DD298658A5 - PROCESS FOR PRAEPARATION OF PENICILLINNAEHOLE SOLUTIONS - Google Patents

PROCESS FOR PRAEPARATION OF PENICILLINNAEHOLE SOLUTIONS Download PDF

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DD298658A5
DD298658A5 DD32396288A DD32396288A DD298658A5 DD 298658 A5 DD298658 A5 DD 298658A5 DD 32396288 A DD32396288 A DD 32396288A DD 32396288 A DD32396288 A DD 32396288A DD 298658 A5 DD298658 A5 DD 298658A5
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German Democratic Republic
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nitrogen
product formation
proteolytic
formation process
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DD32396288A
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German (de)
Inventor
Arnulf Christner
Hans-Helmut Grosse
Dagmar Kauder
Anneliese Kaestner
Elke Palik
Lothar Oehler
Erhard Wolleschensky
Ingeborg Heller
Ruediger Grimmert
Original Assignee
Jenapharm Veb
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Abstract

Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Praeparation von partikelhaltigen, polymeren Stickstoffsubstraten, die als Sekundaerrohstoffe in der Lebensmittelindustrie anfallen, fuer mikrobiologische Hochleistungsprozesse, um mit vom Vermahlungsgrad der eingesetzten Schrote unabhaengigen, standardisierten Startbedingungen rasante, technisch relevante, primaere Wachstumsphasen zu erreichen. Erfindungsgemaesz wird die Aufgabe der Erfindung dadurch geloest, dasz eine proteolytische Mazeration von Schrotmaischen innerhalb oder auszerhalb eines mikrobiellen Hochleistungsprozesses durchgefuehrt wird, indem entsprechend zum notwendigen Aufschluszgrad der hochpolymeren und partikelhaltigen Stickstoffsubstrate Rohenzymgemische, saure, neutrale, alkalische oder/und temperaturstabile Proteasen den Schrotmaischen zugefuegt werden und so mit dieser Proteolyse nach Substratvervollstaendigung ein Medium vorliegt, das einen konstant leistungsstarken, robusten und gegenueber Steuerungsmasznahmen sensibilisierten mikrobiellen Wachstums- oder Produktbildungsprozesz ermoeglicht.{Praeparations-Verfahren; Penicillinnaehrloesungen; Stickstoffsubstrate, polymere; Mazeration, proteolytische; Schrotkorngroeszenverteilung; Hochleistungsprozesz, mikrobieller; Rohenzymgemische}The invention relates to a method for the preparation of particle-containing, polymeric nitrogen substrates, which are obtained as Sekundaerrohstoffe in the food industry for microbiological high-performance processes in order to achieve rapid, technically relevant, primaere growth phases with independent of the degree of milling of the shot used, standardized starting conditions. According to the invention, the object of the invention is achieved by performing a proteolytic maceration of meal mashes within or outside of a high performance microbial process by adding crude enzyme mixtures, acidic, neutral, alkaline or / and thermally stable proteases to the mashed macaques corresponding to the required degree of digestion of the high polymer and particulate nitrogen substrates and thus, upon completion of the substrate proteolysis, there is a medium permitting a consistently high performance, robust, and control-sensitized microbial growth or product formation process. {Preparations Method; Penicillinnaehrloesungen; Nitrogen substrates, polymers; Maceration, proteolytic; Schrotkorngroeszenverteilung; High performance process, microbial; Rohenzymgemische}

Description

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Anwendungsgebiet der ErfindungField of application of the invention

Die Erfindung ist anwendbar bei der Standardisierung der Startbedingungen fermontativer Hochleistungsprozesse in der Biotechnologie. Sie findet insbesonde, e bei der fermentativen Herstellung von Benzylpenicillin ihre Anwendung. Da die Vermeidung von unproduktiven Verlustzeiten infolge verzögerter primärer Wachstumsphasen generell anzustreben ist, kann das Anwendungsgebiet der Erfindung auch auf großtechnische fermentative Prozesse mit anderen produktbildenden Mikroorganismen erweitert werden.The invention is applicable to the standardization of start conditions of high performance, fermontative processes in biotechnology. In particular, it finds application in the fermentative production of benzylpenicillin. Since the avoidance of unproductive loss times due to delayed primary growth phases is generally desirable, the field of application of the invention can also be extended to large-scale fermentative processes with other product-forming microorganisms.

Charakteristik des bekannten Standes der TechnikCharacteristic of the known state of the art

Aus ökonomischen Gründen werden für industrielle Fermentationsmedien komplexe organische Stickstoffquellen wie Extraktionsschrote aus Sojabohnen und Erdnüssen, Baumwollsamenmehl, Maisquellwasser, Hefeextrakt, Fischmehl und andere Sekundärrohstoffe verwendet. Für spezielle Hochleistungsprozesse mit genotypisch veränderten mikrobiellen Produzenten werden nachträglich veredelte, organische Stickstoffsubstrate wie z. B. Pharmamedia (Buckeye Cellulose Corporation, Memphis, Tennessee 38108, USA) eingesetzt, um die maximalen Verfahrensgrenzen einer mikrobiellen Fermentation langfristig zu garantieren. Die genannten komplexen Stickstoffsubstrate enthalten neben den Proteinen auch mineralische Komponenten, von denen das polymer gebundene Phosphor von besonderer Bedeutung ist (P. F. Stanbury, A.Whitaker, Principles of Fermentation Technology, Pergamon Press, 1986, Chapter 4: „Media for Industrial Fermentations"). Die Verwendung von nachträglich veredelten Sekundärrohstoffen aus der Lebensmittelindustrie mit garantierten GütekriterienFor economic reasons, complex organic nitrogen sources such as soybean and peanut extraction batches, cottonseed meal, corn steep liquor, yeast extract, fish meal and other secondary raw materials are used for industrial fermentation media. For special high-performance processes with genotypically changed microbial producers, subsequently refined, organic nitrogen substrates such. Pharmamedia (Buckeye Cellulose Corporation, Memphis, Tennessee 38108, USA) was used to ensure the maximum process limits of microbial fermentation in the long term. The complex nitrogen substrates mentioned contain not only the proteins but also mineral components, of which the polymer-bound phosphorus is of particular importance (PF Stanbury, A. Whitaker, Principles of Fermentation Technology, Pergamon Press, 1986, Chapter 4: "Media for Industrial Fermentations"). The use of post-processed secondary raw materials from the food industry with guaranteed quality criteria

wie ζ. B. Aminosäure-, Mineral- und Vitamingehalt (Pharmamedia) belasten natürlich die Kosten der großtechnischen Fermentation zusätzlich. Die Verfügbarkeit und die Kosten dieser Nährsubstrate sind aber limitierende Faktoren, die den Einsatz von gemahlenen Extraktionsschroten in der großtechnischen HochleistungsVermentation nach wie vor notwendig machen. Der ökonomische Gewinn auf dieser Basis hat aber seinen Preis durch die mangelnde Standardisierung infolge stark schwankender Korngrößenverteilungen und nicht konstanter Fraktionierungsgrade der löslichen Proteine solcher Extraktionsschrote von Sojabohnen und Erdnüssen. Die Korngrößenverteilung (Abb. 1), der Fraktionierungsgrad der Proteine und die Sterilisationsbddingungen bestimmen aber wesentlich die Mediumskonfiguration, die in ihrer Gesamtheit einmal für die konstante Geschwindigkeit des primären Wachstumsprozesses mit der Expression der Produktbildung und zum anderen für die Geschwindigkeit der erwarteten Sofortantworten aufgrund von Meßsignalen während der potentiellen Produktbnuungsphase verantwortlich ist.like ζ. As amino acid, mineral and vitamin content (Pharmamedia) burden of course, the cost of large-scale fermentation in addition. However, the availability and cost of these nutrient substrates are limiting factors that still require the use of milled extraction slugs in large-scale, high-performance fermentation. The economic gain on this basis, however, has its price due to the lack of standardization due to widely varying particle size distributions and non-constant fractionation levels of the soluble proteins of such extraction soybean and peanut meal. However, the particle size distribution (Figure 1), the fractionation level of the proteins, and the sterilization conditions significantly determine the medium configuration, in their entirety for the constant rate of primary growth with the expression of product formation and the speed of expected immediate responses due to measurement signals during the potential production phase.

Bekannterweise können komplexe Stickstoffsubstrate durch saure Hydrolyse bis zu den Aminosäuren aufgeschlossen werden. Die saure Hydrolyse hat aber die Nachteile, das sie besonders säurefaste Behälter notwendig mncht und mit hohen lonenkonzentraiionen die Fermentation, die chemische Aufarbeitung und das Abwasser belastet.As is known, complex nitrogen substrates can be digested by acid hydrolysis down to the amino acids. However, acid hydrolysis has the disadvantages that it requires a particularly acid-fast container and, with high ion concentrations, it stresses the fermentation, the chemical work-up and the wastewater.

Ziel der ErfindungObject of the invention

Die Erfindung beinhaltet das Ziel, die Korngrößenverteilung von Schroten und den Fraktionierungsgrad der löslichen Proteine so zu verbessern, daß auch unter Verwendung von Sekundärrohstoffen aus der Lebensmittelindustrie leistungsstarke, konstante und auf Außensignale sensibilisierte mikrobielle Produktbildungsprozesse möglich werden. Ziel der Entwicklung ist es gleichermaßen, durch rasant ablaufende primäre Wachstumsprozesse bis zur vorausbestimmten Substratlimitation jede nur mögliche produktive Stunde der sich anschließenden hochpotenten Produktbildungsphase mit maximalen spezifischen Produktbildungsraten im technischen Fermentationsprozeß zu nutzen.The invention aims to improve the particle size distribution of pellets and the degree of fractionation of the soluble proteins in such a way that powerful, constant and externally signal sensitized microbial product formation processes are possible even using secondary raw materials from the food industry. The aim of the development is equally to use every possible productive hour of the subsequent highly potent product formation phase with maximum specific product formation rates in the technical fermentation process through rapid primary growth processes to predefined substrate limitation.

Di,riegung des Wesens der ErfindungThe conclusion of the essence of the invention

Der Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, heterogene, chargenabhängige E*traktionsschrote durch gezielte proteolytische Mazeration so zu verbessern und zu standardisieren, daß damit ein konstant leistungsstarker, robuster, aber gegenüber Steuerungsmaßnahmen sensibilisieder mikrobieller Produktbildungsprozeß möglich wird. Erfindungsgemäß wird ausgehend von einem Histogramm der Korngrößenverteilung und/oder des Fraktionierungsgrades der Stickstoffanteile von Schroten, die als Sekundärrohstoff in der Lebensmittelindustrie anfallen, die Korngrößenverteilung und der Fraktionierungsgrad der proteolytischen Aktivität eines mikrobiologischen Wachstums- und Produktbildungsprozesses; ngepaßt. Die Korngrößenverteilung von Extraktionsschroten wird eliminiert. Damit wird eine Standardisierung der ausgewählten Stickstoffsubstrate für einen mikrobiellen Hochleistungsprozeß möglich.The object of the invention is to improve and standardize heterogeneous, batch-dependent extraction pellets by targeted proteolytic maceration in such a way that a constantly high-performance, robust but sensitive to microbiological product formation process is possible. According to the invention, based on a histogram of the particle size distribution and / or the fractionation degree of the nitrogen fractions of shot, which are obtained as a secondary raw material in the food industry, the particle size distribution and the degree of fractionation of the proteolytic activity of a microbiological growth and product formation process; ngepaßt. The particle size distribution of extraction slices is eliminated. This will allow standardization of the selected nitrogen substrates for a high performance microbial process.

Die polymere Proteirifraktion eines ausgewählten Stickstoffsubstrates wird zugunsten der oligomeren Proteinfraktion oder der monomeren Aminosäuren entsprechend der Verfahrensanforderung beseitigt, indem zum Beginn des Mediumansatzes innerhalb oder außerhalb eines mikrobiologischen Wachstums- oder/und Produktbildungsprozesses Rohenzymgemische, alkalische, saure, neutrale oder temperaturstabile Proteasen verwendet werden.The polymeric protein fraction of a selected nitrogen substrate is removed in favor of the oligomeric protein fraction or monomeric amino acids according to the process requirement by using crude enzyme mixtures, alkaline, acidic, neutral or thermostable proteases at the beginning of the medium batch within or outside a microbiological growth and / or product formation process.

Das Histogramm der Korngrößenverteilung (Abb. 1) eines relativ gut vermahlenen Sojamehlschrotes zeigt, daß 46,5% der Vermahlung eine Korngröße = 0,60mm, 17,2% eine Korngröße von 0,60 bis 1,20 mm und 36,2% eine Korngröße 1,20mm besitzt. Während einer Entkontaminierung durch Temperatureinwirkung von t = 12O0CfUr 1 Stunde wird der Fraktionierungsgrad und die Korngrößenverteilung nicht wesentlich geändort. Lediglich durch den Zusatz von Maisquellwasser oder anderen Substraten mit höherem Anteil der proteinlöslichen Fraktionen kann der Fraktionierungsgrad der Stickstoffsubstrate im Medium gezielt beeinflußt werden. Dieser Zusatz wird aber durch den hohen Phosphatphosphorgehalt (30 bis 45 mg 'g Trockensubstanz) des Maisquellwassers limitiert.The histogram of the grain size distribution (Fig. 1) of a relatively well milled soybean meal shows that 46.5% of the grinding has a grain size = 0.60 mm, 17.2% has a grain size of 0.60 to 1.20 mm and 36.2% has a grain size of 1.20mm. During a decontamination by the action of temperature of t = 12O 0 CfUr 1 hour, the fractionation and the particle size distribution is not significantly changed. Only by the addition of corn steep liquor or other substrates with a higher proportion of protein-soluble fractions can the fractionation of the nitrogen substrates in the medium be influenced in a targeted manner. However, this addition is limited by the high Phosphatphosphorgehalt (30 to 45 mg 'g dry matter) of the corn steep liquor.

Es wurde überraschend gefunden, daß nach der proteolytischen Mazeration von Sojamehl- oder Erdnußschroten das Verhältnis von Phosphatphosphor zum polymer fixierten Phosphor, welches vorzugsweise 0,12 bis 0,29 beträgt, im genannten Stickstoffsubstrat unverändert bleibt. Von besonderer Bedeutung dabei ist das Verhältnis von löslichem Phosphor zum gebundenen Phosphor. Beide üben bei vielen Mikroorganismen eine negative Wirkung auf die Biosynthese von Sekundärmetaboliten aus (Übersicht: A.Torriani-Gorini, F.G.Rothman, S.Silver, A.Wright, E.Yagil, Phosphate Metabolism and Cellular Regulation in Microorganismus, American Society for Microbiology, Publication Sales, 1913, !.Street, N.W., Washington, DC 20006,1987).It has surprisingly been found that after the proteolytic maceration of soybean meal or peanut meal, the ratio of phosphate phosphorus to polymer-fixed phosphorus, which is preferably 0.12 to 0.29, remains unchanged in said nitrogen substrate. Of particular importance is the ratio of soluble phosphorus to bound phosphorus. Both have a negative effect on the biosynthesis of secondary metabolites in many microorganisms (for review: A.Torriani-Gorini, FGRothman, S.Silver, A.Wright, E. Yagil, Phosphate Metabolism and Cellular Regulation in Microorganism, American Society for Microbiology , Publication Sales, 1913,!. Street, NW, Washington, DC 20006, 1987).

Der frei und sofort verfügbare lösliche Phosphor wird während der primären Wachstumsphase im Medium metabolisiert, der Verbrauch des polymerfixierten Phosphoranteiles durch den produktbildenden Mikroorganismus kann durch ein bereits vorgeschlagenes Verfahren gezielt gesteuert werden. Die Korngrößenverteilung der verfügbaren pflanzlichen Schrote und Mehle, der Frakticnierungsgrad der löslichen Proteine, Oligopeptide und Aminosäure, die NH4-N und Zuckerkonzentration sowie die physiologische Kondition der benutzten Vorkulturen bestimmen die Geschwindigkeit der primären Wachstumsphase und eine technologisch handhabbare, auf eine Substratlimitationsgrenze auflaufende Konzentration der Biomasse. Die Ausnutzung der bis zum Zeitpunkt der Zucker- oder/und Phosphorlimitation exprimierten maximalen Biosynthesepotenz wird während einer Benzylpenicillinfermentatiop im wesentlichen durch eine dem physiologischen Status angepaßte Zuckerdosierrate, den retardierten Nachfluß von Aminosäuren und dem Verhältnis zwischen Aminosäure- und NH«-N-Aufnahme bestimmt. Da die maximale spezifische Produktbildungsrate eine Zeitfunktion ist (Optimum zwischen 20. und 100. Stunde), kommt es darauf an, die primäre Wachstumsphase und die Umschaltung in Richtung Sekundärmetabolitbildung während der Zuckerlimitation (sistierte spezifische Wachstumsrate) schnell und sicher ablaufen zu lassen. Die Zunahme der Geschwindigkeit des primären Wachstums- und Umschaltungsprozesses und die Standardisierung der Startbedingungen wurden durch eine proteolytische Mazeration des Sojamehls mit dem bekannten Histogramm der Korngrößenverteilung (Abb. 1) einem Maximum zugeführt. Mit dieser proteolytischen Mazeration der verfügbaren Schrote kann der Zusatz vonThe free and readily available soluble phosphorus is metabolized during the primary growth phase in the medium, the consumption of the polymer-fixed phosphorus content by the product-forming microorganism can be controlled by a previously proposed method. The particle size distribution of the available vegetable meal and flours, the degree of fractionation of the soluble proteins, oligopeptides and amino acid, the NH 4 -N and sugar concentration and the physiological condition of the used precultures determine the rate of the primary growth phase and a technologically manageable, on a Substratlimitationsgrenze accruing concentration of biomass. Utilization of maximum biosynthetic potency expressed up to the time of sugar or / and phosphorus limitation is determined during a benzylpenicillin fermentation essentially by a sugar dosage rate adapted to the physiological status, the retarded amino acid flux and the ratio between amino acid and NH 2 -N uptake. Since the maximum specific product formation rate is a time function (optimum between the 20th and 100th hour), it is important to allow the primary growth phase and the switch to secondary metabolite formation during the sugar limitation (specific growth rate) to proceed quickly and safely. The increase in the rate of primary growth and switching process and the standardization of start conditions were maximized by proteolytic maceration of soybean meal with the well-known grain size distribution histogram (Figure 1). With this proteolytic maceration of available shot, the addition of

Substraten mit niedermolekularen Stickstoffanteilen zwecks Korrektur und Anpassung des gesamten Stickstofffraktionierungsgrades des Mediums an die Prozeßerfordernisse drastisch reduziert werden. Damit reduziert sich auch der zusätzliche Eintrag von löslichem Phosphatphosphor aus den niedermolekularen Stickstoffsubstraten (Maisquellwasser) in das Medium. Die Sojamehl- oder Erdnußmehlmaische wird in einem 3-m3-Fermentor separat vor der Komplettierung des Mediums oder in einem außerhalb des mikrowellen Prozesses stehender Ansatzrührbehälter mit einem Rohenzymgemisch oder mit einer sauren, neutralen, alkalischen und temperaturstabilen Protease aufgeschlossen. Im Prinzip ist für die präparative Standardisierung des Soja- oder Erdnußschrotes jedes Enzymrohgemisch (bevorzugte Konzentration 0,3 bis 2 g pro Liter Maische Einwirkungszelt 3 bis 15 Stunden) und jede Protease geeignet. Die Auswahl wird einmal durch die Verfügbarkeit, zum anderen durch das beabsichtigte Ergebnis des Aufschlußgrades bestimmt. Dabei werden die Bedingungen während der enzymatischem Mazeration durch die Bedingungen der maximalen Enzymaktivität (Temperatur, chT, Konzentration) diktiert. Die enzymatische Mazeration und die Proteolyse von Extraktlonsschroten werden vorzugsweise zwischen 2 und 15 Stunden bei einerTemperaturvon30°Cbi8 80°Cund einer Enzymaktivität in der Maische von 2 10~2pmol/mg · min bis 1(^mol/mg · min durchgeführt. Für die Benzylpenicillinfermentation wurde die proteolytische Mazeration soweit geführt, daß die Korngrößenverteilung entweder beseitigt oder die 0,60-mm-Partikelfraktion nahezu 100% beträgt. Gleichzeitig steigt der lösliche Proteinanteil und die oligomere Peptidfraktion im Medium an. Für die Beurteilung der Mediumspräparation wurden alle die in einer 80%igen Ethanollösung (1:6-Fraktion) löslichen Proteine und Aminosäuren zugrunde gelegt. Rohenzymgemische wie Brauereienzym, das Beta-Glucanase, neutrale Protease und Alpha-Amylase enthält, sind insofern besonders geeignet, da sie verfügbar, kostengünstig und neben der proteolytischen Mazeration die in den Schroten enthaltene Reststärke zu C-Substratmonomeren aufschließt. Vor der Enzymbehandlung wurde die Soja- oder Erdnußschrotmaische 1 Stunde bei 1000C nach dem Einstellen einer cH+ von pH = 8,0 vorgekocht, um durch Gefügelockerung der Partikel die Enzymwirkung zu erhöhen und damit Enzymsubetanz einzusparen. Chemisch-analytisch hat der Vorkochprozeß keine Konsequenz (Beispiel 2). Nach der proteolytischen Mazeration wird das Aufschlußmedium mit den anderen Substraten komplettiert und für 1 Stunde bei 12O0C mit Direkt- und Manteldampf sterilisiert. Dabei wird gleichzeitig das komplette Medium entaktiviert. Die Vorgehensweise soll an Beispielen näher erläutert werden.Substrates with low molecular weight nitrogen fractions for the purpose of correcting and adjusting the total Stickstofffraktionierungsgrades the medium to the process requirements are drastically reduced. This also reduces the additional entry of soluble phosphate phosphorus from the low molecular nitrogen substrates (corn steep liquor) into the medium. The soybean meal or peanut meal is digested in a 3 m 3 fermentor separately prior to completion of the medium or in a stirred tank outside the microwave process with a crude enzyme mixture or with an acidic, neutral, alkaline and temperature-stable protease. In principle, each Enzymrohgemisch (preferred concentration 0.3 to 2 g per liter of mash impaction tent 3 to 15 hours) and each protease is suitable for the preparative standardization of soybean or peanut meal. The selection is determined once by the availability, on the other hand by the intended result of the degree of digestion. The conditions during the enzymatic maceration are dictated by the conditions of maximum enzyme activity (temperature, chT, concentration). The enzymatic maceration and proteolysis of Extraktlonsschroten be preferably between 2 and 15 hours at einerTemperaturvon30 ° Cbi8 80 ° C and an enzyme activity in the mash of 2 10 ~ 2 pmol / mg · min to 1 (^ mol / mg · min. For the Benzylpenicillin fermentation, the proteolytic maceration was performed so far that the particle size distribution either eliminated or the 0.60-mm particle fraction is almost 100% At the same time the soluble protein content and the oligomeric peptide fraction increases in the medium 80% ethanol solution (1: 6 fraction) based on soluble proteins and amino acids, crude enzyme mixtures such as brewing enzyme containing beta-glucanase, neutral protease and alpha-amylase are particularly suitable because they are available, inexpensive and in addition to proteolytic maceration digest the residual starch contained in the pellets into C substrate monomers t. Before enzyme treatment the soy or Erdnußschrotmaische was 1 hour at 100 0 C precooked after setting a + cH of pH = 8.0, in order to increase by structural relaxation of the particles, the enzyme action and thus to save Enzymsubetanz. Chemically-analytically, the precooking process has no consequence (Example 2). After proteolytic maceration, the digestion medium is completed with the other substrates and sterilized for 1 hour at 12O 0 C with direct and jacket steam. At the same time the complete medium is deactivated. The procedure will be explained in more detail with examples.

Ausführungsbeispieleembodiments

Beispiel 1example 1

76kg Sojamehl entsprechend dem Histogramm der Korngrößenverteilung werden in einem Kubikmeter Leitungswasser (= 40g Sojamehl/l Kulturlösung) in einem 3-m3-Fermentor eine Stunde bei 100°C nach dem Einstellen einer cH+ von pH = 8,0 vorgekocht. Für diese pH-Wertveränderung vom Start-pH = 6,5 werden 400 bis 500ml technische Natronlauge (30%) benötigt. Nach der Abkühlung (Mantelkühlung) auf 450C werden diesem Ansatz, der jetzt eine CH+ von pH = 7,5 besitzt, 1 kg ßrauei eienzym (1 g/l Maische, die 60 bis 80g Sojamehl enthält), das in 51 Leitungswasser mit einer Temperatur von 20 bis 3O0C gelöst wurde, zugefügt. Die Enzymbehandlung verläuft bei 45°C bis 5O0C und einer cH+ vor» oH = 7,5 unter Rührung (50min"1) ohne Belüftung für 4 Stunden, maximal 5 Stunden. Vor jeder Probenahme zwecks analytischer Prüfung oder Kontrolle wird 5 min bei 100 min"1 gerührt, danach die Probe gezogen und wieder die Ausgangsrührbedingung eingestellt. Nach der Enzymbehandlung erfolgt die Komplettierung des Mediums entsprechend der Rezeptur und die pH-Korrektur. Die Sterilisation des gesamten Mediumsansatzes erfolgt mit Direktdampf für 60min bei 12ü°C. Die Analytik des nach einer vierstündigen proteolytischen Mazeration partikelfreien Erstansatzes ist in der nachfolgenden Tabelle dargestellt (Tabelle 1). Die Werte für den organischen Stickstoff repräsentieren gut die Aminosäureanalytik.76kg of soy flour according to the histogram of particle size distribution are precooked in one cubic meter of tap water (= 40g soy flour / l culture solution) in a 3-m 3 fermentor for one hour at 100 ° C after setting a cH + of pH = 8.0. For this change in pH from the starting pH = 6.5, 400 to 500 ml of technical sodium hydroxide (30%) are required. After cooling (jacket cooling) to 45 0 C, this approach, which now has a CH + of pH = 7.5, 1 kg ßraueei eienzym (1 g / l mash containing 60 to 80g of soybean flour) in 51 tap water was dissolved at a temperature of 20 to 3O 0 C was added. The enzyme treatment takes place at 45 ° C to 5O 0 C and a Ch + before "oH = 7.5, with stirring (50 min" 1) without aeration for 4 hours, maximum of 5 hours. Before any samples for analytical examination or control is 5 min stirred at 100 min " 1 , then pulled the sample and again set the Ausgangsrührbedingung. After the enzyme treatment, the completion of the medium is carried out according to the recipe and the pH correction. The sterilization of the entire medium batch is carried out with direct steam for 60 min at 12ü ° C. The analysis of the first batch free of particles after four hours of proteolytic maceration is shown in the table below (Table 1). The values for organic nitrogen are good for amino acid analysis.

1:6-Fraktion: alle in einer 80%igen Ethanollösung löslichen Proteine und Aminosäuren. Vor Beginn der Analytik wurden alle Proben für dreimal eine Minute mit einem Ultraturrax behandelt.1: 6 fraction: all proteins and amino acids soluble in 80% ethanol solution. Before starting the analysis, all samples were treated with an Ultraturrax for three times a minute.

Tabelle 1Table 1

Primäransatz: 76kg Sojamehl/1 m3 Leitungswasser, 1 kg Brauereienzym TGL 29166/01 Analytik: mg/mlPrimary intake: 76kg soy flour / 1m 3 tap water, 1kg brewing enzyme TGL 29166/01 Analysis: mg / ml

Original 1:6Original 1: 6 GNGN NH4-NNH 4 -N Norg.Norg. PO4-PPO 4 -P 1. Sojamehl-Suspension (SM) 76g/l,pH = 8,0 ohne Enzym1. Soybean meal suspension (SM) 76g / l, pH = 8.0 without enzyme Original 1:6Original 1: 6 6,09 0,186,09 0,18 0,035 0,00.035 0.0 6,05 0,136.05 0.13 0,0850.085 2. 1h 1000C SO0CO. h Enzymzufügung (Ezf.) pH = 7,52. 1 h 100 0 C SO 0 CO. h enzyme addition (ezf.) pH = 7.5 Original 1:8Original 1: 8 5,38 1,345.38 1.34 0,065 0,0150.065 0.015 5,32 1,325.32 1.32 0,0900,090 3. 2 h nach Ezf. 5O0CpH = 7,53. 2 hours after Ezf. 5O 0 CpH = 7.5 Original 1:6Original 1: 6 5,38 1,535.38 1.53 0,065 0,0200.065 0.020 5,32 1,505.32 1.50 0,0900,090 4. 4 h nach Ezf. 5O0CpH = 7,54. 4 hours after Ezf. 5O 0 CpH = 7.5 Original 1:6Original 1: 6 5,38 1,565.38 1.56 0,065 0,0200.065 0.020 5,32 1,545.32 1.54 0,0900,090 5. 5 h nach Ezf. 5O0CpH = 7,55. 5 hours after Ezf. 5O 0 CpH = 7.5 5,98 1,565.98 1.56 0,060 0,0150.060 0.015 5,82 1,545.82 1.54 0,0900,090

Ergebnis: Nach zweistündiger proteolytischer Mazeration liegen 24,8% des organischen Stickstoffs der zu diesem Zeitpunkt schon partikelfreien Präparation (Siebung £0,6mm) in der 80% Ethanolfraktion vor. Die weitere Behandlung bis zu 5 Stunden erhöht diesen Wert nur um 0,65%. Die PO«-P-Konzentration ist während der Behandlung bis zum Ende konstant.Result: After two hours of proteolytic maceration, 24.8% of the organic nitrogen of the already particle-free preparation (sieving £ 0.6 mm) is present in the 80% ethanol fraction. Further treatment for up to 5 hours only increases this value by 0.65%. The PO «P concentration is constant throughout the treatment until the end.

Belsplnl 2Belsplnl 2

Dieser Primäransatz jrde in einem 80-l-Bruttovolumen-Sterilisator mit 2,8kg Sojamehl/491 Leitungswasser (57g SM/I Maische) mazeriert. Die Präparation wurde wieder mit einem Vorkochprozeß für 60min bei 1000C und einer cH+ von pH = 8,0 begonnen, nachdem der Start-pH-Wert von 6,2 mit 150ml 3 N NaOH auf pH = 8,0 eingestellt wurde. Die proteolytischa Mazeration wurde mit 0,5g Brauereienzym/I Maische durchgeführt. Die Bedingungen entsprechen denen im Beispiel 1. Die Analytik zu dieser Präparation ist wiederum in den nachfolgenden Tabellen dargestellt (Tabelle 2 und 3).This primary treatment was macerated in a 80 l gross volume sterilizer with 2.8 kg soy flour / 491 tap water (57 g SM / I mash). The preparation was again with a precooking process for 60min at 100 0 C and a Ch + begun by pH = 8.0, after the starting pH value of 6.2 with 150 ml of 3 N NaOH was adjusted to pH = 8.0. The proteolytic maceration was carried out with 0.5 g of brewery enzyme / I mash. The conditions correspond to those in Example 1. The analysis for this preparation is again shown in the following tables (Tables 2 and 3).

Ergebnis: Nach der 4-Stunden-Enzymbehandlung liegen 32,1 % des organischen Stickstoffs beziehungsweise 34,5% des Aminosäurestickstoffs (AS-N) der zu diesem Zeitpunkt partikelfreien Präparation in der 80% Ethanolfraktion vor. Die PO4-P-Konzentration ist bis zum Ende der proteolytischen Mazeration konsiant, damit ist auch die Relation polymer fixierter PhosphorResult: After the 4-hour enzyme treatment 32.1% of the organic nitrogen or 34.5% of the amino acid nitrogen (AS-N) of the present at that time particle-free preparation in the 80% ethanol fraction are present. The PO 4 -P concentration is consistent until the end of the proteolytic maceration, and so is the relation of polymer-fixed phosphorus

zu Phosphat-Phosphor konstant geblieben.remained constant to phosphate phosphorous.

Tabelle 2Table 2

Primäransatz: 2,8kg/49l Leitungswasser, 0,5g Brauereienzym/I Maische Analytik: mg/mlPrimary intake: 2.8 kg / 49 l tap water, 0.5 g brewery enzyme / I Mash analysis: mg / ml

Probesample Original 1:6Original 1: 6 GNGN NH4-NNH 4 -N Norg.Norg. AS-NAS-N Phosphor gesamtTotal phosphorus PCV-P (SUClj)PCV-P (SUClj) Glukose m. Hydro lyseGlucose m. Hydroysis Glukose mil In vert a βθGlucose mil In vert βθ Glukose ohne HydrolyseGlucose without hydrolysis Fruktose (Resorcin)Fructose (resorcinol) 1. Start vor dem Vorkoch prozeß1. Start before the pre-cooking process 3,89 0,133.89 0.13 0,060 0.0280.060 0.028 3.83 0,0973.83 0.097 3,10 0,0583.10 0.058 0.4012:40 0,0260.026 4,204.20 1,901.90 0,100.10 4,414.41

1h100'C pH = 8,0 nachdem Vorkochprozeß1h100'C pH = 8.0 after precooking

Original 4,03 0,060 3,97 3,27 0,38 1:6 0,106 0,021 0,085 0,040Original 4.03 0.060 3.97 3.27 0.38 1: 6 0.106 0.021 0.085 0.040

0,0240.024

1,901.90

0,110.11

4,694.69

4 h Enzymbehandlung pH = 7,5 t = 50-650C4 h enzyme treatment pH = 7.5 t = 50-65 0 C

Original 3,93 0.120 3,81 3,22 0,40 1:6 1,25 0.021 1,23 1,07Original 3.93 0.120 3.81 3.22 0.40 1: 6 1.25 0.021 1.23 1.07

0,0280.028

1,901.90

0,180.18

4,884.88

1:6-Fraktion: alle in 80%lger Ethanollöeung löslichen Proteine und AminoaSuren (AS)1: 6 fraction: all 80% ethanol-soluble proteins and amino acids (AS)

Tabelle 3Table 3

Primäransatz: 2,8kg Sojamehl/49I Leitungswasser, 0,5g Brauerelenzym/I MaischePrimary intake: 2.8kg soya flour / 49I tap water, 0.5g brewer's enzyme / I mash

Analytik: μς/ηηΙ Aminosäurechromatogramm (Amino Acid Analyzer T339M, Microtechna Praha)Analysis: μς / ηηΙ Amino Acid Chromatogram (Amino Acid Analyzer T339M, Microtechna Praha)

Probesample AS-NAS-N Aminosäuren (AS) pg/mlAmino acids (AS) pg / ml HisHis Argbad AspAsp ThrThr SerSer GIuGlu ProPer G/yG / Y A/aA / a VaIVal Metmead lieu LeuLieu Leu TyrTyr PhePhe mg/mlmg / ml LysLys 592592 20902090 25902590 702702 10401040 41204120 10801080 950950 945945 11101110 255255 1 100 1 8801 100 1 880 770770 11901190 1. vor Sterili1. before Sterili 3,103.10 15201520 sationsation Originaloriginal 1313 3333 5959 1616 1717 116116 AA 2020 2525 1818 AA 14 2514 25 2828 3434 1:6,m.H.1: 6, m.h. 0,060.06 2121 XX χχ 33 χχ χχ 77 χχ AA 22 33 χχ χ χχ χ χχ χχ 1:6,o.H.1: 6, o.H. AA XX 661661 19001900 27602760 887887 12101210 50205020 12801280 994994 978978 11701170 244244 1110 20201110 2020 798798 12001200 2. 1h100cC2. 1h100 c C 3,273.27 15301530 pH = 8,0pH = 8.0 Originaloriginal 1010 2323 4242 99 1010 8888 AA 1212 1717 88th AA 6 106 10 1616 2828 1:6,m.H.1: 6, m.h. 0,040.04 1515 XX χχ 33 χχ χχ 77 χχ AA 22 33 χχ χ χχ χ χχ χχ 1:6, o. H.1: 6, o. H. AA XX 3. 4 h Enzymbe3. 4 h of enzyme 663663 21002100 26502650 634634 10801080 44104410 1 1601 160 982982 991991 11401140 244244 1 150 2 0001 150 2 000 809809 12501250 handlungplot 3,223.22 15801580 Originaloriginal 183183 458458 10101010 395395 456456 14701470 477477 350350 420420 448448 4343 424 767424 767 373373 522522 1.6,m.H.1.6, m.h. 1,071.07 392392 XXXX XXXX XXXX XXXX XXXX XXXX XXXX XXXX XXXX XXXX XXXX XX XXXX XX XXXX XXXX 1:6, o. H.1: 6, o. H. AA XXXX

A: Andeutungen rn. H.: mit Hydrolyse o. H.: ohne Hydrolyse1:6-Fraktion: alle in 80%lger Ethanollösung löslichen Proteine und AS χ alle AS-peaks sind peptiduberlagert, deshalb ist eire AS-Auswertung schwer möglich xx sehr viele Peptide, kaum freie AS.A: Hints rn. H .: with hydrolysis o. H .: without hydrolysis1: 6-fraction: all proteins soluble in 80% ethanol solution and AS χ all AS-peaks are peptide-overlayed, therefore it is hardly possible to analyze XY very many peptides, hardly free AS.

Beispiel 3Example 3

Die Bedingungen dieser Präparation das komplexen partikelhaitigen Stickstoffsubstrates (Abb. 1) enforechen denen im Beispiel 2. Anstelle des Rohenzymgemisches wurde eine alkalische Protease von Bacillus licheniformis als Granulat verwendet (Aktivität: 254,5 TU0,, · s~' bei pH - 10,0 und t = 25°C. Herkunft: Forschungszentrum für Biotechnologie, Berlin).The conditions of this preparation, the complex nitrogen partikelhaitigen substrate (Fig. 1) enforechen those in Example 2. Instead of the Rohenzymgemisches was an alkaline protease from Bacillus licheniformis as a granulate used (activity: 254.5 TU 0 ,, · s ~ 'at pH - 10 , 0 and t = 25 ° C. Origin: Research Center for Biotechnology, Berlin).

Tabelle 4Table 4

Primäransatz: 2,8kg Sojamehl/491 Leitungswasser, 0,1 g alkalische Protease/I Maische Analytik: mg/mlPrimary intake: 2.8 kg soy flour / 491 tap water, 0.1 g alkaline protease / I Mash Analysis: mg / ml

Probesample Original 1:6Original 1: 6 GNGN NH4-NNH 4 -N Norg.Norg. PO4-PPO 4 -P Nach 1h bei 1000C vorkochen pH = 8,0 ohne EnzymAfter 1 h at 100 0 C boil pH = 8.0 without enzyme Original 1:6Original 1: 6 4,35 0,164.35 0.16 0,027 0,0030.027 0.003 4,32 0,164.32 0.16 0,024 0,0030.024 0.003 1. 1h nach Enzym zugabe t=50°C pH = 9,01. 1 h after enzyme addition t = 50 ° C pH = 9.0 Original 1:6Original 1: 6 4,57 1,184.57 1.18 0,025 0,0050.025 0.005 4,54 1,184.54 1.18 0,026 0,0050.026 0.005 2. 2 h 50°C, pH = 9,02. 2 h 50 ° C, pH = 9.0 Original 1:6Original 1: 6 4,79 1074,79 107 0,043 0,0040.043 0.004 4,75 1,074.75 1.07 0,026 0,0040.026 0.004 3. 3 h 500C pH = 9,03. 3 h 50 0 C pH = 9.0 Original 1:6Original 1: 6 4,57 1,254.57 1.25 0,025 0,0060.025 0.006 4,54 1,244.54 1.24 0,026 0,0060.026 0.006 4. 4 h 500C pH = 9,04. 4 h 50 ° C pH = 9.0 4,64 1,254.64 1.25 0,033 0,0030.033 0.003 4,61 1,254.61 1.25 0,026 0,0030.026 0.003

Ergebnis: Nach einer dreistündigen enzymatlschen Mazeration mit 0,1 g alkalische Protease (56g Sojamehl/l) liegen 28,7% des organischen Stickstoffe eic Peptide und Proteine In der 80%lgen Ethanolfraktion (1:6) gelöst vor. Zu diesem Zeitpunkt Ist der Ansatz partikelfrei.Result: After a three-hour enzymatic maceration with 0.1 g of alkaline protease (56 g soybean meal / l), 28.7% of the organic nitrogens of the peptides and proteins are dissolved in the 80% ethanol fraction (1: 6). At this time, the batch is particle-free.

Beispiel 4Example 4

Die Bedingungen dieser Präparation des komplexen partikelhaitigen Stickstoffsubstrates entsprechen bis auf die folgenden Abänderungen denen im Beispiel 3. Anstelle von Sojamehl wurde Erdnußmehl verwendet, auf die thermische Gefügelockerung durch Vorkochen wurde verzichtet. Zum Einsatz kamen 0,1 und 0,08g alkalische Protease entsprechend Beispiel 3. Die Ergebnisse sind in den Tabellen 5 und 6 dargestellt.The conditions of this preparation of the complex particle-containing nitrogen substrate correspond to those in Example 3 except for the following modifications. Instead of soybean meal, peanut meal was used and the thermal poultry socking by precooking was omitted. 0.1 and 0.08 g of alkaline protease according to Example 3 were used. The results are shown in Tables 5 and 6.

Tabelle 5Table 5

Primäransatz: 2,8kg Erdnußmehl/49I (57 g/l), 0,1 g alk. Proteass/I Maische Analytik: mg/mlPrimary Rate: 2.8kg peanut flour / 49I (57g / l), 0.1g alk. Protease / I Mash Analysis: mg / ml

Probesample Original 1:6Original 1: 6 GNGN NH4-NNH 4 -N Norg.Norg. PO4-PPO 4 -P 1. Vor Enzymzu gabe pH =9,01. Before adding enzyme pH = 9.0 Original 1:6Original 1: 6 4,50 0,344.50 0.34 0,023 0,00.023 0.0 4,48 0,344.48 0.34 0,0180,018 2. 1 h nach En- zymzugabo pH = 9,0 5O0C2. 1 h after addition of enzyme pH = 9.0 5O 0 C Original 1:6Original 1: 6 4,65 0,994,65 0,99 0,032 0,0050.032 0.005 4,63 0,984,63 0,98 0,0160.016 3. 2h pH = 9,0 50°C3. 2h pH = 9.0 50 ° C Original 1:6Original 1: 6 4,50 0,994.50 0.99 0,026 0,0030.026 0.003 4,47 0,994.47 0.99 0,0210,021 4. 3hpH = 9,0 5O0C4. 3hpH = 9.0 5O 0 C Original 1:6Original 1: 6 4,94 0,964.94 0.96 0,023 0,00.023 0.0 5,13 0,965.13 0.96 0,0190.019 5. 4hpH = 9,0 50°C5. 4hpH = 9.0 50 ° C Original 1:6Original 1: 6 4,94 0,824.94 0.82 0,026 0,0060.026 0.006 4,91 0,824.91 0.82 0,0210,021 6. 4 hund Hoch heizen auf 12O0CfUr 15min.6. 4 dog heat up to 12O 0 CfUr 15min. 4,79 0,874.79 0.87 0,022 0,0170.022 0.017 4,77 0,854.77 0.85

Ergebnis: Nach einer dreistündigen enzymatischen Mazeration mit 0,1 g alkalische Protease (57g Erdnußmehl/I) liegen 21,4% des organischen Stickstoffs in der 80%igen Ethanolfraktion vor. Der Ansatz ist zu diesem Zeitpunkt partikelfrei.Result: After three hours of enzymatic maceration with 0.1 g of alkaline protease (57 g peanut flour / I), 21.4% of the organic nitrogen is present in the 80% ethanol fraction. The approach is particle-free at this time.

Tabelle βTable β

Primäransatz: 2,4kg Erdnußmehl/481 (50g/l), 0,08g alkalische Protease/I Maische Analytik: mg/mlPrimary intake: 2.4kg peanut flour / 481 (50g / l), 0.08g alkaline protease / I mash Analysis: mg / ml

Probesample Original 1:6Original 1: 6 GNGN NH4-NNH 4 -N Norg.Norg. PO4-PPO 4 -P 1. Vor Enzym behandlung pH = 9,01. Before enzyme treatment pH = 9.0 Original 1:6Original 1: 6 4,48 0,134.48 0.13 0,037 0,0020.037 0.002 4,44 0,134.44 0.13 0,0220,022 2. 1 h nach Enzym- behandlung pH = 9,0, EO0C2. 1 h after enzyme treatment pH = 9.0, EO 0 C Original 1:6Original 1: 6 4,40 0,844.40 0.84 0,031 0,00.031 0.0 4,37 0,844.37 0.84 0,0250,025 3. 2hpH = 9,0 5O0C3. 2hpH = 9.0 5O 0 C Oiginal 1:6Original 1: 6 3,06 0,833.06 0.83 0,017 0,00.017 0.0 3,94 0,833.94 0.83 0,0220,022 3 h nach Enzym behandlung 15 min 12O0C3 h after enzyme treatment 15 min 12O 0 C 3,50 0,893.50 0.89 0,049 0,00.049 0.0 3,45 0,833.45 0.83 0,0230.023

Ergebnis: Nach einer dreistündigen enzymatischen Mazeration mit 0,08g alkalische Protease (50g Erdnußmehl/I) liegen 18,7% des organischen Stickstoffe In der 80%igen Ethanolfraktion vor. Die PG<-O-Konzentration bleibt unverändert, der Ansatz ist zu diesem Zeitpunkt partikelfrei.Result: After three hours of enzymatic maceration with 0.08 g of alkaline protease (50 g peanut flour / I), 18.7% of the organic nitrogen is present in the 80% ethanol fraction. The PG <-O concentration remains unchanged, the approach is particle-free at this time.

Claims (8)

1. Verfahren zur Präparation von Penicillinnährlösungen, dadurch gekennzeichnet, daß ausgehend von einem Histogramm der Korngrößenverteilung und des Fraktionierungsgrades der Stickstoffanteile von Schroten die Korngrößenverteilung und der Fraktionierungsgrad der proteolytischen Aktivität eines mikrobiologischen Wachstums- und Produktbildungsprozesses angepaßt wird, daß die Korngrößenverteilung von Extraktionsschroten eliminiert wird, daß die polymere Proteinfraktion eines ausgewählten Stickstoffsubstrates beseitigt wird, indem zu Beginn des Mediumansatzes innerhalb eines mikrobiologischen Wachstums- und Produktbildungsprozesses Rohenzymgemische, alkalische, saure, neutrale und temperaturstabile Proteason verwendet werdenA process for the preparation of penicillin broths, characterized by adjusting grain size distribution and fractionation level of proteolytic activity of a microbial growth and product formation process from a histogram of grain size distribution and fractionation level of the nitrogen fractions of shot, eliminating the grain size distribution of extraction slices, that the polymeric protein fraction of a selected nitrogen substrate is eliminated by using crude enzyme mixtures, alkaline, acidic, neutral and temperature stable proteases at the beginning of the medium batch within a microbiological growth and product formation process 2. Verfahren gemäß Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß ausgehend von einem Histogramm der Korngrößenverteilung von Schroten die Korngrößenverteilung und der Fraktionierungsgrad der proteolytischen Aktivität eines mikrobiologischen Wachstums- und Produktbildungsprozesses angepaßt wird.2. The method according to claim 1, characterized in that starting from a histogram of the particle size distribution of shot the particle size distribution and the degree of fractionation of the proteolytic activity of a microbiological growth and product formation process is adjusted. 3. Verfahren gemäß Anspruch 1, dadurch gekannzeichnet, daß ausgehend von einem Histogramm des Fraktionierungsgrades der Stickstoffanteile von Schroten der Fraktionisrungsgrad der proteolytischen Aktivität eines mikrobiologischen Wachstums- und Produktbildungsprozesses angepaßt wird.3. The method according to claim 1, characterized gekannzeichnet that, starting from a histogram of the fractionation of the nitrogen fractions of Schroten Fractionitätsgrad the proteolytic activity of a microbiological growth and product formation process is adjusted. 4. Verfahren gemäß Anspruch 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet, daß die polymere Proteinfraktion eines ausgewählten Stickstoffsubstrates beseitigt wird, indem zu Beginn des Mediumansatzes außerhalb eines mikrobiologischen Wachstums- und Produktbildungsprozesses Rohenzymgemische alkalische, saure, neutrale und temperaturstabile Proteasen verwendet werden.4. The method according to claim 1 to 3, characterized in that the polymeric protein fraction of a selected nitrogen substrate is eliminated by at the beginning of the medium batch outside a microbiological growth and product formation process crude enzyme mixtures alkaline, acidic, neutral and temperature-stable proteases are used. 5. Verfahren gemäß Anspruch 1 bis 4, dadurch gekennzeichnet, daß zur Kontrolle und analytischen Definition der proteolytischen Mazeration und der Proteolyse von Schroten und polymeren Stickstoffsubstraten eine ethanolische Lösung verwendet wird.5. The method according to claim 1 to 4, characterized in that an ethanolic solution is used for the control and analytical definition of the proteolytic maceration and the proteolysis of shot and polymeric nitrogen substrates. 6. Verfahren gemäß Anspruch 1 und 2, dadurch gekennzeichnet, daß die enzymatisch^ Mozeration und die Proteolyse von Extraktionsschroten zwischen 2 und 15 Stunden bei einer Temperatur von 3O0C bis 8O0C und einer Enzymaktivität in der Maische von 2 · 10~2Mmol/mg · min bis ΙΟμιτιοΙ/ mg · min (Tyr) durchgeführt wird.6. The method according to claim 1 and 2, characterized in that the enzymatically ^ Mozeration and the proteolysis of extraction meal 2 to 15 hours at a temperature of 3O 0 C to 8O 0 C and an enzyme activity in the mash of 2 · 10 -2 Mmol / mg.min to ΙΟμιτιοΙ / mg.min (Tyr) is performed. 7. Verfahren gemäß Anspruch 1 bis 6, dadurch gekennzeichnet, daß die eingesetzte Rohenzymkonzentration 0,3g bis 2g pro Liter Maische und die Einwirkungszeit 3 bis 15 Stunden beträgt.7. The method according to claim 1 to 6, characterized in that the crude enzyme concentration used 0.3 g to 2 g per liter of mash and the exposure time is 3 to 15 hours. 8. Verfahren gemäß Anspruch 1 bis 7, dadurch gekennzeichnet, daß das Verhältnis von Phosphatphosphor zu dem polymer fixierten Phosphor 0,12 bis 0,29 beträgt und in diesem Bereich unverändert bleibt.8. The method according to claim 1 to 7, characterized in that the ratio of phosphate phosphorus to the polymer-fixed phosphorus is 0.12 to 0.29 and remains unchanged in this area.
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