DE10106008A1 - PCR-Mikroreaktor zum Vermehren von DNA unter Verwendung von Mikromengen eines Probenfluids - Google Patents
PCR-Mikroreaktor zum Vermehren von DNA unter Verwendung von Mikromengen eines ProbenfluidsInfo
- Publication number
- DE10106008A1 DE10106008A1 DE10106008A DE10106008A DE10106008A1 DE 10106008 A1 DE10106008 A1 DE 10106008A1 DE 10106008 A DE10106008 A DE 10106008A DE 10106008 A DE10106008 A DE 10106008A DE 10106008 A1 DE10106008 A1 DE 10106008A1
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- fluid
- microreactor
- substrate
- reaction chamber
- pcr
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Ceased
Links
Classifications
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
- B01L3/00—Containers or dishes for laboratory use, e.g. laboratory glassware; Droppers
- B01L3/50—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes
- B01L3/502—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures
- B01L3/5027—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures by integrated microfluidic structures, i.e. dimensions of channels and chambers are such that surface tension forces are important, e.g. lab-on-a-chip
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
- B01L7/00—Heating or cooling apparatus; Heat insulating devices
- B01L7/52—Heating or cooling apparatus; Heat insulating devices with provision for submitting samples to a predetermined sequence of different temperatures, e.g. for treating nucleic acid samples
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
- B01L7/00—Heating or cooling apparatus; Heat insulating devices
- B01L7/54—Heating or cooling apparatus; Heat insulating devices using spatial temperature gradients
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N27/00—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means
- G01N27/26—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating electrochemical variables; by using electrolysis or electrophoresis
- G01N27/416—Systems
- G01N27/447—Systems using electrophoresis
- G01N27/44756—Apparatus specially adapted therefor
- G01N27/44773—Multi-stage electrophoresis, e.g. two-dimensional electrophoresis
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N27/00—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means
- G01N27/26—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating electrochemical variables; by using electrolysis or electrophoresis
- G01N27/416—Systems
- G01N27/447—Systems using electrophoresis
- G01N27/44756—Apparatus specially adapted therefor
- G01N27/44791—Microapparatus
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N30/00—Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
- G01N30/02—Column chromatography
- G01N30/60—Construction of the column
- G01N30/6095—Micromachined or nanomachined, e.g. micro- or nanosize
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
- B01L2300/00—Additional constructional details
- B01L2300/08—Geometry, shape and general structure
- B01L2300/0809—Geometry, shape and general structure rectangular shaped
- B01L2300/0816—Cards, e.g. flat sample carriers usually with flow in two horizontal directions
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
- B01L2300/00—Additional constructional details
- B01L2300/08—Geometry, shape and general structure
- B01L2300/0861—Configuration of multiple channels and/or chambers in a single devices
- B01L2300/0883—Serpentine channels
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
- B01L2300/00—Additional constructional details
- B01L2300/08—Geometry, shape and general structure
- B01L2300/0887—Laminated structure
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
- B01L2300/00—Additional constructional details
- B01L2300/12—Specific details about materials
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
- B01L2300/00—Additional constructional details
- B01L2300/16—Surface properties and coatings
- B01L2300/161—Control and use of surface tension forces, e.g. hydrophobic, hydrophilic
- B01L2300/163—Biocompatibility
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
- B01L2300/00—Additional constructional details
- B01L2300/18—Means for temperature control
- B01L2300/1805—Conductive heating, heat from thermostatted solids is conducted to receptacles, e.g. heating plates, blocks
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
- B01L2300/00—Additional constructional details
- B01L2300/18—Means for temperature control
- B01L2300/1805—Conductive heating, heat from thermostatted solids is conducted to receptacles, e.g. heating plates, blocks
- B01L2300/1822—Conductive heating, heat from thermostatted solids is conducted to receptacles, e.g. heating plates, blocks using Peltier elements
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
- B01L2300/00—Additional constructional details
- B01L2300/18—Means for temperature control
- B01L2300/1838—Means for temperature control using fluid heat transfer medium
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
- B01L2300/00—Additional constructional details
- B01L2300/18—Means for temperature control
- B01L2300/1861—Means for temperature control using radiation
- B01L2300/1872—Infrared light
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
- B01L2400/00—Moving or stopping fluids
- B01L2400/04—Moving fluids with specific forces or mechanical means
- B01L2400/0403—Moving fluids with specific forces or mechanical means specific forces
- B01L2400/0415—Moving fluids with specific forces or mechanical means specific forces electrical forces, e.g. electrokinetic
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
- B01L2400/00—Moving or stopping fluids
- B01L2400/04—Moving fluids with specific forces or mechanical means
- B01L2400/0403—Moving fluids with specific forces or mechanical means specific forces
- B01L2400/0415—Moving fluids with specific forces or mechanical means specific forces electrical forces, e.g. electrokinetic
- B01L2400/0418—Moving fluids with specific forces or mechanical means specific forces electrical forces, e.g. electrokinetic electro-osmotic flow [EOF]
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
- B01L2400/00—Moving or stopping fluids
- B01L2400/04—Moving fluids with specific forces or mechanical means
- B01L2400/0403—Moving fluids with specific forces or mechanical means specific forces
- B01L2400/0415—Moving fluids with specific forces or mechanical means specific forces electrical forces, e.g. electrokinetic
- B01L2400/0421—Moving fluids with specific forces or mechanical means specific forces electrical forces, e.g. electrokinetic electrophoretic flow
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
- B01L2400/00—Moving or stopping fluids
- B01L2400/04—Moving fluids with specific forces or mechanical means
- B01L2400/0403—Moving fluids with specific forces or mechanical means specific forces
- B01L2400/0442—Moving fluids with specific forces or mechanical means specific forces thermal energy, e.g. vaporisation, bubble jet
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
- B01L2400/00—Moving or stopping fluids
- B01L2400/04—Moving fluids with specific forces or mechanical means
- B01L2400/0475—Moving fluids with specific forces or mechanical means specific mechanical means and fluid pressure
- B01L2400/0481—Moving fluids with specific forces or mechanical means specific mechanical means and fluid pressure squeezing of channels or chambers
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
- B01L2400/00—Moving or stopping fluids
- B01L2400/04—Moving fluids with specific forces or mechanical means
- B01L2400/0475—Moving fluids with specific forces or mechanical means specific mechanical means and fluid pressure
- B01L2400/0487—Moving fluids with specific forces or mechanical means specific mechanical means and fluid pressure fluid pressure, pneumatics
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
- B01L3/00—Containers or dishes for laboratory use, e.g. laboratory glassware; Droppers
- B01L3/50—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes
- B01L3/502—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures
- B01L3/5027—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures by integrated microfluidic structures, i.e. dimensions of channels and chambers are such that surface tension forces are important, e.g. lab-on-a-chip
- B01L3/502707—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures by integrated microfluidic structures, i.e. dimensions of channels and chambers are such that surface tension forces are important, e.g. lab-on-a-chip characterised by the manufacture of the container or its components
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B29—WORKING OF PLASTICS; WORKING OF SUBSTANCES IN A PLASTIC STATE IN GENERAL
- B29C—SHAPING OR JOINING OF PLASTICS; SHAPING OF MATERIAL IN A PLASTIC STATE, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; AFTER-TREATMENT OF THE SHAPED PRODUCTS, e.g. REPAIRING
- B29C66/00—General aspects of processes or apparatus for joining preformed parts
- B29C66/50—General aspects of joining tubular articles; General aspects of joining long products, i.e. bars or profiled elements; General aspects of joining single elements to tubular articles, hollow articles or bars; General aspects of joining several hollow-preforms to form hollow or tubular articles
- B29C66/51—Joining tubular articles, profiled elements or bars; Joining single elements to tubular articles, hollow articles or bars; Joining several hollow-preforms to form hollow or tubular articles
- B29C66/54—Joining several hollow-preforms, e.g. half-shells, to form hollow articles, e.g. for making balls, containers; Joining several hollow-preforms, e.g. half-cylinders, to form tubular articles
- B29C66/549—Joining several hollow-preforms, e.g. half-shells, to form hollow articles, e.g. for making balls, containers; Joining several hollow-preforms, e.g. half-cylinders, to form tubular articles said hollow-preforms being interconnected during their moulding process, e.g. by a hinge
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N30/00—Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
- G01N30/02—Column chromatography
- G01N30/26—Conditioning of the fluid carrier; Flow patterns
- G01N30/28—Control of physical parameters of the fluid carrier
- G01N2030/285—Control of physical parameters of the fluid carrier electrically driven carrier
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N27/00—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means
- G01N27/26—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating electrochemical variables; by using electrolysis or electrophoresis
- G01N27/416—Systems
- G01N27/447—Systems using electrophoresis
- G01N27/44704—Details; Accessories
- G01N27/44717—Arrangements for investigating the separated zones, e.g. localising zones
- G01N27/44721—Arrangements for investigating the separated zones, e.g. localising zones by optical means
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N30/00—Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
- G01N30/02—Column chromatography
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N30/00—Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
- G01N30/02—Column chromatography
- G01N30/60—Construction of the column
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N30/00—Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
- G01N30/02—Column chromatography
- G01N30/60—Construction of the column
- G01N30/6052—Construction of the column body
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N30/00—Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
- G01N30/02—Column chromatography
- G01N30/60—Construction of the column
- G01N30/6052—Construction of the column body
- G01N30/606—Construction of the column body with fluid access or exit ports
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Immunology (AREA)
- Pathology (AREA)
- Clinical Laboratory Science (AREA)
- Electrochemistry (AREA)
- Dispersion Chemistry (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Nanotechnology (AREA)
- Hematology (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
Abstract
Es wird ein Mikroreaktor (11) zum Ausführen der Polymerase-Kettenreaktion (PCR) bei der Vermehrung von DNA unter Verwendung von Mikromengen eines Probenfluids geschaffen. Der Mikroreaktor ist eine Vorrichtung, die aus einer Reaktionszone, die durch zwei oder mehrere Innenoberflächen definiert ist und angepaßt ist, um etwa 1 bis 500 mul eines Fluids zu enthalten, einer Einrichtung zum Einbringen von PCR-Reaktionskomponenten in die Reaktionszone, einer Einrichtung zum Entfernen des PCR-Reaktionsproduktes aus der Reaktionszone und einer Einrichtung zum Steuern der Temperatur der Reaktionszone besteht, wobei die Vorrichtung aus einem Material hergestellt ist, das unter den Bedingungen, bei denen eine PCR-Reaktion durchgeführt wird, thermisch, chemisch und mechanisch stabil ist. Ein optimales Material ist Polyimid. Der Mikroreaktor kann mehr als eine Reaktionszone enthalten und kann zusätzlich andere Typen von Mikrostrukturen und Mikromerkmalen enthalten, wie z. B. Mikrokanäle, die bei chemischen und biochemischen Trennungen verwendet werden können.
Description
Diese Erfindung bezieht sich allgemein auf das Gebiet von
miniaturisierten Vorrichtungen zum Durchführen chemischer
und biochemischer Prozesse und insbesondere bezieht sich
dieselbe auf einen neuartigen Mikroreaktor zum Durchführen
einer DNS-Verstärkung bzw. Vermehrung unter Verwendung der
Polymerase Kettenreaktion oder "PCR" (PCR = polymerase
chain reaction).
Bei einem Probenanalysegerät ergeben kleinere Abmessungen
im allgemeinen eine verbesserte Leistungsfähigkeits
charakteristik und gleichzeitig reduzierte Herstellungs-
und Analysekosten. Miniaturisierte Trennungssysteme liefern
beispielsweise einen effektiveren Systementwurf, ergeben
einen geringeren Aufwand und ermöglichen eine erhöhte Ana
lysegeschwindigkeit, einen verringerten Proben- und Lö
sungsmittelverbrauch und die Möglichkeit einer erhöhten Er
fassungswirksamkeit.
Dementsprechend sind mehrere Lösungsansätze in Verbindung
mit der Miniaturisierung von Vorrichtung für eine Verwen
dung bei einer chemischen Analyse entwickelt worden, und
zwar insbesondere bei der Mikrosäulenflüssigkeitschromato
graphie (µLC; µLC = micro column liquid chromatography),
bei der Säulen mit Durchmessern von 100 bis 200 µm verwen
det werden, bei der Kapillarelektrophorese (CE; CE = capil
lary electrophoresis), bei der eine elektrophoretische
Trennung in Kapillaren mit einem Durchmesser in der Größen
ordnung von 25 bis 100 µm durchgeführt wird, und bei der
Mikrokanalelektrophorese (MCE; MCE = microchannel elec
trophoresis), bei der eine Elektrophorese in einem Mikroka
nal auf einem im wesentlichen planaren Substrat ausgeführt
wird. Der herkömmliche Lösungsansatz bei der Miniaturisie
rungstechnologle, wie sie bei der CE und bei der µLC ange
wendet wird, umfaßt die Verwendung eines Silizium enthal
tenden Materials, d. h. eine Kapillare, die aus Quarzgut.
(fused silica), Quarz oder Glas hergestellt ist. Bei der
MCE, einem attraktiven Verfahren, das im Zusammenhang mit
Anwendungen mit einem hohen Durchsatz nützlich ist, und das
eine Reduzierung der Gesamtsystemgröße relativ zu der CE
ermöglicht, sind miniaturisierte Vorrichtung durch Silizi
ummikrobearbeitung oder Lithographietechniken, z. B. der
Mikrolithographie, dem Formen und dem Ätzen, hergestellt
worden. Siehe hierzu beispielsweise Fan et al. (1994) Anal.
Chem. 66(1): 177-184; Manz et al., (1993) Adv. in Chrom.
33: 1-66; Harrison et al. (1993), Sens. Actuators, B
B.0(2): 107-116; Manz et al. (1991), Trends Anal. Chem.
10(5): 144-149; und Manz et al. (1990) Sensors and Actuators
B (Chemical) B1(1-6): 249-255. Die Verwendung von Mikrobear
beitungstechniken, um miniaturisierte Trennungssysteme in
Silizium herzustellen, liefert den praktischen Vorteil, daß
eine Massenherstellung solcher Systeme ermöglicht wird, und
es gibt mehrere Techniken, die durch die Mikroelektronikin
dustrie zum Herstellen von Mikrostrukturen aus Siliziumsub
straten nun entwickelt worden sind. Beispiele solcher Mi
krobearbeitungstechniken, um miniaturisierte Trennungsvor
richtung auf Silizium- oder Borosilikatglas-Chips herzu
stellen, können den U.S.-Patenten US 5,194,133, erteilt an
Clark, US 5,132,012, erteilt an Miura et al., 4,908,112,
erteilt an Pace, und 4,891,120, erteilt an Sethi et al.,
entnommen werden.
Die Verwendung von Silizium enthaltenden Substraten, wie z. B.
Quarzgut-, Quarz- und Glas, bei Mikroanalysevorrichtung
ist in vielerlei Hinsicht problematisch. Silizium
dioxidsubstrate weisen beispielsweise hochenergetische
Oberflächen auf und absorbieren stark viele Verbindungen,
und zwar insbesondere Basen. Siliziumdioxidmaterialien ge
hen zudem zu einem erheblichen Ausmaß in Lösung, wenn die
selben mit basischen Lösungen verwendet werden. Darüber
hinaus wird, wenn dieselben bei Elektrophoreseanwendungen
verwendet werden, die Innenoberfläche einer Silikakapillare
oder eines Silikamikrokanals bei einem basischen pH-Wert
als ein Ergebnis der Deprotonierung der Oberflächensilanol
gruppen (d. h. dieselben liegen in der Form von anionischen
Si-O-Gruppen vor) negativ aufgeladen. Die Oberflächenladung
an dem Inneren der Kapillare oder des Mikrokanals ver
schlimmert nicht nur das Problem der ungewollten Adsorption
eines gelösten Stoffes, sondern moduliert ferner die Ge
schwindigkeit des Elektrosomoseflusses (ebenfalls als
"Elektroendoosmosefluß" oder EOF bezeichnet) an einer
nichtmodifizierten Oberfläche, was wiederum die Empfind
lichkeit und die Reproduzierbarkeit der durchgeführten che
mischen Analyse beeinträchtigt. (Das heißt, daß die EOF-
Geschwindigkeit eine Funktion des Zeta-Potentials ζ ist,
das im wesentlichen durch die Oberflächenladung bestimmt
wird.) Die Mikroherstellung unter Verwendung von Silizium
an sich ist auf ähnliche Weise problematisch, insofern, als
daß sich sogar unter milden Oxidationsbedingungen eine Si
likaoberfläche auf einem Siliziumsubstrat bilden wird.
Aus den im vorhergehenden beschriebenen Gründen wäre es
wünschenswert, Mikroanalyse- und andere miniaturisierte
Vorrichtungen aus Materialien herzustellen, die nicht Sili
zium-basiert sind, wie z. B. unter Verwendung unaufwendiger
und ohne weiteres verfügbarer Polymermaterialien. Es würde
ferner wünschenswert sein, die Verwendbarkeit von Mikrovor
richtungen über die elektrophoretischen und chromatographi
schen Trennungstechniken hinaus auf andere Typen von chemi
schen Prozessen zu erweitern, nämlich auf Prozesse, die ho
he Temperaturen, pH-Extremwerte, scharfe Reagenzien oder
dergleichen einbeziehen können. Die vorliegende Erfindung
liefert solche Mikroanalysevorrichtungen.
Das Gebiet, auf das sich die vorliegende Erfindung bezieht,
ist der Bioanalyse zugeordnet. Eine wichtige Technik, die
gegenwärtig bei der Bioanalyse und bei dem aufstrebenden
Gebiet der Genomenforschung verwendet wird, ist die Polyme
rase-Kettenreaktion (PCR; PCR = polymerase chain reaction)
-Verstärkung bzw. Vermehrung der DNA bzw. DNS. Als ein Er
gebnis dieses leistungsfähigen Werkzeuges ist es möglich,
von ansonsten nicht erfaßbaren Mengen von DNA auszugehen
und verstärkte bzw. vermehrte Mengen des Materials für eine
anschließende Analyse zu erzeugen. Die Technik wird in dem
U.S.-Patent Nr. 4,683,195, erteilt an Mullis et al., und in
verwandten U.S.-Patenten Nr. 4,683,202, 4,800,159 und
4,965,188, erteilt an Mullis et al., beschrieben. Automati
sierte Systeme zum Durchführen einer PCR sind bekannt, wie
sie beispielsweise in den U.S.-Patenten Nr. 5,333,675 und
5,656,493, erteilt an Mullis et al., beschrieben sind. Die
PCR verwendet eine sich wiederholende Folge von Schritten,
um Kopien von Polynucleotidsequenzen zu erzeugen, die zwi
schen zwei Initiator- ("Primer"- bzw. "Starter"-) Sequenzen
positioniert sind. Ausgehend von einer Schablone (Templa
te), zwei Primersequenzen (mit einer Länge von üblicherwei
se etwa 15-30 Nucleotiden), einem PCR-Puffer, freien Deoxy
nucleosid-Tri-Phosphaten (dNTPs) und einer thermostabilen
DNA-Polymerase (üblicherweise Taq-Polymerase) werden diese
Komponenten gemischt und daraufhin erhitzt, um die doppel
strängige DNA zu trennen. Ein darauffolgender Abkühlungs
schritt ermöglicht, daß die Primere zu komplementären Se
quenzen an den einsträngigen DNA-Molekülen anlagern, die
die Sequenz, die vermehrt werden soll, enthalten. Eine
Nachbildung bzw. Replikation der Zielsequenz wird dann
durch die DNA-Polymerase erzielt werden, die einen Strang
der DNA erzeugt, die zu der Schablone komplementär ist. Ei
ne Wiederholung dieses Prozesses verdoppelt die Anzahl von
Kopien der interessierende Sequenz, wobei mehrere Zyklen
die Anzahl von Kopien exponentiell erhöhen.
Da die PCR ein wiederholtes Hin-Und-Her-Steuern zwischen
höheren und niedrigeren Temperaturen erfordert, müssen PCR-
Vorrichtungen aus Materialien hergestellt sein, die in der
Lage sind, solchen Temperaturänderungen stand zu halten.
Die Materialien müssen mechanisch und chemisch bei hohen
Temperaturen stabil sein, und in der Lage sein, wiederhol
ten Temperaturänderungen ohne eine mechanische Verschlech
terung standzuhalten. Darüber hinaus müssen die Materialien
mit der PCR-Reaktion selbst verträglich sein, und dürfen
nicht die Polymerase verhindern oder DNA binden.
Bis heute verbleiben jedoch viele Probleme bei der Durch
führung einer PCR in Mikrovorrichtungen. Ein Problem umfaßt
die geringe thermische Stabilität vieler Materialien. Dies
bedeutet, daß viele Materialtypen, wie z. B. Polymermate
rialien, den hin-und-her-gesteuerten Temperaturen, die bei
der PCR verwendet werden und sich typischerweise in dem Be
reich von etwa 37°C bis 90°C befinden, ohne einen erhebli
chen oder vollständigen Verlust der mechanischen Integrität
nicht standhalten können. Zusätzlich können auf einer Sub
stratoberfläche Verunreinigungen vorhanden sein oder aus
derselben auslaugen, was das präzise Gleichgewicht der ge
eigneten Inhaltsstoffe (Metallionen, Salze, Puffersysteme,
Oligonucleotide, Primere und Polymerasen) beeinträchtigt,
das für die PCR erforderlich ist, was wiederum nicht er
folgreiche Verstärkungs- bzw. Vermehrungsreaktionen ergibt.
Ferner kann das Polymeraseenzym oder jede der Komponenten,
die in die PCR-Reaktion involviert ist, an eine Mikrokanal
oberfläche gebunden oder dort adsorbiert werden. Ein Kon
takt zwischen der Polymerase und einer Substratoberfläche
wird allgemein eine irreversible Denaturierung ergeben.
Diese Typen von "Biobewuchs" sind wegen des sehr hohen
Oberflächenbereichs-zu-Volumen-Verhältnisses insbesondere
bei Kapillaren oder Mikrokanälen mit Mikrometer- oder Sub
mikrometer-Abmessungen problematisch.
Die Aufgabe der vorliegenden Erfindung besteht darin, einen
Mikroreaktor, eine Vorrichtung und ein Verfahren zum Durch
führen der Polymerase-Kettenreaktion (PCR) und ein Verfah
ren zum Vermehren der Menge eines interessierenden DNA-
Moleküls zu schaffen, die eine unaufwendigere Einsetzbar
keit aufweisen.
Diese Aufgabe wird durch einen Mikroreaktor gemäß Anspruch
15, eine Vorrichtung gemäß Anspruch 1 und ein Verfahren ge
mäß Anspruch 34, 48 oder 59 gelöst.
Die vorliegende Erfindung erfüllt den im vorhergehenden er
wähnten Bedarf in der Technik und liefert einen PCR-
Mikroreaktor zum Vermehren einer DNA unter Verwendung von
Mikromengen eines Proben-Fluids. Bei seiner einfachsten
Ausführung umfaßt der PCR-Mikroreaktor eine Reaktionskam
mer, die durch zwei oder mehr Innenoberflächen definiert
ist, eine Einrichtung zum Einbringen von PCR-Reak
tionskomponenten in die Kammer, eine Einrichtung zum Ent
fernen des PCR-Reaktionsproduktes aus der Kammer und eine
Einrichtung zum Steuern der Temperatur der Reaktionskammer,
wobei die Vorrichtung aus einem Material hergestellt ist,
das unter den Bedingungen, bei denen eine PCR-Reaktion
durchgeführt wird, thermisch, chemisch und mechanisch sta
bil ist, und dieselbe eine Reaktionskammer verwendet, die
angepaßt ist, um Fluid in dem Bereich von etwa 1 µl bis
500 µl zu enthalten. Bevorzugte Materialien sind diejenigen,
die eine reduzierte Adsorption eines gelösten Stoffes, wie
z. B. Biomolekülen, wie z. B. Proteinen, Nucleinsäuren,
usw., zeigen und modifiziert, bedeckt bzw. beschichtet oder
auf andere Weise behandelt werden können, um den Elektroos
mosefluß zu optimieren.
Bei einem zweiten Ausführungsbeispiel der Erfindung umfaßt
der PCR-Mikroreaktor folgende Merkmale:
ein Substrat mit einer ersten und einer zweiten im wesent lichen planaren Oberfläche, die sich gegenüber liegen, wo bei in der ersten planaren Oberfläche ein Hohlraum und zu mindest ein Mikrokanal gebildet sind, und wobei der Hohl raum als eine Reaktionszone dient, die sich in Fluidkommu nikation mit jedem Mikrokanal befindet;
eine Abdeckplatte, die über der ersten planaren Oberfläche angeordnet ist, und die in Kombination mit dem Hohlraum ei ne Reaktionskammer und mit jedem Mikrokanal eine Mikrosäule definiert; und
zumindest ein Einlaßtor und zumindest ein Auslaßtor, die mit der Reaktionskammer direkt oder indirekt kommunikativ verbunden sind und den Durchtritt von Fluid von einer ex ternen Quelle in und durch die Reaktionskammer ermöglichen,
wobei das Substrat und die Abdeckplatte aus einem Material bestehen, das thermisch und chemisch stabil und gegen Bio bewuchs resistent ist.
ein Substrat mit einer ersten und einer zweiten im wesent lichen planaren Oberfläche, die sich gegenüber liegen, wo bei in der ersten planaren Oberfläche ein Hohlraum und zu mindest ein Mikrokanal gebildet sind, und wobei der Hohl raum als eine Reaktionszone dient, die sich in Fluidkommu nikation mit jedem Mikrokanal befindet;
eine Abdeckplatte, die über der ersten planaren Oberfläche angeordnet ist, und die in Kombination mit dem Hohlraum ei ne Reaktionskammer und mit jedem Mikrokanal eine Mikrosäule definiert; und
zumindest ein Einlaßtor und zumindest ein Auslaßtor, die mit der Reaktionskammer direkt oder indirekt kommunikativ verbunden sind und den Durchtritt von Fluid von einer ex ternen Quelle in und durch die Reaktionskammer ermöglichen,
wobei das Substrat und die Abdeckplatte aus einem Material bestehen, das thermisch und chemisch stabil und gegen Bio bewuchs resistent ist.
Ein zusätzliches Ausführungsbeispiel der vorliegenden Er
findung liefert ein Verfahren zum Durchführen der Polymera
se-Kettenreaktion (PCR), um eine DNA in einer Probe zu ver
mehren bzw. zu verstärken, das das Erhitzen der Probe, um
die doppelsträngige DNA in eine einzelsträngige DNA zu
trennen, das Abkühlen der Probe, um eine Hybridisierung von
Primeroligonucleotiden zu der einzelsträngigen DNA zu er
möglichen, das Replizieren der DNA unter Verwendung einer
DNA-Polymerase und das Wiederholen der im vorhergehenden
erwähnten Schritte, um den gewünschten Grad an Vermehrung
zu erzielen, aufweist,
wobei die PCR in einem Mikroreaktor durchgeführt wird, der
aus einem Material besteht, das unter den Bedingungen, bei
denen die PCR-Reaktion durchgeführt wird, thermisch, che
misch und mechanisch stabil ist und eine Reaktionskammer
verwendet, die angepaßt ist, um etwa 1 µl bis 500 µl Fluid
zu enthalten.
Bei einem weiteren Ausführungsbeispiel wird ein Verfahren
zum Vermehren der Menge eines interessierenden DNA-
Moleküls, das in einem kleinen Volumen eines Probenfluids
enthalten ist, unter Verwendung der Polymerase-Ketten
reaktion geliefert, wobei das Verfahren folgende Schritte
aufweist:
- a) Einbringen von bis zu etwa 10 µl eines Probenfluids in
einen Mikroreaktor, wobei das Probenfluid das interes
sierende DNA-Molekül in doppelsträngiger Form, ein er
stes und ein zweites Primermolekül, die zu entgegen
gesetzten Strängen des DNA-Moleküls komplementär sind,
eine thermostabile DNA-Polymerase, freie Desoxynucleo
sidtriphosphate und einen PCR-Puffer enthält, und wo
bei der Mikroreaktor folgende Merkmale aufweist:
ein Substrat mit einer ersten und einer zweiten im we sentlichen planaren Oberfläche, die sich gegenüber liegen, wobei in der ersten planaren Oberfläche des Substrates ein Hohlraum gebildet ist, und wobei der Hohlraum als eine Reaktorzone dient,
eine Abdeckplatte, die über der ersten planaren Ober fläche angeordnet ist, wobei die Abdeckplatte in Kom bination mit dem Hohlraum eine Reaktionskammer defi niert, und
zumindest ein Einlaßtor und zumindest ein Auslaßtor, die sich mit der Reaktionskammer in Fluidkommunikation befinden, wobei die Tore den Durchtritt des Probenflu ids von einer externen Quelle in und durch die Reakti onskammer ermöglichen, wodurch ein Fluidflußweg defi niert wird,
wobei das Substrat und die Abdeckplatte aus einem Ma terial bestehen, das thermisch stabil und gegen Biobe wuchs resistent ist; - b) Anlegen einer Antriebskraft an die Vorrichtung, um das Probenfluid entlang des Flußweges in die Reaktionskam mer zu bewegen;
- c) Aufheizen des Probenfluids in der Reaktionskammer, um die doppelsträngige DNA in eine einzelsträngige DNA zu trennen;
- d) Abkühlen der Probe, um eine Hybridisierung der Primer moleküle zu entgegengesetzten Strängen der einzel strängigen DNA und eine Replikation der einzelsträngi gen DNA durch die DNA-Polymerase zu ermöglichen; und
- e) Wiederholen der Schritte (c) und (d), um den gewünsch ten Grad an Vermehrung zu erzielen.
Bei einem wiederum weiteren Ausführungsbeispiel der Erfin
dung wird ein Verfahren zum Vermehren der Menge eines in
teressierenden DNA-Moleküls, das in einem kleinen Volumen
eines Probenfluids enthalten ist, unter Verwendung der Po
lymerase-Kettenreaktion geliefert, wobei das Verfahren fol
gende Schritte aufweist:
- a) Einbringen von bis zu etwa 10 µl eines Probenfluids in den Mikroreaktor des zweiten Ausführungsbeispiels der Erfindung, wobei das Probenfluid das interessierende DNA-Molekül in doppelsträngiger Form, ein erstes und ein zweites Primermolekül, die zu entgegengesetzten Strängen des DNA-Moleküls komplementär sind, eine thermostabile DNA-Polymerase, freie Deoxynucleosid triphosphate und einen PCR-Puffer enthält,
- b) Anlegen einer Antriebskraft an die Vorrichtung, um das Probenfluid entlang des Flußweges in die Reakti onskammer zu bewegen;
- c) Aufheizen des Probenfluids in der Reaktionskammer, um die doppelsträngige DNA in eine einzelsträngige DNA zu trennen;
- d) Abkühlen der Probe, um eine Hybridisierung der Primer moleküle zu entgegengesetzten Strängen der einzel strängigen DNA und eine Replikation der einzelsträngi gen DNA durch die DNA-Polymerase zu ermöglichen; und
- e) Wiederholen der Schritte (c) und (d), um den gewünsch ten Grad an Vermehrung zu erzielen.
Bevorzugte Ausführungsbeispiele der vorliegenden Erfindung
werden nachfolgend bezugnehmend auf die beiliegenden Zeich
nungen näher erläutert. Es zeigen:
Fig. 1 eine perspektivische schematische Ansicht eines
Ausführungsbeispiels eines Mikroreaktors der Erfindung;
Fig. 2 eine perspektivische schematische Ansicht eines
zweiten Ausführungsbeispiels eines Mikroreaktors
der Erfindung;
Fig. 3 eine perspektivische schematische Ansicht eines
weiteren Ausführungsbeispiels eines Mikroreaktors
der Erfindung;
Fig. 4 eine perspektivische schematische Ansicht einer
Mikroreaktorvorrichtung der Erfindung, die sowohl
einen Trennungsmikrokanal als auch ein auf der
Vorrichtung befindliches bzw. Auf-Vorrichtung-
(on-device) Reservoir aufweist;
Fig. 5 eine Draufsicht eines Mikroreaktors mit einer
"Auf-Vorrichtung"-Reaktionskammer, die durch die
Ausrichtung einer Reservoireinrichtung gebildet
wird, die auf zwei gegenüberliegenden planaren
Oberflächen eines einzelnen flexiblen Substrats
gebildet ist;
Fig. 6 eine Draufsicht einer Außenoberfläche eines Mi
kroreaktors, bei dem eine optionale bzw. wahlwei
se Betätigungseinrichtung über einer "Auf-
Vorrichtung"-Reaktionskammer angeordnet ist;
Fig. 7 eine bildliche Darstellung des Mikroreaktors von
Fig. 6;
Fig. 8 eine Querschnittansicht des Betätigers, der in
Fig. 6 gezeigt ist, entlang den Linien V-V und
eine optionale Membran, die zwischen der Reakti
onskammer und der Betätigungseinrichtung angeord
net ist;
Fig. 9 eine Photographie eines 2%-NuSieve-Agarosegels,
das unter Verwendung von SyberGreenI® und UV-
Licht sichtbar wurde, wobei diese Photographie
die Vermehrung eines Teilfragments eines 308-bp-
Vermehrungsproduktes veranschaulicht, wie es bei
Beispielen 1-8 beschrieben wird.
Bevor die Erfindung detailliert beschrieben wird, wird dar
auf hingewiesen, daß, so lange nichts anderes angezeigt
wird, diese Erfindung nicht auf spezielle Materialien, Kom
ponenten oder Herstellungsprozesse beschränkt ist, die als
solche variieren können. Es wird darauf hingewiesen, daß
die Terminologie, die hierin verwendet wird, lediglich zu
Zwecken der Beschreibung spezieller Ausführungsbeispiele
besteht, und daß dieselbe nicht begrenzend wirken soll. Es
muß darauf hingewiesen werden, daß die Singularformen "ei
ner", "eine", "ein", "der", "die" und "das" wie sie in der
Beschreibung und in den beiliegenden Ansprüchen verwendet
werden, auch Pluralbezüge umfassen, so lange der Zusammen
hang nicht deutlich etwas anderes anzeigt. Folglich umfaßt
die Bezugnahme auf "ein Material" beispielsweise Mischungen
aus Materialien, eine Bezugnahme auf "eine Reaktionskammer"
mehrere Reaktionskammern und dergleichen.
In dieser Beschreibung und in den Ansprüchen, die folgen,
wird auf eine Anzahl von Ausdrücken Bezug genommen, die de
finiert sein sollen, um die folgenden Bedeutungen zu haben:
Der Ausdruck "Mikroreaktor" bezieht sich auf eine Vorrich
tung mit Merkmalen mit Mikrometer- oder Submikrometerabmes
sungen, die bei einer Vielzahl von chemischen Prozessen
verwendet werden kann, die sehr kleine Mengen von Fluid um
fassen (d. h. "Mikromengen" von Fluid in dem Bereich von
etwa 1 µl bis 500 µl und vorzugsweise in dem Bereich von
etwa 10 µl bis 200 µl). Der Prozeß von hauptsächlichem In
teresse ist die Vermehrung von DNA unter Verwendung der Po
lymerase-Kettenreaktion. Wahlweise kann die DNA-Vermehrung
bzw. Verstärkung (DNA amplification) zusammen mit einer
oder mehreren anderen Typen von Prozeduren durchgeführt
werden. Solche Prozeduren umfassen ohne auf dieselben be
schränkt zu sein: Präparationstechniken, die vor der PCR
durchgeführt werden; eine Analyse und eine Trennung unter
Verwendung von beispielsweise der Elektrophorese (z. B. CE
oder MCE) oder der Chromatographie (z. B. µLC); und Post-
bzw. Nach-Reaktionsreinigungsprozesse. Die Merkmale der Mi
kroreaktoren sind an spezielle Verwendungen angepaßt. Mi
kroreaktoren beispielsweise, die nicht nur bei der PCR-
Vermehrung von DNA sondern ferner bei Trennungsprozessen,
wie z. B. der MCE, verwendet werden, enthalten Mikrokanäle
(die hierin bei der Offenbarung als "Mikrosäulen" bezeich
net werden, d. h. wenn sich die Abdeckplatte an Ort und
Stelle auf der Mikrokanalenthaltenden Substratoberfläche
befindet) mit einem Durchmesser von der Größenordnung von
1 µm bis 200 µm und typischerweise von 10 µm bis 75 µm und
mit einer Länge von etwa 0,1 bis 50 cm. Mikroreaktoren, die
lediglich bei einer DNA-Vermehrung verwendet werden, werden
Reaktionszonen (die hierin bei der Offenbarung als "Reakti
onskammern" bezeichnet werden, d. h. wiederum dann, wenn
sich die Abdeckplatte an Ort und Stelle auf der Mikrokanal
enthaltenden Substratoberfläche befindet) mit einem Volumen
von etwa 1 µl bis etwa 500 µl und typischerweise von etwa
10 µl bis 200 µl enthalten.
Der Ausdruck "Erfassungseinrichtung", wie er hierin verwen
det wird, bezieht sich auf jegliche Einrichtung, Struktur
oder Konfiguration, die es ermöglicht, eine Probe in einer
Mikroanalysevorrichtung der Erfindung unter Verwendung ana
lytischer Erfassungstechniken, die in der Technik wohlbe
kannt sind, zu untersuchen bzw. abzufragen. Folglich kann
eine Erfassungseinrichtung eine oder mehrere Öffnungen um
fassen, die mit beispielsweise einer Reaktionskammer oder
einem Mikrokanal kommunikativ verbunden sind, und die es
einer externen Erfassungsvorrichtung ermöglichen, mit der
Kammer oder dem Mikrokanal schnittstellenmäßig verbunden zu
sein, um einen Analysestoff in derselben bzw. in demselben
zu erfassen. Durch die Anordnung zweier
Erfassungseinrichtungen, die sich einander relativ zu der
Reaktionskammer oder dergleichen gegenüberliegen, wird ein
"Erfassungsweg" gebildet, der die Erfassung von
Analysestoffen, die durch die Reaktionskammer fließen,
unter Verwendung von Erfassungstechniken ermöglicht, die in
der Technik wohlbekannt sind. Ein "optischer Erfassungsweg"
bezieht sich auf eine Konfiguration oder Anordnung einer
Erfassungseinrichtung, um einen Weg zu bilden, wodurch eine
elektromagnetische Strahlung in der Lage ist, von einer
externen Quelle zu einer Einrichtung zum Empfangen von
Strahlung zu gelangen, wobei die Strahlung die
Reaktionskammer, den Mikrokanal oder dergleichen
durchquert. Bei dieser Konfiguration können Analysestoffe,
die durch den Mikroreaktor fließen, über die Transmission
der Strahlung senkrecht zu der Fluidflußrichtung erfaßt
werden. Eine Vielzahl von Techniken für eine externe
optische Erfassung können ohne weiteres mit den
vorliegenden Mikroreaktoren schnittstellenmäßig verbunden
werden, einschließlich, aber nicht auf diese begrenzt, der
UV/Vis- (Vis = visuell = sichtbar), Nah-IR-, Fluoreszenz-,
Brechungsindex- (RI; RI = refractive index) und Raman-
Technik.
Eine "transparente Substanz", wie sie hierin verwendet
wird, bezieht sich auf eine Substanz, die in der Lage ist,
Licht unterschiedlicher Wellenlängen durchzulassen. Folg
lich ist eine "transparente Lage" als eine Lage einer Sub
stanz definiert, die für spezifische Typen einer interes
sierenden Strahlung oder interessierenden Teilchen durch
lässig ist. Die transparenten Lagen, die in dem Zusammen
hang mit der Erfindung verwendet werden können, werden aus
Materialien, wie z. B. Quarz, Saphir, Diamant und Quarzgut,
oder aus Polymermaterialien, wie z. B. Polystyren und Sty
renbutadiencopolymer, gebildet. "Optisch transparent" be
zieht sich auf ein Material, das in der Lage ist, Licht mit
Wellenlängen in dem Bereich von etwa 150 nm bis 800 nm
durchzulassen.
Ein "Erfassungsschnittpunkt" bezieht sich auf eine Konfigu
ration, bei der eine Mehrzahl von Erfassungseinrichtungen,
die mit dem Inneren der vorliegenden Mikroreaktoren kommu
nikativ verbunden sind, an einer speziellen Position in
denselben zusammen angeordnet sind. Eine Anzahl von Erfas
sungstechniken können an einer Probe oder an einem getrenn
ten Analysestoff an dem Erfassungsschnittpunkt gleichzeitig
durchgeführt werden. Ein Erfassungsschnittpunkt wird gebil
det, wenn sich eine Mehrzahl von Erfassungswegen kreuzt,
oder wenn eine Erfassungseinrichtung, wie z. B. eine Aper
tur bzw. Öffnung, mit dem Trennungsabteil an im wesentli
chen dem selben Punkt wie ein Erfassungsweg kommunikativ
verbunden ist. Die Probe oder ein getrennter Analysestoff
können auf diese Weise unter Verwendung einer Kombination
aus UV/Vis- und Fluoreszenz-Techniken, optischen und elek
trochemischen Techniken, optischen und elektrischen Techni
ken und derartigen Kombinationen analysiert werden, um
hochempfindliche Erfassungsinformationen zu liefern. Siehe
beispielsweise Beckers et al. (1988) J. Chromatogr.
452: 591-600 und U.S.-Patent Nr. 4,927,265, erteilt an
Brownlee.
Der Ausdruck "Flüssigphasenanalyse" wird verwendet, um sich
auf jegliche Analyse zu beziehen, die an einem gelösten
Stoff in der flüssigen Phase ausgeführt wird. Dementspre
chend umfaßt die "Flüssigphasenanalyse", wie sie hierin
verwendet wird, chromatographische Trennungen, elektropho
retische Trennungen und elektrochromatographische Trennun
gen. Der allgemeine Ausdruck "Analyse" bezieht sich auf ei
ne Charakterisierung einer Probe oder eine Identifikation
einer oder mehrerer Komponenten in derselben und unter
scheidet sich von einem chemischen oder biochemischen "Pro
zeß", bei dem ein Material chemisch oder biochemisch verän
dert wird, um ein gewünschtes Produkt zu erzeugen. Die DNA-
Vermehrung unter Verwendung der PCR-Technik stellt hierin
einen "Prozeß" dar, obwohl die PCR-Reaktion auch in Verbin
dung mit einem analytischen Prozeß durchgeführt werden kann
(bei dem beispielsweise die Reaktion überwacht wird, oder
wenn das Reaktionsprodukt analysiert wird, bevor dasselbe
aus der Vorrichtung entfernt wird).
"Chromatographische" Prozesse umfassen allgemein Vorzugs
trennungen von Komponenten, und umfassen Verfahren mit Um
kehrphase, eine hydrophobische Wechselwirkung, einen Ionen
austausch, die Molekularsiebchromatographie und derglei
chen.
"Elektrophoretische" Trennungen beziehen sich auf die Wan
derung von Teilchen oder Makromolekülen mit einer elektri
schen Nettoladung, wobei die Wanderung durch ein elektri
sches Feld beeinflußt wird. Dementsprechend umfassen elek
trophoretische Trennungen Trennungen, die in Säulen durch
geführt werden, die mit Gelen (wie z. B. Polyacrylamid,
Agarose und Kombinationen derselben) gepackt sind, sowie
Trennungen, die in Lösung durchgeführt werden.
"Elektrochromatographische" Trennungen beziehen sich auf
Trennungen, die unter Verwendung einer Kombination aus
elektrophoretischen und chromatographischen Techniken be
wirkt werden. Exemplarische elektrochromatographische Tren
nungen umfassen Gepackte-Säule-Trennungen unter Verwendung
einer elektromotorischen Kraft (Knox et al. (1987) Chroma
tographia 24: 135; Knox et al. (1989) J. Liq. Chromatogr
12: 2435; Knox et al. (1991) Chromatographia 32: 317), und
mizellare elektrophoretische Trennungen (Terabe et al.
(1985) Anal. Chem. 57: 834-841).
Der Ausdruck "Spritzgießen" wird verwendet, um sich auf ei
nen Prozeß zum Formen von Kunststoff- oder Nicht-
Kunststoff-Keramik-Formen durch Einbringen einer abgemesse
nen Länge eines geschmolzenen Kunststoff- oder Keramiksub
strates in Formen (oder Gußformen) zu beziehen. Bei einem
Ausführungsbeispiel der vorliegenden Erfindung können mi
niaturisierte Vorrichtungen unter Verwendung des Spritzgie
ßens hergestellt werden.
Der Ausdruck "Prägen" wird verwendet, um sich auf einen
Prozeß zum Bilden von Polymer-, Metall- oder Keramik-Formen
zu beziehen, indem eine Prägeform in Kontakt mit einem be
reits existierenden Werkstück aus Polymer, Metall oder Ke
ramik gebracht wird. Eine gesteuerte Kraft wird zwischen
der Prägeform und dem bereits existierenden Materialwerk
stück derart angelegt, daß die Struktur und Form, die durch
die Prägeform bestimmt wird, in das bereits existierende
Werkstück aus Polymer, Metall oder Keramik gedrückt wird.
Der Ausdruck "Heißprägen" wird verwendet, um sich auf einen
Prozeß zum Bilden von Polymer-, Metall- oder Keramikformen
zu beziehen, indem eine Prägeform in Kontakt mit einem er
hitzten bereits existierenden Werkstück aus Polymer, Metall
oder Keramik gebracht wird. Das bereits existierende Mate
rialwerkstück wird derart erhitzt, daß dasselbe mit der
Prägeform konform ist, wenn eine gesteuerte Kraft zwischen
der Prägeform und dem bereits existierenden Werkstück ange
legt wird. Die sich ergebende Polymer-, Metall- oder Kera
mikform wird abgekühlt und daraufhin von der Prägeform ent
fernt.
Der Ausdruck "LIGA-Prozeß" wird verwendet, um sich auf ei
nen Prozeß zum Herstellen von Mikrostrukturen mit großen
Längenverhältnissen und einer erhöhten strukturellen--Präzi
sion unter Verwendung der Synchrotronstrahlungslitho
graphie, der Galvanobildung und dem Kunststofformen zu be
ziehen. Bei einem LIGA-Prozeß werden strahlungsempfindliche
Kunststoffe lithographisch mit einer hochenergetischen
Strahlung unter Verwendung einer Synchrotronquelle be
strahlt, um gewünschte Mikrostrukturen (wie z. B. Kanäle,
Tore, Öffnungen bzw. Aperturen und Mikroausrichtungsein
richtungen) zu erzeugen, wodurch eine Primerschablone ge
bildet wird.
Der Ausdruck "Antriebskraft" bzw. "motorische Kraft" wird
verwendet, um sich auf jegliche Einrichtung zum Bewirken
einer Bewegung einer Probe entlang eines Flußweges in einem
Mikroreaktor zu beziehen und umfaßt das Anlegen eines elek
trischen Potentials über jeglichen Abschnitt eines Mikrore
aktors, das Anlegen einer Druckdifferenz über jeglichen Ab
schnitt des Mikroreaktors oder eine Kombination derselben.
Die Ausdrücke "optionaler", "optionale", "optionales" oder
"optional", wie sie hierin verwendet werden, bedeuten, daß
das anschließend beschriebene Merkmal oder die anschließend
beschriebene Struktur vorhanden sein kann oder auch nicht,
oder daß das anschließend beschriebene Ereignis oder der
anschließend beschriebene Umstand auftreten kann oder
nicht, und daß die Beschreibung Beispielsfälle umfaßt, bei
denen ein spezielles Merkmal oder eine spezielle Struktur
vorhanden ist, und Fälle umfaßt, bei denen das Merkmal oder
die Struktur nicht vorhanden ist, oder Fälle, bei denen das
Ereignis oder der Umstand auftritt, und Fälle, bei denen
dies nicht der Fall ist.
Ein Ausführungsbeispiel der vorliegenden Erfindung ist in
Fig. 1 dargestellt, die schematisch einen Mikroreaktor dar
stellt, der beim Durchführen eines chemischen Prozesses,
wie z. B. einer PCR, verwendet werden kann. Die Vorrichtung
ist allgemein durch 11 dargestellt und umfaßt ein Substrat
13 mit einer im wesentlichen planaren Oberfläche 15, die
eine Reaktionszone 17 in der Form eines flachen Hohlraumes,
d. h. eines Hohlraumes mit einer Tiefe mit Mikrometer- oder
sogar Submikrometerabmessungen, enthält. Eine Abdeckplatte
21 ist derart gezeigt, daß dieselbe über dem Substrat 13
angeordnet ist. Vor der Verwendung der Vorrichtung wird die
Unterseite 25 der Abdeckplatte mit der Oberfläche 15 des
Substrats 13 ausgerichtet und gegen dieselbe plaziert. Die
Abdeckplatte bildet in Kombination mit der Reaktionszone 17
eine Reaktionskammer, in der der gewünschte chemische Pro
zeß ausgeführt wird. Ein Fluid, wie z. B. eine zu analysie
rende Probe, analytische Reagenzien, Reaktionsstoffe oder
dergleichen, wird von einer externen Quelle durch das Ein
laßtor 27 in die Reaktionskammer eingebracht; ein Auslaßtor
29 ermöglicht den Durchtritt eines Fluides von der Reakti
onskammer zu einem externen Aufnahmebehälter. Dementspre
chend ergibt das "Schließen" der Vorrichtung durch Ausrich
tung der Abdeckung mit dem Substrat und das Bilden einer
Abdichtung zwischen denselben die Bildung einer Reaktions
kammer, in die durch das Einlaßtor 27 Fluide eingebracht
und durch das Auslaßtor 29 entfernt werden können. Eine
flüssigkeitsdichte Abdichtung wird vorzugsweise unter Ver
wendung von Druckabdichtungstechniken, einer externen Ein
richtung, um die Werkstücke zusammenzupressen (wie z. B.
Klammern, Druckfedern oder einer zugeordneten Klemmvorrich
tung) oder Haftmitteln aus Verbindungspolymeren, Keramiken
und dergleichen, die in der Technik wohl bekannt sind, ge
bildet.
Bei einem verwandten Ausführungsbeispiel der Erfindung, wie
es in Fig. 2 dargestellt ist, sind Flußwege in der Form von
Mikrokanälen in dem Substrat an beiden Enden der Reaktions
zone untergebracht. Dies bedeutet, daß eine Vorrichtung 31
ein Substrat 33 mit einer im wesentlichen planaren Oberflä
che 35 aufweist, die eine Reaktionszone 37 wiederum in der
Form eines flachen Hohlraums enthält. Ein stromaufwärtiger
Mikrokanal 39 in der Substratoberfläche befindet sich in
einer Fluidkommunikation mit der stromaufwärtigen Region
der Reaktionszone 37, während sich ein stromabwärtiger Mi
krokanal 41 in Fluidkommunikation mit der stromabwärtigen
Region der Reaktionszone 38 befindet. Die Abdeckplatte 43
ist derart gezeigt, daß dieselbe mit ihrer Unterseite 45
der Substratoberfläche zugewandt über dem Substrat 33 ange
ordnet ist. Die Unterseite 45 der Abdeckplatte wird mit dem
Substrat ausgerichtet und vor der Verwendung der Vorrich
tung auf der Oberfläche 35 plaziert. Das Schließen der Vor
richtung auf diese Art und Weise, d. h. durch Ausrichten
der Abdeckung mit dem Substrat und Bilden einer Abdichtung
zwischen denselben, ergibt die Bildung einer Reaktionskam
mer, einer stromaufwärtigen Mikrosäule und einer stromab
wärtigen Mikrosäule. Auf das Schließen der Vorrichtung hin
ermöglicht ein Einlaßtor 47 in der Abdeckplatte das Ein
bringen einer Fluids von einer externen Quelle in die stro
maufwärtige Mikrosäule, während ein Auslaßtor 49, welches
sich ebenfalls in der Abdeckplatte befindet, die Entfernung
des Fluids aus der stromabwärtigen Mikrosäule ermöglicht.
Die stromaufwärtige Mikrosäule kann als eine Konzentrie
rungseinrichtung verwendet werden, um die Konzentration ei
nes speziellen Analysestoffes oder einer chemischen Kompo
nente vor der chemischen Prozeßverarbeitung in der Reakti
onskammer zu erhöhen. Ferner können auf diese Weise unge
wollte, möglicherweise störende Proben- und Reaktionskompo
nenten unter Verwendung der stromaufwärtigen Mikrosäule
entfernt werden. Zusätzlich oder alternativ kann der stro
maufwärtige Mikrokanal als ein Präparations- bzw. Vorberei
tungs-Mikroreaktor für chemische oder biochemische Präpara
tionsprozesse vor einer DNA-Vermehrung in der Reaktionskam
mer dienen. Solche Präparationsprozesse können eine Etiket
tierung bzw. Indizierung, eine Proteindigerierung und der
gleichen umfassen. Die stromabwärtige Mikrosäule kann als
eine Reinigungseinrichtung verwendet werden, um nach dem
Abschluß einer chemischen Prozeßverarbeitung unerwünschte
Komponenten, nicht reagierte bzw. unreagierte Materialien
usw. zu entfernen. Dies kann beispielsweise durch Packen
der stromabwärtigen Mikrosäule oder Bedecken ihrer Innen
oberfläche mit einem Material, das bestimmte Typen von Kom
ponenten aus einem Fluid oder einer Reaktionsmischung se
lektiv entfernt, durchgeführt werden.
Es wird darauf hingewiesen, daß ein Mikroreaktor der Erfin
dung hergestellt werden kann, um zwei oder mehr Reaktions
zonen und optionale Mikrokanäle, die sich in Fluidkommuni
kation mit dem bzw. denselben befinden, zu enthalten. Ein
Beispiel einer solchen Vorrichtung ist in Fig. 3 darge
stellt, wobei dieselbe allgemein mit 51 gezeigt ist und ein
Substrat 53 und eine Abdeckplatte 55, die mit demselben
ausgerichtet ist, aufweist. Die obere Oberfläche 57 des
Substrats, eine im wesentlichen planare Oberfläche, ist mit
einer ersten Reaktionszone 59 und einer zweiten Reaktions
zone 61 versehen. Ein erster stromaufwärtiger Mikrokanal 63
befindet sich in Fluidkommunikation mit der stromaufwärti
gen Region der ersten Reaktionszone 59, während sich ein
zweiter stromaufwärtiger Mikrokanal 65 in Fluidkommunikati
on mit der stromaufwärtigen Region der zweiten Reaktionszo
ne 61 befindet. Dementsprechend befindet sich ein erster
stromabwärtiger Mikrokanal 67 in Fluidkommunikation mit der
stromabwärtigen Region der ersten Reaktionszone 59, während
sich ein zweiter stromabwärtiger Mikrokanal 69 in Fluidkom
munikation mit der stromabwärtigen Region der zweiten
Reaktionszone 61 befindet. Auf das Schließen der
Vorrichtung durch Plazieren der Unterseite 71 der
Abdeckplatte 55 auf der Substratoberfläche 57 hin werden
aus der ersten und der zweiten Reaktionszone 59 und 61
zusammen mit zwei stromaufwärtigen Mikrosäulen (die aus dem
ersten und dem zweiten stromaufwärtigen Mikrokanal 63 und
65 gebildet werden) und zwei stromabwärtigen Mikrosäulen
(die aus dem ersten und dem zweiten stromabwärtigen
Mikrokanal 67 und 69 gebildet werden) zwei Reaktionskammern
gebildet. Ein erstes Einlaßtor 73 in der Abdeckplatte 55
ist mit dem stromaufwärtigen Ende des ersten
stromaufwärtigen Mikrokanals 63 ausgerichtet, während ein
zweites Einlaßtor 75 mit dem stromaufwärtigen Ende des
zweiten stromaufwärtigen Mikrokanals ausgerichtet ist,
wobei das erste und das zweite Einlaßtor 73 und 75 das
Einbringen eines Fluids von einer externen Quelle in die
erste bzw. zweite stromaufwärtige Mikrosäule liefern.
Dementsprechend ist ein erstes Auslaßtor 77 in der
Abdeckplatte 55 mit dem stromabwärtigen Ende des ersten
stromabwärtigen Mikrokanals ausgerichtet, während ein zwei
tes Auslaßtor 79 mit dem stromabwärtigen Ende des zweiten
stromabwärtigen Mikrokanals ausgerichtet ist, wobei das er
ste und das zweite Auslaßtor 77 und 79 eine Entfernung des
Fluids aus der ersten bzw. zweiten stromabwärtigen Mikro
säule liefern. Bei diesem Ausführungsbeispiel und bei den
Ausführungsbeispielen von Fig. 1 und 2 können das Substrat
und die Abdeckplatte an einer Kante verbunden sein, derart,
daß das Schließen der Vorrichtung durch Falten der Abdeck
platte auf das Substrat bewirkt wird. Die Kante kann eine
Falteinrichtung, wie z. B. eine Reihe von voneinander beab
standeten Perforierungen, Vertiefungen oder Öffnungen mit
einer Form, wie z. B. einer kreisförmigen, rhombischen, he
xagonalen, usw., umfassen, die das Falten und folglich die
Gelenkbildung fördern.
Die Materialien, die verwendet werden, um die Substrate und
Abdeckplatten bei den Mikroanalysevorrichtungen der Erfin
dung zu bilden, werden bezüglich physischer und chemischer
Charakteristika ausgewählt, die für eine spezielle Anwen
dung wünschenswert sind. Auf alle Fälle muß das Substrat
aus einem Material hergestellt werden, das die Bildung von
hochdefinierten Merkmalen bzw. Merkmalen mit hoher Defi
niertheit (oder Merkmalen mit hoher "Auflösung"), d. h. Mi
krokanälen, Kammern und dergleichen, die Mikrometer- oder
Submikrometerabmessungen aufweisen, ermöglicht. Das heißt,
daß das Material zu einer Mikroherstellung unter Verwendung
von beispielsweise Trockenätzen, Naßätzen, Laserätzen, For
men, Prägen oder dergleichen in der Lage sein muß, um die
gewünschten miniaturisierten Oberflächenmerkmale aufzuwei
sen; das Substrat ist vorzugsweise dazu in der Lage, auf
eine derartige Art und Weise mikrohergestellt zu werden, um
Merkmale in, auf und/oder durch die Oberfläche des Substra
tes zu bilden. Es können ferner Mikrostrukturen auf der
Oberfläche eines Substrates durch Hinzufügen eines Materi
als auf demselben gebildet werden, wobei beispielsweise Po
lymerkanäle auf der Oberfläche eines Glassubstrates unter
Verwendung eines photobelichtbaren Polyimids gebildet wer
den kann. Ferner sollten alle Vorrichtungsmaterialien, die
verwendet werden, in Hinblick auf jegliche Reagenzien bzw.
Reaktionspartner, mit denen dieselben in Kontakt kommen,
unter den Reaktionsbedingungen, die verwendet werden, (z. B.
bezüglich des pH-Wertes, der elektrischen Felder, usw.)
chemisch inert und physisch stabil sein. Da die PCR relativ
hohe Temperaturen mit sich bringt, ist es wichtig, daß alle
Materialien in dem Bereich der verwendeten Temperaturen
chemisch und physisch stabil sind. Für eine Verwendung mit
einer optischen Erfassungseinrichtung sollten die Materia
lien, die verwendet werden, optisch transparent sein, und
zwar typischerweise transparent für Wellenlängen in dem Be
reich von etwa 150 nm bis 800 nm. Silizium, Siliziumdioxid
und andere Silizium enthaltende Materialien sollten vermie
den werden, wobei bevorzugte Materialien diejenigen sind,
die gelöste Stoffe, wie z. B. Proteine oder andere Biomole
küle, nicht stark adsorbieren. Geeignete Materialien zum
Bilden der vorliegenden Vorrichtung umfassen Polymermate
rialien, Keramiken (einschließlich Aluminiumoxid und der
gleichen), Glas, Metalle, Verbundstoffe und Laminate der
selben, sind aber nicht darauf begrenzt.
Polymermaterialien sind hierin besonders bevorzugt und wer
den typischerweise organische Polymere sein, die entweder
Homopolymere oder Copolymere, natürlich auftretend oder
künstlich, vernetzt oder unvernetzt sind. Spezifische Poly
mere von Interesse umfassen Polyimide, Polykarbonate, Poly
ester, Polyamide, Polyether, Polyurethane, Polyflurokarbo
ne, Polystyrene, Poly(Acrylonitril-Butadien-Styren) (ABS)
Acrylat und Acrylsäurepolymere, wie z. B. Polymethylmetha
crylat, und andere substituierte und unsubstituierte Polyo
lefine und Copolymere derselben, sind aber nicht darauf be
grenzt. Polyimide sind von speziellem Interesse und haben
sich als ein hochwünschenswertes Substratmaterial bei meh
reren Kontexten bzw. Zusammenhängen erwiesen. Es hat sich
beispielsweise gezeigt, daß Polyimide geringe Sorptionsei
genschaften bezüglich Proteinen zeigen, von denen bekannt
ist, daß dieselben bei herkömmlichen Siliziumdioxid
basierten Systemen besonders schwierig zu analysieren sind.
Polyimide sind beispielsweise unter dem Markennamen Kap
ton® (DuPont, Wilmington DE) und Upilex® (Ube Industries,
Ltd., Japan) kommerziell verfügbar.
Die Vorrichtungen der Erfindung können ferner aus einem
"Verbundstoff" hergestellt werden, d. h. einer Zusammenset
zung, die aus ungleichen Materialien besteht. Der Verbund
stoff kann ein Blockverbundstoff, z. B. ein A-B-A-
Blockverbundstoff, ein A-B-C-Blockverbundstoff oder der
gleichen sein. Alternativ kann der Verbundstoff eine hete
rogene Kombination von Materialien, d. h. bei der sich die
Materialien aus getrennten Phasen unterscheiden, oder eine
homogene Kombination von ungleichen Materialien sein. Der
Ausdruck "Verbundstoff", wie er hierin verwendet wird, wird
verwendet, um einen "Laminat"-Verbundstoff zu umfassen. Ein
"Laminat" bezieht sich auf ein Verbundstoffmaterial, das
aus mehreren unterschiedlichen verbundenen Schichten eines
identischen Materials oder unterschiedlicher Materialien
gebildet ist. Weitere bevorzugte Verbundstoffsubstrate um
fassen Polymerlaminate, Polymer-Metall-Laminate, z. B. ein
Polymer das mit Kupfer beschichtet ist, einen Keramik-in-
Metall- oder einen Polymer-in-Metall-Verbundstoff. Ein be
vorzugtes Verbundstoffmaterial ist ein Polyimidlaminat, das
aus einer ersten Schicht aus Polyimid, wie z. B. Kapton®,
das von DuPont (Wilmington, Delaware) verfügbar ist, gebil
det ist, die zusammen mit einer zweiten dünnen Schicht ei
ner Wärmehaftmittelform von Polyimid, die als KJ® bekannt
ist und ebenfalls von DuPont (Wilmington, Delaware) verfüg
bar ist, extrodiert worden ist.
Die Oberflächen der Substrate und Abdeckplatten können che
misch modifiziert sein, um wünschenswerte chemische oder
physikalische Eigenschaften zu liefern, z. B. um die Ad
sorption von molekularen Anteilen an den Innenwänden eines
Mikrokanals oder einer Reaktionskammer und den EOF zu redu
zieren. Die Oberfläche eines Polymer- oder Keramik-
Substrates kann beispielsweise mit einer elektrisch neutra
len Molekularspezies, zwitterionischen Gruppen, hydrophilen
oder hydrophobischen Oligomeren oder Polymeren, usw. be
deckt sein oder funktionalisiert sein, um dieselben zu ent
halten. Mit Polylmiden, Polyamiden und Polyolefinen, die
Reaktionsorte oder funktionelle Gruppen aufweisen, wie z. B.
Carboxyl-, Hydroxyl-, Amino- und Haloalkyl-Gruppen (z. B.
Polyvinylalkohol, Polyhydroxystyren, Polyacrylsäure, Po
lyacrylnitril, usw.), oder mit Polymeren, die modifiziert
werden können, um solche Reaktionsorte oder funktionelle
Gruppen zu enthalten, ist es möglich, Gruppen an der Ober
fläche chemisch zu binden, die eine Vielzahl von wünschens
werten Oberflächeneigenschaften liefern können. Ein exem
plarisch modifiziertes Substrat ist ein Polyimid-
funktionalisiertes Substrat, um oberflächengebundene was
serlösliche Polymere, wie z. B. Polyethylenoxid (PEO), zu
enthalten, was dazu tendiert, eine unerwünschte Adsorption
zu reduzieren und eine nicht spezifische Bindung bei einer
DNA-Vermehrung und anderen Verfahren, die Hybridisierungs
techniken umfassen, zu minimieren. Die Substratoberfläche
kann ferner vorteilhafterweise unter Verwendung von ober
flächenaktiven Stoffen (z. B. Polyethylenoxidtriblockcopo
lymeren, wie z. B. diejenigen, die unter dem Markennamen
"Pluronic" verfügbar sind, Polyoxyethylensorbitan oder
"TWEEN"), natürlichen Polymeren (z. B. Bovinserumalbomin
oder "BSA") oder anderen Anteilen, die die gewünschten
Oberflächencharakteristika, insbesondere bei Reduzierung
der Sorption von Biomolekülen, wie z. B. Proteinen, lie
fern, modifiziert werden.
Es sollte ferner betont werden, daß unterschiedliche Regio
nen eines einzelnen Substrates chemisch unterschiedliche
Oberflächen aufweisen können, so daß beispielsweise die In
nenoberfläche eines Mikrokanals ein erstes Material aufwei
sen kann, während die Innenoberfläche einer Reaktionskam
mer, die sich in Fluidkommunikation mit diesem Mikrokanal
befindet, ein zweites Material aufweisen kann. Die Reakti
onskammer oder die Reaktionskammern können beispielsweise
Innenoberflächen aufweisen, die mit beispielsweise PEO oder
dergleichen bedeckt oder funktionalisiert sind, während die
Innenoberflächen der Mikrokanäle, die den Reaktionskammern
bzw. der Reaktionskammer zugeordnet sind, nicht bedeckt
oder nicht funktionalisiert sein können. Ferner können
stromaufwärtige und stromabwärtige Mikrokanäle hergestellt
sein, um ein Ionenaustauschharz, eine Metallchelatebil
dungsverbindung, ein Affinitätadsorbermaterial oder der
gleichen zu enthalten, d. h. Materialien, die ausgewählt
sind, um ein Fluid oder eine Probe durch Entfernen einer
oder mehrerer Komponenten oder Typen von Komponenten von
derselben zu reinigen. Auf diese Weise können unterschied
liche Komponenten und Merkmale, die in dem selben Substrat
vorhanden sind, verwendet werden, um unterschiedliche che
mische oder biochemische Prozesse oder unterschiedliche
Schritte in einem einzigen chemischen oder biochemischen
Prozeß durchzuführen.
Die vorliegenden Mikroreaktoren können unter Verwendung
jeglichen geeigneten Verfahrens hergestellt werden, ein
schließlich, aber nicht darauf begrenzt, Mikroformungs- und
Gußtechniken, Prägungsverfahren, die Oberflächenmikrobear
beitung und Volumenmikrobearbeitung. Die letztgenannte
Technik umfaßt die Bildung von Mikrostrukturen durch direk
tes Ätzen in ein Volumenmaterial, und zwar typischerweise
unter Verwendung chemischen Naßätzens oder des Reaktionsio
nenätzens ("RIE"; RIE = reactive ion etching). Die Oberflä
chenmikrobearbeitung umfaßt die Herstellung von Filmen, die
auf die Oberfläche eines Substrates aufgebracht werden. Ein
exemplarischer Oberflächenmikrobearbeitungsprozeß ist als
"LIGA" bekannt. Siehe hierzu beispielsweise Becker et al.
(1986), "Fabrication of Microstructures with High Aspects
Rations and Great Structural Heights by Synchrotron Radia
tion Lithography Galvanoforming, and Plastic Moulding (LIGA
Process)", Microelektronic Engineering 4(1): 35-36, Ehrfeld
et al. (1988), "1988 LIGA Process: Sensor Construction
Techniques via x-Ray Lithography", Tech. Digest from IEEE
Solid-State Sensor and Actuator Workshop, Hilton Head, SC;
Guckel et al. (1991) J. Micromech. Microeng. 1: 135-138.
LIGA umfaßt das Aufbringen einer relativ dicken Schicht ei
nes Röntgenstrahlungsresists bzw. -Schutzlackes auf einem
Substrat gefolgt von einem Aussetzen desselben bezüglich
einer hochenergetischen Röntgenstrahlung durch eine Rönt
genmaske und das Entfernen der belichteten Resist-
Abschnitte unter Verwendung eines chemischen Entwicklers.
Das LIGA-Formstück, das auf diese Weise bereitgestellt
wird, kann verwendet werden, um Strukturen mit horizontalen
Abmessungen - d. h. Durchmessern - in der Größenordnung von
Mikrometern zu präparieren.
Eine bevorzugte Technik zum Präparieren der vorliegenden
Mikroreaktoren ist die Laserablation. Bei der Laserablation
werden kurze Pulse eines intensiven ultravioletten Lichtes
in einer dünnen Oberflächenschicht eines Materials absor
biert. Bevorzugte Pulsenergien sind größer als etwa 100
Millijoule pro Quadratzentimeter, wobei die Pulsdauern kür
zer als etwa 1 Mikrosekunde sind. Unter diesen Bedingungen
hitzedissoziiert bzw. löst das intensive UV-Licht die che
mischen Bindungen in der Substratoberfläche. Die absorbier
te UV-Energie ist auf ein solch kleines Volumen des Materi
als konzentriert, daß dieselbe die dissoziierten Fragmente
schnell aufheizt und dieselben von der Substratoberfläche
weg herausschleudert. Da diese Prozesse so schnell auftre
ten, besteht keine Zeit für die Hitze, sich in das umlie
gende Material auszubreiten. Als ein Ergebnis wird die um
liegende Region nicht geschmolzen oder auf andere Weise be
schädigt, und der Rand der ablatierten Merkmale kann die
Form des einfallenden optischen Strahls mit einer Präzision
in der Größenordnung von etwa 1 Mikrometer oder weniger
nachbilden. Die Laserablation wird typischerweise die Ver
wendung eines hochenergetischen Photonenlasers, wie z. B.
eines Excimer-Lasers des F2-, ArF-, KrCl, KrF oder XeCl-
Typs, aufweisen. Andere UV-Lichtquellen mit im wesentlichen
den selben optischen Wellenlängen und Energiedichten können
jedoch ebenfalls verwendet werden. Die Laserablationstech
niken werden beispielsweise von Znotins et a. (1987) Lasen
Focus Electro Optics, auf Seite 54-70, und in den
U.S.-Patenten Nr. 5,291,226 und 5,305,015, erteilt an Schantz et
al., beschrieben.
Die Herstellungstechnik, die verwendet wird, muß Merkmale
mit einer ausreichend hohen Definiertheit liefern, d. h.
Mikrometerskalakomponenten, -kanäle, -kammern usw., derart,
daß eine präzise Ausrichtung - "Mikroausrichtung" - dieser
Merkmale möglich ist. Die "Mikroausrichtung" bezieht sich
auf die präzise und genaue Ausrichtung der laserablatierten
Merkmale und umfaßt die Ausrichtung von komplementären Mi
krokanälen oder Mikroabteilen zueinander, von Einlaß-
und/oder Auslaßtoren zu Mikrosäulen oder Reaktionskammern,
von Erfassungseinrichtungen zu Mikrosäulen oder Trennungs
abteilen, von Erfassungseinrichtungen zu anderen Erfas
sungseinrichtungen, von Vorsprüngen und zusammenpassenden
Vertiefungen, von Rillen und zusammenpassenden Leisten und
dergleichen.
Ein weiteres Ausführungsbeispiel der Erfindung ist auf ei
nen Mikroreaktor gerichtet, wie er in Fig. 4 gezeigt ist,
der sowohl eine miniaturisierte Säule zum Durchführen von
Trennungsprozessen, z. B. elektrophoretischen oder chroma
tographischen Trennungen, als auch ein Reservoirabteil auf
weist, das als eine Reaktionskammer zum Ausführen einer
oder mehrerer chemischer oder biochemischer Reaktionen
dient. Die Vorrichtung ist allgemein mit 2 gezeigt und um
faßt ein ausgewähltes Substrat 4 mit einer ersten und ei
ner zweiten im wesentlichen planaren Oberfläche, die sich
gegenüber liegen und mit 6 bzw. 8 angezeigt sind, wobei
dieselbe aus einem anderen Material als Silizium oder Sili
ziumdioxid hergestellt ist. Das Material ist vorzugsweise,
wie wohl nicht notwendigerweise, UV-absorbierend und laser
ablatierbar. In einer ersten planaren Oberfläche 6 des
Substrats 4 ist ein Mikrokanal 10 laserablatiert oder auf
andere Weise gebildet. Es ist ohne weiteres erkennbar, daß,
obwohl der Mikrokanal 10 in einer allgemein erstreckten
Form dargestellt ist, die Mikrokanäle, die bei der Ausfüh
rung der Erfindung gebildet werden, eine Vielzahl von Kon
figurationen aufweisen können, wie z. B. einen geradlini
gen, serpentinenförmigen, spiralförmigen oder jeglichen
kurvigen Weg, der erwünscht ist, und jegliche Anzahl von
unterschiedlichen Querschnittformen aufweisen kann, d. h.
jegliche einer breiten Vielzahl von Kanalgeometrien, ein
schließlich halbkreisförmig, rechteckig, rhombisch und der
gleichen, und die Kanäle können in einem breiten Bereich
von Längenverhältnissen gebildet sein. Zusätzlich können
zwei oder mehr Mikrokanäle in einem einzigen Substrat vor
handen sein. Wie es in Fig. 4 angezeigt ist, weist der Mi
krokanal 10 ein stromaufwärtiges Ende, das mit 12 angezeigt
ist, und ein mit 14 angezeigte stromabwärtiges Ende auf.
Die erste planare Oberfläche 6 umfaßt ferner eine Auf-
Vorrichtung-Reservoireinrichtung 16, die aus einem Hohlraum
gebildet ist, der in der ersten planaren Oberfläche 6 lase
rablatiert oder auf andere Weise hergestellt worden ist.
Der Hohlraum kann in jeglicher Geometrie und mit einem be
liebigen Längenverhältnis, die lediglich durch die Gesamt
dicke des Substrates 4 beschränkt sind, gebildet sein, um
eine Reservoireinrichtung mit einem gewünschten Volumen zu
liefern. Die Reservoireinrichtung kann verwendet werden, um
ein Ausgleichsflußfluid, eine Fluidregelungsfunktion oder
Reagenzien zum Verbessern der Erfassung oder Trennung von
Flüssigprobenbestandteilen zu liefern. Die Reservoirein
richtung kann ferner als eine Reaktionszone dienen, in der
chemische oder biochemische Prozesse durchgeführt werden
sollen. Solche Prozesse umfassen, wie es bereits früher
hierin angemerkt wurde, eine Trennung (z. B. eine chromato
graphische, elektrophoretische oder elektrochromatographi
sche Trennung), Filterungs- und Diagnosevorgänge (unter
Verwendung von beispielsweise einer Hybridisierung oder ei
ner anderen Bindungseinrichtung) und eine chemische oder
biochemische Synthese (z. B. DNA-Vermehrung, wie sie unter
Verwendung der PCR ausgeführt werden kann), sind aber nicht
darauf beschränkt. Die Reservoireinrichtung 16 befindet
sich in Fluidkommunikation mit dem Mikrokanal 10 über eine
Fluidleitungseinrichtung 18, die aus einer Rohrleitung ge
bildet ist, die in der ersten planaren Oberfläche 6 lasera
blatiert oder auf andere Weise hergestellt ist.
Eine Abdeckplatte 20 ist über der ersten planaren Oberflä
che 6 angeordnet und bildet in Verbindung mit dem Mikroka
nal 10 eine längliche Trennungsmikrosäule. Ferner bildet
die Abdeckplatte 20 in Kombination mit der Reservoirein
richtung 16 bildet ein Reservoirabteil (oder es wird, wenn
der Reservoireinrichtung als eine Reaktionszone dient, eine
"Reaktionskammer" auf das Plazieren der Abdeckplatte auf
das Substrat hin gebildet werden) und auf ähnliche Weise in
Kombination mit der Fluidleitungseinrichtung 18 ein Fluid
leitungsabteil, das das Reservoirabteil mit der Trennungs
mikrosäule kommunikativ verbindet. Die Abdeckplatte 20 kann
über der ersten planaren Oberfläche 6 befestigbar ausge
richtet werden, um eine flüssigkeitsdichte Trennungsmikro
säule zu bilden, indem Druckabdichtungstechniken, eine ex
terne Einrichtung, um die Werkstücke zusammen zu drücken
(wie z. B. Klammern, Druckfedern oder zugeordnete Klemmvor
richtungen) oder Haftmittel aus Verbindungspolymeren, Kera
miken und dergleichen, die in der Technik wohl bekannt
sind, verwendet werden.
Bei einer speziellen Vorrichtungskonfiguration umfaßt die
Abdeckplatte 20 eine getrennte Komponente mit einer im we
sentlichen planaren Oberfläche, die in der Lage ist, mit
der ersten planaren Oberfläche 6 des Substrates 4 eng
schnittstellenmäßig verbunden zu sein. Bei einer bevorzug
ten Vorrichtung sind das Substrat und die Abdeckplatte je
doch in einem einzigen, flexiblen Substrat gebildet. Bezug
nehmend auf Fig. 4 umfaßt das flexible Substrat einen er
sten und einen zweiten Abschnitt, die dem Substrat 4 und
der Abdeckplatte 20 entsprechen, wobei jeder Abschnitt eine
im wesentlichen planare Innenoberfläche aufweist. Der erste
und der zweite Abschnitt sind durch zumindest eine Faltein
richtung, die allgemein mit 26 angezeigt ist, getrennt,
derart, daß die Abschnitte ohne weiteres gefaltet werden
können, um aufeinander aufzuliegen. Die Falteinrichtung 26
kann eine Reihe von voneinander beabstandeten Perforierun
gen in dem flexiblen Substrat, eine Reihe von voneinander
beabstandeten Schlitz-förmigen Vertiefungen oder Öffnungen,
die sich lediglich teilweise durch das flexible Substrat,
erstrecken, oder dergleichen umfassen. Die Perforierungen
oder Vertiefungen können kreisförmige, rautenförmige, hexa
gonale oder andere Formen aufweisen, die eine Gelenk- bzw.
Knickbildung entlang einer vorbestimmten geradlinigen Linie
fördern.
Die Vorrichtung 2 von Fig. 4 kann durch Laserablatieren ei
nes Mikrokanales 10, einer Reservoireinrichtung 16 und ei
ner Fluidleitungseinrichtung 18 in dem Substrat 4 gebildet
werden. Eine Trennungsmikrosäule, ein Reservoirabteil und
ein Fluidleitungsabteil werden dann vorgesehen, indem das
flexible Substrat an der Falteinrichtung 26 derart gefaltet
wird, daß der Abdeckplattenabschnitt 20 den Mikrokanal, das
Reservoir und die Fluidleitungseinrichtung einschließt.
Bei jeder der im vorhergehenden beschriebenen Vorrichtungen
kann die Abdeckplatte 20 ferner eine Vielzahl von Öffnungen
oder anderen Merkmalen aufweisen, die in dieselbe lasera
blatiert oder auf andere Weise hergestellt worden sind.
Insbesondere kann eine erste Öffnung angeordnet sein, um
mit dem Trennungsabteil (das durch die Kombination aus dem
Mikrokanal 10 und der Abdeckplatte 20 gebildet wird) be
nachbart zu dem stromaufwärtigen Ende 12 des Mikrokanales
10 kommunikativ verbunden zu sein, um ein Einlaßtor 22 zu
liefern. Das Einlaßtor ermöglicht den Durchtritt eines Flu
ids von einer externen Quelle in das Trennungsabteil, wenn
die Abdeckplatte 20 über der ersten planaren Oberfläche 6
angeordnet ist. Eine zweite Öffnung kann auf ähnliche Weise
angeordnet sein, um mit der Trennungsmikrosäule benachbart
zu dem stromabwärtigen Ende 14 des Mikrokanales 10 kommuni
kativ verbunden zu sein, um ein Auslaßtor 24 zu bilden, das
den Durchtritt eines Fluides von dem Trennungsabteil in ei
nen externen Aufnahmebehälter ermöglicht. Dementsprechend
erstreckt sich ein Flußweg von einem stromaufwärtigen Ende
der Trennungsmikrosäule und verläuft zu einem stromabwärti
gen Ende derselben, wodurch eine Flüssigphasenanalyse von
Proben ausgeführt werden kann, indem Fluide von einer zuge
ordneten Quelle (nicht gezeigt) durch das Einlaßtor über
tragen, die Fluide durch die Trennungsmikrosäule geleitet
werden und ermöglicht wird, daß die Fluide das Trennungsab
teil über das Auslaßtor verlassen.
Verschiedene Einrichtungen zum Anlegen einer Antriebskraft
entlang der Länge der Trennungsmikrosäule, wie z. B. eine
Druckdifferenz oder ein elektrisches Potential, können ohne
weiteres bei jeder der im vorhergehenden beschriebenen Vor
richtungen mit der Säulenvorrichtung über das Einlaß- und
Auslaßtor schnittstellenmäßig verbunden werden. Bei der
Elektrophorese wird ein Spannungsgradient über den Flußweg
von dem Einlaßtor zu dem Auslaßtor angelegt, wodurch be
wirkt wird, daß die Komponenten in dem fließenden Fluid mit
unterschiedlichen Geschwindigkeiten fließen, die proportio
nal zu deren Ladungen und/oder Massen sind. Wie es für
Fachleute auf dem Gebiet offensichtlich ist, kann eine ge
eignete Einrichtung verwendet werden, um einen Spannungs
gradienten über den Flußweg anzulegen.
Bei der speziellen Vorrichtungskonfiguration von Fig. 4 er
möglicht die Fluidleitungseinrichtung 18 den Durchtritt ei
nes Fluides von der Reservoireinrichtung 16 in die Tren
nungsmikrosäule an einer Position, die im wesentlichen auf
halbem Weg zwischen dem stromaufwärtigen und dem stromab
wärtigen Ende 12 und 14 des Mikrokanals 10 liegt. Es wird
darauf hingewiesen, daß, obwohl die Fluidleitungseinrich
tung 18 auf diese Art und Weise dargestellt worden ist, die
Fluidleitungseinrichtung angeordnet sein kann, um mit dem
Trennungsabteil an jeglicher Position zwischen oder an dem
stromaufwärtigen und dem stromabwärtigen Ende desselben
kommunikativ verbunden zu sein.
Indem eine Fluidkommunikation zwischen dem Fluidleitungsab
teil und der Trennungsmikrosäule ermöglicht wird, kann wäh
rend des Fluidflußverlaufes eine Anzahl von Trennungs- oder
Erfassungsverbesserungsoperationen durchgeführt werden. Die
Reservoireinrichtung 16 kann beispielsweise verwendet wer
den, um ein flüssiges Reagenz oder einen Farbstoff, z. B.
einen Fluoreszenzindikator, zu liefern, der in der Lage
ist, mit dem Analysestoff zu reagieren, um beispielsweise
die Erfaßbarkeit desselben zu verbessern.
Die Reservoireinrichtung 16 kann verwendet werden, um Rea
genzien, wie z. B. organische Zusätze, oberflächenaktive
Stoffe, ionische Wirkstoffe bzw. Agenzen, anorganische
Wirkstoffe oder dergleichen, zu liefern, die der Trennungs
mikrosäule durch einen Anfangsmischschritt hinzugefügt wer
den können. Der chemische oder biochemische Prozeß, der in
der Reaktionskammer durchgeführt wird, kann mit einem Tren
nungsprozeß (der beispielsweise in einem stromaufwärtigen
Mikrokanal ausgeführt wird, der sich in einer Fluidkommuni
kation mit der Reaktionskammer befindet) oder einem Reini
gungsprozeß (der beispielsweise in einem stromabwärtigen
Mikrokanal ausgeführt wird, der sich in einer Fluidkommuni
kation mit der Reaktionskammer befindet) vorgenommen wer
den, wobei in diesem Fall eine Anzahl von Reagenzien, die
die Empfindlichkeit und die Auflösung beeinflussen, einge
leitet bzw. eingebracht werden können, einschließlich Puf
fern, Wirkstoffen, die die Lösungsionenstärke beeinflussen,
Wirkstoffen, die die Dielektrizitätskonstante oder Viskosi
tät verändern, und oberflächenaktiven Stoffen, und zwar
entweder oberhalb oder unterhalb ihrer kritischen Mizell
konzentration (CMC; CMC = critical micellar concentration).
Oberflächenaktive Stoffe unterhalb der CMC können mit der
Innenoberfläche der Trennungsmikrosäule assoziieren und
folglich die Selektivität bzw. die Selektivwirkung eines
Flüssigphasentrennungssystems verändern. Eine mizellare
Bildung aufgrund der Verwendung von oberflächenaktiven
Stoffen oberhalb der CMC kann als eine pseudogepackte Säu
lenphase bei einem Trennungsmechanismus dienen, der als mi
zellare elektrokinetische Kapillarchromatographie (MEKC;
MEKC = micellar electrokinetic capillary chromatography)
bekannt ist. Geeignete oberflächenaktive Stoffe für die
MEKC umfassen SDS und CTAB. Zusätzlich können chirale Se
lektoren (z. B. Cyclodextrin, Kronenether oder dergleichen)
verwendet werden, um eine verbesserte Trennung von optisch
aktiven Spezies zu bewirken.
Eine Anzahl von Puffertypen können von der Reservoirein
richtung 16 geliefert werden, wie z. B. übliche organische
Puffer (z. B. Acetat- oder Citratpuffer), anorganische Puf
fer (z. B. Phosphat- oder Boratpuffer) oder Good's-Puffer
(z. B. MES, ACES, MOPS, CAPS, HEPES und dergleichen), aber
nicht ausschließlich diese. Wirkstoffe, die die Lösungsio
nenstärke beeinflussen, wie z. B. neutrale Salze (z. B.
NaCl, KCl oder LiCl), können alternativ von der Reservoir
einrichtung geliefert werden. Wirkstoffe können von dem Re
servoir ferner geliefert werden, um die Dielektrizitätskon
stante einer Lösung in dem Trennungsabteil zu beeinflussen.
Geeignete Wirkstoffe umfassen übliche organische Lösungs
mittel, wie z. B. MeOH, EtOH, CH3CN und Isopropylalkohol,
sind aber nicht darauf begrenzt. Ferner kann von der Reser
voireinrichtung 16 eine Anzahl von Wirkstoffen geliefert
werden, um die Viskosität der Lösung, die durch das Tren
nungsabteil fließt, zu verändern, wie z. B. Methylzellulo
se, Dextran, Polyacrylamid, Polyethylenglykol oder Polyvi
nylalkohol. Wirkstoffe, die auf diese Art und Weise verwen
det werden können, um die Oberflächenbenetzbarkeit zu ver
ändern, umfassen neutrale oberflächenaktive Stoffe (TWEEN,
BRIJ oder Alkylglukoside), zwitterionische oberflächenakti
ve Stoffe (z. B. CHAPS oder CHAPSO) und veränderte oberflä
chenaktive Stoffe (SDS oder CTAB).
Die Reservoireinrichtung 16 kann ferner verwendet werden,
um eine Analyse zu optimieren, indem ein erhöhter Druck an
die Trennungsmikrosäule angelegt wird, nachdem ein gelöster
Stoff begonnen hat, sich zu trennen. Insbesondere kann die
Reservoireinrichtung verwendet werden, um ein bekanntes
Volumen eines Puffers zu der Trennungsmikrosäule an einem
Punkt zu liefern, nachdem eine Trennung begonnen hat, wo
durch der Druck, der auf die flüssige Probe ausgeübt wird,
erhöht wird.
Bei jeder der im vorhergehenden beschriebenen Vorrichtungen
können optionale Einrichtungen zum Einbringen eines Fluides
von einer externen Quelle in das Reservoirabteil vorgesehen
sein. Immer noch bezugnehmend auf die Vorrichtung von Fig. 4
ist eine Fluidleitungseinrichtung 28, die eine Rohrlei
tung umfaßt, die in dem Substrat 4 laserablatiert oder auf
andere Weise hergestellt ist, derart dargestellt, daß die
selbe ein erstes Ende 30 aufweist, das sich in Fluidkommu
nikation mit der Reservoireinrichtung 16 befindet. Die Flu
idleitungseinrichtung 28 weist ein zweites Ende 32 auf, das
sich in Fluidkommunikation mit einer Düsenöffnung 34 befin
det, die in der Abdeckplatte 20 gebildet ist. Die Düsenöff
nung 34 kann beispielsweise eine Öffnung umfassen, die in
die Abdeckplatte 20 laserablatiert oder auf andere Weise
hergestellt worden ist. Alternativ kann die Düsenöffnung in
der Abdeckplatte positioniert sein, um sich in einer direk
ten Fluidkommunikation mit dem Reservoirabteil zu befinden.
Bei jeder der im vorhergehenden beschriebenen Konfiguratio
nen ermöglicht die Düsenöffnung 34 jedoch das schnittstel
lenmäßige Verbinden einer externen Fluidquelle mit dem Re
servoirabteil, wodurch extern enthaltene Puffer, Reagenzein
oder dererlei Fluide in das Reservoirabteil für einen an
schließenden Durchtritt in das Trennungsabteil eingebracht
werden können. Die externe Fluidquelle kann mit der Düsen
öffnung durch eine zugeordnete mechanische Ventileinrich
tung schnittstellenmäßig verbunden sein, um eine umlenkbare
Fluidverbindung zu liefern. Dieses Merkmal ermöglicht, daß
eine Vielzahl von Einbringungsverfahren oder anderen Fluid
einbringungseinrichtungen verwendet werden können, um Rea
genzien oder eine Probe über die Düsenöffnung 34 in das Re
servoirabteil einzubringen, einschließlich der Druckein
spritzung, der hydrodynamischen Einspritzung oder der elek
trokinetischen Einspritzung. Die externe Ventil- und Ein
bringungseinrichtung kann mit der Düsenöffnung durch eine
Muffenkopplung mit derselben kommunikativ verbunden sein;
jegliches andere geeignete Verbindungsverfahren, das in der
Technik bekannt ist, kann jedoch ebenfalls hierbei verwen
det werden.
Es wird nun auf Fig. 5 Bezug genommen, in der eine Variati
on des im vorhergehenden erwähnten Mikroreaktors zeigt, und
in der die Vorrichtung allgemein mit 52 angezeigt ist, die
einen Tragekörper 54 mit einer ersten und einer zweiten
Komponentenhälfte aufweist, die mit 56 bzw. 58 angezeigt
sind. Die erste und die zweite Komponentenhälfte 56 und 58
weisen jeweils im wesentlichen planare Innenoberflächen
auf, die mit 60 bzw. 62 angezeigt sind, und in denen Merk
male mit hoher Definiertheit laserablatiert oder auf andere
Weise hergestellt sein können. Insbesondere ist eine erste
Mikrokanalstruktur 64 in der ersten planaren Innenoberflä
che 60 laserablatiert oder auf andere Weise hergestellt,
während eine zweite Mikrokanalstruktur 66 in der zweiten
planaren Innenoberfläche 62 laserablatiert oder auf andere
Weise hergestellt ist. Die erste und die zweite Mikrokanal
struktur in dem Tragekörper 54 sind zueinander spiegelbild
lich gebildet. Auf ähnliche Art und Weise umfaßt die Säu
lenvorrichtung 52 eine erste und eine zweite Reservoirein
richtung 68 und 70, die aus Hohlräumen gebildet sind, die
in der ersten und der zweiten planaren Oberfläche 60 bzw.
62 laserablatiert oder auf andere Weise hergestellt sind,
wobei die Hohlräume spiegelbildlich zueinander gebildet
sind. Eine erste und eine zweite Fluidleitungseinrichtung,
die mit 72 und 74 angezeigt sind, sind aus Rohrleitungen
gebildet, die in der ersten und der zweiten planaren Ober
fläche laserablatiert oder auf andere Weise hergestellt
sind, wobei die Rohrleitungen im wesentlichen spiegelbild
lich zueinander gebildet sind. Wie es im vorhergehenden be
schrieben wurde ermöglicht die Fluidleitungseinrichtung ei
ne Fluidkommunikation zwischen der Reservoireinrichtung und
den Mikrokanälen.
Die Säulenvorrichtung 52 wird zusammengebaut, indem die er
ste und die zweite Komponentenhälfte 56 und 58 in einer
flach aneinanderliegenden Anordnung ausgerichtet werden
(wie z. B. durch Falten). Die erste und die zweite Kompo
nentenhälfte werden unter Verwendung von Druckabdichtungs
techniken, wie z. B. der Anwendung einer Spannkraft oder
unter Verwendung von Haftmitteln, die in der Technik voll
Flüssigphasentrennungsvorrichtungen wohl bekannt sind, in
einer befestigbaren Ausrichtung zueinander gehalten, um
flüssigkeitsdichte Trennungsmikrosäulen, Reservoirabteile
und Fluidleitungsabteile zu bilden. Wie es im vorhergehen
den beschrieben wurde, werden die erste und die zweite Kom
ponentenhälfte 56 und 58 durch zumindest eine Falteinrich
tung getrennt, die allgemein mit 76 angezeigt ist, derart,
daß die Hälften gefaltet werden können, um aufeinander auf
zuliegen. Bei besonders bevorzugten Vorrichtungen umfaßt
die Falteinrichtung 76 eine Reihe von voneinander beabstan
deten Perforierungen in dem Substrat oder voneinander beab
standeten Schlitz-förmigen Vertiefungen oder Öffnungen, die
sich lediglich teilweise durch das Substrat erstrecken.
Die Vorrichtung 52 umfaßt ferner eine Einrichtung zum kom
munikativen Verbinden zugeordneter externer Fluidbehälter
einrichtungen (nicht gezeigt) mit der Trennungsmikrosäule
(die durch die Ausrichtung der Mikrokanäle 64 und 66 gebil
det ist), um eine Flüssigphasentrennungsvorrichtung zu lie
fern. Insbesondere kann eine Mehrzahl von Öffnungen in dem
Tragekörper 54 laserablatiert oder auf andere Weise herge
stellt sein, wobei sich die Öffnungen von zumindest einer
Außenoberfläche des Tragekörpers aus erstrecken und mit zu
mindest einem Mikrokanal kommunikativ verbunden sind, wobei
die Öffnungen den Durchtritt eines Fluides durch dieselben
ermöglichen. Insbesondere kann ein Einlaßtor in der zweiten
Komponentenhälfte 58 laserablatiert oder auf andere Weise
hergestellt sein, um mit einem ersten Ende 78 des Mikroka
nals 66 kommunikativ verbunden zu sein. Auf die selbe Art
und Weise kann ein Auslaßtor in der zweiten Komponenten
hälfte laserablatiert oder auf andere Weise hergestellt
sein, um mit einem zweiten Ende 80 des Mikrokanals 66 kom
munikativ verbunden zu sein.
Dementsprechend erstreckt sich ein Flußweg von dem ersten
Ende 78 des Mikrokanals 66 zu dem zweiten Ende 80 dessel
ben. Der Flußweg wird durch Leiten von Fluiden von einer
zugeordneten Quelle (nicht gezeigt) durch das Einlaßtor,
Leiten der Fluide durch das Trennungsabteil, das durch die
Ausrichtung der Mikrokanäle 64 und 66 gebildet ist, und Er
möglichen, daß die Fluide die Trennungsmikrosäule über das
Auslaßtor verlassen, eingerichtet.
Optional kann das Fluid aus dem Reservoirabteil durch eine
Antriebseinrichtung, wie z. B. einen Betätiger bzw. ein
Stellglied oder dergleichen, entfernt werden. Bezugnehmend
auf Fig. 6-8 ist der Mikroreaktor 52 derart dargestellt,
daß derselbe eine optionale Betätigungseinrichtung 102 auf
weist, die über dem Reservoirabteil angeordnet ist, das
durch die Ausrichtung der ersten und der zweiten Reservoir
einrichtung 68 und 70 gebildet ist. Wie es am besten in der
Querschnittdarstellung von Fig. 8 ersichtlich ist, ist das
Reservoirabteil optional mit einer dünnen Membran 104 abge
deckt, um eine Membrantyppumpe zu bilden. Ein erstes passi
ves Einwegmikroventil 106 ist optional in dem Fluidleitung
sabteil integriert, das durch die Ausrichtung der ersten
und der zweiten Fluidleitungseinrichtung 72 und 74 gebildet
wird, um einen Rückfluß eines verdrängten Fluides in das
Reservoirabteil zu verhindern, wobei ein zweites passives
Einwegmikroventil 108 in einer Reservoirbefüllungseinrich
tung optional integriert ist, um sicherzustellen, daß das
Fluid, das aus dem Reservoirabteil verdrängen wird, zu der
Trennungsmikrosäule fließt.
Immer noch bezugnehmend auf Fig. 8 ist ein optionaler Gas-
oder Flüssigkeits-gefüllter Hohlraum 110 unmittelbar ober
halb der Membran 104 angeordnet. Die Betätigungseinrichtung
102 kann verwendet werden, um durch Durchbiegen der Membran
104 eine Fluidverdrängung von dem Reservoirabteil zu bewir
ken. Insbesondere kann die Betätigungseinrichtung 102 wir
ken, um die Membran 104 direkt durchzubiegen. Dementspre
chend kann die Betätigungseinrichtung eine piezoelektri
sche, Kolben-, Solenoid- oder ein anderer Typ von Membran
durchbiegungsvorrichtung sein. Alternativ kann die Betäti
gungseinrichtung eine Heizeinrichtung sein, durch die die
Temperatur in dem Hohlraum 110 geregelt wird. Die Heizein
richtung kann eine Heizeinrichtung des Widerstandstyps oder
ein beliebiger Typ einer geeigneten Heizeinrichtung, die in
der Technik bekannt ist, sein. Auf eine Betätigung hin
nimmt die Temperatur der Heizeinrichtung zu, wodurch der
Inhalt des Hohlraums 110 aufgeheizt wird, das Volumen des
selben zunimmt, eine abwärts gerichtete Durchbiegung der
Membran 104 erzeugt wird, und das Fluid an dem Ventil 106
vorbei aus dem Reservoirabteil in die Fluidleitungseinrich
tung und in die Trennungsmikrosäule verdrängt wird.
Alternativ kann sich die Heizeinrichtung 102 in einem ther
mischen Kontakt mit dem Reservoirabteil selbst befinden.
Bei dieser Konfiguration nimmt, wenn die Heizeinrichtungs
temperatur zunimmt, das Volumen des Fluids in dem Reser
voirabteil zu, wodurch dasselbe aus dem Reservoirabteil in
die Trennungsmikrosäule verdrängt wird.
Weitere Beispiele für Pumpvorrichtungen, die in die vorlie
genden Vorrichtungen aufgenommen werden können, umfassen
diejenigen, die nach den Prinzipien des Ultraschall
bewirkten Transports (Moroney et al. (1991) Proc MEM S'91,
S. 277) oder des elektrohydrodynamisch bewirkten Transports
(Richter et al. (1991) Proc MEM S'91, S. 271) arbeiten. Zu
sätzlich können chemische Ventile verwendet werden, die aus
elektrisch getriebenen Polyelektrolytgelen bestehen (Osada
(1991) Adv. Materials 3: 107; Osada et. al (1992) Nature
355: 242).
Die Verwendung von transparenten Materialien bei den vor
liegenden Mikroreaktoren, d. h. für das Substrat und vor
zugsweise die Abdeckplatte, ermöglicht die Verwendung der
Brechungsindex- (RI-) Erfassung, um getrennte interessie
rende Analysestoffe, die durch die Trennungsmikrosäulen
fließen, zu erfassen. Eine zugeordnete Laserdiode, die eine
Strahlung mit einer Wellenlänge emittiert, bei der das Vor
richtungsmaterial "transparent" ist, ermöglicht beispiels
weise einen Erfassungsaufbau, bei dem keine zusätzlichen
Merkmale in den Vorrichtungen vorgesehen sein müssen.
Eine optionale Erfassungseinrichtung kann bei jedem der
vorliegenden Mikroreaktoren einbezogen werden. Insbesondere
auf die Vorrichtung von Fig. 3 bezugnehmend können eine
oder mehrere Erfassungseinrichtungen in dem Substrat 4
und/oder der Abdeckplatte 20 laserablatiert oder auf andere
Weise hergestellt sein. Insbesondere wird die Erfassungs
einrichtung im wesentlichen stromabwärts bezüglich des
stromaufwärtigen Endes 12 der Mikrosäule 10 angeordnet
sein, um die Erfassung einer oder mehrerer Komponenten, die
in derselben enthalten sind, zu ermöglichen. Es kann bei
spielsweise eine Öffnung durch das Substrat 4 vorgesehen
sein, um mit dem Trennungskanal 10 kommunikativ verbunden
zu sein. Eine entsprechende Öffnung kann auf ähnliche Weise
in der Abdeckplatte 20 gebildet sein und so angeordnet
sein, daß sich dieselbe in einer koaxialen Ausrichtung zu
der Erfassungsöffnung in dem Substrat befindet, wenn die
Abdeckplatte an dem Substrat befestigt ist. Bei einem Tren
nungsprozeß können Elektroden mit der miniaturisierten Säu
lenvorrichtung über die betreffenden entsprechenden Öffnun
gen verbunden sein, um getrennte interessierende Analyse
stoffe, die durch das Trennungsabteil fließen, durch elek
trochemische Erfassungstechniken zu erfassen. Bei einer
speziellen Vorrichtungskonfiguration bilden die koaxial
ausgerichteten Öffnungen einen optischen Erfassungsweg, der
die optische Erfassung getrennter Analysestoffe, die durch
die Trennungsmikrosäule fließen, über die Transmission ei
ner Strahlung senkrecht zu der Hauptachse der Trennungsmi
krosäule (und dementsprechend senkrecht zu der Richtung des
elektroosmotischen Flusses bei einer elektrophoretischen
Trennung) ermöglicht.
Eine breite Vielzahl von zugeordneten optischen Erfassungs
vorrichtungen können mit den miniaturisierten Säulen unter
Verwendung der optionale Erfassungseinrichtungen schnitt
stellenmäßig verbunden werden. Folglich kann die Erfassung
von Analysestoffen in Proben, die durch das Trennungsabteil
fließen, ohne weiteres unter Verwendung von UV/Vis-, Fluo
reszenz-, Brechungsindex- (RI-), Raman- und dererlei spek
trophotometrischen Techniken ausgeführt werden.
Ferner wird es ohne weiteres deutlich, daß die Verwendung
einer optis 12745 00070 552 001000280000000200012000285911263400040 0002010106008 00004 12626chen Erfassungseinrichtung mit Öffnungen, die in
das Substrat oder die Abdeckplatte ablatiert (oder auf an
dere Weise hergestellt) sind, eine sehr gute Steuerung über
die effektive optische Erfassungsweglänge liefert. Die re
sultierende Erfassungsweglänge ist im wesentlichen gleich
der kombinierten Dicke des Substrats 4 und der Abdecklatte
20.
Wie es im vorhergehenden in der Beschreibungseinleitung er
örtert wurde, ist die PCR eine wohlbekannte und allgemein
verwendete Technik auf dem Gebiet der Bioanalyse und der
Genomenforschung. Fachleute auf dem Gebiet werden erkennen,
daß die Erörterung der PCR-Verfahren, die hier geliefert
wird, lediglich veranschaulichend ist und nicht begrenzend
sein soll. Eine DNA bzw. DNS (Deoxyribonucleic acid = Deso
xyribonucleinsäure) kann durch thermisches Hin- und Her
steuern einer speziell gebildeten flüssigen Reaktionsmi
schung gemäß einem Polymerase-Kettenreaktions- (PCR-) Pro
tokoll vermehrt werden, das mehrere Inkubationen bei unter
schiedlichen Temperaturen umfaßt. Die Reaktionsmischung be
steht aus verschiedenen Komponenten, wie z. B. der DNA, die
vermehrt werden soll (dem Ziel) und zumindest zwei Oligonu
cleotidprimeren, die auf eine vorbestimmte Weise ausgewählt
sind, um zu einem Abschnitt der Ziel-DNA komplementär zu
sein. Die Reaktionsmischung umfaßt ferner verschiedene Puf
fer, Enzyme und Desoxyribonucleotidtriphosphate, wie z. B.
dATP, dCTP, dGTP und dTTP.
Die Reaktionsmischung kann ferner Deckwirkstoffe oder ober
flächenaktive Stoffe umfassen, um einen Biobewuchs durch
Modifizieren der Innenoberflächen des Mikroreaktors zu ver
hindern. Beispiele solcher Deckwirkstoffe umfassen Poly
ethylenoxidtriblockcopolymere, Polyethylenglykole (PEG) mit
Molekulargewichten, die von etwa 200 bis etwa 8000 reichen,
natürliche Polymere, wie z. B. Bovinserumalbomine (BSA)
oder andere Anteile, die die gewünschten Oberflächencharak
teristika liefern, insbesondere diejenigen, die die Sorpti
on von Biomolekülen, wie z. B. Proteinen, reduzieren.
Das Doppelstrang-DNA-Molekül wird unter Verwendung von Hit
ze in zwei komplementäre Einzelstränge denaturiert. Die
Primere lagern sich dann zu den Strängen an, wobei die Nu
cleosidmonophosphatreste in Anwesenheit einer thermostabi
len DNA-Polymerase mit den Primeren verbunden werden, um
ein Pirmererweiterungsprotodukt zu erzeugen. Nach der Pri
mererweiterung existieren doppelt so viele doppelsträngige
DNA-Moleküle. Dieser Prozeß wird wiederholt, wobei sich die
Menge der vorhandenen DNA jedesmal in etwa verdoppelt. Das
Ergebnis ist eine exponentielle Zunahme der Konzentration
der Ziel-DNA, was als "Vermehrung" bzw. "Verstärkung" ("Am
plification") der Ziel-DNA bekannt ist. Das Verfahren der
Polymerase-Kettenreaktion wird vollständiger in den
U.S.-Patenten Nr. 4,683,202 und Nr. 4,683,195 beschrieben.
Bei einem Ausführungsbeispiel der Erfindung wird eine Lö
sung mit einem Volumen in dem Bereich von etwa 1 µL bis
500 µL und vorzugsweise 10 µL bis 200 µL, die die zu vermehren
de Probe und geeignete Puffer und Reagenzien enthält, über
jegliches geeignete Verfahren in den Mikroreaktor einge
bracht. Das Einbringen der Probe wird unter Verwendung jeg
licher geeigneten Einrichtung, einschließlich der elektro
kinetischen Einspritzung, der hydrodynamischen Einsprit
zung, der spontanen Fluidverdrängung und dergleichen, er
zielt. Die spezielle verwendete Einrichtung wird vor allem
von der Konfiguration des Kanals sowie der Notwendigkeit,
ein präzises Probenvolumen einzubringen, abhängen. Wenn
beispielsweise die verwendete Mikrokanalkonfiguration einen
zweiten Mikrokanal aufweist, der den ersten oder Haupt-
Mikrokanal schneidet, umfaßt, kann der zweite Kanal mit der
Probe befüllt werden, die durch Anlegen eines geeigneten
elektrischen Feldes in den Hauptmikrokanal bewegt wird.
Sobald das Probenfluid in die Reaktionskammer geleitet wor
den ist, wird der Mikroreaktor einem Wärme-Hin-und-Her-
Steuervorgang unterzogen. Der Thermo-Hin-und-Her-
Steuervorgang wird im allgemeinen einen Denaturierungs
schritt bei etwa 93°C bis etwa 95°C für etwa 5 bis 30 Se
kunden, einen Entspannungsschritt bei etwa 50°C bis etwa
65°C für 2 bis 20 Sekunden und einen Polymerisationsschritt
bei etwa 72°C für 5 bis 30 Sekunden umfassen. Die Probe
wird im allgemeinen 30 oder mehr Zyklen ausgesetzt, um die
gewünschte Vermehrung zu erzeugen. Der Wärme-Hin-und-Her-
Steuervorgang kann durch jegliches geeignete und bequeme
Verfahren erzielt werden. Kommerzielle Wärme-Hin-und-Her-
Steuereinrichtungen, wie z. B. der RapidCycler® von Idaho
Technologies und der GeneAmp 2400® von PE-Applied Biosy
stems, sind verfügbar, wobei ein Wärme-Hin-und-Her-
Steuervorgang ferner unter Verwendung einer Peltierplatte
oder einer anderen Heizblockvorrichtung durchgeführt werden
kann. Solche Verfahren und Vorrichtungen sind für Fachleute
auf dem Gebiet wohlbekannt. Alternativ ist ein Wär
me-Hin-und-Her-Steuervorgang unter Verwendung einer Wolframlampe
als eine Infrarotstrahlungsquelle und mit einer Abkühlung,
die durch eine Silenoid-torgesteuerte Quelle mit kompri
mierter Luft bewirkt wird, ein geeignetes Verfahren.
Nachdem der Wärme-Hin-und-Her-Steuervorgang abgeschlossen
ist, wird der Mikroreaktor auf eine Temperatur von etwa 4°C
abgekühlt, wobei die vermehrte Probe für eine anschließende
Analyse, Prozeßverarbeitung, Behandlung oder eine Untersu
chung entfernt wird. Die Probe wird über das Auslaßtor ent
fernt und kann dann unter Verwendung jeglicher geeigneter
Technik extrahiert werden.
Es wird darauf hingewiesen, daß, obwohl die vorhergehende
Beschreibung die bevorzugten Ausführungsbeispiele der vor
liegenden Erfindung veranschaulicht, der Mikroreaktor gemäß
der Erfindung verwendet werden kann, um eine andere Nu
cleinsäurevermehrung und/oder andere Reaktionstechniken ne
ben der PCR auszuführen. Das im vorhergehenden beschriebe
ne Beispiel ist lediglich exemplarisch. Diese Techniken um
fassen die Ligasekettenreaktion und die Reparaturkettenre
aktion, wie sie in Abramson et al. (1993) Current Opinion
in Biotechnolgoy 4: 41-47 erörtert werden. Die Ligaseketten
reaktion wird ferner in Barany (1991) PCR Methods and App
lications 1: 5-16 erörtert. Andere Verfahren, für die die
Erfindung verwendet werden kann, umfassen das 3SR-
Verfahren, das in Fahy et al. (1991), PCR Methods and App
lications 1: 25-33 offenbart wird und die Strangversetzungs
untersuchung (SDA; SDA = Strand Displacement Assay), die in
Walker et al. (1992) Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 89: 392-396
erörtert wird.
Alle diese zusätzlichen Techniken umfassen Reaktionsmi
schungen, die Denaturierungs-, Entspannungs- und Erweite
rungsprozessen unterzogen werden. Dieselben unterscheiden
sich hauptsächlich lediglich in den spezifischen Erweite
rungsmechanismen, die bei dem Primererweiterungsprozeß ver
wendet werden, bei dem die angelagerten Oligonucleotide er
weitert werden, um den Zielstrang nachzubilden bzw. zu re
plizieren. Die Reparaturkettenreaktion und die LCR umfassen
einen sich wiederholenden Wärme-Hin-und-Her-Steuervorgang.
Die 3SR- und SDA-Verfahren umfassen einen Anfangsdenaturie
rungsschritt, der durch eine isotherme Inkubation für die
Entspannungs- und Streckungsprozesse gefolgt wird.
Weitere mögliche Anwendungen der im vorhergehenden be
schriebenen Geräte können ferner die cDNA-Synthese vor der
PCR, die Ligation und die Kinase der DNA und anschließende
Enzymbehandlungen umfassen, bei denen Reagenzienzusätze
während der Inkubationen oder des Wärme-Hin-und-Her-
Steuervorganges erforderlich sein können. Folglich sind die
Ausführungsbeispiele der Erfindung Gegenstand von Modifi
zierung, Variation und Änderung, ohne den korrekten Schutz
bereich der beiliegenden Ansprüche zu verlassen. Dement
sprechend sollen alle solche Änderungen, Modifizierungen
und Variationen, die in den Schutzbereich der beiliegenden
Ansprüche fallen, umfaßt sein. Alle Patentanmeldungen, Pa
tente und andere Veröffentlichungen, die hierin genannt
wurden, werden in ihrer Gesamtheit unter Bezugnahme
aufgenommen.
Es wird darauf hingewiesen, daß, obwohl die Erfindung in
dem Zusammenhang mit bevorzugten spezifischen Ausführungs
beispielen derselben beschrieben worden ist, die vorherge
hende Beschreibung lediglich exemplarisch und nicht den
Schutzbereich der Erfindung begrenzend sein soll. Andere
Aspekte, Vorteile und Modifikationen innerhalb des Schutz
bereiches der Erfindung werden für Fachleute auf dem Ge
biet, das die Erfindung betrifft, offenbar sein.
Alle Patente, Patentanmeldungen und Veröffentlichungen, die
hierin erwähnt werden, werden hiermit in ihrer Gesamtheit
unter Bezugnahme aufgenommen.
Ein GeneAmp® EZ rTth RNA PCR Kit® und der GeneAmp® rTth DNA
Polymerase & EZ Buffer Pack® (PE-Applied Biosystems) wurden
bei einem Beispiel 1 verwendet, um ein 308-bp-DNA-
Bruchstück bzw. Fragment unter Verwendung des Verfahrens
der Erfindung zu vermehren. Es wurde zunächst eine Master-
Mischung aus den Reagenzien, die in Tabelle 1 aufgelistet
sind, präpariert. Alle Reagenzien ausgenommen von Wasser
und PEG 8000 wurden von dem GeneAmp® EZ rTth RNA PCR Kit®
und dem GeneAmp® rTth DNA Polymerase & EZ Buffer Pack® er
halten. Das PEG 8000 wurde von Sigma erhalten und war nu
cleasefrei.
10 µL der Master-Mischung wurde in eine 200-µm-
Innendurchmesser-12-Zoll- (30-cm-) Kapton®-Polyimidkapilla
renröhre aufgebracht, die von Microlumen erhalten wurde.
Die Probe wurde in die Kapillarenröhrenrohrleitung über ei
ne Kapillarwirkung geladen, wobei die Enden der Kapillar
röhre unter Verwendung eines schnell aushärtenden Epoxids
abgedichtet wurden. Die Röhre wurde daraufhin in eine dünn
wandige 0,2-mL-PCR-Röhre eingefügt, wobei die ganze Ein
heit in eine Thermo-Hin-und-Her-Steuereinrichtung Idaho
Technology RapidCycler® plaziert wurde. Die Probe wurde
unter Verwendung der folgenden Hin-und-Her-Steuersequenz
einem Wärme-Hin-und-Her-Steuervorgang unterzogen.
1. 10 Minuten bei 94°C;
2. 30 Sekunden bei 94°C;
3. 15 Sekunden bei 61°C;
4. 30 Sekunden bei 72°C;
5. 10 Minuten bei 72°C; und
6. gespeichert bis zur Verwendung bei 4°C.
1. 10 Minuten bei 94°C;
2. 30 Sekunden bei 94°C;
3. 15 Sekunden bei 61°C;
4. 30 Sekunden bei 72°C;
5. 10 Minuten bei 72°C; und
6. gespeichert bis zur Verwendung bei 4°C.
Schritte 2-4 wurden in 35 Zyklen wiederholt.
Das Produkt wurde entfernt und bei 4°C gespeichert. Ein
aliquoter Teil von 3,5 µL des gespeicherten Produktes wurde
in eine 0,5-mL-Phiale plaziert, wobei 3,5 µL des 2x-
Lastpuffers, das 2x SyberGreen I® (Molecular Probes) ent
hält, hinzugefügt wurde. Die Lösung wurde bei Dunkelheit 15
Minuten lang bei Zimmertemperatur bebrütet bzw. inkubiert,
wobei eine Vermehrung über Agarosegelelektrophorese unter
Verwendung eines 2%-NuSieve-3 : 1-Agarose-Gels bei 4°C unter
Verwendung von 70 V für 2 Stunden und 45 Minuten bestärkt
wurde.
Komponente | |
Volumen (µL) | |
Wasser | 19,25 |
PEG 8000 | 3,75 |
5X-EZ-Puffer® | 10,0 |
dGTP | 1,5 |
dATP | 1,5 |
dTTP | 1,5 |
dCTP | 1,5 |
rTth-DNA-Polymerase | 2,0 |
Mn(OAc)2-Lösung, 25 mM | 5,0 |
Primer DM 151 | 1,5 |
Primer DM 152 | 1,5 |
pAW109-RNA | 1,0 |
Das Verfahren, das bei Beispiel 1 verwendet wurde, wurde
7mal unter Verwendung der Polyimidkapillarenrohrleitung, die
verschiedenen Verfahren der Behandlung unterzogen wurde,
und einer 380-µm-Innendurchmesser-Polyethylenröhre wieder
holt. Das Produkt, das bei Beispiel 1 erzeugt wurde, und
jedes der Produkte, die unter Verwendung der vorbehandelten
Kapillarrohrleitung und der Polyethylenrohrleitung erhalten
wurden, wurde einer Agarosegelelektrophorese unter Verwen
dung eines 2%-NuSieve-3 : 1-Agarose-Gels bei 4°C unter Ver
wendung von 70 V für 2 Stunden und 45 Minuten unterzogen.
Die Ergebnisse der Elektrophorese sind in Fig. 9 darge
stellt. Eine Tabellenaufstellung der Beispiele, der Behand
lungen und der Säulennummer in Fig. 9 sind in Tabelle 2
dargestellt.
Das Verfahren, das in Beispiel 1 beschrieben ist, wurde
verwendet, um unter Verwendung von Bovinserumalbomin (BSA)
in einer 1 mg/mL-Konzentration in der Master-Mischung an
stelle des PEG 8000 DAN zu vermehren.
Claims (60)
1. Vorrichtung zum Durchführen einer Polymerase-Ketten
reaktion (PCR), mit
einer Reaktionskammer, die durch zwei oder mehr Innen oberflächen definiert ist;
einer Einrichtung (27; 47) zum Einbringen von PCR- Reaktionskomponenten in die Kammer;
einer Einrichtung (29; 49) zum Entfernen des PCR- Reaktionsprodukts aus der Kammer; und
einer Einrichtung zum Steuern der Temperatur der Reak tionskammer,
wobei die Vorrichtung aus einem Material hergestellt ist, das unter den Bedingungen, bei denen eine PCR- Reaktion durchgeführt wird, thermisch, chemisch und mechanisch stabil ist, und wobei dieselbe eine Reakti onskammer verwendet, die angepaßt ist, um Fluid in dem Bereich von etwa 1 µl bis 500 µl zu enthalten.
einer Reaktionskammer, die durch zwei oder mehr Innen oberflächen definiert ist;
einer Einrichtung (27; 47) zum Einbringen von PCR- Reaktionskomponenten in die Kammer;
einer Einrichtung (29; 49) zum Entfernen des PCR- Reaktionsprodukts aus der Kammer; und
einer Einrichtung zum Steuern der Temperatur der Reak tionskammer,
wobei die Vorrichtung aus einem Material hergestellt ist, das unter den Bedingungen, bei denen eine PCR- Reaktion durchgeführt wird, thermisch, chemisch und mechanisch stabil ist, und wobei dieselbe eine Reakti onskammer verwendet, die angepaßt ist, um Fluid in dem Bereich von etwa 1 µl bis 500 µl zu enthalten.
2. Vorrichtung gemäß Anspruch 1, bei der die Reaktions
kammer angepaßt ist, um Fluid in dem Bereich von etwa
10 µl bis 200 µl zu enthalten.
3. Vorrichtung gemäß Anspruch 1 oder 2, bei der das Mate
rial ein Polymer ist.
4. Vorrichtung gemäß Anspruch 3, bei der das Material bei
Temperaturen in dem Bereich von 37°C bis 94°C stabil
ist.
5. Vorrichtung gemäß Anspruch 3 oder 4, bei der das Mate
rial eine Glasübergangstemperatur Tg von zumindest et
wa 100°C aufweist.
6. Vorrichtung gemäß Anspruch 5, bei der das Material ei
ne Glasübergangstemperatur Tg in dem Bereich von etwa
100°C bis 150°C aufweist.
7. Vorrichtung gemäß einem der Ansprüche 2 bis 6, bei der
das Material aus der Gruppe ausgewählt ist, die aus
Polyimiden, Polykarbonaten, Polyestern, Polyamiden,
Polyethern, Polyurethanen, Polyfluorokarbonen, Poly
styrenen, Poly(Acrylonitril-Butadien-Styren), Poly
methylmethacrylat, Polyolefinen und Copolymeren der
selben besteht.
8. Vorrichtung gemäß Anspruch 7, bei der das Material Po
lyimid ist.
9. Vorrichtung gemäß einem der Ansprüche 1 bis 8, bei der
das Material derart ist, daß in demselben Merkmale mit
hoher Definiertheit hergestellt werden können.
10. Vorrichtung gemäß Anspruch 9, bei der die Merkmale Mi
krokanäle mit einem Durchmesser von etwa 1 µm bis 200 µm
aufweisen.
11. Vorrichtung gemäß Anspruch 10, bei der die Merkmale
Mikrokanäle mit einem Durchmesser von etwa 10 µm bis
75 µm aufweisen.
12. Vorrichtung gemäß einem der Ansprüche 1 bis 11, bei
der die Substratoberfläche behandelt ist, um die ther
mische Stabilität, die chemische Stabilität und die
Biobewuchsresistenz zu erhöhen.
13. Vorrichtung gemäß Anspruch 12, bei der die Oberflä
chenbehandlung die Bildung einer Polyethylenoxid
schicht aufweist.
14. Vorrichtung gemäß Anspruch 12, bei der die Oberflä
chenbehandlung die Bildung einer Schicht aus Bovinse
rumalbomin aufweist.
15. Mikroreaktor (31) zum Vermehren von DNA unter Verwen
dung der Polymerase-Kettenreaktion (PCR), mit
einem Substrat (33) mit einer ersten und einer zweiten im wesentlichen planaren Oberfläche, die sich gegen über liegen, wobei das Substrat einen Hohlraum und zu mindest einen Mikrokanal (39, 41) aufweist, die in der ersten planaren Oberfläche (35) gebildet sind, und wo bei der Hohlraum als eine Reaktionszone (37) dient, die sich in einer Fluidkommunikation mit jedem Mikro kanal befindet; und
einer Abdeckplatte (43), die über der ersten planaren Oberfläche (35) angeordnet ist, wobei die Abdeckplatte in Kombination mit dem Hohlraum eine Reaktionskammer und mit jedem Mikrokanal eine Mikrosäule definiert; und
zumindest einem Einlaßtor (47) und zumindest einem Auslaßtor (49), die direkt oder indirekt mit der Reak tionskammer kommunikativ verbunden sind, wobei die To re den Durchtritt eines Fluides von einer externen Quelle in und durch die Reaktionskammer ermöglichen, wodurch ein Fluidflußweg definiert wird;
wobei das Substrat (33) und die Abdeckplatte (43) aus einem Material bestehen, das unter den Bedingungen, die zum Durchführen einer PCR-Vermehrung von DNA ver wendet werden, stabil und resistent gegen Biobewuchs ist.
einem Substrat (33) mit einer ersten und einer zweiten im wesentlichen planaren Oberfläche, die sich gegen über liegen, wobei das Substrat einen Hohlraum und zu mindest einen Mikrokanal (39, 41) aufweist, die in der ersten planaren Oberfläche (35) gebildet sind, und wo bei der Hohlraum als eine Reaktionszone (37) dient, die sich in einer Fluidkommunikation mit jedem Mikro kanal befindet; und
einer Abdeckplatte (43), die über der ersten planaren Oberfläche (35) angeordnet ist, wobei die Abdeckplatte in Kombination mit dem Hohlraum eine Reaktionskammer und mit jedem Mikrokanal eine Mikrosäule definiert; und
zumindest einem Einlaßtor (47) und zumindest einem Auslaßtor (49), die direkt oder indirekt mit der Reak tionskammer kommunikativ verbunden sind, wobei die To re den Durchtritt eines Fluides von einer externen Quelle in und durch die Reaktionskammer ermöglichen, wodurch ein Fluidflußweg definiert wird;
wobei das Substrat (33) und die Abdeckplatte (43) aus einem Material bestehen, das unter den Bedingungen, die zum Durchführen einer PCR-Vermehrung von DNA ver wendet werden, stabil und resistent gegen Biobewuchs ist.
16. Mikroreaktor gemäß Anspruch 15, bei dem das Substrat
material verglichen zu einem Substrat, das aus einem
Silizium-enthaltenden Material gebildet ist, eine re
duzierte Adsorption von gelösten Stoffen liefert.
17. Mikroreaktor gemäß Anspruch 15 oder 16, bei dem das
Substratmaterial modifiziert sein kann, um den elek
troosmotischen Fluß eines fließenden Fluids, das sich
mit demselben in Kontakt befindet, zu verändern.
18. Mikroreaktor gemäß einem der Ansprüche 15 bis 17, bei
dem das Substratmaterial ein Polymer ist.
19. Mikroreaktor gemäß Anspruch 18, bei dem das Substrat
material aus der Gruppe ausgewählt ist, die aus Polyi
miden, Polykarbonaten, Polyestern, Polyamiden, Polye
thern, Polyurethanen, Polyfluorokarbonen, Polystyre
nen, Poly(Acrylonitril-Butadien-Styren), Polymethyl
methacrylat, Polyolefinen und Copolymeren derselben
besteht.
20. Mikroreaktor gemäß Anspruch 19, bei dem das Substrat
(33) aus Polyimid besteht.
21. Mikroreaktor gemäß einem der Ansprüche 15 bis 20, bei
dem die Substratoberfläche behandelt ist, um die ther
mische Stabilität, die chemische Stabilität und die
Biobewuchsresistenz weiter zu erhöhen.
22. Mikroreaktor gemäß Anspruch 21, bei dem die Oberflä
chenbehandlung die Bildung einer Polyethylenoxid
schicht aufweist.
23. Mikroreaktor gemäß Anspruch 21, bei dem die Oberflä
chenbehandlung die Bildung einer Schicht aus Bovinse
rumalbomin aufweist.
24. Mikroreaktor gemäß einem der Ansprüche 15 bis 23, der
ferner einen zusätzlichen Hohlraum aufweist, der in
der ersten planaren Oberfläche (57) gebildet ist und
in Kombination mit der Abdeckplatte eine zusätzliche
Reaktionskammer zum Durchführen einer PCR-Vermehrung
von DNA bildet.
25. Mikroreaktor gemäß einem der Ansprüche 15 bis 24, bei
dem die Reaktionskammer eine stromaufwärtige Region,
in der ein Fluid eingebracht wird, und eine stromab
wärtige Region, aus der das Fluid austritt, aufweist,
und bei dem der zumindest eine Mikrokanal (39, 41) ei
nen stromaufwärtigen Mikrokanal (39), der sich in ei
ner Fluidkommunikation mit der stromaufwärtigen Region
der Reaktionskammer befindet, und einen stromabwärti
gen Mikrokanal (41), der sich in einer Fluidkommunika
tion mit der stromabwärtigen Region der Reaktionskam
mer befindet, aufweist.
26. Mikroreaktor gemäß Anspruch 25, bei dem der stromauf
wärtige Mikrokanal (39) in Kombination mit der Abdeck
platte (43) eine stromaufwärtige Mikrosäule bildet,
und der stromabwärtige Mikrokanal (41) in Kombination
mit der Abdeckplatte (43) eine stromabwärtige Mikro
säule bildet.
27. Mikroreaktor gemäß einem der Ansprüche 15 bis 26, der
ferner eine Antriebseinrichtung aufweist, um ein Fluid
durch den Fluidflußweg zu bewegen.
28. Mikroreaktor gemäß Anspruch 27, bei der die An
triebseinrichtung eine Einrichtung zum Anlegen einer
Spannungsdifferenz aufweist.
29. Mikroreaktor gemäß Anspruch 27, bei der die An
triebseinrichtung eine Einrichtung zum Anlegen einer
Druckdifferenz aufweist.
30. Mikroreaktor gemäß einem der Ansprüche 16 bis 29, bei
der die Reaktionskammer proportioniert ist, um etwa
1 µl bis 500 µl Fluid zu enthalten.
31. Mikroreaktor gemäß Anspruch 30, bei der die Reaktions
kammer proportioniert ist, um etwa 10 µl bis 200 µl
Fluid zu enthalten.
32. Mikroreaktor gemäß einem der Ansprüche 15 bis 31, bei
dem der zumindest eine Mikrokanal (39, 41) einen
Durchmesser von 1 µm bis 200 µm aufweist.
33. Mikroreaktor gemäß Anspruch 32, bei dem der zumindest
eine Mikrokanal (39, 41) einen Durchmesser von etwa
10 µm bis 75 µm aufweist.
34. Verfahren zum Durchführen der Polymerase-Ketten
reaktion (PCR), um DNA in einer Probe zu vermehren,
mit folgenden Schritten:
Erhitzen der Probe, um die doppelsträngige DNA in eine einzelsträngige DNA zu trennen;
Abkühlen der Probe, um eine Hybridisierung von Prime roligonucleotiden zu der einzelsträngigen DNA zu er möglichen;
Replizieren der DNA unter Verwendung einer DNA-Poly merase; und
Wiederholen der im vorhergehenden erwähnten Schritte, um den gewünschten Grad an Vermehrung zu erzielen,
wobei das Verfahren ferner folgenden Schritt aufweist:
Durchführen der PCR in einem Mikroreaktor, der aus einem Material besteht, das unter den Bedingungen, bei denen die PCR-Reaktion durchgeführt wird, thermisch, chemisch und mechanisch stabil ist, und der eine Reak tionskammer verwendet, die angepaßt ist, um etwa 1 µl bis 500 µl Fluid zu enthalten.
Erhitzen der Probe, um die doppelsträngige DNA in eine einzelsträngige DNA zu trennen;
Abkühlen der Probe, um eine Hybridisierung von Prime roligonucleotiden zu der einzelsträngigen DNA zu er möglichen;
Replizieren der DNA unter Verwendung einer DNA-Poly merase; und
Wiederholen der im vorhergehenden erwähnten Schritte, um den gewünschten Grad an Vermehrung zu erzielen,
wobei das Verfahren ferner folgenden Schritt aufweist:
Durchführen der PCR in einem Mikroreaktor, der aus einem Material besteht, das unter den Bedingungen, bei denen die PCR-Reaktion durchgeführt wird, thermisch, chemisch und mechanisch stabil ist, und der eine Reak tionskammer verwendet, die angepaßt ist, um etwa 1 µl bis 500 µl Fluid zu enthalten.
35. Verfahren gemäß Anspruch 34, bei dem die Reaktionskam
mer angepaßt ist, um Fluid in dem Bereich von etwa
10 µl bis 200 µl zu enthalten.
36. Verfahren gemäß Anspruch 34 oder 35, bei dem das Mate
rial ein Polymer ist.
37. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 34 bis 36, bei dem
das Material bei Temperaturen in dem Bereich von etwa
37°C bis 94°C stabil ist.
38. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 34 bis 37, bei dem
das Material eine Glasübergangstemperatur Tg von zu
mindest etwa 100°C aufweist.
39. Verfahren gemäß Anspruch 38, bei dem das Material eine
Glasübergangstemperatur Tg in dem Bereich von etwa
100°C bis 150°C aufweist.
40. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 35 bis 39, bei dem
das Material aus der Gruppe ausgewählt ist, die aus
Polyimiden, Polykarbonaten, Polyestern, Polyamiden,
Polyethern, Polyurethanen, Polyfluorokarbonen, Poly
styrenen, Poly(Acrylonitril-Butadien-Styren), Poly
methylmethacrylat, Polyolefinen und Copolymeren der
selben besteht.
41. Verfahren gemäß Anspruch 40, bei dem Material Polyimid
ist.
42. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 34 bis 41, bei dem
das Material derart ist, daß in demselben Merkmale mit
hoher Definiertheit hergestellt werden können.
43. Verfahren gemäß Anspruch 42, bei dem die Merkmale Mi
krokanäle mit einem Durchmesser von etwa 1 µm bis
200 µm aufweisen.
44. Verfahren gemäß Anspruch 43, bei dem die Merkmale Mi
krokanäle mit einem Durchmesser von etwa 10 µm bis
75 µm aufweisen.
45. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 34 bis 44, bei dem
die Substratoberfläche behandelt ist, um die thermi
sche Stabilität, die chemische Stabilität und die Bio
bewuchsresistenz zu erhöhen.
46. Verfahren gemäß Anspruch 45, bei dem die Oberflächen
behandlung die Bildung einer Polyethylenoxidschicht
aufweist.
47. Verfahren gemäß Anspruch 45, bei dem die Oberflächen
behandlung die Bildung einer Schicht aus Bovinserumal
bomin aufweist.
48. Verfahren zum Vermehren der Menge eines interessieren
den DNA-Moleküls, das in einem kleinen Volumen eines
Probenfluids enthalten ist, unter Verwendung der Poly
merase-Kettenreaktion, wobei das Verfahren folgende
Schritte aufweist:
- a) Einbringen von bis zu etwa 10 µl eines Probenflu
ids, das das interessierende DNA-Molekül in dop
pelsträngiger Form, ein erstes und ein zweites
Primermolekül, das zu entgegengesetzten Strängen
des DNA-Moleküls komplementär ist, eine thermo
stabile DNA-Polymerase, freie Desoxynucleosid
triphosphate und einen PCR-Puffer enthält, in ei
nen Mikroreaktor, wobei der Mikroreaktor folgende
Merkmale aufweist:
ein Substrat (33) mit einer ersten und einer zweiten im wesentlichen planaren Oberfläche, die sich gegenüber liegen, wobei das Substrat (33) einen Hohlraum aufweist, der in der ersten plana ren Oberfläche gebildet ist, und wobei der Hohl raum als eine Reaktionszone (37) dient,
eine Abdeckplatte (43), die über der ersten pla naren Oberfläche (35) angeordnet ist, wobei die Abdeckplatte (43) in Kombination mit dem Hohlraum eine Reaktionskammer definiert, und
zumindest einem Einlaßtor (47) und zumindest ei nem Auslaßtor (49), die sich in einer Fluidkommu nikation mit der Reaktionskammer befinden, wobei die Tore den Durchtritt eines Probenfluids von einer externen Quelle in und durch die Reaktions kammer ermöglichen, wodurch ein Fluidflußweg de finiert wird,
wobei das Substrat (33) und die Abdeckplatte (43) aus einem Material bestehen, das thermisch stabil und resistent gegen Biobewuchs ist; - b) Anlegen einer Antriebskraft an die Vorrichtung, um das Probenfluid entlang des Flußweges in die Reaktionskammer zu bewegen;
- c) Erhitzen des Probenfluids in der Reaktionskammer, um die doppelsträngige DNA in eine einzelsträngi ge DNA zu trennen;
- d) Abkühlen der Probe, um eine Hybridisierung der Primermoleküle zu entgegengesetzten Strängen der einzelsträngigen DNA und eine Replikation der einzelsträngigen DNA durch die DNA-Polymerase zu ermöglichen; und
- e) Wiederholen der Schritte (c) und (d), um den ge wünschten Grad an Vermehrung zu erzielen.
49. Das Verfahren gemäß Anspruch 48, bei dem das Substrat
material modifiziert sein kann, um den elektroosmoti
schen Fluß eines fließenden Fluids, das sich in Kon
takt mit demselben befindet, zu verändern.
50. Verfahren gemäß Anspruch 49, bei dem das Substratmate
rial ein Polymer ist.
51. Verfahren gemäß Anspruch 50, bei dem das Material aus
der Gruppe ausgewählt ist, die aus Polyimiden, Poly
karbonaten, Polyestern, Polyamiden, Polyethern, Polyu
rethanen, Polyfluorokarbonen, Polystyrenen, Po
ly(Acrylonitril-Butadien-Styren), Polymethylmethacry
lat, Polyolefinen und Copolymeren derselben besteht.
52. Verfahren gemäß Anspruch 51, bei dem das Substrat aus
Polyimid besteht.
53. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 48 bis 52, bei dem
die Substratoberfläche behandelt ist, um die thermi
sche Stabilität, die chemische Stabilität und die Bio
bewuchsresistenz weiter zu erhöhen.
54. Verfahren gemäß Anspruch 53, bei dem die Oberflächen
behandlung die Bildung einer Polyethylenoxidschicht
aufweist.
55. Verfahren gemäß Anspruch 53, bei der die Oberflächen
behandlung die Bildung einer Schicht aus Bovinserumal
bomin aufweist.
56. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 48 bis 55, bei dem
die Vorrichtung ferner einen zusätzlichen Hohlraum
aufweist, der in der ersten planaren Oberfläche gebil
det ist und in Kombination mit der Abdeckplatte eine
zusätzliche PCR-Reaktionskammer bildet.
57. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 48 bis 56, bei dem
die Antriebseinrichtung eine Einrichtung zum Anlegen
einer Spannungsdifferenz aufweist.
58. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 48 bis 56, bei dem
die Antriebseinrichtung eine Einrichtung zum Anlegen
einer Druckdifferenz aufweist.
59. Verfahren zum Vermehren der Menge eines interessieren
den DNA-Moleküls, das in einem kleinen Volumen eines
Probenfluids enthalten ist, unter Verwendung der Poly
merase-Kettenreaktion, wobei das Verfahren folgende
Schritte aufweist:
- a) Einbringen von bis zu etwa 10 µl eines Probenflu
ids, das das interessierende DNA-Molekül in dop
pelsträngiger Form, ein erstes und ein zweites
Primermolekül, die zu entgegengesetzten Strängen
des DNA-Moleküls komplementär sind, eine thermo
stabile DNA-Polymerase, freie Desoxynucleosid
triphosphate und einen PCR-Puffer enthält, in ei
nen Mikroreaktor, wobei der Mikroreaktor folgende
Merkmale aufweist:
ein Substrat (33) mit einer ersten und einer zweiten im wesentlichen planaren Oberfläche, die sich gegenüber liegen, wobei in der ersten plana ren Oberfläche des Substrates (33) ein Hohlraum und zumindest ein Mikrokanal (39, 41) gebildet sind, und wobei der Hohlraum als eine Reaktions zone (37) dient, die sich in einer Fluidkommuni kation mit jedem Mikrokanal (39, 41) befindet,
eine Abdeckplatte (43), die über der ersten pla naren Oberfläche (35) angeordnet ist, wobei die Abdeckplatte (43) in Kombination mit dem Hohlraum eine Reaktionskammer und mit jedem Mikrokanal (39, 41) eine Mikrosäule definiert, und
zumindest ein Einlaßtor (47) und zumindest ein Auslaßtor (49), die mit der Reaktionskammer di rekt oder indirekt kommunikativ verbunden sind, wobei die Tore (47, 49) den Durchtritt eines Pro benfluids von einer externen Quelle in und durch die Reaktionskammer ermöglichen, wodurch ein Fluid flußweg definiert wird,
wobei das Substrat (33) und die Abdeckplatte (43) aus einem Material bestehen, das thermisch stabil und resistent gegen Biobewuchs ist; - b) Anlegen einer Antriebskraft an die Vorrichtung, um das Probenfluid entlang des Flußweges in die Reaktionskammer zu bewegen;
- c) Erhitzen des Probenfluids in der Reaktionskammer um die doppelsträngige DNA in eine einzelsträngi ge DNA zu trennen;
- d) Abkühlen der Probe, um eine Hybridisierung der Primermoleküle zu entgegengesetzten Strängen der einzelsträngigen DNA und eine Replikation der einzelsträngigen DNA durch die DNA-Polymerase zu ermöglichen; und
- e) Wiederholen der Schritte (c) und (d), um den ge wünschten Grad an Vermehrung zu erzielen.
60. Verfahren gemäß Anspruch 59, das ferner das Sammeln
des Reaktionsproduktes an dem Auslaßtor aufweist.
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US09/502,597 US6613560B1 (en) | 1994-10-19 | 2000-02-11 | PCR microreactor for amplifying DNA using microquantities of sample fluid |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE10106008A1 true DE10106008A1 (de) | 2001-09-06 |
Family
ID=23998531
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE10106008A Ceased DE10106008A1 (de) | 2000-02-11 | 2001-02-09 | PCR-Mikroreaktor zum Vermehren von DNA unter Verwendung von Mikromengen eines Probenfluids |
Country Status (2)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US6613560B1 (de) |
DE (1) | DE10106008A1 (de) |
Cited By (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP1418233A1 (de) * | 2002-07-05 | 2004-05-12 | Matsushita Electric Industrial Co., Ltd. | Behälter für die polymerasekettenreaktion und verfahren zu dessen herstellung |
EP2046940A2 (de) * | 2006-06-26 | 2009-04-15 | Applera Corporation | Beheizte abdeckungsverfahren und technologie |
DE102017108120A1 (de) * | 2017-04-13 | 2018-10-18 | Laser-Laboratorium Göttingen e.V. | Analysevorrichtung |
EP1594798B1 (de) * | 2003-01-30 | 2018-12-19 | Gyros Patent Ab | Innenwände mikrofluidischer vorrichtungen |
EP4046715A1 (de) * | 2021-02-18 | 2022-08-24 | Joanneum Research Forschungsgesellschaft mbH | Mikrofluidisches system aus einer gefalteten folie und herstellungsverfahren |
CN114950581A (zh) * | 2022-04-06 | 2022-08-30 | 东南大学 | 一种多轨道螺旋微流控芯片及其制造方法 |
Families Citing this family (93)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6420622B1 (en) | 1997-08-01 | 2002-07-16 | 3M Innovative Properties Company | Medical article having fluid control film |
US7223364B1 (en) * | 1999-07-07 | 2007-05-29 | 3M Innovative Properties Company | Detection article having fluid control film |
GB2368809B (en) * | 2000-09-15 | 2004-09-29 | Norchip As | Microfabricated reaction chamber system |
US6702256B2 (en) * | 2001-07-17 | 2004-03-09 | Agilent Technologies, Inc. | Flow-switching microdevice |
US6939032B2 (en) * | 2001-10-25 | 2005-09-06 | Erie Scientific Company | Cover slip mixing apparatus |
DE10209897A1 (de) * | 2002-03-08 | 2003-09-25 | Merck Patent Gmbh | Mikrokomponenten-Anschlusssystem |
US6911132B2 (en) | 2002-09-24 | 2005-06-28 | Duke University | Apparatus for manipulating droplets by electrowetting-based techniques |
US7329545B2 (en) | 2002-09-24 | 2008-02-12 | Duke University | Methods for sampling a liquid flow |
DE112004000222T5 (de) * | 2003-01-31 | 2006-01-19 | Sumitomo Chemical Co. Ltd. | Gerät und Verfahren zur Klassierung von Emulsionen und Verfahren zum Dismulgieren von Emulsionen |
EP1606419A1 (de) | 2003-03-18 | 2005-12-21 | Quantum Genetics Ireland Limited | Systeme und methoden zur erhohung der milchproduktion in tieren |
US7648835B2 (en) * | 2003-06-06 | 2010-01-19 | Micronics, Inc. | System and method for heating, cooling and heat cycling on microfluidic device |
CN1812839A (zh) * | 2003-06-06 | 2006-08-02 | 精密公司 | 在微流体装置上的加热、冷却和热循环的系统与方法 |
EP1680806A4 (de) * | 2003-10-28 | 2008-07-30 | Sachem Inc | Reinigungslösungen und ätzmittel und verfahren zu ihrer verwendung |
WO2005073410A2 (en) * | 2004-01-28 | 2005-08-11 | 454 Corporation | Nucleic acid amplification with continuous flow emulsion |
US8293471B2 (en) * | 2004-01-28 | 2012-10-23 | Marshall University Research Corporation | Apparatus and method for a continuous rapid thermal cycle system |
ATE510928T1 (de) | 2004-02-19 | 2011-06-15 | Univ Alberta | Leptinpromotor-polymorphismen und verwendungen davon |
US8101431B2 (en) | 2004-02-27 | 2012-01-24 | Board Of Regents, The University Of Texas System | Integration of fluids and reagents into self-contained cartridges containing sensor elements and reagent delivery systems |
EP3640342A1 (de) * | 2004-05-13 | 2020-04-22 | Nanobiosym, Inc. | Nano-pcr: verfahren und vorrichtung zur amplifikation und detektion von nukleinsäuren |
CN101146595B (zh) | 2005-01-28 | 2012-07-04 | 杜克大学 | 用于在印刷电路板上操作液滴的装置和方法 |
US20060171855A1 (en) * | 2005-02-03 | 2006-08-03 | Hongfeng Yin | Devices,systems and methods for multi-dimensional separation |
US20060219637A1 (en) * | 2005-03-29 | 2006-10-05 | Killeen Kevin P | Devices, systems and methods for liquid chromatography |
US8481125B2 (en) * | 2005-05-21 | 2013-07-09 | Advanced Liquid Logic Inc. | Mitigation of biomolecular adsorption with hydrophilic polymer additives |
AU2006261953B2 (en) * | 2005-06-24 | 2012-02-23 | Board Of Regents, The University Of Texas System | Systems and methods including self-contained cartridges with detection systems and fluid delivery systems |
CN101356441B (zh) * | 2005-10-25 | 2011-06-15 | 株式会社岛津制作所 | 流通池及其制造方法 |
US7913928B2 (en) | 2005-11-04 | 2011-03-29 | Alliant Techsystems Inc. | Adaptive structures, systems incorporating same and related methods |
JP2009531464A (ja) | 2006-03-29 | 2009-09-03 | メリアル リミテッド | 連鎖球菌に対するワクチン |
US20140193807A1 (en) | 2006-04-18 | 2014-07-10 | Advanced Liquid Logic, Inc. | Bead manipulation techniques |
US9476856B2 (en) | 2006-04-13 | 2016-10-25 | Advanced Liquid Logic, Inc. | Droplet-based affinity assays |
US8613889B2 (en) * | 2006-04-13 | 2013-12-24 | Advanced Liquid Logic, Inc. | Droplet-based washing |
US8492168B2 (en) * | 2006-04-18 | 2013-07-23 | Advanced Liquid Logic Inc. | Droplet-based affinity assays |
US8637317B2 (en) * | 2006-04-18 | 2014-01-28 | Advanced Liquid Logic, Inc. | Method of washing beads |
US7901947B2 (en) | 2006-04-18 | 2011-03-08 | Advanced Liquid Logic, Inc. | Droplet-based particle sorting |
WO2007123908A2 (en) | 2006-04-18 | 2007-11-01 | Advanced Liquid Logic, Inc. | Droplet-based multiwell operations |
US10078078B2 (en) | 2006-04-18 | 2018-09-18 | Advanced Liquid Logic, Inc. | Bead incubation and washing on a droplet actuator |
US8716015B2 (en) | 2006-04-18 | 2014-05-06 | Advanced Liquid Logic, Inc. | Manipulation of cells on a droplet actuator |
US8637324B2 (en) | 2006-04-18 | 2014-01-28 | Advanced Liquid Logic, Inc. | Bead incubation and washing on a droplet actuator |
US8389297B2 (en) | 2006-04-18 | 2013-03-05 | Duke University | Droplet-based affinity assay device and system |
US8809068B2 (en) * | 2006-04-18 | 2014-08-19 | Advanced Liquid Logic, Inc. | Manipulation of beads in droplets and methods for manipulating droplets |
US7439014B2 (en) | 2006-04-18 | 2008-10-21 | Advanced Liquid Logic, Inc. | Droplet-based surface modification and washing |
US8658111B2 (en) | 2006-04-18 | 2014-02-25 | Advanced Liquid Logic, Inc. | Droplet actuators, modified fluids and methods |
US8980198B2 (en) | 2006-04-18 | 2015-03-17 | Advanced Liquid Logic, Inc. | Filler fluids for droplet operations |
JP2009534033A (ja) | 2006-04-21 | 2009-09-24 | ナノバイオシン,インコーポレイテッド | 薬物発見のための単一分子プラットホーム:抗癌剤および抗ウイルス剤の発見を含む薬物発見のための方法および装置 |
US10741034B2 (en) | 2006-05-19 | 2020-08-11 | Apdn (B.V.I.) Inc. | Security system and method of marking an inventory item and/or person in the vicinity |
WO2008045288A2 (en) * | 2006-10-06 | 2008-04-17 | Vandalia Research, Inc. | Method for a continuous rapid thermo cycle system |
KR101503510B1 (ko) | 2007-02-09 | 2015-03-18 | 어드밴스드 리퀴드 로직, 아이엔씨. | 자성 비즈를 이용하는 액적 작동기 장치 및 방법 |
WO2008141006A1 (en) * | 2007-05-08 | 2008-11-20 | Varian, Inc. | Sample preparation device and method utilizing polymide tube |
EP2425894B1 (de) | 2007-06-21 | 2016-12-28 | Gen-Probe Incorporated | Instrumente und Verfahren zur Aussetzung eines Behälters zu mehreren Wärmezonen |
WO2009021233A2 (en) | 2007-08-09 | 2009-02-12 | Advanced Liquid Logic, Inc. | Pcb droplet actuator fabrication |
US8911938B2 (en) * | 2007-12-10 | 2014-12-16 | The Trustees Of The University Of Pennsylvania | Reaction chamber having pre-stored reagents |
US20100034704A1 (en) * | 2008-08-06 | 2010-02-11 | Honeywell International Inc. | Microfluidic cartridge channel with reduced bubble formation |
WO2010083852A1 (en) * | 2009-01-26 | 2010-07-29 | Tethis S.R.L. | Functionalized microfluidic device for immunofluorescence |
US20130053252A1 (en) * | 2009-09-25 | 2013-02-28 | President & Fellows Of Harvard College | Nucleic acid amplification and sequencing by synthesis with fluorogenic nucleotides |
US8795592B2 (en) | 2010-09-23 | 2014-08-05 | Analogic Corporation | Sample thermal cycling |
US8945843B2 (en) | 2010-12-09 | 2015-02-03 | Analogic Corporation | Thermocooler with thermal breaks that thermally isolate a thermocycling region from at least one guard heat region |
US9513253B2 (en) | 2011-07-11 | 2016-12-06 | Advanced Liquid Logic, Inc. | Droplet actuators and techniques for droplet-based enzymatic assays |
CN102247787A (zh) * | 2011-08-01 | 2011-11-23 | 利穗科技(苏州)有限公司 | 一种混沌型微反应器 |
GB201113990D0 (en) | 2011-08-12 | 2011-09-28 | Molecular Vision Ltd | Flow control in a microfluidic device |
EP2647435B1 (de) | 2012-04-05 | 2020-08-05 | ThinXXS Microtechnology AG | Anordnung aus einer flusszelle und einem temperierelement |
US9963740B2 (en) | 2013-03-07 | 2018-05-08 | APDN (B.V.I.), Inc. | Method and device for marking articles |
US10933417B2 (en) | 2013-03-15 | 2021-03-02 | Nanobiosym, Inc. | Systems and methods for mobile device analysis of nucleic acids and proteins |
TWI646230B (zh) | 2013-08-05 | 2019-01-01 | 扭轉生物科技有限公司 | 重新合成之基因庫 |
EP3058339B1 (de) | 2013-10-07 | 2019-05-22 | APDN (B.V.I.) Inc. | Multimodales bild und spektraler leser |
KR101536164B1 (ko) * | 2013-12-18 | 2015-07-13 | 한국기초과학지원연구원 | 유도체화 반응 기체 크로마토그래피 칩 |
US10047282B2 (en) | 2014-03-18 | 2018-08-14 | Apdn (B.V.I.) Inc. | Encrypted optical markers for security applications |
US10745825B2 (en) | 2014-03-18 | 2020-08-18 | Apdn (B.V.I.) Inc. | Encrypted optical markers for security applications |
CN107074904B (zh) | 2014-10-23 | 2022-12-23 | 深圳华大智造科技股份有限公司 | 信号约束测序(scs)和用于信号约束测序的核苷酸类似物 |
WO2016114850A1 (en) * | 2015-01-14 | 2016-07-21 | Agilent Technologies, Inc. | Components with an atomic layer deposition coating and methods of producing the same |
CA2975852A1 (en) | 2015-02-04 | 2016-08-11 | Twist Bioscience Corporation | Methods and devices for de novo oligonucleic acid assembly |
WO2016126987A1 (en) | 2015-02-04 | 2016-08-11 | Twist Bioscience Corporation | Compositions and methods for synthetic gene assembly |
WO2016172377A1 (en) | 2015-04-21 | 2016-10-27 | Twist Bioscience Corporation | Devices and methods for oligonucleic acid library synthesis |
JP6982362B2 (ja) | 2015-09-18 | 2021-12-17 | ツイスト バイオサイエンス コーポレーション | オリゴ核酸変異体ライブラリーとその合成 |
CN113604546A (zh) | 2015-09-22 | 2021-11-05 | 特韦斯特生物科学公司 | 用于核酸合成的柔性基底 |
CN108603307A (zh) | 2015-12-01 | 2018-09-28 | 特韦斯特生物科学公司 | 功能化表面及其制备 |
CN109070130B (zh) | 2016-04-11 | 2022-03-22 | 亚普蒂恩(B V I)公司 | 用于标记纤维素产品的方法 |
AU2017315294B2 (en) | 2016-08-22 | 2023-12-21 | Twist Bioscience Corporation | De novo synthesized nucleic acid libraries |
CN110248724B (zh) | 2016-09-21 | 2022-11-18 | 特韦斯特生物科学公司 | 基于核酸的数据存储 |
US10995371B2 (en) | 2016-10-13 | 2021-05-04 | Apdn (B.V.I.) Inc. | Composition and method of DNA marking elastomeric material |
EA201991262A1 (ru) | 2016-12-16 | 2020-04-07 | Твист Байосайенс Корпорейшн | Библиотеки вариантов иммунологического синапса и их синтез |
US10920274B2 (en) | 2017-02-21 | 2021-02-16 | Apdn (B.V.I.) Inc. | Nucleic acid coated submicron particles for authentication |
CN110892485B (zh) | 2017-02-22 | 2024-03-22 | 特韦斯特生物科学公司 | 基于核酸的数据存储 |
US10894959B2 (en) | 2017-03-15 | 2021-01-19 | Twist Bioscience Corporation | Variant libraries of the immunological synapse and synthesis thereof |
WO2018231864A1 (en) | 2017-06-12 | 2018-12-20 | Twist Bioscience Corporation | Methods for seamless nucleic acid assembly |
US10696965B2 (en) | 2017-06-12 | 2020-06-30 | Twist Bioscience Corporation | Methods for seamless nucleic acid assembly |
KR20200047706A (ko) | 2017-09-11 | 2020-05-07 | 트위스트 바이오사이언스 코포레이션 | Gpcr 결합 단백질 및 이의 합성 방법 |
US10894242B2 (en) | 2017-10-20 | 2021-01-19 | Twist Bioscience Corporation | Heated nanowells for polynucleotide synthesis |
US11383236B2 (en) * | 2017-11-10 | 2022-07-12 | Christopher Walker | Polymerase chain reaction using a microfluidic chip fabricated with printed circuit board techniques |
EP3735459A4 (de) | 2018-01-04 | 2021-10-06 | Twist Bioscience Corporation | Digitale informationsspeicherung auf dna-basis |
EP3536402A1 (de) * | 2018-03-09 | 2019-09-11 | Ibidi Gmbh | Probenkammer |
CN112639130B (zh) | 2018-05-18 | 2024-08-09 | 特韦斯特生物科学公司 | 用于核酸杂交的多核苷酸、试剂和方法 |
CA3131691A1 (en) | 2019-02-26 | 2020-09-03 | Twist Bioscience Corporation | Variant nucleic acid libraries for antibody optimization |
SG11202109322TA (en) | 2019-02-26 | 2021-09-29 | Twist Bioscience Corp | Variant nucleic acid libraries for glp1 receptor |
CA3144644A1 (en) | 2019-06-21 | 2020-12-24 | Twist Bioscience Corporation | Barcode-based nucleic acid sequence assembly |
KR20220066151A (ko) | 2019-09-23 | 2022-05-23 | 트위스트 바이오사이언스 코포레이션 | Crth2에 대한 변이체 핵산 라이브러리 |
Family Cites Families (21)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5333675C1 (en) | 1986-02-25 | 2001-05-01 | Perkin Elmer Corp | Apparatus and method for performing automated amplification of nucleic acid sequences and assays using heating and cooling steps |
US4965188A (en) | 1986-08-22 | 1990-10-23 | Cetus Corporation | Process for amplifying, detecting, and/or cloning nucleic acid sequences using a thermostable enzyme |
US5656493A (en) | 1985-03-28 | 1997-08-12 | The Perkin-Elmer Corporation | System for automated performance of the polymerase chain reaction |
US4683195A (en) | 1986-01-30 | 1987-07-28 | Cetus Corporation | Process for amplifying, detecting, and/or-cloning nucleic acid sequences |
US4683202A (en) | 1985-03-28 | 1987-07-28 | Cetus Corporation | Process for amplifying nucleic acid sequences |
US4800159A (en) | 1986-02-07 | 1989-01-24 | Cetus Corporation | Process for amplifying, detecting, and/or cloning nucleic acid sequences |
GB2191110B (en) | 1986-06-06 | 1989-12-06 | Plessey Co Plc | Chromatographic separation device |
US5252294A (en) * | 1988-06-01 | 1993-10-12 | Messerschmitt-Bolkow-Blohm Gmbh | Micromechanical structure |
US4908112A (en) | 1988-06-16 | 1990-03-13 | E. I. Du Pont De Nemours & Co. | Silicon semiconductor wafer for analyzing micronic biological samples |
US5132012A (en) | 1988-06-24 | 1992-07-21 | Hitachi, Ltd. | Liquid chromatograph |
US5156810A (en) * | 1989-06-15 | 1992-10-20 | Biocircuits Corporation | Biosensors employing electrical, optical and mechanical signals |
GB2244135B (en) | 1990-05-04 | 1994-07-13 | Gen Electric Co Plc | Sensor devices |
US5305015A (en) | 1990-08-16 | 1994-04-19 | Hewlett-Packard Company | Laser ablated nozzle member for inkjet printhead |
US5291226A (en) | 1990-08-16 | 1994-03-01 | Hewlett-Packard Company | Nozzle member including ink flow channels |
US5587128A (en) * | 1992-05-01 | 1996-12-24 | The Trustees Of The University Of Pennsylvania | Mesoscale polynucleotide amplification devices |
US5677196A (en) * | 1993-05-18 | 1997-10-14 | University Of Utah Research Foundation | Apparatus and methods for multi-analyte homogeneous fluoro-immunoassays |
US5658413A (en) * | 1994-10-19 | 1997-08-19 | Hewlett-Packard Company | Miniaturized planar columns in novel support media for liquid phase analysis |
US5641400A (en) * | 1994-10-19 | 1997-06-24 | Hewlett-Packard Company | Use of temperature control devices in miniaturized planar column devices and miniaturized total analysis systems |
US5849208A (en) * | 1995-09-07 | 1998-12-15 | Microfab Technoologies, Inc. | Making apparatus for conducting biochemical analyses |
MX9703495A (es) * | 1995-09-12 | 1997-07-31 | Becton Dickinson Co | Dispositivo y metodo para amplificacion y ensayo de adn. |
AU772281B2 (en) * | 1998-12-14 | 2004-04-22 | Li-Cor Inc. | A system and methods for nucleic acid sequencing of single molecules by polymerase synthesis |
-
2000
- 2000-02-11 US US09/502,597 patent/US6613560B1/en not_active Expired - Fee Related
-
2001
- 2001-02-09 DE DE10106008A patent/DE10106008A1/de not_active Ceased
Cited By (11)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP1418233A1 (de) * | 2002-07-05 | 2004-05-12 | Matsushita Electric Industrial Co., Ltd. | Behälter für die polymerasekettenreaktion und verfahren zu dessen herstellung |
EP1418233A4 (de) * | 2002-07-05 | 2005-09-14 | Matsushita Electric Ind Co Ltd | Behälter für die polymerasekettenreaktion und verfahren zu dessen herstellung |
EP1594798B1 (de) * | 2003-01-30 | 2018-12-19 | Gyros Patent Ab | Innenwände mikrofluidischer vorrichtungen |
EP2046940A2 (de) * | 2006-06-26 | 2009-04-15 | Applera Corporation | Beheizte abdeckungsverfahren und technologie |
EP2046940A4 (de) * | 2006-06-26 | 2011-08-10 | Life Technologies Corp | Beheizte abdeckungsverfahren und technologie |
DE102017108120A1 (de) * | 2017-04-13 | 2018-10-18 | Laser-Laboratorium Göttingen e.V. | Analysevorrichtung |
US10871399B2 (en) | 2017-04-13 | 2020-12-22 | Laser-Laboratorium Göttingen e.V. | Analysis device |
EP4046715A1 (de) * | 2021-02-18 | 2022-08-24 | Joanneum Research Forschungsgesellschaft mbH | Mikrofluidisches system aus einer gefalteten folie und herstellungsverfahren |
WO2022175361A1 (de) | 2021-02-18 | 2022-08-25 | Joanneum Research Forschungsgesellschaft Mbh | Mikrofluidisches system aus einer gefalteten folie und herstellungsverfahren |
CN114950581A (zh) * | 2022-04-06 | 2022-08-30 | 东南大学 | 一种多轨道螺旋微流控芯片及其制造方法 |
CN114950581B (zh) * | 2022-04-06 | 2024-02-13 | 东南大学 | 一种多轨道螺旋微流控芯片及其制造方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
US6613560B1 (en) | 2003-09-02 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
DE10106008A1 (de) | PCR-Mikroreaktor zum Vermehren von DNA unter Verwendung von Mikromengen eines Probenfluids | |
DE10228767B4 (de) | Mikrovorrichtung und Verfahren für eine Komponententrennung in einem Fluid | |
DE10309583A1 (de) | Mikroplatte mit einem integrierten mikrofluidischen System zum parallelen Verarbeiten winziger Fluidvolumen | |
US6635226B1 (en) | Microanalytical device and use thereof for conducting chemical processes | |
DE69322774T2 (de) | Polynukleotide amplifikationsanalyse mit einer mikrofabrizierten vorrichtung | |
EP1054735B1 (de) | Miniaturisierter temperaturzonen flussreaktor | |
DE69532741T2 (de) | Miniaturisierte vollintegrierte planare flüssigkeitsprobenhandhabungs- und analysevorrichtung | |
DE69525036T2 (de) | Gerät zur amplifikation von polynukleotiden im mesomassstab | |
EP0964428B1 (de) | Miniaturisierte Vorrichtung zur Flüssigkeitsprobenbehandlung und -massenspektrometrie | |
DE69535176T2 (de) | Miniaturisierte, flache kolonnen zur anwendung in einer vorrichtung zur trennung von flüssigen phasen | |
DE19952764C2 (de) | Mikroanalysevorrichtung | |
US6607644B1 (en) | Microanalytical device containing a membrane for molecular identification | |
DE60105979T2 (de) | Verfahren zur herstellung von mikrostrukturen mit verschiedenen oberflächeneigenschaften in einem multischichtkörper durch plasmaätzen | |
US8895292B2 (en) | Microfluidic chip devices and their use | |
DE60124699T2 (de) | Zweirichtungs-durchfluss-zentrifugalmikrofluid-vorrichtungen | |
DE10227593B4 (de) | Strömungsschaltungs-Mikrobauelemente | |
DE102008002362B4 (de) | Mikrofluideinheiten, die Flüssigkeits-Fliesswege mit einem monolithischen chromatographischen Material aufweisen | |
DE69911587T2 (de) | Vorrichtung zum analysieren einer probe | |
US20040043479A1 (en) | Multilayerd microfluidic devices for analyte reactions | |
EP1022059A2 (de) | Miniaturisierter Fluss-Thermocycler | |
CA2393690A1 (en) | Multilayered microfluidic devices for analyte reactions | |
US20020023841A1 (en) | Electrohydrodynamic convection microfluidic mixer | |
JP4307074B2 (ja) | 生物学的、化学的または生化学的プロトコルを連続フローで実行するための方法及びシステム | |
DE10153663B4 (de) | Mikroanalytische Vorrichtung zum Erfassen von Nahe-Infrarot-Strahlung emittierenden Molekülen | |
CN110923133A (zh) | 微流控芯片及其应用 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
OP8 | Request for examination as to paragraph 44 patent law | ||
8127 | New person/name/address of the applicant |
Owner name: AGILENT TECHNOLOGIES, INC. (N.D.GES.D. STAATES, US |
|
8131 | Rejection |