en la capacidad de descarboxilar la ornitina,
proporcionaba una discriminación óptima entre las cepas de EPEC de
conejo. Aplicando este esquema, se pudieron establecer 21 biotipos.
Con estos biotipos, en combinación con el serotipo y la movilidad de
la cepa, se pueden distinguir ciertos patotipos. En general, las
cepas denominadas O15:H-/3 (positiva para O14, no móvil, y
pertenecientes al biotipo 3), O26:H+/4 y O103:H+/8 es consideran
como altamente patógenas para conejos destetados. Otros tipos como
el O132:H+/2 y el O128:H+/2 incluyen cepas que tienen
características de patogenicidad muy diferentes, desde no patógenas
hasta altamente patógenas, pero generalmente sólo modestamente
patógenas. Al contrario que las cepas antes mencionadas, el tipo
O109:H+/1 está más a menudo asociado con diarrea en conejos
amamantados, y puede ser altamente patogénico para estos conejos
inmaduros. Aunque pueden aislarse más tipos a partir de las diarreas
de conejos, los patotipos antes mencionados son los más importantes
y los más frecuentemente aislados en el caso de diarrea en conejos
asociada con EPEC.
Aparte de estas técnicas más clásicas, se ha
realizado mucho trabajo para relevar las propiedades genéticas
subyacentes de las EPEC, especialmente a partir de aislados de
humanos. Todos los genes necesarios para la AE están codificados en
una isla de patogenicidad cromosómica de 35 k.b. denominada "locus
del esfacelamiento enterocítico" (LEE) (22). Entre otros, se
caracterizaron los genes que codifican un sistema de secreción del
tipo III, proteínas secretadas (Esp), y la intimina de la adhesina,
y se situaron en esta isla (1, 2, 11, 15, 16). Los experimentos
confirmaron que un LEE de EPEC clonado es capaz de introducir el
fenotipo AE en un huésped K12 de Escherichia coli. Se
hallaron islas de patogenicidad similares en todos los otros
patógenos de AE, incluyendo aquellas cepas aisladas de conejos
diarreicos (22, 41).
El mecanismos de virulencia de AE está precedido
por una pérdida inicial de adherencia. Esta unión microbiana a las
células huésped o superficies de tejidos mediada por la interacción
de una molécula de adhesión (es decir, adhesina) y una molécula
receptora se caracteriza por un elevado grado de especificidad. Las
adhesinas toman varias formas, más a menudo como estructuras
morfológicas distintas, denominadas fimbrias (también conocidas como
pili) y fibrilas, pero también como proteínas de superficie
afimbrial (7a). En el caso de las EPEC, algunas adhesinas están bien
caracterizadas, pero probablemente muchas más permanecen aún
desconocidas. Aunque la mayoría de las adhesinas no son necesarias
para la AE, ciertamente pueden incrementar la virulencia de una
cepa. Por ejemplo, el factor de la virulencia (Per) y el conjunto
formador de pili codificados en el plásmido EAF, los cuales se cree
hacen posible una colonización rápida de la posible región de los
alrededores, tienen un efecto positivo intenso sobre la virulencia
de las cepas de EPEC humanas (14, 19). En ciertas cepas, la intimina
es la única adhesina conocida (13a, 17a, 21a), por tanto, la
detección hará imposible la adherencia. Después de una pérdida
inicial de adherencia, se secretan el receptor de intimina
translocado (Tir) recientemente descrito y ciertas proteínas Esp
mediante el sistema de secreción del tipo III (49). Como resultado,
algunas proteínas, incluyendo el Tir, se transfieren al citoplasma
de la célula huésped (18, 32). La transferencia del Tir y su
ubicación en la membrana de la célula huésped permite a las EPEC
unirse íntimamente mediante la unión de la intimina a este
receptor.
Por debajo de la EPEC unida, las reordenaciones
citoesqueléticas, inducidas por la célula que se une, resultan en la
degeneración localizada del borde epitelial rugoso y en la lesión
AE, también descrita como formación de pedestal (9, 27, 28, 43). La
lesión del tejido resultante conduce a pérdidas de nutrientes
directas y a una captación de alimentos disminuida.
La proteína intimina de la membrana externa se
transcribe a partir del gen eae, y se considera que es un
proteína importante para el mecanismo de virulencia. Los mutantes
defectuosos en eae forman lesiones de AE inmaduras, y no
inducen la reorganización de la estructura del citoesqueleto por
debajo del lugar de infección (8). La respuesta inmune contra la
proteína intimina se considera que es un factor inmunoprotector
principal contra la infección por EPEC (8, 47). La mutagénesis de
supresión de eae en una cepa EPEC humana resultó en una cepa
que causó diarrea en 4 de 11 de los voluntarios que recibieron esta
cepa. Más aún, una infección experimental, posterior en el tiempo,
con una cepa de EPEC completamente virulenta en individuos que
habían sido vacunados experimentalmente con la cepa mutante,
demostró que la aplicación de una vacuna tal no conseguía inducir
una protección a largo plazo (8, 10).
Los inventores actuales han estudiado
extensamente la EPEC como un agente causante de diarrea en conejos
destetados y amamantados. Las cepas de EPEC se identificaron como un
factor importante en la enteropatía del conejo (39). Se describieron
las propiedades patógenas y la ausencia de enterotoxinas
termoestables o termolábiles (33a). Se realizaron infecciones
experimentales con cepas aisladas, procedentes de conejos recién
nacidos, amamantados y procedentes de conejos destetados, y los
estudios clínicos mostraron hallazgos que eran similares a los
descritos en infecciones por EPEC humanas (33, 35).
Actualmente, sólo hay una solución para un
criador de conejos cuando aparece la coliobacilosis: tratar los
animales con antibióticos y, eventualmente, eliminar los animales y
repoblar la granja. Sin embargo, la resistencia a los antibióticos
está creciendo, y no hay garantía de que los animales nuevos estén
completamente libres EPEC. Actualmente no hay disponibles vacunas
que sean a la vez seguras y efectivas. Se han realizado algunos
experimentos sobre el uso de cepas matadas con formalina como
posibles vacunas contra la infección por cepas O103 (5, 23), sin
resultados directamente útiles. También se han ensayado como una
vacuna cepas aisladas naturalmente portadoras tan sólo de algunos
antígenos del serogrupo patogénico O103, todavía sin una protección
segura contra la infección directa con una cepa del tipo salvaje
(25). Más recientemente, se ha descrito el uso de una cepa mutada en
la región sep (responsable del sistema de secreción del tipo
III) (4a). Se obtuvieron buenos resultados, pero la cepa se atenuó
usando mutagénesis de trasposón, y porta un gen de resistencia a la
kanamicina, el cual la hace inapropiada para un uso práctico. La
cepa, su procedimiento de obtención, y su uso eventual han sido
descritos en una solicitud de patente francesa publicada bajo el
número 2.758.568 (24). En una publicación más reciente, los mismos
investigadores informaron de la construcción de cepas similares,
mutadas respectivamente en espA, espD y eae
(29). Tal como se ha descrito anteriormente, las cepas mutadas de
esta forman no inducen adhesión y esfacelamiento (1, 2, 8, 10, 20,
45). En la cepa O103 mutante en eae, todavía se apreció un
lento efecto citopático (CPE). Este efecto se suprimió en los
mutantes de esp y en mutantes de AF/R2 descritos
anteriormente. La AF/R2 es una adhesina que ha sido descrito antes,
y para la cual no hay un homólogo presente en las cepas O15:H- (3,
12). Todas éstas se construyen todavía haciendo uso de un gen
marcador de la resistencia a antibiótico, lo que las hace
inapropiadas para un uso apropiado en la práctica. Por tanto, los
resultados de ensayar un mutante de supresión de eae en
humano (8, 10) y un mutante de secreción (sep) en conejo (4a)
como posibles cepas de vacunas indicaron que es necesario mantener
intacto el gen eae, puesto que la intimina está considerada
como un antígeno importante para inducir una respuesta inmune
protectora,
Por tanto, es un objetivo de la presente
invención proporcionar cepas de Escherichia coli
enteropatógenas atenuadas, las cuales puedan usarse efectivamente
como una vacuna en mamíferos.
\newpage
Es otro objetivo de la presente invención
proporcionar un procedimiento para producir una cepa de
Escherichia coli enteropatógena mutante atenuada que pueda
usarse efectivamente como una vacuna en mamíferos.
Es otro objetivo de la presente invención
proporcionar un vector recombinante útil para producir una cepa de
Escherichia coli enteropatógena mutante atenuada que pueda
usarse efectivamente como una vacuna en mamíferos.
Es otro objetivo de la presente invención
proporcionar una composición de vacuna contra infecciones por
Escherichia coli enteropatógena en mamíferos.
Es otro objetivo de la presente invención
proporcionar un procedimiento para diferenciar in vitro entre
mamíferos infectados por Escherichia coli enteropatógena y
mamíferos vacunados.
Los presentes inventores han demostrado que las
supresiones en la secuencia codificante de al menos uno de los genes
en el locus LEE de las cepas de EPEC resulta en un atenuación de la
virulencia de dichas cepas.
La presente invención se refiere a una cepa de
Escherichia coli enteropatógena (EPEC) de mamíferos, no
humana, atenuada, que comprende una supresión de una secuencia de un
gen que codifica una intimina, en donde dicha supresión comprende la
secuencia codificante completa, o parte de la secuencia codificante
que resulta de la mutación por desplazamiento en pauta, o que
resulta en una señal de detención transcripcional o de traducción,
caracterizada además porque dicha supresión elimina completamente
(la expresión de) una proteína intimina funcional.
Aunque la mutagénesis de supresión de las
secuencias eae en cepas de EPEC humanas resultó en una cepa
que proporcionaba sólo una ligera protección contra la infección
experimental, los presentes inventores han hallado sorprendentemente
que la supresión de una secuencia del gen eae, cadena abajo
respecto la región de anclaje transmembrana sospechada de la
intimina, en cepas de EPEC de mamífero, resultaba en una protección
efectiva frente a la infección experimental.
La expresión "cepas atenuadas" se refiere a
una cepa que es menos virulenta que la cepa progenitora.
La expresión "cepa de Escherichia coli
enteropatógena (EPEC)" se refiere a un grupo de cepas de
Escherichia coli de adhesión y esfacelamiento (AE), las
cuales son conocidas como un agente etiológico importante de la
diarrea de infantes humanos y animales. Otro grupo importante de
cepas de AE son las cepas enterohemorrágicas de Escherichia
coli (EHEC), las cuales presentan el mismo mecanismo de
virulencia particular (27).
Debería entenderse que la expresión "dicha
supresión elimina completamente la expresión de una proteína
intimina funcional" se refiere a supresiones de las secuencias
codificantes, las cuales pueden comprender toda la secuencia
codificante del gen de la intimina, pero que también comprenden sólo
parte de la secuencia codificante, lo que resulta en una mutación
por desplazamiento de pauta, o resulta en una señal de detención
transcripcional o de traducción. Como consecuencia, la proteína
intimina no se expresa en una forma funcionalmente activa sobre la
superficie de la célula.
Por tanto, la presente invención también se
refiere a una cepa de Escherichia coli enteropatógena (EPEC)
de conejo que comprende una supresión de una secuencia que codifica
el gen de la intimina, caracterizándose además dicha cepa en que
induce una respuesta inmune cuando se administra a un conejo.
De acuerdo con la invención, la cepa de
Escherichia coli enteropatógena (EPEC) atenuada, de mamífero,
no humana, se caracteriza además en que dicha cepa contiene fimbrias
sobre su superficie.
Las fimbrias podrían ser necesarias para
adherirse y colonizar el vello intestinal, y, como consecuencia,
inducir una respuesta inmune protectora. Por otra parte, una
respuesta inmune contra las principales adhesinas podría ser
protectora debida a prevenir esta colonización.
La invención se refiere a cepas de Escherichia
coli enteropatógenas (EPEC) atenuadas, de mamífero, no humanas.
Las cepas no humanas preferidas proceden de conejo, perro, gato,
caballo, cabra, bovino, cerdos, o aves de corral.
De acuerdo con todavía otra realización
preferida, la presente invención se refiere a una cepa de
Escherichia coli enteropatógena (EPEC) de conejo atenuada que
comprende una supresión de una secuencia del gen que codifica la
intimina, en donde dicha supresión elimina completamente una
proteína intimina funcional, y/o con dicha cepa caracterizada además
porque induce una respuesta inmune cuando se administra a un
mamífero.
De acuerdo con una realización también preferida,
la presente invención proporciona una cepa de Escherichia
coli enteropatógena (EPEC) de conejo atenuada, en donde dicha
supresión consiste en una supresión de una región interna de 248
pares de bases del gen eae. Dicha supresión debería ser tal
que elimina completamente una proteína intimina funcional.
La presente invención también proporciona
Escherichia coli enteropatógena (EPEC) de conejo atenuada,
tal como se depositó, el 22 de abril de 1999, bajo el número LMG
P-18935, en la colección "Belgian Coordinates
Collections of Microorganisms LMG". El 22 de mayo de 200, se
depositó en la colección "Belgian Coordinates Collections of
Microorganisms LMG" una variante de esta cepa sensible a
tetraciclina con el número LMG P-19461.
De acuerdo con otra realización, la presente
invención se refiere a un vector recombinante que comprende
secuencias de genes que codifican intimina en las que hay una
supresión, en donde dicha supresión elimina completamente la
expresión de proteína intimina funcional, y en donde dicha supresión
es una de las siguientes: (i) una supresión cadena abajo de la
región de anclaje transmembrana de la intimina; o (ii) una supresión
que comprende parte de la secuencia codificante, que resulta en una
mutación por desplazamiento en fase, o que resulta en una señal de
detención transcripcional o de traducción, caracterizada además
porque dicha secuencia del gen codificante de la intimina procede de
una cepa de Escherichia coli enteropatógena (EPEC) de
mamífero que no es humano.
Más particularmente, la presente invención se
refiere a un vector, tal como se ha definido más arriba, en donde
dicho gen que codifica la intimina es el gen eae procedente
de una cepa de EPEC de conejo.
Incluso más particularmente, la presente
invención se refiere a un vector, tal como se ha definido más
arriba, denominado pKO3\Deltaeae y caracterizado por un
mapa de restricción como se muestra en la Figura 1.
De acuerdo con otra realización, la presente
invención se refiere a un procedimiento para producir una cepa de
Escherichia coli enteropatógena (EPEC) de mamífero, atenuada,
no humana, tal como se ha definido más arriba, que comprende el paso
de introducir una supresión del gen eae en una cepa EPEC del
tipo salvaje mediante recombinación homóloga, usando un vector que
comprende una supresión de una secuencia del gen que codifica la
intimina, tal como se a definido más arriba.
De acuerdo con otra realización, la presente
invención se refiere a un procedimiento para producir una cepa de
Escherichia coli enteropatógena (EPEC) de conejo, atenuada,
tal como se define más arriba, que comprende el paso de introducir
una supresión en el gen eae de una cepa de EPEC del tipo
salvaje mediante recombinación homóloga, usando un vector que
comprende una supresión de una secuencia del gen que codifica la
intimina, tal como se a definido más arriba.
Los procedimientos de la invención no se limitan
a la producción de cepas de Escherichia coli enteropatógenas
(EPEC) de conejo, atenuadas, sino que pueden aplicarse a la
producción de cepas de Escherichia coli enteropatógenas
(EPEC) no humanas, atenuadas, que proceden de otros huéspedes, tales
como perros, gatos, caballos, cabras, terneras, cerdos o aves de
corral.
De acuerdo todavía con otra realización, la
presente invención se refiere a una composición inmunogénica que
comprende una cepa de Escherichia coli enteropatógena (EPEC)
de conejo, atenuada, que comprende una supresión de una secuencia de
gen que codifica una intimina, tal como se ha definido más
arriba.
De acuerdo con todavía otra realización, la
presente invención se refiere a una composición de vacuna viva que
proporciona inmunidad protectora frente a una infección por EPEC en
un conejo, la cual comprende una cepa de Escherichia coli
enteropatógena (EPEC) de mamífero, atenuada, de conejo, que
comprende una supresión de una secuencia del gen codificante de
intimina, en donde dicha supresión comprende la secuencia
codificante completa, o parte de la secuencia codificante, lo que
resulta en una mutación por desplazamiento de pauta, o resulta en
una señal de detención transcripcional o de traducción,
caracterizada además porque dicha supresión elimina completamente la
expresión de una proteína intimina funcional.
De acuerdo con una realización preferida, dicha
cepa de mamífero es una cepa de mamífero no humana. Como tal, la
presente invención se refiere a una composición de vacuna viva que
proporciona inmunidad protectora contra una infección por EPEC en un
conejo, que comprende una cepa de Escherichia coli
enteropatógena (EPEC) de conejo atenuada, la cual comprende una
supresión de una secuencia de gen codificante de intimina, tal como
se ha definido más arriba.
No obstante, si es necesario, la cepa de
Escherichia coli enteropatógena (EPEC) de mamífero, no
humana, podría administrarse también mediante cualquier ruta
conocida en la técnica para ayudar al tratamiento de infección por
Escherichia coli enteropatógena (EPEC).
De acuerdo con una realización preferida, dicha
composición de vacuna es una vacuna oral.
La administración de las cepas de Escherichia
coli enteropatógena (EPEC) atenuadas de la invención podrían
realizarse mediante la adición de cualquier adyuvante o cualquier
otro agente potenciador de la respuestas inmune conocido en la
técnica.
De acuerdo con otra realización, la presente
invención se refiere a un procedimiento in vitro para
diferenciar entre individuos infectados o vacunados, en donde dichos
individuos infectados se diagnostican in vitro en base a la
presencia de anticuerpos contra la intimina.
De acuerdo con una realización preferida, la
presente invención se refiere a un procedimiento in vitro
para diferencia entre individuos infectados y vacunados, en donde la
diferenciación entre la cepa del tipo salvaje y la mutante se
consigue usando moléculas de ácido nucleico (cebadores),
representados por las SEC. Nº ID.: 3 y 4, en una reacción de
amplificación.
De acuerdo con otra realización, la presente
invención se refiere al uso de una cepa de Escherichia coli
enteropatógena (EPEC) de conejo, atenuada, que comprende una
supresión de una secuencia del gen codificante de la intimina, tal
como se ha definido más arriba para la preparación de una vacuna, en
donde dicha supresión comprende la secuencia codificante completa o
parte de la secuencia codificante, lo que resulta en una mutación
por desplazamiento de pauta, o resulta en una señal de detención
transcripcional o de traducción, caracterizada además porque dicha
supresión elimina completamente la expresión de una proteína
intimina funcional.
La invención, ahora descrita de forma general,
será entendida más fácilmente por referencia a los ejemplos
siguientes, los cuales se incluyen meramente con propósitos de
ilustración de ciertos aspectos y realizaciones de la presente
invención, y no se pretende que limiten la invención.
Figura 1: el pKO3eae (8798 p.b.) resulta
de la clonación de la secuencia del eae, procedente de
RDEC-1, en el sitio de restricción BamHI de
PKO3. Aparte de los sitios de restricción SmaI, NotI,
BamHI, EcoRI, PstI y SalI, se muestran
las siguientes características: cat (acetiltransferasa del
cloramfenicol), ori de M13 (origen filamentoso f1 (+)),
sacB (gen sacB de Bacillus subtilis),
oriC, Rep (sensible a la temperatura de pSC101). El corte de
este vector con PstI y su religación resultó en el plásmido
pKO3\Deltaeae, que tiene una supresión del gen
eae.
Figura 2: Los productos de la PCR de la REPEC
O15: H-\Deltaeae (carril 1), 97/241.6 del
tipo salvaje (carril 2), un control negativo (agua, carril 3), y un
marcador de tamaño del ADN (gel ADN de \lambda cortado con
PstI), se separaron en un gel (0,8% de agarosa en un tampón
de tris-borato de etiléndiamina
tetra-acetato (TBE)). Los cebadores usados (SEC. Nº
ID.: 3 y SEC. Nº ID.: 4) se alinean cadena arriba y cadena abajo de
la región suprimida de 248 p.b. en \Deltaeae, resultando un
producto de 350 p.b. para un eae sin cortar (carril 2) y en
un producto de 102 p.b. para el gen recombinante \Deltaeae
(carril 1).
Figura 3: Se muestra el resultado de una
transferencia Western a partir de proteínas de membrana aisladas,
detectado aplicando suero policlonal disponible contra EPEC de
conejo (47). La técnica usada se describe en otros lugares (40, 47).
El carril 1 muestra los Biotinylated Broad Standard
(Bio-Rad), el carril 2 muestra proteínas procedentes
de la REPEC O15:H-\Deltaeae, y el carril
muestra proteínas procedentes de la cepa salvaje 97/241.6. La REPEC
O15:H-\Deltaeae parece haber perdido la
banda de intimina (94 kDa, flecha), mientras que la 97/241.6 todavía
produce esta banda.
Figura 4: El panel A muestra la íntima y la
desaparición del microvilli por parte de la cepa 97/233.10 del tipo
salvaje (3500\times, microscopio electrónico de barrido, SEM). El
panel B muestra efectos idénticos observados después de infección
con la cepa 97/241.6 del tipo salvaje (3500\times). El panel C
muestra una visión de conjunto (900\times) con una clara
diferencia entre regiones no infectadas e infectadas.
Figura 5: Fotografía de microscopio electrónico
de barrido tomada después de la infección de un conejo con una cepa
REPEC O15:H-\Deltaeae atenuada
(900\times, SEM). No se observa unión o esfacelamiento por parte
de esta cepa.
Figura 6: Presentación gráfica que muestra la
captación de alimento diaria, tal como se calculó tres veces por
semana. Se halló una diferencia significativa entre el grupo no
vacunado y el vacunado/control (intervalo de confianza del 95%).
El biotipado se realizó sobre una colección de
cepas EPEC de conejo putativas disponibles en el laboratorio de los
investigadores, usando procedimientos rutinarios (30, 38). La
motilidad, la reacción al indol, y la actividad descarboxilasa de
ornitina se ensayaron en tubos MIO (GIBCO, Paisley, Escocia)
siguiendo las especificaciones del fabricante. El serotipado se
realizó mediante aglutinación sobre portaobjetos con antisueros
específicos (31). El tipado se repitió después de almacenar las
cepas de forma segura en un congelador a -70ºC. La presencia del
locus de esfacelamiento enterocítico se detectó mediante hibridación
de colonias rutinaria con sondas no radiactivas A, B, C y D (22,
44). Estas sondas cubren la totalidad del locus genético dle LEE. La
hibridación se realizó a 65ºC y como tampón de hibridación se
escogió el tampón estándar (46). En base a estos hallazgos, se
escogieron dos cepas O15:H- como cepas de referencia para el grupo
de EPEC de conejo O15:H-, a saber, la 97/223.10 y la 97/241.6. Estas
cepas están disponibles, previa solicitud, en el Centrum voor
Onderzoek in Diergeneeskunde en Agrochemie, Groeselenberg 99,
B-1180, Bruselas (Ukkel), Bélgica.
Los genes eae de 97/241.6 y 97/223.10 y
RDEC-1 se clonaron usando técnicas estándares
descritas en (44). En base a la secuencia publicada del eae
de RDEC-1 (4), se escogieron cebadores y se realizó
la PCR del ADN cromosómico de las respectivas cepas (cebador hacia
arriba: 5' AAAAAAGGATCCAAAAATTACGCCGGAAGAT 3' (SEC. Nº ID.: 1);
cebador hacia abajo: 5' AAAAAATCTAGAAAAAGGTAAACLAGGTCTC 3' (SEC. Nº
ID.: 2); 10 ciclos de 15'' a 94ºC, 30'' a 55,4ºC, 2' a 68ºC,
seguidos por 20 ciclos de 15'' a 94ºC, 30'' a 55,4ºC, 2' a 68ºC +
20'' cada ciclo). Se usó la polimerasa Expand™ (Boehringer Mannheim
GmbH, Mannheim, Alemania), y las reacciones se realizaron en un
GeneAmp 9600 Thermal Cycler de Perkin Elmer. Los productos de la PCR
se clonaron usando el sistema de clonación del vector
pCR2.1-TOPO (Invitrogen, Groningen, Países Bajos).
El gen eae de RDEC-1 se recortó del plásmido
pCR2.1-TOPO con BamHI y se ligó en pKO3
cortado de igual modo (21), resultando en el plásmido pKO3eae
(Figura 1). La ligación correcta se comprobó mediante digestión de
restricción y electroforesis en gel, y mediante PCR (siguiendo el
procedimiento descrito más arriba, con plásmido recombinante como
ADN de plantilla). Se suprimió una región interna de 248 pares de
bases (p.b.) del eae mediante digestión del pKO3eae
con PstI y religando el plásmido, lo que resultó en el
pKO3\Deltaeae. Se diseño una reacción de PCR con cebadores
que flanqueaban la región de 248 p.b. suprimida (cebador hacia
arriba: 5' CCACTCAAAAAACTGTCTGTTG 3' (SEC. Nº ID.: 3); cebador hacia
abajo 5' TCCAGTGAACTACCGTCAAAG 3' (SEC. Nº ID.: 4); 25 ciclos de
15'' a 94ºC, 58, 1ºC, 72ºC), haciendo más fácil la detección del
pKO3\Deltaeae correctamente ligado. En caso de no
eliminarse mediante corte el área de 248 p.b., el producto
resultante debería ser de 350 p.b., y en caso de una supresión
correcta, de
102 p.b.
102 p.b.
El plásmido pKO3 es un plásmido suicida con un
origen de replicación sensible a la temperatura (ori), y un
gen de sensibilidad a la sacarosa (sacB) procedente de
Bacillus subtilis como sus características principales (21).
Esta combinación permitió usarlo como una herramienta para la
mutagénesis específica de un sitio promoviendo dos recombinaciones
homólogas sucesivas. El vector se diseñó originalmente como una
herramienta auxiliar para analizar pautas de lectura abierta no
identificadas de Escherichia coli, también conocida como
investigación genómica (21). Los siguientes cepas, aisladas a partir
de varios mamíferos, se hicieron electrocompetentes siguiendo
técnicas rutinarias (44). y se electroporaron (condiciones usadas:
200 \Omega, 25 F, 1,80 kV, usando una cubeta de 0,1 cm en un Gene
Pulser de Bio-Rad): 97/96, 91/387, 95/148.2, 97/251,
97/44, 997/46.5, 98/33.1, 97/226, 97/224, 97/241.6, 97/223.10,
148KH96, 390KH97, 408KH97, 410KH97, 415KH97, 7KH98, 10KH98, 11KH98,
104KH99, 105KH99, 106KH99, 144KH99, 88KH00, y 155KH00. Las cepas
electroporadas se cultivaron en medio SOC durante 30 minutos en un
incubador con agitación, y se sembraron sobre placas de agar tal
como se describe en (21). Las recombinaciones homólogas dobles no
tuvieron éxito, pero el procedimiento siguiente, descrito en (21),
en el cual el vector pKO3\Deltaeae se
co-integra primero con eae en el cromosoma, y a continuación experimenta una segunda recombinación, sí que resultó en numerosas colonias. El segundo suceso de recombinación resultó en el gen eae intacto o en \Deltaeae. Puesto que la región suprimida estaba situada cerca del extremo N-terminal del eae (405 p.b. respecto el codón de inicio), y lejos de la región C-terminal (2166 p.b. desde el codón de detención), una recombinación que dejara el \Deltaeae era menos favorable. Las posibles colonias mutantes se recolectaron y se ensayaron mediante el procedimiento de ensayo de PCR (ver Figura 2) descrito más arriba, o mediante hibridación de colonias usando las mismas condiciones descritas más arriba, pero con la región de 248 p.b. como sonda (construida realizando una PCR con los cebadores flanqueantes sobre los cromosomas de las cepas del tipo salvaje, y cortando el producto resultante con PstI, que resultó en la sonda de la región de 248 p.b. suprimida). Se aisló una Escherichia coli que había perdido la región de 248 p.b., lo que resultó en la cepa mutante de REPEC O15:H^{-} \Deltaeae depositada bajo el número LMG P-18935, el 22 de abril de 1999, en la colección Belgian Coordinated Collections of Microorganisms.
co-integra primero con eae en el cromosoma, y a continuación experimenta una segunda recombinación, sí que resultó en numerosas colonias. El segundo suceso de recombinación resultó en el gen eae intacto o en \Deltaeae. Puesto que la región suprimida estaba situada cerca del extremo N-terminal del eae (405 p.b. respecto el codón de inicio), y lejos de la región C-terminal (2166 p.b. desde el codón de detención), una recombinación que dejara el \Deltaeae era menos favorable. Las posibles colonias mutantes se recolectaron y se ensayaron mediante el procedimiento de ensayo de PCR (ver Figura 2) descrito más arriba, o mediante hibridación de colonias usando las mismas condiciones descritas más arriba, pero con la región de 248 p.b. como sonda (construida realizando una PCR con los cebadores flanqueantes sobre los cromosomas de las cepas del tipo salvaje, y cortando el producto resultante con PstI, que resultó en la sonda de la región de 248 p.b. suprimida). Se aisló una Escherichia coli que había perdido la región de 248 p.b., lo que resultó en la cepa mutante de REPEC O15:H^{-} \Deltaeae depositada bajo el número LMG P-18935, el 22 de abril de 1999, en la colección Belgian Coordinated Collections of Microorganisms.
El suero hiperinmune con una cepa O109:H+,
obtenido en experimentos descritos previamente (47), se usó para
visualizar proteínas antigénicas de las cepas REPEC O15:H^{-}
\Deltaeae y 97/241.6 mediante inmunotransferencia realizada
como se había describió previamente (40). LA banda de 94
kilodaltones (kDa) de tamaño, que había sido identificada como
intimina, ya no era visible en el carril en el que se habían cargado
las proteínas de REPEC O15:H^{-} \Deltaeae (ver Figura
3). Esto permitió a los inventores concluir que la intimina estaba
ausente en la cepa mutante, tal como se esperaba.
Se obtuvo una cepa REPEC O15:H^{-}
\Deltaeae sensible a la tetraciclina usando placas de
selección Bochner (4b). Se usó ácido fusárico (2 mg/ml) como agente
quelante. Se sembraron aproximadamente 10^{6} células sobre una
placa Bochner y subsiguientemente se incubaron a 37ºC durante
24-36 horas. Se recolectaron las colonias, se
dispersaron para obtener colonias individuales, y se sembraron sobre
una placa de medio Bochner. Se repitió este procedimiento hasta que
se obtuvo una cepa claramente sensible a la tetraciclina. La cepa
resultante sensible a la tetraciclina REPEC O15:H^{-}
\Deltaeae Tc^{s} se depositó bajo el número LMG
P-19461, el 12 de mayo de 2000, en la colección
Belgian Coordinated Collections of Microorganisms LMG.
Las propiedades patógenas de la cepa 97/241.6,
97/223.10 y REPEC O15:H^{-} \Deltaeae se ensayaron
realizando un experimento de infección in vivo. Se ensayaron
dos conejos New Zealand White MDL (nivel de enfermedad mínimo) por
cepa, dos animales control se albergaron por separado y nunca se
infectaron. Estos conejos se compraron a N.V. Verlabreed (Nevele,
Bélgica), un criador con un reputación higiénica bien conocido. Su
comida no contenía coccidioestáticos ni antibióticos. Su control en
el momento de su llegado mostró que estaban libres de EPEC,
Clostridium spiroforme, rotavirus y Eimeria (37, 48).
Las habitaciones de experimentación se desinfectaron antes de su
uso, así como las jaulas individuales. Los conejos se alimentaron
con comida comercial libre de anticoccidiostáticos, y la ingestión
de comida y el incremento de peso diario se siguieron regularmente.
La infección experimental re realizó administrando per os 1
ml de una suspensión de células, cultivada durante la noche, y
diluida en solución salina tamponada con fosfato (PBS) hasta 1,6
\times 10^{4} CFU por ml. Uno de los dos conejos se sacrificó 7
días después de la infección, el segundo 10 día después de la
infección. Se tomaron muestras de duodeno, yeyuno, íleon y ciego,
para su estudio mediante microscopía óptica y microscopía
electrónica (36).
Las observaciones clínicas mostraron una diarrea
suave (97/223.10), ligera (97/241.6) y ninguna diarrea (control y
REPEC O15:H^{-} \Deltaeae). Las dosis de infección fueron
bastante bajas, puesto que la muerte causada por colibacilosis
interferiría con las observaciones histológicas claras usando el
microscopio. A partir de la infección con 97/241.6 y 97/223.10, la
proporción de conversión de comida disminuyó claramente,
especialmente para los conejos infectados con 97/223.10. La
velocidad de conversión de comida de los conejos infectados con
REPEC O15:H^{-} \Deltaeae no fue influenciada
negativamente en comparación con los conejos control. Los estudios
histológicos mostraron que la 97/223.10 se unía íntimamente, se
observaron pedestales y el microvilli estaba suprimido, resultando
en células claramente destruidas en las regiones de los alrededores.
Estos efectos eran más intensamente visibles en el ciego, pero
también eran detectables en el íleon (ver Figura 4). La infección
con 97/241.6 condujo a observaciones idénticas. La infección con
REPEC O15:H^{-} \Deltaeae mostró, sin embargo, que la
cepa no estaba íntimamente unida, sino que aparecía concentrada en
microcolonias en el lumen (ver Figura 5). El tejido procedente de
los conejos control no mostró organismos unidos. Los hallazgos
histológicos se observaron siguiendo los procedimientos descritos en
(36).
Asumiendo que es necesaria una cierta
persistencia de la cepa de EPEC para que se desarrolle una respuesta
inmune protectora, y, por tanto, para proteger el huésped frente a
una nueva infección, los presentes inventores se han asegurado que,
después de la supresión del gen eae, el mutante es todavía
capaz de unirse a los enterocitos.
Se realizó un ensayo in vitro. Se aisló el
vello intestinal de un conejo New-Zealand de 6
semanas de edad usando una técnica descrita anteriormente (12a,
15a). Las cepas mutantes se marcaron con FITC incubando 10^{8}
microorganismos durante 30 minutos con una solución de 0,5 mg de
FITC/1 ml de Na_{2}CO_{3} 0,1 M. Después de lavar las bacterias
varias veces con PBS, se incubaron durante 1 hora con el vello
intestinal separado. Unas pocas, pero cierta cantidad de bacterias
se adhirieron a los bordes ciliados. De nuevo, B10 y DH5\alpha se
usaron como cepas control positiva y negativa.
Además, la prueba de la persistencia del mutante
in vivo se obtuvo sembrando muestras fecales diarias de los
conejos, a los que se les administró oralmente la cepa mutante,
sobre un agar SCS (agar citrato de Simon, incluyendo un 4% p/v de
sorbosa y 250 ppm de novobiocine) y G_{2}S (agar de Gassner,
extracto de levadura, Na_{2}S_{2}O_{3}.5H_{2}O,
Fe^{2+}-citrato, y 25% de novobiocine). Las cepas
mutantes pudieron aislarse durante un período de más de 20 días.
Se realizó un experimento de vacunación para
observar las características inmunoprotectoras de la REPEC
O15:H^{-} \Deltaeae frente a una infección con 97/223.10.
Se compraron 42 conejos, se controlaron y se albergaron como se ha
descrito más arriba. Se dividieron en tres grupos con 14 conejos
cada uno, de forma que el peso promedio de los tres grupos era
altamente similar. El primer grupo se vacunó experimentalmente
per os con 1 ml de una solución de PBS con 2,5 \times
10^{5} CFU/ml de REPEC O15:H^{-} \Deltaeae. Una semana
más tarde, el mismo grupo junto con el segundo grupo se infectaron
experimentalmente con 97/223.10 (5,4 \times 10^{4} CFU/ml). El
tercer grupo sirvió como grupo control y nunca se infectó con una
cepa EPEC.
El grupo de animales no vacunados sufrió más de
diarrea que el grupo vacunado. Incluso, aunque la dosis infección
bastante baja, uno de los animales no vacunados murió de
colibacilosis, puesto que esta fue la única posibilidad después de
su autopsia. Los animales no vacunados mostraron un retraso en su
ganancia de peso en comparación con los animales vacunados y los
animales control. También el consumo de comida diaria difirió entre
los animales vacunados y los no vacunados, puesto que el consumo de
comida de los animales no vacunados se redujo hasta un nivel
significativamente diferente (alfa = 0,05) en comparación con los
conejos control y vacunados (ver la Figura 6). Cuando se calculan
las conversiones de comida, no se hallan diferencias significativas,
usando el test de la t de Student, entre los tres grupos
antes de la infección con 97/223.10 (vacunado respecto control:
p = 0,52; vacunado respecto no vacunado: p = 0,35;
control respecto no vacunados: p = 0,73). A continuación de
la infección de los grupos 1 y 2, las conversiones de comida
difieren claramente para los conejos no vacunados y vacunados
(vacunado respecto control: p = 0,68; vacunado respecto no
vacunado: p = 0,02; control respecto no vacunados: p =
0,02). La proporción de conversión de comida de los conejos no
vacunados era significativamente inferior en comparación con las
proporciones de los grupos vacunado y control. No se halló
diferencia significativa alguna entre los grupos vacunado y
control.
El estudio ulterior de las cepas nos enseño más
sobre la señalización entre el organismo patógeno y su huésped. Las
características de adhesión se estudiaron in vitro sobre
diferentes líneas celulares. Esto, junto con la secuenciación de las
región que rodea la región de 248 p.b. suprimida, proporciona más
claridad sobre las características precisas de la REPEC O15:H^{-}
\Deltaeae y de la REPEC O15:H^{-} \Deltaeae
Tc^{s}. Las cepas se ensayaron por su preciso papel inmunogénico y
protector siguiendo las respuestas humorales y de células T. Se
ensayaron modificaciones adicionales para su efecto
inmunogénico.
En base a resultados publicados anteriormente, se
realizó una PCR de ADN cromosómico de las respectivas cepas para
detectar las adhesinas predominantes en el conejo, a saber, la AF/R2
y la RalE (3, 7, 7b, 40a). El ensayo fue positivo tanto para AF/R2
como para RalE (cebador hacia arriba AF/R2: 5' GAAACTAATTGCTATTGCTG
3' (SEC. Nº ID.: 5); cebador hacia abajo AF/R2: 5'
ATGCGATTGAAATAGTTAGC 3' (SEC. Nº ID.: 6); cebador hacia arriba RalE:
5' TTTGCCAAAATGAAACGCTT 3' (SEC. Nº ID.: 7); cebador hacia abajo
RalE: 5' AGCGCTTTTTGTT
TACTTCC 3' (SEC. Nº ID.: 8); 25 ciclos de 15'' a 94ºC, 30'' a 53,1ºC para AF/R2 y 30'' a 52,7ºC para RalE, 2' 72ºC. Para la mayoría de las cepas, también se ensayó la presencia de EAF (factor de enteroadherencia). Los resultados se listan más abajo (TABLA 1).
TACTTCC 3' (SEC. Nº ID.: 8); 25 ciclos de 15'' a 94ºC, 30'' a 53,1ºC para AF/R2 y 30'' a 52,7ºC para RalE, 2' 72ºC. Para la mayoría de las cepas, también se ensayó la presencia de EAF (factor de enteroadherencia). Los resultados se listan más abajo (TABLA 1).
Nombre | Fenotipo | Fimbrias | ||
AF/R2 | RalE | EAF | ||
97/223.10 | 3-/O15 | + | + | + |
97/241.6 | 3-/O15 | + | + | + |
RDEC-1 | 3-/O15 | - | - | + |
DH5\alpha | 3-/O15 | - | - | NA |
E2348/69 | 3-/O15 | - | - | NA |
97/204 | 3-/O15 | - | + | NA |
97/193.1 | 3-/O15 | + | + | + |
97/190.1 | 3-/O15 | + | + | + |
97/185.1 | 3-/O15 | + | + | + |
97/17.2 | 3-/O15 | + | + | + |
97/146 | 3-/O15 | + | + | + |
97/127 | 3-/O15 | + | + | + |
97/119.1 | 3-/O15 | + | + | NA |
97/101.1 | 3-/O15 | + | + | + |
96/261 | 3-/O15 | + | + | + |
95/148.2 | 3-/O15 | + | + | NA |
97/226 | 8+/O103 | + | - | + |
97/110.6 | 8+/O103 | + | + | + |
B10 | 8+/O103 | + | + | + |
91/184 | 4+/O26 | - | - | + |
B13 RDZ 113 | 4+/O26 | + | + | NA |
B13 RDZ 112 | 4+/O26 | + | + | NA |
B13 RDZ 112 | 4+/O26 | + | + | NA |
B13 RDZ 116 | 4+/O26 | + | + | NA |
NA = No disponible |
1. Abe, A., U. Heczko, R. G.
Hegele, and B. Brett Finlay. 1998. Two
Enteropathogenic Escherichia coli Type III Secreted Proteins,
EspA and EspB, Are Virulence Factors. J Exp Med.
188:1907-1916.
2. Abe, A., B. Kenny, M.
Stein, and B. B. Finlay. 1997. Characterization
of two virulence proteins secreted by rabbit enteropathogenic
Escherichia coli, EspA and EspB, whose maximal expression is
sensitive to host body temperature. Infect Immun.
65:3547-55.
3. Adams, L. M., C. P. Simmons, L.
Rezmann, R. A. Strugnell, and R. M.
Robins-Browne. 1997. Identification
and characterization of a K88- and CS31A-like operon
of a rabbit enteropathogenic Escherichia coli strain which
encodes fimbriae involved in the colonization of rabbit intestine.
Infect Immun. 65.5222-30.
4. Agin, T. S., J. R. Cantey, E. C.
Boedeker, and M. K. Wolf. 1996.
Characterization of the eaeA gene from rabbit
enteropathogenic Escherichia coli strain
RDEC-1 and comparison to other eaeA genes
from bacteria that cause attaching-effacing lesions.
FEMS Microbiol Lett. 144:249-58.
4a. Boury, M., K. Grange, J.P.
Nougayrede, E. Oswald, J. De Rycke and A.
Milon. 1998. Mutants du Locus of Enterocyte Effacement
de Escheridia coli entéropathogènes du lapin et vaccination
orale contre la collibacillose 01 03., P. 65-68.
7iemes Journées de la Récherche Cunicole en France. ITAVI, 28 rue du
Rocher, 75008 Paris, Lyon, France.
4b. Bochner, B. R., H. C. Huang, G.
L. Schieven, and B. N. Ames. 1980. Positive
selection for loss of tetracycline resistance. J Bacteriol.
143:926-33.
5. Camguilhem, R., and A. Milon.
1990. Protection of weaned rabbits against experimental
Escherichia coli O103 intestinal infection by oral
formalin-killed vaccine. Vet Microbiol.
21:353-62.
6. Cantey, J. R., and R. K. Blake.
1977. Diarrhea due to Escherichia coli in the rabbit:
a novel mechanism. J lnfect Dis.
135:454-62.
7. Cantey, J. R., L. R. Inman, and
R. K. Blake. 1989. Production of diarrhea in the
rabbit by a mutant of Escherichia coli
(RDEC-1) that does not express adherence (AF/R1)
pili. J lnfect Dis. 160:136-41.
7a. Connell, H., W. Agace, M.
Hedlund, P. Klemm, M. Shembri, and C.
Svanborg. 1996. Fimbriae-mediated
adherence induces mucosal inflammation and bacterial clearance.
Consequences for anti-adhesion therapy. Adv Exp
Med Biol. 408:73-80.
7b. Chalareng, C., F. Pillien, M.
Boury, C. Tasca, J. De Rycke, and A.
Milon. 1997. AF/R2 adhesin and cytopathic effect as
virulence traits of diarrhea-inducing
Escherichia coli O103 in European rabbit. Adv Exp Med
Biol. 412:269-71.
8. Donnenberg, M. S., and J. B.
Kaper. 1991. Construction of an eae deletion
mutant of enteropathogenic Escherichia coli by using a
positive-selection suicide vector. Infect
Immun. 59:4310-7.
9. Donnenberg, M. S., and J. B.
Kaper. 1992. Enteropathogenic Escherichia coli.
Infect Immun. 60:3953-61.
10. Donnenberg, M. S., C. O.
Tacket, S.P. James, G. Losonsky, J. P.
Nataro, S. S. Wasserman, J. B. Kaper, and M. M.
Levine. 1993. Role of the eaeA gene in
experimental enteropathogenic Escherichia coli infection.
J Clin lnvest 92:1412-7.
11. Elliott, S. J., L. A.
Wainwright, T. K. McDaniel, K. G. Jarvis, Y. K.
Deng, L. C. Lai, B. P. McNamara, M. S.
Donnenberg, and J. B. Kaper. 1998. The complete
sequence of the locus of enterocyte effacement (LEE) from
enteropathogenic Escherichia coli E2348/69. Mol
Microbiol. 28:1-4.
12. Fiederling, F., M. Boury, C.
Petit, and A. Milon. 1997. Adhesive
factor/rabbit 2, a new fimbrial adhesin and a virulence factor from
Escherichia coli O103, a serogroup enteropathogenic for
rabbits. Infect Immun. 65:847-51.
12a. Girardeau, J. P. 1980. A new
in vitro technique for attachment to intestinal villi using
enteropathogenic Escherichia coli. Ann Microbiol
(Paris). 131B:31-7.
13. Giron, J. A., A. S. Ho, and G.
K. Schoolnik. 1991. An inducible
bundle-forming pilus of enteropathogenic
Escherichia coli. Science.
254:710-3.
13a. Hartland, E. L., M. Batchelor,
R. M. Delahay, C. Hale, S. Matthews, G.
Dougan, S. Knutton, I, Connerton, and G.
Frankel. 1999. Binding of intimin from
enteropathogenic Escherichia coli to Tir and to host cells.
Mol Microbiol. 32:151-8.
14. Hicks, S., G. Frankel, J. B.
Kaper, G. Dougan, and A. D. Phillips.
1998. Role of intimin and bundle-forming pili
in enteropathogenic Escherichia coli adhesion to pediatric
intestinal tissue in vitro. Infect Immun.
66:1570-8.
15. Jarvis, K. G., J. A. Giron, A.
E. Jerse, T. K. McDaniel, M. S. Donnenberg, and
J. B. Kaper. 1995. Enteropathogenic Escherichia
coli contains a putative type III secretion system necessay for
the export of proteins involved in attaching and effacing lesion
formation. Proc Natl Acad Sci USA.
92:7996-8000.
16. Jerse, A. E., J. Yu, B. D.
Tall, and J. B. Kaper. 1990. A genetic locus of
enteropathogenic Escherichia coli necessary for the
production of attaching and effacing lesions on tissue culture
cells. Proc Natl Acad Sci USA
87:7839-7843.
17. Karaolis, D. K., T. K.
McDaniel, J. B. Kaper, and E. C. Boedeker.
1997. Cloning of the RDEC-1 locus of
enterocyte effacement (LEE) and functional analysis of the phenotype
on HEp-2 cells. Adv Exp Med Biol.
412:241-5.
17a. Kelly, G., S. Prasannan, S.
Daniell, K. Fleming, G. Frankel, G.
Dougan, I. Connerton, and S. Matthews.
1999. Structure of the cell-adhesion fragment
of intimin from enteropathogenic Escherichia coli. Nat
Struct Biol. 6:313-8.
18. Kenny, B., R. DeVinney, M.
Stein, D. J. Reinscheid, E. A. Frey, and B. B.
Finlay. 1997. Enteropathogenic E. coli (EPEC)
transfers its receptor for intimate adherence into mammalian cells.
Cell. 91:511-20.
19. Knutton, S., M. M. Baldini, J.
B. Kaper, and A. S. McNeish. 1987. Role of
plasmid-encoded adherence factors in adhesion of
enteropathogenic Escherichia coli to HEp-2
cells. Infect Immun. 55:78-85.
20. Knutton, S., I. Rosenshine, M.
J. Pallen, I. Nisan, B. C. Neves, C.
Bain, C. Wolff, G. Dougan, and G.
Frankel. 1998. A novel EspA-associated
surface organelle of enteropathogenic Escherichia coli
involved in protein translocation into epithelial cells. Embo
J. 17:2166-76.
21. Link. A. J., D. Phillips, and
G. M. Church. 1997. Methods for generating precise
deletions and insertions in the genome of wild-type
Escherichia coli: application to open reading frame
characterization. J Bacteriol.
179:6228-37.
21a. Marches, O., J. P. Nougayrede,
S. Boullier, J. Mainil, G. Charlier, I.
Raymond, P. Pohl, M. Boury, J. De Rycke,
A. Milon, and E. Oswald. 2000. Role of tir and
intimin in the virulence of rabbit enteropathogenic Escherichia
coli serotype O103:H2. Infect Immun.
68:2171-82.
22. McDaniel, T. K., K. G. Jarvis,
M. S. Donnenberg, and J. B. Kaper. 1995. A
genetic locus of enterocyte effacement conserved among diverse
enterobacterial pathogens. Proc Natl Acad Sci USA.
92:1664-8.
23. Milon, A., and R. Camguilhem.
1989. Essais de protection de lapereaux sevrés contre
l'entérite à Escherichia coli O103: vaccinations des mères
avec un vaccin inactivé. Revue de Médecine Vétérinaire.
140:389-395.
24. Milon, A., and J. De Rycke.
1997. Souches mutantes non pathogenes d'E. coli, leur
procédé d'obtention et leurs utilisations., lnstitut National de la
Propriété Industrielle, Paris., France.
25. Milon, A., J. Esslinger, and R.
Camguilhem. 1992. Oral vaccination of weaned rabbits
against enteropathogenic Escherichia coli-like E. coli
O103 infection: use of heterologous strains harboring
lipopolysaccharide or adhesin of pathogenic strains. Infect
Immun. 60:2702-9.
26. Moon, H. W., S. C. Whipp, R. A.
Argenzio, M. M. Levine, and R. A. Giannella.
1983. Attaching and effacing activities of rabbit and human
enteropathogenic Escherichia coli in pig and rabbit
intestines. Infect Immun. 41:1340-51.
27. Nataro, J. P., and J. B. Kaper.
1998. Diarrheagenic Escherichia coli [published
erratum appears in Clin Microbiol Rev 1998 Apr,
11(2):403]. Clin Microbiol Rev.
11:142-201.
28. Nisan, I., C. Wolff, E.
Hanski, and I. Rosenshine. 1998. Interaction of
enteropathogenic Escherichia coli with host epithelial cells.
Folia Microbiol. 43:247-52.
29. Nougayrede, J. P., O. Marches,
M. Boury, J. Mainil, G. Charlier, P.
Pohl, J. De Rycke, A. Milon, and E.
Oswald. 1999. The long-term
cytoskeletal rearrangement induced by rabbit enteropathogenic
Escherichia coli is Esp dependent but intimin independent [In
Process Citation]. Mol Microbiol.
31:19-30.
30. Okerman, L., and L. A.
Devriese. 1985. Biotypes of enteropathogenic
Escherichia coli strains from rabbits. J Clin
Microbiol. 22:955-8.
31. Orskov, F., and I. Orskov.
1984. Serotyping of Escherichia coli., p.
43-112. In T. Bergan (ed.), Methods in Microbiology,
vol. 14. Academic Press, Inc., London.
32. Paton, A. W., P. A. Manning, M.
C. Woodrow, and J. C. Paton. 1998. Translocated
intimin receptors (Tir) of shiga-toxigenic
Escherichia coli isolates belonging to serogroups O26, O111,
and O157 react with sera from patients with
hemolytic-uremic syndrome and exhibit marked
sequence heterogeneity. Infect Immun.
66:5580-6.
33. Peeters, J., R. Geeroms, and B.
Glorieux. 1984. Experimental Escherichia coli
enteropathy in weanling rabbits: clinical manifestations and
pathological findings. Journal of Comparative Pathology.
94:521-528.
33a. Peeters, J. E., P. Phol, L.
Okerman and L. A. Devriese. 1984. Pathogenic
properties of Eschericia coli strains isolated from diarrheic
commercial rabbits. J Clin Microbiol
20:34-9.
34. Peeters, J. E. 1994. E.
coli infections in animals, p. 261-283. En G. C.
L. (ed.), Escherichia coli in domestic animals and humans.
CAB International, Wallingford, UK.
35. Peeters, J. E., G. J. Charlier,
and P. H. Halen. 1984. Pathogeniciy of attaching
effacing enteropathogenic Escherichia coli isolated from
diarrheic suckling and weanling rabbits for newborn rabbits.
Infect Immun. 46:690-6.
36. Peeters, J. E., G. J. Charlier,
and R. Raeymaekers. 1985. Scanning and transmission
electron microscopy of attaching effacing Escherichia coli in
weanling rabbits. Vet Pathol. 22:54-9.
37. Peeters, J. E., R. Geeroms, R.
J. Carman, and T. D. Wilkins. 1986.
Significance of Clostridium spiroforme in the
enteritis-complex of commercial rabbits. Vet
Microbiol. 12:25-31.
38. Peeters, J. E., R. Geeroms, and
F. Orskov. 1988. Bioype, serotype, and pathogenicity
of attaching and effacing enteropathogenic Escherichia coli
strains isolated from diarrheic commercial rabbits. Infect
Immun. 56:1442-8.
39. Peeters, J. E., P. Pohl, and G.
Charlier. 1984. Infectious agents associated with
diarrhoea in commercial rabbits: a field study. Ann Rech Vet.
15:335-40.
40. Peeters, J. E., I. Villacorta,
E. Vanopdenbosch, D. Vandergheynst, M. Naciri,
E. Ares-Mazas, and P. Yvore.
1992. Cyptosporidium parvum in calves: kinetics and
immunoblot analysis of specific serum and local antibody responses
(immunoglobulin A [IgA], IgG, and IgM) after natural and
experimental infections. Infect Immun.
60:2309-16.
40a. Pillien, F., C. Chalareng, M.
Boury, C. Tasca, J. de Rycke, and A.
Milon. 1996. Role of Adhesive Factor/Rabbit 2 in
experimental enteropathogenic Escherichia coli O103 diarrhea of
weaned rabbit. Vet Microbiol. 50:105-15.
41. Pohl, P. H., J. E. Peeters, E.
R. Jacquemin, P. F. Lintermans, and J. G. Mainil.
1993. Identification of eae sequences in
enteropathogenic Escherichia coli strains from rabbits.
Infect Immun. 61:2203-6.
42. Rosenshine, I. 1998. Species
specificiy and tissue tropism of EPEC and related pathogens.
Trends Microbiol. 6:388.
43. Rosenshine, I., S. Ruschkowski,
M. Stein, D. J. Reinscheid, S. D. Mills, and B.
B. Finlay. 1996. A pathogenic bacterium triggers
epithelial signals to form a functional bacterial receptor that
mediates actin pseudopod formation. Embo J.
15:2613-24.
44. Sambrook, J., E. F. Fritsch,
and T. Maniatis. 1989. Molecular cloning: a laboratoy
manual, 2ª ed. Cold Spring Harbor Laboratoy, Cold Spring Harbor,
N.Y.
45. Taylor, K. A., C. B. O'Connell,
P. W. Luther, and M. S. Donnenberg. 1998. The
EspB protein of enteropathogenic Escherichia coli is targeted
to the cytoplasm of infected HeLa cells [In Process Citation].
Infect Immun. 66:5501-7.
45a. Van den Broeck, W., E. Cox, B.
Oudega, and B. M. Goddeeris. 2000. The F4
fimbrial antigen of Escherichia coli and its receptors.
Vet Microbiol. 71:223-44.
46. Van Miltenburg, R., B. Ruger,
S. Grunewald-Janho, M. Leons, and C.
Sthroder (ed.). 1995. The DIG System User's Guide for
Filter Hybridization. Boehringer Mannheim GmbH, Mannheim.
47. Vandekerchove, D., and J.
Peeters. 1998. Detection of specific antibodies
against strains of enteropathogenic Escherichia coli (EPEC)
in the rabbit by an ELISA using 94-kilodalton
proteins. World Rabbit Science.
6:303-310.
48. Vanopdenbosch, E. 1980.
Immunodiffusion test for the detection of rotavirus antigen in
faecal material and gut homogenates. Current Topics in Veterinay
Medicine and animal Science. 13:118-120.
49. Wolff, C., I. Nisan, E.
Hanski, G. Frankel, and I. Rosenshine.
1998. Protein translocation into host epithelial cells by
infecting enteropathogenic Escherichia coli. Mol
Microbiol. 28:143-55.
\vskip0.333000\baselineskip
<110> CENTRUM VOOR ONDERZOEK IN
DIERGENEESKUNDE EN AGROG
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<120> CEPAS DE E. COLI
enteropatógena (EPEC) ATENUADAS, PROCESO PARA SU PRODUCCIÓN, Y SU
USO
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<130>
CODA-001-PCT
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<140>
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<141>
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<160> 8
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<170> PatentIn Ver. 2.1
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<210> 1
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<211> 31
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<212> ADN
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
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Claims (13)
1. Cepa de Escherichia coli enteropatógena
(EPEC) de mamífero, no humana, atenuada, que comprende una supresión
de una secuencia de un gen que codifica la intimina, en donde dicha
supresión comprende la secuencia codificante completa o parte de la
secuencia codificante, que resulta en una mutación por
desplazamiento de la pauta, o resulta en una señal de detención
transcripcional o de traducción, caracterizada porque además
dicha supresión elimina completamente la expresión de una proteína
intimina funcional.
2. Cepa de Escherichia coli enteropatógena
de conejo atenuada que comprende una supresión de una secuencia de
un gen que codifica la intimina de acuerdo con la reivindicación 1,
con dicha cepa que está caracterizada porque además induce
una respuesta inmune cuando se administra a un conejo.
3. Cepa de acuerdo con la reivindicación 1 ó 2,
caracterizada porque además dicha cepa contiene fimbrias
sobre su superficie.
4. Cepa de acuerdo con la reivindicación 2 ó 3,
escogida de entre las cepas depositadas bajo el nº de LGM
P-18935, el 22 de abril de 1999, y el nº de LGM
P19461, el 22 de mayo de 2000, en la colección LGM Belgian
Coordinated Collections of Microorganisms.
5. Vector recombinante que comprende secuencias
de genes que codifican la intimina en las que hay una supresión
presente, en donde dicha supresión elimina completamente la
expresión de una proteína intimina funcional, y en donde dicha
supresión es una de las siguientes: (i) una supresión cadena abajo
de la región de anclaje transmembrana de la intimina, o (ii) una
supresión que comprende parte de la secuencia codificante, que
resulta en una mutación por desplazamiento de la pauta, o resulta en
una señal de detención transcripcional o de traducción,
caracterizada porque además dicha secuencia de gen que
codifica la intimina procede de una cepa de Escherichia coli
enteropatógena (EPEC) de un mamífero, no humana.
6. Vector de acuerdo con la reivindicación 5, en
donde dicho gen que codifica la intimina es el gen eae
procedente de una cepa de EPEC de conejo.
7. Procedimiento para producir una cepa de
Escherichia coli enteropatógena (EPEC) de mamífero, no
humana, tal como se define en cualquiera de las reivindicaciones 1 a
4, que comprende la etapa de introducir una supresión del gen
eae en una cepa EPEC de tipo salvaje, mediante recombinación
homóloga usando un vector de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 6 ó 7.
8. Composición inmunogénica que comprende una
cepa de EPEC de conejo atenuada de cualquiera de las
reivindicaciones 2 a 4.
9. Composición de vacuna que proporciona
inmunidad protectora frente a una infección por EPEC en un conejo,
que comprende un cepa de Escherichia coli enteropatógena
(EPEC) de conejo, la cual comprende una supresión de una secuencia
del gen que codifica la intimina, en donde dicha supresión comprende
la secuencia codificante completa o parte de la secuencia
codificante, lo que resulta en una mutación por desplazamiento de
pauta o resulta en una señal de detención transcripcional o de
traducción, caracterizada porque además dicha supresión
elimina completamente la expresión de una proteína intimina
funcional.
10. Composición de vacuna de acuerdo con la
reivindicación 9, la cual es una vacuna oral.
11. Procedimiento in vitro para
diferenciar entre individuos infectados y vacunados, en donde dichos
individuos infectados se diagnostican in vitro en base a la
presencia de anticuerpos contra la intimina.
12. Procedimiento in vitro para
diferenciar entre individuos infectados y vacunados, en donde la
diferenciación entre la cepa del tipo salvaje y mutante se realiza
usando cebadores representados por las SEC. Nº ID.: 3 y 4 en una
reacción de amplificación.
13. Utilización de una cepa de Escherichia
coli enteropatógena (EPEC) de conejo atenuada, que comprende una
supresión de una secuencia de un gen que codifica la intimina, para
la preparación de una vacuna, en donde dicha supresión comprende la
secuencia codificante completa o parte de la secuencia codificante,
lo que resulta en una mutación por desplazamiento de pauta o resulta
en una señal de detención transcripcional o de traducción,
caracterizada porque además dicha supresión elimina
completamente la expresión de un proteína intimina funcional.
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-
1999
- 1999-06-02 EP EP99870111A patent/EP1057892A1/en not_active Withdrawn
-
2000
- 2000-06-02 WO PCT/EP2000/005061 patent/WO2000073462A2/en active IP Right Grant
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