DE10061251A1 - Verfahren zur Aktivierung mikrobizid wirksamer Polymeroberflächen - Google Patents
Verfahren zur Aktivierung mikrobizid wirksamer PolymeroberflächenInfo
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- B29—WORKING OF PLASTICS; WORKING OF SUBSTANCES IN A PLASTIC STATE IN GENERAL
- B29C—SHAPING OR JOINING OF PLASTICS; SHAPING OF MATERIAL IN A PLASTIC STATE, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; AFTER-TREATMENT OF THE SHAPED PRODUCTS, e.g. REPAIRING
- B29C59/00—Surface shaping of articles, e.g. embossing; Apparatus therefor
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- B29—WORKING OF PLASTICS; WORKING OF SUBSTANCES IN A PLASTIC STATE IN GENERAL
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Abstract
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Verbesserung der mikrobiziden Eigenschaften antimikrobieller Beschichtungen, Formmassen, Halbzeuge und Fertigprodukte durch Behandlung dieser Systeme mittels physikalischer Methoden, die zu einer Aufrauhung, Abtragung oder Hydrophilierung der Oberfläche dieser Systeme führt bzw. durch Kombination dieser Methoden.
Description
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Aktivierung mikrobizid wirksamer
Polymeroberflächen und antimikrobieller Beschichtungen durch physikalische Nachbehandlung.
Besiedlungen und Ausbreitungen von Bakterien auf Oberflächen von Rohrleitungen, Behältern
oder Verpackungen sind im hohen Maße unerwünscht. Es bilden sich häufig Schleimschichten,
die Mikrobenpopulationen extrem ansteigen lassen, die Wasser-, Getränke- und
Lebensmittelqualitäten nachhaltig beeinträchtigen und sogar zum Verderben der Ware sowie
zur gesundheitlichen Schädigung der Verbraucher führen können.
Aus allen Lebensbereichen, in denen Hygiene von Bedeutung ist, sind Bakterien fernzuhalten.
Davon betroffen sind Textilien für den direkten Körperkontakt, insbesondere für den
Intimbereich und für die Kranken- und Altenpflege. Außerdem sind Bakterien fernzuhalten von
Möbel- und Geräteoberflächen in Pflegestationen, insbesondere im Bereich der Intensivpflege
und der Kleinstkinder-Pflege, in Krankenhäusern, insbesondere in Räumen für medizinische
Eingriffe und in Isolierstationen für kritische Infektionsfälle sowie in Toiletten.
Gegenwärtig werden Geräte, Oberflächen von Möbeln und Textilien gegen Bakterien im
Bedarfsfall oder auch vorsorglich mit Chemikalien oder deren Lösungen sowie Mischungen
behandelt, die als Desinfektionsmittel mehr oder weniger breit und massiv antimikrobiell
wirken. Solche chemischen Mittel wirken unspezifisch, sind häufig selbst toxisch oder reizend
oder bilden gesundheitlich bedenkliche Abbauprodukte. Häufig zeigen sich auch
Unverträglichkeiten bei entsprechend sensibilisierten Personen.
Eine weitere Vorgehensweise gegen oberflächige Bakterienausbreitungen stellt die
Einarbeitung antimikrobiell wirkender Substanzen in eine Matrix dar.
Daneben stellt auch die Vermeidung von Algenbewuchs auf Oberflächen eine immer
bedeutsamere Herausforderung dar, da inzwischen viele Aussenflächen von Gebäuden mit
Kunststoffverkleidungen ausgestattet sind, die besonders leicht veralgen. Neben dem
unerwünschten optischen Eindruck kann unter Umständen auch die Funktion entsprechender
Bauteile vermindert werden. In diesem Zusammenhang ist z. B. an eine Veralgung von
photovoltaisch funktionalen Flächen zu denken.
Eine weitere Form der mikrobiellen Verunreinigung, für die es bis heute ebenfalls keine
technisch zufriedenstellende Lösung gibt, ist der Befall von Oberflächen mit Pilzen. So stellt
z. B. der Befall von Fugen und Wänden in Feuchträumen mit Aspergillus niger neben dem
beeinträchtigten optischen auch einen ernstzunehmenden gesundheitsrelevanten Aspekt dar, da
viele Menschen auf die von den Pilzen abgegebenen Stoffe allergisch reagieren, was bis hin zu
schweren chronischen Atemwegserkrankungen führen kann.
Im Bereich der Seefahrt stellt das Fouling der Schiffsrümpfe eine ökonomisch relevante
Einflußgröße dar, da mit dem Bewuchs verbundenen erhöhten Strömungswiderstand der
Schiffe ein deutlicher Mehrverbrauch an Kraftstoff verbunden ist. Bis heute begegnet man
solchen Problemen allgemein mit der Einarbeitung giftiger Schwermetalle oder anderer
niedermolekularer Biozide in Antifoulingbeschichtungen, um die beschriebenen Probleme
abzumildern. Zu diesem Zweck nimmt man die schädlichen Nebenwirkungen solcher
Beschichtungen in Kauf, was sich aber angesichts der gestiegenen ökologischen Sensibilität der
Gesellschaft als zunehmend problematisch herausstellt.
So offenbart z. B. die US-PS 4 532 269 ein Terpolymer aus Butylmethacrylat,
Tributylzinnmethacrylat und tert.-Butylaminoethylmethacrylat. Dieses Copolymer wird als
antimikrobieller Schiffsanstrich verwendet, wobei das hydrophile tert.-
Butylaminoethylmethacrylat die langsame Erosion des Polymers fördert und so das
hochtoxische Tributylzinnmethacrylat als antimikrobiellen Wirkstoff freisetzt.
In diesen Anwendungen ist das mit Aminomethacrylaten hergestellte Copolymer nur Matrix
oder Trägersubstanz für zugesetzte mikrobizide Wirkstoffe, die aus dem Trägerstoff diffun
dieren oder migrieren können. Polymere dieser Art verlieren mehr oder weniger schnell ihre
Wirkung, wenn an der Oberfläche die notwendige "minimale inhibitorische Konzentration"
(MIK) nicht mehr erreicht wird.
Aus der europäischen Patentanmeldungen 0 862 858 ist weiterhin bekannt, daß Copolymere
von tert.-Butylaminoethylmethacrylat, einem Methacrylsäureester mit sekundärer
Aminofunktion, inhärent mikrobizide Eigenschaften besitzen. Um unerwünschten
Anpassungsvorgängen der mikrobiellen Lebensformen, gerade auch in Anbetracht der aus der
Antibiotikaforschung bekannten Resistenzentwicklungen von Keimen, wirksam
entgegenzutreten, müssen auch zukünftig Systeme auf Basis neuartiger Zusammensetzungen
und verbesserter Wirksamkeit entwickelt werden. Die antimikrobielle Wirksamkeit dieser
polymeren Systeme ist eng mit ihrer dreidimensionalen Struktur, Konformation und
verfügbaren Oberfläche verbunden. Daher reicht es zur Ausschöpfung des vollen
Wirkungspotentials nicht aus, einfach nur neue wirksame Systeme zu entwickeln. Zusätzlich
muß noch eine Optimierung der Struktur und verfügbaren Oberfläche hinzukommen. Dies trifft
in besonderem Maße für Beschichtungen, Formmassen, Halbzeuge und Fertigprodukte zu, in
denen das antimikrobielle Polymer von einer Matrix von Fremdmolekülen ohne eigene
antimikrobielle Wirksamkeit umgeben ist.
Der vorliegenden Erfindung liegt daher die Aufgabe zugrunde, Wege aufzuzeigen, die eine
Effizienzsteigerung mikrobizid wirksamer Polymere, d. h. von Beschichtungen, Formmassen,
Halbzeuge und Fertigprodukte unter Optimierung der Verfügbarkeit der mikrobiell wirksamen
Oberfläche dieser Systeme gestatten. Diese optimierten Systeme sollen die Ansiedelung und
Verbreitung von Bakterien, Algen und Pilzen auf Oberflächen noch wirksamer als die bereits
verfügbaren Standardsysteme verhindern.
Es wurde nun überraschend gefunden, daß durch physikalische Behandlung antimikrobiell
wirksamer Beschichtungen, Formmassen, Halbzeuge und Fertigprodukte Oberflächen erhalten
werden können, die eine verbesserte mikrobizide Wirksamkeit als die unbehandelten Systeme
zeigen. Die physikalische Behandlung zielt dabei auf eine oberflächennahe
Verfügbarkeitserhöhung der in der Matrix vorhandenen antimikrobiellen Polymerpartikel hin.
Die so behandelten Oberflächen zeigen eine antimikrobielle Wirksamkeit die dauerhaft, und
gegen Umwelteinflüsse und physikalische Beanspruchungen widerstandsfähig ist. Diese
Beschichtungen enthalten keine niedermolekularen Biozide, was eine Migration ökologisch
problematischer Stoffe über den gesamten Nutzungszeitraum hinweg effektiv ausschließt.
Gegenstand der vorliegenden Erfindung ist daher ein Verfahren zur Effizienzsteigerung
mikrobizid wirksamer Polymere durch Aufrauhung der Oberfläche oder Abtragung dieser
Polymere.
Bevorzugt werden zur Herstellung derartiger Polymere Stickstoff und
Phosphorfunktionalisierte Monomere eingesetzt, insbesondere aus mindestens einem der
folgenden Monomere:
Methacrylsäure-2-tert.-butylaminoethylester, Methacrylsäure-2-diethylaminoethylester, Methacrylsäure-2-diethylaminomethylester, Acrylsäure-2-tert.-butylaminoethylester, Acrylsäure-3-dimethylaminopropylester, Acrylsäure-2-diethylaminoethylester, Acrylsäure-2- dimethylaminoethylester, Dimethylaminopropylmethacrylamid, Diethylamino propylmethacrylamid, Acrylsäure-3-dimethylaminopropylamid, 2-Methacryloyloxyethyl trimethylammoniummethosulfat, Methacrylsäure-2-diethylaminoethylester, 2- Methacryloyloxyethyltrimethylammoniumchlorid, 3-Methacryloylaminopropyltrime thylammonium-chlorid, 2-Methacryloyloxyethyltrimethylammoniumchlorid, 2- Acryloyloxyethyl-4-benzoyldimethylammoniumbromid, 2-Methacryloyloxyethyl-4- benzoyldimethylammoniumbromid, Allyltriphenylphosphoniumbromid, Allyltriphenylphos phoniumchlorid, 2-Acrylamido-2-methyl-1-propansulfonsäure, 2-Diethylaminoethylvinylether, 3-Aminopropylvinylether.
Methacrylsäure-2-tert.-butylaminoethylester, Methacrylsäure-2-diethylaminoethylester, Methacrylsäure-2-diethylaminomethylester, Acrylsäure-2-tert.-butylaminoethylester, Acrylsäure-3-dimethylaminopropylester, Acrylsäure-2-diethylaminoethylester, Acrylsäure-2- dimethylaminoethylester, Dimethylaminopropylmethacrylamid, Diethylamino propylmethacrylamid, Acrylsäure-3-dimethylaminopropylamid, 2-Methacryloyloxyethyl trimethylammoniummethosulfat, Methacrylsäure-2-diethylaminoethylester, 2- Methacryloyloxyethyltrimethylammoniumchlorid, 3-Methacryloylaminopropyltrime thylammonium-chlorid, 2-Methacryloyloxyethyltrimethylammoniumchlorid, 2- Acryloyloxyethyl-4-benzoyldimethylammoniumbromid, 2-Methacryloyloxyethyl-4- benzoyldimethylammoniumbromid, Allyltriphenylphosphoniumbromid, Allyltriphenylphos phoniumchlorid, 2-Acrylamido-2-methyl-1-propansulfonsäure, 2-Diethylaminoethylvinylether, 3-Aminopropylvinylether.
Entsprechende antimikrobielle Beschichtungen können durch Einarbeitung derartiger
Polymerer in eine Beschichtungsformulierung und anschließenden Auftrag auf eine Oberfläche
erhalten werden. Entsprechende Formmassen, Halbzeuge und Fertigprodukte können durch
Einarbeitung derartiger Polymere im Rahmen der Compoundierung erhalten werden.
Das Verfahren der Erfindung gestaltet sich derart, daß die antimikrobiellen wirksamen
Polymere, z. B. in Form von Beschichtungen, Formmassen, Halbzeugen und/oder
Fertigprodukten im Verlauf des Herstellungsprozesses, z. B. nach der Extrusion oder dem
Spritzguß, durch eine oder mehrere der beschriebenen Verfahren oberflächenaktiviert werden.
Eine Aufrauhung der Oberfläche kann durch Verwendung von Schleif oder Poliermitteln,
gegebenenfalls unter Verwendung von Strahlapparaturen, erfolgen. Hierdurch werden
mikrobizid nichtaktive Matrixmoleküle von der Oberfläche entfernt und so Freiraum für die in
der Matrix eingebetteten antimikrobiellen Polymere geschaffen. Analoges geschieht bei einer
Abtragung der Oberfläche. Die Abtragung der Oberfläche bzw. des Polymeren kann mittels
Plasma-, Korona-, elektromagnetischer Strahlung oder Beflammung erfolgen.
Nach der Auftragung oder Abtragung der Oberfläche ist in einer weiteren Ausführungsform
der Erfindung eine Hydrophilierung der Oberfläche durch Wasser oder Säuren, insbesondere
verdünnte organische oder Mineralsäuren möglich. Dieser Hydrophilierungsschritt wird
bevorzugt bei Temperaturen von mehr als 40°C, besonders bevorzugt bei Temperaturen gleich
oder über der Glastemperatur der Oberfläche (d. h. der des antimikrobiellen Polymeren)
durchgeführt.
Eine Hydrohilierung der Oberfläche begünstigt eine Anreicherung hydrohiler Gruppen, die
oftmals Bestandteil antimikrobieller Polymere sind. Besonders effizient ist diese Methodik,
wenn durch die Temperaturerhöhung, während des Hydrophilierungsmittels die
Glastemperatur der Polymermatrix erreicht oder überschritten wird, was die Beweglichkeit der
Polymerketten und eine damit mögliche Neuausrichtung begünstigt.
Weitere Gegenstände der vorliegenden Erfindung sind die Verwendung der erfindungsgemäß
optimierten antimikrobiellen Beschichtungen zur Herstellung von antimikrobiell wirksamen
Erzeugnissen und die so hergestellten Erzeugnisse als solche. Solche Erzeugnisse basieren
vorzugsweise auf Polyamiden, Polyurethanen, Polyetherblockamiden, Polyesteramiden oder
-imiden, PVC, Polyolefinen, Silikonen, Polysiloxanen, Polymethacrylat oder Polyterephthalaten,
Metallen, Gläsern und Keramiken, die mit erfindungsgemäßen Polymeren beschichtete
Oberflächen aufweisen.
Antimikrobiell wirksame Erzeugnisse dieser Art sind beispielsweise und insbesondere Ma
schinenteile für die Lebensmittelverarbeitung, Bauteile von Klimaanlagen, beschichtete Rohre,
Halbzeuge, Bedachungen, Badezimmer- und Toilettenartikel, Küchenartikel, Komponenten
von Sanitäreinrichtungen, Komponenten von Tierkäfigen - und behausungen, Spielwaren,
Komponenten in Wassersystemen, Lebensmittelverpackungen, Bedienelemente (Touch Panel)
von Geräten und Kontaktlinsen.
Die erfindungsgemäßen Beschichtungen können überall verwendet werden, wo es auf
möglichst bakterienfreie, algen- und pilzfreie, d. h. mikrobizide Oberflächen oder Oberflächen
mit Antihafteigenschaften ankommt. Verwendungsbeispiele für die erfindungsgemäßen
Beschichtungen finden sich in den folgenden Bereichen:
- - Marine: Schiffsrümpfe, Hafenanlagen, Bojen, Bohrplattformen, Ballastwassertanks
- - Haus: Bedachungen, Keller, Wände, Fassaden, Gewächshäuser, Sonnenschutz, Gartenzäune, Holzschutz
- - Sanitär: Öffentliche Toiletten, Badezimmer, Duschvorhänge, Toilettenartikel, Schwimmbad, Sauna, Fugen, Dichtmassen
- - Lebensmittel: Maschinen, Küche, Küchenartikel, Schwämme, Spielwaren, Lebensmittelverpackungen, Milchverarbeitung, Trinkwassersysteme, Kosmetik
- - Maschinenteile: Klimaanlagen, Ionentauscher, Brauchwasser, Solaranlagen, Wärmetauscher, Bioreaktoren, Membranen
- - Medizintechnik: Kontaktlinsen, Windeln, Membranen, Implantate
- - Gebrauchsgegenstände: Autositze, Kleidung (Strümpfe, Sportbekleidung), Krankenhauseinrichtungen, Türgriffe, Telefonhörer, Öffentliche Verkehrsmittel, Tierkäfige, Registrierkassen, Teppichboden, Tapeten
Außerdem sind Gegenstände der vorliegenden Erfindung die Verwendung der
erfindungsgemäß mit erfindungsgemäß optimierten Beschichtungen oder Verfahren
hergestellten Hygieneerzeugnisse oder medizintechnische Artikel. Die obigen Ausführungen
über bevorzugte Materialien gelten entsprechend. Solche Hygieneerzeugnisse sind
beispielsweise Zahnbürsten, Toilettensitze, Kämme und Verpackungsmaterialien. Unter die
Bezeichnung Hygieneartikel fallen auch andere Gegenstände, die u. U. mit vielen Menschen in
Berührung kommen, wie Telefonhörer, Handläufe von Treppen, Tür- und Fenstergriffe sowie
Haltegurte und -griffe in öffentlichen Verkehrsmitteln. Medizintechnische Artikeln sind z. B.
Katheter, Schläuche, Abdeckfolien oder auch chirurgische Bestecke.
Zur weiteren Beschreibung der vorliegenden Erfindung werden die folgenden Beispiele
gegeben, die die Erfindung weiter erläutern, nicht aber ihren Umfang begrenzen sollen, wie er
in den Patentansprüchen dargelegt ist.
50 ml Dimethylaminopropylmethacrylamid (Fa. Aldrich) und 250 ml Ethanol werden in einem
Dreihalskolben vorgelegt und unter Argonzustrom auf 65°C erhitzt. Danach werden 0,6 g
Azobisisobutyronitril gelöst in 20 ml Ethylmethylketon unter Rühren langsam zugetropft. Das
Gemisch wird auf 70°C erhitzt und 72 h Stunden bei dieser Temperatur gerührt. Nach Ablauf
dieser Zeit wird die Reaktionsmischung in 1,5 l VE-Wasser eingerührt, wobei das polymere
Produkt ausfällt. Nach Abfiltrieren des Produktes wird der Filterrückstand mit 100 ml einer
Mischung aus Ethanol/VE-Wasser im Verhältnis 1 : 1 gespült, um noch vorhandene
Restmonomere zu entfernen. Im Anschluß wird das Produkt für 24 Stunden bei 50°C im
Vakuum getrocknet. 2 g des Produktes werden in 10 g Ethanol gelöst und mit einem 100
Mikrometer Rakel auf eine 0,5 cm dicke und 2 mal 2 cm große Aluminiumplatte aufgetragen.
Die Platte wird im Anschluß bei 50°C für 24 Stunden getrocknet.
10 g des Polymeren aus Beispiel 1a werden auf 165°C erhitzt. Anschließend vermischt man
dieses erhitzte Polymer mit 6 g Polymethylmethacrylat (Fa. Aldrich), welches zuvor ebenfalls
auf 165°C erhitzt wurde. Die beiden Polymere werden inständig vermischt, auf eine
Aluminiumplatte mit 0,5 cm Dicke und 2 mal 2 cm Größe aufgebracht und mit einer Rate von
20°C pro Stunde bis auf Raumtemperatur abgekühlt.
Die Aluminiumplatte aus Beispiel 1a wird mit ihrer beschichteten Seite nach oben auf den
Boden eines Becherglases gelegt, das 20 ml einer Testkeimsuspension von Staphylococcus
aureus enthält und geschüttelt. Nach einer Kontaktzeit von 4 Stunden wird 1 ml der
Testkeimsuspension entnommen, und die Keimzahl im Versuchsansatz bestimmt. Nach Ablauf
dieser Zeit hat die Keimzahl von 107 auf 105 Keime pro ml abgenommen.
Die Oberfläche der beschichteten Aluminumplatte aus Beispiel 1a wird mit einem feinkörnigen
Schmiergelpapier aufgerauht. Anschließend wird die so behandelte Aluminiumplatte mit ihrer
beschichteten Seite nach oben auf den Boden eines Becherglases gelegt, das 20 ml einer
Testkeimsuspension von Staphylococcus aureus enthält und geschüttelt. Nach einer
Kontaktzeit von 4 Stunden wird 1 ml der Testkeimsuspension entnommen, und die Keimzahl
im Versuchsansatz bestimmt. Nach Ablauf dieser Zeit hat die Keimzahl von 107 auf 103 Keime
pro ml abgenommen.
Die Oberfläche der beschichteten Aluminumplatte aus Beispiel 1a wird 15 Minuten in 60°C
heißes Wasser gelegt. Anschließend wird die so behandelte Aluminiumplatte mit ihrer
beschichteten Seite nach oben auf den Boden eines Becherglases gelegt, das 20 ml einer
Testkeimsuspension von Staphylococcus aureus enthält und geschüttelt. Nach einer
Kontaktzeit von 4 Stunden wird 1 ml der Testkeimsuspension entnommen, und die Keimzahl
im Versuchsansatz bestimmt. Nach Ablauf dieser Zeit hat die Keimzahl von 107 auf 104 Keime
pro ml abgenommen.
Die Oberfläche der beschichteten Aluminumplatte aus Beispiel 1a wird mit einem feinkörnigen
Schmiergelpapier aufgerauht, dann 15 Minuten in 60°C heißes Wasser gelegt. Anschließend
wird die so behandelte Aluminiumplatte mit ihrer beschichteten Seite nach oben auf den Boden
eines Becherglases gelegt, das 20 ml einer Testkeimsuspension von Staphylococcus aureus
enthält und geschüttelt. Nach einer Kontaktzeit von 4 Stunden wird 1 ml der
Testkeimsuspension entnommen, und die Keimzahl im Versuchsansatz bestimmt. Nach Ablauf
dieser Zeit sind keine Keime von Staphylococcus aureus mehr nachweisbar.
Die Oberfläche der beschichteten Aluminumplatte aus Beispiel 1a wird in eine Plasmakammer
gegeben. Die Plasmakammer wird verschlossen und es wird ein Vakuum angelegt. Danach
wird ein Argonstrom von 0,3 l/min eingestellt, die Plasmaleistung auf 600 Watt einreguliert
und die Aluminiumplatte für die Dauer von 30 Sekunden plasmabehandelt. Anschließend wird
die so behandelte Platte mit ihrer beschichteten Seite nach oben auf den Boden eines
Becherglases gelegt, das 20 ml einer Testkeimsuspension von Staphylococcus aureus enthält
und geschüttelt. Nach einer Kontaktzeit von 4 Stunden wird 1 ml der Testkeimsuspension
entnommen, und die Keimzahl im Versuchsansatz bestimmt. Nach Ablauf dieser Zeit hat die
Keimzahl von 107 auf 104 Keime pro ml abgenommen.
50 ml tert.-Butylaminoethylmethacrylat (Fa. Aldrich) und 250 ml Ethanol werden in einem
Dreihalskolben vorgelegt und unter Argonzustrom auf 65°C erhitzt. Danach werden 0,6 g
Azobisisobutyronitril gelöst in 20 ml Ethylmethylketon unter Rühren langsam zugetropft. Das
Gemisch wird auf 70°C erhitzt und 72 h Stunden bei dieser Temperatur gerührt. Nach Ablauf
dieser Zeit wird die Reaktionsmischung in 1,5 l VE-Wasser eingerührt, wobei das polymere
Produkt ausfällt. Nach Abfiltrieren des Produktes wird der Filterrückstand mit 100 ml einer
Mischung aus Ethanol/VE-Wasser im Verhältnis 1 : 1 gespült, um noch vorhandene Rest
monomere zu entfernen. Im Anschluß wird das Produkt für 24 Stunden bei 50°C im Vakuum
getrocknet.
10 g des Polymeren aus Beispiel 2 werden auf 165°C erhitzt. Anschließend vermischt man
dieses erhitzte Polymer mit 6 g Polymethylmethacrylat (Fa. Aldrich), welches zuvor ebenfalls
auf 165°C erhitzt wurde. Die beiden Polymere werden inständig vermischt, auf eine
Aluminiumplatte mit 0,5 cm Dicke und 2 mal 2 cm Größe aufgebracht und mit einer Rate von
20°C pro Stunde bis auf Raumtemperatur abgekühlt.
Die Aluminiumplatte aus Beispiel 2a wird mit ihrer beschichteten Seite nach oben auf den
Boden eines Becherglases gelegt, das 20 ml einer Testkeimsuspension von Staphylococcus
aureus enthält und geschüttelt. Nach einer Kontaktzeit von 4 Stunden wird 1 ml der
Testkeimsuspension entnommen, und die Keimzahl im Versuchsansatz bestimmt. Nach Ablauf
dieser Zeit hat die Keimzahl von 107 auf 104 Keime pro ml abgenommen.
Die Oberfläche der beschichteten Aluminumplatte aus Beispiel 2a wird mit einem feinkörnigen
Schmiergelpapier aufgerauht. Anschließend wird die so behandelte Aluminiumplatte mit ihrer
beschichteten Seite nach oben auf den Boden eines Becherglases gelegt, das 20 ml einer
Testkeimsuspension von Staphylococcus aureus enthält und geschüttelt. Nach einer
Kontaktzeit von 4 Stunden wird 1 ml der Testkeimsuspension entnommen, und die Keimzahl
im Versuchsansatz bestimmt. Nach Ablauf dieser Zeit hat die Keimzahl von 107 auf 103 Keime
pro ml abgenommen.
Die Oberfläche der beschichteten Aluminumplatte aus Beispiel 2a wird 15 Minuten in 60°C
heißes Wasser gelegt. Anschließend wird die so behandelte Aluminiumplatte mit ihrer
beschichteten Seite nach oben auf den Boden eines Becherglases gelegt, das 20 ml einer
Testkeimsuspension von Staphylococcus aureus enthält und geschüttelt. Nach einer
Kontaktzeit von 4 Stunden wird 1 ml der Testkeimsuspension entnommen, und die Keimzahl
im Versuchsansatz bestimmt. Nach Ablauf dieser Zeit hat die Keimzahl von 107 auf 104 Keime
pro ml abgenommen.
Die Oberfläche der beschichteten Aluminumplatte aus Beispiel 2a wird mit einem feinkörnigen
Schmiergelpapier aufgerauht, dann 15 Minuten in 60°C heißes Wasser gelegt. Anschließend
wird die so behandelte Aluminiumplatte mit ihrer beschichteten Seite nach oben auf den Boden
eines Becherglases gelegt, das 20 ml einer Testkeimsuspension von Staphylococcus aureus
enthält und geschüttelt. Nach einer Kontaktzeit von 4 Stunden wird 1 ml der
Testkeimsuspension entnommen, und die Keimzahl im Versuchsansatz bestimmt. Nach Ablauf
dieser Zeit sind keine Keime von Staphylococcus aureus mehr nachweisbar.
Die Oberfläche der beschichteten Aluminumplatte aus Beispiel 2 wird in eine Plasmakammer
gegeben. Die Plasmakammer wird verschlossen und es wird ein Vakuum angelegt. Danach
wird ein Argonstrom von 0,3 l/min eingestellt, die Plasmaleistung auf 600 Watt einreguliert
und die Aluminiumplatte für die Dauer von 30 Sekunden plasmabehandelt. Anschließend wird
die so behandelte Platte mit ihrer beschichteten Seite nach oben auf den Boden eines
Becherglases gelegt, das 20 ml einer Testkeimsuspension von Staphylococcus aureus enthält
und geschüttelt. Nach einer Kontaktzeit von 4 Stunden wird 1 ml der Testkeimsuspension
entnommen, und die Keimzahl im Versuchsansatz bestimmt. Nach Ablauf dieser Zeit hat die
Keimzahl von 107 auf 104 Keime pro ml abgenommen.
90 ml Methacrylsäure-2-tert.-butylaminoethylester (Fa. Aldrich) und 180 ml Ethanol werden in
einem Dreihalskolben vorgelegt und unter Argonzuström auf 65°C erhitzt. Danach werden
0,745 g Azobisisobutyronitril gelöst in 20 ml Ethylmethylketon unter Rühren langsam
zugetropft. Das Gemisch wird auf 70°C erhitzt und 72 Stunden bei dieser Temperatur gerührt.
Nach Ablauf dieser Zeit wird die Reaktionsmischung in 1 l entmineralisiertes Wasser
eingerührt, wobei das polymere Produkt ausfällt. Nach Abfiltrieren des Produktes wird der
Filterrückstand mit 100 ml einer 10%igen Lösung von Ethanol in Wasser gespült, um noch
vorhandene Restmonomere zu entfernen. Im Anschluß wird das Produkt für 24 Stunden bei 50
°C im Vakuum getrocknet. 4 g des Produktes werden in 32 g Di-isononylphthalat gelöst.
Anschließend werden dieser Mischung 64 g Polyvinylchloridgranulat zugegeben, wobei die
Mischung innig verrührt bis sie pastös wird. 20 g der erhaltenen Paste werden mit einem Rakel
so auf eine Metallplatte aufgestrichen, daß sich eine Schichtdicke von 0,7 mm Dicke einstellt.
Die Platte mit der daraufliegenden Paste wird dann für 2 Minuten auf 200°C erhitzt, wobei die
Paste geliert und eine Weich-PVC-Folie entsteht.
Ein 3 mal 3 cm großes Stück der Weich-PVC-Folie aus Beispiel 3 wird auf den Boden eines
Becherglases gelegt, das 20 ml einer Testkeimsuspension von Staphylococcus aureus enthält
und geschüttelt. Nach einer Kontaktzeit von 2 Stunden wird 1 ml der Testkeimsuspension
entnommen, und die Keimzahl im Versuchsansatz bestimmt. Nach Ablauf dieser Zeit hat die
Keimzahl von 107 auf 105 Keime pro ml abgenommen.
Ein 3 mal 3 cm großes Stück der Weich-PVC-Folie aus Beispiel 3 wird mit einem
feinkörnigen Schmiergelpapier aufgerauht. Anschließend wird die so behandelte Folie auf den
Boden eines Becherglases gelegt, das 20 ml einer Testkeimsuspension von Staphylococcus
aureus enthält und geschüttelt. Nach einer Kontaktzeit von 2 Stunden wird 1 ml der
Testkeimsuspension entnommen, und die Keimzahl im Versuchsansatz bestimmt. Nach Ablauf
dieser Zeit hat die Keimzahl von 107 auf 103 Keime pro ml abgenommen.
Ein 3 mal 3 cm großes Stück der Weich-PVC-Folie aus Beispiel 3 wird 15 Minuten in 60°C
heißes Wasser gelegt. Anschließend wird die so behandelte Folie auf den Boden eines
Becherglases gelegt, das 20 ml einer Testkeimsuspension von Staphylococcus aureus enthält
und geschüttelt. Nach einer Kontaktzeit von 2 Stunden wird 1 ml der Testkeimsuspension
entnommen, und die Keimzahl im Versuchsansatz bestimmt. Nach Ablauf dieser Zeit hat die
Keimzahl von 107 auf 103 Keime pro ml abgenommen.
Ein 3 mal 3 cm großes Stück der Weich-PVC-Folie aus Beispiel 3 wird mit einem feinkörnigen
Schmiergelpapier aufgerauht, dann 15 Minuten in 60°C heißes Wasser gelegt. Anschließend
wird die so behandelte Folie auf den Boden eines Becherglases gelegt; das 20 ml einer
Testkeimsuspension von Staphylococcus aureus enthält und geschüttelt. Nach einer
Kontaktzeit von 2 Stunden wird 1 ml der Testkeimsuspension entnommen, und die Keimzahl
im Versuchsansatz bestimmt. Nach Ablauf dieser Zeit sind keine Keime von Staphylococcus
aureus mehr nachweisbar.
Ein 3 mal 3 cm großes Stück der Weich-PVC-Folie aus Beispiel 3 wird in eine Plasmakammer
gegeben. Die Plasmakammer wird verschlossen und es wird ein Vakuum angelegt. Danach
wird ein Argonstrom von 0,3 l/min eingestellt, die Plasmaleistung auf 600 Watt einreguliert
und die Aluminiumplatte für die Dauer von 30 Sekunden plasmabehandelt. Anschließend wird
die so behandelte Folie mit ihrer beschichteten Seite nach oben auf den Boden eines
Becherglases gelegt, das 20 ml einer Testkeimsuspension von Staphylococcus aureus enthält
und geschüttelt. Nach einer Kontaktzeit von 4 Stunden wird 1 ml der Testkeimsuspension
entnommen, und die Keimzahl im Versuchsansatz bestimmt. Nach Ablauf dieser Zeit hat die
Keimzahl von 107 auf 104 Keime pro ml abgenommen.
90 ml Methacrylsäure-2-tert.-butylaminoethylester (Fa. Aldrich) und 180 ml Ethanol werden in
einem Dreihalskolben vorgelegt und unter Argonzustrom auf 65°C erhitzt. Danach werden
0,745 g Azobisisobutyronitril gelöst in 20 ml Ethylmethylketon unter Rühren langsam
zugetropft. Das Gemisch wird auf 70°C erhitzt und 72 Stunden bei dieser Temperatur gerührt.
Nach Ablauf dieser Zeit wird die Reaktionsmischung in 1 l entmineralisiertes Wasser
eingerührt, wobei das polymere Produkt ausfällt. Nach Abfiltrieren des Produktes wird der
Filterrückstand mit 100 ml einer 10%igen Lösung von Ethanol in Wasser gespült, um noch
vorhandene Restmonomere zu entfernen. Im Anschluß wird das Produkt für 24 Stunden bei 50°C
im Vakuum getrocknet. 4 g des Produktes werden in 96 g eines Acryllacks mit der
Bezeichnung Rowacryl G-31293 der Firma ROWA eingerührt.
Mittels eines Pinsels wird eine 5 mal 5 cm große Alumiumplatte mit dem so behandelten
Acryllack aus Beispiel 4 bestrichen und im Anschluß im Trockenschrank bei 35°C für die
Dauer von 24 Stunden getrocknet. Diese Aluminiumplatte wird mit ihrer beschichteten Seite
nach oben auf den Boden eines Becherglases gelegt, das 20 ml einer Testkeimsuspension von
Staphylococcus aureus enthält und geschüttelt. Nach einer Kontaktzeit von 2 Stunden wird 1
ml der Testkeimsuspension entnommen, und die Keimzahl im Versuchsansatz bestimmt. Nach
Ablauf dieser Zeit hat die Keimzahl von 107 auf 104 Keime pro ml abgenommen.
Mittels eines Pinsels wird eine 5 mal 5 cm große Alumiumplatte mit dem so behandelten
Acryllack aus Beispiel 4 bestrichen und im Anschluß im Trockenschrank bei 35°C für die
Dauer von 24 Stunden getrocknet. Die Oberfläche der beschichteten Aluminumplatte wird mit
einem feinkörnigen Schmiergelpapier aufgerauht. Anschließend wird die so behandelte
Aluminiumplatte mit ihrer beschichteten Seite nach oben auf den Boden eines Becherglases
gelegt, das 20 ml einer Testkeimsuspension von Staphylococcus aureus enthält und geschüttelt.
Nach einer Kontaktzeit von 4 Stunden wird 1 ml der Testkeimsuspension entnommen, und die
Keimzahl im Versuchsansatz bestimmt. Nach Ablauf dieser Zeit hat die Keimzahl von 107 auf
103 Keime pro ml abgenommen.
Mittels eines Pinsels wird eine 5 mal 5 cm große Alumiumplatte mit dem so behandelten
Acryllack aus Beispiel 4 bestrichen und im Anschluß im Trockenschrank bei 35°C für die
Dauer von 24 Stunden getrocknet. Die Oberfläche der beschichteten Aluminumplatte wird 15
Minuten in 60°C heißes Wasser gelegt. Anschließend wird die so behandelte Aluminiumplatte
mit ihrer beschichteten Seite nach oben auf den Boden eines Becherglases gelegt, das 20 ml
einer Testkeimsuspension von Staphylococcus aureus enthält und geschüttelt. Nach einer
Kontaktzeit von 4 Stunden wird 1 ml der Testkeimsuspension entnommen, und die Keimzahl
im Versuchsansatz bestimmt. Nach Ablauf dieser Zeit hat die Keimzahl von 107 auf 104 Keime
pro ml abgenommen.
Mittels eines Pinsels wird eine 5 mal 5 cm große Alumiumplatte mit dem so behandelten
Acryllack aus Beispiel 4 bestrichen und im Anschluß im Trockenschrank bei 35°C für die
Dauer von 24 Stunden getrocknet. Die Oberfläche der beschichteten Aluminumplatte wird mit
einem feinkörnigen Schmiergelpapier aufgerauht, dann 15 Minuten in 60°C heißes Wasser
gelegt. Anschließend wird die so behandelte Aluminiumplatte mit ihrer beschichteten Seite
nach oben auf den Boden eines Becherglases gelegt, das 20 ml einer Testkeimsuspension von
Staphylococcus aureus enthält und geschüttelt. Nach einer Kontaktzeit von 4 Stunden wird 1
ml der Testkeimsuspension entnommen, und die Keimzahl im Versuchsansatz bestimmt. Nach
Ablauf dieser Zeit sind keine Keime von Staphylococcus aureus mehr nachweisbar.
Mittels eines Pinsels wird eine 5 mal 5 cm große Alumiumplatte mit dem so behandelten
Acryllack aus Beispiel 4 bestrichen und im Anschluß im Trockenschrank bei 35°C für die
Dauer von 24 Stunden getrocknet. Die Oberfläche der beschichteten Aluminumplatte wird in
eine Plasmakammer gegeben. Die Plasmakammer wird verschlossen und es wird ein Vakuum
angelegt. Danach wird ein Argonstrom von 0,3 l/min eingestellt, die Plasmaleistung auf 600
Watt einreguliert und die Aluminiumplatte für die Dauer von 30 Sekunden plasmabehandelt.
Anschließend wird die so behandelte Platte mit ihrer beschichteten Seite nach oben auf den
Boden eines Becherglases gelegt, das 20 ml einer Testkeimsuspension von Staphylococcus
aureus enthält und geschüttelt. Nach einer Kontaktzeit von 4 Stunden wird 1 ml der
Testkeimsuspension entnommen, und die Keimzahl im Versuchsansatz bestimmt. Nach Ablauf
dieser Zeit hat die Keimzahl von 107 auf 104 Keime pro ml abgenommen.
Mittels eines Pinsels wird eine 5 mal 5 cm große Keramikplatte mit dem so behandelten
Acryllack aus Beispiel 4 bestrichen und im Anschluß im Trockenschrank bei 35°C für die
Dauer von 24 Stunden getrocknet. Die Oberfläche der beschichteten Keramikplatte wird mit
einem feinkörnigen Schmiergelpapier aufgerauht, dann 15 Minuten in 60°C heißes Wasser
gelegt. Anschließend wird die so behandelte Keramikplatte mit ihrer beschichteten Seite nach
oben auf den Boden eines Becherglases gelegt, das 20 ml einer Testkeimsuspension von
Staphylococcus aureus enthält und geschüttelt. Nach einer Kontaktzeit von 4 Stunden wird
1 ml der Testkeimsuspension entnommen, und die Keimzahl im Versuchsansatz bestimmt.
Nach Ablauf dieser Zeit sind keine Keime von Staphylococcus aureus mehr nachweisbar.
Mittels eines Pinsels wird eine 5 mal 5 cm große Glasplatte mit dem so behandelten Acryllack
aus Beispiel 4 bestrichen und im Anschluß im Trockenschrank bei 35°C für die Dauer von 24
Stunden getrocknet. Die Oberfläche der beschichteten Glasplatte wird mit einem feinkörnigen
Schmiergelpapier aufgerauht, dann 15 Minuten in 60°C heißes Wasser gelegt. Anschließend
wird die so behandelte Glasplatte mit ihrer beschichteten Seite nach oben auf den Boden eines
Becherglases gelegt, das 20 ml einer Testkeimsuspension von Staphylococcus aureus enthält
und geschüttelt. Nach einer Kontaktzeit von 4 Stunden wird 1 ml der Testkeimsuspension
entnommen, und die Keimzahl im Versuchsansatz bestimmt. Nach Ablauf dieser Zeit sind keine
Keime von Staphylococcus aureus mehr nachweisbar.
90 ml Methacrylsäure-2-tert.-butylaminoethylester (Fa. Aldrich) und 180 ml Ethanol werden in
einem Dreihalskolben vorgelegt und unter Argonzustrom auf 65°C erhitzt. Danach werden
0,745 g Azobisisobutyronitril gelöst in 20 ml Ethylmethylketon unter Rühren langsam
zugetropft. Das Gemisch wird auf 70°C erhitzt und 72 Stunden bei dieser Temperatur gerührt.
Nach Ablauf dieser Zeit wird die Reaktionsmischung in 1 l entmineralisiertes Wasser
eingerührt, wobei das polymere Produkt ausfällt. Nach Abfiltrieren des Produktes wird der
Filterrückstand mit 100 ml einer 10%igen Lösung von Ethanol in Wasser gespült, um noch
vorhandene Restmonomere zu entfernen. Im Anschluß wird das Produkt für 24 Stunden bei 50
°C im Vakuum getrocknet. 4 g des Produktes werden in 96 g Plextol D 510 der Firma
PolymerLatex, einer wäßrigen Dispersion eines Methacrylsäureester-/Acrylsäureester-
Copolymerisates, eingerührt.
Mittels eines Pinsels wird eine 5 mal 5 cm große Alumiumplatte mit der so behandelten
Dispersion aus Beispiel 5 bestrichen und im Anschluß im Trockenschrank bei 35°C für die
Dauer von 24 Stunden getrocknet. Diese Aluminiumplatte wird mit ihrer beschichteten Seite
nach oben auf den Boden eines Becherglases gelegt, das 20 ml einer Testkeimsuspension von
Staphylococcus aureus enthält und geschüttelt. Nach einer Kontaktzeit von 2 Stunden wird 1
ml der Testkeimsuspension entnommen, und die Keimzahl im Versuchsansatz bestimmt. Nach
Ablauf dieser Zeit hat die Keimzahl von 107 auf 104 Keime pro ml abgenommen.
Mittels eines Pinsels wird eine 5 mal 5 cm große Alumiumplatte mit der so behandelten
Dispersion aus Beispiel 5 bestrichen und im Anschluß im Trockenschrank bei 35°C für die
Dauer von 24 Stunden getrocknet. Die Oberfläche der beschichteten Aluminumplatte wird mit
einem feinkörnigen Schmiergelpapier aufgerauht. Anschließend wird die so behandelte
Aluminiumplatte mit ihrer beschichteten Seite nach oben auf den Boden eines Becherglases
gelegt, das 20 ml einer Testkeimsuspension von Staphylococcus aureus enthält und geschüttelt.
Nach einer Kontaktzeit von 4 Stunden wird 1 ml der Testkeimsuspension entnommen, und die
Keimzahl im Versuchsansatz bestimmt. Nach Ablauf dieser Zeit hat die Keimzahl von 107 auf
103 Keime pro ml abgenommen.
Mittels eines Pinsels wird eine 5 mal 5 cm große Alumiumplatte mit der so behandelten
Dispersion aus Beispiel 5 bestrichen und im Anschluß im Trockenschrank bei 35°C für die
Dauer von 24 Stunden getrocknet. Die Oberfläche der beschichteten Aluminumplatte wird 15
Minuten in 60°C heißes Wasser gelegt. Anschließend wird die so behandelte Aluminiumplatte
mit ihrer beschichteten Seite nach oben auf den Boden eines Becherglases gelegt, das 20 ml
einer Testkeimsuspension von Staphylococcus aureus enthält und geschüttelt. Nach einer
Kontaktzeit von 4 Stunden wird 1 ml der Testkeimsuspension entnommen, und die Keimzahl
im Versuchsansatz bestimmt. Nach Ablauf dieser Zeit hat die Keimzahl von 107 auf 104 Keime
pro ml abgenommen.
Mittels eines Pinsels wird eine 5 mal 5 cm große Alumiumplatte mit der so behandelten
Dispersion aus Beispiel 5 bestrichen und im Anschluß im Trockenschrank bei 35°C für die
Dauer von 24 Stunden getrocknet. Die Oberfläche der beschichteten Aluminumplatte wird mit
einem feinkörnigen Schmiergelpapier aufgerauht, dann 15 Minuten in 60°C heißes Wasser
gelegt. Anschließend wird die so behandelte Aluminiumplatte mit ihrer beschichteten Seite
nach oben auf den Boden eines Becherglases gelegt, das 20 ml einer Testkeimsuspension von
Staphylococcus aureus enthält und geschüttelt. Nach einer Kontaktzeit von 4 Stunden wird
1 ml der Testkeimsuspension entnommen, und die Keimzahl im Versuchsansatz bestimmt.
Nach Ablauf dieser Zeit sind keine Keime von Staphylococcus aureus mehr nachweisbar.
Mittels eines Pinsels wird eine 5 mal 5 cm große Alumiumplatte mit der so behandelten
Dispersion aus Beispiel 5 bestrichen und im Anschluß im Trockenschrank bei 35°C für die
Dauer von 24 Stunden getrocknet. Die Oberfläche der beschichteten Aluminumplatte wird in
eine Plasmakammer gegeben. Die Plasmakammer wird verschlossen und es wird ein Vakuum
angelegt. Danach wird ein Argonstrom von 0,3 l/min eingestellt, die Plasmaleistung auf 600
Watt einreguliert und die Aluminiumplatte für die Dauer von 30 Sekunden plasmabehandelt.
Anschließend wird die so behandelte Platte mit ihrer beschichteten Seite nach oben auf den
Boden eines Becherglases gelegt, das 20 ml einer Testkeimsuspension von Staphylococcus
aureus enthält und geschüttelt. Nach einer Kontaktzeit von 4 Stunden wird 1 ml der
Testkeimsuspension entnommen, und die Keimzahl im Versuchsansatz bestimmt. Nach Ablauf
dieser Zeit hat die Keimzahl von 107 auf 104 Keime pro ml abgenommen.
Mittels eines Pinsels wird eine 5 mal 5 cm große Keramikplatte mit der so behandelten
Dispersion aus Beispiel 5 bestrichen und im Anschluß im Trockenschrank bei 35°C für die
Dauer von 24 Stunden getrocknet. Die Oberfläche der beschichteten Keramikplatte wird mit
einem feinkörnigen Schmiergelpapier aufgerauht, dann 15 Minuten in 60°C heißes Wasser
gelegt. Anschließend wird die so behandelte Keramikplatte mit ihrer beschichteten Seite nach
oben auf den Boden eines Becherglases gelegt, das 20 ml einer Testkeimsuspension von
Staphylococcus aureus enthält und geschüttelt. Nach einer Kontaktzeit von 4 Stunden wird
1 ml der Testkeimsuspension entnommen, und die Keimzahl im Versuchsansatz bestimmt.
Nach Ablauf dieser Zeit sind keine Keime von Staphylococcus aureus mehr nachweisbar.
Mittels eines Pinsels wird eine 5 mal 5 cm große Glasplatte mit der so behandelten Dispersion
aus Beispiel 5 bestrichen und im Anschluß im Trockenschrank bei 35°C für die Dauer von 24
Stunden getrocknet. Die Oberfläche der beschichteten Glasplatte wird mit einem feinkörnigen
Schmiergelpapier aufgerauht, dann 15 Minuten in 60°C heißes Wasser gelegt. Anschließend
wird die so behandelte Glasplatte mit ihrer beschichteten Seite nach oben auf den Boden eines
Becherglases gelegt, das 20 ml einer Testkeimsuspension von Staphylococcus aureus enthält
und geschüttelt. Nach einer Kontaktzeit von 4 Stunden wird 1 ml der Testkeimsuspension
entnommen, und die Keimzahl im Versuchsansatz bestimmt. Nach Ablauf dieser Zeit sind keine
Keime von Staphylococcus aureus mehr nachweisbar.
Claims (8)
1. Verfahren zur Effizienzsteigerung mikrobizid wirksamer Polymere durch Aufrauhung oder
Abtragung der Oberfläche dieser Polymere.
2. Verfahren nach Anspruch 1,
dadurch gekennzeichnet,
dass zur Abtragung der Oberflächen Plasma-, Korona-, elektromagnetische Strahlung oder
Beflammung eingesetzt werden.
3. Verfahren nach Anspruch 1,
dadurch gekennzeichnet,
daß zur Aufrauhung der Oberflächen Schleif oder Poliermittel eingesetzt werden.
4. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 3,
dadurch gekennzeichnet,
dass die aufgerauhten oder abgetragenen Oberflächen durch Säuren oder Wasser
hydrophiliert werden.
5. Verfahren nach Anspruch 4,
dadurch gekennzeichnet,
das die Hydrophilierung bei einer Temperatur von mehr als 40°C durchgeführt wird.
6. Verfahren nach einem der Ansprüche 4 oder 5,
dadurch gekennzeichnet,
dass die Hydrophilierung bei oder über der Glastemperatur der Polymere durchgeführt
wird.
7. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 6,
dadurch gekennzeichnet,
dass die mikrobizid wirksamen Polymere aus mindestens einem Stickstoff oder
Phosphorfunktionalisierten Monomeren hergestellt werden.
8. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 7,
dadurch gekennzeichnet,
dass die mikrobizid wirksamen Polymere aus mindestens einem der folgenden Monomere
hergestellt werden:
Methacrylsäure-2-tert.-butylaminoethylester, Methacrylsäure-2-diethylaminoethylester, Methacrylsäure-2-diethylaminomethylester, Acrylsäure-2-tert.-butylaminoethylester; Acrylsäure-3-dimethylaminopropylester, Acrylsäure-2-diethylaminoethylester, Acrylsäure- 2-dimethylaminoethylester, Dimethylaminopropylmethacrylamid, Diethylamino propylmethacrylamid, Acrylsäure-3-dimethylaminopropylamid, 2-Methacryloyloxyethyl trimethylammoniummethosulfat, Methacrylsäure-2-diethylaminoethylester, 2- Methacryloyloxyethyltrimethylammoniumchlorid, 3-Methacryloylaminopropyltrime thylammonium-chlorid, 2-Methacryloyloxyethyltrimethylammoniumchlorid, 2- Acryloyloxyethyl-4-benzoyldimethylammoniumbromid, 2- Methacryloyloxyethyl-4- benzoyldimethylammoniumbromid, Allyltriphenylphosphoniumbromid, Allyltriphenylphos phoniumchlorid, 2-Acrylamido-2-methyl-1-propansulfonsäure, 2-Diethylami noethylvinylether, 3-Aminopropylvinylether.
Methacrylsäure-2-tert.-butylaminoethylester, Methacrylsäure-2-diethylaminoethylester, Methacrylsäure-2-diethylaminomethylester, Acrylsäure-2-tert.-butylaminoethylester; Acrylsäure-3-dimethylaminopropylester, Acrylsäure-2-diethylaminoethylester, Acrylsäure- 2-dimethylaminoethylester, Dimethylaminopropylmethacrylamid, Diethylamino propylmethacrylamid, Acrylsäure-3-dimethylaminopropylamid, 2-Methacryloyloxyethyl trimethylammoniummethosulfat, Methacrylsäure-2-diethylaminoethylester, 2- Methacryloyloxyethyltrimethylammoniumchlorid, 3-Methacryloylaminopropyltrime thylammonium-chlorid, 2-Methacryloyloxyethyltrimethylammoniumchlorid, 2- Acryloyloxyethyl-4-benzoyldimethylammoniumbromid, 2- Methacryloyloxyethyl-4- benzoyldimethylammoniumbromid, Allyltriphenylphosphoniumbromid, Allyltriphenylphos phoniumchlorid, 2-Acrylamido-2-methyl-1-propansulfonsäure, 2-Diethylami noethylvinylether, 3-Aminopropylvinylether.
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| DE2000161251 DE10061251A1 (de) | 2000-12-09 | 2000-12-09 | Verfahren zur Aktivierung mikrobizid wirksamer Polymeroberflächen |
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Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2004074388A1 (de) * | 2003-02-18 | 2004-09-02 | Otto Schildhauer | Verfahren zur behandlung von rohrleitungen |
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| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2752465B2 (ja) * | 1989-10-20 | 1998-05-18 | 三菱化学株式会社 | 抗菌性ポリオレフィン系樹脂成形品の製造法 |
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2000
- 2000-12-09 DE DE2000161251 patent/DE10061251A1/de not_active Withdrawn
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2001
- 2001-11-13 AU AU2002227922A patent/AU2002227922A1/en not_active Abandoned
- 2001-11-13 WO PCT/EP2001/013094 patent/WO2002047890A1/de not_active Application Discontinuation
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| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2004074388A1 (de) * | 2003-02-18 | 2004-09-02 | Otto Schildhauer | Verfahren zur behandlung von rohrleitungen |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
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