DE2916536A1 - Neue peptidderivate und arzneimittel - Google Patents
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Description
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PATENTANWÄLTE
J. REITSTÖTTER
W. BUNTE (1938-1976)
DR. ING.
W. KINZBBACH
K. P. HÖLLER
TELBFONl (ΟΘΘ) 37 OB TELEXl B21G208 ISAR D
München, 24. April 1979 M/20 091
AHP 7272/7272-1-C1
AMERICAN HOME PRODUCTS
CORPORATION
685 Third Avenue
New York, N.Y.10017 USA
Neue Peptidderivate und Arzneimittel
ÖftlOINAL INSPECTED
AHP-7272/7272-1-C1
Die Erfindung betrifft synthetische Peptide, die dem Somatostatin strukturell verwandt sind, sowie Zwischenprodukte, die
bei deren Synthese eingesetzt werden. Die Erfindung betrifft auch ein Arzneimittel. Bei den erfindungsgemäßen Verbindungen
ist die Somatostatin-Peptidkette an den Positionen 4, 5 und 13 modifiziert, wobei vorzugsweise auch die Positionen 1, 2,
und 14 modifiziert sind.
Somatostatin ist das cyclische Disulfid-tetradecapeptid der
Formel I:
H-Ala-Gly-Cys-Lys-Asn-Phe-Phe-Trp
S
S
HO-Cys-Ser-Thr-Phe-Thr-Lys
(D
Dieses Peptid (I) wurde als der "Somatotropin-Release J
Inhibiting Faktor" (SRIF) identifiziert, der vom Hypothalamus atis·
geschieden wird und die Sekretion des Hypophysen-Wachstumshormons
(GH) (Somatotropin) reguliert. /Vgl. Brazeau et al, Science 179;,
77 (1973), Burgus et al, Proc.Nat.Acad.Sci. (USA) 7£, 684
(1973) und Ling et al, Biochemical and Biophysical Res. Communication ^, 127 (1973)7-Bei der reduzierten Form des
Somatostatins (RS) handelt es sich um das lineare Tetradecapeptid der Formel II:
SH SH
(II) 909844/0950
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Die reduzierte Form (II) wurde durch Total synthese hergestellt /Vgl. Rivier et al, C.R.Acad.Sci .Ser .p.Sci.Natur.(Paris) 276,
2737 (1973) und Sarantakis und McKinley, Biochem. and Biophys. Res.Communications 5±, 234 (1973)J7. Die Form (II) kann durch
Oxidation in das Somatostatin (I) überführt werden, wobei zwischen den zwei SuIfhydrylgruppen der zwei im Tetradecapeptid
enthaltenen Cysteinylaminosäurereste eine Brückenbindung gebildet wird.
Es wurden verschiedene Polypeptide synthetisch hergestellt und in der chemischen Literatur beschrieben, die als strukturelle
Modifikationen des Somatostatins aufgefaßt werden können. Derartige Polypeptide haben mit dem Somatostatin bestimmte Struk-j
turmerkmale gemeinsam und unterscheiden sich vom Somatostatin
dadurch, daß spezifische Aminosäurereste oder funktionelle Gruppen, welche ursprünglich im Somatostatinmolekül vorliegen,
entweder fehlen oder durch andere Aminosäurereste oder funktionelle Gruppen ersetzt sind. Die Erfindung betrifft neue
synthetische, biologisch wirksame Polypeptide, die als strukturelle Modifikation des Somatostatins aufgefaßt werden können
Die erfindungsgemäßen Polypeptide unterscheiden sich vom Somatostatin in folgenden Punkten:
(a) das Ala1-Gly1-Segment liegt entweder vor, fehlt oder ist
durch Gly-Gly-Gly, Ala-D-Ala, Acetyl oder Benzoyl ersetzt;
(b) der Cys3-Rest liegt entweder vor oder ist durch einen
ß-Mercaptopropionsäurerest ersetzt;
(c) der Lys -Rest ist durch Arg oder His ersetzt;
(d) der Asn5-Rest ist durch His, GIu, Tyr, Trp oder Phe ersetzt;
und
(e) der Trp8-Rest liegt entweder vor oder ist durch D-Trp
oder 6-F-D-Trp ersetzt;
S0S8U/095Ö
ORIGINAL INSPECTED
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1 "3
(f) der Ser -Rest ist durch eine D-oc-Aminosäure ersetzt; und
(g) der Cys -Rest liegt entweder vor oder ist durch D-Cys ersetzt.
— 1 2
tionen des Somatostatins, bei denen das Ala -GIy -Segment und
die N-terminale Aminogruppe fehlen. Der Ersatz des Trp -Restes
durch D-Trp ist von Rivier et al, Biochem.Biophys.Res.Commun.
65, 746 (1975) diskutiert. Modifikationen des Somatostatins,
bei denen das Lys-Asn -Segment durch andere Aminosäurereste
ersetzt sind, sind in der BE-PS 839 405 offenbart. Eine Modi-
1 3 fikation des Somatostatins, bei der das Ser durch D-Serin
ersetzt ist, wird von Coy et al, "58th Annual Meeting of the Endocrine Society", San Francisco, Californien, Abstract 305,
Seite 209, beschrieben. Ein D-Trp8, D-Cys14-Somatostatin ist
von Brown et al, Science J_9£, 1467 (1977) und Meyer, Biochem.
Biophys.Res.Commun. 21» 630 (1977) beschrieben. j
S — S
I I
CH2 CH2
(III)
worin:
X für H, -NH2, -NH-Gly-Ala, -NH-D-Ala-Ala, -NH-Gly-Gly-Giy,
-NH-Acetyl oder -NH-Benzoyl steht;
XI die Bedeutungen His oder Arg besitzt;
X2 für His, GIu, Tyr, Trp oder Phe steht;
X3 für Trp, D-Trp oder 6-F-D-Trp steht; und
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sowie deren nicht-toxische, pharmazeutisch verträgliche Säureadditionssalze.
Die Erfindung umfaßt auch die lineare Form der Verbindungen der Formel III (d.h. die nicht cyclischen, reduzierten Verbindungen der Formel IV, die insofern unterschiedlich sind,
als sie zwei freie SuIfhydrylgruppen enthalten), sowie deren
nicht-toxische Säureadditionssalze. Die Formel IV ist folgendermaßen:
SH SH
CH9 CH2
(IV)
Die linearen Peptide der Formel IV sind die Prekursoren für j
die cyclischen Peptide der Formel III. :
Sämtliche optisch aktiven Aminosäuren und Aminosäurereste in j den hier dargestellten und beschriebenen Polypeptiden liegen
in der natürlichen oder L-Konfiguration vor, falls nicht anders
angegeben. Die Symbole, welche die Aminosäuren und Aminosäure- J reste in den hier beschriebenen Polypeptiden bezeichnen sind j
vom IUPAC-IVB Committee on Biochemical Nomenclature Recommen- ]
dation (1971) anerkannt und in den Archives of Biochemistry and Biophysics J_5£, 1-8 (1972) beschrieben. Das Symbol "6-F-D-Trp"
bedeutet D-Tryptophan, worin die 6-Position durch Fluor substituiert ist. Der Begriff "D-tf-Aminösäure" steht für eine optisch
aktive ^-Aminosäure, in der das ^-Kohlenstoffatom in der D-Konfiguration vorliegt. Bevorzugte Beispiele für derartige
D-oC-Aminosäuren sind D-Prolin, D-Alanin, D-VaI in, D-Leucin,
D-Isoleucin, D-Serin, D-Threonin, D-Methionin, D-Asparaginsäure,
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ORIGINAL INSPECTED
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D-Glutaminsäure, D-Lysin, D-Arginin, D-Asparagin, D-Histidin,
D-Tryptophan, D-Phenylalanin und D-Tyrosin.
Dem Fachmann ist bekannt, daß das ^-Kohlenstoffatom der Cysteinreste (entsprechend Cys und Cys des Somatostatins) ein
asymmetrisches Kohlenstoffatom ist, so daß optische Isomere derartiger Aminosäurereste möglich sind. Der in den hier beschriebenen Formeln (III, IV oder V) bezeichnete Cys -Rest der dort beschriebenen Peptide muß in der natürlichen (L-) Konfiguration
vorliegen, wogegen der Cys -Rest entweder in der natürlichen , (L-) oder nicht-natürlichen (D-) Konfiguration vorliegen kann.
Die Verbindungen der Formeln III und IV inhibieren die Sekretionen
des Wachstumshormons, Insulins und Glucagons, was durch übliche pharmakologische Untersuchungen belegt wird. Sie sind darüber
hinaus brauchbar zur Steuerung der Serumglucose bei der Behänd- '
lung von Diabetes. Die Verbindungen zeigen darüber hinaus eine j verlängerte Wirkungsdauer.
Nach einer bevorzugten Ausführungsform stehen in den Verbindungen der Formeln III und IV der Rest X für NH2, der Rest X1
für Arg, der Rest X2 für His, der Rest X3 für D-Trp und der
Rest X4 für D-Tyr. Das Verfahren zur Herstellung der Verbindungen gemäß dieser Ausführungsform ist in den Beispielen 1 und 2
beschrieben. Eine weitere bevorzugte Ausführungsform betrifft
die Verbindungen der Formeln III und IV, worin X für NH2 steht,
X1 für Arg steht, X2 für GIu steht, X3 für D-Trp steht und X4
für D-Tyr steht, wobei bei dieser Ausführungsform die Freisetzung des Wachstumshormons und des Insulins inhibiert wird,
ohne daß die Freisetzung von Glucagon einer merklichen Inhibierung unterliegt. Die Herstellung dieser Ausführungsform ist
in den Beispielen 3 und 4 beschrieben. Bei einer weiteren bevorzugten Ausführungsform handelt es sich um Verbindungen der
Formeln III und IV, worin X für NH2 steht, X1 für His steht,
X2 für His steht, X3 für D-Trp steht und X4 für D-Ser steht.Die-
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AHP-7272/7272-1-C1 "IDOOD
se Ausführungsform inhibiert die Freisetzung des Wachstumshormons und des Glucagons, ohne daß eine nennenswerte Inhibierung der Freisetzung des Insulins auftritt. Die Herstellung
dieser Ausführungsform ist in den Beispielen 5 und 6 beschrieben. Andere Ausführungsformen können hergestellt werden, indem ähnliche Methoden oder auf der Hand liegende Modifikationen
angewendet werden. Die jeweils gewünschten AusfUhrungsformen können hergestellt werden, indem man unter Anwendung der erläuterten Arbeitstechnik eine bestimmte Einheit durch die ge- ;
wünschte, geschützte Aminosäure ersetzt. ;
Die erfindungsgemäßen Polypeptide werden nach der Festphasenmethode hergestellt, wobei man die allgemein auf dem Fachge- [
biet bekannte Arbeitsweise zum Aufbau einer Aminosäuresequenz . aus einer anfänglichen, von einem Harz getragenen C-terminalen ι
Aminosäure befolgt. Diese Arbeitstechniken sind von J.M.Stewart; et al, Solid Phase Peptide Synthesis, Freeman and Co., i
San Francisco, 1969, beschrieben. Bei der Anwendung dieser Synthese auf die Polypeptide der Formeln III und IV handelt
es sich bei der anfänglichen C-terminalen Aminosäure um L- oder D-Cystein, und beim Harzträger vorzugsweise um ein chlor- j
methyliertes Polystyrolharz. Die Chlormethyl gruppen stellen Verknüpfungspunkte für das L- oder D-Cystein am Harzträger
über eine Esterbildung dar.
Zur Durchführung der Synthese wird das chlormethylierte Polystyrolharz mit D- und L-Cystein, das an der o(-Aminogruppe
und an der SuIfhydrylgruppe geschützt ist (vgl. Boc-Cys(SMBzl)-OH) nach der Arbeitsweise von Gisin, HeIv. Chim. Acta., 56,
1476 (1973) verestert. Die geschützte Aminosäure wird durch Esterbildung zwischen der Carboxylgruppe des L- oder D-Cysteins
und einer Chlormethylgruppe des Harzes verknüpft. Dann wird die tf-Aminoschutzgruppe mit Trifluoressigsaure in Methylenchlorid, Trifluoressigsaure alleine oder Chlorwasserstoffsäure
in Dioxan, entfernt. Das Entschützen wird bei einer Temperatur
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ORIGINAL !NSPECTi=D '
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zwischen ungefähr 00C und Raumtemperatur durchgeführt. Man
kann auch andere übliche Spaltungsmittel und Spaltungsbedingungen
zur Entfernung einer spezifischen ίγ-Aminoschutzgruppe anwenden,
vgl. Schröder und E. LUbke "The Peptides" J_, 72-75
(Academic Press, 1965). Nach dem Entfernen der tf-Aminoschutzgruppe
werden die nachfolgenden, geschützten Aminosäuren einzeln seriatim an der vom Harz getragenen Sequenz angekuppelt.
Alternativ kann man durch die Lösungsmethode kleine Peptidfragmente
herstellen und in der gewünschten Reihenfolge in den Festphasenreaktor einführen. Jede geschützte Aminosäure oder
Aminosäuresequenz wird in einem ungefähr 4-fachen Überschuß j in den Festphasenreaktor eingeführt. Das Kuppeln wird in
Dimethylformamid, Methylenchlorid oder einer Mischung der zwei Lösungsmittel ausgeführt. Den erfolgreichen Verlauf einer
jeden Kupplungsreaktion in jedem Stadium der Synthese wird j
durch die Ninhydrinreaktion bestätigt, wie von E. Kaiser et al J Analyt.Biochem. 34, 595 (1970) beschrieben. Falls eine unvoll- ί
ι ständige Kupplung erfolgt ist, wird diese Reaktion wiederholt,
bevor die oC-Aminoschutzgruppe zur Einführung der nächsten
Aminosäuresequenz entfernt wird. Ein bevorzugtes Kupplungsmittel ist das Diisopropylcarbodiimid, obgleich auch andere
Mittel dem Fachmann zur Verfügung stehen.
Nachdem die gewünschte Aminosäuresequenz synthetisiert wurde, entfernt man das Polypeptid vom Harzträger durch Behandlung
mit Fluorwasserstoff und Anisol, um das vollständige entschützte, lineare Polypeptid zu erhalten. Das cyclische Disulfid
wird hergestellt, indem man das lineare Polypeptid oxidiert, beispielsweise durch Behandlung mit K4Fe(CN)6 oder
durch Kontakt mit der Luft.
Nicht-toxische Säureadditionssalze derlinearen und cyclischen
Polypeptide werden auf übliche Weise aus organischen oder anorganischen Säuren, die nicht-toxisch und für pharmazeutisch
Zwecke annehmbar sind, hergestellt. Hierzu gehören Chlorwasser
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ORIGfNAL INSPECTED
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stoffsäure, Bromwasserstoffsäure, Schwefelsäure, Phosphorsäure,
Polyphosphorsäuren Maleinsäure, Essigsäure, Zitronensäure, Benzoesäure, Bernsteinsäure, Malonsäure oder Ascorbinsäure,
und dergleichen.
Die während der Festphasensynthese eingesetzten Schutzgruppen sind als solche bekannt. Bei der Wahl einer bestimmten Seitenkettenschutzgruppe
zur Synthese der erfindungsgemäßen Peptide sollten die folgenden Regeln beachtet werden: (a) die Seitenkettenschutzgruppe
muß gegenüber dem Reagens und den bei jeder . Stufe der Synthese gewählten Reaktionsbedingungen zur Ent- J
fernung der tf-Aminoschutzgruppe stabil sein; (b) die Schutzgruppe
muß ihre schützenden Eigenschaften beibehalten (d.h. sie darf unter den Kupplungsbedingungen nicht abgespalten werden);
und (c) die Seitenkettenschutzgruppe muß nach Beendigung :
der Synthese mit der gewünschten Aminosäuresequenz unter Reaktionsbedingungen abspaltbar sein, die nicht zu einer Ver- ;
änderung der Peptidkette führen. ί
Zu bevorzugten Schutzgruppen für die bei der Festphasensynthese
eingesetzten Aminosäuren gehören die folgenden: (a) für eine j o<-Aminogruppe: tert.-Butyloxycarbonyl (BOC); (b) für eine Sei- j
tenkettenhydroxylgruppe: Benzyl (BzI); (c) für eine aromati- j
sehe Hydroxylgruppe in der Seitenkette: 2,6-Dichlorbenzyl
(Cl2BzI); (d) für eine Seitenkettencarboxylgruppe: Benzyl (BzDj;
(e) für eine Seitenketten-ü-aminogruppe: 2-Chlorbenzyloxycarbonyl
(ClZ); (f) für Guanidinstickstoffatome in der Seitenkette: Tosyl (Tos); (g) für den sekundären Imidazolstickstoff:
Tosyl (Tos); und (h) für eine Seitenkettenmercaptogruppe: p-Methoxybenzyl (MBzI).
Außer den pharmakologisch wirksamen Polypeptiden der Formeln
III und IV umfaßt die Erfindung auch die neuen Peptidharz-Zwischenprodukte der Formel V:
8098U/095Q
AHP-7272/7272-1-C1 ^oiu^ou
S-Z
I
I
CH9
I *
Y-CHCO-Y1 -Y2-Phe-Phe-X3-Y3-Y4-PlIe-Y4 Q
D I C
CH0 I 2 S-Z
(V)
worin:
(a) Χ, für Trp, D-Trp oder 6-F-D-Trp steht;
(b) Y die Bedeutungen H, -NH(R), -NH-GIy-AIa(R),
-NH-Gly-Gly-Gly(R), -NH-D-AIa-AIa(R), -NH-Acetyl oder
-NH-Benzoyl besitzt;
(c) Y1 für HiS(R1) oder ArgiR^ steht;
(d) Y2 die Bedeutungen HiS(R1), GIu(R2), Tyr(R3), Trp oder
Phe besitzt;
(e) Y3 für Lys(R4) steht;
(f) Y4 für Thr(R5) steht;
(g) Y5 die Bedeutungen D-Pro, D-AIa, D-VaI, D-Leu, D-isoLeu,
D-Ser(R5), D-TtIr(R5), D-Asp(R2), D-GIu(R2), D-LyS(R4),
D-A^(R1), D-Asn, D-HiS(R1), D-Trp, D-Phe oder D-TyKR3)
besitzt; und
(h) Z für die p-Methoxybenzylschutzgruppe steht; wobei R eine
(X-Aminoschutzgruppe darstellt und R, t R2, R3, R4 und Rg
jeweils unabhängig voneinander eine Seitenkettenschutzgruppe bedeuten.
Bevorzugte Schutzgruppen sind diejenigen, in denen: R für tert.-Butyloxycarbonyl steht;
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Bei den Verbindungen der allgemeinen Formel V kann es sich beim
Polystyrolharz um jeglichen geeigneten Harzträger handeln, der üblicherweise auf dem Gebiet der Festphasensynthese von Polypeptiden eingesetzt wird, vorzugsweise um Polystyrol, das mit
ungefähr 0,5 bis 3 % Divinylbenzol vernetzt ist und das chlor- ;
methyliert oder hydroxymethyliert ist, um Stellen für die
Esterbildung mit dem anfänglich eingeführten, cx-Amino-geschützten
D- oder L-Cystein zu schaffen. Ein chiormethyliertes Polystyrolharz ist von Bio Rad Laboratories, Richmond, Californien im
Handel erhältlich, und die Herstellung dieses Harzes ist von : Stewart et al, "Solid Phase Peptide Synthesis", Freeman and
Co., San Francisco, 1969, Kapitel 1, Seiten 1 bis 6, beschrie- ! ben. In der Formel V steht der Rest "-C-O-CH9-" für die Ester- j
Il £
ο j
bindung zwischen der C-terminalen Carboxygruppe des Polypeptids■
und einer der vielen, ursprünglich in die Phenyleinheiten der j Polystyrol kette durch Chlormethyl ierungen eingeführten Methylen-·
gruppen.
Die erfindungsgemäß beschriebenen Verbindungen können an
Sauger intravenös, subkutan, intramuskulär oder oral verabreicht werden, um bei der Behandlung von Diabetes oder Hyperinsulinämie den Serumglucosespiegel zu steuern. Die erforderliche Dosis variiert mit dem jeweils zu behandelnden Zustand,
der Schwere des Zustands und der Dauer der Behandlung.
Der aktive Bestandteil wird alleine oder in Kombination mit
pharmazeutisch verträglichen Trägern oder Bindemitteln verab-
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reicht. Geeignete pharmazeutische Zusammensetzungen können vom Fachmann ohne weiteres formuliert werden.
Das Verfahren zur Herstellung der erfindungsgemäßen Verbindungen
und deren Verwendung sind in den nachfolgenden Beispielen erläutert:
B e i s pie!
tert.-Butyloxycarbonyl-S-p-methoxybenzyl-L-cysteinyl-Ng-tosyl L-arginyl-Nim-tosyl-L-histidyl-L-phenylalanyl-L-phenylalanyl
D-tryptophyl-N£-2-chi
orbenzyl oxycarbonyl-L-lysyl-0-benzyl-L-threonyl-L-phenylalanyl-0-benzyl-L-threonyl-0-2,6-dichlorbenzyl
D-tyrosyl-S-p-methoxybenzyl-L-cysteinyl -hydroxymethyl-PoIystyrolester
Nach der Arbeitsweise von Gisin, HeIv. Chim. Acta-, 56>, 1976
(1973) wird ein chlormethyliertes Polystyrolharz (Lab Systems
IncJ (0,75 mÄq pro g) mit Boc-Cys(SMBzl )-OH-Cäsiumsalz verestert.
Dann wird das Aminosäureharz nach dem Schema A (nachstehend aufgeführt) behandelt, wobei man in der Stufe 9)
Boc-D-Tyr(Cl2Bzl )-0H als geschlitzte Aminosäure einsetzt. Dann
wird Schema A so oft wie erforderlich wiederholt, um der Reihe nach die nachfolgenden Aminosäuren in das Peptidharz einzuführen:
Boc-Thr(Bzl)-OH
Boc-Phe-OH
Boc-Thr(Bzl)-OH
Boc-Lys(ClZ)-OH
Boc-D-Trp-OH
Boc-Phe-OH
Boc-Phe-OH
Boc-His(Tos)-OH
Boc-Arg(Tos)-OH
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ORIGINAL INSPECTED
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Boc-Cys(SMBzl)-OH
Schema A: /Arbeitsvorschrift für das Entschützen der G
gruppe und das Kuppeln der geschlitzten w-Aminosäuren
an dem Boc-Cys(SMBzl)-O-CHg-(geschütztes Harz)7·
1) Man wäscht dreimal mit Methylenchlorid (CH2Cl2).
2) Man behandelt 5 Minuten lang mit Trif1uoressigsäure:Methylenchlorid
9:1(Vol/Vol) mit einem Gehalt von'5' % 1 ,2-Äthandithiol.
3) Man wiederholt 25 Minuten lang die Arbeitsweise der Stufe 2),
4) Man wäscht dreimal mit CH2Cl2.
5) Man wäscht mit Dimethylformamid (DMF). j
6) Man behandelt 3 Minuten lang mit 12 % Triethylamin in DMF.
7) Man wäscht mit DMF.
8) Man wäscht dreimal mit CH2Cl2.
9) Man behandelt mit vier Äquivalenten der entsprechenden geschützten Aminosäure in CH2Cl2/DMF und rührt 5 Minuten
lang.
10) Im Verlauf von 30 Minuten gibt man in zwei Portionen fünf
Äquivalente Diisopropylcarbodiimid, gelöst in CH2Cl2, zu.
Man läßt die Reaktion 6 Stunden lang erfolgen.
11) Man wäscht dreimal mit DMF.
12) Man wäscht dreimal mit CH?C1?.
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j 13) Man untersucht nach der Arbeitsweise von Kaiser et al,
Annal .Biochem. ,34·, 595 (1970) mit Hilfe der Ninhydrin-Reak
tion. Im Falle einer unvollständigen Reaktion werden die Stufen 9) bis 13), wie oben beschrieben, wiederholt.
L-Cysteinyl-L-arginyl-L-histidyl-L-phenylalanyl-L-phenylalanyl -D-tryptophyl-L-lysyl-L-threonyl-L-phenylalanyl-L-threonyl-D-
tyrosyl-L-cystein cyclisches (1->12) Disulfid
Eine Mischung von 12 g des Peptidoharzes gemäß Beispiel 1, 20 ml Anisol und 200 ml flüssiger Fluorwasserstoff wird 50 Minuten lang in einem Eisbad (unter Luftausschluß) stehengelassen
und anschließend wird überschüssiger Fluorwasserstoff im Vakuum entfernt. Man extrahiert den Rückstand mit 20 %-iger wäßriger
Essigsäure und gießt den Extrakt in 5 Liter entlüftetes Wasser. Man bringt den pH des Wassers durch Zugabe von verdünntem
Ammoniumhydroxid auf 7,4 und oxidiert die Mischung durch Zugabe einer Lösung von 1,5 g K3Fe(CN)5 in 500 ml Wasser. Die Oxida- '.
tionsmischung wird mit Eisessig auf pH 5 angesäuert, und über- j schüssiges Oxidationsmittel wird durch Zugabe von Bio Rad AG 3 :
entfernt. Man absorbiert das peptidische Material auf Amber- : lite CG-50 (H+-Form) und eluiert dann mit einer Mischung aus i
Wasser:Essigsäure:Pyridin 66:4:30 (Vol/Vol). Die das peptidische,
Material enthaltenden Fraktionen werden vereinigt und lyophili- j
siert, wobei man Rohprodukt erhält, das auf eine Säule mit Sephadex G-25 (2,5 χ 160 cm) aufgegeben und mit 10 %-iger
wäßriger Essigsäure eluiert wird. Die Fraktionen 113 bis 133 werden gesammelt und lyophilisiert, wobei man 855 mg des gewünschten Peptids erhält.
TLC (Dünnschichtchromatographie): Mit Avicel überzogene Glasplatten, Chlorox-Spray Rf n-Butanol:Wasser:Eisessig 4:1:1
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(Vol/Vol) 0,41.
Aminosäureanalyse: Thr (2) 1,87; Phe (3) 3; Cys (2) 1,49;
Tyr (1) 0,87; Lys (1) 1,02; His (1) 0,89;
Arg (1) 1,01 ; Trp (1) 0,67.
tert.-Butyl oxycarbonyl-S-ρ-methoxybenzyl-L-cysteinyl-N9-tosyl-L-j
arginyl-/'-benzyl -L-glutamyl -L-phenylalanyl -L-phenylalanyl-D- j
tryptophyl-Φ-2-chlorbenzyl oxycarbonyl-L-Iysy!-O-benzyl-L-threonyl-L-phenylalanyl-0-benzyl-L-threonyl-0-2,6-dichiorbenzyl-D-tyrosyl-S-p-methoxybenzyl-L-cysteinyl-hydroxymethyl-Polystyrol -ester '.
Das obige Peptidoharz wird auf gleiche Weise wie in Beispiel 1 ,
hergestellt, wobei im Zuge der Synthese an entsprechender Stelle
die entsprechende Aminosäure ersetzt wird. I
L-Cysteinyl-L-arginyl-L-«-glutamyl-L-phenylalanyl-L-phenylalanyi-D-tryptophyl-L-lysyl-L-threonyl-L-phenylalanyl-L-threonyl-D-tyrosyl-L-cystein cyclisches (1—»12) Disulfid-Triacetatsalz
Das obige Dodecapeptid wird auf die gleiche Weise wie in Beispiel 2 aus dem Peptidoharz des Beispiels 3 hergestellt.
TLC: Mit Avicel vorbeschichtete Glasplatten.
Rf n-Butanol:Wasser:Eisessig 4:1:1 (Vol/Vol) 0,57
S098-U/09B0
ORIGINAL INSPECTED
AHP-7272/7272-1-C1
Rf n-Butanol:Äthylacetat:Wasser:Eisessig 1:1:1:1 (Vol/Vol) 0,85
Rf tert.-Amylalkohol:Pyridin:Wasser 7:7:6 (Vol/Vol) 0,92.
Aminosäureanalyse: Thr (2) 1,96; GIu (1) 1,04; Cys (2) 1,79;
Tyr (1) 1,02; Phe (3) 3; Lys (1) 1,04;
Trp (1) 1,09; Arg (1) 1,01.
Trp (1) 1,09; Arg (1) 1,01.
tert.-Butyloxycarbonyl -S-p-methoxybenzyl -L-Cysteinyl -N1tn-tosyl L-histidyl-Nim-tosyl-L-histidyl-L-phenylalanyl-L-phenylalanyl-D-tryptophyl-N*
-2-chlorbenzyloxycarbonyl-L-lysyl-0-benzyl-L-threonyl-L-phenyl
al any!-0-benzyl-L-threonyl-0-benzyl-D-seryl-S-p-methoxybenzyl-L-cysteinyl-hydroxymethyl -Polystyrolester
Das obige Peptidoharz wird auf gleiche Weise wie im Beispiel 1
beschrieben hergestellt, wobei im Zuge der Synthese an entspre-j chender Stelle die entsprechende Aminosäure ersetzt wird. ;
beschrieben hergestellt, wobei im Zuge der Synthese an entspre-j chender Stelle die entsprechende Aminosäure ersetzt wird. ;
L-Cysteinyl-L-histidyl-L-histidyl-L-phenylalanyl-L-phenylalanyl-D-tryptophyl-L-lysyl-L-threonyl-L-phenyl
alanyl -L-threonyl-D-seryl-L-cystein cyclisches (1—>12) Disulf id-Triacetatsalz
:_
Man behandelt das Peptidoharz des vorstehenden Beispiels 5
auf gleiche Weise wie im Beispiel 2, wobei man die Titelverbin-j
dung erhält.
TLC: Mit Silikagel vorbeschichtete Glasplatten.
9098U/0950
ORIGINAL INSFECTBD
AHP-7272/7272-1-C1 tJ ' JJU
Rf n-Butanol:Äthylacetat:Wasser:Eisessig 1:1:1:1 (Vol/Vol) 0,52.
Mit Avicel vorbeschichtete Glasplatten.
Rf n-Butanol:WasserrEisessig 4:5:1 (Vol/Vol) 0,60.
Rf tert.-Amylalkohol:Pyridin:Wasser 7:7:6 (Vol/Vol) 0,76.
Aminosäureanalyse: Thr (2) 1,98; Ser (1) 0,98; Cys (2) 1,64;
Phe (3) 3; Lys (1) 1,1; His (2) 2,1; Trp (1) 0,84.
B e i spiel 7
Die Fähigkeit der erfindungsgemäßen Verbindungen, die Sekretioneji
des Wachstumshormons, Insulins und Glucagons zu inhibieren, läßt sich anhand der folgenden Untersuchungsmethodik demonstrieren:
Männliche Albinoratten werden in zwei Gruppen (d.h. 9 Ratten pro Gruppe) aufgeteilt. Jedem Tier wird Natriumpentobarbital
(Nembutal )i.p. in einer Dosis von 50 mg/kg verabreicht. 15 Minuten
später erhält eine Gruppe eine, s .c. -Injektion der Testverbindung
in Kochsalzlösung (typisch 5 bis 200 ug/kg), und die andere Gruppe (Kontrolle) erhält die Kochsalzlösung ohne die
Verbindungen. 10 Minuten später wird jedem Tier eine 0,5 ml Injektion Arginin (300 mg/ml, pH 7,2) in das Herz verabreicht.
5 Minuten nach der Aufnahme des Arginins werden die Tiere geköpft und das Blut in Trasylol-EDTA gesammelt. Entsprechende
aliquote Anteile einer jeden Probe werden auf GH, Glucagon und Insulin durch Radioimmunoassay untersucht. Das GH wird nach
der Methode von Sinha et al, Endocrinol. 9JU 784 (1972) bestimmt.
Das Glucagon wird nach der Methode von Faloona und Ungei},
"Möthods of Hormone Radioimmunoassay'1, Jaffe et al, Ed. s
Ö098U/095Q
ORDINAL INSPECTED
AHP-7272/7272-1-C1 *~Ό ID3OD
Academic Press, New York, 1974, Seiten 317 bis 330 bestimmt. Das Insulin wird nach der Methode von Hales und Rändle,
Biochem.J. 88^, 137 (1963) bestimmt. Die Blutkonzentrationen
an Wachstumshormon, Glucagon und Insulin der Tiere, denen die Testverbindung verabreicht wurde, werden nach Üblichen statist!
sehen Methoden mit den Blutkonzentrationen der Kontrollgruppe
verglichen. Die Inhibierung ergibt sich als signifikante Abnahme der Hormonkonzentration. '
1 Die Ergebnisse der Untersuchung der Peptide der Beispiele 2, 4 und 6 sind nachstehend aufgeführt.
Experi- Verbindung Dosis GH Insulin Glucagon
ment (ug/kg) (ng/kg) uU/ml (pg/ml
A Kontrolle — 508 +_ 13 298 +_ 33 61^8
Beispiel 2 100 181 +_ 47+ 154 ± 39+ 22 + 7*
B Kontrolle
Beispiel 2 400
E Kontrolle —
Beispiel 4 200
F Kontrolle —
Beispiel 6 100
234 | + 36 | 187 | + 21 | 41 | + 5 |
67 | + 13* | 70 | + 23* | 9 | + 1* |
354 | ± 57 | 336 | ±31 | 62 | + 10 |
81 | +_ 6* | 128 | +_ 33* | 41 | + 14 |
363 | ± 74 | 75 | + 8 | 162 | ± 29 |
83 | + 16* | 60 | + 10 | 55 | + 12* |
* = p<C0,01
Die Fähigkeit der erfindungsgemäßen Verbindungen zur prolongierten
Inhibierung des Wachstumshormons läßt sich durch die nachfolgende Untersuchungsmethodik demonstrieren:
909844/0950
ORIGINAL INSPECTED
AHP-7272/7272-1-C1
Männliche Albinoratten wurden in zwei Gruppen (9 Ratten pro
Gruppe) aufgeteilt. Eine Gruppe erhielt eine subkutane (s.c.) Injektion der Testverbindung (typisch 1 mg/kg) in Kochsalzlösung,
und die andere Gruppe erhielt eine s .c.-Injektion der Kochsalzlösung ohne Verbindung (Kontrolle). 20 Minuten vor dem Ende der
Testperiode (2 bis 4 Stunden nach der Injektion) wurde jedem Tier eine i.p.-Injektion Natriumpentobarbital zu 50 mg/kg verabreicht. Am Ende des Experiments wurden jedem Tier durch Herzpunktur Blutproben entnommen, und jede Probe wurde mit Trasylol-EDTA vermischt. Ein aliquoter Anteil jeder Probe wurde durch
Radioimmunoassay auf GH untersucht. Die Wachstumshormonkonzentra tionen im Blut der Tiere, die mit der Testverbindung behandelt
wurden, wurden durch übliche statistische Methoden mit den Wachstumshormonkonzentrationen bei den Kontroll tieren verglichen.
Als lange wirksam klassifizierte Verbindungen ergaben bei einer ■
Dosis von 1 mg/kg nach der Injektion mindestens 2 Stunden lang i eine signifikante Abnahme der Wachstumshormonkonzentration im j
Blut.
Bei der Untersuchung nach der vorstehend beschriebenen Testmethodik ergab die Verbindung des Beispiels 2 die folgenden
Testergebnisse:
909844/0960
ORlGtNAL INSPECTED
M/20 091
AHP-7272/7272-1-C1
AHP-7272/7272-1-C1
Experiment | Verbindung | Dosis (pg/kg) |
Zeit (Std.) |
Pia (n |
sma GH g/ml) |
C | Kontrolle | 2 | 213 | + 14 | |
Beispiel 2 | 1000 | 2 | 89 | + 5** | |
Kontrolle | -- | 4 | 182 | ± 12 | |
Beispiel 2 | 1000 | 4 | 101 | + 13** | |
D | Kontrolle | — | 5 | 337 | +_ 36 |
Beispiel 2 | 1000 | Lf) | 230 | ± 31 + | |
Kontrolle | — | 6 | 234 | + 24 | |
Beispiel 2 | 1000 | 6 | 172 | +_ 34 | |
"* = ρ <O9OOI | |||||
h = p<0s05 |
Die Ergebnisse belegen, daß die Verbindung des Beispiels 2
eine prolongierte Inhibierung des Wachstumshormons ergibt.
21/V.
909844/095Q
ORIGINAL INSPECTED
Claims (1)
- AHP-7272/7272-1-C1Patentansprüche.\ Verbindungen der allgemeinen Formeln III und IV:CH9 CH9I 2 I 2X-CHCO-X1 -X2-PHe -Pne-Xg-Lys-Thr-Phe-Thr-X^NH-CH-COOH(III) undSH SHI ICH9 CH9I 2 I 2X-CHCO-X1 -Xg-Phe-Phe-Xg-Lys-Thr-Phe-Thr-X^NH-CH-COOHworin:X für H9 -NH2, -NH-Gly-Ala, -NH-D-Ala-Ala, -NH-Gly-Gly-Gly, -NH-Acetyl oder -NH-Benzoyl steht;XI die Bedeutungen His oder Arg besitzt;
X2 für His, GIu, Tyr, Trp oder Phe steht;
X3 für Trp, D-Trp oder 6-F-D-Trp steht; und
X- eine D-Ä-Aminosäure darstellt;sowie deren nicht-toxische, pharmazeutisch verträgliche Säureadditionssalze.9098ΑΑ/Π950OR(GiJSlAL INSPECTEDm/20 091 - sr- 291653RAHP-7272/7272-1-C1 ^ 3°°2. L-Cysteinyl-L-arginyl-L-histidyl -L-phenylalanyl-L-phenyl -al any!-D-tryptophyl-L-lysyl-L-threonyl-L-phenylalanyl-L-threonyl-D-tyrosyl-L-cystein cyclisches (1—>12) Disulfid.3. L-Cysteinyl-L-arginyl-L-histidyl-L-phenylalanyl-L-phenyl -alanyl-D-tryptophyl-L-lysyl-L-threonyl-L-phenylalanyl-L-threonyl-D-tyrosyl-L-cystein.4. L-Cysteinyl-L-arginyl-L-tf-glutamyl-L-phenylalanyl-L-phenylalanyl -D-tryptophyl -L*-Iysy! -L-threonyl -L-phenylalanyl-L-threonyl-D-tyrosyl-L-cystein cyclisches (1—>12) Disulfid.5. L-Cysteinyl -L-arginyl '-L-tf-glutamyl -L-phenylalanyl -L-phenylalanyl-D-tryptophyl-L-lysyl-L-threonyl-L-phenylalanyl-L-threonyl-D-tyrosyl-L-cystein.6. L-Cysteinyl-L-histidyl-L-histidyl-L-phenylalanyl-L-phenyl-: alanyl-D-tryptophyl-L-lysyl-L-threonyl-L-phenylalanyl-L-threonyl-D-seryl-L-cystein cyclisches (1—»12) Disulfid.7. L-Cysteinyl-L-histidyl-L-histidyl-L-phenylalanyl-L-phenylalanyl -D-tryptophyl-L-lysyl-L-threonyl -L-phenylalanyl-L-threonyl-D-seryl-L-cystein.S-Z
ICH9
2rz der allgemei nen Forme! V: -NH-CHCO-CH,
CH9
I Z
S-Z,-,,-PH.-,-«, "Ϊ4
Y530984 09S0 ,/"Polystyrol (V) ORIGINAL INSPECTEDworin:(a) X3 fur Trp, D-Trp oder 6-F-D-Trp steht;(b) Y die Bedeutungen H, -NH(R), -NH-GIy-AIa(R), -NH-GIy-GIy-GIy(R), -NH-D-AIa-AIa(R), -NH-Acetyl oder -NH-Benzoyl besitzt;(c) Y1 für HiS(R1) oder ArgfR^ steht;(d) Y2 die Bedeutungen HiS(R1), GIu(R2), TyKR3), Trp oder Phe besitzt;(e) Y3 für LyS(R4) steht; !(f) Y4 für Thr(R5) steht;(g) Y5 die Bedeutungen D-Pro, D-AIa, D-VaI, D-Leu, D-isoLeu, D-Ser(R5), D-Thr(R5), D-Asp(R2), D-GIu(R2), D-Lys(R4)i D-Arg(R,,), D-Asn, D-HiS(R1), D-Trp, D-Phe oder D-TyKR3) besitzt; und ;(h) Z für die p-Methoxybenzylschutzgruppe steht, wobei R eine o<-Aminoschutzgruppe darstellt und R1, R2, R3, R4 und R5 jeweils unabhängig voneinander eine Seitenketten-Schutzgruppe bedeuten.9. Peptidharz nach Anspruch 8, worin: !R für t-Butyloxycarbonyl steht; :R1 für Tosyl steht; !R2 die Bedeutung Benzyl(ester) besitzt;R3 für 2,6-Dichlorbenzyl steht;R4 für 2-Chlorbenzoyloxycarbonyl steht; undR5 die Bedeutung Benzyl(äther) besitzt.§09844/6950ORIGINAL INSPECTEDAHP-7272/7272-1-C1 ψ10. Arzneimittel, enthaltend mindestens eine Verbindung gemäß einem der Ansprüche 1 bis 7 in einem pharmazeutisch verträglichen Träger oder Bindemittel.ORIGINAL INSPECTED
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Cited By (1)
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---|---|---|---|---|
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- 1979-04-24 DE DE19792916536 patent/DE2916536A1/de not_active Withdrawn
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Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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FR2501199A1 (fr) * | 1981-03-06 | 1982-09-10 | Sandoz Sa | Nouveaux polypeptides, leur preparation et leur application comme medicaments |
Also Published As
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JPS54145630A (en) | 1979-11-14 |
FR2425426B1 (de) | 1983-11-10 |
NL7902932A (nl) | 1979-10-26 |
IT7922062A0 (it) | 1979-04-23 |
FR2425426A1 (fr) | 1979-12-07 |
IT1166758B (it) | 1987-05-06 |
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