CZ28908U1 - Imunochromatografický test syntetických kanabinoidu - Google Patents

Imunochromatografický test syntetických kanabinoidu Download PDF

Info

Publication number
CZ28908U1
CZ28908U1 CZ2015-31576U CZ201531576U CZ28908U1 CZ 28908 U1 CZ28908 U1 CZ 28908U1 CZ 201531576 U CZ201531576 U CZ 201531576U CZ 28908 U1 CZ28908 U1 CZ 28908U1
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
conjugate
membrane
strip
antibody
test
Prior art date
Application number
CZ2015-31576U
Other languages
English (en)
Inventor
Martin Kuchař
Anna Šuláková
Lucie Fojtíková
Oldřich Lapčík
Michal Maryška
Original Assignee
Vysoká škola chemicko-technologická v Praze
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Vysoká škola chemicko-technologická v Praze filed Critical Vysoká škola chemicko-technologická v Praze
Priority to CZ2015-31576U priority Critical patent/CZ28908U1/cs
Publication of CZ28908U1 publication Critical patent/CZ28908U1/cs

Links

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Description

Analýza drog v tělních tekutinách
Dosavadní stav techniky
Na drogové scéně se v posledních letech kromě tradičních drog (kokain, opiáty, amfetaminy, kanabinoidy) objevují také nové syntetické drogy (NSD). Důvodem je snaha výrobců a distributorů obejít stávající legislativní normy, v nichž jsou omamné a psychotropní látky vymezeny obvykle taxativně. Na ilegální trh se tak dostávají analoga známých látek s psychotropním potenciálem, která dosud nejsou uvedena na seznamu ilegálních látek, nebo jejichž prekurzory nejsou monitorovanými substancemi. Hlavní nebezpečí spojené s užíváním těchto nových syntetických drog (NSD) tkví v nedostatku informací o jejich farmakokinetickém a toxikologickém chování, neboť tyto látky neprošly žádnými klinickými testy.
Početně nejbohatší a ze strukturního hlediska značně rozmanitou skupinou NSD jsou syntetické kanabinoidy. Tyto látky se váží na kanabinoidní receptory, což jsou s G-proteinem spřažené transmembránové receptory. Podtyp receptoru CB1 se nachází především v centrální nervové soustavě, podtyp CB2 je exprimován zejména v buňkách imunitního systému. Endokanabinoidní systém dodnes nebyl zcela pochopen. Je však známo, že endogenní kanabinoidy, jejichž nejznámějším zástupcem je anandamid, ovlivňují cítění bolesti, náladu, paměť, ale i chuť k jídlu. Ke kanabinoidním receptorům se váže též celá řada exogenních sloučenin, k nej významnějším patří aktivní složky konopí A9-tetrahydrokanabinol (THC) a kanabidiol (CBD), které jsou parciálními agonisty obou zmíněných podtypů receptorů. Syntetické kanabinoidy jsou plní agonisté kanabinoidních receptorů s mnohem dramatičtějšími psychickými účinky. Zaznamenána byla celá řada intoxikací, které měly v některých případech i fatální důsledky. Popsány jsou i případy indukované psychózy. (Banister SD, Wilkinson SM, Longworth M, Stuart J, Apetz N, English K, Brooker L, Goebel C, Hibbs DE, Glass M, Connor M, McGregor IS, Kassiou M. The Synthesis and Pharmacological Evaluation of Adamantane-Derived Indoles: Cannabimimetic Drugs of Abuse. Chem. Neurosci. 2013;4:1081-92).
Tradiční drogy lze detekovat pomocí komerčních imunochemických testů založených na selektivní reakci protilátky a antigenu, kterým je v tomto případě hledaná omamná či psychotropní látka. K detekci NSD však tyto testy použít nelze. (Páleníček T, Kuchař M. Je možná detekce a identifikace nových syntetických drog (NSD) pomocí orientačních testů? Adiktologie 2011;11:208-14). Odhalit intoxikaci osob novými syntetickými drogami je možné pomocí metod klinické biochemie, a to zejména analýzou pomocí plynové chromatografie s hmotnostním detektorem (LC-MS), což je poměrně náročné jak na přístroje, tak na odbornost obsluhy. Sestavení přístrojově nenáročných, jednoduchých, uživatelsky příjemných imunochemických testů na principu LFIA (Lateral Flow Immunochromatographic Assay) by umožňovalo daleko rychlejší a levnější orientační detekci látek v biologickém materiálu ve zdravotnictví nebo při dopravních kontrolách řidičů.
Přestože existuje mnoho evaluovaných imunochemických testů pro stanovení tradičních kanabinoidů, možnosti imunoanalýzy syntetických kanabinoidů jsou omezené. V literatuře jsou popsány příklady metod pro ELISA (Enzyme-Linked ImmunoSorbent Assay) stanovení JWH-018 a JWH250 v krvi, krevním séru a moči (Amtson A, Ofsa B, Lancaster D, Simon JR, McMullin M, Logan B. Validation of a Novel Immunoassay for the Detection of Synthetic Cannabinoids and Metabolites in Urine Specimens. J. Anal. Toxicol. 2013; 37:284-90), JWH-200 ve slinách (Rodrigues WC, Catbagan P, Rana S, Wang G, Moore C. Detection of Synthetic Cannabinoids in Oral Fluid Using ELISA and LC-MS-MS. J. Anal. Toxicol. 2013; 37:526-33) a HEIA (Homogenous Enzyme ImmunoAssay) stanovení JWH-018 A-pentanové kyseliny, což je významný metabolit JWH-018, v moči (Bames AJ, Young S, Spinelli E, Martin TM, Klette KL, Huestis MA. Evaluation of a homogenous enzyme immunoassay for the detection of synthetic cannabinoids in urine. Forensic Sci Int. 2014;241:27-34).
CZ 28908 Ul
Jako nosné proteiny se používají hovězí sérový albumin (BSA), ovalbumin (OVA), hovězí thyroglobumin (BTG), popř. další proteiny vhodných vlastností. Konjugáty se připravují reakcí aktivované formy haptenu (reaktivní anhydridy či estery) s ε-aminoskupinami lysinových zbytků proteinu za vytvoření amidových vazeb. Konjugací se dosáhne statisticky náhodného obsazení lysylů přítomných v proteinu.
Podstata technického řešení
Byly sestaveny imunochemické testovací proužky formátu LFIA (Lateral-Flow Immunochromatographic Assay) pro rychlou, uživatelsky příjemnou analýzu přítomnosti kanobinoidních látek v tělních tekutinách.
Pro vývoj metody byl použit [l-[2-(4-morfolinyl)ethyl]-lH-indol-3-yl]-l-nafthalenyl-methanon (JWH200), ze kterého byl vytvořen hapten, který byl připojen k nosnému proteinu pro vytvoření imunogenu. Pro tyto účely byl jako vhodný nosný protein vybrán hovězí sérový albumin (BSA). Při tvorbě konjugátů byla využita metoda aktivovaného esteru, při níž je hapten reakcí s Ν,Ν’dicyklohexylkarbodiimidem (DCC) a A-hydroxysukcinimidem (NHS) nejprve převeden na nestabilní derivát ř?-acylisomočoviny, a poté na aktivovaný ester. Vlastní konjugační reakce, při níž dochází k tvorbě amidové vazby mezi karboxylovou skupinou haptenu a primární aminoskupinou aminokyseliny lysinu v BSA, pak probíhala v reverzním micelámím prostředí anionaktivního tenzidu. Z laboratorních zvířat imunizovaných imunogeny lze získat polyklonální králičí protilátky a uplatnit je při vývoji imunoanalytických metod stanovení kanabinoidních látek.
Takto vytvořeným imunogenem byli imunizováni laboratorní králíci, ze kterých byla získána polyklonální králičí protilátka, která byla označena PL199 Protilátka byla použita pro sestavení kvalitativního testovacího proužku na přítomnost kanabinoidních látek v tělních tekutinách, které obsahují strukturu:
Testovací proužky se skládají z: podložky, membrány, která slouží pro samotnou chromatografickou analýzu a je situována uprostřed podložky, ve spodní části ji překrývá proužek pro konjugát a ten je překrýván proužkem pro vzorek, který je připevněn na spodním konci podložky. Na horním konci podložky je připevněn absorpční proužek, který překrývá membránu v horní části.
Na proužek pro konjugát je nanesen konjugát GAR (kozí protilátka proti králičí protilátce) značený zlatými částicemi o velikosti 40 nm v množství 1 mg/ml ve směsi s králičí polyklonální protilátkou (PL199) proti haptenu AŠ089, čímž vznikne směs konjugátů GAR-Au a PL199GAR-Au. Koloidní zlato v konjugátu způsobuje červené zabarvení linek.
Membrána obsahuje dvě linky, kontrolní a testovací. Je-li analýza na sledované drogy negativní, dojde ke zviditelnění obou linek. Zda je vzorek tělních tekutin bez obsažených drog, dojde ke zviditelnění obou linek. Pokud je vzorek pozitivní, dojde ke zvýraznění pouze kontrolní linky.
V testovací lince je obsažen imobilizační konjugát haptenu AŠ089-200 o systematickém názvu: 2-{4-[l-(2-(4-morfolino)ethyl)-17/-indol-3-ylkarbonyl]naftalen-l-yloxy}octová kyselina s hovězím sérovým albuminem (AŠ089-BSA), v množství 150 až 200 pg/ml pro analýzu ve slinách
CZ 28908 Ul a 100 až 150 pg/ml pro analýzu v moči. V kontrolní lince je obsažena DAG (terciální oslí protilátka proti kozí protilátce) s koncentrací 50 až 100 pg/ml.
Odebrané tělní tekutiny, které jsou vyšetřovány na přítomnost drogy, jsou aplikovány na proužek pro vzorek. Po vyvzlínání do absorpčního proužku je imunochromatografie ukončena. Během chromatografie vzlíná droga z tělních tekutin ke konjugátům GAR-Au a PL199-GAR-Au, naváže se na, pro něj specifickou, protilátku PL199, čímž vysytí její vazebná místa pro hapten. Konjugát PL199-GAR-Au se tedy na testovací linku již nemá jak navázat. Konjugát GAR-Au se naváže na DAG na kontrolní lince, čímž se ověří, že chromatografie probíhala správně. Zobrazí-li se pouze jedna linka, vzorek je pozitivní. Pokud je vzorek negativní, naváže se konjugát PL199-GAR-Au na hapten imobilizačního konjugátu (AŠ089-BSA), který je nanesený na testovací lince. Tak pozorujeme zviditelnění obou proužků.
Objasnění výkresů
Obr. 1: Schéma testovacího proužku
Obr. 2: Princip metody
Obr. 3: Znázornění rozdílu mezi pozitivní a negativní kontrolou
Obr. 4: Struktura haptenu [l-[2-(4-morfolinyl)ethyl]-lH-indol-3-yl]-l-nafthalenyl-methanon Obr. 5: Struktura[ 1 -[2-(4-morfolinyl)ethyl]-1 H-indol-3 -yl] -1 -nafthalenyl-methanon (JWH200)
Obr. 6: Výsledek analýzy Příkladu 3 (jedna linka na membráně-negativní výsledek)
Obr. 7: Výsledek analýzy Příkladu 4 (dvě linky na membráně-pozitivní výsledek)
Obr. 8: Výsledek analýzy Příkladu 5 (jedna linka na membráně-negativní výsledek)
Obr. 9: Výsledek analýzy Příkladu 6 (dvě linky na membráně-pozitivní výsledek)
Obr. 10: Výsledek analýzy Příkladu 7 (jedna linka na membráně-pozitivní výsledek)
Obr. 11: Výsledek analýzy Příkladu 8 (jedna linka na membráně-pozitivní výsledek)
Příklady uskutečnění technického řešení
Příklad 1
Testovací proužek pro detekci kanabinoidních látek ve slinách
Standard JWH200 (zás. roztok: 1 mg/ml) v 99 % EtOH
Imobilizační konjugát AŠ089-BSA 7 (zás. roztok: 1 mg/ml) v 0,01 mol/1 karbonát-bikarbonátovém pufru
Králičí polyklonální protilátka PAbl99 13 (zás. roztok: 1 mg/ml) v 0,01 mol/1 fosfátovém pufru s přídavkem soli (PBS)
DAG 8 (zás. roztok 1 mg/ml) v deionizované vodě
GAR 14 ( zás. roztok 1 mg/ml) v deionizované vodě
Gold Colloid 40 nm OD 5 15 - roztok zlatých částic
Velikost částic (nm) OD 520nm Počet částic /ml Počet molů částic/ml Molámí koncentrace částic Hmotnost zlata /ml Moly zlata/1
40 5 4,50x10 7,4726xl0’13 7,4726x104U 2,91x1ο'04 1,48x10'03
CZ 28908 Ul
Příprava membrány 3- uzavřený formát
Byla ustřižena membrána 3 (Millipore HiFlowPlus 75) o délce 20 cm a přilepena na podložku 5 do prostřední části.
Zásobní roztoky imobilizačního konjugátu AŠ089-BSA 7 o koncentraci 180 pg/ml a DAG 8 o koncentraci 85 pg/ml v 5 mol/1 borátovém pufru byly naneseny na membránu 3 rychlostí 8 μΐ/s v objemu 40 μ1/20 cm membrány 3, a to imobilizační konjugát AŠ089-BSA 7 na testovací linku 11 a DAG 8 na kontrolní linku 10. Následovala inkubace membrány 3 při 37 °C 10 hodin.
Na podložku 5 a přes homí konec membrány 3 byl nalepen absorpční proužek 4 z celulózových vláken a podložka byla nastříhána na řezačce na proužky o velikosti 0,4 cm.
Příprava proužku I pro vzorek 9 a proužku 2 pro konjugát
Byl připraven blokační pufr (10 ml):
Složka Finál. konc. Množství pro přípravu
Borátový pufr 0,2 mol/1 10 ml
BSA 1% 0,1 g
Tween 20 1% 100 μΐ neřeď. Tweenu
Sacharóza 1% 0,1 g
Proužek 2 pro konjugát a proužek I pro vzorek 9 z polyesteru PE VL98 byly nastříhány na malé kousky (proužek 2 pro konjugát 0,4 x 1 cm, proužek I pro vzorek 0,4 x 1,5 cm). Následně byly vsádkově namočeny do blokačního pufru a sušeny na sušící mřížce po dobu 1 h při 37 °C. Tento proces namočení a sušení byl prováděn 2x.
Příprava konjugátu protilátky GAR 14 se zlatými částicemi (GAR 14 - Au 15)
Použité chemikálie:
zlaté částice 40 nm, OD 515 1 ml mmol/1 borátový pufr 2 ml
GAR 14 100 pg (100μ1, konc. 1 pg/μΐ)
GAR 14 byl aplikován po malých kapkách k roztoku zlatých částic 15 ředěných v borátovém pufru za pomalého míchání. Následovala inkubace směsi při 37 °C po dobu 2 h, za stálého míchání. Připravený konjugát byl rozdělen na 2 díly a centrifugován (5 000 x g, 10 °C, 75 min). Supernatant (tekutina nad sedimentem) byl odebrán a pelety resuspendovány v 1 ml promývacího pufru. Byla provedena centriíugace (3x), (13640 x g, 10 °C, 15 min). Vždy byl odpipetován supematant a pelety resuspendovány v 1 ml promývacího pufru. Před třetí centrifugací byly obě pelety spojeny a resuspendovány v 1 ml promývacího pufru. Po centrifugací byla peleta resuspendována v 10 ml skladovacího pufru. Přečištěný konjugát GAR 14 - Au 15 (zás. roztok 200 pg/ml) byl skladován při 4 °C ve skleněné lahvičce s alobalem.
Smícháním reagencií byl připraven MasterMix:
GAR 14-Au 15 10 μΐ
Reakční pufr 18 μΐ
PAb (PL199, lmg/ml) 13 2 μΐ
MasterMix byl kapán na proužek 2 pro konjugát o objemu 40 μΐ/kus. Poté byl sušen na síťce při teplotě 37 °C po dobu 2 h až 16 h. Připravený proužek 2 pro konjugát byl přilepen k membráně 3 s nanesenými imunoreagenciemi a následně přes jehož okraj byl k podložce 3 přilepen proužek 1 pro vzorek 9.
CZ 28908 Ul
5. Příprava pufřů a roztoků pro metodu LFIA
0,1 mol/1 Borátový pufr, pH 8,8
0,1 mol/1 borax (tetrahydroboritan sodný dodekahydrát)
38,14 g boraxu 1 000 ml deionizované vody
0,1 mol/1 kyselina boritá 6,17 g kyseliny borité 1 000 ml deionizované vody mmol/1 Borátový pufr, pH 8,8 ml 0,1 mol/1 borátového pufru 95 ml deionizované vody
2% Roztok NaN3
0,2gNaN3 ml deionizované vody Skladovací pufr ml 0,1 mol/1 borátového pufru 0,1 g BSA
0,1 ml NaN3 (2% zásobní roztok)
Promývací pufr
100 ml 0,1 mol/1 borátového pufru 1 gBSA ml NaN3 (2% zásobní roztok)
Reakční pufr ml 0,05 mol/1 PBS 0,05 g BSA 0,05 g sacharóza 500 μΐ 10% Tween 20
Příklad 2
Testovací proužek pro detekci kanabinoidních látek v moči
Standard JWH200 (zás. roztok: 1 mg/ml) v 99 % EtOH
Imobilizační konjugát JWH200-BSA 7 (zás. roztok: 1 mg/ml) v 0,01 mol/1 karbonát-bikarbonátovém pufru
Králičí polyklonální protilátka PAbl99 13 (zás. roztok: 1 mg/ml) v 0,01 mol/l fosfátovém pufru s přídavkem soli (PBS)
DAG 8 (zás. roztok 1 mg/ml) v deionizované vodě
GAR 14 ( zás. roztok 1 mg/ml) v deionizované vodě
Gold Colloid 40 nm OD 5 15 - roztok zlatých částic
Velikost částic (nm) OD 520nm Počet částic /ml Počet molů ěástic/ml Molámí koncentrace částic Hmotnost zlata /ml Moly zlata/1
40 5 4,50x10“ 7,4726xl0’13 7,4726xl0'lu 2,91x1ο’04 l,48xl0'°3
CZ 28908 Ul
Příprava membrány 3 - uzavřený formát
Byla ustřižena membrána 3 (Millipore HiFlowPlus 75) o délce 20 cm a přilepena na podložku 5 do prostřední části.
Zásobní roztoky imobilizačního konjugátu JWH200-BSA 7 o koncentraci 130 pg/ml a DAG 8 o koncentraci 85 pg/ml v 5 mol/1 borátovém pufru byly naneseny na membránu 3 rychlostí 8 μΐ/s v objemu 40 μ1/20 cm membrány 3, a to imobilizační konjugát JWH200-BSA 7 na testovací linku H a DAG 8 na kontrolní linku 10. Následovala inkubace membrány 3 při 37 °C 10 hodin.
Na podložku 5 a přes homí konec membrány 3 byl nalepen absorpční proužek 4 z celulózových vláken a podložka byla nastříhána na řezačce na proužky o velikosti 0,4 cm.
Příprava proužku 1 pro vzorek 9 a proužku 2 pro konjugát
Byl připraven blokační pufr (10 ml):
Složka Finál. konc. Množství pro přípravu
Borátový pufr 0,2 mol/1 lOml
BSA 1% 0,1 g
Tween 20 1% 100 μΐ neřeď. Tweenu
Sacharóza 1% 0,1 g
Proužek 2 pro konjugát a proužek 1 pro vzorek 9 z polyesteru PE VL98 byly nastříhány na malé kousky (proužek 2 pro konjugát 0,4 x 1 cm, proužek 1 pro vzorek 0,4 x 1,5 cm). Následně byly vsádkově namočeny do blokačního pufru a sušeny na sušící mřížce po dobu 1 h při 37 °C. Tento proces namočení a sušení byl prováděn 2x.
Příprava konjugátu protilátky GAR 14 se zlatými částicemi (GAR 14 - Au 15)
Použité chemikálie:
zlaté částice 40 nm, OD 5 15 1 ml mmol/1 borátový pufr 2 ml
GAR 14 100 pg (100μ1, konc. 1 pg/μΐ)
GAR 14 byl aplikován po malých kapkách k roztoku zlatých částic 15 ředěných v borátovém pufru za pomalého míchání. Následovala inkubace směsi při 37 °C po dobu 2 h, za stálého míchání. Připravený konjugát byl rozdělen na 2 díly a centrifugován (5 000 x g, 10 °C, 75 min). Supematant (tekutina nad sedimentem) byl odebrán a pelety resuspendovány v 1 ml promývacího pufru. Byla provedena centrifugace (3x), (13640 x g, 10 °C, 15 min). Vždy byl odpipetován supematant a pelety resuspendovány v 1 ml promývacího pufru. Před třetí centrifugací byly obě pelety spojeny a resuspendovány v 1 ml promývacího pufru. Po centrifugací byla peleta resuspendována v 10 ml skladovacího pufru. Přečištěný konjugát GAR 14 - Au 15 (zás. roztok 200 pg/ml) byl skladován při 4 °C ve skleněné lahvičce s alobalem.
Smícháním reagencií byl připraven MasterMix:
GAR14-Aul5 20 μΐ
Reakční pufr 18 μΐ
PAb (PL199, lmg/ml) 13 2 μΐ
MasterMix byl kapán na proužek 2 pro konjugát o objemu 40 μΐ/kus. Poté byl sušen na síťce při teplotě 37 °C po dobu 2 h až 16 h. Připravený proužek 2 pro konjugát byl přilepen k membráně 3 s nanesenými imunoreagenciemi a následně přes jehož okraj byl k podložce 3 přilepen proužek 1 pro vzorek 9.
CZ 28908 Ul
5. Příprava pufřů a roztoků pro metodu LFIA
0,1 mol/1 Borátový pufr, pH 8,8
0,1 mol/1 borax (tetrahydroboritan sodný dodekahydrát)
38,14 g boraxu 1 000 ml deionizované vody
0,1 mol/1 kyselina boritá 6,17 g kyseliny borité 1 000 ml deionizované vody mmol/1 Borátový pufr, pH 8,8 ml 0,1 mol/1 borátového pufru 95 ml deionizované vody
2% Roztok NaN3
0,2gNaN3 ml deionizované vody Skladovací pufr ml 0,1 mol/1 borátového pufru 0,1 gBSA
0,1 ml NaN3 (2% zásobní roztok)
Promývací pufr
100 ml 0,1 mol/1 borátového pufru 1 gBSA ml NaN3 (2% zásobní roztok)
Reakční pufr ml 0,05 mol/1 PBS 0,05 g BSA 0,05 g sacharóza 500 μΐ 10% Tween 20
Příklad 3
Analýza reálného vzorku
Na proužek 1 pro vzorek 9 testovacího proužku do pozice A bylo nakapáno 100 μΐ reakční směsi (50 μΐ reakční pufr + 50 μΐ vzorku slin) a do pozice B bylo nakapáno 100 μΐ reakčního pufru. Testovací proužek se nechal po dobu 12 minut pri laboratorní teplotě. Poté byly na membráně 3 odečteny dvě linky v pozici A, čímž bylo potvrzeno, že testovaný vzorek slin byl negativní na přítomnost drogy a v pozici B byly taktéž odečteny dvě linky, což ověřuje funkčnost testu.
Příklad 4
Analýza reálného vzorku
Na proužek I pro vzorek 9 testovacího proužku do pozice A bylo nakapáno 100 μΐ reakční směsi (50 μΐ reakční pufr + 50 μΐ vzorku slin) a do pozice B bylo nakapáno 100 μΐ reakčního pufru. Testovací proužek se nechal po dobu 10 minut při laboratorní teplotě. Poté byla na membráně 3 odečtena jedna linka v pozici A, čímž bylo potvrzeno, že testovaný vzorek slin byl pozitivní na přítomnost drogy a v pozici B byly odečteny dvě linky, což ověřuje funkčnost testu.
. 7 .
CZ 28908 Ul
Příklad 5
Analýza reálného vzorku
Na proužek i pro vzorek 9 testovacího proužku do pozice A bylo nakapáno 100 μΐ reakční směsi (50 μΐ reakční pufr + 50 μΐ vzorku moči) a do pozice B bylo nakapáno 100 μΐ reakěního pufru. Testovací proužek se nechal po dobu 12 minut při laboratorní teplotě. Poté byly na membráně 3 odečteny dvě linky v pozici A, čímž bylo potvrzeno, že testovaný vzorek slin byl negativní na přítomnost drogy a v pozici B byly odečteny dvě linky, což ověřuje funkčnost testu.
Příklad 6
Analýza reálného vzorku
Na proužek 1 pro vzorek 9 testovacího proužku bylo do pozice A nakapáno 100 μΐ reakční směsi (50 μΐ reakční pufr + 50 μΐ vzorku moči) a do pozice B bylo nakapáno 100 μΐ reakěního pufru. Testovací proužek se nechal po dobu 10 minut při laboratorní teplotě. Poté byla na membráně 3 odečtena jedna linka v pozici A, čímž bylo potvrzeno, že testovaný vzorek slin byl pozitivní na přítomnost drogy a v pozici B byly odečteny dvě linky, což ověřuje funkčnost testu.
Příklad 7
Analýza reálného vzorku
Byl připraven vzorek pro ověření funkčnosti testovacího proužku. Sliny laborantky byly uměle kontaminovány JWH-200 v koncentraci 5 pg/ml.
Na proužek 1 pro vzorek 9 testovacího proužku bylo do pozice A nakapáno 100 μΐ reakční směsi (50 μΐ reakční pufr + 50 μΐ vzorku slin) a do pozice B bylo nakapáno 100 μΐ reakěního pufru. Testovací proužek se nechal po dobu 15 minut při laboratorní teplotě. Poté byla na membráně 3 odečtena jedna linka v pozici A, čímž bylo potvrzeno, že testovaný vzorek slin byl pozitivní na přítomnost drogy a v pozici B byly odečteny dvě linky, což ověřuje funkčnost testu.
Příklad 8
Analýza reálného vzorku
Analýza reálného vzorku
Byl připraven vzorek pro ověření funkčnosti testovacího proužku. Moč laborantky byla uměle kontaminována JWH-200 v koncentraci 5 pg/ml.
Na proužek 1 pro vzorek 9 testovacího proužku bylo do pozice A nakapáno 100 μΐ reakční směsi (50 μΐ reakční pufr + 50 μΐ vzorku slin) a do pozice B bylo nakapáno 100 μΐ reakěního pufru. Testovací proužek se nechal po dobu 5 minut při laboratorní teplotě. Poté byla na membráně 3 odečtena jedna linka v pozici A, čímž bylo potvrzeno, že testovaný vzorek slin byl pozitivní na přítomnost drogy a v pozici B byly odečteny dvě linky, což ověřuje funkčnost testu.
Průmyslová využitelnost
Terénní analýza návykových a psychotropních látek, chromatografické metody, LFIA

Claims (6)

NÁROKY NA OCHRANU
1. Imunochromatografický test kanabinoidních drog v tenké vrstvě, který obsahuje podložku (5) s přichycenou membránou (3), kterou v homí části překrývá absorpční proužek (4) a ve spodní části proužek (2) pro konjugát, přičemž proužek (2) pro konjugát překrývá proužek (1) pro vzorek (9), pro analýzu látek obsahujících strukturu:
n
CZ 28908 Ul vyznačující se tím, že na membráně (3) je nanesena testovací linka (11), která obsahuje imobilizační konjugát (7) 2-{4-[l-(2-(4-morfolino)ethyl)-l//-indol-3-ylkarbonyl]naftalen-lyloxy}octová kyselina s hovězím sérovým albuminem a kontrolní linka (10), která obsahuje oslí protilátku (8) proti kozí protilátce (14), na proužku (2) pro konjugát je nanesena směs polyklonální králičí protilátky (13) proti imobilizačnímu konjugátu (7) a konjugát kozí protilátky (14) proti králičí protilátce (13) s koloidními zlatými částicemi (15) o velikosti 40 nm.
2. Imunochromatografický test podle nároku 1, vyznačující se tím, že imobilizační konjugát (7) je nanesen v množství 0,2 až 0,4 pg na 1 cm membrány.
3. Imunochromatografický test podle nároku 2, vyznačující se tím, že oslí protilátka (8) proti kozí protilátce (14) je nanesena v množství 0,12 až 0,3 pg na 1 cm membrány.
4. Imunochromatografický test podle nároku 1, vyznačující se tím, že konjugát kozí protilátky (14) s koloidními zlatými částicemi (15) je nanesen v množství 2 až 5 pg na 1 cm membrány.
5. Imunochromatografický test podle nároku 4, vyznačující se tím, že polyklonální králičí protilátka (13) je nanesena v množství 1 až 3 pg na 1 cm membrány.
6. Imunochromatografický test podle nároku laž5, vyznačující se tím, že látky jsou v poměru konjugát kozí protilátky (14) s koloidními zlatými částicemi (15) ku polyklonální králičí protilátce (13) ku imobilizačnímu konjugátu (7) ku oslí protilátce (8) 20:10:2:1.
CZ2015-31576U 2015-09-30 2015-09-30 Imunochromatografický test syntetických kanabinoidu CZ28908U1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ2015-31576U CZ28908U1 (cs) 2015-09-30 2015-09-30 Imunochromatografický test syntetických kanabinoidu

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ2015-31576U CZ28908U1 (cs) 2015-09-30 2015-09-30 Imunochromatografický test syntetických kanabinoidu

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CZ28908U1 true CZ28908U1 (cs) 2015-11-30

Family

ID=54771467

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ2015-31576U CZ28908U1 (cs) 2015-09-30 2015-09-30 Imunochromatografický test syntetických kanabinoidu

Country Status (1)

Country Link
CZ (1) CZ28908U1 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN103314297B (zh) 免疫层析测试条及其制造方法
US7629127B2 (en) Method for the visual detection of specific antibodies by the use of lateral flow assays
JP5133976B2 (ja) プロテアーゼ検出製品
CN1981193B (zh) △-9-四氢大麻酚检测方法
CN111164095B (zh) 用于改进分析物检测的测定方法
US8859265B2 (en) Lateral flow immunoassay device with a more rapid and accurate test result
PT92828B (pt) Metodo de ensaio relativo a receptores de ligandos limite
JP2009518636A (ja) 迅速診断のためのテスト装置
JP2002202307A (ja) イムノクロマトグラフ法
CZ294954B6 (cs) Chromatografické zkušební zařízení pro detekci přítomnosti analyzované složky v krevním vzorku
JP2007248073A (ja) 免疫測定用吸収パッド、免疫測定用ストリップ及び免疫測定装置
KR20200073259A (ko) 대칭 디메틸아르기닌의 검출
CN101435819A (zh) 免疫层析试验用具
US9201065B2 (en) Agglutination assay
KR20120029549A (ko) 신속한 결과 및 향상된 감도를 갖는 측방 유동 면역 분석 디바이스
CN105785041A (zh) 用于定量检测钙卫蛋白的试纸条及其制备方法和钙卫蛋白浓度的测定方法
CN101305282B (zh) 凝集分析法
Park et al. Immunochromatographic analysis of hippuric acid in urine
RU2638812C2 (ru) Мультиплексный иммунохроматографический способ определения циркулирующих иммунокомплексов
WO2016014773A1 (en) Assay for cannabinoids and methods of use thereof
CZ28908U1 (cs) Imunochromatografický test syntetických kanabinoidu
JP4822275B2 (ja) 対照部を有するクロマトグラフィー用試験具
CZ28938U1 (cs) Imunochromatografický test dimethyltryptaminových drog
EP3067700B1 (en) Immunoassay for pregabalin
JP7137168B2 (ja) イムノクロマト用試験片

Legal Events

Date Code Title Description
FG1K Utility model registered

Effective date: 20151130

ND1K First or second extension of term of utility model

Effective date: 20190913

MK1K Utility model expired

Effective date: 20220930