DE19506263A1 - Verfahren zum spezifischen Nachweis eines Gerinnungsfaktors V mit einer erhöhten Stabilität gegenüber aktiviertem Protein C im aktivierten Zustand - Google Patents
Verfahren zum spezifischen Nachweis eines Gerinnungsfaktors V mit einer erhöhten Stabilität gegenüber aktiviertem Protein C im aktivierten ZustandInfo
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Description
Die Erfindung bezieht sich auf ein Verfahren zum spezifischen Nachweis eines
Gerinnungsfaktors V mit einer erhöhten Stabilität gegenüber aktiviertem Protein C
im aktivierten Zustand.
Das Gerinnungssystem im Blut sorgt zum einen für die Aufrechterhaltung des
Blutstroms zu dem zu versorgenden Gewebe, zum anderen reagiert es auf
Verletzungen mit einem Wundverschluß und sorgt damit für die Erhaltung der
Integrität des Organismus. Bei der Aktivierung der Gerinnung entsteht über ein
kaskaden-ähnliches System sich schrittweise aktivierender Proteasen letztlich die
aktive Protease Thrombin. Die anfänglich nur sehr langsame Thrombinbildung
wird durch Thrombin selbst beschleunigt, in dem es die Kofaktoren Faktor V und
Faktor VIII durch proteolytische Spaltung aktiviert. Diese aktivierten Kofaktoren
bilden mit den Proteasen Faktor Xa bzw. IXa aktive Enzym/Kofaktor-Komplexe auf
Phospholipidoberflächen, deren Aktivität um den Faktor ca. 1000 höher ist als der
singulären Proteasen. Durch diese positive Rückkopplung kommt es quasi
explosionsartig zur Entstehung großer Mengen an Thrombin. Thrombin setzt
Fibrinogen zu Fibrin um, das im Normalfall zum Wundverschluß und zur
Wundheilung führt. Um eine lebensbedrohende Ausweitung der Gerinnung zu
verhindern, die zu einem Verschluß des Gefäßsystems im Körper, also zu
Thrombosen führen würden, müssen sowohl die aktive Protease als auch die
Nachlieferung der Protease unterbunden werden. Aktive Proteasen werden im
Körper durch Protease-Inhibitoren durch die Ausbildung kovalenter Komplexe
neutralisiert. Die Unterbrechung des Nachschubes wird durch Thrombin selbst
initiiert. Thrombin bindet hierzu an das Membranprotein Thrombomodulin und
setzt das Proenzym Protein C zur aktiven Protease Protein Ca (APC) um. APC
seinerseits bildet mit dem Kofaktor Protein S einen Komplex, der die aktiven
Kofaktoren Faktor VIIIa und Faktor Va proteolytisch spaltet und dadurch
inaktiviert. APC unterbricht somit die starke Stimulierung durch diese Kofaktoren.
Dieses oben beschriebene Protein C/Protein S-System stellt einen wichtigen
antikoagulatorischen Mechanismus dar. Dies wird dadurch bestätigt, daß
Personen mit erblichen oder erworbenen Mängeln oder Defekten an Protein C
oder Protein S mit hoher Wahrscheinlichkeit Thrombosen, insbesondere
rezidivierende venöse Thrombosen, erleiden (Esmon, C.T. TCM 2: 214-219,
1992).
Neben Protein C und Protein S können weitere Faktoren die Aktivität des Systems
beeinflussen, so von Willebrand Faktor und Faktor IXa (Rick, M.E. et al. J. Lab.
Clin. Med. 115: 415-421, 1990), die Faktor VIIIa vor proteolytischem Abbau
schützen können. Erworbene Störungen können auch auf die Entstehung von
Lupus anticoagulants zurückgehen. Dies sind gegen Phospholipide gerichtete
Antikörper, die die zur Funktion notwendige Anbindung der Protease/Kofaktor
Komplexe an Phospholipid-Oberflächen stören (Amer, L. et al. Thromb. Res. 57:
247-258, 1990).
In jüngster Zeit wurde eine Variante des Faktors V beschrieben, die im aktivierten
Zustand (Faktor Va) nicht mehr oder zumindest nur sehr schlecht durch APC
inaktiviert werden kann (Bertina, R.M. et al. Nature 369: 64-67, 1994). Dieser
Defekt wird auch als "F.V-Leiden" bezeichnet und beruht auf einem Austausch
von Arg 506 durch Gin in der Spaltregion für APC. Die Bedeutung dieser Mutation
als Ursache für ein erhöhtes Thromboserisiko wurde in mehreren Studien in
jüngster Zeit belegt.
Bisher stehen zwei Methoden zum Nachweis dieses veränderten Faktor V zur
Verfügung. Zum ersten ist dies die Gepomanalyse mittels Polymerase-Ketten-
Reaktion ("polymerase chain reaction", PCR). Diese Methodik ist bekannter
maßen sehr aufwendig, nur in Speziallabors durchführbar und relativ teuer.
Zudem erfaßt sie nur die bisher bekannte Mutation. Es ist jedoch vorstellbar, daß
Mutationen auch an anderen Stellen Faktor Va gegen die Spaltung durch APC
stabilisieren. Daher ist zusätzlich zu der sehr speziellen PCR-Methodik ein
funktioneller Test unbedingt notwendig.
Ein solcher funktioneller Test, der auf einer bekannten Modifikation (Amer et al.,
1990) eines in der Gerinnung üblichen Screening Verfahrens, der aktivierten
partiellen Thromboplastin Zeit (APTT) beruht, wurde schon beschrieben. Zur
Bestimmung der APTT wird dabei eine Plasmaprobe mit einem gleichen
Volumenanteil eines Reagenzes in Kontakt gebracht, das einen Oberflächen
aktivator, etwa Silica, Kaolin oder Glas und Phospholipide enthält. Dieses
Gemisch wird wenige Minuten bei +37°C inkubiert. Während dieser Zeit werden
die nicht Calcium-abhängigen Faktoren des Gerinnungssystems (Faktor XII,
Faktor XI und Faktor IX) aktiviert. Nach Zugabe von Calciumionen wird die
restliche Gerinnungskaskade aktiviert und es bildet sich Thrombin. Die
entstandene Thrombinmenge wird dann entweder durch die Umsetzung des
natürlichen Substrats Fibrinogen zu einem Gerinnsel oder durch die Freisetzung
eines Chromophors aus einem chromogenen Substrat bestimmt. In Modifikation
dieser APTT nach Amer, L. et al. (1990) wird gleichzeitig mit den Calciumionen
aktiviertes Protein C zugegeben. Da, wie oben beschrieben, APC die Cofaktoren
VIIIa und Va zerstört, kommt es zu einer Verzögerung der Thrombinbildung, die
abhängig ist von der Funktionalität des Protein C/Protein S Systems. Diese
Modifikation wird im folgenden mit APC-Zeit (APCT) bezeichnet.
Die APCT in ihrer bisher genutzten Form ist nicht geeignet die erhöhte Stabilität
des Faktor V gegenüber APC spezifisch nachzuweisen (siehe Beispiel 1). In das
Meßergebnis gehen außer dem Protein C, das ja exogen in aktivierter Form
zugegeben wird, alle oben beschriebenen Faktoren aus der Probe ein, die die
Funktionalität des Protein C/Protein S-Systems beeinflussen. So kann eine
Mutation im Faktor V, speziell wenn der Patient diesbezüglich heterozygot ist,
nicht von einem Protein-S-Defekt oder -Mangel unterschieden werden. Ebenso
können Autoantikörper gegen Protein S oder Protein C diesen Effekt vortäuschen.
Der Erfindung lag somit die Aufgabe zugrunde, Verfahren zu finden, mit dem
Faktor V, der eine erhöhte Stabilität gegenüber dem Abbau durch APC aufweist,
nachgewiesen werden kann.
Die Lösung der Aufgabe erfolgt durch die Bereitstellung der in den Patent
ansprüchen beschriebenen Ausführungsformen.
Es wurde überraschenderweise gefunden, daß bei Verdünnung von Plasmen mit
einem Faktor V armen Reagenz, das Protein S und die Gerinnungsfaktoren X und
Prothrombin enthält, der Einfluß von Protein S eliminiert werden kann, während
die veränderte Stabilität des Faktor V gegenüber APC weiterhin entscheidend für
das Meßergebnis ist. Darüber hinaus können in diesem Verfahren heparinisierte
Proben und auch Proben von Patienten unter Marcumar-Therapie verwendet
werden, was in dem bisherigen funktionellen Tests nicht möglich ist.
Im einfachsten Fall handelt es sich bei dem Reagenz mit dem die Probe verdünnt
wird um humanes Faktor V-Mangelplasma. Nach Aktivierung des Faktor V der
Probe wird dieser durch aktiviertes Protein C oder eine sich gleichsinnig
verhaltende Protease zerstört und die residuale Faktor Va-Aktivität bestimmt.
Die Aktivierung des Faktor V der Probe, dessen Zerstörung und die Nachweis
reaktion beruhen im einfachsten Fall auf der Auslösung der Gerinnung in der
Probe unter Zusatz von aktiviertem Protein C (APC). Der Anteil des Faktor V-
Mangelplasmas (F.V-MP) am Probenvolumen muß für das jeweilige Testverfahren
optimiert werden (siehe Beispiele) und liegt bei 50-95%, vorzugsweise jedoch
im Bereich von 60-80%. Für den gesamten Testansatz bedeutet dies, daß der
Anteil des Probenvolumens höchstens 20%, vorzugsweise jedoch kleiner oder
gleich 10% beträgt.
Das erfindungsgemäße Verfahren kann somit auf einer Modifikation der APTT
beruhen, in der zunächst die Gerinnungsfaktoren XII, XI und IX aktiviert werden.
Durch Zugabe eines Gemisches von APC und Calciumchlorid wird die Bildung
von Thrombin ausgelöst, das Faktor V aktiviert. Durch die gleichzeitige Anwe
senheit von APC wird Faktor Va inaktiviert, wodurch die Geschwindigkeit der
Gerinnselbildung verlangsamt wird. Mit Erhöhung des Anteils an Faktor V-
Mangelplasma am Probenvolumen wird durch den Faktor V-Mangelplasma
einerseits die Gerinnungszeit verlängert, andererseits aber der Einfluß eines
Protein S-Mangels verringert. So wird in Beispiel 2 gezeigt, daß ab ca. 70%
Anteil Faktor V-Mangelplasma am Probenvolumen die Gerinnungszeiten eines
normalen Plasmas und eines Protein S-Mangelplasmas gleich sind, während in
einem homozygoten oder heterozygoten Plasma, das einen veränderter Faktor V
mit einer erhöhten Stabilität gegenüber APC aufweist, die Differenzen der
Gerinnungszeiten relativ zum normalen Plasma eher noch zunimmt. Damit
verbessert sich die Differenzierbarkeit beider Effekte gegenüber dem bisherigen
Stand der Technik erheblich.
Anstelle der APTT kann auch die Thromboplastin-Zeit (PT) angewandt werden
(Beispiel 3). Reagenzien für die PT enthalten ein Gemisch aus Thromboplastin,
einem membrangebundenen Cofaktor, Phospholipide und Calciumchlorid. Nach
Zugabe zur Probe wird Faktor VII zunächst autokatalytisch gespalten zu Faktor
VIIa. Faktor VIIa zusammen mit Thromboplastin als Cofaktor sorgt dann für die
Aktivierung von Faktor X und dieser für die Bildung von Thrombin, das wieder
Faktor V aktiviert. Wird gleichzeitig mit dem Thromboplastin-Reagenz aktiviertes
Protein C zugegeben, so wird auch hier die Gerinnungszeit verlängert. Ist jedoch
Faktor Va schwerer proteolytisch angreifbar, ist diese Verlängerung weniger
ausgeprägt. Da die Gerinnungszeiten durch diesen kurzen Aktivierungsweg sehr
kurz sind, wurde in Beispiel 3 der Gehalt an Thromboplastin ausverdünnt. Die
daraus resultierende Verlängerung der Gerinnungszeit führt zu einer noch
deutlicheren Verlängerung der Gerinnungszeit in Anwesenheit von APC. Dadurch
wird die Differenzierbarkeit (Signal/Hintergrund-Verhältnis) zwischen normalem
und veränderten Faktor V verbessert. Beispiel 3 zeigt auch, daß durch eine
erhöhte Verdünnung der Probe mit Faktor V-Mangelplasma der Einfluß eines
Protein S-Mangels neutralisiert wird. Im Gegensatz zur modifizierten APTT wird
jedoch eine höhere Verdünnung der Probe benötigt.
Das erfindungsgemäße Verfahren kann auch in einer Modifikation der RVVT
("Russell Viper Venom Time") angewandt werden. Die RVVT beruht auf der
Verwendung von Enzymen aus dem Schlangengift von Vipera russellii. Dieses
enthält Proteasen, die die humanen Gerinnungsfaktoren X und V durch proteo
lytische Spaltung aktivieren. Dieses an sich bekannte Verfahren umgeht somit
den extrinsischen und intrinsischen Weg der Gerinnung und wird zur Erfassung
von Faktor X-, Faktor V- und Prothrombin-Mangel, aber auch in der Lupus-
Diagnostik verwendet (Thiagarajan, P. et al., 1986). Neuerdings wird das Verfah
ren in Verbindung mit APC gleichsinnig wie der auf der APTT-basierende Test zur
Bestimmung von Störungen des Protein C/Protein S-Systems eingesetzt. Aber
auch für dieses Verfahren gilt, daß neben dem Faktor V-Defekt sich auch andere
Störungen, etwa ein Protein S-Mangel, gleichsinnig verhalten und daher nicht in
diesem Test voneinander unterschieden werden können. Beispiel 4 zeigt, daß die
Anwendung des erfindungsgemäßen Verfahren demgegenüber eine spezifische
Differenzierung erlaubt, wobei vorzugsweise der Anteil des F.V-MP am
Probenvolumen 75% beträgt.
Zusätzlich zur spezifischeren Differenzierung zeigt Beispiel 5, daß durch Zusatz
von Heparin-neutralisierenden Substanzen zum F.V-MP Heparin in der Probe
neutralisiert werden kann. Dies ist ein weiterer wesentlicher Vorteil der Methode
gegenüber dem Standardverfahren (APCT). Denn gerade bei Patienten mit einer
Thrombose besteht ein großes Interesse daran, die Ursache des Vorfalls zu
ergründen. Diese Patienten stehen aber meist unter Antikoagulantien, wie eben
Heparin.
Nach Heparin werden viele Patienten nach einer Thrombose auf Marcumar-
Therapie gesetzt. Marcumar ist ein Vitamin K-Antagonist und führt zur unvoll
ständigen Synthese von Gerinnungsfaktoren. Die Untersuchungen in Beispiel 6
legen die Vermutung nahe, daß mit dem erfindungsgemäßen Verfahren auch in
Patienten unter Marcumar-Therapie nunmehr ein F.V-Defekt nachzuweisen ist.
In Alternative zur Zugabe von aktiviertem Protein C, kann auch Protein C im nicht-
aktivierten Zustand zugegeben werden oder das Protein C des Faktor V-Mangel
plasmas genutzt und aktiviert werden. Die geschieht beispielsweise durch Zugabe
von Protein C-Aktivatoren aus Schlangengiften der Gattung Agkistrodon, wie auch
in deutschen Patentanmeldung P 44 27 785.7 aufgeführt (siehe Beispiel 7).
Bei Anwendung von traditionellen Gerinnungsverfahren, wie der APTT, der PT
und der RVVT, erfolgt die Bestimmung der Gerinnungsaktivität durch
mechanische, mechano-optische oder optische Detektion der Gerinnselbildung.
Das erfindungsgemäße Verfahren kann auch mit moderneren chromogenen
Verfahren, beispielsweise durch Bestimmung des Umsatzes eines chromogenen
Thrombinsubstrates kombiniert werden.
Anstelle von F.V-Mangelplasma kann ein Reagenziensystem aus gereinigten
Gerinnungsfaktoren verwendet werden. Das Prinzip der Methode beruht in
Analogie zur ersten Variante darauf, daß Faktor Va der Geschwindigkeits
limitierende Faktor der Prothrombin-Aktivierung ist. Durch die gleichzeitige
Anwesenheit von APC wird der aktivierte Faktor V zerstört und dadurch die
Gerinnungszeit verlängert. Die Probe wird somit mit einem Faktor V-abhängigen
Prothrombin Aktivator sowie einem Faktor V-Aktivator, beispielsweise aus dem
Schlangengift von Vipera russellii, in Kontakt gebracht und die Aktivierung von
zugegebenem Prothrombin bestimmt, wozu in der Gerinnungsdiagnostik bekannte
Verfahren, wie etwa die Umsetzung von Fibrinogen oder bei chromogenen
Verfahren die Umsetzung eines chromogenen Thrombinsubstrates zur Messung
verwendet werden.
Es ist sinnvoll, dem Testansatz für die Gerinnungsenzyme wichtige Cofaktoren
wie Calciumchlorid und Phospholipide zuzusetzen. Zur Ausblendung von Lupus
anticoagulant aus dem Plasma ist es weiterhin sinnvoll, Phospholipide in einer
hohen Konzentration, bevorzugterweise zwischen 0,3 und 0,001%, besonders
bevorzugterweise zwischen 0,001 und 0,01%, zuzusetzen. Zur Entfaltung der
Protein Ca-Aktivität sollte weiterhin Phosphatidylethanolamin anteilig in den
Phospholipiden enthalten sein (Horie, S. et al., 1994). Zur Vermeidung von
Störungen der Meßergebnisse aufgrund von Protein S-Mangel und/oder -Defekt
in der Probe wird weiterhin sinnvollerweise ein Reagenzsystem Protein S im
Konzentrationsbereich von 0,1-5 E/ml (bezogen auf den Testansatz), besonders
bevorzugt im Bereich von 1-2 E/ml, enthalten. Schließlich muß aktiviertes
Protein C zugesetzt werden, über dessen Konzentration das Meßsignal letztlich
gesteuert wird. Üblicherweise wird die APC-Konzentration im Testansatz im
Bereich von 0,01-1 E/ml liegen.
Dieses Reagenziensystem umfaßt somit mindestens die Komponenten Faktor X,
Protein S, Prothrombin, die zur Gerinnung notwendigen Phospholipide,
Calciumchlorid, aktiviertes Protein C bzw. alternativ nicht-aktiviertes Protein C
und getrennt davon einen Protein C-Aktivator. Das Reagenziensystem kann
entweder kombiniert als Monoreagenz oder zur Erhöhung der Stabilität in
getrennter Form zur Anwendung kommen, wie beispielsweise als Reagenz 1, das
Faktor X, Protein S, Prothrombin, Phospholipide beinhaltet und als Reagenz 2,
das aktiviertes Protein C und Calciumchlorid beinhaltet. Die Probe wird mit dem
Reagenziensystem gemischt. Die Gerinnung wird ausgelöst entweder über die
Aktivierung der Kontaktphase nach Art der APTT, durch direkte Aktivierung von
Faktor X und/oder Faktor V mittels RVV oder durch spurenweise Aktivierung von
Thrombin durch Zugabe von Prothrombin spaltenden Enzymen wie beispielsweise
aktivem Faktor X oder Ecarin aus dem Schlangengift von Echis carinatus. Bei der
Aktivierung mittels RVV bzw. Ecarin werden diese Enzyme vorzugsweise zusam
men mit APC und Calciumchlorid in Reagenz 2 als Startreagenz verwendet. Die
Detektion erfolgt dann vorzugsweise durch Bestimmung der Thrombinbildung
durch Umsatz eines Thrombin-spezifischen, chromogenen Substrats.
Weiterhin kann anstelle von aktiviertem Protein C nicht-aktiviertes Protein C
verwendet werden, welches erst im Testansatz durch geeignete Aktivatoren,
beispielsweise aus dem Schlangengift der Gattung Agkistrodon, erhältlich unter
dem Handelsnamen Protac®, aktiviert wird. Ein solches Reagenzsystem umfaßt
dann beispielsweise Reagenz 1 (beinhaltend Protein S, Faktor X, Protein C,
Prothrombin und Phospholipide) sowie Reagenz 2 (beinhaltend Protac®, RVV,
Calciumchlorid und ein Thrombin-Substrat). Das Reagenz 1 kann auch nur ein
Faktor V-Mangelplasma sein, wobei dann aber die Phospholipide dem Reagenz 2
zugeteilt werden. Um den Effekt des endogenen Protein C zu verstärken, kann
das Reagenz 2 auch geteilt und nach einer Vorinkubation des Gemisches aus
Probe und Reagenz 1 mit einem Reagenz 2a aus Protac® und Phospholipiden
zur Aktivierung des Protein C die Gerinnungsreaktion und Nachweisreaktion der
Faktor V-Stabilität durch Zusatz von Reagenz 2b, beinhaltend RVV und Calcium
chlorid ausgelöst werden. Die Zugabe der Phospholipide ist dabei willkürlich und
die weitere Zugabe eines chromogenen Substrats nur abhängig von der
gewünschten Auswertetechnik.
Weiterhin kann in einem Reagenziensystem aus gereinigten Faktoren, Faktor X
durch nicht-humane Faktor Va-abhängige Prothrombin-Aktivatoren, etwa aus
Schlangengiften (zur Übersicht siehe: Rosing, J. and Tans, G., 1991), ersetzt
werden. Dies ist ebenfalls in Kombination mit aktiviertem Protein C oder mit im
Testansatz aktiviertem Protein C dazu geeignet, spezifisch einen Faktor V in
Plasmaproben nachzuweisen, der eine erhöhte Stabilität gegenüber dem
proteolytischen Abbau durch aktiviertes Protein C besitzt. So könnte ein
Reagenziensystem aus folgenden Komponenten bestehen: Reagenz 1 aus
Protein S, Protein C, Prothrombin und Phospholipiden sowie Reagenz 2 aus
Protac®, RVV oder RVV-V (die nur Faktor V aktivierenden Protease aus RVV),
Faktor V-abhängigem Prothrombin-Aktivator, Calciumchlorid und einem
Thrombin-Substrat, bzw. das Thrombin-Substrat als Reagenz 3.
Reagenziensysteme, die auf einer APTT basieren, sind von der Konzentration an
Faktor VIII in der Probe abhängig, wie in Beispiel 8 aufgeführt ist. Es wurde
überraschenderweise gefunden, daß ein Faktor V-Mangelplasma, das Faktor VIII
in physiologischen Konzentrationen (0,7-1,4 Einheiten/ml) enthält, gegenüber
einem Mangelplasma, das keinen Faktor VIII enthält, weniger von der Konzen
tration an Faktor VIII der Probe abhängig ist. Damit wird die Differenzierung
zwischen normalen Plasmen mit hohem Faktor VIII-Gehalt und Plasmen mit
normalem Faktor VIII-Gehalt aber mit Faktor V-Leiden verbessert. In Reagenzien
systemen, die auf einer APTT basieren werden daher bevorzugterweise Faktor V-
Mangelplasma und/oder Reagenzien verwendet, die Faktor VIII in Konzentra
tionen zwischen 0 und 4 E/ml, besonders bevorzugterweise im Konzentrations
bereich zwischen 0,7 und 1,3 E/ml enthalten, bzw. durch Zusatz substituiert
werden.
Die folgenden Beispiele sollen die Erfindung erläutern, jedoch die Ansprüche in
keiner Weise einschränken.
Verwendete Abkürzungen:
APCT | |
aktivierte Protein C Zeit | |
APCV | aktivierte Protein C Zeit unter Mischung der Probe mit Faktor V-Mangelplasma |
APTT | aktivierte, partielle Thromboplastin Zeit |
Arg | Arginin |
F.V-MP | humanes Faktor V-Mangelplasma |
F.V-Leiden | Aminosäureaustausch Arg → Gln an Position 506 im Faktor V |
Gln | Glutamin |
PC-MP | humanes Protein C-Mangelplasma |
PS-MP | humanes Protein S-Mangelplasma |
RVVT | Russell Viper Venom Time |
SHP | Standard-Human-Plasma (ein Pool von normalem, humanem Plasma) |
Tris | Tris-(hydroxymethyl)-aminomethan |
Die Bestimmung der Gerinnungszeit erfolgte an einem automatischen Koagulo
meter (Behring Fibrintimer A, Fa. Behringwerke; Fa. Behringwerke AG, Marburg).
Alle Reagenzien waren von der Fa. Behringwerke AG. Als Plasmapool normaler
Blutspender wurde SHP verwendet.
Die Bestimmung der APTT erfolgt nach Vorschrift: 1 Abfüllung Pathromtin® für
5 ml, ein Phospholipidgemisch aus humaner Plazenta, wurde in 5 ml Kaolin
suspension als Oberflächenaktivator gelöst. Die Calciumchloridlösung (25 mM)
wurde vor Gebrauch auf +37°C erwärmt.
In ein Meßröhrchen wurden nacheinander pipettiert
100 µl Pathromtin®
100 µl Plasmaprobe.
100 µl Pathromtin®
100 µl Plasmaprobe.
Anschließend wurde bei +37°C für 2 Minuten inkubiert und durch Zugabe von
100 µl Calciumchlorid-Lösung die Gerinnungszeit gestartet. Die Gerinnungszeit
wurde bei 405 nm bestimmt.
Die Bestimmung der APCT erfolgte mit den APC-Sensitivitätsreagenzien der Fa.
Behringwerke. Wie bei der APTT wurde das Aktivatorreagenz hergestellt. Das
Startreagenz aus Calciumchlorid und aktiviertem Protein C wurde in 5 ml
destilliertem Wasser gelöst und vor Gebrauch auf +37°C erwärmt.
In ein Meßröhrchen wurden nacheinander pipettiert
100 µl Pathromtin®
100 µl Plasmaprobe.
100 µl Pathromtin®
100 µl Plasmaprobe.
Anschließend wurde bei +37°C für 2 Minuten inkubiert und durch Zugabe von
100 µl Startreagenz die Gerinnungszeit gestartet. Die Gerinnungszeit wurde bei
405 nm bestimmt.
Die APTT und APCT wurde in folgenden humanen Citrat-Plasmen bestimmt: in
einem Pool von normalen Blutspendern (SHP), in Plasmen mit einem Mangel an
Protein C (PC-MP) bzw. Protein S (PS-MP), sowie in einem Plasma mit einem
homozygoten F.V-Leiden-Defekt. Zur Simulation eines heterozygoten Defekts, bei
dem ca. 50% des plasmatischen Faktor V intakt bzw. in der F.V-Leiden-Form
vorliegen, wurde das homozygote F.V-Leiden Plasma 1 : 1 mit SHP gemischt.
In Tabelle 1 sind die erhaltenen Gerinnungszeiten sowie die Differenzen der
APCT relativ zu SHP dargestellt. Für die APTT lagen die Werte alle innerhalb des
Normbereichs ( 40 sec), eine Voraussetzung zur Durchführung der APCT. In der
APCT sind solche Gerinnungszeiten pathologisch, die gegenüber dem normalen
Plasma verkürzt sind. Dies trifft für Protein C Mangel nicht zu. Da in der APCT
das aktivierte Protein C exogen zugefügt wird, kann das Protein C der Probe den
Test nicht beeinflussen. Hingegen führt Protein S-Mangel zu einer Verkürzung der
Gerinnungszeit, die in diesem Fall sogar etwas stärker ausgeprägt ist als bei
einem heterozygoten F.V-Leiden Defekt. Bei einem homozygoten F.V-Leiden
Defekt ist die Verkürzung in der APCT am stärksten ausgeprägt. Die Unter
schiede zwischen Protein S-Mangel und einem homozygoten F.V-Leiden Defekt
sind nur schwach ausgeprägt. Diese Unterschiede werden in der Praxis noch
weiter verwischt, indem abhängig von der Zeitdauer der Blutentnahme bis zur
Bestimmung kontinuierlich die Faktoren V und VIII denaturieren. Dies führt zu
einer Verlängerung der Gerinnungszeit, die der beobachteten Verkürzung der
Gerinnungszeit entgegenwirkt.
Das bisher zur Verfügung stehende Verfahren, d. h. die APCT ist somit nicht
geeignet, einen F.V-Leiden-Defekt oder einen ähnlichen Defekt im Faktor V
spezifisch nachzuweisen, der zu einer erhöhten Stabilität-gegenüber aktiviertem
Protein C führt.
Die Bestimmung der Gerinnungszeit erfolgte an einem automatischen Koagulo
meter (Behring Fibrintimer A, Fa. Behringwerke; Fa. Behringwerke AG, Marburg).
Alle Reagenzien waren von der Fa. Behringwerke AG. Als Plasmapool normaler
Blutspender wurde SHP verwendet.
Für die Bestimmung der Gerinnungszeit wurde 1 Abfüllung Pathromtin® für 5 ml
in 5 ml Kaolinsuspension gelöst. Das Startreagenz aus den APC-Sensitivitäts
reagenzien (beinhaltend Calciumchlorid und aktiviertes Protein C) wurde in 5 ml
destilliertem Wasser gelöst und vor Gebrauch auf +37°C erwärmt. Faktor V-
Mangelplasma wurde in 1 ml destilliertem Wasser gelöst.
In ein Meßröhrchen wurden nacheinander pipettiert
x µl Plasmaprobe
y µl F.V-MP
100 µl Pathromtin®.
y µl F.V-MP
100 µl Pathromtin®.
Anschließend wurde bei +37°C für 3 Minuten inkubiert und durch Zugabe von
100 µl Startreagenz die Gerinnungszeit gestartet. Die Gerinnungszeit wurde bei
405 nm bestimmt.
Die Volumina x und y wurden so gewählt, daß das Gesamtvolumen (x+y) exakt
100 µl betrug. Die Gerinnungszeiten wurden in folgenden humanen Citrat-
Plasmen bestimmt: in einem Pool von normalen Blutspendern (SHP), in Plasmen
mit einem Mangel an Protein C (PC-MP) bzw. Protein S (PS-MP), sowie in einem
Plasma mit einem homozygoten F.V-Leiden-Defekt. Zur Simulation eines hetero
zygoten Defekts, bei dem ca. 50% des plasmatischen Faktor V intakt bzw. in der
F.V-Leiden-Form vorliegen, wurde das homozygote F.V-Leiden Plasma 1 : 1 mit
SHP gemischt.
In Tabelle 2 sind die erhaltenen Gerinnungszeiten sowie die Differenzen der
Gerinnungszeiten relativ zu SHP aufgeführt. Mit steigendem Anteil von F.V-MP
am Probenvolumen werden die Gerinnungszeiten aufgrund des zunehmenden
Faktor V-Mangels länger. Während aber die Differenz zwischen SHP und PC-MP
nahezu unverändert bleibt, wird der Abstand zwischen SHP und PS-MP immer
kürzer und ab ca. 70%-igem Anteil von F.V-MP im Testansatz ist kein Unter
schied mehr zu vermerken. Der Protein S-Mangel in der Probe wird somit durch
das Protein S im F.V-MP ausreichend neutralisiert. Die Plasmen mit homozygo
tem bzw. (simulierten) heterozygotem F.V-Leiden Defekt verhalten sich jedoch
genau entgegengesetzt. Hier nimmt die Differenz der Gerinnungszeiten relativ zu
SHP zu.
Das erfindungsgemäße Verfahren erlaubt somit nicht nur PS-Mangel auszu
blenden, es verstärkt den durch F.V-Leiden verursachten Effekt sogar. Damit
werden auch Störungen durch längere Standzeiten der Plasmen nicht so leicht
wie in bisherigen Verfahren (Beispiel 1) zu einem Verwischen der Unterschiede
zwischen PS-Mangel und F.V-Defekt führen. Weiterhin ist zu erwarten, daß in
diesem Verfahren Autoantikörper gegen PS neutralisiert werden, da ja der PS-
Effekt eliminiert wird. Aber auch Autoantikörper gegen PC oder PC/PS-Phospo
lipid-Komplexe werden bei hoher Verdünnung der Probe mit dem F.V-MP allein
aufgrund der Verdünnung kaum noch zu bemerken sein.
rotein S-Mangelplasma, F.V-
L1/1 = Plasma mit homozygoten F.V-Leiden Defekt, F.V-L1/2 =
Plasma mit heterzygoten F.V-Leiden Defekt
Die Bestimmung der Gerinnungszeit erfolgte an einem automatischen
Koagulometer (Behring Fibrintimer A, Fa. Behringwerke; Fa. Behringwerke AG,
Marburg). Alle Reagenzien waren von der Fa. Behringwerke AG. Als Plasmapool
normaler Blutspender wurde SHP verwendet.
Für die Bestimmung der Gerinnungszeit wurde Thromboplasmin®, ein PT-Reagenz
aus humaner Plazenta, nach Vorschrift des Herstellers in destilliertem Wasser
gelöst und 1 : 2000 mit einem Puffer, bestehend aus 50 mM Tris/HCl, 0,01%
Phospholipon-25 (ein Phospholipid-Gemisch aus Sojabohnen), 10 mM Calcium
chlorid, 0,4 E/ml APC, pH 7,4 verdünnt. Das Reagenz wurde vor Gebrauch auf
+37°C erwärmt. Faktor V-Mangelplasma wurde in 1 ml destilliertem Wasser
gelöst.
In ein Meßröhrchen wurden nacheinander pipettiert
x µl Plasmaprobe
y µl F.V-MP
100 µl Pathromtin®.
y µl F.V-MP
100 µl Pathromtin®.
Anschließend wurde bei +37°C für 3 Minuten inkubiert und durch Zugabe von
100 µl Startreagenz die Gerinnungszeit gestartet. Die Gerinnungszeit wurde bei
405 nm bestimmt.
Die Volumina x und y wurden so gewählt, daß das Gesamtvolumen (x+y) exakt
100 µl betrug. Dabei entspricht die Variante mit 0 µl F.V-MP einer Variante der
APCT auf Basis der Thromboplastin-Zeit. Die Gerinnungszeiten wurden in den
gleichen Proben wie in Beispiel 2 bestimmt.
In Tabelle 3 sind die erhaltenen Gerinnungszeiten sowie die Differenzen der
Gerinnungszeiten relativ zu SHP aufgeführt.
Mit steigendem Anteil von F.V-MP am Probenvolumen werden die Gerinnungs
zeiten aufgrund des zunehmenden Faktor V-Mangels länger. Allerdings konnte
selbst bei einem bis zu 75%-igen Anteil an F.V-MP im Probenvolumen der
Protein S-Einfluß nicht vollständig neutralisiert werden, so daß noch höhere
Konzentrationen verwendet werden müssen. Weiterhin kann über die Wahl der
Puffersubstanzen, der Ionenstärken und der Phospholipid-Konzentration die
Reaktivität noch weiter optimiert werden. Trotzdem ist zu beobachten, daß sich
die Differenzen der Gerinnungszeiten zwischen PS-MP und F.V-Leiden, sowohl
homo- als auch heterozygot vergrößern, die Differenzierbarkeit zwischen beiden
Störungen des Protein C/PS-Systems mit dem erfindungsgemäßen Verfahren
auch auf Basis der PT somit verbessert wird.
tein S-Mangelplasma, F.V-
L1/1 = Plasma mit homozygoten F.V-Leiden Defekt, F.V-L1/2 =
Plasma mit heterzygoten F.V-Leiden Defekt
Die Bestimmung der Gerinnungszeit erfolgte an einem automatischen Koagulo
meter (Behring Fibrintimer A, Fa. Behringwerke; Fa. Behringwerke AG, Marburg).
Als RVV-Reagenz wurde das Reagenz LA-Confirm® der Fa. Gradipore,
Australien, verwendet. Alle anderen Reagenzien waren von der Fa. Behringwerke
AG.
Für die Bestimmung der Gerinnungszeit wurde 1 Abfüllung LA-Confirm® für 2 ml
mit 2 ml Startreagenz aus den APC-Sensitivitätsreagenzien (beinhaltend
Calciumchlorid und aktiviertes Protein C) gelöst und vor Gebrauch auf +37°C
erwärmt (= RVV/APC-Reagenz). Faktor V-Mangelplasma wurde in 1 ml
destilliertem Wasser gelöst.
In ein Meßröhrchen wurden nacheinander pipettiert
x µl Plasmaprobe
y µl F.V-MP
y µl F.V-MP
und durch Zugabe von 100 RVV/APC-Reagenz die Gerinnungszeit gestartet. Die
Gerinnungszeit wurde bei 405 nm bestimmt.
Die Volumina x und y wurden so gewählt, daß das Gesamtvolumen (x+y) exakt
100 µl betrug. Dabei entspricht die Variante mit 0 µl F.V-MP einer Variante der
APCT auf Basis des RVV-Assays. Die Gerinnungszeiten wurden in den gleichen
Proben wie in Beispiel 2 bestimmt.
In Tabelle 4 sind die erhaltenen Gerinnungszeiten sowie die Differenzen der
Gerinnungszeiten relativ zu SHP aufgeführt. Wie in den anderen Testvarianten
(Beispiele 2 und 3) werden die Gerinnungszeiten mit steigendem Anteil von F.V-
MP am Probenvolumen verlängert. Protein C-Mangelplasma ist immer gegenüber
SHP verlängert. Die Differenz zwischen SHP und Protein S-Mangelplasma wird
mit steigendem Anteil an F.V-MP geringer, der Effekt des F.V-Leiden hingegen
größer. Ähnlich wie bei der Testvariante auf Basis der PT (Beispiel 3), wird der
Protein S-Mangel mit den hier aufgeführten Anteilen an F.V-MP nicht vollständig
neutralisiert, so daß der Anteil an F.V-MP noch größer 70% gewählt werden
muß. Aber die Differenzen zwischen einem Plasma mit F.V-Leiden, ob homo-
oder heterozygot, mit Protein S-Mangel oder -Defekt, verstärken sich, so daß
auch auf der Basis der RVVT das erfindungsgemäße Verfahren zu einer besseren
Differenzierung eines gegenüber aktiviertem Protein C stabileren Faktors V von
anderen Störungen des Protein C/Protein S-Systems führt.
Protein S-Mangelplasma, F.V-
L1/1 = Plasma mit homozygoten F.V-Leiden Defekt, F.V-L1/2 =
Plasma mit heterzygoten F.V-Leiden Defekt
Heparin wurde von Hoffmann-La Roche, Grenzach-Wyhlen, bezogen (Lquemin®
25 000), Polybren von der Fa. Ega-Chemie, Steinheim. Die übrigen Reagenzien
und Geräte waren von der Fa. Behringwerke AG.
Standardhumanplasma bzw. ein Plasma mit einem Faktor V-Leiden Defekt wurde
mit Heparin versetzt und die Gerinnungszeiten, wie unter Beispiel 2 aufgeführt,
mit 75% Anteil F.V-MP am Probenvolumen im erfindungsgemäßen Verfahren
bestimmt. Zur Neutralisierung von Heparin in der Probe wurde das Faktor V-
Mangelplasma zusätzlich mit 10 pg/ml Polybren versetzt.
In Tabelle 4 sind die erhaltenen Gerinnungszeiten in Anwesenheit von 0 bis 2
E/ml Heparin in den verschiedenen Testvarianten aufgeführt. Ohne Heparin-
neutralisierenden Zusatz zum F.V-MP weichen die Gerinnungszeiten bereits in
Anwesenheit oberhalb von 0,2 E/ml Heparin deutlich von der Probe ohne Heparin
ab. Durch Zusatz von 10 µg/ml Polybren zum F.V-MP kann die Bestimmung des
Faktor V-Defekts selbst in Anwesenheit bis zu 2 E/ml Heparin erfolgen. Damit ist
im Gegensatz zum bisherigen Stand der Technik die Bestimmung des F.V-Leiden
Defekts auch in heparinisierten Proben möglich.
Von 9 Plasmen von Patienten, die weder Marcumar noch Heparin erhielten sowie
von 6 Plasmen von Patienten nach Thrombosen unter Marcumar-Therapie wurde
die APCT entsprechend Beispiel 1 und die APCV mit einem F.V-MP Anteil am
Probenvolumen von 75% entsprechend Beispiel 2 bestimmt.
In Tabelle 6 sind die erhaltenen Gerinnungszeiten aufgeführt. Die Ergebnisse
wurden in % relativ zu den Gerinnungszeiten die mit SHP erhalten wurden
(= 100%) umgerechnet. Positiv sind in beiden Tests solche Proben, die unterhalb
der 100%-Grenze liegen. Die nicht-marcumarisierten Plasmen wurden in beiden
Tests positiv, d. h. unterhalb der 100%-Grenze gefunden, während alle marcuma
risierten Plasmen in der APCT negativ, im erfindungsgemäßen Verfahren (APCV)
jedoch 5 von 6 Plasmen deutlich unterhalb dieser Grenze lagen. Durch die
Mischung mit dem F.V-MP werden in den marcumarisierten Plasmen alle
defekten, Vitamin-K-abhängigen Enzyme substituiert. Auch bei Mischung der
Plasmen mit normalem Plasma (Tabelle 6) werden die Gerinnungszeiten verkürzt.
Dies genügt jedoch nicht, um mit derart substituierten Proben in der APCT
positive Proben zu identifizieren. Das erfindungsgemäße Verfahren ist daher dem
bisherigen Stand der Technik überlegen.
Die Bestimmung der Gerinnungszeit erfolgte an einem automatischen Koagulo
meter (Behring Fibrintimer A, Fa. Behringwerke; Fa. Behringwerke AG, Marburg).
Alle Reagenzien waren von der Fa. Behringwerke AG.
Für die Bestimmung der Gerinnungszeit wurde 1 Abfüllung Protein-Aktivator
Reagenz für Protein C-Reagenzien der Fa. Behringwerke mit 1 Abfüllung
Pathromtin® SL (ein APTT-Reagenz auf Silica-Basis; 5,5 ml) gelöst. Dieses
Reagenz und die Calciumchloridlösung (25 mM) wurden vor Gebrauch auf +37°C
erwärmt. Faktor V-Mangelplasma wurde in 1 ml destilliertem Wasser gelöst.
In ein Meßröhrchen wurden nacheinander pipettiert
x µl Plasmaprobe
y µl F.V-MP
100 µl Protein C-Aktivator/Pathromtin® SL-Gemisch.
y µl F.V-MP
100 µl Protein C-Aktivator/Pathromtin® SL-Gemisch.
Anschließend wurde bei +37°C für 3 Minuten inkubiert und durch Zugabe von
100 µl Startreagenz die Gerinnungszeit gestartet. Die Gerinnungszeit wurde bei
405 nm bestimmt.
Die Volumina x und y wurden so gewählt, daß das Gesamtvolumen (x+y) exakt
100 µl betrug. Dabei entspricht die Variante mit 0 µl F.V-MP einem neuen Test
zum Screening auf Störungen des Protein C/Protein S-Systems, wie in der
deutschen Patentanmeldung P 44 27 785.7 beschrieben. Die Gerinnungszeiten
wurden in den gleichen Proben wie in Beispiel 2 bestimmt.
In Tabelle 7 sind die erhaltenen Gerinnungszeiten sowie die Differenzen der
Gerinnungszeiten relativ zu SHP aufgeführt. Wie in den anderen Testvarianten
(Beispiele 2 bis 4) werden die Gerinnungszeiten mit steigendem Anteil von F.V-
MP am Probenvolumen verlängert. Die Differenzen zwischen SHP und Protein
S-Mangelplasma werden mit steigendem Anteil an F.V-MP geringer, der Effekt
des F.V-Leiden hingegen größer. Bei einem F.V-MP Anteil von 70% am Proben
volumen ist der Effekt des Protein-S Defizits bereits neutralisiert. Die Ergebnisse
sind somit den unter Beispielen 2 bis 4 gezeigten Anwendungen des erfindungs
gemäßen Verfahrens ebenbürtig, obwohl in diesem Fall nicht aktiviertes Protein C
zugegeben wurde, sondern alternativ nicht-aktiviertes Protein C erst im Testan
satz aktiviert wurde.
n C-Mangelplasma, PS-MP = Protein S-Mangelplasma, F.V-
L1/1 = Plasma mit homozygoten F.V-Leiden Defekt, F.V-L1/2 =
Plasma mit heterzygoten F.V-Leiden Defekt
Die Bestimmung der Gerinnungszeit erfolgte an einem automatischen
Koagulometer (Behring Fibrintimer A, Fa. Behringwerke; Fa. Behringwerke AG,
Marburg). Alle Reagenzien waren von der Fa. Behringwerke AG. Als Faktor VIII-
Quelle wurde Beriate®, ein humanes Faktor VIII-Konzentrat der Fa. Behringwerke
verwendet.
Die Testdurchführung erfolgte nach dem in Beispiel 2 beschriebenen Verfahren,
wobei ein Mischungsverhältnis von Probe und Faktor V-Mangelplasma von 25 : 75
gewählt wurde. Als Faktor V-Mangelplasma wurde ein hitzeinaktiviertes humanes
Plasma verwendet. Bei dieser Inaktivierung wird sowohl Faktor V, als auch Faktor
VIII zerstört. Zum Vergleich wurde dieses Plasma nach Einlösen mittels Beriate®
mit Faktor VIII auf eine Konzentration von 1 Einheit pro ml substituiert. Weiterhin
wurde SHP mit Faktor VIII aus Beriate® substituiert, so daß der Faktor VIII-Gehalt
zwischen 1 und 4 Einheiten/ml betrug. Zum Vergleich wurde ein humanes Plasma
mit heterozygotem Faktor V-Leiden Defekt im erfindungsgemäßen Verfahren
bestimmt.
In Tabelle 8 sind die Gerinnungszeiten sowie die Differenzen der Gerinnungs
zeiten relativ zu SHP aufgeführt, die mit dem Faktor V-Mangelplasma ohne bzw.
mit Faktor VIII-Substitution erhalten wurden. Bei Verwendung des Faktor VIII-
freien Mangelplasmas werden im normalen Plasma mit steigendem Faktor-VIII-
Gehalt des Plasmas die Gerinnungszeiten verkürzt und nähern sich denen an, die
mit einem Plasma mit Faktor V-Leiden Defekt, aber normalem Faktor VIII-Gehalt
erhalten werden. Enthält das Faktor V-Mangelplasma hingegen bereits 1 E/ml
Faktor VIII, so ist die Verkürzung der Gerinnungszeit in Abhängigkeit vom Faktor
VIII-Gehalt der Probe vernachlässigbar.
Dies zeigt, daß in einem auf einer APTT basierenden Testaufbau durch Zusatz
von Faktor VIII bzw. bei Verwendung von Faktor VIII-haltigen Reagenzien eine
falsch positive Identifizierung von Proben auf Grund erhöhter Faktor VIII Spiegel
vermieden werden kann.
sind die
Gerinnungszeiten für Plasma mit heterozygoten F.V-Leiden Defekt
(F.V-Leiden), sowie die Differenzen relativ zum normalen Plasma mit 1
E Faktor VIII/ml angegeben; Werte in Sekunden
Claims (43)
1. Verfahren zum qualitativen Nachweis und zur quantitativen Bestimmung der
Stabilität des aktivierten Gerinnungsfaktors V gegenüber proteolytischem
Abbau in einer Probe einer biologischen Flüssigkeit, das folgende Schritte
einschließt:
- a) Mischen der Probe mit einem Reagenz A, dessen Gehalt an funktionsfähigem Faktor V gegenüber normalem, humanen Plasma verringert ist,
- b) Zugabe eines Reagenz B zur Aktivierung des Faktor V der Probe,
- c) Zugabe eines Reagenz C zum proteolytischen Abbau des aktivierten Faktor V der Probe,
- d) Zugabe von Reagenzien zur Bestimmung der residualen Faktor Va- Aktivität,
wobei der Anteil des Probenvolumens am gesamten Testvolumen maximal
20%, vorzugsweise jedoch weniger oder gleich 10% beträgt.
2. Verfahren nach Anspruch 1, wobei es sich bei dem Reagenz A um Faktor V-
Mangelplasma humanen oder tierischen Ursprungs, bevorzugterweise
humanen Ursprungs handelt.
3. Verfahren nach mindestens einem der Ansprüche 1-2, wobei der Mangel
an Faktor V als ein funktioneller Mangel aufgefaßt wird und damit sowohl
Plasmen mit einem tatsächlich verringerten Gehalt an Faktor V verwendet
werden können, als auch Plasmen, die zwar Faktor V enthalten, dessen
Faktor V aber in dem angewandten Aktivierungsverfahren nicht aktivierbar
ist.
4. Verfahren nach Anspruch 3, wobei der verringerte Gehalt an Faktor V im
Plasma entweder auf einem genetischen Mangel oder Defekt des Spenders
beruht.
5. Verfahren nach Anspruch 3, wobei der verringerte Gehalt an Faktor V im
Plasma durch Adsorption an geeignete affine Bindungspartner, bevor
zugterweise an mit Antikörper gegen Faktor V beschichteten Trägermate
rialien, besonders bevorzugt durch Immunadsorption mittels monoklonaler
Antikörper gegen Faktor V erzeugt wurde.
6. Verfahren nach Anspruch 3, wobei der Faktor V des verwendeten Plasmas
durch Vorbehandlungen inaktiviert wurde, wobei besonders bevorzugt eine
Hitzebehandlung zur Denaturierung des Faktor V verwendet wird.
7. Verfahren nach Anspruch 3, wobei der funktionsfähige Faktor V des ver
wendeten Plasmas durch Vorbehandlungen mit proteolytischen Enzymen,
die spezifisch Faktor V oder Faktor Va inaktivieren, verringert wurde.
8. Verfahren nach Anspruch 3, wobei der im Plasma vorkommende Faktor V
nicht durch das Reagenz B aktivierbar ist.
9. Verfahren nach Anspruch 2, wobei der aktivierbare, funktionsfähige Gehalt
von Faktor V zwischen (1 bis 50%, bevorzugterweise jedoch weniger als 10%
des Gehalts eines humanen Plasmas beträgt.
10. Verfahren nach Anspruch 1 und 2, wobei der Anteil des Faktor V-Mangel
plasmas nach Mischung mit der Probe zwischen 50-95% beträgt,
bevorzugterweise jedoch im Bereich 60-80% liegt.
11. Verfahren nach Anspruch 1 und 2, wonach das Faktor V-Mangelplasma
Zusätze zur Neutralisierung von Heparin enthalten kann, wobei bevor
zugterweise Polybren in Konzentrationen zwischen 2 und 50 mg/l,
besonders bevorzugt im Bereich zwischen 10 und 20 mg/l verwendet wird.
12. Verfahren nach Anspruch 1, wobei es sich bei dem Reagenz, mit dem die
Probe gemischt wird, um Wasser, physiologische Kochsalzlösung, eine
geeignete Pufferlösung und/oder um einzelne oder um ein Gemisch von
Enzymen und Cofaktoren handelt, die nicht mit Faktor V identisch sind.
13. Verfahren nach Anspruch 12, wobei in dem Reagenz für die Reaktion
geeignete Konzentrationen an Protein S, vorzugsweise im Konzentra
tionsbereich - bezogen auf die Konzentration nach Mischung mit der Probe -
von 0,2-5 E/ml, besonders bevorzugt im Konzentrationsbereich 0,5-2 E/ml
enthalten sind.
14. Verfahren nach Anspruch 12, wobei in dem Reagenz für die Reaktion
geeignete Konzentrationen an Faktor X, vorzugsweise im Konzentrations
bereich - bezogen auf die Konzentration nach Mischung mit der Probe - von
0,2-5 E/ml, besonders bevorzugt im Konzentrationsbereich 0,5-2 E/ml
enthalten sind.
15. Verfahren nach Anspruch 12, wobei in dem Reagenz für die Reaktion
geeignete Konzentrationen an Prothrombin, vorzugsweise im Konzentra
tionsbereich - bezogen auf die Konzentration nach Mischung mit der Probe -
von 0,5-10 E/ml, besonders bevorzugt im Konzentrationsbereich 1,0-2
E/ml enthalten sind.
16. Verfahren nach Anspruch 12, wobei in den Reagenzien Phospholipide,
bevorzugterweise Gemische von Phosphatidylcholin, Phosphatidylserin und
Phosphatidylethanolamin in Konzentrationen enthalten sind, die bezogen
auf die Konzentration nach Mischung mit der Probe im Bereich von 0,3-
0,001%, bevorzugterweise im Bereich von 0,01-0,1% liegen.
17. Verfahren nach mindestens einem der Ansprüche 1 und 12-16, wobei ein
Reagenz zur Mischung der Probe eines oder mehrerer der unter Anspruch
13-16 genannten Zusätze enthält.
18. Verfahren nach Anspruch 1, wobei die Aktivierung des Faktor V der Probe
direkt oder indirekt erfolgen kann.
19. Verfahren nach Anspruch 18, wobei die Aktivierung des Faktor V direkt durch
Zugabe geeigneter aktivierender Enzyme humanen oder tierischen
Ursprungs erfolgen kann.
20. Verfahren nach Anspruch 19, wobei als Enzym humanen Ursprungs
bevorzugterweise Thrombin verwendet wird.
21. Verfahren nach Anspruch 19, wobei als Enzyme nicht-humanen Ursprungs
bevorzugterweise Faktor V-Aktivatoren aus Schlangengift, besonders
bevorzugt Faktor V-Aktivator aus dem Gift von Vipera russellii, verwendet
wird.
22. Verfahren nach Anspruch 18, wobei die indirekte Aktivierung des Faktor V
der Probe durch Auslösung der Gerinnungskaskade durch Aktivierung der
Kontaktphase mittels Oberflächenaktivatoren, Phospholipiden und
Calciumionen nach dem Prinzip der aktivierten, partiellen Thromboplastin-
Zeit erfolgen kann.
23. Verfahren nach Anspruch 18, wobei die indirekte Aktivierung des Faktor V
der Probe durch Auslösung der Gerinnungskaskade durch Zugabe von
Thromboplastin, Phospholipiden und Calciumionen nach dem Prinzip der
Thromboplastin-Zeit erfolgen kann.
24. Verfahren nach Anspruch 18, wobei die Aktivierung des Faktor V der Probe
indirekt durch Aktivierung von Prothrombin durch Zusatz von Thrombin
aktivierenden Substanzen, beispielsweise aus dem Schlangengift von Echis
carinatus erfolgen kann.
25. Verfahren nach Anspruch 1, wonach der aktivierte Faktor V der Probe durch
Zugabe eines proteolytischen Enzyms humanen oder tierischen Ursprungs
erfolgt.
26. Verfahren nach Anspruch 25, wobei der Abbau des aktivierten Faktor V
durch humanes Protein C erfolgt.
27. Verfahren nach Anspruch 26, wobei das humane Protein C bereits in
aktivierter Form zum Testansatz gegeben wird, bevorzugterweise in
Konzentration - bezogen auf den Testansatz von 0,02-1 E/ml, besonders
bevorzugterweise von 0,05-0,15 E/ml.
28. Verfahren nach mindestens einem der Ansprüche 2 und 26, wobei das
humane Protein C in nicht-aktivierter Form zugegeben wird oder das Protein
C im Faktor V Mangelplasma erst im Testansatz aktiviert wird.
29. Verfahren nach mindestens einem der Ansprüche 1 und 28, wonach ein
Protein C aktivierendes Enzym in mindestens einem der Reagenzien
enthalten ist, das mit der Probe und dem humanen, nicht-aktivierten Protein
C in Kontakt kommt und dieses aktiviert.
30. Verfahren nach Anspruch 29, wobei bevorzugterweise zur Aktivierung von
Protein C Enzyme aus dem Schlangengift der Gattung Agkistrodon
verwendet werden.
31. Verfahren nach Anspruch 1, wobei die Bestimmung der residualen Faktor
Va-Aktivität im Testansatz durch Bestimmung der Aktivierung von
Prothrombin zu Thrombin erfolgt.
32. Verfahren nach mindestens einem der Ansprüche 1 und 32, wobei die
Bestimmung der Thrombinaktivität durch Bestimmung der Umsetzung von
Fibrinogen an Hand mechanischer, optischer oder opto-mechanischer
Verfahren erfolgt und das Fibrinogen bevorzugterweise aus der Probe,
besonders bevorzugt aber aus dem Reagenz stammt, mit dem die Probe
gemischt wird.
33. Verfahren nach Anspruch 32, wobei die Bestimmung der Thrombinaktivität
durch Bestimmung der Umsetzung eines thrombinspezifischen,
chromogenen Substrats durch optische Detektion erfolgt.
34. Verfahren nach mindestens einem der Ansprüche 1, 12-17 und 31, wobei
die Spaltung von Prothrombin durch einen Faktor Va stimulierbaren Pro
thrombinaktivator erfolgt.
35. Verfahren nach Anspruch 34, wobei die eingesetzten Prothrombin
aktivatoren humanen und nicht-humanen Ursprungs sein können.
36. Verfahren nach Anspruch 35, wobei als humaner Prothrombinaktivator
Faktor X verwendet wird.
37. Verfahren nach Anspruch 35, wobei als nicht-humane Prothrombin
aktivatoren solche aus Rind verwendet werden.
38. Verfahren nach Anspruch 1, wobei die unter 1 genannten Schritte durch
Zeiträume zur Inkubation der entstandenen Gemische unterbrochen sein
können, beziehungsweise innerhalb der Schritte Inkubationsphasen
auftreten können.
39. Verfahren nach Anspruch 1, wobei durch Kombination der Reagenzien die
Probe mit nur wenigen, bevorzugterweise nur mit 2 Reagenzien, ganz
bevorzugterweise mit nur 1 Reagenz, das alle notwendigen Komponenten
enthält, in Kontakt gebracht wird.
40. Verfahren nach Anspruch 35, wobei als nicht-humane Prothrombinaktiva
toren solche aus Schlangengift, bevorzugt aus dem Gift von Notechis
scutatus scutatus, verwendet werden.
41. Verfahren nach Anspruch 3 bis 7, wobei das nach diesen Verfahren
hergestellte Faktor V Mangelplasma Faktor VIII in Konzentrationen zwischen
0 und 4 E/ml, besonders bevorzugterweise im Konzentrationsbereich
zwischen 0,7 und 1,3 E/ml enthält bzw. durch Zusatz von gereinigten Faktor
VIII auf diese Konzentrationen substituiert wird.
42. Verfahren nach Anspruch 12, wobei in den Reagenzien Faktor VIII enthalten
ist, die bezogen auf die Konzentration nach Mischung mit der Probe im
Bereich von 0,01 bis 2 Einheiten/ml, bevorzugterweise im
Konzentrationsbereich von 0,7 bis 1,3 Einheiten/ml beträgt, wobei 1 Einheit
als diejenige funktionelle Menge definiert ist, die in einem normalen, human
Plasma in 1 ml vorhanden ist.
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Family
ID=6532929
Family Applications (2)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE19506263A Withdrawn DE19506263A1 (de) | 1994-11-10 | 1995-02-23 | Verfahren zum spezifischen Nachweis eines Gerinnungsfaktors V mit einer erhöhten Stabilität gegenüber aktiviertem Protein C im aktivierten Zustand |
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Family Applications After (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE59508974T Expired - Lifetime DE59508974D1 (de) | 1994-11-10 | 1995-10-13 | Verfahren zum spezifischen Nachweis eines aktivierten Gerinnungsfaktors V mit einer erhöhten Stabilität gegenüber aktiviertem Protein C |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
DE (2) | DE19506263A1 (de) |
-
1995
- 1995-02-23 DE DE19506263A patent/DE19506263A1/de not_active Withdrawn
- 1995-10-13 DE DE59508974T patent/DE59508974D1/de not_active Expired - Lifetime
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
DE59508974D1 (de) | 2001-02-22 |
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