CS262188B1 - Kmen mikroorganismu Penicillium chrysogenuniCCM F-8012 - Google Patents

Kmen mikroorganismu Penicillium chrysogenuniCCM F-8012 Download PDF

Info

Publication number
CS262188B1
CS262188B1 CS877167A CS716787A CS262188B1 CS 262188 B1 CS262188 B1 CS 262188B1 CS 877167 A CS877167 A CS 877167A CS 716787 A CS716787 A CS 716787A CS 262188 B1 CS262188 B1 CS 262188B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
penicillin
strain
fermentation
nmu
medium
Prior art date
Application number
CS877167A
Other languages
English (en)
Other versions
CS716787A1 (en
Inventor
Vlasta Rndr Csc Matelova
Miroslava Ing Ulehlova
Petr Ing Csc Pilat
Karel Ing Bezdek
Boris Ing Okanik
Michal Ing Csc Bucko
Emil Ing Miklas
Original Assignee
Matelova Vlasta
Miroslava Ing Ulehlova
Pilat Petr
Bezdek Karel
Okanik Boris
Bucko Michal
Miklas Emil
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Matelova Vlasta, Miroslava Ing Ulehlova, Pilat Petr, Bezdek Karel, Okanik Boris, Bucko Michal, Miklas Emil filed Critical Matelova Vlasta
Priority to CS877167A priority Critical patent/CS262188B1/cs
Publication of CS716787A1 publication Critical patent/CS716787A1/cs
Publication of CS262188B1 publication Critical patent/CS262188B1/cs

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Účelem řešení je získat kmen produkující penicilín ve vyšších koncentracích, než je dosahováno předchozími kmeny, který je odolnější na mechanické namáhání ve srovnání s předchozími kmeny. Penicilín syntetizuje mutant kmene Penicillium chrysogenum, získaný po působení vhodných mutagenů a pasivní selekci v médiu obsahujícím vhodný zdroj uhlíku, dusíku, síry, fosforu, prekurzoru, protipěnidla, stopových prvků a křídu při vysoké konverzi zdroje uhlíku za aerobních podmínek při 25 °C. V průběhu 168 hodin kultivace kmen vytváří za laboratorních podmínek 33 400 j/ /mi penicilinu V nebo 30 900 j/ml penicilinu G, v měřítku laboratorních fermentačních tanků vytváří 35 980 j/ml penicilinu V.

Description

Vynález se týká kmene mikroorganismu Penicillium chrysogenum CCM F-8012 a jeho selektátů (interní označení UV LXIII/70) produkujícího penicilín G a V.
Produkce penicilinu je dnes o tři řády vyšší, než byla před 40 lety, kdy začínala jeho výroba. Zásluhu o toto zvýšení má mimo rozvoj šlechtitelských metod, jejichž základem je využívání uměle navozované variability biologického materiálu.
Program zvyšování produkce kmenů se opírá o namátkovou selekci uměle Indukovaných mutantů pomocí vhodných mutagenů chemických či fyzikálních a testování mutagenizovaných kultur. Okruh použitelných mutagenů se řídí jejich účinky, neboť je třeba eliminovat hromadění nežádoucích odchylných vlastností, které se mohou progresivně kumulovat, může to být zhoršování růstových vlastností, sporulace, ztráta odolnosti na mechanické namáhání atd.
Kmen Penicillium chrysogenum CCM F8012, interního označení UV LXIII/70 byl získán působením mutagenů a pasivní selekcí z výchozího kmene CCM F-760, interního označení NMU 2/40. Postup šlechtění vyplývá z následujícího schématu, ve kterém je znázorněna genealogická linie vedoucí k novému kmenu.
Penicillium chrysogenum NMU 2/40 ť PS
NMU 2/40-4 1 UV
UV L/114 ť NMG
NMG 1/65 1 NMU
NMU XXIV/29 ť UV ' UV LIX B/40
UV
UV LXIII/70 1 PS
UV LXIII/70-selektáty Vysvětlení zkratek:
UV — působení UV-světla
NMG — působení nitrosometylguanidinu
NMU — působení nitrosometylurey
PS — pasivní selekce
Zdrojem UV-světla byla germicidní lampa Philips TVV 40 W s předřazeným stabilizátorem síťového napětí ST 250 o výkonu 250 V a citlivosti l°/o. Suspenze spor ve vodě byla ozařována v Petriho misce. Během ozařování byla suspenze míchána na elektromagnetickém míchadle. Vzdálenost misky od zdroje ozáření byla 20 cm, záření bylo ve vhodných časových intervalech přerušováno odebíráním vzorků, které byly dále ředěny a vysévány na Petriho misky se sporulační půdou.
Pro mutagenizaci nitrosometylguanidinem byla používána koncentrace mutagenu 2 mg/ /ml v konečné mutační směsi. Doba aplikace byla od 15 do 40 minut při míchání v uzavřených Erlenmayerových baňkách, pH mutační směsi bylo pufrováno citrofosfátovým pufrem o pH 6,0. V časových intervalech byly odebírány vzorky a ředěny až na neúčinnou koncentraci NMG a vysévány na Petriho misky se sporulační půdou.
Nitrosometylurea byla aplikována v konečné koncentraci 6 mg/ml. Sporová suspenze v citrofosfátovém pufru pH 6,0 byla míchána v uzavřených Erlenmayerových baňkách, po přidání mutagenu byly odebírány vzorky ve vhodných časových intervalech, ředěny a vysévány na Petriho misky se sporulační půdou.
Spory pro pasivní selekci byly suspendovány v destilované vodě nebo fyziologickém roztoku, ředěny a vysévány na Petriho misky se sporulační půdou.
Tímto způsobem aplikace mutagenů a pasivní selekcí byl získán izolát UV LXIII/70 a jeho selektáty.
Izoláty byly hodnoceny dle následujícího schématu:
izolované kolonie na Petriho misce šikmý agar t vegetativní inokulum i vlastní fermentace
Izoláty byly produkčně hodnoceny ve 2 pokusech, nejlepší byly zlyofilizovány nebo uloženy do kapalného dusíku, po vyočkování byly izoláty opětně hodnoceny ve třech pokusech. Konzervy slouží k dlouhodobému uchovávání kmenů a umožňují zachování získaných vlastností.
Stanovení účinnosti penicilinu bylo prováděno automatizovaným systémem při použití hydroxamátové kolorimetrické metody.
Tímto hodnotícím systémem byl získán kmen a jeho selektáty, na který je uplatňován patentový nárok.
Kolonie kmene při monosporickém rozsevu v průběhu 9 dnů dorůstají do velikosti cca 12 mm, střed kolonie je miskovitý, od válu k okraji jsou kolonie zvrásněné, barva spor je béžová. Kultura dobře a rychle sporuluje na různých typech sporulačních půd a na různých přírodních substrátech jako je rýže, kroupy, proso atd. Počet spor v 1 ml suspenze vzniklé smytím .spor z Endovy zkumavky 10 ml vody se pohybuje ko262188
Lem 3.107 a počet spor v 1 ml suspenze vzniklé smytím spor ze 30 g krup 50 ml vody je 9 . 107 spor v ml.
Vegetativní inokulum lze připravovat na půdách, obsahujících jako zdroj uhlíku glukózu noho sacharózu při dosažení shodných růstových hodnot. Vhodným zdrojem dusíku pro přípravu inokula je kukuřičný extrakt. Optimální stáří vegetativního mokni;? je 3tí až 43 hodin, optimální teplota 25 stupím Celsia.
Maximálních produkcí je s tímto kmenem dosahováno ve fermeníační půdě obsahující jako zdroj uhlíku laktózu či. sacharózu, nejvhodnějším zdrojem dusíku jo Pharmamedia v kombinaci s anorganickým zdrojem dusíku. Dále fermeníační půda musí obsahovat zdroj síry, fosforu, hořčík, uhličitan vápenatý, prekurzor postranního řetězce penicilinu a protipěnidlo. Optimální teplota pro biosyntézu penicilinu je 25 C.
Výběr kmenů byl prováděn i s ohledem na odolnost na mechanické namáhání.
Příklad 1
Vegetativní inokulum bylo připravováno submerzní kultivací v 500 ml varných baňkách se 4.0 ml inokulační půdy (zdroj uhlíku sacharóza, dusíku kukuřičný výluh, síran amonný a anorganické soli). Půda pro Tabulka kmen (interní označení)
NMU 2/40 UVLXIII/70 Příklad 2
Fermentační postup byl shodný s postupem uvedeným v příkladu 1 s tím rozdílem, že do části fermentačních baněk byl přidán buď keramický váleček délky 6 mm, šířky 4 mm, nebo skleněná kulička o průměru 4 mm. Keramické válečky byly 4. den ferpenicilín V j/ml
300
400 přípravu vegetativního inokula byla zaočkována kličkou spor za šikmého agaru se sporulační půdou nebo 2,5 ml sporové suspenze vzniklé smytím krup (30 g) 50ml destilované vody a inkubována na rotačním třepacím stroji 48 hodin.
Takto připraveným vegetativním inoikulem byly očkovány 10% fermentační baňky obsahu 500 ml se 40 ml fermentační půdy. Zdrojem uhlíku ve fermentační půdě byla laktóza v kombinaci se sacharózou, zdrojem dusíku Pharmamedia v kombinaci s dusičnanem amonným, dále půda obsahovala zdroj hořčíku, síry, fosforu, prekurzor postranního řetězce, uhličitan vápenatý a protipěnidlo. Při biosyntéze penicilinu G byl prekurzor přidáván v průběhu fermentace.
Příprava vegetativního inokula i vlastní fermentace probíhaly na rotačních třepacích strojích (230 obr./min., výstředník 25 mililitrů) při 25 rC.
Doba fermentace byla 8 dnů, vzorky na stanovení účinnosti penicilinu byly odebírány v 6., 7. a 8. dni fermentace. Maxima produkce bylo dosaženo v 7. dni fermentace.
Produkční srovnání výchozího kmene s kmenem, na který je uplatňován patentový nárok, je uvedeno v následující tabulce.
penicilín G j/ml
600 30 900 mentace sterilně z baněk odstraněny. Vzorky pro stanovení penicilinu byly odebírány počínaje 3. dnem ve 24hodinových intervalech do 8. dne fermentace. Přidávaná tělíska sloužila k detekci odolnosti mycelia na mechanické namáhání, jejich vliv na produkci penicilinu vyjádřený v j/ml vyplývá z následující tabulky.
T a b nika podmínky ve fermentační baňce dny standardní 1. ker, váleček -* 1 skleněná kulička
4. den odstraněn kmen
NMU 2/40 UV LXIII/ /70 NMU 2/40 UV LXIII/ /70 NMU 2/40 UV LXIII/ /70
3. 5 500 1400 3 800 4 000 4 800 5 300
4. 11 300 15 600 2 200 3 500 4 800 8 900
5. 20 500 23 700 1 800 3 200 4 500 12 300
6. 28 000 33 400 1 800 12 300 8 800 19 300
7. 29 500 33 400 2 200 17 800 10 200 23 000
8. 32 200 30 600 2 600 25 300 13 100 26 600
282188
Kmen, na který je uplatňován patentový nárok, podléhá negativnímu vlivu mechanického namáhání minimálně a navíc má značné regenerační schopnosti, jak vyplývá z výsledků uvedených v předchozí tabulce.
Příklad 3
Fermentace penicilinu V byla uskutečněná v čtvrtprovozním měřítku v objemu 201itrových laboratorních fermentačních tanků (v dalším LFT).
Inokulum s kmenem UV LXIII/70 bylo připraveno z provozní ječmenné sporové konzervy též v LFT na standardní inokulační půdě za 32 hodin kultivace.
Fermentace penicilinu V na půdě s obsahem 4% sójové mouky, 1% CSL o sušině 60procentní, dále prekurzoru, vápence a dalších solí probíhala za obvyklých kultivačních a technologických podmínek za semikontinuálního přidávání dalších živin (sacharóza, síran amonný, sójový olej, fenoxyoctová kyselina) po dobu 211 hodin. Byla dosažena produkce penicilinu V stanovená jodometricky 35 980 mj/ml, což bylo 118,7 % oproti kontrolní .Eermentaci s kmenem NMU 2/40.

Claims (1)

  1. pRedmEt vynalezu
    Kmen mikroorganismu Pcnicillium chrysogenum CCM F- 8012, produkující penicilín V a G.
    Saveroxrafla, n. p. závod 7, Moat
CS877167A 1987-10-06 1987-10-06 Kmen mikroorganismu Penicillium chrysogenuniCCM F-8012 CS262188B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS877167A CS262188B1 (cs) 1987-10-06 1987-10-06 Kmen mikroorganismu Penicillium chrysogenuniCCM F-8012

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS877167A CS262188B1 (cs) 1987-10-06 1987-10-06 Kmen mikroorganismu Penicillium chrysogenuniCCM F-8012

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS716787A1 CS716787A1 (en) 1988-07-15
CS262188B1 true CS262188B1 (cs) 1989-03-14

Family

ID=5420296

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS877167A CS262188B1 (cs) 1987-10-06 1987-10-06 Kmen mikroorganismu Penicillium chrysogenuniCCM F-8012

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS262188B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS716787A1 (en) 1988-07-15

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Newton et al. Isolation of cyanobacteria from the aquatic fern, Azolla
Ordentlich et al. Rhizosphere colonization by Serratia marcescens for the control of Sclerotium rolfsii
WO2002072795A2 (en) Isolated bacteria for the protection of plants against phytopathogenic fungi and bacteria
CN106282044B (zh) 一种生丝微菌和吡咯喹啉醌的制备方法
Alazard Nitrogen fixation in pure culture by rhizobia isolated from stem nodules of tropical Aeschynomene species
Schwinghamer Studies on induced variation in the rhizobia. I. Defined media and nodulation test techniques
US5492818A (en) Method of producing L-glutamic acid by fermentation
Smith et al. Symbiotic and free‐living denitrification by Bradyrhizobium japonicum
Rai The salt tolerance of Rhizobium strains and lentil genotypes and the effect of salinity on aspects of symbiotic N-fixation
Fisher et al. Antifungal effects of Massarina aquatica growing on oak wood
CS262188B1 (cs) Kmen mikroorganismu Penicillium chrysogenuniCCM F-8012
Rosbrook et al. The abilities of three Frankia isolates to nodulate and fix nitrogen with four species of Casuarina
KR100373510B1 (ko) 테이코플라닌을 생산하는 미생물
CS273134B1 (en) Strain of "penicillium chrysogenum ccm 8013" microorganism
US3483086A (en) Method for increasing alkaloid production of submerse claviceps cultures
Vezina et al. ANTIMYCIN A FERMENTATION I. PRODUCTION AND SELECTION OF STRAINS
KR102106479B1 (ko) 아네우리니바실러스 미굴라너스(aneurinibacillus migulanus) 균주 및 이의 용도
KR0139589B1 (ko) 스트랩토키나제와 스트렙토도르나제를 생산하는 미생물 및 이를 이용한 스트렙토키나제 및 스트렙토도르나제의 제조방법
CS253986B1 (cs) Kmen mikroorganismu Penioillium chrysogenum CCM P-786
SU881117A1 (ru) Штамм астINомусеS GRISeUS вниигенетика-307ф, продуцент антибиотика гризина
CZ281824B6 (cs) Kmen mikroorganismu Penicillium chrysogenum CCM 8157
CN108949604A (zh) 一株链霉菌属菌株及其培养方法和应用
Rai Manganese-resistant mutants of Azospirillum brasilense: their response of associative nitrogen fixation, dry-matter production and nitrogen content of cheena (Panicum miliaceum L.) to different amounts of applied nitrogen in acid soil
CZ282335B6 (cs) Vysokoprodukční kmen mikroorganismu Penicillium chrysogenum CCM 8197
SK278906B6 (sk) Vysokoprodukčný kmeň mikroorganizmu penicillium ch