DE19700083A1 - Bakterienabweisende und zellproliferationsfördernde Beschichtung von Oberflächen - Google Patents
Bakterienabweisende und zellproliferationsfördernde Beschichtung von OberflächenInfo
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Description
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Beschichtung von Oberflä
chen, vorzugsweise von Polymersubstraten, mit Beschichtungspolyme
ren, die aufgrund der Anwesenheit bestimmter funktioneller Gruppen
und eines bestimmten molaren Verhältnisses dieser Gruppen bakteri
enabweisend und zugleich zellproliferationsfördernd wirken und ko
valent, also dauerhaft auf der Oberfläche fixiert sind. Die Erfin
dung betrifft weiterhin Gegenstände mit derart beschichteten Ober
flächen sowie deren Verwendung für medizinische oder biotechnische
Zwecke.
Die Ansiedelung und Vermehrung von Bakterien auf Oberflächen ist
eine in der Regel unerwünschte Erscheinung, die häufig mit nachtei
ligen Folgen verbunden ist. So können in der Trinkwasser- und
Getränketechnik Bakterienpopulationen zu einer gesundheitsgefähr
denden Qualitätsminderung führen. Bakterien auf oder in Verpackun
gen bewirken häufig den Verderb von Lebensmitteln oder verursachen
sogar Infektionen bei dem Verbraucher. In steril zu betreibenden
biotechnischen Anlagen stellen systemfremde Bakterien ein erhebli
ches prozeßtechnisches Risiko dar. Solche Bakterien können mit Roh
stoffen eingetragen werden oder bei mangelhafter Sterilisation in
allen Anlageteilen zurückbleiben. Teile der Bakterienpopulation
können sich durch Adhäsion dem normalen Flüssigkeitsaustausch beim
Spülen und Reinigen entziehen und sich im System vermehren.
Weiterhin sind Bakterienansiedelungen in Wasseraufbereitungsanlagen
(z. B. zur Entsalzung durch Membranen) oder auch in Behältern be
kannt, die mit gelösten oder flüssigen unverdünnten organischen
Substanzen gefüllt sind und für Bakterienpopulationen vorteilhafte
Bedingungen aufweisen. Solche mikrobiellen Belegungen können in
erheblichem Umfang zur Blockierung und/oder korrosiven Zerstörung
der Anlage führen.
Besondere Bedeutung kommt dem Schutz vor Bakterienanhaftung und
-ausbreitung in der Ernährung, der Pflege, hier insbesondere in der
Altenpflege, und in der Medizin zu. Bei Massenbeköstigungen oder
-ausschank existieren besonders dann erhebliche Risiken, wenn zur
Vermeidung von Abfall von Einweggeschirr abgesehen wird und eine
nur unzureichende Reinigung des Mehrweggeschirrs erfolgt. Die
schädliche Ausbreitung von Bakterien in lebensmittelführenden
Schläuchen und Rohren ist ebenso bekannt wie die Vermehrung in
Lagerbehältern sowie in Textilien in feuchter und warmer Umgebung,
z. B. in Bädern. Solche Einrichtungen sind bevorzugte Lebensräume
für Bakterien, ebenso wie bestimmte Oberflächen in Bereichen mit
hohem Publikumsverkehr, so z. B. in öffentlichen Verkehrsmitteln,
Krankenhäusern, Telefonzellen, Schulen und insbesondere in öffent
lichen Toiletten.
In der Alten- und Krankenpflege erfordern die häufig geminderten
Abwehrkräfte der Betroffenen sorgfältige Maßnahmen gegen Infektio
nen, insbesondere auf Intensivstationen und in der häuslichen Pfle
ge.
Besondere Sorgfalt bedarf die Verwendung medizinischer Gegenstände
und Geräte bei medizinischen Untersuchungen, Behandlungen und Ein
griffen, vor allem dann, wenn derartige Geräte oder Gegenstände mit
lebendem Gewebe oder mit Körperflüssigkeiten in Kontakt kommen. Im
Falle von Langzeit- oder Dauerkontakten, beispielsweise bei Implan
taten, Kathetern, Stents, Herzklappen und Herzschrittmachern, kön
nen Bakterienkontaminationen zu einem lebensbedrohenden Risiko für
den Patienten werden.
Es wurde bereits auf vielfältige Weise versucht, die Ansiedelung
und Ausbreitung von Bakterien auf Oberflächen zu unterbinden. In
J.Microbiol.Chemoth. 31 (1993). 261-271, beschreiben S.E.Tebbs und
T.S.E.Elliott lackartige Beschichtungen mit quaternären Ammonium
salzen als antimikrobiell wirkenden Komponenten. Es ist bekannt,
daß diese Salze von Wasser, wäßrigen oder anderen polaren Medien
sowie von Körperflüssigkeiten aus dem Beschichtungsmaterial heraus
gelöst werden und ihre Wirkung somit nur von kurzer Dauer ist. Dies
gilt gleichermaßen für die Einarbeitung von Silbersalzen in
Beschichtungen, so beschrieben in WO 92/18098.
T. Ouchi und Y. Ohya beschreiben in Progr.Polym.Sci. 20 (1995), 211
ff., die Immobilisierung von bakteriziden Wirkstoffen auf Polymer
oberflächen durch kovalente Bindung oder ionische Wechselwirkungen.
Häufig sind in solchen Fällen die keimtötenden Wirkungen gegenüber
dem reinen Wirkstoff deutlich reduziert. Heteropolare Bindungen er
weisen sich oft als nicht hinreichend stabil. Darüber hinaus führt
die Keimabtötung in der Regel zu unerwünschten Ablagerungen auf den
Oberflächen, die die weitere bakterizide Wirkung maskieren und die
Grundlage für eine nachfolgende Bakterienbesiedelung bilden.
W. Kohnen et al. berichten in ZBI. Bakt. Suppl. 26, Gustav Fischer
Verlag, Stuttgart-Jena-New York, 1994, Seiten 408 bis 410, daß die
Adhäsion von Streptococcus epidermidis auf einem Polyurethanfilm
vermindert wird, wenn der Film durch eine Glimmentladung in Gegen
wart von Sauerstoff vorbehandelt und dann mit Acrylsäure gepfropft
wird.
Wie bereits erwähnt, ist es bei der Verwendung von medizinischen
Geräten bei medizinischen Untersuchungen, Behandlungen und Eingrif
fen von wesentlicher Bedeutung, daß sich auf diesen Geräten keine
Bakterien ansiedeln. Andererseits müssen diese Geräte, die aus Me
tall, Keramik oder polymeren Kunststoffen bestehen können, verträg
lich mit dem lebenden Gewebe und den Körperflüssigkeiten sein, mit
denen sie in Berührung kommen. Es sind zahlreiche Verfahren bekannt
geworden, die Polymere biokompatibel machen oder deren Biokompati
bilität verbessern sollen. Eine dieser Methoden ist die Besiedelung
der Polymeroberflächen mit menschlichen Zellen.
Der vorliegenden Erfindung lag die Aufgabe zugrunde, ein Verfahren
zur Beschichtung von Oberflächen zu entwickeln mit dem Ziel, diese
Oberflächen so zu modifizieren, daß sie nachhaltig einerseits von
Bakterien weitgehend frei gehalten werden und andererseits die
Zellproliferation fördern, ohne daß die mechanischen Eigenschaften
der behandelten Materialien dadurch verändert werden. Dabei wird
unter Förderung der Zellproliferation verstanden, daß die Haftung
und Vermehrung von Säugetierzellen durch die Beschichtung im Ver
gleich zu der unbeschichteten Oberfläche verbessert oder jedenfalls
weniger stark beeinträchtigt wird als die Haftung und Vermehrung
von Bakterien.
Es wurde überraschenderweise gefunden, daß sich bakterienabweisende
und zugleich zellproliferationsfördernde, kovalent fixierte
Beschichtungen auf der Oberfläche von Substraten, insbesondere von
Polymersubstraten, vorteilhaft herstellen lassen, wenn man ein
Beschichtungspolymer, das
- (i) mindestens ein Monomer der allgemeinen Formel I
Formel I: R-(COOR1)a
in der R einen ein- oder zweifach olefinisch ungesättigten orga nischen Rest mit der Wertigkeit a bedeutet,
R1 Wasserstoff, ein Metalläquivalent oder einen organi schen Rest bedeutet und
a für 1, 2 oder 3 steht; - (ii) mindestens ein Monomer der allgemeinen Formel II
Formel II: R-(SO3R1)a
in der R, R1 und a die angegebene Bedeutung haben; und - (iii) mindestens ein Monomer mit einer UV-strahlungssensitiven
Gruppe
einpolymerisiert enthält, strahleninduziert auf eine aktivierte Substratoberfläche aufpfropft, wobei das molare Verhältnis der Re ste -COOR1 und -SO3R1 2,5 bis 10, vorteilhaft < 3 bis 10 und insbe sondere < 3 bis 5 beträgt.
Die Bezeichnung "zellproliferationsfördernd" ist relativ und be
zieht sich auf die ausgesprochene Hemmwirkung der erfindungsgemäßen
Beschichtungen auf die Adhäsion und das Wachstum von Bakterien. Sie
soll nicht implizieren, daß die Zellproliferation auf erfindungsge
mäß beschichteten Substraten notwendig stärker ist als auf unbe
schichteten.
Der organische Rest R kann Kohlenwasserstoffstruktur aufweisen oder
neben den Kohlenstoff- und Wasserstoffatomen weitere Atome, wie
Sauerstoff-, Stickstoff- und/oder Siliciumatome, enthalten.
Die Monomeren I und II sind Carbonsäuren bzw. Sulfonsäuren oder de
ren Salze oder Ester. Unter den Salzen sind die Alkalisalze und
insbesondere die Natriumsalze bevorzugt.
Durch Plasma-induzierte Pfropfpolymerisation erzeugte Beschichtun
gen auf verschiedenen Substraten sind z. B. aus B.Lassen et al.
Clinical Materials 11 (1992). 99 bis 103, bekannt und auf Biokompa
tibilität untersucht worden. Dabei wurden aber lediglich UV-strah
lungssensitive Monomere gepfropft, und eine Pfropfung auf aktivier
te Substratoberflächen wird nicht erwähnt. Zudem ist Plasma kein
optimaler Polymerisationsinitiator. H.Yasuda spricht dementspre
chend in J.Polym.Sci.: Macromolecular Review, Vol. 16 (1981), 199-293,
von der undefinierten und nicht kontrollierbaren Chemie der
Plasma-Polymerisation. Dies mag für manche Zwecke akzeptabel sein,
ist jedoch für medizinische und biotechnische Anwendungen problema
tisch, weil es gerade hier auf reproduzierbare Beschichtungen von
gleichbleibend hoher Qualität besonders ankommt.
In US-A-5 278 200 werden thromboresistente Materialien mit heparin
artiger, koagulationshemmender Wirkung beschrieben, die aus einem
Substrat, vorzugsweise einem PUR-Substrat bestehen, auf das Copoly
mere aus Acrylsäure (AS) und 2-Acrylamido-2-methylpropansulfonsäure
(AMPS) aufgebracht werden. Das Monomerenverhältnis kann in weiten
Grenzen schwanken. Die Materialien sollen auch eine leicht vermin
derte Haftung von Bakterien und Thrombozyten zeigen.
Zu den Bakterienstämmen, deren Adhäsion gemäß der Erfindung nach
haltig vermindert oder verhindert wird, zählen Staphylococcus au
reus, Staphylococcus epidermidis, Streptococcus pyogenes, Klebsiel
la pneumoniae, Pseudomonas aeroginosa und Escherichia coli. Von den
menschlichen Zellen deren Proliferation gefördert wird, seien bei
spielsweise Fibroblasten und Endothelzellen, wie menschliche Na
belschnurzellen, genannt.
Die beschichteten Oberflächen sind frei von migrationsfähigen und
bzw. oder extrahierbaren Monomer- und Oligomeranteilen. Unerwünsch
te Nebenwirkungen durch freigesetzte körperfremde Stoffe oder durch
abgetötete Bakterien werden von vornherein vermieden. Die Oberflä
chen der aufgepfropften Beschichtungen weisen somit eine hervorra
gende physiologische Verträglichkeit auf.
Bei dem erfindungsgemäßen Verfahren werden die Substratoberflächen
zunächst, wie in der Folge näher beschrieben, aktiviert und an
schließend unter Einwirkung von UV-Licht durch schonende Pfropfung
des vorgebildeten Beschichtungspolymeren auf der Substratoberfläche
kovalent, also dauerhaft fixiert.
Die Beschichtungspolymeren weisen mindestens ein Monomer der allge
meinen Formel I und ein Monomer der allgemeinen Formel II in dem
genannten molaren Verhältnis der Gruppen -COOR1 und -SO3R1 auf. Zu
den bevorzugten Monomeren der allgemeinen Formel I zählen Monomere
der allgemeinen Formel III
Formel III: (CnH2n-q-x)(COOR2)x,
zu den bevorzugten Monomeren der allgemeinen Formel II zählen Mono
mere der allgemeinen Formel IV
Formel IV: (CnH2n-q-x)(SO3R2)x
In den Formeln III und IV stehen
n jeweils unabhängig für eine ganze Zahl von 2 bis einschließ lich 6;
x jeweils unabhängig für 1 oder 2;
q jeweils unabhängig für 0 oder 2; und
bedeutet der Rest R2 jeweils unabhängig -H, ein Äquivalent ei nes Metallions, insbesondere ein Alkalimetallion, einen Rest eines aliphatischen, cycloaliphatischen oder araliphatischen Alkohols, vorzugsweise eines Alkanols mit 1 bis 6, insbeson dere mit 1 bis 4 Kohlenstoffatomen, eines Cycloalkanols mit 5 bis 12 Kohlenstoffatomen, eines Arylalkanols mit 7 bis 10 Koh lenstoffatomen oder eines Alkanols mit Sauerstoff- und/oder Stickstoffatomen in der Kette und bis zu 12 Kohlenstoffatomen, wie -(CH2-CH2-O)d-H, -(CH2-CH(CH3)-O)d-H, -(CH2-CH2-CH2-O)d-H oder -(CH2)d-NH2-e(R3)e, wobei R3 für -CH3 oder -C2H5, d für 1, 2, 3 oder 4 und e für 0, 1 oder 2 steht.
n jeweils unabhängig für eine ganze Zahl von 2 bis einschließ lich 6;
x jeweils unabhängig für 1 oder 2;
q jeweils unabhängig für 0 oder 2; und
bedeutet der Rest R2 jeweils unabhängig -H, ein Äquivalent ei nes Metallions, insbesondere ein Alkalimetallion, einen Rest eines aliphatischen, cycloaliphatischen oder araliphatischen Alkohols, vorzugsweise eines Alkanols mit 1 bis 6, insbeson dere mit 1 bis 4 Kohlenstoffatomen, eines Cycloalkanols mit 5 bis 12 Kohlenstoffatomen, eines Arylalkanols mit 7 bis 10 Koh lenstoffatomen oder eines Alkanols mit Sauerstoff- und/oder Stickstoffatomen in der Kette und bis zu 12 Kohlenstoffatomen, wie -(CH2-CH2-O)d-H, -(CH2-CH(CH3)-O)d-H, -(CH2-CH2-CH2-O)d-H oder -(CH2)d-NH2-e(R3)e, wobei R3 für -CH3 oder -C2H5, d für 1, 2, 3 oder 4 und e für 0, 1 oder 2 steht.
Den gegebenen Definitionen entsprechend bedeutet der Rest
(CnH2n-q-x) jeweils unabhängig einen geradkettigen oder verzweig
ten einwertigen Alkenylrest (q = 0, x = 1) oder Alkadienylrest (q = 2,
x = 1) oder einen zweiwertigen Alkenylenrest (q = 0, x = 2) oder Alkadie
nylenrest (q = 2, x = 2).
Anstelle von 2 Monomeren II und III kann man auch nur ein Monomer
(II + III) einsetzen, das die Gruppen COOR2 und SO3R2 in demselben
Molekül enthält.
Auch vom Benzol abgeleitete Monomere der allgemeinen Formel V
Formel V: (C6H6-b-c-d)BbR3 c(OH)d
fallen unter die allgemeine Formel I, und Monomere der allgemeinen
Formel VI
Formel VI: (C6H6-b-c-d)BbR3 c(OH)d
fallen unter die allgemeine Formel II. Beide Arten von Monomeren
können ebenfalls vorteilhaft in dem Beschichtungspolymer enthalten
sein, wobei in den Formeln V und VI
B jeweils unabhängig einen ein- oder zweiwertigen geradketti gen oder verzweigten Rest der Formeln -(CnH2n-1-q-x)(COOR2)x oder (CnH2n-1-q-x)(SO3R2)x bedeu tet, wobei R2, n, q und x wie zuvor definiert sind;
R3 jeweils unabhängig C1-4-Alkyl, -NH2, -COOH, -SO3H, -OSO3H, -OPO(OH)2, -PO(OH)2, -OP(OH)2, -OPO(O⁻)OCH2CH2N⁺(CH3)3, -PO(O⁻)OCH2CH2N⁺(CH3)3, -OP(O⁻)OCH2CH2N⁺(CH3)3 oder gegebe nenfalls ein Salz, insbesondere ein Alkalisalz, oder einen Ester der genannten Gruppen bedeutet;
b für 1, 2 oder 3 steht;
c für 0, 1, 2 oder 3 steht; und
d für 0, 1, 2 oder 3 steht;
mit der Maßgabe, daß b + c + d ≦ 6, vorteilhaft ≦ 4 ist.
B jeweils unabhängig einen ein- oder zweiwertigen geradketti gen oder verzweigten Rest der Formeln -(CnH2n-1-q-x)(COOR2)x oder (CnH2n-1-q-x)(SO3R2)x bedeu tet, wobei R2, n, q und x wie zuvor definiert sind;
R3 jeweils unabhängig C1-4-Alkyl, -NH2, -COOH, -SO3H, -OSO3H, -OPO(OH)2, -PO(OH)2, -OP(OH)2, -OPO(O⁻)OCH2CH2N⁺(CH3)3, -PO(O⁻)OCH2CH2N⁺(CH3)3, -OP(O⁻)OCH2CH2N⁺(CH3)3 oder gegebe nenfalls ein Salz, insbesondere ein Alkalisalz, oder einen Ester der genannten Gruppen bedeutet;
b für 1, 2 oder 3 steht;
c für 0, 1, 2 oder 3 steht; und
d für 0, 1, 2 oder 3 steht;
mit der Maßgabe, daß b + c + d ≦ 6, vorteilhaft ≦ 4 ist.
Natürlich kann man für die Herstellung der Beschichtungspolymeren
auch Mischungen von Monomeren mit verschiedenen funktionellen Grup
pen A verwenden, z. B. III und VI oder IV und V usw., bzw. können
die Beschichtungspolymere die verschiedenen entsprechenden funktio
nalen Gruppen kombiniert enthalten.
Von den für die Herstellung der Beschichtungspolymeren geeigneten
Monomeren der allgemeinen Formeln I bis VI seien beispielsweise ge
nannt:
Acrylsäure, Natriumacrylat, Isobutylacrylat, 2-Ethylhexylacrylat, 2-Hydroxyethylacrylat, 2-(2'-Hydroxyethoxy)ethylacrylat, 2-Hydroxy- 1-methylethylacrylat, 2-N,N-Dimethylaminoethylacrylat, Methacryl säure, Natriummethacrylat, n-Propylmethacrylat, 2-Hydroxyethylmeth acrylat, 2-(2'-Hydroxyethoxy)ethylmethacrylat, 2-Hydroxy-1-methyl ethylmethacrylat, 2-N,N-Dimethylaminoethylmethacrylat, Maleinsäure, Diethylenglykoldimethacrylat, Triethylenglykoldiacrylat, Vinylsul fonsäure, Natriumvinylsulfonat, Vinylsulfonsäure-2-hydroxyethyl ester, Vinylbenzolsulfonsäure, Natriumvinyltoluylsulfonat, 4-Vinyl salicylsäure, Sorbinsäure, Coffeinsäure, Carboxyl-Styrolsulfonsäu re.
Acrylsäure, Natriumacrylat, Isobutylacrylat, 2-Ethylhexylacrylat, 2-Hydroxyethylacrylat, 2-(2'-Hydroxyethoxy)ethylacrylat, 2-Hydroxy- 1-methylethylacrylat, 2-N,N-Dimethylaminoethylacrylat, Methacryl säure, Natriummethacrylat, n-Propylmethacrylat, 2-Hydroxyethylmeth acrylat, 2-(2'-Hydroxyethoxy)ethylmethacrylat, 2-Hydroxy-1-methyl ethylmethacrylat, 2-N,N-Dimethylaminoethylmethacrylat, Maleinsäure, Diethylenglykoldimethacrylat, Triethylenglykoldiacrylat, Vinylsul fonsäure, Natriumvinylsulfonat, Vinylsulfonsäure-2-hydroxyethyl ester, Vinylbenzolsulfonsäure, Natriumvinyltoluylsulfonat, 4-Vinyl salicylsäure, Sorbinsäure, Coffeinsäure, Carboxyl-Styrolsulfonsäu re.
Bevorzugte Beschichtungspolymere enthalten einpolymerisiert (a)
Monomere mit Carbonsäure-, Carboxylat- und/oder Carbonestergruppen
sowie (b) Monomere mit Sulfonsäure-, Sulfonat- und/oder Sulfonsäu
reestergruppen, wobei die molaren Anteile dieser Monomeren in den
Beschichtungspolymeren zusammen vorteilhaft 5 bis 30%, insbesonde
re 15 bis 20% betragen und das Molverhältnis der Monomeren (a) zu
den Monomeren (b) < 10 ist und insbesondere < 3 bis 5 beträgt.
Besonders bevorzugt werden Beschichtungspolymere, die (a) Carboxyl- und
oder Carboxylatgruppen und (b) Sulfonsäure- und/oder Sulfonat
gruppen enthalten. Es gibt unter dem Aspekt der Verträglichkeit
drei mögliche Zweierkombinationen, nämlich Carboxyl- und Sulfonsäu
regruppen, Carboxyl- und Sulfonatgruppen sowie Carboxylat- und Sul
fonatgruppen, weiterhin zwei mögliche Dreierkombinationen, nämlich
Carboxyl-, Carboxylat- und Sulfonatgruppen sowie Carboxyl-, Sulfo
säure- und Sulfonatgruppen. Alle diese Kombinationen charakterisie
ren bei Einhaltung der genannten molaren Verhältnissen besonders
bevorzugte Beschichtungspolymeren. Natürlich ist es auch möglich,
bei der Herstellung des Beschichtungspolymeren Monomere einzuset
zen, die erst nach der Polymerisation in (einpolymerisierte) Mono
mere I oder II umgewandelt werden. So kann man den Acrylamid-Bau
stein durch Hydrolyse in saurem Medium in den Acrylsäure-Baustein
umwandeln. Weiterhin kann man Carboxyl- und Sulfonsäuregruppen
durch Neutraliieren (z. B. in Phosphatpuffern) sowie Carbonester- und
Sulfonsäureestergruppen durch Verseifung in Carboxylat- bzw.
Sulfonatgruppen überführen.
Neben den Monomeren der allgemeinen Formeln I bis VI können auch
weitere Monomere in dem Beschichtungspolymer enthalten sein, die
nicht oder nicht nennenswert zu den bakterienabweisenden Eigen
schaften der Beschichtung beitragen. Dazu gehören z. B. Vinylether,
wie Vinylmethylether und Vinylbutylether; Vinylketone, wie Vinyl
ethylketon; Olefine und Diolefine, wie 1-Buten, 1-Hexen, 1,3-Buta
dien, Isopren und Chloropren; Vinylsiloxane und andere siliciumhal
tige Vinylmonomere, wie Tris(trimethylsiloxy)methacryloyloxypropyl
silan oder Tris(trimethylsiloxy)acryloyloxypropylsilan. Diese Mono
meren können sogar in überwiegender Menge vorhanden sein, z. B. bis
zu 90 Mol-% ausmachen.
Ein wesentlicher Bestandteil der Beschichtungspolymeren ist ein
einpolymerisiertes Monomer mit UV-strahlungssensitiver Gruppe. Als
solche eignen sich alle Monomeren, die nach dem Einpolymerisieren
noch mindestens eine reaktionsfähige Doppelbindung aufweisen, die
die Pfropfung des Beschichtungspolymeren auf die aktivierte Sub
stratoberfläche ermöglicht. Als Beispiele seien vinylische Cinna
moyl- oder Furylderivate und insbesondere Cinnamoylethylacrylat
oder -methacrylat genannt. Das UV-strahlungssensitive Monomer wird
vorteilhaft in Mengen von 1 bis 20 Mol-%, insbesondere von 3 bis 15
Mol-%, bezogen auf die gesamten Monomeren, eingesetzt. Bei der
Polymerisation bleibt die zum Benzolring α-ständige Doppelbindung
als UV-strahlungssensitive Gruppe für die spätere Pfropfung erhal
ten.
Die Polymeren werden in üblicher Weise durch radikalisch initiierte
Polymerisation hergestellt, vorteilhaft durch Lösungs- oder Emul
sionspolymerisation. Geeignete Lösemittel sind z. B. Wasser; Ketone,
wie Aceton, Methylethylketon, und Cyclohexanon; Ether, wie Diethyl
ether, Tetrahydrofuran und Dioxan; Alkohole, wie Methanol, Ethanol,
n- und iso-Propanol, n- und iso-Butanol und Cyclohexanol; stark po
lare Lösemittel, wie Dimethylformamid, Dimethylacetamid und Dime
thylsulfoxid; Kohlenwasserstoffe, wie Heptan. Cyclohexan, Benzol
und Toluol; Halogenkohlenwasserstoffe, wie Dichlormethan und Tri
chlormethan; Ester, wie Ethylacetat, Propylacetat und Amylacetat;
sowie Nitrile, wie Acetonitril.
Geeignete Polymerisationsinitiatoren sind z. B. Azonitrile, Alkyl
peroxide, Acylperoxide, Hydroperoxide, Peroxyketone, Peroxyester
und Percarbonate sowie alle üblichen Photoinitiatoren. Die Polyme
risation wird thermisch, z. B. durch Erhitzen auf 60 bis 100°C. oder
durch Strahlung mit entsprechender Wellenlänge eingeleitet. Nach
Beendigung der exothermen Polymerisationsreaktion wird das Polymer
in üblicher Weise vom Lösemittel abgetrennt, beispielsweise durch
Fällung mittels Wasser, sofern das Lösemittel wasserlöslich ist.
Durch Extraktion mit einem geeigneten Lösemittel können monomere
oder oligomere Bestandteile entfernt werden.
Als Substratmaterialien eignen sich vor allem polymere Substrate,
wie Polyurethane, Polyamide. Polyester und -ether, Polyetherblock
amide, Polystyrol, Polyvinylchlorid, Polycarbonate, Polyorganosilo
xane, Polyolefine, Polysulfone, Polyisopren, Polychloropren, Poly
tetrafluorethylen (PTFE), entsprechende Copolymere und Blends sowie
natürliche und synthetische Kautschuke, mit oder ohne strahlungs
sensitive Gruppen. Das erfindungsgemäße Verfahren läßt sich auch
auf Oberflächen von lackierten oder anderweitig mit Polymeren be
schichteten Metall-, Glas- oder Holzkörpern anwenden.
Die Oberflächen von Substratpolymeren können erfindungsgemäß nach
einer Reihe von Methoden aktiviert werden. Zweckmäßig werden die
Oberflächen zuvor in bekannter Weise mit einem Lösemittel von
anhaftenden Ölen, Fetten oder anderen Verunreinigungen befreit.
3.1 So können schon bei der Herstellung der Substratpolymeren
Monomere mit UV-strahlungssensitiven Gruppen einpolymerisiert wer
den, ähnlich wie für die Beschichtungspolymeren beschrieben. Hier
für kommen dieselben Monomeren in Betracht, die auch in den
Beschichtungspolymeren enthalten sein können. Diese Monomeren lie
gen in der Regel in Mengen von 1 bis 20 Mol-%, insbesondere von 3
bis 15 Mol-% vor. Solche strahlungssensitiv modifizierte Polymere
können in üblicher Weise durch radikalisch initiierte Polymerisa
tion in Lösung, Emulsion oder Suspension hergestellt werden.
3.2 Alternativ kann die Aktivierung von Standardpolymeren ohne
UV-strahlungssensitive Gruppen durch UV-Strahlung, z. B. im Wellen
längenbereich von 100 bis 400 nm, vorzugsweise von 125 bis 310 nm
erfolgen. Eine geeignete Strahlenquelle ist z. B. ein UV-Excimer-Ge
rät HERAEUS Noblelight, Hanau, Deutschland. Aber auch Quecksilber
dampflampen eignen sich zur Substrataktivierung sofern sie erhebli
che Strahlungsanteile in den angegebenen Bereichen emittieren. Die
Expositionszeit beträgt, je nach Strahlungsintensität und Wellen
länge, im allgemeinen 0,1 Sekunden bis 60 Minuten, vorzugsweise 1
Sekunde bis 20 Minuten. Es hat sich gezeigt, daß die Anwesenheit
von Sauerstoff vorteilhaft ist. Die bevorzugten Sauerstoffdrücke
liegen zwischen 2×10⁻5 und 2×10⁻2 bar. Man arbeitet beispielsweise
in einem Vakuum von 10⁻4 bis 10⁻1 bar oder unter Verwendung eines
Inertgases, wie Helium, Stickstoff oder Argon, mit einem Sauer
stoffgehalt von 0.02 bis 20 Promille.
3.3 Die Aktivierung kann erfindungsgemäß auch durch ein Hochfre
quenz- oder Mikrowellenplasma (Hexagon, Fa. Technics Plasma, 85551
Kirchheim, Deutschland) in Luft, Stickstoff- oder Argon-Atmosphäre
erreicht werden. Die Expositionszeiten betragen im allgemeinen 30
Sekunden bis 30 Minuten, vorzugsweise 2 bis 10 Minuten. Der Ener
gieeintrag liegt bei Laborgeräten zwischen 100 und 500 W, vorzugs
weise zwischen 200 und 300 W.
3.4 Weiterhin lassen sich auch Korona-Geräte (Fa. SOFTAL, Ham
burg, Deutschland) zur Aktivierung verwenden. Die Expositionszeiten
betragen in diesem Falle in der Regel 1 Sekunde bis 10 Minuten,
vorzugsweise 1 bis 60 Sekunden.
3.5 Die Aktivierung durch Elektronen- oder gamma-Strahlen (z. B.
aus einer Kobalt-60-Quelle) ermöglicht kurze Expositionszeiten, die
im allgemeinen 0,1 bis 60 Sekunden betragen.
3.6 Beflammungen von Oberflächen führen ebenfalls zu deren Akti
vierung. Geeignete Geräte, insbesondere solche mit einer Barriere-
Flammenfront, lassen sich auf einfache Weise bauen oder beispiels
weise beziehen von der Fa. ARCOTEC, 71297 Mönsheim, Deutschland.
Sie können mit Kohlenwasserstoffen oder Wasserstoff als Brenngas
betrieben werden. In jedem Fall muß eine schädliche Überhitzung des
Substrats vermieden werden, was durch innigen Kontakt mit einer ge
kühlten Metallfläche auf der von der Beflammungsseite abgewandten
Substratoberfläche leicht erreicht wird. Die Aktivierung durch
Beflammung ist dementsprechend auf verhältnismäßig dünne, flächige
Substrate, wie Folien, beschränkt. Die Expositionszeiten belaufen
sich im allgemeinen auf 0,1 Sekunde bis 1 Minute, vorzugsweise 0.5
bis 2 Sekunden, wobei es sich ausnahmslos um nicht leuchtende Flam
men handelt und die Abstände der Substratoberflächen zur äußeren
Flammenfront 0,2 bis 5 cm, vorzugsweise 0,5 bis 2 cm betragen.
3.7 Schließlich lassen sich die Substratoberflächen auch durch
Behandlung mit starken Säuren oder starken Basen aktivieren. Von
den geeigneten starken Säuren seien Schwefelsäure, Salpetersäure
und Salzsäure genannt. Man kann z. B. Polyamide 5 Sekunden bis 1
Minute mit konzentrierter Schwefelsäure bei Raumtemperatur behan
deln. Als starke Basen eignen sich besonders Alkalimetallhydroxide
in Wasser oder einem organischen Lösemittel. So kann man z. B. ver
dünnte Natronlauge 1 bis 60 Minuten bei 20 bis 80°C auf die Sub
stratoberfläche einwirken lassen. Alternativ können beispielsweise
Polyamide aktiviert werden, indem man 2%-iges KOH in Tetrahydrofu
ran 1 Minute bis 30 Minuten auf die Oberfläche einwirken läßt.
3.8 In manchen Fällen, z. B. bei hochhydrophoben Polymeren, kann
es empfehlenswert sein, die Substratoberflächen durch eine Kombina
tion aus zwei oder mehr der genannten Methoden zu aktivieren. Ganz
allgemein hat sich eine Substrataktivierung bewährt, bei der der
Einbau UV-strahlungssensitiver Gruppen (3.1) mit einer UV-Bestrah
lung (3.2) kombiniert wird.
Nach einer der unter 3.2 bis 3.8 beschriebenen aktivierenden Vorbe
handlungen werden die Substrate mit den aktivierten Oberflächen
zweckmäßig 1 bis 20 Minuten, vorzugsweise 1 bis 5 Minuten der Ein
wirkung Sauerstoff, z. B. in Form von Luft, ausgesetzt. Alternativ
kann man auf die aktivierten Oberflächen auch ähnlich lange ein
sauerstoffhaltiges Lösemittel, wie Tetrahydrofuran, einwirken
lassen.
Anschließend werden die (gegebenenfalls auch nach 3.1) aktivierten
Oberflächen nach bekannten Methoden, wie Sprühen, Tauchen oder
Streichen, mit einer Lösung des erfindungsgemäß zu verwendenden
Beschichtungspolymeren beschichtet. Als Lösemittel haben sich z. B.
Ether, wie Tetrahydrofuran, und/oder stark polare Lösemittel, wie
Dimethylsulfoxid, bewährt, doch sind auch andere Lösemittel ver
wendbar, sofern sie ein ausreichendes Lösevermögen für die
Beschichtungspolymeren aufweisen und die Substratoberflächen gut
benetzen. Je nach Löslichkeit der Polymeren und gewünschter
Schichtdicke der gepfropften Beschichtung kann die Konzentration
des Beschichtungspolymeren in der Lösung 0,1 bis 50 Gewichtsprozent
betragen. Lösungen mit einer Konzentration an Beschichtungspolymer
von 1 bis 15 Gew.-%, insbesondere von etwa 10 Gew.-% haben sich in
der Praxis bewährt und ergeben im allgemeinem in einem Durchgang
zusammenhängende Beschichtungen mit Schichtdicken, die mehr als 0,1
µm betragen können.
Nach dem Verdampfen des Lösemittels oder auch während des Verdamp
fens wird die Pfropfung des aufgebrachten Polymeren unter Ausbil
dung kovalenter Bindungen zur Substratoberfläche zweckmäßig durch
Strahlen im kurzwelligen Segment des sichtbaren Bereiches oder im
langwelligen Segment des UV-Bereiches der elektromagnetischen
Strahlung bewirkt. Gut geeignet ist z. B. die Strahlung eines UV-Ex
cimers der Wellenlängen 250 bis 500 nm, vorzugsweise von 290 bis
320 nm. Auch hier haben sich Quecksilberdampflampen bewährt, sofern
sie erhebliche Strahlungsanteile in den angegebenen Bereichen emit
tieren. Die Expositionszeiten betragen im allgemeinen 10 Sekunden
bis 30 Minuten, vorzugsweise 2 bis 15 Minuten.
Bisweilen ist es zweckmäßig, die beschriebenen Arbeitsschritte ein
schließlich der Aktivierung zu wiederholen, um mittels einer sol
chen Mehrschichttechnik eine hermetisch geschlossene und/oder
dickere Beschichtung herzustellen. Weiterhin ist es möglich, das ober
flächenaktivierte Substrat, gegebenenfalls nach der beschriebenen
Sauerstoff- oder Lösemittelbehandlung, in die Lösung des erfin
dungsgemäß zu verwendenden Beschichtungspolymeren einzutauchen und
im getauchten Zustand zu bestrahlen. Durch orientierende Versuche
läßt sich unschwer feststellen, bei welchen Bestrahlungszeiten mit
einer gegebenen Strahlenquelle und bei welchen, gegebenenfalls län
geren Kontaktzeiten von Substrat und Lösung die gewünschte Schicht
dicke erreicht wird.
Das erfindungsgemäße Verfahren zur bakterienabweisenden und gleich
zeitig zellproliferationsfördernden Modifizierung der Oberfläche
von Substraten und insbesondere von Polymersubstraten erfordert und
ermöglicht die genaue Einstellung von Molverhältnissen verschiede
ner funktioneller Gruppen, die zur Erzielung bakterienabweisender
und zugleich zellproliferationsfördernder Eigenschaften optimal
sind. Das Verfahren bietet den Vorteil, daß bereits bewährte Poly
mere auf diese Weise unter Beibehaltung ihrer mechanischen Eigen
schaften und ihrer Form zusätzlich bakterienabweisend und zugleich
zellproliferationsfördernd einstellbar sind. Es sind keine weiteren
Vor- oder Nachbehandlungen erforderlich. Hochhydrophobe Kunststoffe
bedürfen gegebenenfalls einer hydrophilierenden Vorbehandlung, z. B.
durch chemisches Ätzen mit Säuren oder Basen oder durch Plasma-Be
handlung, um eine ausreichende Benetzbarkeit durch die Lösung des
Beschichtungspolymeren zu erreichen. Die hochhydrophoben Kunststof
fe werden dann gleichzeitig hydrophiliert und im Sinne der vorlie
genden Erfindung oberflächenaktiviert.
Nach der vorliegenden Erfindung beschichtete und dadurch bakteri
enabweisend und zugleich zellproliferationsfördernd modifizierte
Gegenstände eignen sich als bioverträgliche Materialien zur Verwen
dung im biotechnischen oder medizinischen Bereich für Zwecke, für
die die erwähnte Kombination von Eigenschaften nötig oder nützlich
ist. Dazu gehören u. a. langfristig implantierte Katheter und Zahn
ersatz.
Zur weiteren Erläuterung der vorliegenden Erfindung werden die fol
genden Beispiele gegeben, die die Erfindung weiter erläutern, nicht
aber ihren Umfang begrenzen sollen, wie er in den Patentansprüchen
dargelegt ist. Die in den Beispielen verwendeten Beschichtungspoly
meren sind stellvertretend für eine Vielzahl anderer Polymerer mit
Monomeren, die unter die allgemeinen Formeln I bis VI fallen.
Diese Folien sind keine erfindungsgemäßen Produkte, sondern wurden
zum Vergleich ihrer bakterienabweisenden Eigenschaften mit denen
von bakterienabweisend beschichteten Substratfolien nach der Erfin
dung hergestellt.
Proben der durch Copolymerisation erhaltenen Beschichtungspolymeren
(nachfolgende Beispiele 1 bis 10) werden in einem geeigneten Löse
mittel, wie Chloroform, gelöst. Nach Ausgießen in eine Petrischale
und Verdampfung des Lösemittels werden die erhaltenen Polymerfolien
über einen Zeitraum von einer Stunde in 1 ml einer Lösung einge
taucht, die aus 0,4 g/l Rinderserumalbumin (BSA), gelöst in phos
phatgepufferter physiologischer Kochsalzlösung (PBS), und 20 µg/ml
gereinigtem humanen Fibronektin besteht. Anschließend werden die so
mit Fibronektin beschichteten Proben unter kräftigem Rühren 1 Stun
de lang bei 37°C in eine Suspension der jeweiligen Bakterien gege
ben, die durch Einbau von 3H-Thymidin radioaktiv markiert sind.
Nach Ablauf der vorgegebenen Zeitspanne werden die überschüssigen
Bakterien durch Waschen entfernt, die Polymerfolien 2 mal mit je
weils 3 ml einer PBS-BSA-Lösung abgespült und zur Bestimmung der
Anzahl adhärierender Bakterien in ein Schraubglas mit 20 ml Szin
tillationslösung gelegt. Der Prozentsatz an adhärierenden Bakterien
wird über das Verhältnis der in der Probe vorhandenen zu der von
den Bakterien ursprünglich eingebrachten Radioaktivität bestimmt.
Die Hemmung der Bakterienadhäsion wird prozentual zu der Bakterien
adhäsion einer unbehandelten Folie als externem Standard bestimmt.
Nach einer Adsorption der Bakterienzellen an eingetauchte Polymer
folien werden die nicht adhärierenden Bakterien mit steriler PBS-
Lösung weggespült. Aus den adhärierenden Bakterien wird der Zellin
haltsstoff Adenosintriphosphat (ATP) in üblicher Weise extrahiert
und mit einer handelsüblichen Testkombination im bioluminometri
schen Test bestimmt. Die Anzahl der gemessenen Lichtimpulse ist
proportional zur Zahl der adhärierenden Bakterien. Es werden in je
dem Fall mehrere Folienstücke eingesetzt. Der mit der unbeschichte
ten Standardfolie gemessene Wert wird gleich hundert Prozent ge
setzt, und die Bakterienadhäsionswerte der bakterienabweisend be
schichteten Folien werden als prozentuale Verminderung Erhöhung
ausgedrückt.
Die Bakterien werden mit dem zu prüfenden Folienstück in eine Hefe
extrakt-Pepton-Glucose-Nährlösung gegeben und 24 Stunden bei 37°C
geschüttelt. Im Anschluß daran wird das Folienstück mit Leitungs
wasser gespült, in einen frischen Kolben mit Nährlösung übertragen
und für weitere 24 Stunden bei 37°C geschüttelt. Dieser Zyklus wird
noch einmal wiederholt, und das Folienstück wird mit Leitungswasser
gespült. Aus den an der Folie adhärierenden Bakterien wird der
Zellinhaltsstoff Adenosintriphospat (ATP) extrahiert und mit einer
handelsüblichen Testkombination im bioluminometrischen Test be
stimmt. Da für die dynamische Messung die gleichen Randbedingungen
wie für die statische Messung gültig sind, werden die Bakterienad
häsionswerte der beschichteten Folien als prozentuale Verminderung
im Vergleich zu unbeschichteten Standardfolien ausgedrückt.
Die erfindungsgemäß beschichteten Folien und unbeschichtete Ver
gleichsfolien werden zwölfmal jeweils 3 Stunden lang bei 37°C in
Ethanol gewaschen. Anschließend werden die so vorbehandelten Folien
in einer 0,15-molaren Natriumchloridlösung dreimal jeweils 3 Stun
den gewaschen und anschließend mit Wasser abgespült. Im folgenden
Reinigungsschritt werden die Folien dreimal jeweils 3 Stunden in
eine Phosphatpufferlösung gelegt und danach 15 min mit UV-Licht be
strahlt. Die so vorbehandelten Folien werden 16 Stunden bei 37°C in
einer DMEM-Lösung (Dulbecco's Modified Eagles Medium) gelagert.
Abschließend werden die Folien 16 Stunden in einer mit 0,05% Anti
biotika, 200 mg/l L-Glutamin und 10% eines fötalen Kälberserums
versetzten DMEM-Lösung bei 37°C in einer Atmosphäre von 5% CO2 und
95% Luft gehalten.
Menschliche Fibroblasten (McCoy's) von ATCC Nr. CRL 1996 (Rockvil
le, Maryland, USA) werden in einem DMEM-Medium mit 0,05% Antibio
tika, 200 mg/l L-Glutamin und 10% eines fötalen Kälberserums bei
37°C in einer Atmosphäre von 5% CO2 und 95% Luft gezüchtet. Nach
Abtrennen der Zellen vom Nährmedium wird sowohl die Anzahl der le
benden Zellen als auch die Gesamtzahl der Zellen in üblicher Weise
bestimmt.
Dann werden die erfindungsgemäß beschichteten Folien und die Ver
gleichsfolien nach der beschriebenen Vorbehandlung in "Wells" (Ver
tiefungen in Standardmikrotiterplatten) gegeben und mittels spe
zieller PTFE-Einsätze, die zuvor mit Ethanol sterilisiert wurden,
arretiert. Folien, "Wells" und PTFE-Einsätze werden durch 16 min
Bestrahlung mit UV-Licht sterilisiert. Anschließend werden die
Polymerfolien mit der Zellsuspension versetzt. Nach einer Inkuba
tion von 8 Tagen bei 37°C werden die Zellen mittels einer Phosphat
pufferlösung gereinigt, mit 0,05 Gew.-% Trypsin-EDTA-Lösung abge
trennt, und ihre Anzahl wird optisch oder mit einem Zellcounter
ausgezählt.
Ein Monomerengemisch aus 65 mol% Tris(trimethylsiloxy)methacryloyl
propylsilan (TTMPS), 10 mol% Cinnamoylethylmethacrylat (CEM), 13,7
mol% Methacrylsäure (MA) und 11,3 mol% Dimethyloctylammoniumstyrol
sulfonat (DOASS) wird in THF als Lösemittel unter Schutzgas vorge
legt und auf 65°C erhitzt. Nach Erreichen dieser Temperatur werden
0,6 mol% Azobisisobutyronitril zugegeben. Nach einer Reaktionsdauer
von 24 Stunden wird das Quaterpolymer durch Entfernen des Lösemit
tels am Rotationsverdampfer isoliert und anschließend mit Wasser
gewaschen. Die NMR-Analyse des Produkts ergibt eine Zusammensetzung
von
Dies entspricht einem Molverhältnis von COOH zu SO3⁻ von 1,2.
Ein Monomerengemisch aus 75 mol% Tris(trimethylsiloxy)methacryloyl
propylsilan (TTMPS), 10 mol% Cinnamoylethylmethacrylat (CEM), 10
mol% Methacrylsäure (MA) und 5 mol% Dimethyloctylammoniumstyrol
sulfonat (DOASS) wird in THF als Lösemittel unter Schutzgas vorge
legt und auf 65°C erhitzt. Nach Erreichen dieser Temperatur werden
0,6 mol% Azobisisobutyronitril zugegeben. Nach einer Reaktionsdauer
von 24 Stunden wird das Quaterpolymer durch Entfernen des Lösemit
tels am Rotationsverdampfer isoliert und anschließend mit Wasser
gewaschen. Die NMR-Analyse des Produkts ergibt eine Zusammensetzung
von
Dies entspricht einem Molverhältnis von COOH zu SO3⁻ von 0,55.
55 mol% Methylmethacrylat, 35 mol% Methacrylsäure, 5 mol% Natrium
styrolsulfonat und 5 mol% Cinnamoylethylmethacrylat werden unter
Schutzgas in Dimethylsulfoxid gelöst. Nach Erreichen der Reaktions
temperatur von 70°C werden 0,6 mol% Azobisisobutyronitril, gelöst
in Dimethylsulfoxid, zugetropft. Nach 18 Stunden Reaktionsdauer
wird das Produkt mit Eiswasser ausgefällt und anschließend im Soxh
let mit Aceton und Wasser extrahiert. Die Trocknung erfolgt bei
50°C im Vakuum.
65 mol% Methylmethacrylat, 18 mol% Methacrylsäure, 12 mol% Natrium
styrolsulfonat und 5 mol% Cinnamoylethylmethacrylat werden unter
Schutzgas in Dimethylsulfoxid gelöst. Nach Erreichen der Reaktions
temperatur von 75°C werden 0,6 mol% Azobisisobutyronitril, gelöst
in Dimethylsulfoxid, zugetropft. Nach 16 Stunden Reaktionsdauer
wird das Produkt mit Eiswasser ausgefällt und anschließend im Soxh
let mit Aceton und Wasser extrahiert. Die Trocknung erfolgt bei
50°C im Vakuum.
80 mol% Methylmethacrylat, 10 mol% Acrylsäure, 5 mol% Natriumsty
rolsulfonat und 5 mol% Cinnamoylethylmethacrylat werden unter
Schutzgas in Dimethylsulfoxid vorgelegt. Nach Erreichen der Reak
tionstemperatur von 75°C werden 0,6 mol% Azobisisobutyronitril, ge
löst in Dimethylsulfoxid, zugetropft. Nach 16 Stunden Reaktionsdau
er wird das Produkt mit Eiswasser ausgefällt und anschließend im
Soxhlet mit Aceton und Wasser extrahiert. Die Trocknung erfolgt bei
50°C im Vakuum.
87,5 mol% Methylmethacrylat, 5 mol% Maleinsäureanhydrid, 2,5 mol%
Natriumstyrolsulfonat und 5 mol% Cinnamoylethylmethacrylat werden
unter Schutzgas in Dimethylsulfoxid vorgelegt. Nach Erreichen der
Reaktionstemperatur von 70°C werden 0,6 mol% Azobisisobutyronitril,
gelöst in Dimethylsulfoxid, zugetropft. Nach 16 Stunden Reaktions
dauer wird das Produkt mit Eiswasser ausgefällt und anschließend im
Soxhlet mit Aceton und Wasser extrahiert. Die Trocknung erfolgt bei
50°C im Vakuum.
80 mol% Methylmethacrylat, 8 mol% Methacrylsäure, 7 mol% Natrium
styrolsulfonat und 5 mol% Cinnamoylethylmethacrylat werden unter
Schutzgas in Dimethylsulfoxid vorgelegt. Nach Erreichen der Reak
tionstemperatur von 70°C werden 0,6 mol% Azobisisobutyronitril, ge
löst in Dimethylsulfoxid, zugetropft. Nach 16 Stunden Reaktionsdau
er wird das Produkt mit Eiswasser ausgefällt und anschließend im
Soxhlet mit Aceton und Wasser extrahiert. Die Trocknung erfolgt bei
50°C im Vakuum.
85 mol% Methylmethacrylat, 7,5 mol% Maleinsäureanhydrid, 2,5 mol%
Natriumstyrolsulfonat und 5 mol% Cinnamoylethylmethacrylat werden
unter Schutzgas in Dimethylsulfoxid vorgelegt. Nach Erreichen der
Reaktionstemperatur von 70°C werden 0,6 mol% Azobisisobutyronitril,
gelöst in Dimethylsulfoxid. zugetropft. Nach 18 Stunden Reaktions
dauer wird das Produkt mit Eiswasser ausgefällt und anschließend im
Soxhlet mit Aceton und Wasser extrahiert. Die Trocknung erfolgt bei
50°C im Vakuum.
55 mol% Methylmethacrylat, 35 mol% Methacrylsäure, 5 mol% Natrium
styrolsulfonat und 5 mol% Cinnamoylethylmethacrylat werden unter
Schutzgas in Dimethylsulfoxid vorgelegt. Nach Erreichen der Reak
tionstemperatur von 80°C werden 0,6 mol% Azobisisobutyronitril, ge
löst in Dimethylsulfoxid, zugetropft. Nach 20 Stunden Reaktionsdau
er wird das Produkt mit Eiswasser ausgefällt und anschließend im
Soxhlet mit Aceton und Wasser extrahiert. Die Trocknung erfolgt bei
50°C im Vakuum.
65 mol% Methylmethacrylat, 18 mol% Methacrylsäure, 12 mol% Tri
ethylammoniumstyrolsulfonat und 5 mol% Cinnamoylethylmethacrylat
werden unter Schutzgas in Dimethylsulfoxid vorgelegt. Nach Errei
chen der Reaktionstemperatur von 70°C werden 0,6 mol% Azobisisobu
tyronitril, gelöst in Dimethylsulfoxid, zugetropft. Nach 16 Stunden
Reaktionsdauer wird das Produkt mit Eiswasser ausgefällt und an
schließend im Soxhlet mit Aceton und Wasser extrahiert. Die Trock
nung erfolgt bei 50°C im Vakuum.
Das als strahlungssensitives Monomer verwendete Cinnamoylethylmeth
acrylat wird ausgehend von 2-Hydroxyethylmethacrylat (3,8 mM) und
Cinnamoylchlorid (3,8 mM) in 100 ml trockenem Ethylether bei Raum
temperatur in Anwesenheit von 3,8 mM Pyridin erhalten.
Für die Versuche werden cinnamoylgruppenhaltige Substratpolymere
eingesetzt. Die Beschichtung der Substrate durch Pfropfung mit den
Beschichtungspolymeren wurde mittels Photografting durchgeführt.
Als Aktivierungsverfahren wurde UV-Bestrahlung durch eine Hg-Dampf
lampe (100 W) gewählt, die Pfropfung wurde durch Bestrahlung mit
derselben Lampe initiiert. Im einzelnen wurde so verfahren:
- - Das Substrat wird 20 min bestrahlt und anschließend 15 min in THF getaucht;
- - eine Lösung des Beschichtungspolymers (10 g/l) in THF/Dime thylsulfoxid (80/20) wird auf 2 Proben der Substratfolie auf gesprüht;
- - die beiden Proben werden 10 min bestrahlt, wobei es zu einer
Vernetzung und Pfropfung mittels der α-ständigen Doppel
bindungen kommt:
Die Photovernetzung mittels der strahlungssensitiven Gruppen kann
IR-spektroskopisch beobachtet werden. Während das IR-Spektrum des
bereits mit dem Beschichtungspolymer beschichteten, aber noch nicht
UV-bestrahlten Substrats bei 1637 cm⁻1 eine den C=C-Doppelbindungen
zugeordnete Bande aufweist, ist diese Bande nach der UV-Bestrahlung
nicht mehr registrierbar.
Die Ergebnisse der Prüfung auf bakterienabweisende Eigenschaften
der beschichteten Substratfolien sind aus den folgenden drei gra
phischen Darstellungen ersichtlich. Die Szintillationswerte wurden
mit den nicht erfindungsgemäßen Folien aus Beschichtungspolymeren
erhalten. Man erkennt aus den Fig. 1 und 2, daß die bakterienab
weisenden Eigenschaften der erfindungsgemäß beschichteten Substrat
folien denjenigen der Folien aus den Beschichtungspolymeren sehr
ähnlich sind. Diese Eigenschaften nehmen mit steigendem COO⁻ bzw.
COOH/SO3₋- bzw. SO3H-Verhältnis ab, sind aber bis zu einem Wert von
etwa 5 stark ausgeprägt. Aus Fig. 3 ist ersichtlich, daß bei einem
Verhältnis von COO⁻ bzw. COOH zu SO3H bzw. SO3₋ < 2 und insbesondere
von < 3 die Inhibierung der Zellproliferation drastisch abnimmt und
praktisch unvermindert im Vergleich zu unbeschichteten Folien ist.
Der Bereich von < 3 bis 5 ist gekennzeichnet durch starke bakteri
enabweisende und zugleich zellproliferationsfördernde Eigenschaf
ten. Ähnlich Ergebnisse werden auch mit den anderen Beschichtungspo
lymeren auf derselben und auf anderen Substratfolien erzielt.
Figur 1
Reduktion der Adhäsion von Staphylococcus aureaus auf Folien, die
mit Beschichtungspolymer erfindungsgemäß beschichtet waren, in Ab
hängigkeit vom molaren COO⁻- bzw. COOH/SO3₋-Verhältnis
Figur 2
Reduktion der Adhäsion von Staphylococcus epidermidis auf Folien,
die mit Beschichtungspolymer erfindungsgemäß beschichtet waren, in
Abhängigkeit vom molaren COO⁻- bzw. COOH/SO3₋-Verhältnis
Figur 3
Reduktion der Zellproliferation von menschlichen Fibroblasten auf
einer Folie, die mit einem Beschichtungspolymer erfindungsgemäß
beschichtet worden war, in Abhängigkeit von dem molaren COO⁻ bzw.
COOH/SO3⁻-Verhältnis.
Claims (17)
1. Verfahren zur Herstellung von bakterienabweisenden und zu
gleich proliferationsfördernden, kovalent fixierten Beschichtungen
auf der Oberfläche von Substraten, dadurch gekennzeichnet, daß man
ein Beschichtungspolymer, das
- (i) mindestens ein Monomer der allgemeinen Formel I
Formel I: R-(COOR1)a,
in der R einen ein- oder zweifach olefinisch ungesättigten orga nischen Rest mit der Wertigkeit a bedeutet,
R1 Wasserstoff, ein Metalläquivalent oder einen organischen Rest bedeutet und
a für 1, 2 oder 3 steht; - (ii) mindestens ein Monomer der allgemeinen Formel II
Formel II: R-(SO3R1)a,
in der R, R1 und a die angegebene Bedeutung haben: und - (iii) mindestens ein Monomer mit einer UV-strahlungssensitiven
Gruppe
einpolymerisiert enthält, strahleninduziert auf eine aktivierte Substratoberfläche aufpfropft, wobei das molare Verhältnis der Reste -COOR1 und -SO3R1 2 bis 10 beträgt.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß das
molare Verhältnis der Reste -COOR1 und -SO3H < 3 bis 5 beträgt.
3. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, daß
das Beschichtungspolymer
- (i) mindestens ein Monomer der allgemeinen Formel III
Formel III: (CnH2n-q-x)(COOR2)x und - (ii) mindestens ein Monomer der allgemeinen Formel IV
Formel IV: (CnH2n-q-x)(SO3R2)x
enthält, wobei
n jeweils unabhängig für eine ganze Zahl von 2 bis einschließ lich 6;
x jeweils unabhängig für 1 oder 2;
q jeweils unabhängig für 0 oder 2 steht; und
R2 jeweils unabhängig -H, ein Äquivalent eines Metallions, oder einen Rest eines aliphatischen, cycloaliphatischen oder araliphatischen Alkohols bedeutet.
4. Verfahren nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß
R2 jeweils unabhängig einen Rest eines Alkanols mit 1 bis 4 Kohlenstoffatomen, eines Cycloalkanols mit 5 bis 12 Kohlen stoffatomen, eines Arylalkanols mit 7 bis 10 Kohlenstoff atomen oder eines Alkanols mit Sauerstoff und/oder Stick stoffatomen in der Kette und mit bis zu 12 Kohlenstoffato men bedeutet.
R2 jeweils unabhängig einen Rest eines Alkanols mit 1 bis 4 Kohlenstoffatomen, eines Cycloalkanols mit 5 bis 12 Kohlen stoffatomen, eines Arylalkanols mit 7 bis 10 Kohlenstoff atomen oder eines Alkanols mit Sauerstoff und/oder Stick stoffatomen in der Kette und mit bis zu 12 Kohlenstoffato men bedeutet.
5. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, daß
das Beschichtungspolymer
- (i) mindestens ein von Benzol abgeleitetes Monomer der allge
meinen Formel V
Formel V: (C6H6-b-c-d)BbR3 c(OH)d und
- (ii) mindestens ein von Benzol abgeleitetes Monomer der allge
meinen Formel VI
Formel VI: (C6H6-b-c-d)BbR3 c(OH)d
enthält, wobei
B jeweils unabhängig einen ein- oder zweiwertigen geradketti gen oder verzweigten Rest der Formeln -(CnH2n-1-q-x)(COOR2)x oder -(CnH2n-1-q-x)(SO3R2)x bedeu tet, wobei R2, n, q und x wie zuvor definiert sind;
R3 jeweils unabhängig C1-4-Alkyl, -NH2, -COOH, -SO3H, -OSO3H, -OPO(OH)2, -PO(OH)2, -OP(OH)2, -OPO(O⁻)OCH2CH2N⁺(CH3)3, -PO(O⁻)OCH2CH2N⁺(CH3)3, -OP(O⁻)OCH2CH2N⁺(CH3)3 oder gegebe nenfalls ein Salz, insbesondere ein Alkalisalz, oder einen Ester der genannten Gruppen bedeutet;
b für 1, 2 oder 3 steht;
c für 0, 1, 2 oder 3 steht; und
d für 0, 1, 2 oder 3 steht;
mit der Maßgabe, daß b + c + d ≦ 6, vorteilhaft ≦ 4 ist.
6. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 5, dadurch gekenn
zeichnet, daß das Beschichtungspolymer (a) Monomere mit Carboxyl-,
Carboxylat- und/oder Carbonestergruppen sowie (b) Monomere mit Sul
fosäure-, Sulfonat- und/oder Sulfonsäureestergruppen enthält.
7. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 6, dadurch gekenn
zeichnet, daß der Anteil der Monomeren I bis VI am Gesamtmonomeren
gehalt des Beschichtungspolymeren 5 bis 30 mol% beträgt.
8. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 7, dadurch gekenn
zeichnet, daß das Beschichtungspolymer Carboxyl- und Sulfosäure
gruppen; Carboxyl- und Sulfonatgruppen; Carboxylat- und Sulfonat
gruppen; Carboxyl-, Sulfonsäure- und Sulfonatgruppen oder Carb
oxyl-, Carboxylat- und Sulfonatgruppen enthält.
9. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 8. dadurch gekenn
zeichnet, daß das Monomer mit UV-strahlungssensitiver Gruppe ein
Cinnamoyl- oder Furylderivat ist.
10. Verfahren nach Anspruch 9, dadurch gekennzeichnet, daß das
Monomer mit UV-strahlungssensitiver Gruppe Cinnamoylethylacrylat
oder -methacrylat ist.
11. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 10, dadurch gekenn
zeichnet, daß die Substratoberfläche durch ein einpolymerisiertes
Monomer mit einer UV-strahlungssensitiven Gruppe aktiviert wird.
12. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 10, dadurch gekenn
zeichnet, daß die Substratoberfläche durch UV-Strahlung aktiviert
wird.
13. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 10, dadurch gekenn
zeichnet, daß die Substratoberfläche durch ein einpolymerisiertes
Monomer mit einer UV-strahlungssensitiven Gruppe und zusätzlich
durch UV-Strahlung aktiviert wird.
14. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 10, dadurch gekenn
zeichnet, daß die Substratoberfläche durch Hochfrequenz- oder
Mikrowellenplasma aktiviert wird.
15. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 14, dadurch gekenn
zeichnet, daß die Pfropfung des Beschichtungspolymeren auf die Sub
stratoberfläche durch UV-Strahlen induziert wird.
16. Gegenstand, dadurch gekennzeichnet, daß er auf seiner Ober
fläche eine bakterienabweisende und zugleich zellproliferationsför
dernde Beschichtung aufweist, die durch das Verfahren nach einem
der Ansprüche 1 bis 15 erzeugt wurde.
17. Verwendung eines Gegenstandes nach Anspruch 16 im medizini
schen oder biotechnischen Bereich.
Priority Applications (6)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE19700083A DE19700083A1 (de) | 1997-01-03 | 1997-01-03 | Bakterienabweisende und zellproliferationsfördernde Beschichtung von Oberflächen |
EP97121482A EP0860213A3 (de) | 1997-01-03 | 1997-12-05 | Bioaktive Beschichtung von Oberflächen |
JP9360531A JPH10249277A (ja) | 1997-01-03 | 1997-12-26 | 表面の生物活性被覆 |
CA002226132A CA2226132A1 (en) | 1997-01-03 | 1998-01-02 | Bioactive surface coating |
NO980018A NO980018L (no) | 1997-01-03 | 1998-01-02 | Bioaktive belegg av overflater |
US09/003,033 US6248811B1 (en) | 1997-01-03 | 1998-01-05 | Bioactive surface coating |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE19700083A DE19700083A1 (de) | 1997-01-03 | 1997-01-03 | Bakterienabweisende und zellproliferationsfördernde Beschichtung von Oberflächen |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE19700083A1 true DE19700083A1 (de) | 1998-07-09 |
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ID=7816793
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE19700083A Withdrawn DE19700083A1 (de) | 1997-01-03 | 1997-01-03 | Bakterienabweisende und zellproliferationsfördernde Beschichtung von Oberflächen |
Country Status (1)
Country | Link |
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-
1997
- 1997-01-03 DE DE19700083A patent/DE19700083A1/de not_active Withdrawn
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Owner name: DEGUSSA-HUELS AG, 60311 FRANKFURT, DE |
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8127 | New person/name/address of the applicant |
Owner name: DEGUSSA AG, 40474 DUESSELDORF, DE |
|
8127 | New person/name/address of the applicant |
Owner name: THERAPOL SA, LEVALLOIS PERRET, FR |
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Representative=s name: PATENT- UND RECHTSANWAELTE KRAUS & WEISERT, 80539 M |
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