CS254637B1 - Způsob koncentrace a purifikace viru parotitidy - Google Patents

Způsob koncentrace a purifikace viru parotitidy Download PDF

Info

Publication number
CS254637B1
CS254637B1 CS864507A CS450786A CS254637B1 CS 254637 B1 CS254637 B1 CS 254637B1 CS 864507 A CS864507 A CS 864507A CS 450786 A CS450786 A CS 450786A CS 254637 B1 CS254637 B1 CS 254637B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
concentration
virus
purification
pav
ions
Prior art date
Application number
CS864507A
Other languages
English (en)
Other versions
CS450786A1 (en
Inventor
Libor Grubhoffer
Original Assignee
Libor Grubhoffer
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Libor Grubhoffer filed Critical Libor Grubhoffer
Priority to CS864507A priority Critical patent/CS254637B1/cs
Publication of CS450786A1 publication Critical patent/CS450786A1/cs
Publication of CS254637B1 publication Critical patent/CS254637B1/cs

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

Způsob koncentrace a purifikace viru parotitidy z alantoidní tekutiny kuřecích embryí po úpravě pH a iontové síly pomocí polyethvlenglykolu-6 000 a přídavku iontů Ca2+. Precipitace a koncentrace tohoto viru z alantoidní tekutiny kontaminované lipidy a lipoproteiny žloutku je umožněna přídavkem dalšího podílu iontů Ca2+ při zachování ostatních parametrů. Obvyklou technikou purifikace ultracentrifugací přes vrstvu sacharózy případně na lineárním hustotním gradientu sacharózy je virus parotitidy zbaven zbývajících balastních proteinů.

Description

Vynález se týká způsobu koncentrace a purifikace viru parotitidy (PaV) precipitací z virové alantoidní tekutiny (AT) kuřecích embryi (KE).
Dosud známé způsoby koncentrace PaV i dalších virů adaptovaných na KE využívají ultracentrifugace případně ultrafiltrace. Zpracování větších objemů virové tekutiny potom předpokládá budto nákladný provoz dostupné ultracentrifugy s omezeným objemem rotoru (např.
VAC 602, rotor W 6 x 85) nebo pořízení vysokoobrátkové preparativní centrifugy typu Beckman J2-21, která umožňuje zpracovat v rotoru W 6 x 500 jednorázově až 3 litry virové tekutiny. Druhý ze způsobů koncentrace, ultrafiltrace, je závislý rovněž na technicky náročném a nákladném zařízení.
Podstatou předkládaného způsobu koncentrace PaV je jeho přímá precipitace z AT pomocí polyethylenglykolu s molekulovou hmotností 6 000 (PEG-6 000) v podmínkách zvýšené iontové 2+ síly a za přítomnosti iontů vápníku Ca . Způsob koncentrace je předkládán na základě podrobného studia podmínek koncentrace PaV z AT. Precipitace PaV z AT je komplikována značnou nestandardností kvality AT. Tato variabilita je dána jednak fyziologickými dispozicemi příslušné šarže KE a jednak je dc značné míry závislá i na technice a pečlivosti odběru AT· Během této operace může totiž snadno dojít k protržení žloutku a tím ke kontaminaci AT lipidickými složkami žloutku. Míra kontaminace AT lipidy je případ od případu různá. Uvádí se však, že norma obsahu lipidů v AT 12denních KE je 200-400 mg.ml AT znečištěná žloutkem potom může mít až 2 000 mg.ml-\
Zvýšený obsah lipidů a lipoproteinů v AT způsobuje, že produkt srážecí reakce flotuje,
2+ což znemožňuje jeho sedimentaci. Příslušným přídavkem iontů Ca při zachování ostatních parametrů je však iniciováno další srážení, dávající vznik mohutnější sraženině, která 2+ již má příznivé fyzikální vlastnosti pro sedimentaci. Přídavkem iontů Ca se tedy daří koncentrovat viriony PaV i z AT silně kontaminované žloutkovými lipidy. Volbou koncentrace 2+ iontů Ca v podmínkách různého stupně kontaminace AT lipidy lze ovlivňovat rozsah srážecí reakce PaV a tím i hodnoty specifických parametrů purifikace virionů PaV již ve fázi koncentrace.
Hlavní výhody předkládaného způsobu koncentrace a purifikace PaV spočívají v tom, že lze koncentrovat a purifikovat virus z velkého objemu virové tekutiny AT při výrazném 2+ omezení provozu ultracentrifugy a že lze stupňovaným přídavkem iontů Ca zpracovávat i alantoidní tekutinu s vysokou kontaminací žloutkovými lipidy a lipoproteiny. Navrhovaná metodika by měla být po specifickém upřesnění obecně použitelná pro koncentraci a purifikaci dalších infekčních agens (diagnostických antigenů), adaptovaných na Ke a uvolňovaných do AT. Z dalších zástupců rodu Paramyxovirus to mohou být virus parainfluenzy 1 (Sendai), virus moru drůbeže (NDV), některé další viry parainfluenzy ptáků. Zvláštní význam by měla mít tato metoda pro koncentraci viru chřipky A z AT kuřecích embryí, popřípadě i pro některé togaviry a rickettsie.
Produkt navrhovaného způsobu koncentrace a purifikace PaV se osvědčil jako diagnostický antigen pro test inhibice hemaglutinace, zvláště pak jako antigen pro nejrůznější uspořádání enzymové imunoanalýzy specifických protilátek izotypů IgG a IgM včetně přímého značení peroxidázou. Osvědčil se též při imunizacích k získání hyperimunního zvířecího séra i imunních myší k produkci monoklonálníoh protilátek.
Příklad 1
Kuřecí embrya (KE) jsou ve stáří 8 dní infikovány virem parotitidy (PaV), laboratorním kmenem Enders. Očkovací dávka PaV je 104'2 infekčních jednotek v 0,1 ml média na jedno KE. Infikovaná KE jsou dále 4 dny inkubována při teplotě 35,5 °C, přičemž pátý den je inkubace ukončena přenesením KE do +4 °C a důkladným vychlazením přes noc. Následující den je proveden odběr alantoidní tekutiny tradiční technikou. Získaná alantoidní tekutina (AT) je kombinovanou klarifikací (filtrace, nízkoobrátková centrifugace) zbavena tkáňových a buněčných zbytků.
Následuje úprava pH na hodnotu 7,0 až 7,5 a zvýšení iontové síly přídavkem 0,2 M krystalického NaCl. Po úplném rozpuštění NaCl je za stálého míchání při teplotě laboratoře přidán ze zásobního roztoku k upravené AT polyethylenglykol-6 000 (PEG-6 Ó00) do konečné koncentrace
5,0 až 5,5 % (w.v 3). Po krátkém intenzivním míchání je objem doplněn přídavkem roztoku 2+
CaCl^ do konečného obsahu iontů Ca 3 mM. Vlastní srážecí reakce poté probíhá přes noc při teplotě +4 °C. Jemná sraženina PaV je centrifugována a sediment resuspendován do 1/50 až 1/100 původního objemu v tlumivém roztoku TNE (lOmM Tris-HCl, 150 mM NaCl, 1 MM EDTA, pH 7,2). Preparát má v uvedeném rozsahu stupně koncentrace příznivé mechanické vlastnosti, je dostatečně homogenní a hodnoty koncentrace proteinů nepřesahují 4,0 mg.ml-1 při vysokém titru hemaglutinační aktivity (8 192 až 16 384). Již na této úrovni preparačního postupu dosahuje koncentrovaný preparát PaV stupně purifikace hemaglutinační aktivity hodnoty 50.
Podle jeho dalšího využití (sérologie, imunizace, příprava subjednotek) je dále purifikován postupem obvyklým v preparativní virologii ntyxóvírů ultracentrifugací přes vrstvu sacharózy (20% w.v Stupeň purifikace hemaglutinační aktivity potom dosahuje hodnoty
60. Nejvyššího stupně purifikace 70 až 80, vyjádřeno rovněž specifickou hemaglutinační aktivitou s kuřecími erytrocyty, lze potom dosáhnout v preparativním měřítku následnou ultracentrifugací částečně purifikovaného koncentrátu PaV na lineárním gradientu hustoty sacharózy (15 až 55% w.v . Produkty těchto purifikačních operací lze již snadno resuspendovat do .1/100 původního objemu AT, přičemž koncentrace proteinů nepřesáhne hodnotu 2,5 2,5 mg.ml 1 při vysokém titru hemaglutinační aktivity 16 384, a lyofilizovat bez ztráty aktivity.
Příklad 2
Vizuálním hodnocením výchozí AT nemůže být vždy odhadnuto, zda AT již obsahuje kritické množství lipidů nebo zda je jejich množství v normě. Toto rozhodnutí lze učinit pouze tehdy, když evidentně došlo k proniknutí žloutku do AT. Jestliže je i v případě AT s abnormálním množstvím lipidů postupováno podle příkladu 1, potom již 2 hod od začátku precipitace lze pozorovat tvorbu flotující sraženiny, která nebude při centrifugaci sedimentovat.
Za této situace je nutné doplnit precipitující suspenzi postupně nebo jednorázově 2+ přídavkem roztoku CaC^ do konečného obsahu iontů Ca v rozmezí 7 až 20 mM. Vytváří se mohutnější sraženina, která centrifugaci sedimentuje. Získaný sediment je resuspendován v 1/10 výchozího objemu AT tlumivým roztokem TNE s přídavkem EDTA až do bosahu 5 mM a promýván obvyklým způsobem ultracentrifugací. Sediment po této ultracentrifugací je resuspendován v 1/100 původního objemu AT tlumivým roztokem TNE, přičemž získaná suspenze PáV je podle dalšího využití purifikována způsoby popsanými v příkladě 1 s obdobnými výslednými parametry.

Claims (1)

  1. Způsob koncentrace a purifikace viru parotitidy, vyznačený tím, že virus parotitidy je koncentrován z alantoidní tekutiny při pH 7,0 až 7,5 kuřecích embryí po zvýšení iontové síly 0,15 až při 0,20 Μ NaCl precipitací polyetylenglykolem-6 000 (5,0 až 5,0 % w.v s přídavkem 3 až 6 mM v případech alantoidní tekutiny s vysokým obsahem lipidů a dále purifikován obvyklým postupem ultracentrifugací přes vrstvu sacharózy, případně na lineárním hustotním gradientu sacharózy.
CS864507A 1986-06-18 1986-06-18 Způsob koncentrace a purifikace viru parotitidy CS254637B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS864507A CS254637B1 (cs) 1986-06-18 1986-06-18 Způsob koncentrace a purifikace viru parotitidy

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS864507A CS254637B1 (cs) 1986-06-18 1986-06-18 Způsob koncentrace a purifikace viru parotitidy

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS450786A1 CS450786A1 (en) 1987-05-14
CS254637B1 true CS254637B1 (cs) 1988-01-15

Family

ID=5387969

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS864507A CS254637B1 (cs) 1986-06-18 1986-06-18 Způsob koncentrace a purifikace viru parotitidy

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS254637B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS450786A1 (en) 1987-05-14

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CA2197683C (en) Method for preparing an influenza virus, antigens obtained and applications thereof
US4522809A (en) Process for obtaining lipid envelope virus sub-units, notably antigens for use as vaccines, the products obtained and their applications
Schultze et al. Neuraminidase treatment of avian infectious bronchitis coronavirus reveals a hemagglutinating activity that is dependent on sialic acid-containing receptors on erythrocytes
Vlasak et al. Human and bovine coronaviruses recognize sialic acid-containing receptors similar to those of influenza C viruses.
JP5264843B2 (ja) 細胞培養におけるインフルエンザウイルスの複製の方法、および本方法によって入手可能なインフルエンザウイルス
KR101153929B1 (ko) 기능성 인플루엔자 바이러스 유사입자
JP2004331673A (ja) インフルエンザウイルスの複製のための動物細胞および方法
EP0048201B1 (en) Herpes simplex type i fraction vaccine and process for its preparation
CZ297492B6 (cs) Způsob přípravy povrchových antigenních proteinů z virů chřipky a vakcína na bázi těchtoproteinů
US20090035837A1 (en) Virus Production
Brostrom et al. Comparison of neuraminidases of paramyxoviruses with immunologically dissimilar hemagglutinins
US4206014A (en) Process for removing detergents from virus-antigen suspensions
Neurath et al. Density gradient centrifugation studies on rabies virus
US20170022480A1 (en) Methods for purification of a virus produced in vitro and clearance assay for the virus
CS254637B1 (cs) Způsob koncentrace a purifikace viru parotitidy
KR20020020260A (ko) 서코바이러스를 생장시키거나 생물학적 물질로부터제거하는 방법
Hanson et al. Properties of duck hepatitis virus
NO142024B (no) Fremgangsmaate for fremstilling av en vaksine, saerlig influensavaksine, ved aa dyrke et virus
Polson et al. Polyethylene glycol purification of influenza virus with respect to aggregation and antigenicity
SE447789B (sv) Forfarande for framstellning av forsommar-meningo-encephalitis-virus-vacciner och genom forfarandet framstellda vacciner
PL209994B1 (pl) Wariant wirusa zakaźnego zapalenia torby Fabrycjusza (IBDV), szczepionki, sposób wytwarzania wariantu IBDV, sposób wytwarzania szczepionek, zastosowanie wariantów IBDV
Schneider et al. Purification of rabies virus from tissue culture
RU2033182C1 (ru) Способ получения живой гриппозной вакцины
KR0160224B1 (ko) 마지 바이러스/마지-ii 균주와 이를 이용한 신증후 출혈열 백신
CN112752581A (zh) 灭活全颗粒流感疫苗及其制备法