EP1326994A2 - Verbesserte verfahren zur vitamin e biosynthese - Google Patents

Verbesserte verfahren zur vitamin e biosynthese

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EP1326994A2
EP1326994A2 EP01986722A EP01986722A EP1326994A2 EP 1326994 A2 EP1326994 A2 EP 1326994A2 EP 01986722 A EP01986722 A EP 01986722A EP 01986722 A EP01986722 A EP 01986722A EP 1326994 A2 EP1326994 A2 EP 1326994A2
Authority
EP
European Patent Office
Prior art keywords
nucleic acid
hgd
faah
maai
vitamin
Prior art date
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Withdrawn
Application number
EP01986722A
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
Michael Geiger
Marcus Ebneth
Irene Kunze
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
SunGene GmbH
Original Assignee
SunGene GmbH
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Filing date
Publication date
Application filed by SunGene GmbH filed Critical SunGene GmbH
Publication of EP1326994A2 publication Critical patent/EP1326994A2/de
Withdrawn legal-status Critical Current

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    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14—Hydrolases (3)
    • C12N9/16—Hydrolases (3) acting on ester bonds (3.1)
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23K—FODDER
    • A23K10/00—Animal feeding-stuffs
    • A23K10/30—Animal feeding-stuffs from material of plant origin, e.g. roots, seeds or hay; from material of fungal origin, e.g. mushrooms
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23K—FODDER
    • A23K20/00—Accessory food factors for animal feeding-stuffs
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    • A23K20/174—Vitamins
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    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23L—FOODS, FOODSTUFFS OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; PREPARATION OR TREATMENT THEREOF
    • A23L33/00—Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof
    • A23L33/10—Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof using additives
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
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    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/82—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for plant cells, e.g. plant artificial chromosomes (PACs)
    • C12N15/8241—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology
    • C12N15/8242—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with non-agronomic quality (output) traits, e.g. for industrial processing; Value added, non-agronomic traits
    • C12N15/8243—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with non-agronomic quality (output) traits, e.g. for industrial processing; Value added, non-agronomic traits involving biosynthetic or metabolic pathways, i.e. metabolic engineering, e.g. nicotine, caffeine
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P17/00—Preparation of heterocyclic carbon compounds with only O, N, S, Se or Te as ring hetero atoms
    • C12P17/02—Oxygen as only ring hetero atoms
    • C12P17/06—Oxygen as only ring hetero atoms containing a six-membered hetero ring, e.g. fluorescein
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
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    • A—HUMAN NECESSITIES
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    • A61K2039/51—Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/53—DNA (RNA) vaccination
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K2319/00—Fusion polypeptide

Definitions

  • the invention relates to improved methods for the biosynthesis of vitamin E. These methods are characterized by an inhibition of the degradation of homogenate (HG) via maleylacetoacetate (MAA), fumarylacetoacetate (FAA) to fumarate and acetoacetate. According to the invention, the combination of this inhibition with methods that further increase the supply of homogenate or promote the conversion of the homogenate into vitamin E is furthermore.
  • Homogentisate is an important metabolic metabolite. It is a breakdown product of the amino acids tyrosine and phenylalanine. In humans and animals, homogentisate is further broken down to maleylacetoacetate, subsequently to fumarylacetoacetate, and then to fumarate and acetoacetate. Plants and other photosynthetic microorganisms also use homogentisate as a starting product for the synthesis of tocopherols and tocotrienols.
  • the eight naturally occurring compounds with vitamin E activity are derivatives of 6-chromanol (Ulimann's Encyclopedia of Industrial Chemistry, Vol. A 27 (1996), VCH Verlagsgesellschaft, Chapter 4., 478-488, vitamin E ).
  • the group of tocopherols (la-d) has a saturated side chain
  • the group of tocotrienols (2a-d) has an unsaturated side chain:
  • vitamin E is understood to mean all eight tocopherols and tocotrienols with vitamin E activity mentioned above.
  • vitamin E is important natural fat-soluble antioxidants.
  • a lack of vitamin E leads to pathophysiological situations in humans and animals.
  • Epidemiological studies have shown that vitamin E supplements reduce the risk of developing cardiovascular diseases or cancer.
  • a positive effect on the immune system and a prevention of general age-related signs of degeneration are described (Traber MG, Sies H Annu Rev Nutr. 1996; 16: 321-47).
  • the function of vitamin E presumably lies in the stabilization of the biological membranes and in the reduction of free radicals, such as those that arise during the lipid oxidation of polyunsaturated fatty acids (PUFA).
  • PUFA polyunsaturated fatty acids
  • vitamin E The function of vitamin E in the plants themselves has hardly been investigated. However, it may appear to play an important role in the plant's stress response, especially to have on oxidative stress. Increased vitamin E levels have been associated with increased stability and shelf life of plant products. The addition of vitamin E to animal nutrition products has a positive effect on meat quality and the shelf life of meat and meat products in e.g. Pigs, cattle and poultry.
  • Vitamin E compounds therefore have a high economic value as additives in the food and feed sector, in pharmaceutical formulations and in cosmetic applications.
  • vitamin E is synthesized exclusively by plants and other photosynthetically active organisms (e.g. cyanobacteria).
  • the vitamin E content varies greatly.
  • Most staple food plants e.g. wheat, rice, corn, potato
  • have only a very low vitamin E content Hess, Vitamin E, ⁇ -tocopherol, In Antioxidants in Higher Plan ts, Editor: R.Ascher and J. Hess, 1993, CRC Press, Boca Raton, pp. 111-134).
  • Oilseeds generally have a significantly high vitamin E content, with ß-, ⁇ -, ⁇ -tocopherol dominating.
  • the recommended daily dose of vitamin E is 15-3 omg.
  • Fig. 1 shows a biosynthesis scheme of tocopherols and tocotrienols.
  • homogentisic acid (homogentisate; HG) is bound to phytyl pyrophosphate (PPP) or geranylgeranyl pyrophosphate to form the precursors of tt ⁇ tocopherol and ⁇ -tocotrienol, the 2-methyl-phytylhydroquinone and the 2-methyl-geranylgeranyl form.
  • PPP phytyl pyrophosphate
  • geranylgeranyl pyrophosphate to form the precursors of tt ⁇ tocopherol and ⁇ -tocotrienol, the 2-methyl-phytylhydroquinone and the 2-methyl-geranylgeranyl form.
  • Methylation steps with S-adenosyl ethionine as the methyl group donor first produce 2,3-dimethyl-6-phytylhydroquinone, then by cyclization ⁇ -tocopherol and by repeated methylation of ⁇ -tocopherol.
  • WO 97/27285 describes a modification of the tocopherol content by increased expression or by downregulation of the enzyme p-hydroxyphenylpyruvate dioxygenase (HPPD).
  • HPPD p-hydroxyphenylpyruvate dioxygenase
  • WO 99/04622 describes gene sequences coding for a ⁇ -tocopherol methyltransferase from Synechocystis PCC6803 and Arabidopsis thaliana and their incorporation into transgenic plants.
  • WO 99/23231 shows that the expression of a geranylgeranyloxidoreductase in transgenic plants results in an increased tocopherol biosynthesis.
  • WO 00/10380 shows a change in the composition of vitamin E using 2-methyl-6-phytylplascoquinol-methyltransferase.
  • Shintani and DellaPenna have shown that overexpression of ⁇ -tocopherol methyltransferase can significantly increase the vitamin E content (Shintani and Dellapenna, Science 282 (5396): 2098-2100, 1998).
  • the reactions are carried out by Homogentisat-1, 2-dioxygenase (HGD; EC no .: 1.13.11.5), Maleylacetoacetatiso erase (MAAI; EC no .: 5.2.1.2.) And Fumarylacetoacetate hydrolase (FAAH; EC no .: 3.7.1.2) catalyzed.
  • HFD 2-dioxygenase
  • MAAI Maleylacetoacetatiso erase
  • FAAH Fumarylacetoacetate hydrolase
  • HSD Homogentisat-1, 2-dioxygenase
  • Arabidopsis thaliana The gene of Homogentisat-1, 2-dioxygenase (HGD) from Arabidopsis thaliana is known (Genbank Acc.-No. AF130845).
  • the gene of the fumarylacetoacetate hydrolase from Arabidopsis thaliana was already annotated as being similar due to its homology to the fumarylacetoacetate hydrolase from Emericella nidulans (gbJL41670) (Genbank Acc.-No. AC002131).
  • gbJL41670 Emericella nidulans
  • MAAI The Arabidopsis maleylacetoacetate isomerase (MAAI) gene was present as a gene in the library (AC005312) but was annotated as a putative glutathione S-transferase.
  • a MAAI from Emericella nidulans (Genbank Acc. -No. EN 1837) was known.
  • the object of the invention was to provide further methods which influence the vitamin E biosynthetic pathway and thus lead to more advantageous transgenic plants with an increased vitamin E content.
  • the problem was solved by identifying the homgentisate-maleyl-acetoacetate-fumarylacetoacetate-fumarate degradation pathway as an essential competitive pathway for the vitamin E biosynthetic pathway. It has been found that inhibition of this pathway leads to an optimization of vitamin E biosynthesis.
  • a first subject of the invention therefore relates to methods for a vitamin E production by reducing the HGD, MAAI or FAAH activity.
  • a combination of the described inhibition of the homogentisate degradation pathway with other processes that lead to improved vitamin E biosynthesis by promoting the conversion of the homogentisate to vitamin E has proven to be particularly advantageous. This can be achieved by an increased availability of reaction partners or by an increased conversion of the homogenate with these. This effect can be achieved, for example, by overexpressing the homozygous phytyltransferase (HGPT), geranylgeranyloxidoreductase, the 2-methyl-6-phytylplastoquinol methyltransferase or the ⁇ -tocopherol methyltransferase.
  • HGPT homozygous phytyltransferase
  • HGPT homozygous phytyltransferase
  • geranylgeranyloxidoreductase the 2-methyl-6-phytylplastoquinol
  • a combination with genes which promote the formation of homologs is also advantageous.
  • the inhibition of the degradation path from homogeneous, via maleyl acetoacetate and fumarylacetoacetate to fumarate and acetatoacetate can be achieved in a variety of ways.
  • One object of the invention relates to nucleic acid constructs which contain at least one nucleic acid sequence (a ti-MAAI / FAAH) which is capable of inhibiting the maleylacetoacetate-fumarylacetoacetate-fumarate pathway or a functional equivalent thereof.
  • a ti-MAAI / FAAH nucleic acid sequence
  • Another object of the invention relates to the nucleic acid constructs described above which, in addition to the anti-MAAl / FAAH nucleic acid sequence, additionally at least one nucleic acid sequence (pro-HG) which is capable of increasing the biosynthesis of homogentisate (HG), or a functional equivalent thereof or at least a nucleic acid sequence (pro-Vita inE) which is capable of increasing the vitamin E biosynthesis starting from the homogenate, or contain a functional equivalent thereof or a combination of pro-HG and pro-VitaminE or their functional equivalents.
  • pro-HG nucleic acid sequence
  • pro-Vita inE which is capable of increasing the vitamin E biosynthesis starting from the homogenate
  • the invention further relates to nucleic acid constructs which contain a nucleic acid sequence (anti-HGD) which is capable of inhibiting homogentisate 1,2-dioxygenase (HGD), or for a functional equivalent thereof.
  • anti-HGD a nucleic acid sequence which is capable of inhibiting homogentisate 1,2-dioxygenase (HGD), or for a functional equivalent thereof.
  • the invention relates to said anti-HGD nucleic acid constructs which, in addition to the anti-HGD nucleic acid sequence, additionally have at least one nucleic acid sequence which is suitable for a bifunctional chorismate mutase prephenate dehydrogenase (TyrA) or its functional equivalents, or at least one nucleic acid sequence (proVitamin E) is capable of increasing vitamin E biosynthesis starting from the homogenate, or its functional equivalents, or a combination of pro-VitaminE and TyrA sequences or their functional equivalents.
  • TyrA bifunctional chorismate mutase prephenate dehydrogenase
  • proVitamin E is capable of increasing vitamin E biosynthesis starting from the homogenate, or its functional equivalents, or a combination of pro-VitaminE and TyrA sequences or their functional equivalents.
  • TyrA codes for a bifunctional chorismate mutase-prephenate dehydrogenase from E. coli, a hydroxyphenylpyruvate synthase, which contains the enzymatic activities of a chorismate mutase and prephenate dehydrogenase, and chorismate into hydroxyphenylpyruvate, the homogenized product D, converts bio-chem 1999 Apr 13, 38 (15): 4782-93; Christopherson RI, Heyde E, Morrison JF. Biochemistry. 1983 Mar 29, 22 (7): 1650-6.).
  • the invention further relates to nucleic acid constructs which have at least one nucleic acid sequence (pro-HG) which is capable of increasing the homogenate (HG) biosynthesis, or a functional equivalent thereof, and at least one nucleic acid sequence (pro-Vitamin E) which capable of increasing vitamin E biosynthesis starting from the homogenate, or a functional equivalent thereof.
  • nucleic acid constructs which have at least one nucleic acid sequence (pro-HG) which is capable of increasing the homogenate (HG) biosynthesis, or a functional equivalent thereof, and at least one nucleic acid sequence (pro-Vitamin E) which capable of increasing vitamin E biosynthesis starting from the homogenate, or a functional equivalent thereof.
  • nucleic acid sequences contained in the nucleic acid constructs are preferably functionally linked to genetic control sequences.
  • the inventive transformation of plants with a pro-HG coding construct leads to an increase in the formation of homogeneity.
  • By simultaneous transformation with anti-HGD or anti-MAAI / FAAH, in particular the anti-MAAI construct an undesired outflow of this metabolite is avoided.
  • An increased amount of homogenate is thus available in the transgenic plant for the formation of vitamin E, for example tocopherols, via the intermediates methyl-6-phytylquinol and 2,3-dimethyl-phytylquinol (cf. FIG. 1).
  • Both pro-HG and anti-MAAI / FAAH or anti-HGD lead to an increased supply of homogenate for vitamin E biosynthesis.
  • the conversion of homogenate to vitamin E can be improved by a combined transformation with a construct encoding pro-vitamin E and further increases the biosynthesis of vitamin E.
  • “Increase” in the homogentisate biosynthesis is to be interpreted broadly in this context and includes increasing the homogentisate (HG) biosynthesis activity in the plant or the plant part or tissue transformed with a pro-HG construct according to the invention. According to the invention, various strategies for increasing the HG biosynthesis activity are included. Those skilled in the art will recognize that a number of different methods are available to influence the HG biosynthesis activity in the desired manner. The methods described as a result are therefore to be understood as examples and not restrictive.
  • the preferred strategy according to the invention comprises the use of a nucleic acid sequence (pro-HG) which can be transcribed and translated into a polypeptide which increases the HG biosynthesis activity.
  • nucleic acid sequences are p-hydroxyphenylpyruvate dioxygenase (HPPD) from various organisms or the bacterial TyrA gene product.
  • HPPD p-hydroxyphenylpyruvate dioxygenase
  • their activity can also be increased by mutagenesis of the polypeptide sequence.
  • increased transcription and translation of the endogenous genes can be achieved, for example, by using artificial transcription factors of the zinc finger protein type (Beerli RR et al., Proc Natl Acad Sei US A. 2000; 97 (4): 1495-500). These factors accumulate in the regulatory areas of the endogenous genes and, depending on the design of the factor, expression or repression of the endogenous gene.
  • pro-HG is the use of nucleic acids coding for polypeptides according to SEQ ID NO: 8, 11 or 16, particularly preferred nucleic acids with the sequences described by SEQ ID NO: 7, 10 or 15.
  • the "increase" in vitamin E biosynthesis activity is to be understood analogously, genes being used here whose activity is the conversion of homogentisate to vitamin E (tocopherols, tocotrienols) or the synthesis of reactants of the homogenate, such as for example the Phytyl pyrophosphate or geranyl geranyl pyrophosphate, promotes. Homogentisate phytyltransferase (HGPT), geranylgeranyloxidoreductase, 2-methyl-6-phytylplastoquinol methyltransferase and y-tocopherol methyltransferase may be mentioned as examples.
  • HGPT Homogentisate phytyltransferase
  • geranylgeranyloxidoreductase 2-methyl-6-phytylplastoquinol methyltransferase
  • y-tocopherol methyltransferase may be mentioned as examples.
  • “Inhibition” is to be interpreted broadly in connection with anti-MAAI / FAAH or anti-HGD and includes the partial or essentially complete inhibition or blocking of the MAAI / FAAH or HGD activity based on different cell biological mechanisms with a plant or the plant part or tissue transformed according to the invention, anti-MAAI / FAAH or anti-HGD construct.
  • An inhibition in the sense of the invention also includes a quantitative reduction in active HGD, MAAI or FAAH in the plant, up to an essentially complete absence of HGD, MAAI or FAAH protein (ie lack of detectability of HGD or MAAI or FAAH- Enzyme activity or lack of immunological detectability of HGD, MAAI or FAAH).
  • HGD or MAAI or FAAH activity various strategies for reducing or inhibiting HGD or MAAI or FAAH activity are included.
  • Those skilled in the art will recognize that a number of different methods are available to influence HGD or MAAI or FAAH gene expression or enzyme activity in the desired manner.
  • the preferred strategy according to the invention comprises the use of a nucleic acid sequence (anti-MAAI / FAAH or anti-HGD) which can be transcribed to an antisense nucleic acid sequence which is capable of inhibiting the HGD or MAAI / FAAH activity, eg by inhibiting the expression of endogenous HGD or MAAI or FAAH.
  • a nucleic acid sequence anti-MAAI / FAAH or anti-HGD
  • antisense nucleic acid sequence which is capable of inhibiting the HGD or MAAI / FAAH activity, eg by inhibiting the expression of endogenous HGD or MAAI or FAAH.
  • the anti-HGD or anti-MAAl / FAAH nucleic acid sequences according to the invention can contain the coding nucleic acid sequence of the HGD (anti-HGD) or MAAI or FAAH (anti-MAAI / FAAH) or inserted in antisense orientation contain functionally equivalent fragments of the respective sequences.
  • anti-HGD nucleic acid sequences comprise nucleic acid sequences which code for polypeptides containing an amino acid sequence according to SEQ ID NO: 3 or functional equivalents thereof. Nucleic acid sequences according to SEQ ID NO: 1, 2 or 12 or functional equivalents thereof are particularly preferred.
  • anti-MAAI / FAAH nucleic acid sequences include nucleic acid sequences which code for polypeptides containing an amino acid sequence according to SEQ ID NO: 5 and 18 or functional equivalents thereof. Nucleic acid sequences according to SEQ ID NO: 4, 6, 9 or 17 or functional equivalents thereof are particularly preferred; the partial sequences reproduced with SEQ ID NO: 41 or 42 or their functional equivalents are very particularly preferred.
  • a preferred embodiment of the nucleic acid sequences according to the invention comprises an HGD, MAAI or FAAH sequence motif according to SEQ ID NO: 1, 2, 4, 6, 9, 12, 17, 41 or 42 in antisense orientation. This leads to increased transcription of
  • Nucleic acid sequences in the transgenic plant which are complementary to the endogenous coding HGD, MAAI or FAAH sequence or a part thereof and hybridize with this at the DNA or RNA level.
  • the antisense strategy can advantageously be coupled with a Ribozy method.
  • Ribozymes are catalytically active RNA sequences which, coupled to the antisense sequences, catalytically cleave the target sequences (Tanner NK. FEMS Microbiol Rev. 1999; 23 (3): 257-75). This can increase the efficiency of an anti-sense strategy.
  • HGD or MAAI / FAAH expression include the overexpression of homologous HGD or MAAI / FAAH nucleic acid sequences leading to co-suppression (Jorgensen et al., Plant Mol. Biol. 1996, 31 (5): 957-973), the induction of the specific RNA degradation by the plant with the help of a viral Expression system (Amplikon) (Angell, SM et al., Plant J. 1999, 20 (3): 357-362). These methods are also known as "post-transcriptional gene silencing" (PTGS).
  • PTGS post-transcriptional gene silencing
  • the protein binding factors can e.g. Be aptamers (Famulok M, and Mayer G. Gurr Top Microbiol Immunol. 1999; 243: 123-36).
  • An anti-HGD or anti-MAAI / FAAH sequence in the sense of the present invention is therefore selected in particular from:
  • each of these anti-HGD or anti-MAAI / FAAH sequences can cause an "inhibition" of the HGD or MAAI / FAAH activity in the sense of the invention.
  • a combined application of such sequences is also conceivable.
  • a nucleic acid construct or nucleic acid sequence is understood to mean, for example, a genomic or a complementary DNA sequence or an RNA sequence and semisynthetic or fully synthetic analogues thereof. These sequences can be in linear or circular form, extrachromosomal or integrated into the genome.
  • the pro-HG, pro-VitaminE, anti-HGD or anti-MAAI / FAAH nucleotide sequences of the constructs according to the invention can be produced synthetically or can be obtained naturally or contain a mixture of synthetic and natural DNA constituents, as well as from various heterologous HGD, MAAI / FAAH, pro-HG or pro-VitaminE gene segments from different organisms exist.
  • the anti-HGD or anti-MAAI / FAAH sequence can be derived from one or more exons or introns, in particular exons of the HGD, MAAI or FAAH genes.
  • artificial nucleic acid sequences are suitable as long as they have the desired property, as described above, for example increasing the vitamin E content in the plant by overexpressing at least one proHG and / or proVitamin E gene and / or expressing an anti-HGD or MAAI / Mediate FAAH sequence in crop plants.
  • synthetic nucleotide sequences can be generated with codons, which are preferred by the plants to be transformed. These codons preferred by plants can be determined in the usual way on the basis of the codon usage from codons with the highest protein frequency.
  • Such artificial nucleotide sequences can be determined, for example, by back-translation of proteins constructed using molecular modeling, which have HGD or MAAI / FAAH or proHG activity or proVitamin E activity, or by in vitro selection. Coding nucleotide sequences which are obtained by back-translating a polypeptide sequence according to the codon usage specific for the host plant are particularly suitable.
  • a proHG enzyme is expressed from this, which is not or only inadequately accessible to plant regulation, which means that the overexpression of enzyme activity can be fully exploited.
  • nucleotide sequences mentioned above can be produced in a manner known per se by chemical synthesis from the nucleotide building blocks, for example by fragment condensation of individual overlapping, complementary nucleic acid building blocks of the double helix.
  • the chemical synthesis of oligonucleotides can be carried out, for example, in a known manner using the phosphoamidite method (Voet, Voet, 2nd edition, Wiley Press New York, pages 896-897).
  • various DNA fragments can be manipulated in such a way that a nucleotide sequence with the correct reading direction and correct reading frame is obtained.
  • adapters or linkers can be attached to the fragments.
  • pro-HG or pro-VitaminE sequences are those sequences which, despite the differing nucleotide sequence, still code for a protein with the functions desired according to the invention, ie for an enzyme with activity which directly or indirectly increases the formation of homogenates (pro-HG), or for an enzyme with direct or indirect conversion of homogentisate to vitamin E-promoting activity (pro-vitamin E).
  • Functional equivalents of anti-HGD or anti-MAAI / FAAH include those nucleotide sequences which sufficiently suppress the HGD or MAAI / FAAH enzyme function in the transgenic plant. This can be caused, for example, by obstruction or inhibition of HGD or MAAI / FAAH processing, the transport of HGD or MAAI / FAAH or their mRNA, inhibition of ribosome attachment, inhibition of RNA splicing, induction of an RNA-degrading enzyme and / or inhibition translation elongation or termination. Furthermore, direct repression of the endogenous genes by DNA-binding factors, for example of the zinc finger transcription factor type, is possible. Direct inhibition of the corresponding polypeptides, for example by aptamers, is also feasible. Various examples are given above.
  • a functional equivalent is understood to mean, in particular, natural or artificial mutations of an originally isolated sequence coding for HGD or MAAI / FAAH or pro ⁇ HG or pro-vitamin E, which furthermore show the desired function. Mutations include substitutions, additions, deletions, exchanges or insertions of one or more nucleotide residues.
  • the present invention also encompasses those nucleotide sequences which are obtained by modification of the HGD or MAAI / FAAH or proHG or proVitamin E nucleotide sequence.
  • the aim of such a modification can be, for example, the further narrowing of the coding sequence contained therein or, for example, the insertion of further restriction enzyme interfaces or the removal via liquid DNA.
  • Transitions and transversions in question, techniques known per se, such as in vitro mutagenesis, "primer repair", restriction or ligation can be used. Through manipulations, such as Restriction, “chewing-back” or filling of overhangs for "blunt ends”, complementary ends of the fragments can be made available for the ligation.
  • Substitution means the replacement of one or more amino acids by one or more amino acids. So-called conservative exchanges are preferably carried out, in which the replaced amino acid has a similar property to the original amino acid, for example replacement of Glu by Asp, Gin by Asn, Val by Ile, Leu by Ile, Ser by Thr.
  • Deletion is the replacement of an amino acid with a direct link.
  • Preferred positions for deletions are the termini of the polypeptide and the links between the individual protein domains.
  • Insertions are insertions of amino acids into the polypeptide chain, whereby a direct binding is formally replaced by one or more amino acids.
  • Homology between two proteins means the identity of the amino acids over the respective total protein length, which is calculated by comparison using the program algorithm GAP (UWGCG, University of Wisconsin, Genetic Computer Group) with the following parameters: Gap Weight: 12 Length Weight: 4 Average Match: 2,912 Average Mis atch: -2,003
  • sequence SEQ ID NO. 6 is accordingly understood to be a sequence which, when its sequence is compared with the sequence SEQ ID NO. 6 has a homology of at least 20% according to the above program algorithm with the above parameter set.
  • Functional equivalents derived from one of the nucleic acid sequences used in the nucleic acid constructs or vectors according to the invention, for example by substitution, insertion or deletion of amino acids or nucleotides, have a homology of at least 20%, preferably 40%, preferably at least 60%, preferably at least 80%, particularly preferably at least 90%.
  • nucleic acid sequences used in the nucleic acid constructs or vectors according to the invention can easily be found, for example, from various organisms whose genomic sequence is known, for example from Arabidopsis thaliana, by comparing the homology of the amino acid sequences or the corresponding back-translated nucleic acid sequences from databases.
  • Functional equivalents also include those variants whose function is weakened or enhanced compared to the starting gene or gene fragment, for example those proHG or proVitamin E genes which are suitable for a polypeptide variant with lower or higher enzymatic activity than that of the original gene encode.
  • Sequences which code for fusion proteins are to be mentioned as further suitable functionally equivalent nucleic acid sequences, part of the fusion protein being, for example, a proHG or proVitamin E polypeptide or a functionally equivalent part thereof.
  • the second part of the fusion protein can be, for example, another polypeptide with enzymatic activity (for example another proHG or proVitaminE polypeptide or a functionally equivalent part thereof) or an antigenic polypeptide sequence, with the aid of which a detection of the proHG or proVitamin E ⁇ expression is possible (eg yc-tag or his-tag).
  • the invention further relates to recombinant vectors which comprise at least one nucleic acid construct as defined above, a nucleic acid sequence which codes for an HGD, MAAI or FAAH, or combinations of these possibilities.
  • nucleic acid sequences or nucleic acid constructs contained in the vectors are preferably functionally linked to genetic control sequences.
  • vectors according to the invention can include expression constructs of the following type:
  • the invention also expressly relates to vectors which are able to express polypeptides with HGD, MAAI, or FAAH activity.
  • the sequences coding for these genes preferably originate from plants, cyanobacteria, mosses, fungi or algae.
  • the sequences coding for polypeptides according to SEQ ID NO 3, 5 and 18 are particularly preferred.
  • the coding pro-HG or pro-VitaminE sequence can also be replaced by a coding sequence for a fusion protein consisting of transit peptide and the corresponding sequence.
  • Preferred examples include vectors and can contain one of the following expression constructs:
  • the coding pro-HG sequence or pro-vitamin E sequence can also be replaced by a coding sequence for a fusion protein composed of transit peptide and pro-HG or pro-VitaminE.
  • Preferred examples include vectors containing the following constructs:
  • Constructs a) to d) allow the simultaneous transformation of the plant with pro-HG or pro-VitaminE and anti-HGD or anti-MAAI / FAAH.
  • nucleic acid constructs can be cloned into suitable vectors which enable their multiplication, for example in E. coli.
  • suitable cloning vectors include pBR332, pUC series, M13mp series and pACYC184.
  • Binary vectors which can replicate both in E. coli and in agrobacteria are particularly suitable.
  • the nucleic acid constructs according to the invention are preferably inserted into suitable transformation vectors.
  • suitable vectors are inter alia in "Methods in Plant Molecular Biology and Biotechnology” (CRC Press), Chap. 6/7, pp. 71-119 (1993) be. They are preferably cloned into a vector, such as pBin19, pBinAR, pPZP200 or pPTV, which is suitable for transforming Agrobacterium tumefaciens.
  • the agrobacteria transformed with such a vector can then be used in a known manner for the transformation of plants, in particular crop plants, such as rape, for example by bathing wounded leaves or leaf pieces in an agrobacterial solution and then cultivating them in suitable media.
  • the transformation of plants by agrobacteria is known, inter alia, from FF White, Vectors for Gene Transfer in Higher Plants; in Transgenic Plants, Vol. 1, Engineering and Utilization, edited by SD Kung and R. Wu, Academic Press, 1993, pp. 15-38.
  • Transgenic plants can be known from the transformed cells of the wounded leaves or leaf pieces be regenerated, which contain the nucleic acid constructs described above integrated.
  • nucleic acid sequences contained in the nucleic acid constructs and vectors according to the invention can be functionally linked to at least one genetic control sequence. Genetic control sequences ensure, for example, transcription and translation in prokaryotic or eukaryotic organisms.
  • the constructs according to the invention preferably comprise a promoter 5 'upstream of the respective coding sequence and a terminator sequence 3' downstream and optionally further conventional regulatory elements, in each case functionally linked to the coding sequence.
  • a functional link is understood to mean, for example, the sequential arrangement of promoter, coding sequence, terminator and, if appropriate, further regulatory elements in such a way that each of the regulatory elements can fulfill its function in the expression of the coding sequence or the antisense sequence , This does not necessarily require a direct link in the chemical sense.
  • Genetic control sequences, such as enhancer sequences, can also perform their function on the target sequence from other DNA molecules.
  • nucleic acid construct can also have a simpler structure. That is, no additional regulatory signals are inserted in front of the genes mentioned above and the natural one Promoter with its regulation is not removed. Instead, the natural control sequence is mutated so that regulation no longer takes place and gene expression is increased. These modified promoters can also be placed in front of the natural genes to increase activity.
  • the nucleic acid construct can also advantageously contain one or more so-called “enhancer sequences” functionally linked to the promoter, which enable increased expression of the nucleic acid sequence. Additional advantageous sequences, such as further regulatory elements or terminators, can also be inserted at the 3 'end of the DNA sequences.
  • the genes mentioned above can be contained in one or more copies in the gene construct.
  • sequences are further targeting sequences different from the transit peptide, to ensure the subcellular localization in the apoplast, in the vacuole, in plastids, in the mitochondrion, in the endoplasmic reticulum (ER), in the cell nucleus, in oil corpuscles or other compartments; and translation enhancers such as the 5 'leader sequence from the tobacco mosaic virus (Gallie et al., Nucl. Acids Res. 15 (1987), 8693-8711), and the like.
  • Control sequences are also to be understood as those which enable homologous or heterologous recombination or insertion into the genome of a host organism or which allow removal from the genome.
  • the endogenous gene can be completely inactivated. It can also be replaced by a synthetic gene with increased and modified activity.
  • Methods such as the cre / lox technology allow a tissue-specific, possibly inducible removal of the target gene from the genome of the host organism (Sauer B. Methods. 1998; 14 (4): 381-92).
  • certain flanking sequences are added to the target gene (lox sequences), which later enable removal using the cre recombinase.
  • control sequences are suitable.
  • Advantageous control sequences for the nucleic constructs according to the invention, for the vectors according to the invention, for the method according to the invention for producing vitamin E and for the genetically modified organisms described below Men are, for example, in promoters such as cos, tac, trp, tet, lpp, lac, lpp-lac, laclq, TJ, T5, T3, gal, trc, ara, Contain SP6, 1-PR or in the 1-PL promoter, which are advantageously used in gram-negative bacteria. 5
  • control sequences are, for example, in the gram-positive promoters ay and SP02, in the yeast or fungal promoters ADC1, MFa, AC, P-60, CYC1, GAPDH, TEF, rp28, ADH or in the plant promoters CaMV / 35S [Franck et al. , Cell 21 (1980) 10 285-294], PRP1 [Ward et al. , Plans. Mol. Biol. 22 (1993)], SSU, OCS, LEB4, ÜSP, STLS1, B33, NOS; FBPaseP (WO 98/18940) or contained in the ubiquitin or phaseolin promoter.
  • any promoter which can control the expression of genes, in particular foreign genes, in plants is suitable as preferred promoter for the nucleic acid constructs.
  • a plant promoter or a plant virus-derived promoter is preferably used.
  • the CaMV 35S promoter from the flower cabbage mosaic virus (Franck et al., Cell 21 (1980), 285-294) is particularly preferred.
  • this promoter contains different recognition sequences for transcriptional effectors, all of which lead to permanent and constitutive expression of the introduced gene (Benfey et al., EMBO J. 8 (1989), 2195-2202). 25 Another example of a suitable promoter is the LeguminB promoter (Accessionn. X03677).
  • nucleic acid constructs can also contain a chemically inducible promoter through which the expression of the exogenous
  • Such promoters e.g. the PRP1 promoter (Ward et al., Plant. Mol. Biol. 22 (1993), 361-366), a salicylic acid-inducible (WO 95/19443), a benzenesulfonamide-inducible (EP-A- 0388186), a tetracycline-inducible
  • promoters are particularly preferred which ensure expression in tissues or parts of plants in which the biosynthesis of vitamin E or its precursors takes place or in which the products are advantageously accumulated. Promoters for the whole plant should be mentioned in particular.
  • P rr F 1 o ⁇ F IQ s P ⁇ OP F- P J H ⁇ ⁇ ⁇ IQ Hi 3> i OFP rr O -J ⁇ - ⁇ VD 1 03 p: P ⁇ P ⁇ . O ⁇ P J PPP d ⁇ rx PP J ⁇ P 01 03 NO! P ⁇ F- P rr g * F- IQ - - tr) CO tr> ⁇ tr ⁇ PO
  • Organism, starting or host organisms are to be understood as procaryotic or eukaryotic organisms, such as, for example, microorganisms or plant organisms.
  • Preferred microorganisms are bacteria, yeast, algae or fungi.
  • Preferred bacteria are bacteria of the genus Bscherichia,
  • microorganisms which are capable of infecting plants and thus of transmitting the constructs according to the invention.
  • Preferred microorganisms are those from the genus Agrobacterium and in particular from the species Agrobacterium tumefacien ⁇ .
  • Preferred yeasts are Candida, Saccharomyces, Hansenula or Pichia.
  • Plant organisms in the sense of the invention are mono- and dicotyledonous plants.
  • the transgenic plants according to the invention are selected in particular from monocotyledonous crop plants, such as, for example, cereals such as wheat, barley, millet, rye, triticale, maize, rice or oats, and sugar cane.
  • the transgenic plants according to the invention are selected in particular from dicotyledonous crop plants, such as, for example
  • Brassicacae such as rapeseed, cress, Arabidopsis, cabbage or
  • Leguminosae such as soy, alfalfa, pea, beans or
  • Peanut Solanaceae such as potato, tobacco, tomato, eggplant or bell pepper, Asteraceae such as sunflower, tagetes, lettuce or calendula, Cucurbitaceae such as melon, pumpkin or zucchini, as well as flax, cotton, hemp, flax, red pepper, carrot, sugar beet and the various Tree, nut and wine species.
  • Arabodopsis thaliana is and all genera and species that are suitable for the production of oils, such as oilseeds (such as rapeseed), types of nuts, soybeans, sunflower, pumpkin and peanut.
  • Plant organisms in the sense of the invention are further photosynthetically active organisms or organisms capable of vitamin E synthesis, such as algae or cyanobacteria, and mosses.
  • Preferred algae are green algae, such as algae of the genus Haematococcus, Phaedactylum tricornatum, Volvox or Dunaliella.
  • Transformation is the transfer of foreign genes into the genome of an organ, for example a plant.
  • the methods described for the transformation and regeneration of plants from plant tissues or plant cells for transient or stable transformation are used. Suitable methods are protoplast transformation by polyethylene glycol-induced DNA uptake, the biolistic method with the gene gun, the so-called particle bombardment method, electroporation, the incubation of dry embryos in DNA-containing solution, microinjection and that mediated by Agrobacterium gene transfer.
  • the methods mentioned are described, for example, in B. Jenes et al. , Technigues for Gene Transfer, in: Transgenic Plants, Vol. 1, Engineering and Utilization, edited by S.D. Kung and R. Wu, Academic Press (1993), 128-143 and in Potrykus, Annu.
  • the construct to be expressed is preferably cloned into a vector t which is suitable for transforming Agrobacterium tumefaciens, for example pBin19 (Bevan et al., Nucl. Acids Res. 12 (1984), 8711).
  • the effectiveness of the expression of the transgenically expressed nucleic acids can be determined, for example, in vitro by sprout meristem propagation.
  • a change in the type and level of expression of pro-HG or pro-VitaminE genes and their effect on the vitamin E biosynthesis performance on test plants can be tested in greenhouse experiments.
  • Another object of the invention are transgenic organisms as described above, which are capable of an improved vitamin E production compared to the untransformed wild type.
  • improved vitamin E production means, for example, the artificially acquired ability of an increased biosynthetic capacity of at least one compound from the group of tocopherols and tocotrienols in the transgenic organisms compared to the non-genetically modified starting organism for at least one plant generation.
  • the vitamin E production in the transgenic organism is preferably increased by 10%, particularly preferably by 50%, very particularly preferably by 100%, compared to the non-genetically modified starting organism.
  • Improved can also mean an advantageously changed qualitative composition of the vitamin E mixture.
  • the site of vitamin E biosynthesis is generally the leaf tissue but also the seed, so that leaf-specific or seed-specific expression, in particular of pro-HG and pro-vitamin E sequences and optionally of anti-HGD or anti-MAAI / FAAH Sequences makes sense.
  • the vitamin E biosynthesis need not be limited to the seeds, but can also be tissue-specific in all other parts of the plant.
  • constitutive expression of the exogenous gene is advantageous.
  • inducible expression may also be desirable.
  • Another object of the invention finally relates to a method for producing vitamin E, which is characterized in that the desired vitamin E is isolated in a manner known per se from a culture of a plant organism transformed according to the invention.
  • Genetically modified plants according to the invention with increased vitamin E content that can be consumed by humans and animals can also be used, for example, directly or after processing known per se as food or feed.
  • the invention further relates to the use of polypeptides which code for an HGD, MAAI or FAAH, the genes and cDNAs on which they are based, or the nucleic acid constructs according to the invention derived from them, vectors or organisms according to the invention for the production of antibodies, protein or DNA -binding factors.
  • the HGD-MAAI-FAAH degradation pathway provides target enzymes for the development of inhibitors.
  • the invention therefore also relates to the use of polypeptides which code for an HGD, MAAI or FAAH, the genes and cDNAs on which they are based, or the nucleic acid conversion according to the invention derived from them.
  • strukt, vectors according to the invention or organisms according to the invention as a target for finding inhibitors of HGD, MAAI or FAAH.
  • the complete cDNA sequence of the HGD, MAAI or FAAH is cloned into an expression vector (for example pQE, Qiagen) and overexpressed in E. coli.
  • an expression vector for example pQE, Qiagen
  • the HGD, MAAI or FAAH proteins are particularly suitable for the detection of inhibitors specific for the HGD, MAAI or FAAH.
  • the invention relates to a method for finding inhibitors of HGD, MAAI or FAAH using the abovementioned polypeptides, nucleic acids, vectors or transgenic organisms, characterized in that the enzymatic activity of the HGD, MAAI or FAAH is present measures a chemical compound and, when the enzymatic activity is reduced compared to the uninhibited activity, the chemical compound is an inhibitor.
  • the HGD, MAAI or FAAH can be used, for example, in an enzyme test in which the activity of the HGD, MAAI or FAAH is determined in the presence and absence of the active substance to be tested. By comparing the two activity determinations, a qualitative and quantitative statement can be made about the inhibitory behavior of the active substance to be tested.
  • the inhibitors of HGD, MAAI or FAAH are suitable for increasing vitamin E biosynthesis functionally analogous to the anti-HGD or anti-MAAI / FAAH nucleic acid sequences described above.
  • the invention therefore also relates to processes for improving vitamin E production using inhibitors from HGD, MAAI or FAAH.
  • the improved production of vitamin E can have a positive effect on the plant, since these compounds have an important function in protecting against harmful environmental influences (solar radiation, oxygen radicals).
  • An increase in vitamin E production can therefore act as a growth driver.
  • Another object of the invention is therefore the use of inhibitors of HGD, MAAI or FAAH, obtainable by the method described above, as growth regulators.
  • SEQ ID NO. 1 Homogentisat-1, 2-dioxygense (HGD) gene from Arabidopsis thaliana
  • SEQ ID NO. 2 Homogentisat-l, 2-dioxygense (HGD) cDNA from Arabidopsis thaliana
  • SEQ ID NO. 3 Homogentisat-1, 2-dioxygense (HGD) polypeptide
  • Arabidopsis thaliana SEQ ID NO. 4 Fumarylacetoacetate hydrolase (FAAH) Arabidopsis thaliana cDNA
  • SEQ ID NO. 5 Fumarylacetoacetate hydrolase (FAAH) polypeptide from Arabidopsis thaliana
  • SEQ ID NO. 6 Maleylacetoacetate isomerase (MAAI) gene from Arabidopsis thaliana
  • SEQ ID NO. 7 TyrA gene coding for a bifunctional chorismate mutase / prephenate dehydrogenase
  • SEQ ID NO. 8 TyrA polypeptide coding for a bifunctional
  • Chorismate mutase / prephenate dehydrogenase SEQ ID NO. 9: Fumarylacetoacetate hydrolase (FAAH) gene from Arabidopsis thaliana
  • Fumarylacetoacetate hydrolase (FAAH) gene from Arabidopsis thaliana
  • SEQ ID NO. 10 Hydroxyphenylpyruvate dioxygenase (HPPD) cDNA from Arabidopsis thaliana
  • SEQ ID NO. 11 Hydroxyphenylpyruvate dioxygenase (HPPD) polypeptide from Arabidopsis thaliana
  • SEQ ID NO. 12 Homogentisat-1, 2-dioxygense (HGD) cDNA fragment from Brassica napus
  • SEQ ID NO. 13 Homogentisate phytyltransferase cDNA from Synechocystis PCC6803
  • SEQ ID NO. 14 Homogentisate phytyltransferase polypeptide from Synechocystis PCC6803
  • SEQ ID NO. 15 Artificial codonusage optimized cDNA coding for hydroxyphenylpyruvate dioxygenase (HPPDop)
  • Streptomyces aver i tilis SEQ ID NO. 16 Hydroxyphenylpyruvate dioxygenase polypeptide
  • Streptomyces avermi tilis SEQ ID NO. 17 Maleylacetoacetate isomerase (MAAI) cDNA from Arabidopsis thaliana
  • SEQ ID NO. 18 Maleylacetoacetate isomerase (MAAI) polypeptide
  • Arabidopsis thaliana SEQ ID NO. 19 ⁇ -tocopherol methyl transferase cDNA from Arabidopsis thaliana SEQ ID NO. 20: ⁇ -tocopherol methyltransferase polypeptide from Arabidopsis thaliana SEQ ID NO. 21: 3-methyl-6-phytyldroquinone methyltransferase cDNA from Synechocystis PCC6803
  • SEQ ID NO. 22 3-Methyl-6-phytylhdroquinone methyltransferase polypeptide from Synechocystis PCC6803
  • SEQ ID NO. 23 Geranylgeranyl pyrophosphate oxidoreductase cDNA
  • SEQ ID NO. 24 Geranylgeranyl pyrophosphate oxidoredutase polypeptide from Nicotiana tabacum.
  • SEQ ID NO. 25 Primer (5 * -HGD Brassica napus) 5 '-GTCGACGGNCCNATNGGNGCNAANGG-3'
  • SEQ ID NO. 26 primer (3 % -N0S terminator)
  • SEQ ID NO. 27 primer (5 l -35 S promoter)
  • SEQ ID NO. 29 primer (5 v -MAAI A. thaliana)
  • SEQ ID NO. 30 Primer (3 -MAAI A. thaliana) 5 '-atggatccCTGGTTCATATGATACA-3'
  • SEQ ID NO. 31 primer (B'-FAAH A. thaliana)
  • SEQ ID NO. 32 primer (3 '-FAAH A. thaliana)
  • SEQ ID NO. 34 Primer (5 -Legumin Promoter)
  • SEQ ID NO. 35 Primer (3 X -Legumin Promoter) 5 '-GGTACCGTGATAGTAAACAACTAATG-3'
  • SEQ ID NO. 36 Primer (5 transit peptide)
  • SEQ ID NO. 37 Primer (3 v transit peptide)
  • SEQ ID NO. 41 Maleylacetoacetate isomerase (MAAI) gene (fragment) from Arabidopsis thaliana
  • MAAI Maleylacetoacetate isomerase
  • Fumarylacetoacetate hydrolase (FAAH) gene fragment from Arabidopsis thaliana
  • FIG. 1 shows a schematic representation of the vitamin E biosynthetic pathway in plants
  • FIG. 2 construction schemes of the plasmids pBinARHGDanti (I) and pCRScriptHGDanti (II) encoding antiHGD;
  • FIG. 3 construction schemes of the plasmids pUC19HPPDop (III) and pCRScriptHPPDop (IV) encoding HPPDop;
  • FIG. 4 construction schemes of the transformation vectors pPTVHGDanti (V) and the bifunctional transformation
  • Vector pPTV HPPDop HGD anti (VI), which expresses the HPPDop in seeds of transformed plants and at the same time suppresses the expression of the endogenous HGD.
  • FIG. 6 construction schemes of the transformation vectors pGBMT MAAI1 anti (VIII) and pBinAR MAAI1 anti (IX)
  • FIG. 7 construction diagrams of the transformation vectors pCR-Script M AI1 anti (X) and pZPNBN MAAI1 anti (XI)
  • FIG. 8 construction schemes of the transformation vectors pGEMT FAAH anti (XII)
  • FIG. 9 construction schemes of the transformation vectors pBinAR FAAH anti (XIII) and pZPNBN FAAH anti (XIV)
  • oligonucleotides can be carried out, for example, in a known manner using the phosphoamidite method (Voet, Voet, 2nd edition, Wiley Press New York, pages 896-897).
  • the cloning steps carried out in the context of the present invention such as e.g. Restriction cleavages, agarose gel electrophoresis, purification of DNA fragments, transfer of nucleic acids to nitrocellulose and nylon membranes, linking of DNA fragments, transformation of E. coli cells, cultivation of bacteria, multiplication of phages and sequence analysis of recombinant DNA were carried out as in Sambrook et al , (1989) Cola Spring Harbor Laboratory Press; ISBN 0-87969-309-6.
  • the sequencing of recombinant DNA molecules was carried out using a laser fluorescence DNA sequencer from Licor (sold by MWG Biotech, Ebersbach) according to the method of Sanger (Sanger et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 74 (1977 ), 5463-5467).
  • HPPD hydroxyphenyl pyruvate dioxygenase
  • Streptomyces avermi tilis accession no. U11864, SEQ ID NO: 16
  • the codon usage was determined using the database http://www.dna.affrc.go.jp/ -nakamura / index.html.
  • the pellet was first washed in 3M sodium acetate solution and after a further centrifugation in 70% ethanol. The pellet was then dissolved in DEPC (diethyl pyrocarbonate) water and the RNA concentration was determined photometrically.
  • DEPC diethyl pyrocarbonate
  • RNA 20 mg were first mixed with 3.3 ml of 3M sodium acetate solution, 2 ml of 1M magnesium sulfate solution and made up to a final volume of 10 ml with DEPC water. 1 ml of RNase-free DNase (Boehringer Mannheim) was added and incubated at 37 degrees for 45 min. After removing the enzyme by shaking with phenol / chloroform / isoamyl alcohol, the RNA was precipitated with ethanol and the pellet was taken up in 100 ml of DEPC water. 2.5 mg of RNA from this solution were transcribed into cDNA using a cDNA kit (Gibco BRL) according to the manufacturer's instructions.
  • a cDNA kit Gibco BRL
  • oligonucleotides were derived for a PCR on 5 A tail and a Asp718 restriction site had been added at the 3 'end.
  • the oligonucleotide at the 5 'end comprises the sequence: 5 * -GTCGACGGNCCNATNGGNGCNAANGG-3 '(SEQ ID NO: 25),
  • the oligonucleotide at the 3 'end comprises the sequence:
  • N in each case means inosine and R stands for the incorporation of A or G into the oligonucleotide.
  • the PCR reaction was carried out with the Taq polymerase from TAKARA according to the manufacturer's instructions. 0.3 mg of the cDNA was used as template.
  • the PCR program was:
  • the fragment was purified using NucleoSpin Extract (Machery and Nagel) and cloned into the vector pGEMT (Promega) according to the manufacturer's instructions. The correctness of the fragment was checked by sequencing.
  • Example 3 Production of a plant transformation construct for overexpression of the HPPD with an optimized DNA sequence (HPPDop) and switching off the HGD
  • the components of the cassette for expressing the HPPDop consisting of the LeguminB promoter (accession no. X03677), the transit peptide of ferredoxin: NADP + oxidoreductase from spinach (FNR; Jansen, T, et al (1988) Current Genetics 13, 517 -522) and the NOS terminator (contained in pBHOl Accession No. U12668) by means of PCR with the required restriction sites.
  • the legumin promoter was derived from the plasmid plePOCS (Bäumlein, H, et al. (1986) Plant J. 24, 233-239) with the upstream oligonucleotide:
  • the transit peptide was derived from the plasmid pSK-FNR (Andrea Babette Regierer "Molecular genetic approaches to change the
  • the NOS terminator was generated from the plasmid pBHOl (Jefferson, R.A., et al (1987) EMBO J. 6 (13), 3901-3907) by means of PCR with the 5 'oligonucleotide:
  • the amplicon was cloned into the vector pCR-Script (Stratagene) according to the manufacturer's instructions.
  • the NOS terminator was first cloned as a Sall / Hindlll fragment into an appropriately cut püC19 vector (Yanisch-Perron, C, et al (1985) Gene 33, 103-119). The transit peptide was then introduced into this plasmid as an Asp718 / Sall fragment. The legumin promoter was then cloned in as an EcoRI / Asp718 fragment. The HPPDop gene was introduced into this construct as a Sall fragment (FIG. 3, construct III).
  • the finished cassette in pUC19 was used as a template for a PCR, for which the oligonucleotide for the legume promoter:
  • the gene fragment was cloned as Sall / Asp718 fragment into the vector pBinAR (Höfgen, R. and Willmitzer, L., (1990) Plant Sei. 66: 221-230), in which the 35S promoter and the OCS terminator are present ( Figure 2, construct I).
  • the construct served as a template for a PCR reaction with the oligonucleotide:
  • the amplicon was cloned into the vector pCR-Script (Stratagene) and called pCRScriptHGDanti ( Figure 2, construct II).
  • the construct HGDanti from pCRScriptHGDanti was first cloned as an XbaT fragment into the vector pPTV (Becker, D., (1992) PMB 20, 1195-1197) (FIG. 4, construct V).
  • the construct LegHPPDop from pCRScriptHPPDop was inserted into this plasmid as HindIII Fragment inserted. This plasmid was designated pPTVHPPDopHGDanti ( Figure 4, construct VI).
  • Example 4 Production of co-transformation constructs for overexpression of HPPDop and elimination of HGD in Brassica napus plants
  • the extraction buffer used has the following composition:
  • DNA extraction buffer (0.35 M sorbitol, 0.1 M Tris, 5 mM EDTA, pH 8.25 HCl
  • nuclei lysis buffer 0.2 M Tris-HCl pH 8.0, 50 mM EDTA, 2 M NaCl, 2% hexadecyltrimethylammonium bromide (CTAB)
  • the pellet was washed in 70% ethanol, dried at room temperature for 10 min and then in 100 ⁇ l TE- KNAse buffer (10 M Tris HC1 pH 8.0, 1 mM EDTA pH 8.0, 100 mg / 1 RNase) dissolved.
  • the MAAI gene from A. thaliana identified (Genbank Acc.-No. AAC78520.1).
  • the sequence is annotated in the library as putative glutathione-S-transferase.
  • the corresponding DNA sequence could be determined and oligonucleotides derived.
  • a cell was added to the oligonucleotides at the 5 'end and a BamHI restriction site at the 3' end.
  • the oligonucleotide at the 5 'end comprises the sequence
  • the oligonucleotide at the 3 'end comprises the sequence
  • the PCR reaction was carried out using the Taq polymerase (manufacturer: TaKaRa Shuzo Co., Ltd.).
  • the mixture had the following composition: 10 ⁇ l buffer (20 mM Tris-HCl pH 8.0, 100 M KC1, 0.1 mM EDTA, 1 mM DTT, 0.5% Tween20, 0.5% Nonidet P-40, 50 % Glycerol), 100 pmol each of the two oligonucleotides, 20 nM each of dATP, dCTP, dGTP, dTTP, 2.5 units of Taq polymerase, 1 ⁇ g of genomic DNA, distilled water add 100 ⁇ l.
  • the PCR program was:
  • the amplified ⁇ fragment (SEQ ID NO: 41) was purified using Nuclao-Spin Extract (Machery-Nagel) and cloned according to the manufacturer's instructions into the vector pGEMTeasy from Promega (FIG. 6, construct VIII). The correctness of the fragment was checked by sequencing. Using the restriction sites attached to the sequence by the primers, the gene was cloned as a Sall / BamHI fragment into the correspondingly cut vector BinAR (Höfgen, R. and Willmitzer, L., (1990) Plant Sei. 66: 221-230) ( Figure 6, construct IX). This contains the 35S promoter of the cauliflower mo saikvirus and the OCS termination sequence. The construct served as a template for a PCR reaction with the oligonucleotide
  • the PCR was carried out with the Pfu polymerase (manufacturer: Stratagene). The mixture had the following composition: 10 ⁇ l buffer (200 mM Tris HCl pH 8.8, 20 mM MgS0 4 , 100 mM KC1, 100 mM ammonium sulfate, 1% Triton X-100, 1 g / 1 nuclease free BSA), each 100 pmol two oligonucleotides, each 20 nM of dATP, dCTP, dGTP, dTTP, 2.5 units of Pfu polymerase, 1 ng of plasmid DNA, distilled water add 100 ⁇ l.
  • the PCR program was:
  • the PCR frag ent was purified by means of Nucleo-Spin Extract (Machery-Nagel) and cloned into the vector pCR-Script (Stratagene) (FIG. 7, construct X).
  • pZPNBN is a pPZP200 derivative (Ha dukiewicz, P., ec al., (1994) P B 25 (6): 989-94), which previously had a phosphinotricin resistance; inserted under the control of the NOS promoter before the NOS terminator.
  • Example 7 Cloning of a genomic fragment of fumarylacetoacetate isomerase from Ai-abidopsis thaliana
  • a blast search was carried out using the protein sequence of the FAAH from Emeri cella nidulans and a protein sequence was identified from A. thaliana which had 59% homology.
  • FAAH from A. thaliana has the accession number ACGQ2131.
  • IP number of the protein sequence the DNA sequences could be determined and oligonucleotides derived.
  • a 5all was added to the 5 'oligonucleotide and an Asp718 restriction site to the 3' oligonucleotide.
  • the oligonucleotide at the 5 'end of FAAH comprises the sequence
  • the oligonucleotide at the 3 'end comprises the sequence:
  • the PCR reaction was carried out with the Tag Polymerase (manufacturer: TaKaRa Shuzo Co., Ltd.).
  • the mixture had the following composition: 10 ⁇ l buffer (20 mM Tris-HCl pH 8.0, 100 mM KCl, 0.1 mM EDTA, 1 M DTT, 0.5% Tween20, 0.5% Nonidet P-40, 50 % Glycerol), each lOOpmol of the two oligonucleotides, each 20 nM of dATP, dCTP, dGTP, dTTP, 2.5 units of Taq polymerase, 1 ⁇ g genomic DNA, distilled water add 100 ⁇ l.
  • the PCR program was:
  • the fragment ((SEQ ID NO: 42) was purified using a Nucleo-Spin Extract (Machery-Nagel) and cloned according to the manufacturer's instructions into the vector pGEMTeasy from Promega (FIG. 8, construct XII).
  • the gene was cloned as a Sall / Asp718 fragment into the correspondingly cut vector BinAR (Höfgen, R. and Willmitzer, L., Plant Sei. 66: 221-230, 1990). This contains the 35S promoter of the cauliflower mosaic virus and the OCS termination sequence (FIG. 9, construct XIII).
  • pZPNBN is a pPZP200 derivative (Ha dukewicz, P. et al., Plant Molecular Biology, 25; 989-994, 1994), to which phosphinotricin resistance had been inserted before the NOS terminator under the control of the NOS promoter ( Figure 9, construct XIV).
  • Example 8
  • Wild-type Arabidopsis thaliana plants (cv. Columbia) were treated with the Agrobacterium tumefaciens strain (EHA105) on the basis of a modified method of the vacuum infiltration method according to Clough and Bent (Clough, S. and Bent A., Plant J. 16 (6): 735- 43, 1998) and according to Bechtold, et al. (Bechtold, N., et al., CRAcad Sei Paris. 1144 (2): 204-212, 1993).
  • the Agrobacterium tumefaciens cells used had previously been transformed with the plasmids pZPNBN-MAAIanti or pZPNBN-FAAHanti.
  • Seeds of the primary transformants were screened for phosphinotricin resistance by planting seeds and spraying the seedlings with the herbicide basta (phosphinotricin). Basta resistant seedlings were isolated and used as fully developed plants for biochemical analysis.
  • Example 9 Production of transgenic oilseed rape (Brassica napus) plants
  • transgenic oilseed rape plants were based on a protocol by Bade, J.B. and Damm, B. (Bade, JB and Damm, B. (1995) in: Gene Transfer to Plants, Potrykus, I. and Spangenberg, G., eds, Springer Lab Manual, Springer Verlag, 1995, 30-38), in which the composition of the media and buffers used is specified.
  • the transformation was carried out with the Agrobacterium tumefaciens strain EHA105.
  • Either the plasmid pPTVHPPDopHGDanti (FIG. 4, construct VI) or, after cultivation, mixed cultures of agrobacteria with the plasmids pPTVHGDanti (FIG. 4, construct V) and pPZP200HPPDop (FIG. 5, construct VII) were used for the transformation.
  • Westar were surface sterilized with 70% ethanol (v / v), washed in water for 10 minutes at 55 ° C, in 1% hypochlorite solution (25% v / v Teepol, 0.1% v / v Tween 20) for Incubated for 20 minutes and washed six times with sterile water for 20 minutes each.
  • the seeds were dried on filter paper for three days and 10-15 seeds were germinated in a glass flask with 15 ml of germination medium. The roots and apices were removed from several seedlings (approx. 10 cm in size) and the remaining hypocotyls were cut into pieces approx. 6 mm long.
  • the approximately 600 explants thus obtained were washed with 50 ml of basal medium for 30 minutes and transferred to a 300 ml flask. After adding 100 ml of Kailus induction medium, the cultures were incubated for 24 hours at 100 rpm. Overnight cultures of the Agrobacteri um strains were set up at 29 ° C. in Luria Broth medium with kanamycin (20 mg / l), of which 2 ml in 50 ml of Luria Broth medium without kanamycin for 4 hours at 29 ° C. until an ODsoo on Incubated 0.4-0.5. After pelleting 5 the culture at 2000 rpm for 25 min, the cell pellet was resuspended in 25 ml of basal medium. The concentration of the bacteria in the solution was adjusted to an ODsoo of 0.3 by adding further basal medium. For co-transformation, the solution of the two strains was mixed in equal parts.
  • the callus induction medium was removed from the oilseed rape explants using sterile pipettes, 50 ml of Agrobac terium solution were added, mixed gently and incubated for 20 min. The Agrobacteria suspension was removed, the rape explants for 1 min
  • washing medium 20 25 ml and washed twice for 60 min with 100 ml of washing medium at 100 rpm.
  • the washing medium with the explants was transferred to 15 cm petri dishes and the medium was removed using sterile pipettes.
  • the developing calli were transferred to fresh petri dishes with shoot induction medium for 30 days. All further steps to
  • the tocopherol and tocotrienol contents in leaves and seeds of the plants transformed with the described constructs (Arabidopsis thaliana, Brassica napus) analyzed.
  • the transgenic plants are cultivated in the greenhouse and plants which express the antisense RNA from the HGD, MAAI, and / or FAAH by means of a Northern blot analysis examined.
  • the tocopherol content and the tocotrienol content are determined in the leaves and seeds of these plants.
  • the plant material was disrupted by incubation three times in an Ependorf shaker at 30 ° C., 100 ° C.
  • the tocopherol or tocotrienol concentration is increased in transgenic plants, which additionally express a nucleic acid according to the invention, in comparison to plants which have not been transformed.

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Abstract

Die Erfindung betrifft verbesserte Verfahren zur Biosynthese von Vitamin E. Diese Verfahren sind gekennzeichnet durch eine Inhibition des Abbaus von Homogentisat über Maleylacetoacetat und Fumarylacetoacetat zu Fumarat und Acetoacetat. Erfindungsgemäss ist ferner die Kombination dieser Inhibition mit Verfahren, die die Homogentisatbereitstellung steigern, bzw. die Umsetzung des Homogentisat zu Vitamin E fördern. Erfindungsgemäss sind Nukleinsäurekonstrukte und Vektoren, mit denen die erfindungsgemässen Verfahren realisiert werden können, sowie davon ausgehend erzeugte transgene pflanzliche Organismen.

Description

Verbesserte Verfahren zur Vitamin E Biosynthese
Beschreibung
Die Erfindung betrifft verbesserte Verfahren zur Biosynthese von Vitamin E. Diese Verfahren sind gekennzeichnet durch eine Inhibition des Abbaus von Homogentisat (HG) über Maleylaceto- acetat (MAA) , Fumarylacetoacetat (FAA) zu Fumarat und Aceto- acetat. Erfindungsgemass ist ferner die Kombination dieser Inhibition mit Verfahren, die die Homogentisatbereitstellung weiter steigern, bzw. die Umsetzung des Homogentisat zu Vitamin E fördern.
Homogentisat ist ein bedeutender Stoffwechselmetaboiit . Es ist ein Abbauprodukt der Aminosäuren Tyrosin und Phenylalanin. In Mensch und Tier wird Homogentisat weiter zu Maleylacetoacetat , infolge zu Fumarylacetoacetat und dann zu Fumarat und Acetoacetat abgebaut. Pflanzen und andere photosynthesebetreibende Mikro- Organismen verwenden Homogentisat ferner als Ausgangsprodukt für die Synthese von Tocopherolen und Tocotrienolen.
Die in der Natur vorkommenden acht Verbindungen mit Vitamin E- Aktivität sind Derivate des 6-Chromanols (Ulimann 's Encyclopedia of Industrial Chemistry, Vol. A 27 (1996), VCH Verlagsgesell- schaft, Chapter 4., 478-488, Vitamin E) . Die Gruppe der Toco- pherole (la-d) weist eine gesättigte Seitenkette auf, die Gruppe der Tocotrienole (2a-d) eine ungesättigte Seitenkette:
la , α-Tocopherol : R1 = R2 = R3 = CH3
1b , ß-Tocopherol [ 148-03 -8 ] : R1 = R3 - CH3 , R2 = H 1c , γ-Tocopherol [ 54-28-4 ] : R1 = H , R2 = R3 = CH3
Id , δ-Tocopherol [119-13-1] : R1 = R2 = H , R3 = CH3
2a, α-Tocotrienol [1721-51-3]: R1 = R2 = R3 = CH3 2b, ß-Tocotrienol [490-23-3]: R1 = R3 = CH3 , R2 = H
2c, γ-Tocotrienol [14101-61-2]: R1 = H, R2 = R3 = CH3
2d, δ-Tocotrienol [25612-59-3]: R1 = R2 = H, R3 = CH3
In der vorliegenden Erfindung werden unter Vitamin E alle acht vorstehend erwähnten Tocopherole und Tocotrienole mit Vitamin-E- Aktivit t verstanden.
Diese Verbindungen mit Vitamin-E-Aktivität sind wichtige natürliche fettlösliche Antioxidantien . Ein Mangel an Vitamin E führt bei Menschen und Tieren zu pathophysiologischen Situationen. Epidemiologische Untersuchungen haben ergeben, dass eine Nahrungsergänzung mit Vitamin E das Risiko, an kardiovaskuläre Erkankungen oder Krebs zu erkranken, reduziert. Ferner ist eine positive Wirkung auf das Immunsystem und eine Prävention von generellen altersbedingten Degenerationserscheinungen beschrieben (Traber MG, Sies H Annu Rev Nutr. 1996;16:321-47). Die Funktion von Vitamin E liegt dabei vermutlich in einer Stabilisierung der biologischen Membranen, sowie in einer Reduktion von freien Radikalen, wie sie zum Beispiel bei der Lipidoxidation von poly- ungesättigten Fettsäuren (PUFA) entstehen.
Die Funktion von Vitamin E in den Pflanzen selber ist kaum untersucht. Es scheint jedoch eventuell eine wichtige Funktion in der Stressreaktion der Pflanze v.a. auf oxidativen Stress zu haben. Erhöhte Vitamin E Spiegel wurden mit erhöhter Stabilität und Lagerfähigkeit von Pflanzenprodukten in Verbindung gebracht. Der Zusatz von Vitamin E zu Tierernährungsprodukten hat einen positiven Effekt auf die Fleischqualität und die Lagerfähigkit von Fleisch und Fleischprodukten bei z.B. Schweinen, Rindern und Geflügel.
Vitamin E-Verbindungen haben daher einen hohen wirtschaf lichen Wert als Zusatzstoffe im Food- und Feed-Bereich, in pharmazeutischen Formulierungen und in kosmetischen Anwendungen. In der Natur wird Vitamin E ausschliesslich von Pflanzen und anderen photosynthetisch aktiven Organismen (z.B. Cyanobacterien) synthetisiert. Der Gehalt an Vitamin E variiert stark. Die meisten Grundnahrungsmittelpflanzen (z.B. Weizen, Reis, Mais, Kartofffel) haben einen nur sehr geringen Vitamin E Gehalt (Hess, Vitamin E, α-tocopherol , In An tioxidan ts in Higher Plan ts , Herausgeber: R.Ascher and J.Hess, 1993, CRC Press, Boca Raton, pp . 111-134) . Ölsaaten haben in der Regel einen deutlich hoher Vitamin E Gehalt, wobei ß-,γ-,δ-Tocopherol dominieren. Die empfohlene Tagesdosis an Vitamin E liegt bei 15-3 Omg.
Fig. 1 zeigt ein Biosyntheseschema von Tocopherolen und Toco- trienole .
Im Verlauf der Biosynthese wird Homogentisinsäure (Homogentisat; HG) an Phytylpyrophosphat (PPP) bzw. Geranylgeranylpyrophoεphat gebunden, um die Vorläufer von tt~Tocopherol und α-Tocotrienol, das 2-Methyl-phytylhydrochinon bzw. das 2-Methyl-geranylgeranyl- hydrochinon zu bilden. Durch Methylierungsschritte mit S-Adeno- syl ethionin als Methyl-Gruppen-Donor entsteht zunächst 2,3-Di- methyl-6-phytylhydrochinon, dann durch Zyklisierung γ-Tocopherol und durch nochmalige Methylierung α-Tocopherol . Ferner kann aus 2-Methyl-phythylhydrochinon durch Methylierung ß- und δ-Tocopherol synthetisiert werden.
Über die Erhöhung des Stoffwechselflusses zur Steigerung des Tocopherol- bzw. Tocotrienolgehaltes in transgenen Organismen, beispielsweise in transgenen Pflanzen durch Überexpression einzelner Biosynthesegene ist bisher wenig bekannt.
WO 97/27285 beschreibt eine Modifikation des Tocopherol-Gehaltes durch verstärkte Expression bzw. durch Herunterregulation des Enzyms p-Hydroxyphenyl-pyruvatdioxygenase (HPPD) .
WO 99/04622 beschreibt Gensequenzen codierend für eine γ-Tocopherol-methyltransferase aus Synechocystis PCC6803 und Arabidopsis thaliana und deren Einbau in transgene Pflanzen.
WO 99/23231 zeigt, dass die Expression .einer Geranylgeranyloxido- reduktase in transgenen Pflanzen eine gesteigerte Tocopherolbio- synthese zur Folge hat .
WO 00/10380 zeigt eine Veränderung der Zusammensetzung an Vitamin E unter Verwendung von 2-Methyl~6-phytylplascoquinol-methyltrans~ ferase. Shintani and DellaPenna haben gezeigt, dass eine Überexpression der γ-Tocopherolmethyltransferase die Vitamin E Gehalt deutlich steigern kann (Shintani und Dellapenna, Science 282 (5396) :2098-2100, 1998) .
Alle Reaktionen der Vitamin E Biosynthese laufen über das Homogentisat. Bisherige Untersuchungen haben sich meist auf die Überexpression von Genen der Vitamin E- oder Homogentisat-Biosynthese beschränkt (siehe oben) . Wenig Beachtung wurde bislang den Konkurrenzreaktionen zuteil, die Homogentisat abbauen und so der Vitamin E Biosynthese entziehen.
Der Abbau von Homogentisat über Maleylacetoacetat und Fumarylacetoacetat zu Fumarat und Acetoacetat ist für nicht photo- synthetisch aktive Organismen, vor allem tierische Organismen, beschrieben (Fernandez-Canon JM et al . , Proc Natl Acad Sei USA. 1995; 92 (20 ): 9132-9136) . Tierische Organismen benutzen diesen Stoffwechselweg zum Abbau aromatischer Aminosäuren, die vorwiegend über die Nahrung aufgenommen werden. Seine Funktion und Relevanz in Pflanzen ist hingegen unklar. Die Reaktionen werden durch die Homogentisat-1, 2-dioxygenase (HGD; EC-Nr. : 1.13.11.5), die Maleylacetoacetatiso erase (MAAI; EC-Nr.: 5.2.1.2.) und die Fumarylacetoacetathydrolase (FAAH; EC-Nr.: 3.7.1.2) katalysiert.
Das Gen der Homogentisat-1, 2-dioxygenase (HGD) aus Arabidopsis thaliana ist bekannt (Genbank Acc.-No. AF130845). Das Gen der Fumarylacetoacetathydrolase aus Arabidopsis thaliana war bereits aufgrund einer Homologie zu der Fumarylacetoacetathydrolase aus Emericella nidulans (gbJL41670) als ähnlich zu derselben annotiert (Genbank Acc.-No. AC002131). Es ist jedoch in dem entsprechenden Genbank-Eintrag ausdrücklich darauf hingewiesen, dass die Annotation allein auf Ähnlichkeit und nicht auf experimentellen Daten beruht. Das Gen der Maleylacetoacetatisomerase (MAAI) aus Arabidopsis war als Gen in der Genbank vorhanden (AC005312), jedoch als eine putative Glutathion- S-Transferase annotiert. Bekannt war eine MAAI aus Emericella nidulans (Genbank Acc . -No. EN 1837).
Tsegaye et al . mutmassen in einem Abstract (Abstract No . 413) zum 1999 Jahrestreffen der American Society of Plant Physiologists
(24.-28.07.1999, Baltimore, USA) einen Vorteil in der Kombination einer Kreuzung von HPPD-überexprimierenden Pflanzen mit Pflanzen in denen die HGD durch einen antisense-Ansatz herrunterreguliert wird . Trotz einiger Erfolge besteht weiterhin Bedarf an einer Optimierung der Vitamin E Biosynthese. Der Erfindung lag die Aufgabe zugrunde, weitere Verfahren zur Verfügung zu stellen, die den Vitamin E-Biosyntheweges beeinflussen und damit zu weiter vor- teilhaften transgenen Pflanzen mit erhöhtem Gehalt an Vitamin E ühren .
Die Aufgabe wurde durch Identifikation des Homgentisat-Maleyl- acetoacetat-Fumarylacetoacetat-Fumarat Abbauweges als wesent- licher Konkurrenzweg zu dem Vitamin E-Biosynthesewegs gelöst . Es wurde gefunden, dass eine Inhibition dieses Abbauweges zu einer Optimierung der Vitamin E-Biosynthese führt.
Ein erster Gegenstand der Erfindung betrifft daher Verfahren zu einer Vitamin E Produktion durch Reduktion der HGD, MAAI bzw. FAAH Aktivität. Als besonders vorteilhaft erweist sich eine Kombination der beschriebenen Inhibition des Homogentisat-Abbau- weges mit anderen Verfahren, die zu einer verbesserten Vitamin E Biosynthese führen, indem sie die Umsetzung vom Homogentisat zu Vitamin E fördern. Dies kann durch eine erhöhte Zuverfügung- stellung von Reaktionspartnern oder durch eine erhöhte Umsetzung des Homogentisates mit eben diesen realisiert werden. Beispielhaft lässt sich dieser Effekt mit einer Überexpression der Homo- gentisatphythyltransferase (HGPT) , Geranylgeranyloxidoreduktase, der 2-Methyl-6-phytylplastoquinol-methyltransferase oder der γ-Tocopherol-methyltransferase erreiche .
Vorteilhaft ist ferner eine Kombination mit Genen die die Homo- gentisatbildung fOdern, wie zum Beispiel der HPPD oder dem TyrA- Gen.
Die Inhibition des Abbauweges vom Homogentisat, über Maleyl- acetoacetat und Fumarylacetoacetat zum Fumarat und Acetatoacetat kann auf vielfältige Art und Weise realisiert werden.
Ein Gegenstand der Erfindung betrifft Nukleinsaurekonstrukte, die wenigstens eine Nukleinsäuresequenz (a ti-MAAI /FAAH) , welche zu einer Inhibition des Maleylacetoacetat-Fumarylacetoacetat-Fumarat Weges befähigt ist, oder ein funktionales Äquivalent davon ent- halten.
Ein weiterer Gegenstand der Erfindung betrifft oben beschriebene Nukleinsaurekonstrukte, die neben der anti-MAAl/FAAH Nukleinsäuresequenz zusätzlich wenigstens eine Nukleinsäuresequenz (pro-HG) , welche zu einer Steigerung der Biosynthese von Homogentisat (HG) befähigt ist, oder ein funktionales Äquivalent davon oder wenigstens eine Nukleinsäuresequenz (pro-Vita inE) , welche zu einer Steigerung der Vitamin E Biosynthese ausgehend vom Homogentisat befähigt ist, oder ein funktionales Äquivalent davon oder eine Kombination von pro-HG und pro-VitaminE bzw. ihrer funktioneilen Äquivalente enthalten.
Ein weiterer Gegenstand der Erfindung betrifft Nukleinsaurekonstrukte, die eine Nukleinsäuresequenz (anti-HGD) enthalten, welche zu einer Inhibition der Homogentisat-1, 2-dioxygenase (HGD) befähigt ist, oder für ein funktionales Äquivalent davon.
Ferner betrifft die Erfindung besagte anti-HGD Nukleinsaurekonstrukte, die neben der anti-HGD Nukleinsäuresequenz zusätzlich wenigstens eine Nukleinsäuresequenz, die für eine bifunktionale Chorismatmutase-Prephenatdehydrogenase (TyrA) oder deren funktio- nelle Äquivalente, oder wenigstens eine Nukleinsäuresequenz (proVitamin E) , welche zu einer Steigerung der Vitamin E Biosynthese ausgehend vom Homogentisat befähigt ist, oder deren funktionale Äquivalente, bzw. eine Kombination von pro-VitaminE und TyrA- Sequenzen oder deren funktioneilen Äquivalenten enthalten.
TyrA kodiert für ein bifunktionale Chorismatmutase-Prephenatdehy- drogenase aus E.coli, eine Hydroxyphenylpyruvatsynthase, dass die enzy atischen Aktivitäten einer Chorismatmutase und Prephenatde- hydrogenase beinhaltet, und Chorismat zu Hydroxyphenylpyruvat , dem Homogentisatedukt, umsetzt (Christendat D, Turnbull JL. Bio- chemistry. 1999 Apr 13 ,- 38 ( 15 ): 4782-93 ; Christopherson RI, Heyde E, Morrison JF . Biochemistry . 1983 Mar 29 ,- 22 (7 ) : 1650-6. ) .
Ferner betrifft die Erfindung Nukleinsaurekonstrukte, die wenig- stens eine Nukleinsäuresequenz (pro-HG) , welche zu einer Steigerung der Homogentisat (HG) Biosynthese befähigt ist, oder ein funktionales Äquivalent davon, und wenigstens eine Nukleinsäuresequenz (pro-Vitamin E) , welche zu einer Steigerung der Vitamin E Biosynthese ausgehend vom Homogentisat befähigt ist, oder ein funktionales Äquivalent davon, enthalten.
Erfindungsgemass sind weiterhin funktionelle Analoga der oben erwähnten Nukleinsaurekonstrukte. Funktionelle Analoga meint hier zum Beispiel eine Kombination der einzelnen Nukleinsauresequenzen
1. auf einem Polynukleotid (Mehrfachkonstrukte)
2. auf mehreren Polynukleotiden in einer Zelle (Kotrans- for ation) 3. durch Kreuzung verschiedener transgener Pflanzen, die jeweils mindestens eine der besagten Nukleotidsequenzen enthalten.
Bevorzugt sind die in den Nukleins urekonstrukte enthaltenen Nukleinsäuresequenzen funktioneil mit genetischen Kontrollsequenzen verbunden.
Die erfindungsgemässe Transformation von Pflanzen mit einem pro-HG kodierenden Konstrukt führt zur Steigerung der Homogenti- satbildung. Durch gleichzeitige Transformation mit anti-HGD bzw. anti-MAAI/FAAH, insbesondere dem anti-MAAI Konstrukt, wird ein unerwünschter Abfluss dieses Metaboliten vermieden. Eine erhöhte Homogentisatmenge steht in der transgenen Pflanze somit zur Bildung von Vitamin E, zum Beispiel von Tocopherolen, über die Intermediate Methyl-6-phytylquinol und 2 , 3-Dimethyl-phytylquinol (vgl. Fig. 1) , zur Verfügung. Sowohl pro-HG als auch anti-MAAI/ FAAH oder anti-HGD führen zu einer erhöhten Homogentisatbereits- tellung zur Vitamin E-Biosynthese . Die Umsetzung von Homogentisat zu Vitamin E kann durch eine kombinierte Transformation mit einem pro-VitaminE kodierenden Konstrukt verbessert werden und erhöht weiterhin die Biosynthese von Vitamin E.
"Steigerung" der Homogentisat-Biosynthese ist in diesem Zusammenhang weit auszulegen und umfasst die Erhöhung der Homogentisat (HG) -Biosyntheseaktivität in der mit einem erfindungsgemässen pro-HG Konstrukt transformierten Pflanze oder dem Pflanzenteil oder Gewebe. Erfindungsgemass sind verschiedene Strategien zur Erhöhung der HG-Biosyntheseaktivität umfasst. Der Fachmann erkennt, dass eine Reihe verschiedener Methoden zur Verfügung steht, um die HG-Biosyntheseaktivität in gewünschter Weise zu beeinflussen. Die infolge beschriebenen Verfahren sind insofern beispielhaft und nicht einschränkend zu verstehen.
Die erfindungsgemass bevorzugte Strategie umfasst die Verwendung einer Nukleinsäuresequenz (pro-HG) , die transkribiert und zu einem Polypeptid translatiert werden kann, das die HG-Biosyntheseaktivität steigert. Beispiele für derartige Nukleinsäuresequenzen sind die p-Hydroxyphenylpyruvatdioxygenase (HPPD) aus verschiedenen Organismen oder das bakterielle TyrA-Genprodukt . Neben der beschriebenen künstlichen Expression von bekannten Genen, kann man auch deren Aktivität durch Mutagenese der Polypeptid- Sequenz erhöhen. Ferner ist eine gesteigerte Transkription und Translation der endogenen Gene zum Beispiel durch Verwendung künstlicher Transkriptionsfaktoren vom Typ der Zinkfingerproteine zu erreichen (Beerli RR et al., Proc Natl Acad Sei U S A. 2000; 97 (4 ): 1495-500) . Diese Faktoren lagern sich in der regulatorischen Bereichen der endogenen Gene an und bewirken, je nach Ge- staltung des Faktors, eine Expression oder Repression des endogenen Gens.
Besonders bevorzug für pro-HG ist die Verwendung der durch Nukleinsäuren, die für Polypeptide ge äss SEQ ID NO: 8, 11 oder 16 kodieren, besonders bevorzugt Nukleinsäuren mit den durch SEQ ID NO: 7, 10 oder 15 beschriebenen Sequenzen.
Analog ist die "Steigerung" der Vitamin E Biosyntheseaktivität zu verstehen, wobei hier Gene zum Einsatz kommen, deren Aktivität die Umsetzung von Homogentisat zu Vitamin E (Tocopherolen, Toco- trienolen) oder die Synthese von Reaktionspartnern des Homogen- tisats, wie zum Beispiel des Phytylpyrophosphat oder Geranyl- geranylpyrophosphat , fördert. Beispielhaft seien genannt die Homogentisat-phytyltransferase (HGPT) , Geranylgeranyloxido- reduktase, 2-Methyl-6-phytylplastoquinol-methyltransferase und y-Tocopherol-methyltransferase . Besonders bevorzug ist die Verwendung von Nukleinsäuren, die für Polypeptide gemäss SEQ ID NO: 14, 20, 22 oder 24 kodieren, besonders bevorzugt sind mit den durch SEQ ID NO: 13, 19, 21 oder 23 beschriebenen Sequenzen.
"Inhibition" ist im Zusammenhang mit anti-MAAI/FAAH bzw. anti-HGD weit auszulegen und umfasst die teilweise oder im wesentlichen vollständige, auf unterschiedliche zellbiologische Mechanismen beruhende Unterbindung oder Blockierung der MAAI/FAAH- bzw. HGD- Enzy aktivit t in der mit einem erfindungsge ässen anti-MAAI/ FAAH- bzw. anti-HGD-Konstrukt transformierten Pflanze oder dem Pflanzenteil oder Gewebe. Eine Inhibition im Sinne der Erfindung umfasst auch eine mengenmässige Verringerung von aktiver HGD, MAAI oder FAAH in der Pflanze, bis hin zu einem im wesentlichen vollständigen Fehlen von HGD, MAAI oder FAAH-Protein (d.h. fehlende Nachweisbarkeit von HGD bzw. MAAI oder FAAH-Enzymaktivität oder fehlende immunologische Nachweisbarkeit von HGD, MAAI oder FAAH) .
Erfindungsgemass sind verschiedene Strategien zur Verringerung oder Inhibition der HGD bzw. MAAI oder FAAH-Aktivität umfasst. Der Fachmann erkennt, dass eine Reihe verschiedener Methoden zur Verfügung steht, um die HGD bzw. MAAI oder FAAH-Genexpression oder Bnzymaktivität in gewünschter Weise zu beeinflussen.
Die erfindungsgem ss bevorzugte Strategie umfasst die Verwendung einer Nukleinsäuresequenz (anti-MAAI/FAAH bzw. anti-HGD) , welche zu einer antisense-Nukleinsäuresequenz transkribierbar ist, die zur Inhibition der HGD- bzw. MAAI/FAAH-Aktivität befähigt ist, z.B. indem sie die Expression von endogener HGD bzw. MAAI oder FAAH inhibiert.
Die erfindungsge ässen anti-HGD bzw. anti-MAAl/FAAH-Nukleinsäure- sequenzen können gemäss einer bevorzugten Ausführungsform die in antisense-Orientierung insertierte kodierende Nukleinsäuresequenz der HGD (anti-HGD) bzw. MAAI oder FAAH (anti-MAAI/FAAH) oder funktional äquivalente Fragment der jeweiligen Sequenzen enthalten .
Besonders bevorzugte anti-HGD-Nukleinsäuresequenzen umfassen Nukleinsäuresequenzen, welche für Polypeptide enthaltend eine Aminosäureεequenz gemäss SEQ ID NO: 3 oder funktioneile Äquivalente davon kodieren. Besonders bevorzug sind Nukleinsäure- sequenzen gemäss SEQ ID NO : 1, 2 oder 12 oder funktioneile Äquivalente davon.
Besonders bevorzugte anti-MAAI/FAAH-Nukleinsäuresequenzen umfassen Nukleinsäuresequenzen, welche für Polypeptide ent- haltend eine Aminosäuresequenz gemäss SEQ ID NO: 5 und 18 oder funktioneile Äquivalente davon kodieren. Besonders bevorzug sind Nukleinsäuresequenzen gemäss SEQ ID NO : 4, 6, 9 oder 17 oder funktioneile Äquivalente davon, ganz besonders bevorzugt sind die mit SEQ ID NO: 41 oder 42 wiedergegebenen Teilsequenzen oder deren funktionelie Äquivalente.
Eine bevorzugte Ausführungsform der erfindungsgemässen Nukleinsäuresequenzen umfasst ein HGD-, MAAI- oder FAAH- Sequenzmotiv gemäss SEQ ID NO: 1, 2, 4, 6, 9, 12, 17, 41 oder 42 in antisense- Orientierung. Dies führt zur vermehrten Transkription von
Nukleinsäuresequenzen in der transgenen Pflanze, welche komplementär zur endogenen kodierenden HGD, MAAI bzw. FAAH-Sequenz oder einem Teil davon sind und mit dieser auf DNA- oder RNA-Ebene hybridisieren .
Vorteilhaft kann die antisense-Strategie mit einem Ribozy -Ver- fahren gekoppelt werden. Ribozyme sind katalytisch aktive RNA Sequenzen, die gekoppelt an die antisense Sequenzen, die Zielsequenzen katalytisch spalten (Tanner NK. FEMS Microbiol Rev. 1999; 23 (3):257-75). Dies kann die Effizienz einer anti-sense Strategie erhöhen.
Weitere Methoden zur Inhibition der HGD- bzw. MAAI /FAAH- Expression umfassen die zu Kosuppression führende Überexpression homologer HGD- bzw. MAAI/FAAH-Nukleinsäuresequen∑en (Jorgensen et al., Plant Mol. Biol . 1996, 31 (5 ): 957-973 ) , die Induktion des spezifischen RNA-Abbaus durch die Pflanze mit Hilfe eines viralen Expressionssystems (Amplikon) (Angell, SM et al . , Plant J. 1999, 20(3) : 357-362) . Diese Methoden werden auch als "post-transcrip- tional gene silencing" (PTGS) bezeichnet.
5 Weitere Methoden sind die Einführung von Nonsense-Mutationen in das Endogen mittels Einführung von RNA/DNA-Oligonukieotiden in die Pflanze (Zhu et al . , Nat. Biotechnol . 2000, 18 (5 ): 555-558) oder die Generierung von Knockout-Mutanten mit Hilfe von z.B. T-DNA-Mutagenese (Koncz et al., Plant Mol. Biol. 1992,
10 20 (5 ): 963-976 ) oder homoiger Rekombination (Hohn, B.und Puchta, H, Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1999, 96:8321-8323.). Ferner ist eine Genüberexpression oder -repression auch mit spezifischen DNA-bindenden Faktoren z.B. mit den oben erwähnten Faktoren vom Typus der Zinkfingertranskriptionsfaktoren . Ferner können Fakto-
15 ren in eine Zelle eingebracht werden, die das Zielprotein selber inhibieren. Die Protein-bindenden Faktoren können z.B. Aptamere sein (Famulok M, und Mayer G. Gurr Top Microbiol Immunol. 1999; 243:123-36) .
20 Auf die oben beschriebenen Druckschri ten und die darin offenbarten Methoden zur Regulation der pflanzlichen Genexpression wird hiermit ausdrücklich Bezug genommen.
Eine anti-HGD bzw. anti-MAAI/FAAH Sequenz im Sinne der vor- 5 liegenden Erfindung ist somit insbesondere ausgewählt unter:
a) antisense-Nukleinsauresequenzen;
b) antiεense-Nukleins uresequenzen kombiniert mit einem 0 Ribozym-Verfahren
c) für homologe HGD- bzw. MAAI/FAAH-kodierende und zu Kosuppression führende Nukleinsäuresequenzen
5 d) HGD- bzw. MAAI/FAAH-RNA-Abbau bewirkende virale Nukleinsäuresequenzen und Expressionskonstrukte;
e) Nonsense-Mutanten von endogenen HGD- bzw. MAAI/FAAH kodierenden Nukleinsäuresequenzen ,- 0 f) für Knockout-Mutanten kodierende Nukleinsäuresequenzen;
g) zu homologer Rekombination geeignete Nukleinsäuresequenzen;
5 h) Nukleinsäuresequenzen kodierend für spezifische DNA- oder Protein-bindende Faktoren mit anti-HGD- bzw. anti-MAAI/ FAAH-Aktivität
wobei die Expression jeder einzelner dieser anti-HGD bzw. anti- MAAI/FAAH Sequenzen eine "Inhibition" der HGD- bzw. MAAI/FAAH- Aktivität im Sinne der Erfindung bewirken kann. Auch eine kombinierte Anwendung solcher Sequenzen ist denkbar.
Unter Nukleinsäurekonstrukt oder Nukleinsäuresequenz versteht man erfindungsgemass beispielsweise eine genomische oder eine komplementäre DNA-Sequenz oder eine RNA-Sequenz sowie halb- oder vollsynthetische Analoga davon. Diese Sequenzen können in linearer oder zirkulären Form, extrachromosomal oder integriert in das Genom vorliegen. Die pro-HG, pro-VitaminE, anti-HGD bzw. anti- MAAI/FAAH Nukleotidsequenzen der erfindungsgemässen Konstrukte können synthetisch hergestellt oder natürlich gewonnen werden oder eine Mischung aus synthetischen und natürlichen DNA-Bestandteilen enthalten, sowie aus verschiedenen heterologen HGD, MAAI/ FAAH, pro-HG oder pro-VitaminE Genabschnitten verschiedener Organismen bestehen. Die anti-HGD bzw. anti-MAAI/FAAH-Sequenz kann von einem oder mehreren Exons oder Introns, insbesondere Exons der HGD, MAAI oder FAAH-Gene abgeleitet sein.
Ausserdem sind artifizielle Nukleinsäuresequenzen geeignet, solange sie, wie oben beschrieben, die gewünschte Eigenschaft beispielsweise der Erhöhung des VitaminE-Gehaltes in der Pflanze durch Überexpression mindestens eines proHG- und/oder proVitamin E-Gens und/oder Expression einer anti-HGD bzw. MAAI/FAAH-Sequenz in Kulturp lanzen vermitteln. Beispielsweise können synthetische Nukleotid-Sequenzen mit Kodons erzeugt werden, die von den zu transformierenden Pflanzen bevorzugt werden. Diese von Pflanzen bevorzugten Kodons können anhand der Kodonnutzung aus Kodons mit der höchsten Proteinhäufigkeit in üblicher Weise bestimmt werden. Solche artifiziellen Nukleotid-Sequenzen können beispielsweise durch Rückübersetzung mittels Molecular Modelling konstruierter Proteine, die HGD bzw. MAAI/FAAH- bzw. proHG-Aktivität oder proVitamin E-Aktivität aufweisen oder durch in vitro-Selektion ermittelt werden. Besonders geeignet sind kodierende Nukleotid- Sequenzen, die durch Rückübersetzung einer Polypeptidsequenz gemäss der für die Wirtspflanze spezifischen Kodon-Nutzung erhalten wurden. Um unerwünschte pflanzliche Regulationsmechanismen zu umgehen, kann man beispielsweise ausgehend von der Aminosäure- sequenz einer bakteriellen pro-HG, zum Beispiel des bakteriellen TyrA Gens, und unter Berücksichtigung der pflanzlichen Kodon- Nutzung DNA-Fragmente rückübersetzen und daraus die vollständige, für einen Einsatz in der Pflanze optimierte exogene proHG-Sequenz herstellen. Daraus wird ein proHG-Bnzym expri iert , welches der pflanzlichen Regulation nicht oder nur unzureichend zugänglich ist, wodurch die Überexpression von Enzymaktivität voll zur Geltung gelangen kann.
Alle vorstehend erwähnten Nukleotid-Sequenzen sind in an sich bekannter Weise durch chemische Synthese aus den Nukleotidbau- steinen wie beispielsweise durch Fragmentkondensation einzelner überlappender, komplementärer Nukleinsäurebausteine der Doppel- helix herstellbar. Die chemische Synthese von Oligonukleotiden kann beispielsweise, in bekannter Weise, nach der Phosphoamidit- methode (Voet, Voet, 2. Auflage, Wiley Press New York, Seite 896-897) erfolgen. Bei der Präparation eines Nukleinsaure- konstruktes können verschiedene DNA-Fragmente so manipuliert werden, dass eine Nukleotid-Sequenz mit korrekter Leserichtung und korrektem Leseraster erhalten wird. Für die Verbindung der Nukleinsäure-Fragmente untereinander können an die Fragmente Adaptoren oder Linker angesetzt werden. Die Anlagerung synthetischer Oligonukleotide und Auffüllen von Lücken mit Hilfe des Klenow-Frag entes der DNA-Polymerase und Ligationsreaktionen sowie allgemeine Klonierungsverfahren werden in Sambrook et al. (1989), Molecular cloning: A laboratory manual , Gold Spring Harbor Laboratory Press, beschrieben.
Funktionale Äquivalente der pro-HG oder pro-VitaminE Sequenzen sind solche Sequenzen, welche trotz abweichender Nukleotidsequenz noch für ein Protein mit den erfindungsgemass gewünschten Funktionen kodieren, d.h für ein Enzym mit direkt oder indirekt die Homogentisatbildung steigernder Aktivität (pro-HG) , bzw. für ein Enzym mit direkt oder indirekt die Umsetzung von Homogentisat zu Vitamin E fördernder Aktivität (pro-Vitamin E) .
Funktionale Äquivalente von anti-HGD bzw. anti-MAAI /FAAH umfassen solche Nukleotidsequenzen welche die HGD bzw. MAAI/FAAH-Enzym- funktion in der transgenen Pflanze in ausreichendem Masse unterbinden. Dies kann z.B. durch Behinderung oder Unterbindung der HGD bzw. MAAI/FAAH-Prozessierung, des Transports von HGD bzw. MAAI/FAAH oder deren mRNA, Hemmung der Ribosomenanlagerung, Hemmung des RNA-Spleissens , Induktion eines RNA-abbauenden Enzyms und/oder Hemmung der Translationselongation oder -termination erfolgen. Ferner ist eine direkte Repression der endogenen Gene durch DNA-bindende Faktoren, zum Beispiel vom Typ der Zinkfinger- Transkriptionsfaktoren, möglich. Auch eine direkte Inhibition der entsprechenden Polypeptide, zum Beispiel durch Aptamere, ist machbar. Verschiedene Beispiele sind oben gegeben. Unter einem funktionalen Äquivalent versteht man insbesondere auch natürliche oder künstliche Mutationen einer ursprünglich isolierten für HGD bzw. MAAI/FAAH oder pro~HG oder pro-Vitamin E kodierenden Sequenz, welche weiterhin die gewünschte Funktion zeigen. Mutationen umfassen Substitutionen, Additionen, Deletio- nen , Vertauschungen oder Insertionen eines oder mehrerer Nukleo- tidreste. Somit werden beispielsweise auch solche Nukleotidse- quenzen durch die vorliegende Erfindung mit umfasst, welche man durch Modifikation der HGD bzw. MAAI/FAAH- bzw. proHG oder proVi- tamin E-Nukleotidsequenz erhält. Ziel einer solchen Modifikation kann z.B. die weitere Eingrenzung der darin enthaltenen kodierenden Sequenz oder z.B. auch die Einfügung weiterer Restriktions- enzy -Schnittstellen oder die Entfernung über lüssiger DNA sein.
Wo Insertionen, Deletionen oder Substitutionen, wie z.B.
Transitionen und Transversionen, in Frage kommen, können an sich bekannte Techniken, wie in vitro-Mutagenese, "primer repair" , Restriktion oder Ligation verwendet werden. Durch Manipulationen, wie z.B. Restriktion, "chewing-back" oder Auffüllen von Über- hängen für "blunt ends" können komplementäre Enden der Fragmente für die Ligation zur Verfügung gestellt werden.
Unter Substitution ist der Austausch einer oder mehrerer Aminosäuren durch eine oder mehrere Aminosäuren zu verstehen. Bevor- zugt werden sogenannte konservative Austausche durchgeführt, bei denen die ersetzte Aminosäure eine ähnliche Eigenschaft hat wie die ursprüngliche Aminosäure, beispielsweise Austausch von Glu durch Asp, Gin durch Asn, Val durch Ile, Leu durch Ile, Ser durch Thr.
Deletion ist das Ersetzen einer Aminosäure durch eine direkte Bindung. Bevorzugte Positionen für Deletionen sind die Termini des Polypeptides und die Verknüpfungen zwischen den einzelnen Proteindomänen .
Insertionen sind Einfügungen von Aminosäuren in die Polypeptid- kette, wobei formal eine direkte Bindung durch ein oder mehrere Aminosäuren ersetzt wi d.
Unter Homologie zwischen zwei Proteinen wird die Identität der Aminosäuren über die jeweils gesamte Proteinlänge verstanden, die durch Vergleich mit Hilfe des Programmalgorithmus GAP (UWGCG, University of Wisconsin, Genetic Computer Group) unter Einstellung folgender Parameter berechnet wird: Gap Weight: 12 Length Weight : 4 Average Match: 2,912 Average Mis atch: -2,003
Unter einer Sequenz, die eine Homologie von mindestens 20 % auf Nukleinsäurebasis mit der Sequenz SEQ ID NO. 6 aufweist, wird dementsprechend eine Sequenz verstanden, das bei einem Vergleich seiner Sequenz mit der Sequenz SEQ ID NO . 6 nach obigem Programmalgorithmus mit obigem Parametersatz eine Homologie von mindestens 20 % aufweist.
Funktionelle Äquivalente, abgeleitet von einer der in den erfindungsgemässen Nukleinsaurekonstrukten oder Vektoren zum Einsatz kommenden Nukleinsäuresequenzen zum Beispiel durch Substitution, Insertion oder Deletion von Aminosäuren bzw. Nukleotiden, haben eine Homologie von mindestens 20 %, bevorzugt 40 %, vorzugsweise mindestens 60 %, bevorzugt mindestens 80 %, besonders bevorzugt mindestens 90 %.
Weitere Beispiele für die in den erfindungsgemässen Nukleinsäure- konstrukten oder Vektoren zum Einsatz kommenden Nukleinsäuresequenzen lassen sich beispielsweise aus verschiedenen Organismen, deren genomische Sequenz bekannt ist, wie beispielsweise aus Arabidopsis thaliana durch Homologievergleiche der Aminosäuresequen- zen oder der entsprechenden rückübersetzten Nukleinsäuresequenzen aus Datenbanken leicht auffinden.
Funktionale Äquivalente umfassen auch solche Varianten, deren Funktion, verglichen mit dem Ausgangsgen bzw. Genfragment, abgeschwächt oder verstärkt ist, also beispielsweise solche proHG- oder proVitamin E-Gene, welche für eine Polypeptid-Variante mit niedrigerer oder höherer enzymatischer Aktivität als der des Ursprungsgens kodieren.
Als weitere geeignete funktioneil äquivalente Nukleinsäuresequen- zen sind Sequenzen zu nennen, welche für Fusionsproteine kodieren, wobei Bestandteil des Fusionsproteins z.B. ein proHG- bzw. proVitamin E-Polypeptid oder ein funktionell äquivalenter Teil davon ist. Der zweite Teil des Fusionsproteins kann z.B. ein weiteres Polypeptid mit enzymatischer Aktivität (zum Beispiel ein weiteres proHG- bzw. proVitaminE-Polypeptid oder ein funktionell äquivalenter Teil davon) sein oder eine antigene Polypeptid- sequenz, mit deren Hilfe ein Nachweis der proHG- oder proVitamin E~Expression möglich ist (z.B. yc-tag oder his-tag) . Bevor¬ zugt handelt es sich dabei jedoch um eine regulative Proteinse- quenz, wie z.B. ein Signal- oder Transitpepti , das das proHG- oder proVitamin E-Protein an den gewünschten Wirkort leitet . Ein weiterer Gegenstand der Erfindung betrifft rekombinante Vektoren, die wenigstens ein Nukleinsaurekonstrukt gemäss obiger Definition, eine Nukleinsäuresequenz, die für eine HGD, MAAI oder FAAH kodiert, oder Kombinationen dieser Möglichkeiten umfassen.
Bevorzugt sind die in den Vektoren enthaltenen Nukleinsäuresequenzen oder Nukleinsaurekonstrukte funktionell mit genetischen Kontrollsequenzen verbunden .
Beispiele erfindungsgemässer Vektoren können Expressionskon- strukte folgenden Typs umfassen:
a) 5 ' -Pflanzenspezifischer Promotor / anti-HGD / Terminator-3 '
b) 5 ' -Pflanzenspezifischer Promotor / anti-MAAI/FAAH / Termina- tor-3'
c) 5 ' -Pflanzenspezifischer Promotor / pro-HG / Terminator-3 '
d) 5 ' -Pflanzenspezifischer Promotor / pro-VitaminE / Termina- tor-3 '
Ausdrücklich betrifft die Erfindung auch Vektoren, die in der Lage sind Polypeptide mit einer HGD, MAAI, oder FAAH Aktivität zu exprimieren. Die für diese Gene kodierenden Sequenzen stammen bevorzugt aus Pflanzen, Cyanobakterien, Moosen, Pilzen oder Algen. Besonders bevorzugt sind die durch für Polypeptide gemäss SEQ ID NO 3 , 5 und 18 kodierenden Sequenzen.
Hierbei können die kodierende pro-HG oder pro-VitaminE Sequenz, sowie die zur Expression von Polypeptiden mit HGD, MAAI, oder FAAH Aktivität dienenden Sequenzen auch durch eine kodierende Sequenz für ein Fusionsprotein aus Transitpeptid und der entsprechenden Sequenz ersetzt sein.
Bevorzugte Beispiele umfassen Vektoren und können eines der folgenden Expressionskonstrukte enthalten:
a) 5'-35S-Promotor / anti-MAAI/FAAH / OCS-Terminator-3 '
b) 5'-35S-Promotor / anti-HGD / OCS-Terminator-3 ' ;
c. 5 ' -LeguminB-Promotor / pro-HG / NOS-Terminator-3 '
d) 5 ' -LeguminB-Promotor / pro-VitaminE / NOS-Terminator-3 ' e) 5 ' -LeguminB-Promotor / HGD / NOS-Terminator-3 '
f) 5 '-Legu inB-Promotor / MAAI / NOS-Terminator-3 '
g) 5 ' -LeguminB-Promotor / FAAH / NOS-Terminator-3 '
Auch hierbei kann die kodierende pro-HG Sequenz oder pro-Vita- min E Sequenz auch durch eine kodierende Sequenz für ein Fusions- protein aus Transitpeptid und pro-HG oder pro-VitaminE ersetzt sein.
Für die erfindungsgemässen vorteilhaften Verfahren zur Optimierung der Vitamin E Biosynthese kann eine Kotransformation mit mehr als einem der oben genannten Beispiele a.) bis g.) erforderlich sein. Ferner kann die Transformation mit einem oder mehr Vektoren, die jeweils eine Kombination der oben genannten Konstrukte enthalten, vorteilhaft sein. Bevorzugte Beispiele umfassen Vektoren, enthaltend folgende Konstrukte:
a) 5 '-35S-Promotor/ anti-MAAI/FAAH / OCS-Terminator / LeguminB- Promotor / pro-HG / NOS-Terminator-3 ' ,-
b) 5' -35S-Promotor/ anti-MAAI/FAAH / OCS-Terminator / LeguminB- Promotor / pro-VitaminE / NOS-Terminator-3 ' ,-
c) 5'-35S-Promotor/ anti-HGD / OCS-Terminator / LeguminB- Promotor / pro-VitaminE / NOS-Terminator-3 ' ;
d) 5 ' -35S-Promotor/ pro-HG / OCS-Terminator / LeguminB- Promotor / pro-VitaminE / NOS-Terminator-3 ' ;
Die Konstrukte a) bis d) erlaubt die gleichzeitige Transformation der Pflanze mit pro-HG bzw. pro-VitaminE und anti-HGD bzw. anti- MAAI/FAAH .
Unter Verwendung der oben zitierten Rekombinations- und Klonie- rungstechniken können die Nukleinsaurekonstrukte in geeignete Vektoren kloniert werden, die ihre Vermehrung, beispielsweise in E. coli , ermöglichen. Geeignete Klonierungsvektoren sind u.a. pBR332, pUC-Serien, M13mp-Serien und pACYC184. Besonders geeignet sind binäre Vektoren, die sowohl in E. coli als auch in Agro- bakterien replizieren können.
Die erfindungsgemässen Nukleins urekonstrukte werden bevorzugt in geeignete Transformationsvektoren insertiert. Geeignete Vektoren sind unter anderem in "Methods in Plant Molecular Biology and Biotechnology" (CRC Press), Kap. 6/7, S. 71-119 (1993) beschrie- be . Vorzugsweise werden sie in einen Vektor, wie beispielsweise pBinl9 , pBinAR, pPZP200 oder pPTV, kloniert , der geeignet ist, Agrobacterium tumefaciens zu transformieren. Die mit einem solchen Vektor transformierten Agrobakterien können dann in bekannter Weise zur Transformation von Pflanzen, insbesondere von Kulturpflanzen, wie z.B. von Raps, verwendet werden, indem beispielsweise verwundete Blätter oder Blattstücke in einer Agro- bakterienlösung gebadet und anschliessend in geeigneten Medien kultiviert werden. Die Transformation von Pflanzen durch Agro- bakterien ist unter anderem bekannt aus F.F. White, Vectors for Gene Transfer in Higher Plants; in Transgenic Plants, Vol. 1, Engineering and Utilization, herausgegeben von S.D. Kung und R. Wu, Academic Press, 1993, S. 15 - 38. Aus den transformierten Zellen der verwundeten Blätter bzw. Blattstücke können in bekann- ter Weise transgene Pflanzen regeneriert werden, die integriert die oben beschriebenen Nukleinsaurekonstrukte enthalten.
Die in den erfindungsgemässen Nukleinsäurekonstrukten und Vektoren enthaltenen Nukleinsäuresequenzen können mit mindestens einer genetischen Kontrollsequenz funktionell verknüpft sein. Genetische Kontrollsequenzen gewährleisten zum Beispiel die Transkription und Translation in prokaryontischen oder eukaryontischen Organismen. Vorzugsweise umfassen die erfindungsgemässen Konstrukte 5 ' -stromaufwärts von der jeweiligen kodierenden Sequenz einen Promotor und 3 ' -stromabwärts eine Terminatorsequenz, sowie gegebenenfalls weitere Übliche regulative Elemente, und zwar jeweils funktionell verknüpft mit der kodierenden Sequenz. Unter einer funktionellen Verknüpfung versteht man zum Beispiel die sequentielle Anordnung von Promotor, kodierender Sequenz, Termi- nator und ggf. weiterer regulativer Elemente derart, dass jedes der regulativen Elemente seine Funktion bei der Expression der kodierenden Sequenz oder der antisense-Sequenz bestimmungsge äss erfüllen kann. Dazu ist nicht unbedingt eine direkte Verknüpfung im chemischen Sinne erforderlich. Genetische Kontrollsequenzen, wie zum Beispiel Enhancer-Sequenzen, können ihre Funktion auch von anderen DNA-Molekülen aus auf die Zielsequenz ausüben.
Beispiele sind Sequenzen, an die Induktoren oder Repressoren binden und so die Expression der Nukleinsäure regulieren. Zusätzlich zu diesen neuen Kontrollsequenzen oder anstelle dieser Sequenzen kann die natürliche Regulation dieser Sequenzen vor den eigentlichen Strukturgenen noch vorhanden sein und gegebenenfalls genetisch verändert worden sein, so dass die natürliche Regulation ausgeschaltet und die Expression der Gene erhöht wurde. Das Nukleinsaurekonstrukt kann aber auch einfacher aufgebaut sein./ das heisst, es werden keine zusätzlichen Regulationssignale vor die vorstehend erwähnten Gene insertiert und der natürliche Promotor mit seiner Regulation wird nicht entfernt. Stattdessen wird die natürliche Kontrollsequenz so mutiert, dass keine Regulation mehr erfolgt und die Genexpression gesteigert wird. Diese veränderten Promotoren können auch allein vor die natürlichen Gene zur Steigerung der Aktivität gebracht werden.
Das Nukleinsäurekonstrukt kann ausserdem vorteilhafterweise eine oder mehrere sogenannte "enhancer Sequenzen" funktionell verknüpft mit dem Promotor enthalten, die eine erhöhte Expression der Nukleinsäuresequenz ermöglichen. Auch am 3 ' -Ende der DNA-Sequenzen können zusätzliche vorteilhafte Sequenzen insertiert werden, wie weitere regulatorische Elemente oder Terminatoren. Die vorstehend erwähnten Gene können in einer oder mehreren Kopien im Genkonstrukt enthalten sein.
Zusätzliche zur funktioneilen Verknüpfung bevorzugte aber nicht darauf beschränkte Sequenzen sind weitere, von den Transitpeptid kodierenden Sequenzen verschiedene, Targeting-Sequenzen zur Gewährleistung der subzellulären Lokalisation im Apoplasten, in der Vakuole, in Plastiden, im Mitochondrium, im Endoplasmatischen Re- tikulum (ER) , im Zellkern, in Ölkörperchen oder anderen Komparti- menten; sowie Translationsverstärker wie die 5 ' -Leadersequenz aus dem Tabak-Mosaik-Virus (Gallie et al . , Nucl. Acids Res . 15 (1987), 8693 -8711), und dergleichen.
Als Kontrollsequenzen sind weiterhin solche zu verstehen, die eine homologe oder heterologe Rekombination bzw. Insertion in das Genom eines Wirtsorganismus ermöglichen oder die Entfernung aus dem Genom erlauben. Bei der homologen Rekombination kann zum Bei- spiel das endogene Gen gänzlich inaktiviert werden. Es kann ferner durch ein synthetisches Gen mit erhöhter und veränderter Aktivität ausgetauscht werden. Methoden wie die cre/lox-Technolo- gie erlauben eine gewebsspezifische, unter Umständen induzierbare Entfernung des Zielgens aus dem Genom des Wirtsorganismus (Sauer B. Methods. 1998; 14 (4) : 381-92 ) . Hier werden bestimmte flankierende Sequenzen dem Zielgen angefügt (lox-Sequenzen) , die später eine Entfernung mittels der cre-Rekombinase ermöglichen.
Je nach nachstehend näher beschriebenen Wirtsorganismuε oder Aus- gangsorganismus, der durch Einbringen der Nukleinsaurekonstrukte in einen genetisch veränderten oder transgenen Organismus überführt wird, eignen sich verschiedene Kontrollsequensen .
Vorteilhafte Kontrollsequenzen für die er indungsgemässen Nukleins urekonstrukte, für die erfindungsgemässen Vektoren, für das erfindungsgemäße Verfahren zur Herstellung von Vitamin E und für die nachstehend beschriebenen genetisch veränderten Organis- men sind beispielsweise in Promotoren wie cos-, tac-, trp-, tet-, lpp-, lac-, lpp-lac-, laclq- , TJ- , T5-, T3-, gal- , trc- , ara-, SP6-, 1-PR- oder im 1-PL-Promotor enthalten, die vorteilhafterweise in gram-negativen Bakterien Anwendung finden. 5
Weitere vorteilhafte Kontrollsequenzen sind beispielsweise in den gram-positiven Promotoren a y und SP02 , in den Hefe- oder Pilzpromotoren ADC1, MFa , AC, P-60, CYC1, GAPDH, TEF, rp28, ADH oder in den Pflanzenpromotoren CaMV/35S [Franck et al . , Cell 21(1980) 10 285-294], PRP1 [Ward et al . , Plant. Mol. Biol . 22 (1993)], SSU, OCS, LEB4, ÜSP, STLS1, B33, NOS; FBPaseP (WO 98/18940) oder im Ubiquitin- oder Phaseolin-Promotor enthalten.
Als bevorzugte Promotoren für die Nukleinsaurekonstrukte ist 15 grundsätzlich jeder Promotor geeignet, der die Expression von Genen, insbesondere Fremdgenen, in Pflanzen steuern kann. Vorzugsweise verwendet man insbesondere einen pflanzlichen Promotor oder einen Promotor, der einem Pflanzenvirus entstammt. Insbesondere bevorzugt ist der CaMV 35S-Promotor aus dem Blumen- 20 kohl-Mosaik-Virus (Franck et al . , Cell 21 (1980), 285 - 294).
Dieser Promotor enthält bekanntlich unterschiedliche Erkennungssequenzen für transkriptionale Effektoren, die in ihrer Gesamtheit zu einer permanenten und konstitutiven Expression des eingeführten Gens führen (Benfey et al . , EMBO J. 8 (1989), 2195-2202). 25 Ein weiteres Beispiel eines geeigneten Promotors ist der LeguminB-Promotor (Accessionn . X03677).
Die Nukleinsaurekonstrukte können auch einen chemisch induzierbaren Promotor enthalten, durch den die Expression des exogenen
30 Gens in der Pflanze zu einem bestimmten Zeitpunkt gesteuert werden kann. Derartige Promotoren, wie z.B. der PRP1 Promotor (Ward et al., Plant. Mol. Biol. 22 (1993), 361-366), ein durch Salicyl- säure induzierbarer (WO 95/19443), ein durch Benzolsulfonamid-in- duzierbarer (EP-A-0388186) , ein durch Tetrazyklin-induzierbarer
35 (Gatz et al . , (1992) Plant J. 2, 397404), ein durch Abscisinsäu- re-induzierbarer (EP-A 335528) bzw. ein durch Ethanol- oder Cyclohexanon-induzierbarer (WO 93/21334) Promotor können ebenfalls verwendet werden.
40 Weiterhin sind insbesonders solche Promotoren bevorzugt, die die Expression in Geweben oder Pflanzenteilen sicherstellen, in denen die Biosynthese von Vitamin E bzw. dessen Vorstufen stattfindet oder in denen die Produkte vorteilhafterweise akkumuliert werden. Insbesondere zu nennen sind Promotoren für die ganze Pflanze auf-
45 grund konstitutiver Expression, wie beispielsweise der CaMV
Promotor, der OCS Promotor aus Agrobacterium (Octopin Synthase) , der NOS Promotor aus Agrobacterium (Nopalin synthase) , der Ubi-
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Zellen, Zellkulturen, Gewebe, Teile - wie zum Beispiel bei pflanzlichen Organismen Blätter, Wurzeln usw.- oder Vermehrungsgut abgeleitet von solchen Organismen.
Unter Organismus, Ausgangs- oder Wirtsorganismen werden proka- ryontische oder eukaryontische Organismen, wie beispielsweise Mikroorganismen oder pflanzliche Organismen verstanden. Bevorzugte Mikroorganismen sind Bakterien, Hefen, Algen oder Pilze.
Bevorzugte Bakterien sind Bakterien der Gattung Bscherichia,
Erwinia, Agrobacterium, Flavobacterium, Alcaligenes oder Cyano- bakterien zum Beispiel der Gattung Synechocystis .
Bevorzug sind vor allem Mikroorganismen, welche zur Infektion von Pflanzen und damit zur Übertragung der erfindungsgemässen Konstrukte befähigt sind. Bevorzugte Mikroorganismus sind solche aus der Gattung Agrobacterium und insbesondere der Art Agrobacterium tumefacienε.
Bevorzugte Hefen sind Candida, Saccharomyces, Hansenula oder Pichia .
Pflanzliche Organismen im Sinne der Erfindung sind mono- und dikotyle Pflanzen. Die erfindungsgemässen transgenen Pflanzen sind insbesondere ausgewählt unter monokotylen Kulturpflanzen, wie zum Beispiel Getreidearten wie Weizen, Gerste, Hirse, Roggen, Triticale, Mais, Reis oder Hafer, sowie dem Zuckerrohr. Ferner sind die erfindungsgemässen transgenen Pflanzen insbesondere ausgewählt unter dikotylen Kulturpflanzen, wie zum Beispiel
Brassicacae wie Raps , Kresse , Arabidopsis , Kohlarten oder
Canola ,
Leguminosae wie Soja, Alfalfa, Erbse, Bohnengewächsen oder
E dnuss Solanaceae wie Kartoffel, Tabak, Tomate, Aubergine oder Paprika, Asteraceae wie Sonnenblume, Tagetes, Salat oder Calendula, Cucurbitaceae wie Melone, Kürbis oder Zucchini, sowie Lein, Baumwolle, Hanf, Flachs, Roter Pfeffer, Karotte, Zuckerrübe und den verschiedenen Baum-, Nuss- und Weinspecies.
Besonders bevorzug sind Arabodopsis thaliana , Ni cotlana tabacum, Tagetes erecta , Calendula vulgär is sowie alle Gattungen und Arten, die sich zur Herstellung von Ölen eignen, wie Ölsaaten (wie zum Beispiel Raps), Nussarten, Soja» Sonnenblume, Kürbis und Erdnuss. Pflanzliche Organismen im Sinne der Erfindung sind weiterhin weitere photosynthetisch aktive oder zur Vitamin E Synthese befähigte Organismen, wie zum Beispiel Algen oder Cyanobakterien, sowie Moose.
Bevorzugte Algen sind Grünalgen, wie beispielsweise Algen der Gattung Haematococcus , Phaedactylum tricornatum, Volvox oder Dunaliella .
Als Transformation wird die Übertragung von Fremdgenen in das Genom eines Organsimus zum Beispiel einer Pflanze bezeichnet. Es werden dabei die beschriebenen Methoden zur Transformation und Regeneration von Pflanzen aus Pflanzengeweben oder Pflanzenzellen zur transienten oder stabilen Transformation genutzt. Geeignete Methoden sind die Protoplastentransformation durch Polyethylen- glykol-induzierte DNA-Aufnahme, das biolistische Verfahren mit der Genkanone, die sogenannte particle bombardment Methode, die Elektroporation, die Inkubation trockener Embryonen in DNA-haltiger Lösung, die Mikroinjektion und der durch Agrobacterium ver- mittelte Gentransfer. Die genannten Verfahren sind beispielsweise in B. Jenes et al . , Technigues for Gene Transfer, in: Transgenic Plants, Vol. 1, Engineering and Utilization, herausgegeben von S.D. Kung und R. Wu, Academic Press (1993), 128 - 143 sowie in Potrykus, Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Molec. Biol. 42 (1991), 205 - 225) beschrieben. Vorzugsweise wird das zu exprimierende Konstrukt in einen Vektor klonie t , der geeignet ist, Agrobacterium tumefaciens zu transformieren, beispielsweise pBinl9 (Bevan et al., Nucl. Acids Res . 12 (1984), 8711).
Die Wirksamkeit der Expression der transgen exprimierten Nukleinsäuren kann beispielsweise in vi tro durch Sprossmeristemvermehrung ermittelt werden. Zudem kann eine in Art und Hohe veränderte Expression von pro-HG oder pro-VitaminE Genen und deren Auswirkung auf die Vitamin E - Biosyntheseleistung an Testpflanzen in Gewächshausversuchen getestet werden.
Ein weiterer Gegenstand der Erfindung sind transgene Organismen nach obiger Beschreibung, die zu einer im Vergleich zum untrans- formierten Wildtyp verbesserten Vitamin E Produktion befähigt sind.
Erfindungsgemass sind ferner von den oben beschriebenen transgenen Organismen abgeleitete Zellen, Zellkulturen, Teile - wie zum Beispiel bei transgenen pflanzlichen Organismen Wurzeln, Blätter etc.- , transgenes Vermehrungsgut , Saaten oder Früchte. Eine verbesserte Vitamin E-Produktion bedeutet im Rahmen der vorliegenden Erfindung zum Beispiel die künstlich erworbene Fähigkeit einer erhöhten Biosyntheseleistung wenigstens einer Verbindung aus der Gruppe der Tocopherole und Tocotrienole, in dem transgenen Organismen gegenüber dem nicht gentechnisch modifizierten Ausgangsorganismus für die Dauer mindestens einer P lanzengeneration. Dabei ist die Vitamin E-Produktion in dem transgenen Organismus gegenüber dem nicht-gentechnisch modifizierten Ausgangsorganismus bevorzugt um 10 %, besonders bevorzugt um 50 %, ganz besonders bevorzugt um 100 % erhöht. Verbessert kann ebenfalls eine vorteilhaft veränderte qualitative Zusammensetzung des VitaminE-Gemisches bedeuten.
Der Biosyntheseort von Vitamin E ist im allgemeinen das Blatt- gewebe aber auch der Samen, so dass eine blattspezifische oder samenspezifische Expression insbesondere von pro-HG und pro-Vita- min E Sequenzen und gegebenenfalls von anti-HGD bzw. anti-MAAI/ FAAH Sequenzen sinnvoll ist. Es ist jedoch naheliegend, dass die Vitamin E-Biosynthese nicht auf den Samen beschränkt sein muss, sondern auch in allen übrigen Teilen der Pflanze gewebespezifisch erfolgen kann. Darüberhinaus ist eine konstitutive Expression des exogenen Gens von Vorteil. Andererseits kann aber auch eine induzierbare Expression wünschenswert sein.
Ein weiterer Gegenstand der Erfindung betrifft schliesslich ein Verfahren zur Herstellung von Vitamin E, das dadurch gekennzeichnet ist, dass man aus einer Kultur eines erfindungsgemass transformierten pflanzlichen Organismus das gewünschte Vitamin E in an sich bekannter Weise isoliert .
Von Menschen und Tieren verzehrbare erfindungsgemässe, genetisch veränderte Pflanzen mit erhöhtem VitaminE-Gehalt können auch beispielsweise direkt oder nach an sich bekannter Aufbereitung als Nahrungsmittel oder Futtermittel verwendet werden.
Die Erfindung betrifft ferner die Verwendung von Polypeptiden, die für eine HGD, MAAI oder FAAH kodieren, der ihnen zugrunde liegenden Gene und cDNAs , bzw. der von ihnen abgeleiteten erfindungsgemässen Nukleinsaurekonstrukte, erfindungsgemässen Vektoren oder erfindungsgemässen Organismen zur Herstellung von Antikörpern, protein- oder DNA-bindenden Faktoren.
Der Biosyntheseweg von HGD-MAAI-FAAH-Abbauweg bietet Targetenzyme für die Entwicklung von Inhibitoren. Daher betrifft die Erfindung auch die Verwendung von Polypeptiden, die für eine HGD, MAAI oder FAAH kodieren, der ihnen zugrunde liegenden Gene und cDNAs, bzw. der von ihnen abgeleiteten erfindungsgemässen Nukleinsaurekon- strukte, erfindungsgemässen Vektoren oder er indungsgemässen Organismen als Target zum Auffinden von Inhibitoren der HGD, MAAI oder FAAH .
Um effiziente Hemmstoffe der HGD, MAAI oder FAAH finden zu können, ist es notwendig, geeignete Testsysteme, mit denen Inhibitor-Enzym-Bindungsstudien durchgeführt werden können, zur Verfügung zu stellen. Hierzu wird beispielsweise die komplette cDNA- Sequenz der HGD, MAAI oder FAAH in einen Expressionsvektor (zum Beispiel pQE, Qiagen) kloniert und in E. coli überexprimiert. Die HGD, MAAI oder FAAH -Proteine eignet sich besonders zur Auffindung von für die HGD, MAAI oder FAAH spezifischen Hemmstoffen.
Dementsprechend betrifft die Erfindung ein Verfahren zum Auffin- den von Inhibitoren der HGD, MAAI oder FAAH unter Verwendung von oben genannten Polypeptiden, Nukleinsäuren, Vektoren oder transgenen Organismen, dadurch gekennzeichnet, dass man die enzymati- sche Aktivität der HGD, MAAI oder FAAH in Gegenwart einer chemischen Verbindung misst und bei Erniedrigung der enzymatischen Aktivität im Vergleich zur nicht gehemmten Aktivität die chemische Verbindung einen Inhibitor darstellt. Dazu kann die HGD, MAAI oder FAAH beispielsweise in einem Enzymtest eingesetzt werden, bei dem die Aktivität der HGD, MAAI oder FAAH in An- und Abwesenheit des zu testenden Wirkstoffs ermittelt wird. Aus dem Vergleich der beiden Aktivitätsbestimmungen lässt sich eine qualitative und quantitative Aussage über das Hemmverhalten des zu testenden Wirkstoffes machen. Mit Hilfe des erfindungsgemässen Testsystems kann eine Vielzahl von chemischen Verbindungen schnell und einfach auf herbizide Eigenschaften überprüft werden. Das Verfahren gestattet es, reproduzierbar aus einer grossen Anzahl von Substanzen gezielt solche mit grosser Wirkstärke auszuwählen, um mit diesen Substanzen anschliessend weitere, dem Fachmann geläufige vertiefte Prüfungen durchzuführen.
Die Inhibitoren der HGD, MAAI oder FAAH eignen sie sich zur Steigerung der Vitamin E-Biosynthese funktionell analog den oben beschriebenen anti-HGD bzw. anti-MAAI/FAAH Nukleinsäuresequenzen. Ein weiterer Gegenstand der Erfindung sind daher Verfahren zur Verbesserung der Vitamin E Produktion unter Verwendung von Inhi- bitoren der HGD, MAAI oder FAAH. Die verbesserte Produktion von Vitamin E kann einen positiven Effekt auf die Pflanze bewirken, da diese Verbindungen eine wichtige Funktion im Schutz vor schädlichen Umwelteinflüssen (Sonnenstrahlung, Sauerstoffradikale) haben. Eine Steigerung der Vitamin E Produktion kann insofern als Wachstumsforderer fungieren. Ein weiterer Gegenstand der Erfindung ist daher die Verwendung von Inhibitoren der HGD, MAAI oder FAAH, erhältlich durch dem oben beschriebenen Verfahren, als Wachstumsregulatoren .
Sequenzen
SEQ ID NO. 1: Homogentisat-1 , 2-dioxygense (HGD) Gen aus Arabidopsis thaliana SEQ ID NO. 2: Homogentisat-l,2-dioxygense (HGD) cDNA aus Arabidopsis thaliana SEQ ID NO. 3: Homogentisat-1 , 2-dioxygense (HGD) Polypeptid aus
Arabidopsis thaliana SEQ ID NO. 4: Fumarylacetoacetathydrolase (FAAH) cDNA aus Arabidopsis thaliana SEQ ID NO. 5: Fumarylacetoacetathydrolase (FAAH) Polypeptid aus Arabidopsis thaliana
SEQ ID NO. 6: Maleylacetoacetatisomerase (MAAI) Gen aus Arabidopsis thaliana SEQ ID NO. 7: TyrA Gen kodierend für eine bifunktionale Chorismatmutase/ Prephenatdehydrogenase SEQ ID NO. 8: TyrA Polypeptid kodierend für eine bifunktionale
Chorismatmutase/ Prephenatdehydrogenase SEQ ID NO. 9: Fumarylacetoacetathydrolase (FAAH) Gen aus Arabidopsis thaliana SEQ ID NO. 10: Hydroxyphenylpyruvatdioxygenase (HPPD) cDNA aus Arabidopsis thaliana
SEQ ID NO. 11: Hydroxyphenylpyruvatdioxygenase (HPPD) Polypeptid aus Arabidopsis thaliana SEQ ID NO. 12: Homogentisat-1 , 2-dioxygense (HGD) cDNA Fragment aus Brassica napus SEQ ID NO. 13: Homogentisatphythyltransferase cDNA aus Synechocy- stis PCC6803 SEQ ID NO. 14: Homogentisatphythyltransferase Polypeptid aus Syn- echocystis PCC6803 SEQ ID NO. 15: Künstliche codonusage optimierte cDNA kodierend für Hydroxyphenylpyruvatdioxygenase (HPPDop) aus
Streptomyces aver i tilis SEQ ID NO. 16: Hydroxyphenylpyruvatdioxygenase Polypeptid aus
Streptomyces avermi tilis SEQ ID NO. 17: Maleylacetoacetatisomerase (MAAI) cDNA aus Arabi- dopsis thaliana
SEQ ID NO. 18: Maleylacetoacetatisomerase (MAAI) Polypeptid aus
Arabidopsis thaliana SEQ ID NO. 19: γ-Tocopherolmethyltransferase cDNA aus Arabidopsis thaliana SEQ ID NO. 20: γ-Tocopherolmethyltransferase Polypeptid aus Arabidopsis thaliana SEQ ID NO. 21: 3-Methyl-6-phytylhdrochinonmethyltransferase cDNA aus Synechocystis PCC6803
SEQ ID NO. 22: 3-Methyl-6-phytylhdrochinonmethyltransferase Polypeptid aus Synechocystis PCC6803 SEQ ID NO. 23: Geranylgeranylpyrophosphatoxidoreduktase cDNA aus
Nicotiana tabacum.
SEQ ID NO. 24: Geranylgeranylpyrophosphatoxidoredu tase Polypeptid aus Nicotiana tabacum.
SEQ ID NO. 25: Primer ( 5 * -HGD Brassica napus) 5 ' -GTCGACGGNCCNATNGGNGCNAANGG-3 '
SEQ ID NO. 26: Primer (3%-N0S Terminator)
5 ' -AAGCTTCCGATCTAGTAACATAGA-3 '
SEQ ID NO. 27: Primer (5l-35 S Promotor)
5 ' -ATTCTAGACATGGAGTCAAAGATTCAAATAGA-3 ' SEQ ID NO. 28: Primer A-OCΞ Terminator)
5 ' -ATTCTAGAGGACAATCAGTAAATTGAACGGAG-3 '
SEQ ID NO. 29: Primer ( 5 v -MAAI A. thaliana)
5 ' -atgtcgacATGTCTTATGTTACCGAT-3 '
SEQ ID NO. 30: Primer (3 -MAAI A. thaliana) 5 ' -atggatccCTGGTTCATATGATACA-3 '
SEQ ID NO. 31: Primer (B'-FAAH A. thaliana)
5 ' -atgtcgacGGAAACTCTGAACCATAT~3 '
SEQ ID NO. 32: Primer ( 3' -FAAH A. thaliana)
5 ' -atggtaccGAATGTGATGCCTAAGT-3 ' SEQ ID NO. 33: Primer (3* -HGD Brassica napus)
5 ' -GGTACCTCRAACÄTRAANGCCATNGTNCC-3 '
SEQ ID NO. 34: Primer (5 -Legumin Promotor)
5 ' -GAATTCGATCTGTCGTCTCAAACTC-3 '
SEQ ID NO. 35: Primer (3X-Legumin Promotor) 5 ' -GGTACCGTGATAGTAAACAACTAATG-3 '
SEQ ID NO. 36: Primer ( 5 -Transitpeptid)
5 ' -ATGGTACCTTTTTTGCΆTAAΆCTTΆTCTTCΆTΆG-3 '
SEQ ID NO. 37: Primer (3 v -Transitpeptid)
5 ' -ATGTCGACCCGGGATCCAGGGCCCTGATGGGTCCCATTTTCCC-3 ' SEQ ID NO. 38: Primer (5' -NOS Terminator)
5 ' -GTCGACGAATTTCCCCGAATCGTTC-3 ' SEQ ID NO. 39: Primer (3 '-NOS Terminator II)
5 ' -AAGCTTCCGATCTAGTAACATAGA-3 ' SEQ ID NO. 40: Primer (5X-Legumin Promotor II) 5 ' -AAGCTTGATCTGTCGTCTCAAACTC-3 '
SEQ ID NO. 41: Maleylacetoacetatisomerase (MAAI) Gen (Fragment) aus Arabidopsis thaliana SEQ ID NO. 42: Fumarylacetoacetathydrolase (FAAH) Gen (Fragment) aus Arabidopsis thaliana SEQ ID NO. 43: Primer (5 -35 S Promotor)
5 ' -ATGAATTCCATGGAGTCAAAGATTCAAATAGA-3 ' SEQ ID NO. 44: Primer (3* -OCS Terminator)
5 ' -ATGAATTCGGACAATCAGTAAATTGAACGGAG-3 '
Beispiele
Die Erfindung wird in den folgenden Ausführungsbeispielen unter Bezugnahme auf die beiliegenden Figuren näher erläutert. Dabei werden Abkürzungen mit folgender Bedeutung verwendet:
A = 35S-Promotor B = HGD in antisense-Orientierung
C = OCS Terminator D = Legumin B-Promotor
E = Transitpeptid der FNR F = HPPDop
(HPPD mit optimierter Codonusage) G = NOS-Terminator H = MAAI in antisense-Orientierung I = FAAH in antisense-Orientierung
Die Richtung von Pfeilen in den Figuren zeigt jeweils der Verlauf der Leserichtung der entsprechenden Gene an. Dabei zeigt:
Figur 1 eine schematische Darstellung des Vitamin E - Biosyntheseweges in Pflanzen ,-
Figur 2 Konstruktionsschemata der antiHGD kodierenden Plasmide pBinARHGDanti (I) und pCRScriptHGDanti (II);
Figur 3 Konstruktionsschemata der HPPDop kodierenden Plasmide pUC19HPPDop (III) und pCRScriptHPPDop (IV) ;
Figur 4 Konstruktionsschemata der Transformationsvektoren pPTVHGDanti (V) und des bifunktionalen Transformations-
Vektors pPTV HPPDop HGD anti (VI) , welcher die HPPDop in Samen transformierter Pflanzen exprimiert und gleichzeitig die Expression der endogenen HGD unterdrückt.
Figur 5 Konstruktionsschema des Transformationsvektors pPZP200HPPDop (VII) .
Figur 6 Konstruktionsschemata der Transformationsvektoren pGBMT MAAI1 anti (VIII) und pBinAR MAAI1 anti (IX)
Figur 7 Konstruktionsschemata der Transformationsvektoren pCR- Script M AI1 anti (X) und pZPNBN MAAI1 anti (XI)
Figur 8 Konstruktionsschemata der Transformationsvektoren pGEMT FAAH anti (XII) Figur 9 Konstruktionsschemata der Transformationsvektoren pBinAR FAAH anti (XIII) und pZPNBN FAAH anti (XIV)
Allgemeine Methoden:
Die chemische Synthese von Oligonukleotiden kann beispielsweise, in bekannter Weise, nach der Phosphoamiditmethode (Voet, Voet, 2. Auflage, Wiley Press New York, Seite 896-897) erfolgen. Die im Rahmen der vorliegenden Erfindung durchgeführten Klonierungs- schritte wie z.B. Restriktionsspaltungen, AgaroseGelelektropho- rese, Reinigung von DNA-Fragmenten, Transfer von Nukleinsäuren auf Nitrozellulose und Nylonmembranen, Verknüpfen von DNA-Fragmenten, Transformation von E. coli Zellen, Anzucht von Bakterien, Vermehrung von Phagen und Sequenzanalyse rekombinanter DNA wurden wie bei Sambrook et al . (1989) Cola Spring Harbor Laboratory Press; ISBN 0-87969-309-6 beschrieben durchgeführt. Die Sequenzierung rekombinanter DNA-Moleküle erfolgte mit einem Laserfluo- reszenz-DNA-Sequenzierer der Firma Licor (Vertrieb durch MWG Biotech, Ebersbach) nach der Methode von Sanger (Sanger et al . , Proc. Natl. Acad. Sei. USA 74 (1977), 5463-5467).
Beispiel 1:
Klonierung einer Hydroxyphenylpyruvat-Dioxygenase (HPPD) mit für
Expression in Brassica napus optimierter DNA-Sequenz
Die Aminosäuresequenz der Hydroxyphenylpyruvat-Dioxygenase (HPPD) aus Streptomyces avermi tilis (Accessionnr . U11864, SEQ ID NO: 16) wurde unter Berücksichtigung der Codonverwendung in Brassica napus (Raps) in eine DNA-Sequenz zurückübersetzt. Die Codonusage wurde mittels der Datenbank http://www.dna.affrc.go.jp/ -naka- mura/index.html bestimmt. Die abgeleitete Sequenz wurde unter An- heftung von Sall Schnittstellen durch Ligation überlappender Oligonukleotide mit anschliessender PCR-Amplifikation (Rouwendal, GJA; et al, (1997) PMB 33: 989-999) synthetisiert (SEQ ID N0.15). Die Richtigkeit der Sequenz des synthetischen Gens wurde durch Sequenzierung überprüft. Das synthetische Gen wurde in den Vektor pBluescript II SK+ (Stratagene) kloniert. (Diese kodonoptimierte Sequenz ist infolge auch als HPPDop bezeichnet.) Beispiel 2 :
Klonierung einer Homogentisat-Dioxygenase (HGD) aus Brassica napus
a) Isolierung von gesamt-RNA aus Blüten von Brassica napus
Von Brassica napus var . Westa wurden offene Blüten geerntet und in flüssigem Stickstoff eingefroren. Das Material wurde an- schliessend im Mörser pulverisiert und in Z6-Puffer (8 M Guanidi- nium-Hydrochlorid, 20 mM MES, 20 mM EDTA, auf pH 7 , 0 mit NaOH eingestellt; versetzt mit 400 ml Mercaptoethanol/100 ml Puffer unmittelbar vor Gebrauch) aufgenommen. Die Suspension wurde dann in Reaktionsgefässe überführt und mit einem Volumen Phenol/Chloroform/Isoamylalkohol 25:24:1 ausgeschüttelt. Nach 10 minütiger Zentrifugation bei 15000 U wurde der Überstand in ein neues Reak- tionsgefäss überführt und mit 1/20 Volumen IN Essigsäure und 0,7 Volumen Ethanol (absolut) die RNA gefällt. Nach erneuter Zentrifugation wurde das Pellet zunächst in 3M Natriumacetatlosung und nach einer weiteren Zentrifugation in 70 % Ethanol gewaschen. An- εchliessend wurde das Pellet in DEPC (Diethylpyrocarbonat) Wasser gelöst und die RNA-Konzentration photometrisch bestimmt.
b) Herstellung von cDNA aus gesamt RNA aus Blüten von Brassi ca napus
20 mg Gesamt-RNA wurden zunächst mit 3,3 ml 3M Natriumacetatlosung, 2 ml IM Magnesiumsulf tlösung versetzt und auf 10 ml Endvolumen mit DEPC Wasser aufgefüllt. Dazu wurde 1 ml RNase-freie DNase (Boehringer Mannheim) gegeben und 45 min bei 37 Grad inkubiert. Nach Entfernen des Enzyms durch Ausschütteln mit Phenol /Chloroform/Isoamylalkohol wurde die RNA mit Ethanol gefällt und das Pellet in 100 ml DEPC Wasser aufgenommen. 2 , 5 mg RNA aus dieser Lösung wurden mittels eines cDNA-Kits (Gibco BRL) nach Herstellerangaben in cDNA umgeschrieben.
c) PCR-Amplifikation eines Teilfragments der HGD aus Brassica napus
Durch Vergleich der DNA-Sequenzen der bekannten Homogentisat-Dio- xygenasen (HGD) aus Arabidopsis thaliana (Accessionnr . U80668), Homo sapiens (Accessionnr. U63008) und Mus musculus (Accessionnr. U58988) wurden für eine PCR Oligonukleotide abgeleitet, denen am 5 ' -Ende eine Sall und am 3 ' -Ende eine Asp718 Restriktionsschnittstelle angefügt worden war. Das Oligonukleotid am 5 ' -Ende umfasst die Sequenz: 5 * -GTCGACGGNCCNATNGGNGCNAANGG-3 ' ( SEQ ID NO : 25 ) ,
beginnend mit der Base 661 des Arabidopsis-Gens . Das Oligo- nukleotid am 3 ' -Ende umfasst die Sequenz:
5 ' -GGTACCTCRAACATRAANGCCATNGTNCC-3 ' { SEQ ID NO : 33 ) ,
beginnend mit der Base 1223 des Arabidopsis-Gens, wobei N jeweils Inosin bedeutet und R für den Einbau von A oder G in das Oligo- nukleotid steht .
Die PCR-Reaktion wurde mit der Taq-Polymerase von TAKARA nach Herstellerangaben durchgeführt. Als Template wurden 0,3 mg der cDNA eingesetzt. Das PCR-Programm lautete:
1 Zyklus mit 94°C (1 min)
5 Zyklen mit 94°C (4 sec) , 50°C (30 sec) , 72°C (1 min
5 Zyklen mit 94°C (4 sec ) , 48°C (30 sec) , 72°C (1 min
5 Zyklen mit 94°C (4 sec ) , 46 Grad (30 sec), 72 Grad .1 min)
1 Zyklus mit 72 Grad (30 min)
Das Fragment wurde mittels NucleoSpin Extract (Machery und Nagel) gereinigt und nach Herstellerangaben in den Vektor pGEMT (Pro- mega) kloniert. Die Richtigkeit des Fragments wurde durch Sequen- zierung überprüft.
Beispiel 3 : Herstellung eines Pflanzentransformations-Konstrukts zur Überexpression der HPPD mit optimierter DNA-Sequenz (HPPDop) und Ausschaltung der HGD
Zur Herstellung von Pflanzen, welche die HPPDop in Samen exprimieren und in denen die Expression der endogenen HGD mittels antisense-Technik unterdrückt ist, wurde ein binärer Vektor angefertigt, der beide Gensequenzen enthält (Figur 4, Konstrukt VI) .
a) Herstellung einer HPPDop- Nukleinsäurekonstrukt
Dazu wurden zunächst die Komponenten der Kassette zur Expression der HPPDop, bestehend aus dem LeguminB-Promotor (Accessionnr. X03677), dem Transitpeptid der Ferredoxin:NADP+ Oxidoreduktase aus Spinat (FNR; Jansen, T, et al (1988) Current Genetics 13, 517-522) und dem NOS-Terminator (enthalten im pBHOl Accessionnr. U12668) mittels PCR mit den benötigten Restriktionsschnittstellen versehe . Der Legumin-Promotor wurde aus dem Plasmid plePOCS (Bäumlein, H, et al. (1986) Plant J. 24, 233-239) mit dem stromaufwärts-Oligo- nukleotid:
5 * -GAATTCGATCTGTCGTCTCAAACTC-3 ' (SEQ ID NO : 34)
und dem stromabwärts-Oligonukleotid:
5 * -GGTACCGTGATAGTAAACAACTAATG-3 * (SEQ ID NO : 35)
mittels PCR amplifiziert und in den Vektor PCR-Script (Stratagene) nach Herstellerangaben kloniert.
Das Transitpeptid wurde aus dem Plasmid pSK-FNR (Andrea Babette Regierer "Molekulargenetische Ansätze zur Veränderung der
Phosphat-Nutzungseffizienz von höheren Pflanzen" , P+H Wissenschaftlicher Verlag, Berlin 1998 ISBN: 3-9805474-9-3) mittels PCR mit dem 5 ' -Oligonukleotid:
5 -ATGGTACCTTTTTTGCATAAACTTATCTTCATAG-3 λ (SEQ ID NO : 36)
und dem 3 ' -Oligonukleotid:
5 -ATGTCGACCCGGGATCCAGGGCCCTGATGGGTCCCATTTTCCC-3 ' (SEQ ID NO: 37)
amplifiziert .
Der NOS-Terminator wurde aus dem Plasmid pBHOl (Jefferson, R.A., et al (1987) EMBO J. 6 (13), 3901-3907) mittels PCR mit dem 5 ' -Oligonukleotid:
5 -GTCGACGAATTTCCCCGAATCGTTC-3 v (SEQ ID NO: 38)
und dem 3 ' -Oligonukleotid
5 -AAGCTTCCGATCTAGTAACATAGA-3 (SEQ ID NO: 26)
amplifiziert .
Das Amplikon wurde jeweils in den Vektor pCR-Script (Stratagene) nach Herstellerangaben kloniert.
Für die Nukleinsaurekonstrukt wurde zunächst der NOS-Terminator als Sall/Hindlll-Fragment in einen entsprechend geschnittenen püC19-Vektor (Yanisch-Perron, C, et al (1985) Gene 33, 103-119) umkloniert. In dieses Plasmid wurde anschliessend das Transitpeptid als Asp718/Sall-Fragment eingeführt. Der Legumin-Promotor wurde dann als EcoRl/Asp718 Fragment einkloniert . Das Gen HPPDop wurde als Sall-Fragment in dieses Konstrukt eingeführt (Figur 3, Konstrukt III) .
Die fertige Kassette in pUC19 wurde als Template für eine PCR verwendet, wozu für den Leguminpromotor das Oligonukleotid:
5 '-AAGCTTGATCTGTCGTCTCAAACTC-S * (SEQ ID O: 40)
und für den Nos-Terminator das Oligonukleotid:
5 ' -AAGCTTCCGATCTAGTAACATAGA-3 λ ( SEQ ID NO : 39)
verwendet wurden. Das Amplikon wurde in pCR-Script kloniert und pCR-ScriptHPPDop genannt (Figur 3, Konstrukt IV).
d) Herstellung einer antiHGD-Nukleinsäurekonstrukt
Für die Ausschaltung der HGD mit antisense-Technik wurde das Gen- fragment als Sall/Asp718-Fragment in den Vektor pBinAR (Höfgen, R. und Willmitzer, L. , (1990) Plant Sei. 66: 221-230) kloniert, in dem der 35S-Promotor und der OCS-Terminator vorliegen (Figur 2, Konstrukt I). Das Konstrukt diente als Vorlage für eine PCR Reaktion mit dem Oligonukleotid:
5 λ -ATTCTAGACATGGAGTCAAAGATTCAAATAGA-3 (SEQ ID NO: 27),
spezifisch für die 35S-Promotor-Sequenz ,-
und dem Oligonukleotid:
5 λ -ATTCTAGAGGACAATCAGTAAATTGAACGGAG-3 l (SEQ ID O: 28).
spezifisch für OCS-Terminator-Sequenz
Das Amplikon wurde in den Vektor pCR-Script (Stratagene) kloniert und pCRScriptHGDanti genannt (Figur 2, Konstrukt II).
c) Herstellung des binaren Vektors
Zur Erstellung eines binären Vektors zur Raps-Transformation wurde zunächst das Konstrukt HGDanti aus pCRScriptHGDanti als XbaT-Fragment in den Vektor pPTV (Becker, D.,(1992) PMB 20, 1195-1197) kloniert (Figur 4, Konstrukt V). In dieses Plasmid wurde das Konstrukt LegHPPDop aus pCRScriptHPPDop als Hindlll- Fragment eingefügt . Dieses Plasmid wurde mit pPTVHPPDopHGDanti bezeichnet (Figur 4, Konstrukt VI) .
Beispiel 4: Herstellung von Konstrukten zur Kotransformation zur Überexpression von HPPDop und Ausschaltung von HGD in Brassica napus Pflanzen
Zur Kotransformation von Pflanzen mit HPPDop und antiHGD wurde das Konstrukt LeguminB-Promotor/Tansitpeptid/HPPDop/NOS aus dem Vektor pCRScriptHPPDop (Figur 3, Konstrukt IV) als Hindlll-Frag- ment herausgeschnitten und in den entsprechend geschnittenen Vektor pPZP200 (Ha dukiewicz, P., et al . , (1994) PMB 25(6): 989-94) eingefügt (Figur 5, Konstrukt VII) . Dieses Plasmid diente später zur Kotransformation von Pflanzen zusammen mit dem Vektor pPTVHGDanti (Figur 4, Konstrukt V) aus Beispiel 3 c).
Beispiel 5 :
Klonierung eines genomischen Fragments der Maleylacetoacetat-Iso- merase aus Arabidopsis thaliana
a) Isolierung von genomischer DNA aus Blättern von A . thaliana :
Der verwendete Extraktionspuffer hat folgende Zusammensetzung:
• 1 Volumen DNA-Extraktionspuffer (0,35 M Sorbitol, 0,1 M Tris, 5 mM EDTA, pH8,25 HCl)
• 1 Volumen Nuclei-Lysispuffer (0,2 M Tris-HCl pH 8,0, 50 mM EDTA, 2 M NaCl, 2% Hexadecyltrimethylam oniumbromide (CTAB) )
• 0,4 Volumen 5% Natriumsarkosyl
• 0,38 g/100 ml Natriumbisulfit
100 mg Blattmaterial von A thaliana wurden geerntet und in flüssigem Stickstoff eingefroren. Das Material wurde anschliessend im Mörser pulverisiert und in 750 μl Extraktionspu fer aufgenommen. Das Gemisch wurde 20 min bei 65°C erhitzt und anschliessend mit einem Volumen Chloroform/Isoamylalkohol (24:1) ausgeschüttelt. Nach 10 minütiger Zentrifugation bei 10000 rpm in einer Heraeus pico-fuge wurde der Überstand mit einem Volumen Isopropanol versetzt und die so gefällte DNA erneut 5 Minuten bei 10000 rpm pelletiert. Das Pellet wurde in 70 %igem Ethanol gewaschen, bei Raumtemperatur 10 min getrocknet und anschliessend in 100 μl TE- KNAse Puffer (10 M Tris HC1 pH 8.0, 1 mM EDTA pH 8.0, 100 mg/1 RNase) gelost.
b) Klonierung des Gens für die MAAI aus Arabidopsis thaliana
Mittels der Protein-Sequenz der MAAI aus Maus (Mus musculus ) mittels BLAST-Suche in der NCBI Datenbank
(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/) das MAAI-Gen aus A . thaliana identifiziert (Genbank Acc.-No. AAC78520.1). Die Sequenz ist in der Genbank als putative Glutathione-S-Transferase annotiert. Mittels der ID-Nummern der Proteinsequenz konnten die korrspon- dierende DNA-Sequenz ermittelt werden und Oligonukleotide abgeleitet werden. Den Oligonukleotiden wurde jeweils am 5 'Ende eine Sall und am 3 ' Ende eine BamHI Restriktionsschnittstelle angefügt. Das Oligonukleotid am 5 'Ende umfasst die Sequenz
5 v-atgtcgacATGTCTTATGTTACCGAT-3 > (SEQ ID NO: 29)
beginnend mit Base 37 der cDNA, dem ersten Codon, das Oligo- nukleotid am 3 'Ende umfasst die Sequenz
5r-atggatccCTGGTTCATATGATACA~3 l (SEQ ID NO: 30)
beginnend mit dem Basenpaar 803 der cDNA-Sequenz . Die PCR-Reak~ tion wurde mit der Taq Polymerase (Hersteller: TaKaRa Shuzo Co., Ltd.) durchgeführt. Der Ansatz hatte folgende Zusammensetzung: 10 μl Puffer (20 mM Tris-HCl pH 8,0, 100 M KC1, 0 , 1 mM EDTA, 1 mM DTT, 0,5 % Tween20, 0,5 % Nonidet P-40, 50 % Glycerol), jeweils 100 pmol der beiden Oligonukleotide, jeweils 20 nM an dATP, dCTP, dGTP, dTTP, 2,5 Einheiten Taq-Polymerase, 1 μg genomische DNA, destilliertes Wasser add 100 μl . Das PCR-Programm lautete:
5 Zyklen mit 94°C (4 sec), 52°C (30 sec), 72°C (1 min)
5 Zyklen mit 94°C (4 sec), 50°C (30 sec), 72°C (1 min)
25 Zyklen mit 94°C (4 sec), 48°C (30 sec), 72°C (1 min)
Das amplifiziert© Fragment (SEQ ID NO: 41) wurde mittels Nuclao- Spin Extract (Machery-Nagel) gereinigt und nach Herstellerangaben in den Vektor pGEMTeasy von Promega kloniert (Figur 6, Konstrukt VIII) . Die Richtigkeit des Fragments wurde durch Sequenzierung überprüft. Mittels der durch die Primer an die Sequenz angefügten Restriktionsschnittstellen wurde das Gen als Sall/BamHI-Fragment in den entsprechend geschnittenen Vektor BinAR (Höfgen, R. und Willmitzer, L. , (1990) Plant Sei. 66: 221-230) kloniert (Figur 6, Konstrukt IX) . Dieser enthält den 35S-Promotor des Blumenkohlmo- saikvirus und die OCS-Terminationssequenz . Das Konstrukt diente als Vorlage für eine PCR Reaktion mit dem Oligonukleotid
5 v -ATGAATTCCATGGAGTCAAAGATTCAAATAGA-3 * (SEQ ID NO: 43)
spezifisch für die 35S-Promotor-Sequenz und dem Oligonukleotid
5 v -ATGAATTCGGACAATCAGTAAATTGAACGGAG-3 v (SEQ ID NO: 44)
spezifisch für den OCS-Terminator. Beiden Oligonukleotiden wurde eine EcoRI-Brkennungssequenz angefügt. Die PCR wurde mit der Pfu- Polymerase durchgeführt (Hersteller: Stratagene) . Der Ansatz hatte folgende Zusammensetzung: 10 μl Puffer (200 mM Tris HCl pH 8.8, 20 mM MgS04 , 100 mM KC1, 100 mM Ammoniumsulfat, 1 % Triton X-100, 1 g/1 Nuclease freies BSA) , jeweils 100 pmol der beiden Oligonukleotide, jeweils 20 nM an dATP, dCTP, dGTP, dTTP, 2.5 Einheiten Pfu-Polymerase , 1 ng Plasmid DNA, destilliertes Wasser add 100 μl . Das PCR Programm lautete:
• 5 Zyklen mit 94°C (4 sec) , 52°C (30 sec) , 72°C (2 min)
• 5 Zyklen mit 94°C (4 sec) , 50°C (30 sec) 72°C (2 min)
• 25 Zyklen mit 94°C (4 sec) , 48°C (30 sec) , 72°C (2 min)
Das PCR-Frag ent wurde mittels Nucleo-Spin Extract (Machery- Nagel) gereinigt und in den Vektor pCR-Script (Stratagene) kloniert (Figur 7, Konstrukt X).
Beispiel 6: Herstellung des binären Vektors
Zur Erstellung eines binären Vektors zur Arabidopsis- und Raps- Transformation wurde das Konstrukt aus dem Vektor PCR-Script als EcoRI-Fragment in den Vektor pZPNBN einkloniert. pZPNBN ist ein pPZP200 Derivat (Ha dukiewicz, P., ec al., (1994) P B 25(6): 989-94), dem zuvor eine Phosphinotricinresistenz; unter der Kontrolle des NOS-Promotors vor dem NOS-Terminator eingefügt worden war. (Figur 7, Konstrukt XI)
Beispiel 7 : Klonierung eines genomischen Fragments der Fumarylacetoacetat Isomerase aus Ai-abidopsis thaliana
Mittels der Protein-Sequenz der FAAH aus Emeri cella nidulans wurde ein Blast-Search durchgeführt und aus A. thaliana eine Proteinsequenz identifiziert, die zu 59 % Homologie aufwies. FAAH aus A . thaliana hat die Accessionnummer ACGQ2131. Mittels der IP- Nummer der Proteinsequenz konnte die DNA-Sequen-: ermittelt werden und Oligonukleotide abgeleitet werden. Dem 5 ' -Oligonukleotid wurde eine Sall und dem 3 ' -Oligonukleotid eine Asp718 Restriktionsschnittstelle angefügt. Das Oligonukleotid am 5 ' -Ende von FAAH umfasst die Sequenz
5 *-atgtcgacGGAAACTCTGAACCATΑT-3 * (SEQ ID NO: 31)
beginnend mit Base 40258 des BAC F12F1, das Oligonukleotid am 3 ' Ende umfasst die Sequenz:
5 ,-atggtaccGAATGTGATGCCTAAGT-3 ( (SEQ ID NO: 32)
beginnend mit dem Basenpaar 39653 des BACs . Die PCR-Reaktion wurde mit der Tag Polymerase (Hersteller: TaKaRa Shuzo Co., Ltd.) durchgeführt. Der Ansatz hatte folgende Zusammensetzung: 10 μl Puffer (20 mM Tris-HCl pH 8,0, 100 mM KCl, 0 , 1 mM EDTA, 1 M DTT, 0,5 % Tween20, 0,5 % Nonidet P-40, 50 % Glycerol), jeweils lOOpmol der beiden Oligonukleotide, jeweils 20 nM an dATP, dCTP, dGTP, dTTP, 2,5 Einheiten Taq-Polymerase, 1 μg genomische DNA, destilliertes Wasser add 100 μl . Das PCR-Programm lautete:
5 Zyklen mit : 94°C ( 4 sec ) 52°C ( 30 sec ) 72 °C ( 1 min
5 Zyklen mit : 9 °C ( 4 sec ) 50°C ( 30 sec ) 72 °C ( 1 min
5 Zyklen mit : 94°C ( 4 sec ) 48°C ( 30 sec ) 72°C ( 1 min
Das Fragment ((SEQ ID NO: 42) wurde mittels Nucleo-Spin Extract (Machery-Nagel) gereinigt und nach Herstellerangaben in den Vektor pGEMTeasy von Promega kloniert (Figur 8, Konstrukt XII) .
Die Richtigkeit des Fragments wurde durch Sequenzierung über- prüft. Mittels der durch die Primer an die Sequenz angefügten
Restriktionsschnittstellen wurde das Gen als Sall/Asp718-Fragment in den entsprechend geschnittenen Vektor BinAR (Höfgen, R. und Willmitzer, L., Plant Sei. 66: 221-230, 1990) kloniert. Dieser enthält den 35S-Promotor des Blumenkohlmosaikvirus und die OCS- Terminationssequenz (Fig. 9, Konstrukt XIII).
Zur Erstellung eines binären Vektors zur Arabidopsis- und Raps- Transformation wurde das Konstrukt aus dem Vektor pBinAR als EcoRI/Hindlll-Fragment in den Vektor pZPNBN einkloniert . pZPNBN ist ein pPZP200 Derivat (Ha dukewicz , P. et al . , Plant Molecular Biology, 25; 989-994, 1994), dem zuvor eine Phosphinotricin- resistenz unter der Kontrolle des NOS-Promotors vor dem NOS- Terminator eingefügt worden war (Figur 9, Konstrukt XIV). Beispiel 8 :
Herstellung transgener Arabidopsis thaliana Pflanzen
Wildtyp Arabidopsis thaliana Pflanzen (cv. Columbia) wurden mit dem Agrobacterium tumefaciens Stamm (EHA105) auf Grundlage einer modifizierten Methode der Vacuum Infiltrationsmethode nach Clough und Bent (Clough, S. and Bent A., Plant J. 16 ( 6 ) : 735-43 , 1998) und nach Bechtold, et al . (Bechtold, N., et al., CRAcad Sei Paris. 1144 (2 ): 204-212 , 1993) transformiert. Die verwendeten Agrobacte- rium tumefaciens Zellen waren zuvor mit den Plasmiden pZPNBN- MAAIanti bzw pZPNBN-FAAHanti transformiert worden.
Samen der Primärtransformanden wurden auf Grundlage der Phosphi- notricinresistenz gescreent, indem Saatgut ausgelegt wurde und die Keimlinge mit dem Herbizid Basta (Phosphinotricin) besprüht wurden. Basta resistente Keimlinge wurden vereinzelt und als vollentwickelte Pflanzen zur biochemischen Analyse verwendet.
Beispiel 9: Herstellung transgener Raps ( Brassica napus) Pflanzen
Die Herstellung transgener Raps Pflanzen orientierte sich an einem Protokoll von Bade, J.B. und Damm, B. (Bade, J.B. und Damm, B. (1995) in: Gene Transfer to Plants, Potrykus, I. und Spangenberg, G., eds , Springer Lab Manual, Springer Verlag, 1995, 30-38), in welchem auch die Zusammensetzung der verwendeten Medien und Puffer angegeben ist.
Die Transformation erfolgte mit dem Agrobacterium tumefaciens Stamm EHA105. Zur Transformation wurde entweder das Plasmid pPTVHPPDopHGDanti (Figur 4, Konstrukt VI) oder nach Anzucht gemischte Kulturen von Agrobakterien mit den Plasmiden pPTVHGDanti (Figur 4, Konstrukt V) und pPZP200HPPDop (Figur 5, Konstrukt VII) verwendet. Samen von Brassica napus var . Westar wurden mit 70 % Ethanol (v/v) oberflächensteril gemacht, 10 Minuten bei 55°C in Wasser gewaschen, in 1 %iger Hypochlorit-Lösung (25 % v/v Teepol, 0,1 % v/v Tween 20) für 20 Minuten inkubiert und sechsmal mit sterilem Wasser für jeweils 20 Minuten gewaschen. Die Samen wurden drei Tage auf Filterpapier getrocknet und 10-15 Samen in einem Glaskolben mit 15 ml Keimungsmedium zur Keimung gebracht . Von mehreren Keimlingen (ca. 10 cm gross) wurden die Wurzeln und Apices entfernt und die verbleibenden Hypokotyle in ca. 6 mm lange Stücke geschnitten. Die so gewonnenen ca. 600 Explantate wurden 30 Minuten mit 50 ml Basalmediu gewaschen und in einem 300 ml Kolben überführt. Nach Zugabe von 100 ml KailusInduktions- mediu wurden die Kulturen für 24 Stunden bei 100 U/min inkubiert . Von den Agrobacteri um Stämmen wurden Übernachtkulturen bei 29°C in Luria Broth-Medium mit Kanamycin (20 mg/1) angesetzt, davon 2 ml in 50 ml Luria Broth-Medium ohne Kanamycin für 4 Stunden bei 29°C bis zu einer ODsoo on 0,4-0,5 inkubiert. Nach der Pelletierung 5 der Kultur bei 2000 U/min für 25 min wurde das Zellpellet in 25 ml Basalmedium resuspendiert. Die Konzentration der Bakterien in der Lösung wurde durch Zugabe von weiterem Basalmedium auf eine ODsoo von 0,3 eingestellt. Zur Kotransformation wurde die Lösung der beiden Stämme zu gleichen Teilen vermischt.
10
Aus den Raps-Explanten wurde das Kallus-Induktionsmedium mit sterilen Pipetten entfernt, 50 ml Agrobac terium-Lόsixng hinzugefügt, vorsichtig gemischt und für 20 min inkubiert. Die Agrobacterien- Suspension wurde entfernt, die Raps-Explantate für 1 min mit
15 50 ml Kallus-Induktionsmedium gewaschen und anschliessend 100 ml Kallus-Induktionsmedium hinzugefügt. Die Co-Kultivierung wurde für 24 h auf einem Rotationsschüttler bei 100 U/min durchgeführt. Die Co-Kultivierung wurde durch Wegnahme des Kallus-Induktions- mediums gestoppt und die Explantate zweimal für jeweils 1 min mit
20 25 ml und zweimal für 60 min mit jeweils 100 ml Waschmedium bei 100 U/min gewaschen. Das Waschmedium mit den Explantaten wurde in 15 cm Petrischalen überführt und das Medium mit sterilen Pipetten entfernt .
25 Zur Regeneration wurden jeweils 20-30 Explantate in 90 mm Petrischalen überführt, welche 25 ml Spross-Induktionsmedium mit Phosphinotricin enthielten. Die Petrischalen wurden mit 2 Lagen Leukopor verschlossen und bei 25°C und 2000 lux bei Photoperioden von 16 Stunden Licht / 8 Stunden Dunkelheit inkubiert. Alle 12
30 Tage wurden die sich entwickelnden Kalli auf frische Petrischalen mit Spross-Induktionsmedium umgesetzt. Alle weiteren Schritte zur
Regeneration ganzer Pflanzen wurde wie von Bade, J.B und Damm, B.
(in: Gene Transfer to Plants, Potrykus, I. und Spangenberg, G., eds , Springer Lab Manual, Springer Verlag, 1995, 30-38) beschrie-
35 ben durchgeführt.
Beispiel 10:
Untersuchung der transgenen Pflanzen
0 Um zu bestätigen, dass durch die Inhibition der HGD-, MAAI,- und/ oder FAAH die Vitamin E Biosynthese in den transgenen Pflanzen beeinflusst wird, werden die Tocopherol- und Tocotrienol-Gehalte in Blätter und Samen der mit den beschriebenen Konstrukten transformierten Pflanzen (Arabidopsis thaliana , Brassica napus) analy- 5 siert. Dazu werden die transgenen Pflanzen im Gewächshaus kultiviert und Pflanzen, die die antisense RNA von der HGD-, MAAI,- und/oder FAAH exprimieren, mittels einer Northern-Blot Analyse untersucht. In Blättern und Samen dieser Pflanzen wird der Toco- pherolgehalt und der Tocotrienolgehalt ermittelt. Der Aufschluß des Pflanzenmaterials erfolgte durch dreimalige Inkubation im Ep- pendorfSchüttler bei 30°C, lOOOrpm in 100 % Methanol für 15 Minu- ten, wobei die jeweils erhaltenen Überstände vereinigt wurden. Weitere Inkubationsschritte ergaben keine weitere Freisetzung von Tocopherolen oder Tocotrienolen. Um Oxidation zu vermeiden, wurden die erhaltenen Extrakte direkt nach der Extraktion mit Hilfe einer Waters Allience 2690 HPLC Anlage analysiert. Tocopherole und Tocotrienole wurden über eine reverse Phase Säule ( ProntoSil 200-3-C30, Bischoff) mit einer mobilen Phase von 100 % Methanol getrennt und anhand von Standards (Merck) identifiziert. Als De- tektionssystem diente die Fluoreszens der Substanzen (Anregung 295nm, Emmision 320 nm) die mit Hilfe eines Jasco Fluoreszens- detektors FP 920 nachgewiesen wurde.
In allen Fällen ist die Tocopherol- bzw. Tocotrienol-Konzentra- tion in transgenen Pflanzen, die zusätzlich eine erfindungsge- mässe Nukleinsaure exprimieren, im Vergleich zu nicht transfor- mierten Pflanzen erhöht.

Claims

Patentansprüche
1. Verfahren zur Bildung von Vitamin E durch Beeinflussung der Vitamin E-Biosynthese, dadurch gekennzeichnet, dass man den
Homogentisatabbau durch Verminderung der Homogentisat-1, 2- dioxygenase (HGD) - Aktivität, Maleylacetocacetatisomerase
(MAAI) - Aktivität und/oder Fumarylacetoacetathydrolase
(FAAH) - Aktivität reduziert.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass man die MAAI-Aktivität und/oder die FAAH-Aktivität reduziert und gleichzeitig
a) die Umsetzung von Homogentisat zu Vitamin E verbessert, oder
b) die Biosynthese von Homogentisat verbessert.
3. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass man die HGD-Aktivität reduziert und gleichzeitig
a) die Umsetzung von Homogentisat zu Vitamin E verbessert, oder
b) das TyrA-Gen überexprimiert.
4. Verfahren zur vermehrten Bildung von Vitamin E durch Beeinflussung der Vitamin E-Biosynthese, dadurch gekennzeichnet, dass man
a) die Umsetzung von Homogentisat zu Vitamin E, und gleichzeitig
b) die Biosynthese von Homogentisat
verbessert .
5. Verfahren nach Anspruch 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet, dass man die Kultur eines pflanzlichen Organismus mit Inhibitoren der MAAI, HGD oder FAAH behandelt.
S ≤π uen zen
6. Nukleinsäurekonstrukt, enthaltend eine Nukleinsäuresequenz
(anti-MAAI/FAAH) , welche zu einer Reduktion der MAAI- Aktivität oder FAAH-Aktivität befähigt ist, oder ein funktionales Äquivalent davon.
7. Nukleinsäurekonstrukt nach Anspruch 6, enthaltend zusätzlich
a) eine Nukleinsäuresequenz (pro-HG) , welche zu einer Steigerung der Homogentisat (HG) Biosynthese befähigt ist, oder ein funktionales Äquivalent davon; oder
b) eine Nukleinsäuresequenz (pro-VitaminE) , welche zu einer Steigerung der Vitamin E Biosynthese ausgehend vom Homogentisat befähigt ist, oder ein funktionales Äquivalent davon,- oder
c) eine Kombination von a) und b) .
8. Nukleinsäurekonstrukt, enthaltend eine Nukleinsäuresequenz (anti-HGD), welche zu einer Inhibition der HGD befähigt ist, oder für ein funktionales Äquivalent davon.
9. Nukleinsäurekonstrukt nach Anspruch 8, enthaltend zusätzlich
a) eine Nukleinsäuresequenz kodierend für bifunktionale
Chorismatmutase-Prephenatdehydrogenase Enzyme (TyrA) oder ein funktionales Äquivalent davon; oder
b) eine Nukleinsäuresequenz (pro-VitaminE) , welche zu einer Steigerung der Vitamin E Biosynthese ausgehend vom Homogentisat befähigt ist, oder ein funktionales Äquivalent davo ; oder
c) eine Kombination von a) und b)
10. Nukleinsäurekonstrukt, enthaltend eine Nukleinsäuresequenz
(pro-HG) , welche zu einer Steigerung der Homogentisat (HG) Biosynthese befähigt ist, oder ein funktionales Äquivalent davon, und gleichzeitig eine Nukleinsäuresequenz (pro-Vita- minE) , welche zu einer Steigerung der Vitamin E Biosynthese ausgehend vom Homogentisat befähigt ist, oder ein funktionales Äquivalent davon.
11. Nukleinsäurekonstrukt nach Anspruch 6 bis 10 enthaltend eine anti-MAAI /FAAH-Sequenz bzw. anti-HGD-Sequenz , die a) zu einer antisense-Nukleinsäuresequenz transkribierbar ist, welche zur Inhibition der MAAI/ FAAH-Aktivität bzw. der HGD-Aktivität befähigt ist, oder
b) eine Inaktivierung der MAAI/FAAH bzw. HGD durch eine homologe Rekombination bewirkt, oder
c) für einen Bindungsfaktor kodiert, der an die Gene der
MAAI/FAAH bzw. HGD bindet und so die Transkription dieser Gene vermindert .
12. Nukleinsäurekonstrukt nach Anspruch 7 und 10 enthaltend eine proHG-Sequenz ausgewählt aus den Genen kodierend für eine HPPD, TyrA .
13 . Nukleinsäurekonstrukt nach Anspruch 1 , 9 und 10 enthaltend eine proVitaminE-Sequenz ausgewählt aus den Genen kodierend für eine HPGT , Geranylgeranyloxidoreduktase , 2-Methyl-6-phy- tylplastoquinol-methyltransf erase , 7-Tocopherol-methyltrans- f erase .
14. Rekombinanter Vektor, enthaltend
a) ein Nukleinsäurekonstrukt nach einem der Ansprüche 6 bis 13 ; oder
b) eine Nukleinsäure, die für eine HGD, MAAH oder FAAH kodiert, sowie funktioneile Äquivalente davon, oder
c) eine Kombination der Möglichkeiten a) und b) .
15. Rekombinanter Vektor nach den Anspruch 14, wobei die Nukleinsäuren oder Nukleinsaurekonstrukte funktionell mit einer genetischen Kontrollsequenz verbunden sind und der die Fähig- keit zur Transkription von sense oder antisense-RNA hat.
16. Transgener Organismus, transformiert mit einem Nukleinsäurekonstrukt gemäss den Ansprüchen 6 bis 13 oder einem rekombinanten Vektor gemäss den Ansprüchen 14 oder 15.
17. Transgener Organismus nach Anspruch 16 ausgewählt aus Bakterien, Hefen, Pilzen, Moosen, tierischen und pflanzlichen Organismen .
18. Zellkulturen, Teile, transgenes Vermehrungsgut, oder Früchte abgeleitet von einem transgenen Organismus nach den Ansprüchen 16 oder 17.
5 19. Verwendung eines transgenen Organismus nach einem der Ansprüche 16 oder 17 oder von diesem abgeleitete Zellkulturen, Teile, transgenes Vermehrungsgut oder Früchte nach Anspruch 18 als Nahrungs- oder Futtermittel oder zur Isolation von Vitamin E. 10
20. Antikörper, proteinbindende oder DNA-bindende Faktoren gegen Polypeptide mit HGD-, MAAI- oder FAAH-Aktivität, deren Gene oder cDNAs .
15 21. Verwendung von Polypeptiden mit HGD-, MAAI- oder FAAH-Aktivität, deren Gene oder cDNAs zum Auffinden von Inhibitoren der HGD, MAAI oder FAAH.
22. Verfahren zum Auffinden von Inhibitoren der MAAI, HGD oder 20 FAAH, dadurch gekennzeichnet, daß man die enzymatische Aktivität der MAAI, HGD oder FAAH in Gegenwart einer chemischen Verbindung misst und bei Erniedrigung der enzymatischen Aktivität im Vergleich zur nicht gehemmten Aktivität die chemische Verbindung einen Inhibitor darstellt.
25
23. Verwendung von Inhibitoren der HGD, MAAI oder FAAH, erhältlich gemäss einem Verfahren nach Anspruch 22, als Wachstumsregulatoren.
30
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