CZ279196B6 - Protinádorové antibiotikum kedarcidin - Google Patents

Protinádorové antibiotikum kedarcidin Download PDF

Info

Publication number
CZ279196B6
CZ279196B6 CS892256A CS225689A CZ279196B6 CZ 279196 B6 CZ279196 B6 CZ 279196B6 CS 892256 A CS892256 A CS 892256A CS 225689 A CS225689 A CS 225689A CZ 279196 B6 CZ279196 B6 CZ 279196B6
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
ala
gly
val
ser
thr
Prior art date
Application number
CS892256A
Other languages
English (en)
Inventor
Sandra June Hofstead
James Andrew Matson
Kin Sing Lam
Salvatore Forenza
James Allen Bush
Koji Tomita
Original Assignee
Bristol-Myers Company
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from US07/323,001 external-priority patent/US5001112A/en
Application filed by Bristol-Myers Company filed Critical Bristol-Myers Company
Publication of CZ225689A3 publication Critical patent/CZ225689A3/cs
Publication of CZ279196B6 publication Critical patent/CZ279196B6/cs

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Protinádorové účinné nové antibiotikum kedarcidin, produkované novým mikroorganismem Streptoalloteichus sp. nov., kmen L585-6, ATCC 53650.ŕ

Description

Vynález se týká protinádorového antibiotika kedarcidin, způsobu jeho přípravy a farmaceutického prostředku pro inhibici růstu nádorů, který ho obsahuje. Vynález se také týká biologicky čisté kultury mikroorganismu Streptoalloteichus sp. nov., kmen L585-6, ATCC 53650, který toto antibiotikum produkuje.
Dosavadní stav techniky
Pro stále velkou četnost výskytu nádorových onemocnění se zkoumají stále nové a nové účinné látky k předcházení a k omezování bujení nádorů. Kromě chemoterapeutik se věnuje velká pozornost i antibiotikům, přičemž jsou protinádorově účinnými příkladně antibiotika neocarzinostatin, macromomycin, largomycin, actinoxanthin a AN-7D. Vynález se právě týká nového antibiotika účinného k potírání nádorového onemocnění.
Podstata vynálezu
Podstatou tohoto vynálezu je antibiotikum kedarcidin, které je polypeptidem s následujícím aminokyselinovým řetězcem
X-ala-ala-val-ser-val-ser-pro-ala-thr-gly-leu-ala-asp-gly-ala-thr-val-thr-val-ser-ala-ser-gly-phe-ala-thr-ser-thr-ser-ala-thr-ala-leu-gln-cys-ala-ile-leu-ala-asp-gly-arg-gly-ala-cys-asn-val-ala-glu-phe-his-asp-phe-ser-leu-ser-gly-gly-glu-gly-thr-thr-ser-val-val-val-arg-arg-ser-phe-thr-gly-tyr-val-met-pro-asp-gly-pro-glu-val-gly-ala-val-asp-cys-asp-thr-ala-pro-gly-gly-cys-gln-ile-val-val-gly-gly-asn-thr-gly-glu-tyr-gly-asn-ala-aka-ile-ser-phe-gly-OH, kde X znamená H-ala-ser, H-ser nebo H, vzhledu špinavě zbarvené pevné látky, o molekulové hmotnosti 12 400 při stanovení elektroforézou na SDS-polyakrylamidovém gelu, 17 000 při stanovení filtrací na gelu a vysokotlakou kapalinovou chromatografií, se spektrem v ultrafialovém světle podle obr. 1, mající isoelektrický bod 3,65 a připravitelného pěstováním kultury mikroorganismu Streptoalloteichus sp. nov., kmen L585-6, ATCC 53650, produkujícího kedarcidin v prostředí, obsahujícím využitelné zdroje uhlíku a dusíku v submerzní kultuře za aerobních podmínek a následnou izolací antibiotika ze živného prostředí.
Shora uvedené fyzikálně-chemické vlastnosti odlišují nové antibiotikum podle vynálezu od jiných známých peptidových antibiotik s protinádorovou účinností, jako jsou neocarzinostatin, macromomycin, largomycin, actinoxanthin a AN-7D.
-1CZ 279196 B6
Způsob přípravy nového antibiotika kedarcidin spočívá podle vynálezu v tom, že se pěstuje kmen Streptoalloteichus produkující kedarcidin v prostředí, obsahujícím využitelné zdroje uhlíku a dusíku v submerzní kultuře za aerobních podmínek s následnou izolací antibiotika ze živného prostředí, tedy s následným oddělení bílkovin od fermentačního prostředí.
Podstatou vynálezu je také biologicky čistá kultura mikroorganismu Streptoalloteichus sp. nov., kmen L585-6, ATCC 53650, produkující kedarcidin.
Podstatou vynálezu je také farmaceutický prostředek s obsahem protinádorově účinného množství antibiotika kedarcidin a farmaceuticky vhodný nosič.
Při použiti antibiotika podle vynálezu je možno potlačit růst nádorů u hostitele, náležejícího k savcům tak, že se tomuto hostiteli podá množství kedarcidinu, které je dostatečné k dosažení inhibice nádoru.
Spektrum antibiotika kedarcidinu v ultrafialovém světle je znázorněno na obr. 1.
V následujícím popisu budou užity pro jednotlivé aminokyseliny následující zkratky:
as : kyselina asparagová + asparagin thr : threonin ser : serin glx : kyselina glutamová + glutamin asp : kyselina asparagová asn : asparagin glu : kyselina glutamová gin : glutamin pro : prolin gly : glycin ala : alanin val : valin met : methionin ile : isoleucin leu : leucin tyr : tyrosin phe : fenylalanin his : histidin lys : lysin arg : arginin cys : cystein trp : tryptofan
Produkční mikroorganismus, kmen L585-6 byl izolován ve vzorku půdy, odebraném ve státě Maharastra v Indii. Dále budou podrobněji popsány vlastnosti tohoto nového kmene.
Morfologie
Kmen L585-6 je grampositivní, vláknitý organismus, který vytváří vzdušné mycelium. Mycelium v živném prostředí proniká agarem a není fragmentováno. Je možno pozorovat kulovité shluky
-2CZ 279196 B6 hyf s průměrem 5 až 25 pm a vegetativní hyfy. Vzdušné mycelium je dobře rozvětvené a vyvíjí přímé nebo spirální dlouhé hyfy, v nichž se tvoří spory v kontinuálním nebo diskontinuálním řetězci. Shluky krátkých rozvětvených řetězců spor se tvoří převážně na prostředí ISP č. 5. Oba typy spor jsou oválné až krátce válcovité, hladké, nepohyblivé a mají rozměry 0,4 až 0,6 x 1,0 až 2,0 pm.
Po inkubaci 5 až 10 dnů je možno pozorovat na vzdušném myceliu jednotlivé nebo hromadně bezbarvá kulovitá tělíska s průměrem 5 až 20 μιη. Po inkubaci, trvající 3 týdny nebo déle se tato tělíska vyvinou na žlutohnědá sklerotická granula s průměrem 40 až 100 μιη, která jsou pokryta dalšími prodlouženými vzdušnými hyfami.
Růstové vlastnosti
Růst je obvykle mírný, kultura se sacharózou a dusičnany, na agaru s ovesnou se škrobem a minerálními solemi, agaru s tyrosinem a na nikoliv na prostředcích ISP č. 2, 3, 4a Barva vzdušného mycelia je žlutavěbílá. menty se vytvářejí na prostředích IPS č. ttově agaru. Barva vzdušného mycelia melanoidní pigmenty se vytvářejí na prostředích ISP Jiné odlišitelné pigmenty se nevytvářejí.
málo roste na Czapkově agaru moukou a na agaru Vzdušné mycelium se tvoří na agaru s glycerolem a asparaginem, avšak 6 a na Bennettově agaru. Černavé, elanoidní pig2, 3, 4 a 6 a na Benneje žlutavěbílá. Černavé č. 6 a 7.
V následující tabulce I jsou shrnuty vlastnosti nového kmene L585-6 při jeho pěstování na různých živných prostředích.
Tabulka I
Vlastnosti kmene L585-6 v kultuře
Prostředí agar se sacharózou a dusičnanem (Czapek-Dox) bujón s tryptonem a extraktem z kvasnic (IPS č. 1) agar s extraktem z kvasnic se sledem (IPS č. 2) agar s ovesnou moukou (IPS č. 3) vlastnost1 'G : zadný nebo nepatrný
A : žádné
S : bezbarvé
D : žádný
G : mírný, vločkující
A : žádné
S : bezbarvé
D : hluboce žlutohnědý (75)3'
G : mírný
A : žádné
S : tmavěžlutohnědá (78)
D : hluboce žlutohnědý (75)
G : nepatrný
A : žádné nebo nepatrné, bílé
S : bezbarvé
D : žádný
-3CZ 279196 B6
Prostředí vlastnost1)
Tabulka I - pokračování agar s anorganickými solemi a škrobem (IPS č. 4) agar s glycerolem a asparaginem (IPS č. 5) agar s peptonem, extraktem z kvasnic a železem (IPS č. 6) agar s tyrosinem (IPS č. 7) agar s glukózou a asparaginem
Bennettův agar
G : nepatrný
A : žádné nebo nepatrné, bílé
S : bezbarvé
D : žádný
G : mírný
A : mírné, žlutobílé (92)
S : bezbarvé
D : žádný
G : mírný
A : žádné
S : světlešedavěžlutavěhnědé (79)
D : hnědočerný (65)
G : mírný
A : bohaté, žlutavěbílé (92)
S : černé
D : černý
G : špatný
A : žádné
S : tmavěoranžověžluté (72)
D : žádný
G : mírný
A : žádné nebo nepatrné, bílé
S : tmavěšedavěžlutavěhnědé (81)
G : mírně žlutavěhnědý (77).
Vysvětlivky :
růst byl pozorován po inkubaci tři týdny při 28 °C 2) G = růst, A = vzdušné mycelium, S = mycelium v substrátu, D =pigment, schopný difúze.
3) barva a číslo v závorkách odpovídají označení podle ISCC-NBS.
Fyziologické vlastnosti
Optimální růst je v rozmezí 30 až 35 °C, schopnost růstu v rozmezí 18 až 39 °C. K růstu nedochází při 15 a 41 °C, ani v prostředí s více než 5 % chloridu sodného. Želatina je zkapalňována, škrob není hydrolyzován. Z 25 cukrů se využívá pouze D-ribosa a D-glukosa. Výsledky jsou uvedeny v tabulkách II a III.
-4CZ 279196 B6
Tabulka II
Fyziologické vlastnosti kmene L585-6
Hydrolýza: Využití:*2
želatina škrob : rozpustný škrob bramborový škrob + L-rhamnosa D-glukosa D-galaktosa D-fruktosa +
koagulace mléka + D-mannosa
peptonisace + L-sorbosa -
Produkce : sacharosa
reduktázy nitrátu - nebo laktosa -
+ (w)*1 cellobiosa -
tyrosinásy + melibiosa -
tolerance vůči : trehalosa
lysozymu 0,01 g/100 ml + rafinosa -
NaCl, 1 až 4 g/100 ml + D-melezitosa -
5 g/100 ml - rozpustný škrob -
pH 5 až 11,0 + celulosa -
4,5a 12 - dulcitol -
inositol
D-mannitol -
růstová oblast 18 až 39 °C D-sorbitol -
žádný růst 15 a 41 °C salicin -
optimální růst 30 až 35 °C glycerol -
D-arabinosa L-arabinosa D-xylosa
D-ribosa + y· Ί * * x Produkce reduktazy nitrátu je negativní na Czapkově bujónu se sacharosou a nitrátem, je však positivní v bujónu s peptonem a nitrátem
Y O X o XX
Zkoušky na využiti cukru byly prováděny v základním prostředí, kterým je pro toto použití Pridhem-Gottliebovo prostředí (IPS č. 9)
V následující tabulce jsou popsány další fyziologické vlastnosti kmene L585-6. Tyto zkoušky byly prováděny způsobem podle publikace Gordon a další, J. Gen. Microb., 1978, 109, 69-78.
-5CZ 279196 B6
Tabulka III
Další fyziologické vlastnosti kmene L585-6
Hydrolýza : produkce kyseliny z :
adeninu kaseinu esculinu kyseliny hippurové hypoxanthinu tyrosinu močoviny xantinu + + + + glyceronu D-arabinosy L-arabinosy D-xylosy L-rhamnosy D-glukosy D-mannosy laktosy cellobiosy +
Přežití při 50 °C,
8 hod. - melibiosy -
trehalosy
Využití rafinosy -
benzoátu - D-melezitosy -
citrátu - inositolu -
mukánu - D-mannitolu -
sukcinátu + D-sorbitolu -
tartrátu - erythritolu -
adonitolu -
methyl a-glukosidu -
Chemie buněčné stěny
Buněčná stěna kmene L 585-6 byla zkoumána způsobem podle publikací Becker a další, Appl. Microbiol. 13, 236 až 243 (1965), Yamaguchi, J. Bacteriol. 89, 444 až 453 (1965) a Lechevalier a Lechevalier, Biology of the Actinomycetes and Related Organismus 11, 78 až 92, (1976). Peptidoglykan buněčné stěny obsahuje kyselinu meso-diaminopimelovou. Z cukrů jsou obsaženy galaktosa, glukosa a ribosa. Jde tedy o buněčnou stěnu typu IIIq. Fosfolipidy jsou typu Ρ-ΙΙ a obsahují fosfatidylethanolamin, fosfatidylglycerol a fosftatidylinositol. Hlavními menachinony jsou MK-9(H4) a MK-9(Hg). Test na glykolát je negativní.
Taxonomie
Z rodů Actinomycetales s dlouhými řetězci spor je možno Pseudonocardia, Saccharopolyspora, Actinopolyspora, Streptomyces, Actinomadura, Glycomyces, Nocardiopsis a Amycolata jasně odlišit od kmene L585-6 pokud jde o buněčnou chemii, zejména typ buněčné stěny, buněčné cukry, fosfolipidy a menachinony. Kibdelosporangium, popsané v publikaci Shearer a další, Int. J. Syst. Bacteriol. 36, 47 až 54 (1986), Kitasatosporia, popsaná v publikaci Takahashi a další, J. Gen. Appl. Microbiol. 30, 377 až 387
-6CZ 279196 B6 (1984), a Amycolatopsis podle publikace Lechevalier a další, Int. J. Syst. Bacteriol., 36, 29 až 37 (1986) jsou příbuzné kmeni L585-6, pokud jde o složení fosfolipidů a menachinonů, avšak Kibdelosporangium a Amycolatopsis se liší přítomností arabinosy v cukrech buněčné stěny a Kitasatosporia přítomností kyseliny LL-diaminopimelové a mezodiaminopimelové v buněčné stěně. Mimoto Kibdelosporangium nese tělíska, obalující hyfy a opatřená pravou membránou a Kitasatosporia vytváří submersní spory. Tyto unikátní struktury nejsou u kmene L585-6 pozorovány. Chemotaxonomicky jsou Streptoalloteichus podle publikace Tomita a další, Int. J. Syst. Bacteriol., 37, 211 až 213 (1987), Actinosynnema podle publikace Hasegawa a další, Int. J. Syst. Bacteriol., 28, 304 až 310 (1978) a Saccharothrix podle publikace Labeda a další, Int. J. Syst. Bacteriol., 34, 426 až 431, (1984), nejpříbuznější kmeni L585-6. Actinosynnema vytváří vzdušné řetězce spor na vrcholu synnematu. Saccharothrix vytváří řetězce fragmentovaných tělísek ve vegetativním i vzdušném myceliu a nevytváří shluky krátkých řetězců spor nebo sklerotická granula. Morfologie řetězců fragmentovaných prvků u Saccharothrix australiensis a S. aerocolonigenes podle publikace Labeda, Int. J.Syst. Bacteriol., 36, 109 až 110 (1986) jsou příbuzné řetězcům u Nocardiopsis, avšak není příbuzná žádné čeledi Streptomyces. To znamená, že kmen L585-6 není možno přiřadit ani k Actinosynnema ani k Saccharothrix.
Streptoalloteichus hindustanus nese dlouhé spirální řetězce arthrospor, rozvětvené krátké řetězce spor, sklerotická granula ve vzdušném myceliu a kulovité shluky hyf a mimo to malá, sporangiím podobná tělíska, z nichž se vytváří ve vegetativním myceliu 1 až 4 spory s bičíky. Kmen L585-6 vytváří malé inkluse, podobné sporangiím. Stejně jako Streptoalloteichus vytváří kmen L585-6 kulovitá tělíska, která se vyvíjí na sklerotická granula. Tuto strukturu je možno pozorovat u celé řady čeledí Streptomyces, například u S, kanamyceticus podle publikace Shirling a další, Int. J. Syst. Bacteriol., 22, 265 až 394 (1972) a S. roseiscleroticus (Chainia rubra) podle téže publikace.
Na základě svrchu uvedených srovnávacích studiích byl kmen L585-6 zařazen do rodu Streptoalloteichus. Kmen L585-6 se liší od Streptoalloteichus hindustanus v nepřítomnosti vzdušného mycelia na IPS prostředích 2,3 a 4 a na Bennettově agaru, tvorbou melaninu, neschopností hydrolyzovat škrob, neschopností růst při teplotě 41 °C a také tím, že z 25 zkoumaných cukrů využívá pouze D-ribosu a D-glukosu. Z uvedeného důvodu je kmen považován za novou čeleď rodu Streptoalloteichus.
Biologicky čistá kultura kmene L585-6, náležející do rodu Streptoalloteichus byla uložena ve veřejné sbírce kultur Američan Type Culture Collection (Rockville, MD) a zařazena pod číslem ATCC 53650.
Produkce antibiotika
Protinádorové antibiotikum podle vynálezu je možno získat tak, že se pěstuje kmen L585-6 nebo jeho mutanta v submerzní kultuře ve vodném živném prostředí. Organismus se pěstuje v živném prostředí, které obsahuje využitelný zdroj uhlíku, například využitelný uhlohydrát. Příkladem vhodného zdroje uhlíku
-7CZ 279196 B6 může být cerelosa a glycerol. Živné prostředí by mělo obsahovat také využitelný zdroj dusíku, například rybí moučku, extrakt z kvasnic nebo amonné soli. V případě potřeby je možno přidat také anorganické soli, například chlorid sodný, chlorid draselný, síran hořečnatý, uhličitan vápenatý, fosfáty a podobně. Mimoto je možno přidávat také stopové prvky jako měd’, mangan, železo, zinek a podobně, tyto prvky však mohou být přítomny také jako nečistoty v jiných i jakékoliv například a zvláště neutrálním biotika se malého lahvích nebo kulturu na pevném prostředí, avšak při výrobě většího množství je výhodnější mikroorganismus kultuře za aerobních podmínek ve sterilním fermentace je žádoucí nejprve připravit materiál v živném bujónu jeho naočkováním mladé vegetativní kultury se tento očkovací materiál asepticky přenese do prostředí ve fermentačním tanku. Mimoto je možno živné prostředí míchat mechanickým způsobem. Je také možno přidávat protipěnivá činidla, například silikonový nebo jiný olej.
složkách teplotě, 18 27 až až živného prostředí, při °C, °C.
se provádí při schopen růst, je však 25 až 35 °C výhodou se fermentace provádí při 4 až 8 dnů. Optimální produkce antipo 5 až 6 dnech. Pro výrobu poměrně je možno užít kulturu v třepacích
Inkubace níž je produkční kmen výhodné rozmezí S pH a obvykle trvá obvykle dosahuje množství antibiotika pěstovat v submersní tanku. V případě této vegetativní očkovací sporami a po dosažení
Produkci antibiotika kedarcidinu ve fermentačním prostředí je možno v průběhu fermentace snadno sledovat mikrobiální zkouškou při použití Bacillus subtilis jako zkušebního organismu nebo je možno provádět pokusy na buněčnou cytotoxicitu při použití nádorových buněčných linií, a to myšího původu (B16-F10) nebo lidského původu (například HCT-116, KB).
Je zřejmé, že vynález není možno omezit na použití zvláště výhodného kmene L585-6 tak, jak byl svrchu popsán nebo na použití organismů, které plně odpovídají svrchu uvedenému popisu. Je zřejmě nutné zahrnout i jiné kmeny nebo mutanty uvedeného organismu, produkující kedarcidin, získané běžným způsobem, například ozářením rtg-paprsky, ulrafialovým světlem, působením vystavení působení fágu a podobně.
Izolace a čištění antibiotika
Protinádorové antibiotikum podle vynálezu je bílkovina a je tedy možno jej izolovat z fermentačního prostředí při použití běžných způsobů pro izolaci bílkovin, jako jsou diolýza, ultrafiltrace, filtrace na gelu, srážení v isoelektrickém bodu, srážení působením solí, elektoforézou, chromatografii na iontoměniči nebo afinitní chromatografií. Obvykle se užívá několika těchto postupů po sobě k vyčištění antibiotika do vysokého stupně. Izolaci a čištění je možno sledovat mikrobiologicky, například při použití B. subtilis, sledováním cytotoxicity in vitro proti nádorovým buněčným liniím myšího nebo lidského původu, zkouškami na protinádorovou účinnost in vivo nebo fyzikálními postupy, například v ultrafialovém světle nebo vysokotlakou kapalinovou chromatograf ií. V následujícím schématu I je uveden typický čisticí postup. Tento postup je uveden pouze pro ilustraci a každý odborník jej může pozměnit nebo užít jiný postup, pokud má získaná bílkovina vysokou čistotu a uchová si svou biologickou účinnost.
-8CZ 279196 B6
Schéma I
Izolace a čištění bílkoviny fermentační prostředí mycelium filtrát
aniontoměnič
pufr pufr + 1 M NaCl
eluát eluát eluát filtrace na gelu eluát preparativní aniontoměnič čištěný roztok bílkoviny lyofilizace čištěná bílkovina
Při postupu podle schématu I se celé fermentační prostředí odstředí nebo zfiltruje. Při filtraci je možno užít pomocný prostředek, například Dicalite. Potom se filtrát podrobí chromátografii na aniontoměniči, přičemž jako eluční činidlo se užije kationtový pufr s pH 7 až 8, potom se užije téhož pufru s obsahem chloridu sodného. Vhodný kationtový pufr pro tuto oblast pH je například tris-pufr s kyselinou chlorovodíkovou. Frakce, získaná při použití pufru s obsahem chloridu sodného se odebere, zahustí a dále čistí filtrací na gelu při použití téhož kationtového pufru. Frakce se shromažďují a zkouší se na přítomnost účinné složky. Vhodným počátečním systémem pro sledování eluátu je zkouška proti Bacillus subtilis. Ty frakce, které vytvářejí inihibiční zónu se slijí, zahustí se a potom se dále čistí chromatografií na aniontoměniči, přičemž jako eluční činidlo se nejprve užije kationtový pufr o pH 7 až 8 a potom se pokračuje se zvyšující se iontovou silou. Účinné frakce se zkouší na homogenitu elektroforézou na polyakrylamidovém gelu s dodecylsíranem sodným (SDS-PAGE), sledováním isoelektrického bodu a vysokotlakou kapalinovou chromatografií. Frakce, které jsou homogenní se slijí a potom se lyofilizují, čímž je možno získat vysoce čistou bílkovinu.
Antibiotikum
Kedarcidin je vysoce účinné bílkovinné protinádorové antibiotikum, které sestává z polypeptidu s jediným řetězcem
-9CZ 279196 B6 a z nebílkovinného chromoforu. Přestože vzorky antibiotika, které byly podrobeny fyzikálně-chemickým zkouškám a biologickým pokusům, byly považovány za homogenní při sledování pomocí SDS-PAGE, zjišťováním isoelektrického bodu a vysokotlakou kapalinovou chromatografii, v průběhu dalších pokusů při analýze řetězce bylo prokázáno, že se antibiotikum skládá z hlavní složky a dvou menších složek. Tyto složky se od sebe liší počátečním N-terminálním řetězcem aminokyselin z polypeptidu, jak bude dále popsáno. K dosažení protinádorového účinku není zapotřebí oddělovat nebo izolovat jednotlivé složky.
Vynález zahrnuje také ty varianty kedarcidinu, v nichž je peptidová část pozměněna známým způsobem za vzniku fragmentů a derivátů, a to vypuštěním, přidáním nebo náhradou některých aminokyselin v průběhu primární řetězce peptidu, aniž by přitom došlo ke změně protinádorové účinnosti.
Složení aminokyselin
Při použití standardních známých postupů bylo stanoveno složení aminokyselin v čištěné bílkovině a toto složení je shrnuto v následující tabulce IV.
Tabulka IV
Obsah aminokyselin v kedarcicinu výtěžek zbytky
nmol mol % (a) (b)
asp 2,765 8,1 10,1 9,3 (6)
asn (3)
thr 3,18 9,3 11,6 10,6 (11)
ser 3,163 9,3 11,5 10,6 (12)
glu (4)
1,928 5,7 7,0 6,5
gin (2)
pro 1,615 4,7 5,9 5,4 (4)
giy 5,529 16,2 20,1 18,5 (18)
ala 5,566 16,3 20,3 18,6 (18)
val 3,731 11 13,6 12,5 (13)
met 0,2873 0,8 1,1 1,0 (1)
ile 0,8531 2,5 3,1 2,9 (3)
leu 1,298 3,8 4,7 4,3 (4)
tyr 0,6274 1,8 2,3 2,1 (2)
phe 1,565 4,6 5,7 5,2 (5)
his 0,6235 1,8 2,3 2,1 (1)
lys 0,3196 0,9 1,2 1,1 (0)
arg 1,001 2,9 3,7 3,3 (3)
cys 0 0 0 0 (4)
trp 0 0 0 0 (0)
(a) Počet zbytků v peptidu za předpokladu, že molekulová hmotnost peptidu je 12 000.
-10CZ 279196 B6 (b) Počet zbytků v peptidu při celkovém počtu 114 zbytků. Hodnoty v závorkách jsou počty zbytků v peptidu, stanovené analýzou řetězce aminokyselin.
Řetězec aminokyselin
Pro analýzu aminoterminálního zakončení byl kedarcidin redukován 2-merkaptoethanolem a potom dále čištěn na 15 % SDS-PAGE a izolován z gelu elektroelucí nebo elektroblokovou reakcí.
Pro většinu enzymatických štěpení byl kedarcidin použit bez dalšího čištění. Kedarcidin byl potom redukován 20 mM dithiothreitolu ve 100 μΐ 0,4 M tris-HCl o pH 8,5 s obsahem 6 M guanidinhydrochloridu, 0,1 % sodnou solí EDTA 2 hodiny při teplotě 50 °C, potom byl S-pyridylethylován působením 100 mM 4-vinylpyridinu přes noc při teplotě místnosti. Reakce byla zastavena přidáním 10 μΐ 2-merkaptoethanolu na 1 hodinu při teplotě 50 °C. Reakční složky byly odstraněny dialýzou proti kyselině octové o koncentraci 5 % objemových na 24 hodin a modifikovaný kedarcidin byl sušen v rotačním odpařovači (Savant Instruments).
Enzymatické štěpení S-pyridylethylovaného kedarcidinu enzymem ASP-N nebo proteázou V8 ze S. aureus bylo prováděno ve 40 μΐ 0,1 M tris-pufru s kyselinou octovou o pH 8,0 s obsahem 0,7 M močoviny při teplotě 37 °C přes noc při použití poměru enzymu k substrátu 1 : 100 v případě ASP-N nebo 1 : 10 v případě proteázy V8. Štěpení trypsinem bylo prováděno ve 40 μΐ 0,1 M tris-pufru s kyselinou octovou o pH 8,0 při teplotě 37 “C přes noc při poměru enzymu k substrátu 1 : 20. Materiál potom byl okyselen kyselinou trifluoroctovou (TFA) na pH 2,0 a oddělen vysokotlakou kapalinovou chromatografií v reversní fázi.
Čištění peptidu vysokotlakou kapalinovou chromatografií v reverzní fázi bylo prováděno na dělicím systému 130 A (Applied Biosystems, lne.) při teplotě 40 °C při použití sloupce RP-300 s rozměrem 2,1 x 100 mm (Applied Biosystems, lne.). K eluci byl použit lineární gradient z acetonitrilu od 0,1 % TFA ve vodě na počátku eluce až do 60 % acetonitrilu s 0,080 % TFA. Peptidy byly odebírány ručně. Stanovení řetězce aminokyselin bylo prováděno na automatickém zařízení pro analýzu aminokyselin při použití standardního postupu (Model 475 A, Applied Biosystems, lne.).
Hlavní složka polypeptidu sestává ze 114 zbytků aminokyselin. Tyto zbytky po sobě následují v následujícím pořadí :
-11CZ 279196 B6
N-terminální zakončení
H-ala-ser-ala-ala-val-ser-val-ser-pro-ala-thr-gly-leu-ala-asp-gly-ala-thr-val-thr-val-ser-ala-ser-gly-phe-ala-thr-ser-thr-ser-ala-thr-ala-leu-gln-cys-ala-ile-leu-ala-asp-gly-arg-gly-ala-cis-asn-val-ala-glu-phe-his-asp-phe-ser-leu-ser-gly-gly-glu-gly-thr-thr-ser-val-val-val-arg-arg-ser-phe-thr-gly-tyr-val-met-pro-asp-gly-pro-glu-val-gly-ala-val-asp-cys-asp-thr-ala-pro-gly-gly-cys-gln-ile-val-val-gly-gly-asn-thr-gly-glu-tyr-gly-asn-ala-ala-ile-ser-phe-gly-OH
C terminální zakončení
Bylo možno identifikovat dvě menší složky, z nichž v jedné chybí první zbytek alaninu, který se nachází v hlavní složce a ve druhé chybí první dva zbytky, tj. zbytek alaninu a šeřinu.
Stanovení molekulové hmotnosti
a) Filtrací na gelu a vysokotlakou kapalinovou chromatografií
Při použití sloupce TSK-G2000 SW s rozměrem 7,5 x 300 mm (LKB Produkter AB, Švédsko) byla prováděna filtrace na gelu při použiti 50 mM tris-pufru s kyselinou chlorovodíkovou s obsahem 0,5M NaCl o pH 7,4 při rychlosti průtoku 0,5 ml/za minutu. Je také možno užít sloupec 1-125 (Waters Associates Protein) při použití 0,2M tris-pufru s kyselinou octovou při rychlosti průtoku 1 ml/min. Molekulová hmotnost byla stanovena z referenční křivky, získané při použití standardních značících látek (Bio Rad Laboratories) a stanovená hodnota je 17 000.
b) Postup s použitím elektroforézy na polyakrylaminovém gelu s dodecylsíranem sodným
Vzorek bílkoviny a látek pro označení molekulové hmotnosti (Diversified Biotech., Maine) se smísí se stejným objemem Seprasolu (kapalina pro rozpouštění bílkovin, obsahující sacharózu a barvivo) a směs se zahřívá těsně před prováděním elektroforézy tři minuty na 90 °C. Elektroforéza se provádí při 300 v v prostředku Seprabuff (tris-glycin-SDS, o pH 8,3) tak dlouho, až barvivo dosáhne dna gelu. Potom se gel ponoří do barvicího roztoku (1,25 g Comassie BB R-250, 92 ml ledové kyseliny octové v 908 ml vodného methanolu) na alespoň 20 hodin, potom se ponoří do odbarvovacího roztoku (75 ml kyseliny octové a 50 ml methanolu v 875 ml vody) na tak dlouhou dobu, až se gel stane průsvitným. Seprasol a Seprabuff vyrábí Integrated Separation Systém, Massachusetts. Takto stanovená molekulová hmotnost je 12 400.
Stanovení isoelektrického bodu
Gel pro použití byl připraven smísením následujících složek:
29,1 % akrylamidu ve vodě 10 ml
0,9 % N,N'-methylen-bis-akrylamid ve vodě 10 ml
-12CZ 279196 B6 glycerol
1802 Ampholin o pH 2,5 - 4 voda ml ml do 60 ml
Výsledný roztok se 10 minut zbavuje plynů a potom se k němu přidá 1,5 ml 1% persiranu amonného ve vodě a 10 μΐ Ν,Ν,Ν'Ν'tetramethylethylendiaminu. Směs se vlije do formy a nechá se polymerovat. Roztokem pro elektrody je 1M kyselina fosforečná pro anodu a 2% 1809 Ampholine o pH 6 až 8 pro katody. Pokus se provádí při 25 W celkem 2 hodiny. Získaná hodnota odpovídá hmotnosti v gramech/100 ml. Isoelektrický bod byl 3,65, vzdálenost od katody 6,25 cm.
Biologická účinnost
Protinádorová účinnost bílkoviny byla vyhodnocena proti transplantovatelné myší leukémii P388. Myším kmene CDFg bylo transplantováno intraperitoneálně (ip) nebo nitrožilně (iv) vždy 106 buněk leukémie P388, získaných od myší DBA/2 s transplantovatelnou leukémií. V případě intraperitoneálně implantované leukémie se myším stejnou cestou podá bud’ fyziologický roztok kuchyňské soli v případě kontrolní skupiny, nebo kedarcidin jednou denně 5 dní po sobě od prvního dne po naočkování nádoru. V případě leukémie, naočkované nitrožilně se myším podá stejnou cestou kedarcidin prvního, třetího a pátého dne po implantaci. Všechna zvířata se denně pozorují a uhynutí se zaznamenává. Pro všechny skupiny od dne implantace do dne posledního ošetření se také zaznamenává změna hmotnosti, změny se připisují toxicitě antibiotika. Zaznamenává se také přežití v každé skupině pátého dne po naočkování jako další možná známka toxicity. V případě, že alespoň jedna myš uhynula do pátého dne, nebyla léčba považována za účinnou. Ve skupině bylo 4 nebo 6 myší, v kontrolní skupině 10 myší. Počet myší přežívající 30 dne byl také zaznamenán. Na konci celého pokusu byla pro každou skupinu stanovena průměrná doba přežití (MST) a tato hodnota byla použita k výpočtu % T/C, což je poměr MST v pokusné skupině k MST kontrolní skupiny, násobený stem. Hodnota % T/C vyšší než 125 nebo alespoň 125 je důkazem vysoké protinádorové účinnosti. Údaje, získané při pokusech in vivo jsou uvedeny v následujících tabulkách IV a V.
-13CZ 279196 B6
Tabulka IV
Protinádorová účinnost proti leukémii P388, implantované ip
skupina dávky3 ředění nebo mg/kg/inj střední doba přežití (dny)
D16F411 1 : 40 7,0
1 : 80 10,0
1 : 160 12,5
1 : 320 18,5
kontrola 9,5
D18F413 0,27 7,0
0,09 15,0
0,03 17,0
0,01 15,0
D18G414b) 0,09 9,5
0,03 15,5
0,01 14,5
0,0033 14,0
kontrola 10,0
% T/C průměrná změna hmotnosti (g) počet živých myší 5. dne
74 -1,9 4/4
105 -1,2 4/4
132 -i,o 4/4
195 -1,9 4/4
0,2 10/10
70 -1,9 4/6
150 -0,8 6/6
170 -1,7 6/6
150 -0,3 6/6
95 -1,3 6/6
155 -1,2 6/6
145 -0,5 6/6
140 -0,2 6/6
0 10/10
a) účinná látka byla podána ip jednou denně pět po sobě jdoucích dní od prvního dne po naočkování.
b) Lyofilizovaný a rekonstituovaný prostředek z téhož vzorku jako pro skupinu D17F413.
Tabulka V
Protinádorová účinnost proti leukémii P388, implantované iv skupina dávky3střední % T/C průměrná počet živých ředění doba pře- změna myší 5. dne nebo žití (dny) hmotnosti mg/kg/inj (g)
D18F413 0,32 6,0 75 -3,1 6/6
0,16 7,5 94 -3,2 6/6
0,08 11,0 138 -1,4 6/6
0,04 12,5 156 -0,6 6/6
0,02 10,0 125 0,1 6/6
0,01 8,0 100 1,2 6/6
-14CZ 279196 B6
Tabulka V - pokračování
skupina dávkya ) ředění nebo mg/kg/inj střední doba přežití (dny) % T/C průměrná změna hmotnosti (g) počet živých myší 5. dne
D16F411 1 : 25 7,0 88 -2,9 6/6
1 : 50 10,5 131 -1,6 6/6
1 : 100 13,0 163 1,2 6/6
1 : 200 9,5 119 -0,2 6/6
1 : 400 9,0 113 0,5 6/6
1 : 800 8,0 100 0,8 6/6
kontrola 8,0 - - 10/10
a) účinná látka byla podána nitrožilně prvního, třetího a pátého dne po naočkování nádoru.
Kedarcidin byl také vyhodnocen proti myšímu melanomu B16, který byl implantován intraperitoneálně při použití 0,5 ml 10% suspenze nádoru. Pro každou dávku bylo použito 10 myší. Účinná látka byla podávána intraperitoneálně jednou denně celkem devět po sobě následujících dnů od prvního dne po naočkování nádoru. Byl zaznamenán počet myší, které byly na živu 10. dne a na konci pokusu 60. dne. Výsledky jsou uvedeny v následující tabulce VI. Hodnoty % T/C 125 nebo vyšší znamenají vysokou protinádorovou účinnost.
Tabulka VI
Protinádorová účinnost kedarcidinu proti melanomu B16, implantovanému ip
dávka (mg/kg) MST (d) % T/C průměrná změna hmotnosti (g) počet živých myší 5. (60. ) dnex
0,256 16,0 97 “2,7 9/10
0,128 24,5 148 -1,3 10/10
0,064 26,5 161 0,3 10/10
0,032 31,5 191 1,0 10/10
0,016 32,5 197 0,6 10/10
0,008 34,0 206 0,6 9/10
0,004 27,0 164 0,3 10/10 (1)
0,002 21,5 130 0 10/10
kontrola 16,5 - 1,3
x číslo v závorce znamená počet myší, které byly na živu 60. dne
po naočkování nádoru.
-15CZ 279196 B6
Výsledky, uvedené v tabulkách IV, V a VI ukazují, že antibiotikum kedarcidin je účinná látka s vysokou protinádorovou účinností in vivo proti leukémii P388 a melanomu B16 u myší. Antibiotikem prodloužilo přežití v případě intraperitoneální implantace melanomu B16 a v případě intraperitoneální a nitrožilní transplantace leukémie P388, nitrožilní forma se obtížněji léčí, protože je rozesetá po organismu. Kedarcidin byl potom vyhodnocen také proti podkožně naočkovanému melanomu B16, myšímu plicnímu nádoru M5076 a intrakraniálně implantované leukémii P388, na těchto pokusných modelech však nebylo možno prokázat významnou účinnost.
Antibiotikum kedarcidin je možno zpracovat na běžné lékové formy, které obsahují účinné množství antibiotika s inertním, z farmaceutického hlediska přijatelným nosičem nebo ředidlem. Tyto prostředky mohou obsahovat ještě další látky s protinádorovým účinkem a mohou mít jakoukoliv formu, vhodnou pro zvolený způsob podání. Příkladem těchto prostředků mohou být pevné prostředky pro perorální podání jako tablety, kapsle, pilulky, prášky a granula, kapalné prostředky pro perorální podání, například roztoky, suspenze, sirupy nebo elixíry a prostředky pro parenterální podání, jako sterilní roztoky, suspenze nebo emulze. Je možno je zpracovat také na sterilní pevné prostředky, které je možno rozpustit ve sterilní vodě, fyziologickém roztoku chloridu sodného nebo jiném sterilním prostředí pro injekční podání těsně před použitím.
Pro použití jako protinádorové látky je možno snadno stanovit optimální dávkování a způsob podávání pro jakéhokoliv savce. Velikost dávky závisí na typu použitého prostředku, na způsobu podávání, na stavu ošetřovaného a na závažnosti onemocnění. Je nutno brát zřetel na četné faktory, které mohou modifikovat působení účinné látky, například věk, hmotnost, pohlaví, typ stravy, doba podání, způsob podání, způsob a rychlost vyměšování, stav nemocného, kombinace účinných látek na přecitlivělost a závažnost onemocnění.
Vynález objasňují následující příklady, které vynález nijak neomezují.
Příklady provedení vynálezu
Příklad 1
Příprava vegetativní kultury kmene Streptoalloteichus L585-6
Kmen Streptoalloteichus L585-6 (ATCC 53650) byl udržován a přenesen do zkumavek na šikmý agar s extraktem z kvasnic a sladu, který sestává z následujících složek:
destrosa extrakt z kvasnic extrakt ze sladu CaCO3 agar destilovaná voda
4,0 g
4,0 g
10,0 g
1,5 g g
do 1 litru
-16CZ 279196 B6
Při každém přenosu byl šikmý agar inkubován dva týdny při teplotě 28 °C. Vegetativní kultura byla připravena přenesením materiálu z povrchu šikmého agaru do Erlenmayerovy baňky o objemu 500 ml s obsahem 100 ml sterilního živného prostředí následujícího složení :
cerelosa (Corn Products) 30 g
Pharmamedia (Traders Oil Milí Co. ) 10 g
Nutrisoy (Archer Daniels
Midland CO.) 10 g
CaCO3 3 g
destilovaná voda do 1 litru
Tato vegetativní kultura byla inkubována při teplotě 28 °C celkem 72 hodin na rotační třepačce při 250 výkyvech za minutu.
Příklad 2
Fermentace v třepacích lahvích ml vegetativní kultury z příkladu 1 se užije k naočkování 500 ml Erlenmeyerových baněk, z nichž každá obsahuje 100 ml produkčního živného prostředí následujícího složení:
glycerol 30 g Pharmamedia 10 g lihovarské výpalky (Nutrition
Product Co.) 15 g rybí moučka (Manhaden) 10 g CaCO3 6 g destilovaná voda do 1 litru
Produkční kultura se inkubuje při teplotě 28 °C na rotační třepačce při 250 výkyvech za minutu. Produkce antibiotika se sleduje mikrobiální zkouškou použití B. subtilis a zkouškou na cytotoxicitu in vitro při použití buněčné linie myšího melanomu B16-F10 a lidských nádorových buněčných linií. Optimální produkce bylo obvykle dosaženo v rozmezí 144 až 168 hodin.
Příklad 3
Fermentace v tancích ml vegetativní kultury z příkladu 1 se naočkuje do baněk s objemem 2 litry a s obsahem 500 ml téhož vegetativního prostředí. Očkovací kultura z tohoto druhého stupně se dále inkubuje 72 hodin při teplotě 28 °C na rotační třepačce při 250 výkyvech za minutu. 500 ml této kultury se potom užije k naočkování fermentoru o objemu 16 litrů (New Brunswick Microgen) s obsahem 10 litrů produkčního prostředí se složením, uvedeným v příkladu 2. Fermentace se provádí při teplotě 28 °C při provzdušnění jedním objemem za minutu a při míchání 250 výkyvy za minutu. Produkce antibiotika kedarcidinu se sleduje příslušnými biologickými pokusy in vitro.
-17CZ 279196 B6
Příklad 4
Izolace a čištění kedarcidinu litrů surového fermentačního prostředí se smísí s 6 litry Dicalitu a výsledná řídká emulze se zfiltruje přes vrstvu Dicalitu. Nerozpustný podíl se odloží a filtrát se čerpadlem prohání iontoměničovou pryskyřicí Zeta Prep 250 QAE v obchodně dodávaném sloupci (LKB-Produkter AB, Švédsko) rychlostí 30 ml za minutu. Sloupec se předem uvede do rovnovážného stavu použitím 2 litrů 50 mM tris-pufru s kyselinou chlorovodíkovou o pH 7,4. Eluát se shromažďuje. Sloupec se potom promyje shora uvedeným pufrem,a to nejprve 1 litrem téhož pufru a potom 500 ml téhož pufru s obsahem 0,5 M chloridu sodného. Eluát se odebírá a zahustí z 500 ml na 100 ml při použití standardní ultrafiltrační komůrky (Amicon), opatřené membránou (Amicon YM5). Koncentrovaný roztok se potom nechá projít sloupcem o rozměru 5 x 10 cm s náplni 14 000 ml gelu Ultrogel AcA54 (LKB-Produkter AB, Švédsko) ve stejném objemu 50 mM tris-pufru s kyselinou chlorovodíkovou. Ultrogel se uvede do rovnovážného stavu před průchodem zkoumaného materiálu použitím 5 litrů 50 mM tris-pufru s kyselinou chlorovodíkovou o pH 7,4. Sloupec se vymývá 2 litry téhož pufru rychlostí 60 ml/min. Nejprve se nechá projít 450 ml eluátu, potom se odebírají frakce s objemem 10 ml a každá z nich se zkouší proti B. subtilis. Ty frakce, které poskytují inhibiční zóny, tj. 83 až 133 se lijí a potom zahustí ulrafiltrací na objem 100 ml. Koncentrovaný roztok se nechá projít sloupcem s rozměrem 2,5 x 15 cm s náplní suspenze 70 ml iontoměniče DEAE Trisacryl (LKB-Produkter AB, Švédsko) ve stejném objemu 50 mM tris-HCl-pufru. Vrstva Trisakrylu se uvede do rovnovážného stavu desetinásobným objemem téhož pufru. Naplněný sloupec se nejprve promyje 10 objemy téhož pufru, potom se užije 300 ml lineárního gradientu (stoupání = 0,1 M/h. ) od 100% svrchu uvedeného pufru téhož složení s 0,5 M chloridu sodného při rychlosti průtoku 60 ml/h. Odebere se celkem 47 frakcí po 5 ml, frakce se zkouší proti B. subtilis. Účinné frakce 25 až 37 se slijí a podrobí analytické filtraci na gelu a vysokotlaké kapalinové chromatografii při použití sloupce Waters Protein Analysis column 1-125 při použití 0,2 M tris-pufru s acetátem o pH 7,0 při rychlosti průtoku 1 ml/min a použití detektoru v ultafialovém světle při 260 nm. Za těchto podmínek má chromátogram jediný vrchol při době retence 8,3 minuty. Slité frakce jsou také homogenní při stanovení isoelektrického bodu a při použití SDS-PAGE za shora uvedených podmínek. Koncentrace účinné složky byla stanovena 4,25 mg/ml lyofilizací podílu s objemem 10 ml s opravou na hmotnost pufru.
Průmyslová využitelnost
Protinádorové antibiotikum potlačující růst nádorů u savců a získatelné kultivací biologicky čisté kultury nového mikroorganismu Streptoalloteichus sp. nov., kmen L585-6, ATCC 5350.

Claims (4)

1. Antibiotikum kedarcidin, které je polypeptidem s následujícím aminokyselinovým řetězcem
X-ala-ala-val-ser-val-ser-pro-ala-thr-gly-leu-ala-asp-gly-ala-thr-val-thr-val-ser-ala-ser-gly-phe-ala-thr-ser-thr-ser-ala-thr-ala-leu-gln-cys-ala-ile-leu-ala-asp-gly-arg-gly-ala-cys-asn-val-ala-glu-phe-his-asp-phe-ser-leu-ser-gly-gly-glu-gly-thr-thr-ser-val-val-val-arg-arg-ser-phe-thr-gly-tyr-val-met-pro-asp-gly-pro-glu-val-gly-ala-val-asp-cys-asp-thr-ala-pro-gly-gly-cys-gln-ile-val-val-gly-gly-asn-thr-gly-glu-tyr-gly-asn-ala-ala-ile-ser-phe-gly-OH, kde X znamená H-ala-ser, H ser nebo H, vzhledu špinavě zbarvené pevné látky, o molekulové hmotnosti 12 400 při stanovení elektroforézou na SDS-polyakrylamidovém gelu, 17 000 při stanovení filtrací na gelu a vysokotlakou kapalinovou chromatografií, se spektrem v ultrafialovém světle podle obr. 1, mající isoelektrický bod 3,65 a připravitelné pěstováním kultury mikroorganismu Streptoalfoteichus sp. nov. , kmen L585-6, ATCC 53650, produkujícího kedarcidin v prostředí, obsahujícím využitelné zdroje uhlíku a dusíku v submerzní kultuře za aerobních podmínek s následnou izolací antibiotika ze živného prostředí.
2. Způsob přípravy antibiotika kedarcidin podle nároku 1, vyznačující se tím, že se pěstuje biologicky čistá kultura mikroorganismu Streptoalloteichus sp. nov., kmen L585-6, ATCC 53650, produkující kedarcidin v prostředí, obsahujícím využitelné zdroje uhlíku a dusíku v submerzní kultuře za aerobních podmínek s následnou izolací antibiotika ze živného prostředí.
3. Farmaceutický prostředek pro inhibici růstu nádorů, citlivých na kedarcidin u savců, vyznačující se tím, že jako účinnou látku obsahuje kedarcidin v množství dostatečném k inhibici nádoru, a farmaceuticky vhodný nosič.
4. Biologicky čistá kultura mikroorganismu Streptoalloteichus sp. nov., kmen L585-6, ATCC 53650.
CS892256A 1989-03-17 1989-04-12 Protinádorové antibiotikum kedarcidin CZ279196B6 (cs)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US07/323,001 US5001112A (en) 1988-04-12 1989-03-17 Antitumor antibiotic kedarcidin

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ225689A3 CZ225689A3 (en) 1994-04-13
CZ279196B6 true CZ279196B6 (cs) 1995-01-18

Family

ID=23257367

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS892256A CZ279196B6 (cs) 1989-03-17 1989-04-12 Protinádorové antibiotikum kedarcidin

Country Status (1)

Country Link
CZ (1) CZ279196B6 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CZ225689A3 (en) 1994-04-13

Similar Documents

Publication Publication Date Title
NO164111B (no) Fremgangsmaate for fremstilling av et antibiotisk virksomta 40926-kompleks og dets rene faktorer pa, pb, a, b og bomikron.
PL122756B1 (en) Process for preparing novel a-21978 antibiotic
EP0132118B1 (en) Antibiotics produced by kibdelosporangium aridum shearer gen. nov., sp. nov. atcc 39323
AU623641B2 (en) Antitumor antibiotic kedaricin
US6482412B1 (en) Polypeptide having human HIV inhibitory activity, a gene encoding the polypeptide, a method to produce the polypeptide
CZ279196B6 (cs) Protinádorové antibiotikum kedarcidin
FI87469B (fi) Foerfarande foer framstaellning av antibiotikum a 42867 och dess additionssalter.
EP0213320B1 (en) Physiologically active formamides
JP2593495B2 (ja) 化合物tan−999、その製造法および用途
US4672036A (en) Pure cultures of Kibdelsporangium aridum Shearer gen. nov., sp. nov. ATCC 39323 and mutants thereof
KR860001291B1 (ko) A 53868인자 a의 제조방법
JP2625129B2 (ja) 酵素活性阻害剤及びその製造法
CS251077B2 (en) Method of new polypeptide antibiotic production with antitumor effect
US4482488A (en) Antibiotic A53868 and process for production thereof
DD280553A5 (de) Verfahren zur herstellung des antibiotikums kedarcidin
CA2110827A1 (en) Antiviral antibiotic bu-4724v and preparation thereof
US4797280A (en) Antibiotics produced by Kibdelosporangium aridum Shearer gen. nov., sp. nov. ATCC 39323
CA2110854A1 (en) Antiviral antibiotic bu-4628v and preparation thereof