CZ25103U1 - Reakční směs L2 pro molekulární detekci viru sviň útky bramboru (PLRV) pomocí kvantitativní RT-PCR - Google Patents
Reakční směs L2 pro molekulární detekci viru sviň útky bramboru (PLRV) pomocí kvantitativní RT-PCR Download PDFInfo
- Publication number
- CZ25103U1 CZ25103U1 CZ201327391U CZ201327391U CZ25103U1 CZ 25103 U1 CZ25103 U1 CZ 25103U1 CZ 201327391 U CZ201327391 U CZ 201327391U CZ 201327391 U CZ201327391 U CZ 201327391U CZ 25103 U1 CZ25103 U1 CZ 25103U1
- Authority
- CZ
- Czechia
- Prior art keywords
- pcr
- plrv
- reaction mixture
- quantitative
- potato
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Description
Oblast techniky
Řešení se týká reakční směsi L2 pro diagnostiku viru svinutky bramboru (PLRV) pomocí kvantitativní RT-PCR, který je závažným karanténním viroidním onemocněním bramboru, pomocí molekulární detekce viroidní RNA molekulární metodou reverzní transkripce - polymerázová řetězová reakce v reálném čase (dále QRT-PCR).
Dosavadní stav techniky
Virová svinutka bramboru patří mezi závažná virová onemocnění bramboru způsobující snížení výnosu až o 80%. Virus svinutky je přenášen pouze savým hmyzem a sadbou (Rasocha et al., 2007). Virus svinutky (PLRV) způsobuje komoutovité stáčení listů, nejdříve ve spodním patru, později i ve vyšších patrech rostlin. Listy jsou kožovitě tuhé, při dotyku šustí, při zmáčknutí praskají. Rostliny jsou světlejší, chlorózní, obvykle nižšího vzrůstu se zkrácenými intemodiemi. Hlízy jsou většinou drobnější. Přítomnost viru svinutky bramboru se převážně zjišťuje laboratorními metodami, nejdéle a nejčastěji imunoenzymatickou metodou ELISA (Clark a Adams, 1977).
Druhým postupem je použití specifických molekulárních sond. Tento test je založen na hybridizaci uměle připravené sondy DNA (pomocí metod genetického inženýrství) komplementární k RNA viroidu. PLRV se váže na pevnou podložku (nitrocelulóza, nylon) a je detekován hybrid DNA - RNA. Protože PLRV cDNA je klonována, lze ji získat bez větších nákladů v dostatečném množství. Tato metoda je velmi citlivá, není třeba inokulovat mezihostitele a při přípravě vzorků zdlouhavě purifikovat RNA. Použití pouze částečně přečištěné šťávy z rostlin bramborů zjednodušuje, urychluje a zlevňuje přípravu vzorků. Diagnostické sondy DNA lze značit radioaktivně (32P) nebo neradioaktivně (biotin, digoxigenin). Hybridizační techniky detekce jsou nyní v mnoha obměnách užívány nejen pro detekci PLRV, ale i pro další viry.
Třetí možností jsou postupy využívající technik RT-PCR a RT-PCR v reálném čase. Metoda kvantitativní PCR je založena na stanovování fluorescence produktu PCR v jednotlivých vzorcích po každém cyklu PCR pomocí fluorescenčních sond a stanovování počtu cyklů potřebných pro dosažení prahové fluorescence. Stanovování se provádí na základě měřených změn fluorescence fluorescenční sondy. Používají se jednak nespecifická sonda využívající SybrGreen I, nebo fluorchromem značené sondy specifické pro amplifikovaný úsek dané nukleové kyseliny. Existuje více typů specifických sond, avšak nej častěji používané sondy pro kvantifikaci jsou lineární hydrolyzační sondy tzv. TaqMan sondy (Ptáček a Dědič., 2009).
Metody a postupy založené na detekci virové nukleové kyseliny pomocí specifických primerů pro reverzní transkripci - polymerázovou řetězovou reakci (RT-PCR) jsou řádově citlivější než metoda ELISA nebo hybridizační postupy a jsou v současnosti více používány. Metoda kvantitativní RT-PCR je jednou z nej citlivějších používaných diagnostických metod a nachází uplatnění v detekci širokého spektra patogenů bramboru. Metoda pro specifickou detekci PLRV pomocí kvantitativní RT-PCR nebyla do současnosti v ČR navržena.
Podstata technického řešení
Uvedené nedostatky odstraňuje reakční směs L2 pro molekulární detekci viru svinutky bramboru (PLRV) pomocí reverzní transkripce - polymerázové řetězové reakce v reálném čase (QRTPCR), podle technického řešení, jehož podstata spočívá v tom, že směs obsahuje 1 μΐ vzorku testované RNA, dále činidlo obsahující směs enzymů reverzní transkriptázy a DNA polymerázy, směs nukleotidů, pufr obsahující chlorid horečnatý MgCI2, sterilní destilovanou vodu doplňující reakční směs do konečného objemu 25 μΐ a příměry o specifické nukleotidové sekvenci
CZ 25103 Ul
L-3989F: AAT TCC AAA TTA CGA AGG GCG GCG
L-4098R: ATT TCC CTT CCA CAG TAT CCG GCA, amplifikující fragment o velikosti 109 bp, a sondu
L-4043S: GG GTA GAA TGG CAC GAT TCT TCT GAG GA, přičemž sonda je značena fluorescenčním barvivém 6-karboxyfluoresceinem (FAM) a jako zhášeč je použit tetrametylkarboxyrhodamin (TAMRA).
Primery a sondy pro detekci PLRV pomocí QRT-PCR (Ptáček a Dědic, 2009) byly navrženy na základě sekvence izolátu PLRV (Plchová et al, 2009), čísla v názvu značí umístění primerů io a sondy v genomu PLRV.
Reakční směs L2 podle technického řešení se připravuje v mikrozkumavce a obsahuje 1 μΐ vzorku testované RNA, jakékoli komerční činidlo obsahující směs enzymů reverzní transkriptázy a DNA polymerázy, směs oligonukleotidů, pufr obsahující chlorid hořečnatý MgCl2, např. Brilliant II QRT-PCR 1-Step Master Mix, dále sterilní destilovanou vodu doplňující reakční směs do konečného objemu 25 μΐ.
Vlastní QRT-PCR probíhá v real-time termocykleru v 0,2ml PCR zkumavkách (stripech, destičkách) 30 min při 48 °C, následuje desetiminutová denaturace při 95 °C a 40 cyklů, obsahujících 2 kroky: 15 sekund pří 95 °C a 1 minuta při 60 °C.
Reakční směs L2 podle technického řešení umožňuje exaktní stanovení viru svinutky bramboru (PLRV), což má velký význam při produkci sadbových brambor na území České republiky.
Následující příklady provedení reakční směs L2 podle technického řešení pouze dokládají, aniž by ji jakkoliv omezovaly.
Příklady provedení
Příklad 1
U 55 sbírkových izolátů tohoto viru byly ověřeny možnosti jeho detekce v postupech RT-PCR a QRT-PCR. Pro vlastní zkoušení byly používány jak metody izolace celkové nukleové kyseliny (NA), tak imunovazebné techniky (IC). U RT-PCR byly získány optimální výsledky pomocí primerů dle Solimana, kterými byly detekovány všechny zkoušené izoláty. Pro detekci PLRV metodou QRT-PCR byly na základě sekvenční analýzy českého izolátu (Plchová et al, 2009) navrženy sady primerů a sondy TaqMan. K vizualizaci amplifikátů virové NA v postupech dvoukrokové QRT-PCR bylo používáno jak nespecifické značení pomocí SYBR Green, tak za použití vlastní specifické TaqMan sondy. Detekce PLRV pomocí QRT-PCR byla možná a spolehlivá pří obou postupech značení DNA. Dosažené výsledky byly z hlediska citlivosti a spolehlivosti porovnány s metodou ELISA.
Pro vlastní experimenty byly používány izoláty jednotlivých virů ze sbírkové kolekce mikroorganizmů (http://www.vurv.cz/collections/) udržované ve VÚB Havlíčkův Brod, CZ, v podmínkách in vitro. Celkově bylo testováno 59 vzorků, z toho 4 negativní kontroly.
Pro izolaci celkové RNA lze použít mnoho různých postupů, z hlediska časové náročnosti, kvality získané RNA a reprodukovatelnosti izolačního procesu je optimální použít některou z široké škály komerčních souprav (Obvitek, Roche, atd.). Původci doporučují postup extrakce RNA pomocí RNeasy Plant Total RNA Kit (QIAGEN).
QRT-PCR probíhala v 0,2ml PCR zkumavkách (destičkách, stripech), nejdříve 30 min při 48 °C, poté 10 min úvodní denaturace 95 °C, 40 cyklů (15 s 95 °C, 60 s 60 °C v real-time termocykleru, Brilliant 11 QRT-PCR Master Mix Kit, 1-Step, 600809 Stratagene, objem reakce 25 μΐ, 12,5 μΐ
CZ 25103 Ul
2x master mix, 1,0 μΐ RT/RNase block enzyme (směs reverzní transkriptázy a RNasin), 0,1 μΐ primer L-3989F ΙΟΟμΜ, 0,1 μΐ primer L-4098R ΙΟΟμΜ, 1 μΐ sonda 30μΜ, 9,3 μΐ voda, 1 μΐ RNA.
Výsledek QRT-PCR byl analyzován pomocí měření fluorescence dR, jak je zobrazeno na Obr. 1, kde je QRT-PCR - ukázka amplifikačních křivek detekce PLRV.
Průmyslová využitelnost
Reakční směs L2 pro diagnostiku viru svinutky bramboru (PLRV) pomocí kvantitativní RT-PCR je možno dodávat laboratořím zabývajícím se detekcí rostlinných patogenů jako detekční soupravu k jednoduchému okamžitému použití, kdy na uživateli je pouze přidat svůj vzorek testované io RNA a provést QRT-PCR reakci dle přesně stanovených podmínek.
Seznam publikaci původců
PTÁČEK, J. - DĚDIČ, P. Detekce a identifikace izolátů viru svinutky bramboru (PLRV) pomocí molekulárních technik RT-PCR a QRT-PCR, Vědecké práce - Výzkumný ústav bramborárský Havlíčkův Brod, 2009, 17, 25-35.
Použitá literatura
PEIMAN, M. - XIE, C. (2006): Sensitive detection of potato viruses, PVX, PLRV, and PVS in potato leaf and tuber. Australasian Plant Diseases Notes 1(1): 41-46.
PLCHOVÁ, H. - ČEŘOVSKÁ, N. - MORAVEC, T. - DĚDIČ P. (2009): Molecular analysis of Potato leafroll virus isolates from the Czech Republic. VIRUS GENES 39, 1, 153-155.
RASOCHA, V. - HAUSVATER, E. - DOLEŽAL, P. Mšice - významní přenašeči virových chorob brambor, jejich výskyt, škodlivost a možnosti ochrany, Výzkumný ústav bramborářský Havlíčkův Brod, s.r.o. 2007.
Claims (1)
- NÁROKY NA OCHRANU1. Reakční směs L2 pro molekulární detekci viru svinutky bramboru (PLRV) pomocí metody 25 kvantitativní RT-PCR (QRT-PCR), vyznačující se tím, že obsahuje 1 μΐ vzorku testované RNA, dále činidlo obsahující směs enzymů reverzní transkriptázy a DNA polymerázy, směs nukleotidů, pufr obsahující chlorid horečnatý MgCb, sterilní destilovanou vodu doplňující reakční směs do konečného objemu 25 μΙ a primery o specifické nukleotidové sekvenciL-3989F: AAT TCC AAA TTA CGA AGG GCG GCG30 L-4098R: ATT TCC CTT CCA CAG TAT CCG GCA, amplifikující fragment o velikosti 109 bp, a sonduL-4043S: GG GTA GAA TGG CAC GAT TCT TCT GAG GA, přičemž sonda je značena fluorescenčním barvivém 6-karboxyfluoresceinem (FAM) a jako zhá35 šeč je použit tetramethylkarboxyrhodamin (TAMRA).
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CZ201327391U CZ25103U1 (cs) | 2013-01-31 | 2013-01-31 | Reakční směs L2 pro molekulární detekci viru sviň útky bramboru (PLRV) pomocí kvantitativní RT-PCR |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CZ201327391U CZ25103U1 (cs) | 2013-01-31 | 2013-01-31 | Reakční směs L2 pro molekulární detekci viru sviň útky bramboru (PLRV) pomocí kvantitativní RT-PCR |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CZ25103U1 true CZ25103U1 (cs) | 2013-03-18 |
Family
ID=47901708
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CZ201327391U CZ25103U1 (cs) | 2013-01-31 | 2013-01-31 | Reakční směs L2 pro molekulární detekci viru sviň útky bramboru (PLRV) pomocí kvantitativní RT-PCR |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CZ (1) | CZ25103U1 (cs) |
-
2013
- 2013-01-31 CZ CZ201327391U patent/CZ25103U1/cs not_active IP Right Cessation
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Osman et al. | Comparison of low-density arrays, RT-PCR and real-time TaqMan® RT-PCR in detection of grapevine viruses | |
Mohamed et al. | A sensitive and quantitative single-tube real-time reverse transcriptase-PCR for detection of enteroviral RNA | |
JP2013055956A5 (cs) | ||
CN103614489B (zh) | 一种登革热病毒的恒温扩增检测试剂盒及检测方法 | |
Papayiannis | Diagnostic real-time RT-PCR for the simultaneous detection of Citrus exocortis viroid and Hop stunt viroid | |
CN111719016A (zh) | 检测新冠病毒2019-nCoV以及甲型、乙型流感病毒的组合物及应用 | |
Park et al. | Loop-mediated isothermal amplification for the rapid detection of Chrysanthemum chlorotic mottle viroid (CChMVd) | |
RU2504585C1 (ru) | Набор олигодезоксирибонуклеотидных праймеров и флуоресцентно-меченного зонда для идентификации рнк коронавируса человека, ассоциированного с тяжелым острым респираторным синдромом | |
Suzuki et al. | Development of reverse transcription loop-mediated isothermal amplification assay as a simple detection method of Chrysanthemum stem necrosis virus in chrysanthemum and tomato | |
Thanarajoo et al. | Detection of Coconut cadang-cadang viroid (CCCVd) in oil palm by reverse transcription loop-mediated isothermal amplification (RT-LAMP) | |
Noris et al. | Real-time PCR protocols for the quantification of the begomovirus tomato yellow leaf curl Sardinia virus in tomato plants and in its insect vector | |
CN105154584B (zh) | 一种快速区分prrsv经典毒株和变异毒株的hrm非标记探针方法及其引物和探针 | |
CN102286639A (zh) | 甲型h1n1/甲型流感病毒核酸双重荧光pcr检测试剂盒 | |
CN112011650B (zh) | 中华蜜蜂囊状幼虫病毒rt-rpa检测引物和探针及试剂盒 | |
Xia et al. | Rapid detection of Banna virus by reverse transcription-loop-mediated isothermal amplification (RT-LAMP) | |
Viswanathan et al. | Duplex—reverse transcription—polymerase chain reaction (D-RT-PCR)-a technique for the simultaneous detection of viruses causing sugarcane mosaic | |
CN106939356B (zh) | 一种快速检测蜜蜂丝状病毒的检测引物组、检测试剂盒和检测方法 | |
CZ25103U1 (cs) | Reakční směs L2 pro molekulární detekci viru sviň útky bramboru (PLRV) pomocí kvantitativní RT-PCR | |
CZ201369A3 (cs) | Reakční směs L3 pro molekulární detekci viru svinutky bramboru (PLRV) pomocí kvantitativní RT-PCR | |
Olmos et al. | Molecular diagnostic methods for plant viruses | |
CN114032337A (zh) | 一种呼吸道病原体检测试剂盒及其制备方法与应用 | |
CZ201366A3 (cs) | Reakční směs L2 pro molekulární detekci viru svinutky bramboru (PLRV) pomocí kvantitativní RT-PCR | |
CZ25101U1 (cs) | Reakční směs Ll pro molekulární detekci viru svinutky bramboru (PLRV) pomocí kvantitativní RT-PCR | |
CN106011308A (zh) | 丙型肝炎病毒基因分型检测试剂盒、寡核苷酸及其应用 | |
RU2795016C1 (ru) | Олигонуклеотиды для определения мутации S:delVYY143-145 SARS-CoV-2 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
FG1K | Utility model registered |
Effective date: 20130318 |
|
MK1K | Utility model expired |
Effective date: 20170131 |