EP1297183A2 - Verhahren zur identifizierung von für die behandlung von virusinfektionen geeigneten stoffen - Google Patents

Verhahren zur identifizierung von für die behandlung von virusinfektionen geeigneten stoffen

Info

Publication number
EP1297183A2
EP1297183A2 EP01955335A EP01955335A EP1297183A2 EP 1297183 A2 EP1297183 A2 EP 1297183A2 EP 01955335 A EP01955335 A EP 01955335A EP 01955335 A EP01955335 A EP 01955335A EP 1297183 A2 EP1297183 A2 EP 1297183A2
Authority
EP
European Patent Office
Prior art keywords
virus
viruses
cell
infection
fluorescence
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Withdrawn
Application number
EP01955335A
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
Christoph BRÄUCHLE
Georg Seisenberger
Martin Ried
Thomas Endress
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Ludwig Maximilians Universitaet Muenchen LMU
Original Assignee
Ludwig Maximilians Universitaet Muenchen LMU
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ludwig Maximilians Universitaet Muenchen LMU filed Critical Ludwig Maximilians Universitaet Muenchen LMU
Publication of EP1297183A2 publication Critical patent/EP1297183A2/de
Withdrawn legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/5005—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/531—Production of immunochemical test materials
    • G01N33/532—Production of labelled immunochemicals
    • G01N33/533—Production of labelled immunochemicals with fluorescent label
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/005—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from viruses

Definitions

  • the present invention relates to methods for identifying substances suitable as medicaments for the treatment of viral infections, or for testing their effectiveness.
  • the present invention further relates to the use of a corresponding method for observing the route of infection and / or mechanism of viruses in cells, in particular viruses, which are provided as a gene ferry for gene expression or as vectors or / and for gene therapy.
  • viruses occur in areas as diverse as virus infection (virus penetration into the living cell), immunology (viruses as antigen or antigen producer) and gene expression or gene therapy (viruses as a gene shuttle). Often, it is of particular interest to detect the smallest possible concentration of viruses up to the ultimate analytical limit, the detection of a single virus.
  • viruses have been B. indirectly detected by their expressed secondary products or were radiolabelled. Attempts to detect viruses marked by fluorescent dyes have so far had to be limited to the detection of a large accumulation of viruses (JS Bartlett, R. Wucher, RJ Samulski. "Infectious Entry Pathway of Adeno-Associated Virus and Adeno-Associated Virus Vectors ". Journal of Virology, Vol. 74 (2000) 2777), which are also often not only with one dye but with many Dyes per virus (PL Leopold, B. Ferris, I. Grinberg, S. Worgall, NR hackett, RG Crystal. "Fluorescent Virions: Dynamic Tracking of the Pathway of Adenoviral Gene Transfer Vectors in Living Cells". Human Gene Therapy 9 (1998 ) 367) were labeled.
  • the object is achieved according to the invention by a method for identifying substances suitable as medicaments for the treatment of virus infections or for testing their effectiveness, in which individual viruses are marked with one or more fluorescent dye molecules and the influence of the substance on the viruses or / and theirs Infection route after excitation determined microscopically via the fluorescence of the dye in comparison with a control sample.
  • the method according to the invention provides for the first time a possibility of tracking the path of an individual virus into a cell and the further migration of the virus components within the cell. If this is carried out in parallel for a sample to which a substance is added whose influence on the viral infection is to be investigated and for a control sample, information can be obtained as to whether the substance influences the infection cycle and at which point such an influence takes place.
  • the virus is by binding a single dye molecule in its biological / physiological properties, for.
  • the individual steps of a virus infection of a living cell such as docking to receptors on the cell membrane, penetration of the cell membrane, diffusion or active transport in the cytoplasm or penetration into the cell nucleus as well as deposition of the viral DNA in the cell nucleus can be detailed for the first time and under physiological conditions to be watched.
  • the addition of substances to be examined and their effects on the virus infection can be closely observed.
  • the method according to the invention is based on the detection of individual viruses using the single-molecule fluorescence technique.
  • the method according to the invention is characterized in that the individual virus is labeled with one or more fluorescent dye molecules and can be followed via the fluorescence.
  • the method can therefore be used for all possible uses of viruses in which it is important to achieve high to highest analytical sensitivity, in particular for the detection of individual viruses.
  • the method for detecting individual viruses enables in particular the detection of viruses on their way of infection into a living cell.
  • the virus becomes visible in the microscope through a fluorescence point that can be tracked in real time with a spatial resolution of 1 to 40 nm and with a time resolution of 1 to 40 ms.
  • the method allows the detection a) of a single virus b) which is labeled with only one dye and thus has practically no change on its surface and its biochemical / physiological
  • B. Detect mechanisms of virus entry into the living cell with the highest analytical resolution. It can also be used to test antidotes / methods to prevent viruses from entering the cell with the greatest precision. Furthermore, the behavior of viruses such as. B. recognize their selectivity with regard to the entry into certain cells as well as appropriate countermeasures. d) All of this can be tracked in real time in the living cell with high spatial and time resolution.
  • the detection sensitivity in the method according to the invention is such that a single fluorescent dye can already be detected in a molecule.
  • the virus only has to be labeled with one (or more, but a few, preferably 2 to 3) dye molecules in order to be detectable as a single virus.
  • the advantage of this is that the surface of the virus is practically not changed by the minimal labeling and the virus maintains its biological / physiological properties.
  • the fluorescent dyes used in the method according to the invention are bound to the virus, in a preferred embodiment to N-terminal amino acid residues of the capsid proteins of the virus. Binding to proteins mutated site-specifically with cysteine is also a preferred possibility according to the invention.
  • dye 1 can be bound to the capsid and dye 2 to the DNA of the virus. This later allows, for example, tracking the separation of the capsid and DNA of the virus.
  • the dye molecule or molecules are bound to the viral DNA or to internal proteins.
  • the binding of dye molecules can in principle take place directly, but can also take place via selective antibodies which are directed against a virus component and which in turn are labeled with a dye molecule.
  • the marking is carried out via a specific binding pair or via cargo systems carried on the virus.
  • cargo systems are, for example, liposomes or polylysine-DNA complexes (E. Wagner et al. P.N.A.S 89 (1992) 6099.).
  • cargo systems can also e.g. contain other drugs.
  • the binding pair used is preferably biotin / streptavidin, biotin is preferably bound to viral protein (e.g. capsid protein) and the preferably dye is conjugated to streptavidin.
  • the fluorescent dye on the virus z. B. with the aid of a light source (preferably a laser, preferably a HeNe laser or a laser diode) through a microscope objective (expanded beam) and the fluorescence is collected with the same microscope objective and with a highly sensitive detector (in particular a CCD camera or an avalanche) Photodiode) detected [Farfield Excitation Imaging (T. Schmidt, GJ Schütz, W. Baumgartner, HJ. Gruber, H. Schindler. J. Phys. Chem.
  • suitable fluorescent dyes are dyes with good fluorescence properties, preferably in the long-wave green or in the red spectral range, which can be excited with a large absorption cross section and show high fluorescence quantum yield and high photo stability.
  • Dye used with particular preference according to the invention is notable for high fluorescence quantum yield, high photo stability, typically excitation in the green or red spectral range with a high absorption cross section and connectivity, e.g. B. covalently (JS Bartlett, R. Wucher, RJ Samulski. "Infectious Entry Pathway of Adeno-Associated Virus and Adeno-Associated Virus Vectors". Journal of Virology, Vol. 74 (2000) 2777) to a free N-terminal amino acid residue the capsid protein of a virus. Furthermore, site-specific mutagenesis can bring cysteine into a specific position of the capsid protein and there the dye can be specifically bound to the SH group.
  • Luminescent nanoparticles are known to the person skilled in the art and are described in the specialist literature (Bruchez M, Moronne M, Gin P, Weiss S, Alivisatos AP. Semiconductornanocrystals as fluorescent biological labeis ". Science 281 (1998) 2013-6).
  • the sample consists e.g. B. from monodisperse living cells that have grown on a slide. These are covered with a nutrient solution. At the beginning of the experiment, this is drawn off and replaced by a buffer solution (for example PBS), and then the virus solution is added as the start of the experiment.
  • a buffer solution for example PBS
  • the technique used in the method according to the invention is characterized in that the excitation takes place via a light source, preferably a laser, particularly preferably a simple HeNe laser or a laser diode.
  • a light source preferably a laser, particularly preferably a simple HeNe laser or a laser diode.
  • the excitation can also take place via a strong laser with the so-called two-photon excitation.
  • the excitation of two or more different fluorescent dyes is carried out simultaneously using different laser lines and using a frequency-variable laser.
  • the microscope used comprises different modes which enable the cell and its components to be displayed simultaneously or / and independently of the detection of the virus.
  • the cell can thus be displayed in the transmitted light method with its own light source and phase contrast, difference interference or polarization contrast techniques can be used.
  • a two-dimensional or three-dimensional representation of a cell takes place and this representation of the cell or its components takes place confocally or with methods that work with wide-field illumination. Detection of individual organelles or similar subunits of the cell is carried out in transmitted light mode and / or using fluorescence methods, with marked components.
  • the excitation takes place in the wide field method and the movement in the axial Z-dimension, if necessary, by regulating the relative movement of the sample / microscope objective, which automatically follows the movement of the virus based on the half-value width of the fluorescence signal.
  • selectively labeled subunits in viruses, biomolecules functionally interacting with viruses or viruses generated by expression in the cell of a subsequent generation are tracked separately from one another and / or the functional relationship of these units or molecules to one another or to Cell components is determined. For example, the breaking up of a virus into the components capsid and genome and the docking of a virus to a receptor of the cell membrane or a nuclear pore complex of the nuclear membrane can be followed.
  • Sections of the infection biology of the virus such as adsorption on receptors, endocytosis, diffusion in endosomes, free diffusion, abnormal diffusion, diffusion in corals or inclusions, active transport, for example by means of motor proteins, penetration of the nucleus, Ko lo ka li satio n with kern pore com mp lexes, breaking apart of the virus, introducing the genome into cellular DNA or production of viruses of the next generation under physiologically relevant conditions can be recognized and characterized separately from each other.
  • a microscope is used which has a device for fastening the specimen slide to the sample, which can be temperature-controlled. This makes it possible to carry out the method according to the invention at a desired predetermined temperature.
  • the sample preparation is particularly preferred here to carry out the sample preparation at approximately 4 ° C., that is to say at a temperature at which little changes in the virus / cell situation, which provides a good starting point for the subsequent observation.
  • the actual observation of the viral infection is then preferably carried out at a temperature of 37 ° C., which in turn largely corresponds to the physiological conditions.
  • the sample consists of cells, typically cells that have grown monodispersed on the sample carrier.
  • the cells are preferably under nutrient solution or buffer solution. Fluorescence-labeled viruses become visible through their fluorescence. This is typically separated from the excitation light by filters and detected with highly sensitive detectors, typically a CCD camera or avalanche photodiode.
  • the route of infection and / or the infection mechanism of viruses in cells observe what is particularly interesting for the observation of viruses which are intended as vectors and / or for gene therapy.
  • a method is used as described above for drug screening, and the virus or its induced secondary products are observed.
  • information about the infection route, the infection efficiency and the final location of the introduced nucleic acids can be obtained.
  • a comparison can also be made here between control samples to which additional substances have been added.
  • Substances which increase the permeability of the cell membrane or similar substances which are preferably used when using viruses as vectors and for gene therapy can also be used as substances.
  • the method according to the invention can also be used to screen for substances of this type which facilitate and make viral infection more efficient.
  • the method can also be used to determine such cargo systems and their connection to the virus, which, for example, can be successfully introduced into the cell or can be brought to specific cell locations. Any intended disintegration or detachment of the cargo system and / or its components can also be observed at special points within the cell.
  • the method according to the invention can also lead to the design of new pharmaceuticals, since information about the effects of substances on the viral infection can be obtained and, by combining knowledge about certain substances, new substances can be postulated which have advantageous properties.
  • other substances which show synergistic effects can be composed of substances classified according to the invention or parts thereof.
  • the method according to the invention one can also observe the route of infection of viruses or the route of induced secondary products of viruses in cells, the viruses encoding substances which can be expressed as a gene ferry and which are produced by the host cell as a result of the virus infection.
  • AAV Adeno-Associated Viruses
  • a standard fluorescence microscope is used as the fluorescence microscope.
  • An external laser in the example described a HeNe laser with 35 MW output power
  • a holographic notch filter in the present example a holographic notch filter from Kaiser HS 632.8
  • a conventional long-pass filter to separate the laser light.
  • bandpass filters can be used.
  • Detectors of high sensitivity are used to detect the fluorescent light. If you work with wide field lighting technology, you have to use a CCD camera with a highly sensitive chip. The time resolution of the CCD camera is variable, but should be at least 10 ms per image. The PentaMax from Princoten Instruments is used in this experiment.
  • Figure 1 apparatus for recording virus trajectories.
  • the experimental arrangement is shown schematically.
  • Cell images are recorded in transmitted light mode. This is also operated in the DIC or phase contrast method in order to be able to mark cell components.
  • Three-dimensional transmitted light images are possible in confocal mode. Cell compartments can be labeled with fluorophores and then viewed in the fluorescence mode of the confocal variant.
  • Trajectories are recorded in epifluorescence mode. This enables the recording of 2D projections of trajectories and the adjustment of the observation plane in z with the movement of the microscope objective in the direction of the virus particle (piezo-operated feedback mode).
  • the sample table is adjustable in pressure and temperature.
  • the microscope can be used in transmitted light mode to record cell images (1), in reflection mode to detect fluorescent objects, in particular the position of the virus via fluorescence of the label dye (2) and in reflection mode to generate fluorescence spectra to detect the label dye (3).
  • Detection is carried out with a commercial digital camera that delivers colored cell images (1), an intensified CCD camera that can detect individual dye molecules (2) or a spectrograph with a connected CCD (3).
  • the transmitted light mode (1) in any case comprises a simple, commercially available incident light option of an inverted microscope, which, however, should also be expandable by special lighting techniques such as phase contrast or differential interference contrast (DIC; shown here).
  • DIC differential interference contrast
  • the reflection mode (2) works primarily with wide-field illumination, in which area-to-area imaging takes place (shown here).
  • area-to-area imaging takes place (shown here).
  • the confocal mode of the microscope is completed by the installation of a piezo scanner, a detection pinhole and an avalanche photodiode. Fluorescent objects can be imaged three-dimensionally using the confocal technique in raster images composed of pixels.
  • selectively stainable cell components such as microtubules, actin filaments or intermediate filaments are thus represented.
  • Piezo control of the objective or the sample in the axial direction moves the projection plane of the wide-field illumination with the virus particle based on the half-width of the point transfer function of the signal via a control, whereby the actually two-dimensional image of the trajectory is recorded three-dimensionally within the cell can.
  • the reflection mode for spectra recording is used to identify the label dye (3). It enables the acquisition of spectra of both individual dye molecules and dye ensembles.
  • FIG. 2 Representation of the virus infection with SVT (left) and without (right). SVT tests the mechanisms of action of substances at all times and places of virus infection and quantifies the effect. Conventional methods only see whether an infection can be influenced or not without being able to deliver quantitative results. Details on how the method works in the appendix.
  • FIG. 3 trajectories of individual adeno-associated viruses (AAV) labeled with Cy5, which show the individual stages of virus infection of the virus in a living cell.
  • AAV adeno-associated viruses
  • the cell components can be determined from the phase contrast image, which is obtained with a commercial CCD camera (Nikon Coolpix) mounted on the binocular tube of the microscope in transmitted light mode. The trajectories are projected into the plane of the recorded cell sectional image.
  • the illustration contains various traces of viruses recorded one after the other. These show various stages of AAV infection, such as diffusion in aqueous solution (1, 2), touching on the cell membrane (2), penetration of the cell membrane (3), diffusion in the cytoplasm (3,4) and penetration of the cell membrane (4 ).
  • AAV-Cy5 virus solution was added in low concentration (10 9 mol I "1 ) to a DMEM cell culture medium from HeLa cells.
  • An area of 20 im * 20 im in which a cell was imaged was determined using the epifluorescence mode of the microscope using a Oil immersion lenses (100x Pian-Neofluar, NA 1.3, Zeiss) and a highly sensitive CCD camera (Pentamax, Visitron Systems).
  • red laser light HeNe with 633 nm
  • the autofluorescence of cells is small enough to enable the detection of individual fluorophores
  • the position of the virus molecules could be determined with an accuracy of 40 nm.
  • the trajectories here were recorded with a time resolution of 40 ms.
  • the brightness of the fluorescence spots of a trajectory can in the form of time traces (intensity-time diagrams) as shown in Figure 5.
  • Temporal fluctuation The fluorescence intensity shows blinking and photobleaching, i.e. temporary and permanent signal extinction, which typically indicates the detection of single molecules.
  • fluctuations occur that affect the Indicate movement of the molecule in the z direction. They go hand in hand with an increase in the half-width of a light spot. Cy5 molecules usually go through an average of 10 6 photo cycles in buffer / agarose gel until photo bleaching.
  • the excitation performance is optimized in such a way that sufficient signal for the detection of a fluorophore and at the same time the longest possible tracking of the virus molecule on a trajectory is possible up to photo bleaching.
  • a detection efficiency of approximately ä 1% and a fluorescence intensity per spot of several hundred counts, trajectories of on average 1-10 seconds could be obtained.
  • n touch was fitted with a sigmoid function.
  • FIG. 5 Endosomal migration and diffusion in the cytoplasm.
  • a, b Two series of fluorescence images show one and two fluorescence spots, respectively. Each of them shows a single AAV particle.
  • Time resolution: 40 ms. ce fluorescence time trace (1) of these spots from a and b (assignment by colors).
  • the plots show the characteristic blinking and single-stage photobleaching, which is typical for single molecules. Fluctuations in the time track show diffusive movement in the z direction.
  • f visualization of three trajectories projected onto a transmitted light image obtained with the conventional microscopic setup used for fluorescence images. The cell membrane and nucleus are marked in yellow and were both obtained with the phase contrast of the transmitted light mode.
  • h, i probability density pdD of the diffusion coefficients (determined in analogy to FIG. 4b).
  • the histograms show the distribution of the diffusion coefficients.
  • AAV uses an active transport mechanism (e.g. through microtubules of the cell). This can be distinguished from normal or anomalous diffusion with our microscopy.
  • a Five trajectories are projected onto the conventionally obtained transmitted light image. The core position was again marked in yellow and above Phase contrast recording determined. The two trajectories shown below run unidirectionally from right to left at different times on the same tracks.

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Investigating, Analyzing Materials By Fluorescence Or Luminescence (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Die vorliegende Erfindung betrifft Verfahren zur Identifizierung von als Arzneimittel für die Behandlung von Virusinfektionen geeigneten Stoffen, bzw. zur Prüfung ihrer Wirksamkeit. Weiter betrifft die vorliegende Erfindung die Anwendung eines entsprechenden Verfahrens zur Beobachtung des Infektionsweges oder/und -mechanismus von Viren in Zellen, insbesondere von Viren, welche als Genfähre zur Genexpression bzw. als Vektoren oder/und zur Gentherapie vorgesehen sind.

Description

Verfahren zur Identifizierung von als Arzneimittel für die Behandlung von Virusinfektionen geeigneten Stoffen bzw. zur Prüfung der Wirksamkeit solcher Stoffe
Beschreibung
Die vorliegende Erfindung betrifft Verfahren zur Identifizierung von als Arzneimittel für die Behandlung von Virusinfektionen geeigneten Stoffen, bzw. zur Prüfung ihrer Wirksamkeit. Weiter betrifft die vorliegende Erfindung die Anwendung eines entsprechenden Verfahrens zur Beobachtung des Infektionsweges oder/und -mechanismus von Viren in Zellen, insbesondere von Viren, welche als Genfähre zur Genexpression bzw. als Vektoren oder/und zur Gentherapie vorgesehen sind.
Der Nachweis und die Bekämpfung von Viren stellt in vielen Bereichen, insbesondere aber in der Medizin und der Biologie, eine wichtige Aufgabe dar. Viren treten in so verschiedenen Bereichen auf wie Vireninfektion (Eindringen der Viren in die lebende Zelle), Immunologie (Viren als Antigen bzw. Antigenerzeuger) und Genexpression bzw. Gentherapie (Viren als Gen-Shuttle). Häufig von besonderem Interesse ist der Nachweis möglichst kleiner Konzentrationen an Viren quasi bis zur ultimativen analytischen Nachweisgrenze, dem Nachweis eines einzelnen Virus.
Bisher wurden Viren z. B. indirekt durch ihre exprimierten Folgeprodukte nachgewiesen oder waren radioaktiv markiert. Versuche, Viren nachzuweisen, die durch Fluoreszenzfarbstoffe markiert waren, mussten aus Empfindlichkeitsgründen bisher beschränkt bleiben auf den Nachweis einer großen Ansammlung von Viren (J.S. Bartlett, R. Wucher, R.J. Samulski. "Infectious Entry Pathway of Adeno-Associated Virus and Adeno-Associated Virus Vectors". Journal of Virology, Vol. 74 (2000) 2777), die ferner häufig nicht nur mit einem Farbstoff, sondern mit vielen Farbstoffen pro Virus (P.L. Leopold, B. Ferris, I. Grinberg, S. Worgall, N.R. Hackett, R.G. Crystal. "Fluorescent Virions: Dynamic Tracking of the Pathway of Adenoviral Gene Transfer Vectors in Living Cells". Human Gene Therapy 9 (1998) 367) gelabelt waren.
Die Bekämpfung von Viren auf medizinischem Gebiet ist noch immer schwierig und erschöpft sich häufig in einer Stimulation und Unterstützung des Immunsystems. Es besteht daher nach wie vor ein Bedarf an Arzneimitteln, welche Virusinfektionen verhüten, mildern oder/und heilen können. Hierzu ist ein Angriff auf das Virus an allen Stellen des Infektionszyklus denkbar. Bisher fehlt es allerdings an spezifischen Möglichkeiten, Substanzen auf ihre Eignung zur Bekämpfung von Viren und zur Behandlung von viraien Infektionen zu testen, insbesondere die Wirkungsweise oder zumindest den Wirkort einer Substanz zu bestimmen. Für eine sinnvolle Arzneimittelidentifizierung und -Charakterisierung wäre es aber gerade von großem Vorteil, wenn dabei auch festgestellt werden könnte, in welchem Stadium der viraien Infektion ein bestimmter Stoff in den Zyklus eingreift. Dadurch würde es ermöglicht, Stoffe auch zielgerichtet zu verändern, um ihre diesbezüglichen Eigenschaften noch zu verstärken bzw. anzupassen.
Aufgabe der vorliegenden Erfindung war es daher, eine Möglichkeit bereitzustellen, die Identifizierung von Arzneimitteln zur Behandlung von viraien Infektionen durch ein Verfahren zu ermöglichen, welches dabei den Wirkort und die durch die Wirkung erzeugten Änderungen im Infektionszyklus erkennen lässt.
Die Aufgabe wird erfindungsgemäß gelöst durch ein Verfahren zur Identifizierung von als Arzneimittel für die Behandlung von Virusinfektionen geeigneten Stoffen bzw. zur Prüfung ihrer Wirksamkeit, bei dem man einzelne Viren mit einem oder mehreren Fluoreszenzfarbstoffmolekülen markiert und den Einfluss des Stoffs auf die Viren oder/und deren Infektionsweg nach Anregung mikroskopisch über die Fluoreszenz des Farbstoffs im Vergleich mit einer Kontrollprobe bestimmt.
Das erfinduhgsgemäße Verfahren stellt erstmals eine Möglichkeit bereit, den Weg eines einzelnen Virus in eine Zelle sowie die weitere Wanderung der Virusbestandteile innerhalb der Zelle zu verfolgen. Wird dies parallel für eine Probe, welcher eine Substanz zugefügt wird, deren Einfluss auf die Virusinfektion untersucht werden soll, und für eine Kontrollprobe durchgeführt, so lässt sich Aufschluss darüber erlangen, ob die Substanz den Infektionszyklus beeinflusst und an welcher Stelle eine solche Beeinflussung stattfindet. Mit Hilfe des erfindungsgemäßen Verfahrens, bei dem einzelne Viren mit nur einem oder mehreren, jedoch wenigen Fluoreszenzfarbstoffmolekülen markiert wird, ergeben sich folgende Vorteile:
a) das Virus wird durch das Anbinden eines einzigen Farbstoffmoleküls in seinen biolog ischen/physiologischen Eigenschaften, z. B . Virus/Rezeptorwechselwirkung, quasi nicht verändert im Gegensatz zur Anbindung von vielen Farbstoffen, wie dies gemäß Leopold (siehe oben) beschrieben ist,
b) nur geringe bis geringste Konzentrationen an Viren im Experiment sind notwendig, da bereits ein einzelnes Virus nachgewiesen werden kann (arbeiten mit physiologisch relevanten Konzentrationen bzw. geringsten und ungefährlichen Konzentrationen möglich),
c) Echtzeitbeobachtung eines einzelnen Virus mit hoher Zeit- und Ortsauflösung auch in der lebenden Zelle ist möglich.
d) Kinetische Studien und Statistiken von Folgeprozessen an einer Vielzahl einzelner Viren sind ohne Störungen durch Überlagerungserscheinungen, wie sie in einem Ensemble von Viren auftreten, möglich. Das erfindungsgemäße Verfahren erlaubt erstmals ein gezieltes Screening auf antiviral wirksame Substanzen, wobei selbst ein gewünschter Wirkort bzw. Wirkmechanismus als Bestimmungskriterium postuliert werden kann. Mit Hilfe des erfindungsgemäßen Verfahrens können Trajektorien einzelner Viren visualisiert werden, was zur Enthüllung mechanistischer Details des Infektionszyklus beiträgt. So können die einzelnen Schritte einer Virusinfektion einer lebenden Zelle, wie das Andocken an Rezeptoren an der Zellmembran, das Durchdringen der Zellmembran, Diffusion oder aktiver Transport im Cytoplasma oder das Eindringen in den Zellkern sowie Deposition der viraien DNA im Zellkern erstmals detailliert und unter physiologischen Bedingungen beobachtet werden. Die Zugabe von zu untersuchenden Substanzen und ihre Auswirkungen auf die Virusinfektion lassen sich dabei genau beobachten.
Das erfindungsgemäße Verfahren basiert auf der Erfassung von einzelnen Viren mit Hilfe der Einzelmolekülfluoreszenztechnik.
In der klassischen Fluoreszenzmikroskopie des Standes der Technik war es bisher aufgrund von Empfindlichkeitsproblemen nur möglich, hohe Konzentrationen von Viren (105 bis 106 Viren pro Zelle) und/oder häufig zusätzlich großer Anzahl von Fluoreszenzmarkierungen pro Virus sichtbar zu machen. Dies brachte die folgenden Probleme mit sich: -unphysiologische Bedingungen durch 105 bis 106 Viren je Zelle, es erfolgt eine Schädigung der Zelle; -Störung der Virus-Zellwechselwirkung durch hohen Markierungsgrad des Virus;
-eine Visualisierung der Infektion ist nur als Anreicherung einer großer Zahl von Viren mit schlechter Zeit- und Ortsauflösung möglich gewesen; - es erfolgt eine starke Beeinträchtigung der kinetischen Studien durch Überlagerungseffekte der Virenanreicherung;
-es erfolgt häufig eine extreme Verschiebung der zeitlichen Detektion der einzelnen Infektionsschritte, -eine Bestimmung des Einflusses eines Wirkstoffes unter den genannten Einschränkungen war bestenfalls als summarischer Effekt festzustellen, eine Lokalisation des Wirkortes eines Wirkstoffes war nicht möglich.
Obwohl bereits Verfahren beschrieben wurden, in denen einzelne Moleküle markiert wurden, konnte bisher eine Beobachtung des gesamten Infektionsweges eines Virus noch nicht stattfinden.
Gerade die Internalisierung und die intrazelluläre Bewegung eines Virus in lebenden Zellen sind jedoch von grundlegender Bedeutung für das Verständnis des Ablaufs von viraien Infektionen, das Design von antiviralen Wirkstoffen und auch die Entwicklung von Viren als Genfähre zur Genexpression bzw. die Vektorentwicklung für die Gentherapie.
Das erfindungsgemäße Verfahren ist dadurch gekennzeichnet, dass das einzelne Virus mit einem oder mehreren Fluoreszenzfarbstoffmolekülen gelabelt ist und sich über die Fluoreszenz verfolgen lässt. Das Verfahren lässt sich daher für alle möglichen Einsätze an Viren anwenden, bei denen es darauf ankommt, hohe bis höchste analytische Empfindlichkeit zu erzielen, insbesondere zum Nachweis einzelner Viren.
Das Verfahren zum Erfassen von einzelnen Viren ermöglicht insbesondere die Erfassung von Viren auf ihrem Infektionsweg in eine lebende Zelle. Das Virus wird sichtbar im Mikroskop durch einen Fluoreszenzpunkt, der mit einer räumlichen Auflösung von 1 bis 40 nm in Echtzeit und mit einer Zeitauflösung von 1 bis 40 ms verfolgt werden kann.
Das Verfahren erlaubt den Nachweis a) bereits eines einzelnen Virus b) das nur mit einem Farbstoff gelabelt ist und damit an seiner Oberfläche quasi nicht verändert ist und seine biochemischen/physiologischen
Eigenschaften weitestgehend behält c) und stellt damit die ultimative Nachweisgrenze für ein Virus in der medizinischen und biochemischen Analytik dar. Dadurch lassen sich z. B. Mechanismen des Eindringens von Viren in die lebende Zelle mit höchster analytischer Auflösung nachweisen. Ebenso lassen sich damit Gegenmittel/Methoden zur Abwehr des Eindringens von Viren in die Zelle mit höchster Präzision testen. Des weiteren lässt sich das Verhalten von Viren wie z. B. ihre Selektivität bezüglich des Eintritts in bestimmte Zellen sowie entsprechende Abwehrmaßnahmen dagegen erkennen. d) All dies lässt sich mit hoher Orts- und Zeitauflösung auch in der lebenden Zelle in Echtzeit verfolgen.
Die Detektionsempfindlichkeit im erfindungsgemäßen Verfahren ist derart, dass bereits ein einziges Fluoreszenzfarbstoff molekül nachgewiesen werden kann. Somit muss das Virus lediglich mit einem (oder mehreren, aber wenigen, vorzugsweise 2 bis 3) Farbstoffmolekülen gelabelt sein, um als einzelnes Virus bereits nachweisbar zu sein. Der Vorteil davon besteht darin, dass die Oberfläche des Virus durch die minimale Labelung quasi nicht verändert wird und das Virus seine biologischen/physiologischen Eigenschaften beibehält.
Die im erfindungsgemäßen Verfahren eingesetzten Fluoreszenzfarbstoffe werden an das Virus gebunden, in einer bevorzugten Ausführungsform an N-terminale Aminosäurereste der Kapsidproteine des Virus. Auch die Bindung an mit Cystein site-spezifisch mutierte Proteine ist eine erfindungsgemäß bevorzugte Möglichkeit.
Ferner können auch mindestens 2 spektral, durch Lebensdauer, durch Polarisationsspektroskopie oder durch (Förster Resonanz) Energie-Transfer- Experimente unterscheidbare Farbstoffe an verschiedene Bereiche des Virus gebunden werden. So kann z.B. Farbstoff 1 an das Kapsid und Farbstoff 2 an die DNA des Virus gebunden werden. Dies erlaubt später z.B. die Verfolgung der Trennung von Kapsid und DNA des Virus. In einer weiteren bevorzugten Ausführungsform wird das oder die Farbstoffmoleküle an die virale DNA oder an interne Proteine gebunden.
Die Bindung von Farbstoffmolekülen kann prinzipiell direkt erfolgen, kann jedoch auch über selektive Antikörper erfolgen, welche gegen einen Virusbestandteil gerichtet sind und ihrerseits mit einem Farbstoffmolekül markiert sind. In einer weiteren bevorzugten Ausführungsform wird die Markierung über ein spezifisches Bindepaar vorgenommen, oder über an dem Virus transportierte Cargo-Systeme. Derartige Cargo-Systeme sind beispielsweise Liposomen oder Polylysin-DNA-Komplexe (E. Wagner et al. P.N.A.S 89 (1992) 6099.). Solche Cargosysteme können außer DNA auch z.B. andere Arzneistoffe enthalten.
Bei Einsatz eines spezifischen Bindepaares wird ein Virusteil mit einem Partner des Bindepaares verbunden, die Markierung befindet sich dann am anderen Partner des Bindepaares. Bei Zusammentreffen beider Komponenten ergibt sich eine Ausbildung eines Komplexes der beiden Partner des Bindepaares und damit eine Markierung des Virus. Als Bindepaar wird vorzugsweise Biotin/Streptavidin verwendet, es ist dabei Biotin vorzugsweise an virales Protein (z.B. Kapsid-Protein) gebunden und der vorzugsweise Farbstoff mit Streptavidin konjugiert.
Im Rahmen der vorliegenden Erfindung wird eine sehr einfache Methode beschrieben, mit der einzelne Viren, die mit einem Fluoreszenzfarbstoff gelabelt sind, mit Hilfe von Einzelmolekülfluoreszenzmikroskopie nachgewiesen werden. Dazu wird der Fluoreszenzfarbstoff an dem Virus z. B. mit Hilfe einer Lichtquelle (bevorzugt einem Laser, bevorzugt einem HeNe-Laser oder einer Laserdiode) durch ein Mikroskopobjektiv (aufgeweiteter Strahl) angeregt und die Fluoreszenz mit demselben Mikroskopobjektiv eingesammelt und mit einem hochempfindlichen Detektor (insbesondere einer CCD-Kamera oder einer Avalanche-Fotodiode) nachgewiesen [Farfield Excitation Imaging (T. Schmidt, G.J. Schütz, W. Baumgartner, HJ. Gruber, H. Schindler. J. Phys. Chem. 99 (1 995) 17262.)]. Auch andere Verfahren der Einzelmolekültechnik lassen sich dazu anwenden, so z. B. Scanning Confocal Microscopy (J.J. Macklin, K. Trautman, T.D. Harris, L.E. Brus. Science 272 (1996) 255.), Total Internal Reflection Imaging/Evanescent Field (T. Funatsu, Y. Harada, M. Tokunaga, K. Saito, T. Yanagida. Nature 374 (1995) 555.), Scanning Nearfield Optical Microscopy (E. Betzig, R.J. Chichester. Science 262 (1993) 1422.), Photon Burst Detection (R.A. Keller et al. Appl. Spectrosc. 50 (1996) A12.) und Fluorescence Correlation Spectroscopy (M. Eigen, R. Rigler. Proc. Natl. Acad. Sei. U.S.A. 91 (1994) 5740.) bzw. deren Kombinationen.
Als Fluoreszenzfarbstoffe in Frage kommen erfindungsgemäß Farbstoffe mit guten Fluoreszenzeigenschaften, vorzugsweise im langwelligen grünen oder im roten Spektralbereich, welche mit großem Absorptionsquerschnitt anregbar sind und hohe Fluoreszenzquantenausbeute und hohe Fotostabilität zeigen.
Erfindungsgemäß besonders bevorzugt verwendete Farbstoff zeichnet sich aus durch hohe Fluoreszenzquantenausbeute, hohe Fotostabilität, typischerweise Anregung im grünen oder roten Spektralbereich mit hohem Absorptionsquerschnitt und Anbindbarkeit, z. B. kovalent (J.S. Bartlett, R. Wucher, R.J. Samulski. "Infectious Entry Pathway of Adeno-Associated Virus and Adeno-Associated Virus Vectors". Journal of Virology, Vol. 74 (2000) 2777) an einen freien N-terminalen Aminosäurerest des Kapsidproteins eines Virus. Ferner kann durch site-spezifische Mutagenese Cystein in eine bestimmte Position des Kapsidproteins gebracht werden und dort der Farbstoff spezifisch an die SH-Gruppe gebunden werden. Auch die Anbindung von z.B. zwei verschiedenen Farbstoffen an zwei verschiedenen Positionen (z.B. Kapsid und DNA des Virus) ist möglich. Erfindungsgemäß geeignet sind klassische organische Fluorophoren, wobei besonders erfolgreich die Experimente mit Cy5 (Copyright Amersham) (Farbstoff geschützt) durchgeführt werden können.
Neben solchen organischen Fluorophoren können jedoch auch exprimierbare fluoreszierende Proteine, wie das Grün Fluoreszierende Protein (Green Fluorescent Protein, GFP) und seine Mutanten oder lumineszierende Nanopartikel eingesetzt werden. Lumineszierende Nanopartikel sind dem Fachmann bekannt und in der Fachliteratur (Bruchez M, Moronne M, Gin P, Weiss S, Alivisatos AP. Semiconductornanocrystals as fluorescent biological labeis". Science 281 (1998) 2013-6) beschrieben.
Die Probe besteht z. B. aus monodispersen lebenden Zellen, die auf einen Objektträger angewachsen sind. Diese sind überschichtet mit einer Nährlösung. Zu Beginn des Experimentes wird diese abgezogen und durch eine Pufferlösung (z. B. PBS) ausgetauscht, und anschließend wird die Virenlösung als Start des Experimentes zugegeben.
Die im erfindungsgemäßen Verfahren angewandte Technik ist dadurch gekennzeichnet, dass die Anregung über eine Lichtquelle, bevorzugt einen Laser, besonders bevorzugt einen einfachen HeNe-Laser oder eine Laserdiode, erfolgt. Die Anregung kann allerdings im Rahmen der vorliegenden Erfindung auch über einen starken Laser mit der sogenannten Zweiphotonenanregung erfolgen.
Es ist des Weiteren bevorzugt, dass die Anregung zweier oder mehrerer verschiedener Fluoreszenzfarbstoffe gleichzeitig unter Verwendung verschiedener Laserlinien sowie unter Einsatz eines frequenzvariablen Lasers erfolgt.
Das. Licht wird in einem Mikroskop bzw. Mikroskopobjektiv (auch konfokales Mikroskop) gebündelt und auf die Probe geworfen. Es ist im Rahmen der vorliegenden Erfindung wiederum bevorzugt, dass das verwendete Mikroskop verschiedene Modi umfasst, die die Darstellung der Zelle und ihrer Bestandteile gleichzeitig oder/und unabhängig von der Detektion des Virus ermöglichen. So kann die Darstellung der Zelle im Durchlichtverfahren mit eigener Lichtquelle erfolgen und es können Phasenkontrast-, Differenz-Interferenz- oder Polarisationskontrasttechniken verwendet werden.
Im Rahmen der vorliegenden Erfindung ist es weiter bevorzugt, dass eine Zwei- oder Dreidimensionaldarstellung einer Zelle erfolgt und diese Darstellung der Zelle bzw. ihrer Bestandteile konfokal oder mit Verfahren, die mit Weitfeldbeleuchtung arbeiten, erfolgt. Die Detektion einzelner Organellen oder ähnlicher Untereinheiten der Zelle erfolgt im Durchlichtmodus und/oder über Fluoreszenzverfahren, dabei mit markierten Bestandteilen.
Bei der zweidimensionalen Verfolgung der Bewegung von Viren erfolgt die Anregung im Weitfeldverfahren und die Verfolgung der Bewegung in axialer Z-Dimension falls notwendig durch Regelung der Relativbewegung Probe/Mikroskopobjektiv, die der Bewegung des Virus automatisch anhand der Halbwertsbreite des Fluoreszenzsignals folgt.
Im Rahmen der vorliegenden Erfindung ist es wiederum bevorzugt, dass selektiv markierte Untereinheiten in Viren, funktioneil mit Viren wechselwirkende Biomoleküle bzw. durch Expression in der Zelle erzeugte Viren einer Folgegeneration untereinander separat verfolgt werden oder/und die funktionelle Beziehung dieser Einheiten oder Moleküle zueinander oder zu Zellbestandteilen ermittelt wird. So kann z.B. das Aufbrechen eines Virus in die Bestandteile Kapsid und Genom sowie das Andocken eines Virus an einen Rezeptor der Zellmembran oder einen Kernporenkomplex der Kernmembran verfolgt werden. Es können dabei Abschnitte der Infektionsbiologie des Virus, wie die Adsorption an Rezeptoren, Endozytose, Diffusion in Endosomen, freie Diffusion, anormale Diffusion, Diffusion in Korallen bzw. Einschlüssen, aktiver Transport, z.B. mittels Motorproteinen, Durchdringen der Ke rn me mb ra n , Ko l o ka l i satio n mit Kern p o ren ko mp l exen , Auseinanderbrechen des Virus, Einschleusen des Genoms in zelluläre DNA oder Produktion von Viren der Folgegeneration unter physiologisch relevanten Bedingungen separat voneinander erkannt und charakterisiert werden. In einer weiteren bevorzugten Ausführungsform der Erfindung wird ein Mikroskop verwendet, welches eine Vorrichtung zur Befestigung des Objektträgers mit der Probe aufweist, welche temperierbar ist. Hierdurch wird es ermöglicht, das erfindungsgemäße Verfahren bei einer gewünschten vorbestimmten Temperatur durchzuführen. Besonders bevorzugt ist es hierbei, die Probenvorbereitung bei ca. 4 °C durchzuführen, bei einer Temperatur also, bei der sich an der Virus/Zellsituation wenig verändert, wodurch sich ein guter Ausgangspunkt für die nachfolgende Beobachtung ergibt. Die tatsächliche Beobachtung der viraien Infektion erfolgt dann vorzugsweise bei einer Temperatur von 37 °C, welche wiederum den physiologischen Bedingungen weitgehend entspricht.
Die Probe besteht aus Zellen, typischerweise aus Zellen, die flächig (monodispers) auf den Probenträger angewachsen sind. Die Zellen befinden sich vorzugsweise unter Nährlösung bzw. Pufferlösung . Fluoreszenzgelabelte Viren werden durch ihre Fluoreszenz sichtbar. Diese wird typischerweise durch Filter vom Anregungslicht getrennt und mit hochempfindlichen Detektoren, typischerweise einer CCD-Kamera oder Avalanche-Fotodiode, nachgewiesen.
Im Rahmen der vorliegenden Erfindung ist es auch möglich, den Infektionsweg oder/und den Infektionsmechanismus von Viren in Zellen zu beobachten, was insbesondere interessant ist für die Beobachtung von Viren, die als Vektoren und/oder zur Gentherapie vorgesehen sind. Hierbei wird ein Verfahren, wie es oben analog für das Arzneimittelscreening beschrieben ist, angewendet und das Virus bzw. seine induzierten Folgeprodukte beobachtet. Hierbei kann wiederum Aufschluss über den Infektionsweg, die Infektionseffizienz und die letztendliche Lokalisation der eingebrachten Nukleinsäuren gewonnen werden. Selbstverständlich kann auch hierbei ein Vergleich zwischen Kontrollproben, denen zusätzlich weitere Substanzen zugesetzt wurden, stattfinden. Als Substanzen können hierbei auch derartige zum Einsatz kommen, welche die Durchlässigkeit der Zellmembran erhöhen, oder ähnliche Substanzen, welche vorzugsweise bei Verwendung von Viren als Vektoren und zur Gentherapie eingesetzt werden. Auch das Screening auf derartige Substanzen, welche eine virale Infektion erleichtern und effizienter machen, kann mit Hilfe des erfindungsgemäßen Verfahrens erfolgen. Das Verfahren kann auch Verwendung finden zur Ermittelung solcher Cargo-Systeme und deren Anbindung an das Virus, die z.B. erfolgreich in die Zelle eingeschleust werden können bzw. an bestimmte Zellorte gebracht werden können. Auch kann ein evtl. beabsichtigtes Auflösen oder Abhängen des Cargo-Systems und/oder seiner Bestandteile an besonderen Stellen innerhalb der Zelle beobachtet werden.
Schließlich kann das erfindungsgemäße Verfahren auch zum Design neuer Arzneimittel führen, da Aufschluss über die Einflüsse von Substanzen auf die virale Infektion gewonnen werden können und durch Kombination von Erkenntnissen über bestimmte Substanzen neue Stoffe postuliert werden können, welche vorteilhafte Eigenschaften aufweisen. Insofern können aus erfindungsgemäß als wirksam eingestuften Substanzen oder Teilen davon weitere Substanzen zusammengesetzt werden, welche synergistische Effekte zeigen. Beim erfindungsgemäßen Verfahren kann man auch den Infektionsweg von Viren oder den Weg von induzierten Folgeprodukten von Viren in Zellen beobachten, wobei die Viren als Genfähre exprimierbare Substanzen codieren, die von der Wirtszelle in der Folge der Virusinfektion produziert werden.
Das folgende Beispiel und die Abbildungen sollen die Erfindung weiter erläutern.
Beispiel 1
Im Beispiel der Beobachtung des Infektionsweges von Adeno-Associated Viruses (AAV) in HeLa-Zellen wurde folgendes beobachtet:
1 .) Die Diffusionsbewegung eines einzelnen Virus wurde außerhalb der Zellmembran mit einer örtlichen Auflösung von 40 nm verfolgt. Solange der Virus von der Zellmembran weiter entfernt ist, beobachtet man einen Diffusionskoeffizienten wie in Lösung. Bei einer Annäherung an die Zellmembran wird die Diffusion zusehends langsamer und kommt schließlich an der Zellmembran zum Stillstand (Adsorption des Virus am Rezeptor).
2.) Diffusionsbewegung des Virus nach Endozytose im Zytoplasma der Zelle. Beobachtung der Diffusionsbewegung des Endosoms mit sehr viel kleinerem Diffusionskoeffizienten als Virus in Lösung. Anschließend Freisetzung des Virus aus dem Endosom.
3.) Eindringen des Virus in den Zellkern und Bewegung im Zellkern mit Ablage der DNA. In allen drei Phasen wird das Virus als örtlicher Fluoreszenzpunkt (durch das angebundene Fluoreszenzmolekül sichtbar gemacht) mit einer örtlichen Auflösung von ca. 40 mn detektiert.
Als Fluoreszenzmikroskop wird ein Standardfluoreszenzmikroskop verwendet. Als Lichtquelle wird ein externer Laser (im beschriebenen Beispiel ein HeNe-Laser mit 35 MW Ausgangsleistung) verwendet. Um möglichst hohe Detektionseffizienzen erzielen zu können, empfiehlt sich der Einsatz eines Inversionsobjektivs mit hoher numerischer Apertur. Zum Abtrennen des Laserlichtes wird ein holografischer Notch-Filter (im vorliegenden Beispiel ein holografischer Notch-Filter der Firma Kaiser HS 632,8) in Kombination mit einem herkömmlichen Langpassfilter verwendet. Alternativ dazu kann mit Bandpassfiltern gearbeitet werden.
Zur Detektion des Fluoreszenzlichtes werden Detektoren von hoher Sensitivität (Quantenausbeute > 40 %) eingesetzt. Arbeitet man mit der Weitfeldbeleuchtungstechnik, muss man eine CCD-Kamera mit hochempfindlichem Chip einsetzen. Die Zeitauflösung der CCD-Kamera ist variabel, sollte aber mindestens 10 ms je Bild betragen. Im vorliegenden Experiment wird die PentaMax der Firma Princoten Instruments verwendet.
Figur 1 Apparatur zur Aufnahme von Viren-Trajektorien. Dargestellt ist die Versuchsanordnung schematisch. Die Aufnahme von Zellbildern erfolgt im Durchlicht-Modus. Dieser wird auch im DIC-oder Phasenkontrastverfahren betrieben, um Zellbestandteile markieren zu können. Dreidimensionale Durchlichtaufnahmen sind im konfokalen Modus möglich. Zellkompartimente können mit Fluorophoren markiert und dann auch im Fluoreszenzmodus der konfokalen Variante betrachtet werden. Die Aufnahme von Trajektorien erfolgt im Epifluoreszenzmodus. Dieser ermöglicht die Aufnahme von 2D-Projektionen von Trajektorien und die Verstellung der Beobachtungsebene in z mit der Bewegung des Mikroskopobjektivs in Richtung des Viruspartikels (Piezobetriebener rückgekoppelter Modus). Der Probentisch ist in Druck und Temperatur regulierbar.
Das Mikroskop kann im Durchlichtmodus zur Aufnahme von Zellbildern (1 ), im Reflexionsmodus zur Detektion fluoreszierender Objekte, insbesondere der Position des Virus via Fluoreszenz des Labelfarbstoffs (2) und im Reflexionsmodus zur Generierung von Fluoreszenzspektren zum Nachweis des Labelfarbstoffs (3) bedient werden.
Die Detektion erfolgt dabei mit einer kommerziellen Digitalkamera, die farbige Zellbilder liefert (1 ), einer intensivierten CCD-Kamera, die einzelne Farbstoffmoleküle nachweisen kann (2) bzw. einem Spektrographen mit angeschlossener CCD (3).
Der Durchlichtmodus (1) umfasst in jedem Fall eine einfache, kommerziell übliche Auflichtoption eines invertierten Mikroskops, die aber auch um spezielle Beleuchtungstechniken, wie Phasenkontrast oder Differenz- Interferenz-Kontrast (DIC; hier dargestellt) erweiterbar sein soll. Damit werden Zellbestandteile wie der Zellkern selektiv und dreidimensional in den Abbildungen hervorgehoben. Der Reflexionsmodus (2) arbeitet primär mit Weitfeld-Beleuchtung, bei der eine Flächen-zu-Flächenabbiidung erfolgt (hier dargestellt). Durch Verkleinerung der variablen Blende im Anregungsstrahlengang kann eine Punkt-zu-Punkt-Abbildung erreicht werden, wie sie in der konfokalen Mikroskopie üblich ist. Der konfokale Modus des Mikroskops wird durch den Einbau eines Piezoscanners, eines Detektionspinholes und einer Avalanche Fotodiode vervollständigt. Fluoreszierende Objekte können durch die konfokale Technik in aus Bildpunkten zusammengesetzten Rasterbildern dreidimensional abgebildet werden. Damit werden insbesondere selektiv anfärbbare Zellbestandteile, wie Mikrotubuli, Actinfilamente oder lntermediärfilamente dargestellt.
Durch Piezo-Steuerung des Objektives bzw. der Probe in axialer Richtung (nicht eingezeichnet) wird über eine Regelung die Projektionsebene der Weitfeldbeleuchtung mit dem Viruspartikel anhand der Halbwertsbreite der Punktübertragungsfunktion des Signals mitbewegt, wodurch die eigentlich zweidimensionale Abbildung der Trajektorie dreidimensional innerhalb der Zelle aufgezeichnet werden kann.
Zur Identifizierung des Labelfarbstoffes dient der Reflexionsmodus zur Spektrenaufnahme (3). Er ermöglicht die Aufnahme von Spektren sowohl von einzelnen Farbstoffmolekülen wie von Farbstoffensembles.
Figur 2 Darstellung der Virusinfektion mit SVT(links) und ohne (rechts). SVT testet die Wirkmechanismen von Substanzen zu allen Zeiten und Orten der Virusinfektion und quantifiziert die Wirkung. Konventionelle Methoden sehen nur, ob sich eine Infektion beeinflussen lässt oder nicht, ohne quantitative Ergebnisse liefern zu können. Details zur Wirkungsweise der Methode im Anhang. Figur 3 Trajektorien einzelner mit Cy5 gelabelter Adeno-assoziierter Viren (AAV), die die einzelnen Stufen der Virusinfektion des Virus in eine lebende Zelle zeigen.
Die Zellbestandteile können aus der Phasenkontrastaufnahme, die mit einer am Binokulartubus des Mikroskops montierten kommerziellen CCD-Kamera (Nikon Coolpix) im Durchlichtmodus erhalten wird, bestimmt werden. Die Trajektorien werden in die Ebene des aufgenommenen Zellschnittbildes projiziert. Die Abbildung beinhaltet verschiedene hintereinander aufgezeichnete Spuren von Viren. Diese zeigen verschiedene Stationen der AAV Infektion, wie Diffusion in wässriger Lösung (1 ,2), Touching an der Zellmembran (2), Durchdringen der Zellmembran (3), Diffusion im Zytoplasma (3,4) and Durchdringen der Zellkern-Membran (4).
AAV-Cy5 Virus Lösung wurde in geringer Konzentration (109 mol I"1) einem DMEM Zellkulturmedium von HeLa Zellen zugegeben. Eine Fläche von 20 im * 20 im, in der eine Zelle abgebildet war, wurde mit dem Epifluorescenzmodus des Mikroskops unter Verwendung eines Ölimmersionsobjektivs (100x Pian-Neofluar, NA 1.3, Zeiss) und einer hochsensitiven CCD Camera (Pentamax, Visitron Systems) aufgenommen. Unter Anregung mit rotem Laserlicht (HeNe mit 633 nm) ist die Autofluoreszenz von Zelllen klein genug, um die Detektion einzelner Fluorophore als gaußförmige Lichtpunkte (Fluoreszenzspots) zu ermöglichen. Mit Hilfe eines 2D Gauss-Fits des Intensitäts-Profils konnte die Positionsbestimmung der Virusmoleküle auf 40 nm genau durchgeführt werden. Die Trajektorien hier wurden mit einer Zeitauflösung von 40 ms aufgezeichnet. Die Helligkeit der Fluoreszenzspots einer Trajektorie kann in Form von Zeitspuren (Intensitäts-Zeit-Diagrammen) wie in Figur 5 dargestellt werden. Zeitliche Fluktuationen der Fluoreszenz-Intensität zeigen Blinking und Photobleaching, also temporäres und permanentes Signal-Erlöschen, was typischerweise auf die Detektion von Einzelmolekülen hindeutet. Daneben treten Fluktuationen auf, die auf die Bewegung des Moleküls in z-Richtung hindeuten. Sie gehen mit einer Vergrößerung der Halbwertsbreite eines Lichtspots einher. Cy5 Moleküle durchlaufen üblicherweise in Puffer/Agarose Gel im Mittel 106 Photozyklen bis zum Photobleaching. In den hier dargestellten Experimenten wird die Anregungsleistung so optimiert, daß genügend Signal zur Detektion eines Fluorophors und zugleich eine möglichst lange Verfolgung des Virusmoleküls auf einer Trajektorie bis zum Photobleaching möglich ist. Mit einer Detektionseffizienz von etwa ä = 1 % und einer Fluoreszenz-Intensität per Spot von einigen hundert Counts konnten Trajectorien von im Mittel 1-10 Sekunden erhalten werden.
Figure 4 Aufnahme von Cy5 gelabeltem AAV in eine lebende HeLa Zelle
a, "Touching events" an der Zellmembran. Die Trajektorie 2 aus Fig. 3. ist vergrößert dargestellt
Sie zeigt 5 Touches an der Zelloberfläche. Diese sind mit Kreisen markiert und repräsentieren kurze vorübergehende Perioden der Immobilität.
b, Der Mittelwert solcher Touching-Serien < nTouch> wurde für solche VirenTrajektorien bestimmt, die kein Eindringen in die Zelle und ein Rückdiffundieren in die freie Lösung hinein zeigten. Der Statistik liegen 269 Trajektorien zu Grunde. Die Häufigkeitsverteilung ist in grauen Balken dargestellt.
Die akkumulierte Häufigkeit von nTouch wurde mit einer sigmoiden Funktion gefittet Die Ableitung dieser Funktion wurde normiert und als Wahrscheinlichkeitsdichtefunktion pdnTouch (schwarze Punkte) dargestellt. Sie konnte mit einer Gauß-Funktion gefittet werden (rote Linie). Der Mittelwert aus diesem Fit ergab sich zu < nTouch> = 4.4 ± 3.1. Das Modell für die Statistische auswertung dieser' ouches" an der Zelloberfläche ist insertiert in b dargestellt, (Berg, H. C. Random walks in biology (Princeton (NJ), 1993). Die Zelle wird hierin als Kugelschale mit Radius r = a betrachtet. Partikel, die bei r = b starten, bewegen sich mit der Rate kin nach innen oder nach außen mit kout. Die Wahrscheinlichkeit p für Touching an der Kugelschale ist p = kin/(kin + kout) = a/b. Der Mittelwert kann zu < nTouch> = 5 bestimmt werden falls die Dimensionen für a und b gemäß den Experimentellen Randbedingungen (a = 5 im; b = 6 im) gewählt werden.
c, d, Verteilung der Adsorptions-Zeiten für 137 Trajektorien, die kein Eindringen in die Zelle zeigten (c) und für 42 Trajektorien, die ein Eindringen zeigen (d).
Dargestellt sind die Häufigkeitsverteilungen (Balkendiagramme) von Adsorptionszeiten in Virustrajektorien. Aus den akkumulierten Häufigkeiten (nicht dargestellt) wurden wiederum Wahrscheinlichkeitsdichtefunktionen pdt gebildet (schwarze Punkte). Aus den Gauß-Fits (rote Linien) dieser Kurven erhielt man Mittelwerte <t> = 83 ± 7 ms (c), bzw. <t> = 80 ± 1 1 ms (d), die keinen signifikanten Unterschied zwischen Eindringen und Nicht-Eindringen in die Zelle zeigten.
Figure 5 Endosomale Wanderung und Diffusion im Zytoplasma. a, b, Zwei Serien von Fluoreszenzbildern zeigen einen bzw. zwei Fluoreszenz Spots. Jeder davon zeigt ein einzelnes AAV Partikel. Zeitauflösung: 40 ms. c-e, Fluoreszenzzeitspur (1 ) dieser Spots aus a und b (Zuordnung durch Farben). Die Plots zeigen das characteristische Blinking und einstufige Photobleaching, das für Einzelmoleküle typisch ist. Fluktuationen der Zeitspur zeigen diffusive Bewegung in z-Richtung. f, Visualisierung von drei Trajektorien projiziert auf ein Durchlichtbild, das mit dem konventionellen mikroskopischen Setup, wie es für Fluoreszenzaufnahmen verwendet wird, erhalten wurde. Zellmembran and Zellkern sind gelb markiert und wurden beide mit dem Phasenkontrast des Durchlichtmodus erhalten.
g, Darstellung von Mean Square Displacement als Funktion der Zeit. Die magentafarbene Kurve resultiert in einem Diffusionskoeffizienten von D = 1 ,5 im2/S, der auf freie Diffusion von freiem AAV im Zellplasma hindeutet. Die grüne and gelbe Kurve zeigen Bewegungen von to Endosomen. Einmal in normaler Diffusion (D = 0,55 im2/s grün) and einmal mit anomaler diffusion (D = 0,2 im2/s, a = 0,6 gelb).
h, i, Wahrscheinlichkeitsdichte pdD der Diffusionskoeffizienten (ermittelt in Analogie zu Figur 4b). Die Histogramme zeigen die Verteilung der Diffusionskoeffizienten.
Aus 53 trajectories bei pH = 7 (h) und 10 trajectories bei pH = 9 (i) wurden die beiden Graphen erhalten. Bei pH = 7 findet man zwei Maxima, die dem freien Virus (D = 1 ,3 im2/s) und dem Endosom (D = 0,57 im2/s) zugeordnet werden können. Das zweite Maximum ist ähnlich dem Maximum, das bei pH = 9 auftritt (D = 0,64 im2/s), wo nur das Endosom in der Zelle vorhanden sein kann.
Figure 6 Transport von AAV-Cy5 in der Kernregion.
Auf dem Weg in den Zellkern hinein und Teilweise auch innerhalb des Zellkerns bedient sich AAV eines aktiven Transportmechanismuses (z.B. durch Mikrotubuli der Zelle). Dieser kann mit unserer Mikroskopie von normaler oder anomaler Diffusion unterschieden werden.
a. Fünf Trajektorien sind auf das koventionell erhaltene Durchlichtbild projiziert. Die Kernposition wurde wiederum gelb markiert und über Phasenkontrastauf nahmen bestimmt. Die beiden unten dargestelltenTrajektorien laufen auf denselben Bahnen unidirektional von rechts nach links zu verschiedenen Zeiten. b, Mean Square Displacement als Funktion der Zeit. Der Funktionsverlauf ist parabolisch und genügt der Gleichung <r2> = 4Dt + (vt)2. Es treten Diffusionskoeffizienten von D = 0,25 -0,35 im2/s und Geschwindigkeiten von v = 0,2 -1 ,4 im/s auf.

Claims

Patentansprüche
1.Verfahren zur Identifizierung von als Arzneimittel für die Behandlung von Virusinfektionen geeigneten Stoffen, bzw. zur Prüfung ihrer Wirksamkeit, dadurch gekennzeichnet, dass man einzelne Viren mit einem oder mehreren Fluoreszenzfarbstoffmolekülen markiert und den Einfluss des Stoffs auf die Viren oder/und deren Infektionsweg in die Zelle und/oder innerhalb der Zelle auf der Ebene einzelner Viren nach Anregung mikroskopisch über die Fluoreszenz des Farbstoffs im Vergleich mit einer Kontrollprobe bestimmt.
2. Verfahren nach Anspruch 1 , dadurch gekennzeichnet, dass eine Statistik über eine Vielzahl von einzelnen Viren und ihr kinetisches / dynamisches Verhalten aufgestellt wird, die die Infektion des Virus in jedem Stadium charakterisiert, und ein Vergleich der Statistik der Virusinfektion, die mit dem zu identifizierenden Arzneimittel erhalten wird, und der Statistik der Kontrollproben-Messung (Infektion ohne Fremdsubstanz-Zugabe) angestellt wird.
3. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, dass die Beobachtung durch ein Mikroskop mit einer räumlichen Auflösung von 1 bis 40 nm in Echtzeit und mit einer Zeitauflösung von 1 bis 40 ms erfolgt.
4. Verfahren nach Anspruch 1 , 2 oder 3, dadurch gekennzeichnet, dass man das oder die Farbstoffmoleküle über N-terminale Aminosäurereste von Proteinen an das Virus bindet.
5. Verfahren nach Anspruch 1 ,2 oder 3, dadurch gekennzeichnet, dass man das oder die Farbstoffmoleküle durch site-spezifisch mutierte Proteine des Virus, z.B. mittels Cystein bindet.
6. Verfahren nach Anspruch 1 ,2,3,4 oder 5, dadurch gekennzeichnet, dass man das oder die Farbstoffmoleküle an die virale DNA oder interne Proteine bindet.
7. Verfahren nach Anspruch 1 ,2 oder 3, dadurch gekennzeichnet, dass man das oder die Farbstoffmoleküle über selektive Antikörper, über ein spezifisches Bindepaar oder über an im Virus transportierte Cargo- Systeme, die auch DNA oder andere Arzneistoffe enthalten können, an das Virus bindet.
8. Verfahren nach Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet, dass man spezifische Bindepaare, wie z.B. Biotin/Streptavidin oder niedermolekulare Bindepaare mit spezifischem Bindungsbereich verwendet, wobei vorzugsweise kleine organische Komponenten an virale Kapsidproteine und den Farbstoff gebunden werden sollen.
9. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass man als Fluoreszenzfarbstoff einen oder mehrere solche verwendet, welche gute Fluoreszenzeigenschaften vorzugsweise im langwelligen grünen oder im roten Spektralbereich zeigen und mit großem Adsorptionsquerschnitt anregbar sind, welche eine hohe Fluoreszenzquantenausbeute und eine hohe Photostabilität zeigen.
10.Verfahren nach Anspruch 9, dadurch gekennzeichnet, dass man als Farbstoff klassische organische Fluorophore, wie Cy5, oder exprimierbare fluoreszierende Proteine, wie das Grün Fluoreszierende Protein (GFP) und seine Mutanten, oder lumineszierende Nanopartikel verwendet.
1 1.Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass man mindestens zwei spektral oder durch Lebensdauer oder durch Polarisationsspektroskopie oder in (Förster- Resonanz-) Energie-Transfer Experimenten unterscheidbare Farbstoffe an unterschiedliche Positionen im Virus, insbesondere an Kapsid und DNA, bindet.
12. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass die Anregung des Fluoreszenzfarbstoffes über eine Lichtquelle, bevorzugt Laser und besonders bevorzugt einen einfachen Helium-Neon Laser, einen frequenzverdoppelten Festkörperlaser oder eine Laserdiode erfolgt.
13. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass die Anregung des Fluoreszenzfarbstoffes über einen starken Laser mit der sogenannten Zwei-Photonen Anregung erfolgt.
14. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass die Anregung zweier oder mehrerer verschiedener Fluoreszenzfarbstoffe gleichzeitig unter Verwendung verschiedener Laserlinien sowie unter Einsatz eines frequenzvariablen Laser erfolgt.
15. Verfahren nach einem der Ansprüche 12 bis 14, dadurch gekennzeichnet ,dass das Licht der Lichtquelle in einem Mikroskop oder einem Mikroskopobjektiv gebündelt und auf die Probe geworfen wird.
1 β.Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass das Mikroskop verschiedene Modi umfasst, die die Darstellung der Zelle und ihrer Bestandteile gleichzeitig oder/und unabhängig von der Detektion des Virus ermöglichen.
17. Verfahren nach Anspruch 16, dadurch gekennzeichnet, dass die Darstellung der Zelle im Durchlichtverfahren mit eigener Lichtquelle erfolgt und Phasenkontrast-, Differenz-Interferenz- oder Polarisationskontrasttechniken verwendet werden.
18. Verfahren nach Anspruch einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass die zwei- und/oder dreidimensionale Darstellung der Zelle bzw. ihrer Bestandteile konfokal oder mit Verfahren, die mit Weitfeldbeleuchtung arbeiten erfolgt, oder/und die Detektion einzelner Organellen oder ähnliche Untereinheiten der Zelle im Durchlichtmodus oder über Fluoreszenzverfahren mit markierten Bestandteilen erfolgt.
19. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass die zweidimensionale Verfolgung der Bewegungen von Viren über Anregung im Weitfeldverfahren stattfindet und die Verfolgung der Bewegung in axialer z-Dimension durch Regelung der Relativbewegung Probe/Mikroskopobjektiv erfolgt, die der Bewegung des Virus automatisch folgt.
20. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, insbesondere nach Anspruch 7 oder 1 1 , dadurch gekennzeichnet, dass selektiv einzeln markierte Untereinheiten in Viren, wie z.B. im Virus transportierte Cargo- Systeme oder deren Bestandteile, funktioneil mit Viren wechselwirkende einzeln markierte Biomoleküle, wie z.B. Rezeptoren oder Kernporenkomplexe, bzw. durch Expression in der Zelle erzeugte Viren einer Folgegeneration untereinander separat verfolgt bzw. lokalisiert werden oder/und die funktionelle Beziehung dieser Einheiten oder Moleküle zueinander oder zu Zellbestandteilen ermittelt wird.
21 .Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass die Abschnitte der Infektionsbiologie des Virus, wie Adsorption an Rezeptoren, Endozytose, Diffusion in Endosomen, freie Diffusion, anomale Diffusion, Diffusion in Einschlüssen, aktiver Transport, z.B. mittels Motorproteinen, Durchdringen der Kernmembran, Kolokalisation mit Kernporen-Komplexen, Auseinanderbrechen des Virus, Einschleusen des Genoms in zelluläre DNA oder Produktion von Viren der Folgegeneration unter physiologisch relevanten Bedingungen separat voneinander erkannt und charakterisiert werden.
22. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass als Probe flächig auf einem Objektträger angewachsene Zellen während ihrer Infektion durch das Virus untersucht werden.
23. Verfahren nach Anspruch 22, dadurch gekennzeichnet, dass sich die Zellen unter Nährlösung befinden und hierzu fluoreszenzmarkierte Viren zugegeben und die Fluoreszenz beobachtet wird.
24. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass das Fluoreszenzsignal bzw. die Fluoreszenzsignale vom Anregungslicht durch Filter getrennt und mit hochempfindlichen Detektoren, vorzugsweise einer oder mehrerer CCD-Kameras oder einer oder mehrerer Avalanche-Fotodioden nachgewiesen werden.
25. Verfahren zur Beobachtung des Infektionsweges oder/und -mechanismus von Viren in Zellen, wie z.B. von Viren, die als Vektoren und/oder zur Gentheraphie vorgesehen sind, dadurch gekennzeichnet, dass man ein Verfahren wie es in den Ansprüchen 1 bis 24 beschrieben ist, analog anwendet und das Virus bzw. seine induzierten Folgeprodukte beobachten.
26. Verfahren nach Anspruch 25, dadurch gekennzeichnet, dass man den Infektionsweg von Viren oder den Weg von induzierten Folgeprodukten von Viren in Zellen, die als Genfähre exprimierbare Substanzen kodieren, die von der Wirtszelle in Folge der Virusinfektion produziert werden, beobachtet.
EP01955335A 2000-07-06 2001-07-06 Verhahren zur identifizierung von für die behandlung von virusinfektionen geeigneten stoffen Withdrawn EP1297183A2 (de)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE10032859A DE10032859A1 (de) 2000-07-06 2000-07-06 Verfahren zum Erfassen von Viren
DE10032859 2000-07-06
PCT/EP2001/007781 WO2002003061A2 (de) 2000-07-06 2001-07-06 Verfahren zur identifizierung von die für behandlung von virusinfektionen geeigneten stoffen

Publications (1)

Publication Number Publication Date
EP1297183A2 true EP1297183A2 (de) 2003-04-02

Family

ID=7648000

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
EP01955335A Withdrawn EP1297183A2 (de) 2000-07-06 2001-07-06 Verhahren zur identifizierung von für die behandlung von virusinfektionen geeigneten stoffen

Country Status (6)

Country Link
US (1) US20040101824A1 (de)
EP (1) EP1297183A2 (de)
AU (1) AU2001277528A1 (de)
CA (1) CA2414786A1 (de)
DE (1) DE10032859A1 (de)
WO (1) WO2002003061A2 (de)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP3461836A1 (de) 2017-09-28 2019-04-03 Universität zu Köln Mutierte kapsid proteine von adeno-assoziierten viren zur chemischen kopplung von liganden, nanopartikeln oder medikamenten über thioetherbindung und methode zu deren herstellung
CN111537480B (zh) * 2020-04-26 2023-05-02 中央民族大学 基于单分子全内反射荧光成像技术的病毒快速检测方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
See references of WO0203061A3 *

Also Published As

Publication number Publication date
AU2001277528A1 (en) 2002-01-14
US20040101824A1 (en) 2004-05-27
WO2002003061A2 (de) 2002-01-10
CA2414786A1 (en) 2003-01-03
DE10032859A1 (de) 2002-01-17
WO2002003061A3 (de) 2002-08-22

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE112009000698B4 (de) Verfahren und Vorrichtung zur Lokalisation einzelner Farbstoffmoleküle in der Fluoreszenzmikroskopie
EP2016392B1 (de) Verfahren zum räumlich hochauflösenden fluoreszenzlichtabbilden einer struktur einer probe
DE10031028B4 (de) Verfahren zur Selektion von Partikeln
DE10035190C5 (de) Verfahren und Vorrichtung zur Fluoreszenzmessung
DE60014188T2 (de) Verfahren zum screening von chemischen verbindungen
EP3087372B1 (de) Hochauflösende fluoreszenz-mikroskopie mit einem strukturierten anregungsstrahl
DE69722800T2 (de) Probenanalyseverfahren mittels bestimmung einer funktion der spezifischen helligkeit
DE69328231T2 (de) Verfahren und Vorrichtung zur Ortung und zum Zählen von Fluoreszenz-Molekülen
WO2022079260A1 (de) Verfahren und fluoreszenzmikroskop zur ortsbestimmung einzelner fluoreszierender farbstoffmoleküle durch adaptive abtastung
JP2021526220A (ja) マルチスペクトルサンプル画像化
EP1584918B1 (de) Verfahren und Vorrichtung zur Fluoreszenz-Lebensdauer-Imaging-Nanoskopie
WO1994016313A2 (de) Verfahren und vorrichtung zur bewertung der fitness von biopolymeren
DE102020134495B4 (de) Verfahren und Mikroskop zur Aufnahme von Trajektorien einzelner Partikel in einer Probe
WO2010081690A1 (de) Verfahren und system zur charakterisierung einer probe mittels bildgebender fluoreszenzmikroskopie
EP2102631B1 (de) Räumlich hochaufgelöstes abbilden einer struktur
DE202015001565U1 (de) Mikroskopische Vorrichtung mit Verfahren zur verbessertem Analyse von Photonendaten
DE102011055639A1 (de) Verfahren und Vorrichtung zur simultanen Multikanal- und Multimethoden-Akquisition von synchronisierten Parametern in systemübergreifenden Fluoreszenzlebensdaueranwendungen
EP1297183A2 (de) Verhahren zur identifizierung von für die behandlung von virusinfektionen geeigneten stoffen
Sacconi et al. Cell imaging and manipulation by nonlinear optical microscopy
DE10065784C2 (de) Verfahren zum Auffinden von Kontaktstellen zwischen Zellen in einer stimulierbaren mikroskopischen Probe bei einer Kalziummigration und Scanmikroskop zur Durchführung des Verfahrens
EP1440315B1 (de) Nachweis humaner auto-antikörper
WO2001023894A1 (de) Quantitative analyse und typisierung subzellulärer partikel
DE102018008980A1 (de) Vorrichtung und Verfahren zur Bestimmung der Fluoreszenz und der Anzahl von Antikörpern auf Exosomen.
DE102004017482A1 (de) Mikrofluidisches System mit einer Elektrodenanordnung und zugehöriges Ansteuerungsverfahren
DE10343722A1 (de) Festkörper-Immersionslinsen-Spektroskopie und -Mikroskopie

Legal Events

Date Code Title Description
PUAI Public reference made under article 153(3) epc to a published international application that has entered the european phase

Free format text: ORIGINAL CODE: 0009012

17P Request for examination filed

Effective date: 20030123

AK Designated contracting states

Kind code of ref document: A2

Designated state(s): AT BE CH CY DE DK ES FI FR GB GR IE IT LI LU MC NL PT SE TR

Designated state(s): AT BE CH CY DE DK ES FI FR GB GR IE IT LI LU MC NL PT SE TR

AX Request for extension of the european patent

Extension state: AL LT LV MK RO SI

RIN1 Information on inventor provided before grant (corrected)

Inventor name: ENDRESS, THOMAS

Inventor name: RIED, MARTIN

Inventor name: SEISENBERGER, GEORG

Inventor name: BRAEUCHLE, CHRISTOPH

RAP1 Party data changed (applicant data changed or rights of an application transferred)

Owner name: LUDWIG-MAXIMILIANS-UNIVERSITAET MUENCHEN

RIN1 Information on inventor provided before grant (corrected)

Inventor name: ENDRESS, THOMAS

Inventor name: RIED, MARTIN

Inventor name: SEISENBERGER, GEORG

Inventor name: BRAEUCHLE, CHRISTOPH

STAA Information on the status of an ep patent application or granted ep patent

Free format text: STATUS: THE APPLICATION IS DEEMED TO BE WITHDRAWN

18D Application deemed to be withdrawn

Effective date: 20060201