DE19530076A1 - Zusammensetzung mit insektizider Wirkung - Google Patents
Zusammensetzung mit insektizider WirkungInfo
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Description
Die vorliegende Erfindung betrifft eine neue Zusammensetzung allein auf Basis
von Transfluthrin mit insektizider Wirkung, dadurch gekennzeichnet, daß sie eine
hervorragende Wirkung gegen fliegende Insekten, eine gute Knockdown-Wirkung,
hohen Austreibeffekt sowie langanhaltende Residualwirkung gegen kriechende
Insekten und Spinnentiere aufweist, in dem der Wirkstoff mikroverkapselt wird.
Zur erfolgreichen Bekämpfung von Insekten und Spinnentieren in Innenräumen
werden üblicherweise Kombinationen von Insektiziden eingesetzt. Dabei werden
normalerweise verschiedene insektizide Stoffklassen miteinander kombiniert
(W. Behrenz und K. Naumann, Pflanzenschutznachrichten Bayer, 35, 309 (1982)).
Um einen "Austreibeffekt" und sofortige Wirkung ("Knockdown-Wirkung") sowie
Langzeitwirkung ("Residualwirkung") gegen Insekten zu erhalten, werden bisher
Mischungen von Phosphorsäureestern, Carbamaten und langzeitstabilen
Pyrethroiden verwendet (C. Fest, K.-J. Schmidt, The Chemistry of Organophos
phorus Pesticides, Springer-Verlag, Berlin (1982), W. Behrenz, E. Böcker,
Pflanzenschutznachrichten Bayer, 18, 53 (1965), I. Hammann, R. Fuchs, ibid. 34,
123 (1981) und dort zitierte Literatur).
Aufgabe der vorliegenden Erfindung war, von Insektizid-Kombinationen Abstand
zu nehmen und sich auf einen Wirkstoff zu beschränken, wobei die oben
genannten Bedingungen erfüllt werden.
In der vorliegenden Erfindung wird nun eine Zusammensetzung beschrieben, die
sich dadurch auszeichnet, daß sie nur einen Wirkstoff enthält und eine
hervorragende Wirkung gegen fliegende Insekten, eine gute Knockdown-Wirkung
mit Austreibeffekt und Residualwirkung gegen kriechende Insekten sowie gegen
Spinnentiere aufweist.
Transfluthrin der Formel
2,3,5,6-Tetrafluorbenzyl(+)-1R-trans-2,2-dimethyl-3-(2,2-dichlorviny-l)
cyclopropan-carboxylat
ist in den verschiedensten zur Aerosol-, Verdampfer- und Räucheranwendung geeigneten Formulierungen, ein hervorragender Wirkstoff zur Bekämpfung von Hygiene-, Material- und Vorratsschädlingen. Es kann gegen normal sensible und resistente Arten sowie gegen alle oder einzelne Entwicklungsstadien wirksam sein. Zu den oben erwähnten Schädlingen gehören:
Aus der Ordnung der Isopoda z. B. Oniscus asellus, Armadillidium vulgare, Por cellio scaber.
Aus der Ordnung der Diplopoda z. B. Blaniulus guttulatus.
Aus der Ordnung der Chilopoda z. B. Geophilus carpophagus, Scutigera spec.
Aus der Ordnung der Symphyla z. B. Scutigerella immaculata.
Aus der Ordnung der Thysanura z. B. Lepisma saccharina.
Aus der Ordnung der Collembola z. B. Onychiurus armatus.
Aus der Ordnung der Orthoptera z. B. Blatta orientalis, Periplaneta americana, Leucophaea maderae, Blattella germanica, Acheta domesticus, Gryllotalpa spp., Locusta migratoria migratorioides, Melanoplus differentialis, Schistocerca gregaria.
Aus der Ordnung der Dermaptera z. B. Forficula auricularia.
Aus der Ordnung der Isoptera z. B. Reticulitermes spp.
Aus der Ordnung der Anoplura z. B. Pediculus humanus corporis, Haematopinus spp., Linognathus spp.
Aus der Ordnung der Mallophaga z. B. Trichodectes spp., Damalinea spp.
Aus der Ordnung der Thysanoptera z. B. Hercinothrips femoralis, Thrips tabaci.
Aus der Ordnung der Heteroptera z. B. Eurygaster spp., Dysdercus intermedius, Piesma quadrata, Cimex lectularius, Rhodnius prolixus, Triatoma spp.
Aus der Ordnung der Homoptera z. B. Meurodes brassicae, Bemisia tabaci, Trialeurodes vaporariorum, Aphis gossypii, Brevicoryne brassicae, Cryptomyzus ribis, Aphis fabae, Aphis pomi, Eriosoma lanigerum, Hyalopterus arundinis, Phylloxera vastatrix, Pemphigus spp., Macrosiphum avenae, Myzus spp., Phorodon humuli, Rhopalosiphum padi, Empoasca spp., Euscelis bilobatus, Nephotettix cincticeps, Lecanium corni, Saissetia oleae, Laodelphax striatellus, Nilaparvata lugens, Aonidiella aurantii, Aspidiotus hederae, Pseudococcus spp., Psylla spp.
Aus der Ordnung der Lepidoptera z. B. Pectinophora gossypiella, Bupalus piniarius, Cheimatobia brumata, Lithocolletis blancardella, Hyponomeuta padella, Plutella maculipennis, Malacosoma neustria, Euproctis chrysorrhoea, Lymantria spp., Bucculatrix thurberiella, Phyllocnistis citrella, Agrotis spp., Euxoa spp., Feltia spp., Earias insulana, Heliothis spp., Spodoptera exigua, Mamestra brassicae, Panolis flammea, Spodoptera litura, Spodoptera spp., Trichoplusia ni, Carpocapsa pomonella, Pieris spp., Chilo spp., Pyrausta nubilalis, Ephestia kuehniella, Galleria mellonella, Tineola bisselliella, Tinea pellionella, Hofmannophila pseudospretella, Cacoecia podana, Capua reticulana, Choristoneura fumiferana, Clysia ambiguella, Homona magnanima, Tortrix viridana.
Aus der Ordnung der Coleoptera z. B. Anobium punctatum, Rhizopertha dominica, Bruchidius obtectus, Acanthoscelides obtectus, Hylotrupes bajulus, Agelastica alni, Leptinotarsa decemlineata, Phaedon cochleariae, Diabrotica spp., Psylliodes chrysocephala, Epilachna varivestis, Atomaria spp., Oryzaephilus surinamensis, Anthonomus spp., Sitophilus spp., Otiorrhynchus sulcatus, Cosmopolites sordidus, Ceuthorrhynchus assimilis, Hypera postica, Dermestes spp., Trogoderma spp., Anthrenus spp., Attagenus spp., Lyctus spp., Meligethes aeneus, Ptinus spp., Niptus hololeucus, Gibbium psylloides, Tribolium spp., Tenebrio molitor, Agriotes spp., Conoderus spp., Melolontha melolontha, Amphimallon solstitialis, Costelytra zealandica.
Aus der Ordnung der Hymenoptera z. B. Diprion spp., Hoplocampa spp., Lasius spp., Monomorium pharaonis, Vespa spp.
Aus der Ordnung der Diptera z. B. Aedes spp., Anopheles spp., Culex spp., Drosophila melanogaster, Musca spp., Fannia spp., Calliphora erythrocephala, Lucilia spp., Chrysomyia spp., Cuterebra spp., Gastrophilus spp., Hyppobosca spp., Stomoxys spp., Oestrus spp., Hypoderma spp., Tabanus spp., Tannia spp., Bibio hortulanus, Oscinella frit, Phorbia spp., Pegomyia hyoscyami, Ceratitis capitata, Dacus oleae, Tipula paludosa.
Aus der Ordnung der Siphonaptera z. B. Xenopsylla cheopis, Ctentophalides felis, Ceratophyllus spp.
Aus der Ordnung der Arachnida z. B. Scorpio maurus, Latrodectus mactans.
Aus der Ordnung der Acanna z. B. Acarus siro, Argas spp., Ornithodoros spp., Dermanyssus gallinae, Eriophyes ribis, Phyllocoptruta oleivora, Boophilus spp., Rhipicephalus spp., Amblyomma spp., Hyalomma spp., Ixodes spp., Psoroptes spp., Chorioptes spp., Sarcoptes spp., Tarsonemus spp., Bryobia praetiosa, Panonychus spp., Tetranychus spp.
ist in den verschiedensten zur Aerosol-, Verdampfer- und Räucheranwendung geeigneten Formulierungen, ein hervorragender Wirkstoff zur Bekämpfung von Hygiene-, Material- und Vorratsschädlingen. Es kann gegen normal sensible und resistente Arten sowie gegen alle oder einzelne Entwicklungsstadien wirksam sein. Zu den oben erwähnten Schädlingen gehören:
Aus der Ordnung der Isopoda z. B. Oniscus asellus, Armadillidium vulgare, Por cellio scaber.
Aus der Ordnung der Diplopoda z. B. Blaniulus guttulatus.
Aus der Ordnung der Chilopoda z. B. Geophilus carpophagus, Scutigera spec.
Aus der Ordnung der Symphyla z. B. Scutigerella immaculata.
Aus der Ordnung der Thysanura z. B. Lepisma saccharina.
Aus der Ordnung der Collembola z. B. Onychiurus armatus.
Aus der Ordnung der Orthoptera z. B. Blatta orientalis, Periplaneta americana, Leucophaea maderae, Blattella germanica, Acheta domesticus, Gryllotalpa spp., Locusta migratoria migratorioides, Melanoplus differentialis, Schistocerca gregaria.
Aus der Ordnung der Dermaptera z. B. Forficula auricularia.
Aus der Ordnung der Isoptera z. B. Reticulitermes spp.
Aus der Ordnung der Anoplura z. B. Pediculus humanus corporis, Haematopinus spp., Linognathus spp.
Aus der Ordnung der Mallophaga z. B. Trichodectes spp., Damalinea spp.
Aus der Ordnung der Thysanoptera z. B. Hercinothrips femoralis, Thrips tabaci.
Aus der Ordnung der Heteroptera z. B. Eurygaster spp., Dysdercus intermedius, Piesma quadrata, Cimex lectularius, Rhodnius prolixus, Triatoma spp.
Aus der Ordnung der Homoptera z. B. Meurodes brassicae, Bemisia tabaci, Trialeurodes vaporariorum, Aphis gossypii, Brevicoryne brassicae, Cryptomyzus ribis, Aphis fabae, Aphis pomi, Eriosoma lanigerum, Hyalopterus arundinis, Phylloxera vastatrix, Pemphigus spp., Macrosiphum avenae, Myzus spp., Phorodon humuli, Rhopalosiphum padi, Empoasca spp., Euscelis bilobatus, Nephotettix cincticeps, Lecanium corni, Saissetia oleae, Laodelphax striatellus, Nilaparvata lugens, Aonidiella aurantii, Aspidiotus hederae, Pseudococcus spp., Psylla spp.
Aus der Ordnung der Lepidoptera z. B. Pectinophora gossypiella, Bupalus piniarius, Cheimatobia brumata, Lithocolletis blancardella, Hyponomeuta padella, Plutella maculipennis, Malacosoma neustria, Euproctis chrysorrhoea, Lymantria spp., Bucculatrix thurberiella, Phyllocnistis citrella, Agrotis spp., Euxoa spp., Feltia spp., Earias insulana, Heliothis spp., Spodoptera exigua, Mamestra brassicae, Panolis flammea, Spodoptera litura, Spodoptera spp., Trichoplusia ni, Carpocapsa pomonella, Pieris spp., Chilo spp., Pyrausta nubilalis, Ephestia kuehniella, Galleria mellonella, Tineola bisselliella, Tinea pellionella, Hofmannophila pseudospretella, Cacoecia podana, Capua reticulana, Choristoneura fumiferana, Clysia ambiguella, Homona magnanima, Tortrix viridana.
Aus der Ordnung der Coleoptera z. B. Anobium punctatum, Rhizopertha dominica, Bruchidius obtectus, Acanthoscelides obtectus, Hylotrupes bajulus, Agelastica alni, Leptinotarsa decemlineata, Phaedon cochleariae, Diabrotica spp., Psylliodes chrysocephala, Epilachna varivestis, Atomaria spp., Oryzaephilus surinamensis, Anthonomus spp., Sitophilus spp., Otiorrhynchus sulcatus, Cosmopolites sordidus, Ceuthorrhynchus assimilis, Hypera postica, Dermestes spp., Trogoderma spp., Anthrenus spp., Attagenus spp., Lyctus spp., Meligethes aeneus, Ptinus spp., Niptus hololeucus, Gibbium psylloides, Tribolium spp., Tenebrio molitor, Agriotes spp., Conoderus spp., Melolontha melolontha, Amphimallon solstitialis, Costelytra zealandica.
Aus der Ordnung der Hymenoptera z. B. Diprion spp., Hoplocampa spp., Lasius spp., Monomorium pharaonis, Vespa spp.
Aus der Ordnung der Diptera z. B. Aedes spp., Anopheles spp., Culex spp., Drosophila melanogaster, Musca spp., Fannia spp., Calliphora erythrocephala, Lucilia spp., Chrysomyia spp., Cuterebra spp., Gastrophilus spp., Hyppobosca spp., Stomoxys spp., Oestrus spp., Hypoderma spp., Tabanus spp., Tannia spp., Bibio hortulanus, Oscinella frit, Phorbia spp., Pegomyia hyoscyami, Ceratitis capitata, Dacus oleae, Tipula paludosa.
Aus der Ordnung der Siphonaptera z. B. Xenopsylla cheopis, Ctentophalides felis, Ceratophyllus spp.
Aus der Ordnung der Arachnida z. B. Scorpio maurus, Latrodectus mactans.
Aus der Ordnung der Acanna z. B. Acarus siro, Argas spp., Ornithodoros spp., Dermanyssus gallinae, Eriophyes ribis, Phyllocoptruta oleivora, Boophilus spp., Rhipicephalus spp., Amblyomma spp., Hyalomma spp., Ixodes spp., Psoroptes spp., Chorioptes spp., Sarcoptes spp., Tarsonemus spp., Bryobia praetiosa, Panonychus spp., Tetranychus spp.
Bevorzugt wird die erfindungsgemäße Zusammensetzung gegen fliegende Insekten
wie Mücken, Fliegen, Motten aber auch gegen kriechendes, versteckt sitzendes
Ungeziefer, wie z. B. Schaben oder Flöhe aller Entwicklungsstadien angewandt.
Diese werden aus ihren Verstecken getrieben (flushing-effect), so daß sie mit den
frisch geschaffenen Wirkstoffbelägen in Berührung kommen und abgetötet werden.
Werden die Schaben oder Flöhe direkt angesprüht, so fallen diese schnell in
Rückenlage (Knockdown) und können sich nicht wieder erholen (Mortalität). Um
eine solche Wirkung zu erreichen, kann Transfluthrin in den verschiedensten
Formulierungen wie z. B. als Sprühdose, Ölsprühmittel, wasserbasierendes
Pumpspray ULV-, Heiß- und Kaltnebel eingesetzt werden. Desweiteren eignen
sich Formulierungen wie z. B. Emulsionskonzentrate (EC), Emulsionskonzentrate
auf Wasserbasis (EW) oder wettable powders (WP).
Über die beschriebenen Wirkungen hinaus, kann Transfluthrin aufgrund seiner
physikalischen und biologischen Eigenschaften auch als Präparat mit kurzer
Dauerwirkung zur Bekämpfung von kriechenden Insekten, vorzugsweise Schaben
oder Flöhe eingesetzt werden. Unter kurzer Dauerwirkung ist je nach Aufwand
menge eine Wirkung von einigen Tagen (<1 Woche) zu verstehen. Das Präparat
wirkt auch, als Residualwirkstoff angewendet, gegen alle Larvenstadien und
adulten Tiere von Schaben und Flöhen.
Durch die Mikroverkapselung von Transfluthrin in z. B. Polyharnstoff-Kapseln läßt
sich aber aus dem Wirkstoff mit einer kurzen Dauerwirkung, durch das
Steuerungssystem der Mikrokapsel, eine dosierte Wirkstoffabgabe erreichen. Mit
Hilfe dieses Systems läßt sich aus einem Kurzzeitwirkstoff ein Präparat mit
Langzeitwirkung machen.
Der nicht mikroverkapselte Anteil kann als EC, EW oder als unverdünnte
Flüssigkeit (AL) formuliert sein.
Durch den Einsatz von Transfluthrin, in einem freien Anteil, z. B. als EW formu
liert und einem mikroverkapseltem CS-Anteil (CS = Mikroverkaspelung), läßt
sich z. B. ein wasserbasierendes Aerosol mit nur einem Wirkstoff herstellen, das
eine hervorragende Wirkung gegen fliegende Insekten, sowie eine gute
Knockdown-Wirkung, einen guten Austreibeffekt und eine hohe Residualwirkung
gegen kriechende Insekten besitzt.
Das Verhältnis zwischen dem verkapseltem CS-Wirkstoffanteil und dem freien
EW-Anteil kann je nach Wirkungsanspruch in verschiedenen Verhältnissen variiert
werden. Im allgemeinen wendet man CS : EW Verhältnisse von 100 Teilen CS : 0,1
Teil EW bis 0,1 Teil CS : 100 Teilen EW an. Bevorzugt wendet man das
Verhältnis von 10 Teilen CS : 0,1 Teil EW bis 0,1 Teil CS : 10 Teilen EW an.
Insbesondere bevorzugt ist ein Verhältnis von 1 Teil CS : 10 Teilen EW bis 10
Teile CS : 1 Teil EW.
Der Wirkstoffgehalt der aus den handelsüblichen Formulierungen bereiteten
Anwendungsformen kann in weiten Bereichen variieren. Die Wirkstoffkonzen
tration der Anwendungsformen kann von 0,0000001 bis 95 Gew.-% Wirkstoff
vorzugsweise zwischen 0,0001 und 1 Gew.-% liegen.
Die Transfluthrin Mikrokapseln werden mit dem Verfahren der Grenzflächenpo
lymerisation hergestellt. Die Mikrokapselwand besteht z. B. aus einem Poly
harnstoff-Material. Die Kapselwand wird an der Grenzfläche zwischen der
organischen Phase und der wässerigen Phase aus einem Polyisocyanat und einem
mehrfunktionellen Amin gebildet. Das Polyisocyanat kann aromatisch oder
aliphatisch sein. Es sollte mindestens bifunktional sein, kann aber auch mehr
Isocyanat-Gruppen enthalten. Polyisocyanate für die Mikroverkapselung sind z. B.
Toluoldiisocyanat, Diphenylmethandiisocyanat, Phenylendiisocyanat, Hexa
methylendiisocyanat und 1,6-Hexandiisocyanat. Mehrfunktionelle Amine sollten
ebenfalls mindestens bifunktional sein, z. B. Ethylendiamin, Hexamethylendiamin,
Phenylendiamin, Diethylentriamin und Tetraethylenpentamin. Die organische Phase
besteht aus einer Transfluthrin Lösung und einem Polyisocyanat. Die wäßrige
Phase besteht aus Wasser und einem Schutzkolloid, z. B. PVA (Polyvinylalkohol),
PVP (Polyvinylpyrrolidon) etc. Aus wäßriger und organischer Phase wird eine Öl
in Wasser (O/W)-Emulsion hergestellt. (Das Schutzkolloid verhindert während des
Emulgiervorganges, daß das Polyisocyanat mit dem Wasser reagiert.) Das
mehrfunktionelle Amin wird anschließend zugefügt und polymerisiert gegebenen
falls unter Temperaturerhöhung mit dem Polyisocyanat zur Polyharnstoff-Mikro
kapsel. Man erhält eine wässerige Transfluthrin Mikrokapselsuspension. Prinzipiell
können aber auch andere Polymere für die Mikroverkapselung von Transfluthrin
verwendet werden.
Das Kapselwandmaterial, die Größe der Mikrokapseln sowie die Dicke der Po
lyharnstoffwand - und damit die Freisetzung von Transfluthrin aus den Mikro
kapseln - können mit Hilfe der Herstellparameter entsprechend eingestellt werden.
Rezepturbeispiel für 1 kg 10%ige Transfluthrin Mikrokapselsuspension | |
PVA 1% in Wasser|530 g | |
Transfluthrin | 100 g |
Solvesso 200® | 285 g |
Diphenylmethandiisocyanat | 15 g |
Diethylentriamin 10% in Wasser | 45 g |
Kelzan S® 2% + Benzylhemiformal 4% in Wasser | 25 g |
1000 g |
Transfluthrin wird in Solvesso 200® gelöst und diese Lösung wird mit Diphenyl
methandiisocyanat gemischt. Man erhält die organische Phase. Aus der PVA-
Lösung und der organischen Phase wird bei Temperatur von 25°C eine O/W-
Emulsion hergestellt. (Dazu verwendet man z. B. den Ultra Turrax T50® der Firma:
Janke & Kunkel, IKA-Labortechnik in Staufen.) Die Größe der Emulsion
ströpfchen, die der Größe der Mikrokapseln entspricht, kann mit der Emulgierge
schwindigkeit und der Emulgierdauer eingestellt werden, z. B. emulgiert man 2 min
mit 7000 UpM.
Anschließend wird unter Rühren die Diethylentriamin-Lösung zugefügt. Man er
wärmt langsam (innerhalb von 1-2 Stunden) auf 60°C. Diese 60°C werden unter
Rühren ca. 5 Stunden lang gehalten. Die Polymerisation von Diphenylmethandi
isocyanat und Diethylentriamin zur Polyharnstoffmikrokapsel ist daraufhin abge
schlossen.
Das wässerige Kelzan S®-Gel mit Benzylhemiformal wird unter Rühren zugege
ben. (Das Polysaccharid Kelzan S®, ein sog. Xanthan-Gum, ist ein polymeres
Verdickungsmittel der Firma Kelco. Benzylhemiformal, ein Formaldehydabspalter,
ist ein Konservierungsmittel der Firma Bayer AG.)
Nach dem Abkühlen auf Raumtemperatur ist der Versuch beendet, und die
Transfluthrin Mikrokapselsuspension kann abgefüllt werden.
Es sind durchaus aber auch andere Polymere für die Mikroverkapslung von
Transfluthrin denkbar.
Werden z. B. anstelle von mehrfunktionellen Aminen die entsprechenden mehr
funktionellen Alkohole mit den genannten mehrfunktionellen Isocyanaten umge
setzt, so erhält man analog Mikrokapseln mit Polyurethanstruktur.
Werden z. B. anstelle von mehrfunktionellen Isocyanaten die entsprechenden mehr
funktionellen Säurechloride mit den genannten mehrfunktionellen Aminen zur
Reaktion gebracht, so erhält man analog Mikrokapseln mit Polyamidstruktur.
Die Prüfung erfolgte in Kunststoffschalen (Pikierkästen, Typ 23, W.u.H. Fernholz
GmbH & Co. KG, Meinerzhagen) mit den Maßen 40 cm × 60 cm × 6 cm. Das auf
dem Boden ausgelegte Filterpapier wurde mit "tesa"®-film 4104 fixiert.
Talkumierte Seitenwände verhinderten das Entkommen der Schaben. In der Mitte
der Schalen wurde das Versteck, im vorderen Drittel ein umgestülptes
wassergefülltes Wägegläschen als Tränke sowie ein Stück Zwieback als Nahrung
aufgestellt.
Boden und Deckenplatte des Versteckes bestehen aus mit weißem DD-Lack
beschichtetem Aluminium, Seitenstege und Schieber aus Teflon. Senkkopf
schrauben und Flügelmuttern halten die Konstruktion zusammen, wobei mittels des
Schiebers die gewünschte Verstecktiefe eingestellt wird. Aufbau und Abmessungen
des Versteckes sind [Abb. 1] zu entnehmen. Durch Austausch des Schiebers und
der Seitenstege kann die Versteckhöhe variiert werden.
In jeden Behälter wurden 24 Stunden vor Versuchsbeginn 10 Schaben einer
bestimmten Art sowie Stadiums oder Geschlechtes eingesetzt. Nach dieser Zeit
befanden sich in der Regel alle Tiere im Versteck. Dieses wurde in den Abzug
gebracht und in einem Kunststoffbehälter mit den Maßen 65 cm × 46,5 cm ×
30 cm auf zwei Glaszylinder (Höhe insgesamt 36 cm, Durchmesser 12 cm)
gestellt. Aus einer Entfernung von 30 cm und 36 cm Höhe wurden 2 g
Doseninhalt in Richtung der Verstecköffnung gesprüht.
Nach Beendigung des Sprühvorganges erfolgte die Übertragung des Versteckes in
die Kunststoffschale auf einen talkumierten Glasring (Höhe 5 cm, Durchmesser
10 cm). Die Zahl der ausgetriebenen Schaben wurde bis zu 5 min. nach
Behandlung in einminütigem, bis zu 30 min. in fünfminütigem Abstand, sowie
nach 60 min. und 24 Stunden ermittelt. Nach 60 min. wurde eine geknickte
Filterscheibe mit 9,5 cm Durchmesser als Schutz für die ausgetriebenen Schaben
in die Pikierkästen gegeben. In jedem Versuch wurde eine Kontrollbehandlung mit
einer wirkstofffreien Dose durchgeführt.
Nur in Einzelfällen suchten herausgetriebene Schaben das Versteck nochmals auf,
in der Regel fielen sie bald vom Versteck herunter. Nach Versuchsabschluß
wurden die Verstecke auseinander geschraubt, mit Aceton vorgespült, bei 95°C in
der Spülmaschine gereinigt und bei 150°C im Trockenschrank getrocknet.
Die Versuche werden in einer Abzugskapelle durchgeführt, in der die Absaugung
so zu regulieren ist, daß eine Beeinträchtigung des Sprühstrahls nicht erfolgt.
Jeweils eine Schabe wird in eine Drahtgazebox mit einem Innendurchmesser von
70 mm, einer Höhe von 10 mm und einer Maschenweite von 1,5 mm gesetzt. Die
so vorbereiteten Versuchsgefäße werden an der Sprühapparatur in einem Winkel
von 45° eingespannt. Die Fläche hinter und unter dem Gazeprüfbehälter wird mit
saugfähigem Filterpapier ausgelegt, das nach jeder Prüfung ausgetauscht wird.
In einer Entfernung von 60 cm in der Mitte der Drahtgaze bis zur Düse des
Sprühkopfes der zu prüfenden Aerosole gerechnet, wird an der Sprühapparatur die
Sprühdose so eingespannt, daß der Sprühstrahl senkrecht auf die Drahtgaze trifft.
Von der zu prüfenden Dose wird vorher die Zeit ermittelt, die gesprüht werden
muß, um 2,4-2,8 g Doseninhalt auszubringen. Vor und nach jedem Versuch wird
die Dose gewogen, um die ausgebrachte Menge exakt zu bestimmen. Gleichzeitig
mit dem Sprühventil wird eine Stoppuhr betätigt, um die KD-Wirkung (KD =
Knockdown) auf die Tiere genau bestimmen zu können. Die Tiere werden gleich
nach dem Besprühen in ein sauberes Gefäß überführt, mit einem Tupfer versehen
und auf knock down nach Zeit sowie % Mortalität nach bestimmten Zeiten
ausgewertet.
Die Behandlung wird in einer Abzugskapelle durchgeführt, in der sich die
Absaugung so regulieren läßt, daß eine Beeinträchtigung des Sprühstrahls der
Dosen nicht erfolgt. Die Kapelle wird auf dem Boden und an den Wänden bis zu
einer Höhe von 65 cm mit Filterpapier ausgekleidet.
Behandelt werden können die wichtigsten Materialien, insbesondere lasierte und
unlasierte Kacheln, PVC-Platten, lackiertes Sperrholz usw. Die zu behandelnden
Unterlagen (Größe 15 × 15 cm = 225 cm²) werden auf einem Stativring
(Durchmesser außen 10 cm), der in einer Höhe von 5 cm an einem Stativ befestigt
ist, so aufgestellt und an der Stativstange angelehnt, daß ein Winkel von 55°
gebildet wird. Da jede Sprühdose von unterschiedlicher Zusammensetzung und
technischer Ausrüstung in ihrem Sprühverhalten (Druck, Spritzkegel,
Tröpfchengröße) abweichen kann, muß der Versuchsansteller, bevor die
eigentlichen Unterlagen behandelt werden, mit jeder Sprühdose an Pappunterlagen
(15 × 15 cm) trainieren, aus welcher Entfernung und in welcher Geschwindigkeit
gesprüht werden muß.
Ein gleichmäßiges Besprühen der Unterlagen mit der gewünschten Aufwandmenge
wird erreicht, wenn je nach Spritzkegel und Druck der Sprühdose aus einer
Entfernung von 25-40 cm gesprüht wird. Dabei hat es sich als zweckmäßig
erwiesen, die Dose von Hand in einem Halbkreis zu führen. Der Sprühstrahl wird
dabei auf der Unterlage oben links beginnend über Mitte rechts nach unten links
geführt (Siehe Skizze).
Die Menge, die über die Ränder der Unterlagen hinaus gesprüht wird, der
Spritzverlust, wurde in eingehenden Versuchen mit Papp-Umrandungen bestimmt
und betrug ca. 10%.
Vor und nach jedem Sprühvorgang wird die Sprühdose gewogen, um die
ausgebrachte Menge Doseninhalt zu bestimmen.
Um eine Doseninhaltsmenge von 50 g/m² auszubringen, müssen 1,24 g
Doseninhalt/225 cm² ausgebracht werden. Diese Menge enthält bereits die
ermittelten 10% Spritzverlust.
Unterlagen, auf die nicht die innerhalb der Toleranz von 1,20 bis 1,30 g liegende
Menge Doseninhalt ausgebracht werden, müssen verworfen werden. Sofort nach
dem Besprühen wird die Unterlage aus ihrer Schrägstellung genommen und flach
gelegt, um ein Ablaufen des Sprühbelages, insbesondere bei nichtsaugenden
Unterlagen und extrem feuchten Sprühdosen, zu vermeiden. Nach Abtrocknen der
Spritzbeläge werden die Unterlagen in den Testraum überführt.
Die behandelten Unterlagen werden mit je 5 Schaben besetzt, die in talkumierten
Glasringen (Durchmesser 9,5 cm, Höhe 5,5 cm) gehalten werden.
Einen Tag nach der Behandlung, dann nach 2 bis zu 4 Tagen täglich werden die
behandelten Unterlagen jeweils mit den Testtieren besetzt.
Die Auswertung erfolgt auf 100% knock down bzw. Mortalität nach 15, 30 und
60 Minuten sowie nach 2, 3 und 4 Stunden.
Die Prüfungen werden in 20 m³ (L = 2,84 m, B = 2,33 m, H = 3,03 m) großen
Räumen, deren Innenwände und Decken aus Edelstahl (DIN 4571) mit jeweils 5
Fenstern pro Raum bestehen, durchgeführt. Der Fußboden ist mit unlasierten
Kacheln gefliest. In die Versuchsräume werden von der Decke herab, in einer
Höhe von 1,80 m und 0,45 m von der jeweiligen Wand entfernt, 3 Drahtkäfige
(L = 8,5 cm, Durchmesser = 8,0 cm, Maschenweite = 1,0 mm) mit je 20
Versuchstieren gehängt.
Durch eine Öffnung (Durchmesser = 13 cm) in einer Höhe von 1,90 m gegenüber
der Tür wird von außen die gewünschte Menge an Sprühdoseninhalt
(Aufwandmenge) computergesteuert in den Raum gesprüht und durch einen 1
Minute lang laufenden Ventilator (Marke "Progress", Typ 958 5790-04 W11)
gleichmäßig im Raum verteilt. Durch die Glasfenster erfolgt die Auswertung.
Ermittelt wird, nach welcher Zeit 50% und 95% der Tiere in Rückenlage
gefallen sind (KT 50 und KT 95; KT = Knockdown-Time). Die Testtiere bleiben
60 Minuten in den Räumen. Dann wird der %-Satz der in Rückenlage (KD)
gefallenen Tiere bestimmt. Alle Tiere werden den Käfigen entnommen und in
insektizidfreie glasklare Kunststoffbecher überführt. Die Becher werden mit
gelochten Deckeln verschlossen und mit 10%iger Zuckerlösung getränkten
Zellstofftupfern versehen. Nachdem die Versuchstiere 24 Stunden in
insektizidfreier Atmosphäre gehalten wurden, wird die Mortalität bestimmt.
Geprüfte Tierart, Wirkstoffzusammensetzung der Sprühdosen und biologische
Ergebnisse sowie Anzahl der Versuche, Aufwandmenge (g/20 m³) und Sprühzeit
(sec.), Raumtemperatur und rel. Raumfeuchte sind den Tabellen zu entnehmen.
Claims (12)
1. Insektizide und akarizide Zusammensetzung, dadurch gekennzeichnet, daß
sie mikroverkapseltes Transfluthrin enthält.
2. Insektizide und akarizide Zusammensetzungen gemäß Anspruch 1, dadurch
gekennzeichnet, daß neben einem mikroverkapseltem Anteil von
Transfluthrin auch ein nicht mikroverkapselter, freier Anteil enthalten ist.
3. Insektizide und akarizide Zusammensetzungen gemaß Ansprüche 1 bis 2,
dadurch gekennzeichnet daß die Mikrokapseln aus Polyharnstoffmaterial
bestehen.
4. Insektizide und akarizide Zusammensetzungen gemaß der Ansprüche 1 bis
3, dadurch gekennzeichnet, daß die Mikrokapseln aus Polyharnstoffmaterial
bestehen, wobei die Polyharnstoff-Formulierung aus einem Polyisocyanat
und einem mehrfunktionellen Amin gebildet wird.
5. Insektizide und akarizide Zusammensetzungen gemäß der Ansprüche 1 bis
4, dadurch gekennzeichnet, daß als Polyisocyanat Toluoldiisocyanat, Di
phenyl-methandiisocyanat, Phenylendiisocyanat, Hexamethylendiisocyanat
oder Hexandiisocyanat und als mehrfunktionelles Amin Ethylendiamin,
Hexa-methylendiamin, Phenylendiamin, Diethylentriamin oder Tetra
ethylenpent-amin zum Einsatz kommen.
6. Insektizide und akarizide Zusammensetzungen gemäß der Ansprüche 1 bis
5, dadurch gekennzeichnet, daß der nicht mikroverkapselte Anteil als Emul
sionskonzentrat EC, Emulsionskonzentrat auf Wasserbasis EW oder als
unverdünnte Flüssigkeit AL formuliert ist.
7. Insektizide und akarizide Zusammensetzungen gemäß der Ansprüche 1 bis
6, dadurch gekennzeichnet, daß das Verhältnis von mikroverkapseltem zu
nicht verkapseltem Anteil zwischen 100 : 0,1 und 0,1 : 100 liegt.
8. Insektizide und akarizide Zusammensetzungen gemäß der Ansprüche 1 bis
7, dadurch gekennzeichnet, daß das Verhältnis von mikroverkapseltem zu
nicht verkapseltem Anteil zwischen 10 : 0,1 und 0,1 : 10 liegt.
9. Zusammensetzungen gemäß der Ansprüche 1 bis 8, dadurch gekenn
zeichnet, daß es sich um Sprayformulierungen handelt.
10. Zusammensetzungen gemäß der Ansprüche 1 bis 8, dadurch gekennzeichnet
daß es sich um Formulierungen wie ULV-, Heiß- und Kaltnebel, Emul
sionskonzentrate (EC), Emulsionskonzentrate auf Wasserbasis (EW), mikro
verkapselte Suspensionen (CS) oder unverdünnte Flüssigkeiten (AL) han
delt.
11. Verwendung von Zusammensetzungen gemaß der Ansprüche 1 bis 10 zur
Bekämpfung von Insekten oder Milben, die im Haushalt oder als Hygiene-
oder Vorratsschädlinge vorkommen.
12. Verfahren zur Bekämpfung von Insekten oder Milben, die im Haushalt oder
als Hygiene- oder Vorratsschädlinge vorkommen, dadurch gekennzeichnet,
daß man Zusammensetzungen gemäß der Ansprüche 1 bis 10 auf Insekten
bzw. Milben und/oder ihren Lebensraum einwirken läßt.
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