DD251574A1 - Verfahren zur herstellung von aklanonsaeure - Google Patents
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Abstract
Die Erfindung bezieht sich auf ein Verfahren zur Herstellung von Aklanonsaeure auf mikrobiologischem Wege. Der zur Herstellung der Aklanonsaeure verwendete Mikroorganismus gehoert zur Art Streptomyces peucetius var. caesius und traegt die Bezeichnung F 23/135. Ziel der Erfindung ist die oekonomische Herstellung von Aklanonsaeure als Ausgangssubstanz fuer Mutasynthesen und Partialsynthesen von Anthracyclin-Antibiotika mit potentiell cancerostatischen, antiviralen, antibakteriellen, immunsuppressiven und ergotropen Eigenschaften. Die Aufgabe wird dadurch geloest, dass durch aerobe Submersfermentation des Stammes F 23/135 in Medien mit C-, N-Quellen und Mineralsalzen Aklanonsaeure gebildet, diese aus dem Mycel isoliert und nachfolgend gereinigt wird.
Description
Die Erfindung bezieht sich auf ein Verfahren zur Herstellung von Aklanonsäure auf mikrobiologischem Wege. Aklanonsäure ist eine geeignete Vorstufe zur halbsynthetischen bzw. mutasyrfthetischen HerstelIung verschiedener neuer antibiotisch wirksamer Substanzen, die bei der Chemotherapie von Tumor-, Virus- und von Bakterien hervorgerufenen Erkrankungen bei Mensch und Nutztier von potentiellem Nutzen sind.
Es ist bekannt, daß Aklanonsäure auf mikrobiologischem Wege hergestellt werden kann (Eckardt, K. et al., 1985. J. Antibiot. 38, 1034-1039; DD 225714,7.8.85).
Der in diesem Verfahren eingesetzte Mikroorganismus (Streptomyces spec. ZIMET 43717) weist jedoch den Nachteil auf, daß er nicht fähig ist, Luftmycel und Sporen zu bilden. Deshalb ist eine Artzuordnung nicht möglich. Weiterhin werden dadurch wesentliche Arbeitsschritte eines mikrobiologischen Herstellungsverfahrens wie Stammerhaltung, Stammanzucht und genotypische Optimierung der Biosyntheseleistung erschwert.
Die Erfindung hat zum Ziel einen neuen Mikroorganismus mit Biosynthesefähigkeit für Aklanonsäure einzusetzen, der aufgrund seiner morphologischen, biochemischen und genetischen Parameter sich günstiger für industrielle Prozesse handhaben läßt als das bisher möglich ist.
Der Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, Aklanonsäure als Ausgangsprodukt für Partialsynthesen bzw. Mutasynthesen von Anthracyclin-Antibiotika nach einem neuen mikrobiologischen Verfahren herzustellen, das die Nachteile der bekannten technischen Lösungen vermeidet.
Erfindungsgemäß wird diese Aufgabe dadurch gelöst, daß in dem Verfahren ein Stamm eines gut sporulierenden Mikroorganismus der Art Streptomyces peucetius, vorzugsweise der Stamm Streptomyces peucetius var. caesius 601 F. I., eingesetzt wurde. Als geeignet wurde der Stamm F 23/135 gefunden, der in der ZIMET-Hinterlegungsstelle für Mikroorganismen im Zentralinstitut für Mikrobiologie und experimentelle Therapie der Akademie der Wissenschaften der DDR, 6900 Jena, Beutenbergstraße 11 unter der Registriernummer ZIMET 43810 hinterlegt wurde. Dieser Mikroorganismus, der es gestattet, Aklanonsäure aus leicht zugänglichen Rohstoffen mit guter Ausbeute herzustellen, konnte überraschenderweise nach Mutagenbehandlung aus einem Streptomyceten-Stamm, der als Bildner von ε-Rhodomycinon und Daunomycinonglykosiden bekannt war, isoliert werden. Der in der vorliegenden Erfindung benutzte Mikroorganismus F 23/135 zeigt sehr gute Sporulationsfähigkeit. Diese Eigenschaft wirkt sich vorteilhaft für Stammerhaltung, Stammanzucht und genetische Bearbeitung des Produktbildners aus.
Die Kultivierung des Stammes sowie seiner Varianten erfolgt unter aeroben und sterilen Bedingungen. An Erde getrocknetes Sporenmaterial wird auf geeignete Agarnährböden und nachfolgend in flüssige, vorher sterilisierte Nährmedien geimpft, und das entstehende Mycel wird in an sich bekannter Weise bei einer Temperatur zwischen'25 und 340C, vorzugsweise bei 280C, über einen Zeitraum von 2 bis 6 Tagen, vorzugsweise 4 Tagen, bei einer Azidität kultiviert, die zu Beginn des Fermentationsprozesses zwischen pH; 6,2 und pH 7,0 und am Ende des Prozesses zwischen pH 7,5 und pH 8,3 liegt. Das Nährmedium besteht aus Kohlenstoff- und Stickstoffquelle sowie aus organischen Salzen. Als Kohlenstoffquelle können Stärke, Glukose, Glyzerin, Dextrin, Mannit, Saccharose, Sojamehl und Sojaöl verwendet werden. Als Stickstoffquelle kommen außer den o. g. stickstoffhaltigen Substraten auch Trockenhefe, Fleischpepton und Casein in Frage. Gute Ergebnisse können bei Zusatz von Mineralsalzen erzielt werden. Letztere begünstigen den Verlauf der Fermentation in Abhängigkeit vom eingesetzten Nährmediumi.. tn komplexen Medien, die verschiedene Mehle enthalten, haben sich Zusätze von Kalziumkarbonat, Natriumphospfiat bzw. Kaliumphosphat als vorteilhaft erwiesen.
Die Isolierung der Aklanonsäure erfolgt mit an sich bekannten Methoden durch Extraktion mit organischen Lösungsmitteln, Fällung mit Petroläther und anschließende chromatographische Reinigung. Die auf diese Weise isolierte, in gelb-orange-farbene Nadeln kristallisierende Substanz wurde im Vergleich mit authentischer Aklanonsäure analysiert:
a) Dünnschichtchromatographie auf Merck-DC-Alufolien Kieselgel 60 F254 gepuffert mit 0,5 N Oxalsäure; System: Chloroform-Aceton/10:2). Gleiches chromatographisches Verhalten wie Aklanonsäure. Rf: 0,51.
b) Massenspektrometrie: Das Massenspektrum der Substanz ist identisch mit dem Massensprektrum, das bei Prüfung von authentischer Aklanonsäure erhalten wird. (Eckardt, K. et al., 1985. J. Antibiot. 38,1034-1039).
c) 1H-NMR-Spektrometrie: Das^-NMR-Spektrum der Substanz wies alle Signalein charakteristischer Lage auf, die auch im Spektrum von Aklanonsäure gefunden wurden.
d) Umlagerung zu Aklanon: Die Substanz wurde in an sich bekannter Weise (Eckardt, K. et al., 1985. J. Antibiot. 38,1034-1039) in Dimethylsulfoxid gelöst und bei Zimmertemperatur belassen. Als Umlagerungsprodukt wurde Aklanon erhalten, welches durch Chromatographie mit Standard-Material identifiziert wurde.
e) Infrarotspektroskopie: Die Infrarotspektren der erfindungsgemäß hergestellten Substanz und authentischer Aklanonsäure sind identisch.
Somit konnten mit den eingesetzten Methoden keine Unterschiede zwischen der erfindungsgemäß hergestellten Substanz und authentischer Aklanonsäure gefunden werden.
Durch die nachfolgenden Ausführungsbeispiele soll die Erfindung erläutert, jedoch nicht begrenzt werden.
1. Zwei öOOml-Steilbrustflaschen enthalten je 80 ml des folgenden Vorzucht-Mediums:
Glukose 1,5%
Sojamehl . 1,5%
Natriumchlorid 0,5%
Kalziumkarbonat 0,1 %
Kaliumhydrogenphosphat 0,3%
in Leitungswasser
Sterilisierung: 35 Min bei 110°C. Nach der Sterilisierung liegt die Azidität bei pH 6,3.
Jede Steilbrustflasche wird mit einer Sporensuspension beimpft, welche mit steriler, isotonischer Kochsalzlösung von einer im Reagenzglas auf folgendem Anzucht-Nährboden gezüchteten 10 bis 14 Tage alten Kultur des Stammes F 23/135 hergestellt wird:
Hafermehl 2%
Agar-Agar 2%
in Leitungswasser
Sterilisierung: 40min bei 12O0C. Nach der Sterilisierung wird die Azidität auf pH 7,0 eingestellt.
Die beimpften Vorzucht-Kulturen werden 48 Stunden bei 280C auf einem Schütteltisch mit einer Frequenz von 180 U/min bebrütet. 8 ml einer so bebrüteten Vorzucht-Kultur dienen zur Beimpfung von 500ml-Steilbrustflaschen, die je 80 ml des folgenden Produktionsmediums enthalten:
Glukose 2,0%
Sojamehl 2,0%
Natriumchlorid 0,5%
Kalziumkarbonat 0,3%
in Leitungswasser
Sterilisierung: 35min bei 11O0C. Die Azidität beträgt nach der Sterilisation pH 6,3.
Die Temperatur während der Fermentation liegt bei 280C und die Schüttelfrequenz bei 180 U/min. Nach 72 bis96stündiger Fermentation wird die höchste Ausbeute an Aklanonsäure erreicht. Von der so gewonnenen Kulturlösung wird ohne vorherige Veränderung des pH-Wertes das Mycel abgetrennt und mit organischen Lösungsmitteln, vorzugsweise Aceton, extrahiert. Der Extrakt wird nach dem Konzentrieren mit Wasser versetzt und bis zum Farbumschlag nach gelb angesäuert. Nunmehr wird die Substanz durch Zugabe von organischen mit Wasser nicht mischbaren Lösungsmitteln erneut extrahiert und aus den Extraktkonzentraten durch Zugabe von Petroläther ausgefällt. Durch Abfiltrieren und Waschen mit Petroläther w]rd Aklanonsäure als gelbbraunes Pulver erhalten, das durch Säulenchromatographie weiter gereinigt werden kann.
2. Mit einer Kultur des Stammes F 23/135 von einem halbfesten Nährboden, wie in Beispiel 1 beschrieben, beimpft man 400 ml des im Beispiel 1 angeführten flüssigen Vorzucht-Mediums, welches in einem 2I-Glaskolben enthalten ist. Man bebrütet 48 Stunden bei 280C auf einem Schüttelgerät mit einer Frequenz von 180 U/min. Die so erhaltenen 400 ml Kulturbrühe dienen zur Beimpfung von 2Ol des im Beispiel 1 beschriebenen Produktionsmediums, dar in einem 321-Glasfermentor enthalten ist. Während der Fermentation, die mit einer Rührgeschwindigkeit von 400 U/min und einer Luftzufuhr von 15 l/min ausgeführt werden kann, wird die Schaumbildung durch Zusatz kleiner Mengen von Sonnenblumenöl oder silikonhaltiger Schaumschutzmittel kontrolliert. Die Aufarbeitung wird wie im Beispiel 1 angegeben durchgeführt.
3. Mit den im Beispiel 1 beschriebenen Medien wird die Vorzucht zunächst für 24 Stunden in einer 500 ml-Steilbrustflasche mit 80 ml Inhalt und daran anschließend für weitere 24 Stunden im gleichen Medium in einem 2I-Glaskolben mit 400 ml Inhalt durchgeführt, ehe ein 4001-V2A-Stahl-Tank beimpft werden kann, der das im Beispiel 1 beschriebene Produktionsmedium enthält. Die Rührgeschwindigkeit beträgt 280U/min und die Luftzufuhr 400l/min. Die reine Aklanonsäure wird aus der Fermentationsbrühe durch die im Beispiel 1 und 2 angegebenen Verfahrensschritte gewonnen.
Claims (3)
1. Verfahren zur Herstellung von Aklanonsäure auf mikrobiologischem Wege, gekennzeichnet dadurch, daß ein Stamm eines gut sporulierenden Stammes der Art Streptomyces peucetius unter aeroben Bedingungen in flüssigen Nährmedien, die eine Kohlenstoff-, eine Stickstoffquelle sowie Mineralsalze enthalten, bei einer Temperatur von 25 bis 34°C, während eines Zeitraumes von 2 bis 6 Tagen, kultiviert und die gebildete Aklanonsäure aus dem Mycel mittels üblicher Lösungsmittel extrahiert, nachfolgend mit üblichen Methoden konzentriert, ausgefällt und chromatographisch gereinigt wird.
2. Verfahren nach Punkt 1, gekennzeichnet dadurch, daß der verwendete Mikroorganismus aus einem Stamm der Art Streptomyces peucetius var. caesius 601 F. I. gewonnen wurde.
3. Verfahren nach Punkt 1 und 2, gekennzeichnet dadurch, daß der Stamm F23/135 eingesetzt wird, der durch Mutagenbehandlung aus einem als Bildnervon ε-Rhodomycinon und Daunomycinonglykosiden bekannten Stamm der Art Streptomyces peucetius erhalten wurde.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DD29323786A DD251574A1 (de) | 1986-07-31 | 1986-07-31 | Verfahren zur herstellung von aklanonsaeure |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DD29323786A DD251574A1 (de) | 1986-07-31 | 1986-07-31 | Verfahren zur herstellung von aklanonsaeure |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| DD251574A1 true DD251574A1 (de) | 1987-11-18 |
Family
ID=5581504
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| DD29323786A DD251574A1 (de) | 1986-07-31 | 1986-07-31 | Verfahren zur herstellung von aklanonsaeure |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| DD (1) | DD251574A1 (de) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE10065606A1 (de) * | 2000-12-26 | 2002-06-27 | Knoell Hans Forschung Ev | Altamiramycin, Verfahren zu dessen Herstellung und dessen Verwendung |
| WO2006111561A1 (en) * | 2005-04-21 | 2006-10-26 | Dsm Ip Assets B.V. | Improved microbial production of anthracyclins |
-
1986
- 1986-07-31 DD DD29323786A patent/DD251574A1/de not_active IP Right Cessation
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE10065606A1 (de) * | 2000-12-26 | 2002-06-27 | Knoell Hans Forschung Ev | Altamiramycin, Verfahren zu dessen Herstellung und dessen Verwendung |
| WO2006111561A1 (en) * | 2005-04-21 | 2006-10-26 | Dsm Ip Assets B.V. | Improved microbial production of anthracyclins |
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