EP1357927A1 - Agent hypocholesterolemiant - Google Patents

Agent hypocholesterolemiant

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EP1357927A1
EP1357927A1 EP02703579A EP02703579A EP1357927A1 EP 1357927 A1 EP1357927 A1 EP 1357927A1 EP 02703579 A EP02703579 A EP 02703579A EP 02703579 A EP02703579 A EP 02703579A EP 1357927 A1 EP1357927 A1 EP 1357927A1
Authority
EP
European Patent Office
Prior art keywords
cholesterol
solvent
pleurotus
lowering agent
ethyl acetate
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Withdrawn
Application number
EP02703579A
Other languages
German (de)
English (en)
Inventor
Hassan Hajjaj
Catherine Mace
Peter Niederberger
Laurent Bernard Fay
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Societe des Produits Nestle SA
Nestle SA
Original Assignee
Societe des Produits Nestle SA
Nestle SA
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Societe des Produits Nestle SA, Nestle SA filed Critical Societe des Produits Nestle SA
Priority to EP02703579A priority Critical patent/EP1357927A1/fr
Publication of EP1357927A1 publication Critical patent/EP1357927A1/fr
Withdrawn legal-status Critical Current

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    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K36/00—Medicinal preparations of undetermined constitution containing material from algae, lichens, fungi or plants, or derivatives thereof, e.g. traditional herbal medicines
    • A61K36/06—Fungi, e.g. yeasts
    • A61K36/07—Basidiomycota, e.g. Cryptococcus
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K36/00—Medicinal preparations of undetermined constitution containing material from algae, lichens, fungi or plants, or derivatives thereof, e.g. traditional herbal medicines
    • A61K36/06—Fungi, e.g. yeasts
    • A61K36/07—Basidiomycota, e.g. Cryptococcus
    • A61K36/074—Ganoderma
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00—Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • A61P9/10—Drugs for disorders of the cardiovascular system for treating ischaemic or atherosclerotic diseases, e.g. antianginal drugs, coronary vasodilators, drugs for myocardial infarction, retinopathy, cerebrovascula insufficiency, renal arteriosclerosis

Definitions

  • the present invention relates to a cholesterol-lowering agent derived from edible fungi.
  • the biosynthesis of cholesterol involves three major steps. The first, condensation, allows the transition from three acetyl-CoA to mevalonate. This condensation involves the participation, among others, of 3-Hydroxy-3-methylglutaryl-CoA-reductase (HMGCoA-reductase). The mevalonate thus formed is then polymerized into squalene via polyisoprene intermediates. Finally, squalene leads to cholesterol by cyclization / demethylation via the formation of reaction intermediates, among others lanosterol and its derivatives.
  • condensation allows the transition from three acetyl-CoA to mevalonate. This condensation involves the participation, among others, of 3-Hydroxy-3-methylglutaryl-CoA-reductase (HMGCoA-reductase).
  • HMGCoA-reductase 3-Hydroxy-3-methylglutaryl-CoA-reductase
  • Statins act very upstream, by inhibiting HMGCoA-reductase.
  • Lovastatin isolated and purified from various fungi and / or molds, has been used as a cholesterol-lowering agent in the form of a drug or nutritional supplement.
  • DE 4402591 describes the production and isolation of lovastatin and mevinolinic acid from Pleurotus ostreatus, as well as the use of these compounds to inhibit the biosynthesis of cholesterol.
  • the use of lovastatin requires isolation and purification before use.
  • the compounds of the class of statins, inhibitors of HMGCoA-reductase induce undesirable side effects.
  • HMGCoA-reductase is an enzyme which acts very upstream in the pathway of the cholesterol biosynthesis chain (transformation of HMGCoA into mevalonate), since its inhibition tends to modify the synthesis of other compounds derived from mevalonate.
  • mevalonate by suppressing the production of mevalonate, there is a decrease in the synthesis of various steroids, hormones, coenzyme Q10, isopentenyl tRNA, isoprenoid derivatives or dolichol for example.
  • the depletion of such metabolites is responsible, among other things, for liver and muscle disorders via an increase in the level of hepatic transaminases, for example (Hiyoshi et al, J. of Lipid Research, 2000, (41) 1136-1141).
  • KR 9303886 describes the preparation of cholesterol-lowering foods from medicinal mushrooms by drying, spraying, extraction with boiling water and concentration. It appears that such extracts act at the level of HMGCoA-reductase (Bobe et al, Casopis Lebaru Ceskych, 1997 136 (6) 186-190; Bobek et al, Experientia, 1995 51 (6) 589-591).
  • DE 4402591 mentioned above, also suggests that certain edible fungi are rich in HMGCoA-reductase inhibitors.
  • the object of the present invention is to provide a cholesterol-lowering agent, not derived from chemical synthesis and usable in a food product, acting on the end stages of the cholesterol biosynthesis chain.
  • the cholesterol-lowering agent according to the present invention comprises natural oxygenated lanosterol derivatives derived from edible fungi.
  • cholesterol lowering agent an agent which inhibits the synthesis of cholesterol and more particularly by acting on the terminal stages of the cholesterol biosynthesis chain, and this thanks to its content in oxygenated natural derivatives of lanosterol.
  • natural derivatives compounds which have not undergone any chemical modification by any means whatsoever. These are oxygenated lanosterol derivatives obtained directly from edible mushrooms.
  • “edible mushrooms” means mushrooms with a long tradition of food consumption. This means both mushrooms which are neither toxic nor poisonous, which are distinguished or not by their taste and / or aromatic qualities. It may, for example, be mushrooms chosen from the group comprising the following classification orders: Agaricalles, Aphyllophorales and Stereales. Preferably, they can be mushrooms chosen from the group comprising: Pleurotus eryngii, Pleurotus eous, Ganoderma lucidum, Grifola frondosa, Pleurotus ostrea tus, Agrocybe aegeri ta, Pholiota nameko, Pleurotus ci trinopilea tus and Flamulina velutipes.
  • the invention also relates to the use in a food product of a cholesterol-lowering agent. comprising natural oxygenated lanosterol derivatives from edible fungi.
  • the process for preparing the cholesterol-lowering agent according to the present invention comprises the following steps: maceration of an edible fungus in a first solvent,
  • the organic extract thus obtained after elimination of the aqueous phase represents the cholesterol-lowering agent rich in natural oxygenated lanosterol derivatives and is used for in vitro evaluations, fractionations and purifications.
  • the maceration stage can be preceded by a grinding stage and can be carried out with fresh or dried mushroom. This maceration can be carried out at room temperature or at a refrigeration temperature. Depending on the maceration temperature chosen, this will take place over a shorter or longer period. The maceration stage can thus be spread over a period which can be between 6 and 72 hours.
  • the first solvent used for this maceration can be methanol, ethanol or chloroform, for example, used alone or as a mixture.
  • the separation of the solid and liquid phases can be carried out by filtration on paper or on gauze, by centrifugation or by decantation, for example.
  • the dry extract obtained can be taken up with an amount of water of between 5 and 100% (v / v) relative to the amount of first solvent used for maceration.
  • the pH of this aqueous solution thus obtained can be adjusted to an acid pH value, ie to a value between 2 and 4, for example, before extraction using the second solvent.
  • This acidification can be carried out using hydrochloric acid, for example.
  • the aqueous solution thus obtained can be subjected to an extraction using a second solvent immiscible with water and of lower polarity than the first such as ethyl acetate, isopropanol or chloroform by example, volume to volume.
  • the second solvent will be chosen according to this double criterion of polarity lower than the first solvent and of immiscibility with water.
  • chloroform as the first solvent, for example, it will not constitute the second solvent and this second solvent will be chosen with a polarity lower than chloroform and immiscible with water.
  • Such an extraction can be carried out several times consecutively, for example.
  • the organic phase can be recovered by decantation, for example, and evaporated, preferably under vacuum at a temperature of the order of 25 to 35 ° C. Before this evaporation step, the phase organic may optionally be dried, for example using anhydrous NaSO 4 .
  • an extract is obtained in powder form rich in natural oxygenated lanosterol derivatives.
  • Such an extract can be added to a food product, for example.
  • the cholesterol-lowering effect of the present product is estimated qualitatively on the model of human liver cells T9A4 in in vitro culture. Although it is known that such results are not directly transferable in vivo to humans, they nevertheless provide useful indications.
  • the cholesterol-lowering effect is estimated by measuring the de novo synthesis of cholesterol on human liver cells in culture by measuring the incorporation of acetate-C 14 .
  • One method of evaluating this de novo synthesis is described in a method presented below.
  • the agent obtained after extraction from the fungus can be purified, fractionated, analyzed and characterized by liquid and gas chromatography, mass spectroscopy and nuclear magnetic resonance so as to identify the oxygenated lanosterol derivatives contained. The materials and methods used for such characterization are described in detail in the methods presented below.
  • Human T9A4 liver cells are grown on LCM medium (Biofluids, Rockville, MD) at 37 ° C at 3.5% C02. The cells are seeded in 24-well culture dishes and incubated until confluence with 1 mM C14 acetate (1 mCi / mol, Amersham) for 20 hours in the absence (control) or in the presence of the extract rich in oxygenated lanosterol derivatives derived from fungi and / or purified fractions, dissolved in methanol.
  • Lipid extraction is carried out by incubation in a hexane: isopropanol mixture (3: 2) for 30 minutes at room temperature. The extract is then dried under nitrogen then redissolved in hexane and subjected to high performance thin layer chromatography (Merck, Darmstadt, Germany) with a hexane: diethyl ether: acetic acid mixture (75: 25: 1) ). The neosynthesis of cholesterol is determined by measuring the incorporation of acetate C 14 into cholesterol using an imager (Camberra Packard, Zurich, Switzerland) and expressed as a% of the control.
  • ID50 represents the dose inhibiting the synthesis of cholesterol by 50%. It can be noted that the different extracts have a noticeable cholesterol-lowering activity. In addition, the extracts obtained with Ganoderma lucidum, Pleurotus ci trinopileatus and Flamulina velutipes show a very strong activity with a 50% inhibition threshold of 1 order of 1 to less than 14 ⁇ g / ml.
  • the crude active extracts of Ganoderma lucidum and Pleurotus ci trinopileatus have been purified and tested for their cholesterol-lowering activities.
  • the results are presented in Table 2. It can be seen that the crude extract obtained from Ganoderma lucidum itself contains a large amount of cholesterol-lowering compounds whose dose inhibiting 50% of cholesterol biosynthesis is less than 3 ⁇ g / ml.
  • the inhibition observed with the fractions purified from Pleurotus ostreatus have a higher ID50 but is nevertheless particularly interesting.
  • the analyzes were performed using either a Micromass AutoSpec OA-TOF mass spectrometer connected to an aters 2690 HPLC system or a Finnigan TSQ-700 triple quadrupole mass spectrometer connected to a Waters HPLC system consisting of an autosampler 757, a 600 pump -MS and a UN 486-MS detector.
  • the HPLC column used is a 5ucleosil 100 5-C18 (250 x 4 mm, Macherey ⁇ agel).
  • the solvent A used is water containing 0.1% trifluoroacetic acid (TFA), the solvent B is acetonitrile containing 0.1% TFA.
  • the flow rate is fixed at 1 ml / min.
  • the elution is carried out in isochratic mode (10% A, 90% B) or using a linear gradient from 90% A / 10% B to 10% A / 90% B in 25 minutes followed by 5 minutes with 10% A / 90% B.
  • a post bypass column allows the mixture to be directed at a flow rate of 0.1 ml / min to the mass spectrometers. These operate with an electrospray set at 4 kV. Mass spectra are acquired between 100 and 800 Da in positive mode.
  • CG / SM Gas Chromatography / Mass Spectroscopy
  • the silica capillary used is a J&W Sci DB-5 (30 mx 0.32 mm, 0.25 ⁇ m film thickness).
  • the gas used is Helium at a pressure of 150 kPa.
  • the temperature program is 60 ° C (1 min), 30 ° C / min up to 270 ° C then 10 ° C / minutes up to 320 ° C.
  • the injector is heated to 250 ° C.
  • the mass spectra are obtained in El mode at 70 eN from 20 to 800 Da.
  • the samples are injected before and after trimethylsilyl derivatization carried out using a mixture of pyridine and BSTFA (1/3, v / v) at 100 ° C for 1 h.
  • the spectra are obtained using a Brucker DPX-360 spectrometer at room temperature. Proton frequency 360.12 MHz, 13 C frequency 90.56 MHz. Techniques applied for proton NMR: one-dimensional spectroscopy, 2D homonuclear correlation spectroscopy, Overhauser 2 D nuclear spectroscopy. For 13 C NMR: one-dimensional spectroscopy with and without decoupling of the proton, 2D heteronuclear correlation spectroscopy with detection of the frequency of 13 C. The molecules are dissolved in CDC1 3 99.8%.
  • GitrinQ ilea u ⁇ The same procedure as that described in example 1 is used, with the difference that one puts to macerate 7 g of mushroom and that one obtains, in fine, approximately 160 mg of extract.
  • the methanolic extract obtained (6.5 g) is chromatographed on a silica gel; the elution is carried out in stages with 100% CHC1 3 , then 1% MeOH in CHC1 3 , then 10% MeOH in CHC1 3 then 100% MeOH.
  • the 100% CHC1 3 fraction is rechromatographed on silica gel; the elution is carried out in stages with 100% hexane, then 5% ethyl acetate in hexane, then 20% ethyl acetate in hexane, then 50% ethyl acetate in hexane, then 100 % ethyl acetate.
  • the active fractions 20% ethyl acetate in hexane, 50% ethyl acetate in hexane and 100% ethyl acetate are purified by high performance liquid chromatography (HPLC).
  • HPLC high performance liquid chromatography
  • a Nucleosil 100-5 C18 column 250 x 4 mm, Macherey Nagel
  • the mobile phase consists of a mixture of 0.05% H 3 P0 4 in water / acetonitrile (10/90) v / v.
  • the chromatographic elution is carried out in isocratic mode with a flow rate of 1 ml / min.
  • the detector used is a Hewlett Packard G1315A, 1100 series and ⁇ max is fixed at 254 nm.
  • the ethyl acetate extract (6.6 g) is chromatographed on silica gel; the elution is carried out in stages with 100% CHC1 3 , then 5% MeOH in CHC1 3 , then 10% MeOH in CHC1 3 then 100% MeOH.
  • the 100% CHC1 3 fraction is rechromatographed on silica gel; the elution is carried out in stages with 100% hexane, then 5% ethyl acetate in hexane, then 20% ethyl acetate in hexane, then 50% ethyl acetate in hexane, then 100 % ethyl acetate.
  • the active fractions 20% ethyl acetate in hexane, 50% ethyl acetate in hexane and 100% ethyl acetate are purified by high performance liquid chromatography (HPLC).
  • HPLC high performance liquid chromatography
  • the mobile phase consists of a mixture of 0.05% H 3 P0 4 in water / acetonitrile (10/90) v / v.
  • the flow rate is 1 ml / min.
  • the detector used is a Hewlett Packard G1315A, 1100 series and ⁇ max is fixed at 254 nm.
  • the active molecules are identified by mass spectroscopy coupled with gas chromatography CG / SM.
  • Table 3 highlights the natural derivatives of oxygenated lanosterols (oxylanosterols) identified in different fractions purified from Ganoderma lucidum and from Pleurotus ci trinopileatus.
  • oxylanosterols oxygenated lanosterols
  • Table 3 highlights the natural derivatives of oxygenated lanosterols (oxylanosterols) identified in different fractions purified from Ganoderma lucidum and from Pleurotus ci trinopileatus.
  • Figures 1 and 2 highlight the Ganoderol A identified by NMR and mass spectrometry, in the purified fractions of Ganoderma lucidum (80/20 and 50/50 Hexane / Ethyl acetate) and Pleurotus ci trinopileatus (80/20 Hexane / Ethyl acetate).
  • Table 2 Cholesterol-lowering activity in vitro observed on human liver cells with the purified fractions of the extracts obtained from the edible fungi Ganoderma lucidum and Pleurotus citrinopileatus.

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Abstract

La présente invention concerne un agent hypocholestérolémiant riche en dérivés naturels de lanostérol oxygénés issus de champignons comestibles. Un tel agent peut être additionné à des produits alimentaires. Procédé de fabrication d'un tel agent.

Description

AGENT HYPOCHOLESTEROLEMIANT
La présente invention concerne un agent hypocholestérolémiant issu de champignons comestibles.
Actuellement les considérations nutritionnelles des consommateurs poussent les industriels de l'alimentation à proposer des aliments présentant des fonctionnalités nutritionnelles améliorées. II est reconnu qu'un taux élevé de cholestérol sérique est un facteur non négligeable de risque athéroscléreux. Ainsi, la diminution de ce taux de cholestérol sérique est un moyen de lutte contre le risque de maladies cardio- vasculaires. Sachant que la majeure partie du cholestérol circulant est issue d'une synthèse de novo, l'inhibition de la biosynthèse de cholestérol endogène apparaît comme une voie intéressante de traitement, ou de prévention de 1 ' hypercholestérolémie .
La biosynthèse du cholestérol comprend trois étapes majeures. La première, la condensation, permet de passer de trois acétyl-CoA au mévalonate. Cette condensation implique la participation, entre autres, de la 3-Hydroxy-3- methylglutaryl-CoA-reductase (HMGCoA-reductase) . Le mévalonate ainsi formé est ensuite polymérisé en squalène via des intermédiaires polyisoprène . Enfin, le squalène mène au cholestérol par cyclisation/déméthylation via la formation d'intermédiaires réactionnels, entre autres le lanosterol et ses dérivés .
Différents composés sont utilisés pour inhiber la synthèse du cholestérol. Les statines, en particulier, agissent très en amont, par inhibition de HMGCoA-reductase. La lovastatine, isolée et purifiée à partir de divers champignons et/ou moisissures a été mise à profit comme agent hypocholestérolémiant sous forme de médicament ou de complément nutritionnel . Ainsi DE 4402591 décrit la production et l'isolement de lovastatine et d'acide mevinolinique de Pleurotus ostreatus, ainsi que l'utilisation de ces composés pour inhiber la biosynthèse du cholestérol. L'utilisation de lovastatine nécessite cependant un isolement ainsi qu'une purification avant son emploi. D'autre part, les composés de la classe des statines, inhibiteurs de HMGCoA-reductase induisent des effets secondaires indésirables. En effet l' HMGCoA- reductase est une enzyme qui agit très en amont dans la voie de la chaîne de biosynthèse du cholestérol (transformation de l'HMGCoA en mévalonate) , dès lors son inhibition tend à modifier la synthèse d'autres composés dérivés du mévalonate. Ainsi, en supprimant la production de mévalonate, on observe une diminution de la synthèse de divers stéroïdes, hormones, de co-enzyme Q10, d' isopentenyl ARNt, de dérivés isoprenoïdes ou de dolichol par exemple. La déplétion de tels métabolites est responsable, entre autres, de troubles hépatiques et musculaires via une augmentation du taux de transaminases hépatiques, par exemple (Hiyoshi et al, J. of Lipid Research, 2000, (41) 1136-1141) .
Dans cette optique, on a cherché des composés capables d'inhiber les étapes terminales de la chaîne de synthèse du cholestérol pour éviter les problèmes inhérents aux inhibiteurs de HMGCoA-reductase. Divers composés de synthèse, inhibiteurs des étapes terminales de déméthylation du lanosterol en 14 déméthyl-lanosterol, existent. Ces composés sont pour la plupart des dérivés oxygénés de stérols .
Cependant, tous ces inhibiteurs sont des purs produits de synthèse chimique, tels ceux décrits dans O9113903. Ainsi, outre le fait que leur fabrication passe par une synthèse chimique longue, complexe et onéreuse, ces composés entrent dans la classe des médicaments, ce qui implique des études cliniques pour homologation, enregistrement et autorisation. Komoda et al (Chem. Pharm. Bull., 1989 37(2) 531-533) décrivent des dérivés de lanosterol oxygénés obtenus par modification chimique d'acide Ganodérique isolé de Ganoderma lucidum. Il est indiqué dans ce document que seul les dérivés modifiés par voie chimique présentent une action hypocholestérolémiante . L'acide ganodérique B ainsi que son dérivé ester, servant à l'obtention des divers autres dérivés, ne présentent pas d'activité inhibitrice sur la synthèse du cholestérol .
Différents champignons sont décrits pour leurs propriétés hypocholesterolemiantes. Ainsi KR 9303886 décrit la préparation d'aliments hypocholestérolémiants à partir de champignons médicinaux par séchage, pulvérisation, extraction à l'eau bouillante et concentration. Il apparaît que de tels extraits agissent au niveau de HMGCoA-reductase (Bobe et al, Casopis Lebaru Ceskych, 1997 136(6) 186-190 ; Bobek et al, Experientia, 1995 51(6) 589-591). DE 4402591, mentionné plus haut, suggère aussi que certains champignons comestibles sont riches en inhibiteurs de HMGCoA-reductase.
Le but de la présente invention est de fournir un agent hypocholestérolémiant, non issu de synthèse chimique et utilisable dans un produit alimentaire, agissant sur les étapes terminales de la chaîne de biosynthèse du cholestérol .
A cette fin, l'agent hypocholestérolémiant selon la présente invention comprend des dérivés naturels de lanosterol oxygénés issus de champignons comestibles.
Par « agent hypocholestérolémiant », on entend un agent qui inhibe la synthèse du cholestérol et plus particulièrement en agissant sur les étapes terminales de la chaîne de biosynthèse du cholestérol, et ceci grâce à son contenu en dérivés naturels de lanosterol oxygénés.
Par « dérivés naturels » on entend des composés qui n'ont subi aucune modification chimique par quelque moyen que ce soit. Il s'agit des dérivés de lanosterol oxygénés obtenus directement à partir des champignons comestibles.
De même, par « champignons comestibles », on entend, des champignons avec une longue tradition de consommation alimentaire. On entend ainsi tant des champignons ni toxiques ni vénéneux, qui se distinguent ou non par leurs qualités gustatives et/ou aromatiques. Il peut s'agir par exemple des champignons choisis dans le groupe comprenant les ordres de classification suivants : Agaricalles, Aphyllophorales et Stereales. De manière préférentielle, il peut s'agir de champignons choisis dans le groupe comprenant : Pleurotus eryngii , Pleurotus eous, Ganoderma lucidum, Grifola frondosa, Pleurotus ostrea tus, Agrocybe aegeri ta, Pholiota nameko, Pleurotus ci trinopilea tus et Flamulina velutipes .
L'invention concerne aussi l'utilisation dans un produit alimentaire d'un agent hypocholestérolémiant comprenant des dérivés naturels de lanosterol oxygénés issus de champignons comestibles.
Enfin, le procédé de préparation de l'agent hypocholestérolémiant selon la présente invention comprend les étapes suivantes : macération d'un champignon comestible dans un premier solvant,
- séparation des phases solides et liquides, - évaporation de la phase liquide jusqu'à obtention d'un extrait sec,
- reprise de l'extrait sec avec de l'eau,
- extraction de la phase aqueuse à l'aide d'un second solvant de polarité inférieure au premier solvant et non- miscible avec l'eau et
- séparation des phases aqueuse et organique.
L'extrait organique ainsi obtenu après élimination de la phase aqueuse représente l'agent hypocholestérolémiant riche en dérivés de lanosterol naturels oxygénés et est utilisé pour les évaluations in vi tro, les fractionnements et purifications.
L'étape de macération peut être précédée d'une étape de broyage et s'effectuer avec du champignon frais ou séché. Cette macération peut s'effectuer à température ambiante ou à une température de réfrigération. Selon la température de macération choisie, cette dernière s'effectuera sur une durée plus ou moins longue. L'étape de macération peut ainsi s'étaler sur une durée pouvant être comprise entre 6 et 72 heures. Le premier solvant utilisé pour cette macération peut être du méthanol, de l'éthanol ou du chloroforme, par exemple, utilisés seuls ou en mélange .
La séparation des phases solide et liquide peut être réalisée par filtration sur papier ou sur gaze, par centrifugation ou par décantation, par exemple.
Après évaporâtion de la phase liquide, de préférence à une température proche de la température ambiante, l'extrait sec obtenu peut être repris avec une quantité d'eau comprise entre 5 et 100 % (v/v) par rapport à la quantité de premier solvant utilisé pour la macération. De manière à faciliter l'extraction avec le second solvant, on peut ajuster le pH de cette solution aqueuse ainsi obtenue à une valeur de pH acide, c'est à dire à une valeur comprise entre 2 et 4, par exemple, avant l'extraction à l'aide du second solvant. Cette acidifica ion peut être réalisée à l'aide d'acide chlorhydrique, par exemple.
La solution aqueuse ainsi obtenue peut être soumise à une extraction à l'aide d'un second solvant non miscible avec l'eau et de polarité inférieure au premier tel que de l'acétate d'éthyle, de l' isopropanol ou du chloroforme par exemple, volume à volume. Le deuxième solvant sera choisi selon ce double critère de polarité inférieure au premier solvant et de non-miscibilité avec l'eau. Dans le cas particulier de l'utilisation possible du chloroforme comme premier solvant, par exemple, celui-ci ne constituera pas le deuxième solvant et ce second solvant sera choisi de polarité inférieure au chloroforme et non miscible avec l'eau. Une telle extraction peut être réalisée plusieurs fois consécutivement, par exemple. La phase organique peut être récupérée par décantation, par exemple, et évaporée, de préférence sous vide à une température de l'ordre de 25 à 35 °C. Avant cette étape d' évaporâtion, la phase organique peut éventuellement être séchée, par exemple à 1 ' aide de NaS04 anhydre .
Ainsi, une fois la phase organique complètement évaporée on obtient un extrait sous forme pulvérulente riche en dérivés de lanosterol naturels oxygénés. Un tel extrait peut être additionné dans un produit alimentaire, par exemple .
Dans le présent contexte, l'effet hypocholestérolémiant du présent produit est estimé de manière qualitative sur le modèle de cellules hépatiques humaines T9A4 en culture in vi tro. Bien que l'on sache que de tels résultats ne sont pas directement transférables in vivo à l'homme, ils n'en fournissent pas moins des indications utiles. L'effet hypocholestérolémiant est estimé par la mesure de la synthèse de novo de cholestérol sur des cellules hépatiques humaines en culture en mesurant l'incorporation d' acétate-C14. Un mode d'évaluation de cette synthèse de novo est décrit dans une méthode présentée ci- après . L'agent obtenu après extraction à partir de champignon peut être purifié, fractionné, analysé et caractérisé par chromatographie liquide et gazeuse, spectroscopie de masse et résonance magnétique nucléaire de manière à identifier les dérivés de lanosterol oxygénés contenus. Les matériels et les méthodes mis en œuvre pour une telle caracterisation sont décrits en détail dans des méthodes présentées ci- après .
Analyse in vi tro de- l'effet hypocholestérolémiant
Les cellules hépatiques humaines T9A4 sont mises en croissance sur le milieu LCM (Biofluids, Rockville, MD) à 37°C sous 3,5% C02. Les cellules sont ensemencées dans des boites de cultures à 24 puits et incubées jusqu'à confluence avec 1 mM acétate C14 (1 mCi/mol, Amersham) pendant 20 heures en l'absence (contrôle) ou en présence de l'extrait riche en dérivés de lanosterol oxygénés issus de champignons et/ou de fractions purifiées, dissout dans le méthanol .
Une extraction de lipides est réalisée par incubation dans un mélange hexane : isopropanol (3:2) pendant 30 minutes à température ambiante. L'extrait est ensuite séché sous azote puis redissout dans de l' hexane et soumis à une chromâtographie haute performance en couche mince (Merck, Darmstadt, Allemagne) avec comme solvant un mélange hexane :diethyl ether:acide acétique (75:25:1). La neo- synthèse de cholestérol est déterminée en mesurant l'incorporation de l'acétate C14 au sein du cholestérol à l'aide d'un imageur (Camberra Packard, Zurich, Suisse) et exprimée en % du contrôle .
Les résultats sont présentés dans le tableau 1. ID50 représente la dose inhibant la synthèse de cholestérol de 50%. On peut noter que les différents extraits présentent une activité hypocholestérolémiante notable. De plus, les extraits obtenus avec Ganoderma lucidum, Pleurotus ci trinopileatus et Flamulina velutipes montrent une activité très forte avec un seuil d'inhibition 50% de 1 ' ordre de 1 à moins de 14 μg/ml .
Les extraits bruts actifs de Ganoderma lucidum et de Pleurotus ci trinopileatus ont été purifiés et testés pour leur activités hypocholestérolémiante. Les résultats sont présentés au tableau 2. On peut constater que l'extrait brut obtenu à partir de Ganoderma lucidum contient lui-même une grande quantité de composés hypocholestérolémiants dont la dose inhibant 50 % de la biosynthèse du cholestérol est inférieure à 3 μg/ml . L'inhibition observée avec les fractions purifiées à partir de Pleurotus ostreatus présentent un ID50 plus élevée mais cependant particulièrement intéressante.
Caracterisation physico-chimique des composés contenus dans les extraits de champignons.
Spectrométri de masse
HPLC/SM (chromatographie liqu e haute performance / spectrométrie de masse)
Les analyses ont été réalisées en utilisant soit un spectromètre de masse Micromass AutoSpec OA-TOF connecté à un système HPLC aters 2690 ou un spectromètre de masse Finnigan TSQ-700 triple quadrupole connecté à un système HPLC Waters consistant en un autosampler 757, une pompe 600-MS et un détecteur UN 486-MS. La colonne HPLC utilisée est une Νucléosil 100 5-C18 (250 x 4 mm, Macherey Νagel) . Le solvant A utilisé est de l'eau contenant 0,1 % d'acide tri-fluoro-acétique (TFA) , le solvant B est de l' acétonitrile contenant 0,1% TFA. Le débit est fixé à 1 ml/min. L'élution est réalisée en mode isochratique (10% A, 90% B) ou à l'aide d'un gradient linéaire de 90% A / 10% B vers 10% A / 90% B en 25 minutes suivi de 5 minutes avec 10% A / 90% B. Une post colonne de dérivation permet de diriger le mélange à un débit de 0,1 ml/min vers les spectromètres de masse. Ces derniers fonctionnent avec un électrospray fixé à 4 kV. Les spectres de masse sont acquis entre 100 et 800 Da en mode positif. CG/SM (Chromatographie gazeuse / Spectroscopie de masse) Analyses réalisées à l'aide d'un chromatographe gaz HP 5890 CG combiné à un spectromètre de masse Finnigan MAT 8430. Le capillaire de silice utilisé est un J&W Sci DB-5 (30 m x 0,32 mm, 0,25 μm d'épaisseur du film). Le gaz utilisé est de l'Hélium à une pression de 150 kPa . Le programme de température est de 60°C (1 min), 30°C/min jusqu'à 270°C puis 10°C/minutes jusqu'à 320°C. L'injecteur est chauffé à 250°C. Les spectres de masse sont obtenus en mode El à 70 eN de 20 à 800 Da . Les échantillons sont injectés avant et après trimethylsilyl derivatisation réalisée à l'aide d'un mélange de pyridine et de BSTFA (1/3, v/v) à 100°C pendant lh.
RMN (Résonance Magnétique Nucléaire)
Les spectres sont obtenus à l'aide d'un spectromètre Brucker DPX-360 à température ambiante. Fréquence de proton 360,12 MHz, fréquence 13C 90,56 MHz. Techniques appliquées pour la RMN du proton : spectroscopie une dimension, spectroscopie de corrélation homonucléaire 2D, spectroscopie nucléaire Overhauser 2 D. Pour la RMN du 13C : spectroscopie une dimension avec et sans découplage du proton, spectroscopie de corrélation hétéronucléaire 2D avec détection de la fréquence des 13C. Les molécules sont dissoutes dans CDC13 99,8%.
EXEMPLE 1
Préparation d'un extrait à partir de Pleurotus erγnσi i .
5 grammes de fruit séché de Pleurotus eryngii sont broyé et mis à macérer dans 50 ml de méthanol à 80 % pendant 1 jour à température ambiante. Le mélange est ensuite filtré sur papier et le filtrat récolté, évaporé. L'extrait brut est repris avec de l'eau distillée (50 ml) et le pH est ajusté à 3 à l'aide d'acide chlorhydrique 2N. Cet extrait aqueux est extrait en deux fois avec de l'acétate d'éthyle, volume à volume. La phase organique est séchée avec du Na2S04 anhydre et évaporée sous vide, à 30 °C, pour enlever le solvant. L'extrait ainsi obtenu, environ 100 mg, est repris dans 4 ml de méthanol .
EXEMPLE 2
Préparation d'un extrait à partir de Pleurotus eous . La même procédure que celle décrite dans l'exemple 1 est utilisée, à la différence que l'on obtient, in fine, environ 170 mg d'extrait à partir de 4.5 g de champignon séché .
EXEMPLE 3
Préparation d'un extrait à partir de Ganoderma lucidum. a même procédure que celle décrite dans l'exemple 1 est utilisée, à la différence que l'on met à macérer 6 g de champignon et que l'on obtient, in fine, environ 140 mg d' extrait .
EXEMPLE 4
Préparation d'un extrait à partir de Grifola frondosa . La même procédure que celle décrite dans l'exemple 1 est utilisée, à la différence que l'on met à macérer 6,8 g de champignon et que l'on obtient, in fine, environ 180 mg d' extrait .
EXEMPLE 5
Préparation d'un extrait à partir de Pleurotus ostrea tus . La même procédure que celle décrite dans l'exemple 1 est utilisée, à la différence que l'on obtient, in fine, environ 120 mg d'extrait à partir de 4 g de champignon séché.
EXEMPLE 6
Préparation d'un extrait à partir de Aσrocyhe aeαeri ta . La même procédure que celle décrite dans l'exemple 1 est utilisée, à la différence que l'on met à macérer 6,5 g de champignon et que l'on obtient, in fine, environ 290 mg d'extrait.
EXEMPLE 7
Préparation d'un extrait à partir de Pholiota nameko . La même procédure que celle décrite dans l'exemple 1 est utilisée, à la différence que l'on obtient, in fine, environ 310 mg d'extrait à partir de 4 g de champignon séché . EXEMPLE 8
Préparation 'Uh ex rai â partir de Pleurotus
GitrinQ ilea uβ , La même procédure que celle décrite dans l'exemple 1 est utilisée, à la différence que l'on met à macérer 7 g de champignon et que l'on obtient, in fine, environ 160 mg d' extrait .
EXEMPLE 9
Préparation d'un extrait à partir de Flamulina velutipes . La même procédure que celle décrite dans l'exemple 1 est utilisée, à la différence que l'on met à macérer 2.6 g de champignon et que l'on obtient, in fine, environ 140 mg d' extrait .
EXEMPLE 10
Fractionnement et caracterisation physico-chimique des composés contenus dans les extraits de champignon Ganoderma lucidum.
Ceux-ci ont été choisis car les extraits bruts obtenus présentent une forte activité hypocholestérolémiante in vi tro .
200 g de champignon sec Ganoderma lucidum sont broyés et macérés dans 2 litres de méthanol 80%, à température ambiante pendant 2 jours. Le mélange est filtré sur gaze et la phase liquide évaporée sous vide, à 30°C. L'extrait méthanolique obtenu (env. 12 g) est repris avec 100 ml d'eau et le pH de cette solution est ajusté à 3 à l'aide d'acide chlorhydrique 2 N. Cet extrait aqueux est extrait 3 fois volume à volume avec de l'acétate d'ethyle. La phase organique est séchée avec du Na2S04 anhydre et évaporée sous vide, à 30°C, pour éliminer le solvant. L'extrait sec obtenu (6,7 g) est repris à l'aide d'un mélange éther de pétrole et méthanol 90%. L'extrait méthanolique obtenu (6,5 g) est chromâtographié sur un gel de silice ; l'élution est réalisée par paliers avec 100% CHC13, puis 1% MeOH dans CHC13, puis 10% MeOH dans CHC13 puis 100% MeOH. La fraction 100% CHC13 est rechromatographiée sur gel de silice ; l'élution est effectuée par paliers avec 100% hexane, puis 5% acétate d'ethyle dans l' hexane, puis 20% acétate d'ethyle dans l' hexane, puis 50% acétate d'ethyle dans 1' hexane, puis 100% acétate d'ethyle. Les fractions actives 20% acétate d'ethyle dans l' hexane, 50% acétate d'ethyle dans l' hexane et 100% acétate d'ethyle sont purifiées par chromatographie liquide haute performance (HPLC) . A cette fin, une colonne Nucleosil 100-5 C18 (250 x 4 mm, Macherey Nagel)est utilisée avec une post-colonne Lichrospher 100 RP-18 (Merck) . La phase mobile consiste en un mélange de 0,05% H3P04 dans eau/acétonitrile (10/90) v/v. L'élution chromatographique est réalisée en mode isocratique avec un débit de 1 ml/min. Le détecteur utilisé est un Hewlett Packard G1315A, série 1100 et λmax est fixée à 254 nm.
Les molécules actives sont identifiées par Spectroscopie de Masse (SM) et Résonance Magnétique Nucléaire (RMN) . EXEMPLE 11
Fractionnement et caracterisation physico-chimique des composés contenus dans les extraits de champignon Pl &umtus ci trinopileatus .
Ceux-ci ont été choisis car les extraits bruts obtenus présentent une forte activité hypocholestérolémiante in vi tro .
200 g de champignon sec Pleurotus ci trinopilea tus sont broyés et macérés dans 2 litres de méthanol 80%, à température ambiante pendant 2 jours. Le mélange est filtré sur gaze et la phase liquide évaporée sous vide, à 30°C. L'extrait méthanolique obtenu (env. 31 g) est repris avec 100 ml d'eau et le pH de cette solution est ajusté à 3 à l'aide d'acide chlorhydrique 2 N. Cet extrait aqueux est extrait 3 fois volume à volume avec de l'acétate d'ethyle. La phase organique est séchée avec du Na2S04 anhydre et évaporée sous vide, à 30°C, pour éliminer le solvant. L'extrait acétate d'ethyle (6,6 g) est chromatographie sur un gel de silice ; l'élution est réalisée par paliers avec 100% CHC13, puis 5% MeOH dans CHC13, puis 10% MeOH dans CHC13 puis 100% MeOH. La fraction 100% CHC13 est rechromatographiée sur gel de silice ; l'élution est effectuée par paliers avec 100% hexane, puis 5% acétate d'ethyle dans l' hexane, puis 20% acétate d'ethyle dans 1' hexane, puis 50% acétate d'ethyle dans l' hexane, puis 100% acétate d'ethyle. Les fractions actives 20% acétate d'ethyle dans l' hexane, 50% acétate d'ethyle dans l' hexane et 100% acétate d'ethyle sont purifiées par chromatographie liquide haute performance (HPLC) . A cette fin, une colonne Nucleosil 100-5 C18 (250 x 4 mm, Macherey NageDest utilisée avec une post-colonne Lichrospher 100 RP-18 (Merck). La phase mobile consiste en un mélange de 0,05% H3P04 dans eau/acétonitrile (10/90) v/v. Le débit est de 1 ml/min. Le détecteur utilisé est un Hewlett Packard G1315A, série 1100 et λmax est fixée à 254 nm.
Les molécules actives sont identifiées par spectroscopie de masse couplée à une chromatographie en phase gazeuse CG/SM.
Le tableau 3 met en évidence les dérives naturels de lanostérols oxygénés (oxylanostérols) identifiés dans différentes fractions purifiées à partir de Ganoderma lucidum et à partir de Pleurotus ci trinopileatus. En ce qui concerne Ganoderma lucidum, les analyses de spectrométrie de masse et de résonance magnétique nucléaire ont été réalisées avec les fractions 80% Hexane / 20% Acétate d'ethyle et 50% hexane / 50% acétate d'ethyle (telles qu'indiquées au tableau 2) . En ce qui concerne Pleurotus ci trinopileatus, seule la fraction 80% hexane / 20% acétate d'ethyle a été utilisée. Les figures 1 et 2 mettent en évidence le Ganoderol A identifié par RMN et spectrométrie de masse, dans les fractions purifiées de Ganoderma lucidum ( 80/20 et 50/50 Hexane/Acétate d'ethyle) et de Pleurotus ci trinopileatus (80/20 Hexane/Acétate d'ethyle).
Tableau 1 : Activité hypocholestérolémiante in vitro observée sur cellules hépatiques humaines avec les extraits obtenus à partir de champignons comestibles. Champignons ID50 (μg ml)
Pleurotus eryngii >150
Pleurotus eous >70 Ganoderma lucidum 1
Grifola frondosa 180
Pleurotus ostreatus 150
Agrocybe aegerita > 150
Pholiota nameko >300 Pleurotus citrinopileatus 10
Flamunila velutips <14
Tableau 2 : Activité hypocholestérolémiante in vitro observée sur cellules hépatiques humaines avec les fractions purifiées des extraits obtenus à partir des champignons comestibles Ganoderma lucidum et Pleurotus citrinopileatus.
Fractions ID50 (μg/ml)
Ganoderma lucidum
100% CHC13 95% Hexane-5% Acétate d'ethyle > 17
80%Hexane-20% Acétate d'ethyle 3
50%Hexane-50% Acétate d'ethyle 0.8
100% Acétate d'ethyle 1.5
95% CHCl3-5% MeOH 1.3 90% CHC13- 10% MeOH 2.4
100% MeOH >2
Pleurotus citrinopileatus
100% CHC13 95% Hexane-5% Acétate d'ethyle >16
80% Hexane-20% Acétate d'ethyle 7.5 50% Hexane-50% Acétate d'ethyle 5 100% Acétate d'ethyle 2.5 95% CHCl3-5% MeOH 15 90% CHC13-10% MeOH >60
100% MeOH >55 Tableau 3 : Activité hypocholestérolémiante in vitro observée sur cellules hépatiques humaines avec les principales molécules d'oxylanostérol purifiées des extraits obtenus à partir des champignons comestibles Ganoderma lucidum et Pleurotus citrinopileatus.
Oxylanosterols Masse (m/z) ID50 (μg/ml)
aGanoderol A 438 1 bGanoderal A 436 7 bGanoderol B 440 10 bacide Ganodérique Y 454 0.5 a molécule présente dans Ganoderma lucidum et Pleurotus citrinopileatus b molécule présente juste Ganoderma lucidum.

Claims

REVENDICATIONS
1. Agent hypocholestérolémiant riche en dérivés de lanosterol naturels oxygénés isolés de champignons comestibles .
2. Agent hypocholestérolémiant selon la revendication 1, caractérisé en que les champignons sont choisis dans le groupe comprenant les ordres de classification : Agaricalles, Aphyllophorales et Stereales.
3. Agent hypocholestérolémiant selon les revendications 1 et 2, caractérisé en ce que les champignons sont choisis dans le groupe comprenant : Pleurotus eryngii , Pleurotus eous, Ganoderma lucidum, Grifola frondosa, Pleurotus ostreatus, Agrocybe aegeri ta, Pholiota nameko, Pleurotus ci trinopilea tus et Flamulina velutipes .
4. Utilisation dans un produit alimentaire, d'un agent hypocholestérolémiant selon les revendications 1 à 3.
5. Procédé de préparation d'un agent hypocholestérolémiant selon la revendication 1, comprenant les étapes suivantes : - macération d'un champignon comestible dans un premier solvant,
- séparation des phases solides et liquides,
- évaporation de la phase liquide jusqu'à obtention d'un extrait sec, - reprise de l'extrait sec avec de l'eau, - extraction de la phase aqueuse à l'aide d'un second solvant de polarité inférieure au premier solvant et non miscible avec l'eau et
- séparation des phases aqueuse et organique.
I
6. Procédé selon la revendication 5, caractérisé en ce que le premier solvant est choisi dans le groupe comprenant le méthanol, l'éthanol et le chloroforme, utilisé seuls ou en mélange .
7. Procédé selon la revendication 5, caractérisé en ce que le deuxième solvant est choisi dans le groupe comprenant l'acétate d'ethyle, l' isopropanol et le chloroforme, utilisés seuls ou en mélange.
8. Procédé selon la revendication 5, caractérisé en ce que l'étape de macération est réalisée pendant 4 à 96 heures à une température comprise entre 5 et 30 °C.
9. Procédé selon la revendication 5, caractérisé en ce qu'on ajuste le pH de la phase aqueuse à une valeur comprise entre 2 et 5 avant l'extraction à l'aide du second solvant .
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