DE2858099C2 - Verfahren zur Messung der Aktivität von γ-Glutamyl-transpeptidase - Google Patents
Verfahren zur Messung der Aktivität von γ-Glutamyl-transpeptidaseInfo
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-
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-
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Description
verwendet, worin R1 und R2 unabhängig voneinander eine Aikylgruppe mit 1 bis 5 Kohlenstoffatomen
bedeuten und
is R3 ein Wasserstoffatom, eine Aikylgruppe mit 1 bis 5 Kohlenstoffatomen, eine Carboxylgruppe oder eine
Sulfogruppe bedeutet, und
daß man die Menge des durch y-Glutamyl-transpeptidase freigesetzten p-Phenylendiamin-Derivats unier
Verwendung eines Oxidationsmittels in Gegenwart eines Kupplers colorimetrisch bestimmt.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man ein Oxidationsmittel einsetzt, das aus-20
gewählt ist unter Perjodaten, Chloramin T, Hypochloriten und Persulfaten.
3. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, daß man als Oxidationsmittel Kalimnperjodat
einsetzt.
4. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man einen Kuppler einsetzt, der ausgewählt
ist unter Phenol, a-Naphthol.jff-Naphthol, Monosulfonsäure-Derivaten von a- oder^S-Napiithol, Disulfon-
25 säure-Derivaten von a- oderjS-Naphthol, Carbonsäure-Derivaten von a- oderjJ-Naphthol und Polyhydroxyphenolen.
5. Verfahren nach Anspruch 1 oder 4, dadurch gekennzeichnet, daß man als Kuppler l-Naphthol-2-sulfonsäure
einsetzt.
6. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man als y-Glutamyl-p-aminoanilid-Derivat
L-y-GIutamyl-p-(N,N-diethylamino)anilid,
L-y-GIutamyl-p-(N,N-dimethylamino)anilid,
L-y-GIutamyI-m-methyI-p-(N,N-diethylamino)anilid oder
L-y-GIutamyl-p-(N,N-dipropylamino)anilid einsetzt.
L-y-GIutamyl-p-(N,N-dimethylamino)anilid,
L-y-GIutamyI-m-methyI-p-(N,N-diethylamino)anilid oder
L-y-GIutamyl-p-(N,N-dipropylamino)anilid einsetzt.
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Messung der Aktivität von y-Glutamyl-transpeptidase in einer Probe.
40 y-Glutamyl-transpeptidase (nachstehend »y-GTP« genannt) ist ein Enzym des y-Glutamyl-peptid-Stoffwechsels
in einem Lebewesen und überführt die y-Glutamylgruppe von y-Glutamylpeptid in andere Peptide oder
Aminosäuren.
Die Messung der y-GTP-Aktivität im Blut istein brauchbares Diagnosehilfsmittel zur Feststellung von Krankheiten
wie aktiver chronischer Hepatitis, Hepatitis aufgrund von Gallenstauungen, Obstruktionsikterus, primä-45
rem oder metastatischem Leberkrebs.
Als Substrate zur Messung der y-GTP-Aktivität sind y-Glutamyl-p-nitroanilid, y-GIutamyl-a-naphthylamid,
y-Glutamyl-./f-naphthylamid bekannt. Die Verwendung dieser Verbindungen als Substrat hat jedoch viele Nachteile,
es müssen Blindversuche von Proben unter sehr strengen Bedingungen durchgeführt werden, es müssen
sehr strenge Maßstäbe an die Messungen angelegt werden, es sind komplizierte und umständliche Verfahren
50 nötig, es gibt kein geeignetes Farbentwicklungs-Reagens mit guter Farbstabilität und α-Naprtthylamin und
^-Naphthylamin, welche als Standardsubstanz verwendet werden, sind karzinogene Verbindungen.
Die erfindungsgemäß verwendeten y-Glutamyl-p-aminoanilid-Derivate weisen ausgezeichnete Eigenschaften
als Substrat bei der Messung der y-GTP-Aktivität von lebendem Material auf.
Beim erfindungsgemäßen Verfahren verwendet man y-Glutamyl-p-aminoanilid-Derivate der allgemeinen
55 Formel I:
DJ
O O , R1
60 HO-C-CH-CHj-CHj-C-N-(CY)-N (I)
I
NH2 R2
NH2 R2
worin R' und R2 unabhängig voneinander eine Aikylgruppe mit 1 bis 5 Kohlenstoffatomen bedeuten, R3 für
65 Wasserstoff, eine Aikylgruppe mit 1 bis 5 Kohlenstoffatomen, eine Carboxylgruppe oder eine Sulfo-Gruppe
steht.
Die y-Glutamyl-p-aminoanilid-Derivate der allgemeinen Formel I werden hergestellt durch Umsetzung eines
N-Phthalyl-y-glutamyl-p-aminoanilid-Derivats der allgemeinen Formel 11:
(Π)
10
worin R1, R2 und R3 die oben angegebenen Bedeutungen besitzen, mit Hydrazin, vorzugsweise in einem
Lösungsmittel und bevorzugt bei einer Temperatur von 00C bis 600C.
In den obigen Formeln steht der Begriff »Alkylgruppe mit 1 bis 5 Kohlenstoffatomen« beispielsweise für
Methyl, Äthyl, Propyl, Isopropyl, Butyl, Isobutyl und Amyl.
Beispiele für N-Phthalyl-y-glutamyl-p-aminoanilid-Derivate ier Formel II sind: 15
N-Phthalyl-y-glutamyl-p-(N,N-dimethylamino)-anilid,
N-Phthalyl-y-glutamyl-p-(N,N-diäthylamino)-anilid,
N-Phthalyl-)>-glutamyl-p-(N,N-dipropylarnino)-amlid,
N-Phthalyl-f-&Jutamyl-o-methyl-p-(N,N-dimethylamino)-anilid, 20
N-Phthälyl-rgiuiarnyl-o-rncthyl-p-iN.N-diäthylarninoJ-aniüd,
N-Phthalyl-y-glutamyl-m-methyl-p-CN,N-diäthylamino)-anilid,
N-Phthalyl-y-gIutamyl-o-sulfo-p-(N,N-dimethylamino)-anilid,
N-Phthalyl-y-glutamyl-m-sulfo-p-(N,N-diäthylamino)-anilid,
N-Phthalyl-^glutamyl-m-carboxy-p-i^N-dimethylaminoVanilid, 25
N-Phthalyl-y-glutamyl-o-carboxy-p-iN^-diäthylaminoVanilid.
Beispiele für y-Glutamyl-p-aminoanilid-Derivate der allgemeinen Formel I sind:
y-Glutamyl-p-(N,N-dimethylamino)-anilid, 30
y-Glutamyl-p-^N-diathylaminoVanilid,
y-Glutamyl-p-(N,N-dipropylamino)-anilid, j^Glutamyl-o-methyl-(N,N-dimcthylamino)-anilid,
y-Glutamyl-o-methyl-p-(N,N-diäthylamino)-anilid,
y-Glutamyl-m-methyl-p-(N,N-diäihylamino)-anilid, 35
y-Glutamyl-o-sulfo-p-(N,N-dimethylamino)-aniIid,
y-Glutamyl-m-sulfo-p-(N,N-diäthylamino)-anilid,
y-Glutamyl-m-carboxy-p-CN^-dimethylaminoHnilid,
y-Glutamyl-o-carboxy-p-CN^-diäthylaminoHnilid.
Die N-Phthalyl-y-glutamyl-p-aminoanilid-Derivate der allgemeinen Formel II können beispieisweise hergestellt
werden, indem man N-Phthalylglutaminsäureanhydrid mit einem p-Phenylendiamin-Derivat der allgemeinen
Formel III:
(ΠΙ)
50
worin R\ R2 und R3 die oben angegebenen Bedeutungen besitzen, wie folgt umsetzt:
55
60
^yx I Il
OT N-CH-(CH2^-C-N
C/
15 |( )\ Ν — CH-iCH^C—N^ ( ) >—N (Π)
Die Reaktion kann durchgeführt werden, indem n.'an eine theoretische Menge oder eh'-.u geringen Überschuß
N-Phthalylglutaminsäureanhydrid. erforderlichenfalls in Gegenwart eines organischen Lösungsmittels,
wie Chloroform, gegebenenfalls in Gegenwart einer organischen Säure, wie Essigsäure, bei einer Temperatur
von 200C bis 1000C umsetzt. Nach beendeter Reaktion kann das sich ergebende N-Phthalyl-y-glutamyl-n-ami-25
noanilid-Derivat der allgemeinen Formel II auf herkömmliche Weise abgetrennt werden.
Beispiele für p-Phenylendiamin-Derivate der allgemeinen Formel III sind:
Ν,Ν-Dimethyl-p-phenylendiamin,
Ν,Ν-Diäthyl-p-phenyleiidiamin,
30 Ν,Ν-Dipropyl-p-phenylendiamin,
30 Ν,Ν-Dipropyl-p-phenylendiamin,
o-Methyl-p-(N,N-dimethylamino)-anilin,
o-Methyl-p-(N,N-diäthylamino)-anilin,
m-Methyl-p-(N,N-diäthylamino)-anilin,
o-Sulfo-p-(N,N-dimethylamino)-anilin,
35 m-Sulfo-p-(N,N-diäthylamino)-anilin,
35 m-Sulfo-p-(N,N-diäthylamino)-anilin,
m-Carboxy-p-(N,N-dimethylamino)-anilin,
o-Carboxy-p-(N,N-diäthyiamino)-aniiin.
Die Umsetzung des N-Phthalyl-y-glutamyl-p-aminoanilid-Derivats der allgemeinen Formel II mit Hydrazin
40 kann w^e folgt durchgeführt werden:
N-CH-(CH2^-C-N
HO-C-CH-CH2-NH2
Il
-CH2-C-N H
R3
-<ά^κ
R'
Als Hydrazin kann Hydrazin als solches (NH2NH2), Hydrazinhydrat (NHjNH2 H2O), Hydrazinsalze, wie
Mineralsalze, beispielsweise Sulfat oder Hydrochlorid verwendet werden. Üblicherweise verwendet man
Hydrazinhydrat (NH2NH2 ■ H2O).
Vorzugsweise verwendet man bei der Reaktion ein Lösungsmittel. Üblicherweise können Wasser oder organische
Lösungsmittel, welche die Umsetzung nicht ungünstig beeinflussen verwendet werden. Beispiele organischer
Lösungsmittel sind wasserlösliche, polare organische Lösungsmittel, wie Alkohole, beispielsweise
Methanol, Äthano1 Propanol, Isopropanol oder Äthylenglycol; Hydroxyäther, beispielsweise Methyl-Cellosolve:
Äther, beispielsweise Tetrahydrofuran oder Dioxan.
| umgesetzte Menge | Verhältnis |
| (nilU) | |
| 220') | 100,0 |
| 2302) | 104,5 |
| i 0 ΐ Α | |
| 2122) | 96,4 |
| 194-) | 88,2 |
Die Umsetzung erfolgt im allgemeinen bei einer Temperatur von 00C bis 60°C, vorzugsweise von 100C bis
300C. Man verwendet eine theoretische Menge oder einen geringen Überschuß des Hydrazins.
Nach beendeter Umsetzung wird das Endprodukt der allgemeinen Formel I abgetrennt, und nötigenfalls auf
herkömmliche Weise gereinigt.
Die y-Glutamyl-p-aminoanilid-Derivate der allgemeinen Formel I haben die g'.eiche oder eine noch größere
Substrat-Affinität (Substrat-Reaktivität) gegenüber y-GTP wie y-Glutamyl-p-nitroanilid, das vielfach als Substrat
zur Messung der y-GTP-Aktivität verwendet wurde, wie sich aus der nachstehenden Tabelle ergibt.
Tabelle
Substrat-Reaktivität
Substrat-Reaktivität
Substrat
L-y-GIutamyl-nitroanilid (Vergleichssubstanz)
L-}'-Glutamyl-p-(N,N-dimethylamino)-anilid
L-y-ülutamyl-p-(N,N-diäthylamino)-anilid
L-y-Glutamyl-p-(N,N-dipropylamino)-anilid
L-y-Glutamyi-m-methyl-p-(N,N-diäthylamino)-anilid
L-y-ülutamyl-p-(N,N-diäthylamino)-anilid
L-y-Glutamyl-p-(N,N-dipropylamino)-anilid
L-y-Glutamyi-m-methyl-p-(N,N-diäthylamino)-anilid
Anmerkung:
!> Der Wert wurde auf herkömmliche Weise gemessen.
:) Die Werte wurden nach dem in Beispiel i der vorliegenden Anmeldung beschriebenen Verfahren erhalten.
Demgemäß können die y-Glutamyl-p-aminoanilid-Derivate der allgemeinen Formel I zufriedenstellend als
Substrat zur Messung der y-GTP-Aktivität verwendet werden.
Bei einem herkömmlichen Verfahren zur Messung der y-GTP-Aktivität in Lebewesen unter Verwendung von
y-Glutamyl-p-nitroanilid als Substrat, kann man die Menge an durch y-GTP freigesetztem p-Nitroanilin durch
Messung der optischen Absorptionen bei 4i0 nm bestimmen oder kann alternativ die y-GTP-Aktivität aus der
optischen Absorption bei einer maximalen Wellenlänge nach Farbentwicklung von p-Nitroanilin unter Verwendung
eines Aldehyds, wie p-Dimethylaminozimtaldehyd oder p-Dimethylaminobenzaldehyd, als Farbentwickler
berechnen. Bei dem Verfahren zur Messung der Absorption von p-Nitroanilin bei 410 nm müssen Blindversuche
unter höchst exakten Bedingungen durchgeführt werden, da die Wellenlängen anderer Bestandteile der
lebenden Probe sehr nahe am Wert der zu messenden Wellenlänge liegen, und außerordentlich exakte Arbeitsweisen
müssen angewandt werden, um genaue Daten zu erhalten, was das Verfahren sehr kompliziert und aufwendig
macht. Bei dem Verfahren der Farbentwicklung von p-Nitroanilin mit einem Aldehyd, wie p-Dimethyiaminozimtaldehyd
müssen ebenfalls sehr exakte und aufwendige Verfahren angewandt werden, um genaue
Messungen zu erzielen; man verwendet eine Zelle mit konstanter Temperatur, da die optische Absorption der
Farbsubstanz mit der Temperatur abnimmt; beispielsweise nimmt ein Absorptionswert gemessen bei 37°C bei
200C um die Hälfte ab. Somit ergibt sich, daß die Verwendung von y-Glutamyl-p-nitroanilin als Substrat nicht
praktisch und für alltägliche Testverfahren, bei denen Genauigkeit und Schnelligkeit erforderlich sind, ungeeignet
ist.
Es wurde dagegen festgestellt, daß man bei Verwendung der y-Glutamyl-p-aminoanilid-Derivate der allgemeinen
Formel I als Substrat zur Messung der y-GTP-Aktivität bei Proben exakte und rasche Messungen durchführen
kann, da eine große Sensitivität für die Farbreaktion und eine rasche Farbentwicklungsreaktion vorliegen.
Verwendet man das y-Glutamyl-p-amino-anilid-Derivat der Formel I als Substrat bei der Messung der y-GTP-Aktivität,
so wird die Menge an p-Phenylendiamin-Derivat gemessen, die durch die enzymatisch^ y-GTP-Aktivität
entwickelt wird. Bei der Bestimmung der Menge an p-Phenylendiaminderivat kann man verschiedene herkömmliche
Verfahren zur Bestimmung aromatischer Amine mittels Farbentwicklung anwenden, beispielsweise
das Diazo-Kupplungsverfahren, ein Verfahren durch das eine Schiffsche Base bestimmt wird, welche durch
Umsetzung einer Aldehyd-Verbindung erhalten wurde. Man bestimmt die gefärbte Verbindung, welche durch
Oxydation erhalten wird. Das p-Phenyiendiamin-Derivat wird in Gegenwart eines Kupplers, der eine gefärbte
Substanz erzeugen kann oxidiert, indem man den Kuppler oxydativ mit dem p-Phenylendiamin kondensiert.
Hierbei ergibt sich eine gefärbte Substanz, welche colorimetrisch bestimmt wird, um die y-GTP-Aktivität zu
messen.
Bei der Messung der y-GTP-AJctivität unter Verwendung des y-Glutamyl-p-aminoanilid-Derivats der allgemeinen
Formel I als Substrat, verwendet man vorzugsweise einen pH im Bereich von 7,5 bis 9,0. Um den pH im
geeigneten Bereich zu halten, kann man Puffer, wie Phosphate, Borate, Carbonate, Tris(hydroxymethyl)aminomethan,
Barbital, Triethanolamin oder Glycin verwenden. Von diesen Puffern verwendet man wiederum vorzugsweise
anorganische Salze, wie Borate, Phosphate und Carbonate.
Das hergestellte p-Phenylendiamin-Derivat kann leicht durch Einwirkung eines Oxydationsmittels in eine
gefärbte Verbindung überführt werden. In diesem Fall wendet man oxydative Kondensation in Gegenwart eines
Kupplers an. Wird beispielsweise die Oxydation bei einem pH von etwa 4 bis 9 durchgeführt, so erhält man eine
Verbindung mit einer maximalen Absorption bei etwa 510 nm. Wird die ci/dative Kondensation in Gegenwart
eines Kupplers, wie Phenol oder eines Naphthols durchgeführt, so kann man eine gefärbte Verbindung mit einer
maximalen Absorption bei —670 nm erhalten. Es können alle Kuppler verwendet werden, welche bei oxydativer
Kondensation mit dem p-Phenylendiamin-Derivat gefärbte Substanzen ergeben. Beispio' für solche Kuppler
sind Phenol, σ-Naphthol, ,^-Naphthol und deren Derivate, wie Monosulfonsäuredcrivate, beispielsweise
l-Naphthol-2-suIfonsäure, l-Naphthol-8-sulfonsäure, 2-Naphthoi-7-sulfonsäure oder2-Naphlhol-8-sulfonsäure
sowie deren Salze, Disullonsäurederivate, wie z. B. 2-Naphthol-3,6-disulfonsäure, 2-Naphthol-6,8-disulfonsäure,
sowie deren Salze, Carbonsäure-Derivate, beispielsweise l-Naphthol-2-carbonsäure, Salicylsäure sowie
de^n Salze, Polyhydroxyphenole, z. B. Katechin und Brenzkatechin.
Die Farbentwicklungsreaktion bei der Herstellung einer gefärbten Verbindung durch Oxydation oder durch
ίο oxydative Kondensation in Gegenwart eines Kupplers kann quantitativ sofort bei einem pH von etwa 4 bis 12
erfolgen. Um den pH-Wert im oben erwähnten Bereich zu halten, können Puffer oder Alkalien, wie Alkalihydroxyde,
-carbonate, -phosphate oder -borate wirksam verwendet werden.
Es können alle Oxydationsmittel verwendet werden welche durch Oxydation oder oxydative Kondensation
eine Farbentwicklung des p-Phenylendiamin-Derivats bewirken. Beispiele für solche Oxydationsmittel sind
Oxydationsmittel der Halogenreihe, wie Perjodate, Chloramin T, Hypochlorite, und Oxydationsmittel der Peroxydreihe,
wie Persulfate.
Die durch oxydative Kondensation des p-Phenylendiamin-Derivats mit dem Kuppler hergestellte Verbindung
ist blau mit einer maximalen Absorption bei —670 nm, welche kaum durch Verunreinigungen mit Absorptionen
bei etwa 400 und 570 um, wie sie in Proben vorhanden sind, beeinflußt n'ird; die Farbempfindlichkeit ist sehr
hoch, die Farbstabilität ist gut und die Absorption verändert sich kaum aufgrund von Temperaturveränderungen,
so daß das erfindungsgemäße Verfahren zur Messung der ^GTP-Aktivität bei Proben sehr exakt und in der
Praxis brauchbar ist.
Die erfindungsgemäße Messung der Aktivität wird nachstehend noch detaillierter erläutert.
Beispielsweise gibt man zu 1,0 ml einer Pufferlösung mit 0,05 Mol/l Borsäure mit pH 8,0, welche 10mMol/ly-Glutamy!-p-(N,N-diäthylamino)-ani!id und 20 mMol/1 Giycylglycin enthält, eine lebende Probe, beispielsweise 0,02 ml Serum und erhitzt in einem konstanten Temperaturbad 15 Minuten auf 37°C. Man mischt die Reaktionslösung mit 1,0 ml einer 0,2 Gew-%igen Phenollösung zusammen mit 1,0 ml Borsäurepufferlösung (0,3 Mol/l) von pH 8,0, welche 0,2 Gew.-% Kaliumperjodat enthält. Die Reaktionslösung zeigt sofort eine Blaufärbung mit einer maximalen Absorption bei 670 nm. Die optische Absorption der Reaktionslösung bei 670 nm wird gemessen und mit einer Probe aus einem Blindversuch verglichen, bei dem Wasser anstelle der Serumprobe verwendet u urde. Die y-GTP-Aktivität in der Probe kann berechnet werden unter Verwendung einer Kalibrierungskurve, die auf herkömmliche Weise erhalten wurde unter Verwendung bekannter Mengen an Standard-Serum oder Ν,Ν-Diäthyl-p-phenylendiamin.
Beispielsweise gibt man zu 1,0 ml einer Pufferlösung mit 0,05 Mol/l Borsäure mit pH 8,0, welche 10mMol/ly-Glutamy!-p-(N,N-diäthylamino)-ani!id und 20 mMol/1 Giycylglycin enthält, eine lebende Probe, beispielsweise 0,02 ml Serum und erhitzt in einem konstanten Temperaturbad 15 Minuten auf 37°C. Man mischt die Reaktionslösung mit 1,0 ml einer 0,2 Gew-%igen Phenollösung zusammen mit 1,0 ml Borsäurepufferlösung (0,3 Mol/l) von pH 8,0, welche 0,2 Gew.-% Kaliumperjodat enthält. Die Reaktionslösung zeigt sofort eine Blaufärbung mit einer maximalen Absorption bei 670 nm. Die optische Absorption der Reaktionslösung bei 670 nm wird gemessen und mit einer Probe aus einem Blindversuch verglichen, bei dem Wasser anstelle der Serumprobe verwendet u urde. Die y-GTP-Aktivität in der Probe kann berechnet werden unter Verwendung einer Kalibrierungskurve, die auf herkömmliche Weise erhalten wurde unter Verwendung bekannter Mengen an Standard-Serum oder Ν,Ν-Diäthyl-p-phenylendiamin.
Läßt man das erfindungsgemäße Substrat in Form einer wäßrigen Lösung stehen, so kann durch Hydrolyse ein
p-Phenylendiamin-Derivat freigesetzt werden. Man kann dies jedoch verhindern, indem man der Lösung einen
Puffer zusetzt oder die molare Konzentration des Puffers regelt. Im Fall einer Phosphorsäure-Pufferlösung mit
einem pH 8,0 oder einer Tris-Pufferlösung mit pH 8,0 wird beispielsweise die Freisetzung an p-Phenylendiaminderivat
um so geringer je niedriger die molare Konzentration des Puffers wird. Im Falle von Boraten dagegen findet
unabhängig von der molaren Konzentration nahezu keine Freisetzung von p-Phenylendiamin-Derivat statt.
Gibt man einen Alkohol, wie Methanol, Äthanol, Propanol, Butanol, Äthylenglycol, Propylenglycol, Diäthylenglycol
oder Glycerin in einer Menge von etwa 0,01 bis 3,0 Gew.-%, bezogen auf das Endgewicht der gefärbten
Lösung zu der zu messenden Lösung, so hat dies einen günstigen Einfluß auf die Farbstabilität.
Wie bereits erwähnt, gestattet die. Verwendung des y-Glutamyl-p-aminoanilid-Derivats der Formel I bei der
Messung der y-GTP-Aktivität an einer lebenden Probe exakte und rasche Messungen, ohne daß Sicherheits-
oder Gesundheitsprobleme bei der Handhabung auftreten. Da darüberhinaus die Färbeempfindlichkeit sehr
hoch ist und die Farbentwicklungsreaktion sofort vollständig durchgeführt werden kann, kann das erfindungsgemäße
Meßverfahren auch bei automatischen Analysevorrichtungen angewandt werden.
Die nachstehenden Beispiele sollen die Erfindung näher veranschaulichen. Die angegebenen Prozentsätze
stellen Gewichtsprozent dar, falls nichts anderes angegeben ist.
Vergleichsbeispiel 1
Eine Mischung von 110 g N-Phthalyl-L-glutaminsäure-anhydrid, 69,3 g Ν,Ν-Diäthyl-p-phenylendiamin,
440 ml Chloroform und 82,5 ml Essigsäure erhitzt man 1 Stunde zum Rückfluß. Nachdem man das Chloroform
abdestilliert hat, gibt man Äthanol zu, damit sich Kristalle bilden. Diese Kristalle werden abfiltriert, gewaschen
und getrocknet, wobei man 160 g N-PhthalyI-L-y-glutamyl-p-(N,N-diäthylamino)-anilid mit einem Fp. 189°C
bis 190,50C erhält.
Verwendet man anstelle des Ν,Ν-Diäthyl-p-phenylendiamins Ν,Ν-Dimethyl-p-phenylendiamin, N,N-Dipropyl-p-phenylendiamin
oder m-Methyl-p-(N,N-diäthylamino)-anilin, so erhält man entsprechend N-Phthalyl-L-y-glutamyl-p-{N,N-dimethylamino)anilid,
N-Phthalyl-L·)»-glutamyl-Γ>-(NίN-dipΓopylaInino)-an^lid oder
N-Phthalyl-L-)vglutamyl-m-methyl-p-{N,N-diäthylamino)anilid.
Herstellungsbeispiel 1
Zu 10 g N-Phthalyl-L-y-glutamyl-p-(N^l-diäthylamino)-anilid, das gemäß Vergleichsbeispiel 1 erhalten
wurde, gibt man 70 ml Methanol und 13,2 ml einer 80%igen wäßrigen Hydrazinhydratiösung und mischt. Die
erhaltene Mischung rührt man dann 2 Tage bei Raumtemperatur, um die Reaktion durchzurühren. Dann wird
die Reaktionsmischung abfiltriert, gewaschen und getrocknet, wobei man 14,7 g L-)>-Glutainyl-p-(N,N-diäthyI-
amino)-anilid in Form von weißen Kristallen mit einem Fp. von 217-220°C (Zers.) erhält.
Analyse Ci5H23O3N3 ■ 2HCI ■ H2O:
Berechnet: C 46,88 H 7,08 N 10,94%;
Gefunden: C47,27 H 7,27 N 10,78%.
Ia]Jl' = +17,3° (c = 3,0 in Methanol).
Herstellungsbeispiel 2
Verwendet man das in Vergleicnabeispiel 1 erhaltene N-Phthalyl-L-y-glutamyl-p-(N,N-dimethylamino)-anilid
anstelle des in Beispiel 1 verwendeten N-Phthalyl-L-y-glutamyl-p-(N,N-diäthylamino)-anilids, so erhält man
entsprechend auf die gleiche Weise wie in Herstellungsbeispiel 1 beschrieben L-y-Glutamyl-p-(N,N-dimethylamino)anilid.
Auf die gleiche Weise erhält man L-)>-Glutamyl-p-(N,N-dipropylamino)-anilid oder L-y-Glutamylm-methyl-p-(N,N-diäthylenamino)-anilid
wenn man entsprechend die in Vergleichsbeispiel 1 erhaltenen Verbindungen N-Phthalyl-L-y-glutamyl-p-(N,N-dipropylamino)-anilid oder N-Phthalyl-L-y-glutamyl-m-methyl-p-(N,N-diäthyIamino)-anilid
verwendet.
Reagenzlösungen
1) Substratpufferlösung:
Man stellt eine Pufferlösung aus 0,05 Mol/l Borsäure mit pH 8,0 her, die 10 mMol L-^Glutamyl-p-(N,N-diäthylamino)-anilid
gemäß Herstellungsbeispiel 1,20 mMol/lGlycylglycin, 0,2 mMol/1 l-Naphthol-2-sulfonsäure
und 2% Äthylenglycol enthält.
2) Oxydationsreagenzlösung:
Man stellt eine Pufferlösung aus 0,3 Mol/l Borsäure mit pH 8,0 her, die 0,2% Kaliumperjodat enthält.
Meßverfahren
Zu 1,0 ml Substratpufferlösung gibt man 0,02 ml Serumprobe und mischt gut. Anschließend erwärmt man die
Mischung 15 Minuten lang in einem Bad, das bei einer konstanten Temperatur von 37°C gehalten wird. Zu der
Mischung gibt man dann 2,0 ml Oxydationsreagenslösung, um die Farbentwicklung durchzuführen.
Es wird eine Absorption der Probe bei 670 nm gemessen. Als Kontrolle wird in einem Blindversuch auf die
gleiche Weise wie oben beschrieben eine Lösung hergestellt, welche jedoch 0,02 ml Wasser anstelle der Serumprobe
enthält, und man mißt ebenfalls die Absorption. Die y-GTP-Aktivität wird dann durch Vergleich niii der Kaiibrierungskurve
berechnet, welche auf herkömmliche Weise unter Verwendung von Ν,Ν-Diäthyl-p-phenylendiamin
erhalten wurde.
Beispiel 2
Reagenzlösungen
Reagenzlösungen
1) Substratpufferlösung:
Man stellt eine Pufferlösung aus 0,05 Mol/l Borsäure mit pH 8,0 her, die 10 mMol/1 L-y-Glutamyl-p-(N,N-dimethylamino)-anilid
gemäß Herstellungsbeispiel 2 und 20 mMol/1 Glycylglycin enthält.
2) Oxydationsreagenzlösung: Man stellt eine Pufferlösung von 0,3 Mol/l Borsäure mit pH 8,0 her, welche 0,2% Kaliumperjodat enthält.
Meßverfahren
Zu 2,0 ml Substratpufferlösung gibt man 0,02 ml Serumprobe und mischt gut. Anschließend erhitzt man die
Mischung in einem Bad das bei einer konstanten Temperatur von 37°C gehalten wird. Dann gibt man 2,0 ml
Oxydationsreagenzlösung zu der Mischung, um die Farbentwicklung durchzuführen. Man mißt eine Absorption
der Probe bei 510 nm. Als Kontrolle verwendet man eine Reagenzvergleichslösung, welche auf die gleiche
Weise wie oben beschrieben hergestellt wurde, jedoch 0,02 ml Wasser anstelle der Senunprobe enthält und mißt
ebenfalls die Absorption. Die y-GTP-Aktivität wird berechnet, indem man mit der Kalibrierungskurve vergleicht,
welche auf herkömmliche Weise unter Verwendung von p-(N,N-Dimethylamino)-anilin erhalten wurde.
Unter Verwendung von L-y-Glutamyl-p-(N,N-dipropylamino>anilid als Substrat, das gemäß Herstellungsbei- 6
spiei 2 erhalten wurde, bestimmt man die y-GTP-Aktivität aui die gleiche Weise wie in Beispiel 1 beschrieben.
Unter Verwendung des gernäß Herstellungsbeispiel 2 erhaltenen L-y-Glutamyl-o-methyl-p-(N,N-diathylamino)anilids
als Substrat bestimmt man die y-GTP-Aktivität aufdie gleiche Weise wie in Beispiel 3 beschrieben.
Claims (1)
1. Verfahren zur Messung der Aktivität von y-Glutamyl-transpeptidase in einer Probe, dadurch gekennzeichnet,
daß man als Substrat ein y-Glutamyl-p-aminoanilid-Derivat der allgemeinen Formel
O O
Il 11
HO-C-CH-CH2-CH2-C—N
I ι
NH2 H
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