DE2300478C3 - Verfahren zur aeroben Züchtung von Hefen in synthetischen Medien - Google Patents
Verfahren zur aeroben Züchtung von Hefen in synthetischen MedienInfo
- Publication number
- DE2300478C3 DE2300478C3 DE19732300478 DE2300478A DE2300478C3 DE 2300478 C3 DE2300478 C3 DE 2300478C3 DE 19732300478 DE19732300478 DE 19732300478 DE 2300478 A DE2300478 A DE 2300478A DE 2300478 C3 DE2300478 C3 DE 2300478C3
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- carbon source
- value
- base
- amount
- yeast
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired
Links
- 240000004808 Saccharomyces cerevisiae Species 0.000 title claims description 20
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 9
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 36
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 claims description 36
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 18
- 239000002609 media Substances 0.000 claims description 15
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 claims description 11
- QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N ammonia Chemical compound N QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 10
- 239000002028 Biomass Substances 0.000 claims description 8
- 239000002253 acid Substances 0.000 claims description 8
- 239000001963 growth media Substances 0.000 claims description 7
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 claims description 7
- 229910052500 inorganic mineral Inorganic materials 0.000 claims description 5
- 239000011707 mineral Substances 0.000 claims description 5
- 150000003863 ammonium salts Chemical class 0.000 claims description 4
- GNSKLFRGEWLPPA-UHFFFAOYSA-M Monopotassium phosphate Chemical compound [K+].OP(O)([O-])=O GNSKLFRGEWLPPA-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 2
- NOTVAPJNGZMVSD-UHFFFAOYSA-N Potassium oxide Chemical compound [K]O[K] NOTVAPJNGZMVSD-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 229910000402 monopotassium phosphate Inorganic materials 0.000 claims description 2
- 235000019796 monopotassium phosphate Nutrition 0.000 claims description 2
- 229910001392 phosphorus oxide Inorganic materials 0.000 claims description 2
- 229910001950 potassium oxide Inorganic materials 0.000 claims description 2
- VSAISIQCTGDGPU-UHFFFAOYSA-N tetraphosphorus hexaoxide Chemical compound O1P(O2)OP3OP1OP2O3 VSAISIQCTGDGPU-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 239000002585 base Substances 0.000 claims 3
- 230000001105 regulatory Effects 0.000 claims 2
- 229910001854 alkali hydroxide Inorganic materials 0.000 claims 1
- 150000008044 alkali metal hydroxides Chemical class 0.000 claims 1
- 150000007529 inorganic bases Chemical class 0.000 claims 1
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 27
- 235000019749 Dry matter Nutrition 0.000 description 10
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 6
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 6
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 description 4
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 description 4
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 4
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 4
- NLXLAEXVIDQMFP-UHFFFAOYSA-N Ammonium chloride Substances [NH4+].[Cl-] NLXLAEXVIDQMFP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 3
- 241000235646 Cyberlindnera jadinii Species 0.000 description 2
- 241000235015 Yarrowia lipolytica Species 0.000 description 2
- VHUUQVKOLVNVRT-UHFFFAOYSA-N ammonium hydroxide Chemical compound [NH4+].[OH-] VHUUQVKOLVNVRT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 235000011114 ammonium hydroxide Nutrition 0.000 description 2
- ZXVOCOLRQJZVBW-UHFFFAOYSA-N azane;ethanol Chemical compound N.CCO ZXVOCOLRQJZVBW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 230000037348 biosynthesis Effects 0.000 description 2
- 230000001488 breeding Effects 0.000 description 2
- 230000000875 corresponding Effects 0.000 description 2
- 150000002430 hydrocarbons Chemical class 0.000 description 2
- 239000002054 inoculum Substances 0.000 description 2
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 2
- QJGQUHMNIGDVPM-UHFFFAOYSA-N nitrogen group Chemical group [N] QJGQUHMNIGDVPM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 2
- 230000002194 synthesizing Effects 0.000 description 2
- -1 ammonium ions Chemical class 0.000 description 1
- 230000005591 charge neutralization Effects 0.000 description 1
- 230000003247 decreasing Effects 0.000 description 1
- 238000004090 dissolution Methods 0.000 description 1
- 238000005755 formation reaction Methods 0.000 description 1
- 239000000446 fuel Substances 0.000 description 1
- 230000005484 gravity Effects 0.000 description 1
- 150000002500 ions Chemical class 0.000 description 1
- 150000002632 lipids Chemical class 0.000 description 1
- 239000002207 metabolite Substances 0.000 description 1
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 1
- 239000011259 mixed solution Substances 0.000 description 1
- 230000001264 neutralization Effects 0.000 description 1
- 238000006386 neutralization reaction Methods 0.000 description 1
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 description 1
- MYMOFIZGZYHOMD-UHFFFAOYSA-N oxygen Chemical compound O=O MYMOFIZGZYHOMD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 238000001243 protein synthesis Methods 0.000 description 1
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 1
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 1
- 230000000576 supplementary Effects 0.000 description 1
- 230000014616 translation Effects 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Description
40
Die Erfindung bezieht sich auf ein Verfahren gemäß dem Oberbegriff des Patentanspruchs 1.
Bisher werden derartige Züchtungen in synthetischen Medien, die alle erforderlichen Nährstoffe enthalten.
von denen Kalium und Phosphoroxid im Form von Kaliumdihydrogenphosphat und Stickstoff in Form
eines Ammoniumsalzes einer starken Mineralsäure vorhanden sind, so durchgeführt, daß die zur Neutralisation
der aus dem Ammoniumsalz bei der Hefeproteinsynthese frei werdenden Mineralsäure und zur Aufrechterhaltung
des festgelegten optimalen pH-Wertes erforderliche Base gemeinsam mit der Kohlenstoffquelle
zudosiert wird. Die gleichzeitig dosierte Zugabe von Base und Kohlenstoffquelle wird dabei mittels eines auf
den optimalen pH-Wert eingestellten Regel-pH-Meters gesteuert. Von diesem pH-Meter wird ein Impuls für die
Zudosierung geliefert, wenn der pH-Wert des Kulturmediums unter den eingestellten Sollwert absinkt.
Dabei wird die Tatsache ausgenutzt, daß die dem Verbrauch an Ammoniumionen aus dem Salz der
starken Mineralsäure entsprechende Menge der freigesetzten Säure der gebildeten Hefenmenge mit einem
bestimmten Gehalt an stickstoffhaltigen Stoffen proportional ist. Dieser Menge ist auch die äquivalente
Menge der Base, die zur Regelung des pH-Wertes des Kulturmediums auf den Optimalwert angewandt wird,
nrnnoriional. Wenn nun der durchschnittliche Stickstoffgehalt der gebildeten Hefemasse und der Ausbeute-KoefßzienA
der Kultur bekannt sind, kann das Verhältnis von zudosierter Basemenge zur optimalen Menge an
zuzusetzender Kohlenstoffquelle errechnet werden. Infolgedessen kann man durch parallele Zudosierung
von Base und Kohlenstoffquelle im Verlauf der Züchtung den optimalen pH-Wert und die optimale
Menge an kohlenstoffhaltigen Nänrstoffen aufrechterhalten.
Eine optimale Regelung der Zufuhr der Kohienstoffquelle
ist jedoch nur dann zu erreichen, wenn das erforderliche Mengenverhältnis von Base und Kohlenstoffquelle
richtig bestimmt wird, was nur bei gut erforschten und beherrschten Kultivierungsprozessen,
bei denen ein stabiler Stickstoffgehalt in der erzeugten Biomasse und konstante Werte für den Ausbeutekoeffizienten
erzielt werden, möglich ist. Bei weniger bekannten Kultivierungen, für die es nicht möglich ist.
im voraus ein entsprechendes Verhältnis von Base und Kohlenstoffquelle genau /u bestimmen, kann es zur
Erschöpfung oder zur Überdosierung der Kohlenstoffquelle kommen. Wenn keine Kohlenstoffquelle vorhanden
ist, hört nun der Kultivierungsprozeß auf. während ein Überschuß an Kohlenstoffquelle zur Bildung von
unerwünschten Metaboliten und Herabsetzung der Ausbeute führen kann.
Wenn die Kultivierung in solchen Fällen unter Anwendung des obenerwähnten Verfahrens durchgeführt
wird, reagiert das pH-Meter bei Erschöpfung der Kohlenstoffquelle nicht und die Zudosierung setzt aus.
Demzufolge hört natürlich auch der Kultivierungsprozeß wegen Abwesenheit von kohlenstoffhaltigen
Nährstoffen auf. Das bisherige Verfahren mit einstigem Regel-pH-Meter kann daher für Züchtungen, bei
denen sich der pH-Wert bei mangelnder Kohlenstoffquelle nicht in einer solchen Form ändert, auf die das
Regel-pH-Meter ansprechen würde, nicht angewandt werden.
In Abhängigkeit von der Zusammensetzung der Kulturmedien wird nämlich der Mangel an kohlenstoffhaltigen
Nährstoffen in manchen Fällen dadurch merkbar, daß das Absinken des pH-Wertes aufhört und
in anderen Fällen dadurch, daß der pH-Wert des Kulturmediums heftig ansteigt.
Die angeführten Nachteile beseitigt das erfindungsgemäße Verfahren.
Die Erfindung ist im Patentanspruch 1 definiert.
Die Patentansprüche 2 und 3 stellen vorteilhafte Ausgestaltungen der Erfindung dar.
So kommt es z. B. bei der Züchtung der Hefe Candida utilis in einem Medium mit synthetischem Äthanol in
dem Augenblick, in dem die Mikroorganismen das Äthanol verbrauchen bzw. aufbrauchen, zum raschen
Ansteigen des pH-Wertes. Innerhalb einiger Minuten steigt der pH-Wert bis um 0,6 an. Bei diesem Kulturtyp
wird zur Zudosierung der Kohlenstoffquelle das pH-Meter für zweiseitige Regelung mit einem eingestellten
engen Regelbereich von 0,1 bis 0,6 pH, vorzugsweise 0,3 pH, benutzt.
Wenn der pH-Wert unter den unteren Wert des eingestellten Bereichs absinkt, wird eine Lösung der
Base, am besten Ammoniak, oder eine Lösung der Base sowie die Kohlenstoffquelle zudosiert, wobei das
Verhältnis der Menge der Kohlenstoffquelle zur Menge der Base niedriger ist, als dem aus dem vorausgesetzten
Stickstoffgehalt in der Biomasse und dem Ausbeutekoeffizienten errechneten Verhältnis entspricht (vgl.
hierzu den Patentanspruch 1). Bei Abwesenheit bzw.
Aufbrauch der Kohlenstoffquellc steigt nun der pH-Wert rasch an, und beim Oberschrehen der oberen
Grenze des eingestellten pH-Bereichs wird die Kohlenstoffquelle zudosiert Durch Zugabe der Kohlenstoffquelle
wird die Biosynthese der Eiweißstoffe wiederhergestellt,
der pH-Wert sinkt rasch zum unteren Wert des eingestellten Bereichs ab, und der Prozeß wiederholt
sich.
Als Beispiel für einen anderen Kulturtyp, bei dem es
im Fall mangelnder Kohlenstoffquelle nicht zu einem raschen Anstieg des pH-Wertes, sondern nur zum
Ausbleiben des Absinkens dieses Wertes kommt, kann die Züchtung der Hefe Candida lipolytica in einem
Medium mit isolierten n-AJkanen dienen. Für diesen zweiten Kuliurtyp wird zur automatischen Zudosierung
der Kohlenstoffquelle ein pH-Meter für einseitige Regelung mit angeschlossenem, durch einen Auöenimpuls
aus dem pH-Meter gesteuerten Zeitschalter angewandt
Bei Anwesenheit der Kohlenstoffquelle im Nährmedium hat der pH-Wert infolge der Biosynthese der
Eiweißstoffe und des allmählichen Verbrauchs der NH4 +-Ionen aus dem Ammoniumsalz der starken
Mineralsäure eine sinkende Tendenz. Beim Absinken des pH-Wertes unter den eingestellten Wert wird die
Lösung der Base, am besten des Ammoniaks oder die Lösung der Base sowie die Kohlenstoffquelle zudosiert
wobei das Verhältnis der Menge der Kohlenstoffquelle zur Menge der Base wiederum niedriger ist. als es dem
aus dem vorausgesetzten Stickstoffgehalt in der Biomasse und dem Ausbeutekoeffizienten errechneten
Verhältnis entspricht (vgl. hierzu Patentanspruch 1)
Nach dem Aufbrauchen der Kohlenstoffquelle hört die Synthese der Eiweißstoffe sowie das Absinken des
pH-Wertes auf, und der pH-Weri stabilisiert sich auf einen Wert der nur unbedeutend höher ist ah der auf
dem pH-Meter eingestellte Wert. Mit dem Zeitgeber wird die Zeit von der letzten Zudosierung der Base
gemessen; wenn es innerhalb von 1 bis 10 min, vorzugsweise innerhalb von 1.5 bis 2 min. nicht zu einer
weiteren Zudosierung der Lösung der Base (gegebenenfalls Zudosierung der Base und der Kohlenstoffquelle)
kommt, gibt der Zeitschalter einen Impuls zur Zudosierung der Kohlenstoffquelle.
Durch die Zugabe der Kohlenstoffquelle wird die Synthese der Eiweißstoffe rasch wiederhergestellt (nach
25 bis 50 see), der pH-Wert sinkt unter den eingestellten
Wert, und es beginnt wiederum die Zudosierung der Lösung der Base, gegebenenfalls auch der Kohlenstoffquelle.
Ein Vorteil des erfindungsgemäßen Verfahrens besteht darin, daß es allgemein für die Mehrzahl der
Kulturtypen angewandt werden kann, ohne daß es zu Störungen bei der Zudosicrung der kohlenstoff- bzw.
stickstoffhaltigen Nf*»rstoffe und zum Stillstand des
Kultivierungsprozesses kommt.
Das neue Verfahren zur Züchtung von Hefen mit automatischer Zudosierung der Kohlenstoffquelle wird
durch nachfolgende Beispiele erläutert.
In einem Laborgärgefäß mit einem Gesamtinhalt von 301 und einem Nutzinhalt von 15 I wurde eine einmalige
Zuflußkultivierung der Hefe Candida lipolytica in einem Medium mit isolierten Paraffinen durchgeführt. Der
Gärbottich war mit mechanischen Rührern versehen, die Geschwindigkeit der Sauerstoffauflösung betrug
■>«n mnl/l . h Die isolierten Paraffine enthielten
99,5Gew.-% n-Alkane, wobei die Kohlenwasserstoffe
mit Cm bis C17 mit einem spezifischen Gewicht von 0,77
g/ml überwogen.
Das für den vorausgesetzten Zuwachs der Hefen-Trockensubstanz von 10 g/l angewandte Grundmedium
enthielt im Liter:
4g(NH4)2SO4,
0.SgKH2PO4,
0,25gMgSO4-7H2O.
0,0IgZnSO4 -7H2O.
0.SgKH2PO4,
0,25gMgSO4-7H2O.
0,0IgZnSO4 -7H2O.
Zu den 151 des im Gärgefäß befindlichen Grundmediums
mit einem pH-Wert Sfon 4,5 wurden ein Inokulum,
das einer Anfangskonzentration der Hefen-Trockensubstanz von 2 g/l entsprach, sowie 10 g n-Alkane
zugegeben, die für den Beginn des biosynthetischen Vorganges notwendig sind. Dann begann die eigentliche
Züchtung bei einer Temperatur von 34 bis 35" C und einem pH-W^rt von 4,5.
Zur Regelung des pH-Wertes und automatischen Zudosierung der n-Alkane wurde ein pH-Meter für
einseitige Regelung (durch Zugabe der Base) mit einem eingestellten pH-Wert von 4,5 benutzt. Bei Absinken
des pH-Wertes des Medium:, unter den Wert von 4,5. setzte ein vom pH-Meter abgegebener Impuls die
gekoppelten Dosierer für Ammoniaklösung und isolierte
n-Alkane in Tätigkeit.
Die erforderliche Menge Ammoniak und isolierter n-Alkane wurde für einen Zuwachs der Hefe-Trockensubstanz
von 10 g/l im Verlauf des gesamten Kultivierungsprozesses,
für einen vorausgesetzten Stickstoffgehalt in der Trockensubstanz der Biomasse von 9,5% und
für einen Ausbeute-Koeffizienten von I errechnet. Für
die direkte Zudosierung mittels des pH-Meters wurden 80% der errechneten Menge der n-Alkane und die
gesamte errechnete Ammoniakmenge benutzt. Das Ammoniak wurde mit Wasser auf das mit dem Volumen
der n-Alkane übereinstimmende Volumen verdünnt und die gekoppelten Dosierer wurden so eingestellt, daß sie
beim Absinken des pH-Wertes unter den Wert von 4,5 gleiche Volumen Ammoniaklösung sowie der isolierten
n-Alkane zudosierten.
An das pH-Meter war ein elektronischer, durch einen Ausgangsimpuls aus dem pH-Meter betätigter Zeitschalter
zur Messung der seit der letzten Zudosierung abgelaufenen Zeit angeschlossen. Wenn nun innerhalb
von 90 Sekunden keine weitere Zudosierung erfolgte, wurde vom Zeitelement ein Impuls zur öffnung des
Ventils abgegeben, das ?ur Regelung des Ergänzungs-Zuflusses der isolierten n-Alkane Hi?nte. Für d>e
Ergänzungs-Dosierung wurden ungefähr 20% der
errechneten erforderlichen Menge der n-Alkane angewandt. Der Zeitschalter wurde erst nach einigen
Ammoniakzugaben, die den Beginn des Hefenwachstums signalisierten, in Tätigkeit gesetzt.
Die Kultivierung wurde nach 6,5 Stunden beendet, in welcher Zeit der vorausgesetzte Zuwachs der Hefe-Trockensubstanz
erreicht wurde. Im reifen Medium waren 188 g Hefe-Trockensubstanz enthalten, was
einem Ausbeutekoeffizienten von 1,05 entspricht. Die erzeugte Biomasse enthielt in der Trockensubstanz
9,0% N, 6,2% Rohlipide und 0,25% restliche Kohlenwasserstoffe.
Die Züchtung der Hefe Candida utilis auf synthetischem Äthanol als Kohlenstoffquelle wurde im gleichen
Gärgefäß und unter Anwendung des gleichen Grundmediums
wie im Beispiel 1 durchgeführt. Das angewandte
rohe synthetische Äthanol enthielt 90VoL%.
d. h. 85,7 Gew.-% ÄthanoL
Zu 15 Litern Grundmedium wurde das Inokulum in einer der Anfangskonzentration von 2 g Hefe-Trockensubstanz
in einem Liter und 15 ml synthetischem Äthanol entsprechenden Menge zugegeben. Dann
wurde mit der eigentlichen Züchtung bei 300C
begonnen, bei der der pH-Wert im Bereich von 4,5 bis
4,8 aufrechterhalten wurde. Zur Regelung des pH-Wertes und zur automatischen Steuerung des Syntheseäthanol-Zuflusses
wurde das pH-Meter für zweiseitige Regelung mit eingestelltem Regelbereich von 4.5 bis 4,8
angewandt Bei Absinken des pH-Wertes unter den Wert von 4,5 wurde über das pH-Meter (Lzw. unter der
Kontrolle des pH-Meters) eine Mischfösung von Äthanol und Ammoniak zudosiert.
Die erforderliche Ammoniak- und Syntheseäthanolmenge wurde für einen Zuwachs der Hefc-Trockcnsubstanz
von 10g/l, d.h. 150g. aus dem vorausgesetzten
Stickstoffgehalt in der Trockensubstanz der Biomasse von 10% und dem AusbeutckoeJTizienten von 0.65
er-echnet. Für die Zubereitung der Äthanol-Ammoniaklösung
wurden 80% der errechneten Menge des Syntheseäthanols und die ganze errechnete Ammoniakmenge
verwendet.
Der Mangel an Kohlenstoffqudle im Medium äußerte
sich durch einen raschen Anstieg des pH-Wertes auf einen Wert von 4.8 innerhalb 2 bis 4 Minuten nach der
letzten Zudosierung. worauf vom pH-Meter dann ein
ίο Impuls zum Öffnen des »Säure«-Ventils, über das dem
Medium Ergänzungs-Synthescäthanol zudosiert wurde,
abgegeben wurde. Nach Zugabe des Syntheseäthanols sank der pH-Wert des Mediums innerhalb 60 bis
90 Sekunden wieder auf den Wert von 4.5, und die Zudosierung der Äthanol-Ammoniak-Mischung wurde
wieder aufgenommen. Im Verlaufe der Züchtung
wurden durch das »Säure«- Ventil ungefähr 20% der
errechneten Menge des Syntheseäthanols zudosiert.
Die Züchtung wurde nach 6 Stunden beendet. Ils
jo wurde eine Ausbeute von 64% Trockensubstanz der Biomasse aus 100 g absolutem Äthanol erreicht; die
Hefe-Trockensubstanz enthielt 10.2% N.
Claims (3)
1. Verfahren zur aeroben Züchtung von Hefen in synthetischen Medien, die alle erforderlichen Nährstoffe
enthalten, von denen Kalium und Phosphoroxid in Form von Kaliumdihydrogenphosphat und
der Stickstoff in Form von Ammoniumsalz einer starken Mineralsäure vorhanden sind mit automatischer
Aufrechterhaltung des optimalen pH-Wertes im Kulturmedium durch fortlaufende Zudosierung
der anorganischen Base, vorzugsweise von Alkalihydroxid oder Ammoniak, und der optimalen Menge
der kohlenstoffhaltigen Nährstoffe durch laufende Zudosierung der Kohlenstoffquelle, dadurch
gekennzeichnet, daß die Base sowie die Kohlenstoffquelle, letztere in einer 20% unter
derjenigen Menge liegenden Menge, die dem aus dem durchschnittlichen Stickstoffgehalt in der
erzeugten Hefebiomasse und dem Ausbeutekoeffizienten des Kultivierungsprozesses errechneten
Verhältnis von Base und Kohlenstoffquelle entspricht, zudosiert wird, wenn der pH-Wert des
Kulturmediums unter den festgelegten Wert oder unter die untere Grenze des festgelegten geregelten
Bereichs absinkt, dessen Breite 0.1 bis 0,6 pH beträgt,
und daß die restliche Kohlenstoffquelle zudosiert wird, wem. das Absinken des pH-Wertes nach
Ablauf einer Zeitspanne von 1 bis 10 min nach der letzten Zudosierung der Base ausbleibt bzw. über
dem festgelegten Wert aufhört oder wenn der pH-Wert des Kulturmediums die obere Grenze des
geregelten Bereichs überschreitet.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Zeitspanne 90 bis 120 see beträgt.
3. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, daß die Breite 0.3 pH beträgt.
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS10172A CS158991B1 (de) | 1972-01-07 | 1972-01-07 | |
CS10172 | 1972-01-07 |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE2300478A1 DE2300478A1 (de) | 1973-07-19 |
DE2300478B2 DE2300478B2 (de) | 1976-08-26 |
DE2300478C3 true DE2300478C3 (de) | 1977-04-07 |
Family
ID=
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Ingestad | A definition of optimum nutrient requirements in birch seedlings. II | |
DE4130867A1 (de) | Verfahren zur fermentativen herstellung von aminosaeuren | |
DE2714708C2 (de) | ||
DE2300478C3 (de) | Verfahren zur aeroben Züchtung von Hefen in synthetischen Medien | |
DE1517879C3 (de) | ||
DE69737803T2 (de) | Bäckerhefe | |
DE2152039C3 (de) | Verfahren zur Herstellung von Bakterienzellmasse | |
DE2300478B2 (de) | Verfahren zur aeroben zuechtung von hefen in synthetischen medien | |
DE2747510A1 (de) | Verfahren zur herstellung von coenzym q | |
DE2217909C3 (de) | Verfahren zum Kultivieren von Hefen in üblichen synthetischen Nährmedien | |
DE4307334A1 (de) | Verfahren und Anlage zur Herstellung von Impfgut für eine verbesserte Erdölgewinnung | |
AT224053B (de) | Verfahren und Vorrichtung zur Durchführung der Belüftung bei der Gewinnung von Hefe | |
DE2546236A1 (de) | Verfahren zur aeroben kultivierung von mikroorganismen | |
DE1107172B (de) | Verfahren und Vorrichtung zur Herstellung von Hefe, insbesondere Backhefe | |
SU1014539A1 (ru) | Способ минерального питани растений и микроорганизмов и устройство дл его осуществлени | |
DE676186C (de) | Anreicherung des Eiweissgehaltes von Brennereischlempe | |
CH667641A5 (de) | Verfahren zur autotrophen denitrifikation von wasser. | |
DE4222362C1 (de) | Verfahren zur Stickstoff- und Kohlenstoffdüngung im Zuge der Bewässerung von Pflanzen | |
DE1442244A1 (de) | Verfahren zur Herstellung von Glutamin durch Fermentation | |
EP0932660A1 (de) | Verfahren zur anzucht von biomasse | |
DE304242C (de) | ||
DD220045A1 (de) | Verfahren zur kontinuierlichen zuechtung von backhefe | |
DD155329A1 (de) | Verfahren zur regelung der kultivierung von mikroorganismen | |
DE2720035A1 (de) | Verfahren zur aeroben kultivierung von mikroorganismen | |
DD273853A1 (de) | Verfahren zur anzucht von brennereihefe |