ES2200951T3 - Procedimiento de preparacion de intermediarios peptidicos. - Google Patents

Procedimiento de preparacion de intermediarios peptidicos.

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ES2200951T3 ES00968148T ES00968148T ES2200951T3 ES 2200951 T3 ES2200951 T3 ES 2200951T3 ES 00968148 T ES00968148 T ES 00968148T ES 00968148 T ES00968148 T ES 00968148T ES 2200951 T3 ES2200951 T3 ES 2200951T3
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Khateeta Moneek Emerson
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Guo-Jie Ho
Joseph Edward Lynch
Yao-Jun Shi
Robert Darrin Wilson
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Abstract

Procedimiento de preparación de intermediarios peptídicos. El procedimiento de la invención proporciona una vía apropiada y eficaz para la preparación de oligopéptidos protegidos de terminal N que son útiles como intermediario en la preparación de conjugados PSA. En comparación con las alternativas disponibles, el procedimiento de la invención implica menos etapas, y proporciona productos de mayor pureza con mayores rendimientos. Se usan materiales de partida fácilmente disponibles, y todas las etapas del procedimiento están disponibles para operaciones a escala industrial. La presente invención también proporciona compuestos que son particularmente útiles como intermediarios en la síntesis de los intermediarios de oligopéptido. Entre estos compuestos intermediarios se encuentran los compuestos de la Fórmula C-1:

Description

Procedimiento de preparación de intermediarios peptidicos.
Antecedentes de la invención
Se describen composiciones útiles en el tratamiento del cáncer de próstata y afecciones asociadas en las patentes de los Estados Unidos números 5.599.686 y 5.866.679; y en la solicitud de patente de los Estados Unidos con número de serie 08/950.805, presentada el 14 de octubre de 1997 (correspondiente a la publicación de patente internacional número WO/98/18493) titulada Conjugados útiles en el tratamiento del cáncer de próstata. Dichas composiciones, que se pueden denominar conjugados PSA, comprenden conjugados químicos que comprenden agentes citotóxicos conocidos y oligopéptidos que tienen secuencias de aminoácidos que se escindieron proteolíticamente de manera selectiva por antígeno específico de próstata libre y, respecto del número de serie 08/950.805 (correspondiente a la patente de los Estados Unidos número 5.948.750, concedida el 7 de septiembre de 1999), que incluyen un aminoácido cíclico que tiene un substituyente hidrofílico. Los restos de oligopéptido se seleccionan a partir de oligómeros que son reconocidos selectivamente por antígeno específico de próstata libre (PSA) y se pueden escindir proteolíticamente por su actividad enzimática.
Idealmente, la actividad citotóxica del agente citotóxico se reduce en gran medida o es nula cuando el oligopéptido intacto que contiene el sitio de proteolítico de PSA se une directamente, o a través de un engarce químico, al agente citotóxico. También de manera ideal, la actividad citotóxica del agente citotóxico se incrementa significativamente, o se restaura por completo, al realizarse la escisión proteolítica del oligopéptido fijado al sitio de escisión. Preferiblemente, el terminal N del oligopéptido se protege por un grupo de bloqueo hidrofílico, del cual el ácido glutárico y el ácido succínico son los ejemplos preferidos. Dichos oligopéptidos protegidos se pueden ilustrar por la siguiente estructura.
Grupo protector-AA_{1}-AA_{2}-AA_{3}-AA_{4}-AA_{5}-AA_{6}-AA_{7}
en el que AA_{1}, AA_{2}, AA_{3}, AA_{4}, AA_{5}, AA_{6}, y AA_{7} se seleccionan independientemente a partir de un aminoácido natural y no natural. Se entiende que estos oligopéptidos protegidos que tienen mayores o menores residuos de aminoácido (de 5 a 10 aminoácidos) se pueden incorporar alternativamente al conjugado PSA.
Entre los grupos protectores preferidos de terminal N que se incorporan a un conjugado PSA se encuentran los alcanos de ácido dicarboxílico, tal como el succinilo, el glutarilo y similares. Por consiguiente, un oligopéptido protegido preferido se puede ilustrar con la fórmula:
HO-
\uelm{C}{\uelm{\dpara}{O}}
-(CH_{2})_{r}-
\uelm{C}{\uelm{\dpara}{O}}
-AA_{1}-AA_{2}-AA_{3}-AA_{4}-AA_{5}-AA_{6}-AA_{7}
Para garantizar la fijación selectiva del agente citotóxico por el residuo AA_{7}, el grupo ácido carboxílico libre del grupo protector se debe bloquear. Un grupo de bloqueo apropiado al efecto es el éster de 9-fluorenilmetilo (Fm), ya que se elimina fácilmente bajo condiciones poco rigurosas (piperidina al 20%) al final del procedimiento. De este modo, los intermediarios claves en la síntesis de los conjugados PSA deseados son compuestos de fórmula A:
AFmO-
\uelm{C}{\uelm{\dpara}{O}}
-(CH_{2})_{r}-
\uelm{C}{\uelm{\dpara}{O}}
-AA_{1}-AA_{2}-AA_{3}-AA_{4}-AA_{5}-AA_{6}-AA_{7}
En diversos de los ejemplos específicos presentados en el documento WO 98/18493, el conjugado comprende un oligopéptido que tiene la secuencia de aminoácidos:
4-hidropirolina-alanina-serina-AA_{4}-AA_{5}-AA_{6}-AA_{7}
y el agente citotóxico se fija al terminal C (es decir, por el grupo carboxilo del residuo AA_{7}). De este modo, en un procedimiento preferido de preparación, el agente citotóxico deseado se fija al residuo AA_{7} de un análogo de péptido de Fórmula B:
BFmO-
\uelm{C}{\uelm{\dpara}{O}}
-(CH_{2})_{r}-
\uelm{C}{\uelm{\dpara}{O}}
-(4-Hyp)-Ala-Ser-AA_{4}-AA_{5}-AA_{6}-AA_{7}
donde Fm representa 9-fluorenilmetilo y r es 2 ó 3.
\newpage
Como se ha descrito en la solicitud de patente antes citada, dichos compuestos se pueden preparar por una estrategia recta que implica técnicas convencionales de síntesis de péptidos de fase sólida. Sin embargo, dichos métodos son mucho más apropiados en síntesis de laboratorio que en preparaciones a escala industrial. Además, el procedimiento de fase sólida requiere el uso de HF anhidro, que necesita técnicas y cuidados de manipulación especiales.
Una estrategia alternativa, más sensible al aumento proporcional, implica la preparación de un análogo de tripéptido de fórmula (C):
CFmO-
\uelm{C}{\uelm{\dpara}{O}}
-(CH_{2})_{r}-
\uelm{C}{\uelm{\dpara}{O}}
-AA_{1}-AA_{2}-AA_{3}
y en particular el compuesto intermediario de la fórmula (C-1)
C-IFmO-
\uelm{C}{\uelm{\dpara}{O}}
-(CH_{2})_{r}-
\uelm{C}{\uelm{\dpara}{O}}
-(4-Hyp)-Ala-Ser
donde Fm y r son tal como se han definido previamente, seguido por el acoplamiento del tripéptido protegido (C) al tetrapéptido apropiado.
Los compuestos de Fórmula (C-1) representan, por consiguiente, importantes objetivos sintéticos. Sin embargo, una estrategia de solución-fase convencional, que comienza con serina, se puede emplear para la síntesis de dichos compuestos, los resultados son decepcionantes. En particular, es necesario proteger tanto el grupo hidroxilo como el grupo ácido carboxílico de serina (por ejemplo, el éter de benzilo y el éster de p-nitrobencilo, respectivamente) durante la formación de la cadena peptídica y la introducción del grupo Fm-glutarilo o succinilo bloqueado. Los intentos de eliminar estos grupos protectores conducen invariablemente a una escisión parcial del grupo de bloqueo Fm, con la consiguiente reducción de rendimiento y/o pureza de los productos deseados.
Por lo tanto, hay una necesidad constante de un procedimiento de gran rendimiento, limpio y apropiado para la síntesis de los compuestos intermediarios de peptidilo útiles en la síntesis de los conjugados PSA, en particular los compuestos intermediarios de Fórmula (C) y los compuestos precursores de la Fórmula (A), apropiados para su uso a escala industrial.
Sumario de la invención
La presente invención proporciona un procedimiento para preparar compuestos intermediarios de la Fórmula B que utiliza química de solución-fase.
BFmO-
\uelm{C}{\uelm{\dpara}{O}}
-(CH_{2})_{r}-
\uelm{C}{\uelm{\dpara}{O}}
-(4-Hyp)-Ala-Ser-AA_{4}-AA_{5}-AA_{6}-AA_{7}
El presente procedimiento comprende la etapa de hacer reaccionar el diéster de la fórmula E:
1
con el tripéptido D:
2
o una sal del mismo:
para proporcionar un intermediario de la fórmula C-1:
3
o una sal del mismo.
Descripción detalla de la invención
La presente invención se refiere a un procedimiento para preparar compuestos intermediarios de la Fórmula B que utiliza química de solución-fase.
BFmO-
\uelm{C}{\uelm{\dpara}{O}}
-(CH_{2})_{r}-
\uelm{C}{\uelm{\dpara}{O}}
-(4-Hyp)-Ala-Ser-AA_{4}-AA_{5}-AA_{6}-AA_{7}
El presente procedimiento comprende la etapa de hacer reaccionar el diéster de la fórmula E:
1
con el tripéptido D:
2
o una sal del mismo;
para proporcionar un intermediario de la fórmula C-1:
3
o una sal del mismo.
La invención proporciona, además, un procedimiento para preparar un compuesto intermediario de fórmula C-1:
3
en el que r es 2 ó 3,
que comprende en secuencia, las etapas de:
(i)
hacer reaccionar alanina-serina desprotegida con el éster de pentafluorofenilo de 4-hidroxiprolina N-protegida para formar 4-hidroxiprolina-alanina-serina N-protegida;
(ii)
eliminar la protección N del producto de la etapa (i); y
(iii)
hacer reaccionar el producto de la etapa (ii) con un compuesto de Fórmula E
1
en la que r es 2 ó 3.
El procedimiento de la invención proporciona una vía apropiada y eficaz para la preparación de oligopéptidos protegidos de terminal N que son útiles como intermediario en la preparación de conjugados PSA. En comparación con las alternativas disponibles, el procedimiento de la invención implica menos etapas, y proporciona productos de mayor pureza con mayores rendimientos. Se usan materiales de partida fácilmente disponibles, y todas las etapas del procedimiento están disponibles para operaciones a escala industrial.
La presente invención también proporciona compuestos que son particularmente útiles como intermediarios en la síntesis de los intermediarios de oligopéptido. Entre estos compuestos intermediarios se encuentran los compuestos de la Fórmula C-1:
3
y el compuesto H-Chg-Gln-Ser-Leu-O-Bencilo (SEQ.ID.NO).; 1)
46
o una sal del mismo.
Una característica clave del procedimiento es la formación de enlaces amidas por reacción de los componentes amina apropiados con ésteres de pentafluorofenilo de los componentes ácidos apropiados. Los ésteres de pentafluorofenilo relevantes son sólidos cristalinos estables, fácilmente preparados en masa para su almacenamiento previo a su utilización. Los ésteres de pentaflurofenilo reaccionan suavemente con los componentes amina bajo condiciones poco rigurosas para producir las amidas deseadas con grandes rendimientos. Las amidas deseadas se pueden separar fácilmente del subproducto, el pentafluorofenol, que se puede recuperar con gran rendimiento y reciclarse. Además, los grupos hidroxilo libre y los grupos ácido carboxílico no están afectados por las condiciones de reacción, y por lo tanto no requieren protección. Esto simplifica, en gran medida, el procedimiento en comparación con las metodologías alternativas.
Tal como se utiliza en la presente memoria descriptiva, el término aminoácido natural representa los aminoácidos que se codifican mediante los codones de ARNm.
Tal como se utiliza en la presente memoria descriptiva, el término aminoácido no natural representa los aminoácidos que no se codifican mediante los codones de ARNm. Preferiblemente, los aminoácidos no naturales son aminoácidos \alpha.
Los materiales de partida para el procedimiento de la invención son aminoácidos, dipéptidos, tripéptidos y tetrapéptidos comercialmente disponibles o fácilmente sintetizados. En un modo de realización preferido, el material de partida es el dipéptido alanina-serina:
4
que está comercialmente disponible en masa en proveedores tales Bachem AG, Haupstrasse 144, CH-4416, Budendorf, Suiza.
En la primera etapa del procedimiento, el grupo amino del dipéptido se hace reaccionar con el éter de pentafluorofenilo de 4-hidroxiprolina N-protegida, que forma el tripéptido N-protegido 4-Hip-Ala-Ser:
5
(X = grupo protector)
6
Ecuación (1)
La protección de la funcionalidad amino de 4-hidroxiprolina es necesaria para prevenir la autocondensación. Dicho uso de los grupos aminoprotectores es habitual en la síntesis de péptidos, y un experto en la técnica se remite a textos tales como Protective Groups in Organic Chemistry, Mcomie, ed., Plenum Press, NY (1973); y Protective Groups in Organic Synthesis, Green ed., John Wiley & Sons, NY (1981) como ejemplos de grupos protectores que pueden ser útiles en este contexto.
Mientras no sea necesario en la síntesis del compuesto intermediario preferido D mostrado anteriormente, un experto en la técnica apreciará que el resto ácido carboxílico (carboxilo) del dipéptido fácilmente disponible, y adicionalmente o en alternativa el/los resto(s) hidroxi de la hidroxiprolina y el dipéptido, se pueden proteger opcionalmente antes de la reacción de formación de tripéptidos, y por lo tanto desproteger.
A título únicamente de ejemplo, los grupos aminoprotectores útiles pueden incluir, por ejemplo, grupos alcanoilo C_{1}-C_{10} tales como formilo, acetilo, dicloroacetilo, propionilo, hexanoilo, 3,3-dietilhexanoilo, \gamma-clorobutrilo, y similares; los grupos alcoxicarbonilo C_{1}-C_{10} y ariloxicarbonilo C_{5}-C_{15} tales como terc-butoxicarbonilo, benciloxicarbonilo, aliloxicarbonilo, 4-nitrobenciloxicarbonilo, fluorenilmetiloxicarbonilo y cinnamoiloxicarbonilo; haloalcoxi-(C_{1}-C_{10})-carbonilo tal como 2,2,2-tricloroetoxicarbonilo; y arilalquilo C_{1}-C_{15} y el grupo alquenilo tal como bencilo, fenetilo, alilo, tritilo y similares. Otros grupos aminoprotectores comúnmente usados son los que tienen forma de enaminas preparadas con \beta-ceto-ésteres tales como acetoacetato de metilo o etilo.
Una grupo aminoprotector es t-butoxicarbonilo (Boc), formado por reacción de la amina con di-terc-butildicarbo-
nato bajo condiciones alcalinas, y escindible por hidrólisis ácida.
Los grupos carboxiprotectores útiles pueden incluir , por ejemplo, grupos alquilo C_{1}-C_{10} tales como metilo, terc-butilo, decilo; haloalquilo C_{1}-C_{10} tal como 2,2,2-tricloroetilo, y 2-yodoetilo; arilalquilo C_{5}-C_{15} tal como benzilo,
4-metoxibencilo, 4-nitrobencilo, trifenilmetilo, difenilmetilo; alcanoiloximetilo C_{1}-C_{10} tal como acetoximetilo, propionoximetilo y similares; y grupos tales como fenacillo, 4-halofenacilo, alilo, dimetilalilo, tri-(alquil C_{1}-C_{3})-sililo, tal como trimetilsililo, \beta-p-toluenosulfoniletilo, \beta-p-nitrofeniltio-etilo, 2,4,6-trimetilbencilo, \beta-metiltioetilo, ftalimidometilo,2,4-dinitro-fenilsulfenilo, 2-nitrobenzhidrilo y grupos relacionados.
De manera análoga, los grupos hidroxiprotectores útiles pueden incluir, por ejemplo el grupo formilo, el grupo cloroacetilo, el grupo benzilo, el grupo benzhidrilo, el grupo tritilo, el grupo 4-nitrobencilo, el grupo trimetilsililo, el grupo fenacilo, el grupo terc-butilo, el grupo metoximetilo, el grupo tetrahidropiranilo y similares.
Las sales de los compuestos útiles en los procedimientos de esta invención incluyen las sales convencionales de los compuestos básicos de ácidos inorgánicos u orgánicos o sales de compuestos ácidos de bases inorgánicas u orgánicas. Por ejemplo, dichas sales convencionales de compuestos básicos incluyen (pero no se limita a ello) las derivadas de ácidos inorgánicos tales como el ácido clorhídrico, el ácido bromhídrico, el ácido sulfúrico y similares, y las sales preparadas a partir de ácidos orgánicos tales como el ácido toluenosulfónico, el ácido metanosulfónico, el ácido trifluorometanosulfónico, el ácido etanodisulfónico, el ácido trifluoroacético y similares. Los ejemplos de las sales convencionales de compuestos ácidos incluyen (pero no se limita a ello) las derivadas de bases inorgánicas tales como sodio, potasio, cesio, litio, amonio, calcio y similares, y las sales preparada a partir de bases orgánicas tales como trietilamonio, etildiisopropilamonio, bencilamina, biciclohexilamina (BCHA) y similares.
El éster de pentafluorofenilo de 4-hidroxiprolina N-protegida se puede preparar por reacción del aminoácido
N-protegido con pentafluorofenol usando cualquiera de las técnicas estándar para la formación del mismores. En un procedimiento preferido, el aminoácido se hace reaccionar con un ligero exceso de pentafluorofenol en presencia del exceso de diciclohexilcarbodiimida en una solución de acetonitrilo o acetato de etilo.
La formación del tripéptido, tal como se describe en la Ecuación (1), sólo requiere un calentamiento suave (por ejemplo a aproximadamente 50ºC) durante un corto periodo de tiempo (aproximadamente entre 2 y 3 horas) en un disolvente inerte tal como dimetilformamida (DMF).
La siguiente etapa en el procedimiento de la invención es la retirada del grupo N-protector del tripéptido. En el caso del grupo Bocprotector preferido, este se consigue más apropiadamente por tratamiento ácido del producto puro obtenido a partir de la primera etapa. En un procedimiento típico, el disolvente se evapora a presión reducida, y el residuo se agita a temperatura ambiente durante 24 horas con una mezcla de ácido clorhídrico concentrado e isopropanol. Después de la dilución con isopropanol, se obtiene el tripéptido puro (como su sal de hidrocloruro) en forma de un sólido cristalino de gran rendimiento.
La siguiente etapa del procedimiento de la invención es la fijación del residuo de succinato o glutarato de 9-uorenilmetilo al terminal N del tripéptido. Esto se lleva a cabo por reacción del tripéptido (como la amina libre) con succinato o glutarato mezclado con diéster de fórmula (E):
7
(r = 2 ó 3)
\newpage
como se describe en la Ecuación (2):
Ecuación (2)
1
8
9
Los diésteres mezclados (E) se preparan fácilmente en dos fases a partir de anhídrido succínico (r=2) o anhídrido glutárico (r=3). En la primera fase, el anhídrido cíclico apropiado se hace reaccionar con 0,5 equivalentes de
9-fluorenilmetanol para formar el fluorenilmetilmonoéster de ácido succínico o glutárico. En la segunda fase, la reacción de monoéster con pentafluorofeno bajo condiciones normales de esterificación sproporcoina el diéster mezclado.
La reacción de acoplamiento descrita en la Ecuación (2) se realiza bajo condiciones similares a las descritas anteriormente para la reacción análoga descrita en la Ecuación (1). Sin embargo, si el tripéptido está inicialmente presente como hidrocloruro (u otra sal de ácido), un equivalente molar de una base, tal como una amina terciaria (por ejemplo una trialquilamina, particularmente trietilamina), se debe añadir en primer lugar a la mezcla de reacción para liberar la amina libre.
El compuesto intermediario C-1 se puede aislar y purificar fácilmente evaporando el disolvente y repartiendo el residuo entre agua y un disolvente orgánico apropiado, tal como terc-butilmetiléter. El desarrollo de la fase acuosa proporciona el producto bruto, que se puede purificar por cristalización, típicamente en dos etapas, en primer lugar a partir de isopropanol y en segundo lugar a partir de una mezcla con una relación de volumen/volumen de 5:1 de acetato de etilo y metanol.
El intermediario tripéptido N-protegido se puede entonces acoplar a un segundo intermediario polipéptido (F) que se prepara por separado mediante química de solución-fase estándar, para proporcionar el intermediario oligopéptido N-protegido (B).
10
en el que Prot es un grupo de protección de ácido carboxílico como se ha descrito anteriormente.
Al efecto de la reacción de acoplamiento de péptido, se suele emplear un agente de activación de carboxilo en presencia de una base y opcionalmente en presencia de un aditivo. El agente de activación de carboxilo se puede seleccionar a partir del grupo que incluye, pero no se limita a, 2-(1H-benzotriazol-1-il)-1,3,3-tetrametiluronio hexafluorofosfato (conocido como HBTU), 1-hidroxibenzotriazol hidrato (conocido como HOBT), diciclohexilcarbodiimida (DCC), N-etil-N-(3-dimetilaminopropil)-carbodiimida (EDC), difenilfosforilazido (DPPA), benzotriazol-1-iloxitris-(dimetilamino)fosfonio hexafluorofosfato (BOP), 1,3-diisopropilcarbodiimida (DIC) y similares, usados en combinación o aisladamente. Preferiblemente, el agente de activación de carboxilo se selecciona a partir de EDC, DIC y DCC. Más preferiblemente, el agente de activación de carboxilo es EDC.
La reacción de acoplamiento de péptido también puede comprender una base, tal como colidina, litidina, piridina, tiretilamina, base de Hünig (iPr)_{2}Net), N-etilmorfolina y similares. Preferiblemente, la base se selecciona a partir de colidina, N-etilmorfolina y lutidina. Más preferiblemente, la base es N-etilmorfolina. La reacción de acoplamiento de péptido también puede comprender un aditivo, tal como 1-hidroxi-7-azabenzotriazol (HOAt),
1-hidroxibenzotriazol (HOBt), N-hidroxisuccinimida, N-óxido de piridina, N-óxido de 4-hidroxipiridina y similares. Preferiblemente, el aditivo se selecciona a partir de HOAt, N-óxido de 4-hidroxipiridina y HOBt. Más preferiblemente, el aditivo es N-óxido de 4-hidroxipiridina. La reacción de acoplamiento de péptido también puede comprende un disolvente. Tal disolvente se puede seleccionar a partir de N,N-dimetilformamida, (DMF), N,N-dimetilacetamida (DMAc), N-metilpiperidona (NMP), THF acuoso, y similares. Preferiblemente el disolvente se selecciona a
partir de un disolvente orgánico aprótico polar, tal como DMF, DMAc, NMP y similares. Más preferiblemente, el disolvente es DMF.
Preferiblemente, Prot es un grupo bencilo, que se puede retirar por hidrogenación catalítica, de manera que el tratamiento con H_{2} sobre Pd/C o similar (H. Paulsen. y M. Schult, Liebigs, Ann. Chem. 1986:1435-1447; R. C. Kelly et al.,J. Org. Chem. 51:4590-4594 (1986)). Preferiblemente, la retirada del grupo benzilo por hidrogenación se lleva a cabo en ausencia de ácido. Sin embargo, la hidrogenación se puede efectuar en presencia adicional de un ácido orgánico, tal como ácido metanosulfónico, ácido toluenosulfónico y similares. Cuando se añade ácido a la reacción por hidrogenación, el ácido es preferiblemente ácido metanosulfónico.
Un ejemplo específico del presente procedimiento es uno en el que el tetrapéptido protegido de terminal C de la fórmula F es Chg-Gln-Ser-Leu protegido de terminal C, en el que Chg es ciclohexilglicina. Esta síntesis específica se ilustra en el siguiente esquema.
11
Preferiblemente, respecto de la síntesis del compuesto de fórmula B-1, el producto bruto de la reacción de desprotección ilustrado anteriormente se purifica por puesta en suspensión del producto bruto en un solvente polar, tal como metanol, etanol y similares, y añadiendo, a continuación, un antidisolvente, tal como acetato de etilo, acetato de isopropilo y similares, y recogiendo después el compuesto purificado B-1. Preferiblemente, este procedimiento de purificación por puesta en suspensión (que también se puede denominar "purificación por remoción") se realiza dos veces sobre el producto bruto de la desprotección.
El intermediario (B) se puede entonces acoplar a un agente citotóxico (tal como doxorubicina, como se muestra en el siguiente esquema) para proporcionar el conjugado PSA deseado, como se ilustra en el siguiente esquema.
12
13
Los siguientes ejemplos no limitativos ilustran el procedimiento de la presente invención.
Ejemplo 1 Procedimiento experimental para la preparación de Fm-glutaril-Hip-Ala-Ser-OH Etapa 1 Boc-trans-4-hidroxi-L-prolina
14
Una solución de trans-4-hidroxi-L-prolina (3,0 kg, 22,88 M) en hidróxido de sodio acuoso 1 M (25,2 l) y terc-butanol (12,0 l) se trató con una solución de di-terc-butildicarbonato (5,09 kg) en terc-butanol (6,0 l) a 20ºC durante 20 minutos. Al realizarse la adición completa, se agitó la solución resultante a 20ºC durante 2 horas. Se extrajo la solución con hexano (2 x 15,0 l) y a continuación se acidificó a un pH de entre 1 y 1,5 por adición controlada de una solución de sulfato de hidrógeno y potasio (3,6 kg) en agua (15,0 l). La mezcla se extrajo con acetato de etilo (3 x
15,0 l). Los extractos combinados de acetato de etilo se lavaron con agua (2 x 1,0 l) y se secaron por destilación azeotrópica a presión atmosférica.
La solución de acetato de etilo se concentró a continuación por destilación atmosférica a un volumen de 15,0 l, se diluyó con hexano (8,0 l), se cultivó y se agitó a 20ºC durante 1 hora. El hexano (22,5 l) se añadió durante 2 horas, la suspensión se enfrió a 0ºC durante 1 hora y el sólido se recogió por filtración. El producto se lavó con hexano/acetato de etilo frío a 0ºC (15,0 l) en una relación de 2:1 y se secó a vacío a 45ºC para proporcionar el compuesto del título en forma de un sólido cristalino blanco. Rendimiento: 4,306 kg, 81%. HPLC: >99 A%.
Etapa 2 Ester de Boc-trans-4-hidroxi-L-prolina pentafluorofenilo
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Se disolvieron Boc-trans-4-hidroxi-L-prolina (3,5 kg) y pentafluorofenol (3,06 kg) en acetato de etilo (52 l). La solución se trató con una solución de diciclohexilcarbodiimida (3,43 kg) en acetato de etilo (8 l) y la mezcla se agitó a temperatura ambiente durante 2 horas. La suspensión resultante se enfrió a 0ºC , se filtró y los sólidos se lavaron con acetato de etilo (15 l). El filtrado se evaporó a presión atmosférica a un volumen de 10 l y se diluyó con hexano
(100 l). La mezcla resultante se agitó a temperatura ambiente durante una noche y a continuación se enfrió a 0ºC durante 1 hora. El sólido se recogió por filtración, se lavó con hexano/acetato de etilo frío a 0ºC (15, l) con una relación de 10:1 y se secó a vacío a 45ºC para proporcionar el compuesto del título en forma de un sólido cristalino blanco. Rendimiento: 5,478 kg, 91%. HPLC: >99 A%.
Etapa 3 Glutarato de fluorenilmetilo
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Se agito 9-fluorenilmetanol (2,0 kg), anhídrido glutárico (2,33 kg) y bicarbonato sódico (1,71 kg), todo junto en N-metilpirrolidinona (8,0 l) a temperatura ambiente durante 72 horas. La suspensión se filtró y los sólidos se lavaron con acetato de isopropilo (2 x 10,0 l). El filtrado se lavó con ácido clorhídrico 1,0 M (3 x 10,0 l). La fase orgánica se extrajo con hidróxido de sodio acuoso 1,0 M (3 x 8,0 l). Los extractos básico combinados se cubrieron con acetato de isopropilo (20,0 l) y se acidificaron a un pH 2 con ácido clorhídrico 2,0 M (12,5 l). Las fases se separaron y la fase acuosa se extrajo con acetato de isopropilo (10,0 L).
Las fases orgánicas combinadas se lavaron con agua (10,0 l) y se secaron por destilación azeotrópica a <60ºC a presión reducida (KF<0,05%). La solución se concentró entonces a presión reducida (<60ºC) a un volumen de 7,0 L. La solución se diluyó entonces con hexano (6,0 l), se cultivó y se agitó a temperatura ambiente durante 30 minutos. La suspensión resultante se diluyó por adición de hexano (42,0 l) durante 40 minutos. La suspensión se enfrió a 0ºC durante 1 hora y el sólido se recogió por filtración y se lavó con hexano/acetato de isopropilo frío a 0ºC (20,0 l) con una relación de 8:1. El sólido se secó a vacío a 45ºC para proporcionar el compuesto del título en forma de un sólido color crema pálido. Rendimiento: 2,676 kg, 85%. HPLC: >99 A%
Etapa 4 Éster de fluornilmetil glutarato pentafluorofenilo
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19
Se disolvió glutarato de fluorenilmetilo (2,5 kg) y pentafluorofenol (1,63 kg) en acetato de etilo (25 l). La solución se trató con una solución de diciclohexilcarbodiimida (1,83 kg) en acetato de etilo (7,5 l) y la mezcla se agitó a 20ºC durante una noche. La suspensión resultante se filtró y los sólidos se lavaron con acetato de etilo (10 l). El filtrado se evaporó a presión atmosférica a un volumen de 7,5 l y se diluyó con hexano (75 l). La suspensión se filtró a 60-65ºC y se enfrió a temperatura ambiente y se agitó durante una noche. La suspensión se enfrió a 0ºC durante 1 hora, el sólido se recogió por filtración y se lavó con hexano/acetato de etilo (15 l) en una relación de 10:1. El sólido se secó a vacío a 45ºC para proporcionar el compuesto del título en forma de un sólido cristalino blanco. Rendimiento: 3,553 kg, 93%. HPLC: >99 A%
Etapa 5 HCl.Hip-Ala-Ser-OH
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Se calentó Ala-Ser-OH (1,5 kg, 8,515 M) y Boc-trans-4-hidroxi-L- prolina (3,72 kg) a 50ºC en dimetilformamida (15 l) durante 3 horas. La solución se enfrió a 20ºC, se trató con ácido clorhídrico concentrado (7,5 l) y se agitó a temperatura ambiente durante 24 horas. La suspensión resultante se diluyó con isopropanol (30 l), se agitó a temperatura ambiente durante 30 minutos y se enfrió a 0ºC durante 1 hora. El sólido se recogió por filtración y se lavó con isopropanol (20 l). El sólido se secó a vacío a 40ºC para proporcionar el compuesto del título en forma de un sólido cristalino blanco. Rendimiento: 2,505 kg, 90%. HPLC: >99 A%.
Etapa 6 Fm-glutaril-Hip-Ala-Ser-OH
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Se suspendió HCl.Hip-Ala-Ser-OH (2,3 kg) en dimetilformamida (22 l) y la suspensión se trató con N-etilmorfolina (911 ml) seguido de una solución del mismor de fluorenilmetil glutarato pentafluorofenilo (3,5 kg) en dimetilformamida (14 l). La mezcla se calentó a 50ºC durante 3 horas y la solución resultante se evaporó para obtener un residuo a presión reducida. El residuo se repartió entre agua (80 l) y terc-butilmetil éter (34 l). Las fases se separaron y la fase acuosa se extrajo con terc-butilmetiléter (34 l) La solución acuosa se cultivó y se agitó a temperatura ambiente durante una noche. El sólido se recogió por filtración (lenta) y se lavó con agua (25 l). La torta filtrante de vapor se disolvió en isopropanol (90 l) con calentamiento y la solución se concentró a medio volumen por destilación a presión atmosférica. Las partes adiciones del isopropanol (3 x 45 l) se añadieron y el lote se concentró a aproximadamente medio volumen por destilación atmosférica después de la adición de media parte. La suspensión se diluyó con isopropanol (23 l), se agitó a 20 ºC durante una noche, se enfrió a 0ºC durante 1 hora y el sólido se recogió por filtración. La torta se lavó con isopropanol (20 l) y el sólido se secó a vacío a 45ºC para proporcionar el producto bruto en forma de un sólido blanco. Rendimiento: 3,447 kg, 84%. HPLC: >99,0 A%
Etapa 7 Recristalización de Fm-Glutaril-Hip-Ala-Ser-OH
Se disolvió Fm-glutaril-Hip-Ala-Ser-OH (3,4 kg) en metanol (51 l) a reflujo. La solución se filtró y se concentró por destilación atmosférica a un volumen de 17 (5 ml/g). La solución se diluyó con acetato de etilo (102 l), se enfrió a 20ºC y se agitó durante una noche. La suspensión resultante se enfrió a 0ºC durante 1 hora y el sólido se recogió por filtración. La torta se lavó con acetato de etilo/metanol frío (20 l) a 0ºC con una relación de 10:1 y se secó a vacío a 45ºC para proporcionar el producto en forma de un sólido blanco. Recuperación: 3,349 kg, 98,5%. HPLC; 99,3 A%.
^{13}C RMN (100,62 MHz, DMSO-d_{6}, 50ºC):
Los cambios químicos en ppm se expresaron en la línea central del solvente DMSO a 39,9 ppm.
173,5 173,0, 172,6, 172,3, 171,8 (C=O); 144,6, 141,7, 128,6, 128,0, 125,9, 121,0, (CH y C aromático); 69,6, 59,3, 55,5, 49,0, 47,3, (CH); 66,2, 59,4, 56,0, 38,7, 33,7*, 20,65, (CH_{2}); 185, (CH_{3}).
* Dos carbonos diferentes en el mismo desplazamiento químico.
Ejemplo 2 Procedimiento experimental para la preparación de HCl.H-Chg-Gln-Ser-Leu-O-bencilo
22
23
\vskip1.000000\baselineskip
24
240
Tetrapéptido
\vskip1.000000\baselineskip
Etapa 1 HCl.H-Ser-Leu-O-bencilo
25
\newpage
Se puso en suspensión leucina bencil éster p-tolisato (1.000 g) y HOBt (412 g) en acetato de isopropilo (12 l). La mezcla se enfrió a 0ºC en un baño de hielo y una suspensión de bicarbonato sódico (469,7) en agua (1 l), se añadió N-BOC-L-serina (573,6 g) en agua (2 l) y EDC.HCl (560,2 g) en agua (2 l).La mezcla se calentó a 20ºC durante 30 minutos y se maduró a 20ºC durante dos horas. Si la reacción no se completó después de dos horas, se añadió, además, NaHCO_{3} y EDC.HDl. Se separaron las fases y la fase orgánica se lavó secuencialmente con bicarbonato sódico saturado (2 x 3,75 l), sulfato de hidrógeno y sodio 0,5 M (2, 3,75 l) y agua (2, 2,5 l).
La solución húmeda de acetato de isopropilo se concentró a presión reducida a 3 l y se verificó el contenido de agua. (KF = 0,12%. Es importante que esta solución esté seca antes de la adición del cloruro de hidrógeno en acetato de isopropilo). La solución se transfirió a un matraz de fondo redondo de 20 litros bajo atmósfera de nitrógeno y se enfrió a 0ºC. A la solución se añadió HCl 3,6 M en acetato de isopropilo (7 l, 10 mol equiv. HCL). El producto empezó a cristalizar después de 5 minutos. La reacción maduró a 0ºC durante una hora, y a continuación se calentó a temperatura ambiente.
La suspensión se enfrió a entre 0 y 5ºC, se diluyó con heptano (2,5 l) y maduró a 0ºC durante 30 minutos. El producto se recogió por filtración, se lavó con acetato de ispopropilo/heptano frío (2,5 l) con una relación de 4:1 y se secó a vacío a 35ºC con un barrido de nitrógeno. Rendimiento : 824,6 g, 94%. LCAP: >99,5 A% a 210 nm (punto de fusión = 158-160ºC).
Etapa 2 N-Boc-Gln-Ser-Leu-O-bencilo
26
27
Se puso en suspensión HCl.H-Ser-Leu-OBn- (350 g), HOBt (157,7 g) y N-Boc-L-glutamina (262,5 g) en DMF (2,5 l) y la mezcla se enfrió a 0ºC. Se añadió N-etilmorfolina (245,5) y EDC.HCl (214 g) y la mezcla maduró a 0ºC durante 2,5 horas. Se añadió agua (14,7 l) durante 20 minutos y la suspensión blanca se maduro a 0ºC durante 1 hora. El producto se recogió por filtración y se lavó con agua (3,2 l). La torta se secó en la campana de humos durante una noche. El N-BOC-Gln-Ser-Leu-OBn aislado, que contenía DMF y HOBt, se combinó con un segundo lote de idénticas dimensiones, y se removió en agua (12 l) a 20ºC durante 1 hora. El producto se recogió por filtración, se lavó con agua (2,5 l) y se seco con aire en una campana de humos durante un fin de semana. El lote se secó a vacío a 42ºC con una descarga de nitrógeno. Rendimiento para los lotes combinados = 1.037,4 g, 93,8%. HLPC >98,7 A% (punto de
fusión = 145-147ºC).
Etapa 3 HCl.H-Gln-Ser-Leu-O-bencilo
28
29
Se puso en suspensión Boc-Gln-Ser-Leu-OBn- (715 g, 133 M) en acetato de isopropilo (3,5 l) a temperatura ambiente. Se añadió a la suspensión una solución 3,8 M de HCl en acetato de isopropilo (3,5 l, 13,3 M), después de lo cual, todos los sólidos se disolvieron. Después de un corto periodo de tiempo, el producto se cristalizó. La mezcla se agitó a temperatura ambiente durante 3,75 horas cuando la HPLC mostró la reacción completa.. La suspensión se diluyó con acetato de isopropilo (4,0 l), se agitó durante 1 hora a temperatura ambiente y el sólido se recogió por filtración bajo atmósfera de nitrógeno. El producto es muy higroscópico en presencia de un exceso de HCl y se debe recoger bajo atmósfera de nitrógeno seco.
La torta se lavó con acetato de isopropilo (4,0 l), el sólido se secó en el filtro bajo atmósfera de nitrógeno durante 2 horas y a continuación se secó a vacío a 45ºC. Rendimiento: 622,8 g, 99%. HLPC 96,4 A%.
Etapa 4 BOC-Chg-Gln-Ser-Leu-O-bencilo (SEQ.ID.NO.: 4)
30
31
Se disolvió HCl.H-Gln-Ser-Leu-OBn- (2,6 kg) Boc-L-ciclohexilglicina (1,414 kg) e hidrato de HOBt (168 g) en DMF (13,0 l). Se añadió N-etilmorfolina (1,266 kg, 11,0 M) e hidrocloruro de EDC (1,265 kg) y la mezcla se agitó a 20ºC durante 3 horas. La solución se diluyó con acetato de etilo (13,0 l) y se añadió agua (26,0 l). El producto se precipitó y la suspensión se agitó a temperatura ambiente durante 1 hora. El sólido se recogió por filtración, se lavó con acetato de etilo/agua (60 l) en una relación de 1:1, se secó sobre el filtro bajo atmósfera de nitrógeno durante 24 horas y se secó a vacío a 45ºC. El compuesto del título se obtuvo en forma de un sólido blanco. Rendimiento:
3,449 kg, 93%. HLPC 96,0 A%.
Etapa 5 HCl.H-Chg-Gln-Ser-Leu-O-bencilo (SEQ.ID.NO.: 1)
32
33
Tetrapéptido
Se puso en suspensión N-Boc-Chg-Gln-Ser-Leu-OBn- (1.850 g) en acetato de isopropilo (3,2 l). La suspensión se enfrió a 0ºC en un baño de hielo y se añadió HCL 3,8 M/acetato isopropilo (3,7 l, 11,4 mol equiv.) durante 5 minutos, manteniendo la temperatura entre 8ºC y 10ºC. El material de partida se disolvió después de 15-20 minutos. La solución se cultivó y la reacción se maduró a 8ºC-10ºC durante 2 horas, (<1A% de resto de N-Boc-tetrapéptido-OBn). El lote se filtró, bajo una capa de nitrógeno, se lavó con acetato de isopropilo frío a 10ºC (4 x 3 l), y a continuación se secó en el filtro bajo atmósfera de nitrógeno. El sólido se secó a vacío a 40ºC. Rendimiento: 795,9 g (ensayo del 76% en peso, 83,5%A)
Etapa 6 Procedimiento de cambio
Se puso en suspensión HCl.Chg-Gln-Ser-Leu (2,2 kg) en metanol (22,3 l) a temperatura ambiente. El lote se agitó durante 1 hora y ,a continuación, se añadió acetato de etilo (44,6 l) durante 30 minutos. El lote se enfrió a 0,5ºC, se maduró durante 1 hora, a continuación se filtró y se lavó con metanol/acetato de etilo frío entre 0 y 5ºC (6 l, 1:2). El sólido se secó en el filtro, bajo atmósfera de nitrógeno durante 45 minutos y, a continuación, se secó a vacío a 40ºC, con un barrido de nitrógeno. Se obtuvo HCl.tetrapéptido (1,478 kg, 95,7 A% (210 nm), 90,4% peso/peso) con una recuperación del 83,1 de N-Boc.tetrapéptido-OBn.
El HCl.tetrapéptido (1,478 kg) se puso en suspensión en metanol (14,8 l) a temperatura ambiente y el lote se agitó durante 1 hora. Se añadió acetato de etilo (29,6 l) durante 30 minutos, el lote se enfrió entre 0 y 5ºC y se maduró durante 1 hora. El sólido recogido por filtración, se lavó con metanol/acetato de etilo frío (0-5ºC) (4,5 l, 1:2), se secó sobre el filtro durante 45 minutos, bajo atmósfera de nitrógeno, y a continuación, se secó a vacío, a 40ºC. Se obtuvo HCl.tetrapéptido (1,343 kg, 97,5 A% (210 nm), 96,3% peso/peso, punto de fusión: 254-256ºC) con un rendimiento de 61% de N- Boc.tetrapéptido-OBn.
^{13}C RMN (100,62 MHz, DMSO-d_{6}, 50ºC):
Los cambios químicos en ppm se expresaron en la línea central del solvente DMSO a 39,5 ppm.
174,9 172,9, 171,5, 170,8, 168,6 (C=O); 136,8, 129,3, 128,9, 128,6 (CH y C aromático); 57,8, 56,1, 53,3, 51,5, 39,9, 29,2, (CH); 66,8, 62,5, 32,4, 29,0, 28,8, 26,4, 26,3, 25,1, (CH_{2}); 23,5, 22,4, (CH_{3}).
Ejemplo 3 Fm-Glutaril-Hip-Ala-Ser-Chg-Gln-Ser-Leu-OH (SEQ.ID.NO.:5)
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35
47
Etapa 1 Fm-Glutaril-Hip-Ala-Ser-Chg-Gln-Ser-Leu-O-bencilo (SEQ.ID.NO.: 6)
Se pusieron en suspensión HCl.H-Chg-Gln-Ser-Leu-OBn (500 g), Fm-Glutaril-Hip-Ala-Ser-OH (490 g) y HOAt (160 g) en DMF (8,2 l) y se enfriaron a 2ºC en un baño de hielo. Se añadió N-etilmorfolina (135 ml) seguido de EDC.HCl (210 g). La mezcla se agitó a 0ºC-2ºC durante 2 horas y se muestreó. La HPLC mostró un resto de 0,2 A% de tetrapéptido. La mezcla de reacción se diluyó con acetato de etilo (4 l) y se transfirió a un recipiente de vidrio de 30 galones (0,1136 m^{3}) a través de un filtro en línea de 5\mu. El matraz y las líneas se lavaron con acetato de etilo/DMF (1:1, 500 ml) y acetato de etilo (4 l). Se añadió agua (16,4 l) durante 25 minutos (temperatura 11ºC a 23ºC) y la mezcla se agitó lentamente, a 20ºC durante 30 minutos. El producto se recogió por filtración, se lavó con agua (3 l), acetato de etilo (1 l) y agua (2 x 3 l); a continuación, se secó sobre el filtro bajo atmósfera de nitrógeno, y se secó a vacío a 45ºC. Rendimiento = 900 g, rendimiento del 97,0%. HLPC: 96,5A%.
Etapa 1 alternativa
Fm-Glutaril-Hip-Ala-Ser-Chg-Gln-Ser-Leu-O-bencilo (SEQ.ID.NO.: 6)
Se puso en suspensión HCl.H-Chg-Gln-Ser-Leu-OBn (100 g), Fm-Glutaril-Hip-Ala-Ser-OH (98 g) y 4-hidroipiridina-N-óxido (HOPO, 18,2 g) en DMF (1,6 l) y se enfrió a 2ºC en un baño de hielo. Se añadió N-etilmorfolina (27 ml) seguido de EDC.HCl (42 g). La mezcla se agitó entre 2ºC y 5ºC durante 4 horas y se muestreó. La HPLC mostró un resto de 0,6 A% de tetrapéptido. La mezcla de reacción se diluyó con acetato de etilo (1,64 l), y se añadió agua (3,3 l) durante 70 minutos y la mezcla se agitó lentamente a 20ºC durante 60 minutos. El producto se recogió por filtración, se lavó con agua (1,5 l), acetato de etilo (1 l) y agua (3 x 1 l), a continuación se secó sobre el filtro bajo atmósfera de nitrógeno, y se secó a vacío a 45ºC. Rendimiento = 186 g, rendimiento del 100.0%. HLPC: 98,0A%.
Etapa 2 Fm-Glutaril-Hip-Ala-Ser-Chg-Gln-Ser-Leu-OH (SEQ.ID.NO.: 5)
Se disolvió Fm-Glutaril-Hip-Ala-Ser-Chg-Gln-Ser-Leu-OBn (preparado como se describe en la etapa 1 ó 1 etapa 1 alternativa) (1,1 kg) en dimetilacetamida (7,8 l) que contiene ácido metanosulfónico (93,5 ml). Se añadió 5% de Pd/C (110 g, 10% en peso) puesto en suspensión en DMA (1,0 l), y la mezcla se hidrógeno a presión atmosférica durante 1 hora y 40 minutos. La mezcla de reacción se muestreó: la HPLC no mostró resto de material de partida.
La mezcla de reacción se filtró a través de un lecho (DMA) prehumedecido de Hyflo™ (500 g) para retirar el catalizador. El lecho de hyflo se lavó con DMA (2,2 l) y a continuación con acetato de etilo (5,5 l). El filtrado se diluyó con acetato de etilo (5,5 l) y se agitó durante 15 minutos. El agua (44 l) se añadió durante 40 minutos y el lote se maduró durante 1 hora. El sólido se recogió por filtración, se lavó con agua (1 x 10 l, 3 x 20 l), se secó sobre el filtro bajo un manto de nitrógeno y se seco a vacío a 45ºC. Rendimiento = 862,5 g, rendimiento del 85%. HLPC: 88,3A%.
Etapa 3 Purificación por remoción de Fm-Glutaril-Hip-Ala-Ser-Chg-Gln-Ser-Leu-OH
Se cribó Fm-Glutaril-Hip-Ala-Ser-Chg-Gln-Ser-Leu-OBn en bruto (preparado como se describe en la etapa 2) (2,58 kg) con una recuperación del 99% (2,56 kg). El sólido (2,56 kg) se removió en acetato de etilo durante 3 día. El sólido se recogió por filtración, se lavó con acetato de etilo (26 l), se secó sobre el filtro bajo nitrógeno y se seco a vacío a 40ºC. Rendimiento = 2,489 kg, recuperación del 96,5%. [95,2!63!% por HLPC a 210 nm; KF = 0,77 % en peso; TGA = 1,30% en peso, AcOEt = 0,51% en peso.
^{13}C RMN (100,62 MHz, DMSO-d_{6}, 70ºC):
Los cambios químicos en ppm se expresaron en la línea central del solvente DMSO a 39,5 ppm.
174,8 173,3, 172,7, 171,9, 171,5, 171,1, 170,6, (C=O); 144,7, 141,7, 128,5, 127,9, 125,7, 120,8 (CH y C aromático); 59,7, 58,7, 56,3, 56,0, 51,6, 49,7, 47,6, 40,6, 33,9, (CH); 66,7, 62,2, 40,6, 32,4, 30,0, 28,9, 28,5, 26,6, 26,5, 26,4, 23,4, 22,6, 20,7, (CH_{2}); 23,4, (CH_{3}).
Procedimiento de hidrogenación alternativo sin adición de ácido metanosulfónico
Etapa 2 alternativa
Fm-Glutaril-Hip-Ala-Ser-Chg-Gln-Ser-Leu-OH
Se disolvió Fm-Glutaril-Hip-Ala-Ser-Chg-Gln-Ser-Leu-OBn (preparado como se describe en la etapa 1 o en la etapa 1 alternativa) (200 g) en dimetilacetamida (1,9 l) a 45-50ºC. Se añadió 5% de Pd/C (20 g, 10% en peso) puesto en suspensión en DMA (100 ml),y la suspensión se enfrió entre -5 y -10ºC. La mezcla se hidrógeno a presión atmosférica manteniendo la temperatura entre -10 y -5ºC durante 5,5 horas. La mezcla de reacción se muestreó y la HPLC mostró la reacción completa.
La mezcla se filtró mientras estaba todavía fría (<0ºC) a través de un lecho (DMA) prehumedecido de Hyflo™ (100 g). El filtrado se diluyó con acetato de etilo (2,5 l) y se añadió agua (8,0 l) durante 1 hora y 15 minutos. El lote se maduró durante 1 hora más y el sólido se recogió por filtración. La torta se lavó con agua (8,0 l) tragada sobre el filtro, y a continuación se secó a vacío a 45ºC con un barrido de nitrógeno. Rendimiento = 179,9 g, rendimiento del 97,5%. HLPC: 85,6A%.
Etapa 3 alternativa
Purificación por remoción de Fm-Glutaril-Hip-Ala-Ser-Chg-Gln-Ser-Leu-OH
Se trituró Fm-Glutaril-Hip-Ala-Ser-Chg-Gln-Ser-Leu-OBn (preparado como se describe en la etapa 2) (368,3 g) en bruto en un mortero y se removió en acetato de etilo (3,5 l) a temperatura ambiente durante 3 horas. El sólido se recogió por filtración, se lavó con acetato de etilo (1,5 l), se secó sobre el filtro y se seco a vacío a 45ºC.
Rendimiento = 342,9 g, recuperación del 93,0%. [94,9A% por HLPC a 210 nm; KF = 2,01 % en peso; TGA = 5,35% en peso].

Claims (32)

1. Un procedimiento de preparación de un compuesto de fórmula B:
BFmO-
\uelm{C}{\uelm{\dpara}{O}}
-(CH_{2})_{r}-
\uelm{C}{\uelm{\dpara}{O}}
-(4-Hyp)-Ala-Ser- AA_{4}-AA_{5}-AA_{6}-AA_{7}
o una sal del mismo
en la que AA_{4}, AA_{5}, AA_{6} y AA_{7} son independientemente seleccionados a partir de un aminoácido natural o no natural, y
r es 2 ó 3,
que comprende la etapa de hacer reaccionar el diéster de la fórmula E:
1
con el tripéptido D:
2
o una sal del mismo;
para proporcionar un intermediario de la fórmula C-1:
3
o una sal del mismo
2. El procedimiento según la reivindicación 1, en el que una sal de ácido del tripéptido de la fórmula D se hace reaccionar con el diéster de la fórmula E en presencia de una base.
3. El procedimiento según la reivindicación 2, en el que la base es una trialquilamina
4. El procedimiento según la reivindicación 2, en el que la base es trietilamina.
5. El procedimiento según la reivindicación 1, que comprende, además, la etapa adicional de hacer reaccionar el intermediario de la fórmula C-1 con un tetrapéptido de la fórmula F:
36
en la que Prot es un grupo protector de ácido carboxílico para proporcionar un compuesto de la fórmula:
37
6. El procedimiento según la reivindicación 5, que comprende, además, la etapa adicional de desproteger el terminal C del compuesto de la fórmula:
37
7. El procedimiento según la reivindicación 5 en el que Prot es benzilo.
8. El procedimiento según la reivindicación 7 que comprende, además, la etapa adicional de tratar el compuesto de la fórmula:
37
en la que Prot es benzilo con hidrógeno (H_{2}) en presencia de paladio sobre carbono.
9. El procedimiento según la reivindicación 7 que comprende, además, la etapa adicional de tratar el compuesto de la fórmula:
37
en la que Prot es benzilo, con hidrógeno (H_{2}) en presencia de paladio sobre carbono, opcionalmente en presencia de un ácido orgánico.
10. El procedimiento según la reivindicación 9 en el que la hidrogenación se efectúa en ausencia de ácido.
11. El procedimiento según la reivindicación 9 en el que el ácido orgánico es ácido metanosulfónico.
12. El procedimiento según la reivindicación 1 en el que el resto AA_{4}-AA_{5}-AA_{6}-AA_{7} es ciclohexilglicina-Gln-Ser-Leu.
13. El procedimiento según la reivindicación 5 en el que el resto AA_{4}-AA_{5}-AA_{6}-AA_{7} es ciclohexilglicina-Gln-Ser-Leu.
14. El procedimiento según la reivindicación 1 en el que r es 3.
15. El procedimiento según la reivindicación 5 en el que r es 3.
16. El procedimiento según la reivindicación 1 que comprende, además, la etapa adicional de hacer reaccionar el dipéptido de la fórmula:
38
con la prolina N-protegida de la fórmula:
39
en la que X es un grupo aminoprotector.
17. El procedimiento según la reivindicación 5, en el que r es 3 y el resto AA_{4}-AA_{5}-AA_{6}-AA_{7} es ciclohexilglicina-Gln-Ser-Leu, que comprende, además, la etapa de hacer reaccionar el compuesto tripéptido de la fórmula C-1a:
40
o una sal del mismo;
con el compuesto tetrapéptido de la fórmula F-1.
41
o una sal del mismo.
18. El procedimiento según la reivindicación 17 en el que el compuesto de la fórmula C-1a se hace reaccionar con el compuesto de la fórmula F-1 en presencia de un agente de activación de carboxilo y una base.
19. El procedimiento según la reivindicación 17 en el que el compuesto de la fórmula C1a se hace reaccionar con el compuesto de la fórmula F-1 en presencia de un agente de activación de carboxilo y una base y adicionalmente en presencia de un aditivo.
20. El procedimiento según la reivindicación 19 en el que el aditivo comprende HOAT (1-hidroxi-7-azabenxotriazol), HOBT (1-hidroxibenzotriazol) o N-óxido de 4-hidroxipiridina.
21. El procedimiento según la reivindicación 19 en el que el aditivo es N-óxido de 4-hidroxipiridina.
22. El procedimiento según la reivindicación 17 en el que Prot es bencilo.
23. El procedimiento según la reivindicación 22 que comprende, además, la etapa adicional de tratar el compuesto de la fórmula:
42
en la que Prot es benzilo, con hidrógeno (H_{2}) en presencia de paladio sobre carbono.
24. El procedimiento según la reivindicación 22 que comprende, además, la etapa adicional de tratar el compuesto de la fórmula:
42
en la que Prot es benzilo, con hidrógeno (H_{2}) en presencia de paladio sobre carbono y un ácido orgánico.
25. El procedimiento según la reivindicación 24, en el que el ácido orgánico es ácido metanosulfónico.
26. El procedimiento según la reivindicación 23 que comprende, además, la etapa de purificar el producto bruto a partir del tratamiento con hidrógeno en presencia de paladio sobre carbono poniendo en suspensión el producto bruto en un disolvente polar y añadiendo un antidisolvente.
27. El procedimiento según la reivindicación 26 que comprende, además, la etapa de purificar el producto bruto a partir del tratamiento con hidrógeno en presencia de paladio sobre carbono poniendo en suspensión el producto bruto en un disolvente polar y añadiendo un antidisolvente.
28. El procedimiento según la reivindicación 26 en el que el antidisolvente comprende acetato de etilo o acetato de isopropilo.
29. El procedimiento según la reivindicación 26 en el que el antidisolvente es acetato de etilo.
30. Un compuesto de la fórmula C-1a:
43
o una sal del mismo.
31. Un compuesto de la fórmula
44
o una sal del mismo.
32. Un compuesto de la fórmula E:
45
o una sal del mismo.
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