DE102009022351A1 - Modulares Produktionssystem zur automatischen Herstellung von dreidimensionalen Gewebestrukturen - Google Patents

Modulares Produktionssystem zur automatischen Herstellung von dreidimensionalen Gewebestrukturen Download PDF

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Andrea Dr. rer. nat. Heymer
Jan Hansmann
Michaela Dr. Kaufmann
Christian Reis
Roland Dipl.-Ing. Huchler
Andreas Dipl.-Ing. Traube
Jan Dr.-Ing. Stallkamp
Frank Pretzsch
Christian Dipl.-Ing. Derichs
Ulrike Koropp
Ulrich Marx
Stefan Pilgermann
Jörg Saxler
Alexandra Dr. Stolzing
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Abstract

Die Erfindung liegt auf dem technischen Gebiet des Tissue Engineering. Die Erfindung betrifft die automatische Herstellung von dreidimensionalen neu konstituierten biologischen Gewebestrukturen aus Einzelzellen oder Gewebeverbünden. Die Erfindung stellt dazu ein automatisiertes modulares Produktionssystem und die Steuerung dazu bereit.

Description

  • Die Erfindung betrifft die automatische Herstellung von dreidimensionalen neu konstituierten biologischen Gewebestrukturen aus Einzelzellen oder Gewebeverbünden. Die Erfindung stellt dazu ein automatisiertes modulares Produktionssystem und die Steuerung dazu bereit.
  • Technisches Gebiet
  • Die Erfindung liegt auf dem technischen Gebiet des Tissue Engineering. Das Prinzip des Tissue Engineering besteht im Wesentlichen darin, aus biologischem Gewebe, das beispielsweise in einem separaten Verfahrensablauf aus dem menschlichen oder tierischen Körper in Form von Spendergewebe als sogenannte Biopsate gewonnen werden kann, vitale Zellen oder Zellverbände zu isolieren. Die isolierten Zellen werden vermehrt und im Anschluss zum Aufbau neu konstituierter dreidimensionaler Gewebestrukturen, so genannte artifizielle Gewebe oder Gewebeäquivalente, beispielsweise neu konstituierter Hautäquivalente, aufgebracht. Für den Aufbau von Hauttestsystemen werden zwei unterschiedliche primäre Zelltypen, und zwar Fibroblasten und Keratinozyten, benötigt, die bekanntermaßen aus mehrschichtigem Hautgewebe (insbesondere Präputiumbiopsaten) isoliert werden. Solche neu konstituierten Gewebe können dann als Testsysteme in der Forschung, insbesondere zur Wirkstofferforschung oder als Transplantate in der Medizin eingesetzt werden, um verlorene Organfunktionen zu ersetzen. Beispielsweise werden dreidimensionale, das heißt zweischichtige Hautäquivalente als Testsysteme für Wirkstoffe, Chemikalien und Kosmetika eingesetzt und stellen so eine Alternative zum Tierversuch dar.
  • Der hohe Bedarf an artifiziellem Gewebe, insbesondere an Hauttestsystemen, die aus bevorzugt humanen primären Zellen hergestellt werden, kann durch die manuelle Einzelverarbeitung nicht gedeckt und die Anforderungen an deren Reproduzierbarkeit können nicht erfüllt werden. Es wird erwartet, dass dies nur durch eine Automatisierung des Herstellungsprozesses gewährleistet werden kann.
  • Bei der Herstellung von dreidimensionalen Gewebestrukturen aus Einzelzellen oder Gewebeverbänden besteht der Bedarf an qualitativ hochwertigen, aus Primärzellen oder Zelllinien aufgebauten Gewebemodellen. Die kostengünstige und schnelle Bereitstellung validierter in vitro Testsysteme kann bisher nicht zufriedenstellend geleistet werden.
  • Die Schwierigkeiten bei einer Automatisierung liegen darin, die komplexen Abfolgen unterschiedlicher manueller Schritte der Zellisolation, Zellkultivierung und des Gewebeaufbaus nicht einfach durch automatisierbare Handhabungen, die den manuellen Prozess abbilden, ersetzt werden können. Die besondere Herausforderung an ein Produktionssystem zur automatisierten Herstellung von Gewebe liegt aber in den übergeordneten Schnittstellen der Anlage und in der Steuerung der Stoffflüsse; dies konnte bisher nicht zufriedenstellend gelöst werden.
  • Für einen Einsatz von Tissue Engineering Produkten in der regenerativen Medizin bestehen außerdem rechtliche Vorschriften bezüglich der Sterilität und reproduzierbaren Qualität, die nur unter Reinraumbedingungen und mittels validierter Prozesse erfüllt werden können. Für die Herstellung der Transplantate müssen Kreuzkontaminationen unterschiedlicher Proben durch eine vollständige Chargentrennung vermieden werden. Beim Umgang mit lebenden biologischen Materialen müssen folgende genau vorgegebenen Randbedingungen eingehalten werden: Innerhalb der vollautomatisierten Anlage müssen sterile Bedingungen herrschen. Sobald in der Anlage Transplantate für einen Einsatz am Menschen hergestellt werden, müssen nach GMP-Richtlinie Reinraumbedingungen der Klasse A eingehalten werden. Alle verwendeten Materialien, feste, flüssige und gasförmige dürfen nur in sterilem Zustand in die Anlage eingebracht werden. Die Aufrechterhaltung der Sterilität erfordert regelmäßige Reinigungs- und Sterilisierungszyklen. Ein Wartungszugang muss nach GMP-Richtlinie die Reinraumbedingungen der Klasse B erfüllen. Feste Abfälle wie Einwegmaterialien sowie die flüssigen Lösungen müssen aus dem Produktionsweg entfernt werden, ohne dass eine Kontaminationsgefahr entsteht. Die Lagerung von Abfall innerhalb der Anlage muss vermieden werden.
  • Bei der Herstellung von Transplantaten sollen die Zellen eines Spenders zu jedem Zeitpunkt in der Produktionsstätte lokalisiert oder nachverfolgt werden können. Eine Vermischung der Proben oder Kreuzkontamination soll ausgeschlossen werden.
  • Aufgrund der Diversität der biologischen Proben ist es außerdem nicht möglich, eine Aussage über die Zahl an zu erwartender isolierten vitalen Zellen im Biopsat zu treffen. Ein automatisierter Verfahrensablauf soll demnach so ausgelegt werden, dass pro Tag eine maximale Anzahl an Biopsaten und Zellen verarbeitet werden kann, um selbst bei geringer Zahl aus den Biopsaten isolierbarer vitaler Zellen die Mindestmenge an benötigten Zellen für eine Tagesproduktion garantiert zu erreichen. Dem steht die begrenzte Kapazität der im Gesamtprozess nachfolgenden Bearbeitungsschritte gegenüber. Außerdem muss sichergestellt werden, dass die Zellen während der Übergabe von Bearbeitungsschritt zu Bearbeitungsschritt in ihrer Vitalität nicht beeinträchtigt werden. Zwischenschritte zur Zwischenlagerung von Material sollen in ihrer Zahl minimiert oder vollständig vermieden werden.
  • Idealerweise soll das hergestellte Gewebe, sowohl zur Verwendung als Testsystem, als auch zur Transplantation, steril verpackt und auf Sterilität und Qualität geprüft werden können. Um ein hochwertiges Produkt gewährleisten zu können, sollen die Gewebeprodukte nach Durchlaufen der Produktionskette einer Qualitätskontrolle unterzogen werden können.
  • Bisherige Lösungsansätze für automatisierte Systeme im Bereich des Tissue Engineering beschränken sich auf die Isolierung oder auf die Kultivierung von Zellen. Es werden standardisierte Bioreaktoren oder speziell abgestimmte Oberflächen oder Membranen in Reaktoren eingesetzt. Es gibt keine apparativen Lösungen zur intergrierten Isolierung, Kultivierung und Aufbau von vitalen dreidimensionalen artifiziellen Geweben.
  • Aufgabenstellung
  • Das der Erfindung zugrunde liegende technische Problem besteht darin, Verfahren und Mittel zur Durchführung dieser Verfahren bereitzustellen, welche eine automatisierte Herstellung und eine Steuerung und Prozesskontrolle zum Bertrieb der automatisierten Herstellung von dreidimensionalen Gewebestrukturen aus Einzelzellen oder Zellverbünden (Tissue Engineering) ermöglichen.
  • Die Erfindung stellt in einem ersten Aspekt ein vollautomatisiertes, Produktionssystem zur Herstellung von mehrschichtigen dreidimensionalen Geweben, die für den Einsatz als Testsysteme oder als Transplantate geeignet sind, zur Verfügung, das in Modulen aufgebaut ist. Im Zusammenhang mit dieser Erfindung wird unter dem Begriff „Modul” eine Anordnung von Vorrichtungselementen und Handhabungselementen verstanden, die zusammen geeignet und bevorzugt speziell dazu ausgebildet sind, zumindest einen abgeschlossenen Prozesssschritt bei der erfindungsgemäßen Herstellung der dreidimensionalen Gewebe durchzuführen.
  • Erfindungsgemäß sind die Module der Anlage entsprechend der Prozessabfolge 1. Zellextraktion, 2. Zellexpansion und 3. Gewebeaufbau, nebeneinander sequenziell angeordnet, und zwar bevorzugt nicht räumlich voneinander abgetrennt, bevorzugt unmittelbar aneinander angrenzend.
  • Die zumindest drei Kernmodule der Anlage sind:
    • – Zellextraktionsmodul, in welchem die primären Zellen aus dem Spendergewebe isoliert werden können;
    • – Zellexpansionsmodul, in welchem die isolierten Zellen maximal und kontrolliert vermehrt werden können; und
    • – Gewebeaufbaumodul, in welchem die Zellen zu einem dreidimensionalen mehrschichtigen Gewebe aufgebaut werden können.
  • In einer bevorzugten Variante ist besonders zur Erweiterung des Funktionsumfangs eine Kombination mit weiteren Modulen vorgesehen. Durch den modularen Aufbau ist in einer alternativen Variante der Erfindung ein autarker Betrieb der Einzelmodule vorgesehen.
  • Die Module sind über Schnittstellen miteinander verbunden, welche Kommunikation und Materialfluss zwischen den Modulen ermöglichen. Es ist bevorzugt vorgesehen, dass jedes der zumindest drei Module über standardisierte Schnittstellen nach außen, besonders eine separate Materialschleuse, aufweist.
  • Die Erfindung sieht vor, dass jedes Modul über mindestens einen in das Modul integrierten oder dem Modul zugeordneten Modulsteuerrechner verfügt, der die Abläufe in dem jeweiligen Modul bevorzugt steuert und teilweise regelt, Stoffflüsse steuert, Material- und Flüssigkeitsvorräte verwaltet, Zustandsvariablen des Moduls erfasst und gegebenenfalls Fehlermeldungen erzeugt
  • Da die Prozesse innerhalb der Module von den Prozessen in den jeweils anderen Modulen abhängig sind, werden die Materialflüsse zwischen den Modulen und/oder innerhalb der Module geregelt. Gemäß der Erfindung stehen die bevorzugt vorgesehenen Mo dulsteuerrechner mit einem modulfernen zentralen Steuerrechner in Datenverbindung. Der zentrale Steuerrechner regelt funktionale Verkettung und Materialfluss zwischen den Modulen, vorzugsweise durch Steuerung von modulindividueller Taktung und/oder Materialumsatz, und zwar in Abhängigkeit von mindestens einer Zustandsvariablen der Module, die von den Modulsteuerrechnern an den Zentralrechner kommuniziert werden.
  • Die Erfindung stellt auch Verfahren und Mittel zur Steuerung und Prozesskontrolle dieser Module bereit.
  • Gegenstand der Erfindung ist demgemäß ein Verfahren der automatischen Herstellung von aus tierischem oder menschlichem Spendergewebe neu konstituiertem biologischem Gewebe, enthaltend die Schritte:
    • – Bereitstellen des Spendergewebes an einer Eingangsschnittstelle eines ersten Moduls, das speziell ausgebildet ist, aus dem Spendergewebe Spendergewebezellen mindestens eines Zelltyps zu isolieren und diese Zellen zu vereinzeln (Zellextraktionsmodul), so dass aus dem Spendergewebe isolierte vereinzelte Zellen des mindestens einen Zelltyps erhalten werden;
    • – Übergeben der isolierten Zellen an einer ersten Übergangsschnittstelle an ein zweites Modul, das speziell ausgebildet ist, die jeweils isolierten Zellen des mindestens einen Zelltyps zu vermehren (Zellexpansionsmodul), so dass aus den isolierten Zellen jeweils mindestens eine Zellgruppe aus vermehrten Zellen des mindestens einen Zelltyps erhalten wird;
    • – Übergeben des mindestens einen Zellverbands an einer zweiten Übergangsstelle an ein drittes Modul, das speziell ausgebildet ist, mit einem oder mehreren der Zellgruppen ein biologisches Gewebe neu zu konstituieren (Gewebeaufbaumodul), so dass aus einem oder mehreren Zellgruppen mindestens jeweils eines Zelltyps ein neu konstituiertes biologisches Gewebe erhalten wird; und
    • – Bereitstellen des neu konstituierten biologischen Gewebes an einer Ausgangsschnittstelle.
  • Im Zusammenhang mit dieser Erfindung wird unter „Zellgruppe” in einer Ausführung eine im Wesentlichen oder vollständig zusammenhängende, insbesondere bis zur Konfluenz oder nahe zu bis zur Konfluenz kultivierte Zellen aus vermehrten, insbesondere zuvor ursprünglich vereinzelt ausgesääten Zellen eines Zelltyps verstanden. In einer alternativen Ausführung wird darunter eine Suspension aus gegebenenfalls resuspendierten aus Einzelzellen durch Kultivieren vermehrten Zellen eines Zelltyps verstanden.
  • Bevorzugt erfolgt die Prozesssteuerung innerhalb der Module durch den Modulen jeweils zugeordnete Modulsteuerrechner.
  • Bevorzugt weist aber das erste Modul zwischen Eingangsschnittstelle und erster Übergangsschnittstelle eine erste Materialflussrate auf; das zweite Modul weist zwischen erster Übergangsschnittstelle und zweiter Übergangsschnittstelle eine zweite Materialflussrate auf und das dritte Modul weist zwischen zweiter Übergangsstelle und Ausgangsschnittstelle eine dritte Materialflussrate auf. Erfindungsgemäß wird bevorzugt eine oder mehrere der ersten, zweiten und dritten Materialflussraten, in Abhängigkeit von mindestens einer davon verschiedenen Materialflussrate, ausgewählt aus erster, zweiter und dritter Materialflussrate, und/oder von mindestens einer Zustandsvariablen von mindestens einem der ersten, zweiten und dritten Module, gesteuert, um die Materialflussraten der Module anzupassen.
  • Bevorzugt erfolgt die Steuerung der Materialflussrate durch Steuerung der Taktung des Moduls
  • Im Zusammenhang mit der Erfindung wird unter „Taktung” vor allem die Prozessgeschwindigkeit der innerhalb des Moduls ablaufenden Prozessschritte, Handhabungen verstanden. Die Prozessgeschwindigkeit innerhalb des Moduls ist insbesondere steuerbar durch die Geschwindigkeit einzelner Verfahrensschritte, die innerhalb der Module durchgeführt werden, und/oder an den Pausenzeiten zwischen den Verfahrensschritten. Dabei unterscheiden sich die Pausenzeiten zwischen den Verfahrensschritten, die einer „Zwischenlagerung” des prozessierten Materials innerhalb des Prozessablaufs entspricht, von einer sogenannten „Zwischenpufferung”, letztere stellt mindestens einen separaten Verfahrensschritt innerhalb des Prozessablaufs dar, der dazu dient, einen Materialfluss für eine bestimmte Zeitdauer zwischenzulagern oder zu sammeln, bevor das Material weiteren Prozessschritten unterzogen wird. Die Zwischenpufferung erfolgt dabei in einer Variante bevorzugt im „Hauptstrom” des Materialflusses, wobei im Wesentlichen sämtliches Material im Prozess in den Zwischenpuffer verbracht wird und bis zur Beendigung des Verfahrensschritts der Zwischenpufferung kein nachfolgender Prozessschritt durchgeführt wird. In einer alternativen Variante folgt die Zwischenpufferung im „Nebenstrom”, wobei nur ein vorbestimmter Anteil an Material in die Zwischenpufferung gelangt, wobei der andere Anteil unmittelbar in den nachfolgenden Prozessschritten weiterverarbeitet wird. In einer bevorzugten alternativen Ausführung erfolgt daher die Anpassung der Materialflussrate durch Zwischenpufferung des Materialflusses innerhalb eines Moduls. In einer bevorzugten Variante erfolgt die Steuerung des Umfanges der Zwischenpufferung und damit des Materialflusses innerhalb des Moduls durch Steuerung der Zeitdauer der Zwischenpufferung, insbesondere im Zusammenhang mit der Zwischenpufferung im „Hauptstrom” des Materialflusses. In einer alternativen bevorzugten Variante erfolgt die Steuerung des Umfanges der Zwischenpufferung durch Steuerung des Verhältnisses zwischen im Nebenstrom zwischengepufferten Materials zum im Hauptstrom unmittelbar weiter prozessierten Materials.
  • Die Erfindung sieht mehrere Varianten der Steuerung und Regelung des Materialflusses innerhalb der Module vor. In einer ersten Variante wird die Materialflussrate im ersten und/oder zweiten Modul in Abhängigkeit von dem im dritten Modul verarbeiteten Zelltyp gesteuert.
  • In einer weiteren Variante wird die Materialflussrate im ersten Modul in Abhängigkeit von der Zahl der im zweiten Modul vermehrten Zellen gesteuert.
  • In weiteren alternativen oder zusätzlichen Varianten wird der Materialfluss durch eine oder mehrere Zustandsvariablen gesteuert. In einer Variante ist die Zustandsvariable die Zellzahl.
  • In einer weiteren Variante ist die Zustandsvariable die Zelldichte.
  • In einer weiteren Variante ist die Zustandsvariable die Zellvitalität.
  • In einer weiteren Variante ist die Zustandsvariable die Proliferationsrate der Zellen.
  • Bevorzugt wird die Zelldichte über die Messung des transepithelialen elektronischen Widerstands TEER bestimmt. Bevorzugt wird die Zellvitalität über optische Messungen, insbesondere durch Anwendung eines Vitalfarbstoffes unter mikroskopischer Kontrolle mit Bilderkennungssoftware automatisch erfasst. Alternativ bevorzugt sind spektroskopische Messungen, besonders bevorzugt über Ramanspektroskopische Analysen, bevorzugt im Vergleich mit Referenzspektren. Die Proliferationsrate der Zellen beziehungsweise Zellzahl der vom Reaktor abgelösten vermehrten Zellen wird bevorzugt mittels einer Zellzählkammer bestimmt, wobei auf die gesamte Zellzahl aus der in die Zählkammer verbrachte Probe zurückgerechnet wird.
  • Die Erfindung sieht den Zusammenschluss von in sich abgeschlossenen autarken Prozessabläufen vor, die jeweils für sich getrennt ablaufen.
  • Dabei wird die automatische Isolierung der Zellen aus dem Spendergewebe im ersten Modul bevorzugt in zumindest den folgenden Teilschritten durchgeführt:
    • – automatisches Abtrennen von gegebenenfalls am Spendergewebe vorhandenen Fettgewebe;
    • – automatisches Einschneiden zum Aufbrechen der Gewebestruktur des Spendergewebes;
    • – automatisches Inkubieren des Spendergewebes mit aufgebrochener Gewebestruktur in Enzymlösung zur Auftrennung des Zellverbands eines ersten Zelltyps;
    • – automatisches Abtrennen der aus dem Zellverband des ersten Zelltyps des inkubierten Spendergewebes gelösten Einzelzellen vom Restgewebe eines weiteren Zelltyps; und
    • – automatisches Resuspendieren der Einzelzellen; so dass eine Suspension von aus dem Spendergewebe isolierten Zellen eines Zelltyps erhalten wird.
  • In einer bevorzugten Variante wird das Verfahren zumindest durch die folgenden weiteren Teilschritte ergänzt:
    • – automatisches Inkubieren des Restgewebes in Enzymlösung zum Auflösen der Zellgruppe des Restgewebes in Einzelzellen des weiteren Zelltyps,
    • – automatisches Resuspendieren der aus dem Zellverband des Restgewebes gelösten Zellen.
  • Die automatische Vermehrung isolierter Zellen in dem zweiten Modul zu einer Zellgruppe wird in zumindest den folgenden Teilschritten durchgeführt:
    • – Bestimmen der Zellzahl der isolierten Zellen anhand einer von der Suspension der isolierten Zellen gezogenen Zellprobe in einer Zählkammer,
    • – Einstellen der Zellzahl der isolierten Zellen in der Suspension auf eine vorgegebene Zellkonzentration,
    • – Aussäen der isolierten Zellen, gegebenenfalls Aliquotieren der Zellen in einen Bioreaktor
    • – Inkubieren der auf oder in dem Bioreaktor ausgesäten Zellen zur Zellvermehrung;
  • In einer bevorzugten Variante wird dieses Verfahren zumindest durch die folgenden weiteren Teilschritten ergänzt:
    • – ein- oder mehrfaches Bestimmen von Zellkultivierungsparameter, ausgewählt aus pH-Wert, Sauerstoffpartialdruck, TEER, Glucose-Gehalt, Trübung, Zellzahl und Zelldichte, vor, während oder im Abschluss an die Inkubation.
  • Bevorzugt wird dabei vor der Inkubation eine Zellzählung durchgeführt. Bevorzugt wird während der Inkubation eine vorzugsweise wiederkehrende Bestimmung der Parameter, ausgewählt aus TEER, Glucose, Sauerstoffpartialdruck, pH-Wert und Trübung durchgeführt. Bevorzugt wird nach der Inkubation, das heißt am Ende der Kulturdauer, bevorzugt erneut eine Zellzählung durchgeführt.
  • Der automatische Gewebeaufbau aus mindestens einer Zellgruppe vermehrter Zellen im dritten Modul wird bevorzugt in zumindest den folgenden Teilschritten durchgeführt:
    • – automatisches Inkontaktbringen eines Gewebeträgers mit einer ersten Schicht der Zellgruppe,
    • – Inkubieren des so hergestellten geschichteten Aufbaus zur Konstitution eines neu konstituierten biologischen Gewebes.
  • In einer bevorzugten Variante wird dieses Verfahren zumindest durch die folgenden weiteren Teilschritten ergänzt:
    • – Aufbringen einer zweiten oder weiteren Schicht einer Zellgruppe von vermehrten Zellen eines weiteren Zelltyps auf die erste Schicht.
  • In einem bevorzugten weiteren Teilschritt wird die Gewebequalität des hergestellten Gewebes und vorzugsweise mittels optischer Kohärenztomographie (OCT) bestimmt.
  • In einer bevorzugten Ausführung der Erfindung wird das Spendergewebe oder Biopsat vor Eintritt in die Prozessmodule, besonders durch die Eingangsschnittstelle des ersten Moduls, auf biologische und/oder chemische Kontamination untersucht. Dazu werden in an sich bekannte Verfahren eingesetzt. In einer ersten bevorzugten Variante wird dazu eine Anzuchtkultur angelegt und inkubiert. Das Wachstum von Mikroorganismen wird in an sich bekannter Weise detektiert und die gefundenen Mikroorganismen gegebenenfalls spezifiziert. In einer alternativen oder bevorzugt zusätzlich durchgeführten Variante wird das Biopsat und/oder der Überstand des Kulturmediums über dem Biopsat einer spektroskopischen, insbesondere Raman-spektroskopischen Spektralanalyse unterzogen und vorzugsweise durch Vergleich der gefundenen Spektren mit Referenzspektren kann auf eine Kontamination geschlossen und gegebenenfalls die Art der Kontamination spezifiziert werden. Außerdem kann aus den gefundenen Spektren gegebenenfalls auf die Vitalität und/oder auf den Differenzierungsgrad der im Spendergewebe enthaltenen Zellen geschlossen werden.
  • Die Erfindung sieht vor, dass das Spendergewebe vorzugsweise ein Biopsat des menschlichen oder tierischen Körpers ist, bevorzugt mehrschichtiges Hautgewebe. Der zu isolierende Zelltyp ist ausgewählt aus Fibroblasten und Keratinozyten.
  • Die Erfindung ist aber nicht auf diese Zelltypen beschränkt. Der Fachmann kann die in dieser Erfindung vorgestellten Prinzipien auch auf die Anwendung bei anderen Geweben und anderen Zelltypen übertragen, ohne dabei erfinderisch tätig werden zu müssen; er kennt die dazu nötigen Anpassungen, sobald er die Erfindung auf Grundlage der beispielhaft genannten Fibroblasten und Keratinozyten in Verbindung mit der Verwendung eines Hautbiopsats verstanden hat.
  • Das neu konstituierte biologische Gewebe ist bevorzugt ein mehrschichtiges Gewebe und enthält bevorzugt mindestens eine Zellschicht aus Fibroblasten und bevorzugt mindestens eine Zellschicht aus Keratinozyten, ist.
  • Gegenstand der Erfindung ist daher auch ein artifizielles mehrschichtiges Hautgewebe, das nach dem erfindungsgemäßen Verfahren herstellbar ist oder vorzugsweise hergestellt wird.
  • Gegenstand der Erfindung ist auch eine Vorrichtung zur automatischen Herstellung von aus tierischem oder menschlichem Gewebe neu konstituiertem biologischen Gewebe, das zumindest die im Folgenden genannten Komponenten aufweist:
    • – ein erstes Modul (Zellextraktionsmodul), das speziell ausgebildet ist, aus dem Gewebe eine Gewebezelle mindestens eines Zelltyps zu isolieren und diese Zellen zu vereinzeln, das eine Eingangsschnittstelle und eine erste Übergabeschnittstelle zur Übergabe der isolierten Zellen aufweist,
    • – ein zweites Modul (Zellexpansionsmodul), das speziell ausgebildet ist, die isolierten Zellen des jeweils mindestens einen Zelltyps zu vermehren, wobei das zweite Modul dem ersten Modul nachgeschaltet ist, mit diesem die erste Übergabeschnittstelle teilt und eine zweite Übergabeschnittstelle zur Übergabe der Gruppe vermehrter Zellen aufweist; und
    • – ein drittes Modul (Gewebeaufbaumodul), das speziell ausgebildet ist, um mit der mindestens einen Zellgruppe ein biologisches Gewebe neu zu konstituieren, wobei das dritte Modul dem zweiten Modul nachgeschaltet ist, mit diesem die zweite Übergabeschnittstelle teilt und eine Ausgabeschnittstelle zum Ausschleusen des neu konstituierten biologischen Gewebe aufweist.
  • Bevorzugt weist die Vorrichtung zumindest eine Steuereinheit zur Erfassung von Materialfluss und/oder Zustandsvariablen von zumindest einem der Module auf, welches speziell ausgebildet ist, um den Materialfluss in zumindest einem Modul in Abhängigkeit vom Materialfluss und/oder mindestens einer Zustandsvariablen mindestens eines weiteren Moduls zu steuern.
  • In einer bevorzugten Ausführung weist das erste Modul zumindest die folgenden Elemente zur Durchführung der Zellextraktion auf:
    • – Fettseparatorvorrichtung, zum Abtrennen von gegebenenfalls am Spendergewebe vorhandenen Fettgewebe von dem Spendergewebe,
    • – Zerhackervorrichtung, zum Einschneiden der Gewebestruktrur des Spendergewebes,
    • – Inkubator, zum Inkubieren des Spendergewebes mit eingeschnittener Gewebestruktur, und
    • – Pipettiervorrichtung, zum Abtrennen von aus dem Spendergewebe isolierten Zellen vom Restgewebe.
  • In einer bevorzugten Ausführung weist das zweite Modul zumindest die folgenden Elemente zur Durchführung der Zellexpansion auf:
    • – Pipettiervorrichtung, zum in Suspension Halten der isolierten Zellen und zum Dosieren der Zellsuspension in oder auf einen Bioreaktor,
    • – Zellzählvorrichtung, zur Bestimmung der Zellzahl in der Zellsuspension, und
    • – Inkubator, zur Inkubation der auf oder in einem Reaktor ausgesäten isolierten Zellen
  • Bevorzugt weist das zweite Modul weiter auf:
    • – Messstation, zur Bestimmung der Zustandsparameter der im oder auf dem Bioreaktor kultivierte ausgesäten Zellen und/oder
    • – Medienwechselstation zum Wechseln des Zellkulturmediums und/oder für die Inkubation der Zellen.
  • In einer bevorzugten Ausführung weist das dritte Modul zur Durchführung des Gewebeaufbaus zumindest die folgenden Elemente auf:
    • – Handhabungsvorrichtung, zum Aufbringen von kultivierten Zellverbänden auf einen Gewebeträger,
    • – Messvorrichtung, zur Bestimmung der Gewebequalität, und
    • – Inkubator, zur Inkubation des Gewebeträgers und des darauf aufgebrachten Zellverbands.
  • Die gesamte modulare Anlage kann so eingesetzt werden, um aus Spendergewebe vollautomatisch und insbesondere robotergestützt dreidimensionale biologische Gewebe, besonders Testsysteme aus verschiedenen Zelltypen aufzubauen. Unter Berücksichtung der gesetzlichen Vorgaben kann die Anlage auch unter GMP-Bedingungen betrieben werden und kann somit für die Herstellung von autologen oder allogenen Transplantaten für die medizinische Verwendung eingesetzt werden. Die Vollautomatisierung bietet erfindungsgemäß eine überraschend erhöhte Produktsicherheit und Reproduzierbarkeit im Vergleich zu manuellen Herstellungsprozessen in GMP-konformen Laboratorien. Der modulare Aufbau ermöglicht es auch, dass einzelne Module wie das Zellextraktionsmodul, das Zellexpansionsmodul, oder Elemente der Module wie die Multifunktionspipette, der Gewebezerkleinerer flexibel und autark betrieben werden können.
  • Das biologische Spendermaterial wird vor dem Einschleusen in die Anlage in einem separaten GMP-Labor bzw. unter einem separaten Laminar Flow gründlich gespült und eine Probe des Spülpuffers entnommen. Diese Probe wird für mindestens 48 h bei 37°C im Brutschrank inkubiert und am Folgetag visuell auf Kontamination überprüft.
  • Nach dem Durchlaufen der Produktionskette werden alle Gewebeprodukte einer Qualtitätskontrolle unterzogen. Mittels optischer Kohärenztomographie (OCT) ist es möglich, nicht invasive (berührungslos, zerstörungsfrei) Messungen der inneren Struktur der Gewebe produkte durchführen zu können. Somit müssen keine zerstörenden Histologien angefertigt werden. Defekte und Inhomogenitäten in der Gewebestruktur können mit der OCT-Technik vollautomatisch detektiert und ausgewertet werden. Dadurch ist eine 100% inline Qualitätskontrolle am Ende der Produktionskette möglich.
  • Die Erfindung sieht in einer bevorzugten Ausführung vor, dass eines oder mehrere der Module jeweils zumindest einen Modulsteuerrechner zur jeweiligen Steuerung der Prozesse in dem Modul aufweist. Weiter ist vorgesehen, dass der zumindest eine Modulsteuerrechner zur Bestimmung der Materialflussrate und/oder von mindestens einer Zustandsvariablen des Moduls dient.
  • In bevorzugter Ausführung steht der mindestens eine Modulsteuerrechner mit einem zentralen Steuerrechner in Datenverbindung. Das heißt besonders, dass der Modulsteuerrechner geeignet und bevorzugt speziell ausgebildet ist, mindestens eine im zugeordneten Modul erfasste modulinterne Größe (Prozessparameter, Materialflussrate, Zustandsvariable u. a.) an den zentralen Steuerrechner zu übermitteln.
  • Weiter ist besonders der zentrale Steuerrechner geeignet und bevorzugt speziell dazu ausgebildet, über mindestens einen Modulsteuerrechner die Materialflussrate und gegebenenfalls andere Prozessbedingungen in dem dem Modulsteuerrechner zugeordneten Modul zu steuern, und insbesondere in Abhängigkeit einer oder mehrerer modulinterner Größen zu regeln.
  • Gegenstand der Erfindung ist auch ein Computerprogrammprodukt zur Steuerung des Materialflusses in der vorstehend charakterisierten erfindungsgemäßen Vorrichtung, wobei das erste Modul zwi schen Eingangsschnittstelle und erster Übergangsschnittstelle eine erste Materialflussrate aufweist, das zweite Modul zwischen erster Übergangsschnittstelle und zweiter Übergangsschnittstelle eine zweite Materialflussrate aufweist und das dritte Modul zwischen zweiter Übergangsstelle und Ausgangsschnittstelle eine dritte Materialflussrate aufweist. Das Programmprodukt ist charakterisiert durch die Programmschritte:
    • – Erfassen einer oder mehrerer der ersten, zweiten und dritten Materialflussraten und/oder einer oder mehrerer Zustandvariablen der ersten, zweiten und dritten Module;
    • – Steuern mindestens einer davon verschiedenen ersten, zweiten und dritten Materialflussrate, in Abhängigkeit von der erfassten mindestens einen Materialflussrate und/oder Zustandsvariablen, um die Materialflussraten der Module aneinander anzupassen.
  • Die Module sind bevorzugt unter einer so genannten Laminar-Flow-Box oder einer dazu analogen Anordnung angeordnet, um die Erfordernisse der Reinraumklasse A zu erfüllen. Die Abgrenzung der Module nach außen erfolgt bevorzugt an durch Schleusen, die auf einer Seite (Vorderseite) der Module angeordnet sind. An der Rückseite sind bevorzugt zusätzlich Wartungszugänge (Reinraumklasse B) vorgesehen. Die Apparatur und Handhabung aller Module befindet sich bevorzugt auf der Höhe einer bevorzugt gelochten Trägerbank (Lochtisch), die vorzugsweise aus Edelstahl gefertigt ist. Unterhalb des Tisches ist bevorzugt Platz vorgesehen für die Anlagenperipherie bzw. für Steuerung und Abfallentsorgung.
  • Um die Sterilität der Prozesse zu gewährleisten, liegen zumindest diejenigen Teile der Anlage, in welchen an offenen Zellen und Ge weben gearbeitet wird, bevorzugt unter einem Laminar Flow der Reinraumklasse A, vorzugsweise mit einer turbulenzarmen Verdrängungsströmung von circa 0,45 m/s. In den äußeren Bereichen, welche die Materialschleusen und Wartungszugänge beinhalten, herrscht bevorzugt ein Laminar Flow der Reinraumklasse B und ein bevorzugt etwa 12 Pa höherer Druck als in der Umgebung. Diese Druckdifferenz senkt die Kontaminationsgefahr in der Anlage. Zur Herabsetzung der Kontaminationsgefahr sind bevorzugt tägliche automatisch ablaufende separate Sterilisationszyklen eingeplant, währenddessen keine Gewebe oder Zellen bearbeitet werden.
  • Innerhalb dieses Zeitraums werden die Module vorzugsweise mittels der sogenannten Minncare Dry Fog®-Technologie sterilisiert. Bei dieser Technologie handelt es sich um eine aerosolbasierte Reinraum-Desinfektion mit Trockennebel, bei der alle mit der Luft in Berührung kommenden Flächen desinfiziert werden, ohne dass nachgereinigt werden muss oder die Oberflächen der Modulkomponenten geschädigt werden.
  • Die Module weisen bevorzugt jeweils mindestens einen separaten Materialzugang auf. Bevorzugte Bedingungen sind dabei, dass alle Materialien, sowohl feste Materialien als auch Flüssigkeiten oder Gase, steril über die Materialschleusen in die Anlage eingebracht werden. Die Materialschleusen verfügen vorzugsweise über eine Sterilisierungseinheit. Ein Techniker kann so zu Produktionsbeginn die Materialschleuse mit dem benötigen Material beladen, sie im Anschluss schließen und das Material dazu sterilisieren. Die Handhabungseinheiten aus den inneren Bereichen der Module können im Anschluss die so vollständig außen und innen sterilen Materialien in den Prozess integrieren. Die Zufuhr von flüssigen oder gasförmigen Medien erfolgt bevorzugt ebenfalls über die Materialschleusen. Vorzugsweise werden Vorratsflaschen, Beutel oder Kanister mit einem Septum oder Klickverschluss eingebracht, welche dann unter sterilen Bedingungen automatisiert von einer jeweiligen dem Modul bevorzugt zugeordneten und besonders bevorzugt im Modul enthaltenen Dispensiereinheit angeschlossen und die Flüssigkeiten in die Anlage über Schläuche weitergeleitet werden können.
  • Die Module weisen bevorzugt zusätzlich jeweils mindestens einen separaten Wartungszugang auf. Durch die als Schleusen ausgebildeten Zugänge kann im Notfall oder innerhalb von vorgegebenen Zeitfenstern auch in den inneren Teil der Module eingegriffen werden. Für umfangreichere Wartungs- oder Reparaturarbeiten befinden sich an der Anlage weitere Wartungszugänge, über die auch die Abfallentsorgung stattfinden kann. Die Wartungszugänge sind von außen über eine Tür betretbar. Insbesondere bei einer Produktion von Transplantaten für den Einsatz am Menschen unter GMP-Bedingungen ist bevorzugt eine Personenschleuse vor dem Wartungszugang aufgebaut, mit der sich Personal aus einem umliegenden Reinraumbereich der Klasse C in den Wartungsbereich der Reinraumklasse B einschleusen kann.
  • Für die Entsorgung von Abfällen aus den Modulen sieht die Erfindung bevorzugt vor, dass feste Abfälle, wie Einwegmaterialien sowie die flüssigen Lösungen in speziellen Behältern unterhalb der Gerätetische zum Wartungszugang hin gesammelt und in regelmäßigen Zyklen, z. B. einmal täglich, über den Wartungszugang entsorgt werden.
  • Die für die Verwendung in den Modulen konstruierten Bioreaktorsysteme werden bevorzugt im standardisierten Format der an sich bekannten Mikrotiterplatten gefertigt, um auf Standard-Handhabungslösungen zurückgreifen zu können. Bevorzugt ist die individuelle Kennzeichnung der Reaktorplatten mit Barcodes oder RFID oder analogen System vorgesehen. Dies soll eine Nachverfolgung gewährleisten und insbesondere Kreuzkontaminationen verhindern.
  • Für die Handhabung von Zellsuspensionen wird bevorzugt eine spezielle vorstehend im Zusammenhang mit dem ersten Modul beschriebene Multifunktionspipette eingesetzt. Diese kann gleichzeitig die Zentrifugation ersetzen, d. h. Einzelzellen können aus Flüssigkeiten abgetrennt werden. Weiterhin können Zellen resuspendiert und homogen in einer Flüssigkeit verteilt werden. Mit Hilfe dieser Pipette erfolgt vorzugsweise auch die Übergabe von Zellen zwischen den Modulen.
  • Es ist bevorzugt vorgesehen, dass die Taktung innerhalb der Anlage die Randbedingungen, welche durch die Biologie und die Kapazität der Module vorgegeben sind, berücksichtigt und eine ausreichende Belieferung der Anlagenkomponenten mit den benötigten Materialien aus der Schleuse ermöglicht. Durch die erfindungsgemäß bevorzugt vorgesehene sequenzielle Verarbeitung im Zellextraktionsmodul wird vorzugsweise auf eine Rückmeldung aus dem Zellexpansionsmodul reagiert und so, beispielsweise bei ausreichender Zellzahl im Zellexpansionsmodul, der Isolationsprozess gestoppt. Dadurch können Ressourcen gespart werden.
  • Die Übergabe aus dem Zellexpansionsmodul an das Gewebeaufbaumodul ist aufgrund des vorgegebenen Protokolls zum sequentiellen Aufbau der Hautmodelle bevorzugt wie folgt ausgeführt: Das Gewebeaufbaumodul ist bevorzugt so ausgestaltet, dass es zu genau definierten Zeiten bestimmte Zellmengen benötigt und vorzugsweise anfordert, um die Gewebemodelle reproduzierbar aufbauen zu können.
  • Die Prozessführung und Taktung im Zellexpansionsmodul ist bevorzugt so ausgerichtet, dass sie das Gewebeaufbaumodul zu bestimmten Zeiten mit Zellen versorgen kann und gleichzeitig die modulinternen Handhabungsschritte (Medienwechsel, Aussaat von Zellen aus dem Zellextraktionsmodul) ohne unnötige Zwischenpufferung durchführbar bleiben. Dazu ist bevorzugt vorgesehen, dass zunächst Zelltyp 1 (Fibroblasten) in regelmäßigen Abständen aus dem Zellexpansionsmodul an das Gewebeaufbaumodul übergeben wird. Diese Zeitabstände sind bevorzugt so gewählt, dass die Handhabung im Gewebeaufbaumodul alle erforderlichen Schritte zum Aufbau der ersten Gewebeschicht (Dermis) durchführen kann. Vorzugsweise nachdem dies abgeschlossen ist, erfolgt die Belieferung mit Zelltyp 2 (Keratinozyten) für den Aufbau der zweiten Gewebeschicht (Epidermis). Es kann so vorteilhafterweise gewährleistet werden, dass in demselben Zeitabschnitt, beispielsweise ein Tag, dieselbe Menge an Zellen isoliert und weiterverarbeitet werden kann und die Gesamtanlage in diesem Zeitabschnitt ungefähr dieselbe Anzahl fertiger Hautmodelle produziert werden kann, von denen jedes Hautmodell im Wesentlichen exakt gleich hergestellt wurde. Dadurch wird überraschenderweise eine enorme Qualitätssteigerung erreicht.
  • Eine erfindungsgemäß bevorzugte Optimierung im Prozessablauf steht im Zusammenhang mit der begrenzten Haltbarkeit des Spendergewebes, der Vermeidung einer Austrocknung des Spendergewebes bei der Verarbeitung und der vorgegebenen Inkubationszeiten bei Enzymlösungen, auf den Kultivierungszeiten und der vorgegebenen Reihenfolge des Gewebeaufbaus. Die begrenzte Haltbarkeit der Biopsien wird bevorzugt durch eine Beschleunigung der vorgeschalteten Sterilkontrolle z. B. mittels automatisierter Raman Spektroskopie verbessert. Der Zellextraktionsprozess läuft durch die erfindungsgemäße vollständige Automatisierung schneller ab als der manuelle Laborprozess. Dadurch ist die Gefahr der Austrocknung des Biopsates während des Bearbeitungsprozesses minimiert.
  • Durch die sequenzielle Taktung zwischen den Modulen kann die gegebenenfalls erforderliche Zwischenlagerung der Zellen in Transportmedium bis zu einem definierten unkritischen Zeitraum erfolgen.
  • Eine weitere Optimierung besteht in der Medienführung und zeitlichen Prozesskontrolle beim Aufbau der ersten Schicht der Gewebekonstrukte. Durch eine erfindungsgemäß vorgesehene getrennte Medienführung von Komponenten der Gewebekonstrukte kann eine unerwünschte frühe Gelbildung verhindert werden. Eine Komponente bildet die natürliche extrazelluläre Matrix nach, während die andere Komponente als Zellträger fungiert. Kommen beide Komponenten zusammen, folgt eine chemische Reaktion, die zu einem schnellen Aushärten der beiden Flüssigkeiten führt. Das vorzeitige Aushärten der Zellsuspensionen in den Dosiersystemen wird so verhindert.
  • Eine weitere Optimierung besteht bei der Lagerung von Zellen oder Geweben. Gibt es eine Überproduktion oder eine zu geringe Nach frage, können Zellen und/oder Gewebe aus der Anlage geführt werden und in einem externen Kryomodul nach verschiedenen Kühlprotokollen konserviert und längerfristig gelagert werden.
  • Für eine Übersicht über die ablaufenden Prozesse innerhalb der Module werden bevorzugt an verschiedenen Stellen Digitalkameras positioniert. Bevorzugt wird die Partikelzahl der Luft an definierten Stellen in der Anlage bevorzugt mittels automatischer Partikelzählgeräte überwacht.
  • Die Erfindung sieht vor, dass die Taktung der einzelnen Module aufeinander abgestimmt ist. Bevorzugt werden relevante Informationen zum Prozess GMP-konform angezeigt und/oder abgespeichert. Die Dokumentation der einzelnen Herstellungsprozesse erfolgt in bevorzugt vorgegebenen Formaten. Kritische Prozessschritte werden überwacht. Es ist vorgesehen, dass der Zentralrechner auf Fehlermeldungen reagiert und entsprechende Maßnahmen zur Fehlerbeseitigung und/oder Fehlerkompensation in den Einzelmodulen einleitet. Durch Einsatz von geeigneter Sensorik soll eine automatisierte Prozesskontrolle realisiert werden. Weiterhin muss ein Messsystem Kontaminationen in Schläuchen, Geräten und Reaktoren automatisch frühzeitig erkennen um einen Reinigungsprozess auslösen zu können.
  • Bevorzugt sind alle eingesetzten Geräte, Pumpen und Achsen mit dem jeweiligen Modulsteuerrechner des Moduls verbunden, der Störungen an den zentralen Steuerrechner meldet. Je nach Art der Störung werden zur Behebung der Störung entweder vom zentralen Steuerrechner oder vom jeweiligen Modulsteuerrechner Maßnahmen eingeleitet.
  • Die Erfindung sieht vor, dass die Zellkulturen in den Bioreaktoren vorzugsweise wiederkehrend im Betrieb, beispielsweise täglich, auf Kontaminationen (Messung von optischer Dichte, pH-Wert, Spektralanalyse und Glucosekonzentation) und Proliferation (TEER-Wertmessung zur Bestimmung der Zelldichte im Bioreaktor) geprüft werden. Im Fall einer Kontamination oder bei ausbleibendem Zellwachstum können so Bioreaktoren gezielt aus dem Produktionsprozess entfernt und aus der Anlage ausgeschleust werden. Durch eine frühzeitige Detektion wird die Gefahr von Kreuzkontaminationen minimiert und ein Ressourcen-schonender Prozessablauf ermöglicht.
  • Zur Festlegung von Prozessparametern werden bevorzugt nach der Zellisolation (Zellextraktionsmodul) und Zellexpansion (Zellexpansionsmodul) die Zellausbeuten (Zellzahl und Vitalität) bevorzugt durch den Einsatz eines automatisierten Zellzählgerätes bestimmt. Eine geringe Probenmenge wird mit einer Pipette entnommen und dem Zellzählgerät über ein Schauchsystem zugeführt. Das Ergebnis wird nach Durchführung der Messung an den zentralen Steuerrechner und/oder den jeweiligen Modulrechner übermittelt.
  • Die Erfindung wird weiter in den Figuren näher beschrieben, ohne dass diese beschränkend zu verstehen wären.
  • 1 zeigt eine schematische Übersicht der Anordnung der drei erfindungsgemäßen hintereinander geschalteten Module innerhalb eines Reinraums. Im Vordergrund ist der transparent dargestellte Wartungszugang angeordnet. In der Rückwand sind in der oberen Hälfte die Materialschleusen für Medien und Gewebe angeordnet; in der unteren Hälfte der Rückwand, unterhalb des gelochten Zwischenbodens, befinden sich die Zugänge für die Abfallentsorgung.
  • 2 zeigt eine schematische Übersicht über den prinzipiellen Aufbau der erfindungsgemäßen hintereinander geschalteten Module. Das erfindungsgemäße Modul 1 weist zumindest einen Inkubator, eine Pipettierstation, eine Vorrichtung zur Fettbrennung und eine Vorrichtung zur Gewebetrennung (Zerhacker) auf. Die über die Eingangsschnittstelle eingeschleuste Biopsie wird über die Handhabungsvorrichtung, die bevorzugt eine modulübergreifende automatische Pipette ist, gemäß des Prozessverlaufs an die verschiedenen Bearbeitungsstationen verbracht und anschließend in Form von isolierten Zellen wird die erste Übergabeschnittstelle an das zweite Modul übergeben.
  • Das zweite Modul weist zumindest eine Medienwechselstation, eine Pipettierstation, einen Inkubator, eine Messstation für Zellkulturparameter wie pH Sauerstoffpartialdruck, Medientrübung, TEER-Wert u. a. sowie eine Zellzählstation auf. Die aus der ersten Übergabeschnittstelle übergebenen isolierten Zellen werden über eine Handhabungsvorrichtung, die bevorzugt ein Robotersystem ist, gemäß des Prozessablaufs an die einzelnen Stationen verbracht. Im Zuge dessen werden die isolierten Zellen dosiert auf einen leeren Reaktor zur Kultivierung der Zellen, der bevorzugt über eine Schleuse in das Modul eingeschleust wird, dosiert ausgesät und inkubiert. Die dadurch vermehrten Zellen bilden einen Zellverband oder eine Zellsuspension, welche über die zweite Übergabeschnittstelle an das dritte Modul übergeben wird.
  • Das dritte Modul weist zumindest eine Dispensierstation, einen Inkubator, einen Decapper und gegebenenfalls eine OCT-Messstation auf. Die aus dem zweiten Modul über die zweite Übergabeschnittstelle übergebenen vermehrten Zellen (in Form einer Zellsuspension oder eines Zellverbands) werden über ein Handhabungssystem, das insbesondere ein Robotersystem ist, gemäß der erfindungsgemäßen Prozessablaufs an die einzelnen Stationen übergeben. Nach dem sequenziellen Gewebeaufbau werden die neu konstituierten Gewebe gegebenenfalls in der OCT-Messstation auf ihren Aufbau und damit auf die Qualität hin kontrolliert. Anschließend wird das Gewebe, bevorzugt unmittelbar aus dem Inkubator heraus, der bevorzugt der Zwischenlagerung der neu konstituierten Gewebe dient, über die Ausgangsschnittstelle des dritten Moduls aus dem System ausgeschleust.
  • 3 zeigt schematisch die Architektur der Steuerrechner, der Datenverbindungen und der bevorzugt übertragenen Zustände und Steuerbedingungen vor dem Hintergrund der Steuerung des Medienflusses von Biopsat über isolierte Primärzellen, über kultivierte Zellen bis zum fertigen neu konstituierten Gewebe.
  • 4 zeigt eine schematische Übersicht der Medienflüsse in den zusammen geschalteten erfindungsgemäßen Modulen. Eingangsgrößen bezeichnen die über die Medienschleusen in die jeweiligen Module eingeschleusten Materialien; die Ausgangsgrößen bezeichnen im Wesentlichen die in den jeweiligen Modulen erzeugten und auszuschleusenden Abfallstoffe.

Claims (35)

  1. Verfahren der automatischen Herstellung von aus tierischem oder menschlichem Spendergewebe neu konstituiertem biologischem Gewebe, enthaltend die Schritte: – Bereitstellen des Spendergewebes an einer Eingangsschnittstelle eines ersten Moduls, das speziell ausgebildet ist, aus dem Spendergewebe Spendergewebezellen mindestens eines Zelltyps zu isolieren und diese Zellen zu vereinzeln (Zellextraktionsmodul), so dass aus dem Spendergewebe isolierte vereinzelte Zellen des mindestens einen Zelltyps erhalten werden; – Übergeben der isolierten Zellen an einer ersten Übergangsschnittstelle an ein zweites Modul, das speziell ausgebildet ist, die jeweils isolierten Zellen des mindestens einen Zelltyps zu vermehren (Zellexpansionsmodul), so dass aus den isolierten Zellen jeweils mindestens eine Zellgruppe aus vermehrten Zellen des mindestens einen Zelltyps erhalten wird; – Übergeben der mindestens einen Zellgruppe an einer zweiten Übergangsstelle an ein drittes Modul, das speziell ausgebildet ist, mit einem oder mehreren der Zellgruppen ein biologisches Gewebe neu zu konstituieren (Gewebeaufbaumodul), so dass aus einem oder mehreren Zellgruppen mindestens jeweils eines Zelltyps ein neu konstituiertes biologisches Gewebe erhalten wird; und – Bereitstellen des neu konstituierten biologischen Gewebes an einer Ausgangsschnittstelle.
  2. Verfahren nach Anspruch 1, wobei die Prozesssteuerung innerhalb der Module durch den Modulen jeweils zugeordnete Modulsteuerrechner erfolgt.
  3. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2, wobei das erste Modul zwischen Eingangsschnittstelle und erster Übergangsschnittstelle eine erste Materialflussrate aufweist, das zweite Modul zwischen erster Übergangsschnittstelle und zweiter Übergangsschnittstelle eine zweite Materialflussrate aufweist und das dritte Modul zwischen zweiter Übergangsstelle und Ausgangsschnittstelle eine dritte Materialflussrate aufweist und eine oder mehrere der ersten, zweiten und dritten Materialflussraten, in Abhängigkeit von mindestens einer davon verschiedenen Materialflussrate, ausgewählt aus erster, zweiter und dritter Materialflussrate, und/oder von mindestens einer Zustandsvariablen von mindestens einem der ersten, zweiten und dritten Module, gesteuert wird, um die Materialflussraten der Module anzupassen.
  4. Verfahren nach Anspruch 3, wobei die Steuerung der Materialflussrate durch Steuerung der Taktung des Moduls erfolgt
  5. Verfahren nach Anspruch 3 oder 4, wobei der Anpassung der Materialflussrate durch Zwischenpufferung des Materialflusses innerhalb eines Moduls erfolgt.
  6. Verfahren nach einem der Ansprüche 3 bis 5, wobei die Materialflussrate im ersten und/oder zweiten Modul in Abhängigkeit von dem im dritten Modul verarbeiteten Zelltyp gesteuert wird.
  7. Verfahren nach einem der Ansprüche 3 bis 6, wobei die Materialflussrate im ersten Modul in Abhängigkeit von der Zahl der im zweiten Modul vermehrten Zellen gesteuert wird.
  8. Verfahren nach einem der Ansprüche 3 bis 7, wobei die Zustandsvariable die Zellzahl ist.
  9. Verfahren nach einem der Ansprüche 3 bis 8, wobei die Zustandsvariable die Zelldichte ist.
  10. Verfahren nach einem der Ansprüche 3 bis 9, wobei die Zustandsvariable die Zellvitalität ist.
  11. Verfahren nach einem der Ansprüche 3 bis 10, wobei die Zustandsvariable die Proliferationsrate der Zellen ist.
  12. Verfahren nach einem der vorstehenden Ansprüche, wobei die automatische Isolierung der Zellen aus dem Spendergewebe im ersten Modul in zumindest folgenden Teilschritten durchgeführt wird: – automatisches Abtrennen von gegebenenfalls am Spendergewebe vorhandenen Fettgewebe; – automatisches Einschneiden zum Aufbrechen der Gewebestruktur des Spendergewebes; – automatisches Inkubieren des Spendergewebes mit aufgebrochener Gewebestruktur in Enzymlösung zur Auftrennung der Zellgruppe eines ersten Zelltyps; – automatisches Abtrennen der aus der Zellgruppe des ersten Zelltyps des inkubierten Spendergewebes gelösten Einzelzellen vom Restgewebe eines weiteren Zelltyps; und – automatisches Resuspendieren der Einzelzellen; so dass eine Suspension von aus dem Spendergewebe isolierten Zellen eines Zelltyps erhalten wird.
  13. Verfahren nach Anspruch 12 mit den weiteren Teilschritten: – automatisches Inkubieren des Restgewebes in Enzymlösung zum Auflösen der Zellgruppe des Restgewebes in Einzelzellen des weiteren Zelltyps, – automatisches Resuspendieren der aus dem Zellverband des Restgewebes gelösten Zellen.
  14. Verfahren nach einem der vorstehenden Ansprüche, wobei die automatische Vermehrung isolierter Zellen in dem zweiten Modul zu einer Zellgruppe in zumindest folgenden Teilschritten durchgeführt wird: – Bestimmen der Zellzahl der isolierten Zellen anhand einer von der Suspension der isolierten Zellen gezogenen Zellprobe in einer Zählkammer, – Einstellen der Zellzahl der isolierten Zellen in der Suspension auf eine vorgegebene Zellkonzentration, – Aussäen der isolierten Zellen, gegebenenfalls Aliquotieren der Zellen in einen Bioreaktor – Inkubieren der auf oder in dem Bioreaktor ausgesäten Zellen zur Zellvermehrung;
  15. Verfahren nach Anspruch 14 mit den weiteren Teilschritten: – ein- oder mehrfaches Bestimmen von Zellkultivierungsparameter, ausgewählt aus pH-Wert, Sauerstoffpartialdruck, TEER, Glucose-Gehalt, Trübung, Zellzahl und Zelldichte, vor, während oder im Abschluss an die Inkubation.
  16. Verfahren nach einem der vorstehenden Ansprüche, wobei der automatische Gewebeaufbau aus mindestens einer Zellgruppe vermehrter Zellen im dritten Modul in zumindest folgenden Teilschritten durchgeführt wird: – automatisches Inkontaktbringen eines Gewebeträgers mit einer ersten Schicht der Zellgruppe, – Inkubieren des so hergestellten geschichteten Aufbaus zur Konstitution eines neu konstituierten biologischen Gewebes.
  17. Verfahren nach Anspruch 16 mit dem weiteren Teilschritten: – Aufbringen einer zweiten oder weiteren Schicht einer Zellgruppe von vermehrten Zellen eines weiteren Zelltyps auf die erste Schicht.
  18. Verfahren nach Anspruch 16 oder 17 mit dem weiteren Teilschritt: – Bestimmen der Gewebequalität.
  19. Verfahren nach Anspruch 18, wobei die Gewebequalität mittels optischer Kohärenztomographie (OCT) bestimmt wird.
  20. Verfahren nach einem der vorstehenden Ansprüche, wobei das Spendergewebe ein Biopsat des menschlichen oder tierischen Körpers ist.
  21. Verfahren nach einem der vorstehenden Ansprüche, wobei das Spendergewebe mehrschichtiges Hautgewebe ist.
  22. Verfahren nach einem der vorstehenden Ansprüche, wobei der Zelltyp Fibroblasten sind.
  23. Verfahren nach einem der vorstehenden Ansprüche, wobei der Zelltyp Keratinozyten sind.
  24. Verfahren nach einem der vorstehenden Ansprüche, wobei das neu konstituierte biologische Gewebe ein mehrschichtiges Gewebe ist.
  25. Verfahren nach dem vorstehenden Anspruch, wobei das neu konstituierte biologische Gewebe, enthaltend mindestens eine Zellschicht aus Fibroblasten und mindestens eine Zellschicht aus Keratinozyten, ist.
  26. Artifizielles mehrschichtiges Hautgewebe, herstellbar nach dem Verfahren nach einem der vorstehenden Ansprüche.
  27. Vorrichtung zur automatischen Herstellung von aus tierischem oder menschlichem Spendergewebe neu konstituiertem biologischen Gewebe, aufweisend: – ein erstes Modul (Zellextraktionsmodul), das speziell ausgebildet ist, aus dem Spendergewebe eine Spendergewebezelle mindestens eines Zelltyps zu isolieren und diese Zellen zu vereinzeln, das eine Eingangsschnittstelle und eine erste Übergabeschnittstelle zur Übergabe der isolierten Zellen aufweist, – ein zweites Modul (Zellexpansionsmodul), das speziell ausgebildet ist, die isolierten Zellen des jeweils mindestens einen Zelltyps zu vermehren, das dem ersten Modul nachgeschaltet ist und mit diesem die erste Übergabeschnittstelle teilt, und eine zweite Übergabeschnittstelle zur Übergabe einer Gruppe vermehrter Zellen aufweist; und – ein drittes Modul (Gewebeaufbaumodul), das speziell ausgebildet ist, mit dem mindestens einer Zellgruppe ein biologisches Gewebe neu zu konstituieren, das dem zweiten Modul nachgeschaltet ist und mit diesem die zweite Übergabeschnittstelle teilt und eine Ausgabeschnittstelle zum Ausschleusen des neu konstituierten biologischen Gewebe aufweist.
  28. Vorrichtung nach Anspruch 27, weiter aufweisend eine Steuereinheit zur Erfassung von Materialfluss und/oder Zustandsvariablen von zumindest einem der Module, welches speziell ausgebildet ist, um den Materialfluss in zumindest einem Modul in Abhängigkeit vom Materialfluss und/oder mindestens einer Zustandsvariablen mindestens eines weiteren Moduls zu steuern.
  29. Vorrichtung nach Anspruch 27 und 28, wobei das erste Modul aufweist: – Fettseparatorvorrichtung, zum Abtrennen von gegebenenfalls am Spendergewebe vorhandenen Fettgewebe von dem Spendergewebe, – Zerhackervorrichtung, zum Einschneiden der Gewebestruktrur des Spendergewebes, – Inkubator, zum Inkubieren des Spendergewebes mit eingeschnittener Gewebestruktur, – Pipettiervorrichtung, zum Abtrennen von aus dem Spendergewebe isolierten Zellen vom Restgewebe.
  30. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 27 bis 29, wobei das zweite Modul aufweist: – Pipettiervorrichtung, zum in Suspension Halten der isolierten Zellen und zum Dosieren der Zellsuspension in oder auf einen Bioreaktor, – Zellzählvorrichtung, zur Bestimmung der Zellzahl in der Zellsuspension, – Inkubator, zur Inkubation der auf oder in einem Reaktor ausgesäten isolierten Zellen
  31. Vorrichtung nach Anspruch 30, weiter aufweisend: – Messstation, zur Bestimmung der Zustandsparameter der im oder auf dem Bioreaktor kultivierte ausgesäten Zellen.
  32. Verfahren nach einem der Ansprüche 27 bis 31, wobei das dritte Modul aufweist: – Handhabungsvorrichtung, zum Aufbringen von kultivierten Zellverbänden auf einen Gewebeträger, – Messvorrichtung, zur Bestimmung der Gewebequalität, – Inkubator, zur Inkubation des Gewebeträgers und des darauf angebrachten Zellverbands.
  33. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 27 bis 32, wobei eines oder mehrere der Module jeweils zumindest einem Modulsteuerrechner zur jeweiligen Steuerung der Prozesse in dem Modul und gegebenenfalls zur Bestimmung der Materialflussrate und/oder von mindestens einer Zustandsvariablen des Moduls aufweist.
  34. Vorrichtung nach Anspruch 33, wobei der mindestens eine Modulsteuerrechner mit einem zentralen Steuerrechner in Datenverbindung steht.
  35. Computerprogrammprodukt zur Steuerung des Materialflusses in der in den Ansprüchen 27 bis 34 charakterisierten Vorrichtung, wobei das erste Modul zwischen Eingangsschnittstelle und erster Übergangsschnittstelle eine erste Materialflussrate aufweist, das zweite Modul zwischen erster Übergangsschnittstelle und zweiter Übergangsschnittstelle eine zweite Materialflussrate aufweist und das dritte Modul zwischen zweiter Übergangsstelle und Ausgangsschnittstelle eine dritte Materialflussrate aufweist, charakterisiert durch die Programmschritte: – Erfassen einer oder mehrerer der ersten, zweiten und dritten Materialflussraten und/oder einer oder mehrerer Zustandvariablen der ersten, zweiten und dritten Module; – Steuern mindestens einer davon verschiedenen ersten, zweiten und dritten Materialflussrate, in Abhängigkeit von der erfassten mindestens einen Materialflussrate und/oder Zustandsvariablen, um die Materialflussraten der Module aneinander anzupassen.
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