CZ20022192A3 - Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami a vakcina - Google Patents

Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami a vakcina Download PDF

Info

Publication number
CZ20022192A3
CZ20022192A3 CZ20022192A CZ20022192A CZ20022192A3 CZ 20022192 A3 CZ20022192 A3 CZ 20022192A3 CZ 20022192 A CZ20022192 A CZ 20022192A CZ 20022192 A CZ20022192 A CZ 20022192A CZ 20022192 A3 CZ20022192 A3 CZ 20022192A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
nucleic acid
acid vaccine
vaccine construct
construct
polypeptide
Prior art date
Application number
CZ20022192A
Other languages
English (en)
Inventor
James Scott Crowe
Jonathan Henry Ellis
Original Assignee
Glaxo Group Limited
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Glaxo Group Limited filed Critical Glaxo Group Limited
Publication of CZ20022192A3 publication Critical patent/CZ20022192A3/cs

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00Antineoplastic agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/0005Vertebrate antigens
    • A61K39/0011Cancer antigens
    • A61K39/001169Tumor associated carbohydrates
    • A61K39/00117Mucins, e.g. MUC-1
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • C12N15/113Non-coding nucleic acids modulating the expression of genes, e.g. antisense oligonucleotides; Antisense DNA or RNA; Triplex- forming oligonucleotides; Catalytic nucleic acids, e.g. ribozymes; Nucleic acids used in co-suppression or gene silencing
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P5/00Drugs for disorders of the endocrine system
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/51Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/53DNA (RNA) vaccination

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)

Description

Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami a vakcina
Oblast techniky
Předkládaný vynález se týká konstruktu pro vakcinaci nukleovými kyselinami obsahujícího izolované polynukleotidy kódující polypeptidy, které jsou glykosylační varianty proteinu MUC1, vakciny s obsahem těchto konstruktů a použití konstruktů nebo prostředků pro vakcinaci savců.
Dosavadní stav techniky
Mucin MUC1 epiteliálních buněk (známý také jako episialin nebo polymorfní epiteliální mucin, PEM) je glykoprotein s velkou molekulovou hmotností exprimovaný na mnoha epiteliálních buňkách. Tento protein se skládá z cytoplasmatického konce, transmembránové domény a proměnlivého počtu tandemových opakování motivu 20 aminokyselin (zde nazývaný jako monomer VNTR, může být také znám pod názvem epitop VNTR nebo opakovaná sekvence (repeat) VNTR) obsahujícího vysoký podíl prolinových, serinových a threoninových zbytků. Počet opakování je variabilní v důsledku genetické mnohotvárnosti v místě MUC1, a nejčastěji je v rozmezí mezi 30 a 100 (Swallow a další, 1987, Nátuře 328: 82 - 84). V normálním epiteliu kanálků se protein MUC1 nalézá pouze na apikálním povrchu buněk, vystaven vnitřnímu prostoru kanálku (Graham a další, 1996, Cancer Immunol. Immunother. 42: 71 - 80; Barratt-Boyes a další, 1996, Cancer. Immunol. Immunother. 43: 142 - 151). Jedním z nejzajímavějších rysů molekuly MUC1 je výrazná O-vázaná glykosylace. Uvnitř každého monomeru VNTR MUC1 existuje pět Oglykosylačních míst. Podle systému číslování použitého na obr. 1 jde o Thr-6, Ser-7, Thr-11, Ser-17 a Thr-18.
V maligních karcinomech vznikajících neoplastickou transformací těchto epiteliálních buněk postihuje expresi MUC1 několik změn. Polarizovaná exprese proteinu se již nevyskytuje, a protein se nachází rozšířen na celém povrchu transformované buňky. Celkové množství MUC1 je rovněž zvýšeno, často desetinásobně nebo i více (Strous & Dekker, 1992, Crit. Rev. Biochem. Mol. Biol. 27: 57 - 92). Nejvýznamnější je, že se významně mění kvantita a kvalita O-vázaných uhlohydrátových řetězců. Je glykosylováno méně zbytků šeřinu a threoninu. Tyto uhlohydrátové řetězce, které se v takových buňkách nacházejí, jsou abnormálně zkrácené a vytvářejí uhlohydrátový antigen asociovaný s tumorem (tumour-associated carbohydrate antigen, STn) (Lloyd a další, 1996, J. Biol. Chem., 271: 33325 - 33334). V důsledku těchto glykosylačních změn se začnou být přístupné různé epitopy na peptidovém řetězci MUC1, které byly dříve stíněny uhlohydrátovými řetězci. Jeden z epitopů, které se tímto způsobem zpřístupní, je sekvence APDTR (Ala 8-Arg 12 na obr. 1) přítomná v každém monomeru VNTR s délkou 20 aminokyselin (Burchell a další, 1989, Int. J. Cancer 44: 691 - 696).
Je tedy zřejmé, že na základě těchto změn v proteinu MUC1 lze získat vakcinu, která může aktivovat imunitní systém proti formě MUC1 exprimované na tumorech, a která může být účinná proti tumorům epiteliálních buněk, a samozřejmě také proti typům buněk, ve kterých se MUC1 nachází, jako jsou T-buněčné lymfocyty. Jedním z hlavních efektorových mechanismů používaných imunitním systémem pro usmrcování buněk exprimujících abnormální proteiny je imunitní odpověď cytotoxických T-lymfocytů (CTL), a tato odpověď je žádoucí u vakciny pro léčení tumorů stejně jako odpověď protilátek. Dobrá vakcina bude aktivovat všechny složky imunitní odpovědi. Současné vakciny založené na uhlohydrátech a peptidech jako je Theratope nebo BLP25 (Biomira lne., Edmonton, Kanada) však preferenčně aktivují pouze jednu část imunitní odpovědi - humorální, popřípadě
- 3 • · • · buněčnou odpověď, takže by bylo vhodné získat lepší vakcinu s vyváženější odpovědí.
Vakciny na bázi nukleových kyselin poskytují proti konvenční vakcinaci proteiny řadu výhod tím, že jsou laciné a mohou být snadno vyráběny ve velkém množství. Uvádí se, že jsou schopny poskytnout silnou imunitní odpověď i při malých dávkách, a že mohou indukovat imunitní odpověď cytotoxických T-lymfocytů stejně jako odpověď protilátek. Existuje však technická překážka, která brání rozvoji účinných vakcin proti MUC1 na bázi nukleových kyselin.
Při vakcinaci nukleovou kyselinou se molekula nukleové kyseliny kódující zvolený antigen zavádí do normálních buněk hostitele. Jestliže se vakcina na bázi nukleové kyseliny kódující polypeptid MUC1 dodá přenosem genu prostřednictvím částic (particle-mediated gene transfer, US patent 5371015), nejčastějšími transfekovanými buňkami budou pravděpodobně keratinocyty nebo kožní Langerhansovy buňky. Podobně, jestliže se nukleová kyselina dodá intramuskulární injekcí, hlavními typy cílových buněk jsou buňky kosterního svalstva a buňky předkládající antigen odvozené z kostní dřeně. Každá z těchto buněk má fyziologickou rovnováhu glykosylačních enzymů, a tak bude glykosylovat genový produkt MUC1 kódovaný vakcinou takovým způsobem, aby napodobovala MUC1 v normálním epitelu, namísto odlišně glykosylované formy, která se nalézá v transformovaných buňkách. Téměř každá buňka, která je transfekována polynukleotidem kódujícím MUC1, bude glykosylovat genový produkt kódovaný touto vakcinou. Ačkoli je tedy možné pozorovat určité výsledky, vakcina nebude optimálně stimulovat imunitu proti tumorovým buňkám.
Předkládaný vynález tedy poskytuje konstrukty pro vakcinaci nukleovými kyselinami, které kódují polypeptid obsahující monomer VNTR nebo jeho opakování nebo fragmenty, které byly manipulovány tak, že kódovaná sekvence nemůže být úplně glykosylována • · · · ·
-4-*’ normálním buněčným mechanismem. Autoři vynálezu toho překvapivě dosáhli v jednom provedení vynálezu vytvořením nových aminokyselinových substitucí v kódovaném polypeptidu metodami genového inženýrství. Autoři vynálezu vytvořili konstrukty nukleové kyseliny pro vakcinaci, které obsahují polynukleotidy kódující polypeptidy, které si zachovávají konformaci epitopů MUC1, což je nezbytný požadavek pro trvalou imunogenicitu změněných polypeptidů, a které mají sníženou glykosylaci, čímž blíže napodobují formu MUC1 exprimovanou na tumorech.
Podstata vynálezu
Podle jednoho provedení předkládaného vynálezu se poskytuje konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami, který obsahuje izolovaný polynukleotid kódující polypeptid obsahující alespoň pět za sebou následujících aminokyselinových zbytků z monomeru VNTR proteinu MUC1 včetně jednoho nebo více glykosylačních míst, který se vyznačuje tím, že tento polypeptid obsahuje alespoň jednu mutaci aminokyseliny, která zabrání glykosylaci nebo změní glykosylaci na alespoň jednom z uvedených glykosylačních míst.
V jednom provedení se skládá polypeptid kódovaný konstruktem nukleové kyseliny pro vakcinaci z jedné kopie monomeru VNTR proteinu MUC1. V dalším provedení se polypeptid kódovaný konstruktem nukleové kyseliny pro vakcinaci skládá z fragmentu monomeru VNTR proteinu MUC1.
V dalším provedení vynálezu se poskytuje vakcina obsahující konstrukt nukleové kyseliny pro vakcinaci jak je zde definován, v kombinaci s farmaceuticky přijatelným nosičem.
V dalším provedení vynálezu se poskytuje konstrukt nukleové kyseliny pro vakcinaci nebo vakcina jak jsou zde definovány, pro • · · ···· · · · · ····· · · · · ·· · • »· ··· ······ · · ···· ·· « ··· g ·· ·· ·· ·· · · ···· výrobu farmaceutického prostředku pro použití při vakcinaci savce proti tumorům.
V dalším provedení vynálezu se poskytuje způsob vakcinace savce proti tumorům, který zahrnuje podávání konstruktu nukleové kyseliny pro vakcinaci nebo vakciny, jak jsou zde definovány.
Podrobný popis vynálezu
V popisu přihlášky a přiložených nárocích, pokud není uvedeno jinak, mají výrazy „zahrnovat“ a „obsahovat“ nebo jejich varianty inkluzivní význam, tj. použití těchto slov umožňuje zahrnutí celků nebo prvků, které nejsou specificky uvedeny.
Jak se zde uvádí, předkládaný vynález se týká konstruktů pro vakcinaci nukleovou kyselinou obsahujících izolované polynukleotidy, přičemž tyto konstrukty jsou použitelné při vakcinaci proti tumorům. V kontextu tohoto vynálezu má termín „izolovaný“ vyjádřit, že polynukleotid není ve svém nativním stavu, protože byl alespoň do určitého stupně vyčištěn nebo vyroben synteticky, například rekombinantními metodami nebo mechanickou syntézou. Termín „izolovaný“ proto zahrnuje možnost kombinaci polynukleotidů s jiným biologickým nebo nebiologickým materiálem, jako jsou buňky, suspenze buněk nebo buněčné fragmenty, proteiny, peptidy, expresní vektory, organická nebo anorganická rozpouštědla, nebo jiné materiály v případech, kdy je to vhodné, ale vylučuje situaci, kdy je polynukleotid ve stavu, ve kterém se nachází v přírodě.
Polypeptidy kódované izolovanými polynukleotidy obsaženými v konstruktech pro vakcinaci nukleovou kyselinou podle předkládaného vynálezu se nazývají v přihlášce a v nárocích „kódované polypeptidy“. Tyto kódované polypeptidy obsahují alespoň pět za sebou následujících aminokyselinových zbytků z monomeru VNTR glykoproteinu MUC1, přičemž jedna nebo více těchto • ·· · · ·· · • ···· · ·· · · · · • ·· · · · ······ · · ···· ·· · ··· θ ·· ·· «· ·· ······ aminokyselin je glykosylační místo, a na alespoň jednom z těchto glykosylačních míst bylo zabráněno glykosylaci nebo byla glykosylace změněna. Uvedené kódované polypeptidy obsahují s výhodou alespoň 10, například 13, 15, 16, 17, 18, nebo 19 aminokyselin z monomeru VNTR glykoproteinu MUC1. Zvláště výhodně obsahují tyto kódované polypeptidy alespoň 20 aminokyselin z monomeru VNTR MUC1. Tyto za sebou následující aminokyseliny mohou pocházet výlučně z jednoho monomeru VNTR, nebo se mohou rozprostírat přes více monomerů, například tři z uvedených za sebou následujících aminokyselin mohou být z N-konce jednoho monomeru VNTR a další dvě aminokyseliny mohou být z C-konce druhého monomeru VNTR.
Termín „alespoň pět za sebou následujících aminokyselin“ zahrnuje případ, kdy byla mutací aminokyselin změněna jedna nebo více uvedených aminokyselin ve srovnání se standardním typem. Tak například kódovaný polypeptid, který má sekvenci obsahující tři aminokyseliny ze sekvence standardního typu, potom obsahuje substituci aminokyseliny místo další aminokyseliny standardního typu, a potom následují tři aminokyseliny ze sekvence standardního typu, je pokládán za kódovaný polypeptid obsahující alespoň pět za sebou následujících aminokyselin z monomeru VNTR MUC1.
Vynález zahrnuje konstrukty pro vakcinaci nukleovými kyselinami, které obsahují izolované polynukleotidy kódující polypeptidy s jakoukoli permutací monomerů VNTR nebo fragmentů monomerů, které obsahují alespoň jedno glykosylační místo, a kde na alespoň jednom glykosylačním místě je zabráněno glykosylaci nebo je glykosylace změněna. V jednom provedení je izolovaný polynukleotid obsažený v konstruktech pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle vynálezu takový, že se kódovaný polypeptid skládá z jedné až deseti kopií monomeru VNTR. V dalším provedení je izolovaný polynukleotid obsažený v konstruktech pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle vynálezu takový, že se kódovaný polypeptid skládá z 10 nebo více kopií monomeru VNTR, například 20, 30, 50, 60, 75, 90 nebo 100 • · · ···· ···· • · · · · · · · · · · · • ·· · · · ······ · « ···· ·· · ··· • · · · · · nebo více kopií monomeru VNTR. V dalším provedení je izolovaný polynukleotid obsažený v konstruktech pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle vynálezu takový, že se kódovaný polypeptid skládá z kombinace opakujících se sekvencí a fragmentů, například jednoho monomeru VNTR a jednoho fragmentu, jednoho až deseti opakování a jednoho až deseti fragmentů, deseti nebo více opakování a deseti nebo více fragmentů, deseti nebo více opakování a deseti nebo méně fragmentů nebo deseti nebo více fragmentů a deseti nebo méně opakování. V dalším provedení je izolovaný polynukleotid obsažený v konstruktech pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle vynálezu takový, že se kódovaný polypeptid skládá z kombinace fragmentů například určitého počtu kopií jednoho fragmentu nebo určitého počtu různých fragmentů. V každém případě, pokud je v kódovaném polypeptidu přítomen více než jeden fragment, mohou být fragmenty stejné nebo různé.
Ve výhodném provedení se kódovaný polypeptid skládá z jediného monomeru VNTR. V dalším výhodném provedení se kódovaný polypeptid skládá z jediného fragmentu monomeru VNTR, přičemž zvláště výhodné je, jestliže tento fragment má sekvenci APDTRP (zbytky 8 - 13 na obr. 1), kde v tomto fragmentu může být mutováno glykosylační místo T.
Změny nebo zabránění glykosylaci se s výhodou dosáhne mutací aminokyselin tvořících glykosylační místa v kódovaných polypeptidech. Termín „mutace aminokyselin“, jak se používá v popisu a v nárocích znamená, že je jedna nebo více aminokyselin v kódovaných polypeptidech odlišných od sekvence monomeru VNTR MUC1 standardního typu tak jak je ukázána na obr. 1. Tato změna může být například delece, inzerce nebo substituce jedno nebo více aminokyselin.
Těchto mutací se dosahuje navržením sekvence izolovaného polynukleotidu obsaženého v konstruktu pro vakcinaci nukleovými ··· · · · · ···· • ···· · ·· · · · · • ·· · · · ······ · · ···· · · · · · ·
- ·· ·· ** ·· ......
kyselinami tak, že kódovaný peptid má aminokyselinové mutace na jednom nebo více glykosylačních místech. Jestliže je požadovaná aminokyselinová mutace substituce, změní se tři nukleotidy kódující tuto aminokyselinu v sekvenci standardního typu na nukleotidy kódující požadovanou aminokyselinu. Jestliže je požadovaná aminokyselinová mutace delece, tři nukleotidy kódující tuto aminokyselinu v sekvenci standardního typu se odstraní. Jestliže je požadovaná aminokyselinová mutace inzerce, tři nukleotidy kódující požadovanou aminokyselinu se vloží do nukleotidové sekvence standardního typu.
Odborník v oboru bude snadno schopen určit požadovanou sekvenci polynukleotidu použitím genetického kódu na požadovaný kódovaný polypeptid. Jakmile byla určena požadovaná sekvence, je možno vyrábět konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami obsahující izolovaný polynukleotid s požadovanou sekvencí tak, jak je popsáno v příkladech. Odborník v oboru bude snadno schopen podle potřeby upravit jakékoli parametry jako jsou primery a podmínky PCR. Odborníkovi v oboru bude také zřejmé, že v důsledku degenerace genetického kódu potenciálně existuje více než jedna izolovaná polynukleotidová sekvence, která může být použita pro produkci požadovaného kódovaného polypeptidu.
Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami obsahuje s výhodou izolovaný polynukleotid zahrnující sekvenci
GC# CC# GA* G(T/U)# CG# CC# kde # může být nukleotid A, G, C nebo T/U, * může být nukleotid T/U nebo C.
Zápis T/U se používá pro označení, že sekvence může být DNA nebo RNA. Jestliže sekvence je DNA, báze v této poloze je T, a jestliže je sekvence RNA, báze v této poloze je U.
« ·
Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami obsahuje alternativně nukleotidovou sekvenci zahrnující sekvenci
GC# CC# GA* AT/U@ CG# CC# kde # může být nukleotid A, G, C nebo T/U * může být nukleotid T/U nebo C @ může být nukleotid T/U, A nebo C
Zápis T/U má stejný význam jako výše.
Zvláště výhodné je, jestliže konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami obsahuje nukleotidovou sekvenci zahrnující sekvenci ukázanou v obr. 2 nebo sekvenci ukázanou v obr. 3.
Ve výhodném provedení je sekvence izolovaného polynukleotidu taková, že aminokyselinovou mutací je substituce. Ve výhodnějším provedení je sekvence izolovaného polynukleotidu taková, že mutací aminokyseliny je substituce serinového nebo threoninového zbytku jiným zbytkem postrádajícím hydroxylovou skupinu, která tvoří místo navázání O-glykosylace. S výhodou je sekvence izolovaného polynukleotidu taková, že serin nebo threonin je nahrazen valinem, isoleucinem, alaninem, asparaginem, fenylalaninem nebo tryptofanem. Výhodněji je sekvence izolovaného polynukleotidu taková, že threonin nebo serin je substituován valinem nebo isoleucinem. Ještě výhodněji je sekvence izolovaného polynukleotidu taková, že threonin je substituován valinem nebo isoleucinem. Ve zvláště výhodném provedení je sekvence izolovaného polynukleotidu taková, že kódovaný polypeptid má theronin v poloze 11 substituován valinem nebo isoleucinem, přičemž zvláště výhodné sekvence jsou ukázána na obr. 2 nebo 3 se zvýrazněnými aminokyselinovými substitucemi. S výhodou je sekvence izolovaného polynukleotidu taková, že kódované polypeptidy byly mutovány tak, že byla změněna glykosylace nebo bylo zabráněno glykosylaci na alespoň 60 %, například 70 %, • · • · · · ·
- 10 -** “ *’* ’* %, 80 %, 85 %, 90 % nebo 100 % glykosylačních míst přítomných v polypeptidech.
Kódované polypeptidy si s výhodou zachovávají imunologickou podobnost s formou MUC1 nalézanou na tumorech. Termín „imunologická podobnost“ má znamenat, že přes mutaci jedné nebo více aminokyselin zůstává konformace jednoho nebo více epitopů v kódovaném polypeptidu dostatečně nezměněná, takže protilátka rozpoznávající epitop v monomeru VNTR formy MUC1 exprimované na tumorech by také rozpoznala epitop v kódovaných polypeptidech. Termín „imunologická podobnost“ zahrnuje nejen situaci, kdy všechny protilátky rozpoznávající formu MUC1 exprimovanou na tumorech také rozpoznávají kódované polypeptidy, ale také jakoukoli situaci, kde alespoň jeden epitop zůstává dostatečně nezměněn pro rozpoznání kódovaných polypeptidů alespoň jednou protilátkou anti-MUC1. Zvláště výhodné je, jestliže protilátky vytvořené kódovanými polypeptidy mohou rozlišit mezi formou MUC1 exprimovanou na tumorových buňkách a formou MUC1 exprimovanou na normálních buňkách, například vazbou na první formu a neschopností vázat se na druhou formu.
Výhodné kódované polypeptidy jsou takové, které mohou být rozpoznány protilátkami anti-MUC1 ze skupiny SM3, ATR1, HMFG2 nebo HMFG1. Zvláště výhodné kódované polypeptidy jsou takové, které mohou být rozpoznány protilátkou anti-MUC1 SM3.
Konstrukty pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle vynálezu mohou také obsahovat další izolovaný polynukleotid kódující heterologní polypeptid, s výhodou imunogenní polypeptid. Tento izolovaný polynukleotid je umístěn na konstruktu pro vakcinaci nukleovými kyselinami tak, že při expresi je heterologní polypeptid navázán na exprimovaný kódovaný polypeptid nebo je k němu fúzován. Izolovaný polynukleotid kódující heterologní polypeptid je • · • · • · · · • · · · · · ·· * · · * • ·· ··· ··«··· · · _ 1 ί*··* ··’ ··’ ··’ ’··’ ···· s výhodou navazující na izolovaný polynukleotid kódující kódované polypeptidy.
V jednom provedení mohou kódované heterologní polypeptidy působit jako nosiče pro směrování kódovaných polypeptidů, například se heterologní polypeptid může vázat na receptor na cílové buňce. V dalším provedení může heterologní polypeptid působit jako imunogen pro zesílení imunitní odpovědi vyvolané kódovanými polypeptidy. Mezi vhodné heterologní polypeptidy patří hemocyanin z mlže Diodora aspera, ovalbumin, povrchový protein viru hepatitidy B, jaderný protein viru hepatitidy B, tetanový toxin, glutathion S transferáza a holubí cytochrom C. Ve výhodném provedení je heterologním polypeptidem tetanový toxin nebo jaderný protein viru hepatitidy B. Nukleotidové sekvence kódující tyto polypeptidy jsou odborníkům v oboru snadno dostupné.
Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle vynálezu bude navíc obsahovat vhodné iniciátory, promotory, zesilující sekvence a jiné prvky, jako jsou například polyadenylační signály, které mohou být nezbytné, a které jsou umístěny ve správné orientaci pro umožnění exprese proteinu v savčí buňce.
Promotorem může být eukaryotický promotor, například promotor CD68, Gal1, Gal10 nebo NMT1, prokaryotický promotor, například promotor Tac, Trc nebo Lac, nebo virový promotor, například promotor cytomegaloviru, promotor SV40, polyhedrinový promotor, promotor P10, nebo promotor LTR viru respiračního syncytia. Promotorem je s výhodou virový promotor. Zvláště výhodné je, jestliže je promotorem cytomegalovirový promotor brzké rané fáze.
Mezi prvky řídící transkripci mohou patřit zesilující sekvence, například 3’ nepřekládaná oblast povrchového antigenu hepatitidy B, zesilující sekvence CMV; introny, například intron CD68, nebo intron A CMV, nebo řídící oblasti, například 5’ nepřekládaná oblast CMV.
- 12 • ·
Kostra konstruktu pro vakcinaci nukleovými kyselinami může být RNA nebo DNA, například plasmidová DNA, virová DNA, bakteriální DNA, bakteriální umělá chromosomální DNA, kvasinková umělá chromosomální DNA a syntetická DNA. Je také možné, aby byl konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami umělá nukleová kyselina, například fosforthioátová RNA nebo DNA. Konstruktem je s výhodou DNA, a zvláště výhodně plasmidová DNA.
Izolovaný polynukleotid obsažený v konstruktu pro vakcinaci nukleovými kyselinami, který kóduje kódovaný polypeptid, může být RNA, například mRNA, nebo může být DNA, například genomická DNA, cDNA nebo syntetická DNA. Polynukleotidem se s výhodou DNA, zvláště výhodně cDNA. Polynukleotid je s výhodou operativně navázán na promotor na konstruktu pro vakcinaci nukleovými kyselinami tak, že jestliže se konstrukt vloží do savčí buňky, polynukleotid je exprimován za dosažení produkce kódovaného polypeptidu.
Konstrukty pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle předkládaného vynálezu produkují při expresi v savčí buňce kódované polypeptidy. Touto savčí buňkou může být buňka in vitro, buněčná linie v laboratorní kultuře, například buňky HEK293T, CHO, HeLa nebo COS. V tomto případě mohou být exprimované polypeptidy sklízeny a jako takové použity pro vakcinaci. Výhodněji je savčí buňka in vivo, a konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami se podává přímo savci, například myši, psu, kočce, králíkovi, praseti, krávě, koni nebo kryse, nebo zvláště výhodně člověku.
Předkládaný vynález také zahrnuje vakciny (vakcinační prostředky), které obsahují terapeuticky účinné množství konstruktu pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle vynálezu, s výhodou v kombinaci s farmaceuticky přijatelným nosičem, jako je fyziologický roztok s fosfátovým pufrem (PBS), fyziologický roztok, dextróza, voda, glycerol, ethanol nebo jejich kombinace. Vakcinační prostředek může alternativně obsahovat terapeuticky účinné množství konstruktu pro ·· · · · · t · * 0 ?·<«« * ·« · « » ·
- 13 vakcinaci nukleovými kyselinami podle vynálezu formulovaného na zlatých kuličkách. Prostředek může alternativně obsahovat konstrukty pro vakcinaci nukleovými kyselinami formulované s liposomy. Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami bude takový, že při podání savci dojde u tohoto savce k expresi polypeptidu. Exprimovaný nebo podaný polypeptid bude potom vyvolávat imunitní odpověď, která s výhodou zahrnuje jak humorální, tak i buněčnou imunitu.
Předkládaný vynález také zahrnuje konstrukty pro vakcinaci nukleovými kyselinami, nebo vakciny pro použití při vakcinaci savce proti tumorům, a to jak preventivně, tak i terapeuticky. Savcem je s výhodou člověk. Vakcinace může být zaměřena proti tumoru jakéhokoli typu buněk, který exprimuje MUC1, a tumor tedy může reagovat na protilátky rozpoznávající monomer VNTR MUC1. V jednom provedení jsou tumory tumory T-lymfocytů. Vakcinace je s výhodou zaměřena proti tumorům epiteliálních buněk, výhodněji je vakcinace zaměřena proti rakovině mléčné žlázy nebo rakovině plic jiných než malých buněk.
Konstrukty pro vakcinaci nukleovými kyselinami a vakciny s jejich obsahem mohou být podávány řadou způsobů, například orálně, nazálně, pulmonárně, intramuskulárně, subkutánně nebo intradermálně. Mohou být podávány jednotlivci jako injekční prostředek, například jako sterilní vodná disperze, s výhodou isotonická. Zvláště výhodný způsob zahrnuje bombardování částicemi (které je také známé jako technologie „gene gun“) a popisuje se v US patentu No. 5371015). V tomto případě jsou inertní částice (jako jsou kuličky zlata) potaženy nukleovou kyselinou a urychleny na rychlosti dostatečné pro jejich penetraci povrchem příjemce (například kůží), například pomocí vystřelení za vysokého tlaku z vhodného zařízení. (Částice potažené konstrukty pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle vynálezu spadají do rámce předkládaného vynálezu stejně jako zařízení obsahující takové částice.) Další způsoby podávání konstruktů pro vakcinaci nukleovými kyselinami nebo prostředků »« 4· *« ·· «V ►» «·, · » » « ··.« >«·«· » · , « « . · . * · · *···>« · » • * . · ’. · · · · _ 14 ;· ...... ·· ···· s obsahem uvedených konstruktů přímo příjemci zahrnují ultrazvuk, elektrickou stimulaci, elektroporaci a mikroočkování, které se popisuje v US 5,697,901.
Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle předkládaného vynálezu může být také podáván pomocí specializovaných dodávacích vektorů používaných při genové terapii. Přístupy genové terapie jsou diskutovány například autory Verme a další, Nátuře 1997, 389: 239 - 242. Mohou být použity jak virové, tak i nevirové systémy. Mezi virové systémy patří retrovirové, lentivirové, adenovirové systémy, systémy založené na virech asociovaných s adenoviry, systémy založené na herpetických virech a virech vakcinie. Nevirové systémy zahrnují přímé podávání nukleových kyselin a systémy na bázi liposomů. Vektory mohou být například zapouzdřeny do liposomů nebo do částic z polylaktidglykolidových kopolymerů (PLG).
Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle předkládaného vynálezu může být také podáván pomocí transformovaných buněk. Mezi tyto buňky patří buňky získané od pacienta. Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami může být zaveden do těchto buněk in vitro a transformované buňky mohou být později do pacienta vráceny. Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle vynálezu se může integrovat do nukleové kyseliny již přítomné v buňce homologními rekombinacemi. Transformovaná buňka může být v případěp potřeby pomnožena in vitro a v rámci předkládaného vynálezu mohou být použity jedna nebo více výsledných buněk. Buňky mohou být dodány do vhodného místa u pacienta známými chirurgickými nebo mikrochirurgickými technikami (například metodou štěpů, mikroinjekcemi atd.).
Množství konstruktů pro vakcinaci nukleovými kyselinami nebo prostředků s jejich obsahem, které se bude pacientovi podávat, se bude významně lišit v závislosti na druhu a hmotnosti imunizovaného
- 15 • · savce, povaze léčeného onemocnění nebo onemocnění, proti kterému se má získat ochrana, použitém vakcinačním protokolu (tj. jediné podávání proti opakovaným dávkách), způsobu podávání a účinnosti a dávce zvoleného adjuvantního prostředku. Na základě těchto proměnných bude odborník v humánním nebo veterinárním lékařství snadno schopen určit vhodné dávkování, které může být například 0,5 až 5 pg/kg konstruktu pro vakcinaci nukleovými kyselinami nebo prostředku s jeho obsahem. Dávka se bude lišit zvláště podle způsobu podávání. Například při intradermálním podávání na zlatých kuličkách bude celková dávka s výhodou 1 pg až 10 ng, zvláště výhodně bude celková dávka mezi 10 pg a 1 ng. Jestliže se bude konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami podávat přímo, celková dávka je obecně vyšší, například mezi 50 pg a jedním nebo více miligramy. Výše uvedené dávky jsou příklady použitelné v průměrném případě. Mohou samozřejmě existovat jednotlivé případy, kdy je oprávněno použití vyšších nebo nižších rozmezí dávek, které jsou také zahrnuty do rámce vynálezu.
U konstruktu pro vakcinaci nukleovými kyselinami obsahujícího polynukleotidovou sekvenci kódující antigenní peptid, nebo u prostředku obsahujícího konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami je možné jednorázové nebo opakované podávání, například mezi jeden až sedmkrát, s výhodou jeden až čtyřikrát, v intervalech přibližně 1 den až přibližně 18 měsíců, s výhodou jeden měsíc. Po tomto podání může případně následovat podávání v pravidelných intervalech 1 a 12 měsíců po dobu například až do konce života pacienta. Tento léčebný režim se však opět může značně lišit v závislosti na velikosti a druhu živočicha, množství konstruktu pro vakcinaci nukleovými kyselinami nebo prostředků, které se podávají, způsobu podávání, účinnosti a dávce případných použitých adjuvantních sloučenin a jiných faktorech, které by byly zřejmé příslušnému lékaři.
Předkládaný vynález bude nyní popsán na příkladech v následující experimentální části.
Přehled obrázků na výkresech
Vynález bude dále popsán na příkladech s odkazy na následující obrázky:
Obr. 1 ukazuje aminokyselinovou sekvenci standardního typu jednoho monomerního prvku MUC1 VNTR (označovaného zde jako VNTR).
Obr. 2 ukazuje sekvenci polypeptidu nazvaného Mut5l kódovaného výhodným izolovaným polynukleotidem obsaženým ve vakcinačním konstruktu podle vynálezu pro vakcinaci nukleovou kyselinou. Mutace v porovnání se sekvencí standardního typu jsou ukázány tučně. V obr. 2 je zahrnuta také reprezentativní nukleotidová sekvence kódující tento polypeptid.
Obr. 3 ukazuje sekvenci polypeptidu nazvaného Mut5V kódovaného výhodným izolovaným polynukleotidem obsaženým ve vakcinačním konstruktu podle vynálezu pro vakcinaci nukleovou kyselinou. Mutace v porovnání se sekvencí standardního typu jsou ukázány tučně. V obr. 3 je zahrnuta také reprezentativní nukleotidová sekvence kódující tento polypeptid.
Obr. 4. Tento obrázek ukazuje vazbu protilátek na polypeptidy MUC1 standardního typu a mutované polypeptidy ukázané v tabulce 1 v určitém rozmezí koncentrací protilátky. Tyto výsledky ukazují schopnost protilátky SM3 (která rozpoznává motiv APDTRP na zbytcích 8-13) rozpoznat neglykosylované polypeptidy. Polypeptidy Mut5P, MutSA a Mut5N ukázaly v podstatě stejné výsledky jako v případě Mut5W.
Obr. 5 ukazuje strategii klonování použitou pro produkci konstruktů vakciny na bázi nukleové kyseliny obsahující mutantní formy Muc 1.
- 17 • · • · · ·
Obr. 6. U myší imunizovaných konstrukty pro vakcinaci nukleovou kyselinou kódujícími mutantní formy MUC1 byla odebírána séra s protilátkami. Tento obrázek ukazuje vazbu těchto sér na standardní formu MUC1 ve formě syntetického peptidu. Je ukázáno, že konstrukty pro vakcinaci nukleovou kyselinou podle vynálezu mohou vyvolat tvorbu protilátek in vivo, které rozpoznávají nemutovanou formu MUC1.
Obr. 7 ukazuje analýzu FACS vazby sér s obsahem protilátek od myší imunizovaných konstrukty pro vakcinaci nukleovou kyselinou kódujícími mutantní formy MUC1 na lidské buňky karcinomu mléčné žlázy. Tyto výsledky ukazují, že konstrukty pro vakcinaci nukleovou kyselinou podle vynálezu mohou vyvolávat in vivo tvorbu protilátek, které rozpoznávají formu MUC1 exprimovanou na tumorech.
Obr. 8 ukazuje sekvenci N-koncové části pVAC1-stc, tak jak je popsána v příkladu 3.
Obr. 9 ukazuje oligonukleotidy použité pro konstrukci MUT4 mutantních plasmidů MUC1, jak je popsáno v příkladu 3. Všechny sekvence se uvádějí od 5’ do 3’. Podtržení ukazuje restrikční místa, kurzívou jsou ukázány sekvence použité jako krátké primery pro PCR. Malá písmena ukazují odchylky od sekvence standardního typu nezbytné pro kódování požadovaných mutací. Názvy ‘A Top’, ‘A Bottom’ atd. se týkají strategie ukázané v obr. 5.
Obr. 10 ukazuje oligonukleotidy použité pro konstrukci MUT5N mutantních plasmidů MUC1, jak je popsáno v příkladu 3. Všechny sekvence se uvádějí od 5’ do 3’. Podtržení ukazuje restrikční místa, kurzívou jsou ukázány sekvence použité jako krátké primery pro PCR. Malá písmena ukazují odchylky od sekvence standardního typu nezbytné pro kódování požadovaných mutací. Názvy ‘A Top’, ‘A Bottom’ atd. se týkají strategie ukázané v obr. 5.
Příklady provedení vynálezu
V následujících příkladech vynálezu se využívá různých široce známých a používaných technik molekulární a buněčné biologie. Praktické podrobnosti těchto technik je možno nalézt v řadě učebnic včetně Sambrook a další, 1989, Molecular Cloning, Cold Spring Harbor Press.
Zbytky v rámci VNTR MUC1 se číslují podle schématu uvedeného v obr. 1.
io Příklad 1
Schopnost vázat protilátky variant MUC1 postrádajících O-glykosylační místa
Byly navrženy syntetické peptidy obsahující mutace v glykosylačních místech. Zvláštní pozornost byla soustředěna na substituenty na zbytku threoninu v této sekvenci (T11). Tabulka 1 dále ukazuje peptidy, které byly navrženy, a jejich mutovaná glykosylační místa. Peptidy obsahující dvě identické kopie navržené sekvence VNTR byly syntetizovány ve firmě Genemed Synthesis lne. (San Francisco, CA). Tyto peptidy byly potom prohledávány na schopnost vázat se na větší počet monoklonálních protilátek anti-MUC1 metodou ELISA.
Tabulka 1
Peptid Sekvence Mutovaná glykosylační místa
WT Ac-(PAHGVTSAPDTRPAPGSTAP)2-NH2 žádné
Mut4 Ac-(PAHGWAAPDTRPAPGAVAP)2-NH2 T6, S7, S17, T18
Mut5A Ac-(PAHGWAAPDARPAPGAVAP)2-NH2 T6, S7, T11, S17, T18
Mut5l Ac-(PAHGWAAPDIRPAPGAVAP)2-NH2 T6, S7, T11, S17, T18
Mut5N Ac-(PAHGWAAPDNRPAPGAVAP)2-NH2 T6, S7, T11, S17, T18
Mut5P Ac-(PAHGWAAPDPRPAPGAVAP)2-NH2 T6, S7, T11, S17, T18
Mut5V Ac-(PAHGWAAPDVRPAPGAVAP)2-NH2 T6, S7, T11, S17, T18
Mut5W Ac-(PAHGWAAPDWRPAPGAVAP)2-NH2 T6, S7, T11, S17, T18
Peptidy byly připraveny ve formě vodných roztoků v 50 mM pufru s hydrogenuhličitanem sodným při pH 9,6 a nanášeny na desky Nunc
Maxisorp při 4 °C přes noc v rozmezí koncentrací mezi 50 pg/ml a 25 ng/ml. Po důkladném promytí pufrem TBS-Tween (fyziologický roztok s pufrem tris, pH 7,4, s obsahem 0,05% Tween20) byly destičky blokovány blokovacím roztokem (3% hmotn./obj. bovinní sérový albumin v pufru TBS-Tween) po dobu 2 hod při teplotě laboratoře. io Protilátky anti-MUC1 HMFG1 (Novocastra, Newcastle, UK), HMFG2 (Novocastra), SM3 (Girling a další, 1989, Int. J. Cancer 43: 1072 1076) a ATR1 (Bynum a další, 1995, Hybridoma 14: 587 - 591) byly naředěny v blokovacím roztoku, přidány na destičku a inkubovány při laboratorní teplotě 1 hod. Po promytí byla navázaná protilátka označena inkubací s protilátkou proti myšímu IgG konjugovanou s HRP (P260, Dako, Dánsko) při ředění 1/2000 v blokovacím pufru. Destička byla znovu promyta a navázaný konjugát byl detekován použitím barevných činidel Fast OPD (Sigma, Poole, UK). Reakce byla zastavena přidáním 3M kyseliny sírové a produkt OPD byl kvantifikován měřením adsorbnce při 490 nm.
- 20 • · • · · ·
Výsledky tohoto experimentu jsou ukázány v tabulce 2. Signál ELISA pro každou protilátku a kombinaci peptidu se hodnotí semikvantitativní stupnicí, kde +++ označují silnou vazbu, ++ označují střední vazbu, + označuje slabou vazbu a - znamená nevýznamnou vazbu.
Tabulka 2
Peptid Protilátka SM3 Protilátka HMFG1 Protilátka HMFG2 Protilátka ATR1
Standardní typ +++ +++ +++ +++
Mut4 +++ ++ +++ +++
Mut5A - ++ - +++
Mut5l +++ ++ +++ ++
Mut5N - - - +++
Mut5P - + - +
Mut5V +++ - +++ +++
Mut5W - - - ++
io Tyto údaje ukazují, že je možné změnit všechna O-glykosylační místa v monomeru VNTR MUC1 takovým způsobem, aby se zabránilo glykosylaci a nedošlo k narušení celkové struktury antigenů, čehož důkazem je zachování vazby řady protilátek anti-MUC1. Zvláště překvapující a užitečné zjištění je, že verze Mut5l a Mut5V monomeru
VNTR si zachovávají vazbu pro protilátku SM3. Při použití při imunohistochemických studií klinických vzorků vykazuje SM3 silné selektivní barvení pro MUC1 exprimovaný na tumorových buňkách ve srovnání s MUC1 exprimovaným na okolní normální tkáni (Girling a další, 1989). Tato zjištění jasně ukazují, že je možné odvodit varianty
VNTR, které si zachovávají podobnou konformaci jako epitopy
vytvořené tumorem z MUC1, což je pro vakcinační imunogen vysoce žádoucí vlastnost.
Příklad 2
Vazebná křivka protilátky pro mutantní polypeptidy
Při tomto experimentu byly opět použity polypeptidy popsané v tabulce 1 výše. Metodologie byla v podstatě podobná jako v příkladu 1 s tím rozdílem, že peptidy byly potaženy na destičku ELISA při pevné koncentraci 3 pg/ml a byly použity rozdílné koncentrace SM3. Výsledky jsou ukázány na obr. 4. Mut5P, Mut5A a Mut5N mají v podstatě stejné vlastnosti z hlediska vazby protilátky jako vlastnosti ukázané pro Mut5W.
Údaje v obr. 4 nejen potvrzují výše uvedené údaje, ale také ukazují, že mutace Thr-11 na lle a Val v Mut 5I a Mut5V pouze v malé míře omezuje afinitu protilátky SM3 pro peptid, což ukazuje, že neglykosylovatelné mutanty mohou velmi úzce napodobovat afinitu přirozené sekvence.
Příklad 3
Vakcinace nukleovymi kyselinami mutantami MUC1
Příprava plasmidu
Tabulka 3: Použité primery
Název Sekvence 5’ - 3’
SSF ATCCTACGGACCGTACAGTTACTCAGCACACACAGCACCTCAC
SSR CCGCTCGAGCGCCGGCGATCTTGGACCTGGGAGTGGACACCTG
FrCF ATCCTACGCCGGCGGGACCCGGACCTATGAAAAACTTAGACTGTT GGGTCGACAACGAAGAAGAC
FrCR GGGCTCGAGTTAGTCGTTGGTCCAACCTTCATCGGTCGG
HBV1F GATGTGGTCGACGACATTGACCCTTATAAAGAATTTGGAGC
HBV1R GTAGAGCTCGAGCTAACATTGAGATTCCCGAGATTGAGATCTTCT GC
FrCS1 GGCTGCGCGTTCCGAAAGTTTCTG
FrCS2 CCGTGAGGACAACAACATCACTCT
FrCS3 CTACTACCGACGTCTGTACAACGG
FrCS4 GTTTCTTCATAGAGCTGATGATGG
FrCS5 GAAGATACGGAACTTGTCGATGG
FrCS6 GTAAGAAACGTACAGTTTGATGAAG
MUT4F GATTGTGCTAGCCCAGCCCACGGAGTTGTTGCTGCC
MUT4R1 TCGCGTATCTGGCGCTGCGACGACACCATGTGCTGGAGGGGCCAC TGCTCC
MUT4R2 GATTGTGCTAGCAGGTGCTACGGCGCCGGGAGCCGGTCGCGTATC TGGCGCTGC
MUT5NF GATTGTGCTAGCCCGGCGCATGGTGTCGTC
MUT5NR GATTGTGCTAGCAGGGGCCACTGCTCC
Konstrukce plasmidu pVACIstc
Plasmid pVAC1 (Thomsen a další, Immunology 95: S1, OP106, 1998) je eukaryotický expresní vektor optimalizovaný pro vakcinaci
DNA. Obsahuje CMV promotor operativně navázaný na vícečetné klonovací místo, do kterého mohou být umístěny inzerty kódující antigeny. Inzert obsahující Kozákovu sekvenci signálu zahájení translace, savčí sekreční signál a klonovací místa, byl připraven pomocí PCR s použitím plasmidu pMNM1 (Ellis a další, J. Immunology io 156: 2700 - 2709, 1996) jako templátu a SSF a SSR (tabulka 3) jako primerů. Fragment PCR byl štěpen Rsr II a Xhol za vytvoření inzertu o délce 120 bp, který byl klonován do míst Rsr II a Xho I plasmidu pVAC1 za vytvoření plasmidu pVac-1ss2. Sekvence DNA byla ověřena
použitím amplifikace PCR primerů jako sekvenačních primerů. Druhý krok byl zavedení fragmentu C tetanového toxinu (FrC), ve správném čtecím rámci, genu fúzovaného v místě SgrA I kódovaného primerem SSR, což umožnilo přidání antigenních epitopů do tohoto místa ve správném čtecím rámci. Toho bylo dosaženo amplifikací PCR genu FrC z plasmidu plC9Tet15 (Clare a další, Methods in Molecular Biology 103: 193 - 208, 1998) s použitím primerů značených DNA kódujících peptidové raménko a restrikční místa pro enzymy SgrA I a Xhol (FrCF a FrCR). Fragment PCR štěpený SgrA l/Xho I o velikosti 1,3 kb byl klonován do míst SgrA I a Xho I plasmidu pVac-1ss2 za vytvoření plasmidu pVac-1stc. Sekvence DNA byla potvrzena fluorescenčním sekvenováním s použitím amplifikačních primerů PCR a sekvencí odvozených od vnitřního FrC FrCS1 až FrCS6 (tabulka 3). Sekvence DNA a aminokyselinová sekvence na N-konci fúzního proteinu FrC zahrnující místa fúze epitopu je ukázána na obr. 8.
Konstrukce plasmidů pVAC1ss2 MUC-1 2TR fragment C
Byly navrženy sady syntetických oligonukleotidů, které budou po teplotní hybridizaci a následném klonování do plasmidu pVac-1stc schopny kódovat tandemové oblasti pěti kopií epitopu VNTR MUC1 (PAHGVTSAPDTRPAPGSTAP). Byly navrženy dvě varianty: obě byly mutantní verze, ve kterých byly čtyři z pěti threoninových a serinových zbytků podléhající glykosylaci v každé kopii epitopu nahrazeny nemodifikovatelnými aminokyselinami: PAHGVVAAPDTRPAPGAVAP, čtyři mutace, (MUT4) a PAHGVVAAPDNRPAPGAVAP, pět mutací, (MUT5N). Ve všech případech musely být sekvence MUC1 exprimovány jako součást sekrenovaného fúzního proteinu FrC. Tyto oligonukleotidy jsou uvedeny na obr. 9 a 10 (místa restrikčních enzymů SgrA 1 a Sal1 jsou podtržená, malá písmena označují mutace odlišné od sekvence standardního typu). Použitá strategie (po působení T4 polynukleotidkinázy pro fosforylaci 5’-konců • · • · • · » · • · · · · · «· · * « · • *· · · · *·»«·· · · ···· ·· · ··«.
_ 24 - ·· ·· ·· ·· ......
oligonukleotidů) pro získání tandemových opakování je ukázána na obr. 5. Tato strategie byla použita pro vytvoření plasmidu obsahujícího dvě tandemové oblasti VNTR Muc-1 MUT5N fúzované ve správném čtecím rámci do FrC (pVAC-1stcMUC-1MUT5N), vytvořené homologní rekombinací a delecí ze sekvence obsahující pětinásobné opakování. Pro vytvoření podobného plasmidu obsahujícího VNTR MUT4 byla použita modifikace strategie popsané v obr. 5, při které po kroku ligace byla provedena amplifikace oligonukleotidů pomocí PCR. Jako primery byly použity sekvence DNA naznačené na obr. 9 a 10 kurzívou za podmínek PCR 25 cyklů 94 °C 45 s, 69 - 75 °C 45 s a 72 °C 1 min. Produkty reakce PCR byly potom zpracovány jak je ukázána v obr. 5, ale pouze největší čistý produkt (obecně o velikosti přibližně 150 200 bp) byl čištěn na gelu a klonován. Použitím tohoto přístupu byl vytvořen plasmid obsahující jedno a půl opakování Muc-1 MUT4 (pVAC-1stcMUC-1 MUT4), VNTR fúzovaný ve správném čtecím rámci do FrC, získaný metodou PCR-mediated strand jumping a delecí ze sekvence s pětinásobným opakováním.
Alternativní způsob pro vytvoření popsaných sekvencí by byla přímá syntéza oligonukleotidů obsahujících menší počet kopií opakování VNTR s použitím podobné strategie štěpení a klonování jako bylo popsáno výše.
Konstrukce plasmidu pVAC1ss2 HepB Core
Plasmid pPA1 obsahuje gen pro antigen jádra HBV (sérotyp ADW) s jedinečným místem Nhel v oblasti smyčky E1 (Chambers a další, J. Virol. 70: 4045 - 4052, 1996). Toto klonovací místo umožní vložení malého fragmentu DNA kódujícího klíčový epitop z cizího proteinu. Smyčka E1 proteinu je exponována na povrchu exprimovaného antigenu jádra. Inzert jádra HBV získaný metodou genového inženýrství byl amplifikován PCR použitím primerů HBV1 F a HBV1R (tabulka 3) a klonován do plasmidu pCR2.1 (Invitrogen) • · • *· ···· ··«· ·«··· · « · « · « · • » · ··« · ····· · · _ 25.
metodou překrytí TA za vytvoření plastmidu pCR2.1-HepBE1. Tento konstrukt byl před použitím sekvenován.
PCR byla potom použita pro amplifikaci fragmentů kódujících dvě tandemová opakování monomeru MUC1 VNTR z plasmidů pVAC1stcMUC-1MUT4 a pVAC1stcMUC-1 MUT5N. Inzert obsahující dvě tandemová opakování MUT5N byl připraven PCR použitím pVAC1stcMUC-1MUT5N jako templátu a primerů MUT5NF a MUT5NR (tabulka 3).
Plasmid pVAC-1stcMUC-1MUT4 obsahoval pouze jedno úplné tandemové opakování monomeru VNTR MUC1. Tento plasmid byl použit jako templát při dvoustupňové PCR s použitím běžného dopředného (forward, 5’->3’) primeru (MUT4F) a dvou odlišných reverzních primerů. Při první reakci přidá reverzní primer (MUT4R1) část další sekvence nezbytnou pro vytvoření druhého úplného opakování verze MUT4 sekvence MUC1 (tj. polovinu tandemového opakování) k existujícímu tandemového opakování. Výsledný produkt PCR byl potom použit jako templát pro druhý cyklus PCR s použitím druhého reverzního primeru (MUT4R2) pro přidání zbytků nezbytných pro kompletaci opakování spolu s požadovaným klonovacím místem Nhel.
Produkty PCR MUT4 nebo MUT5 byly štěpeny Nhel a klonovány do vektoru pCR2.1 HepBEI štěpeného Nhel. Výsledné klony byly orientované a sekvence byla ověřena fluorescenčním dideoxysekvenováním. Úplná oblast kazety HepB core + MUC-1 TR byla potom vyříznuta pomocí Sall a Xhol a klonována do pVAC1ss2 štěpeného Xhol. Sekvence konečných konstruktů byly všechny ověřeny úplnou analýzou sekvence za vytvoření pVAC1 .ss2.MUT4.MUC1 .HepB (kóduje dvě kopie varianty MUT4 monomeru VNTR MUC1 ve smyčce E1 jaderného proteinu HBV); a pVAC1 .ss2.MUT5N.MUC1 HepB (kóduje dvě kopie varianty MUT5N monomeru VNTR MUC1 ve smyčce E1 jaderného proteinu HBV).
• *
- 26 • · • · · · · ·
Vakcinace DNA mutantními konstrukty MUC1
Plasmidová DNA byla vysrážena na zlaté kuličky o průměru 2 pm použitím chloridu vápenatého a spermidinu. Kuličky s nanesenou DNA byly potaženy na trubičku z materiálu Tefzel jak je popsáno v Eisenbraum a další, DNA Cell Biology 12: 791 - 797, 1993; Pertmer a další, J. Virol. 70: 6119 - 6125, 1996. Bombardování částicemi bylo provedeno použitím systému Accell gene delivery systém (PCT WO 95/19799). Pro každý plasmid bylo imunizováno pět samic myší C56BI/6 trojnásobným podáním plasmidu ve dnech 0, 21 a 42. Každé podání se skládalo ze dvou bombardování částicemi DNA/zlato za poskytnutí celkové dávky přibližně 2,5 pg plasmidu.
Vzorky séra byly získány od zvířat odběrem z žíly ve dnech -1, 20, 41 a 55, a byly testovány na přítomnost protilátek anti-MUC1. Metoda ELISA byla provedena s použitím destiček Nunc Maxisorp potažených přes noc při 4 °C 3 pg/ml sekvence standardního typu MUC1 (40 mer odpovídající dvěma tandemovým opakováním). Po promytí pufrem TBS-Tween (fyziologický roztok s pufrem tris, pH 7,4 s obsahem 0,05 % Tween 20) byly destičky blokovány 3% BSA v pufru TBS-Tween 2 hod při teplotě laboratoře. Všechna séra byla inkubována při ředění 1 : 100 1 hod při laboratorní teplotě v pufru TBS-Tween. Vazba protilátek byla detekována použitím králičích protilátek proti myším imunoglobulinům konjugovaných s HRP (Dako, Dánsko) při ředění 1 : 2000 v pufru TBS-Tween. Destičky byly znovu promyty a navázaný konjugát byl detekován použitím barevných činidel Fast OPD (Sigma, Pool, UK). Reakce byla zastavena přidáním 3M kyseliny sírové a produkt OPD byl kvantifikován měřením absorbance při 490 nm.
Výsledky této analýzy jsou ukázány v obr. 6. Ukazují, že glykosylačně mutované sekvence podle předkládaného vynálezu
- 27 »949 mohou být použity jako vakciny pro vyvolání imunitních odpovědí schopných rozpoznávat sekvenci MUC1 standardního typu.
Aby bylo možno ukázat, že protilátky vytvořené těmito vakcinami jsou schopné rozpoznat tumorové buňky, byly použity vzorky antisér z těchto myší pro označení různých tumorových buněčných linií, a značení bylo zviditelněno průtokovou cytometrií.
Buňky (T67-D, MCF-7, B16F0 a B16FOMUC1; 1 x 106) byly promyty v pufru PBS doplněném 5% FCS a inkubované při 4 °C 15 min s myšími séry v ředění 1 : 100. Po promytí byly buňky inkubovány s druhou protilátkou (ovčí protilátka proti myšímu IgG, Dako, Dánsko, při ředění 1 : 10) za stejných podmínek. Kontrolní buňky byly inkubovány s pufrem FACS namísto protilátky prvního stupně před barvením činidlem druhého stupně. Analýza FACS byla provedena na přístroji FACScan (Becton Dikinson). Současně bylo měřeno 1000 buněk na vzorek metodami FSC (forward angle light scatter) jako SSC (integreated light scatter) stejně jako zelené (FL1) a červené (FL3) fluorescence (vyjádřené jako logaritmus integrovaného fluorescenčního záření). Záznamy byly prováděny pouze v buňkách negativních na propidiumjodid (živých) z červené fluorescence s vyloučením agregátů, jejichž FCS byly mimo rozsah. Data byla vyjádřena jako histogramy vynesené jako počty buněk (osa Y) proti intenzitě fluorescence (osa X) pro různé typy myších sér navázané na povrch tumorových buněk.
Výsledky je možno vidět na obr. 7. Tento obrázek ukazuje, že sérum myší imunizovaných konstrukty MUC1 s mutovanou glykosylací obsahuje protilátku IgG anti-MUC1 schopnou vazby jak k lidským, tak i myším tumorovým buňkám exprimujícím nativní MUC1 buněčného povrchu. T47D je lidská buněčná linie tumoru mléčné žlázy. B16F0 je rodičovská buněčná linie B16, a tyto buňky neexprimující MUC1 nejsou označeny. Buňky B16-muc1 (B16F0 transfekované MUC1) jsou však označeny.
* * ·» * · * • * * · « <·*
- 28 *« · a · ·
Legenda k obr. 7:
Sec only = kontrola pouze s druhou protilátkou pro zjištění úrovní pozadí fluorescence.
Non imm = kontrolní séra z neimunizovaných zvířat.
hepB cont = kontrolní séra ze zvířat imunizovaných prázdným vektorem (žádná MUC1 DNA).
hepB2TR mut4 a hepB2TR mut5 jsou séra ze zvířat imunizovaných těmito mutantními DNA MUC1.
io Tyto údaje potvrzují použitelnost této varianty sekvencí VNTR při vakcinaci nukleovými kyselinami.

Claims (22)

  1. PATENTOVÉ NÁROKY
    1. Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami obsahující
    5 izolovaný polynukleotid, který kóduje polypeptid obsahující alespoň pět za sebou následujících aminokyselinových zbytků z monomeru VNTR MUC1, kde jedna nebo více z těchto aminokyselin je glykosylační místo, přičemž jestliže je tento izolovaný polynukleotid exprimován v savčí buňce, je změněna io glykosylace výsledného polypeptidu nebo je zabráněno glykosylaci výsledného polypeptidu na alespoň jednom z uvedených glykosylačních míst.
  2. 2. Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle nároku 1,
    15 obsahující izolovaný polynukleotid, který kóduje polypeptid obsahující fragment jednoho monomeru VNTR MUC1.
  3. 3. Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle nároku 1, obsahující izolovaný polynukleotid, který kóduje polypeptid
    20 obsahující jednu kopii monomeru VNTR MUC1.
  4. 4. Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle některého z předcházejících nároků, ve kterém byla dále změněna sekvence uvedeného izolovaného polynukleotidu za vzniku
    25 alespoň jedné aminokyselinové mutace ve výsledném polypeptidu, přičemž tato mutace vede k uvedené změně nebo zabránění glykosylaci.
    • *
    - 30 5. Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle nároku 5, kde uvedenou mutací je substituce aminokyseliny.
    6. Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle některého
  5. 5 z předcházejících nároků, jímž kódovaný polypeptid, jestliže je exprimován, může dále vázat protilátky SM3, ATR1, HMFG2 nebo HMFG1.
  6. 7. Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle některého io z předcházejících nároků, jímž kódovaný polypeptid, jestliže je exprimován, má zamezenou nebo změněnou glykosylaci na alespoň 60 % glykosylačních míst přítomných v kódovaném polypeptidu.
    15
  7. 8. Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle nároku 7, jímž kódovaný polypeptid, jestliže je exprimován, má zamezenou nebo změněnou glykosylaci na alespoň 80 % přítomných glykosylačních míst.
    20
  8. 9. Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle nároku 8, jímž kódovaný polypeptid, jestliže je exprimován, má zamezenou nebo změněnou glykosylaci na všech přítomných glykosylačních místech.
    25
  9. 10. Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle některého z nároků 7 až 9, jímž kódovaný polypeptid, jestliže je exprimován, má alespoň jeden threonin nebo serin substituovaný valinem, isoleucinem, alaninem, asparaginem, fenylalaninem nebo tryptofanem.
    - 31 • · · ·
  10. 11. Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami, který obsahuje sekvenci
    GC# CC# GA* GT/U# CG# CC#
    5 kde # může být nukleotid A, G, C nebo T/U, * může být nukleotid T/U nebo C.
  11. 12. Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle nároku 11, který obsahuje sekvenci ukázanou na obr. 3.
  12. 13. Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami obsahující sekvenci
    GC# CC# GA* AT/U@ CG# CC# kde # může být nukleotid A, G, C nebo T/U,
    15 * může být nukleotid T/U nebo C, @ může být nukleotid T/U, A nebo C.
  13. 14. Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle nároku 13, který obsahuje sekvenci ukázanou na obr. 2.
  14. 15. Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle některého z předcházejících nároků, který dále obsahuje polynukleotid kódující heterologní polypeptid.
    25
  15. 16. Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle nároku
    15, kde heterologní polypeptid je tetanový toxin, jaderný protein viru hepatitidy B, povrchový protein viru hepatitidy B, • · • ·
    - 32 ovalbumin, glutathion S transferáza, haemocyanin Diodora aspera, nebo holubí cytochrom C.
  16. 17. Vakcina obsahující konstrukt pro vakcinaci nukleovými 5 kyselinami podle některého z předcházejících nároků v kombinaci s farmaceuticky přijatelným nosičem.
  17. 18. Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle některého z nároků 1 až 16 nebo vakcina podle nároku 17 pro použití při io vakcinaci savce proti tumorům.
  18. 19. Použití konstruktu pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle některého z nároků 1 až 16 nebo vakciny podle nároku 17 při výrobě farmaceutického prostředku pro vakcinaci savce proti
    15 tumorům.
  19. 20. Použití podle nároku 18 nebo 19, kde konstrukt nebo vakcina se podává použitím technologie gene gun.
    20
  20. 21. Použití podle nároku 18, 19 nebo 20, kde tumory jsou tumory epiteliálních buněk.
  21. 22. Použití podle nároku 21, kde tumory jsou tumory mléčné žlázy.
  22. 25 23. Způsob vakcinace savce proti tumorům, který zahrnuje podávání konstruktu pro vakcinaci nukleovými kyselinami podle některého z nároků 1 až 16, nebo vakciny podle nároku 17 uvedenému savci.
CZ20022192A 1999-12-22 2000-12-20 Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami a vakcina CZ20022192A3 (cs)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GBGB9930359.6A GB9930359D0 (en) 1999-12-22 1999-12-22 Novel polypeptides

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CZ20022192A3 true CZ20022192A3 (cs) 2002-11-13

Family

ID=10866857

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ20022192A CZ20022192A3 (cs) 1999-12-22 2000-12-20 Konstrukt pro vakcinaci nukleovými kyselinami a vakcina

Country Status (21)

Country Link
US (2) US20030133909A1 (cs)
EP (1) EP1240317B1 (cs)
JP (1) JP2003517845A (cs)
KR (1) KR20020073149A (cs)
CN (1) CN1434862A (cs)
AT (1) ATE355365T1 (cs)
AU (1) AU2204901A (cs)
BR (1) BR0016672A (cs)
CA (1) CA2395208A1 (cs)
CZ (1) CZ20022192A3 (cs)
DE (1) DE60033690T2 (cs)
ES (1) ES2282156T3 (cs)
GB (1) GB9930359D0 (cs)
HU (1) HUP0203848A3 (cs)
IL (1) IL150285A0 (cs)
MX (1) MXPA02006313A (cs)
NO (1) NO20023010L (cs)
NZ (1) NZ519732A (cs)
PL (1) PL356697A1 (cs)
WO (1) WO2001046228A2 (cs)
ZA (1) ZA200204987B (cs)

Families Citing this family (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB0212036D0 (en) * 2002-05-24 2002-07-03 Glaxo Group Ltd Vaccines
GB0212046D0 (en) * 2002-05-24 2002-07-03 Glaxo Group Ltd Vaccines
GB0304634D0 (en) * 2003-02-28 2003-04-02 Glaxo Group Ltd Vaccines
GB0321615D0 (en) * 2003-09-15 2003-10-15 Glaxo Group Ltd Improvements in vaccination
BR112018013967A2 (pt) 2016-01-19 2019-02-05 Pfizer vacinas contra o câncer
CN106086050B (zh) * 2016-06-28 2020-01-07 中国人民解放军第二军医大学 携带muc1肿瘤抗原表位pdtrp的嵌合型病毒样颗粒及在胰腺癌中的应用
CA3070468A1 (en) 2017-09-01 2019-03-07 Dana-Farber Cancer Institute, Inc. Immunogenic peptides specific to bcma and taci antigens for treatment of cancer
WO2020181142A1 (en) 2019-03-06 2020-09-10 Dana-Farber Cancer Institute, Inc. T cell receptors specific to b-cell maturation antigen for treatment of cancer

Family Cites Families (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5695766A (en) * 1992-10-30 1997-12-09 Iowa State University Research Foundation Highly virulent porcine reproductive and respiratory syndrome viruses which produce lesions in pigs and vaccines that protect pigs against said syndrome
US5744144A (en) * 1993-07-30 1998-04-28 University Of Pittsburgh University Patent Committee Policy And Procedures Synthetic multiple tandem repeat mucin and mucin-like peptides, and uses thereof
AUPM322393A0 (en) * 1993-12-24 1994-01-27 Austin Research Institute, The Mucin carbohydrate compounds and their use in immunotherapy
DE19516673A1 (de) * 1995-04-28 1996-10-31 Gabriele Dr Pecher Vakzine gegen Tumorerkrankungen
AUPN568095A0 (en) * 1995-09-27 1995-10-26 Austin Research Institute, The Anti-Galalpha(1,3)Gal antibody binding peptides
EP0923605A4 (en) * 1996-03-20 2003-01-02 Sloan Kettering Inst Cancer CONJUGATE VACCINES CONTAINING MUCIN PEPTIDE
US5744177A (en) * 1996-06-11 1998-04-28 Lin; Rong-Teng Injection molding assembly

Also Published As

Publication number Publication date
PL356697A1 (en) 2004-06-28
NO20023010D0 (no) 2002-06-21
DE60033690T2 (de) 2007-11-08
ES2282156T3 (es) 2007-10-16
WO2001046228A3 (en) 2002-01-17
CN1434862A (zh) 2003-08-06
HUP0203848A2 (hu) 2003-03-28
JP2003517845A (ja) 2003-06-03
NZ519732A (en) 2004-03-26
CA2395208A1 (en) 2001-06-28
GB9930359D0 (en) 2000-02-09
NO20023010L (no) 2002-08-06
WO2001046228A2 (en) 2001-06-28
HUP0203848A3 (en) 2004-07-28
MXPA02006313A (es) 2002-11-29
EP1240317A2 (en) 2002-09-18
US20030133909A1 (en) 2003-07-17
AU2204901A (en) 2001-07-03
US20070269451A1 (en) 2007-11-22
IL150285A0 (en) 2002-12-01
ZA200204987B (en) 2003-09-22
BR0016672A (pt) 2002-10-08
ATE355365T1 (de) 2006-03-15
DE60033690D1 (de) 2007-04-12
EP1240317B1 (en) 2007-02-28
KR20020073149A (ko) 2002-09-19

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US7446185B2 (en) Her2/neu target antigen and use of same to stimulate an immune response
JP3581366B2 (ja) 免疫原のリソソーム標的
US8470560B2 (en) CR-2 binding peptide P28 as molecular adjuvant for DNA vaccines
ES2387850T3 (es) Proteína de fusión al antígeno carcinoembrionario y sus usos
ES2675825T3 (es) Vacunación tumoral que involucra una respuesta inmunitaria contra la proteína propia CLDN18.2
US6749856B1 (en) Mucosal cytotoxic T lymphocyte responses
US20070269451A1 (en) Nucleic Acid Vaccination
PT2155243E (pt) Composição e métodos compreendendo os antigénios klk3, psca ou folh1
JP2005341969A (ja) 小胞体シグナル配列ペプチドと少なくとも1個の他のペプチドをエンコードする核酸配列を含有する免疫原性キメラ、及びこのキメラのワクチン及び疾患の治療における使用
CZ2001789A3 (cs) Způsob pro in vivo inhibici aktivity ligandu pro osteoprotegerin
TW202039587A (zh) 供合成胜肽免疫原作為免疫刺激劑的人工混雜t輔助細胞抗原決定位
JP2002517249A (ja) 抗原およびEBVGp350/220の受容体の同時刺激によるB細胞活性化および免疫グロブリン分泌の増強
WO2009002418A2 (en) T-cell peptide epitopes from carcinoembryonic antigen, immunogenic analogs, and uses thereof
US20070053920A1 (en) Nematode polypeptide adjuvant
JP2021512966A (ja) ワクチン組成物およびその使用
JP2005526520A (ja) Vntr反復ユニットの数が減少したmuc−1抗原
JP2007523610A (ja) 癌胎児抗原をコードする合成遺伝子およびその使用
CN108025061B (zh) 疫苗组合物及其用途
JPH11504204A (ja) 免疫回避タンパク質
JP2005526511A (ja) ワクチン
JP2007505601A (ja) ワクチン
JP2007524352A (ja) 上皮細胞ムチンmuc−1から誘導されるワクチン
JPWO2003000894A1 (ja) ポリヌクレオチドワクチン
WO2021170111A1 (zh) 肿瘤免疫增强剂及其制法和应用