DE19627898A1

DE19627898A1 - Festphasensynthese von Oligonucleotiden

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Publication number: DE19627898A1
Application number: DE19627898A
Authority: DE
Inventors: Wolfgang Prof Dr Pfleiderer; Markus Dipl Chem Beier
Original assignee: Hoechst AG
Current assignee: Hoechst AG
Priority date: 1996-07-11
Filing date: 1996-07-11
Publication date: 1998-01-15
Also published as: JPH1072486A; ES2188826T3; EP0818460A2; EP0818460B1; JP4435878B2; AU716391B2; NO973217L; DE59709128D1; CA2210031C; US5936077A; NO317853B1; NO973217D0; CA2210031A1; EP0818460A3; DK0818460T3; ATE231162T1; PT818460E; AU2855297A

Description

Die chemische Polykondensation von Mononucleotiden ist eine wichtige Methode zur Herstellung von Desoxyribonucleinsäure (DNA) oder Ribonucleinsäure (RNA).

Oligonucleotide finden in wachsendem Maße Anwendung als Inhibitoren der Genexpression (J. F. Milligan, M. D. Matteucci und J. C. Martin, J. Med. Chem. 36 (1993) 1923; E. Uhlmann and A. Peyman, Chemical Reviews 90 (1990) 543) oder als Ribozyme (z. B. D. Castanotto, J. J. Rossi, J. O. Deshler, Critical Rev. Eukar. Gene Expr. 2 (1992) 331), oder in der Diagnostik als DNA-Sonden (z. B. Beck und Köster, Anal. Chem. 62 (1990) 2258). Es besteht daher ein großer Bedarf nach geeigneten Verfahren zur Synthese solcher Verbindungen.

Eine Übersicht über den Stand der Technik der Oligonucleotidsynthese findet sich bei E. Sonveaux, Bioorg. Chem. 14 (1986) 274; E. Uhlmann and A. Peyman, Chemical Reviews 90 (1990) 543, Beaucage und Iyer Tetrahedron 49 (1993) 10 441-10 488.

Ein grundlegendes Problem bei der chemischen Synthese von DNA oder RNA ist das Auffinden geeigneter Schutzgruppen der Amino- und Hydroxygruppen der Nucleosidbasen und der Zuckerreste. Diese Schutzgruppen müssen einerseits unter den Bedingungen der Polykondensationsreaktion, d. h. während der Reaktion, stabil sein und andererseits müssen sie genügend labil sein, um am Ende der Reaktion wieder entfernt werden zu können, ohne die Phosphodiester- Bindung wieder zu spalten [H. G. Khorana; Pure Appl. Chem. 17 (1968) 349].

Die gegenwärtige Praxis bei der DNA Synthese sieht im wesentlichen drei Schritte vor: (a) sequentieller Aufbau der in verschiedener Weise geschützten Nucleotide auf einem festen Träger; (b) Spaltung der synthetisierten Oligonucleotide vom Träger; (c) Entschützung der Oligonucleotide. Während der Aufbau des Oligonucleotids am festen Träger sehr schnell erfolgt - für ein 20mer wird ungefähr eine Stunde benötigt - und auch die Abspaltung vom Träger innerhalb einer Stunde vollständig ist, bleibt die endgültige Entschützung des Oligonucleotids problematisch. Die Standard Oligonucleotid-Synthese (z. B. M. Reddy, N. B. Hanna, F. Farooqui, WO 95/24413) sieht eine Behandlung von ca. 6h bei 55°C mit konz. NH₃ vor, wenn die etablierten Schutzgruppen Benzoyl für dA und dC, sowie Butyroyl für dG eingesetzt werden. Zur Beschleunigung dieses letzten Schritts wurden in jüngerer Zeit eine ganze Reihe von Schutzgruppen vorgeschlagen, die gegenüber der ammoniakalischen Aminolyse empfindlicher sind, als die konventionell geschützten Nucleotid-Derivate (M. Reddy et al., vide supra; Beaucage und Iyer, vide supra). Diese beinhalten beispielsweise die Phenoxyacetyl-Gruppe (Schulhof et al., Nucl. Acids Res. 15 (1987) 397; die Dimethylformamidin-Gruppe (Vu et al., Tetrahedron Lett. 31 (1990) 7269, die tert.-Butylphenoxyacetyl-Gruppe (Sinha et al., Biochimie 75 (1993) 13, oder Phenylacetyl-Schutzgruppen wie in Reddy et al. - vide supra - beschrieben. Mit diesen ammoniaklabilen Schutzgruppe wird zwar die Entschützungszeit bei 55°C auf 15-60 Minuten reduziert, doch ist deren Gebrauch auch mit Nachteilen behaftet: Die Labilität dieser Gruppen führt zunächst auch zu einer Instabilität gegenüber den DNA Synthesebedingungen, z. B. während des capping Schrittes (Beaucage und Iyer, vide supra). Phenoxyacetyl Schutzgruppen beispielsweise reduzieren die Löslichkeit der Nucleotid-Derivate, so daß Lösungsmittelgemische eingesetzt werden müssen.

Ein weiteres Kriterium für die Anwendung von Schutzgruppen für die exocyclischen Aminofunktionen der Nucleobasen ist die Reinheit der entstehenden Produkte. Bei Entschützungsprozeduren mit Ammoniak, die nach bzw. während der Abspaltung vom Träger erfolgen, wird stets ein Gemisch aus Oligonucleotid und abgespaltenen Schutzgruppen erhalten. Das Oligonucleotid muß dann in weiteren Reinigungsschritten gesäubert werden. Vorteilhafter sind Schutzgruppen, die sich noch am festen Träger abspalten lassen, ohne daß das Oligonucleotid von letzterem abgespalten wird. Eine solche Schutzgruppe ist beispielsweise die para-Nitrophenylethyloxycarbonyl-Schutzgruppe, die sich noch am Träger mit DBU entfernen läßt. Die anschließende Spaltung des Oligonucleotids vom Träger mit Ammoniak liefert schon reines Oligonucleotid (F. Himmelsbach et al., Tetrahedron 40 (1984) 59).

Ein weiteres Kriterium für die Brauchbarkeit von Schutzgruppen für die exocyclischen Aminofunktionen der Nucleobasen ist die Stabilität gegenüber sauren Bedingungen, wie sie in der Regel zur Abspaltung der 5′-Hydroxyschutzgruppe in jedem Reaktionscyclus angewandt werden, z. B. 2% Dichloressigsäure in Dichlormethan. Diese Bedingungen führen, insbesondere bei Deoxyadenosin zu einem nicht unerheblichen Anteil von Depurinierung. Cyclische Diacylgruppen wie beispielsweise Phthaloyl- oder Succinoyl-Gruppen als Schutz der exocyclischen Aminofunktion erwiesen sich als besonders stabil gegenüber den Depurinierungsbedingungen (Kume et al., Tetrahedron Lett. 23 (1982) 4365; Nucleic Acids Res. 12 (1984) 8525; Nucleic Acids Res. Symp. Ser. 11 (1982) 26; Chemistry Letters 1983, 1597). Die Entschützung dieser Gruppen erfolgte jedoch ebenfalls mit Ammoniak (Kume et al., vide supra). Weitere cyclische Diacylgruppen sind beispielsweise die Naphthaloyl-Gruppe (Dikshit et al., Can. J. Chem. 66 (1988) 2989, die ebenfalls stabil gegen Depurinierung ist und gleichfalls mit Ammoniak wieder entfernt wurde.

Überraschend wurde nun gefunden, daß diese cyclischen Diacylgruppen nicht nur besonders stabil sind gegenüber Depurinierungsbedingungen, sondern sich bequem mit einer starken, nicht nucleophilen Base wie beispielsweise DBU abspalten lassen. Dies ist um so erstaunlicher, da Phthaloyl-Gruppen teilweise unter Zuhilfenahme von DBU - allerdings bei niedrigeren DBU-Konzentrationen - eingeführt wurden (Kamaike et al., Tetrahedron Lett. 36 (1995) 91). Wegen der hohen Stabilität der mit cyclischen Diacylgruppen geschützter Nucleobasen gegen Depurinierung und der Möglichkeit, diese vor der Abspaltung des Oligonucleotids vom Träger leicht zu entfernen, bieten diese sich als ideale Schutzgruppen zur Herstellung von Oligonucleotiden an.

Gegenstand der Erfindung ist daher ein Verfahren zur Herstellung von Oligonukleotiden mittels Festphasensynthese durch

a) sequentiellen Aufbau der Nucleotide an einem festen Träger nach bekannten Methoden, wobei vorhandene exocyclische Aminogruppen an den Nucleobasen durch eine cyclische Diacylgruppe geschützt sind und gegebenenfalls vorhandene Phosphatschutzgruppen durch starke, nicht nukleophile Basen abspaltbar sind,
b) Entschützung der am festen Träger gebundenen Oligonukleotide, und
c) Abspaltung der entschützten Oligonukleotide vom festen Träger nach bekannten Methoden,

dadurch gekennzeichnet, daß die am festen Träger gebundenen Oligonukleotide in Gegenwart einer starken, nukleophilen Base in einem geeigneten organischen Lösungsmittel wie beispielsweise Acetonitril, Pyridin oder N-Methylimidazol entschützt werden.

Starke, nicht nukleophile Basen sind dem Fachmann bekannt, wie beispielsweise DBU (Diazabicyclo[5.4.0]undec-7-en, DABCO (Diazabicyclo-[2.2.2]octan), DBN (Diazabicyclo-[4.3.0]non-5-en), Ethyldiisopropylamin, Triethylamin, N-Ethylmorpholin, DMAP (Dimethylaminopyridin), Lutidin oder ungeladene, peralkylierte Polyamino-Phosphazen-Basen (R. Schwesinger, Angew. Chem. 99 (1987) 1212). Bevorzugt ist die starke, nicht nukleophile Base DBU.

Bevorzugt erfolgt die Entschützung in Gegenwart von 0,1 bis 5 M Lösung von DBU bei 0 bis 70°C für 0,1 bis 16 h, besonders bevorzugt in Gegenwart einer 0,3 bis 3 M Lösung von DBU bei 10 bis 40°C für 0,1 bis 2 h, besonders bevorzugt in Gegenwart einer 0,5 bis 2,5 M Lösung von DBU bei 20 bis 30°C für 0,2 bis 1,5 h.

Das erfindungsgemäße Verfahren eignet sich somit beispielsweise zur Herstellung von Verbindungen der Formel I

worin
R₁ Wasserstoff, Hydroxy, C₁-C₁₈-Alkoxy, gegebenenfalls ein bis dreifach substituiert mit Hydroxy oder C₁-C₄-Alkoxy, C₁-C₄-Alkyl-O- (CH₂CH₂O)_s, worin s eine Zahl von 1-3 bedeutet; O-Allyl, Halogen, Azido oder Amino bedeutet;
A unabhängig voneinander für Oxy, Thioxy oder Methylen steht;
W unabhängig voneinander Oxo, Thioxo oder Selenoxo bedeutet;
V unabhängig voneinander Oxy, Sulfandiyl oder Imino bedeutet;
Y unabhängig voneinander Oxy, Sulfandiyl, Imino oder Methylen bedeutet;
B für eine in der Nucleotidchemie übliche Base, beispielsweise für natürliche Basen wie Adenin, Cytosin, Guanin, Uracil und Thymin oder unnatürliche Basen wie beispielsweise Purin, 2.6-Diaminopurin, 7-Deazaadenin, 7-Deazaguanin, 7-Deaza-7-C₁-C₃-alkinyl-adenin, 7-Deaza-7-C₁-C₃-alkinyl-guanin, N₄N₄-Ethanocytosin, N₆N₆-Ethano-2.6-diaminopurin, Pseudoisocytosin, 5-C₂-C₆-Alkinuracil, 5-C₂-C₆-Alkincytosin, bevorzugt 5-Propinuracil, 5-Propincytosin, 5-Hexinuracil, 5-Hexincytosin, oder 5-Fluorocytosin, 5-Fluoruracil, 5-Hydroxymethyluracil, 5-Bromcytosin, steht; wobei mindestens ein B für eine Base steht, die eine exocyclische Aminogruppe aufweist;
n eine ganze Zahl von 1 bis 100 bedeutet;
U Hydroxy, Mercapto, BH₃, SeH, C₁-C₁₈-Alkoxy, vorzugsweise C₁-C₆. Alkoxy, C₁-C₁₈-Alkyl,vorzugsweise C₁-C₆-Alkyl, C₆-C₂₀-Aryl, (C₆-C₁₄)- Aryl-(C₁-C₈)-alkyl, NHR³, NR³R⁴ oder einen Rest der Formel II

(OCH₂CH₂)_pO(CH₂)_qCH₂R² (II)

bedeutet, worin
R³ C₁-C₁₈-Alkyl, vorzugsweise C₁-C₈-Alkyl, C₆-C₂₀-Aryl, (C₆-C₁₄)- Aryl-(C₁-C₈)-alkyl, (CH₂)C_c[NH(CH₂)C]_d-NR⁵R⁵, worin c eine ganze Zahl von 2 bis 6 und d eine ganze Zahl von 0 bis 6 ist;
R⁵ unabhängig voneinander Wasserstoff, C₁-C₆-Alkyl oder C₁-C₄-Alkoxy-C₁-C₆-alkyl, bevorzugt Methoxyethyl, ist;
R⁴ C₁-C₁₈-Alkyl, vorzugsweise C₁-C₈-Alkyl und besonders bevorzugt C₁-C₄-Alkyl, C₆-C₂₀-Aryl oder (C₆-C₁₀)-Aryl-(C₁-C₈)-alkyl bedeutet oder im Falle von NR³R⁴ zusammen mit R³ und dem sie tragenden Stickstoffatom einen 5-6-gliedrigen heterozyklischen Ring bedeutet, der zusätzlich ein weiteres Heteroatom aus der Reihe O, S, N enthalten kann;
p eine ganze Zahl von 1 bis 100, bevorzugt 3 bis 10 ist;
q eine ganze Zahl von 0 bis 22, bevorzugt 0 bis 1 5 ist;
R² Wasserstoff oder eine funktionelle Gruppe wie Hydroxy, Amino, NHR₆, COOH, CONH₂, COOR₇ oder Halogen bedeutet, worin
R⁶ C₁-C₄-Alkyl und
R⁷ C₁-C₄-Alkyl, vorzugsweise Methyl bedeutet;
Q und Q′ unabhängig voneinander Wasserstoff bedeuten oder für Konjugate stehen, welche die Eigenschaften von Antisense-Oligonucleotiden oder von Tripelhelix bildenden Oligonucleotiden (wie beispielsweise Zellpenetration, Nucleaseabbau, Affinität zur Target-RNA/DNA, Pharmakokinetik) günstig beeinflussen oder als Markierung einer DNA Sonde dienen oder bei der Hybridisierung des Oligonucleotidanalogons an die Target-Nucleinsäure diese unter Bindung oder Quervernetzung angreift wie beispeisweise Konjugate mit Poly-Lysin, mit Interkalatoren wie Pyren, Acridin, Phenazin, Phenanthridin, mit fluoreszierenden Verbindungen wie Fluorescein, mit Cross-Linkern wie Psoralen, Azidoproflavin, mit lipophilen Molekülen wie (C₁₂-C₂₀)-Alkyl, mit Lipiden wie 1,2-Di-hexadecyl-rac-glycerin, mit Steroiden wie Cholesterin oder Testosteron, mit Vitaminen wie Vitamin E, mit Poly- bzw. Oligo-ethylengylcol, mit (C₁₂-C₁₈)- Alkyl-Phosphatdiestern, mit -O-CH₂-CH(OH)-O-(C₁₂-C₁₈)-Alkyl; oder besonders bevorzugt für Konjugate mit lipophilen Molekülen wie (C₁₂-C₂₀)-Alkyl, mit Steroiden wie Cholesterin oder Testosteron, mit Poly- oder Oligoethylenglykol, mit Vitamin E, mit Interkalatoren wie Pyren, mit (C₁₄-C₁₈)-Alkyl- Phosphatdiestern, oder mit -O-CH₂-CH(OH)-O-(C₁₂-C₁₆)-Alkyl stehen;
R¹ und der benachbarte Phosphorylrest sowohl in 2′- und 3′-Stellung oder auch umgekehrt in 3′- und 2′-Stellung befinden können, wobei jedes Nucleotid in seiner D- bzw. L-Konfiguration vorliegen kann und sich die Base B in alpha- bzw. beta-Stellung befinden kann, wobei das Oligonukleotide auch 3′-3′ bzw. 5′-5′-Inversionen beinhalten kann (Ch. Chaix et al., Bioorg. & Med. Letters 6 (1996) 827);
dadurch gekennzeichnet, daß man

(a) eine Verbindung der Formel III in der A, Y, V, wie oben definiert sind und
R¹′ wie R¹ definiert ist wobei, wenn R¹ für Hydroxy oder Amino steht R¹′ eine entsprechend geschützte Verbindung bedeutet;
S für eine im sauren abspaltbare 5′- Schutzgruppe, wie beispielsweise Dimethoxytrityl, Monomethoxytrityl, Trityl, Pixyl, bevorzugt Dimethoxytrityl und Monomethoxytrityl steht;
B^PR für eine natürliche oder unnatürliche Nucleobase steht, wobei gegebenenfalls vorhandenen exocyclische Aminogruppen durch eine cyclische Diacylgruppe geschützt sind,
nach bekannten Verfahren mit einer Verbindung der Formel IV umsetzt worin
Z′ für OR¹³ oder C₁-C₁₈-Alkyl, C₁-C₁₈-Alkoxy, C₆-C₂₀-Aryl, C₆-C₁₄-Aryl-C₁-C₈-Alkyl, bevorzugt für OR¹³, C₁-C₆-Alkyl, C₁-C₆-Alkoxy, C₆-C₂₀-Aryl, C₆-C₁₄-Aryl-C₁-C₈-Alkyl, besonders bevorzugt für OR¹³ steht;
R¹¹ und R¹² gleich oder verschieden sind und C₁-C₈-Alkyl, vorzugsweise Isopropyl, oder C₅-C₁₂-Cycloalkyl, vorzugsweise bis C8, Benzyl oder Phenyl oder zusammen mit dem Stickstoffatom, an das sie gebunden sind, einen gesättigten oder ungesättigten heterocyclischen Ring, mit gegebenenfalls weiteren Heteroatomen, wie z. B. Morpholin, und Substituenten, wie OC(O)O-C₁- C₄-Alkyl-Ester, bedeuten; und
R¹³ für eine durch starke, nicht nukleophile Basen abspaltbare Schutzgruppe steht,
Z für Chlor oder Brom oder einen Rest der Formel NR¹¹R¹², wobei R¹¹ und R¹² wie oben definiert sind, steht;
in Gegenwart einer Base, vorzugsweise Pyridin oder einer Mischung von Tetrahydrofuran (THF), Dioxan, Dichlormethan (DCM), Chloroform, und/oder Acetonitril mit einem C₁-C₄-Trialkylamin, vorzugsweise Trimethyl-, Triethyl- oder Diisopropylethyl-Amin oder, wenn Z ein Rest der Formel NR¹¹R¹² ist, dann in Gegenwart einer Verbindung der Formel [HNR¹⁴R¹⁵R¹⁶]⁽⁺⁾A^(-) , wobei R¹⁴, R¹⁵, R¹⁶ gleich oder verschieden voneinander sind und eine C₁-C₄-Alkylgruppe und A Fluor, Chlor, Brom, insbesondere Chlor, bedeuten, oder Tetrazol oder 5-(C₁-C₄-Alkylthio)-1H-tetrazol, 5-(C₆-C₁₂)-Aryl-1H-tetrazol, oder anderen Aktivatoren wie beispielsweise Pyridin-Hydrochlorid, vorzugsweise in Gegenwart von Tetrazol oder Pyridin-Hydrochlorid zu einer Verbindung der Formel V umsetzt worin S, V, Y,A, B^PR, Z′, R¹′, R¹¹, R¹² wie oben definiert sind;
(b) Verbindungen der Formel III nach bekannten Verfahren mit 1 bis 10 Equivalenten, bevorzugt mit 1 bis 2 Equivalenten eines Linkers, wie Bernsteinsäureanhydrid, in einem geeigneten organischen Lösungsmittel, beispielsweise Methylenchlorid, gegebenenfalls nach Zugabe eines Katalysators, beispielsweise 4-Dimethylaminopyridin, zu einer Verbindung der Formel VI wobei S, V, Y,A, B^PR und R¹ wie oben definiert sind, umsetzt und anschließend nach bekannten Verfahren, wie beispielsweise Extraktion, Kristallisation, Chromatographie aufarbeitet, wobei der Bernsteinsäure-Rest in 3′-Position als Linker zu dem in der Synthese eingesetzten Polymerträger dient und alternativ zum Bernsteinsäurelinker auch andere Linker, wie z. B. in Sonveaux [Bioorg. Chem. 14 (1986) 274] beschrieben, verwendet werden können;
(c) die Verbindung der Formel VI nach bekannten Verfahren auf einen festen Träger SS, wie beispielsweise CPG (CPG = Controlled Pure Glass) oder Tentagel, bevorzugt DBU stabile Träger wie das "long chain methylaminoalkyl- CPG" [Stengele, Tetrahedron Lett. 1990, 31, 2549], beispielsweise durch Umsetzung mit DCC und p-Nitrophenol in einem geeigneten Lösungsmittel, oder durch Umsetzung mit TOTU (O-[(ethoxycarbonyl)cyanomethylenamino]- N,N,N′,N′-tetramethyluronium-tetrafluor-borat: W. König, G. Breipohl, P. Pokorny, M. Birkner, Proceedings of the 21st European Peptide Symposium 1990, E. Giralt, D. Andreu, Eds., ESCOM, Leiden, S. 143.), gegebenenfalls unter Zusatz einer geeigneten Base wie beispielsweise N-Methylmorpholin, N-Ethylmorpholin oder Ethyldiisopropylamin oder Triethylamin, in einem geeigneten Lösungsmittel koppelt [wie z. B. in M.J. Gait, Oligonucleotide Synthesis - a practical approach, IRL Press, 1984 beschrieben], wobei Verbindungen der Formel VII erhalten werden;
(d) die 5-Schutzgruppe von VII nach bekannten Verfahren, beispielsweise durch Behandlung mit 1-4%iger Di- oder Trichloressigsäure in Methylenchlorid oder Chloroform, abspaltet;
(e) die erhaltene Verbindung mit einer Verbindung der Formel V in einem geeigneten organischen Lösungsmittel, bevorzugt Acetonitril, in Gegenwart einer Verbindung der Formel [HNR¹⁴R¹⁵R¹⁶]⁽⁺⁾A^(-), die wie oben definiert ist, oder Tetrazol, 5-(C₁-C₄-Alkylthio)-1H-tetrazol oder 5-(C₆-C₁₂)-Aryl-1H-tetrazol, oder anderen Aktivatoren wie beispielsweise Pyridin-Hydrochlorid, vorzugsweise in Gegenwart von Tetrazol oder Pyridin-Hydrochlorid, umsetzt;
(f) die erhaltene Verbindung nach bekannten Verfahren oxidiert, beispielsweise durch Umsetzung mit Jod in Gegenwart von wäßrigem Pyridin, Lutidin oder Collidin, gegebenenfalls auch in Gegenwart weiterer organischer Lösungsmittel wie beispielsweise Tetrahydrofuran, oder beispielsweise durch Umsetzung mit tert-Butylhydroperoxid in Tetrahydrofuran, oder durch Umsetzung mit N,N,N′,N′-Tetraethylthiuramdisulfid in Acetonitril, oder beispielsweise durch Umsetzung mit Jod in Gegenwart von Alkylamin oder Arylamin, wobei die verschiedenen, dem Fachmann bekannten Oxidationsverfahren, die der Herstellung von natürlichen und modifizierten Oligonucleotiden dienen, und beispielsweise in Beaucage und Iyer [Tetrahedron 49 (1993) 6123] sowie Uhlmann und Peyman [Chem. Rev. 90 (1990) 543] zusammengefaßt sind, und die Oxidation bevorzugt durch Umsetzung mit Jod in Gegenwart von wäßrigem Pyridin, Lutidin oder Collidin, gegebenenfalls auch in Gegenwart weiterer organischer Lösungsmittel wie Tetrahydrofuran erfolgt;
(f)′ gegebenenfalls nicht abreagierte Verbindungen aus Schritt (d) durch einen capping-Schritt deaktiviert, beispielsweise durch Umsetzung mit Acetanhydrid-Lutidin-N-Methylimidazol in THF;
(g) die Reaktionsschritte d-f bis zur gewünschten Kettenlänge wiederholt;
(h) die so erhaltene Verbindung entschützt durch Behandlung mit einer 0.1 bis 5 M Lösung von DBU in einem geeigneten organischen Lösungsmittel wie beispielsweise Acetonitril, Pyridin oder N-Methylimidazol bei 0 bis 70°C während 0.1 bis 16h, bevorzugt mit einer 0.3 bis 3M Lösung bei 10 bis 40°C während 0.1 bis 2h, besonders bevorzugt mit einer 0.5 bis 2.5 M Lösung zwischen 20 und 30°C während 0.2 bis 1.5 h;
(i) das Oligonucleotid nach bekannten Verfahren vom Träger abspaltet, beispielhaft mit NH₃ bei 20-30°C und die Verbindungen der Formel I durch Lyophilisation der ammoniakalischen Lösung

Durch starke, nicht nukleophile Basen abspaltbare Schutzgruppen sind solche, die durch Behandlung mit starken, nukleophilen Basen abgespalten werden, wobei die Abspaltung in der Regel durch ß-Eliminierung erfolgt. Solche Schutzgruppen sind beispielsweise 4-Nitrophenylethyl, 2-Cyanoethyl, Dansylsulfonylethyl, Arylethyl, Arylsulfonylethyl, wobei Phenyl gegebenenfalls ein oder mehrfach substituiert mit Chlor, Brom, CN, NO₂, F, sein kann, bevorzugt 4-Nitrophenylethyl oder 2-Cyanoethyl.

Die Synthese der Verbindungen der Formel VII kann auch erfolgen durch Succinoylierung des festen Trägers und anschließende Aufkondensation von Verbindungen der Formel III.

Die Einführung der Gruppen Q und Q′ erfolgt gegebenenfalls nach dem Fachmann bekannten Verfahren (s. z. B. Uhlmann & Peyman, Chem. Rev. 90 (1990) 543; M. Manoharan in "Antisense Research and Applications", Crooke and Lebleu, Eds., CRC Press, Boca Raton, 1993, Chapter 17, S.303ff. und EP-A 0 552 766).

Schutzgruppen für R wenn R¹ OH oder Amino darstellt und die Synthese entsprechend derivatisierter Nucleosidbausteine sind dem Fachmann bekannt (wie beispielsweise die Dimethyltertbutylsilylgruppe oder die 1-(2-chloro-4- methylphenyl)-4-methoxy-4-piperidinylgruppe für R¹ ist Hydroxy oder die Acetylgruppe für R¹ ist Amino) und sind beispielsweise beschrieben in Uhlmann und Peyman Chem. Rev. 90 (1990) 543; Beaucage und lyer Tetrahedron 48 (1993) 2223 oder C. Hendrix et al., Nucl Acids Res. 26 (1995) 51.

Beispiele für B^PR sind

worin
m für eine Zahl von Null bis vier, bevorzugt für Null steht, die Reste
R⁸ unabhängig voneinander für Wasserstoff, Fluor, Chlor, Brom, Nitro, C₁- C₄-Alkyl, C₁-C₄-Alkoxy, CN steht,
R⁹ unabhängig voneinander Wasserstoff, C₂-C₆-(1-Alkin), bevorzugt 1-Propinyl und 1-Hexinyl oder Fluor bedeutet; und
R¹⁰ unabhängig voneinander für Wasserstoff oder eine β-eliminierbare Schutzgruppen, wie beispielsweise para-Nitrophenylethyl, Phenylsulfonylethyl stehen,
wobei die Einführung cyclischer Diacyl-Schutzgruppen und der 5′-Schutzgruppe S in Nucleoside dem Fachmann bekannt ist, s. z. B. Kume et al., Tetrahedron Lett. 23 (1982) 4365; Nucleic Acids Res. 12 (1984) 8525; Nucleic Acids Res. Symp. Ser. 11 (1982) 26; Chemistry Letters 1983, 1597 oder Dikshit et al., Can. J. Chem. 66 (1988) 2989 oder Kamaike et al., Tetrahedron Lett. 36 (1995) 91.

Modifizierte Nucleosid-Bausteine lassen sich in analoger Weise schützen. Die Einführung der Schutzgruppen R¹⁰ erfolgt vor der Einführung der cyclischen Diacylgruppen ebenfalls nach bekannten Verfahren, beispielsweise nach F. Himmelsbach et al., Tetrahedron 40 (1984) 59 oder Beaucage und lyer Tetrahedron 49 (1993) 6123; Beaucage und lyer Tetrahedron 48 (1993) 2223.

Bevorzugt ist das erfindungsgemäße Verfahren zur Herstellung von Verbindung der Formel I, worin
R¹ Wasserstoff, Hydroxy, C₁-C₄-Alkoxy oder Fluor bedeutet;
A für Oxy steht;
W Oxo oder Thioxo bedeutet;
V Oxy bedeutet;
Y Oxy bedeutet;
B unabhängig voneinander für Adenin, Cytosin, Guanin, Uracil, Thymin, 5-Propinuracil und 5-Propincytosin, 5-Hexinuracil oder 5-Hexincytosin steht, wobei mindestens ein B für eine Base steht, die eine exocyclische Aminogruppe aufweist,
n eine ganze Zahl von 5 bis 40 bedeutet;
U für für Hydroxy, Mercapto, C₁-C₆-Alkoxy, C₁-C₆-Alkyl, NR³R⁴ oder NHR³ steht, worin
R³ für C₁-C₈-Alkyl oder Methoxyethyl steht;
R⁴ C₁-C₈-Alkyl, C₆-C₂₀-Aryl oder (C₆-C₁ ₀)-Aryl-(C₁-C₈)-alkyl bedeutet oder im Falle von NR³R⁴ zusammen mit R³ und dem sie tragenden Stickstoffatom einen 5-6-gliedrigen heterozyklischen Ring bedeutet, der zusätzlich ein weiteres Heteroatom aus der Reihe O, S, N enthalten kann; und
Q und Q′ unabhängig voneinander Wasserstoff bedeuten.

Besonders bevorzugt ist das erfindungsgemäße Verfahren zur Herstellung von Verbindungen der Formel I, worin
R¹ Wasserstoff bedeutet
A für Oxy steht;
W Oxo oder Thioxo bedeutet;
V Oxy bedeutet;
Y Oxy bedeutet;
B für Adenin, Cytosin, Guanin, Uracil, Thymin, 5-Propinuracil und 5-Propincytosin, 5-Hexinuracil oder 5-Hexincytosin steht; wobei mindestens ein B für eine Base steht, die eine exocyclische Aminogruppe aufweist;
n bevorzugt 5 bis 30 bedeutet;
U Hydroxy oder C₁-C₆-Alkyl bedeutet, und
Q und Q′ Wasserstoff bedeuten.

Gegenstand der Erfindung ist weiterhin eine Verbindung der Formel V

worin
R¹′ unabhängig voneinander Wasserstoff, C₁-C₁₈-Alkoxy, gegebenenfalls ein bis dreifach substituiert mit Hydroxy, oder C₁-C₄-Alkoxy, C₁-C₄-Alkyl-O- (CH₂CH₂O)_1-3, O-Allyl, Fluor, Chlor, Azido oder eine geschützte Hydroxy- oder Aminogruppe bedeutet;
A für Oxy, Thioxy oder Methylen steht;
V Oxy, Sulfandiyl oder Imino bedeutet;
Y Oxy, Sulfandiyl, Imino oder Methylen bedeutet;
S für eine im sauren abspaltbare 5′-Schutzgruppe wie beispielsweise Dimethoxytrityl, Monomethoxytrityl, Trityl, Pixyl, bevorzugt Dimethoxytrityl und Monomethoxytrityl steht;
B^PR für eine natürliche oder unnatürliche Nucleobase mit exocyclischer Aminogruppe steht, wobei die exocyclischen Aminogruppen durch eine cyclische Diacylgruppe geschützt ist;
Z′ für OR¹³ oder C₁-C₁₈-Alkyl, C₁-C₁₈-Alkoxy, C₆-C₂₀-Aryl, C₆-C₁₄-Aryl-C₁- C₈-Alkyl, steht;
R¹¹ und R¹² gleich oder verschieden sind und C₁-C₈-Alkyl, vorzugsweise Isopropyl, oder C₅-C₁₂-Cycloalkyl, vorzugsweise bis C8, Benzyl oder Phenyl oder zusammen mit dem Stickstoffatom, an das sie gebunden sind, einen gesättigten oder ungesättigten heterocyclischen Ring, mit gegebenenfalls weiteren Heteroatomen, wie z. B. Morpholin, und Substituenten, wie OC(O)O-C₁- C₄-Alkyl-Ester, bedeuten; und
R¹³ für para-Nitrophenylethyl oder 2-Cyanoethyl steht.

Bevorzugt sind Verbindung der Formel V, worin
B^PR

bedeutet,
worin
m für eine Zahl von Null bis vier, bevorzugt für Null steht; und
R⁸ unabhängig voneinander für Wasserstoff, Fluor, Chlor, Brom, Nitro, C₁-C₄-Alkyl, C₁-C₄-Alkoxy, CN steht;
Besonders bevorzugt sind Verbindungen der Formel V, worin
R¹ Wasserstoff, eine geschützte Hydroxy-Gruppe, C₁-C₄-Alkoxy oder Fluor bedeutet,
A für Oxy steht;
V Oxy bedeutet;
Y Oxy bedeutet;
Z′ OR¹³, C₁-C₆-Alkyl, C₁-C₆-Alkoxy, C₆-C₂₀-Aryl, C₆-C₁₄-Aryl-C₁-C₈-Alkyl, bevorzugt OR¹³ bedeuten.

Beispiele Beispiel 1 5′-O-Dimethoxytrityl-N⁶-phtaloyl-2′-O-desoxy-adenosin-3′-O-(N,N-diis-opropyl-[2-(4-nitrophenyl)ethyl])-phosphitamid 1.1 N⁶-Phtaloyl-2′-O-desoxy-adenosin

5 g 2′-O-Desoxyadenosin (20 mmol) werden zunächst mit absolutem Pyridin koevaporiert, dann in 80 ml Pyridin gelöst und mit 6 ml Chlortrimethylsilan (50 mmol) versetzt und 30 min bei Raumtemperatur (RT) gerührt. Dann werden 4 ml Phthaloylchlorid (28 mmol) zugegeben. Nach 2 hr wird mit Eiswasser hydrolysiert und 10 min nachgerührt. Man verdünnt mit 150 ml AcOEt und extrahiert viermal mit 100 ml gesättigter Natriumchlorid-Lösung und die wäßrige Phase viermal mit 50 ml AcOEt zurück. Zur Reinigung nimmt man in 50 ml Dichlormethan auf und fällt aus 1000 ml Petrolether aus. Man erhält 7.37 g (18.5 mmol; 93%) eines ocker gefärbten Feststoffs.

1.2 5′-O-Dimethoxytrityl-N⁶-phthaloyl-2′-O-desoxy-adenosin (Literatur: Akiko Kume, Mitsuo Sekine, Tsujiaki Hata, Tetrahedron Letters 23 (42), 4365-4368 (1982))

4 g N⁶-Phtaloyl-2′-O-desoxy-adenosin (10 mmol) wird mit absolutem Pyridin koevaporiert, dann in 50 ml absolutem Pyridin gelöst und 50 ml Dichlormethan mit 20 mg N,N-Dimethylaminopyridin (0.16 mmol) und Molsieb 4 Å werden 2.5 hr mit 2.72 g 4,4-Dimethoxytritylchlorid (8 mmol) gerührt. Nach Abziehen des Lösungsmittels wird in 100 ml Dichlormethan gelöst und mit 100 ml Natriumhydrogencarbonatlösung extrahiert. Die vereinigten organischen Phasen werden über Magnesiumsulfat getrocknet. Man filtriert ab, rotiert ein und koevaporiert mit Toluol. Es wird über Kieselgel (100 g) mit einem Toluol-AcOEt- Gradienten (44-80% AcOEt) chromatographiert. Es ergeben sich 3.12 g (4.56 mmol; 46%) weißer Schaum.

1.3 5′-O-Dimethoxytrityl-N⁶-phthaloyl-2′-O-desoxy-adenosin-3′-O-(N,N-dii-sopropyl-[2-(4-nitrophenyl)ethyl])-phosphitamid

400 mg 5′-O-Dimethoxytrityl-N⁶-phthaloyl-2′-desoxyadenosin (0.58 mmol) werden in 5 ml Acetonitril gelöst, 313 mg Bis-(N,N-diisopropylamino)-2-(4- nitrophenyl)ethoxy-phosphan (0.79 mmol) und 20 mg Tetrazol (0.29 mmol) zugegeben. Nach 1 hr Rühren unter Schutzgas wird einrotiert, in 50 ml Dichlormethan gelöst und gegen 50 ml gesättigte Natriumhydrogencarbonat- Lösung extrahiert. Nach Trocknen über MgSO₄ wird einrotiert. Man chromatographiert über Kieselgel (6 g SiO₂) mit Toluol-AcOEt (1 : 1) und erhält 380 mg (0.39 mmol; 67%) weißen Schaum.
DC (Kieselgel): R_f = 0.79 (Toluol/AcOEt 1 : 9)); ¹H-NMR (DMSO, 250 MHz): 8.91 (s, 1H, H-C(2)), 8.80 (s, 1H, H-C(8)), 8.07 (m, 6H, 4H pth, 2 H o zu NO₂), 7.46 (d, 2H, 2H m zo NO₂), 7.16 (m, 9H, DMTr), 6.80 (m, 4H, o zu OCH₃), 6.51 (t, 1H, H-C(1′)), 4.75 (m, 1H, H-C(3′)), 4.13 (m, 1H, H-C(4′)), 53.75 (m, 8H, CH₂O, 2x O-CH³), 3.50 (m, 2H, H-C(5′), H-C(5′′)), 3.20 (m, 6H, CH₂-Phenyl, 2x N-CH, H-C(2′), H-C(2′′)), 1.01 (m, 12 H, 2x C(CH₃)₂); ³¹P-NMR (DMSO, 161.7 MHz): 1s 147.50; C₅₃H₅₄N₇O₁₀P₁ (980.04); ber.: C 64.95, H 5.55, N 10.00; gef.: C 64.15, H 5.53, N 9.72.

Beispiel 2 5′-O-Dimethoxytrityl-N⁶-phthaloyl-2′-O-desoxy-adenosin-3′-O-(β-cyanoethyl-N,N′diisopropyl)-phosphitamid

500 mg 5′-O-Dimethoxytrityl-N⁶-phthaloyl-2′-desoxyadenosin (Beispiel 1.2) (0.73 mmol) werden in 5 ml Acetonitril gelöst, 280 mg Bis-(N,N- diisopropylamino)-2-cyanoethoxy-phosphan (0.92 mmol) und 26 mg Tetrazol (0.37 mmol) zugegeben. Nach 1.5 hr Rühren unter Schutzgas wird mit 70 in Dichlormethan und 60 ml Natriumhydrogencarbonat-Lösung extrahiert. Nach Trocknen über MgSO₄ wird einrotiert. Man chromatographiert über Kieselgel (9 g SiO₂) in einem Toluol-AcOEt-Gradienten (40-50% AcOEt) und erhält 430 mg (0.49 mmol; 67%) weißen Schaum.
DC (Kieselgel): R_f = 0.33/0.42 (Toluol/AcOEt 1 : 1)); ¹H-NMR (DMSO, 250 MHz):
8.92 (s, 1H, H-C(2)), 8.82 (s, 1H, H-C(8)), 8.09 (m, 4H, pth), 7.33 (m, 2H, DMTr), 7.21 (m, 7H, DMTr), 6.82 (m, 4H, o zu OCH₃), 6.55 (m, 1H, H-C(1′)), 4.82 (m, 1H, H-C(3′)), 4.27 (m, 1H, H-C(4′)), 3.65 (m, 1OH, CH₂0, 2x O-CH₃, H-C(5′), H-C(5′¹)), 3.20 (m, 4H, 2x N-CH, H-C(2′), H-C(2′′)), 1.10 (m, 12 H, 2x C(CH₃)₂); ³¹P-NMR (DMSO, 161.7 MHz): 2s 148.51/147.99 C₄₈H₅₀N₇O₈P₁ (883.95); ber.: C 65.22, H 5.70, N 11.09; gef.: C 64.94, H 5.78, N 10.87.

Beispiel 3 5′-O-Dimethoxytrity-N⁶-phthaloyl-2′-O-desoxy-cytidin-3′-O-(β-cyanoethyl-N,N-diisopropyl)-phosphitamid 3.1 N⁶-Phthaloyl-2′-O-desoxy-cytidin

Die Synthese erfolgt analog Beispiel 1.1 : 5.8 g 2′-O-Desoxy-cytidin (22 mmol) werden in 80 ml Pyridin mit 7 ml Chlortrimethylsilan (55 mmol) gerührt und nach 1 hr innerhalb 60 min 4.4 ml Phthaloylchlorid (33 mml) in 10 ml trockenem Dioxan zugetropft. Es werden 50 mg DMAP zugegeben, nach 45 min mit Wasser abgestoppt und 15 min nachgerührt. Extrahiert wird mit 10% Pyridin in Dichlormethan gegen 100 ml Wasser. Die organische Phase wird mit 100 ml Wasser gewaschen und die wäßrige Phase zweimal mit je 50 ml 10% Pyridin in Dichlormethan rückextrahiert. Nach Trocknen, Abrotieren und Koevaporation mit Toluol wird in Dichlormethan aufgeschlämmt und abgesaugt.
Es ergeben sich 5.07 g (14.2 mmol; 64%) eines ocker gefärbten Pulvers.
DC (Kieselgel): R_f = 0.10 (Toluol/AcOEt/MeOH 5 : 4 : 1)); ¹H-NMR (DMSO, 250 MHz): 8.63 (d, 1H, H-C(6)), 8.01 (m, 4H, pth), 6.69 (d, 1H, H-C(5)), 6.10 (t, 1H, H-C(1′)), 5.30 (d, 1H, HO-C(3′)), 5.11 (t, 1H, HO-C(5′)), 4.23 (m, 1H, H- C(3′)), 3.91 (m, 1H, H-C(4′)), 3.63 (m, 2H, H-C(5′), H-C(5′′)), 2.38 (m, 1H, H- C(2′)), 2.14 (m, 1H, H-C(2′′)); UV (ACN): λmax (nm)/log ε: [331/3.68] 316/3.80, [306/3.79] , 218/4.51; C₁₇H₁₅N₃O₆ (357.32); ber.: C 57.14, H 4.23, N 11.76; gef.: C 57.21, H 4.45, N 11.66.

3.2 5′-O-Dimethoxytrityl-N⁶-phthaloyl-2′-O-desoxy-cytidin

Die Synthese erfolgt analog Beispiel 1.2 : 3 g N⁶-phthaloyl-2′-O-desoxy-cytidin (8.39 mmol) in 60 ml Pyridin mit 50 mg N,N-Dimethylaminopyridin (0.41 mmol) und Molsieb 4 Å werden 2 hr mit 3.13 g 4,4-Dimethoxytritylchlorid (9.23 mmol) gerührt. Nach Extraktion mit 100 ml Dichlormethan und 100 ml Natriumhydrogencarbonatlösung wird über Kieselgel (75 g) mit einem Toluol- AcOEt-Gradienten (33-75% AcOEt) chromatographiert. Es ergeben sich 3.35 (5.10 mmol; 61%) weißer Schaum.
DC (Kieselgel): R_f = 0.39 (Toluol/AcOEt/MeOH 5 : 4 : 1)); ¹H-NMR (DMSO, 250 MHz): 8.42 (d, 1H, H-C(6)), 7.99 (m, 4H, pth), 7.30 (m, 9H, DMTr), 6.92 (m, 4H, o zu OCH₃), 6.53 (d, 1H, H-C(5)), 6.11 (t, 1H, H-C(1′)), 5.40 (d, 1H, HO- C(3′)), 4.31 (m, 1H, H-C(3′)), 4.01 (m, 1H, H-C(4′)), 3.73 (s, 6H, 2x O-CH₃), 3.33 (m, 2H, H-C(5′), H-C(5′′)), 2.40 (m, 1H, H-C(2′)), 2.20 (m, 1H, H-C(2′′)); UV (ACN): λmax (nm)/log ε: [331/3.68] , 317/3.84, [306/3.83] , 283/3.72 [275/3.69] , 232/4.65; C₃₈H₃₃N₃O₈ (659.70); ber.: C 69.19, H 5.04, N 6.37; gef.: C 69.29, H 5.35, N 6.17.

3.3 5′-O-Dimethoxytrityl-N⁶-phthaloyl-2′-O-desoxy-cytidin-3′-O-(β-cyanoethyl-N,N′-diisopropyl)-phosphitamid

Die Synthese erfolgt analog Beispiel 2 : 660 mg 5′-O-Dimethoxytrityl-N⁶- phthaloyl-2′-desoxycytidin (1 mmol) werden in 7 ml Acetonitril gelöst, 362 mg Bis-(N,N-diisopropylamino)-2-cyanoethoxy-phosphan (1.2 mmol) und 35 mg Tetrazol (0.5 mmol) zugegeben. Nach 1.5 hr wird mit 100 ml Dichlormethan und 60 ml Natriumhydrogencarbonat-Lösung extrahiert. Man chromatographiert über Kieselgel (8 g SiO₂) in einem Toluol-AcOEt-Gradienten (40-50% AcOEt) und erhält 620 mg (0.72 mmol; 72%) weißen Schaum.
DC (Kieselgel): R_f = 0.47/0.51 (Toluol/AcOEt 1 : 6)); ¹H-NMR (DMSO, 250 MHz):
8.45 (m, 1H, H-C(6)), 7.99 (m, 4H, pth), 7.30 (m, 9H, DMTr), 6.91 (m, 4H, o zu OCH₃), 6.55 (d, 1H, H-C(S)), 6.15 (m, 1H, H-C(1′)), 4.52 (m, 1H, H-C(3′)), 4.17 (m, 1H, H-C(4′)), 3.72 (s, 6H, 2x O-CH₃), 3.60 (m, 6H, H-C(5′), H-C(5′′), CH₂O, 2x N-CH)), 2.70 (2t, 2H, CH₂CN), 2.60 (m, 1H, H-C(2′)), 2.40 (m, 1H, H-C(2′′)), 0.97-1.19 (m, 12 H, 2x C(CH₃)₂)
³¹P-NMR (DMSO, 161.7 MHz) : 2s 148.63/148.38 C₄₇H₅₀N₅O₈P₁ (859.91);
ber.: C 65.65, H 5.86, N 8.14 gef.: C 64.16, H 6.04, N 8.23.

Beispiel 4 5′-O-Dimethoxytrityl-O⁶-[2-(4-nitrophenyl)ethyl]-N²-phthaloyl-²,-des-oxyguanosin-3′-O-(cyanoethyl-N,N-diisopropyl)-phosphitamid 4.1 O⁶-[2-(4-Nitrophenyl)ethyl]-N²-phthaloyl-2′-desoxyguanosin

Die Synthese erfolgt analog Beispiel 1.1.

Variante A Abspaltung der Trimethylsilyl-Gruppen mit Pyridin-Wasser

833 mg O⁶-[2-(4-Nitrophenyl)ethyl]-2′-desoxyguanosin (2 mmol) werden mit 0.63 ml Chlortrimethylsilan (5 mmol) in 15 ml Pyridin gerührt und nach 30 min werden 0.43 ml Phthaloylchlorid (3 mmol) in 5 ml trockenem Dioxan innerhalb 15 min zugetropft. Nach 2 hr wird mit Wasser abgestoppt und 15 min nachgerührt. Extrahiert wird zweimal mit 50 ml Natriumhydrogencarbonat- Lösung gegen 50 ml Dichlormethan sowie die wäßrigen Phasen nochmals mit 50 ml Dichlormethan. Man trocknet über MgSO₄, filtriert und engt ein. Die Aufreinigung erfolgt über eine Kieselgelsäule (25 g SiO₂) mittels Flash-Chromatographie in einem Toluol/AcOEt (5 : 4)-MeOH-Gradienten (0-5% MeOH).
Man erhält 0.56 g (1.02 mmol; 51%) eines leicht gelblich gefärbten Schaums.

Variante B Abspaltung der Trimethylsilyl-Gruppen mit Ammoniumfluorid

833 mg O⁶-[2-(4-Nitrophenyl)ethyl]-2′-desoxyguanosin (2 mmol) werden mit 0.63 ml Chlortrimethylsilan (5 mmol) in 15 ml Pyridin gerührt und nach 30 min werden 0.57 ml Phthaloylchlorid (4 mmol) in 2 ml trockenem Dioxan innerhalb 5 min zugetropft. Nach 2 hr wird einrotiert, mit Toluol koevaporiert und mit 160 mg Ammoniumfluorid (4.3 mmol) in 20 ml MeOH versetzt. Man rührt 3 min, extrahiert zweimal mit 100 ml Natriumhydrogencarbonat-Lösung gegen 100 ml Dichlormethan und die wäßrigen Phasen nochmals mit 50 ml Dichlormethan.

Die Aufreinigung erfolgt über eine Kieselgelsäule (25 g SiO₂) mittels Flash-Chromatographie in einem Toluol/AcOEt (5 : 4)-MeOH-Gradienten (0-5% MeOH). Man erhält 0.45 g (0.82 mmol; 41%) eines leicht gelblich gefärbten Schaums.

Variante C Abspaltung der Trimethylsilyl-Gruppen mit Tetrabutylammoniumfluorid

833 mg O⁶-2-(4-Nitrophenyl)ethyl]-2′-desoxyguanosin (2 mmol) werden mit 0.7 ml Chlortrimethylsilan (5.5 mmol) in 15 ml Pyridin gerührt und nach 30 min werden 0.55 ml Phthaloylchlorid (3.8 mmol) in 3 ml trockenem Dioxan innerhalb 10 min zugetropft. Nach 2 hr werden 1.26 g Tetrabutylammoniumfluorid-Trihydrat (4 mmol) zugesetzt und 5 min gerührt. Anschließend extrahiert man zweimal mit 100 ml Natriumhydrogencarbonat-Lösung gegen 100 ml Dichlormethan und die wäßrigen Phasen nochmals mit 50 ml Dichlormethan. Die Aufreinigung erfolgt über eine Kieselgelsäule (25 g SiO₂) mittels Flash-Chromatographie in einem Toluol/AcOEt (5 : 4)-MeOH-Gradienten (0-5% MeOH). Man erhält 0.39 g (0.71 mmol; 36%) eines leicht gelblich gefärbten Schaums.
DC (Kieselgel): R_f = 0.42 (Chloroform/Methanol 9 : 1); ¹H-NMR (DMSO, 250 MHz): 8.71 (s, 1H, H-C(8)), 8.14 (d, 2H, 2H o zu NO₂), 8.00 (m, 4H, pth), 7.61 (d, 2H, 2H m zu NO₂), 6.39 (t, 1H, H-C(1′)), 5.32 (d, 1H, HO-C(3¹)), 4.91 (t, 1H, HO-C(5′)), 4.83 (t, 2H, CH₂0), 4.40 (m, 1H, H-C(3′)), 3.85 (m, 1H, H- C(4′)), 3.51-3.58 (m, 2H, H-C(5′), H-C(5′′)), 3.32 (t, 2H, CH₂-Phenyl), 2.74 (m, 1H, H-C(2′)), 2.32 (m, 1H, H-C(2′′)); UV (ACN): λmax (nm)/log ε: 262/4.34, 219/4.68; C₂₆H₂₂N₆O₈ (546.50); ber.: C 57.14, H 4.06, N 15.38; gef.: C 557.27, H 4.37, N 15.11.

4.2 5′-O-Dimethoxytrityl-O⁶-[2-(4-nitrophenyl)ethyl]-N²-phthaloyl-2′-des-oxyguanosin

Synthese analog Beispiel 1.2 : 990 mg O⁶-[2-(4-Nitrophenyl)ethyl]-N²-phthaloyl- 2′-desoxyguanosin (1.81 mmol) werden in 25 ml Pyridin gelöst, 674 mg 4,4-Dimethoxytritylchlorid (1.99 mmol) zugegeben und für 3 hr gerührt. Man extrahiert mit 100 ml AcOEt gegen 100 ml gesättigte Natriumhydrogencarbonatlösung. Anschließend chromatographiert man über Kieselgel (25 g SiO₂) in einem Toluol-AcOEt-Gradienten (20-66% AcOEt) und erhält 1.00 g (1.18 mmol; 67%) weißen Schaum.
DC (Kieselgel): R_f = 0.57 (Toluol/AcOEt 1 : 6); ¹H-NMR (DMSO, 250 MHz): 8.59 (s, 1H, H-C(8)), 8.13 (d, 2H, 2H o zu NO₂), 8.00 (m, 4H, pth), 7.60 (d, 2H, 2H m zu NO₂), 7.10-7.26 (m, 9H, DMTr), 6.68 (m, 4H, o zu OCH₃), 6.43 (m, 1H, H-C(1′)), 5.36 (d, 1H, HO-C(3′)), 4.81 (t, 2H, CH₂O), 4.46 (m, 1H, H- C(3′)), 3.95 (m, 1H, H-C(4′)), 3.67 (s, 6H, 2x O-CH₃), 3.32 (t, 2H, CH₂- Phenyl), 3.05-3.25 (m, 2H, H-C(5′), H-C(5′′)), 2.85 (m, 1H, H-C(2¹)), 2.38 (m, 1H, H-C(2′′)); UV (ACN): λmax (nm)/log ε: 262/4.38 , 218/4.78 C₄₇H₄₀N₆O₁₀ (848.87); ber.: C 66.50, H 4.75, N 9.90; gef.: C 66.65, H 4.90, N 9.52.

4.3 5′-O-Dimethoxytrityl-O⁶-[2-(4-nitrophenyl)ethyl]-N²-phthaloyl-2′-des-oxyguanosin-3′-O-(β-cyanoethyl-N,N-diisopropyl)-phosphitamid

Synthese analog Beispiel 1.3, jedoch unter Verwendung von Pyridin- Hydrochlorid anstelle von Tetrazol; Ausbeute: 87%.
DC (Kieselgel): R_f = 0.74/0.82 (Toluol/AcOEt 1 : 6)); ¹H-NMR (DMSO, 250 MHz): 8.63 (s, 1H, H-C(8)), 8.13 (s, 2H, 2H o zu NO₂), 8.00 (m, 4H, pth), 7.61 (s, 2H, 2H m zu NO₂), 7.08-7.24 (m, 9H, DMTr), 6.63-6.71 (m, 4H, DMTr), 6.45 (m, 1H, H-C(1′)), 4.80 (m, 3H, H-C(3′), CH₂O), 4.10 (m, 1H, H-C(4′)), 3.66 u. 3.67 (2s, 6H, 2x OCH₃), 2.95-3.59 (m, 10 H, NC-CH₂O, H-C(5′), H-C(5′′), 2x N-CH, CH₂CN, CH₂-Phenyl) 2.72 (m, 1H, H-C(2′)), 2.61 (m, 1H, H-C(2′′)), 0.90-1.20 (m, 12 H, 2x C(CH₃)₂); ³¹P-NMR (DMSO, 161.7 MHz) : 2s 148.55/148.05 C₅₆N₅₇N₈O₁₁P₁ (1049.09); ber.: C 64.11, H 5.48, N 10.68; gef.: C 63.92, N 5.47, H 10.12.

Beispiel 5 5′-O-Dimethoxytriyl-O⁶-[2-(phenylsulfonyl)ethyl]-N²-phthaloyl-2′deso-xyguanosin-3′-O-(cyanoethyl-N,N-diisopropyl)-phosphitamid 5.1 O⁶-[2-(Phenylsulfonyl)ethyl]-N²-phthaloyl-2′-desoxyguanosin

Die Synthese erfolgt analog Beispiel 1.1.

Variante A Abspaltung der Trimethylsilyl-Gruppen mit Pyridin-Wasser

300 mg O⁶-[2-(Phenylsulfonyl)ethyl]-2′-desoxyguanosin (0.69 mmol) werden mit 0.22 ml Chlortrimethylsilan (1.7 mmol) in 10 ml Pyridin gerührt und nach 30 min 0.14 ml Phthaloylchlorid (0.97 mmol) in 2 ml trockenem Dioxan innerhalb 7 min zugetropft. Nach 1 hr wird mit Wasser abgestoppt und 15 min nachgerührt. Extrahiert wird zweimal mit 25 ml Wasser gegen 25 ml Dichlormethan sowie die wäßrigen Phasen nochmals mit 25 ml Dichlormethan. Die Aufreinigung erfolgt über eine Kieselgelsäule (7 g SiO₂) mittels Flash-Chromatographie in einem Petrolether-Aceton-Gradienten (50-66% Aceton). Man erhält 0.14 g (0.24 mmol; 36%) eines nahezu farblosen Schaums.

Variante B Abspaltung der Trimethylsilyl-Gruppen mit Ammoniumfluorid

0.87 g O⁶-[2-(Phenylsulfonyl)ethyl]-2′-desoxyguanosin (2 mmol) werden mit 50.56 ml Chlortrimethylsilan (4.4 mmol) in 15 ml trockenem Acetonitril und 1.03 ml Pyridin gerührt und nach 30 min 0.29 ml Phthaloylchlorid (2 mmol) zugetropft. Nach 35 min einrotiert, mit Toluol koevaporiert und mit 160 mg Ammoniumfluorid (4.3 mmol) in 25 ml MeOH versetzt. Man rührt 3 min, extrahiert zweimal mit 100 ml Natriumhydrogencarbonat-Lösung gegen 100 ml Dichlormethan und die wäßrigen Phasen nochmals mit 50 ml Dichlormethan. Die Aufreinigung erfolgt über eine Kieselgelsäule (25 g SiO₂) mittels Flash- Chromatographie in einem Petrolether-Aceton-Gradienten (30-75% Aceton). Man erhält 0.45 g (0.79 mmol; 40%) eines leicht gelblich gefärbten Schaums.
DC (Kieselgel): R_f = 0.27 (Petrolether/Aceton 1 : 2); ¹H-NMR (DMSO, 250 MHz): 8.65 (s, 1H, H-C(8)), 7.96-8.7 (m, 4H, pth), 7.82 (m, 2H, o zu SO₂), 7.36-7.49 (m, 3H, 2H m zu SO₂, 1H p zu SO₂), 6.37 (t, 1H, H-C(1′)), 5.32 (d, 1H, HO-C(3′)), 4.92 (t, 1H, HO-C(5′)), 4.80 (t, 2H, CH₂O), 4.41 (m, 1H, H- C(3′)), 4.12 (t, 2H, CH₂SO₂), 3.86 (m, 1H, H-C(4′)), 3.45-3.65 (m, 2H, H- C(5′), H-C(5′′)), 2.72 (m, 1H, H-C(2′)), 2.33 (m, 1H, H-C(2′′)); UV (ACN): λmax (nm)/log ε: [294/3.50] , 259/4.26, 219/4.73; C₂₆H₂₃N₅O₈S₁ × H₂O (583,58) ber.: C 53,51; H 4,32; N 12,00; gef.: C 53,95; H 4,45; N 11,72.

5.2 5′-O-Dimethoxytrityl-O⁶-[2-(phenylsulfonyl)ethyl]-N²-phthaloyl-2′-de-soxyguanosin

Synthese analog Beispiel 1.2 : 560 mg O⁶-[2-(Phenylsulfonyl)ethyl]-N⁶- phthaloyl-2′-desoxyguanosin (1 mmol) in 20 ml Pyridin werden mit 373 mg 4,4-Dimethoxytritiylchlorid (1.1 mmol) 16 hr gerührt. Man extrahiert mit 100 ml Dichlormethan gegen 100 ml gesättigte Natriumhydrogencarbonatlösung. Anschließend chromatographiert man über Kieselgel (20 g SiO₂) in einem Toluol-AcOEt-Gradienten (30-80% AcOEt) und erhält 570 mg (0.66 mmol; 66%) leicht gelblichen Schaum.
DC (Kieselgel): R_f = 0.39 (Toluol/AcOEt/MeOH 5 : 4 : 1); ¹H-NMR (DMSO, 250 MHz): 8.55 (s, 1H, H-C(8)), 8.01-8.07 (m, 4H, pth), 7.82 (m, 2H, 2H o zu SO₂), 7.32-7.38 (m, 3H, 2H m zu SO₂, 1H p zu SO₂), 7.05-7.27 (m, 9H, DMTr), 6.67-6.73 (m, 4H, o zu OCH₃), 6.41 (m, 1H, H-C(1′)), 5.37 (d, 1H, HO- C(3′)), 4.79 (t, 2H, CH₂O), 4.46 (m, 1H, H-C(3′)), 4.10 (t, 2H, CH₂SO₂), 3.96 (m, 1H, H-C(4′)), 3.68 (s, 6H, 2x OCH₃), 3.09-3.25 (m, 2H, H-C(5′), H-C(5′′)), 2.81 (m, 1H, H-C(2′)), 2.35 (m, 1H, H-C(2′¹)); UV (ACN): λmax (nm)/log ε: 261/4.26 , 217/4.80; C₄₇H₄₁N₅O₁OS₁ (867.93); ber.: C 65.04, H 4.76, N 8.07; gef.: C 64.97, H 4.82, N 7.88.

5.3 5′-O-Dimethoxytrityl-O⁶-[2-(phenylsulfonyl)ethyl]-N²-phthaloyl-2′-de-soxyguanosin-3′-O-(cyanoethyl-N,N-diisopropyl)-phosphitamid

Synthese analog Beispiel 2: 470 mg 5′-O-Dimethoxytrityl-O⁶-[2- phenylsulfonyl)ethyl]-N²-phthaloyl-2′-desoxyguanosin (0.54 mmol) werden in 8 ml Acetonitril gelöst, 196 mg Bis-(N,N-diisopropylamino)-2-cyanoethoxy phosphan (0.65 mmol) und 0.54 ml einer 0.5 M Pyridiniumchlorid-Lösung zugegeben. Nach 3 hr werden weitere 150 mg Phosphan und 0.27 ml Pyridiniumchlorid-Lösung zugesetzt und für weitere 3.5 hr gerührt. Es wird mit 50 ml Dichormethan und 50 ml Natriumhydrogencarbonat-Lösung extrahiert. Man chromatographiert in einem Toluol-Esiigsäureethylester-Gradienten (33-50% AcOEt) und erhält 420 mg (0.39 mmol; 73%) weißen Schaum.
DC (Kieselgel): R_f = 0.49/0.60 (Petrolether/AcOEt/Triethylamin 1 : 9 : 1)); ¹H- NMR (DMSO, 250 MHz): 8.57 (2s, 1H, H-C(8)), 7.98-8.03 (m, 4H, pth), 7.81 (m, 2H, 2H o zu SO₂), 7.31-7.40 (m, 3H, 2H m zu SO₂, 1H o zu SO₂), 7.08-7.25 (m, 9H, DMTr), 6.39-6.73 (m, 4H, DMTr), 6.43 (m, 1H, H-C(1′)), 4.78 (m, 3H, H-C(3′), CH₂O), 4.10 (m, 3H, CH₂SO₂, H-C(4′)), 3.66 u. 3.67 (2s, 6H, 2x OCH₃), 3.30-3.60 (m, 4 H, NC-CH₂O, 2x N-CH), 3.23 (m, 2H, H-C(5′), H- C(5′′)), 3.00 (m, 1H, H-C(2′)), 2.62 u. 2.73 (2t, 2H, CH₂CN), 2.50 (m, 1H, H- C(2′′)), 0.86-1.19 (m, 12 H, 2x C(CH₃)₂); ³¹P-NMR (DMSO, 161.7 MHz): 2s 148.54/148.06; C₅₆H₅₈N₇O₁₁P₁S₁ (1068.15); ber.: C 62.97, H 5.47, N 9.18; gef.: C 62.25, N 5.65, H 8.82.

Beispiel 6 5′-O-Dimethoxytrityl-N⁶-phtaloyl-3′-O-succinoyl-2′-O-desoxy-adenosin-

342 mg 5′-O-Dimethoxytrityl-N⁶-phthaloyl-2′-O-desoxy-adenosin (Beispiel 1.2) (0.5 mmol) werden in 10 ml absolutem Dichlormethan gelöst und 79 mg 4,4-Dimethylaminopyridin (0.65 mmol) und 100 mg Bernsteinsäureanhydrid (1 mmol) zugesetzt. Nach 17 hr mit 50 ml Dichlormethan verdünnt und mit 30 ml gesättigter Natriumhydrogencarbonat-Lösung und dann mit 10% Zitronensäure extrahiert. Nach Trocknen über MgSO₄, Abrotieren und Trocknen am Hochvakuum erhält man 390 mg (0.49 mmol; 98%) weißen Schaum.
DC (Kieselgel): R_f = 0.17 (Toluol/AcOEt/MeOH 5 : 4 : 1)); ¹H-NMR (DMSO, 250 MHz):
12.30 (s, 1H, COOH), 8.91 (s, 1H, H-C(2)), 8.82 (s, 1H, H-C(8)), 8.06 (m, 4H, pth), 7.17 (m, 9H, DMTr), 6.83 (m, 4H, o zu OCH₃), 6.56 (t, 1H, H-C(1¹)), 5.45 (m, 1H, H-C(3′)), 4.25 (m, 1H, H-C(4′)), 3.70 (s, 6H, 2x O-CH₃), 3.33 (m, 2H, H-C(5′), H-C(5′′)), 2.58 (m, 6H, H-C(2′), H-C(2′′), CH₂CH₂); UV (ACN): λmax (nm)/log ε: [300/3.60] , 271/4.17 , [220/4.72]; C₄₃H₃₇N₅O₁₀ x H₂O (801.82); ber.: C 64.41, H 4.90, N 8.73; gef.: C 64.47, H 4.98, N 8.74.

Beispiel 7 5′-O-Dimethoxytrityl-O⁶-[2-(4-nitrophenyl)ethyl]-N²-phthaloyl-3′-O-S-uccinoyl-2′-O-desoxyguanosin

212 mg 5′-O-Dimethoxytrityl-O⁶-[2-(4-nitrophenyl)ethyl]-N²-phthaloyl-2′- desoxyguanosin (0.25 mmol) werden in 5 ml absolutem Dichlormethan gelöst und 50 mg Bernsteinsäureanhydrid (0.5 mmol) und 40 mg 4,4-Dimethylaminopyridin (0.32 mmol) zugegeben. Nach 24 hr Rühren wird mit 60 ml Dichlormethan verdünnt und mit 40 ml gesättigter Natriumhydrogencarbonat-Lösung und dann mit 40 ml 10% Zitronen säurelösung extrahiert. Nach Trocknen über Magnesiumsulfat wird einrotiert und am HV getrocknet. Man erhält 210 mg (0.22 mmol; 88%) leicht gelblich gefärbten Schaum.
¹H-NMR (DMSO, 250 MHz): 12.27 (s, 1H, COOH), 8.61 (s, 1H, H-C(8)), 8.14 (d, 2H, 2H o zu NO₂), 7.96-8.05 (m, 4H, pth), 7.61 (d, 2H, 2H m zu NO₂), 7.05-7.27 (m, 9H, DMTr), 6.65-6.71 (m, 4H, o zu OCH₃), 6.44 (t, 1H, H- C(1′)), 5.36 (m, 1H, H-C(3′)), 4.82 (t, 2H, OCH₂), 4.14 (m, 1H, H-C(4′)), 3.67 (s, 6H, 2x O-CH₃), 3.16-3.42 (m, 4H, H-C(5′), H-C(5′′), CH₂-Phenyl), 2.45- 2.60 (m, 6H, H-C(2′), H-C(2′′)₁ CH₂CH₂); UV (ACN): λmax (nm)/log ε: 262/4.37, 216/4.78.

Beispiel 8 8.1 Träger-Derivatisierung von Long Chain Methyl Amino Alkyl (LCMAA) -CPG

1 g CPG-Material 1000 Å oder 1400 Å werden 1.5 Stunden im HV getrocknet. 1 g Carbonyldiimidazol (12.4 mmol) wird in 20 ml trockenem Dichlormethan gelöst und das getrocknete CPG-Trägermaterial zugegeben und 6 Stunden am Rüttler gut durchmischt. Man dekantiert die überstehende Lösung ab und digeriert dreimal mit trockenem Dichlormethan. Anschließend wird in 15 ml trockenem Dichlormethan aufgenommen und mit 1 ml 1,6-Bis(methylamino)hexan (5.8 mmol) versetzt. Nach 3 Stunden am Rüttler wird der Überstand abdekantiert, abgesaugt und nacheinander mit Pyridin, DMF, Methanol, Aceton und Diethylether gewaschen. Anschließend wird am HV getrocknet.

8.2 Beladung von LCAMAA-CPG mit Phthaloyl-geschützten Succinaten

400 mg LCMAA-CPG werden mit 7 mg TOTU (O-[(ethoxycarbonyl)cyanomethylenamino]-N,N,N′,N′-tetramethyluronium- tetra fluoro-borate: W. König, G. Breipohl, P. Pokorny, M. Birkner, Proceedings of the 21st European Peptide Symposium 1990, E. Giralt, D. Andreu, Eds., ESCOM, Leiden, S. 143). (21 µmol), 3 µl N-Methylmorpholin (27 µmol) und 23 µmol Nucleosidsuccinat für 2 Stunden in 5 ml trockenem Acetonitril geschüttelt. Man saugt ab und wäscht nacheinander mit DMF, Methanol, Aceton und Diethylether.
Capping:
Der mit Nucleosid beladene Träger wird mit 10 mg DMAP, 0.5 ml Acetanhydrid und 10 ml Pyridin 0.5 Stunden geschüttelt. Anschließend wird abgesaugt und nacheinander mit DMF, Methanol, Aceton und Diethylether gewaschen. Im Falle von 5′-O-Dimethoxytrityl-O⁶-[2-(4-nitrophenyl)ethyl]-N₂-phthaloyl-3′-O- succinyl-2′-desoxyguanosin wird mit einem Gemisch aus 0.5 ml N-Methylimidazol, 0.5 ml Acetanhydrid und 5 ml Pyridin gecappt.
Man erhält folgende Beladungen:

8.3 Derivatisierung von LCMAA-CPG mit Bernsteinsäureanhydrid

500 mg LCMAA-CPG 1400 Å werden in 4 ml trockenem Pyridin mit 12 mg DMAP (0.1 mmol) und 400 mg Bernsteinsäureanhydrid 24 Stunden geschüttelt. Man saugt ab und wäscht mit Pyridin und Dichlormethan.

Beladung des Succinyl-LCMAA-CPG mit Phthaloyl-geschützten 5′-O-DMTr-Nucleosiden

Zu 150 mg succinyliertem LCMAA-CPG,1.8 mg DMAP (0.015 mmol), 29 mg 1-(3-Dimethylaminopropyl)ethylcabodiimid (0.15 mmol) und 0.015 mmol 5′-O-DMTr-geschützter Phthaloyl-Verbindung werden 3 ml trockenes Pyridin und 12 µl Triethylamin gegeben. Man schüttelt 24 Stunden und gibt anschließend 20 mg Pentachlorphenol (0.07 mmol) zu und schüttelt für weitere 23 Stunden. Dann werden 0.75 ml Piperidin zugegeben, sofort nach 5 Minuten abgesaugt und nacheinander mit Dichlormethan und Diethylether gewaschen. Capping: Der mit Nucleosid beladene Träger wird mit einem Gemisch aus 0.5 ml N-Methylimidazol, 0.5 ml Acetanhydrid und 5 ml Pyridin 1.5 Stunden geschüttelt und anschließend mit DMF, Methanol, Aceton und Diethylether gewaschen.
Man erhält folgende Beladungen:

Beispiel 9 Oligonucleotid-Synthese

Unmodifizierte Oligonucleotide wurden auf einem automatischen DNA Synthesizer (Applied Biosystems Model 392) unter Anwendung des Standard Phosphoramidit Synthese-Zyklus synthetisiert. Die Phthaloyl-Strategie erlaubt sowohl die Verwendung des wasserhaltigen Oxidationsgemisches Jod/Pyrid in/TH F/Wasser als auch wasserfreie Oxidation mit tert-Butyl- Hydroperoxid in Acetonitril. Die Oxidationszeiten betragen für Jod 15 Sekunden bzw. 90 Sekunden für tert-Butyl-Hydroperoxid. Nach Ende der Synthese-Zyklen erfolgt die Schutzgruppenabspaltung noch während sich das Oligonucloetid am Träger befindet mit DBU in N-Methyimidazol bzw. Acetonitril (s. u.) (DBU: 1,8-Diazobicylclo-[6.4.0]-undec7-en) während 15 Minuten bis 12h. Das nun von allen Schutzgruppen freie Oligonucleotid wird nun durch Behandlung mit konzentriertem wäßrigen Ammoniak (25%) vom Träger abgelöst. Das Oligonucleotid liegt nun hoch rein in ammoniakalischer Lösung vor und wird durch Lyophilisieren der ammoniakalischen Lösung erhalten. Eine zusätzliche Reinigung durch HPLC bzw. PAGE zur Entfernung der Schutzgruppen ist bei der Pthaloyl-Strategie im Gegensatz zur Acyl-Strategie nicht notwendig.

Die folgenden Sequenzen wurden unter Einsatz der in Beispiel 1-5 beschriebenen Phosphorainidite, und der in Beispiel 8 beschriebenen derivatisierten festen Trägern synthetisiert. Bei den einzelnen Sequenzen wurden die beschriebenen Bedingungen zur Abspaltung der Schutzgruppen erfolgreich variiert.

Die folgenden Sequenzen wurden unter Einsatz der in Beispiel 1-5 beschriebenen Phosphoramidite und den in Beispiel 8 beschriebenen festen Trägern synthetisiert. Dabei wurde anstelle von Tetrazol als Aktivator eine Lösung von 0.5M Pyridin-Hydrochlorid in Acetonitril eingesetzt mit Kondensationszeiten von 12 bis 30 Sekunden. Bei den einzelnen Sequenzen wurden die beschriebenen Bedingungen zur Abspaltung der Schutzgruppen erfolgreich variiert.

Die hohe Reinheit der Oligonucleotide (< 95%) wurde durch HPLC bestätigt.
HPLC: Gradient:
(reversed phase; RP 18); Fluß 1 ml/min
Lösung A: 0.1 N TEAAc pH 7
Lösung B: 0.1 N TEAAc : AcCN 1 : 1.

Claims

1. Verfahren zur Herstellung von Oligonukleotiden mittels Festphasen synthese durch

a) sequentiellen Aufbau der Nucleotide an einem festen Träger nach bekannten Methoden, wobei vorhandene exocyclische Aminogruppen an den Nucleobasen durch eine cyclische Diacylgruppe geschützt sind und gegebenenfalls vorhandene Phosphatschutzgruppen durch starke, nicht nukleophile Basen abspaltbar sind,
b) Entschützung der am festen Träger gebundenen Oligonukleotide, und
c) Abspaltung der entschützten Oligonukleotide vom festen Träger, dadurch gekennzeichnet, daß die am festen Träger gebundenen Oligonukleotide in Gegenwart einer starken, nicht nukleophilen Base in einem geeigneten organischen Lösungsmittel entschützt werden.

2. Verfahren gemäß Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Entschützung der am festen Träger gebundenen Oligonukleotiden mit einer 0,1 bis 5 M Lösung von DBU bei 0 bis 70°C für 0,1 bis 16 h erfolgt.

3. Verfahren gemäß Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, daß die Entschützung der am festen Träger gebundenen Oligonukleotide mit einer 0,3 bis 3 M Lösung von DBU bei 10 bis 40°C für 0,1 bis 2 h erfolgt.

4. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet, daß die Entschützung der am festen Träger gebundenen Oligonukleotide mit einer 0,5 bis 2,5 M Lösung von DBU bei 20 bis 30°C für 0,2 bis 1,5 h erfolgt.

5. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 1 bis 4 zur Herstellung einer Verbindung der Formel I worin
R¹ unabhängig voneinander Wasserstoff, Hydroxy, C₁-C₁₈-Alkoxy, gegebenenfalls ein bis dreifach substituiert mit Hydroxy, oder C₁-C₄- Alkoxy, C₁-C₄-Alkyl-O-(CH₂CH₂O)_s worin s eine Zahl von 1 bis 3 bedeutet; O-Allyl, Halogen, Azido oder Amino bedeutet;
A unabhängig voneinander für Oxy, Thioxy oder Methylen steht;
W unabhängig voneinander Oxo, Thioxo oder Selenoxo bedeutet;
V unabhängig voneinander Oxy, Sulfandiyl oder Imino bedeutet;
Y unabhängig voneinander Oxy, Sulfandiyl, Imino oder Methylen bedeutet;
B für eine in der Nucleotidchemie übliche Base steht, wobei mindestens ein B für eine Base steht, die eine exocyclische Aminogruppe aufweist;
n eine ganze Zahl von 1 bis 100 bedeutet;
U unabhängig voneinander Hydroxy, Mercapto, BH₃, SeH, C₁-C₁₈-Alkoxy, vorzugsweise C₁-C₆-Alkoxy, C₁-C₁₈-Alkyl, vorzugsweise C₁-C₆-Alkyl, C₆-C₂₀-Aryl, (C₆-C₁₄)-Aryl-(C₁-C₈)-alkyl, NHR³, NR³R⁴ oder einen Rest der Formel II(OCH₂CH₂)_pO(CH₂)_qCH₂R² (II)bedeutet, worin
R³ C₁-C₁₈-Alkyl, vorzugsweise C₁-C₈-Alkyl, C₆-C₂₀-Aryl, (C₆-C₁₄)- Aryl-(C₁-C₈)-alkyl, -(CH₂)_c-[NH(CH₂)_c]_d-NR⁵R⁵, worin c eine ganze Zahl von 2 bis 6 und d eine ganze Zahl von 0 bis 6 ist;
R⁵ unabhängig voneinander Wasserstoff oder C₁-C₆-Alkyl oder C₁-C₄-Alkoxy-C₁-C₆-alkyl, bevorzugt Methoxyethyl, ist;
R⁴ C₁-C₁₈-Alkyl, vorzugsweise C₁-C₈-Alkyl und besonders bevorzugt C₁-C₄-Alkyl, C₆-C₂₀-Aryl oder (C₆-C₁ ₀)-Aryl-(C₁-C₈)-alkyl bedeutet, oder im Falle von NR³R⁴ zusammen mit R³ und dem sie tragenden Stickstoffatom einen 5-6-gliedrigen heterozyklischen Ring bedeutet, der zusätzlich ein weiteres Heteroatom aus der Reihe O, S, N enthalten kann;
p eine ganze Zahl von 1 bis 100, bevorzugt 3 bis 10 ist,
q eine ganze Zahl von 0 bis 22, bevorzugt 0 bis 15 ist,
R² Wasserstoff oder eine funktionelle Gruppe wie Hydroxy, Amino, NHR⁶, COOH, CONH₂, COOR⁷ oder Halogen bedeutet, worin
R⁶ C₁-C₄-Alkyl und
R⁷ C¹-C⁴-Alkyl, vorzugsweise Methyl bedeutet;
Q und Q′ unabhängig voneinander Wasserstoff bedeuten oder für Konjugate stehen, welche die Eigenschaften von Antisense-Oligonucleotiden oder von Tripelhelix bildenden Oligonucleotiden günstig beeinflussen oder als Markierung einer DNA Sonde dienen oder bei der Hybridisierung des Oligonucleotid analogons an die Target-Nucleinsäure diese unter Bindung oder Quervernetzung angreift; wobei
sich R¹ und der benachbarte Phosphorylrest sowohl in 2′- und 3′-Stellung oder auch umgekehrt in 3′- und 2′-Stellung befinden können;
jedes Nucleotid in seiner D- bzw. L-Konfiguration vorliegen kann;
die Base B in alpha- bzw. beta-Stellung befinden kann, wobei das Oligonukleotid auch 3′-3′- bzw. 5′-5′-Inversionen beinhalten kann,
dadurch gekennzeichnet, daß man

(a) eine Verbindung der Formel III in der A, Y, V, wie oben definiert sind und
R¹′ wie R¹ definiert ist wobei, wenn R¹ für Hydroxy oder Amino steht R eine entsprechend geschützte Gruppe bedeutet,
S für eine im sauren abspaltbare 5′-Schutzgruppe steht;
B^PR für eine natürliche oder unnatürliche Nucleobase steht, wobei gegebenenfalls vorhandene exocyclische Aminogruppen durch eine cyclische Diacylgruppe geschützt sind;
nach bekannten Verfahren mit einer Verbindung der Formel IV worin
Z′ für OR¹³ oder C₁-C₁₈-Alkyl, C₁-C₁₈-Alkoxy, C₆-C₂₀-Aryl, C₆-C₁₄-Aryl-C₁- C₈-Alkyl, bevorzugt für OR¹³, C₁-C₆-Alkyl, C₁-C₆-Alkoxy, C₆-C₂₀-Aryl, C₆-C₁ ₄-Aryl-C₁ -C₈-Alkyl, besonders bevorzugt für OR¹³ steht;
R¹¹ und R¹² gleich oder verschieden sind und C₁-C₈-Alkyl, vorzugsweise Isopropyl, oder C₅-C₁₂-Cycloalkyl, vorzugsweise bis C₈, Benzyl oder Phenyl oder zusammen mit dem Stickstoffatom, an das sie gebunden sind, einen gesättigten oder ungesättigten heterocyclischen Ring, mit gegebenenfalls weiteren Heteroatomen, wie z. B. Morpholin, und Substituenten, wie OC(O)O-C₁- C₄-Alkyl-Ester, bedeuten; und
R¹³ für eine, durch starke, nicht nukleophile Basen abspaltbare Schutzgruppe steht,
Z für Chlor oder Brom oder einen Rest der Formel NR¹¹R¹², steht wobei R¹¹ und R¹² wie oben definiert sind;
in Gegenwart einer Base, vorzugsweise Pyridin oder einer Mischung von Tetrahydrofuran (THF), Dioxan, Dichlormethan (DCM), Chloroform, und/oder Acetonitril mit einem C₁-C₄-Trialkylamin, vorzugsweise Trimethyl-, Triethyl- oder Diisopropylethyl-Amin oder, wenn Z ein Rest der Formel NR¹¹R¹² ist, dann in Gegenwart
einer Verbindung der Formel [HNR¹⁴R¹⁵R¹⁶]⁽⁺⁾ A^(-),
wobei R¹⁴, R¹⁵, R¹⁶ gleich oder verschieden voneinander sind und eine C₁-C₄-Alkylgruppe und A Fluor, Chlor, Brom, insbesondere Chlor, bedeuten;
oder Tetrazol oder 5-(C₁-C₄-Alkylthio)-1H-tetrazol, vorzugsweise in Gegenwart von Tetrazol oder Pyridinhydrochlorid, zu einer Verbindung der Formel V umsetzt worin S, V, Y, A, B^PR, Z′, R¹′, R¹¹, R¹² wie oben definiert sind;
(b) Verbindungen der Formel III nach bekannten Verfahren mit 1 bis 10 Equivalenten, bevorzugt mit 1 bis 2 Equivalenten eines Linkers in einem geeigneten organischen Lösungsmittel, gegebenenfalls nach Zugabe eines Katalysators zu einer Verbindung der Formel VI wobei S, V, Y, A, B^PR und R¹ wie oben definiert sind, umsetzt und anschließend nach bekannten Verfahren aufgearbeitet werden, wobei der Bernsteinsäure-Rest in 3′-Position als Linker zu dem in der Synthese eingesetzten Polymerträger dient.
(c) die Verbindung der Formel VI nach bekannten Verfahren auf einen festen Träger SS durch Umsetzung mit DCC und p-Nitrophenol in einem geeigneten Lösungsmittel koppelt, wobei Verbindungen der Formel VII erhalten werden;
(d) die 5-Schutzgruppe von VII nach bekannten Verfahren abspaltet;
(e) die erhaltene Verbindung mit einer Verbindung der Formel V in einem geeigneten organischen Lösungsmittel, bevorzugt Acetonitril, in Gegenwart einer Verbindung der Formel [HNR¹⁴R¹⁵R¹⁶]⁽⁺⁾ A^(-), die wie oben definiert ist, oder Tetrazol, 5-(C₁-C₄-Alkylthio)-1H-tetrazol oder 5-(C₁-C₄-Alkylthio)-1H-tetrazol, vorzugsweise in Gegenwart von Tetrazol oder Pyridin-Hydrochlorid, umsetzt und
(f) die erhaltene Verbindung nach bekannten Verfahren oxidiert, gegebenenfalls auch in Gegenwart weiterer organischer Lösungsmittel,
(g) die Reaktionsschritte d-f bis zur gewünschten Kettenlänge wiederholt;
(h) die so erhaltene Verbindung durch Behandlung mit DBU in einem geeigneten organischen Lösungsmittel entschützt; und
(i) das Oligonucleotid nach bekannten Verfahren vom Träger abspaltet.

6. Verfahren gemäß Anspruch 5, dadurch gekennzeichnet daß nicht abreagierte Verbindungen aus Schritt (d) durch einen capping-Schritt deaktiviert werden.

7. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 5 oder 6, wobei in Verbindungen der Formeln (III), (V), (VI) und (VII) B^PR unabhängig voneinander bedeutet,
worin
m für eine Zahl von Null bis vier, bevorzugt für Null steht, die Reste
R⁸ unabhängig voneinander für Wasserstoff, Fluor, Chlor, Brom, Nitro, C₁-C₄-Alkyl, C₁-C₄-Alkoxy, CN steht,
R⁹ unabhängig voneinander Wasserstoff, C₂-C₆-(1-Alkin), bevorzugt 1-Propinyl und 1-Hexinyl oder Fluor bedeutet, und
R¹⁰ unabhängig voneinander für Wasserstoff oder einer ß-eliminierbare Schutzgruppen stehen.

8. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 5 bis 7 zur Herstellung einer Verbindung der Formel I worin
R¹ Wasserstoff, Hydroxy, C₁-C₄-Alkoxy oder Fluor bedeutet;
A für Oxy steht;
W Oxo oder Thioxo bedeutet;
V Oxy bedeutet;
Y Oxy bedeutet;
B unabhängig voneinander für Adenin, Cytosin, Guanin, Uracil, Thymin, 5-Propinuracil, 5-Propincytosin, 5-Hexinuracil oder 5-Hexincytosin steht
n eine ganze Zahl von 5 bis 40 bedeutet;
U für für Hydroxy, Mercapto, C₁-C₆-Alkoxy, C₁-C₆-Alkyl, NR³R⁴ oder NHR³ steht, worin
R³ für C₁-C₈-Alkyl oder Methoxyethyl steht
R₄ C₁-C₈-Alkyl, C₆-C₂₀-Aryl oder (C₆-C₁₀)-Aryl-(C₁-C₈)-alkyl bedeutet oder im Falle von NR³R⁴ zusammen mit R³ und dem sie tragenden Stickstoffatom einen 5-6-gliedrigen heterozyklischen Ring bedeutet, der zusätzlich ein weiteres Heteroatoin aus der Reihe O, S, N enthalten kann,
Q und Q′ unabhängig voneinander Wasserstoff bedeuten.

9. Verfahren gemäß Anspruch 8, wobei
R¹ Wasserstoff bedeutet
n eine ganze Zahl von 5 bis 30 bedeutet
U Hydroxy oder C₁-C₆-Alkyl
Q und Q′ Wasserstoff bedeuten
und die restlichen Variablen wie in Anspruch 7 definiert sind.

10. Verbindung der Formel V worin
R¹′ unabhängig voneinander Wasserstoff, C₁-C₁₈-Alkoxy, gegebenenfalls ein bis dreifach substituiert mit Hydroxy, oder C₁-C₄-Alkoxy, C₁-C₄-Alkyl-O- (CH₂CH₂O)_1-3, O-Allyl, Fluor, Chlor, Azido oder eine geschützte Hydroxy- oder Aminogruppe bedeutet;
A für Oxy, Thioxy oder Methylen steht;
V Oxy, Sulfandiyl oder Imino bedeutet;
Y Oxy, Sulfandiyl, Imino oder Methylen bedeutet;
S für eine im sauren abspaltbare 5′-Schutzgruppe steht;
B^PR für eine natürliche oder unnatürliche Nucleobase mit exocyclischer Aminogruppe steht, wobei die exocyclischen Aminogruppen durch eine cyclische Diacylgruppe geschützt sind;
Z′ für OR¹³, C₁-C₁₈-Alkyl, C₁-C₁₈-Alkoxy, C₆-C₂₀-Aryl, C₆-C₁₄-Aryl-C₁-C₈- Alkyl, steht;
R¹¹ und R¹² gleich oder verschieden sind und C₁-C₈-Alkyl, vorzugsweise Isopropyl, oder C₅-C₁₂-Cycloalkyl, vorzugsweise bis C8, Benzyl oder Phenyl oder zusammen mit dem Stickstoffatom, an das sie gebunden sind, einen gesättigten oder ungesättigten heterocyclischen Ring, mit gegebenenfalls weiteren Heteroatomen, wie z. B. Morpholin, und Substituenten, wie OC(O)O-C₁- C₄-Alkyl-Ester, bedeuten; und
R¹³ für para-Nitrophenylethyl oder 2-Cyanoethyl steht;
11. Verbindung der Formel V gemäß Anspruch 10, worin B^PR worin
m für eine Zahl von Null bis vier, bevorzugt für Null steht; und
R⁸ unabhängig voneinander für Wasserstoff, Fluor, Chlor, Brom, Nitro, C₁- C₄-Alkyl, C₁-C₄-Alkoxy, CN steht,
12. Verbindung der Formel V gemäß Anspruch 10 oder 11, worin
R¹ Wasserstoff, eine geschützte Hydroxy-Gruppe, C₁-C₄-Alkoxy oder Fluor bedeutet,
A für Oxy steht;
V Oxy bedeutet;
Y Oxy bedeutet;
Z′ OR¹³, C₁-C₆-Alkyl, C₁-C₆-Alkoxy, C₆-C₂₀-Aryl, C₆-C₁₄-Aryl-C₁-C₈-Alkyl, bevorzugt OR¹³ bedeutet.